(57)【要約】【課題】早期に抗血栓性を発揮することができる医療器具を提供する。【解決手段】フォン・ヴィレブランド因子（ｖｏｎ  Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ  ｆａｃｔｏｒ）を分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える医療器具。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
フォン・ヴィレブランド因子（ｖｏｎ  Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ  ｆａｃｔｏｒ）を分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える、医療器具。
【請求項２】
前記フォン・ヴィレブランド因子を分解しうる因子が、ＡＤＡＭ２８を含む、請求項１に記載の医療器具。
【請求項３】
前記結合可能な物質が、抗ＡＤＡＭ２８抗体またはその抗原結合断片を含む、請求項２に記載の医療器具。
【請求項４】
前記抗ＡＤＡＭ２８抗体が、モノクローナル抗体である、請求項３に記載の医療器具。
【請求項５】
前記抗ＡＤＡＭ２８抗体が、前記ＡＤＡＭ２８のディスインテグリンドメイン、システインリッチドメイン、ＥＧＦ様ドメインおよびＣ末端領域にあるエピトープの少なくとも一つを認識する、請求項３または４に記載の医療器具。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医療器具に関する。
【背景技術】
【０００２】
血管内皮機能の低下や、動脈硬化の進展によりプラークが破綻すると、血栓が形成され、血管内腔の狭窄や閉塞が起こる。その結果として、心筋梗塞や脳梗塞、終動脈閉塞などの循環器障害による臓器不全などが発症し、生命予後に大きな影響を与えることが問題となっている。さらに、血管内への治療や診断のための医療機器の挿入または留置などの医療介入により血管内皮が障害されたり、血流によるメカニカルストレスが低下したりすると、血栓形成のリスクが高まり、血管内腔が狭窄したり、さらには閉塞をきたして循環器障害を引き起こしたりすることが知られている。
【０００３】
ところで、一次血栓は、内皮細胞上のフォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）または血管障害部位に露出したコラーゲンにｖＷＦが結合することがトリガーとなり、このｖＷＦにＧＰ１ｂ／Ｖ／ＩＸを介して血小板が結合し、さらにＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａを介して血小板にフィブリンが結合することにより形成される。この一次血栓が成長して血管閉塞・狭窄に至る。すなわち、血管狭窄・閉塞をもたらす血栓の形成には、ｖＷＦが血管壁に存在することが重要である。一方、生体内においては、血栓が血管内腔に対して著しく増長して血管内腔を閉塞するような状況では、血栓による血管狭窄や閉塞を防ぐため、血栓（超高分子量ｖＷＦマルチマー）に高いシェアストレスがかかり、ｖＷＦの立体構造が変化して、ＡＤＡＭタンパク質（ＡＤＡＭｓ：ａ  ｄｉｓｉｎｔｅｇｒｉｎ  ａｎｄ  ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ）であるＡＤＡＭＴＳ１３がｖＷＦを分解することで血栓による閉塞を防止していることが知られている。しかしながら、ＡＤＡＭＴＳ１３は通常の血流下でネイティブな立体構造を有するｖＷＦを分解できず、かつＡＤＡＭＴＳ１３の遺伝子をノックアウトしたマウスでは、健常状態では見かけ上は何も生じない（非特許文献１および２を参照）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Motto DG et al., J Clin Invest. 2005; 115 (10): 2752-61
【非特許文献２】Banno F et al., Blood. 2009; 113 (21): 5323-9
