(57)【要約】【課題】サンプル中の生体アミンを測定することができる質量分析方法を提供する。【解決手段】動物の組織、酒類、チーズのいずれか一種である測定対象物における生体アミンの質量を測定することができる生体アミンの質量分析方法であって、プローブにより測定対象物からサンプルを取得するサンプリングステップＳ２１と、脱着装置によりサンプルをプローブから脱着させると共に、複数の中性気相分子を産生させる脱着ステップＳ２２と、イオン化装置により複数のイオン化物質を産生してから、該複数のイオン化物質で脱着ステップＳ２２で生成した複数の中性気相分子をイオン化させて複数のイオン化粒子にするイオン化ステップＳ２３と、質量分析器により複数のイオン化粒子を分析して、サンプルにおける生体アミンの質量を測定する分析ステップＳ２４と、を含む。【選択図】図２
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
動物の組織、酒類、チーズのいずれか一種である測定対象物における生体アミンの質量を測定することができる生体アミンの質量分析方法であって、
プローブにより前記測定対象物からサンプルを取得するサンプリングステップと、
脱着装置により前記サンプルを前記プローブから脱着させると共に、前記サンプルから複数の中性気相分子を生成させる脱着ステップと、
イオン化装置により複数のイオン化物質を生成してから、該複数のイオン化物質で前記脱着ステップで生成した複数の中性気相分子をイオン化させて複数のイオン化粒子にするイオン化ステップと、
質量分析器により前記複数のイオン化粒子を分析して、前記測定対象物における生体アミンの質量を測定する分析ステップと、を含む
ことを特徴とする生体アミンの質量分析方法。
【請求項２】
前記測定対象物は、動物の組織である
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【請求項３】
前記サンプリングステップにおいて、前記プローブの端部により前記測定対象物をこそぎ取り、前記サンプルを取得する
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【請求項４】
前記サンプリングステップにおいて、前記プローブとして、端部に環孔があるように形成された環状セクションを有するものを使用し、該プローブの該環状セクションを前記測定対象物に押し当てて、該測定対象物を部分的に前記環状セクションの前記環孔に通過させてから絡め取り、前記測定対象物の前記環孔を通過したものを、前記サンプルとして前記測定対象物から分離させて取得する
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【請求項５】
前記サンプリングステップにおいて、前記プローブの端部を前記測定対象物に刺し込んでから抜き出し、前記プローブの端部に携えられて出てくるものを前記サンプルとして前記測定対象物から取得する
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【請求項６】
前記脱着ステップにおいて、前記脱着装置は、前記サンプルにレーザー脱着を行う
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【請求項７】
前記脱着ステップにおいて、前記プローブの端部にある前記サンプルを加熱するために配置された加熱管と、前記加熱管と連通し、所定方向に沿って流れる気流を生ずることができるガス供給源と、を備えたものを前記脱着装置とし、該脱着装置で前記サンプルを加熱脱着させ、
また、前記所定方向は、前記イオン化装置から生成した前記複数のイオン化物質が流れる方向と交差する方向である
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【請求項８】
前記イオン化ステップにおいて、前記イオン化装置は、大気圧イオン化法により複数のイオン化物質を生じさせるイオン化装置である
ことを特徴とする請求項１に記載の生体アミンの質量分析方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は質量分析方法に関し、特には動物の組織の生体アミンの質量分析方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
生体アミン（Biogenic amines、略称：ＢＡｓ）は生体中に存在するアルカリ性含窒素化合物であり、各種メカニズムにより生成される。生体アミンは、低濃度時においては、生理代謝機能を調整する働きを有し、生命維持に不可欠な生物活性分子である。一方、高濃度時においては、偏頭痛、胃腸の不具合、仮性アレルギー反応等を引き起こし、敏感体質者にとっては、ショックを引き起こす恐れもある。
