(57)【要約】【課題】  血液試料中に含まれる白血球（好中球などの顆粒球、リンパ球、単球）を精度よく識別可能な方法を提供すること。【解決手段】  細胞表面に存在する、スフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれる少なくともいずれか一つ以上のリン脂質の量を測定し、当該測定により得られるリン脂質の比率に基づき、顆粒球と顆粒球以外の白血球とを識別する。【選択図】  図５
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞表面に存在するリン脂質に占める特定のリン脂質の比率に基づき細胞を識別する方法であって、
前記特定のリン脂質が少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上であり、
前記細胞の識別が血液試料中に含まれる顆粒球と顆粒球以外の白血球との識別である、前記方法。
【請求項２】
顆粒球が好中球であり、顆粒球以外の白血球がリンパ球および／または単球である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
リン脂質の比率が、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
細胞表面に存在するリン脂質の比率に基づき細胞を識別する方法であって、
前記リン脂質が少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上、ならびに少なくともホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）およびホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）から選ばれるいずれか一つ以上であり、
前記細胞の識別が血液試料中に含まれる白血球同士の識別である、前記方法。
【請求項５】
白血球同士の識別が、顆粒球、リンパ球および単球間の識別である、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
顆粒球が好中球である、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
リン脂質の比率が、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値、およびホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値である、請求項４から６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
白血球表面に存在するリン脂質の比率が、以下の（１）から（３）に示す、いずれか一つに該当した場合、前記白血球を顆粒球と識別する方法：
（１）スフィンゴミエリンの存在比率があらかじめ設定した基準値を下回る、
（２）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）の存在比率があらかじめ設定した基準値を上回る、
（３）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値があらかじめ設定した基準値を上回る。
【請求項９】
顆粒球以外の白血球表面に存在するリン脂質が、以下の（４）から（６）に示す、いずれか一つに該当した場合、前記白血球をリンパ球と識別する方法：
（４）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）の存在比率があらかじめ設定した基準値を上回る、
（５）ホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）の存在比率があらかじめ設定した基準値を下回る、
（６）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値があらかじめ設定した基準値を上回る。
【請求項１０】
細胞表面に存在するリン脂質の測定を質量分析計を用いて行なう、請求項１から９のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞表面に存在するリン脂質の比率に基づき、血球を識別する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
医療診断において、血液分析が一般に行なわれている。前記血液分析の分析項目には、白血球（好中球などの顆粒球、単球、リンパ球）、赤血球、ヘモグロビン濃度やヘマトクリット値等があり、これら分析対象の量、濃度や比率等から、多血症、貧血等の血液疾患、感染症等の疾患を診断可能である。中でも、白血球の量や比率は、感染症等の疾患診断における重要な指標となり得る。
【０００３】
従来、白血球の識別法として、末梢血液塗抹標本により血球の形態の観察を行なう、形態検査が用いられた。しかしながら、塗抹標本を用いた形態検査には、血液試料の処理、標本の形成、細胞の染色および同定といった多段階のステップが必要であった。さらに細胞の判定は主観的であり、白血球の識別および計数の精度面で課題があった。
【０００４】
