(57)【要約】【課題】アセトアルデヒド及びホルムアルデヒドが共存している場合においてもアセトアルデヒドのみを正確に検出できる、車室内におけるアセトアルデヒドの検出方法を提供する。【解決手段】車室内におけるアセトアルデヒドの検出方法は、検出器を前記車室内に配置することと、配置した前記検出器の呈色によりアセトアルデヒドの有無を判断することとを含む。前記検出器は、樹脂、並びに、前記樹脂に吸収された、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ＋）、アルデヒド脱水素酵素（ＡＬＤＨ）、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド（ＩＮＴ）及びジアホラーゼ（ＤＩ）を含む。前記検出器は、前記樹脂に、ＮＡＤ＋及びＡＬＤＨを添加してｐＨを９．０より高く９．５以下とし、さらに、ＩＮＴ及びＤＩを前記樹脂に添加することにより得られたものである。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
車室内におけるアセトアルデヒドの検出方法であって、
検出器を前記車室内に配置することと、
配置した前記検出器の呈色によりアセトアルデヒドの有無を判断することとを含み、
前記検出器が、樹脂、並びに、前記樹脂に吸収された、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アルデヒド脱水素酵素、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド及びジアホラーゼを含み、前記樹脂に、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、及びアルデヒド脱水素酵素を添加してｐＨを９．０より高く９．５以下とし、さらに、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド、及びジアホラーゼを前記樹脂に添加することにより得られたものである、検出方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、車室内におけるアセトアルデヒドの検出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
自動車の内装等に使用されるアセトアルデヒドは、眩暈、吐気、頭痛等の症状を引き起こすシックハウス症候群の原因物質として知られている。そのため、車室内のアセトアルデヒドを簡便に検出する方法が必要とされている。
【０００３】
通常、アセトアルデヒドの検出は、専用のカートリッジに被検ガスを採取し、有機溶剤で抽出し、高速液体クロマトグラフ（ＨＰＬＣ）で分析することにより行う。また、アセトアルデヒドの検出手段として、検知管を用いる方法もある。
【０００４】
アセトアルデヒドと同様に人体に悪影響を与える物質としてホルムアルデヒドが知られている。特許文献１は、特にホルムアルデヒドを検出するためのパッシブ型放散フラックスサンプラを開示している。具体的には、パッシブ型放散フラックスサンプラは、発色剤としてのｐ−ヨードニトロテトラゾリュウムバイオレット並びに反応触媒としてのデヒドロゲナーゼ及びジアホラーゼを担持させた紙製基材シートを含んでいる。紙製基材シートにホルムアルデヒドが接触すると、デヒドロゲナーゼの作用により蟻酸及びニコチンアミドアデニンジヌクレオチドが生成し、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドがｐ−ヨードニトロテトラゾリュウムバイオレット及びジアホラーゼと反応することにより発色する。発色の程度に基づき、ホルムアルデヒドの量を決定することができる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００６−２０８４０５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
