(57)【要約】      （修正有）【課題】ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド（例えば、ＡｐｏＡ１の一部分）及びアフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を使用して、試料（例えば、血液試料）からＨＤＬ分子を精製するための方法、キット及び組成物を提供する。【解決手段】質量分析法による、断片化されていないＡｐｏＡ１を検出するための方法、キット及び組成物も提供する。さらに本発明は、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子対未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の比率が決定され得るように、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子によって試料中のＨＤＬ分子にタグ化するための方法、工程を含む。【選択図】図２
2020115134.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ａ）それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア及びｉｉ）複数のＨＤＬリポタンパク質を含むＨＤＬ分子と、非ＨＤＬ生体分子との集団を含有する初期試料を、それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子の集団と混合して、混合試料を生成すること；
ｂ）前記ＨＤＬタグ化分子の少なくともいくつかが前記ＨＤＬ分子の少なくともいくつかと結合し、それによってタグ化ＨＤＬ分子の集団が生成されるように、前記混合試料をインキュベーションすること；ならびに
ｃ）精製された試料を生成するために、前記タグ化ＨＤＬ分子の集団の少なくとも一部を前記非ＨＤＬ生体分子から分離させて精製することであって、前記アフィニティタグに対して特異的な捕捉分子の集団に前記混合試料を接触させることを含む、精製すること；を含む、精製された試料の生成方法。
【請求項２】
前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含み、かつ前記複数のＨＤＬリポタンパク質が非タグ化ＡｐｏＡ１分子を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記ＨＤＬタグ化分子が、前記ＨＤＬタグ化分子対前記非タグ化ＡｐｏＡ１分子の比率が１：２〜２：１であるように、前記初期試料に添加される、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記ＨＤＬ分子のそれぞれにおける前記複数のＨＤＬリポタンパク質が第１及び第２の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質を含み、かつ前記タグ化ＨＤＬ分子が前記ＨＤＬ分子に結合する時、前記ＨＤＬタグ化分子の少なくとも１つが、前記ＨＤＬ分子のそれぞれにおける前記第１の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質と置き換わる、請求項２に記載の方法。
【請求項５】
前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、ＡｐｏＡ１またはＡｐｏＡ１模倣物の少なくとも一部を含む、請求項２に記載の方法。
【請求項６】
前記初期試料が血清試料である、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
前記初期試料が、ＬＤＬが減損されていない、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記精製された試料の全タンパク質の少なくとも９０％が前記ＨＤＬリポタンパク質である、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
１時間以内に前記初期試料から前記精製された試料が生成される、請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
ａ）
ｉ）ＨＤＬと結合可能なＡｐｏＡ１またはＡｐｏＡ１模倣物の少なくとも一部、及び
ｉｉ）アフィニティタグ
を含むＨＤＬタグ化分子の集団；ならびに
ｂ）非タグ化野生型ＡｐｏＡ１分子の集団
を含む組成物であって、前記組成物中に存在する前記ＨＤＬタグ化分子対前記非タグ化分子の比率が１：２〜２：１である組成物。
【請求項１１】
ヒト血清をさらに含む、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１２】
前記ヒト血清が非ＬＤＬ減損ヒト血清である、請求項１１に記載の組成物。
【請求項１３】
前記アフィニティタグが不対電子を含有しない、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１４】
前記非タグ化野生型ＡｐｏＡ１分子がＨＤＬ分子の一部である、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１５】
ａ）
ｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド、及び
ｉｉ）アフィニティタグ
を含むＨＤＬタグ化分子、ならびに
ｂ）前記アフィニティタグに対して特異的である捕捉分子の集団
を含む系。
【請求項１６】
前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含む、請求項１５に記載の系。
【請求項１７】
前記ＨＤＬタグ化分子が第１の容器中にあり、かつ前記捕捉分子の集団が第２の容器中にある、請求項１５に記載の系。
【請求項１８】
ａ）非ＬＤＬ減損血清試料；ならびに
ｂ）それぞれが
ｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド、及び
ｉｉ）アフィニティタグ
を含むＨＤＬタグ化分子の集団
を含む組成物。
【請求項１９】
前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含み、かつ前記非ＬＤＬ減損血清試料が、非タグ化ＡｐｏＡ１分子を含む、請求項１８に記載の組成物。
【請求項２０】
前記ＨＤＬタグ化分子が、前記ＨＤＬタグ化分子対前記非タグ化ＡｐｏＡ１分子の比率が前記組成物中で１：２〜２：１であるように、前記非ＬＤＬ減損血清試料中に存在する、請求項１９に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願の相互参照
本出願は、参照によって本明細書に組み込まれる２０１４年５月１５日出願の米国仮特許出願第６１／９９３，６９６号に基づく優先権を主張する。
【０００２】
本発明は、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド（例えば、ＡｐｏＡ１の一部分）及びアフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を使用して、試料（例えば、血液試料）からＨＤＬ分子を精製するための方法、キット及び組成物を提供する。また本発明は、質量分光法によって、断片化されていないＡｐｏＡ１を検出するための方法、キット及び組成物も提供する。さらに本発明は、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子対未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の比率が決定され得るように、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子によって試料中のＨＤＬ分子にタグ化するための方法、キット及び組成物を提供する。
【背景技術】
【０００３】
血清リポタンパク質は、脂質及びタンパク質含有量に関連する粒子密度の差異に基づき、広範囲の等級、超低密度（ＶＬＤＬ）、低密度（ＬＤＬ）及び高密度（ＨＤＬ）に分類することができる。ＶＬＤＬ及びＬＤＬは主に脂質から構成されているが、高密度リポタンパク質は、より高い含有量（約５０％）のタンパク質を有する。ＬＤＬの密度は１．００６〜１．０６３ｇ／ｍｌであるが、ＨＤＬ及びＨＤＬ様粒子の密度は１．０６３〜１．２１ｇ／ｍｌである。ＨＤＬをＶＬＤＬ及びＬＤＬから分離する古典的方法としては、それぞれのリポタンパク質等級の範囲の密度に調製された臭化カリウム塩溶液を使用する連続的な密度超遠心分離が利用される。精製ＨＤＬのこれらの調製方法の１つの欠点は、最小限２つの長時間の超遠心分離ステップが必要とされるということである。ＶＬＤＬ及びＬＤＬをＨＤＬから単離する第１段階では、ｄ＝１．０６３ｇ／ｍｌのＫＢｒ塩溶液中での１８時間の超遠心分離スピンが必要とされる。浮揚性のＶＬＤＬ及びＬＤＬは、塩勾配のより上の層で濃縮し、そしてこれを容易に除去することが可能であるが、浮揚性の低いＨＤＬは、他のより重いタンパク質と一緒に底部の層で濃縮して残る。次いで、ｄ＝１．２１ｇ／ｍｌのＫＢｒ塩溶液中で２１時間の第２の超遠心分離ステップを実行することによって、他の脂質を含まない血清タンパク質からＨＤＬを分離する。ＨＤＬは、この密度の塩溶液中で浮揚性であり、したがって、遠心分離の終了時に、勾配のより上の層には主にＨＤＬが含まれ、底部の層には他の血漿タンパク質が残る。この連続的密度勾配超遠心分離手順は、ＨＤＬの単離のための「究極的基準」である。しかしながら、両方の超遠心分離ステップに必要とされる長い時間及び複数の密度調整の必要性は、明らかにこの手順の処理量を制限する。
【発明の概要】
【０００４】
本発明は、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド（例えば、ＡｐｏＡ１の一部分）及びアフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を使用して、試料（例えば、血液試料）からＨＤＬ分子を精製するための方法、キット及び組成物を提供する。特定の実施形態において、そのようなＨＤＬ精製は急速であり（例えば、１時間以内）、かつ少なくとも１つの心臓血管リスク因子（例えば、コレステロール値、ＡｐｏＡ１の酸化状態など）の決定を可能にする。本発明は、断片化されていないＡｐｏＡ１を検出するための方法、キット及び組成物も提供する。さらに本発明は、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子対未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の比率が決定され得るように、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子によって試料中のＨＤＬ分子にタグ化するための方法、キット及び組成物を提供する。
【０００５】
いくつかの実施形態において、ａ）それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア及びｉｉ）複数の
ＨＤＬリポタンパク質を含むＨＤＬ分子（例えば、成熟ＨＤＬ分子）と、非ＨＤＬ生体分子との集団を含有する初期試料（例えば、ＡｐｏＢ／ＬＤＬが減損したか、または減損していない試料）を、それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子の集団と混合して、混合試料を生成すること；ｂ）ＨＤＬタグ化分子の少なくともいくつかがＨＤＬ分子の少なくともいくつかと結合し、それによってタグ化ＨＤＬ分子の集団が生成されるように、混合試料をインキュベーションすること；ならびにｃ）精製された試料を生成するために、タグ化ＨＤＬ分子の集団の少なくとも一部を非ＨＤＬ生体分子（及び非タグ化ＨＤＬ分子）から分離させて精製することであって、アフィニティタグに対して特異的な捕捉分子の集団に混合試料を接触させることを含む、精製すること；を含む、精製された試料の生成方法が提供される。
【０００６】