血液試料中の白血球の識別および計数の精度向上を目的とした手法の例として、特許文献１には、フローサイトメトリーを用いた白血球の識別法を開示している。フローサイトメトリーでは、血液試料が毛細管を通って流れ、当該試料中に含まれる細胞が抗原および検出装置の前を一つずつ通過する際の反射光および／または透過光を検出し、各細胞の特徴量を分析する。検出された光の特性は、試料中の細胞の特徴や染色態様（標識態様）に依存しており、これらの特性の違いを用いて細胞を識別し、計数する。しかしながら、フローサイトメトリーを用いる手法の場合、前記光の特性により細胞を客観的に分類できる一方、細胞の形態学的情報は全く得られない。そのため、細胞の染色不良や非特異的な染色等が発生すると、直ちに誤った疾患の診断につながるおそれがある。
【０００５】
白血球の識別および計数のさらなる精度向上には、客観的に識別でき、かつ細胞の形態観察が可能な技術が必要といえる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】ＷＯ２００４／００１４０８号
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明の課題は、血液試料中に含まれる白血球（好中球などの顆粒球、リンパ球、単球）を精度よく識別可能な方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
上記課題を解決するために、本発明者らは鋭意検討を重ねた結果、細胞表面に存在する特定のリン脂質の比率を用いることで前記課題を解決し、本発明に到達した。
【０００９】
すなわち本発明の第一の態様は、
細胞表面に存在するリン脂質に占める特定のリン脂質の比率に基づき細胞を識別する方法であって、
前記特定のリン脂質が少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上であり、
前記細胞の識別が血液試料中に含まれる顆粒球と顆粒球以外の白血球との識別である、前記方法である。
【００１０】
また本発明の第二の態様は、顆粒球が好中球であり、顆粒球以外の白血球がリンパ球および／または単球である、前記第一の態様に記載の方法である。
【００１１】
また本発明の第三の態様は、リン脂質の比率が、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値である、前記第一または第二の態様に記載の方法である。
【００１２】
さらに本発明の第四の態様は、
細胞表面に存在するリン脂質の比率に基づき細胞を識別する方法であって、
前記リン脂質が少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上、ならびに少なくともホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）およびホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）から選ばれるいずれか一つ以上であり、
前記細胞の識別が血液試料中に含まれる白血球同士の識別である、前記方法である。
【００１３】
また本発明の第五の態様は、白血球同士の識別が、顆粒球、リンパ球、および単球間の識別である、前記第四の態様に記載の方法である。
【００１４】
また本発明の第六の態様は、顆粒球が好中球である、前記第五の態様に記載の方法である。
【００１５】
また本発明の第七の態様は、リン脂質の比率が、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値、およびホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値である、前記第四から第六の態様のいずれかに記載の方法である。
【００１６】
さらに本発明の第八の態様は、白血球表面に存在するリン脂質の比率が、以下の（１）から（３）に示す、いずれか一つに該当した場合、前記白血球を顆粒球と識別する方法である：
（１）スフィンゴミエリンの存在比率があらかじめ設定した基準値を下回る、
（２）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）の存在比率があらかじめ設定した基準値を上回る、
（３）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値があらかじめ設定した基準値を上回る。
【００１７】
さらに本発明の第九の態様は、顆粒球以外の白血球表面に存在するリン脂質が、以下の（４）から（６）に示す、いずれか一つに該当した場合、前記白血球をリンパ球と識別する方法である：
（４）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）の存在比率があらかじめ設定した基準値を上回る、
（５）ホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）の存在比率があらかじめ設定した基準値を下回る、
（６）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値があらかじめ設定した基準値を上回る。
【００１８】
また本発明の第十の態様は、細胞表面に存在するリン脂質の測定を質量分析計を用いて行う、前記第一から第九の態様のいずれかに記載の方法である。
【００１９】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００２０】
本発明において細胞の識別に用いる、細胞表面に存在するリン脂質とは、
（ｉ）細胞の識別が、顆粒球と顆粒球以外の白血球との識別の場合は、細胞膜を構成するリン脂質のうち、少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上であり、
