(57)【要約】【課題】  収着材料として用いる金属有機フレームワークの分解物が、血液やバイオ生産物等に混入するリスクを低減した収着材料および特定物質捕捉システムを提供すること。【解決手段】  透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料であって、  前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である、収着材料。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料であって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である、収着材料。
【請求項２】
前記特定物質は、毒素、毒性溶質、毒性小分子もしくは中分子、およびタンパク質結合毒素からなる群から選択される１種以上の毒性物質である、請求項１記載の収着材料。
【請求項３】
前記特定物質は、医薬的に有効な成分である、請求項１記載の収着材料。
【請求項４】
前記分離膜は、透析膜、限外ろ過膜、精密ろ過膜、イオン交換膜、ナノろ過膜、逆浸透膜、および正浸透膜からなる群から選択される１種以上である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の収着材料。
【請求項５】
前記分離膜が、平膜または中空糸膜の形態である、請求項１〜４のいずれか一項記載の収着材料。
【請求項６】
透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料を備えた第１の手段と、
少なくとも前記金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーを除去するための分離膜を備えた第２の手段と、
を有する特定物質捕捉システムであって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、前記分離膜のカットオフ分子量未満である、システム。
【請求項７】
前記第１の手段と前記第２の手段が同一の装置内に存在する、請求項６記載の特定物質捕捉システム。
【請求項８】
前記第１の手段が前記第２の手段よりも前に配置されている、請求項６または７記載の特定物質捕捉システム。
【請求項９】
前記第１の手段が前記第２の手段よりも後に配置されている、請求項６または７記載の特定物質捕捉システム。
【請求項１０】
金属有機フレームワークを含む収着材料を用いて、透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉する特定物質捕捉方法であって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である、方法。
【請求項１１】
金属有機フレームワークを含む収着材料を用いて、透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉する特定物質捕捉工程と、
前記金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーを、分離膜を用いて除去する膜分離工程と、
を含む、請求項１０記載の特定物質捕捉方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血液等から特定物質を除去するための収着材料およびその収着材料を用いた特定物質捕捉システム、特定物質捕捉方法に関する。本発明は、特に、人工腎臓および人工透析における血液・血漿やバイオ生産物から、毒性物質や不純物を除去したり、有効成分を分離したりするための収着材料として有用である。
【背景技術】
【０００２】
膜分離は、ある特定のカットオフ分子量未満の物質を除去する手法に用いられており、人工腎臓および人工透析において血液から毒性物質を除去する基本技術であるとともに、バイオ生産物を精製する基本技術でもあり、適切なカットオフ分子量を有する分離膜の選択により、除去されることが望まれる毒性物質の除去が実現される。しかし、タンパク質結合毒素に代表されるように、除去することが望まれる毒性物質が除去されることが望まれない物質と結合することにより分子量が増大すると、分離膜のカットオフ分子量を超えてしまい、適切に除去することができない場合がある。これを解決するための手法として、特許文献１には、透析精製プロセスと金属有機フレームワークを含む収着材による毒性物質除去プロセスを組み合わせたシステムが提案されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特表２０１０−５１２９３９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、特許文献１に記載されたシステムでは、収着材が使用中に意図せずして分解すると、その分解物が生体内に入る血液等に混入するおそれがあり、人工腎臓および人工透析用途の場合はもちろん、医薬品ないし食品用途のバイオ生産物の精製に用いる場合も、生体に危害を加える可能性があるという課題がある。
【０００５】
上記事情に鑑み、本発明は、収着材料として用いる金属有機フレームワークの分解物が、血液やバイオ生産物等に混入するリスクを低減した収着材料および特定物質捕捉システムを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、収着材料に含まれる金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量を、これと併用する分離膜のカットオフ分子量未満とすることにより、上記課題を解決できることを見出した。
【０００７】
すなわち、本発明は以下のとおりである。
［１］
透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料であって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である、収着材料。
［２］
前記特定物質は、毒素、毒性溶質、毒性小分子もしくは中分子、およびタンパク質結合毒素からなる群から選択される１種以上の毒性物質である、［１］記載の収着材料。
［３］
前記特定物質は、医薬的に有効な成分である、上記［１］記載の収着材料。
［４］
前記分離膜は、透析膜、限外ろ過膜、精密ろ過膜、イオン交換膜、ナノろ過膜、逆浸透膜、および正浸透膜からなる群から選択される１種以上である、上記［１］〜［３］のいずれかに記載の収着材料。
［５］
前記分離膜が、平膜または中空糸膜の形態である、上記［１］〜［４］のいずれかに記載の収着材料。
［６］
透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料を備えた第１の手段と、
少なくとも前記金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーを除去するための分離膜を備えた第２の手段と、
を有する特定物質捕捉システムであって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、前記分離膜のカットオフ分子量未満である、システム。