特定の実施形態において、ＨＤＬタグ化分子は、タグ化ＡｐｏＡ１分子対非タグ化ＡｐｏＡ１分子の比率が約１：１０〜１０：１、１：５〜４：１、または約１：３〜３：１、または約１：２〜２：１、または約１：１であるように初期試料に添加される。特定の実施形態において、初期試料は血清試料であり、そして血清試料に添加されるＨＤＬタグ化分子の量は、血清試料１ｍｌあたり約０．１ｍｇ〜４ｍｇ、または血清試料１ｍｌあたり約０．５ｍｇ〜２ｍｇ、または血清試料１ｍｌあたり約１ｍｇである。
【０００７】
いくつかの実施形態において、ａ）ｉ）ＨＤＬと結合可能なＡｐｏＡ１またはＡｐｏＡ１模倣物の少なくとも一部及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子の集団；ならびにｂ）非タグ化野生型ＡｐｏＡ１分子の集団を含む組成物であって、上記組成物中に存在する上記ＨＤＬタグ化分子対上記非タグ化分子の比率が１：２〜２：１である組成物が提供される。
【０００８】
特定の実施形態において、組成物は、ヒト血清、全血、血漿または再構成ＨＤＬ試料をさらに含む。さらなる実施形態において、ヒト血清は、非ＬＤＬ減損ヒト血清、全血または血漿である。他の実施形態において、アフィニティタグは不対電子を含有しない。追加的な実施形態において、非タグ化野生型ＡｐｏＡ１分子はＨＤＬ分子の一部である。
【０００９】
いくつかの実施形態において、ａ）非ＬＤＬ減損血液、血漿または血清試料；ならびにｂ）それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子の集団を含む組成物が提供される。特定の実施形態において、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドは、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含み、かつ上記非ＬＤＬ減損血液、血漿または血清試料は、非タグ化ＡｐｏＡ１分子を含む。追加的な実施形態において、ＨＤＬタグ化分子は、上記ＨＤＬタグ化分子対上記非タグ化ＡｐｏＡ１分子の比率が上記組成物中で１：２〜２：１であるように、上記非ＬＤＬ減損血液、血漿または血清試料中に存在する。
【００１０】
いくつかの実施形態において、ａ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド、及びｂ）不対電子を含有しないアフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を含む組成物が提供される。
【００１１】
特定の実施形態において、ａ）ｉ）ＨＤＬ親油性コア及びｉｉ）複数のＨＤＬリポタンパク質を含むＨＤＬ分子、ならびにｂ）ｉ）ＨＤＬ親油性コアに結合するＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）不対電子を含有しないアフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を含むタグ化ＨＤＬ分子を含む組成物が提供される。
【００１２】
さらなる実施形態において、ａ）ｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子、ならびにｂ）アフィニティタグに対して特異的である捕捉分子の集団を含む組成物が提供される。
【００１３】
特定の実施形態において、ａ）ｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子、ならびにｂ）アフィニティタグに対して特異的である捕捉分子の集団を含むキット及び系が提供される。特定の実施形態において、ＨＤＬタグ化分子は第１の容器中にあり、捕捉分子の集団は第２の容器中にある。
【００１４】
特定の実施形態において、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドは、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含む。特定の実施形態において、親油性コア結合ペプチドは、ヒトＡｐｏＡ１のアミノ酸残基１８８〜２４３などのヒトＡｐｏＡ１の一部を含む。他の実施形態において、それぞれのＨＤＬ分子中の複数のＨＤＬリポタンパク質は第１及び第２の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質を含み、かつタグ化ＨＤＬ分子がＨＤＬ分子に結合する時、ＨＤＬタグ化分子の少なくとも１つが、それぞれのＨＤＬ分子中の第１の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質と置き換わる（または第１及び第２の未変性ＡｐｏＡ１分子と一緒に親油性コアに結合する）。さらなる実施形態において、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドは、ＡｐｏＡ１またはＡｐｏＡ１模倣物の少なくとも一部を含む。
【００１５】
さらなる実施形態において、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドは、アポリポタンパク質Ａ−ＩＩ（ＡｐｏＡ２）（例えば、ヒトＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含む。追加的な実施形態において、ＨＤＬ親油性中コア結合ペプチドは、ＡｐｏＡ２またはＡｐｏＡ２模倣物の少なくとも一部分を含む。特定の実施形態において、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドは、アポリポタンパク質Ｅ（ＡｐｏＥ）（例えば、ヒトＡｐｏＥ）のＨＤＬ結合領域を含む。追加的な実施形態において、ＨＤＬ親油性中コア結合ペプチドは、ＡｐｏＥまたはＡｐｏＥ模倣物の少なくとも一部分を含む。
【００１６】
特定の実施形態において、アフィニティタグは不対電子を含有しない（例えば、アフィニティタグはスピン標識として機能することができない）。他の実施形態において、アフィニティタグは、ＡｖｉＴａｇ、カルモデュリン−タグ、ポリグルタメートタグ、ＦＬＡＧ−タグ、ＨＡ−タグ、Ｈｉｓ−タグ、Ｍｙｃ−タグ、Ｓ−タグ、ＳＢＰ−タグ、Ｓｏｆｔａｇ１、Ｓｏｔｆｔａｇ３、Ｓｔｒｅｐ−タグ、ＴＣ−タグ、Ｖ５タグ、Ｘｐｒｅｓｓタグ、Ｉｓｏｐｅｐｔａｇ及びＳｐｙＴａｇからなる群から選択されるペプチドタグを含む。特定の実施形態において、アフィニティタグはクリック化学をベースとするタグである。追加的な実施形態において、捕捉分子は、抗体、ストレプトアビジン、カルモデュリン、ニッケルキレート及びコバルトキレートからなる群から選択される。さらなる実施形態において、捕捉分子は固体支持体に結合されている。追加的な実施形態において、固体支持体は、ビーズ、アフィニティカラム、スライドまたは他の有用な固体支持体から選択される。
【００１７】
特定の実施形態において、初期試料は、血液試料、血清試料、血漿試料または他の生物学的流体（例えば、尿）である。特定の実施形態において、初期試料は、ほ乳類（例えば、イヌ、ネコ、ウマ、ブタまたは他の家畜）由来である。特定の実施形態において、第１の試料は、ヒト（心臓血管疾患のリスクがあるか、または心臓血管疾患を有するヒト）由来である。特定の実施形態において、初期試料はＬＤＬ粒子が減損している。
【００１８】
特定の実施形態において、精製された試料の全てのタンパク質の少なくとも９０％（例えば、少なくとも９０％、９４％、９８％、９９％または少なくとも９９．９％）がＨＤＬリポタンパク質である。いくつかの実施形態において、精製された試料の全てのタンパク質の１０％未満（例えば、１０％、５％、１％、０．２％未満）が非ＨＤＬリポタンパク質である。特定の実施形態において、非ＨＤＬリポタンパク質は主に、または完全に血清アルブミンである。他の実施形態において、この方法によって、１時間以内（例えば、１時間、４５分、３７分、３０分、２１分、１５分または１０分以内）に初期試料から精製された試料が生成される。
【００１９】
特定の実施形態において、この方法は、タグ化ＨＤＬ分子の集団の少なくとも１つの特徴を決定するために、精製された試料を分析することをさらに含む。特定の実施形態において、少なくとも１つの特徴は、タグ化ＨＤＬ分子の集団に存在するコレステロールのレベルを含む。他の実施形態において、タグ化ＨＤＬ分子は、少なくとも１つの未変性ＡｐｏＡ１タンパク質を含み、かつ少なくとも１つの特徴は、未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の酸化状態を決定することを含む。特定の実施形態において、未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の酸化状態は（例えば、未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の次のチロシンアミノ酸残基：２９、１６６、１９２及び２３６の１つにおいて）決定される。さらなる実施形態において、質量分析法（ＭＳ）、クロマトグラフィ、ＬＣ−ＭＳ、プラズモン共鳴、ならびにポリビニルスルホン酸（ＰＶＳ）及びポリエチレン−グリコール−メチルエーテル（ＰＥＧＭＥ）の使用を含むアッセイからなる群から選択される技術を用いて分析が実行される。特定の実施形態において、単離されたＨＤＬ分子からの未変性ＡｐｏＡ１は（例えば、質量分析法によって）定量化される。
【００２０】
特定の実施形態において、タグ化ＨＤＬ分子の集団の少なくとも１つの特徴は、被験者の心臓血管疾患リスクマーカーであり、これは被験者の心臓血管疾患の診断及び／または治療のために使用される。特定の実施形態において、心臓血管疾患マーカーは、被験者のＨＤＬ−ｃレベルを含む。さらなる実施形態において、治療は、被験者への心臓血管関連治療（例えば、スタチン、ＡＣＥ阻害剤、アルドステロン阻害剤、アンジオテンシンＩＩ受容体遮断剤、ベータ遮断剤、カルシウムチャネル遮断剤、コレステロール低下剤、ジゴキシン、利尿剤、カリウム、マグネシウム、血管拡張剤またはワルファリン）の実施、あるいはライフスタイル変更の推奨を含む。
【００２１】
特定の実施形態において、断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質に関する質量スペクトルレポート（例えば、電子レポート、紙レポートなど）が作成されるように、実質的に精製された断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質を含む試料に質量分析を行うことを含む方法が提供される。
【００２２】
特定の実施形態において、質量分析は、少なくとも５０００（例えば、少なくとも５０００、６０００、１０，０００、１５、０００、２５，０００、３０，０００、３５，０００またはそれ以上）の半値全幅（ＦＷＨＭ）の分解能で行なわれる。いくつかの実施形態において、断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質の少なくとも一部分は、心臓血管疾患リスクの増加と関連する少なくとも１種の変性アミノ酸（例えば、少なくとも１、２、３、４種またはそれ以上の変性アミノ酸）を含む。特定の実施形態において、スペクトルレポートは、少なくとも１種の変性アミノ酸を含む、断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質の部分に関するスペクトルを含む。さらなる実施形態において、変性アミノ酸は、変性チロシン、変性トリプトファン及び変性メチオニンからなる群から選択される。他の実施形態において、変性チロシンは、２９、１６６、１９２及び２３６からなる群から選択されるＡｐｏＡ１内の位置にある。特定の実施形態において、変性メチオニンは、８６、１１２及び１４８からなる群から選択されるＡｐｏＡ１内の位置にある。特定の実施形態において、試料は被験者からのものであり、かつこの方法は、次の行為：ｉ）被験者または被験者の主治医に、被験者の心臓血管疾患（ＣＶＤ）リスクが増加していることを通知すること；ｉｉ）被験者または被験者の主治医に質量スペクトルレポートを提供すること；ｉｉｉ）被験者にＣＶＤ関連治療を推薦、処方または実施すること；ならびにｉｖ）被験者にＣＶＤリスク検出に関連する経過観察試験を推薦、処方または実施することの少なくとも１つをさらに含む。
【００２３】
