(57)【要約】【課題】動物の軟骨組織から優れた生理作用を有するプロテオグリカンを効率的、かつ高純度に製造する。【解決手段】ｐＨ５．５以下の酸性溶液中、その全量に対して１質量％以下のプロテアーゼの存在または非存在下で、動物の軟骨組織からプロテオグリカンを抽出して、プロテオグリカンを含む粗抽出液を得る工程と、粗抽出液から、脂質と、分子量５万以下の物質とを除去してプロテオグリカンを精製する工程と、を含むプロテオグリカンの製造方法。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ｐＨ５．５以下の酸性溶液中、その全量に対して１質量％以下のプロテアーゼの存在または非存在下で、動物の軟骨組織からプロテオグリカンを抽出して、当該プロテオグリカンを含む粗抽出液を得る工程と、
前記粗抽出液から、脂質と、分子量５万以下の物質とを除去して前記プロテオグリカンを精製する工程と、を含む、プロテオグリカンの製造方法。
【請求項２】
前記軟骨組織が、サケ頭部の鼻軟骨組織である請求項１に記載のプロテオグリカンの製造方法。
【請求項３】
前記プロテアーゼが、酸性プロテアーゼであり、前記酸性溶液中における含有量が、０．００１質量％〜０．５質量％である請求項１または２に記載のプロテオグリカンの製造方法。
【請求項４】
前記酸性溶液が、酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸からなる群より選択される少なくとも１種を含む水溶液である請求項１〜３の何れか一項に記載のプロテオグリカンの製造方法。
【請求項５】
前記酸性溶液が、酸性電解水若しくは炭酸水またはこれらに酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸からなる群より選択される少なくとも１種を添加した水溶液である請求項１〜３の何れか一項に記載のプロテオグリカンの製造方法。
【請求項６】
前記酸性溶液中の酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸からなる群より選択される少なくとも１種の濃度が、０．１質量％〜１質量％である請求項１〜５の何れか一項に記載のプロテオグリカンの製造方法。
【請求項７】
前記プロテオグリカンが、質量平均分子量４０万〜１００万のアグリカンである請求項１〜６の何れか一項に記載のプロテオグリカンの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、動物の軟骨組織からプロテオグリカンをより効率的かつ高純度で抽出するプロテオグリカンの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
プロテオグリカン（以下「ＰＧ」と称する場合がある。）は、１本のコアタンパク質にコンドロイチン硫酸、ケラタン硫酸等のグリコサミノグリカンが数本から数十本、共有結合した糖タンパク質であり、細胞外マトリックスの一つとして皮膚や軟骨など体内に広く分布している。軟骨中のＰＧは、コラーゲンやヒアルロン酸と共に凝集体を形成しており、代表的な軟骨型ＰＧは、アグリカンと称される。アグリカンはコアタンパク質に大量のグリコサミノグリカン糖鎖が結合すると共に、そのＮ末端側には、ヒアルロン酸およびリンクタンパク質の結合領域を有する。
【０００３】
グリコサミノグリカンは分岐をもたない長い直鎖構造を持ち、多数の硫酸基とカルボシキル基を持つため負に荷電しており、その電気的反発力のために伸びた形状をとる。また、糖の持つ水親和性により、多量の水を保持し、弾力や衝撃への耐性といった軟骨特有の機能を担っている。さらに、ＰＧには抗炎症作用、ヒアルロン酸合成促進作用、上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）様作用等多くの生理機能を有することが明らかとなり、食品や化粧品への応用に期待が寄せられている。
【０００４】
