(57)【要約】【課題】  リフォールディングの効率が改善され、収率が改善されたＶＮＡＲのリフォールディング方法を提供する。【解決手段】  本発明のＶＮＡＲのリフォールディング方法は、サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせるリフォールディング工程を含む。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせるリフォールディング工程を含む、ＶＮＡＲのリフォールディング方法。
【請求項２】
前記リフォールディング工程では、前記加圧後、圧力を維持し、
前記圧力の維持時間は、０分〜５０時間である、請求項１記載のリフォールディング方法。
【請求項３】
前記リフォールディング工程では、前記加圧、圧力の維持、および減圧を実施し、
前記減圧において、連続的に減圧する、請求項１または２記載のリフォールディング方法。
【請求項４】
前記リフォールディング工程の時間は、１０分〜５２時間である、請求項１から３のいずれか一項に記載のリフォールディング方法。
【請求項５】
前記加圧後の圧力は、１０〜５００ＭＰａである、請求項１から４のいずれか一項に記載のリフォールディング方法。
【請求項６】
大腸菌にＶＮＡＲを発現させる発現工程と、
ＶＮＡＲ発現大腸菌からＶＮＡＲを含む封入体を回収する回収工程とを含む、請求項１から５のいずれか一項に記載のリフォールディング方法。
【請求項７】
前記回収工程は、
前記ＶＮＡＲ発現大腸菌を破砕し、破砕液を調製する破砕工程と、
前記破砕液を遠心し、前記封入体を含む沈殿物を回収する沈殿物回収工程とを含む、請求項６記載のリフォールディング方法。
【請求項８】
前記沈殿物に、液体を積層し、封入体調製液を調製する調製工程を含み、
前記リフォールディング工程では、前記封入体調製液について、加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせる、請求項７記載のリフォールディング方法。
【請求項９】
前記沈殿物を洗浄する洗浄工程を含む、請求項７または８記載のリフォールディング方法。
【請求項１０】
前記液体は、水である、請求項１から９のいずれか一項に記載のリフォールディング方法。
【請求項１１】
前記リフォールディング工程を、圧力容器内で実施する、請求項１から１０のいずれか一項に記載のリフォールディング方法。
【請求項１２】
前記圧力容器の容積は、５Ｌ未満である、請求項１１記載のリフォールディング方法。
【請求項１３】
サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体からリフォールディングされたＶＮＡＲを製造する製造工程を含み、
前記製造工程は、請求項１から１２のいずれか一項に記載のＶＮＡＲのリフォールディング方法により実施される、ＶＮＡＲの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＶＮＡＲのリフォールディング方法およびＶＮＡＲの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
二重特異性抗体、三重特異性抗体、キメラ抗原受容体等の抗体を用いたタンパク質の構造の複雑化に伴い、製造技術も高度化している。ただし、これらの複雑な構造のタンパク質は、製造に動物細胞を使用する必要があり、コストが極めて高いという問題がある。そこで、より分子量が小さく、抗体と同様に、抗原に対する結合活性を有するタンパク質が求められている。
【０００３】
分子量が小さく、抗原に結合活性を有するタンパク質として、サメ抗体（IgNAR）が知られている。さらに、サメ抗体の可変部は、一本鎖からなり、この部分を切り出した人工抗体（ＶＮＡＲ、variable new antigen receptor）は、抗原の結合性を有し、かつより分子量が小さい（特許文献１）。このため、ＶＮＡＲは、大腸菌でも生産が可能である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】国際公開第２００３／０１４１６１号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ＶＮＡＲを大腸菌に発現させると、不溶性かつ不活性の凝集体（封入体）を形成する。このため、前記発現後、前記封入体を形成するＶＮＡＲを、正常な折りたたみ構造のＶＮＡＲにリフォールディングさせることが行なわれている。前記リフォールディングでは、塩酸グアニジン、尿素等の変性剤を利用し、アンフォールディングし、その後再度折りたたみを行なうことで、正常な折りたたみ構造のＶＮＡＲを取得する。しかしながら、変性剤を用いたリフォールディングは、効率が悪く、リフォールディングされたＶＮＡＲの収率も悪い。
【０００６】
そこで、本発明は、リフォールディングの効率が改善し、収率が改善されたＶＮＡＲのリフォールディング方法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明のＶＮＡＲのリフォールディング方法（以下、「リフォールディング方法」ともいう）は、サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせるリフォールディング工程を含む。
【０００８】
本発明のＶＮＡＲの製造方法（以下、「製造方法」ともいう）は、サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体からリフォールディングされたＶＮＡＲを製造する製造工程を含み、
前記製造工程は、前記本発明のＶＮＡＲのリフォールディング方法により実施される。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、ＶＮＡＲのリフォールディングの効率が改善し、収率が改善できる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、実施例１におけるＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。
【図２】図２は、実施例２におけるアルファスクリーンの結果を示すグラフである。
【図３】図３は、実施例３におけるＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。
【図４】図４は、実施例４におけるclone 11、clone 25およびclone 39の結果を示すグラフおよび写真である。
【図５】図５は、実施例５におけるＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。