【０００３】
生体アミンによる測定は、各分野で重要な意義を持つ。例えば食品分野においては、海産物の鮮度を生体アミンの濃度を測定することで測定することができる。このような鮮度測定の方法は主に２種類あり、１つは生体アミンとしてのプトレシン（putrescine）、カダベリン（cadaverine）、ヒスタミン（histamine）、チラミン（tyramine）の総合濃度（生体アミン指数）により判断する方法で、生体アミン指数が高いほど、海産物の鮮度が落ちていることが示され、５０ｍｇ／ｋｇを超えると腐敗したものと見なされる。もう１つは、スペルミジン(spermidine)の濃度に対するスペルミン(spermine)の濃度の比を用いる方法で、比が０．７を超えると、鮮度が落ちたものと見なされる。また、酒類やチーズの製造過程においては、各種のアミノ酸がヒスタミンなどの生体アミンに変化するので、これら飲食品中の生体アミンの含有量を測定することは食品安全の見地から極めて重要である。
【０００４】
更に、刑事鑑定の分野でも、生体アミンを含むバイオマーカーによる死亡時刻の推定が行われている。
【０００５】
生体アミンの測定方法の従来例としては、コンウェー式の微量拡散法、紫外線や蛍光による測定方法が挙げられる。コンウェー式の微量拡散法は、例えば特許文献１に示されているように広く用いられてきた方法であり、検体溶液とアルカリ性溶液を混合し、生物が腐敗後に揮発性アミン（ジメチルアミンやトリメチルアミンなど）及びアンモニアを放出し、これにより放出された含窒素物質（塩基窒素）が混合液から放出され、ホウ酸溶液に吸収された後に、酸滴定によって溶液中の揮発性塩基窒素総量（the total volatile basic nitrogen、略称：ＴＶＢＮ）を測定する。これにより、揮発性アミンの濃度を測定し、例えば海産物の鮮度を測定することができる。ただし、この種の方法は操作が簡単で器材の入手も容易であるが、揮発性の塩基窒素の測定に限られ、ヒスタミンなどの揮発性を有しない生体アミンの測定には用いることができない。また滴定を行うことにより実験誤差も大きく、高精度の測定が難しい。
【０００６】
紫外線や蛍光による生体アミンの測定方法は、特許文献２に示されているように、主に高速液体クロマトグラフィー（high performance liquid chromatography、略称：ＨＰＬＣ）と、紫外吸光度検出器または蛍光検出器とを用いて行われる。この方法によれば、揮発性を有しない生体アミンを測定することができる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】中国特許出願公開第１０３９８３７３３号明細書
【特許文献２】中国特許出願公開第１０６２４８８５５号明細書
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
しかしながら、上述の紫外線や蛍光による生体アミンの測定方法は、サンプルのホモジナイズ、抽出、ろ過、誘導体化といった複雑な前処理が必要になり、また測定の精度を上げるには、ＨＰＬＣにてサンプルにおける基質と生体アミンを分離して信号ピークがより明瞭に得られるようにする必要がある。したがって、この方法は、複雑で冗長な作業が必要となり、前処理からＨＰＬＣ分析までだけで数時間かかる。
【０００９】
従って、本発明は、より簡便に短時間で生体アミンを測定できる方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記課題を解決するため、本発明は、生体アミンの質量分析方法を提供する。
【００１１】
当方法は、動物の組織、酒類、チーズである測定対象物における生体アミンの質量を測定することができる生体アミンの質量分析方法であって、
【００１２】
プローブにより測定対象物からサンプルを取得するサンプリングステップと、
【００１３】
脱着装置によりサンプルをプローブから脱着させると共に、該サンプルから複数の中性気相分子を生成させる脱着ステップと、
【００１４】
イオン化装置により複数のイオン化物質を生成してから、該複数のイオン化物質で脱着ステップで生成した複数の中性気相分子をイオン化させて複数のイオン化粒子にするイオン化ステップと、
【００１５】
質量分析器により複数のイオン化粒子を分析して、測定対象物における生体アミンの質量を測定する分析ステップと、を含む。
【発明の効果】
【００１６】
上記手段によれば、本発明の生体アミンの質量分析方法は、プローブにより測定対象物に対してサンプリングを迅速に行うことができる。
【００１７】