これまで、高純度のＰＧを効率よく製造する方法が研究されてきた。例えば、サケ鼻軟骨から酢酸を用いてＰＧを抽出する方法（特許文献１参照）や、酢酸溶液の抽出温度と撹拌速度を制御してＰＧを抽出する方法（特許文献２参照）が知られている。その他、クエン酸水溶液を用いてＰＧを抽出する方法（特許文献３参照）、サポニン若しくはスークロース脂肪酸エステル又はこれらの混合物の水溶液に浸漬して抽出する方法（特許文献４参照）などが報告されている。一方、粗精製したＰＧをタンパク質分解酵素で処理した低分子ＰＧが、コラーゲンゲル収縮促進効果や抗糖化作用に優れ、皮膚の引きしめ効果を有すること（特許文献５参照）、およびサケ鼻軟骨ＰＧをタンパク質分解酵素アクチナーゼＥで消化して得られる低分子ＰＧを有効成分とするチロシナーゼ活性阻害剤の報告もある（特許文献６参照）。
【０００５】
しかしながら、ＰＧの原料である動物の軟骨組織の確保、保存などは必ずしも容易ではなく、従来法よりもさらに効率的なＰＧの抽出および精製方法が望まれている。また、軟骨や皮膚の細胞外マトリックスに存在するＰＧは、生体内ではコラーゲンやヒアルロン酸と会合構造をとることで組織を維持しているが、巨大なＰＧがどのような形で抽出されているのかを解析することは難しく、従来法により精製されたＰＧ分子の実態と、これまで知られているＰＧの様々な生理機能との関係については十分に解明されていない。例えば、非特許文献１には、サケの鼻軟骨から抽出および分画した異なる分子量のＰＧについて、経口投与による生理作用を調べたところ、プロテアーゼによる分解を受けた低分子ＰＧに比べて、分子量４０万以上の高分子ＰＧが、より効果的な皮膚の抗老化作用を示すことが報告されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｇｏｔｏ，  Ｍ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎｔｉ−ａｇｉｎｇ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｈｉｇｈ  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｗｅｉｇｈｔ  ｐｒｏｔｅｏｇｌｙｃａｎ  ｆｒｏｍ  ｓａｌｍｏｎ  ｎａｓａｌ  ｃａｒｔｉｌａｇｅ  ｉｎ  ｈａｉｒｌｅｓｓ  ｍｉｃｅ．  ＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ  ＪＯＵＲＮＡＬ  ＯＦ  ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ  ＭＥＤＩＣＩＮＥ  ２９：  ７６１−７６８，  ２０１２
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特許第３７３１１５０号公報
【特許文献２】特許第６３１７０５３号公報
【特許文献３】特許第５７４９０６７号公報
【特許文献４】特許第６００６５４５号公報
【特許文献５】特開２０１７−１５５００４号公報
【特許文献６】特開２０１８−１２７４２３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、このような状況下においてなされたものであってその目的とするところは、動物の軟骨組織から優れた生理作用を有するプロテオグリカンを効率的、かつ高純度に製造する方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記課題を解決するために、本発明者らは、動物の軟骨からプロテオグリカンを抽出する工程で、種々の酸性溶液を用いて抽出効率を検討した結果、特定の酸性溶液または所定濃度のプロテアーゼ存在下で抽出を行うことでプロテオグリカンを軟骨組織から効率的かつ高純度に製造できることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１０】
すなわち、本発明は以下の実施形態を含む。
（１）ｐＨ５．５以下の酸性溶液中、その全量に対して１質量％以下のプロテアーゼの存在または非存在下で、動物の軟骨組織からプロテオグリカンを抽出して、プロテオグリカンを含む粗抽出液を得る工程と、この粗抽出液から、脂質と、分子量５万以下（より好ましくは分子量１０万以下）の物質とを除去してプロテオグリカンを精製する工程と、を含む、プロテオグリカンの製造方法。
