(57)【要約】【課題】本発明はＩｇＧ４関連疾患をより高い精度で検査する検査方法を提供する。【解決手段】本発明の検査方法は、ＩｇＧ４関連疾患の指標として、検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程を含み、間接検出工程が、前記複合体と検体とを接触させる第１工程と、第１工程後の前記複合体と、前記指標抗体が結合していない前記複合体と結合するが前記指標抗体が結合している前記複合体とは結合しない抗体、或いは、前記指標抗体が結合していない前記複合体と結合しないが前記指標抗体が結合している前記複合体とは結合する抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、第２工程後の前記複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程とを含む。【選択図】図３
2020046412.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＩｇＧ４関連疾患の検査方法であって、
ＩｇＧ４関連疾患の指標として、検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法。
【請求項２】
前記ＩｇＧ４関連疾患が、自己免疫性膵炎である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記検出用抗体が、前記第１の検出用抗体である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
ラミニン−インテグリン複合体を構成するインテグリンが、インテグリンα６β１である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
前記検出用抗体が、インテグリンα６鎖のβプロペラドメインに含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記検出用抗体が、配列番号１で示されるインテグリンα６鎖のアミノ酸配列の第１位〜第１００位の範囲内に含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、請求項４又は５に記載の方法。
【請求項７】
前記検体が血液試料である、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
ラミニン及びインテグリンとの組み合わせ、或いは、ラミニン−インテグリン複合体と、
ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体と
を含む、ＩｇＧ４関連疾患の検査キット。
【請求項９】
前記ＩｇＧ４関連疾患が、自己免疫性膵炎である、請求項８に記載のキット。
【請求項１０】
前記検出用抗体が、前記第１の検出用抗体である、請求項８又は９に記載のキット。
【請求項１１】
インテグリン又はラミニン−インテグリン複合体を構成するインテグリンが、インテグリンα６β１である、請求項８〜１０のいずれか１項に記載のキット。
【請求項１２】
前記検出用抗体が、インテグリンα６鎖のβプロペラドメインに含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、請求項１１に記載のキット。
【請求項１３】
前記検出用抗体が、配列番号１で示されるインテグリンα６鎖のアミノ酸配列の第１位〜第１００位の範囲内に含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、請求項１１又は１２に記載のキット。
【請求項１４】
ラミニン及びインテグリンのうち一方、或いは、ラミニン−インテグリン複合体を、固相に固定された形態で含む、請求項８〜１３のいずれか１項に記載のキット。
【請求項１５】
前記検出用抗体と免疫学的に結合する、標識された二次抗体を更に含む、請求項８〜１４のいずれか１項に記載のキット。
【請求項１６】
ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法であって、
ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法。
【請求項１７】
ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質をスクリーニングする方法であって、
試験物質を作用させた動物から得た検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程と、
前記試験物質を作用させたことにより前記検体中の前記指標抗体が減少した場合に、前記試験物質を、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質として選抜する選抜工程と
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＩｇＧ４関連疾患の検査方法、ＩｇＧ４関連疾患を検査するための検査試薬、ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法、及び、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質をスクリーニングする方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＩｇＧ４関連疾患とは、血清ＩｇＧ４高値とＩｇＧ４陽性形質細胞の組織浸潤または腫瘤形成を特徴とする疾患群である。
【０００３】
ＩｇＧ４関連疾患は比較的新しい疾患概念であり、これまでのところ原因は不明である。罹患臓器としては膵臓、胆管、涙腺・唾液腺、中枢神経系、甲状腺、肺、肝臓、消化管、腎臓、前立腺、後腹膜、動脈、リンパ節、皮膚、乳腺等が知られている。病変が複数臓器におよび全身疾患としての特徴を有することが多いが、単一臓器病変の場合もある。
【０００４】
自己免疫性膵炎（ＡＩＰ）、ＩｇＧ４関連腎疾患、ＩｇＧ４関連涙腺唾液腺炎等がＩｇＧ４関連疾患に分類される疾患として知られている。
【０００５】
これまでに自己免疫性膵炎の検査方法として、ＨＳＰ１０と免疫学的に結合する抗体を検出する方法（特許文献１）や、アミラーゼα２−Ａと免疫学的に結合する抗体を検出する方法（特許文献２）が知られている。しかしながら、これらの方法は、自己免疫性膵炎の検査方法として必ずしも満足できるものではなかった。
【０００６】
従来の方法では、ＩｇＧ４関連疾患であると診断することは容易ではなかった。例えば、ＡＩＰは膵臓での組織浸潤を特徴とするが、組織の観察像からは膵癌との判別が難しく、ＡＩＰが誤って膵癌と診断される可能性もあった。
【０００７】
そこで本発明者らは、特許文献３において、ＡＩＰ等のＩｇＧ４関連疾患の病原物質が、ラミニンに対する自己抗体及びインテグリンに対する自己抗体であること、及び、血清中における抗ラミニン抗体及び抗インテグリン抗体がＩｇＧ４関連疾患の指標となることを開示した。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特開２００９−２９４０４０号公報
【特許文献２】特開２００８−２７５５２７号公報
【特許文献３】国際公開ＷＯ２０１８／０１６６０７
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
特許文献３の実験９では、５１名のＡＩＰ患者のうち、２６名が抗ラミニン抗体陽性かつ抗インテグリン抗体陰性であり、４名が抗ラミニン抗体陰性かつ抗インテグリン抗体陽性であり、２１名が抗ラミニン抗体と抗インテグリン抗体の両方とも陰性であったことが示されている。すなわち、ＡＩＰ患者の５９％（３０名／５１名）で、抗ラミニン抗体及び抗インテグリン抗体の一方が陽性であり、これらはＡＩＰマーカー抗体として有用であることが確認された。しかし、ＡＩＰ患者の残りの４１％（２１名／５１名）については、自己抗体が確認できず偽陰性となるという課題があった。
