(57)【要約】【課題】ミトコンドリア活性の容易な把握を可能にする指標値を決定することができる指標値決定システムを提供する。【解決手段】最終的に体内で分解されてアセトンを発生するアセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出されるアセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得部２と、少なくとも取得したアセトンの濃度値を用いて、被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値出力部３とを備える。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
最終的に体内で分解されてアセトンを発生するアセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得手段と、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値決定手段とを備える指標値決定システム。
【請求項２】
前記濃度値取得手段において、前記アセトン発生種を摂取していない被検者から放出されるアセトンの基準濃度値を取得し、
前記指標値決定手段において、前記アセトンの濃度値が前記基準濃度値から最大濃度値に達するまでの所定区間におけるアセトン濃度増加速度を前記指標値として決定する請求項１に記載の指標値決定システム。
【請求項３】
前記指標値決定手段において、前記アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、前記アセトン発生種の最低摂取量を前記指標値として決定する請求項１に記載の指標値決定システム。
【請求項４】
前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者は、前記アセトン発生種とともに、栄養分を摂取している請求項１〜３のいずれか一項に記載の指標値決定システム。
【請求項５】
請求項１から４のいずれか一項に記載の指標値決定システムと、
前記決定された指標値を基に、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価手段とを備え、
前記活性評価手段において、前記決定された指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、前記被検者のミトコンドリア活性を評価するミトコンドリア活性評価システム。
【請求項６】
請求項１から４のいずれか一項に記載の指標値決定システムを用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する方法であって、
前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得ステップと、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する前記指標値を決定する指標値決定ステップとを実行する指標値決定方法。
【請求項７】
請求項５に記載のミトコンドリア活性評価システムを用いて、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する方法であって、
前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得ステップと、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する前記指標値を決定する指標値決定ステップと、
前記決定された指標値を基に、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価ステップとを実行し、
前記活性評価ステップにおいて、前記決定された指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、前記被検者のミトコンドリア活性を評価するミトコンドリア活性評価方法。
【請求項８】
最終的に体内で分解されてアセトンを発生するアセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得ステップと、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値決定ステップとを実行する指標値決定方法。
【請求項９】
前記濃度値取得ステップにおいて、前記アセトン発生種を摂取していない被検者から放出されるアセトンの基準濃度値を取得し、
前記指標値決定ステップにおいて、前記アセトンの濃度値が前記基準濃度値から最大濃度値に達するまでの所定区間におけるアセトン濃度増加速度を前記指標値として決定する請求項８に記載の指標値決定方法。
【請求項１０】
前記指標値決定ステップにおいて、前記アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、前記アセトン発生種の最低摂取量を前記指標値として決定する請求項８に記載の指標値決定方法。
【請求項１１】
前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者は、前記アセトン発生種とともに、栄養分を摂取している請求項８〜１０のいずれか一項に記載の指標値決定方法。
【請求項１２】
請求項８から１１のいずれか一項に記載の指標値決定方法により、前記指標値を決定した後に、
前記決定した指標値を基に、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価ステップを実行し、
前記活性評価ステップにおいて、前記決定した指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、前記被検者のミトコンドリア活性を評価するミトコンドリア活性評価方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値決定システム及び指標値決定方法、並びに、指標値を基にミトコンドリア活性を評価するミトコンドリア活性評価システム及びミトコンドリア活性評価方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ミトコンドリアは、細胞内でエネルギーを生産する重要な器官であり、摂取した栄養分をエネルギー貯蔵物質たるＡＴＰ（アデノシン三リン酸）に変換する機能を有するが、変換する際に活性酸素が発生するため、老化等によってミトコンドリアの活性は徐々に低下する。そして、ミトコンドリア活性が低下した場合には、更に多くの活性酸素が発生することになり、老化や種々の病気の原因となることが近年の研究により明らかとなっている。したがって、ミトコンドリア活性を把握することは、老化防止や生活習慣病防止などに資することになる。