【図６】図６は、実施例５におけるイオン交換クロマトグラフの結果を示すグラフおよびその一部の画分のＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
＜リフォールディング方法＞
本発明のＶＮＡＲのリフォールディング方法は、前述のように、サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせるリフォールディング工程を含む。本発明のリフォールディング方法は、ＶＮＡＲを含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせることが特徴であり、その他の構成および条件は、特に制限されない。
【００１２】
本発明者らは、鋭意研究の結果、ＶＮＡＲを含む封入体に対して、液体の存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲのリフォールディングが生じ、正常なフォールディングのＶＮＡＲが発生することを見出し、本発明を確立するに至った。本発明において、ＶＮＡＲのリフォールディングは以下のメカニズムにより生じると推定される。なお、本発明は以下の推定メカニズムにより何ら制限されない。前記封入体内においてＶＮＡＲはタンパク質間の疎水結合、ファンデルワールス力等により凝集している。このような封入体に対して、液体存在下で圧力を加えると、ファンデルワールス力が減少し、疎水結合が弱まることにより、ＶＮＡＲ間の相互作用が弱まり、凝集がほぐれると推定される。このようなメカニズムは、封入体内のＶＮＡＲの全体に対して生じるため、ＶＮＡＲのリフォールディングの効率が改善し、その結果、収率が改善したと推定される。
【００１３】
本発明において、「リフォールディングの効率」は、例えば、凝集しているＶＮＡＲの構造が、正常なＶＮＡＲに巻き戻される確率を意味する。前記効率は、例えば、凝集体内のタンパク質量に対するリフォールディング工程後の可溶性のＶＮＡＲタンパク質量として間接的に評価できる。
【００１４】
本発明において、「収率」は、例えば、凝集しているＶＮＡＲのうち、正常なＶＮＡＲに巻き戻された割合を意味する。前記収率は、例えば、凝集体内のタンパク質量に対するリフォールディング工程後の可溶性のＶＮＡＲタンパク質量として評価できる。
【００１５】
本発明において、「リフォールディング」は、例えば、凝集したタンパク質をアンフォールディングし、正常な構造にフォールディングさせることを意味する。本発明において、ＶＮＡＲのリフォールディングは、例えば、標的抗原に対する結合性が低下した、または無いＶＮＡＲを、標的抗原に対する結合性を回復させる、すなわち、リフォールディング前のＶＮＡＲと比較して、標的抗原に対する結合性を向上させることを意味する。
【００１６】
本発明において、「ＶＮＡＲ」は、例えば、サメＩｇＮＡＲまたは新規抗原受容体（New Antigen Receptor）の可変ドメイン断片を意味する。前記ＶＮＡＲは、例えば、Ｎ末端からＣ末端にかけて、フレームワーク領域（ＦＲ）１、相補性決定領域（ＣＤＲ）１、ＦＲ２、超可変領域（ＨＶ）２、ＦＲ３ａ、ＨＶ４、ＦＲ３ｂ、ＣＤＲ３、ＦＲ４をこの順序で含む。本発明において、リフォールディングに供するＶＮＡＲの標的抗原は、特に制限されず、任意の抗原とできる。
【００１７】
前記リフォールディング工程は、前述のように、ＶＮＡＲを含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせる。前記リフォールディング工程において、前記封入体および前記液体に加える圧力は、一定でもよいし、変動してもよい。また、前記リフォールディング工程では、一定の速度で圧力が上昇するように加圧してもよいし、段階的に圧力が上昇するように加圧してもよい。前記封入体および前記液体に加える圧力は、例えば、前記リフォールディング工程を実施する環境の圧力（常圧）より高ければよく、その上限は、特に制限されず、具体例として、常圧を超え、５００ＭＰａ以下、１０〜５００ＭＰａであり、好ましくは、１００〜３００ＭＰａである。前記リフォールディング工程における温度は、例えば、０〜５０℃、４〜３０℃があげられる。前記リフォールディング工程の時間は、例えば、０〜５２時間、１分〜５２時間、１０分〜５２時間、１〜５２時間、１０〜６０分、１０〜３０分等があげられる。本発明のリフォールディング方法によれば、例えば、１０分程度（例えば、５〜１５分）と短時間で、ＶＮＡＲを含む封入体について、ＶＮＡＲをリフォールディングさせることができる。
【００１８】
前記リフォールディング工程は、圧力容器内で実施してもよい。この場合、前記リフォールディング工程では、前記封入体および前記液体を前記圧力容器に導入後、前記圧力容器内の圧力を上昇させることにより実施できる。前記圧力容器の容積は、特に制限されず、例えば、前記封入体および前記液体の体積に応じて適宜決定できる。前記圧力容器の容積は、例えば、１〜５Ｌ、０．１〜０．５Ｌである。前記圧力容器の容積は、例えば、５Ｌ未満である。前記圧力容器は、例えば、密閉が可能である。
【００１９】
前記リフォールディング工程において、前記封入体と前記液体とは、接触状態でもよいし、非接触状態でもよいが、前者が好ましい。前記液体は、例えば、水性媒体、非水性媒体があげられ、好ましくは、水性媒体である。前記水性媒体は、例えば、水、生理的食塩水、緩衝液等があげられる、リフォールディング後のＶＮＡＲの均質性が向上することから、好ましくは、水である。前記水は、例えば、蒸留水、超純水等があげられる。前記水性溶媒は、さらに、塩；ＥＤＴＡ等のキレーター；アルギニン等のアミノ酸；等を含んでもよい。前記液体は、例えば、尿素、塩化グアニジン等の変性剤を実質的に含まないことが好ましい。前記「実質的に含まない」は、例えば、前記封入体におけるＶＮＡＲが変性する量を含まない、または完全に含まないことを意味する。前記液体のｐＨは、特に制限されず、例えば、酸性、中性またはアルカリ性であり、リフォールディングされたＶＮＡＲの収率が向上することから、好ましくは、アルカリ性（ｐＨ７より高い）である。
【００２０】
前記リフォールディング工程では、例えば、前記加圧後、所望の圧力において、前記圧力を維持してもよい。前記所望の圧力、すなわち、加圧後の圧力は、例えば、前記リフォールディング工程を実施する環境の圧力（常圧）より高ければよく、その上限は、特に制限されない。前記加圧後の圧力は、例えば、１０〜５００ＭＰａ、好ましくは、１００〜３００ＭＰａである。前記圧力の維持時間は、例えば、０分〜５０時間、１分〜５０時間、１〜２０時間、１〜３０分、１０分〜２０時間であり、好ましくは、１〜２０時間、１〜３０分、１０分〜２０時間である。
【００２１】