【００１０】
ＡＩＰ等のＩｇＧ４関連疾患を、偽陰性及び偽陽性の可能性が低減された、より高い精度で検査する検査方法の提供が求められている。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
ラミニンとインテグリンは生体内ではラミニン−インテグリン複合体として存在する。本発明者らは、ＩｇＧ４関連疾患の患者が有する抗ラミニン抗体、抗インテグリン抗体等の自己抗体が、ラミニン−インテグリン複合体に結合するときに、該複合体の状態になんらかの変化が生じると推定した。本発明者らは、ＩｇＧ４関連疾患患者の自己抗体のラミニン−インテグリン複合体への結合を直接的に検出するのではなく、自己抗体の結合に伴うラミニン−インテグリン複合体の状態変化を検出することを試みた。そして前記の状態変化を検出する手段として、前記自己抗体が結合していない前記複合体とは免疫学的に結合するが、前記自己抗体が結合している前記複合体とは免疫学的に結合しない抗体、或いは、前記自己抗体が結合していない前記複合体とは免疫学的に結合しないが、前記自己抗体が結合している前記複合体とは免疫学的に結合する抗体である検出用抗体に着目した。そして、ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させ、次いで、前記複合体に前記検出用抗体を接触させ、次いで、前記複合体に結合した前記検出用抗体を検出することで、ＩｇＧ４関連疾患を、偽陰性及び偽陽性がなく高い精度で検査することが可能であることを見出し、この知見に基づいて以下の発明を完成するに至った。
【００１２】
（１）ＩｇＧ４関連疾患の検査方法であって、
ＩｇＧ４関連疾患の指標として、検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法。
（２）前記ＩｇＧ４関連疾患が、自己免疫性膵炎である、（１）に記載の方法。
（３）前記検出用抗体が、前記第１の検出用抗体である、（１）又は（２）に記載の方法。
（４）ラミニン−インテグリン複合体を構成するインテグリンが、インテグリンα６β１である、（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。
（５）前記検出用抗体が、インテグリンα６鎖のβプロペラドメインに含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、（４）に記載の方法。
（６）前記検出用抗体が、配列番号１で示されるインテグリンα６鎖のアミノ酸配列の第１位〜第１００位の範囲内に含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、（４）又は（５）に記載の方法。
（７）前記検体が血液試料である、（１）〜（６）のいずれかに記載の方法。
（８）ラミニン及びインテグリンとの組み合わせ、或いは、ラミニン−インテグリン複合体と、
ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体と
を含む、ＩｇＧ４関連疾患の検査キット。
（９）前記ＩｇＧ４関連疾患が、自己免疫性膵炎である、（８）に記載のキット。
（１０）前記検出用抗体が、前記第１の検出用抗体である、（８）又は（９）に記載のキット。
（１１）インテグリン又はラミニン−インテグリン複合体を構成するインテグリンが、インテグリンα６β１である、（８）〜（１０）のいずれかに記載のキット。
（１２）前記検出用抗体が、インテグリンα６鎖のβプロペラドメインに含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、（１１）に記載のキット。
（１３）前記検出用抗体が、配列番号１で示されるインテグリンα６鎖のアミノ酸配列の第１位〜第１００位の範囲内に含まれる領域をエピトープとして認識する抗体である、（１１）又は（１２）に記載のキット。
（１４）ラミニン及びインテグリンのうち一方、或いは、ラミニン−インテグリン複合体を、固相に固定された形態で含む、（８）〜（１３）のいずれかに記載のキット。
（１５）前記検出用抗体と免疫学的に結合する、標識された二次抗体を更に含む、（８）〜（１４）のいずれかに記載のキット。
（１６）ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法であって、
ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法。
（１７）ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質をスクリーニングする方法であって、
試験物質を作用させた動物から得た検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程と、
前記試験物質を作用させたことにより前記検体中の前記指標抗体が減少した場合に、前記試験物質を、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質として選抜する選抜工程と
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によれば、偽陰性及び偽陽性の可能性が低減されたＩｇＧ４関連疾患の検査方法、ＩｇＧ４関連疾患を検査するための検査キット、ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質をスクリーニングする方法として有効な手段が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】図１は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）のＩｇＧ４濃度（ｍｇ／ｄｌ）の測定結果を示す。
【図２】図２は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）の抗ヒトラミニン５１１活性断片抗体の定量結果を示す。
【図３】図３は本発明の方法の概要を説明するための模式図である。図３（Ａ）は、固相１０上にヒトラミニン−５１１−Ｅ８（ラミニン５１１活性断片）１を固定し、更に、このラミニン５１１活性断片１にヒトインテグリンα６β１（インテグリン）２を結合させてラミニン−インテグリン複合体３を形成する例を示す。図３（Ｂ１）及び（Ｂ２）は、固相１０に固定された複合体３に血清Ｓを接触させる例を示す。図３（Ｂ１）は、血清Ｓ中に複合体３に結合する自己抗体４が存在する場合に、自己抗体４が複合体３に結合することを示す。図３（Ｂ２）は、血清Ｓ中に複合体３に結合する自己抗体４が存在しない場合を示す。図３（Ｃ１）及び（Ｃ２）は、それぞれ、図３（Ｂ１）及び（Ｂ２）に示した血清Ｓと接触後の複合体３に、自己抗体４が結合していない複合体３と結合することができ、且つ、自己抗体４が結合した複合体３とは結合することができない第１の検出用抗体である一次抗体５を接触させた例を示す。図３（Ｄ１）及び図３（Ｄ２）は、それぞれ、図３（Ｃ１）及び（Ｃ２）に示した一次抗体５と接触後の複合体３に、一次抗体５と結合する、ＨＲＰ（セイヨウワサビペルオキシダーゼ）７で標識した二次抗体６を接触させた例を示す。二次抗体６を接触させ、インキュベートし、洗浄した後の固相１０上のＨＲＰ７の酵素活性を指標として二次抗体６の定量を行うことで、一次抗体５が定量される。一次抗体５の量は、血清Ｓ中の、自己抗体４の量に反比例する。