［７］
前記第１の手段と前記第２の手段が同一の装置内に存在する、上記［６］記載の特定物質捕捉システム。
［８］
前記第１の手段が前記第２の手段よりも前に配置されている、上記［６］または［７］記載の特定物質捕捉システム。
［９］
前記第１の手段が前記第２の手段よりも後に配置されている、上記［６］または［７］記載の特定物質捕捉システム。
［１０］
金属有機フレームワークを含む収着材料を用いて、透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉する特定物質捕捉方法であって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である、方法。
［１１］
金属有機フレームワークを含む収着材料を用いて、透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉する特定物質捕捉工程と、
前記金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーを、分離膜を用いて除去する膜分離工程と、
を含む、上記［１０］記載の特定物質捕捉方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明により、収着材料として用いる金属有機フレームワークが意図せず中心金属およびリンカーに分解したとしても、分離膜を用いた膜分離工程により、分離膜のカットオフ分子量未満の分子量を有した中心金属およびリンカーが適切に除去されるため、収着材料分解物の血液、血漿、ないしバイオ生産物等への混入を防止することができる。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
以下、本発明の実施の形態（以下、「本実施形態」という。）について詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではなく、その要旨を逸脱しない範囲で様々な変形が可能である。
【００１０】
［収着材料］
本実施形態における収着材料は、
透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料であって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である。
【００１１】
本実施形態の収着材料は、中心金属が少なくとも１つの他の中心金属とリンカーを介して結合され、２次元ないし３次元網目構造を形成した多孔質構造を有する金属有機フレームワークであり、この収着材料と併用する分離膜のカットオフ分子量未満の分子量を有する中心金属とリンカーを組み合わせることにより得られる。
収着材料は、分離膜を用いた膜分離プロセスと組み合わせて使用される。すなわち、収着材料として用いる金属有機フレームワークが意図せずして中心金属およびリンカーに分解したとしても、金属有機フレームワークによる特定物質捕捉工程と併せて実施する膜分離工程により、分離膜のカットオフ分子量未満の分子量を有した中心金属およびリンカーが適切に除去されるため、収着材料の分解物である中心金属およびリンカーの血液、血漿、ないしバイオ生産物等への混入を防止することができる。そして、収着材料分解物の血液等への混入を防止することにより、分解物による生体毒性の発現やバイオ生産物のコンタミネーションを防ぐことができ、安全性向上に資することができる。
【００１２】
本実施形態における金属有機フレームワークは、中心金属がリンカーにより結合されて一次元、二次元、または三次元構造となったハイブリッド材料である。金属有機フレームワークは、中心金属およびリンカーの設計次第で特定物質に対する高い選択性・吸着性を実現することができる。例えば、金属有機フレームワークのリンカーに様々な官能基を導入し、これにより捕捉する特定物質に対する親和性を調整することができる。
【００１３】
金属有機フレームワークは、それぞれの中心金属が少なくとも１つの他の中心金属に結合している複数の生体適合性金属と；隣接する中心金属を連結する複数の生体適合性リンカーと；複数の細孔とを含む。ここで、複数の中心金属は同一でも、異なっていてもよい。また、複数のリンカーについても同一でも、異なっていてもよい。また、金属有機フレームワーク中に存在する複数の細孔は、大きさが異なっていてもよいし、同一であってもよい。
【００１４】
本実施形態における収着材料である金属有機フレームワークは、中心金属およびリンカーを有し、反応条件に応じて、２次元または３次元網目構造として調製することができる。金属有機フレームワークの構造は、金属源、リンカーおよびモジュレータ（結晶成長速度調整剤）の選択ならびに反応条件（例えば、温度、ｐＨ、溶媒系、反応物質比および反応時間など）の選択により適宜調整することができ、用途に応じて所望の構造体を得ることができる。
【００１５】
金属有機フレームワークとしては、それを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、これと併用する分離膜のカットオフ分子量未満であれば特に限定されることはなく、用途に応じて様々なものを用いることができる。例えば、特表２０１０−５１２９３９号公報、特表２０１１−５１７３０９号公報、特表２０１５−５２９２５８号公報、H. Furukawa et al. "The Chemistry and Applications of Metal-Organic Frameworks" Science 341, 1230444 (2013)等に記載されたものを用いることができる。また、水分中で使用可能な金属有機フレームワークとしては、例えば、特開２０１６−１７９４３１号公報、特開２０１８−１０５８３５号公報、特開２０１８−１１８２１１号公報、特開２０１８−１１８９２９号公報、S. Li et al. "Water Purification: Adsorption over Metal-Organic Frameworks"Chin. J. Chem. 2016, 34, 175−185記載されたもの等を用いることができる。これらの中でも、透析液または血液（血漿）を精製するための用途においては、タンパク質結合毒素を選択的に除去可能な生体適合性の金属有機フレームワークが好ましく、例えば、ＵＳ２０１００２８６０２２Ａ１、ＵＳ８６９１７４８に記載されたもの等が挙げられる。
【００１６】
［中心金属］
本実施形態において「中心金属」とは、金属イオンないし金属クラスターを指し、収着材料の用途や捕捉する特定物質に応じて最適なものが選択される。中心金属を構成する金属は、生体適合性の金属であれば特に限定されず、例えば、Ｌｉ、Ｎａ、Ｍｇ、Ｓｒ、Ｂａ、Ｃａ、Ｔｉ、Ｚｒ、Ｈｆ、Ｆｅ、Ｖ、Ｎｂ、Ｃｒ、Ｍｏ、Ｉｒ、Ｒｅ、Ｃｅ、Ｃｏ、Ｙ、Ｍｎ、Ｎｉ、Ｐｄ、Ｃｕ、Ａｌ、Ｓｉ、Ｚｎ、Ａｇ、Ｐｔ、Ａｕ、Ｍｏ、Ｗ、Ｒｕ、Ｏｓ、Ｓｂ、Ｃｅ等が挙げられ、透析液または血液（血漿）を精製するための用途においては、安全性の観点から、Ｆｅ、Ｔｉ、Ｍｇ、Ｚｒ、Ｈｆ、Ｃｅが好ましい。
【００１７】