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ＡＤＡＭＴＳ１３は、過剰に増大した血栓を分解して血管の狭窄・閉塞を防止しているものと考えられる。しかしながら、ＡＤＡＭＴＳ１３は、立体構造が変化していない、すなわち未変性のｖＷＦを分解できないため、一次血栓の成長を抑制することができない。そのため、一次血栓の形成や成長を抑制する手段、すなわち早期に抗血栓性を発揮できる手段が望まれている。
【０００６】
したがって、本発明は、早期に抗血栓性を発揮することができる医療器具を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討を行った。その結果、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える医療器具により上記課題が解決することを見出した。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、早期に抗血栓性を発揮することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】実施例で使用したメカニカルストレス負荷培養装置を説明するための説明図である。
【図２】図１に示すメカニカルストレス負荷培養装置における細胞培養ユニットが湾曲した状態で接続された状態を説明するための写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
以下、本発明の一形態に係る実施の形態を説明する。本発明は、以下の実施の形態のみには限定されない。
【００１１】
本明細書において、範囲を示す「Ｘ〜Ｙ」は「Ｘ以上Ｙ以下」を意味する。また、特記しない限り、操作および物性等の測定は室温（２０〜２５℃）／相対湿度４０〜５０％ＲＨの条件で測定する。
【００１２】
＜医療器具＞
本発明の一形態は、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える医療器具である。
【００１３】
本明細書において、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備えるとは、血液と接する医療器具の表面にｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質が存在することを意味する。具体的には、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質のｖＷＦに対する結合部位が、血液と接するように医療器具の表面に存在する。ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を医療器具の表面に備える方法は、特に制限されない。例えば、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質として、後述の抗ＡＤＡＭ２８抗体を用いる場合、公知の抗体の固定化法を用いることができる。固定化法としては、物理的吸着法、化学的結合法などが挙げられる。
【００１４】
（ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質）
ｖＷＦを分解しうる因子としては、ネイティブな立体構造を有するｖＷＦを分解することができるものであれば、特に制限されない。ｖＷＦを分解しうる因子は、早期に抗血栓性を発揮するとの観点から、好ましくはＡＤＡＭ２８、より好ましくはヒトＡＤＡＭ２８を含む。
【００１５】
ｖＷＦは、血液凝固において重要な役割を果たす血漿タンパク質である。ｖＷＦは主に血管内皮や巨核球で産生され、高分子多量体の形態で血中に放出される。野生型ヒトｖＷＦは、そのシグナルペプチドおよびプロ領域を含めて全部で２８１３個のアミノ酸からなるポリペプチドである。野生型ヒトｖＷＦのアミノ酸配列と、野生型ヒト成熟ｖＷＦサブユニットのアミノ酸配列は、国際公開第２００４／０３５７７８号パンフレットに開示されている。
【００１６】