（ｉｉ）細胞の識別が、白血球同士の識別の場合は、細胞膜を構成するリン脂質のうち、少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上、ならびに少なくともホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）およびホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）から選ばれるいずれか一つ以上である。
【００２１】
細胞表面に存在するリン脂質は、細胞の種類によってその構成比率が異なる。本発明では、これらリン脂質を検出し、その比率を解析することで、細胞を識別する。なお、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）は、１位に炭素数１８の飽和脂肪酸（不飽和度としては０価）、２位に炭素数１８の４価の不飽和脂肪酸からなるホスファチジルコリンを、ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）は、１位に炭素数１８の飽和脂肪酸、２位に炭素数２０の４価の不飽和脂肪酸からなるホスファチジルイノシトールを、ホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）は、１位に炭素数１６の飽和脂肪酸、２位に炭素数１８の飽和脂肪酸からなるホスファチジルイノシトールを、それぞれ意味する。
【００２２】
血液試料中に存在する白血球は、多形核白血球（顆粒白血球、顆粒球ともいう）である好中球、好酸球、好塩基球と、単核白血球であるリンパ球、単球とに分類できる。また、正常な血液において、これら種類の白血球内での割合は一定の範囲内にある。具体的には、好中球が３８から７０％、好酸球が１から５％、好塩基球が０から２％、リンパ球が１５から４５％、単球が１から８％である。本発明は、前記白血球のうち９０％以上を占めると予想される、好中球とリンパ球および／または単球との識別や、好中球、リンパ球および単球間の識別に特に適した方法である。
【００２３】
なお本発明において血液試料とは、白血球を少なくとも含む試料であればよく、具体的には、血液（全血）、希釈血液、髄液、臍帯血、白血球を含む成分採血液などの試料や、尿、唾液、精液、糞便、痰、羊水、腹水などの白血球を含み得る試料や、肝臓、肺、脾臓、腎臓、皮膚、腫瘍、リンパ節などの組織の一片を懸濁させた組織懸濁液や、前述した試料または組織懸濁液より分離して得られる、試料または組織由来の細胞を含む画分、などがあげられる。このうち試料または組織由来の細胞を含む画分の一例として、試料や組織懸濁液を密度勾配形成用媒体の上に重層後、密度勾配遠心することで得られる画分があげられる。
【００２４】
細胞表面に存在するリン脂質の量を測定する方法の一例として、二次元薄層クロマトグラフィー（２Ｄ−ＴＬＣ）で分離し得られた各リン脂質類のスポット濃度に基づき測定する方法、リンに結合した物質の違いによって各リン脂質類を分類する３１Ｐ−ＮＭＲ法、ＨＰＬＣを用いて各リン脂質類を分離して測定する方法、質量分析計を用いて細胞表面に存在するリン脂質類を直接測定する方法があげられる。中でも、質量分析計を用いた方法は、細胞を破砕してリン脂質を分離する必要がなく、前処理操作が容易、かつ形態学的情報が失われない点で好ましい。
【００２５】
前述した方法で細胞表面に存在する、
（ｉ）少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上のリン脂質［顆粒球と顆粒球以外の白血球との識別の場合］、または
（ｉｉ）前記（ｉ）のリン脂質、ならびに少なくともホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）およびホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）から選ばれるいずれか一つ以上のリン脂質［白血球同士の識別の場合］
の量をそれぞれ測定し、当該測定値から算出されるリン脂質の比率を解析することで、細胞を識別できる。なおリン脂質の比率を算出するには、二つ以上のリン脂質の量を測定する必要がある。したがって、測定するリン脂質は、
前記（ｉ）の場合、少なくともスフィンゴミエリンおよびホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）から選ばれるいずれか一つ以上のリン脂質、ならびに他のリン脂質から一つ以上となり、
前記（ｉｉ）の場合、前記（ｉ）の場合で測定するリン脂質に加え、少なくともホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）およびホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）から一つ以上、ならびに他のリン脂質から一つ以上となる。
【００２６】
解析に用いるリン脂質の比率は、絶対値、すなわち測定した全てのリン脂質量に占める特定のリン脂質量の割合（本明細書では、存在量比または存在比率ともいう）であってもよく、相対値、すなわち測定した前記特定のリン脂質量（存在比率であってもよい、以下同じ）を、測定した他のリン脂質量で除した値であってもよいが、相対値のほうが、細胞の識別がより明確となる点で好ましい。相対値の好ましい例として、