前記リフォールディング工程では、前記加圧後、または前記圧力の維持後、減圧してもよい。この場合、前記リフォールディング工程では、前記加圧および減圧を実施してもよいし、前記加圧、圧力の維持および減圧を実施してもよい。前記リフォールディング工程では、一定の速度で圧力が減少するように減圧してもよいし、段階的に圧力が減少するように減圧してもよいが、前者が好ましい。
【００２２】
本発明のリフォールディング方法は、例えば、前記リフォールディング工程後に、リフォールディングされたＶＮＡＲを回収してもよい。前記ＶＮＡＲの回収は、例えば、前記リフォールディング工程後の処理液を遠心し、上清を回収することにより実施してもよい。また、前記ＶＮＡＲの回収は、例えば、フィルター等のろ材をろ過させ、得られたろ液を回収することにより実施してもよい。
【００２３】
本発明のリフォールディング方法は、前記リフォールディング工程に先立ち、前記封入体を回収する回収工程を含んでもよい。前記回収工程は、例えば、前記封入体を含む宿主細胞から、前記封入体を回収することにより実施できる。前記宿主細胞は、特に制限されず、例えば、原核細胞でもよいし、真核細胞でもよい。前記宿主細胞は、例えば、大腸菌、酵母等の微生物；動物細胞、昆虫細胞、または植物細胞；これらの培養細胞等の非ヒト宿主、単離したヒト細胞またはその培養細胞等があげられ、好ましくは、大腸菌である。
【００２４】
具体的には、まず、前記回収工程では、例えば、前記封入体を含む宿主細胞について、ホモジェナイザー、フレンチプレス等の機械的処理；超音波処理；等により前記宿主細胞を破砕し、破砕液を調製する（破砕工程）。前記宿主細胞を破砕する条件は、例えば、前記宿主細胞の種類及び前記破砕方法に応じて、適宜設定できる。つぎに、前記回収工程では、得られた破砕液を遠心し、前記封入体を含む沈殿物を回収する（沈殿物回収工程）。前記沈殿物回収工程において、前記遠心の条件は、例えば、前記封入体の大きさ、電荷等に応じて、適宜決定でき、具体例として、１０００〜１０００００×ｇ、１００００〜４００００×ｇがあげられる。
【００２５】
本発明のリフォールディング方法は、例えば、リフォールディング工程後のＶＮＡＲへの夾雑物の持ち込みを抑制できることから、前記沈殿物を洗浄する洗浄工程を含むことが好ましい。前記洗浄工程は、例えば、前記沈殿物と洗浄液とを接触させることにより実施できる。前記洗浄工程では、前記洗浄液に前記沈殿物を分散（懸濁）させることが好ましい。これにより、本発明のリフォールディング方法は、例えば、フォールディング工程後のＶＮＡＲへの夾雑物の持ち込みをより抑制できる。前記洗浄工程では、前記沈殿物と前記洗浄液との接触後、これらの混合物を遠心し、前記封入体を含む沈殿物を回収してもよい。前記遠心の条件は、例えば、前記沈殿物回収工程の説明における遠心の条件を援用できる。
【００２６】
本発明のリフォールディング方法は、前記沈殿物回収工程で得られた沈殿物に対して、前記リフォールディング工程を実施してもよい。この場合、本発明のリフォールディング方法では、前記沈殿物回収工程後、前記沈殿物を液体と接触させ、封入体調製液を調製する（調製工程）。前記封入体調製液において、前記封入体は、その全部または一部が液体に分散されてもよいし、その全部または一部が分散されなくてもよい。前記封入体が液体に分散されている場合、前記封入体調製液は、例えば、封入体分散液または封入体混合液ということもできる。前記封入体が前記液体に分散されていない場合、前記封入体調製液は、例えば、封入体分離液または封入体積層液ということもできる。前記封入体分離液は、例えば、前記沈殿物に前記液体を積層することにより調製できる。この場合、前記沈殿物と前記液体の層とは、完全に分離してもよいし、その境界付近において両者が混合してもよい。前記調製工程において、前記液体は、例えば、前記リフォールディング工程における液体と同じでもよいし、異なってもよい。
【００２７】
本発明のリフォールディング方法において、前記洗浄工程と、前記調製工程とは、組合せてもよい。この場合、本発明のリフォールディング方法は、前記洗浄工程後に前記調製工程を実施することが好ましい。
【００２８】
前記封入体を含む宿主細胞は、例えば、前記宿主細胞にＶＮＡＲを発現させることにより調製できる。このため、本発明のリフォールディング方法は、例えば、前記回収工程に先立ち、前記宿主細胞にＶＮＡＲを発現させる発現工程を含んでもよい。前記発現工程は、例えば、前記宿主細胞に、ＶＮＡＲをコードする核酸を導入することにより実施できる。前記宿主細胞への核酸の導入方法は、特に制限されず、前記宿主細胞の種類に応じて、適宜決定できる。具体例として、前記核酸の導入方法は、例えば、ヒートショック法；リポソーム、カチオニックリピッド等の核酸導入試薬を用いる方法；レトロウイルス、レンチウイルス等のウイルスを用いる方法等があげられる。
【００２９】
前記発現工程において、前記核酸は、ＶＮＡＲをコードする核酸を含む発現ベクターでもよい。前記発現ベクターの種類は、特に制限されず、例えば、前記宿主の種類に応じて、適宜決定できる。前記発現ベクターは、ウイルスベクターまたは非ウイルスベクターがあげられる。前記導入方法としてヒートショック法により宿主細胞の形質転換を行う場合、前記ベクターは、例えば、バイナリーベクター等があげられる。前記発現ベクターは、例えば、ｐＥＴＤｕｅｔ−１ベクター、ｐＱＥ−８０ＬベクターおよびｐＵＣＰ２６Ｋｍベクター等があげられる。大腸菌等の細菌に形質転換を行う場合、前記発現ベクターは、ｐＥＴＤｕｅｔ−１ベクター（ノバジェン社）、例えば、ｐＱＥ−８０Ｌベクター（ＱＩＡＧＥＮ社）等があげられる。
【００３０】
前記発現ベクターは、例えば、前記ＶＮＡＲをコードするポリヌクレオチドの発現および／または前記ＶＮＡＲをコードするポリヌクレオチドがコードするＶＮＡＲ（タンパク質）の発現を調節する、調節配列を有することが好ましい。前記調節配列は、例えば、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、ポリアデニル化シグナル配列、複製起点配列（ｏｒｉ）等があげられる。前記発現ベクターにおいて、前記調節配列の配置は特に制限されない。前記発現ベクターにおいて、前記調節配列は、例えば、前記ＶＮＡＲのポリヌクレオチドの発現およびこれがコードするＶＮＡＲの発現を、機能的に調節できるように配置されていればよく、公知の方法に基づいて配置できる。前記調節配列は、例えば、前記発現ベクターが予め備える配列を利用してもよいし、前記発現ベクターに、さらに、前記調節配列を挿入してもよいし、前記発現ベクターが備える調節配列を、他の調節配列に置き換えてもよい。
【００３１】
＜ＶＮＡＲの製造方法＞