上述したように、本発明者らは、早期に抗血栓性を発揮できる手段を開発することを目的として、鋭意検討を行った。その過程で、本発明者らは、まず、血管内皮細胞に対してメカニカルストレスが負荷されない条件下（血管内を血流が流れていない状態に相当）では、メカニカルストレスが負荷されている条件下（血管内を血流が流れている状態に相当）と比較して、内皮機能のマーカーであるｅＮＯＳ（血管内皮細胞におけるＮＯ合成酵素）の発現量が低下し、内皮機能が低下することを確認した。そして、ｅＮＯＳの発現量の低下を伴うほど内皮機能が低下した状態では、内皮細胞におけるｖＷＦの発現量が上昇する一方で、ＡＤＡＭ２８の発現量が低下するという事実を初めて明らかにした。
【００１７】
従来、ｖＷＦの生理的な分解酵素であると考えられてきたＡＤＡＭＴＳ１３には可溶型のみが存在し、しかも上述したように通常の血流下でネイティブな立体構造を有するｖＷＦを分解することはできない。これに対し、ＡＤＡＭ２８には可溶型に加えて膜結合型も存在し、しかもネイティブな立体構造を有するｖＷＦをも分解可能である（Mochizuki S et al., J Natl Cancer Inst. 2012; 104 (12): 906-22）。これらのことから、ｖＷＦの分解を生理的に制御している酵素は、従来考えられていたＡＤＡＭＴＳ１３ではなくＡＤＡＭ２８であり、ＡＤＡＭ２８がｖＷＦを効率よく分解することで一次血栓の形成を防止しているものと推察される。また、ｖＷＦの血管壁への結合は血栓形成の第一ステップであることから、ＡＤＡＭ２８は血栓形成のゲートキーパーとして重要な役割を担っており、健常状態において血栓形成を抑制することで、血管の閉塞・狭窄を防止していると考えられる。さらに、血流低下などのメカニカルストレスの減少などに起因してひとたび内皮機能が低下すると、一次血栓形成のトリガーであるｖＷＦの発現が上昇するとともに、それを分解するＡＤＡＭ２８の発現が低下し、血栓形成が促進されて血管の閉塞・狭窄が生じるものと考えられる。
【００１８】
以上のことから、ｖＷＦを分解しうる因子、すなわちネイティブな立体構造を有するｖＷＦを分解することができる因子を結合可能な物質を表面に備えることにより、本形態に係る医療器具は、早期に抗血栓性を発揮することができる。
【００１９】
一実施形態において、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質は、早期に抗血栓性を発揮するとの観点から、好ましくは抗ＡＤＡＭ２８抗体またはその抗原結合断片である。
【００２０】
本明細書において、抗原結合断片とは、抗体の一部分を含むタンパク質であり、抗原に結合できるものを意味する。抗原結合断片の例としては、（ｉ）ＶＬ、ＶＨ、ＣＬおよびＣＨ１ドメインから構成される１価の断片であるＦａｂ断片、（ｉｉ）ヒンジ領域中ジスルフィド架橋で結合した２個のＦａｂ断片を含む２価の断片であるＦ（ａｂ’）２断片、（ｉｉｉ）ヒンジ領域の部分を持つ本来的ＦａｂであるＦａｂ’断片（Paul WE, Fundamental Immunology. 3rd ed. Raven Press, New York, 1993参照）、（ｉｖ）ＶＨおよびＣＨ１ドメインから構成されるＦｄ断片、（ｖ）抗体のシングルアームのＶＬおよびＶＨドメインで構成されるＦｖ断片、（ｖｉ）ＶＨドメインから構成されるｄＡｂ断片（Ward ES et al., Nature. 1989; 341 (6242):544-6）、（ｖｉｉ）単離相補性決定領域（ＣＤＲ）および（ｖｉｉｉ）単一可変ドメインと二つの定常領域を含む重鎖可変領域であるナノボディなどが挙げられる。さらに、Ｆｖ断片の２個のドメインであるＶＬおよびＶＨは別々の遺伝子によりコードされているが、それらは、組換えＤＮＡ技術を用いてそれらを単一タンパク質鎖として作製できる合成リンカーにより連結でき、この鎖中では、ＶＬおよびＶＨ領域が対となって１価の分子を形成する（単一鎖のＦｖ（ｓｃＦｖ）として知られている；例えば、Bird RE et al., Science. 1989; 242 (4877):423-6;およびHuston JS et al., Proc Natl Acad Sci USA. 1988; 85 (16): 5879-83参照）。このような単一鎖の抗体も、抗体の抗原結合断片に包含される。これらの抗体断片は、当業者に公知の従来の技術を用いて得られ、当該断片について、未改変抗体の場合と同様に有用性を求めてスクリーニングされる。
【００２１】