【図４】図４は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補１（抗ラミニンα５抗体ＭＡＢ１９２４）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図５】図５は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補２（抗ラミニンα５抗体ａｂ２１０９５７）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図６】図６は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補３（抗ラミニンβ１抗体ａｂ６９６３３）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図７】図７は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補４（抗ラミニンβ１抗体ａｂ９８２３２）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図８】図８は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補５（抗ラミニンγ１抗体ＬＳ−Ｃ３１２７３７）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図９】図９は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補６（抗ラミニンγ１抗体ＬＳ−Ｃ３５６１５１）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図１０】図１０は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補７（抗インテグリンα６抗体ａｂ１０５６６９）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図１１】図１１は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補８（抗インテグリンα６抗体ａｂ１８１５５１）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【図１２】図１２は、ＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）を試料とし、一次抗体として、候補９（抗インテグリンβ１抗体ａｂ３０３９４）を用いたときの、二次抗体の測定結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
＜１．ＩｇＧ４関連疾患＞
本発明においてＩｇＧ４関連疾患とは、血清ＩｇＧ４高値とＩｇＧ４陽性形質細胞の組織浸潤または腫瘤形成を特徴とする疾患群であり、具体的には、自己免疫性膵炎（ＡＩＰ）、ＩｇＧ４関連腎疾患、ＩｇＧ４関連涙腺唾液腺炎、ＩｇＧ４関連硬化性胆管炎、ＩｇＧ４関連眼疾患、ＩｇＧ４関連動脈周囲炎、ＩｇＧ４関連下垂体炎、ＩｇＧ４関連肺疾患、ＩｇＧ４関連後腹膜線維症が例示できる。本発明が対象とするＩｇＧ４関連疾患は、典型的には、自己免疫性膵炎（ＡＩＰ）である。
【００１６】
＜２．ラミニン−インテグリン複合体＞
ラミニン−インテグリン複合体は、ラミニンとインテグリンとが結合して形成される複合体である。ラミニンは、細胞外マトリクスの基底膜を構成するタンパク質である。インテグリンは細胞表面に存在し、ラミニンと結合するタンパク質である。生体内では細胞外マトリクスの基底膜のラミニンと細胞表面のインテグリンとが結合することで、細胞外マトリクスと細胞との接着に寄与する。
【００１７】
ラミニンは、天然型では、α鎖、β鎖およびγ鎖の３本のサブユニット鎖からなる巨大なヘテロ３量体分子である。α鎖としてα１〜α５、β鎖としてβ１〜β３、γ鎖としてγ１〜γ３が知られており、それらの組み合わせで１２種類以上のアイソフォームが存在する（表１参照）。本発明においてラミニンのアイソフォームは限定されない。すなわち検出しようとする指標抗体と免疫学的に結合する複合体を構成するラミニンは、α１〜α５から選択される１種のα鎖、β１〜β３から選択される１種のβ鎖、γ１〜γ３から選択される１種のγ鎖からなるものであることができ、具体的には、表１に記載の１２種類のいずれか、或いは他のアイソフォームであることができ、好ましくはα鎖がα５、β鎖がβ１、γ鎖がγ１である「ラミニン−５１１」、及び、α鎖がα５、β鎖がβ２、γ鎖がγ１である「ラミニン−５２１」である。
【００１８】
【表１】
2020046412.tif 000003
【００１９】
本発明において、検出しようとする指標抗体と免疫学的に結合する複合体を構成するラミニンの起源は特に限定されないが、ＩｇＧ４関連疾患は通常は自己免疫疾患であることから、被検動物と同じ種のラミニンであることが好ましく、特にヒトが好ましい。ヒト等の哺乳動物の種のラミニンのα鎖、β鎖、γ鎖をコードする遺伝子の塩基配列情報および各鎖のアミノ酸配列情報は、公知のデータベース（ＧｅｎＢａｎｋ等）から取得することができる。表２に、ヒトを含む主な哺乳類について、ラミニンを構成する各鎖のアクセッション番号を示す。表２に示すアミノ酸配列を有するラミニンの各鎖が、更に翻訳後修飾を受けたものが、ラミニンを形成してもよい。これら以外の各種哺乳動物のラミニン構成鎖の塩基配列情報およびアミノ酸配列情報も同様に公知のデータベース（ＧｅｎＢａｎｋ等）から取得することができる。
【００２０】
【表２】
2020046412.tif 000004
【００２１】
本発明においてラミニン、ラミニン−５１１、ラミニン−５２１という各用語は、特に限定しない場合は、α鎖、β鎖及びγ鎖がそれぞれ全長からなる天然型の形態には限定されず、それぞれ、ラミニンの断片、ラミニン−５１１の断片、ラミニン−５２１の断片や、天然型のラミニン、天然型のラミニン−５１１、天然型のラミニン−５２１と等価な形態のものを包含する。従って、検出しようとする指標抗体は、ラミニンの断片を含むラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合するものであってもよい。ラミニンの断片としては、天然型のラミニンの３量体を構成するα鎖、β鎖、γ鎖のうち少なくとも１つが全長よりも短いものが挙げられる。ラミニンの断片は、３量体を形成し、且つ、インテグリン結合活性を有していることがより好ましい。ラミニンの断片が３量体を形成していることは、ラミニンの断片をＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、バンドの数を検出すること等により確認できる。ラミニンの断片がインテグリン結合活性を有していることは、ＥＬＩＳＡ法等により確認することができる。
【００２２】
３量体を形成し、且つ、インテグリン結合活性を有するラミニンの断片としては、天然型のラミニンをエラスターゼ等のタンパク質分解酵素で消化して得られる断片が挙げられ、特に好ましくはＥ８フラグメントである。ラミニンのＥ８フラグメントは、α鎖のＣ末端断片から、Ｃ末端の球状（Ｇ）ドメイン４および５が除かれた断片（α鎖Ｅ８）、β鎖のＣ末端断片（β鎖Ｅ８）およびγ鎖のＣ末端断片（γ鎖Ｅ８）が３量体を形成したフラグメントである（Hiroyuki Ido, Aya Nakamura, Reiko Kobayashi, Shunsuke Ito, Shaoliang Li, Sugiko Futaki, and Kiyotoshi Sekiguchi, The Journal of Biological Chemistry, 282, 11144-11154, 2007）。ラミニンのＥ８フラグメントは、全長ラミニンを膵エラスターゼにより酵素的に消化して得ることができる。市販のラミニンのＥ８フラグメントとしては、ヒトラミニン−５１１−Ｅ８（８９２０１２，株式会社ニッピ製）が例示できる。
【００２３】