また、本発明の生体アミンの質量分析方法は、測定対象物から取り出したサンプルに対してホモジナイズ、抽出、ろ過、誘導体化といった複雑な前処理を実行せず、サンプルを実験室または他の場所に移動することなく、現場で生体アミンを測定することができるため、生体アミンの濃度または種類をより短時間で測定することができることに加え、生体アミンの測定を簡単化することができ、機動性をも向上させることができる。
【図面の簡単な説明】
【００１８】
【図１】本発明に係る生体アミンの質量分析方法の一実施例で用いられる測定装置の例を示す概要図である。
【図２】上記実施例を示すフローチャートである。
【図３】上記測定装置が備えるプローブの一例と、該プローブによりこそぎ取る方式でサンプリングを行う態様を示す説明図である。
【図４】上記プローブの他の例と、該プローブにより絡め取る方式でサンプリングを行う態様を示す説明図である。
【図５】上記プローブにより穿刺する方法でサンプリングを行う態様を示す説明図である。
【図６】死後２４時間のバナメイエビに対して上記実施例を行うことで得られたフルスキャンモードでの生体アミンのマススペクトルである。
【図７】１２時間放置したカジキの切り身に対して上記実施例を行うことで得られた生体アミンのマススペクトルである。
【図８】１２時間放置したカジキの切り身に対して上記実施例を行うことで得られた生体アミンのマススペクトルである。
【図９】１２時間放置したカジキの切り身に対して上記実施例を行うことで得られた生体アミンのマススペクトルである。
【図１０】密閉環境下で放置したカジキの切り身に対して上記実施例を行うことで得られた、放置時間ごとの生体アミンの濃度変化を示す図である。
【図１１】密閉環境下で放置したカジキの切り身に対して上記実施例を行うことで得られた、放置時間ごとの生体アミンの濃度変化を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１９】
図１を参照して本発明に係る生体アミンの質量分析方法に利用されている測定装置１を説明する。ここで、図１は本発明に係る生体アミンの質量分析方法の一実施例で用いられる測定装置１の例を示す概要図である。
【００２０】
図１に示されるように、本発明に係る測定装置１は、端部でサンプル１６を採取することができるプローブ１１と、プローブ１１の端部にあるサンプル１６に対して脱着を行うことができる脱着装置１２と、複数のイオン化物質１３１を生成することができるイオン化装置１３と、イオン化装置１３に面する入り口１４１が開口している質量分析器１４と、を備えている。
【００２１】
プローブ１１は、例えば、ステンレスプローブ、金属針、綿棒である。
【００２２】
本実施形態では、該脱着装置１２は、プローブ１１の端部にあるサンプル１６を加熱することができるように配置されている加熱管１２１と、加熱管１２１と連通し、所定方向Ｄに沿って流れる気流を生ずることができるガス供給源１２２と、を具えた加熱式の脱着装置である。
【００２３】
なお、本発明において脱着装置１２は加熱式の脱着装置に限定されず、例えば、所定方向Ｄに沿ってレーザー光を発生させるレーザー式の脱着装置でもよい。
【００２４】
イオン化装置１３は、脱着装置１２のガス供給源１２２から生じた気流が流れる方向としての所定方向Ｄと交差する方向に沿って複数のイオン化物質１３１を生成することができるように配置されている。同じく、脱着装置１２がレーザー式の脱着装置であれば、イオン化装置１３は、レーザー光が発生する方向と交差する方向に沿って複数のイオン化物質１３１を生成することができるように配置されている。
【００２５】
本実施形態では、該イオン化装置１３は、大気圧イオン化法（Atomospheric Pressure Ionization、略称：ＡＰＩ）により複数のイオン化物質１３１を生じさせる。
【００２６】
なお、大気圧イオン化法は、エレクトロスプレーイオン化法（Electrospray ionization、略称：ＥＳＩ）及び大気圧化学イオン化法（Atomospheric Pressure Cheimcal Ionization、略称：ＡＰＣＩ）の２種が有り、即ち、イオン化装置１３は、エレクトロスプレーイオン化法（Electrospray ionization、略称：ＥＳＩ）または大気圧化学イオン化法（Atomospheric Pressure Cheimcal Ionization、略称：ＡＰＣＩ）により複数のイオン化物質１３１を生成させることができる。
【００２７】
＜生体アミンの質量分析方法＞
以下、本発明に係る生体アミンの質量分析方法について図面を参照して説明する。
【００２８】
図２〜図５を参照する。図２は上記実施例を示すフローチャートであり、図３は上記測定装置１が備えるプローブ１１の一例と、該プローブ１１によりこそぎ取る方式でサンプリングを行う態様を示す説明図であり、図４は上記プローブ１１の他の例と、該プローブ１１により絡め取る方式でサンプリングを行う態様を示す説明図であり、また、図５は上記プローブ１１により穿刺する方法でサンプリングを行う態様を示す説明図である。