【０００３】
従来、ミトコンドリアの活性を測定する方法としては、例えば、特許文献１に開示されたミトコンドリアの代謝活性測定方法が提案されている。このミトコンドリアの代謝活性測定方法は、哺乳動物等の生体から採取した細胞や培養した細胞を用い、この細胞に対してストレプトリジンＯ含有液を用いて透過処理を施して、透過処理した細胞のミトコンドリアのエネルギー代謝活性を測定する方法である。このミトコンドリアの代謝活性測定方法によれば、ミトコンドリア膜に損傷を与えることなく、代謝活性を測定することができる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２０１１−２０５９３５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ここで、ミトコンドリア活性を把握することが老化防止や生活習慣病防止などに資するという観点からすれば、例えば、健康診断の検査項目の一つとして測定できたり、日常的に被検者自身が測定できたりというように、ミトコンドリア活性は、煩雑な作業を伴うことなく簡便に測定でき、容易に把握できることが肝要である。
【０００６】
しかしながら、上記特許文献１記載のミトコンドリアの代謝活性測定方法では、体から取り出した細胞を用いる必要があるため測定作業が煩雑なものにならざるを得ず、ミトコンドリア活性を簡便に測定することができないため、ミトコンドリア活性を容易に把握することができない。
【０００７】
本発明は以上の実情に鑑みなされたものであり、ミトコンドリア活性の容易な把握を可能にする指標値を決定することができる指標値決定システム及び指標値決定方法、並びに、指標値を基にミトコンドリア活性を容易に評価することができるミトコンドリア活性評価システム及びミトコンドリア活性評価方法の提供を、その目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
そこで、上記目的を達成するために本願発明者は、ミトコンドリア活性を容易に把握することができる手法について鋭意研究を重ねた結果、体外に放出されるアセトンの濃度値とミトコンドリア活性との間の相関性に着目し、アセトンの濃度値を基にしてミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定することで、ミトコンドリア活性を把握できることを見出し、更に、この指標値を用いてミトコンドリア活性を評価できることを見出した。
【０００９】
即ち、糖質制限等を行うと体内の糖が不足するため、体内の脂肪を分解してケトン体を生成し、このケトン体を利用してミトコンドリアでエネルギーを作り出そうとする。具体的には、脂肪の分解によって生成される脂肪酸がミトコンドリア内で３−ヒドロキシ酪酸まで分解され、これがアセト酢酸に酸化される。そして、アセト酢酸がアセトアセチルＣｏＡを経由してＴＣＡ回路（クエン酸回路）に取り込まれ、エネルギーとして利用される。
【００１０】
このとき、脂肪が分解されて供給されたアセト酢酸を消費するのに十分なミトコンドリア活性がないと、供給されたアセト酢酸の消費が追い付かず、アセト酢酸がアセトンと二酸化炭素に分解され、ミトコンドリアから体液中に放散されたアセトンが呼気とともに放出されたり、皮膚から蒸発したりすることで、体からアセトン臭が発せられる。
【００１１】
つまり、ミトコンドリア活性が高いと、体内のアセト酢酸の消費量が増加するため、体外に放出されるアセトンの濃度値が減少し、逆に、ミトコンドリア活性が低いと、アセト酢酸の消費量が減少するため、体外に放出されるアセトンの濃度値が増加することになる。このように、体外に放出されるアセトンの濃度値とミトコンドリア活性との間には相関性があるため、意図的に体内のケトン体の量を増加させることで、被検者から発生するアセトンを検出すれば、アセトンの濃度値を基にしてミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定してミトコンドリア活性を把握することができ、更に、この指標値を基にミトコンドリア活性を評価できるのである。
【００１２】
即ち、本発明に係る指標値決定システムの特徴構成は、
最終的に体内で分解されてアセトンを発生するアセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得手段と、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値決定手段とを備える点にある。
また、上記指標値決定システムを用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値決定方法の特徴構成は、
前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得ステップと、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する前記指標値を決定する指標値決定ステップとを実行する点にある。
また、上記目的を達成するための本発明に係る指標値決定方法の特徴構成は、
最終的に体内で分解されてアセトンを発生するアセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得ステップと、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する指標値決定ステップとを実行する点にある。
【００１３】