（２）軟骨組織が、サケ頭部の鼻軟骨組織である（１）に記載のプロテオグリカンの製造方法。
（３）プロテアーゼが、酸性プロテアーゼであり、酸性溶液中における含有量が、０．００１質量％〜０．５質量％である（１）または（２）に記載のプロテオグリカンの製造方法。
（４）酸性溶液が、酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸からなる群より選択される少なくとも１種を含む水溶液である（１）〜（３）の何れかに記載のプロテオグリカンの製造方法。
（５）酸性溶液が、酸性電解水若しくは炭酸水またはこれらに酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸からなる群より選択される少なくとも１種を添加した水溶液である（１）〜（３）の何れかに記載のプロテオグリカンの製造方法。
（６）酸性溶液中の酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸からなる群より選択される少なくとも１種の濃度が、０．１質量％〜１質量％である（１）〜（５）の何れかに記載のプロテオグリカンの製造方法。
（７）プロテオグリカンが、質量平均分子量４０万〜１００万のアグリカンである（１）〜（６）の何れかに記載のプロテオグリカンの製造方法。
【発明の効果】
【００１１】
本発明のプロテオグリカンの製造方法は、動物の軟骨組織から優れた生理作用を有するプロテオグリカンを効率的、かつ高純度に製造することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１は、製造例１で得られたプロテオグリカンをＨＰＬＣで分析した結果を示す。
【図２】図２は、製造例２で得られたプロテオグリカンをＨＰＬＣで分析した結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本実施形態において、プロテオグリカンを抽出するための材料は、例えば魚類、軟体動物、鳥類または哺乳類の軟骨組織、筋肉組織もしくは皮膚組織を使用することができるが、その中でも軟骨組織が好ましい。本実施形態で使用される軟骨組織は、魚類、軟体動物、鳥類もしくは哺乳類、特にそれらの廃棄部位のいずれでもよい。本明細書において軟骨組織とは、軟骨のみからなるだけでなく、軟骨周辺部位、例えば骨、筋肉組織、皮膚組織等を含む組織でもよい。
【００１４】
本実施形態では、入手の容易性、及びコストの面などから、例えば、サケ科の魚の頭部に含まれる鼻軟骨組織由来のものが好適に用いられ、例えば、青森県沿岸や北海道沿岸等で漁獲されたサケ（主にシロサケ）が、様々な加工品として処理される際、排出される頭部を使用することができる。
【００１５】
また本実施形態では、サケの他、マス、エイ、サメ、タラ等の魚類由来軟骨組織、イカ、タコ等の軟体動物由来表皮、ニワトリ等の鳥類由来軟骨組織、さらにウシやクジラ等の哺乳動物由来軟骨組織も利用することができる。
【００１６】
本実施形態で使用する酸性溶液は、酸性電解水、炭酸水などの無機酸を含む酸性水溶液であるか、または、酢酸、クエン酸、リンゴ酸、およびアスコルビン酸などの有機酸を含む酸性水溶液である。この酸性水溶液のｐＨは、５．５以下であることが好ましく、ｐＨが２〜４の酸性水溶液がさらに好ましい。なお、酸性溶液としては、これら以外に、乳酸、酒石酸、コハク酸、リン酸、グルコン酸、フマル酸、グルタル酸、アジピン酸、フィチン酸、塩酸、硫酸等を含む水溶液であってもよい。異なる実施形態では、これらの無機酸および有機酸の２種以上を組み合わせた酸性水溶液である。例えば、酸性電解水と酢酸またはクエン酸との組み合わせなどである。酸性溶液中の有機酸の濃度は、プロテオグリカンの使用目的によって適宜選択する。例えば、有機酸として酢酸を用いる場合の濃度の下限は、０．０１質量％、好ましくは０．１質量％であり、有機酸として酢酸を用いる場合の濃度の上限は、１０質量％、好ましくは５質量％、より好ましくは１質量％である。