前記（ｉ）の場合は、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値が、
前記（ｉｉ）の場合は、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値、およびホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値が、
それぞれあげられる。
【００２７】
前記好ましい態様で解析した場合、白血球表面に存在するリン脂質の比率から算出した、ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値が、リンパ球や単球での値より増加していた場合、前記細胞を顆粒球と識別すればよい。またリンパ球および単球表面に存在するリン脂質の比率から算出した、ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値が、単球での値より増加していた場合、前記細胞をリンパ球と識別すればよい。白血球同士の識別を行なう場合は、まずホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値に基づき、顆粒球と顆粒球以外の細胞（リンパ球、単球）との識別を行なった後、ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値に基づき、前記顆粒球以外の細胞をリンパ球と単球とに識別すればよい。
【００２８】
また、別の態様として、白血球同士を、絶対評価により識別してもよい。ここでいう絶対評価とは、すなわち基準値（しきい値）を設ける方法であり、対象白血球におけるリン脂質の存在比率の絶対値または相対値が基準値を上回る、または下回る場合に、対象白血球を顆粒球、リンパ球および単球のいずれかに分類すればよい。
【００２９】
一態様として、白血球表面に存在するリン脂質の比率が、以下の（１）から（３）に示す、いずれか一つに該当した場合、前記白血球を顆粒球と識別すればよい。
（１）スフィンゴミエリンの存在比率があらかじめ設定した基準値を下回る
（２）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）の存在比率があらかじめ設定した基準値を上回る
（３）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値があらかじめ設定した基準値を上回る
別の態様として、顆粒球以外の白血球表面に存在するリン脂質が、以下の（４）から（６）に示す、いずれか一つに該当した場合、前記白血球をリンパ球と識別すればよい。
（４）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）の存在比率があらかじめ設定した基準値を上回る
（５）ホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）の存在比率があらかじめ設定した基準値を下回る
（６）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値があらかじめ設定した基準値を上回る
前記基準値は、
（１）スフィンゴミエリンの存在比率で識別する場合は、８０．０％前後に基準値を設ければよい。
（２）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）の存在比率で識別する場合は、２０．０％前後に基準値を設ければよい。
（３）ホスファチジルコリン（１８：０／１８：４）量をスフィンゴミエリン量で除した値で識別する場合は、０．２５前後に基準値を設ければよい。
（４）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）の存在比率で識別する場合は、９５．０％前後に基準値を設ければよい。
（５）ホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）の存在比率で識別する場合は、５．０％前後に基準値を設ければよい。
（６）ホスファチジルイノシトール（１８：０／２０：４）量をホスファチジルイノシトール（１６：０／１８：０）量で除した値で識別する場合は、２２．０前後に基準値を設ければよい。
【発明の効果】
【００３０】
本発明により、細胞表面に存在するリン脂質の比率の違いから、血液試料中に存在する白血球（例えば、リンパ球、単球、および好中球などの顆粒球）を客観的に識別できる。例えば、本発明を血液分析における白血球の分類に適用することで、感染症等の疾患を精度高く診断できる。特に、前記リン脂質の測定を質量分析計を用いて行なうと、測定対象白血球の形態を保った状態でリン脂質を測定できるため、形態学的特徴に基づく診断も行なえる点で好ましい。
【図面の簡単な説明】
【００３１】
【図１】実施例１の結果を示した図である。
【図２】実施例２の結果を示した図である。
【図３】リンパ球と単球と好中球とで、ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率を比較した図である。
【図４】リンパ球と単球と好中球とで、ＳＭの存在比率を比較した図である。
【図５】リンパ球と単球と好中球とで、ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値を比較した図である。
【図６】リンパ球と単球と好中球とで、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率を比較した図である。