【００２９】
本発明の測定装置１を用いて動物の組織、酒類、チーズである測定対象物１７における生体アミンの質量を測定することができる本発明に係る生体アミンの質量分析方法を実行する実施形態は、図２に示されているように、以下のステップＳ２１〜ステップＳ２４を含む。
【００３０】
ステップＳ２１は、サンプリングを行うステップであり、本ステップにおいて、図３に示されるように、プローブ１１により測定対象物１７からサンプル１６を取得する。また、該測定対象物１７は、例えば海産物、動物の皮膚組織、動物の体液などの動物の組織である。
【００３１】
また、サンプル１６を取得したプローブ１１は、容器への封入や或いは他の方法により保存及び移動することができるので、サンプル１６を取得するステップＳ２１は、本発明に係る測定装置１に近い箇所で実行しなくても良い。そのため、生体アミンの質量分析の機動性が優れる利点がある。
【００３２】
なお、サンプル１６の取得方式は、例えば以下の３種が有る。
【００３３】
第１の取得方式は、図３に示されるように、プローブ１１の端部により測定対象物１７をこそぎ取り、サンプル１６を取得する方式である。
【００３４】
該取得方式は、例えば、動物の皮膚組織、各種の化合物、動物の切り身といった測定対象物１７に対してサンプル１６の取得を実行することができ、そしてサンプル１６を取得する時間を大いに減らすことができると共に、機動性をも向上させることができる。即ち、動物の組織などの迅速に測定する必要があるものに対して該取得方式により生体アミンの質量分析を実行することができる。
【００３５】
そのため、例えば、黒マグロといった高価な海産物の鮮度を生体アミンの濃度を測定することにより速やかに測定することができることで、海産物の品質を確保することができる。
【００３６】
第２の取得方式は、図４に示されるように、プローブ１１として、端部に環孔１１１があるように形成された環状セクション１１２を有するものを使用し、該プローブ１１の該環状セクション１１２を測定対象物１７を押し当てて、該測定対象物１７を部分的に環状セクション１１２の環孔１１１に通過させてから絡め取り、測定対象物１７の環孔１１１を通過したものを、サンプル１６として測定対象物１７から分離して取得する方式である。
【００３７】
上記の端部に環孔１１１が形成されたプローブ１１によれば、該測定対象物１７におけるサンプル１６を取得する部分を集中させると共に、例えば、皮膚の丘疹（膿疱など）を破ってその内部のサンプル１６を絡め取ることができる。
【００３８】
第３の取得方式は、図５に示されるように、プローブ１１の端部を測定対象物１７に刺し込んでから抜き出し、プローブ１１の端部に携えられて出てくるものを前記サンプル１６として測定対象物１７から取得する方式である。
【００３９】
該取得方式は、例えば、死体を解剖しなくても、死体の内部から体液又は組織といったサンプル１６を取り出すことができる。
【００４０】
勿論、サンプル１６の取得方式は上記３種に限定されず、他の実施形態に応じて、他のサンプル１６の取得方式を採用することができる。
【００４１】
ステップＳ２２は、脱着を行うステップであり、本ステップにおいて、脱着装置１２によりサンプル１６をプローブ１１から脱着させると共に、サンプル１６から複数の中性気相分子１２３を生成する。
【００４２】
図１に示されるように、プローブ１１の端部にあるサンプル１６を加熱するために配置された加熱管１２１と、加熱管１２１と連通し、所定方向Ｄに沿って流れる気流を生ずることができるガス供給源１２２と、を備えたものを脱着装置１２とし、該脱着装置１２でサンプル１６を加熱脱着させる。
【００４３】
即ち、該脱着装置１２は、加熱管１２１によりプローブ１１の端部にあるサンプル１６に対して加熱脱着を行って、該サンプル１６から複数の中性気相分子１２３を生成し、そして、ガス供給源１２２により生じた気流で複数の中性気相分子１２３を所定方向Ｄに沿って流すものである。
【００４４】
そのため、サンプル１６を質量分析器１４の入り口１４１の前に置くことなく、生体アミンの質量分析を実行することができる。
【００４５】
本実施形態では、脱着装置１２は、加熱式の脱着装置を採用しているが、他の実施形態に応じて、サンプル１６にレーザー脱着を行うレーザー式の脱着装置を採用しても良い。
【００４６】
ステップＳ２３は、イオン化を行うステップであり、本ステップにおいて、イオン化装置１３により複数のイオン化物質１３１を生成してから、該複数のイオン化物質１３１で脱着ステップＳ２２で生成した複数の中性気相分子１２３をイオン化させて複数のイオン化粒子にする。