インテグリンは、天然型では、α鎖及びβ鎖の２本のサブユニット鎖からなるヘテロ２量体分子である。α鎖としてα１〜α１１、αＶ、αＸ、αＭ、αＬ、αＤ、αＥ、αＩＩｂ、β鎖としてβ１〜β８が知られており、それらの組み合わせが異なる複数のアイソフォームが存在する。ラミニンのリガンドとなり得るインテグリンのアイソフォームとしては、インテグリンα６β１、インテグリンα３β１、インテグリンα６β４が知られている。本発明においてインテグリンのアイソフォームは限定されないが、好ましくはα鎖がα６、β鎖がβ１である「インテグリンα６β１」である。
【００２４】
本発明において、検出しようとする指標抗体と免疫学的に結合する複合体を構成するインテグリンの起源は特に限定されないが、ＩｇＧ４関連疾患は通常は自己免疫疾患であることから、被検動物と同じ種のインテグリンであることが好ましく、特にヒトが好ましい。ヒト等の哺乳動物の種のインテグリンのα鎖、β鎖をコードする遺伝子の塩基配列情報および各鎖のアミノ酸配列情報は、公知のデータベース（ＧｅｎＢａｎｋ等）から取得することができる。表３に、ヒトインテグリンを構成する各鎖のアミノ酸配列及び塩基配列のアクセッション番号を示す。ヒトインテグリンのα６鎖及びβ１鎖には、それぞれ、３つのスプライシングバリアントが知られている。表３に示すアミノ酸配列を有するヒトインテグリンのα鎖、β鎖が、更に翻訳後修飾を受けたものが、ヒトインテグリンを形成してもよい。これら以外の各種哺乳動物のインテグリン構成鎖の塩基配列情報およびアミノ酸配列情報も同様に公知のデータベース（ＧｅｎＢａｎｋ等）から取得することができる。
【００２５】
【表３】
2020046412.tif 000005
【００２６】
本発明においてインテグリン、インテグリンα６β１、インテグリンα３β１という各用語は、特に限定しない場合は、α鎖及びβ鎖がそれぞれ全長からなる形態には限定されず、それぞれ、インテグリンの断片、インテグリンα６β１の断片、インテグリンα３β１の断片や、天然型のインテグリン、天然型のインテグリンα６β１、天然型のインテグリンα３β１と等価な形態のものを包含する。従って、検出しようとする指標抗体は、インテグリンの断片を含むラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合するものであってもよい。インテグリンの断片としては、インテグリンの２量体を構成するα鎖、β鎖のうち少なくとも１つが全長よりも短いものが挙げられる。インテグリンの断片は、２量体を形成していることが好ましく、ラミニン結合活性を有していることがより好ましい。インテグリンの断片が２量体を形成していることは、インテグリンの断片をＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、バンドの数を検出すること等により確認できる。インテグリンの断片がラミニン結合活性を有していることは、ＥＬＩＳＡ法等により確認することができる。市販のインテグリンとしては、リコンビナントヒトインテグリンα６β１（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ、米国ミネソタ州、製品番号７８０９−Ａ６）、リコンビナントヒトインテグリンα３β１（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ、米国ミネソタ州、製品番号２８４０−Ａ３）が例示できる。
【００２７】
インテグリンの断片としては、市販されているヒトインテグリンα６β１の断片であるＨｕｍａｎ  ＩＴＧＡ６  ＆  ＩＴＧＢ１（中国北京、Ｓｉｎｏ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ、製品番号ＣＴ０１３−Ｈ２５０８Ｈ−２０）が例示できる。
【００２８】
ラミニン−インテグリン複合体は、ラミニンとインテグリンとを接触させインキュベートすることで形成することができる。好ましくは、ラミニンとインテグリンのうち一方（好ましくはラミニン）を固相の表面に固定化し、次いで、該固相の表面にラミニンとインテグリンのうち他方（好ましくはインテグリン）を接触させインキュベートすることで、ラミニン−インテグリン複合体を形成することができる。ラミニンとインテグリンとの結合は、適当な緩衝液中で行うことができる。
【００２９】
＜３．指標抗体＞
本発明では、ＩｇＧ４関連疾患に罹患した動物が特徴的に有する、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する抗体を、ＩｇＧ４関連疾患の指標として間接的に検出する。そこで、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する抗体を「指標抗体」と称する。指標抗体は、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する抗体であればよく、インテグリンとの複合体を形成しない状態のラミニンとも免疫学的に結合する抗ラミニン抗体や、ラミニンとの複合体を形成しない状態のインテグリンとも免疫学的に結合する抗インテグリン抗体や、ラミニン−インテグリン複合体に免疫学的に結合するが、複合体を形成しないラミニン又はインテグリンとは結合しない抗複合体抗体を包含する。例えば、指標抗体は、後述のようにＩｇＧ４関連疾患に罹患した動物の血清などに含まれる。
【００３０】
＜４．検査用抗体＞
既述の通り、ラミニン−インテグリン複合体に結合する前記指標抗体を直接的に検出することは困難である。本発明では、前記指標抗体の結合に伴い状態が変化するラミニン−インテグリン複合体の部位に特異的な検出用抗体の結合の有無を検出することで、ラミニン−インテグリン複合体への前記指標抗体の結合の有無を間接的に検出することに特徴がある。ラミニン−インテグリン複合体の前記部位の状態の変化は、検出用抗体との結合性の変化を生じる前記部位の状態の変化を指し、その具体的な態様は特に限定されないが、例えば、ラミニン−インテグリン複合体への指標抗体の結合に伴う前記部位の立体構造の変化や、前記部位が指標抗体にマスクされることによる前記部位と検出用抗体との結合性の変化などを包含する。
【００３１】
本発明で用いる検出用抗体は、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体を指す。これらの検出用抗体は、ラミニン−インテグリン複合体において、前記指標抗体の結合の前後で状態が変化する領域をエピトープとして認識する。第１の検出用抗体は、前記指標抗体が結合していない状態でのラミニン−インテグリン複合体の前記領域に特異的に結合する抗体である。第２の検出用抗体は、前記指標抗体が結合している状態でのラミニン−インテグリン複合体の前記領域に特異的に結合する抗体である。検出用抗体としては、第１の検出用抗体が特に好ましい。
【００３２】
検出用抗体のクラスは特に限定されず、ＩｇＧ抗体、ＩｇＡ抗体、ＩｇＭ抗体等であってよい。
【００３３】
検出用抗体が認識するエピトープは、ラミニン−インテグリン複合体において、前記指標抗体の結合の前後で状態が変化する領域に含まれるものであれば特に限定されない。例えば、ラミニン−インテグリン複合体を構成するインテグリンがインテグリンα６β１である場合には、インテグリンα６鎖のβプロペラドメインに含まれる領域をエピトープとして認識する検出用抗体が好適である。インテグリンα６鎖が配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する場合には、配列番号１で示されるアミノ酸配列の第１位〜第１００位の範囲内にβプロペラドメインが存在するため、前記範囲内に含まれる領域をエピトープとして認識する検出用抗体が好適である。このような検出用抗体の具体例としては、インテグリンα６鎖のアミノ酸配列の第１位〜第１００位の領域をエピトープとして認識する抗体である、ａｂｃａｍ社製Ａｎｔｉ−Ｉｎｔｅｇｒｉｎ  ａｌｐｈａ  ６  ａｎｔｉｂｏｄｙ［ＥＰＲ１８１２４］（ａｂ１８１５５１）が特に好ましい。
【００３４】
＜５．ＩｇＧ４関連疾患の検査方法＞
本発明は第一に、
ＩｇＧ４関連疾患の検査方法であって、