本発明のリフォールディングされたＶＮＡＲの製造方法は、前述のように、サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体からリフォールディングされたＶＮＡＲを製造する製造工程を含み、前記製造工程は、前記本発明のＶＮＡＲのリフォールディング方法により実施される。本発明の製造方法は、前記製造工程が、前記本発明のＶＮＡＲのリフォールディング方法により実施されることが特徴であり、その他の工程および条件は、特に制限されない。本発明の製造方法によれば、収率よくＶＮＡＲを製造できる。本発明の製造方法は、前記本発明のリフォールディング方法の説明を援用できる。
【００３２】
＜ＶＮＡＲ＞
本発明のサメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）は、前記本発明のリフォールディングされたＶＮＡＲの製造方法により得られる。本発明のＶＮＡＲは、前記本発明のリフォールディングされたＶＮＡＲの製造方法により得られることが特徴であり、その他の構成および条件は、特に制限されない。本発明のＶＮＡＲは、例えば、抗体と同様に使用できる。本発明のＶＮＡＲは、前記本発明のリフォールディング方法および製造方法の説明を援用できる。
【実施例】
【００３３】
以下、実施例を用いて本発明を詳細に説明するが、本発明は実施例に記載された態様に限定されるものではない。なお、特に示さない限り、市販の試薬およびキット等は、そのプロトコルに従い使用した。
【００３４】
［実施例１］
本発明のリフォールディング方法により、サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）をリフォールディングできることを確認した。
【００３５】
（１）形質転換体の調製
サメ（エイラクブカ）に、蛍光タンパク質（Ｖｅｎｕｓ）を免疫後、サメの血液を回収し、RT-PCRによりIgNAR可変領域のcDNAを得た。増幅した可変領域をファージミドベクターと連結し、VNAR提示ファージライブラリーを構築した。Ｖｅｎｕｓをコートした試験管を用いて４ラウンドのバイオパンニングを実施後、複数のコロニーをシークエンス解析により解読し、配列の異なる３種類の抗Ｖｅｎｕｓ  ＶＮＡＲ（clone 11、clone 25、clone 39）を獲得した。ＶＮＡＲ clone 11および clone 39をコードする塩基配列を、検出用のタグ配列（-GS linker-AGIA-His）とともにｐＥＴ−３０ａ（＋）ベクターにクローニングした。下記配列番号１〜４において、タグ配列およびそれをコードする塩基配列は下線で示している。そして、前記ベクターを、ヒートショック法により、大腸菌（ＢＬ２１（ＤＥ３））に導入し、各ＶＮＡＲを発現する形質転換体を得た。
【００３６】
ＶＮＡＲ clone 11-AGIA-Hisのアミノ酸配列（配列番号１）
MAAYVDQTPRMATKETGESLTINCVLRDTSYGLCATSWFRKNPGSTDWERITIGGRYVESVNKGSNSFSLQIKDLTVEDSVTFYCKARDGVQGILGVCDTAATGYHDGAGTVLTVNSGLTPPVISLFSETDELRANGFTSAGSGSGSGSGSGSEEAAGIARPLHHHHHH
【００３７】
ＶＮＡＲ clone 11-AGIA-Hisをコードする塩基配列（配列番号２、終止コドン含）
5'-ATGGCTGCATATGTCGATCAAACACCACGAATGGCAACTAAAGAAACAGGCGAATCTCTGACAATCAACTGCGTCCTAAGGGATACTAGCTATGGCTTGTGCGCAACAAGCTGGTTTCGGAAAAATCCTGGTTCAACAGATTGGGAACGCATCACCATTGGCGGCCGATATGTTGAATCAGTCAACAAGGGAAGCAACTCGTTTTCTCTGCAAATCAAGGACCTAACAGTTGAAGACAGTGTCACATTTTACTGCAAAGCTCGAGATGGGGTACAGGGGATTCTGGGTGTGTGTGATACAGCAGCTACCGGCTACCATGATGGGGCTGGCACCGTGCTGACTGTGAATTCTGGACTGACTCCCCCAGTCATCAGTCTCTTCTCTGAAACTGATGAGTTGAGAGCAAACGGGTTCACTAGTGCAGGGTCCGGTTCTGGGTCTGGATCTGGCTCGGGCTCTGAAGAAGCAGCTGGTATTGCTCGCCCATTGCATCACCATCACCATCACTAG-3'
【００３８】
ＶＮＡＲ clone 39-AGIA-Hisのアミノ酸配列（配列番号３）
MAAHVDQTPRMATKETGESLTINCVLRDTSCGLYATSWFRKNPGSTDWERITIGGRYVESVNKGSNSFSLQIKDLTVEDSVTFYCKARDARTPGSVGCSYRDRGYHDGAGTVLTVNSGLTPPVISLFSETDELRANGFTSAGSGSGSGSGSGSEEAAGIARPLHHHHHH
【００３９】
ＶＮＡＲ clone 39-AGIA-Hisをコードする塩基配列（配列番号４、終止コドン含）
5'-ATGGCTGCACATGTCGATCAAACACCACGAATGGCAACTAAAGAAACAGGCGAATCTCTGACAATCAACTGCGTCCTAAGGGATACTAGCTGTGGCTTGTACGCAACAAGCTGGTTTCGGAAAAATCCTGGTTCAACAGATTGGGAACGCATCACCATTGGCGGCCGATATGTTGAATCAGTCAACAAGGGAAGCAACTCGTTTTCTCTGCAAATCAAGGACCTAACAGTTGAAGACAGTGTCACATTTTACTGCAAAGCTCGAGATGCCCGTACCCCGGGCAGTGTGGGATGCAGCTACAGGGATCGGGGCTACCATGATGGGGCTGGCACCGTGCTGACTGTGAATTCTGGACTGACTCCCCCAGTCATCAGTCTCTTCTCTGAAACTGATGAGTTGAGAGCAAACGGGTTCACTAGTGCAGGGTCCGGTTCTGGGTCTGGATCTGGCTCGGGCTCTGAAGAAGCAGCTGGTATTGCTCGCCCATTGCATCACCATCACCATCACTAG-3'
【００４０】
（２）培養
前記形質転換体は、まず、ＬＢ培地において、３７℃で５時間、ＯＤ６００＝約０．６（菌濃度≒８×１０８ｃｅｌｌｓ/ｍＬ）となるまで培養した。つぎに、イソプロピル−β−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を終濃度０．５ｍｍｏｌ／Ｌとなるように添加し、さらに、２５℃で１６時間培養した。得られた培養液を、４，０００ｒｐｍ、１０分間、４℃で遠心分離し、集菌した。
【００４１】
（３）封入体の回収