【００４７】
即ち、該イオン化装置１３は、図１に示されるように、所定方向Ｄと交差する方向に沿って複数のイオン化物質１３１を生成して、そして該複数のイオン化物質１３１が、所定方向Ｄに沿って流れている複数の中性気相分子１２３と共に、イオン分子反応（ion-molecular reaction、略称：ＩＭＲ）を起こすようにすることで、複数の中性気相分子１２３をイオン化して複数のイオン化粒子にするものである。
【００４８】
本実施形態では、イオン化装置１３は、エレクトロスプレーイオン化法（ＥＳＩ）により複数のイオン化物質１３１を生じさせるイオン化装置である。勿論、ここで、大気圧化学イオン化法（ＡＰＣＩ）を採用しても良い。
【００４９】
ステップＳ２４は、分析を行うステップであり、本ステップにおいて、質量分析器１４により複数のイオン化粒子を分析して、測定対象物１７から採取したサンプル１６における生体アミンの質量を測定する。
【００５０】
即ち、該質量分析器１４は、図１に示されるように、イオン化ステップＳ２３で生成した複数のイオン化粒子が入り口１４１に進入され、該複数のイオン化粒子を分析し、測定対象物１７から採取したサンプル１６の生体アミンの濃度及び種類を得る。
【００５１】
また、測定済みのプローブ１１は測定装置１から取り出すことができる。そして、プローブ１１の先端に残るサンプル１６を高温の火炎にて焼却し、プローブ１１を消毒してから再利用することができる。本実施例での生体アミンの質量分析方法によれば、廃棄物を減らすことができる。
【００５２】
なお、本実施例に係る生体アミンの質量分析方法は、迅速さやハイスループット分析といった利点を具えた熱脱着エレクトロスプレーイオン化質量分析法（thermal desorption electrospray ionization mass spectrometry、略称：ＴＤ−ＥＳＩ／ＭＳ）により実行されているため、複雑な前処理工程を要さず、大気圧下で固体または液体のサンプル１６に対して分析を行うことができる。
【００５３】
更に、質量分析器１４は、多重反応モニタリング（multiple reaction monitoring、略称：ＭＲＭ）モード及び選択イオンモニタリング（selected ion monitoring、略称：ＳＩＭ）モードにより生体アミンの質量を測定することができる。
【００５４】
多重反応モニタリング（ＭＲＭ）モードは、特定の種の親イオンフラグメントイオン対（parent-fragment ion pair）に対して測定を行うものである。そして、選択イオンモニタリング（ＳＩＭ）モードは、特定の質量電荷比範囲のイオンのみ測定を行うものである。また、上記の２種の質量分析器１４は、フルスキャンモード（full scan mode）と比較すると、測定感度が良好となることで、低濃度の化合物でも分析することができる。
【００５５】
図６〜図９を参照して本発明の質量分析器１４により死後２４時間のバナメイエビ及び１２時間放置したカジキの切り身の動物の組織に対して行った生体アミンの質量分析を説明する。
【００５６】
ここで、図６は死後２４時間のバナメイエビに対して上記実施例を行うことで得られたフルスキャンモードでの生体アミンのマススペクトルであり、また、図７〜図９は１２時間放置したカジキの切り身に対して上記実施例を行うことで得られた生体アミンのマススペクトルである。
【００５７】
図６に示されるように、死後２４時間のバナメイエビに対してフルスキャンモードの質量分析器１４によりm/z値が３０〜２００のスキャン範囲で上記実施例を行って、バナメイエビ（動物の組織）から、例えばジメチルアミン(dimethylamine)、トリメチルアミン(trimethylamine)、プトレシン(putrescine)などの異なる種類の生体アミンを検出することができる。
【００５８】
また、図７〜図９及び表１に示されるように、１２時間放置したカジキの切り身（動物の組織）に対して多重反応モニタリング（ＭＲＭ）モード及び選択イオンモニタリング（ＳＩＭ）モードの質量分析器１４により上記実施例を行って測定を行うことで得られた１１種類の生体アミンのマススペクトルである。その中に、ジメチルアミン(dimethylamine)のみ選択イオンモニタリング（ＳＩＭ）モードにより検出されるものであり、他の１０種類が多重反応モニタリング（ＭＲＭ）モードにより検出されるものである。
【００５９】
即ち、多重反応モニタリング（ＭＲＭ）モードの質量分析器１４により、トリメチルアミン(trimethylamine)、プトレシン(putrescine)、カダベリン(cadaverine) 、ヒスタミン(histamine)、フェネチルアミン(phenethylamine)、アグマチン（agmatine）、チラミン