【図７】リンパ球と単球と好中球とで、ＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率を比較した図である。
【図８】リンパ球と単球と好中球とで、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を比較した図である。
【図９】リンパ球と単球と好中球とで、（ａ）ＳＭの存在比率、および（ｂ）ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率を比較した図である。
【図１０】リンパ球と単球と好中球とで、（ａ）ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値、および（ｂ）ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率を比較した図である。
【図１１】リンパ球と単球と好中球とで、（ａ）ＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率、および（ｂ）ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を比較した図である。
【実施例】
【００３２】
以下、実施例を用いて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれら例に限定されるものではない。
【００３３】
実施例１
（１）インフォームドコンセントを取得した健常者血液から、下記［ａ］のキットを用いてリンパ球を、下記［ｂ］のキットを用いて単球を、下記［ｃ］のキットを用いて好中球を、それぞれ分離した。
［ａ］ＥａｓｙＳｅｐ  Ｄｉｒｅｃｔ  Ｈｕｍａｎ  ｔｏｔａｌ  Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｋｉｔ（ＳＴ−１９６５５、ベリタス社製）
［ｂ］ＥａｓｙＳｅｐ  Ｄｉｒｅｃｔ  Ｈｕｍａｎ  Ｍｏｎｏｃｙｔｅ  ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｋｉｔ（ＳＴ−１９６６９、ベリタス社製）
［ｃ］ＥａｓｙＳｅｐ  Ｄｉｒｅｃｔ  Ｈｕｍａｎ  Ｎｅｕｔｒｏｐｈｉｌ  ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｋｉｔ（ＳＴ−１９６６６、ベリタス社製）
（２）（１）で分離したリンパ球、単球および好中球を、３００ｍＭマンニトールを含む水溶液にそれぞれ添加し、前記溶液でそれぞれ２×１０５個／ｍＬに調製した。
【００３４】
（３）ポリマー製スライドガラス型ＭＡＬＤＩプレート（ＦｌｅｘｉＭａｓｓ−ＤＳ、島津製作所社製）に２，５−Ｄｉｈｙｄｒｏｘｙｂｅｎｚｏｉｃ  ａｃｉｄ（ＤＨＢ、Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ社製）を含むエタノール溶液１μＬを滴下し、乾燥させた。前記溶液を滴下した領域を含む近傍に、（２）で調製した前記細胞を含む懸濁液を２μＬ滴下し、乾燥させた。さらにエタノールを０．２μＬ滴下、乾燥させることでＤＨＢを再結晶化し、細胞測定試料を作製した。
【００３５】
（４）（３）で作製した細胞測定試料を、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ／ＭＳ（島津製作所社製、ＭＡＬＤＩ−７０９０）で測定した。前記測定の条件として、測定モードはＬｉｎｅａｒ、極性はＰｏｓｉｔｉｖｅ、レーザー波長は３５５ｎｍ、レーザー強度は８０、レーザー直径は５０μｍ、測定質量範囲は５００から１０００まで、質量補正はアンジオテンシンＩＩ（外部標準）で行なった。
【００３６】
（５）（４）の測定で検出したリン脂質に由来するピークのうち、代表的な検出物である分子量７８２．７であるホスファチジルコリン（ＰＣ（１８：０／１８：４））のピーク、および分子量７２５．７であるスフィンゴミエリン（ＳＭ）のピークを抽出し、ＰＣ（１８：０／１８：４）とＳＭとの存在比率（存在量比と同じ、以下同じ）、およびＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値を算出した。なお各リン脂質の存在比率は、各細胞について測定を１２回行ない、得られたピーク強度から算出した存在比率の平均値とした。また、算出したＰＣ（１８：０／１８：４）とＳＭとの存在比率が外れ値であった場合は、当該外れ値を除却した数値から存在比率を算出した。
【００３７】
実施例２
（１）実施例１において、マトリックス溶液として９−Ａｍｉｎｏａｃｒｉｄｉｎｅ（９−ＡＡ）を含む水溶液を用いた他は、実施例１（１）から（３）と同様な方法で、細胞測定試料を作製した。
【００３８】
（２）（１）で作製した細胞測定試料を、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ／ＭＳ（島津製作所社製、ＭＡＬＤＩ−７０９０）で測定した。前記測定の条件として、測定モードはＬｉｎｅａｒ、極性はＮｅｇａｔｉｖｅ、レーザー波長は３５５ｎｍ、レーザー強度は９０、レーザー直径は１００μｍ、測定質量範囲は５００から１０００まで、質量補正はアンジオテンシンＩＩ（外部標準）で行なった。
【００３９】