ＨＰＬＣを用いるアセトアルデヒドの検出方法は、高価な設備が必要な上、手間と技術を要する。検知管を用いる検出方法は、環境中にアセトアルデヒド以外のアルデヒド類やケトン類が存在する場合にアセトアルデヒドを正確に検出できない。また、特許文献１に記載されているような方法によってアセトアルデヒドを検出しようとすると、デヒドロゲナーゼがアセトアルデヒドのみならずホルムアルデヒドにも作用してしまう。そのため、アセトアルデヒドのみを検出することは困難である。
【０００７】
そこで、本発明は、アセトアルデヒド及びホルムアルデヒドが共存していてもアセトアルデヒドのみを正確に検出可能な、車室内におけるアセトアルデヒドの簡便な検出方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明の一態様に従えば、車室内におけるアセトアルデヒドの検出方法であって、検出器を前記車室内に配置することと、配置した前記検出器の呈色によりアセトアルデヒドの有無を判断することとを含み、前記検出器が、樹脂、並びに、前記樹脂に吸収された、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アルデヒド脱水素酵素、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド及びジアホラーゼを含み、前記樹脂に、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、及びアルデヒド脱水素酵素を添加してｐＨを９．０より高く９．５以下とし、さらに、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド、及びジアホラーゼを前記樹脂に添加することにより得られたものである、検出方法が提供される。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、車室内においてアセトアルデヒド及びホルムアルデヒドが共存している場合においても、アセトアルデヒドのみを正確かつ簡便に検出することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】アセトアルデヒドを含む車室内に配置して二時間経過後の実施例１の試験体の写真である。
【図２】アセトアルデヒドを含む車室内に配置して二時間経過後の実施例２の試験体の写真である。
【図３】アセトアルデヒドを含む車室内に配置して二時間経過後の比較例１の試験体の写真である。
【図４】アセトアルデヒドを含む車室内に配置して二時間経過後の比較例２の試験体の写真である。
【図５】アセトアルデヒドを含む車室内に配置して二時間経過後の比較例３の試験体の写真である。
【図６】アセトアルデヒドを含む車室内に配置して二時間経過後の比較例４の試験体の写真である。
【図７】ｐＨが１０．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドとアルデヒド脱水素酵素との反応時間と、吸光度との関係を示す。
【図８】ｐＨが１０．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドの濃度と、吸光度との関係を示す。
【図９】ｐＨが８．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドとアルデヒド脱水素酵素との反応時間と、吸光度との関係を示す。
【図１０】ｐＨが８．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドの濃度と、吸光度との関係を示す。
【図１１】ｐＨが９．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドとアルデヒド脱水素酵素との反応時間と、吸光度との関係を示す。
【図１２】ｐＨが９．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドの濃度と、吸光度との関係を示す。
【図１３】ｐＨが１１．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドとアルデヒド脱水素酵素との反応時間と、吸光度との関係を示す。
【図１４】ｐＨが１１．０の場合における、アセトアルデヒド又はホルムアルデヒドの濃度と、吸光度との関係を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