本形態に係る抗ＡＤＡＭ２８抗体は、ＡＤＡＭ２８に対する特異的結合活性を有し、かつＡＤＡＭ２８の酵素活性を阻害しない抗体である。
【００２２】
本明細書において、特異的結合とは、抗原抗体反応における、抗体の抗原に対する結合親和性が、非特異的な抗原（例えば、ウシ血清アルブミン）に対する結合親和性よりも高いことを意味する。
【００２３】
本形態に係る抗ＡＤＡＭ２８抗体は、ＡＤＡＭ２８の酵素活性を阻害しないものである。ＡＤＡＭ２８の酵素活性とは、具体的にはＡＤＡＭ２８がｖＷＦを切断する活性を意味する。ＡＤＡＭ２８の酵素活性は、例えばMochizuki S et al., J Natl Cancer Inst. 2012; 104 (12): 906-22に記載されている方法のように、一般的に行われているｖＷＦマルチマー解析により評価することができる。
【００２４】
ＡＤＡＭタンパク質は、膜貫通タンパク質の外部ドメインシェディング、細胞接着および浸潤に関わる多機能タンパク質である（Edwards DR et al., Mol Aspects Med. 2008; 29 (5): 258-89;Murphy G, Semin Cell Dev Biol. 2009; 20 (2): 138-45）。ヒトゲノムには、４種の偽遺伝子を含む２５種のＡＤＡＭｓが含まれており、２１種のＡＤＡＭｓは、タンパク質分解活性を示す１３種のタンパク質分解性ＡＤＡＭｓと８種の非タンパク質分解性ＡＤＡＭｓからなる（Edwards DR et al., Mol Aspects Med. 2008; 29 (5): 258-89;Shiomi T et al., Pathol Int. 2010; 60 (7): 477-96）。タンパク質分解性ＡＤＡＭｓは、マトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰｓ）のメタロプロテイナーゼドメインを共有し、典型的なタンパク質分解性ＡＤＡＭｓは、プロペプチド、メタロプロテイナーゼドメイン、ディスインテグリンドメイン、システインリッチドメイン、ＥＧＦ（上皮増殖因子）様ドメイン、膜貫通および細胞内ドメインを含み、ＡＤＡＭ８、ＡＤＡＭ９、ＡＤＡＭ１２、ＡＤＡＭ１５、ＡＤＡＭ１７、ＡＤＡＭ１９およびＡＤＡＭ２８を含む多くのタンパク質分解性ＡＤＡＭｓは、ヒト癌において過剰発現しており、癌の増殖および進行と関係していることが知られている（Mochizuki S et al., J Natl Cancer Inst. 2012; 104 (12): 906-22）。
【００２５】
ＡＤＡＭ２８は公知のタンパク質であり、そのアミノ酸配列やｃＤＮＡ配列も公知である。ＡＤＡＭ２８には、膜型（ＡＤＡＭ２８ｍ）と、分泌型（ＡＤＡＭ２８ｓ）の２種類が存在する。ヒト膜型ＡＤＡＭ２８（およびその成熟型）の代表的なアミノ酸配列およびｃＤＮＡ配列、並びにヒト分泌型ＡＤＡＭ２８（およびその成熟型）の代表的なアミノ酸配列およびｃＤＮＡ配列は、国際公開第２０１６／１４３７０２号パンフレット、国際公開第２０１４／０７３２９２号パンフレットに開示されている。なお、「ヒトＡＤＡＭ２８」とは、ＡＤＡＭ２８のアミノ酸配列またはヌクレオチド配列が、ヒトにおいて天然に発現しているＡＤＡＭ２８のアミノ酸配列またはヌクレオチド配列と同一または実質的に同一のアミノ酸配列またはヌクレオチド配列を有することを意味する。「実質的に同一」とは、着目したアミノ酸配列またはヌクレオチド配列が、ヒトにおいて天然に発現しているＡＤＡＭ２８のアミノ酸配列またはヌクレオチド配列と７０％以上（好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、最も好ましくは９９％以上）の同一性を有しており、かつ、ヒトＡＤＡＭ２８の機能を有することを意味する。ヒト以外の生物種や、膜型ＡＤＡＭ２８以外のタンパク質、遺伝子、それらの断片についても同様に解釈する。
【００２６】