特定の実施形態において、ａ）実質的にＨＤＬ会合リン脂質を含まず、かつ断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質を含む精製されたＡｐｏＡ１試料が生成されるように、Ｈ
ＤＬ分子を含む精製されたＨＤＬ試料にクロマトグラフィを実行すること；及びｂ）断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質に関する質量スペクトルレポートが作成されるように、精製されたＡｐｏＡ１試料に質量分析を実行することを含む方法が提供される。
【００２４】
さらなる実施形態において、本明細書に記載の方法によって（例えば、ＨＤＬタグ化分子を使用して）、精製されたＨＤＬが作成される。さらなる実施形態において、ＨＤＬ分子は、ｉ）断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質及びｉｉ）ＨＤＬタグ化分子を含み、ＨＤＬタグ化分子は、Ａ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びＢ）アフィニティタグを含む。さらなる実施形態において、ステップａ）の実行及びステップｂ）の実行は、クロマトグラフィ及び質量分析の両方を行なうデバイスに精製されたＨＤＬ分析試料を注入することによって達成される。いくつかの実施形態において、デバイスは、液体クロマトグラフィ−質量分析（ＬＣ／ＭＳ）機である。追加的な実施形態において、質量分析は、少なくとも５０００の半値全幅（ＦＷＨＭ）の分解能で行なわれる。
【００２５】
追加的な実施形態において、断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質の少なくとも一部分は、心臓血管疾患リスクの増加に関連する少なくとも１種の変性アミノ酸を含む。他の実施形態において、最大スペクトルレポートは、少なくとも１種の変性アミノ酸を含む断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質の部分のスペクトルを含む。他の実施形態において、変性アミノ酸は、変性チロシン、変性トリプトファン及び変性メチオニンからなる群から選択される。追加的な実施形態において、変性チロシンは、２９、１６６、１９２及び２３６からなる群から選択されるＡｐｏＡ１内の位置にある。さらなる実施形態において、変性メチオニンは、８６、１１２及び１４８からなる群から選択されるＡｐｏＡ１内の位置にある。他の実施形態において、試料は被験者からのものであり、かつこの方法は、次の行為：ｉ）被験者または被験者の主治医に、被験者の心臓血管疾患（ＣＶＤ）リスクが増加していることを通知すること；ｉｉ）被験者または被験者の主治医に質量スペクトルレポートを提供すること；ｉｉｉ）被験者にＣＶＤ関連治療を推薦、処方または実施すること；ならびにｉｖ）被験者にＣＶＤリスク検出に関連する経過観察試験を推薦、処方または実施することの少なくとも１つをさらに含む。
【００２６】
いくつかの実施形態において、ａ）質量分析計を含むデバイス及びｂ）ＨＤＬ分子を含む精製されたＨＤＬ試料を含む系であって、上記ＨＤＬ分子が、ｉ）断片化されていないＡｐｏＡ１タンパク質ならびにｉｉ）それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を含む系が提供される。
【００２７】
特定の実施形態において、ａ）それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア及びｉｉ）複数の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質を含むＨＤＬ分子と、非ＨＤＬ生体分子との集団を含有する初期試料を、ＡｐｏＡ１タンパク質、ＡｐｏＡ１タンパク質断片、ＡｐｏＡ１タンパク質変体及びＡｐｏＡ１模倣物から選択される検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子の集団と混合して、混合試料を生成すること；ｂ）上記ＡｐｏＡ１分子の少なくともいくつかが上記ＨＤＬ分子の少なくともいくつかと結合し、それによって標識化されたＨＤＬ分子の集団が生成されるように、上記混合試料をインキュベーションすること；ｃ）タグ化ＨＤＬ分子の上記集団の少なくとも一部を精製して非ＨＤＬ生体分子から分離し、上記標識化されたＨＤＬ分子を含む精製された試料を生成すること；ならびにｄ）検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子対上記未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の比率を決定するために、上記精製された試料を分析することを含む方法が提供される。特定の実施形態において、上記比率は、試料中のＨＤＬの逆コレステロール輸送能力を決定するために使用される。
【００２８】
特定の実施形態において、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子は、放射性標識化原子を含む。他の実施形態において、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子は、検出可能な標識を含む。さらなる実施形態において、検出可能な標識は、蛍光標識、アフィニティ
タグ、化学発光標識、抗体標識または酵素標識から選択される。さらなる実施形態において、上記精製された試料を分析することは、質量分析を含む方法によって行なわれる。
【００２９】
特定の実施形態において、本明細書に記載されたアフィニティタグ精製方法によって捕捉されたＨＤＬの量は、試料中のＨＤＬの逆コレステロール輸送能力の代理として使用される比率を決定するために、初期試料中のＨＤＬの総量と比較される。全ＨＤＬの決定は、ＨＤＬコレステロールを測定することによって実行することができ、これは一般に、リポタンパク質ＡｐｏＢを含有するＬＤＬコレステロール粒子の血清試料を「クリアにする」ために特定の順序で添加される選択された試薬を使用する「均質」分析を使用して行なわれる。その後、ＨＤＬコレステロールは、従来の酵素結合アッセイを使用して化学的に決定される。全ＨＤＬの測定は、ＨＤＬ粒子単離の物理的な方法、典型的に超遠心分離を利用して行なうことも可能である（例えば、参照によって本明細書に組み込まれるＷａｒｎｉｃｋら，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ  ２００１  ｖｏｌ．４７  ｎｏ．９  １５７９−１５９６）。
【００３０】
いくつかの実施形態において、本明細書に記載のアフィニティタグ精製方法によって捕捉された未変性ＡｐｏＡ１の量は、試料中のＨＤＬ逆コレステロール輸送能力の代理として使用される比率を決定するために初期試料中の未変性ＡｐｏＡ１の総量と比較される。ＡｐｏＡ１は、それぞれのＨＤＬ粒子の主要リポタンパク質成分である。これまではＡｐｏＡ１ではなくＨＤＬコレステロールの決定が、心臓血管のリスク評価の頼みの綱であったが、この見解は、ＡｐｏＡ１の決定が亜臨床的なアテローム性動脈硬化症の識別において有益性を有するものとして変わってきている（参照によって本明細書に組み込まれるＦｌｏｒｖａｌｌら，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｇｅｒｏｎｔｏｌｏｇｙ：ＢＩＯＬＯＧＩＣＡＬ  ＳＣＩＥＮＣＥＳ  ２００６，Ｖｏｌ．６１Ａ，Ｎｏ．１２，１２６２-１２６６
）。全ＡｐｏＡ１は、典型的に、広範囲に利用可能な免疫検定プラットホームアッセイを使用して測定される。
【図面の簡単な説明】
【００３１】
【図１】実施例１の方法によって単離された場合のＡｐｏＡ１（主要ＨＤＬ会合タンパク質）及び血清アルブミンの存在度を示す。図１Ｂは、血清からＡｐｏＡ１を精製するために超遠心分離が使用された場合のＡｐｏＡ１及び血清アルブミンの存在度を示す。
【図２】１）Ｌａｄｄｅｒ；２）血清（１：５０希釈）；３）Ｎｉ−ＮＴＡ  ＨＤＬ調製物（１０ｕｌ）；４）ＵＣ  ＨＤＬ調製物（１０ｕｌ）；及び５）ＡｐｏＡ１（ヒトから精製された、５ｕｇ）を含む、実施例１からの種々の調製物のＳＤＳ  ｐａｇｅを示す。
【図３】インタクトＡｐｏＡ１の代表的な質量分析スペクトルを示す。この図中、８７８、８５１及び８２６のそれぞれの公称ｍ／ｚ値における電荷状態３２、３３及び３４が最も強いシグナルを提供する。
【図４】図４Ａ〜Ｃは、ＡｐｏＡ１及びＡｐｏＡ１単一酸化のインタクトな検出の結果を示す。特に、図４Ａは、１０００の公称分解能で操作された質量分析計を使用して、＋３５電荷状態（＋Ｈ付加物）の未変性及び酸化型のＡｐｏＡ１の理論分解能を示す。不十分な分解能による２つの形態間のシグナルの重複が示される。図４Ｂは、２０００の公称分解能で操作された質量分析計を使用して、＋３５電荷状態（＋Ｈ付加物）の未変性及び酸化型のＡｐｏＡ１の理論分解能を示す。不十分な分解能による２つの形態間のシグナルの重複が示される。図４Ｃは、１００００の公称分解能で操作された質量分析計を使用して、＋３５電荷状態（＋Ｈ付加物）の未変性及び酸化型のＡｐｏＡ１の理論分解能を示す。この実施例において、ピークは互いから完全に分解される。
【図５】図５Ａ及び５Ｂは、約２５００ＦＷＨＭの公称分解能で操作された低分解能イオントラップ（図５Ａ）において回収されたＡｐｏＡ１及びＡｐｏＡ１酸化型の＋３５酸化状態のデータを示し、一方、一番下のパネル（図５Ｂ）は、＞３０，０００ＦＷＨＭの公称分解能におけるｑＴＯＦ計器操作の回収された同試料を示す。
【図６】特定シグナルをフィルタリングすることによって、ＨＤＬタンパク質の混合物からの質量スペクトルデータ、ＡｐｏＡ１及び血清アルブミンの特定シグナルをどのように選択的に抽出することができるかを示す。一番上のパネル（図６Ａ）は、クロマトグラフィ実行間の質量分析計において観察された全シグナルを示す。中央パネル（図６Ｂ）は、ｍ／ｚ８０３．３８における＋３５電荷状態のデータをフィルタリングすることによって誘導されたＡｐｏＡ１シグナルを示す。一番下のパネル（図６Ｃ）は、ｍ／ｚ１２３１における＋５４電荷状態から誘導された汚染物質の血清アルブミンを示す。
【図７】ＬＤＬ減損／非減損ニート血清におけるタグ化ＡｐｏＡ１及び未変性ＨＤＬ会合タンパク質の回収を示す棒グラフを示す。
【図８】タグ化ＡｐｏＡ１対未変性ＡｐｏＡ１の比率増加を使用する血清から精製されたＨＤＬにおけるタグ化ＡｐｏＡ１及び未変性ＨＤＬ会合タンパク質の回収を示す棒グラフを示す。
【図９】図９Ａ及び９Ｂは、Ａ）ポジティブコントロールに加えて、２つの患者試料の急速精製されたＨＤＬにおけるｍｉＲＮＡ−２２３及びｍｉＲＮＡ−１６（内在性コントロール）のＲＴ−ＰＣＲを示す増幅曲線、ならびにＢ）増幅されたｍｉＲＮＡ−２２３の比存在度を示す棒グラフを示す。
【図１０】図１０Ａ及び１０Ｂは、同一試料からのヒト血清（Ａ）及び急速精製されたＨＤＬ（Ｂ）の粒子プロフィール分析を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３２】
定義
本明細書で使用される場合、「高密度リポタンパク質」または「ＨＤＬ」は、コレステロール及びトリグリセリドなどの脂質が水性の血流中で輸送されることを可能にする両親媒性タンパク質の循環する非共有結合性集合体である。ＨＤＬは、遊離コレステロール（約４％）ならびにトリグリセリド（約３％）及びコレステロールエステル（約１２％）の核が埋め込まれたリン脂質単膜（約２５％）によって構成される脂質エマルジョンを安定させる約５０質量％の両親媒性タンパク質から構成される。ＨＤＬのサブクラスにはＨＤＬ２及びＨＤＬ３が含まれる。ＨＤＬ２粒子はより大きく、かつより高い脂質の含有量を含むが、ＨＤＬ３粒子はより小さく、かつより少ない脂質を含む。さらなるサブクラスには、最大粒子から最小粒子まで、ＨＤＬ２ｂ、ＨＤＬ２ａ、ＨＤＬ３ａ、ＨＤＬ３ｂ及びＨＤＬ３ｃが含まれる。
【００３３】
本明細書で使用される場合、「リポタンパク質」は、１個またはそれ以上の脂質分子が結合しているか、または結合可能であるタンパク質の種類を指す。いくつかの場合、リポタンパク質は、４個以下のリン脂質分子が結合する「脂質が乏しいリポタンパク質」であっても良い。本明細書で使用される場合、リポタンパク質には、脂質が結合しないが、ＨＤＬ粒子において交換可能であるタンパク質（例えば、アポリポタンパク質）が含まれる。