【００１７】
これらの酸性溶液による抽出工程は、例えば１〜６０℃の温度で行なうことができる。ある程度温度を上げることによって抽出時間をより短縮し、より抽出効率も上げることができることから、この酸性溶液による抽出工程に係る温度の下限は、好ましくは４℃、更に好ましくは２０℃である。一方、プロテオグリカンの分解はほとんど起きないまま、糖タンパク質複合体として効率よく抽出することがよりできるように、この酸性溶液による抽出工程に係る温度の上限は、好ましくは５５℃、更に好ましくは５０℃、更に好ましくは４０℃である。
【００１８】
上記抽出工程は軟骨表面全体を酸性溶液が流動的に接触する条件で行い、この際の酸性溶液の流速が、０．０４〜１０．０ｃｍ／秒となることが好ましい。より好ましくは流速が０．０４〜５．０ｃｍ／秒である。この流れはスターラーやミキサーによる水平方向の円運動だけでなく、液を循環させるなどの方法により垂直方向、さらに軟骨組織を置いた上に一方から他方へ液を流すような一定方向の流れなど何れでも構わないが、液が常に対流することで抽出効率の向上が可能である。酸性溶液が軟骨組織と流動的に接触する工程は、所望の収率または収量でプロテオグリカンを抽出するために十分な時間実施すればよく、抽出工程中連続して、所定の時間をおいて間欠的に、又は抽出工程の一部であってもよい。この流動的に接触する時間は、抽出温度や酸性溶液の流速に合わせて適宜設定することができる。抽出が終了した溶液はプロテオグリカンを抽出した後の残渣を多く含むことから、これらをろ過、遠心分離、その他の方法で取り除くことが好ましい。
【００１９】
この抽出工程において、上記酸性溶液の全量に対して１質量％以下の濃度で酸性プロテアーゼを共存させることが好ましい。酸性溶液中におけるこの酸性プロテアーゼの濃度は、１質量％を超えると抽出されたプロテオグリカン分子がさらに分解されて低分子化する可能性があること、および製造コストが上がるため好ましくない。したがって、酸性溶液中への酸性プロテアーゼの添加量の上限は、０．５質量％がより好ましく、０．１質量％がさらに好ましい。一方、下限は、０質量％を超えれば好ましく、０．０００１質量％以上がより好ましく、０．００１質量％以上がさらに好ましい。本明細書における酸性プロテアーゼとは、植物、動物または細菌を起源とするタンパク質分解酵素でタンパク質分解活性の至適ｐＨ（最大活性を示すｐＨ）が６．０以下にあるものであれば、特に限定されるものではないが、タンパク質分解活性の至適ｐＨが２．０以上５．０以下にあるものが酸性溶液中で働く点で好ましい。また、ｐＨが７．０以上で失活することが分解反応を制御する上で好ましい。タンパク質分解活性の至適ｐＨが２．０未満では、タンパク質の変性が大きく、分解反応の制御が困難であるという問題がある。
【００２０】
これらの酸性プロテアーゼとしては、エンドペプチダーゼ等の酸性プロテアーゼが知られており、特にアスペルギルス  オリゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ    ｏｒｙｚａｅ）またはアスペルギルス    ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ    ｎｉｇｅｒ）を起源とするタンパク質分解酵素が挙げられる。このタンパク質分解酵素としては、市販されているものを使用することができる。市販されているタンパク質分解酵素としては、製品名「ニューラーゼＦ３Ｇ」（天野エンザイム社製）、製品名「プロテアーゼＭ「アマノ」ＳＤ」（天野エンザイム社製）、製品名「モルシンＦ」（キッコーマンバイオケミファ社製）、製品名「スミチームＡＰ」（新日本化学工業社製）、製品名「デナプシン２Ｐ」（ナガセケムテックス社製）、製品名「グリンドアミルＰＲ５９」（ダニスコジャパン社製）、製品名「オリエンターゼＡＹ」（エイチビィアイ社製）、製品名「テトラーゼＳ」（エイチビィアイ社製）、製品名「ブリューワーズクラレックス」（ディー・エス・エムジャパン社製）、製品名「プロテアーゼＹＰ−ＳＳ」（ヤクルト薬品工業社製）などの酸性プロテアーゼが挙げられる。