ＩｇＧ４関連疾患の指標として、検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法に関する。
【００３５】
本発明の検査方法は、ラミニン−インテグリン複合体に結合した指標抗体を直接的に検出するのではなく、指標抗体の結合の有無に応じてラミニン−インテグリン複合体との結合性が変化する検出用抗体を、検体との接触後のラミニン−インテグリン複合体と接触させて、結合した検出用抗体を検出することで、ラミニン−インテグリン複合体に結合した指標抗体を間接的に検出することに特徴がある。この方法によれば、ＩｇＧ４関連疾患を高い精度で検査することができる。
【００３６】
本発明の検査方法が対象とする被検動物は特に限定されずヒトであってもよいし、他の非ヒト哺乳動物であってもよいが、好ましくはヒトである。
【００３７】
本発明の検査方法に用いる検体としては、被検動物から採取される体液が挙げられる。具体的には、血清、血漿、全血等の血液試料のほか、唾液、髄液、尿などの血液以外の体液試料であってもよい。また、体液に限らず、被検動物から採取される組織の破砕液又は抽出液、例えば、検査しようとするＩｇＧ４関連疾患の疾患部位（例えば膵臓、腎臓、唾液腺等）から採取される組織の破砕液又は抽出液も、検体として用いることができる。検体は、被検動物から分離された形態で本発明の検査方法に用いる。
【００３８】
間接検出工程では、ラミニン−インテグリン複合体として、固相に固定されたものを用いることが好ましい。固相の形態としては、プレート、ビーズ、チューブなどの任意の形態であってよい。固相に固定された前記複合体は、既述の通り、ラミニンとインテグリンのうち一方（好ましくはラミニン）を固相の表面に固定化し、次いで、該固相の表面にラミニンとインテグリンのうち他方（好ましくはインテグリン）を接触させインキュベートすることで形成することができる。図３（Ａ）は、固相１０上にヒトラミニン−５１１−Ｅ８（ラミニン５１１活性断片）１を固定し、更に、このラミニン５１１活性断片１にヒトインテグリンα６β１（インテグリン）２を結合させてラミニン−インテグリン複合体３を形成した例の模式図である。
【００３９】
間接検出工程の第１工程は、ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる工程である。第１工程は、検体中に指標抗体が存在する場合に、指標抗体が前記複合体に免疫学的に結合できる条件で行う。第１工程は適当な緩衝液中で行うことができる。第１工程の好ましい実施形態は、検体を緩衝液で希釈した希釈液を、ラミニン−インテグリン複合体と接触させ、一定時間インキュベートすることを含む。図３（Ｂ１）及び（Ｂ２）は、固相１０に固定されたラミニン−インテグリン複合体３に、希釈された血清Ｓ（検体）を接触させる例を示す。図３（Ｂ１）は、血清Ｓ中にラミニン−インテグリン複合体３に結合する自己抗体４（指標抗体）が存在する場合に、自己抗体４がラミニン−インテグリン複合体３に結合することを示す。図３（Ｂ２）は、血清Ｓ中に複合体３に結合する自己抗体４が存在しない場合を示す。
【００４０】
第１工程終了後に、ラミニン−インテグリン複合体を洗浄して、残存する検体を除去することが好ましい。
【００４１】
間接検出工程の第２工程は、第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、検出用抗体とを接触させる工程である。第２工程は、ラミニン−インテグリン複合体と検出用抗体とが免疫学的に結合できる条件で行う。第２工程もまた適当な緩衝液中で行うことができる。第２工程の好ましい実施形態は、検出用抗体を含む緩衝液を、第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と接触させ、一定時間インキュベートすることを含む。図３（Ｃ１）及び（Ｃ２）は、それぞれ、図３（Ｂ１）及び（Ｂ２）に示した第１工程後のラミニン−インテグリン複合体３に、自己抗体４（指標抗体）が結合していないラミニン−インテグリン複合体３とは免疫学的に結合することができ、且つ、自己抗体４が結合した複合体３とは免疫学的に結合することができない第１の検出用抗体である一次抗体５を接触させた例を示す。
【００４２】
第２工程終了後に、ラミニン−インテグリン複合体を洗浄して、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合しなかった残存する検出用抗体を除去することが好ましい。
【００４３】
間接検出工程の第３工程は、第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した検出用抗体を検出する工程である。第３工程において「検出」とは、ラミニン−インテグリン複合体に結合した検出用抗体が存在するか否かを確認することのほか、その量を測定すること、すなわち「定量」すること、も包含する概念である。
【００４４】
第３工程は、ラミニン−インテグリン複合体に結合した検出用抗体を定量的又は定性的に検出可能な方法であればよく、具体的な態様は特に限定されない。例えば、検出用抗体に免疫学的に結合することができる、標識された二次抗体を、第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に接触させインキュベートし、洗浄して、ラミニン−インテグリン複合体上の検出用抗体に結合した二次抗体を、標識を指標に検出することで、検出用抗体を検出することが可能である。標識には、酵素、発色物質等の標識物質を用いることができる。標識された二次抗体を用いる実施形態では、検出用抗体と免疫学的に結合する二次抗体の量は、標識の測定値として求めることができる。図３（Ｄ１）及び図３（Ｄ２）は、それぞれ、図３（Ｃ１）及び（Ｃ２）に示した一次抗体５（検出用抗体）と接触後のラミニン−インテグリン複合体３に、一次抗体５と免疫学的に結合する、ＨＲＰ（セイヨウワサビペルオキシダーゼ）７で標識した二次抗体６を接触させた例を示す。二次抗体６を接触させ、インキュベートし、洗浄した後の固相１０上のＨＲＰ７による酵素反応を指標として二次抗体６の定量を行うことで、一次抗体５が定量される。一次抗体５の量は、血清Ｓ中の、自己抗体４の量に反比例するため、自己抗体４の量を検出することができる。
【００４５】
ラミニン−インテグリン複合体に結合した検出用抗体を定量的又は定性的に検出する方法は、上記で説明した二次抗体を用いる方法には限定されず、他の方法を用いることもできる。例えば、第２工程で、標識物質で標識された検出用抗体を用い、第３工程で、標識を指標にして検出用抗体を直接検出することができる。標識としては酵素、発色物質等の標識物質を用いることができる。
【００４６】
検体中に、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体が存在するか否かの判定（陽性／陰性の判定）は、被検動物個体（例えば、ＩｇＧ４関連疾患の罹患が疑われるヒト）から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値を、ＩｇＧ４関連疾患を罹患していない動物個体（例えば健常者）から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値と比較することによって行うことができる。ここで、ＩｇＧ４関連疾患を罹患していない個体から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値は、同時に測定して得た値であってもよいし、予め測定して得た値であってもよい。検出用抗体として第１の検出用抗体を用いる実施形態では、被検動物個体から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値が、ＩｇＧ４関連疾患を罹患していない動物個体から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値よりも有意に小さい場合に、陽性と判断することができる。検出用抗体として第２の検出用抗体を用いる実施形態では、被検動物個体から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値が、ＩｇＧ４関連疾患を罹患していない動物個体から得た検体を試料とした場合の第３工程での測定値よりも有意に大きい場合に、陽性と判断することができる。