また、「金属クラスター」とは、金属原子が数個から十数個集まって、一つの化合物のような特定の構造単位をもった物質を意味する。金属クラスターには、金属同士が直接結合するものや、金属同士が他の原子や分子を介して結合しているもの等が挙げられる。
【００１８】
［リンカー］
本実施形態において「リンカー」とは、上述した中心金属を架橋する配位子を指し、収着材料の用途や捕捉する特定物質に応じて最適なものが選択される。リンカーとしては、例えば、１〜２０個の炭素原子からなるアルキルまたはシクロアルキル基、１〜５個のフェニル環からなるアリール基、あるいは、１〜２０個の炭素原子を有するアルキルもしくはシクロアルキル基または１〜５個のフェニル環からなるアリール基からなるアルキルアミンまたはアリールアミンを含み、多座官能基が配位子の基礎構造に共有結合しているもの等が挙げられる。多座官能基としては、例えば、ＣＯ2Ｈ、ＣＳ2Ｈ、ＮＯ2、ＳＯ3Ｈ、Ｓｉ（ＯＨ）3、Ｇｅ（ＯＨ）3、Ｓｎ（ＯＨ）3、Ｓｉ（ＳＨ）4、Ｇｅ（ＳＨ）4、Ｓｎ（ＳＨ）4、ＰＯ3Ｈ、ＡｓＯ3Ｈ、ＡｓＯ4Ｈ、Ｐ（ＳＨ）3、Ａｓ（ＳＨ）3、ＣＨ（ＲＳＨ）2、Ｃ（ＲＳＨ）3、ＣＨ（ＲＮＨ2）2、Ｃ（ＲＮＨ2）3、ＣＨ（ＲＯＨ）2、Ｃ（ＲＯＨ）3、ＣＨ（ＲＣＮ）2、Ｃ（ＲＣＮ）3（ここで、Ｒは、１〜５個の炭素原子を有するアルキル基であるか、１〜２個のフェニル環からなるアリール基である）、ならびにＣＨ（ＳＨ）2、Ｃ（ＳＨ）3、ＣＨ（ＮＨ2）2、Ｃ（ＮＨ2）3、ＣＨ（ＯＨ）2、Ｃ（ＯＨ）3、ＣＨ（ＣＮ）2、およびＣ（ＣＮ）3等が挙げられる。上記の中でも、カルボン酸官能基を含むことが好ましい。また、いずれか１つ以上の炭素原子が、窒素、酸素、硫黄、硼素、リン、シリコンおよびアルミニウム原子等によって置換されていてもよい。
【００１９】
カルボン酸官能基を含むリンカーとしては、例えば、メタン酸、エタン酸、プロパン酸、ブタン酸、吉草酸、カプロン酸、カプリル酸、カプリン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、シクロヘキサンカルボン酸、フェニル酢酸、安息香酸、シュウ酸、マロン酸、コハク酸、グルタル酸、アジピン酸、ピメリン酸、スベリン酸、マレイン酸、フマル酸、フタル酸、イソフタル酸、テレフタル酸、２−アミノテレフタル酸、ヘミメリト酸、トリメリト酸、ピロメリト酸、トリメシン酸、２、６−ナフタレンジカルボン酸、４、４’−ビフェニルジカルボン酸、２、２’−ジメチルビフェニル−４、４’−ジカルボン酸、２、５−ジヒドロキシテレフタル酸、２、５−チオフェンジカルボン酸、テトラキス（４−カルボキシフェニル）ポルフィリン、テトラキス（４−カルボキシビフェニル）ポルフィリン、１、３、６、８−テトラキス（ｐ−カルボキシフェニル）ピレン、２、２’−ジヒドロビフェニル−３、３’、５、５’−テトラ（フェニル−４−カルボン酸）、４、４’−ジアミノ−３、３’、５、５’−テトラ（フェニル−４−カルボン酸）、４、４’−ジヒドロキシ−３、３’、５、５’−テトラ（フェニル−４−カルボン酸）、３、３’、５、５’−テトラカルボキシジフェニルメタン、１、３、５−トリス（４−カルボキシフェニル）−２、４、６−トリメチルベンゼン、無水コハク酸、無水マレイン酸、無水フタル酸、グリコール酸、乳酸、ヒドロキシ酪酸、マンデル酸、グリセリン酸、リンゴ酸、酒石酸、クエン酸およびアスコルビン酸が挙げられる。
【００２０】
リンカーは、ポリカルボン酸であってもよく、例えば、不飽和脂肪族ジカルボン酸、飽和脂肪族ジカルボン酸、芳香族ジカルボン酸、不飽和環状ジカルボン酸、飽和環状ジカルボン酸、それらのヒドロキシ置換誘導体；不飽和脂肪族トリカルボン酸、飽和脂肪族トリカルボン酸、芳香族トリカルボン酸、不飽和環状トリカルボン酸、飽和環状トリカルボン酸、それらのヒドロキシ置換誘導体；などが挙げられる。これらのポリカルボン酸はいずれも、ヒドロキシ、ハロ、アルキル、アルコキシなどで置換されていてもよい。ポリカルボン酸の具体例としては、例えば、アコニット酸、アジピン酸、アゼライン酸、ブタンテトラカルボン酸二水素化物、ブタントリカルボン酸、クロレンド酸、シトラコン酸、ジシクロペンタジエン−マレイン酸付加物、ジエチレントリアミンペンタ酢酸、ジペンテンおよびマレイン酸の付加物、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、完全マレアート化ロジン、マレエート化トール油脂肪酸、フマル酸、グルタル酸、イソフタル酸、イタコン酸、アルコールに次いでカルボン酸に過酸化カリウムで酸化されるマレエート化ロジン、マレイン酸、リンゴ酸、メサコン酸、３−４カルボキシル基を導入するために反応させたビフェノールＡまたはビスフェノールＦ、シュウ酸、フタル酸、セバシン酸、コハク酸、酒石酸、テレフタル酸、テトラブロモフタル酸、テトラクロロフタル酸、テトラヒドロフタル酸、トリメリト酸、トリメシン酸、ならびにこれらの無水物等が挙げられる。
【００２１】
リンカーとしては、具体的には、例えば、特表２０１１−５１７３０９号公報に記載されたもの等が挙げられるが、これらに限定されることはない。
【００２２】
［分離膜］
本実施形態においては、金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量は、分離膜のカットオフ分子量未満である。ここで、「カットオフ分子量」とは、分離膜が特定の阻止率で阻止できる物質の最小の分子量を指し、「阻止率Ｒ」は、分離膜透過前の原液中の溶質濃度をＣｂ、分離膜透過後の透過液中の溶質濃度をＣｐとしたとき、Ｒ＝１−Ｃｐ／Ｃｂで求めることができる。
【００２３】
カットオフ分子量及び阻止率Ｒは、用途に応じて適宜設定すればよい。阻止率Ｒは、例えば、７０％以上であってもよく、７５％以上であってもよく、８０％以上であってもよく、８５％以上であってもよく、９０％以上であってもよく、９５％以上であってもよく、９９％以上であってもよく、９９．９％以上であってもよく、９９．９９％以上であってもよく、９９．９９９％以上であってもよく、９９．９９９９％以上であってもよく、１００％であってもよい。
【００２４】
また、中心金属が金属クラスターである場合、その分子量は金属クラスターを構成する金属自体の分子量を意味する。
【００２５】
本実施形態において「分離膜」とは、特定のカットオフ分子量未満の物質のみ透過できる膜のことを指し、人工腎臓および人工透析に用いられる透析膜やバイオ生産物の精製に用いられる分離膜を含む。分離膜は、そのカットオフ分子量が、併用する金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーの分子量以上であれば、特に限定されることなく、様々な種類および形態のものを用いることができる。具体的には、透析膜、限外ろ過膜、精密ろ過膜、イオン交換膜、ナノろ過膜、逆浸透膜、および正浸透膜等が挙げられ、用途に応じて最適なものを選択して用いることができる。また、分離膜の形態も特に限定されず、平膜または中空糸膜等を用いることができる。
【００２６】