前記培養菌体１Ｌに対し、７５ｍＬのLysis buffer（20mmol/L Tris-HCl, pH 8.0, 300 mmol/L NaCl, protease inhibitor cocktail）を添加し、ソニケーションにより破砕した。破砕した菌体液を、４０，０００ｇ、３０分間、４℃で遠心分離し、沈殿した不溶性画分（封入体）を回収した。
【００４２】
（４）封入体の洗浄
回収した前記封入体を、前記封入体１ｇあたり１０ｍＬのWash buffer A（20 mmol/L Tris-HCl, pH 8.0, 50 mmol/L NaCl, 0.5 mM EDTA, 125 mmol/L NDSB-201, 5% glycerol）で懸濁し、１０，０００ｇ、３０分間、４℃で遠心分離し、沈殿した封入体を回収した。回収した前記封入体を、前記封入体１ｇあたり１０ｍＬのWash buffer B（20 mmol/L Tris-HCl, pH 8.0, 50 mmol/L NaCl, 0.5 mmol/L EDTA, 5% glycerol）で懸濁し、１０，０００ｇ、３０分間、４℃で遠心分離し、沈殿した封入体を回収した。そして、回収した前記封入体を、前記封入体１ｇあたり１０ｍＬのMilliQ水に懸濁し、１０，０００ｇ、３０分間、４℃で遠心分離し、沈殿した封入体を回収し、洗浄封入体を得た。前記洗浄した封入体の一部をMilliQ水に懸濁し、ＢＳＡを標準タンパク質として、ＢＣＡアッセイ（Thermo Fisher Scientific社製）にて、タンパク質の濃度を測定した。その後、前記タンパク質濃度が、５ｍｇ／ｍＬとなるようにMilliQ水で希釈し、封入体のサンプルを得た。
【００４３】
（５）加圧処理
前記封入体のサンプルは、０．５ｍｍｏｌ／Ｌのアルギニン添加群（＋Ａｒｇ）およびアルギニン非添加群（−Ａｒｇ）に分けた。そして、前記封入体のサンプルを、前記タンパク質の終濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように、ｐＨを６、７、８、または９とした緩衝液にに懸濁した。ｐＨ６．０の緩衝液としては、５０ｍｍｏｌ／Ｌ  ＭＥＳ、ｐＨ７．０の緩衝液としては、５０ｍｍｏｌ／Ｌ  ＨＥＰＥＳ、ｐＨ８．０の緩衝液としては、５０ｍｍｏｌ／Ｌ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ９．０の緩衝液としては、５０ｍｍｏｌ／Ｌ  ＣＨＥＳを用いた。各条件の封入体溶液を、密閉容器（Quick-Seal Centrifuge Tubes、BECKMAN COULTER社製）に封入後、加圧し、さらに、室温（約２５℃、以下、同様。）、２００ＭＰａ、１６時間で維持した。そして、５分ごとに２５ＭＰａを減圧する段階的な減圧により、常圧（大気圧）まで減圧した。処理後の各溶液を、４０，０００ｇ、３０分間、４℃で遠心分離し、上清を回収した。以下、ＶＮＡＲ clone 11(tag)を含む封入体由来のサンプルをclone 11(tag)、ＶＮＡＲ clone 39(tag)を含む封入体由来のサンプルをclone 39(tag)という。各条件のclone 11(tag)およびclone 39(tag)を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、バンドパターンを確認した。これらの結果を図１に示す。
【００４４】
図１は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。図１（Ａ）および（Ｂ）は、それぞれ、clone 11(tag)およびclone 39(tag)の結果を示す。図１（Ａ）および（Ｂ）において、各レーンは、左から、分子量マーカー（Ｍ）、未処理（ＮＣ）、アルギニン非添加群（−Ａｒｇ）のｐＨ６〜９、アルギニン添加群（＋Ａｒｇ）のｐＨ６〜９の結果を示す。図１に示すように、いずれのクローンにおいても、アルギニンの有無、および処理時のｐＨに関わらず、本発明のリフォールディング方法により、シングルバンドが確認され、いずれの封入体からも、リフォールディングしたＶＮＡＲが得られ、かつ得られたＶＮＡＲの均質性が高いことが確認できた。なお、データは示していないが、前記実施例１（５）において、加圧５分、圧力の維持１分、および減圧５分で加圧処理した場合も同様の結果を得ている。
【００４５】
［実施例２］
リフォールディングしたＶＮＡＲの結合性を確認した。
【００４６】
前記実施例１で得られたリフォールディング後のＶＮＡＲ-AGIA-Hisを用い、アルファスクリーン法によりＶｅｎｕｓへの結合性を確認した。具体的には、サンプルは、前記実施例１で得られた各ＶＮＡＲ clone 11(tag)またはclone 39(tag)を使用した。抗原試料は、ビオチン化Ｖｅｎｕｓ蛍光タンパク質（コムギ無細胞系で試験管内合成）を用いた。交差反応の確認用に、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ、コムギ無細胞系で試験管内合成）を用いた。そして、下記参考文献１に記載の方法に従い、Alpha（Amplified Luminescent Proximity Homogeneous Assay）Screen法により測定した。具体的には、まず、前記抗原試料１μＬと、ＶＮＡＲ（0.5mg/mL）を１μＬを、２０μＬの希釈液（100 mmol/L Tris-HCl, pH8.0、0.01% Tween20、1 mg/mL ウシ血清アルブミン）中で混和し、室温（２５℃）で３０分間静置し、反応液を調製した。その後、０.０２μＬの抗AGIAタグ抗体（1mg/mL）、AlphaScreen Protein A修飾アクセプタービーズ（PerkinElmer社製）０．０８μＬとAlphaScreenストレプトアビジン修飾ドナービーズ（PerkinElmer社製）０．０８μＬとを含む希釈液（100 mmol/L Tris-HCl, pH8.0、0.01% Tween20、1 mg/mL ウシ血清アルブミン）５μＬを、前記反応液に添加し、さらに室温で６０分静置した。そして、前記反応液中の抗原−抗体反応を、Envisionプレートリーダー（PerkinElmer社製）を用いて検出した。
参考文献１：Yano, T., Takeda, H., Uematsu, A., Yamanaka, S., Nomura, S., Nemoto, K., et al. (2016). AGIA Tag System Based on a High Affinity Rabbit Monoclonal Antibody against Human Dopamine Receptor D1 for Protein Analysis. PLoS ONE, 11(6), e0156716. 