【００４７】
本発明のＩｇＧ４関連疾患の検査方法の、検体中に、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体が検出された場合、検出結果に基づき、検体が由来する被験動物が、ＩｇＧ４関連疾患、特にＡＩＰに罹患していると判断することができる。
【００４８】
＜６．ＩｇＧ４関連疾患の検査キット＞
本発明は第二に、
ラミニン及びインテグリンとの組み合わせ、或いは、ラミニン−インテグリン複合体と、
ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体と
を含む、ＩｇＧ４関連疾患の検査キット
に関する。
【００４９】
ここで、ＩｇＧ４関連疾患、ラミニン、インテグリン、ラミニン−インテグリン複合体、検出用抗体については既述の通りである。
【００５０】
本発明の検査キットは、上記の本発明の検査方法に使用することができる。
本発明の検査キットの１以上の実施形態は、免疫学的測定に必要な試薬類、例えば、緩衝液、ブロッキング液、洗浄液、検体希釈液、基質液等を必要に応じて含んでよい。
【００５１】
本発明の検査キットにおいて、ラミニン及びインテグリンとの組み合わせ、或いは、ラミニン−インテグリン複合体の形態は特に限定されず、溶液状態であってもよいし、乾燥状態であってもよいし、固相に固定された形態であってもよい。乾燥状態である場合、使用前に溶液状態にするための緩衝液や溶媒を本発明の検査キットに含めてもよい。
【００５２】
本発明の検査キットの１以上の実施形態では、ラミニン及びインテグリンのうち一方、或いは、ラミニン−インテグリン複合体を、固相に固定された形態で含む。固相の形態としては、プレート、ビーズ、チューブなどの任意の形態であってよい。
【００５３】
本発明の検査キットの１以上の実施形態では、検出用抗体と免疫学的に結合する、標識された二次抗体を更に含む。本実施形態では更に、標識された二次抗体を検出するための試薬（酵素により標識された二次抗体を検出するための基質等）を必要に応じて含むことができる。
【００５４】
＜７．ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法＞
本発明は第三に、
ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法であって、
ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法に関する。
【００５５】
上記の「ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価する方法」は、「ＩｇＧ４関連疾患に対する治療の効果を評価するための指標を取得する方法」と表現してもよい。
【００５６】
本発明の検査方法に関して既述の通り、検体中の指標抗体の存在は、ＩｇＧ４関連疾患の指標として有用である。このため、ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の指標抗体は、治療が有効で治癒している場合は低下し、治療が十分に効果を発揮していない場合は治療開始前から変化しない又は上昇する。そこで、ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の指標抗体を検出することで、治療の効果を評価することが可能となる。
【００５７】
被検動物としては、ＩｇＧ４関連疾患の治療を受けたヒトや非ヒト動物が例示できる。
ＩｇＧ４関連疾患の治療としては、ステロイド投与等の、ＩｇＧ４関連疾患の治療が挙げられる。
【００５８】
本発明の治療効果の評価方法における、検体、ラミニン、インテグリン、ラミニン−インテグリン複合体、検出用抗体、間接検出工程などの具体的態様は既述の通りである。
【００５９】
本発明の治療効果の評価方法における間接検出工程で得た、ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の指標抗体の定量結果を、例えば、前記治療を開始する前の同一動物個体から得た検体中の指標抗体の定量結果と比較して、前者が後者よりも小さい場合には、治療が有効であると評価することができる。一方、前者が後者と同程度或いは後者よりも大きい場合には、治療が有効でない又は十分でないと評価することができる。この評価結果に基づいて、治療を更に継続する、治療方針を変更する、治療を中止するなどの判断が可能である。
【００６０】
また、本発明の治療効果の評価方法における間接検出工程で得た、ＩｇＧ４関連疾患に対する治療が施された被検動物から得た検体中の指標抗体の定量結果を、例えば、同一動物種の健常個体から得た検体中の指標抗体の定量結果と比較して、前者が後者と同程度である又はより小さい場合には、治療が有効であると評価することができる。一方、前者が後者よりも大きい場合には、治療が有効でない又は十分でないと評価することができる。この評価結果に基づいて、治療を更に継続する、治療方針を変更する、治療を中止するなどの判断が可能である。
【００６１】
＜８．ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質をスクリーニングする方法＞
本発明は第四に、
ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質をスクリーニングする方法であって、
試験物質を作用させた動物から得た検体中の、ラミニン−インテグリン複合体と免疫学的に結合する指標抗体を間接的に検出する間接検出工程と、
前記試験物質を作用させたことにより前記検体中の前記指標抗体が減少した場合に、前記試験物質を、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質として選抜する選抜工程と
を含み、
間接検出工程が、
ラミニン−インテグリン複合体と、検体とを接触させる第１工程と、
第１工程後のラミニン−インテグリン複合体と、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合するが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しない第１の検出用抗体、或いは、前記指標抗体が結合していないラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合しないが、前記指標抗体が結合しているラミニン−インテグリン複合体とは免疫学的に結合する第２の検出用抗体である検出用抗体とを接触させる第２工程と、
第２工程後のラミニン−インテグリン複合体に結合した前記検出用抗体を検出する第３工程と
を含む方法に関する。
【００６２】
既述の通り、検体中の指標抗体は、ＩｇＧ４関連疾患の指標として有用である。このため、試験物質を作用させたことにより前記検体中の指標抗体が減少した場合に、前記試験物質を、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質として選抜することが可能となる。
【００６３】
本発明のスクリーニング方法における、検体、ラミニン、インテグリン、ラミニン−インテグリン複合体、検出用抗体、間接検出工程などの具体的態様は既述の通りである。
【００６４】
本発明のスクリーニング方法において、試験物質としては、新規医薬の候補となる可能性のある試験物質であり特に限定されない。試験物質を作用させる動物は、典型的には、ＩｇＧ４関連疾患の非ヒトモデル動物等の、健常個体と比較して、ラミニンと免疫学的に結合する抗体の検体中での量が大きい動物である。
【００６５】