分離膜としては、例えば、酒井清孝「人工透析膜の設計−透析カイネティクスより−」膜(MEMBRANE),14(1),31−44(1989)、酒井清孝「医療用膜の現状と将来展望」膜(MEMBRANE),30(4),185−191(2005)、酒井清孝「血液透析治療の歴史−装置工学的側面から見た−」膜(MEMBRANE),37(1),2−9(2012)、特開２０１５−２３１５２３号、特表２０１６−５２８２３３、特開２０１８−３８４２６、ＷＯ２００８／１５６１２４、ＷＯ２０１７／１２６４９６  Ａ１、ＷＯ２０１８／０３８２４８  Ａ１等に記載されたものを用いることができる。分離膜としては、より具体的には、例えば、ＡＰＳ、ＶＰＳ、ｋｆ−ｍ、ＫＦ（以上、すべて旭化成メディカル社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、ＲＥＮＡＫ−ＰＳ、ｋｆ−ｍ、ＫＦ（以上、すべて川澄化学社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、ＢＰ（ＪＭＳ社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、Ｂ３、Ｂ１、ＢＫ、ＢＧ、ＮＦ、ＴＳ、ＣＳ、ＣＸ、ＮＶ（以上、すべて東レ社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、ＦＬＸ、ＦＤＸ、ＦＤＹ、ＦＤＷ、ＦＤＺ、ＰＮ（以上、すべて日機装社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、ＦＢ、ＰＥＳ（以上、すべてニプロ社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、ＦＸ（フレゼニウス社製ダイアライザーの商品シリーズ名）、Ｈ１２（ガンブロ社製ダイアライザーの商品シリーズ名）等を用いることができる。
【００２７】
本実施形態の収着材料は、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる材料である。ここで、「生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体」とは、所望の物質を分泌する生物等の培養上清、又は、所望の物質を産生した動物の血液ないし腹水培養液であって、所望の物質以外の夾雑物ないし溶媒を含む液体のことを指し、具体的には、遺伝子組み換えや細胞融合等の技術により改変した細胞ないし微生物の培養上清、あるいは、免疫した動物の血液ないし腹水培養液等が挙げられる。
【００２８】
本実施形態において、「特定物質」には、収着材料を適用する対象に含まれる種々のものが含まれ、例えば、透析液や血液に適用する場合には、生体に悪影響を及ぼす毒性物質が挙げられ、バイオ生産物に適用する場合には、不純物もしくは有効成分等が挙げられるが、これらに限定されることはない。また、金属有機フレームワークによって捕捉される特定物質は、必ずしも１種である必要はなく、２種以上である場合も含まれる。
【００２９】
ここで、毒性物質としては、生体に悪影響のある物質であれば特に限定されることはないが、例えば、毒素、毒性溶質、毒性小分子もしくは中分子、およびタンパク質結合毒素からなる群から選択される１種以上であり、具体的には、カリウム、リン酸塩、尿素、尿酸、アンモニア、クレアチニン、パラクレジル硫酸、インドキシル硫酸、馬尿酸、３−カルボキシ−４−メチル−５−プロピル−２−フランプロパン酸（ＣＭＰＦ）、β２−ミクログロブリン（β２Ｍ）、ならびにビリルビンおよびパラアミノ馬尿酸などのアルブミン結合毒素等が挙げられる。また、毒性物質には、Vanholder R, et al, kidney Int, 63 (5): 1934−1943, 2003）のTable.1−3に記載された化合物等も含まれる。
【００３０】
また、不純物もしくは有効成分としては、特に限定されないが、バイオ生産物を精製して医薬品を得る場合には、医薬的に好ましくない不純物や、医薬的に有効な成分等が挙げられる。不純物の具体例としては、所望の物質を分泌する生物に由来する成分、所望の物質を分泌する生物の培養に用いた原料液に由来する夾雑成分、ウイルス等が挙げられ、医薬的に有効な成分の具体例としては、抗体医薬やタンパク・ペプチド医薬などのバイオ医薬品等が挙げられる。
【００３１】
なお、本実施形態において「捕捉」とは、ある１種以上の特定物質を、種々の成分が含まれる溶液等から抜き出し保持することを意味し、「除去」、「分離」および「単離」等もこれに含まれる。
【００３２】
［用途］
本実施形態の収着材料は、人工腎臓および人工透析用の収着材料や、バイオ生産物用の収着材料として特に有用であるが、これらの用途に限定されることはなく、様々な用途に用いることが可能である。具体的には、血液浄化療法、解毒治療、エンドトキシン吸着療法、活性炭吸着療法、ビリルビン吸着療法、血球吸着療法、あるいは、血漿吸着療法用の収着材料として用いることができる。
【００３３】
バイオ生産物から不純物や毒性物質を分離するための収着材料として用いる場合には、例えば、バイオ医薬品を精製する際に、様々な膜による膜分離処理やクロマト工程を経て細胞や微生物の培養液から不純物を除去・分離することが一般的であるが、そのいずれかの工程間或いは工程中において、本実施形態の収着材料を用いて不純物や毒性物質を除去することができる。また、例えば、アフィニティ精製によってバイオ医薬品の有効成分を分離する場合には、本実施形態の収着材料を用いて特異的に有効成分を捕捉することができる。
【００３４】
［特定物質捕捉システム］
本実施形態における特定物質捕捉システムは、
透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉することのできる金属有機フレームワークを含む収着材料を備えた第１の手段と、
少なくとも前記金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーを除去するための分離膜を備えた第２の手段と、
を有する特定物質捕捉システムであって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、前記分離膜のカットオフ分子量未満である。
【００３５】
本実施形態における特定物質捕捉システムは、第１の手段により、血液やバイオ生産物等から特定物質を捕捉し、さらに、第１の手段に含まれる金属有機フレームワークが意図せず分解した場合でも、分解した中心金属およびリンカーが第２の手段により除去されるため、収着材料分解物の血液、血漿、ないしバイオ生産物への混入を防止することができる。
【００３６】
第１の手段と第２の手段は、同一の装置内に存在していても、別々の装置内に存在していてもよい。また、各手段の順序についても特に限定されず。第１の手段が第２の手段よりも前に配置されていても、第１の手段が第２の手段よりも後に配置されていてもよい。例えば、本実施形態の特定物質捕捉システムを血液透析に用いる場合、第１の手段が第２の手段よりも後に配置されている場合には、収着材料分解物が一旦生体内に入った後、生体の血液排出口から排出された血液が第２の手段を通過することによって、収着材料分解物が適切に除去される。
【００３７】
［特定物質捕捉方法］
本実施形態における特定物質捕捉方法は、