【００３４】
本明細書で使用される場合、「試料」は、試験されるより大きい全体の一部分を指す。試料には、限定されないが、血液、脳脊髄液、尿、だ液などの体液が含まれる。
【００３５】
本明細書で使用される場合、「血液試料」は、全血液試料、あるいはそれから誘導される血漿または血清画分を指す。特定の実施形態において、血液試料は、全血液試料、あるいはそれから誘導される血漿または血清画分などのヒトの血液試料を指す。いくつかの実施形態において、血液試料は、全血液試料、あるいはそれから誘導される血漿または血清画分などのヒト以外のほ乳類（「動物」）の血液試料を指す。
【００３６】
本明細書で使用される場合、「全血液」という用語は、分画されておらず、かつ細胞及
び流体成分の両方を含有する血液試料を指す。
【００３７】
本明細書で使用される場合、「血漿」は、全血液の流体、非細胞成分を指す。使用される分離方法次第で、血漿は細胞成分を完全に含み得ないか、あるいは様々な量の血小板及び／または少量の他の細胞成分を含有し得る。血漿はフィブリノゲンなどの種々の凝固因子を含むため、「血漿」という用語は、下記で明らかにされる「血清」から識別される。
【００３８】
本明細書で使用される場合、「血清」という用語は、例えば、全ヒト血清、試験動物から誘導された全血清、ペットから誘導された全血清、家畜から誘導された全血清などの全ほ乳動物血清を指す。さらに本明細書で使用される場合、「血清」は、凝固因子（例えば、フィブリノゲン）が除去された血漿を指す。
【００３９】
詳細な説明
本発明は、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド（例えば、ＡｐｏＡ１の一部分）及びアフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子を使用して、試料（例えば、血液試料）からＨＤＬ分子を精製するための方法、キット及び組成物を提供する。特定の実施形態において、そのようなＨＤＬ精製は急速であり（例えば、１時間以内）、かつ少なくとも１つの心臓血管リスク因子（例えば、コレステロール値、ＡｐｏＡ１の酸化状態など）の決定を可能にする。本発明は、ＡｐｏＡ１を断片化せずに質量分析によって全長ＡｐｏＡ１を検出するための方法、キット及び組成物も提供する。さらに本発明は、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子対未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の比率が決定され得るように、検出可能に標識化されたＡｐｏＡ１分子によって試料中のＨＤＬ分子にタグ化するための方法、キット及び組成物を提供する。
【００４０】
Ｉ．ＨＤＬタグ化分子
特定の実施形態において、本発明は、ＨＤＬ分子にアフィニティタグを追加するためにＨＤＬタグ化分子を使用する。ＨＤＬタグ化分子は、それぞれ、ｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含む。
【００４１】
Ａ．ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド
ＨＤＬタグ化分子のＨＤＬ親油性コア結合ペプチド成分は、ＨＤＬ分子（例えば、成熟ＨＤＬ分子）に結合可能であり、かつアフィニティタグに結合可能であるいずれの種類の分子であっても良い。そのような結合ペプチドは、例えば、ＡｐｏＡ−Ｉ、ＡｐｏＡ−ＩＩ及びＡｐｏＥの少なくとも脂質結合部分を含み得る。
【００４２】
ＡｐｏＡ−Ｉは、ＨＤＬの主成分であるリポタンパク質である。ａｐｏＡ−Ｉタンパク質の一例は、ヒトａｐｏＡ−Ｉタンパク質（例えば、受託番号ＮＭ＿００００３９．１）である。ヒトａｐｏＡ−Ｉタンパク質の他の例は、ＡｐｏＡ−１ミラノタンパク質及びａｐｏＡ−Ｉｏｗａタンパク質である。この用語は、ヒト以外のほ乳類、例えば、マウス、ラット、ウサギ、イヌ、ブタ、ヒト以外の霊長類などからのａｐｏＡ−Ｉタンパク質も含む。ａｐｏＡ−Ｉの相同体も用語ａｐｏＡ−Ｉに含まれる。特定の実施形態において、ＨＤＬコア結合ペプチドは、ＡｐｏＡ１の脂質結合部分を含む。
【００４３】
ＡｐｏＡ−ＩＩは、ＨＤＬの２番目に高い存在度のリポタンパク質である。ＡｐｏＡ−ＩＩタンパク質の一例は、ヒトＡｐｏＡ−ＩＩタンパク質（例えば、ＮＰ＿００１６３４）タンパク質である。この用語は、ヒト以外のほ乳類、例えば、マウス、ラット、ウサギ、イヌ、ブタ、ヒト以外の霊長類などからのＡｐｏＡ−ＩＩタンパク質も含む。特定の実施形態において、ＨＤＬ結合ペプチドは、ＡｐｏＡＩＩの脂質結合部分を含む。
【００４４】
ＡｐｏＥは、脂質代謝及びコレステロール輸送に関与するリポタンパク質を指す。ａｐ
ｏＥタンパク質の一例は、ヒトＡｐｏＥタンパク質（例えば、ＮＭ＿００００４１．２）タンパク質である。ヒトａｐｏＥタンパク質には３種のイソ型、ＡｐｏＥ２、ＡｐｏＥ３、ＡｐｏＥ４が存在する。ＡｐｏＥ３はａｐｏＥの主要形態であるが、ａｐｏＥ２及びａｐｏＥ４は、リポタンパク質粒子（ＨＤＬ、ＬＤＬ、ＶＬＤＬ）の間で別の分布を示す。この用語は、ヒト以外のほ乳類、例えば、マウス、ラット、ウサギ、イヌ、ブタ、ヒト以外の霊長類などからのａｐｏＥタンパク質も含む。特定の実施形態において、ＨＤＬ結合ペプチドは、ＡｐｏＥの脂質結合部分を含む。
【００４５】
特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１タンパク質、断片、模倣物は、ＨＤＬ脂質結合ペプチド、特にＨＤＬを結合可能なＡｐｏＡ１の部分において使用される。ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合部分は、例えば、参照によって本明細書に組み込まれるＭｕｒｐｈｙ  ＩＳＲＮ
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，２０１３、記事ＩＤ  １８６３６５に記載される）。ＡｐｏＡ１は、全長ヒトＡｐｏＡ１ペプチド、あるいはそれらの断片または分域（例えば、クラスＡ両親媒性ヘリックスを含む）を含むことができる。特定の実施形態において、ＨＤＬ結合ペプチドは、ＡｐｏＡ１模倣物またはその断片を含む。ＡｐｏＡ１模倣物には、例えば、当該技術において既知のＡｐｏＡ１の自然変体が含まれる。例えば、Ｗｅｉｓｇｒａｂｅｒらは、ＡｐｏＡ１−Ｍｉｌａｎｏと呼ばれる変異体ＡｐｏＡ１の１７３位のアルギニンにシステインが置換可能であることを示した（Ｗｅｉｓｇｒａｂｅｒら（１９８３）  Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５８：２５０８−２５１３、参照によって本明細書に組み込まれる）。ＡｐｏＡ１ポリペプチド模倣物は、例えば、アポリポタンパク質Ａ−１（Ｂｒｅｗｅｒら（１９７８年））、アポリポタンパク質Ａ−１  Ｍｉｌａｎｏ（Ｗｅｉｓｇｒａｂｅｒ（１９８３年））、アポリポタンパク質Ａ−１  Ｐａｒｉｓ（Ｂｉｅｌｉｃｋｉ及びＯｄａ（２００２年）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ４１：２０８９−２０９６）、プロアポリポタンパク質Ａ−１、あるいは合成されたか、または天然由来であるかにかかわらず当該技術において既知のＡｐｏＡ１の他のいずれの変異体も含む、ＡｐｏＡ１型及び変体からのポリペプチドを含むことができる。
【００４６】
特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合領域は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸１〜４３、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸５〜３８、あるいはそのような配列のＨＤＬ結合能力を破壊することなく１個または２個のアミノ酸が削除または変更されたことを除いて、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸１〜４３を含む。他の実施形態において、ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合領域は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸２２０〜２４１もしくは２１０〜２４１、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸２２３〜２３８、あるいはそのような配列のＨＤＬ結合能力を破壊することなく１個または２個のアミノ酸が削除または変更されたことを除いて、２２０〜２４１を含む。特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合領域は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸４４〜６５、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸４７〜６２、あるいはそのような配列のＨＤＬ結合能力を破壊することなく１個または２個のアミノ酸が削除または変更されたことを除いて、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸４４〜６５を含む。特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合領域は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸１〜４３及び２２０〜２４１、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸５〜３８及び２２３〜２３８、あるいはそのような配列のＨＤＬ結合能力を破壊することなく１個または２個のアミノ酸が削除または変更されたことを除いて、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸１〜４３及び２２０〜２４１を含む。特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合領域は、ＳＥＱ
ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸１〜４３及び／もしくは２２０〜２４１及び／もしくは４４〜６５、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸５〜３８及び／もしくは２２３〜２３８及び／もしくは４７〜６２、あるいはそのような配列のＨＤＬ結合能力を破壊することなく１個または２個のアミノ酸が削除または変更されたことを除いて、そのようなアミノ酸配列を含む。ヒトＡｐｏＡ１（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１）の様々なＨＤＬ結合領域については、特にＡｐｏＡ１の配列及びそれらのＨＤＬ結合領域に関連して、両方とも参照に
よって本明細書に組み込まれるＦｒａｎｋ及びＭａｒｃｅｌ，２０００，Ｊ．Ｌｉｐｉｄ
Ｒｅｓ．，４１：８５３−８７２、ならびにＴａｎａｋａ，Ｊ．Ｐｅｐｔ．Ｓｃｉ．，２００９，１５（１）：３６−４２に記載されている。Ｆｒａｎｋ及びＭａｒｃｅｌの図１も、特に参照によって組み込まれる。この図は、ヒヒ、イヌ、ブタ、ウサギ、ウシ、ハリネズミ、マウス、ラット、ニワトリ、カモ及びサケのＡｐｏａ１配列を示す。この図によって、ヒト配列の１〜４３、２２０〜２４１及び４４〜６５に相当するこれらの種におけるＨＤＬ結合領域を決定することが可能となる。そのような配列は、本明細書の特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１のＨＤＬ結合領域として考えられる。当業者は、ＡｐｏＡ１の特定の配列（例えば、１個またはそれ以上のアミノ酸の変更を含む）が、（例えば、候補のＨＤＬ結合配列によってそのような実験を再実行することによって）ＨＤＬに結合するかどうかを決定するために、Ｆｒａｎｋ及びＭａｒｃｅｌ、Ｔａｎａｋａらに記載の方法ならびに以下の実施例を利用することができる。
【００４７】