本発明のスクリーニング方法における選抜工程では、間接検出工程で得た、試験物質を作用させた動物から得た検体中の指標抗体の定量結果を、例えば、前記試験物質を作用させる前の同一動物個体から得た検体中の指標抗体の定量結果と比較して、前者が後者よりも小さい場合には、前記試験物質を作用させたことにより前記検体中の指標抗体が減少したと判断し、前記試験物質を、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質として選抜することができる。
【００６６】
また、本発明のスクリーニング方法における選抜工程では、間接検出工程で得た、試験物質を作用させた動物から得た検体中の指標抗体の定量結果を、例えば、同一動物種の健常個体から得た検体中の指標抗体の定量結果と比較して、前者が後者と同程度である又はより小さい場合には、前記試験物質を作用させたことにより前記検体中の指標抗体が減少したと判断し、前記試験物質を、ＩｇＧ４関連疾患の治療薬の候補物質として選抜することができる。
【実施例】
【００６７】
以下の実験は全て室温条件で行った。
【００６８】
１．血清試料
自己免疫性膵炎（ＡＩＰ）と診断された２４名の患者から取得した血清を、ＡＩＰ患者血清とした。
【００６９】
一方、健常人、ＡＩＰ以外の自己免疫疾患の患者及び悪性腫瘍患者の計２０名から取得した血清を、対照血清とした。
【００７０】
２．血清ＩｇＧ４値の測定
常法に従い、上記のＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）のＩｇＧ４値（ｍｇ／ｄｌ）を測定した。
【００７１】
結果を図１に示す。カットオフ値は、ＩｇＧ４関連疾患の診断でカットオフ値として一般的に使用されている１３５ｍｇ／ｄＬである。
【００７２】
２４例のＡＩＰ患者血清のうち、２０例がＩｇＧ４高値であり、４例がＩｇＧ４低値であった。
【００７３】
２０例の対照血清のうち、５例がＩｇＧ４高値であり、１５例がＩｇＧ４低値であった。
【００７４】
このように、ＡＩＰ患者血清と非ＡＩＰ患者血清は、血清ＩｇＧ４値のみを指標とする判別方法では、正確に判別することができない場合がある。
【００７５】
３．血清中の抗ラミニン抗体
本発明者らの特許文献３（国際公開ＷＯ２０１８／０１６６０７）に記載の方法により、上記のＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）中の抗ラミニン抗体を定量した。
【００７６】
具体的な手順は特許文献３の実験４に記載の通りであるが、その概要は次の通りである。
【００７７】
測定はＥＬＩＳＡ  Ｓｔａｒｔｅｒ  Ａｃｃｅｓｓｏｒｙ  Ｋｉｔ（Ｅ１０１，  Ｂｅｔｈｙｌ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を用いて行った。前記キットのマイクロウェルプレートのウェルに、抗原としてヒトラミニン−５１１−Ｅ８（８９２０１２，株式会社ニッピ製）（ラミニン−５１１活性断片）を固定した。次いで、前記ウェルに、上記のＡＩＰ患者血清（２４例）及び対照血清（２０例）の希釈液を加えてインキュベートした。次いで、前記ウェルに、ＨＲＰ（セイヨウワサビペルオキシダーゼ）とコンジュゲートされた二次抗体（ａｂｃａｍ６７５９，ウサギ抗ヒトＩｇＧ  Ｈ＆Ｌ（ＨＲＰ），ポリクローナル）の希釈液を加えてインキュベートした。最後に、前記ウェルに、ＴＭＢ（３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン）溶液を加えてインキュベートし、ＨＲＰによるＴＭＢの酸化反応を行い、マイクロプレートリーダーを用い、４５０ｎｍの波長にて、前記酸化反応の生成物による呈色を測定した。
【００７８】
結果を図２に示す。図２において縦軸は、抗体の血清中濃度に比例する４５０ｎｍでの吸光度の相対値を示す。カットオフ値は、本発明者らによる論文（Ｓｈｉｏｋａｗａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｃｉ．  Ｔｒａｎｓｌ．  Ｍｅｄ．  １０，  ｅｅａｑ０９９７（２０１８））に記載の、対照血清１２２例での吸光度の測定値の平均値に標準偏差（ＳＤ）の２倍の値を加えた値である。
【００７９】
２４例のＡＩＰ患者血清のうち、ヒトラミニン５１１活性断片に対する抗体の陽性が１４例、陰性が１０例であった。
【００８０】
２０例の対照血清のうち、ヒトラミニン５１１活性断片に対する抗体の陽性が６例、陰性が１４例であった。
【００８１】
このように、ＡＩＰ患者血清と非ＡＩＰ患者血清は、ヒトラミニン５１１活性断片に対する抗体のみを指標とする判別方法では、正確に判別することができない場合がある。
【００８２】
４．新規判別方法の検討
本実験の概要を図３に示す模式図を参照して説明する。
【００８３】
図３（Ａ）に示すように、固相１０上にヒトラミニン−５１１−Ｅ８（ラミニン５１１活性断片）１を固定し、更に、このラミニン５１１活性断片１にヒトインテグリンα６β１（インテグリン）２を結合させて複合体３を形成する。
【００８４】
固相１０に固定された前記複合体３に血清Ｓを接触させる。図３（Ｂ１）に示すように、血清Ｓ中に前記複合体３に結合する「指標抗体」である自己抗体４（ヒトラミニン−５１１−Ｅ８、ヒトインテグリンα６β１、或いは、前記複合体に対する自己抗体）が存在する場合、前記自己抗体４は前記複合体３に結合する。図３（Ｂ２）は、血清Ｓ中に前記複合体３に結合する自己抗体４が存在しない場合を示す。次いで、自己抗体４が結合していない複合体３と結合することができ、且つ、自己抗体４が結合した複合体３とは結合することができない「第１の検出用抗体」である一次抗体５を固相１０上に添加しインキュベートする（図３（Ｃ１）、図３（Ｃ２）参照）。一次抗体５のインキュベート後に固相１０を洗浄し、更に、一次抗体５と結合する、ＨＲＰ７とコンジュゲートした二次抗体６を添加しインキュベートする（図３（Ｄ１）、図３（Ｄ２）参照）。二次抗体６のインキュベート後に固相１０を洗浄する。最後に、固相１０上のＨＲＰ７による酵素反応を指標として二次抗体６の定量を行う。この実験では、図３（Ｂ１）に示すように、血清Ｓ中に前記複合体３に結合する自己抗体４（指標抗体）が存在する場合は、一次抗体５（第１の検出用抗体）は前記複合体３に結合することができず（図３（Ｃ１））、二次抗体６が固相１０に結合できない（図３（Ｄ１））ため、二次抗体６が検出されない。一方、図３（Ｂ２）に示すように、血清Ｓ中に前記複合体３に結合する自己抗体４（指標抗体）が存在しない場合は、一次抗体５（第１の検出用抗体）は前記複合体３に結合することができ（図３（Ｃ２））、二次抗体６が固相１０に結合できる（図３（Ｄ２））ため、二次抗体６が検出される。
【００８５】
自己抗体（指標抗体）が結合していないラミニン−インテグリン複合体と結合することができ、且つ、自己抗体（指標抗体）が結合したラミニン−インテグリン複合体とは結合することができない一次抗体（第１の検出用抗体）の候補１〜９として、エピトープの異なる以下の抗体を用いた。また、一次抗体（第１の検出用抗体）の各候補に応じて異なるＨＲＰコンジュゲート二次抗体を用いた。
【００８６】
【表４】
2020046412.tif 000006
【００８７】
【表５】
2020046412.tif 000007
【００８８】
以下の試験では、特に明示しない場合は、ＥＬＩＳＡ  Ｓｔａｒｔｅｒ  Ａｃｃｅｓｓｏｒｙ  Ｋｉｔ（Ｅ１０１，  Ｂｅｔｈｙｌ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を用いた。
【００８９】
コーティングバッファー（Ｃｏａｔｉｎｇ  Ｂｕｆｆｅｒ）、洗浄溶液（Ｗａｓｈ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎ）、ブロッキング溶液（Ｂｌｏｃｋｉｎｇ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎ）、コンジュゲート希釈剤（Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｄｉｌｕｅｎｔ）は全て前記キットの指示書に従い調製した。