（tyramine）、スペルミジン(spermidine)、トリプタミン（tryptamine）、スペルミン(spermine)などの１０種類の生体アミンのマススペクトルを検出することができる。
【００６０】
更に、図７に示されるように、本実施例によれば、１つの測定方法として海産物の鮮度を判定することができるプトレシン、 カダベリン、ヒスタミン、トリプタミンの４種類の生体アミンを測定することができる。また、図８に示されるように、本実施例によれば、もう１つの測定方法として海産物の鮮度を判定することができるスペルミジン及びスペルミンの２種類の生体アミンを測定することができる。そのため、上記実施例を行って得た結果により、２種類の海産物の鮮度測定方法を行うことができる。
【００６１】
なお、海産物の鮮度の測定方法は本発明の特徴ではなく、更なる詳細な記載がなくても、同業者であれば、上記の内容に基づいて利用できると考える。
【００６２】
図１０及び図１１に示されているように、本発明に係る生体アミンの質量分析方法は、動物の組織に対して放置時間ごとの生体アミンの濃度変化を測定することができる。ここで、図１０及び図１１は、表１の測定モード及びデータに基づいて２５℃で密閉環境下で放置したカジキの切り身に対して測定を行うことで得られた、放置時間ごとの生体アミンの濃度変化を示す図である。
【００６３】
【表１】
2020067446.tif 000003
【００６４】
総括すると、本発明の生体アミンの質量分析方法は、プローブ１１を用いてそれぞれ図３〜図５に示されている３種のサンプル１６の取得方式により特に動物の組織である測定対象物１７に対してサンプリングを迅速に実行することができる。そのため、数多くの測定対象物１７に対応することができる。
【００６５】
また、測定対象物１７から取り出したサンプル１６に対して複雑な前処理が不要であるため、サンプル１６を実験室などの場所に移動させる必要がなく、現場で生体アミンを測定することができる。そのため、本発明の生体アミンの質量分析方法は、短時間で実行することができ、測定の機動性をも向上させることができる。
【００６６】
上記においては、本発明の全体的な理解を促すべく、多くの具体的な詳細が示された。しかしながら、当業者であれば、一またはそれ以上の他の実施形態が具体的な詳細を示さなくとも実施され得ることが明らかである。
【００６７】
以上、本発明の好ましい実施形態及び変化例を説明したが、本発明はこれらに限定されるものではなく、最も広い解釈の精神および範囲内に含まれる様々な構成として、全ての修飾および均等な構成を包含するものとする。
【産業上の利用可能性】
【００６８】
本発明は、上記のように記載された生体アミンの質量分析方法によって、プローブを用いて３種のサンプルのいずれか１種の取得方式により海産物などの動物の組織、更には酒類、チーズに対してもサンプリングを迅速に実行することができる。
【００６９】
また、測定対象物から取り出したサンプルに対して複雑な前処理が不要であるため、サンプルを実験室などの場所に移動させる必要がなく、現場でサンプルにおける生体アミンの濃度及び種類を測定することができる。
【００７０】
よって、本発明に係る生体アミンの質量分析方法により、測定の自由度を上げることができ、測定効率を飛躍的に向上させることができる。そのため、産業上の利用可能性がある。
【符号の説明】
【００７１】
１  測定装置
１１  プローブ
１１１  環孔
１１２  環状セクション
１２  脱着装置
１２１  加熱管
１２２  ガス供給源
１２３  中性気相分子
１３  イオン化装置
１３１  イオン化物質
１４  質量分析器
１４１  入り口
１６  サンプル
１７  測定対象物
Ｓ２１  サンプリングステップ
Ｓ２２  脱着ステップ
Ｓ２３  イオン化ステップ
Ｓ２４  分析ステップ
Ｄ       所定方向
【図１】
2020067446.tif 000004
【図２】
2020067446.tif 000005
【図３】
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【図４】
2020067446.tif 000007
【図５】
2020067446.tif 000008
【図６】
2020067446.tif 000009
【図７】
2020067446.tif 000010
【図８】
2020067446.tif 000011
【図９】
2020067446.tif 000012
【図１０】
2020067446.tif 000013
【図１１】
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