＜アセトアルデヒドの検出器＞
まず、アセトアルデヒドの検出方法において用いられる検出器について説明する。
【００１２】
検出器は、酵素固定用の樹脂、並びに、前記樹脂に吸収された検出溶液を含む。検出溶液は、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（以下、適宜「ＮＡＤ＋」と称する）、アルデヒド脱水素酵素（以下、適宜「ＡＬＤＨ」と称する）、２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド（ヨードニトロテトラゾリウムクロリド、以下、適宜「ＩＮＴ」と称する）及びジアホラーゼ（以下、適宜「ＤＩ」と称する）を含む。検出溶液の溶媒としては、例えば水を挙げることができる。
【００１３】
本明細書において「ＡＬＤＨ」とは、ＮＡＤ＋の存在下においてアセトアルデヒドと反応し、酢酸及び還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（以下、適宜「ＮＡＤＨ」と称する）を形成する酵素を意味する。なお、アセトアルデヒド及びホルムアルデヒドが共存している場合には、アセトアルデヒドのみならずホルムアルデヒドと反応する酵素であってもよい。アルデヒド脱水素酵素としては、例えば、シグマアルドリッチジャパン合同会社製のＡｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ  Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅを挙げることができる。
【００１４】
検出溶液に含まれるＮＡＤ＋の濃度としては、例えば、０．０１〜１０ｍｇ／ｍｌ、０．０５〜５ｍｇ／ｍｌ、２．５〜３．５ｍｇ／ｍｌを挙げることができる。
【００１５】
検出溶液に含まれるＡＬＤＨの濃度としては、例えば、０．０１〜１０Ｕ／ｍｌ、０．０５〜５Ｕ／ｍｌ、３．０〜４．０Ｕ／ｍｌを挙げることができる。
【００１６】
検出溶液に含まれるＩＮＴの濃度としては、例えば、０．１０〜０．２０ｍｇ／ｍｌを挙げることができる。
【００１７】
検出溶液に含まれるＤＩの濃度としては、例えば、１０〜２０Ｕ／ｍｌを挙げることができる。
【００１８】
検出溶液はさらにｐＨ緩衝剤を含んでよい。ｐＨ緩衝剤は、ＮＡＤ＋及びＡＬＤＨを樹脂に吸収させた後のｐＨを９．０より高く９．５以下にできるものであれば特に限定されない。ｐＨ緩衝剤としては、例えば、ＮａＨＣＯ３−ＮａＯＨ、ＮＨ３−ＮＨ４Ｃｌを挙げることができる。また、検出溶液を吸収した状態の樹脂のｐＨも、９．０より高く９．５以下であってよい。なお、樹脂のｐＨは、ｐＨメータの検出部を接触させた樹脂に溶液を吸収させて樹脂を湿潤状態にすることにより測定することができる。
【００１９】
酵素固定用の樹脂は、細孔を有してよく、細孔径は６０〜１２０ｎｍであってよい。ここで、樹脂の細孔径は水銀圧入法で測定される。また、酵素固定用の樹脂は、親水性でも疎水性でもよく、好ましくは親水性である。樹脂の酵素固定方法は、共有結合又は吸着であってよく、好ましくは共有結合である。
【００２０】
このような検出器は、以下のようにして製造することができる。まず、ＮＡＤ＋とＡＬＤＨを酵素固定用の樹脂に添加して、樹脂に吸収させる。ＮＡＤ＋及びＡＬＤＨはいずれも溶媒に溶解させて樹脂に添加してよい。溶媒としては例えば水を用いることができる。ＮＡＤ＋とＡＬＤＨを混合して樹脂に添加してもよいし、ＮＡＤ＋とＡＬＤＨを別々に樹脂に添加してもよい。ＮＡＤ＋の溶液、又はＮＡＤ＋とＡＬＤＨの混合溶液は、ｐＨ緩衝剤を含んでよい。ＮＡＤ＋とＡＬＤＨを吸収させた後の樹脂のｐＨは、９．０より高く９．５以下とする。
【００２１】
次いで、樹脂にＩＮＴ、及びＤＩを添加して、樹脂に吸収させる。添加するＩＮＴ及びＤＩはいずれも溶媒に溶解させて樹脂に添加してよい。溶媒としては例えば水を用いることができる。ＩＮＴとＤＩを混合して樹脂に添加してもよいし、ＩＮＴとＤＩを別々に樹脂に添加してもよい。ＩＮＴとＤＩを吸収させた後の樹脂のｐＨは、９．０より高く９．５以下であってよい。こうして、アセトアルデヒドの検出器が得られる。
【００２２】
＜アセトアルデヒドの検出方法＞