金属有機フレームワークを含む収着材料を用いて、透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉する特定物質捕捉方法であって、
前記金属有機フレームワークを構成する中心金属およびリンカーの分子量が、分離膜のカットオフ分子量未満である。
本実施形態の特定物質捕捉方法により、収着材料として用いる金属有機フレームワークが意図せず中心金属およびリンカーに分解したとしても、分離膜を用いた膜分離工程により、分離膜のカットオフ分子量未満の分子量を有した中心金属およびリンカーが適切に除去されるため、収着材料分解物の血液、血漿、ないしバイオ生産物等への混入を防止することができる。
【００３８】
また、本実施形態における特定物質捕捉方法は、好ましくは、
金属有機フレームワークを含む収着材料を用いて、透析液、血液、血漿、または生物工学的手法により製造された物質の粗生成物を含む液体から、特定物質を捕捉する特定物質捕捉工程と、
前記金属有機フレームワークの分解物である中心金属およびリンカーを、分離膜を用いて除去する膜分離工程と、
を含む方法である。
ここで、上記方法には、特定物質捕捉工程における収着材料の分解物が一旦生体内に入った後、生体の血液排出口から排出された血液が膜分離工程を経ることによって、収着材料分解物が除去される態様も含まれる。
【実施例】
【００３９】
以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、これらは本発明の範囲を実施例に制限することを意図したものではない。
【００４０】
実施例及び比較例で製造した金属フレームワークの各物性の測定方法および評価方法は以下のとおりである。
【００４１】
＜分子量＞
金属有機フレームワーク（１０ｍｇ）を１ｍｍｏｌ／ｌの水酸化ナトリウム水溶液（１０ｍｌ）に完全に溶解させる、もしくは硫酸水溶液（５ｍｌ）に完全に溶解させた後にジメチルスルホキシド溶液を加え１０ｍｌとし、液体クロマトグラフィ質量分析法によりリンカーの分子量を測定した。
【００４２】
＜金属有機フレームワークによるＣＭＰＦまたは尿毒素の除去率評価＞
金属有機フレームワークによるＣＭＰＦまたは馬尿酸（いずれも代表的な尿毒素）の除去率評価は以下の方法により行った。容器中の金属有機フレームワーク（２．５ｍｇ）に、２０ｐｐｍのＣＭＰＦ水溶液（２．５ｍｌ）を加え、容器を２５℃で２４時間保持することにより、金属有機フレームワークにＣＭＰＦを吸着させた。その後、１０００ＲＣＦで１０分遠心し、上澄み液を回収した。そして、上澄み液中のＣＭＰＦ濃度を高速液体クロマトグラフィーにより測定し、金属有機フレームワーク非存在下でのＣＭＰＦ濃度と比較することで吸着除去率を算出した。除去率が７０％以上のものを◎、３０％以上７０％未満のものを○、３０％未満のものを△とした。同様の方法で馬尿酸除去率を算出した。
【００４３】
＜金属有機フレームワークの溶出量評価＞
金属有機フレームワーク１．５ｍｇを２．０ｍｌの５０ｍＭトリス緩衝液（イオン強度０．１５ｍｏｌ／ｌ）中に分散させ、３７℃で２４時間静置した。静置後のサンプルを１０００ＲＣＦで１０分遠心して得られた上澄み０．２ｍＬを透析器（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ社製、Ｍｉｃｒｏ  Ｆｌｏａｔ−Ａ−Ｌｙｚｅｒ、Ｆ２３５０５１；ＭＷＣＯ（カットオフ分子量）＝１，０００）に備え、１．０Ｌの５０ｍＭトリス緩衝液（イオン強度０．１５ｍｏｌ／ｌ）を用いて２４時間透析を行なった。透析終了後、上澄み中の金属濃度および配位子濃度を、各々ＩＣＰ発光分析測定および紫外可視吸収スペクトル測定より求めた。金属および配位子の濃度が１０ｐｐｍ以下を◎、２０ｐｐｍ以上５０ｐｐｍ以下を○、５０ｐｐｍ以上１００ｐｐｍ以下を△、１００ｐｐｍ以上を×とした。
【００４４】
＜金属塩と有機配位子の略称＞
（金属塩）
ＺｒＣｌ4：塩化ジルコニウム（Ｚｉｒｃｏｎｉｕｍ（ＩＶ）  Ｃｈｌｏｒｉｄｅ）
ＨｆＣｌ4：塩化ジルコニウム（Ｈａｆｎｉｕｍ（ＩＶ）  Ｃｈｌｏｒｉｄｅ）
ＺｒＯＣｌ2・８Ｈ2Ｏ：オキシ塩化ジルコニウム・８水和物（Ｚｉｒｃｏｎｉｕｍ（ＩＶ）  ｏｘｙｃｈｌｏｒｉｄｅ  ｏｃｔａｈｙｄｒａｔｅ）
ＨｆＯＣｌ2・８Ｈ2Ｏ：オキシ塩化ハフニウム・８水和物（Ｈａｆｎｉｕｍ（ＩＶ）  ｏｘｙｃｈｌｏｒｉｄｅ  ｏｃｔａｈｙｄｒａｔｅ）
【００４５】
（有機配位子）
ＢＤＣ：テレフタル酸（Ｔｅｒｅｐｈｔｈａｌｉｃ  ａｃｉｄ）
ＢＤＣ−ＮＨ2：２−アミノテレフタル酸（２−Ａｍｉｎｏｔｅｒｅｐｈｔｈａｌｉｃ  ａｃｉｄ）
ＢＤＣ−（ＣＯＯＨ）2：ピロメリト酸（Ｐｙｒｏｍｅｌｌｉｔｉｃ  ａｃｉｄ）
ＮＤＣ：２、６−ナフタレンジカルボン酸（２，６−Ｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅｄｉｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ）
ＢＰＤＣ：４、４’−ビフェニルジカルボン酸（４，４’−Ｂｉｐｈｅｎｙｌｄｉｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ）
Ｍｅ2ＢＰＤＣ：２、２’−ジメチルビフェニル−４、４'−ジカルボン酸（２，２’−ｄｉｍｅｔｈｙｌｂｉｐｈｅｎｙｌ−４，４’−ｄｉｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ）
ＢＤＣ−（ＯＨ）2：２、５−ジヒドロキシテレフタル酸（２，５−Ｄｉｈｙｄｒｏｘｙｔｅｒｅｐｈｔｈａｌｉｃ  ａｃｉｄ）
ＴＤＣ：２、５−チオフェンジカルボン酸（２，５−Ｔｈｉｏｐｈｅｎｅｄｉｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ）
ＴＣＰＰ：テトラキス（４−カルボキシフェニル）ポルフィリン（Ｔｅｔｒａｋｉｓ（４−ｃａｒｂｏｘｙｐｈｅｎｙｌ）ｐｏｒｐｈｙｒｉｎ））
ＴＣＢＰ：テトラキス（４−カルボキシビフェニル）ポルフィリン（Ｔｅｔｒａｋｉｓ（４−ｃａｒｂｏｘｙｂｉｐｈｅｎｙｌ）ｐｏｒｐｈｙｒｉｎ））
Ｈ4ＴＢＡＰｙ：１、３、６、８−テトラキス（ｐ−カルボキシフェニル）ピレン（１，３，６，８−ｔｅｔｒａｋｉｓ（ｐ−ｂｅｎｚｏｉｃ  ａｃｉｄ）ｐｙｒｅｎｅ
Ｈ4ＴＰＣＢ：２、２’−ジヒドロビフェニル−３、３'、５、５'−テトラ（フェニル−４−カルボン酸）（２，２’−ｄｉｈｙｄｒｏｂｉｐｈｅｎｙｌ−３，３’，５，５’−ｔｅｔｒａ（ｐｈｅｎｙｌ−４−ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ））
４、４’−ＮＨ2−Ｈ4ＴＰＣＢ：４、４’−ジアミノ−３、３'、５、５'−テトラ（フェニル−４−カルボン酸）（４，４’−ｄｉａｍｉｎｏ−ｂｉｐｈｅｎｙｌ−３，３’，５，５’−ｔｅｔｒａ（ｐｈｅｎｙｌ−４−ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ））