（３）（２）の測定で検出したホスファチジルイノシトール（ＰＩ）に由来するピークのうち、代表的な検出物である分子量８８５．５であるＰＩ（１８：０／２０：４）のピーク、および分子量８３５．５であるＰＩ（１６：０／１８：０）のピークを抽出し、ＰＩ（１８：０／２０：４）とＰＩ（１６：０／１８：０）との存在比率、およびＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を算出した。なお各リン脂質の存在比率は、各細胞について測定を１２回行ない、得られたピーク強度から算出した存在比率の平均値とした。また、算出したＰＩ（１８：０／２０：４）とＰＩ（１６：０／１８：０）との存在比率が外れ値であった場合は、当該外れ値を除却した数値から存在比率を算出した。
【００４０】
実施例１で得られた質量スペクトルを図１、実施例２で得られた質量スペクトルを図２、に、それぞれ示す。図１では、細胞膜に存在するホスファチジルコリン（ＰＣ）およびスフィンゴミエリン（ＳＭ）に由来するピークが検出されている。また、図２には細胞膜に存在するホスファチジルイノシトール（ＰＩ）に由来するピークが検出されている。
【００４１】
実施例１で算出した、各細胞におけるＰＣ（１８：０／１８：４）とＳＭとの存在比率［％］、およびＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値を表１から３に示す。表１はリンパ球の結果であり、表２は単球の結果であり、表３は好中球の結果である。なお本実施例において存在比率は、ＰＣまたはＳＭの分子量（ｍ／ｚ値）から２大きい値までの範囲で最も高い強度（Ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ）を示したピークより算出した値である。
【００４２】
【表１】
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【００４３】
【表２】
2020190426.tif 000004
【００４４】
【表３】
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【００４５】
ＰＣ（１８：０／１８：４）とＳＭの存在比率（平均値）［％］はそれぞれ、リンパ球で１７．８％と８２．２％（表１）であり、単球で１５．７％と８４．３％（表２）であり、好中球で２４．８％と７５．２％（表３）であった。またＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値（平均値）は、リンパ球で０．２２２（表１）であり、単球で０．１９２（表２）であり、好中球で０．３４１（表３）であった。
【００４６】
白血球（リンパ球、単球および好中球）で、ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率を比較した結果を図３に、ＳＭの存在比率を比較した結果を図４に、ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値を比較した結果を図５に、それぞれ示す。図３からＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率は、リンパ球、単球ともに好中球と比較して有意に低いことがわかる。図４からＳＭの存在比率は、リンパ球、単球ともに好中球と比較して有意に高いことがわかる。図５からＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値は、リンパ球、単球ともに好中球と比較して有意に低いことがわかる。
【００４７】
以上の結果から、
リンパ球、単球および好中球におけるＰＣ（１８：０／１８：４）ならびにＳＭのピーク強度（量に相当）からそれぞれ算出される、ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率が、リンパ球または単球における比率よりも増加しているか、
同様に前記ピーク強度からそれぞれ算出される、ＳＭの存在比率が、リンパ球または単球における比率よりも減少しているか、
ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率（量）をＳＭの存在比率（量）で除した値が、リンパ球または単球における値よりも増加していると、好中球であると識別できる。
【００４８】
実施例２で算出した、ＰＩ（１８：０／２０：４）とＰＩ（１６：０／１８：０）との存在比率［％］、およびＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を表４から６に示す。表４はリンパ球の結果であり、表５は単球の結果であり、表６は好中球の結果である。なお本実施例において存在比率は、各ＰＩの分子量（ｍ／ｚ値）から２大きい値までの範囲で最も高い強度（Ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ）を示したピークより算出した値である。
【００４９】
【表４】
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【００５０】
【表５】
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【００５１】
【表６】
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【００５２】