変更されても良いアミノ酸は、ＨＤＬリポタンパク質を結合する能力を破壊しないＡｐｏＡ１、ＡｐｏＡ２及びＡｐｏＥまたはその断片である。そのような変体は、例えば、以下の実施例で記載されるアッセイを使用して、提案された変体を分析し、ＨＤＬに結合することを試験することによって識別され得る。アミノ酸置換は、一般に、アミノ酸側鎖置換基の相対的類似、例えば、それらの疎水性、親水性、電荷、サイズなどに基づく。アミノ酸側鎖置換基のサイズ、形状及び種類の分析によって、アルギニン、リシン及びヒスチジンは全て陽性荷電残基であること、アラニン、グリシン及びセリンは全て類似サイズであることが明らかとなる。したがって、これらの考察に基づいて、アルギニン、リシン及びヒスチジン；アラニン、グリシン及びセリンが、本明細書中、生物学的機能性等価物として定義される。Ａｌｔｏｎらによって発表された出願（ＷＯ８３／０４０５３号、参照によって本明細書に組み込まれる）で記載された手順に従って、１個またはそれ以上の残基の同一性または位置に関して、本明細書に明示されたものとは異なる一次構造配座（例えば、置換、末端及び中間追加及び削除）を有するポリペプチドの微生物発現の遺伝子コードを容易に設計及び製造することができる。あるいは、ｃＤＮＡ及びゲノム遺伝子の変性は周知の部位特異的突然変異誘発技術によって容易に達成され得、そしてＡｐｏＡ１、ＡｐｏＡ１及びＡｐｏＥの類似体及び誘導体を作成するために利用されてよい。
【００４８】
Ｂ．アフィニティタグ
本発明は、ＨＤＬタグ化分子の一部として使用されるアフィニティタグによって限定されない。このようなタグの例には、限定されないが、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、マルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ＡｖｉＴａｇ（酵素ＢｉｒＡによってビオチン化を可能にするペプチド、それによってタンパク質をストレプトアビジンによって単離することができる）、カルモデュリン−タグ（タンパク質カルモデュリンによって結合されるペプチド）、ポリグルタメートタグ（Ｍｏｎｏ−Ｑなどの陰イオン交換樹脂に効率的に結合するペプチド）ＦＬＡＧ−タグ（抗体によって識別されるペプチド）、ＨＡ−タグ（抗体によって識別されるペプチド）、Ｈｉｓタグ（一般にニッケルまたはコバルトキレートによって結合される５〜１０のヒスチジン）、Ｍｙｃ−タグ（抗体によって識別される短ペプチド）、Ｓ−タグ、ＳＢＰ−タグ（ストレプトアビジンに結合するペプチド）、Ｓｏｆｔａｇ１、Ｓｔｒｅｐ−タグ（ストレプトアビジンまたはステレプトアクチンと呼ばれる変性ストレプトアビジンに結合するペプチド）、ＴＣタグ（ＦｌＡｓＨ及びＲｅＡｓＨ双砒素剤化合物によって認識されるテトラシステインタグ）、Ｖ５タグ、Ｘｐｒｅｓｓタグ、Ｉｓｏｐｅｐｔａｇ（ピリン−Ｃタンパク質に共有結合するペプチド）ならびにＳｐｙＴａｇ（ＳｐｙＣａｔｃｈｅｒタンパク質に共有結合するペプチド）が含まれる。特定の実施形態において、タグはクリック化学に基づく。
【００４９】
アフィニティタグは、ＨＤＬリン脂質コア結合ペプチドに直接結合しても良く、または
リンカーなどの介入分子によって分離されても良い。特定の実施形態において、リンカーは、ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドとアフィニティタグとの間に利用される。適切なリンカーの例には、限定されないが、ＰＥＧリンカー、ペプチドリンカー、アルキルまたは置換アルキルリンカーなどが含まれる。いくつかの実施形態において、アフィニティタグ及びＨＤＬ親油性コア結合ペプチドは、直接的に、抱合、係留、融合など（例えば、共有結合によって）される。他の実施形態において、２つの部分は適切なリンカーによって連結される。本発明は、特定のリンカー部分に限定されない。いくつかの実施形態において、リンカーは２つの部分を連結する。いくつかの実施形態において、リンカー部分は２つの部分を共有結合的に連結する。いくつかの実施形態において、リンカー部分は開裂可能（例えば、化学的に開裂可能、酵素開裂可能など）であり、適切な条件（例えば、開裂酵素）に暴露されることによってリンカー部分が開裂し、そして連結部が分離する。いくつかの実施形態において、リンカー部分は、直鎖、分枝鎖、環式、ヘテロ環式、飽和、不飽和またはそれらの種々の組合せである共有結合である。いくつかの実施形態において、リンカーは、Ｃ、Ｎ、Ｐ、Ｏ及びＳの群から選択される１〜１００個の非水素原子（水素原子に加えて）（例えば、１〜７５、１〜５０、１〜４０、１〜３０、１〜２０、１〜１０、１〜５など）を含む。いくつかの実施形態において、リンカーは、アルキル、エーテル、チオエーテル、ポリエーテル、アミン、アルキル、アミド、エステル、カルボキサミド、スルホンアミド、ヒドラジド結合及び芳香族または複素芳香族結合のいずれかの組み合わせを含む。いくつかの実施形態において、リンカーは、ポリマー（例えば、核酸、ポリペプチド、脂質または多糖類）、ペプチドリンカー、変性ペプチドリンカー、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）リンカー、ストレプトアビジン−ビオチンまたはアビジン−ビオチンリンカー、ポリアミノ酸（例えば、ポリリシン）、官能基化ＰＥＧ、多糖類、グリコサミノグリカン、ＷＯ９３／０６８６８号及びＴｏｍａｌｉａらによるＡｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．Ｅｎｇｌ．２９：１３８−１７５（１９９０）に記載の樹状ポリマー、Ｗ９４／０８６２９号、ＷＯ９４／０９０５６号及びＷＯ９６／２６７５４号に記載されるＰＥＧ−キレート剤ポリマー、オリゴヌクレオチドリンカー、リン脂質誘導体、アルケニル鎖、アルキニル鎖、二硫化物またはそれらの適切な組合せを含む。いくつかの実施形態において、リンカー部分は、安定に第１及び第２の部分を結合することが可能ないずれかの共有結合的または非共有結合的分子結合子を含む。
【００５０】
ＩＩ．検出技術
本発明は、（例えば、本明細書に記載の方法で単離した）ＨＤＬ及び／またはＡｐｏＡ１を検出するために使用される方法によって限定されない。
【００５１】
Ａ．検出方法
特定の実施形態において、本明細書に記載の精製方法によって単離したＨＤＬ（及び会合ＡｐｏＡ１）は、以下から選択される検出方法によって検出される：表面プラズモン共鳴、試験管内アッセイ、活性アッセイ、共免疫沈降アッセイ、質量分析、蛍光エネルギー転移（ＦＲＥＴ）、生物発光エネルギー転移（ＢＲＥＴ）、干渉分析、バイオレイヤー干渉分析（ＢＬＩ）、二重偏波干渉分析（「ＤＰＩ」）、楕円偏光法及び水晶振動子マイクロバランス（例えば、全体が参照によって本明細書に組み込まれる米国特許第２０１３００１７５５６号を参照のこと）。
【００５２】
Ｂ．インタクトＡｐｏＡ１の質量分析検出
特定の実施形態において、質量分析によってインタクトＡｐｏＡ１タンパク質（すなわち、分解されていない全長ＡｐｏＡ１）を検出する方法が提供される。野生型タンパク質ＡｐｏＡ１は、特定のアミノ酸配列によってコード化される。この配列は、２４アミノ酸前駆体配列の分離後に機能性タンパク質を表し、以下のＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に示される。
ＤＥＰＰＱＳＰＷＤＲＶＫＤＬＡＴＶＹＶＤＶＬＫＤＳＧＲＤＹＶＳＱＦＥＧＳＡＬＧＫ
ＱＬＮＬＫＬＬＤＮＷＤＳＶＴＳＴＦＳＫＬＲＥＱＬＧＰＶＴＱＥＦＷＤＮＬＥＫＥＴＥＧＬＲＱＥＭＳＫＤＬＥＥＶＫＡＫＶＱＰＹＬＤＤＦＱＫＫＷＱＥＥＭＥＬＹＲＱＫＶＥＰＬＲＡＥＬＱＥＧＡＲＱＫＬＨＥＬＱＥＫＬＳＰＬＧＥＥＭＲＤＲＡＲＡＨＶＤＡＬＲＴＨＬＡＰＹＳＤＥＬＲＱＲＬＡＡＲＬＥＡＬＫＥＮＧＧＡＲＬＡＥＹＨＡＫＡＴＥＨＬＳＴＬＳＥＫＡＫＰＡＬＥＤＬＲＱＧＬＬＰＶＬＥＳＦＫＶＳＦＬＳＡＬＥＥＹＴＫＫＬＮＴＱ（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１）
【００５３】
ＡｐｏＡ１の質量は、配列に基づいてＡｐｏＡ１の原子組成から誘導される。原子式はＣ１２４１Ｈ１９７７Ｎ３４７Ｏ３８９Ｓ３であり、これは２８０７８．２６Ｄａの公称の平均中性質量を与える。
【００５４】
１つの代表的な実施形態において、血清または血漿のインタクトＡｐｏＡ１は、以下の方法による質量分析法によって検出することができる。ＬＣ／ＭＳによる分離及び検出のための調製において、インタクトＡｐｏＡ１タンパク質は、実質的に水性条件（例えば、９４．８％水、５％有機物及び０．２％酸、有機物は典型的にメタノール、アセトニトリルまたはイソプロパノールであり、酸は典型的に酢酸またはギ酸である）の下でＨＰＬＣカラムに注入される。タンパク質の疎水性により、ＡｐｏＡ１タンパク質はカラムに結合し、そして他の塩及び親水性汚染物質は、溶媒の一定の流れの下で押し流される。試料に存在し得る他のタンパク質からＡｐｏＡ１を溶解するために、カラム上の溶媒の流れの組成を調整し、有機変性剤の百分率を増加させる。異なる結合親和性を有するタンパク質を異なる溶媒組成でカラムから溶出することができるように、この変更を、試料あるいは複合線形勾配または連続ステップで調整することができる。ＨＰＬＣカラムからの溶出剤は、いずれかの数の検出器（ＵＶ／Ｖｉｓ、光散乱など）へと転換することができる。ＬＣ／ＭＳによる検出に関して、溶出液は、それらの質量対電荷（ｍ／ｚ）比によって分解することができるように気相イオンの挙動をコントロールすることに基づいて分子を検出する質量分析計に送られる。このプロセスにおける第１ステップは、典型的にエレクトロスプレーイオン化によって生成される気相タンパク質イオンの生成である。このプロセスにおいて、溶媒は、水素イオンがタンパク質に付加したままであることを可能にし、帯電した気相イオンを形成する条件下でタンパク質分子から除去される。電界において、イオンは質量分析計に引き込まれ、それらのｍ／ｚ比によって分解される。多くの分子に関して、ｚは１より高い値を有し、そしてＡｐｏＡ１の完全走査スペクトルが有益である。スペクトルは、スペクトルにおけるそれぞれのピークが、そのシグナルに関して特定の電荷状態（ｚ）のＡｐｏＡ１に一致する集合体である。インタクトＡｐｏＡ１の代表的なスペクトルを図３に示す。
【００５５】
原則として、識別される電荷状態のいずれも、明白な利益／限定を伴ってＡｐｏＡ１を定量化するために使用することができる。代表的な図３において、それぞれ、８７８、８５１及び８２６の公称ｍ／ｚ値における電荷状態３２、３３及び３４は、選択的検出における利用のために最も強いシグナルを提供する。しかしながら、特定の実施形態において、それらのイオンと干渉する他の共溶出分子が存在する場合、最も強いシグナルが常に使われなくても良い。多荷電イオンの電荷状態分布は、移動相組成、熱及び気体流ならびに電界強度を含む多くのパラメータによって変更可能である。加えて、水素以外の付加物も使用することができる。例えば、ナトリウム原子は単一正電荷を有するが、２３Ｄａの質量を有する。電荷状態３２のＡｐｏＡ１が１個のナトリウム及び３１個の陽子付加物を含む場合、公称質量はｍ／ｚ８７９であろう。したがって、特定の実施形態において、クロマトグラフィ溶媒への他のイオン種の添加は、電荷状態分布を変更する有用な方法となる可能性がある。使用されても良い付加物としては、限定されないが、ナトリウム、カリウム、リチウム、アンモニウムが含まれる。
【００５６】
インタクトＡｐｏＡ１の質量分析法検出は、ＡｐｏＡ１の変性（例えば、酸化）変種を
識別するために使用されても良い。特定の実施形態において、変性は、心臓血管疾患検出及びリスク評価に関連する。検出可能なそのような変性には、変性メチオニン（例えば、それはスルホン形成に感応性である）、トリプトファン酸化及びチロシン変性（例えば、チロシン塩素化、ニトロ化または臭素化）が含まれる。チロシンに関して心臓血管疾患のリスクを検出するためのＡｐｏＡ１において最も関連する位置は、２９、１６６、１９２及び２３６位である（例えば、全体として参照により本明細書に組み込まれる米国特許第８，３３８，１１０号を参照のこと）。メチオニンに関して、３つの位置（Ｍｅｔ８６、Ｍｅｔ１１２及びＭｅｔ１４８）が特に関連することが知られており、それら全てが酸化されて、メチオニンをスルホキシド型へ変換させ得る（参照により本明細書に組み込まれるＰａｎｋｈｕｒｓｔら，Ｊ．Ｌｉｐｉｄ  Ｒｅｓ．，４４：３４９−３５５，２００３；Ｓｈａｏら，Ｊ  Ｌｉｐｉｄ  Ｒｅｓ．Ｊｕｌ  ２０１０；５１（７）：１８４９-１