上記本発明に係る指標値決定システム及び指標値決定方法に係る特徴構成では、まず、アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出されるアセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する。即ち、本発明においては、糖質制限等を行った状態（脂肪が分解されて３−ヒドロキシ酪酸などのケトン体が供給されている状態）を被検者の体内に疑似的に作り出すために、アセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを被検者が摂取した状態にし、この被検者から放出されるアセトンの濃度値を取得するようにしている。
【００１４】
このようにすることで、例えば、健康状態やスポーツ能力などが異なる被検者が同じ量のアセトン発生種の中の少なくとも一つを摂取したときに、各被検者のミトコンドリア活性に応じて取得されるアセトンの濃度値が変化し、また、同一被検者が異なる量のアセトン発生種の中の少なくとも一つを摂取したときに、その摂取量に応じて取得されるアセトンの濃度値が変化することになる。
【００１５】
ついで、少なくとも取得したアセトンの濃度値を用いて、被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する。
【００１６】
このように、ミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定でき、細胞等を用いることなく、この指標値から被検者のミトコンドリア活性を容易に把握することができる。そして、この指標値は、例えば、予めアセトン発生種の摂取量や被検者の性別、年齢、生活習慣、運動の有無、疾病の有無などと指標値との関係を規定したマップを作成しておくことで、生活習慣病予防群の検知や、老化指標の測定、一日に摂取可能なカロリーの推定、ミトコンドリア活性に影響を与える食物のスクリーニング及び食生活の検証、各種疾病とミトコンドリア活性との関係検証、長寿とミトコンドリア活性の関係検証、運動トレーニングの効果検証及び最適トレーニング量の設定、短期的なミトコンドリア活性の低下を基にした精神ストレスの確認、解糖系とＴＣＡサイクルのバランス測定、ミトコンドリア病の状態把握などにも用いることができる。
【００１７】
このように、本発明に係る指標値決定システム及び指標値決定方法によれば、被検者から放出されるアセトンの濃度値を取得し、この取得したアセトンの濃度値を基にして、ミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定することができるため、細胞等が必要となる従来の測定方法と比較して、煩雑な測定作業を要することなく、決定した指標値からミトコンドリア活性を容易に把握することができる。
【００１８】
また、本発明に係る指標値決定システムの更なる特徴構成は、前記濃度値取得手段において、前記アセトン発生種を摂取していない被検者から放出されるアセトンの基準濃度値を取得し、
前記指標値決定手段において、前記アセトンの濃度値が前記基準濃度値から最大濃度値に達するまでの所定区間におけるアセトン濃度増加速度を前記指標値として決定する点にある。
本発明に係る指標値決定方法の更なる特徴構成は、前記濃度値取得ステップにおいて、前記アセトン発生種を摂取していない被検者から放出されるアセトンの基準濃度値を取得し、
前記指標値決定ステップにおいて、前記アセトンの濃度値が前記基準濃度値から最大濃度値に達するまでの所定区間におけるアセトン濃度増加速度を前記指標値として決定する点にある。
【００１９】
上記各特徴構成では、アセトン濃度増加速度を指標値として決定するようにしている。一定量のアセトン発生種を被検者が摂取した場合、アセトン発生種の血中濃度の増加とともに、被検者から放出されるアセトンの濃度値も増加することになるが、ミトコンドリア活性が高いほど、アセト酢酸の処理される量が増加するため、アセト酢酸の分解によるアセトンの発生が抑えられる。つまり、ミトコンドリア活性が高いほど、アセトン濃度増加速度は低下する。したがって、アセトン濃度増加速度を指標値とすることで、ミトコンドリア活性を把握することができる。
【００２０】
また、本発明に係る指標値決定システムの更なる特徴構成は、前記指標値決定手段において、前記アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、前記アセトン発生種の最低摂取量を前記指標値として決定する点にある。
本発明に係る指標値決定方法の更なる特徴構成は、前記指標値決定ステップにおいて、前記アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、前記アセトン発生種の最低摂取量を前記指標値として決定する点にある。
【００２１】
上記各特徴構成では、アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、アセトン発生種の最低摂取量を前記指標値として決定するようにしている。本願発明者らの知見によれば、被検者が摂取したアセトン発生種の摂取量が、ミトコンドリアが処理できる量を超えていない場合には、アセトンの濃度値は最大値に達した後に低下していくのに対し、ミトコンドリアが処理できる量を超えている場合には、アセトンの濃度値は最大値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる。したがって、ミトコンドリア活性が高いほど、アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、アセトン発生種の最低摂取量が多くなる。よって、上記のようなアセトン発生種の最低摂取量を指標値とすることで、ミトコンドリア活性を把握することができる。
【００２２】
また、本発明に係る指標値決定システムの更なる特徴構成は、前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者は、前記アセトン発生種とともに、栄養分を摂取している点にある。
本発明に係る指標値決定方法の更なる特徴構成は、前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者は、前記アセトン発生種とともに、栄養分を摂取している点にある。
【００２３】
本願発明者らが新たに見出した知見によれば、被検者がアセトン発生種とともに栄養分を摂取している場合、アセトン発生種のみを摂取している場合と比較して、取得するアセトン濃度値の信頼性が高まり、再現性良く測定を行うことができる。これは、以下の理由によると推察される。