【００２１】
次に、プロテオグリカン抽出液を粉末セルロース及び／又は吸油マットなどを用いることにより、混入すると考えられる脂質成分を簡便に吸着除去する。脂質除去後の液から得られるプロテオグリカンは適当な分画分子量を有する分離膜等で固液分離することにより、抽出液を回収する。この操作において、５万以上の分離膜等を使用すれば液相から低分子量の夾雑物（コラーゲン等）も除去することができ、プロテオグリカンの純度を上げることが可能である。好ましくは、１０万以上の分離膜等を用いることが望ましい。さらに、得られた分画液は真空凍結乾燥機を用いて固形物にしてもよい。あるいは、スプレードライヤーで乾燥させ、粉末状固形分とすることもできる。
【００２２】
このようにして得られるプロテオグリカンは、軟骨由来の典型的なプロテオグリカンでありアグリカン（Ａｇｇｒｅｃａｎ）と称される。アグリカンは多数のグルコサミノグリカンと結合し、ヒアルロン酸やリンクタンパク質と凝集しているため巨大分子を形成するが、本実施形態の方法で得られるアグリカンは４０万〜１００万（好ましくは４０万〜９０万、より好ましくは４０万〜７０万、更に好ましくは４０万〜６０万）の質量平均分子量を有するため、コアタンパク質部分が分解されることなく低分子化していないインタクトなプロテオグリカンであると考えられる。その一方で、他のタンパク質との結合や凝集物が除かれているためプロテオグリカンとしての純度が向上し、生理活性のより発現しやすい完全なプロテオグリカン分子が得られると推測される。なお、本明細書において質量平均分子量とは、ゲルろ過クロマトグラフィー（Ｇｅｌ  Ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ  Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ、ＧＦＣともいう）分析を行った場合のプルラン換算の質量平均分子量をいう。なお、質量平均分子量の測定法は特に限定されるものではないが、一例としては、分子量が既知なプルラン、デキストラン、ポリエチレングリコール等を用い、２点以上の任意の濃度で、示差屈折検出器により校正曲線を作成する。次いで、検体（濃度は任意）を測定し、その保持時間から先の校正曲線を用いて相対分子量（プルラン、デキストランまたはポリエチレングリコール換算の分子量）を算出するのが一般的である。
【００２３】
さらに、本発明で得られたプロテオグリカンを用いて、線維芽細胞増殖作用、コラーゲンゲル収縮促進作用等を評価した結果、いずれの試験においても従来の酢酸を使用して低温で浸漬抽出されたプロテオグリカンと同等以上の効果が得られ、従来法で得られるプロテオグリカンに比べ純度の高い品質を有することが確認された。以下に、実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【実施例】
【００２４】
［製造例１］
−３０℃で冷凍保管したシロサケの頭部から摘出した鼻軟骨を４００ｇ用意し、出発原料とした。０．４質量％の酢酸水溶液２０００ｇに出発原料およびプロテアーゼＭ（アマノ）ＳＤを２ｇ投入し、抽出温度５０℃で２４時間抽出した。
【００２５】
この抽出液の温度を８０℃に上昇させ、３０分間加温してプロテアーゼを失活させた後、溶出液をステンレススチールメッシュ（１５０μｍ）でろ過し、不溶物を除去した。次に、吸油マット（前田工繊社製、商品名「油吸着シートＳＰ−１３００Ｎ（ＤＸ）」で液上層の油を吸着させた後、粉末セルロース（日本製紙社製、商品名「ＫＣフロックＷ−４００Ｇ」）を加え３０分撹拌後ろ過した。ろ液を分画分子量５万の中空糸膜を用いて液量が１／１０になるまで濃縮した。さらに水で希釈しながら濃縮と精製とを繰り返し、最終的に１１２ｇの濃縮液（ｐＨ６〜７）を得た。そして、得られた濃縮液を凍結乾燥し、約８．６ｇのプロテオグリカンを得た。
【００２６】
［製造例２］
上記製造例１で用いた酢酸水溶液の濃度を４質量％に変更した以外は製造例１と同様の条件で抽出、精製をおこない、約７．７ｇのプロテオグリカンを得た。