４、４’−ＯＨ−Ｈ4ＴＰＣＢ：４、４’−ジヒドロキシ−３、３'、５、５'−テトラ（フェニル−４−カルボン酸）（４，４’−ｄｉｈｙｄｒｏｘｙ−ｂｉｐｈｅｎｙｌ−３，３’，５，５’−ｔｅｔｒａ（ｐｈｅｎｙｌ−４−ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ  ａｃｉｄ））
Ｈ4ＭＤＩＰ：３、３’、５、５’−テトラカルボキシジフェニルメタン（３，３’，５，５’−ｔｅｔｒａｃａｒｂｏｘｙｄｉｐｈｅｎｙｌｍｅｔｈａｎｅ）
ＴＭＴＡ：１、３、５−トリス（４−カルボキシフェニル）−２、４、６−トリメチルベンゼン（１，３，５−ｔｒｉｓ（４−ｃａｒｂｏｘｙｐｈｅｎｙｌ）−２，４，６−ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｅｎｅ）
【００４６】
【化１】
2020054801.tif 000002
【００４７】
＜金属有機フレームワークの合成＞
金属有機フレームワークを以下の実施例および比較例に示す通りに作成した。
【００４８】
（実施例１−１−１）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）、ＢＤＣ（１２３ｍｇ）、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ、１５ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた。続いて、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（１．０ｍｌ）を加えた後、室温まで空冷させた。得られた前記反応溶液を８０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた固体をジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ、１５ｍｌ）で計３回洗浄を行い、再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、８０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、８０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００４９】
（実施例１−１−２）
ＢＤＣ（１２３ｍｇ）からＢＤＣ−ＮＨ2（１３５ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−１と同様に合成した。
【００５０】
（実施例１−１−３）
ＢＤＣ（１２３ｍｇ）からＢＤＣ−（ＣＯＯＨ）2（１９０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−１と同様に合成した。
【００５１】
（実施例１−２）
ＢＤＣ（１２３ｍｇ）からＢＰＤＣ（９０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−１と同様に合成した。
【００５２】
（実施例１−３）
ＢＤＣ（１２３ｍｇ）からＮＤＣ（８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−１と同様に合成した。
【００５３】
（実施例１−４）
ＢＤＣ（１２３ｍｇ）からＢＤＣ−（ＯＨ）2（１３５ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−１と同様に合成した。
【００５４】
（実施例１−５）
密閉式ガラス容器に（８０ｍｇ）、ギ酸（１０ｍｌ）、ＢＴＣ（５０ｍｇ）、ＤＭＦ（１０ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１００℃の防爆オーブンで５日間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により白色固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＦ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた固体をＤＭＳＯ（１５ｍｌ）で計３回洗浄を行い、再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、８０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により白色固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１５０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００５５】
（実施例１−６）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２３０ｍｇ）、ＴＤＣ（２５８ｍｇ）、ＤＭＦ（２５ｍｌ）、酢酸（１１ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで３日間反応させた。反応終了後、得られた固体をＤＭＳＯ（１５ｍｌ）で計３回洗浄を行い、再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷し、遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１００℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００５６】
（実施例１−７）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２００ｍｇ）、ＢＰＤＣ−（ＣＨ3）2（１００ｍｇ）、ＤＭＦ（２０ｍｌ）、トリフルオロ酢酸（１ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで３日間反応させた。反応終了後、得られた固体をＤＭＳＯ（１５ｍｌ）で計３回洗浄を行い、再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（１．０ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷し、遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１００℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００５７】
（実施例１−８）
密閉式ガラス容器に（３８ｍｇ）、ＴＣＰＰ（７ｍｇ）、ギ酸（７ｍｌ）、ＤＭＦ（１０ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１３０℃の防爆オーブンで５日間反応させた。反応終了後、得られた固体をＤＭＳＯ（１５ｍｌ）で計３回洗浄を行い、再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷し、遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１２０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００５８】