【００２４】
即ち、測定時に被検者が空腹状態である場合や、糖質の多い食事を摂ったことでインスリンが過剰に分泌されている状態である場合などにおいて、被検者が低血糖状態に陥っている場合がある。そして、被検者が低血糖状態に陥っていると、摂取したアセトン発生種がエネルギーの生成に利用され、エネルギーの生成に利用されるアセトン発生種の量が測定中に変動することで、アセトンの発生量もそれに応じて変動するため、取得されるアセトン濃度値は、エネルギーの生成量に応じて変動してしまうという事態が生じ得る。しかしながら、アセトン発生種とともに栄養分を摂取している場合には、栄養分の摂取によって血糖値が上がり、アセトン発生種を利用したエネルギーの生成が抑えられるため、エネルギーの生成に利用されるアセトン発生種の量が測定中に変動し難くなっている状態で、アセトン濃度値を取得できるためであると推察される。
【００２５】
上記各特徴構成によれば、被検者が、アセトン発生種とともに栄養分を摂取しているため、測定時に被検者が空腹であったり、インスリンが過剰に分泌されていたりすることで低血糖の状態であった場合でも、摂取したアセトン発生種を利用したエネルギーの生成を抑えることができ、エネルギーの生成に起因する測定中でのアセトン発生種の量の変動が抑えられた状態でのアセトン濃度値を取得できるため、取得するアセトン濃度値の信頼性が高まり、再現性良く測定を行うことができる。
【００２６】
また、本発明に係るミトコンドリア活性評価システムの特徴構成は、
前記いずれかの指標値決定システムと、
前記決定された指標値を基に、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価手段とを備え、
前記活性評価手段において、前記決定された指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する点にある。
また、上記ミトコンドリア活性評価システムを用いて、前記被検者のミトコンドリア活性を評価するミトコンドリア活性評価方法の特徴構成は、
前記アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した前記被検者から放出される前記アセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する濃度値取得ステップと、
少なくとも前記取得したアセトンの濃度値を用いて、前記被検者のミトコンドリア活性と相関を有する前記指標値を決定する指標値決定ステップと、
前記決定された指標値を基に、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価ステップとを実行し、
前記活性評価ステップにおいて、前記決定された指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する点にある。
また、本発明に係るミトコンドリア活性評価方法の特徴構成は、
上記いずれかの指標値決定方法により、前記指標値を決定した後に、
前記決定した指標値を基に、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価ステップを実行し、
前記活性評価ステップにおいて、前記決定した指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、前記被検者のミトコンドリア活性を評価する点にある。
【００２７】
上記本発明に係るミトコンドリア活性評価システム及びミトコンドリア活性評価方法に係る特徴構成では、まず、アセトン発生種の中から選択される少なくとも一つを摂取した被検者から放出されるアセトンの濃度値を連続的又は断続的に取得する。ついで、少なくとも取得したアセトンの濃度値を用いて、被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定する。その後、この指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較し、被検者のミトコンドリア活性を評価する。このように、取得した指標値を同一被検者に関する過去の指標値と比較することによって、その被検者のミトコンドリア活性の変化、即ち、過去のミトコンドリア活性と比較して現在のミトコンドリア活性が高くなっているのか或いは低くなっているのかという評価を行うことができる。そして、ミトコンドリアの評価が可能となることで、生活習慣病予防群の検知や、老化指標の測定、一日に摂取可能なカロリーの推定、ミトコンドリア活性に影響を与える食物のスクリーニング及び食生活の検証、各種疾病とミトコンドリア活性の関係検証、長寿とミトコンドリア活性の関係検証、運動トレーニングの効果検証及び最適トレーニング量の設定、短期的なミトコンドリア活性の低下を基にした精神ストレスの確認、解糖系とＴＣＡサイクルのバランス測定、ミトコンドリア病の状態把握などが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】本実施形態に係る指標値決定装置及びミトコンドリア活性評価装置の概略構成を示したブロック図である。
【図２】本実施形態に係る指標値決定方法及びミトコンドリア活性評価方法を示すフローチャートである。
【図３】アセトン発生種を摂取してからの経過時間と血中３ＨＢ濃度の増加量及びアセトン濃度の増加量との関係を示すグラフである。
【図４】アセトン発生種を摂取してからの経過時間と血中３ＨＢ濃度の増加量及びアセトン濃度の増加量との関係を示すグラフである。
【図５】アセトン発生種を摂取してからの経過時間と血中３ＨＢ濃度の増加量及びアセトン濃度の増加量との関係を示すグラフである。
【図６】アセトン発生種を摂取してからの経過時間と血中３ＨＢ濃度の増加量及びアセトン濃度の増加量との関係を示すグラフである。
【図７】アセトン発生種を摂取してからの経過時間とアセトン濃度の変化量との関係を示すグラフである。
【図８】アセトン発生種及び砂糖を摂取してからの経過時間とアセトン濃度の変化量との関係を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２９】
〔第１実施形態〕
以下、図面を参照して第１実施形態に係る指標値決定装置及びミトコンドリア活性評価装置について説明する。
【００３０】