【００２７】
（プロテオグリカンの定量）
製造例１および２で得た凍結乾燥品約１ｇを精密に量り、リン酸緩衝液（ｐＨ６．８）を加えて正確に１０  ｍＬとしたものを試料溶液とした。各試料を０．４５  μｍメンブレンフィルターを通した後、以下の操作条件でＨＰＬＣを行い標準品の検量線からプロテオグリカン量を求めた。なお、検量線の作成は、プロテオグリカン標準品（サケ鼻軟骨由来、和光純薬工業製）を、室温減圧デシケーター（シリカゲル）で３時間乾燥してから採取したものを精密に量り取り、試料と同じリン酸緩衝液に溶解して検量線作成用標準液を調製した。また、分子量マーカーとして、Ｓｈｏｄｅｘ    ＳＴＡＮＤＡＲＤ    Ｐ−８２（昭和電工社製）を用いて作成した検量線からピークトップの分子量を求めた。
【００２８】
操作条件
分析計    ：ＨＰＬＣ分析装置
検出器    ：示差屈折率検出器（ＲＩＤ−１０Ａ    島津製作所製）
カラム    ：ゲルろ過カラム（東ソー株式会社製ＴＳＫｇｅｌ    Ｇ５０００ＰＷＸＬ）
カラム温度：４０℃
試料注入量：５０  μＬ
移動相    ：リン酸緩衝液（ｐＨ６．８）
流量      ：０．５  ｍＬ／ｍｉｎ
【００２９】
その結果を図１および図２に示す。図１は製造例１で得られた試料であり、図２は製造例２で得られた試料の分析結果である。いずれも単一ピークからなる純度の高いプロテオグリカンであることを示す。また、カラムの保持時間から計算したピークトップの分子量は、図１では約４６万であり、図２では約４８万であった。
【００３０】
［製造例３〜１２］
製造例１と同様のサケ鼻軟骨をスライス処理したもの約４０ｇと、表１に示した各種抽出液とを２５０ｍｌ容器に入れ密封した。これを３７℃の水浴中でゆっくりと攪拌しながら７２時間インキュベートした。抽出終了以後、各抽出液を１００メッシュのふるいでろ過し、油吸着マットで処理し、さらにＫＣフロックろ過したろ液を凍結乾燥した。回収された凍結乾燥粉末の質量と、製造例１と同様の方法で定量したＰＧ量を測定し、ＰＧの収率および平均分子量を求めた。その結果を表１に示す。なお、抽出液として用いた電解水は、ＯＲＰウォーター酸性イオン水（バイバイバクテリア、ヤマシタキカク社製）を、炭酸水は、伊賀の天然水  炭酸水（日本サンガリア社製）を用いた。
【００３１】
【表１】
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【００３２】
表１の結果より、抽出液として酸性電解水のみまたは炭酸水のみを用いた場合でも、収率は若干低いものの高純度のＰＧが得られることが分かった。酸性電解水または炭酸水にクエン酸を５％添加した場合は、固形分収率は上がるものの得られたＰＧの純度は低下していた。一方、リンゴ酸、アスコルビン酸を単独でまたは炭酸水と組み合わせて抽出した場合は収率および純度ともに優れていた。
【００３３】
［試験例１］コラーゲンゲル収縮試験
製造例１で得られたプロテオグリカンについてのコラーゲンゲル収縮の効果の有無を評価した。当該効果の有無は、標準品が発揮する効果と比較して表した。本試験例１では、標準品として、鮭鼻軟骨由来プロテオグリカン（富士フイルム和光純薬会社（商品コード：１６２−２２１３１、１６８−２２１３３））を用いた。
【００３４】
コラーゲン酸性溶液（ＩＰＣ−３０、高研株式会社）、希塩酸（ｐＨ調整用として利用、ｐＨ３．０）、１０×ＭＥＭハンクス（新田ゼラチン株式会社）及び再構成緩衝液（Ｃｅｌｌｍａｔｒｉｘ、新田ゼラチン株式会社）を用いて、氷冷下で１．２ｍｇ／ｍｌの濃度になるように調製コラーゲン酸性溶液を準備した。準備した調製コラーゲン酸性溶液を２４ウェルプレートに各ウェル０．４ｍｌずつ注入した。当該注入後、３７℃でコラーゲンをゲル化させた。当該ゲル化の後、正常ヒト皮膚線維芽細胞（クラボウ）を、各ウェルに０．６×１０５個／ｗｅｌｌの細胞数となるように、各ウェルへ播種した。当該播種の翌日（翌日までは３７℃、５％ＣＯ２の環境下でウェルを静置）に、以下試料（試料１〜試料５）を各ウェルに投与し、ゲル周囲を剥離した。以下試料添加後４８時間後のゲル収縮の評価を、画像処理ソフト（ＣｈｅｍｉＤｏｃＴＭイメージングシステム、ＢＩＯＲＡＤ）を用いてコラーゲンゲルの面積を測定することにより行った。当該測定は、各群（試料１から試料５の群）において６サンプルずつ行った。以下表２では、各群において６サンプルの平均値を算出した結果を示す。