（実施例１−９）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（３０ｍｇ）、ＴＣＰＰ（１０ｍｇ）、安息香酸（４００ｍｇ）、ＤＭＦ（２ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１２０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００５９】
（実施例１−１０）
密閉式ガラス容器に（２００ｍｇ）、安息香酸（３ｇ）、ＤＭＦ（１６ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、トリフルオロ酢酸（１６０μｌ）、Ｈ4ＴＢＡＰｙ（８０ｍｇ）を加え、十分溶解させた。得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（１ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１２０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６０】
（実施例１−１１）
密閉式ガラス容器に（１００ｍｇ）、１−アミノ安息香酸（３ｇ）、ＤＭＦ（８ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、Ｈ4ＴＢＡＰｙ（４０ｍｇ）を加え、十分溶解させた。得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（２０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（１ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１２０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６１】
（実施例１−１２）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２０ｍｇ）、ＴＰＣＢ（１０ｍｇ）、安息香酸（７００ｍｇ）、ＤＭＦ（３ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（１０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、８０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６２】
（実施例１−１３）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２０ｍｇ）、４、４’−ＯＨ−ＴＰＣＢ（１０ｍｇ）、安息香酸（５００ｍｇ）、ＤＭＦ（２ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで４８時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（１０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、８０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６３】
（実施例１−１４）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２０ｍｇ）、４、４’−ＯＨ−ＴＰＣＢ（１０ｍｇ）、安息香酸（５００ｍｇ）、ＤＭＦ（２ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで４８時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（１０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（０．５ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、８０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６４】
（実施例１−１５）
密閉式反応容器にＨ4ＭＤＩＰ（２００ｍｇ）、ギ酸（１２ｍｌ）、無水酢酸（１５ｍｌ）を加え１２０℃で十分に溶解させた後、得られた溶液にＺｒＣｌ4（４００ｍｇ）を加え、１２０℃の防爆オーブンで７２時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（５０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（４ｍＬ）を加えた後、８０℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、８０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６５】
（実施例１−１６）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２００ｍｇ）、Ｍｅ2−ＢＰＤＣ（１００ｍｇ）、ＤＭＦ（２０ｍｌ）、トリフルオロ酢酸（１ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで３日間反応させた。反応終了後、得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１００℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６６】
（実施例１−１７）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２３０ｍｇ）、ＴＤＣ（１１０ｍｇ）、ＤＭＦ（１０ｍｌ）、Ｎ−メチルピロリドン（１０ｍｌ）、酢酸（７ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで２日間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１００℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６７】
（実施例１−１８）
密閉式ガラス容器にＺｒＣｌ4（２３０ｍｇ）、ＴＤＣ（１７２ｍｇ）、ＤＭＦ（５０ｍｌ）、酢酸（３ｍｌ）を加え室温で十分に溶解させた後、得られた溶液を１２０℃の防爆オーブンで１２時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１００℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６８】
（比較例１−１）