図１に示すように、本実施形態に係るミトコンドリア活性評価装置１は、アセトンの濃度値を取得する濃度値取得部２（濃度値取得手段）と、濃度値取得部２が取得した濃度値を用いて、被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値を決定して出力する指標値出力部３（指標値決定手段）と、指標値出力部３から出力された指標値を基に、被検者のミトコンドリア活性を評価する活性評価部５（活性評価手段）と、指標値を記憶する指標値記憶部６とを備えており、濃度値取得部２と指標値出力部３とが指標値決定装置４である。
【００３１】
濃度値取得部２は、被検者の呼気に含まれるアセトンを検出する呼気センサー１０からアセトンの濃度値を取得し、取得した濃度値を指標値出力部３に送信する。尚、呼気センサー１０から検出結果は、無線通信又は有線通信によって濃度値取得部２に送信される。
【００３２】
指標値出力部３は、指標値出力部３から受信した濃度値を基に、指標値としてのアセトン濃度増加速度を決定して、活性評価部５又は適宜設けられた表示装置１１に送信する。具体的に、本実施形態においては、最終的に体内で分解されてアセトンを発生するアセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した状態の被検者の呼気に含まれるアセトンの濃度値と、アセトン発生種を摂取していない状態の被検者の呼気に含まれるアセトンの濃度値（基準濃度値）とを基にして、アセトンの濃度値が基準濃度値から最大濃度値に達するまでの所定区間におけるアセトン濃度増加速度を指標値として決定する。尚、アセトン濃度増加速度を指標値とする場合、ミトコンドリア活性が高いほどアセトン濃度増加速度が低下する関係にある。尚、表示装置１１は、ミトコンドリア活性評価装置１又は指標値決定装置４に組み込まれていても良いし、これらの装置の外部に別途設けられていても良い。
【００３３】
活性評価部５は、指標値出力部３から受信したアセトン濃度増加速度が所定速度以上であるか否かを判断し、所定速度以上でない場合にはその旨を表示させるための信号を表示装置１１に送信する。一方、アセトン濃度増加速度が所定速度以上である場合には、受信したアセトン濃度増加速度を指標値記憶部６に送信して記憶させるとともに、指標値記憶部６に同一被検者の過去のアセトン濃度増加速度が記憶されているか否かを確認し、記憶されている場合には、同一被検者に関する、受信したアセトン濃度増加速度と過去のアセトン濃度増加速度とを比較して、ミトコンドリア活性が低下しているのか或いは増加しているのかを評価して、その結果を表示装置１１に送信する。
【００３４】
次に、図２を参照しつつ、指標値決定方法及びミトコンドリア活性評価方法を説明する。まず、工程＃１において基準濃度値の測定を行う。具体的には、アセトン発生種を摂取していない状態の被検者の呼気に含まれるアセトンを呼気センサー１０を用いて検出し、アセトンの濃度値（基準濃度値）を取得する。尚、上記ミトコンドリア活性評価装置１を用いた場合には、呼気センサー１０による検出結果が濃度値取得部２に送信されてアセトンの基準濃度値が取得され、この基準濃度値が指標値出力部３に送信される。
【００３５】
ついで、工程＃２において被検者がアセトン発生種を摂取する。尚、被検者が摂取するアセトン発生種の量は、健康状態やスポーツ能力などに応じて被検者ごとに決めた適切な量とし、後述する工程＃６においてアセトン濃度増加速度が所定速度以上であると判断された場合、同一の被検者については、今後行う指標値決定方法及びミトコンドリア活性評価方法において、同量のアセトン発生種を摂取して行う。尚、アセトン発生種の摂取量は、０．５ｇ〜５０ｇが好ましく、１ｇ〜２５ｇがより好ましく、３ｇ〜１０ｇが最も好ましい。
【００３６】
その後、工程＃３において一定時間ごとのアセトンの濃度値を測定する（濃度値取得ステップ）。即ち、アセトン発生種を摂取した状態の被検者の呼気に含まれるアセトンを、一定時間ごとに呼気センサー１０を用いて検出し、アセトンの濃度値を取得する。尚、上記ミトコンドリア活性評価装置１を用いた場合には、呼気センサー１０による検出結果が濃度値取得部２に送信されてアセトンの濃度値が取得され、この濃度値が指標値出力部３に送信される。
【００３７】
次に、工程＃４において、アセトンの最大濃度値を取得したか否かを判断し、最大濃度値を取得している場合には工程＃５に移行し、最大濃度値を取得していない場合には工程＃３に戻る。具体的に、取得した濃度値がこの濃度値を測定したタイミングより一つ前のタイミングで測定して取得した濃度値よりも高い場合には最大濃度値を取得していないと判断し、低い場合には最大濃度値を取得したと判断する。ミトコンドリア活性評価装置１を用いる場合、指標値出力部３において、アセトンの最大濃度値が取得されたか否かが判断される。
【００３８】
工程＃５として、指標値としてのアセトン濃度増加速度を決定する（指標値決定ステップ）。具体的には、アセトンの濃度値が、基準濃度値から最大濃度値に達するまでの間における所定のタイミングでの濃度値及び経過時間と、基準濃度値とを基に、アセトンの濃度値が基準濃度値から所定のタイミングでの濃度値に達するまでのアセトン濃度増加速度を指標値として決定する。ミトコンドリア活性評価装置１を用いた場合には、指標値出力部３においてアセトン濃度増加速度が算出され、当該アセトン濃度増加速度が指標値として決定され、この決定されたアセトン濃度増加速度が活性評価部５に送信されたり、表示装置１１に送信されたりする。上記所定のタイミングとは、例えば、アセトン濃度増加速度が一定になったタイミングであり、ミトコンドリア活性評価装置１を用いた場合については、アセトン濃度増加速度が一定になったと、測定データを基に指標値出力部３が判断したタイミングである。尚、指標値としてのアセトン濃度増加速度は、基準濃度値及び最大濃度値と、基準濃度値から最大濃度値に達するまでに要した時間とを基に算出したものであっても良い。
【００３９】