８５８；及びＳｈａｏら，Ｃｈｅｍ  Ｒｅｓ  Ｔｏｘｉｃｏｌ．Ｍａｒ  １５，２０１０；２３（３）：４４７-４５４を参照のこと）。生物学的試料において、このプロセスの
結果は、ＡｐｏＡ１分子の集団が存在し得、スルホキシドの数が０〜３の範囲であることが可能であるということである。集団におけるＡｐｏＡ１の量、及びそれぞれの酸化型からの特定の寄与を明確に決定することが望ましい場合、質量分析計はそれぞれの形態を他と区別するために十分な分解力での操作が可能であるべきである。図４Ａ〜Ｃは、質量分析計の分解力に及ぼす影響を実証する。ＡｐｏＡ１及び単一酸化によるＡｐｏＡ１を使用して、＋３５電荷状態（それぞれ、ｍ／ｚ８０３．３８及び８０３．８４）において、１０００、２０００及び１００００ＦＷＨＭの分解力を有する計器から誘導されたモデル化データを表す。より高い分解力において、重複による、より高い電荷状態へのより低い電荷酸化状態の同位体的寄与は最小にされる。同位体的重複による２％未満の寄与を達成するために、質量分析計は５０００ＦＷＨＭ以上の分解力で操作されるべきである。より低い分解計器の使用は、一般に、重複シグナルの推定及びその後の修正のためのピーク逆重畳積分の使用を必要とするであろう。特定の実施形態において、ＴＯＦまたはＯｒｂｉｔｒａｐなどの高分解能質量分析器が利用され、かつ低分解能イオントラップまたは四重極を使用することが好ましい。図５Ａは、約２５００ＦＷＨＭの公称分解能で操作された低分解能イオントラップ（一番上のパネル、図５Ａ）において回収されたＡｐｏＡ１及びＡｐｏＡ１酸化型の＋３５酸化状態のデータを示す。一番下のパネル（図５Ｂ）は、＞３０，０００ＦＷＨＭの公称分解能におけるｑＴＯＦ計器操作の回収された同試料を示す。
【００５７】
質量分析法は質量によってイオンを分解することが可能であるため、質量分析計において溶出する複合タンパク質混合物は、分解力及び質量差異が十分である場合に分解することができる。選択された質量に特定のクロマトグラムを作成すること（抽出イオンクロマトグラム-ＥＩＣ）によって、その分子に特定的なクロマトグラムをもたらすことができ
る。図６は、特定シグナルをフィルタリングすることによって、ＨＤＬタンパク質の混合物からの質量スペクトルデータ、ＡｐｏＡ１及び血清アルブミンの特定シグナルをどのように選択的に抽出することができるかを示す。一番上のパネル（図６Ａ）は、クロマトグラフィ実行間の質量分析計において観察された全シグナルを示す。中央パネル（図６Ｂ）は、ｍ／ｚ８０３．３８における＋３５電荷状態のデータをフィルタリングすることによって誘導されたＡｐｏＡ１シグナルを示す。一番下のパネル（図６Ｃ）は、ｍ／ｚ１２３１における＋５４電荷状態から誘導された汚染物質の血清アルブミンを示す。
【００５８】
ＩＩＩ．ＨＬＤ、ＡｐｏＡ１及び心臓血管疾患関連性
特定の実施形態において、本明細書に記載のインタクトＡｐｏＡ１（例えば、変性ＡｐｏＡ１）の質量分析検出及び／またはＨＤＬ精製プロトコルを利用して、そのような方法で患者試料を試験することによって、患者の心臓血管疾患（ＣＶＤ）またはＣＶＤのリスクを検出する。
【００５９】
例えば、特定の実施形態において、この方法を利用して、逆コレステロール輸送を支持
するＨＤＬの能力を決定しても良い。逆コレステロール輸送（ＲＣＴ）は、過度のコレステロールを肝外細胞及び組織から取り除くため、ならびにそれによって動脈中のコレステロールの蓄積を減少する排泄のための肝臓への最後の輸送のための１つの経路である。ＲＣＴの評価は、例えば、全体的な心臓血管リスクを推定して、そしてＲＣＴを高めることを目標とする可能な治療の効率を評価するために価値がある。本発明はいずれかの特定のメカニズムに限定されないが、ＡｐｏＡ１交換度は（例えば、タグ化されたか、または他の様式で標識化されたＡｐｏＡ１をＨＤＬを含有する患者試料に添加する場合）、その脂質溶出液及び収容量と直接関連すると考えられる。したがって、特定の実施形態において、遊離ＡｐｏＡ１（例えば、アフィニティタグ化ＡｐｏＡ１）は系に添加され、次いで、添加されたＡｐｏＡ１のどの程度が最終的にＨＤＬ粒子と結合するかを決定するために、分析が利用される。
【００６０】
そのような評価をすることの１つの代表的な実施形態は以下の通りである。最初に、内在性ＡｐｏＡ１を標識化ＡｐｏＡ１から識別することができるように、ＨＤＬを含有する血清を標識化ＡｐｏＡ１と混合する。標識は、例えば、アイソトープ組込み、独特のアフィニティタグの添加、余分のアミノ酸の付加、あるいは添加されるＡｐｏＡ１の化学的変性によって組み込むことができる。混合物が均衡化した後、ＨＤＬのいくらかの割合が、標識化ＡｐｏＡ１を含有すると考えられる。特定の実施形態において、組込みレベルの測定を容易にするために、過剰の標識化ＡｐｏＡ１が除去される必要があり得る。したがって、組み込まれていないＡｐｏＡ１からＨＤＬを分解することが可能である超遠心分離または他の分離テクニックが利用される。最終的に、ＨＤＬの測定は、いずれかの適切な技術を使用して、標識化ＡｐｏＡ１対非標識化ＡｐｏＡ１の比率を決定するために実行される。そのような方法で、高レベルのＡｐｏＡ１組込みは、ＨＤＬ分子が高レベルの逆輸送能力を有すること（一般に心臓血管疾患健康のために良好）、そして低レベルの逆輸送能力を有するＨＤＬ分子が心臓血管疾患のリスク増加を示すことを示す。
【００６１】
第２の代表的な実施形態は以下の通りである。最初に、内在性ＡｐｏＡ１を標識化ＡｐｏＡ１から識別することができるように、ＨＤＬを含有する血清を標識化ＡｐｏＡ１と混合する。標識は、分離を促進するために使用することができる（例えば、アフィニティタグを標識として使用する）。混合物が均衡化した後、ＨＤＬのある割合は、標識化ＡｐｏＡ１を含有するであろう。次いで、親和性樹指を使用して、全ての標識化ＡｐｏＡ１を単離し、そして内在性ＡｐｏＡ１のいずれの部分もＨＤＬ粒子中へのタグの組込みによって現われる。最終的に、いずれかの適切な技術を使用して、標識化ＡｐｏＡ１対非標識化ＡｐｏＡ１の比率を決定するためにＨＤＬの測定を実行する。この場合、非標識化ＡｐｏＡ１の量は組込みの程度次第で上昇するため、重要な値である。捕捉されたＨＤＬ対全利用可能なＨＤＬの比率も決定することができるであろう。
【００６２】
特定の実施形態において、ＡｐｏＡ１の酸化はＣＶＤ疾患リスクを評価するために分析される。酸化ＡｐｏＡ１は、非酸化ＡｐｏＡ１と比較して、コレステロール流出促進活性が減少している。したがって、本明細書に記載の組成物及び方法によって患者試料中の酸化ＡｐｏＡ１のレベルの上昇を検出することは、被験者が心臓血管疾患にかかるリスクにあることを決定するために使用することができる（例えば、参照によって本明細書に組み込まれる米国特許第８，３３８，１１０号を参照）。特定の実施形態において、（例えば、これらの位置が塩素化されるか、またはニトロ化されるかどうかを決定するために）、２９、１６６、１９２及び２３６位を含めて、チロシン残基が調査される。
【実施例】
【００６３】
実施例１
試料からのＨＤＬ分子の精製及び特徴決定
本実施例は、アフィニティタグに結合したＡｐｏＡ１分子を使用するＨＤＬ分子の精製
方法、ならびに精製されたＨＤＬ分子の特徴決定方法を記載する。
【００６４】
機能性ＨＤＬの急速単離
ヒト血清は、従来の方法によってＬＤＬ粒子を減損させた。特に、ヒト血清の６００ｕＬアリコートを、４０ｕＬのデキストラン硫酸／塩化マグネシウム溶液と混合した。試料を激しく攪拌し、１０分間室温でインキュベーションし、そしてＡｐｏＢ含有沈殿物を１０分間、６，６００ｘｇにおける遠心分離によって除去した。上澄み液をデカンテーションし、さらなる実験に使用した。
【００６５】
ＨＤＬ精製を達成するために、１２ｕＬのＡｐｏＢ減損血清を、２４ｕＬのアフィニティタグ化ＡｐｏＡ１及び４ｕＬのＰＢＳと混合した。本実施例のアフィニティタグはポリヒスチジンであった。試料を激しく混合し、そして３７℃でインキュベーションした。ＡｐｏＢ減損血清と一緒にｈｉｓ−タグ化ＡｐｏＡ１のインキュベーション後、試料を５００ｕＬの１０ｍＭイミダゾール緩衝液で希釈した。本発明は特定の機構によって限定されず、かつ機構の理解が本発明の実施のために必要ではないが、ｈｉｓ−タグ化ＡｐｏＡ１が、成熟ＨＤＬ分子上の典型的に４〜７個の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の１個と置き換わり、それによって成熟ＨＤＬ分子にタグが添加されると考えられる。試料を、ｈｉｓ−タグ化ＡｐｏＡ１及び会合ＨＤＬを捕捉するため、Ｎｉ−ＮＴＡアフィニティ媒体を含有するスピンカラムに適用した。スピンカラムを短時間で遠心分離し、ｈｉｓ−タグ化ＡｐｏＡ１及び会合ＨＤＬ粒子を分離した。次いで、非特異的に結合したタンパク質を除去するため、スピンカラムを５００ｕＬの２０ｍＭイミジゾール緩衝液で洗浄した。最終的に、結合したＨＤＬ粒子を５００ｍＭイミジゾール緩衝液の２００ｕＬアリコートの添加によって溶出した。
【００６６】
タンパク質特徴決定
精製されたＨＤＬタンパク質プールを、ＬＣ−ＭＳ及びＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル電気泳動によって分析した。ＬＣ−ＭＳの前の分析的な分離のために、（未変性またはタグ化）ＡｐｏＡ１の全ての形態を、溶媒Ａ（水＋０．２％ギ酸）中の溶媒Ｂ（アセトニトリル＋０．２％ギ酸）の濃度が増加する多相の線形勾配を使用して、Ｗａｔｅｒｓカラム（５０×０．７５ｕＭ、Ｃ１８）を用いて実行した。ＨＰＬＣ溶出液は、完全走査モードで操作されるＴｈｅｒｍｏ  Ｖｅｌｏｓ質量分析計に導かれた。
【００６７】
タンパク質同定
ＨＤＬ会合タンパク質は、単離されたＨＤＬ粒子のトリプシン及びＬｙｓ−ｃ分解物のＬＣ−ＭＳ／ＭＳ分析を使用して決定された。超遠心分離またはアフィニティタグ精製を使用する同血清試料の３つの反復試験調製物を、３７℃で４時間エンドプロテアーゼＬｙｓ−Ｃの添加によって分解した。得られるペプチドをナノフロー逆相液体クロマトグラフィ（Ｃ１８カラム  内径７５μｍ×１００ｍｍ、１５分勾配）によって分離し、そしてＬＴＱ−Ｏｒｂｉｔｒａｐ  Ｅｌｉｔｅ質量分析計によって検出した。Ａｎｄｒｏｍｅｄａサーチエンジンを利用するＭａｘＱｕａｎｔソフトウェアを使用して、質量分析データを検索し、それぞれの試料に存在するタンパク質のリストを作成した。
【００６８】
タンパク質定量
ＥＬＩＳＡアッセイを使用して、ＡｐｏＡ１を定量した。
【００６９】
ＰＯＮ１活性
Ｐｏｎ１は、定義された酵素活性を有するＨＤＬ会合タンパク質である。ＰＯＮ１活性は、Ｅｃｋｅｒｓｏｎら（Ａｍ  Ｊ  Ｈｕｍ  Ｇｅｎｅｔ．Ｎｏｖ  １９８３；３５（６）：１１２６-１１３８）によって、酢酸フェニルを基質として使用して、アリールエス
テラーゼ活性を監視することによって決定した。
【００７０】
コレステロール流出
コレステロール流出は、Ｖａｓｃｕｌａｒ  Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓにおいて評価された。このアッセイによって、単離されたＨＤＬの、ＡＢＣＡ１輸送体によって細胞からコレステロールを輸送する能力が決定される。
【００７１】
結果
記載された方法は、穏やかな条件で、ヒト血清／血漿からの高純度の機能性ＨＤＬ粒子の急速な単離を可能にする。
【００７２】
ＨＤＬ会合タンパク質の存在
ＨＤＬの１つの特徴は、粒子のタンパク質組成である。数多くの研究により、数多くの別個のタンパク質が、主要タンパク質成分（例えば、典型的にＨＤＬ分子あたり４〜７個のＡｐｏＡ１タンパク質）としてＨＤＬと、ＡｐｏＡ１と会合することが実証されている。利用された質量分析法はプロテオーム範囲の深さに最適化されなかったが、識別されるタンパク質ＩＤリスト（以下の表１）は文献と良好に一致する。
【００７３】
【表１】
2020115134.tif 000003
【００７４】