密閉式反応容器にＴＣＢＰ（１２０ｍｇ）、安息香酸（１．４ｇ）、ＤＭＦ（８ｍｌ）を加え８０℃で十分に溶解させた後、得られた溶液にＺｒＣｌ4（８０ｍｇ）を加え、１２０℃の防爆オーブンで７２時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体を再度ＤＭＳＯ（５０ｍｌ）に分散させ、１２ｍｍｏｌ／ｌの塩酸（１．０ｍＬ）を加えた後、１００℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、得られた溶液から遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計３回、アセトン（１５ｍｌ）で計３回洗浄および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１２０℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００６９】
（実施例２−１−１）
ＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）から塩化ハフニウム（１８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−１と同様に合成した。
【００７０】
（実施例２−１−２）
ＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）から塩化ハフニウム（１８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−２と同様に合成した。
【００７１】
（実施例２−１−３）
ＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）から塩化ハフニウム（１８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１−３と同様に合成した。
【００７２】
（実施例２−２）
ＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）から塩化ハフニウム（１８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−２と同様に合成した。
【００７３】
（実施例２−３）
ＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）から塩化ハフニウム（１８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−３と同様に合成した。
【００７４】
（実施例２−４）
ＺｒＣｌ4（１２５ｍｇ）から塩化ハフニウム（１８０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−４と同様に合成した。
【００７５】
（実施例２−５）
オキシ塩化ジルコニウム（８０ｍｇ）からＨｆＯＣｌ２・８Ｈ２Ｏ（１５０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−５と同様に合成した。
【００７６】
（実施例２−６）
ＺｒＣｌ4（２３０ｍｇ）からＨｆＯＣｌ２・８Ｈ２Ｏ（３５０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−６と同様に合成した。
【００７７】
（実施例２−７）
ＺｒＣｌ4（２００ｍｇ）から塩化ハフニウム（３００ｍｇ）に変更した以外は実施例１−８と同様に合成した。
【００７８】
（実施例２−８）
ＺｒＯＣｌ2・８Ｈ2Ｏ（３８ｍｇ）からＨｆＯＣｌ２・８Ｈ２Ｏ（５０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−７と同様に合成した。
【００７９】
（実施例２−９）
ＺｒＣｌ4（３０ｍｇ）から塩化ハフニウム（４０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−９と同様に合成した。
【００８０】
（実施例２−１０）
ＺｒＯＣｌ2・８Ｈ2Ｏ（２００ｍｇ）からＨｆＯＣｌ２・８Ｈ２Ｏ（２４０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１０と同様に合成した。
【００８１】
（実施例２−１１）
ＺｒＯＣｌ2・８Ｈ2Ｏ（１００ｍｇ）からＨｆＯＣｌ２・８Ｈ２Ｏ（１５０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１１と同様に合成した。
【００８２】
（実施例２−１２）
ＺｒＣｌ4（２０ｍｇ）から塩化ハフニウム（３０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１２と同様に合成した。
【００８３】
（実施例２−１３）
ＺｒＣｌ4（２０ｍｇ）から塩化ハフニウム（３０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１３と同様に合成した。
【００８４】
（実施例２−１４）
ＺｒＣｌ4（２０ｍｇ）から塩化ハフニウム（３０ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１２と同様に合成した。
【００８５】
（実施例２−１５）
ＺｒＣｌ4（４００ｍｇ）から塩化ハフニウム（６００ｍｇ）に変更した以外は実施例１−１５と同様に合成した。
【００８６】
（実施例３−１）
密閉式ガラス容器に鉄（粉末、１１０ｍｇ）、ＢＴＣ（２８０ｍｇ）、硝酸（１５．６Ｍ、８０μｌ）、水（１０ｍｌ）を加え９５℃の防爆オーブンで２４時間反応させた。反応終了後、容器を室温まで空冷した後、遠心分離により固体を回収した。得られた固体は、水（１５ｍｌ）で計５回洗浄後、６０℃の防爆オーブンで加熱した。加熱終了後、容器を室温まで空冷下後、ＤＭＦ（１５ｍｌ）で計５回、エタノール（１５ｍｌ）で計３回洗浄を行った。および遠心分離を行い、未反応原料を除去した。続いて、１００℃、２ｍｍＨｇの条件下で２４時間乾燥を行い、金属有機フレームワークを得た。
【００８７】
（実施例３−２）
鉄（粉末、１１０ｍｇ）をクロム（粉末、１００ｍｇ）に変更した以外は実施例３−１と同様に合成した。
【００８８】
（実施例３−３）
鉄（粉末、１１０ｍｇ）をアルミニウム（粉末、１００ｍｇ）に変更した以外は実施例３−１と同様に合成した。
【００８９】
得られた金属有機フレームワークの単結晶Ｘ線構造解析を行ったところ、いずれも、Ｚｒ、ＨｆまたはＦｅが３または６個集合してなる金属クラスターとリンカーとから構成されていることが確認された。それぞれの金属有機フレームワークの中心金属の金属原子数を表１〜３に示す。
【００９０】
金属有機フレームワークの評価結果を表１〜３に示す。
【００９１】
中心金属とリンカーの分子量が１，０００未満である実施例１−１−１、１−１−２、１−１−３、１−２〜１−１８、実施例２−１−１、２−１−２、２−１−３、２−２〜２−１５、および、実施例３−１〜３−３を備えた第一の手段と、透析膜（カットオフ分子量：５００−１０００）を備えた第二の手段と、を有するシステム中では、いずれも金属有機フレームワークの溶出量が１０ｐｐｍ以下に抑えられていた。
【表１】
2020054801.tif 000003
【表２】
2020054801.tif 000004
【表３】
2020054801.tif 000005