【００４７】
図２は、アルファスクリーンの結果を示すグラフである。図２において、縦軸は、化学蛍光発光（Chemical luminescence）を示し、横軸は、サンプルの種類を示す。図２に示すように、いずれのＶＮＡＲも、Ｖｅｎｕｓには結合し、ＤＨＦＲには結合しなかった。すなわち、封入体内のＶＮＡＲが、本発明のリフォールディング方法により、リフォールディングしていることがわかった。また、加圧時にｐＨが中性または塩基性の場合、リフォールディングの効率が向上することがわかった。
【００４８】
［実施例３］
本発明のリフォールディング方法により、リフォールディングの効率が改善し、ＶＮＡＲの収率が改善されることを確認し、またリフォールディング後の抗Ｖｅｎｕｓ  ＶＮＡＲがＶｅｎｕｓと結合することを確認した。
【００４９】
ＶＮＡＲのリフォールディングをより正確に評価するため、本実施例ではタグを除去したＶＮＡＲを調製した。前述のｐＥＴ−３０ａ−ＶＮＡＲ−GS linker-AGIA-HisプラスミドからインバースPCRを用いてタグ部分を削除した（ｐＥＴ−３０ａ−ＶＮＡＲ clone 11、および clone 39）。また、ＶＮＡＲ clone 25をｐＥＴ−３０ａ（＋）ベクターに挿入したプラスミドを作製した。そして、前記ベクターを、ヒートショック法により、大腸菌（ＢＬ２１（ＤＥ３））に導入し、各ＶＮＡＲを発現する形質転換体を得た。
【００５０】
ＶＮＡＲ clone 11のアミノ酸配列（配列番号５）
MAAYVDQTPRMATKETGESLTINCVLRDTSYGLCATSWFRKNPGSTDWERITIGGRYVESVNKGSNSFSLQIKDLTVEDSVTFYCKARDGVQGILGVCDTAATGYHDGAGTVLTVNSGLTPPVISLFSETDELRANGFTSA
【００５１】
ＶＮＡＲ clone 11をコードする塩基配列（配列番号６、終止コドン含）
5'-ATGGCTGCATATGTCGATCAAACACCACGAATGGCAACTAAAGAAACAGGCGAATCTCTGACAATCAACTGCGTCCTAAGGGATACTAGCTATGGCTTGTGCGCAACAAGCTGGTTTCGGAAAAATCCTGGTTCAACAGATTGGGAACGCATCACCATTGGCGGCCGATATGTTGAATCAGTCAACAAGGGAAGCAACTCGTTTTCTCTGCAAATCAAGGACCTAACAGTTGAAGACAGTGTCACATTTTACTGCAAAGCTCGAGATGGGGTACAGGGGATTCTGGGTGTGTGTGATACAGCAGCTACCGGCTACCATGATGGGGCTGGCACCGTGCTGACTGTGAATTCTGGACTGACTCCCCCAGTCATCAGTCTCTTCTCTGAAACTGATGAGTTGAGAGCAAACGGGTTCACTAGTGCATAG-3'
【００５２】
ＶＮＡＲ clone 25のアミノ酸配列（配列番号７）
MAAYVDQTPRMATKETGESLTINCVLRDTRYGLCATSWFRKNPGSTDWERITIGGRYVESVNKGSNSFSLQIKDLIVEDSVTFYCKAGVYLSAVMQRCYYHDGAGTVLTVNSGLTPPVISLFSETDELRANGFTSA
【００５３】
ＶＮＡＲ clone 25をコードする塩基配列（配列番号８、終止コドン含）
5'-ATGGCTGCATATGTCGATCAAACACCACGAATGGCAACTAAAGAAACAGGCGAATCTCTGACAATCAACTGCGTCCTAAGGGATACTAGGTACGGCTTGTGCGCAACAAGCTGGTTTCGGAAAAATCCTGGTTCAACAGATTGGGAACGCATCACCATTGGCGGCCGATATGTTGAATCAGTCAACAAGGGAAGCAACTCGTTTTCTCTGCAAATCAAGGACCTAATAGTTGAAGACAGTGTCACATTTTACTGCAAAGCCGGCGTATATCTGAGTGCTGTGATGCAGCGTTGTTACTACCATGATGGGGCTGGCACCGTGCTGACTGTGAATTCTGGACTGACTCCCCCAGTCATCAGTCTCTTCTCTGAAACTGATGAGTTGAGAGCAAACGGGTTCACTAGTGCATAG-3'
【００５４】
ＶＮＡＲ clone 39のアミノ酸配列（配列番号９）
MAAHVDQTPRMATKETGESLTINCVLRDTSCGLYATSWFRKNPGSTDWERITIGGRYVESVNKGSNSFSLQIKDLTVEDSVTFYCKARDARTPGSVGCSYRDRGYHDGAGTVLTVNSGLTPPVISLFSETDELRANGFTSA
【００５５】
ＶＮＡＲ clone 39をコードする塩基配列（配列番号１０、終止コドン含）
5'-ATGGCTGCACATGTCGATCAAACACCACGAATGGCAACTAAAGAAACAGGCGAATCTCTGACAATCAACTGCGTCCTAAGGGATACTAGCTGTGGCTTGTACGCAACAAGCTGGTTTCGGAAAAATCCTGGTTCAACAGATTGGGAACGCATCACCATTGGCGGCCGATATGTTGAATCAGTCAACAAGGGAAGCAACTCGTTTTCTCTGCAAATCAAGGACCTAACAGTTGAAGACAGTGTCACATTTTACTGCAAAGCTCGAGATGCCCGTACCCCGGGCAGTGTGGGATGCAGCTACAGGGATCGGGGCTACCATGATGGGGCTGGCACCGTGCTGACTGTGAATTCTGGACTGACTCCCCCAGTCATCAGTCTCTTCTCTGAAACTGATGAGTTGAGAGCAAACGGGTTCACTAGTGCATAG-3'
【００５６】
（１）サンプルの調製