抗ＡＤＡＭ２８抗体は、ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体のいずれであってもよい。抗ＡＤＡＭ２８抗体は、好ましくはモノクローナル抗体である。また、抗ＡＤＡＭ２８抗体は、ＡＤＡＭ２８の酵素活性を阻害しないとの観点から、ＡＤＡＭ２８のディスインテグリンドメイン、システインリッチドメイン、ＥＧＦ様ドメインおよびＣ末端領域にあるエピトープの少なくとも一つを認識することが好ましく、ＡＤＡＭ２８のディスインテグリンドメインおよびシステインリッチドメインにあるエピトープの少なくとも一つを認識することがより好ましく、ディスインテグリンドメインにあるエピトープの少なくとも一つを認識することがさらに好ましい。好ましい配列例として、ディスインテグリングループを形成する領域のアミノ酸配列であるＶＣＲＰＡＫＤＥＣＤＬを挙げることができる。
【００２７】
ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体は、常法により製造することができる。例えば、モノクローナル抗体は、細胞融合法により製造することができる。
【００２８】
ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質の固定化量は、使用するｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質によって異なるが、例えば医療器具の表面１ｃｍ２あたり０．１〜１０μｇである。ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質として抗ＡＤＡＭ２８抗体を使用する場合、抗ＡＤＡＭ２８抗体の固定化量は、医療器具の表面１ｃｍ２あたり０．１〜１０μｇである。
【００２９】
（ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える方法）
本形態に係る医療器具は、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える。ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備える方法は、使用するｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質に応じて、公知の方法から適宜選択することができる。
【００３０】
以下、一実施形態として、抗ＡＤＡＭ２８抗体を医療器具の表面に備える方法について、説明する。
【００３１】
（１）抗ＡＤＡＭ２８抗体を基材表面に吸着させる方法
基材（例えば、ポリスチレン基材）を、０．０１質量％の抗ＡＤＡＭ２８抗体を溶解したアルカリ性緩衝液（例えば、リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）、炭酸−重炭酸緩衝液（ｐＨ９．４））中に浸し、約４℃で約１８〜２４時間程度インキュベートしてディップコートする。アルカリ性緩衝液で洗浄して、未結合な抗ＡＤＡＭ２８抗体を洗浄除去する。必要に応じて、乾燥処理を行うことで、抗ＡＤＡＭ２８抗体を基材表面に吸着させることができる。
【００３２】
（２）抗ＡＤＡＭ２８抗体をステント表面に固定化する方法
ステント（例えば、ステンレスＳＵＳ３１６Ｌ）をシランカップリング剤（例えば、３−アミノプロピルトリエトキシシラン）の２質量％エタノール溶液の中に室温（２３℃）で約３０分間入れた後、約７０℃のオーブンで約４８時間、乾燥する。
【００３３】
次いで、０．０１質量％の抗ＡＤＡＭ２８抗体を溶解したアルカリ性緩衝液（例えば、リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）、炭酸−重炭酸緩衝液（ｐＨ９．４））を、スプレー装置を用いてステントに噴霧し、室温で約４８時間、乾燥する。
【００３４】
さらに、縮合剤（例えば、ＤＭＴ−ＭＭ（４−（４，６−Ｄｉｍｅｔｈｏｘｙ−１，３，５−ｔｒｉａｚｉｎ−２−ｙｌ）−４−ｍｅｔｈｙｌｍｏｒｐｈｏｌｉｎｉｕｍ  Ｃｈｌｏｒｉｄｅ  ｎ−Ｈｙｄｒａｔｅ）３０ｍｇを９ｇのリン酸緩衝生理食塩液に溶解した液をスプレー装置を用いてステントに噴霧して、室温で約４８時間、乾燥する。
【００３５】
その後、アルカリ性緩衝液で未結合の抗ＡＤＡＭ２８抗体を洗浄除去する。
【００３６】
必要に応じて、乾燥処理を行うことで、抗ＡＤＡＭ２８抗体をステント表面に固定化することができる。
【００３７】
（抗血栓性の評価方法）
本形態に係る医療器具について、その抗血栓性は、例えば以下のようにして評価することができる。