上述したアセトアルデヒドの検出器を用いて車室内のアセトアルデヒドを検出する方法を説明する。車室内におけるアセトアルデヒドの検出方法は、検出器を車室内に配置することと、配置した検出器の呈色によりアセトアルデヒドの有無を判断することとを含む。
【００２３】
まず、検出器を車室内に配置し、検出器を車室内の被検ガスに所定時間接触させる。被検ガス中にアセトアルデヒドが存在する場合、ＮＡＤ＋の存在下でアセトアルデヒドがＡＬＤＨと反応して酢酸に分解され、同時にＮＡＤＨが生じる。生じたＮＡＤＨはＤＩの存在下でＩＮＴと反応して、ＩＮＴホルマザン色素が生成される。それにより検出器が呈色する。
【００２４】
所定時間が経過した後、検出器の色を目視観察し、呈色の有無に基づき被検ガス中のアセトアルデヒドの有無を判断する。検出器の呈色は被検ガス中のアセトアルデヒドに起因するものであるから、検出器が呈色した場合は、被検ガス中にアセトアルデヒドが存在すると判断する。アセトアルデヒドの量と検出器の色との関係を示すカラーチャートを予め作成しておくことにより、目視観察した検出器の色から被検ガスに含まれるアセトアルデヒドの量（濃度）を決定することができる。
【００２５】
本発明者は、アセトアルデヒドとＡＬＤＨとの反応速度、及びホルムアルデヒドとＡＬＤＨとの反応速度が、反応場のｐＨに応じて大きく変化することを見出した。具体的には、反応場のｐＨが９．０より高く１１．０より低い場合、ＡＬＤＨとアセトアルデヒドとの反応速度が、ＡＬＤＨとホルムアルデヒドとの反応速度と比較して、顕著に速いことを見出した。本実施形態の検出方法に用いられる検出器は、ＮＡＤ＋及びＡＬＤＨを吸収した樹脂のｐＨが９．０より高く９．５以下となるようにして製造されているため、被検ガス中にアセトアルデヒド及びホルムアルデヒドが共存していても、アセトアルデヒドが選択的にＡＬＤＨ及びＮＡＤ＋と反応し、アセトアルデヒドに起因するＮＡＤＨが生じる。そのため、本実施形態の検出方法により、アセトアルデヒド及びホルムアルデヒドが共存している場合においても、アセトアルデヒドのみを正確に検出することができる。
【００２６】
検出器を車室内の被検ガスに接触させる時間は、被検ガスに含まれるアセトアルデヒドの９０％以上、好ましくは９２％以上、より好ましくは９４％以上、更に好ましくは９６％以上、特に好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上がＡＬＤＨと反応し、且つ被検ガスに含まれるホルムアルデヒドの１０％以下、好ましくは８％以下、より好ましくは６％以下、更に好ましくは４％以下、特に好ましくは２％以下、最も好ましくは１％以下がＡＬＤＨと反応する時間であってよい。接触させる時間は、測定条件（例えば、検出器のｐＨ、温度）に応じて変化するが、例えば１〜２４０分、好ましくは３０〜２１０分、より好ましくは６０〜１８０分、特に好ましくは９０〜１５０分とすることができる。
【００２７】
実施形態に係る検出方法は、ホルムアルデヒド及びアセトアルデヒドを含む被検ガスを対象とする場合に特に有効であるが、アセトアルデヒドのみを含む被検ガスを対象としてもよい。また、上記の実施形態に係る検出方法は、ホルムアルデヒドのみを含む被検ガス、及びいずれのアルデヒドも含まない被検ガスを対象としてもよく、この場合には、検出器が呈色しないため、被検ガス中にアセトアルデヒドが存在しないと判断される。
【００２８】
アセトアルデヒドを検出するための従来の方法では、ＨＰＬＣ等が使用されていたが、上記の実施形態に係る検出方法によれば、従来の高価な設備は不要となる。また、上記の実施形態に係る検出方法によれば、被検ガスが存在する場所（車室）に赴いて、その場でアセトアルデヒドの検出を行うことができる。そのため、車室内環境の異常を迅速かつ簡便に判断することが可能になる。
【００２９】
上記の実施形態に係る検出器と取扱説明書とを含む、アセトアルデヒドの検出に使用するためのキットを提供してもよい。取扱説明書には、検出器の使用方法、具体的には上記＜アセトアルデヒドの検出方法＞の項目において説明した内容が記載されてよい。
【００３０】
以上、本発明の実施形態について詳述したが、本発明は、上記実施形態に限定されるものではなく、特許請求の範囲に記載された本発明の精神を逸脱しない範囲で、種々の設計変更を行うことができる。