タグを含むＶＮＡＲ clone 11を含む封入体およびＶＮＡＲ clone 39を含む封入体に代えて、タグを含まないＶＮＡＲ clone 11を含む封入体、ＶＮＡＲ clone 25を含む封入体、ＶＮＡＲ clone 39を含む封入体を用いた以外は、前記実施例１（５）と同様にして、加圧処理後、上清を回収したサンプルであるclone 11、clone 25およびclone 39を得た。得られたclone 11、clone 25およびclone 39のタンパク質濃度を、前記実施例１（４）と同様にして測定し、大腸菌培養液１Ｌあたりの収量を算出した。その結果、大腸菌培養液１Ｌあたりの収量は、clone 11が１１６ｍｇ、clone 25が１０８ｍｇ、clone 39が２１０ｍｇであった。一般的に、変性剤を用いてリフォールディングした場合の大腸菌培養液１Ｌあたりの収量は、最大で１００ｍｇ程度である。このため、本発明のリフォールディング方法によれば、より高い収率でＶＮＡＲを回収できることがわかった。
【００５７】
（２）ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
clone 11、clone 25およびclone 39を発現する大腸菌について、ソニケーション直後の可溶性画分（Ｓ）と、遠心後の不溶性画分（沈殿物、Ｐ）と、加圧処理および遠心後の可溶性画分（Ｒ）をＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、バンドパターンを確認した。これらの結果を図３に示す。
【００５８】
図３は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。図３において、各レーンは、左から、分子量マーカー（Ｍ）、clone 11のソニケーション直後の可溶性画分（Ｓ）、不溶性画分未処理サンプル（Ｐ）および加圧処理サンプル（Ｒ）、clone 25の（Ｓ）、（Ｐ）および（Ｒ）、clone 39の（Ｓ）、（Ｐ）および（Ｒ）を示す。図３において矢印で示すように、いずれのクローンも、加圧処理サンプルのレーンにシングルバンドが確認され、均質にリフォールディングされたＶＮＡＲが得られたことを確認した。
【００５９】
（３）ゲル濾過クロマトグラフィー
各サンプルの可溶性画分（Ｒ）に対し、同モル量のＶｅｎｕｓを添加し、Ｖｅｎｕｓ−ＶＮＡＲ複合体を形成した。前記各複合体を、下記条件のゲルろ過クロマトグラフィーに供し、ピーク画分（図４左側のグラフにおける、破線で示した部分）を回収した。
サンプル：Ｖｅｎｕｓ−ＶＮＡＲ複合体（20 mmol/L Tris-HCl, pH 8.0）
使用機器：M150システム（Barofold社製）
カラム：Superdex 75 HR（24 mL, GE Healthcare）
移動相：20mmol/L Tris-HCl, pH 8.0, 150 mmol/L NaCl
流速：0.5 mL/min
送液条件：1.2 CV
検出器：AKTA purifier（検出波長：280nm）
【００６０】
（４）ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
２８０ｎｍの吸光における各ピーク画分（第１４〜２３画分）について、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った。結果を図４に示す。
【００６１】
図４（Ａ）〜（Ｃ）は、それぞれclone 11、clone 25およびclone 39の結果を示すグラフおよび写真である。図４において、左側のグラフは、ゲル濾過クロマトグラフィーの結果を示すグラフであり、右側の写真は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す。図４右側の写真において、左端のレーンが、分子量マーカ（Ｍ）であり、その他の各レーンは、ゲル濾過クロマトグラフィーにおけるピーク画分（第１４〜２３画分）と、その溶出前後の画分である。図４に示すように、各クローンにおいて、２８０ｎｍの吸光におけるピーク画分では、Ｖｅｎｕｓ−ＶＮＡＲ複合体の形成が確認できた。
【００６２】
以上のことから、本発明のリフォールディング方法により、リフォールディングの効率が改善し、ＶＮＡＲの収率が改善されることがわかった。また、リフォールディング後の抗Ｖｅｎｕｓ  ＶＮＡＲがＶｅｎｕｓと結合することがわかった。
【００６３】
［実施例４］
異なる液体を用いた場合においても、本発明のリフォールディング方法により、ＶＮＡＲをリフォールディングできることを確認した。
【００６４】
ＶＮＡＲ clone 11を含む封入体、ＶＮＡＲ clone 25を含む封入体、およびＶＮＡＲ clone 39を含む封入体を、そのタンパク質の終濃度が、０．５ｍｇ／ｍＬとなるように、超純水（MilliQ水）または50mmol/L Tris-HCl(pH8.0)に懸濁した以外は、実施例１（５）と同様にして、加圧処理を行なった。そして、加圧処理の前後のサンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、バンドパターンを確認した。これらの結果を図５に示す。
【００６５】
図５は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。図５（Ａ）は、50mmol/L Tris-HCl(pH8.0)に懸濁して処理した結果の写真であり、（Ｂ）は、MilliQ水に懸濁して処理した結果の写真である。図５において、各レーンは、左から、分子量マーカー（Ｍ）、clone 11の未処理サンプル（前）および加圧処理サンプル（後）、clone 25の未処理サンプル（前）および加圧処理サンプル（後）、clone 39の加圧処理サンプル（前）および処理サンプル（後）の結果を示す。図５に示すように、本発明のリフォールディング方法により、液体がMilliQ水であっても、緩衝液の場合と同様に、シングルバンドが確認され、均質にリフォールディングしたＶＮＡＲが得られることが確認できた。
【００６６】
clone 11について、以下の条件でイオン交換クロマトグラフィーに供し、各画分を回収した。１画分の回収量は、２ｍＬとした。そして、第１３〜１７、および３２または４０画分について、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した。これらの結果を図６に示す。
【００６７】