これら工程＃１から工程＃５は指標値決定方法に相当するものであり、上記のようにして工程＃１から工程＃５までを行うことによって、ミトコンドリア活性と相関を有する指標値としてのアセトン濃度増加速度を決定することができるため、細胞等を用いることなく、この指標値から被検者のミトコンドリア活性を容易に把握することができるようになる。そして、このように決定された指標値は、例えば、予めアセトン発生種の摂取量や被検者の性別、年齢、生活習慣、運動の有無、疾病の有無などと指標値との関係を規定したマップを作成しておくことで、生活習慣病予防群の検知や、老化指標の測定、一日に摂取可能なカロリーの推定、ミトコンドリア活性に影響を与える食物のスクリーニング及び食生活の検証、各種疾病とミトコンドリア活性の関係検証、長寿とミトコンドリア活性の関係検証、運動トレーニングの効果検証及び最適トレーニング量の設定、短期的なミトコンドリア活性の低下を基にした精神ストレスの確認、解糖系とＴＣＡサイクルのバランス測定、ミトコンドリア病の状態把握などにも用いることができる。
【００４０】
工程＃６では、決定したアセトン濃度増加速度が所定速度以上であるか否かを判断し、所定速度以上であると判断した場合には工程＃７に移行する。一方、所定速度未満であると判断した場合には、工程＃２に戻ってアセトン発生種の摂取量を増やして再度工程＃３に移行する。これは、被検者が摂取したアセトン発生種の摂取量がミトコンドリアが十分に処理できる量であったために、アセトン濃度増加速度が被検者のミトコンドリア活性と十分に相関を有していない可能性が高いためである。
【００４１】
工程＃７では、同一被検者に関する過去のアセトン濃度増加速度が存在するか否かを判断し、存在する場合には工程＃８に移行し、存在しない場合には終了する。そして、工程＃８では、今回決定したアセトン濃度増加速度と、同一被検者に関する過去のアセトン濃度増加速度とを比較して、被検者のミトコンドリア活性が過去と比較して高くなっているのか或いは低くなっているのかを評価する（活性評価ステップ）。
【００４２】
これら工程＃６から工程＃８について、ミトコンドリア活性評価装置１を用いた場合には、活性評価部５において、決定したアセトン濃度増加速度を指標値記憶部６に記憶させるとともに、当該アセトン濃度増加速度が所定速度以上であるか否かが判断され（工程＃６）、所定速度以上であると判断された場合には、指標値記憶部６を参照して、同一被検者に関する過去のアセトン濃度増加速度が記憶されているかが判断され（工程＃７）、記憶されている場合には、当該アセトン濃度増加速度と、同一被検者に関する過去のアセトン濃度増加速度とを比較して、被検者のミトコンドリア活性が過去と比較して高くなっているのか或いは低くなっているのかを評価して、その結果が表示装置１１に送信される。一方、同一被検者に関する過去のアセトン濃度増加速度が記憶されていないと判断された場合は終了する。
【００４３】
このようにして、アセトン濃度増加速度をミトコンドリア活性の指標値として用いることで、同一被検者のミトコンドリア活性が過去の結果と比較して高くなっているのか低くなっているのかを評価することができ、例えば、定期健康診断等において各被検者ごとにアセトン濃度増加速度を指標値として決定するようにすれば、過去のアセトン濃度増加速度と比較してミトコンドリア活性がどのように変化したかを被検者が知ることができる。
【００４４】
以上のように、本実施形態に係る指標値決定方法によれば、被検者のミトコンドリア活性と相関を有する指標値たるアセトン濃度増加速度を決定することができ、このアセトン濃度増加速度を用いてミトコンドリア活性に関する種々の検査や検証などを行うことができる。また、指標値たるアセトン濃度増加速度と同一被検者の過去のアセトン濃度増加速度とを比較することによって、ミトコンドリア活性がどのように変化したかを被検者に知らせることができ、生活習慣病の予防や老化予防に取り組む契機を与えることができる。
【００４５】
以下、具体的な実験例１から実験例４について説明する。
【００４６】
（実験例１）
３−ヒドロキシ酪酸塩（３ＨＢ塩）を１ｇ（１０％３ＨＢをＮａ：Ｃａ：Ｍｇ＝７０：１５：１５で中和したものを１０ｍｌ）摂取した場合について、０分（摂取前）、３０分、６０分、９０分、１２０分後の、血中３ＨＢ濃度の増加量（０分に対する増加量）及び呼気中のアセトン濃度値の増加量（０分に対する増加量）の関係を図３に示す。呼気中のアセトン濃度値は、各時間ごとに呼気１Ｌを捕集袋に採取し、ガスクロマトグラフで分析した。被検者Ａ（５２歳男性）のミトコンドリア活性に対し、摂取した３ＨＢ塩の量が少ないため、血中３ＨＢ濃度の増加量は３０分後に０．２ｍＭまで上昇した後に０まで低下し、呼気中のアセトン濃度の増加量も、６０分後に０．１ｐｐｍと低い値で最大値となった後、すぐに減少した。アセトンの濃度値の増加量の変化パターンが増加量が最大となった後にすぐに減少するパターンとなった場合、３ＨＢ塩の摂取量を増やして再測定を行う必要があると判断するものとする。
尚、０分から６０分までの時間当たりのアセトン濃度増加速度（０．０９６ｐｐｍ／ｈｒ）は、後述する実験例２から実験例４におけるアセトン濃度増加速度より低い値となるため、このアセトン濃度増加速度が所定速度（たとえば０．１ｐｐｍ／ｈｒ）より遅い場合に、摂取する３ＨＢ塩の量を増やして再測定を行う必要があると判断することもできる。
また、血中３ＨＢ濃度の増加量のピークより、呼気中のアセトン濃度の増加量のピークの方が遅れて現れるのは、ミトコンドリアで発生したアセトンが体液に移行し、更に呼気から放出するまでに時間を要するためだと考えられる。
また、被検者Ａの体重（６４ｋｇ）から推定される体内水分量（６４ｋｇ×７０％＝４５Ｌ）と３ＨＢ塩の摂取量（１ｇ）から、摂取した３ＨＢ塩の全量が体液に移行したときの血中３ＨＢ濃度は１ｇ／１０４（３ＨＢ分子量）／４５Ｌ＝０．２１ｍＭであり、測定値である０．２ｍＭとほぼ一致することから、摂取した３ＨＢ塩はほぼ全量が体液に移行し、本測定に利用されたと推察される。
【００４７】
（実験例２）
３ＨＢ塩を３ｇ（１０％３ＨＢをＮａ：Ｃａ：Ｍｇ＝７０：１５：１５で中和したものを３０ｍｌ）摂取した場合について、０分（摂取前）、３０分、６０分、９０分、１２０分後の、血中３ＨＢ濃度の増加量（０分に対する増加量）と、呼気中のアセトン濃度値の増加量（０分に対する増加量）の関係を図４に示す。呼気中のアセトン濃度値は、各時間に呼気１Ｌを捕集袋に採取し、ガスクロマトグラフで分析した。被検者Ａ（５２歳男性）のミトコンドリア活性に対し、摂取した３ＨＢ塩の量が十分に多いため、血中３ＨＢ濃度の増加量は６０分後に０．４ｍＭまで上昇した後、ミトコンドリアで利用され徐々に低下した。呼気中のアセトン濃度の増加量は、６０分後に０．９ｐｐｍまで上昇した後に、所定範囲内を維持しながらなだらかに低下した。アセトンの濃度値の増加量の変化パターンが、増加量が最大となった後に、所定範囲内を維持するパターンとなった場合、正常に測定できており、再測定を行う必要がないと判断するものとする。