【実施例】
【００３１】
＜実施例及び比較例＞
以下、実施例及び比較例により本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００３２】
（１）試験体の作製
以下の試薬を用いて、溶液を調製した。
【００３３】
酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ＋）：β−Ｎｉｃｏｔｉｎａｍｉｄｅ  Ａｄｅｎｉｎｅ  Ｄｉｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ（ナカライテスク株式会社製）
アルデヒド脱水素酵素（ＡＬＤＨ）：Ａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ  Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（シグマアルドリッチジャパン合同会社製）
２−（４−ヨードフェニル）−３−（４−ニトロフェニル）−５−フェニルテトラゾリウムクロリド（ＩＮＴ）：東京化成工業株式会社製
ジアホラーゼ（ＤＩ）：和光純薬株式会社製
緩衝液：Ｂｕｆｆｅｒ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎ  ｐＨ１０．０（ＮａＨＣＯ３−ＮａＯＨ）（東京化成工業株式会社製）
【００３４】
ＮＡＤ＋を緩衝液に溶解し、Ａ液（５０ｍｇ／１０ｍｌ）を調製した。ＡＬＤＨを純水に溶解し、Ｂ液（２５０Ｕ／１０ｍｌ）を調製した。ＩＮＴを純水に溶解し、Ｃ液（１０ｍｇ／１０ｍｌ）を調製した。ＤＩを純水に溶解し、Ｄ液（１０００Ｕ／１０ｍｌ）を調製した。
【００３５】
実施例１、２及び比較例１〜４において、それぞれ、表１に示す母材、官能基、酵素固定化手法、及び細孔径を有する樹脂を用意した。これらの樹脂は、ピュロライト株式会社製Ｌｉｆｅｔｅｃｈ  ＥＣＲＫＩＴ１に含まれるものである。各実施例及び比較例において、Ａ液、Ｂ液、Ｃ液及びＤ液を、順に樹脂に滴下し、試験体を得た。ｐＨメータ（アズワン株式会社製ＬＡＱＵＡｔｗｉｎ）の検出部に樹脂を載せ、樹脂にＡ液を滴下した。３分経過後のｐＨメータの指示値は、表１に示す値であった。Ｂ液を滴下した後もｐＨはほとんど変わらなかった。
【００３６】
（２）アセトアルデヒドの検出
アセトアルデヒドを１ｐｐｍの濃度で含む車室内に試験体を配置した。二時間後に試験体を回収した。回収した実施例１、２及び比較例１〜４の試験体の写真を図１〜６に示す。また、目視により試験体の呈色の有無を判断した結果を表１に示す。表１中、「○」は呈色有り、「△」はわずかに呈色有り、「×」は呈色なしと判断されたことを示している。
【００３７】
Ａ液を添加した後のｐＨの値が９．０より高く９．５以下の範囲内である実施例１、２では、試験体が呈色し、アセトアルデヒドを検出できた。特に、Ａ液を添加した後のｐＨの値が９．０より高く９．２以下の範囲内である実施例１では試験体の呈色が顕著であり、より高い感度でのアセトアルデヒドの検出が可能であった。
【００３８】
【表１】
2020122733.tif 000002
【００３９】
＜参考例＞
アセトアルデヒドとＡＬＤＨとの反応速度、及びホルムアルデヒドとＡＬＤＨとの反応速度が、反応場のｐＨに応じて大きく変化すること、具体的には、反応場のｐＨが９．０より高く１１．０より低い場合、ＡＬＤＨとアセトアルデヒドとの反応速度が、ＡＬＤＨとホルムアルデヒドとの反応速度と比較して、顕著に速いことを示す参考例を、以下に記載する。
【００４０】
［参考例１−１］
（１）試薬
ＮＡＤ＋：β−Ｎｉｃｏｔｉｎａｍｉｄｅ  Ａｄｅｎｉｎｅ  Ｄｉｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ（ナカライテスク株式会社製）
アルデヒド脱水素酵素：Ａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ  Ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（シグマアルドリッチジャパン合同会社製）