アフィニティカラムから溶出されたＨＤＬ会合タンパク質の高度に濃縮された組成物は、血清からのＨＤＬ粒子が上記アフィニティタグ化ＡｐｏＡ１アプローチを使用して首尾よく単離されることを実証する。２種のみの非特異的タンパク質（血清アルブミン及びヌクレオビンディン）がＨＤＬ調製において識別された。血清アルブミンは、全ての血清ベースのプロテオミクス実験で遍在する汚染物質として認識される。ヌクレオビンディンはＨＤＬ会合タンパク質としては報告されず、ｈｉｓ−タグ化ＡｐｏＡ１を捕捉するために使用されるニッケル親和性樹脂のための非特異的親和性を有するタンパク質を表し得る。
【００７５】
急速単離されたＨＤＬ粒子の純度
ＳＤＳ  ｐａｇｅ及びＬＣ−ＭＳ実験の両方によって、急速単離されたＨＤＬの純度を実証する。図１Ａは、アフィニティ法によって単離された場合の、ＡｐｏＡ１、主要なＨＤＬ会合タンパク質及び血清からのその比存在度を示す。アフィニティ調製からの純度は、究極的基準の超遠心分離調製と比較した場合に代表的であり、それは図１Ｂに示される。ＳＤＳ  ｐａｇｅ結果は図２に示す。ＬＣ−ＭＳ及びＬＣ−ＭＳ／ＭＳの両方の実行からの強度データの分析によって、ｈｉｓ−タグ精製は、類似の超遠心分離調製よりも約１２倍少ない血清アルブミンを含有することが示される。
【００７６】
単離されたＨＤＬ粒子の機能
ＨＤＬは、脂質輸送、コレステロール流出、老化防止剤及び抗炎症性挙動ならびに内皮活性化を含む多くの生物学的機能を有することが知られている。パラオキソナーゼ１は、エステラーゼ及びパラオキソナーゼの両方の活性を有する二機能性酵素であり、ＨＤＬと会合することが知られている。アフィニティタグ化ＡｐｏＡ１を使用するＨＤＬ粒子の急速精製の後、単離された粒子はエステラーゼ活性を有することが示された。この粒子は、ＡＢＣＡ１特異的コレステロール流出活性を有することも示された。
【００７７】
ＡｐｏＡ１アフィニティタグ精製方法の代表的な利益
アフィニティクロマトグラフィによるアフィニティＡｐｏＡ１精製の２つの代表的な利益は、速度及び純度である。アフィニティ単離を使用するＨＤＬの調製は、１５分で終了することができる。例えば、血清試料を適切な量のアフィニティタグ化ＡｐｏＡ１と混合し、そして１〜１０分間インキュベーションし、ＨＤＬ粒子と会合させる。アフィニティ樹指（ＮｉＮＴＡまたはＣｏ−ＮＴＡビーズ）を用いての短時間の平衡化（例えば、１〜２分）の後、過剰なタンパク質を緩衝液によって洗浄除去し、そしてイミダゾールまたは酸の単一適用によってビーズから溶出する。これによって、１５分以内で９０％より高い見掛けの純度を有するＨＤＬが得られる。
【００７８】
比較において、ＨＤＬ単離の別の方法は実質的により時間消費的である。ヒト血漿からのＨＤＬの平衡超遠心分離では、一般に、１８〜２４時間を要するが、究極的基準であると考えられる高品質のＨＤＬ調製をもたらす。サイズ排除クロマトグラフィでは２時間ごとに１つの試料を調製することができ、そして広範囲に使用されてきたが、特により小さいＨＤＬ径の粒子に関して、実質的により低い純度と関連する希薄画分が得られる。
【００７９】
実施例２
ニート及びＬＤＬ減損血清からのＨＤＬ分子の精製
本実施例は、ＬＤＬ減損またはニートの（非ＡｐｏＢ／ＬＤＬ減損）血清からアフィニティタグ化ＡｐｏＡ１を使用するＨＤＬ分子の精製を記載する。
【００８０】
ＨＤＬの急速単離
ヒト血清は、実施例１に記載されるようにＬＤＬ粒子が減損されたものであったか、あるいはＬＤＬ減損をせずに急速ＨＤＬ単離のためにすぐに使用された。急速ＨＤＬ精製のために、１２ｕＬのニートの、及びＬＤＬ減損血清を、２４ｕＬの１５Ｎ−標識化アフィニティタグ化ＡｐｏＡ１と混合した。本実施例において、アフィニティタグはポリヒスチジンである。この試料を短時間で混合し、そして３７℃でインキュベーションした。インキュベーション後、試料を１０ｍＭのイミダゾール緩衝液によって７００ｕＬまで希釈した。２５ｕＬのＮｉ−ＮＴＡアフィニティパラマグネチックビーズを試料に添加し、そして短時間インキュベーションし、ＨＤＬ分子を結合し、いずれの追加の組み込まれていないタグに加えて、タグ化ＡｐｏＡ１を組み込んだ。非特異的に結合したタンパク質を除去するためにビーズを３００ｕＬの２０ｍＭイミダゾール緩衝液で２回連続的に洗浄し、次いで、９０ｕＬの３００ｍＭイミダゾール緩衝液で溶出した。次いで、１０ｕＬの０．５
ｎｇ／ｕＬのエンドプロテアーゼＬｙｓＣを、溶出されたＨＤＬ試料に添加し、そして３７℃で４時間インキュベーションし、ＬＣ−ＭＳ特徴決定のために特定のペプチドへとＨＤＬ会合タンパク質を特異的に開裂した。
【００８１】
精製されたＨＤＬの特徴決定
急速精製されたＨＤＬのＬｙｓＣ分解からのペプチド産物を、溶媒Ａ（水＋０．１％ギ酸）中の溶媒Ｂ（アセトニトリル＋０．１％ギ酸）の濃度が増加する多相の線形勾配を使用して、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ逆相ＨＰＬＣカラム（３．０×５０ｍｍ、Ｃ１８）上で分離した。溶出されたペプチドを、ＨＤＬ同伴タンパク質に特有のペプチドを検出するための多重反応監視モードでのＡｇｉｌｅｎｔ  ６４９０三段四重極質量分析計操作によって直接検出した。
【００８２】
結果
ＨＤＬ会合タンパク質に特有のペプチドは、１５Ｎによるタグ化ＡｐｏＡ１の濃縮によって識別可能なタグ化ＡｐｏＡ−Ｉに加えて、ニートな血清及びＬＤＬ減損血清試料の両方で検出された。図７は、タグ化ＡｐｏＡ１及び未変性のＨＤＬに特有のＡｐｏＡ１及びＡｐｏＡ２の強度を示す。これらの結果は、事前のＬＤＬ減損を必要とせずにＨＤＬを患者血清から急速に単離する能力を示す。
【００８３】
実施例３
急速ＨＤＬ精製のためのタグ化ＡｐｏＡ１：未変性ＡｐｏＡ１比の最適化
本実施例は、分子回収を最大にするための、様々な量のタグ化ＡｐｏＡ１を有するＨＤＬ分子の急速単離を記載する。
【００８４】
ＨＤＬの急速単離
急速ＨＤＬ精製のため、１０ｕＬのニートの（非ＬＤＬ減損）ヒト血清を、それぞれ１：１０、１：５、１：２、１：１、２：１、４：１及び８：１のタグ対未変性ＡｐｏＡ１比に相当する、１、２、５、１０、２０、４０または８０ｕｇの全タグ化ＡｐｏＡ１のいずれかを含有する、２４ｕＬの１５Ｎ−標識化アフィニティタグ化ＡｐｏＡ１と混合した。比率は、ヒト血清試料中の平均全ＡｐｏＡ１が約１ｍｇ／ｍＬ（ｕｇ／ｕＬ）であるという仮定に基づいて決定される。本実施例において、アフィニティタグはポリヒスチジンである。この試料を短時間で混合し、そして３７℃でインキュベーションした。インキュベーション後、試料を１０ｍＭのイミダゾール緩衝液によって７００ｕＬまで希釈した。２５ｕＬのＮｉ−ＮＴＡアフィニティパラマグネチックビーズを試料に添加し、そして短時間インキュベーションし、ＨＤＬ分子を結合し、いずれの追加の組み込まれていないタグに加えて、タグ化ＡｐｏＡ１を組み込んだ。非特異的に結合したタンパク質を除去するためにビーズを３００ｕＬの２０ｍＭイミダゾール緩衝液で２回連続的に洗浄し、次いで、９０ｕＬの３００ｍＭイミダゾール緩衝液で溶出した。次いで、１０ｕＬの０．５ｎｇ／ｕＬのエンドプロテアーゼＬｙｓＣを、溶出されたＨＤＬ試料に添加し、そして３７℃で４時間インキュベーションし、ＬＣ−ＭＳ特徴決定のために特定のペプチドへとＨＤＬ会合タンパク質を特異的に開裂した。
【００８５】
精製されたＨＤＬの特徴決定
急速精製されたＨＤＬのＬｙｓＣ分解からのペプチド産物を、溶媒Ａ（水＋０．１％ギ酸）中の溶媒Ｂ（アセトニトリル＋０．１％ギ酸）の濃度が増加する多相の線形勾配を使用して、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ逆相ＨＰＬＣカラム（３．０×５０ｍｍ、Ｃ１８）上で分離した。溶出されたペプチドを、ＨＤＬ同伴タンパク質に特有のペプチドを検出するための多重反応監視モードでのＡｇｉｌｅｎｔ  ６４９０三段四重極質量分析計操作によって直接検出した。
【００８６】
結果
図８は、ＨＤＬを捕捉するために様々な量のタグ化ＡｐｏＡ１が使用された、同一血清試料の精製されたＨＤＬ分子からのタグ化ＡｐｏＡ１、未変性ＡｐｏＡ１及び未変性ＡｐｏＡ−ＩＩの測定された強度を示す。タグ化ＡｐｏＡ１は、質量分析法によって検出可能な独特の質量指標を生じる１５Ｎによって同位体標識化された、タグ化ＡｐｏＡ１の使用により、未変性ＡｐｏＡ−Ｉと識別可能である。予期されたように、タグ化ＡｐｏＡ１のシグナル強度は、タグ対未変性比がより高い使用によって増加する。実施例１に記載される通り、本発明は特定の機構によって限定されず、かつ機構の理解が本発明の実施のために必要ではないが、ｈｉｓ−タグ化ＡｐｏＡ１が、成熟ＨＤＬ分子上の典型的に４〜７個の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質の１個と置き換わり、それによって成熟ＨＤＬ分子にタグが添加されると考えられる。これは、図８中の未変性ＡｐｏＡ１の強度において、強度が１：１の比率まで増加し、次いで、タグ対未変性比がさらに増加すると減少するように観察される。このことは、ＨＤＬ粒子あたり複数のＡｐｏＡ１粒子が置き換えられて、より高い割合で未変性ＡｐｏＡ１が排除されたことの結果であると仮定される。交換されていない別のＨＤＬ特定のタンパク質、ＡｐｏＡ２を測定することは、全ＨＤＬ回収の指標として役立つ。ＡｐｏＡ２は、１：１の比率において最大化し、そしてタグ対未変性ＡｐｏＡ１の比率がさらに増加すると平坦域になることが観察される。
【００８７】
実施例４
ＡｐｏＡ１タグ化精製ＨＤＬの特徴決定
本実施例は、本明細書に記載されたアフィニティタグ化法によって単離されたＨＤＬの特徴決定に使用される追加的手順を記載する。
【００８８】
脂肪酸分析
Ｈｉｓ６−タグ化ＡｐｏＡ−Ｉ（０．５ｍｇ／ｍＬ）を１：２の体積比でヒト血清と組み合わせて、そして３７℃で１５分間インキュベーションした。得られた試料を１０ｍＭイミダゾール、５０ｍＭリン酸ナトリウム、３００ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ８．０で７００ｕＬまで希釈し、そしてＮｉ−ＮＴＡを含有するパラマグネチックビーズと一緒に室温で１０分間インキュベーションした。ビーズを処理済み（ｓｔｒｉｐｐｅｄ）血清で２回洗浄し、そして３０μＬの３００ｍＭイミダゾールで溶出した。溶出されたＨＤＬを５００ｕＬの無水メタノール中２％硫酸と組み合わせて、そして密封されたバイアル中で１時間１５分、６５℃で加熱した。得られた脂肪酸メチルエステルを、液液抽出法を使用して、１ｍＬのヘプタン中に抽出した。有機層を除去し、そしてヘプタンを乾燥窒素流の下でエバポレーションした。水酸化ナトリウムの添加によって脂肪酸メチルエステルを脂肪酸に加水分解し、そしてその後、ＬＣ−ＭＳによって１９種の一般的な脂肪酸に関して分析した。
【００８９】
ＨＤＬ中、以下の脂肪酸が以下の割合で検出された。Ｃ１４：０、ミリスチン酸、０．４％；Ｃ１５：０、０．１％、ペンタデカン酸；Ｃ１６：０、１４．％、１．６％、パルミチン酸；Ｃ１６：１、パルミトレイン酸；Ｃ１８：０、ステアリン酸、１０．７％；Ｃ１８：１、オレイン酸、１９．７％；Ｃ１８：２ｎ６、２５．５％、リノール酸；Ｃ１８：３、リノレン酸、１．２％；Ｃ２０：０、アラキジン酸；Ｃ２０：１、微量％、エイコサジエン酸、０．２％；Ｃ２０：２ｎ６、エイコサジエン酸、０．２％；Ｃ２０：３ｎ６、ホモガンマリノレン酸、４．２％；Ｃ２０：４ｎ６、１７．２％、アラキドン酸；Ｃ２２：２ｎ６、ドコサジエン酸、０．４％；Ｃ２２：４ｎ６、アドレン酸、０．５％；Ｃ２２：５ｎ６、ドコサペンテン−６酸、０．３％；Ｃ２０：５ｎ３、エイコサペンテン酸、０．８％；Ｃ２２：６ｎ３、ドコサヘキサエン酸、１．９％；Ｃ２２：５ｎ３、ドコサペンテン酸、０．６％。タグ化ＡｐｏＡ１が存在しない場合、脂肪酸は検出されなかった。ＨＤＬ試料中で検出された脂肪酸の組成は、全血液脂肪酸プロフィールとは異なり、不飽和脂肪酸の割合の増加を示した。
【００９０】
ｍｉＲＮＡ分析