この場合のミトコンドリアの活性と相関を有する指標値としては、アセトンの濃度値の増加量が最大に達した後、所定範囲内を維持するようになる摂取量（本実験例では３ｇ）としても良いし、０分から６０分までの時間当たりのアセトン濃度増加速度（０．７９８ｐｐｍ／ｈｒ）としてもよい。尚、後者の方が簡便詳細な指標である。
【００４８】
（実験例３）
３ＨＢ塩を５ｇ（１０％３ＨＢをＮａ：Ｃａ：Ｍｇ＝７０：１５：１５で中和したものを５０ｍｌ）摂取した場合について、０分（摂取前）、３０分、６０分、９０分、１２０分後の、血中３ＨＢ濃度の増加量（０分に対する増加量）と、呼気中のアセトン濃度の増加量（０分に対する増加量）の関係を図５に示す。呼気中のアセトン濃度値は、各時間ごとに呼気１Ｌを捕集袋に採取し、ガスクロマトグラフで分析した。被検者Ａ（５２歳男性）のミトコンドリア活性に対し、摂取した３ＨＢ塩の量が十分に多いため、血中３ＨＢ濃度の増加量は６０分後に０．７ｍＭまで上昇した後、ミトコンドリアで利用され徐々に低下した。３ＨＢ塩の摂取量が実験例１の１ｇの５倍であるにもかかわらず、最大３ＨＢ濃度の増加量が３．５倍となっているのは、摂取した３ＨＢの全てを消費することはできないためであると考えられる。呼気中のアセトン濃度の増加量は、９０分後に１．１ｐｐｍまで上昇した後になだらかに低下した。アセトンの濃度値の増加量の変化パターンが、増加量が最大となった後に、所定範囲内を維持するパターンとなっているため、上記実験例２の場合と同様に、正常に測定できており、再測定を行う必要がないと判断する。
指標値としての０分から６０分までの時間当たりのアセトン濃度増加速度（０．７５６ｐｐｍ／ｈｒ）は、実験例２とほぼ同じ値となった。このことから、被検者が摂取する３ＨＢ塩の量は、アセトンの濃度値の増加量のパターンが、増加量が最大となった後に、所定範囲内を維持するパターンとなるような摂取量よりも多くとも特段の問題はない。また、測定をアセトンを検出できるセンサー素子などを用いて連続して行うことにより、指標値としてのアセトン濃度増加速度をより正確に算出することができる。
【００４９】
（実験例４）
３ＨＢ塩を３ｇ（１０％３ＨＢをＮａ：Ｃａ：Ｍｇ＝７０：１５：１５で中和したものを３０ｍｌ）摂取した場合について、０分（摂取前）、３０分、６０分、９０分後の、血中３ＨＢ濃度の増加量（０分に対する増加量）と、呼気中のアセトン濃度の増加量（０分に対する増加量）の関係を図６に示す。呼気中のアセトン濃度は、各時間ごとに呼気１Ｌを捕集袋に採取し、ガスクロマトグラフで分析した。被検者Ｂ（５９歳男性）のミトコンドリア活性に対し、摂取した３ＨＢ量が十分に多いため、血中３ＨＢ濃度の増加量は６０分後に０．７ｍＭまで上昇したのちミトコンドリアで利用され徐々に低下した。呼気中のアセトン濃度の増加量は、３０分後に０．８ｐｐｍまで上昇したのちなだらかに低下した。アセトンの濃度の増加量のパターンがこのようになった場合、測定は成功と判断する。ミトコンドリアの活性としての０分から３０分までの時間当たりのアセトン濃度増加速度（１．６０２ｐｐｍ／ｈｒ）は、実験例２及び３の被検者Ａのほぼ２倍の値となった。被検者Ｂのほうが高齢でありミトコンドリア活性が低いため、ミトコンドリアによるアセト酢酸の利用速度が遅く、より多くのアセトンが発生したためアセトン濃度速度が速くなったと考えられる。
【００５０】
〔第２実施形態〕
第２実施形態は、アセトン発生種たる３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ酪酸塩、３−ヒドロキシ酪酸エステル及びアセト酢酸の中から選択される少なくとも一つを摂取した状態の被検者が、アセトン発生種と同時に栄養分を摂取している状態である点が第１実施形態と異なっている。
【００５１】
即ち、第２実施形態において、ミトコンドリア活性評価装置１は、アセトン発生種と同時に栄養分を摂取した被検者の呼気に含まれるアセトンの濃度値と、アセトン発生種及び栄養分を摂取していない状態の被検者の呼気に含まれるアセトンの濃度（基準濃度値）とを基にして、アセトン濃度増加速度を指標値として決定し、この決定した指標値たるアセトン濃度増加速度を基に、被検者のミトコンドリア活性を評価する。尚、本願における「栄養分」とは、体内においてグルコースに変換されるものであれば特に限られるものではなく、例えば、糖質、炭水化物、タンパク質、アミノ酸、脂質、食物繊維などを例示することができ、被検者は、アセトン発生種とともに、これらのうちの一つのみを摂取しても良いし、複数組み合わせて摂取しても良い。
【００５２】
このように、被検者がアセトン発生種と同時に栄養分を摂取している状態であることにより、測定時に被検者が空腹であったり、インスリンが過剰に分泌されていたりすることで低血糖の状態であった場合でも、摂取したアセトン発生種を利用したエネルギーの生成を抑えることができ、エネルギーの生成に起因する測定中でのアセトン発生種の量の変動が抑えられた状態でのアセトン濃度値を取得できるため、取得するアセトン濃度値の信頼性が高まり、再現性良く測定を行うことができ、ミトコンドリア活性の評価精度を高められる。
【００５３】
以下、アセトン発生種と同時に栄養分を摂取した場合の効果を確認するために行った実験について説明する。
【００５４】
５ｇの３ＨＢを１００ｍｌの水に溶かし、水酸化カリウムでｐＨ４に調整したサンプル（サンプル１）及び５ｇの３ＨＢと２ｇの砂糖とを１００ｍｌの水に溶かし、水酸化カリウムでｐＨ４に調整したサンプル（サンプル２）をそれぞれ作製し、被検者Ｃに対して、これらサンプル１及び２を摂取させることにより行い、サンプル摂取前及びサンプル摂取から所定時間経過するごとに、安静状態における被検者Ｃの呼気を採取し、ガスクロマトグラフで分析して、呼気中のアセトン濃度を測定した。図７は、サンプル１を摂取した場合についてのサンプル摂取後の経過時間とアセトン濃度値の変化量（摂取前に対する変化量）との関係を示すグラフであり、図８は、サンプル２を摂取した場合についてのサンプル摂取後の経過時間とアセトン濃度値の変化量（摂取前に対する変化量）との関係を示すグラフである。また、サンプル１を午前に摂取する実験を２回（図７中の「午前１」、「午前２」）、サンプル１を午後に摂取する実験を２回（図７中の「午後１」、「午後２」）、サンプル２を午前に摂取する実験を２回（図８中の「午前＋栄養１」、「午前＋栄養２」）、サンプル２を午後に摂取する実験を２回（図８中の「午後＋栄養１」、「午後＋栄養２」）の計８回の実験をそれぞれ異なる日に行った。