緩衝液：Ｂｕｆｆｅｒ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎ  ｐＨ１０．０（ＮａＨＣＯ３−ＮａＯＨ）（東京化成工業株式会社製）
【００４１】
（２）調製
ＮＡＤ＋を緩衝液に溶解し、Ａ液（８ｍｇ／３０ｍｌ）を調製した。
アルデヒド脱水素酵素を純水に溶解し、Ｂ液（４０Ｕ／６ｍｌ）を調製した。
【００４２】
Ａ液（１．５ｍｌ）及びＢ液（０．０５ｍｌ）を混合して、検出溶液（ｐＨ１０．０）を調製した。
【００４３】
（３）試験１
アセトアルデヒドを検出溶液（第１の検出溶液）に溶解させ、１０μｇ／ｍｌの濃度とした。第１の検出溶液中において、アセトアルデヒドとＮＡＤ＋とアルデヒド選択的脱水素酵素とが反応し、アセトアルデヒドが分解され、ＮＡＤＨが生じる。ＮＡＤＨを含む第１の検出溶液の吸光度（第１の吸光度）を、３４０ｎｍの波長を有する紫外光を使用して、所定の反応時間で測定した。なお、波長３４０ｎｍの紫外光の吸収は、ＮＡＤＨによるものである。
【００４４】
（４）試験２
ホルムアルデヒドを検出溶液（第２の検出溶液）に溶解させ、１０μｇ／ｍｌの濃度とした。第２の検出溶液中において、ホルムアルデヒドとＮＡＤ＋とアルデヒド選択的脱水素酵素とが反応し、ホルムアルデヒドが分解され、ＮＡＤＨが生じる。ＮＡＤＨを含む第２の検出溶液の吸光度（第２の吸光度）を、３４０ｎｍの波長を有する紫外光を使用して、所定の反応時間で測定した。
【００４５】
（５）結果
試験１及び試験２の結果を図７に示す。図７は、検出溶液のｐＨが１０．０の場合、アセトアルデヒドの反応速度が、ホルムアルデヒドの反応速度と比較して顕著に速いことを示している。即ち、検出溶液のｐＨが１０．０の場合、アセトアルデヒドを選択的に検出することが可能となる。
【００４６】
［参考例１−２］
参考例１−１におけるアセトアルデヒド及びホルムアルデヒドの濃度を様々に変更して、参考例１−１と同様の試験を行った。なお、反応時間は３０分とした。結果を図８に示す。
【００４７】
［参考例２−１］
参考例１−１における検出溶液のｐＨを１０．０から８．０に変更したことを除いて、参考例１−１と同様の試験を行った。結果を図９に示す。図９は、検出溶液のｐＨが８．０の場合、ホルムアルデヒドの反応速度が、ｐＨ１０．０の場合と比較して速いことを示している。即ち、検出溶液のｐＨが８．０の場合、アセトアルデヒドを選択的に検出することが困難となる。
【００４８】
［参考例２−２］
参考例２−１におけるアセトアルデヒド及びホルムアルデヒドの濃度を様々に変更して、参考例２−１と同様の試験を行った。なお、反応時間は３０分とした。結果を図１０に示す。
【００４９】
［参考例３−１］
参考例１−１における検出溶液のｐＨを１０．０から９．０に変更したことを除いて、参考例１−１と同様の試験を行った。結果を図１１に示す。図１１は、検出溶液のｐＨが９．０の場合、ホルムアルデヒドの反応速度が、ｐＨ１０．０の場合と比較して速いことを示している。即ち、検出溶液のｐＨが９．０の場合、アセトアルデヒドを選択的に検出することが困難となる。
【００５０】
［参考例３−２］
参考例３−１におけるアセトアルデヒド及びホルムアルデヒドの濃度を様々に変更して、参考例３−１と同様の試験を行った。なお、反応時間は３０分とした。結果を図１２に示す。
【００５１】
［参考例４−１］
参考例１−１における検出溶液のｐＨを１０．０から１１．０に変更したことを除いて、参考例１−１と同様の試験を行った。結果を図１３に示す。図１３は、検出溶液のｐＨが１１．０の場合、アセトアルデヒド及びホルムアルデヒドがいずれも反応しないことを示している。即ち、検出溶液のｐＨが１１．０の場合、アセトアルデヒドを検出することが困難となる。
【００５２】
［参考例４−２］
参考例４−１におけるアセトアルデヒド及びホルムアルデヒドの濃度を様々に変更して、参考例４−１と同様の試験を行った。なお、反応時間は３０分とした。結果を図１４に示す。
【図１】
2020122733.tif 000003
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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