ＰＩ（１８：０／２０：４）とＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率（平均値）［％］はそれぞれ、リンパ球で９６．９％と３．１４％（表４）であり、単球で９２．０％と７．９７％（表５）であり、好中球で９５．４％と４．６２％（表６）であった。またＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値（平均値）は、リンパ球で７２．１（表４）であり、単球で１５．８（表５）であり、好中球で３０．６（表６）であった。
【００５３】
白血球（リンパ球、単球および好中球）で、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率を比較した結果を図６に、ＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率を比較した結果を図７に、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を比較した結果を図８に、それぞれ示す。
【００５４】
図６からＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率は、リンパ球、好中球ともに単球と比較して有意に高いことがわかる。図７からＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率は、リンパ球、好中球ともに単球と比較して有意に低いことがわかる。図８からＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値は、単球と比較してリンパ球で有意に高いことがわかる。
【００５５】
以上の結果から、
リンパ球および単球におけるＰＩ（１８：０／２０：４）ならびにＰＩ（１６：０／１８：０）のピーク強度（量に相当）からそれぞれ算出される、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率が、単球における比率よりも増加しているか、
同様に前記ピーク強度からそれぞれ算出される、ＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率が、単球における比率よりも減少しているか、
ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率（量）をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率（量）で除した値が、単球における値よりも増加していると、リンパ球であると識別できる。
【００５６】
実施例１（細胞表面に存在するＰＣ（１８：０／１８：４）およびＳＭの測定）の結果からは、顆粒球である好中球と、顆粒球以外の白血球であるリンパ球および単球とを識別できることがわかった。一方、実施例２（細胞表面に存在するＰＩ（１８：０／２０：４）およびＰＩ（１６：０／１８：０）の測定）の結果からは、リンパ球と単球とを識別できることが分かった。したがって、実施例１の結果と実施例２の結果とを組み合わせることで、血液試料中に含まれる白血球同士（顆粒球、リンパ球および単球）の識別ができることがわかる。
【００５７】
実施例３
実施例１から２で取得したデータに基づき、白血球（リンパ球、単球および好中球）のそれぞれのｂｏｘ  ｐｌｏｔを作成した。
【００５８】
白血球（リンパ球、単球および好中球）で、ＳＭの存在比率を比較した結果を図９（ａ）に、ＰＣ（１８：０／１８：４）の存在比率を比較した結果を図９（ｂ）に、ＰＣ（１８：０／２０；４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値を比較した結果を図１０（ａ）に、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率を比較した結果を図１０（ｂ）に、ＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率を比較した結果を図１１（ａ）に、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を比較した結果を図１１（ｂ）に、それぞれ示す。
【００５９】
ＳＭの存在比率を用いる場合は８０％前後（図９（ａ））を、ＰＣ（１８：０／２０：４）の存在比率を用いる場合は２０％前後（図９（ｂ））を、ＰＣ（１８：０／２０：４）の存在比率をＳＭの存在比率で除した値を用いる場合は０．２５前後（図９（ｂ））を、それぞれ基準値（しきい値）に設定することで、白血球の中から顆粒球（好中球）を識別できることがわかる。また、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率を用いる場合は９５．０％前後（図１０（ｂ））を、ＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率を用いる場合は５．０％前後（図１１（ａ））を、ＰＩ（１８：０／２０：４）の存在比率をＰＩ（１６：０／１８：０）の存在比率で除した値を用いる場合は２２．０前後（図１１（ｂ））を、それぞれ基準値（しきい値）に設定することで、顆粒球以外の白血球（リンパ球と単球）の中からリンパ球を識別できることがわかる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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