サンプル：加圧処理後の上清（20 mmol/L Tris-HCl, pH 8.0）
使用機器：AKTA purifier（GE Healthcare社製）
カラム： Resource Q（6 mL, GE Healthcare）
移動相：
移動相Ａ：20 mmol/L Tris-HCl (pH 8.0)
移動相Ｂ：20 mmol/L Tris-HCl (pH 8.0), 1 mol/L NaCl
流速：6 mL/min
検出器：AKTA purifier（検出波長：280ｎｍおよび260ｎｍ）
送液条件：
送液開始後、４カラム体積（ＣＶ）まで、移動相Ａ  １００％とし、その後、２０ＣＶの間に、移動相Ａを１００％から０％へ、移動相Ｂを０％から１００％へ連続的に変化させた。その後、２ＣＶの間、移動相Ｂ  １００％とし、さらに、１ＣＶの間、移動相Ａ  １００％とした。
【００６８】
図６は、イオン交換クロマトグラフの結果を示すグラフおよびその一部の画分のＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す写真である。図６（Ａ）は、50mmol/L Tris-HCl(pH8.0)に懸濁して処理した結果を示し、（Ｂ）は、MilliQ水に懸濁して処理した結果を示す。図６において、上段のグラフは、イオン交換クロマトグラフィーの結果を示すグラフであり、下段の写真は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果を示す。図６の下段の写真において、左端のレーンが、分子量マーカ（Ｍ）であり、マーカーの隣のレーンが、イオン交換クロマトグラフィー前の加圧処理後のサンプル（Ｓ）であり、その他の各レーンは、イオン交換クロマトグラフィー後の画分（第１３〜１７、および３２または４０画分）である。図６に示すように、本発明のリフォールディング方法により、液体がMilliQ水である場合、ピークがシャープであり、その他の領域におけるタンパク質のピークが見られず、緩衝液の場合と比較して、より均一な分子量のＶＮＡＲが得られることが分かった。
【００６９】
以上のことから、異なる液体を用いた場合においても、本発明のリフォールディング方法により、ＶＮＡＲをリフォールディングできることがわかった。また、前記液体として、水を用いることにより、より均質性の高いＶＮＡＲをリフォールディングできることがわかった。
【００７０】
以上、実施形態および実施例を参照して本発明を説明したが、本発明は、上記実施形態および実施例に限定されるものではない。本発明の構成や詳細には、本発明のスコープ内で当業者が理解しうる様々な変更をすることができる。
【００７１】
＜付記＞
上記の実施形態および実施例の一部または全部は、以下の付記のように記載されうるが、以下には限られない。
（付記１）
サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体について、液体存在下で加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせるリフォールディング工程を含む、ＶＮＡＲのリフォールディング方法。
（付記２）
前記リフォールディング工程では、前記加圧後、圧力を維持し、
前記圧力の維持時間は、０分〜５０時間である、付記１記載のリフォールディング方法。
（付記３）
前記リフォールディング工程では、前記加圧、圧力の維持、および減圧を実施し、
前記減圧において、連続的に減圧する、付記１または２記載のリフォールディング方法。
（付記４）
前記リフォールディング工程の時間は、１０分〜５２時間である、付記１から３のいずれかに記載のリフォールディング方法。
（付記５）
前記加圧後の圧力は、１０〜５００ＭＰａである、付記１から４のいずれかに記載のリフォールディング方法。
（付記６）
大腸菌にＶＮＡＲを発現させる発現工程と、
ＶＮＡＲ発現大腸菌からＶＮＡＲを含む封入体を回収する回収工程とを含む、付記１から５のいずれかに記載のリフォールディング方法。
（付記７）
前記回収工程は、
前記ＶＮＡＲ発現大腸菌を破砕し、破砕液を調製する破砕工程と、
前記破砕液を遠心し、前記封入体を含む沈殿物を回収する沈殿物回収工程とを含む、付記６記載のリフォールディング方法。
（付記８）
前記沈殿物に、液体を積層し、封入体調製液を調製する調製工程を含み、
前記リフォールディング工程では、前記封入体調製液について、加圧することにより、ＶＮＡＲをリフォールディングさせる、付記７記載のリフォールディング方法。
（付記９）
前記沈殿物を洗浄する洗浄工程を含む、付記７または８記載のリフォールディング方法。
（付記１０）
前記液体は、水である、付記１から９のいずれか一項に記載のリフォールディング方法。
（付記１１）
前記リフォールディング工程を、圧力容器内で実施する、付記１から１０のいずれかに記載のリフォールディング方法。
（付記１２）
前記圧力容器の容積は、５Ｌ未満である、付記１１記載のリフォールディング方法。
（付記１３）
サメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）を含む封入体からリフォールディングされたＶＮＡＲを製造する製造工程を含み、
前記製造工程は、付記１から１２のいずれかに記載のＶＮＡＲのリフォールディング方法により実施される、ＶＮＡＲの製造方法。
（付記１４）
付記１３に記載のサメ由来一本鎖抗体（ＶＮＡＲ）の製造方法で得られる、ＶＮＡＲ。
【産業上の利用可能性】
【００７２】
以上のように、本発明によれば、ＶＮＡＲのリフォールディングの効率および収率を改善できる。このため、本発明は、例えば、臨床分野、生化学分野、医薬分野等において極めて有用である。
【図１】
2020152644.tif 000003
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
2020152644.tif 000007
【図６】
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【配列表】
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