（ｉ）健常人ドナーから採取した新鮮血２５ｍｌ、抗凝固剤としてヘパリン９．０ｕｎｉｔ、生理食塩水２０ｍｌを混合し、抗凝固希釈血を調製する。
（ｉｉ）抗ＡＤＡＭ２８抗体を表面に固定化した基材（コート基材）および未コート基材をそれぞれ、別の内径６ｍｍ全長４００ｍｍのチューブ内に留置し、上記の抗凝固希釈血液を８ｍｌ充填し、端部をコネクターで接続して、ループ状にする。
（ｉｉｉ）ループ状にしたチューブを回転装置にとりつけ、４０ｒｐｍで１２０分間回転し、チューブ内の血液を循環させる。
（ｉｖ）循環終了後に、基材へのＡＤＡＭ２８の結合および血栓の付着を評価する。
【００３８】
（医療器具）
本形態に係る医療器具としては、血液と接触して用いられる器具が挙げられる。上述のとおり、本形態に係る医療器具は、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を表面に備えることにより、早期に抗血栓性を発揮することができる。そのため、本形態に係る医療器具は、抗血栓性を要求されるものであれば、いずれの用途で使用されてもよい。例えば、カテーテル、シース、カニューレ、針、三方活栓、ガイドワイヤーなどが挙げられる。また、他の例としては、血液回路、人工透析器、人工（補助）心臓、人工肺、留置針、人工腎臓、ステントなどが挙げられる。
【００３９】
＜医療器具の製造方法＞
本発明の別の形態は、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を含む液を基材にコートすることを有する、医療器具の製造方法である。
【００４０】
ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を含む液の調製方法は、特に制限されず、例えば溶媒にｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を溶解して作製することができる。溶媒としては、リン酸緩衝液（ｐＨ７．０超８．５以下）、炭酸−重炭酸緩衝液（ｐＨ９．２〜１０．６）などのアルカリ性緩衝液、メタノール、エタノールなどの有機溶媒が挙げられる。
【００４１】
前記液中のｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質の濃度は、早期に抗血栓性を発揮できる濃度であれば特に制限されないが、例えば０．１〜１００μｇ／ｍｌであり、好ましくは０．２〜５０μｇ／ｍｌである。２種類以上のｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を使用した場合、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質の濃度は、それらの合計濃度である。
【００４２】
（基材）
医療器具の基材の材質としては、特に制限されず、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、エチレン−α−オレフィン共重合体等のポリオレフィンや変性ポリオレフィン；ポリアミド；ポリイミド；ポリウレタン；ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリブチレンテレフタレート（ＰＢＴ）、ポリシクロヘキサンテレフタレート、ポリエチレン−２，６−ナフタレート等のポリエステル；ポリ塩化ビニル；ポリ塩化ビニリデン（ＰＶＤＣ）；ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）、エチレン−テトラフルオロエチレン共重合体（ＥＴＦＥ）等のフッ素樹脂等の各種高分子材料、金属、セラミック、カーボン、およびこれらの複合材料等が例示できる。上記の高分子材料は延伸処理がなされたもの（例えば、ｅＰＴＦＥ）であっても良い。
【００４３】
基材の形状は医療器具の用途等に応じて適宜選択され、例えば、チューブ状、シート状、ロッド状等の形状をとりうる。基材の形態は、上記のような材料を単独で用いた成形体に限定されず、ブレンド成形物、アロイ化成形物、多層化成形物などでも使用可能である。基材は単層であっても、積層されていてもよい。この際、基材が積層されている場合には、各層の基材は同じものであっても、異なるものであってもよい。