ＰｕｒｅＬｉｎｋ  ｍｉＲＮＡ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎキット（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して、血清、（本明細書に記載のタグ化ＡｐｏＡ１法を使用して）急速精製されたＨＤＬ及びポジティブ血清コントロールからの全ＲＮＡを単離し、そしてヌクレアーゼを含まない水中で再懸濁させた。ＴａｑＭａｎ  ｍｉｃｒｏＲＮＡ  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎキット（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して、逆転写を実行した。全ＲＮＡ（１〜１０ｎｇ）の５μＬを、１．０ｍＭ  ｄＮＴＰ、３．３３Ｕ／μＬ  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ、１ｘ  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  Ｂｕｆｆｅｒ、０．２５Ｕ／μＬ  ＲＮａｓｅ  Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ及びヌクレアーゼを含まない水と混合し、合計１２ｕｌとなった。次いで、３μＬの５ｘ  ＲＴプライマーをＲＴ反応混合物に添加し、合計１５μＬとなった。製造業者の指示に従って、Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ  ＭａｓｔｅｒＣｙｃｌｅｒ  ｐｒｏサーマルサイクラー中でＲＴ反応を行った（３０分、１６℃；３０分、４２℃；５分、８５℃；４℃保持）。ｃＤＮＡは、−１５℃〜−２５℃で貯蔵されたか、またはｍｉＲＮＡの定量分析用にすぐに使用された。
【００９１】
ＴａｑＭａｎ  ｍｉｃｒｏＲＮＡ単回アッセイ（アッセイＩＤ００２２９５，Ｌｉｆｅ
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して、成熟ｍｉＲＮＡ−２２３発現を評価した。試料をｍｉＲＮＡ−１６発現に正規化した（アッセイＩＤ０００３９１，Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）。ＰＣＲ反応のために、１．０ｕｌのＴａｑＭａｎ  ｍｉＲＮＡアッセイを１．３３ｕｌのｃＤＮＡ、１０ｕｌのＴａｑＭａｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  ＰＣＲ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｍｉｘ  ＩＩ（ＵＮＧなし）及び７．６７ｕｌのヌクレアーゼを含まない水と混合し、合計２０ｕｌの反応混合物となった。全ての試料を二重反復試験で実行した。９５℃で１０分間、続いて、４５サイクルの１５秒間９５℃で保持、次いで６０秒間６０℃で保持という周期条件で、Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｓｔａｎｄａｒｄ  ７５００  Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ  ＰＣＲ  ＳｙｓｔｅｍにおいてリアルタイムＰＣＲを実行した。比較Ｃｔ分析を実行して、相対的な遺伝子発現を評価した。図９に示す結果は、未処理の血清試料（ポジティブコントロール）から単離されたｍｉＲＮＡのものに類似のレベルの異なる患者ＨＤＬ試料の差異的ｍｉＲＮＡ−２２３発現を示す。
【００９２】
粒径分析
Ｈｉｓ６−タグ化ＡｐｏＡ−Ｉ（０．５ｍｇ／ｍＬ）を１：２の体積比でヒト血清と組み合わせて、そして３７℃で１５分間インキュベーションした。得られた試料を１０ｍＭイミダゾール、５０ｍＭリン酸ナトリウム、３００ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ８．０で７００ｕＬまで希釈し、そしてＮｉ−ＮＴＡを含有するパラマグネチックビーズと一緒に室温で１０分間インキュベーションした。ビーズを処理済み（ｓｔｒｉｐｐｅｄ）血清で２回洗浄し、そして処理済み血清中３００ｍＭイミダゾール３０μＬで溶出した。処理済み血清中の溶出されたＨＤＬ、１０μＬをＡｇｉｌｅｎｔ  ２１００  Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒを使用して、マイクロ流体電気泳動によって分離した。得られた粒子プロフィールは、濃縮されていない血清試料中の同ピークと類似の比存在度で、溶出された試料中にＨＤＬ２、ＨＤＬ２ｂ及びＨＤＬ３粒子の存在に対応するピークを示した（図１０）。
【００９３】
本出願において言及された全ての刊行物及び特許は、参照によって本明細書に組み込まれる。本発明の記載された方法及び組成物の様々な修正及び変更は、本発明の範囲及び精神から逸脱することなく、当業者に明白であろう。特定の好ましい実施形態に関連して本発明が記載されたが、請求項に係る発明は、そのような特定の実施形態に過度に限定されないことは理解されるべきである。実際に、当業者にとって明らかである本発明を実行するための記載された様式の様々な修正は、請求の範囲内であるように意図される。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図４Ｃ】
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【図５Ａ】
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【図５Ｂ】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９Ａ】
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【図９Ｂ】
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【図１０Ａ】
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【図１０Ｂ】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】令和2年3月30日(2020.3.30)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ａ）それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア及びｉｉ）複数のＨＤＬリポタンパク質を含むＨＤＬ分子と、非ＨＤＬ生体分子との集団を含有する初期試料であって、体液を含む前記初期試料を、それぞれがｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド及びｉｉ）アフィニティタグを含むＨＤＬタグ化分子の集団と混合して、混合試料を生成すること；
ｂ）前記ＨＤＬタグ化分子の少なくともいくつかが前記ＨＤＬ分子の少なくともいくつかと結合し、それによってタグ化ＨＤＬ分子の集団が生成されるように、前記混合試料をインキュベーションすること；
ｃ）精製された試料を生成するために、前記タグ化ＨＤＬ分子の集団の少なくとも一部を前記非ＨＤＬ生体分子から分離させて精製することであって、前記アフィニティタグに対して特異的な捕捉分子の集団に前記混合試料を接触させることを含む、精製すること；ならびに
ｄ）前記精製された試料における１個またはそれ以上のＨＤＬリポタンパク質を検出すること；
を含む、ＨＤＬリポタンパク質を検出する方法。
【請求項２】
（ｉ）前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）のＨＤＬ結合領域を含み、かつ前記複数のＨＤＬリポタンパク質が非タグ化ＡｐｏＡ１分子を含む；
（ｉｉ）前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ａ−ＩＩ（ＡｐｏＡ２）のＨＤＬ結合領域を含み、かつ前記複数のＨＤＬリポタンパク質が非タグ化ＡｐｏＡ２分子を含む；又は
（ｉｉｉ）前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ｅ（ＡｐｏＥ）のＨＤＬ結合領域を含み、かつ前記複数のＨＤＬリポタンパク質が非タグ化ＡｐｏＥ分子を含む；
、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記（ｉ）において、前記ＨＤＬ分子のそれぞれにおける前記複数のＨＤＬリポタンパク質が第１及び第２の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質を含み、かつ前記タグ化ＨＤＬ分子が前記ＨＤＬ分子に結合する時、前記ＨＤＬタグ化分子の少なくとも１つが、前記ＨＤＬ分子のそれぞれにおける前記第１の未変性ＡｐｏＡ１タンパク質と置き換わる、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記（ｉ）において、前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、ＡｐｏＡ１またはＡｐｏＡ１模倣物の少なくとも一部を含む、請求項２に記載の方法。
【請求項５】
前記（ｉｉ）において、前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、ＡｐｏＡ２またはＡｐｏＡ２模倣物の少なくとも一部を含む、請求項２に記載の方法。
【請求項６】
前記（ｉｉｉ）において、前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、ＡｐｏＥまたはＡｐｏＥ模倣物の少なくとも一部を含む、請求項２に記載の方法。
【請求項７】
前記初期試料が血清試料、血液試料、又は血漿試料を含む、請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
前記血清試料が、ＬＤＬが減損されていない、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記アフィニティタグがスピン標識ではない、請求項１〜８のいずれかに記載の方法。
【請求項１０】
前記アフィニティタグが、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、マルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ＡｖｉＴａｇ、カルモデュリン−タグ、ポリグルタメートタグ、ＦＬＡＧ−タグ、ＨＡ−タグ、Ｈｉｓタグ、Ｍｙｃ−タグ、Ｓ−タグ、ＳＢＰ−タグ、Ｓｏｆｔａｇ１、Ｓｔｒｅｐ−タグ、テトラシステイン（ＴＣ）タグ、Ｖ５タグ、Ｘｐｒｅｓｓタグ、Ｉｓｏｐｅｐｔａｇ、及びＳｐｙＴａｇからなる群より選択される、請求項１〜８のいずれかに記載の方法。
【請求項１１】
１個またはそれ以上のＨＤＬタンパク質を検出することが、表面プラズモン共鳴、試験管内アッセイ、活性アッセイ、共免疫沈降アッセイ、質量分析、蛍光エネルギー転移（ＦＲＥＴ）、生物発光エネルギー転移（ＢＲＥＴ）、干渉分析、バイオレイヤー干渉分析（ＢＬＩ）、二重偏波干渉分析（ＤＰＩ）、楕円偏光法、又は水晶振動子マイクロバランスを行うことを含む、請求項１〜１０のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
ａ）
ｉ）ＨＤＬ親油性コア結合ペプチド、及び
ｉｉ）アフィニティタグ
を含むＨＤＬタグ化分子、ならびに
ｂ）前記アフィニティタグに対して特異的である捕捉分子の集団
を含み、
前記アフィニティタグが、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、マルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ＡｖｉＴａｇ、カルモデュリン−タグ、ポリグルタメートタグ、ＦＬＡＧ−タグ、ＨＡ−タグ、Ｈｉｓタグ、Ｍｙｃ−タグ、Ｓ−タグ、ＳＢＰ−タグ、Ｓｏｆｔａｇ１、Ｓｔｒｅｐ−タグ、テトラシステイン（ＴＣ）タグ、Ｖ５タグ、Ｘｐｒｅｓｓタグ、Ｉｓｏｐｅｐｔａｇ、及びＳｐｙＴａｇからなる群より選択される、系。
【請求項１３】
前記ＨＤＬ親油性コア結合ペプチドが、アポリポタンパク質Ａ−Ｉ（ＡｐｏＡ１）、ＡｐｏＡ２、又はＡｐｏＥのＨＤＬ結合領域を含む、請求項１２に記載の系。
【外国語明細書】
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2020115134000002.pdf
2020115134000003.pdf
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