【００９０】
４．１．抗原（ラミニン５１１−Ｅ８）によるコーティング
（１）ヒトラミニン−５１１−Ｅ８（８９２０１２，株式会社ニッピ製）（ラミニン−５１１活性断片）を前記キットのコーティングバッファーに希釈して２μｇ／ｍｌ濃度溶液とした。この溶液を、前記キットのマイクロウェルプレートに、１つのウェルあたり１００μｌとなるように加えた。
（２）上記のマイクロウェルプレートを６０分間インキュベートした。
（３）インキュベート後に各ウェルから溶液を吸引除去した。
（４）各ウェルを前記キットの洗浄溶液により洗浄した。具体的には、各ウェルに前記洗浄溶液を満たし、次いで、前記洗浄溶液を吸引除去する洗浄操作を３回行った。
【００９１】
４．２．ブロッキング
（１）前記キットのブロッキング溶液２００μｌを各ウェルに添加した。
（２）３０分間インキュベートした。
（３）インキュベート後、前記ブロッキング溶液を除去し、各ウェルを３回洗浄した。
【００９２】
４．３．インテグリンα６β１のインキュベート
（１）ヒトインテグリンα６β１（７８０９−Ａ６−０５０、Ｒ＆Ｄ  ｓｙｓｔｅｍ）を、１ｍＭマンガン（Ｍｎ）を添加した前記キットのコンジュゲート希釈剤中で、２μｇ／ｍｌの濃度に希釈した。この希釈溶液を、ブロッキング後のマイクロウェルプレートの各ウェルに１００μｌ加えた。
（２）６０分間インキュベートした。
（３）インキュベート後、前記希釈溶液を除去し、１ｍＭマンガンを添加した前記キットの洗浄溶液により各ウェルを３回洗浄した。
【００９３】
４．４．患者血清又は対照血清のインキュベート
（１）前記ＡＩＰ患者血清（ｎ＝２４）又は前記対照血清（ｎ＝２０）を、１ｍＭマンガンを添加した前記キットのコンジュゲート希釈剤により１：１００の割合で混合し希釈した。
（２）前記希釈により得られた血清希釈液を、インテグリンα６β１インキュベート後のマイクロウェルプレートの各ウェルに１００μｌ加えた。
（３）６０分間インキュベートした。
（４）インキュベート後、前記血清希釈液を除去し、１ｍＭマンガンを添加した前記キットの洗浄溶液により各ウェルを３回洗浄した。
【００９４】
４．５．一次抗体
（１）前記の一次抗体の候補１〜９を、１ｍＭマンガンを添加した前記キットのコンジュゲート希釈剤により１：２０００の割合で混合し希釈した。
（２）前記希釈により得られた一次抗体希釈液を、血清インキュベート後のマイクロウェルプレートの各ウェルに１００μｌ加えた。
（３）６０分間インキュベートした。
（４）インキュベート後、前記一次抗体希釈液を除去し、１ｍＭマンガンを添加した前記キットの洗浄溶液により各ウェルを３回洗浄した。
【００９５】
４．６．ＨＲＰコンジュゲート二次抗体
（１）ＨＲＰ（セイヨウワサビペルオキシダーゼ）とコンジュゲートされた前記二次抗体を、１ｍＭマンガンを添加した前記キットのコンジュゲート希釈剤（Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｄｉｌｕｅｎｔ）により１：５０００の割合で混合し希釈した。
（２）前記希釈により得られた二次抗体希釈液を、一次抗体インキュベート後のマイクロウェルプレートの各ウェルに１００μｌ加えた。
（３）６０分間インキュベートした。
（４）インキュベート後、前記二次抗体希釈液を除去し、１ｍＭマンガンを添加した前記キットの洗浄溶液により各ウェルを５回洗浄した。
【００９６】
４．７．酵素基質反応
（１）製造元の推奨条件に従ってＴＭＢ（３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン）溶液を調製した。
（２）前記ＴＭＢ溶液を、二次抗体インキュベート後のマイクロウェルプレートの各ウェルに１００μｌ加えた。
（３）５分間インキュベートし、ＨＲＰによるＴＭＢの酸化反応を行った。
（４）前記酸化反応後に、０．１８Ｍ  Ｈ２ＳＯ４１００μｌを、各ウェルに加えた。
（５）マイクロプレートリーダーを用い、４５０ｎｍの波長にて、前記酸化反応の生成物による呈色を測定した。
【００９７】
４．８．結果
結果を図４〜１２に示す。
【００９８】
図４は、一次抗体として、候補１（抗ラミニンα５抗体ＭＡＢ１９２４）を用いたときの結果を示す。
【００９９】
図５は、一次抗体として、候補２（抗ラミニンα５抗体ａｂ２１０９５７）を用いたときの結果を示す。
【０１００】
図６は、一次抗体として、候補３（抗ラミニンβ１抗体ａｂ６９６３３）を用いたときの結果を示す。
【０１０１】
図７は、一次抗体として、候補４（抗ラミニンβ１抗体ａｂ９８２３２）を用いたときの結果を示す。
【０１０２】
図８は、一次抗体として、候補５（抗ラミニンγ１抗体ＬＳ−Ｃ３１２７３７）を用いたときの結果を示す。
【０１０３】
図９は、一次抗体として、候補６（抗ラミニンγ１抗体ＬＳ−Ｃ３５６１５１）を用いたときの結果を示す。
【０１０４】
図１０は、一次抗体として、候補７（抗インテグリンα６抗体ａｂ１０５６６９）を用いたときの結果を示す。
【０１０５】
図１１は、一次抗体として、候補８（抗インテグリンα６抗体ａｂ１８１５５１）を用いたときの結果を示す。
【０１０６】
図１２は、一次抗体として、候補９（抗インテグリンβ１抗体ａｂ３０３９４）を用いたときの結果を示す。
【０１０７】
図４〜１２において縦軸は、固相上の二次抗体量に比例する４５０ｎｍでの吸光度の相対値を示す。カットオフ値は、前記対照血清での前記相対値の平均値から、標準偏差（ＳＤ）の２倍の値を引いた値である。
【０１０８】
一次抗体として、インテグリンα６の第１〜１００位アミノ酸の領域と結合する候補８の抗体を用いた場合に、図１１に示すように、ＡＩＰ患者血清では二次抗体が検出されず、対照血清で二次抗体が検出されることが確認された。すなわち、ヒトラミニン５１１活性断片に対する抗体のみを指標とする判別方法では判別が難しかったＡＩＰ患者血清と対照血清とを、正確に判別することが可能であった。この候補８は、ＡＩＰ患者の自己抗体が結合していないラミニンα５β１γ１−インテグリンα６β１複合体と結合することができ、且つ、ＡＩＰ患者の自己抗体が結合した前記複合体とは結合することができない一次抗体であることが分かる。ラミニンα５β１γ１−インテグリンα６β１複合体に、ＡＩＰ患者の自己抗体が結合するとき、インテグリンα６のＮ末端近傍部分の状態が変化することが推測される。そして、インテグリンα６のＮ末端近傍部分を認識する抗体は、ＡＩＰ患者の自己抗体が結合していないラミニンα５β１γ１−インテグリンα６β１複合体を定量するために利用可能であることが推測される。
【０１０９】
一方、一次抗体として、候補１〜７、９の抗体を用いた場合には、図４〜１０、１２に示すように、ＡＩＰ患者血清と対照血清のどちらでも二次抗体が検出された。これらの抗体は、ＡＩＰ患者の自己抗体の結合の有無にかかわらず、ラミニンα５β１γ１−インテグリンα６β１複合体と結合することが推測される。
【図１】
2020046412.tif 000008
【図２】
2020046412.tif 000009
【図３】
2020046412.tif 000010
【図４】
2020046412.tif 000011
【図５】
2020046412.tif 000012
【図６】
2020046412.tif 000013
【図７】
2020046412.tif 000014
【図８】
2020046412.tif 000015
【図９】
2020046412.tif 000016
【図１０】
2020046412.tif 000017
【図１１】
2020046412.tif 000018
【図１２】
2020046412.tif 000019
【配列表】
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