【００４４】
（コート）
上記液を基材にコートする方法は、特に制限されず、塗布・印刷法、浸漬法（ディッピング法、ディップコート法）、噴霧法（スプレー法）、スピンコート法、混合溶液含浸スポンジコート法など、従来公知の方法を使用できる。
【００４５】
上記液を基材にコートする際の温度は、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質の結合能が失活しない温度であれば、特に制限されない。
【００４６】
上記液を基材にコートした後は、適宜乾燥処理を行う。乾燥条件（温度、時間など）は、使用するｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質に応じて、適宜設定することができる。
【００４７】
（その他の工程）
上記液を基材にコートする前に、必要に応じて、基材表面をあらかじめシランカップリング剤などで処理してもよい。また、前記処理後に、必要に応じて、縮合剤の存在下で反応を行ってもよい。
【００４８】
上記方法により得られた基材は、そのまま医療器具として使用できるが、コートした基材を洗浄してもよい。
【００４９】
洗浄方法は、特に制限されないが、コートした基材を溶媒に浸漬する方法、コートした基材に溶媒をシャワーする方法などが挙げられる。溶媒としては、ｖＷＦを分解しうる因子を結合可能な物質を含む液の調製方法で使用したものを使用できる。洗浄後の乾燥方法は特に制限されず、従来公知の方法を用いることができる。
【実施例】
【００５０】
本発明の効果を、以下の実施例および比較例を用いて説明する。ただし、本発明の技術的範囲が以下の実施例のみに制限されるわけではない。
【００５１】
［血管内皮細胞の培養］
まず、血管を模すための培養容器として、シリコーンゴムチューブを準備した。そして、以下の手法によりシリコーンゴムチューブ内腔にコラーゲンコートを行った。すなわち、まず、コラーゲン（５ｍｇ／ｍＬ；１ｍＭ  ＨＣｌ溶液、AteloCell Native collagen Bovine Dermis、高研）を希塩酸（ｐＨ３．０、１０−３Ｍ）で１０倍希釈し、チューブに充填した。次いで、４℃にて３日間インキュベートしてコーティングを実施した。そして、希釈コラーゲン溶液を廃棄した後、チューブをハンクス緩衝液で洗浄して、その後の試験に用いた。
【００５２】
一方、ブタ冠状動脈内皮細胞を、内皮細胞培養培地（Porcine Endothelial Cell Growth Medium、APPLICATIONS INC）を含む培養フラスコ内で、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で培養し、細胞数を十分に増やした。このブタ冠状動脈内皮細胞を、上記でコラーゲンコートしたシリコーンゴムチューブの内腔に播種し、チューブを中心軸に沿って回転させながら、チューブ内面に細胞を均一に接着させた。そして、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で、コンフルエントになるまで一晩程度培養した。このようにして、内腔が血管内皮細胞で被覆されたシリコーンゴムチューブを作製した。
【００５３】
続いて、図１に示すメカニカルストレス負荷培養装置を準備した。図１に示すメカニカルストレス負荷培養装置は、主な構成要素として、ポンプ、リザーバー、細胞を保持または培養する細胞培養ユニット、コンプライアンスタンク、バルブ（抵抗用バルブ、流量調整バルブ）およびそれらを接続するチューブから構成されている。このメカニカルストレス負荷培養装置によれば、ポンプを駆動させることにより、細胞培養ユニット内の培地を流動（循環）させたり拍動させたりすることができる。
【００５４】
上記で準備したメカニカルストレス負荷培養装置（図１）の細胞培養ユニット部分に、上記で作製した血管内皮細胞被覆シリコーンゴムチューブを、図２に示すように湾曲させた状態で接続した。その後、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で、培地を１５ｄｙｎ／ｃｍ２（１．５×１０−４Ｎ／ｃｍ２）の圧力で循環させて、１日程度培養した。この培養では、シリコーンゴムチューブが湾曲した状態で細胞培養ユニットに接続されていることから、培地を循環させて培養を実施することで、シリコーンゴムチューブの内面に接着している血管内皮細胞に対してはメカニカルストレス（せん断応力）が負荷されることになる。なお、同様の培養条件下で、培地を循環させない静置培養も行った。