【００３５】
・試料１の群：コントロールとして、所定量の精製水を投与。
・試料２の群：最終濃度１ｍｇ／ｍｌとなるように、製造例１で得られたプロテオグリカンを投与。
・試料３の群：最終濃度０．５ｍｇ／ｍｌとなるように、製造例１で得られたプロテオグリカンを投与。
・試料４の群：最終濃度１ｍｇ／ｍｌとなるように、標準品を投与。
・試料５の群：最終濃度０．５ｍｇ／ｍｌとなるように、標準品を投与。
【００３６】
評価結果を表２に示す。表２で示すように、試料１の群と比べ、試料２と試料３の群（本発明に係る実施例の１つである製造例１で得られたプロテオグリカンの投与群）では、コラーゲンゲルの面積の縮小が確認できた。なお、試料２と試料３の群の評価結果は、試料４と試料５の群（標準品の投与群）と同様の結果であった。
【００３７】
【表２】
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【００３８】
［試験例２］ヒト線維芽細胞増殖試験
製造例１で得られたプロテオグリカンについてのヒト線維芽細胞増殖能の有無を評価した。
５％ＦＢＳ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｔｒａｃｅ製）を含むＤＭＥＭ培地が各ウェルに存在した９６ウェルプレートを準備した。正常ヒト皮膚線維芽細胞（クラボウ）を、各ウェルに４×１０３個／ｗｅｌｌの細胞数となるように、当該準備した９６ウェルプレートに播種した。この播種後、３７℃、５％ＣＯ２の環境下で、２４時間、当該正常ヒト皮膚線維芽細胞を培養した。その後、５％ＦＢＳ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｔｒａｃｅ製）を含むＤＭＥＭ培地から０．２５％ＦＢＳを含むＤＭＥＭ培地へ置換して、置換後、以下試料を各ウェルに投与し、３７℃、５％ＣＯ２の環境下で、３日間、当該正常ヒト皮膚線維芽細胞を培養した。３日間の培養後、Ｃｅｌｌ  Ｃｏｕｎｔｉｎｇ  Ｋｉｔ−８（ＤＯＪＩＮＤＯ）を用いて、各群（試料１から試料５の群）の正常ヒト皮膚線維芽細胞数を測定した。当該測定は、各群（試料１から試料５の群）において１０サンプルずつ行った。以下表３では、各群において１０サンプルの平均値を算出した結果を用いての以下相対値を示す。
【００３９】
・試料１の群：コントロールとして、所定量の精製水を投与。
・試料２の群：最終濃度０．５ｍｇ／ｍｌとなるように、製造例１で得られたプロテオグリカンを投与。
・試料３の群：最終濃度０．１ｍｇ／ｍｌとなるように、製造例１で得られたプロテオグリカンを投与。
・試料４の群：最終濃度０．５ｍｇ／ｍｌとなるように、試験例１と同じ標準品を投与。
・試料５の群：最終濃度０．１ｍｇ／ｍｌとなるように、試験例１と同じ標準品を投与。
【００４０】
測定結果を以下記載する。以下表３で示す測定結果は、試料１の群（コントロールの群）の細胞数を１００として、試料２から試料５の群では試料１の群と比べての相対値を示す。表３で示すように、試料１の群と比べ、試料２と試料３の群（本発明に係る実施例の１つである製造例１で得られたプロテオグリカンの投与群）では、製造例１で得られたプロテオグリカンの投与により、正常ヒト皮膚線維芽細胞の増殖が確認できた。なお、試料２と試料３の群の評価結果は、試料４と試料５の群（標準品の投与群）と同様の結果であった。
【００４１】
【表３】
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【図１】
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【図２】
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