【００５５】
サンプル１を摂取した場合について、各実験に関するグラフを比較すると、図７に示すようにバラつきが大きいことが分かる。具体的に、サンプル１の摂取から所定時間経過時におけるアセトン濃度値の変化量の最小値及び最大値は、１５分経過時においては、最小値が−１１９ｐｐｂ（午後２）、最大値が３１ｐｐｂ（午前１）であり、３０分経過時においては、最小値が−３７ｐｐｂ（午前２）、最大値が２６ｐｐｂ（午前１）であり、４５分経過時においては、最小値が−３５ｐｐｂ（午後１）、最大値が２２３ｐｐｂ（午前２）であり、６０分経過時においては、最小値が９３ｐｐｂ（午前１）、最大値が２８７ｐｐｂ（午前２）であった。
【００５６】
一方、サンプル２を摂取した場合について、各実験に関するグラフを比較すると、図８に示すように、サンプル１を摂取した場合よりバラつきが小さいことが分かる。具体的に、サンプル２の摂取から所定時間経過時におけるアセトン濃度値の変化量の最小値及び最大値は、１５分経過時においては、最小値が１９ｐｐｂ（午前＋栄養１）、最大値が７５ｐｐｂ（午後＋栄養２）であり、３０分経過時においては、最小値が８６ｐｐｂ（午前＋栄養１）、最大値が１９６ｐｐｂ（午後＋栄養２）であり、４５分経過時においては、最小値が２３４ｐｐｂ（午前＋栄養１）、最大値が３０２ｐｐｂ（午前＋栄養２）であり、６０分経過時においては、最小値が３５５ｐｐｂ（午後＋栄養２）、最大値が５３９ｐｐｂ（午前＋栄養２）であった。
【００５７】
このように、３ＨＢと同時に砂糖を摂取した場合と摂取しなかった場合とでバラつき具合が変化している要因としては、３ＨＢと同時に砂糖を摂取しなかった場合、測定時において、被検者Ｃが空腹状態であったり、糖質の多い食事を摂ったことでインスリンが過剰に分泌されている状態であったりすることで低血糖状態となり、摂取した３ＨＢがエネルギーの生成に利用され、エネルギーの生成に利用される３ＨＢの量が測定中に変動することで、アセトンの発生量もそれに応じて変動し、結果的に、取得されるアセトン濃度値がエネルギーの生成量に応じて変動してしまい、バラつきが大きくなっているが、３ＨＢと同時に砂糖を摂取した場合には、砂糖の摂取によって血糖値が上がり、３ＨＢを利用したエネルギーの生成が抑えられるため、エネルギーの生成に利用される３ＨＢの量が測定中に変動し難くなっている状態で、アセトン濃度値を取得できており、バラつきが小さくなっているものと推察される。
【００５８】
〔別実施形態〕
〔１〕上記実施形態では、アセトン濃度増加速度を指標値とする態様を示したが、これに限られるものではない。ミトコンドリア活性と相関を有する指標値として、アセトン濃度増加速度に代えて、アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、アセトン発生種の最低摂取量を用いるようにしても良い。尚、上記一定時間とは、５〜３０分、好ましくは５〜１０分であり、また、上記所定範囲内とは、最大濃度値の±３０％、好ましくは最大濃度値の±２０％である。被検者が摂取したアセトン発生種の摂取量が、ミトコンドリアが処理できる量を超えていない場合には、アセトンの濃度値は最大値に達した後に低下していくのに対し、ミトコンドリアが処理できる量を超えている場合には、アセトンの濃度値は最大値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる。したがって、ミトコンドリア活性が高いほど、アセトンの濃度値が最大濃度値に達した後、一定時間、所定範囲内の濃度値を維持するようになる、アセトン発生種の最低摂取量が多くなる。よって、上記のようなアセトン発生種の最低摂取量を指標値としても、ミトコンドリア活性を把握することができる。
【００５９】
〔２〕上記実施形態では、被検者の呼気に含まれるアセトンを一定時間ごとに、即ち、断続的に呼気センサーを用いて検出するようにしたが、これに限られるものではなく、所定時間継続して連続的にアセトンを検出し続けるようにしても良い。また、アセトンを検出するセンサーは呼気センサーに限られず、被検者の皮膚から放出されるアセトンを検出可能な皮膚センサーを用いることができる。
【００６０】
〔３〕上記実施形態では、指標値が活性評価部５から指標値記憶部６へ送信されて記憶される態様を例示したが、これに限られるものではなく、指標値出力部から指標値記憶部に指標値が送信されて記憶されるようにしても良いし、濃度値取得部が取得した濃度値を記憶するための適宜記憶部を設けるようにしても良い。
【００６１】
〔４〕上記実施形態において、指標値出力部３は、指標値としてのアセトン濃度増加速度を決定して出力するようになっているが、必ずしも指標値を出力する必要はなく、指標値を記憶しておき、活性評価部が適宜アクセスして取得するようにしても良い。
【００６２】
〔５〕上記ミトコンドリア活性評価方法及び指標値決定方法は、ミトコンドリア活性評価装置及び指標値決定装置を用いることなく実行することができる。
【００６３】
〔６〕上記第２実施形態においては、被検者がアセトン発生種と同時に栄養分を摂取している態様を示したが、これに限られるものではなく、アセトン発生種を摂取する前、或いはアセトン発生種を摂取した後に栄養分を摂取していても良い。
【産業上の利用可能性】
【００６４】
ミトコンドリア活性の容易な把握を可能にする指標値を決定することができる指標値決定システム及び指標値決定方法、並びに、指標値を基にミトコンドリア活性を容易に評価することができるミトコンドリア活性評価システム及びミトコンドリア活性評価方法に利用することができる。
【符号の説明】
【００６５】
１  ミトコンドリア活性評価装置（ミトコンドリア活性評価システム）
２  濃度値取得部（濃度値取得手段）
３  指標値出力部（指標値決定手段）
４  指標値決定装置（指標値決定システム）
５  活性評価部（活性評価手段）
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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