【００５５】
［血管内皮細胞における遺伝子発現の解析］
上記の培養が終了した後、シリコーンゴムチューブから血管内皮細胞を回収し、ＲＮｅａｓｙ  ｍｉｎｉキット（キアゲン社）を用いて常法によりＴｏｔａｌ  ＲＮＡを調製および精製した。このようにして得られたＴｏｔａｌ  ＲＮＡを鋳型として、逆転写酵素（ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ  ＩＶ  ＶＩＬＯ、サーモフィッシャー・サイエンティフィック社）を用いて常法によりｃＤＮＡを合成した。得られたｃＤＮＡを用いたリアルタイムＰＣＲ法により、ｅＮＯＳ遺伝子、ＡＤＡＭ２８遺伝子およびｖＷＦ遺伝子の発現量を解析した。なお、内部標準としてはGlyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子を用いた。この際、ＰＣＲ装置としては、７５００  Ｆｉｒｓｔ  Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ  ＰＣＲ  Ｓｙｓｔｅｍ（アプライド・バイオシステムズ社）を用いた。なお、ＰＣＲプライマーは、Ｐｒｉｍｅｒ３（ｖ．０．４．０）  Ｐｉｃｋ  ｐｒｉｍｅｒｓ  ｆｒｏｍ  ａ  ＤＮＡ  ｓｅｑｕｅｎｃｅプログラムを用いて設計し、ＤＮＡＳＩＳ  Ｍａｃ  プログラム（日立ソフトウェアエンジニアリング社）によりｉｎ  ｓｉｌｉｃｏでセルフアニーリングやミスアニーリングのリスクが低いことを確認した。遺伝子の発現量の解析に用いた各種プライマーの塩基配列を以下に示す。
【００５６】
【化１】
2020065632.tif 000002
【００５７】
このようにして行った遺伝子発現の解析の結果を下記の表１〜２に示す。なお、表１〜２に示す結果はいずれも、静置培養を行った場合における遺伝子発現量（またはその比）を１とした場合の相対値である。
【００５８】
【表１】
2020065632.tif 000003
【００５９】
【表２】
2020065632.tif 000004
【００６０】
（血管内皮細胞の機能評価）
上記で解析を行ったｅＮＯＳ遺伝子の発現は、血管内皮細胞の機能の指標として一般的に用いられているものである。表１に示す結果から明らかなように、血管内皮細胞に対してメカニカルストレスが負荷される循環培養を行った系と比較して、メカニカルストレスが負荷されない静置培養においては、ｅＮＯＳ遺伝子の発現量が低下した。このことから、静置培養の系においては、生体内で血管の狭窄が進展して血流が低下した病変部のように、メカニカルストレスの低下によって、血管内皮細胞の機能が低下することが確認された。
【００６１】
（考察）
表２に示すように、ＡＤＡＭ２８遺伝子の発現量は、循環培養の系と比較して、静置培養の系においてより低い値を示した。このことから、血管内への医療器具の挿入または留置などによりメカニカルストレスが低下すると、血管内皮細胞の機能が低下して、血栓が形成されやすくなることが分かる。
【００６２】
ＡＤＡＭ２８およびＡＤＡＭＴＳ１３は、ｖＷＦを分解しうることが知られている。ＡＤＡＭＴＳ１３は、未変性のｖＷＦを分解できないため、血栓が巨大に形成されて血流による抵抗が増大して立体構造が変性することで初めて分解作用が発揮されるのに対して、ＡＤＡＭ２８は、未変性のｖＷＦを分解できるため、血栓が小さくても血栓を分解できると思われる。すなわち、ＡＤＡＭ２８は、血栓形成の初期段階で血栓形成を防止できると考えられる。そのため、血液と接触する医療器具の表面に、ＡＤＡＭ２８の酵素活性を阻害しないような抗体を備えることにより、酵素活性を有したＡＤＡＭ２８を医療器具の表面にトラップでき、早期に抗血栓性を発揮させることができる。
【図１】
2020065632.tif 000005
【図２】
2020065632.tif 000006
【配列表】
2020065632000001.app