(57)【要約】【課題】血液中のがん細胞のスフェロイドを従来よりも高確率で形成させることができるがん細胞の培養方法を提供する。【解決手段】血液中のがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉する工程と、前記親水性ポリマー層に捕捉された前記がん細胞を細胞解離用酵素によって剥離させる工程と、剥離させた前記がん細胞を含む溶液を遠心力１００〜１０００Ｇで遠心分離する工程と、人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によって前記がん細胞を培養する工程とを含むがん細胞の培養方法に関する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
血液中のがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉する工程と、
前記親水性ポリマー層に捕捉された前記がん細胞を細胞解離用酵素によって剥離させる工程と、
剥離させた前記がん細胞を含む溶液を遠心力１００〜１０００Ｇで遠心分離する工程と、
人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によって前記がん細胞を培養する工程とを含むがん細胞の培養方法。
【請求項２】
前記人工基底膜は、膜厚が１．０〜３．０ｍｍである請求項１記載のがん細胞の培養方法。
【請求項３】
前記血液は、濃縮処理を施したものである請求項１又は２記載のがん細胞の培養方法。
【請求項４】
前記血液は、治療前の患者から採取したものである請求項１〜３のいずれかに記載のがん細胞の培養方法。
【請求項５】
前記親水性ポリマー層は、下記式（Ｉ）で表されるポリマー及びポリ（メタ）アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも１種の親水性ポリマーで形成されている請求項１〜４のいずれかに記載のがん細胞の培養方法。
【化１】
2020141617.tif 000006
（式中、Ｒ１は水素原子又はメチル基、Ｒ２はアルキル基を表す。ｍは１〜５、ｎは繰り返し数を表す。）
【請求項６】
前記親水性ポリマー層は、下記式（Ｉ−１）で表される化合物及び（メタ）アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも１種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体で形成されている請求項１〜４のいずれかに記載のがん細胞の培養方法。
【化２】
2020141617.tif 000007
（式中、Ｒ１、Ｒ２、ｍは前記と同様。）
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血液中のがん細胞の培養方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
がん細胞が発生するとやがて、血液・体液中に出て来ることが知られており、血液中に出て来たがん細胞は、血中循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）と呼ばれている。そして、この血中循環腫瘍細胞を調べることによるがんの治療効果の確認、予後寿命、投与前の抗がん剤の効果予測、がん細胞の遺伝子解析を用いた治療方法の検討、等が期待されている。
【０００３】
ＣＴＣの捕捉方法として、例えば、特許文献１では、親水性ポリマー層にＣＴＣを捕捉する方法が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２０１８−５０５４８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
細胞を３次元培養することで形成されるスフェロイド（細胞凝集塊）は、生体内での活性に近いことが知られている。そのため、がん細胞のスフェロイドを利用したがん治療の研究が行われている。
【０００６】
特許文献１の方法で親水性ポリマー層にがん細胞を捕捉した後、がん細胞を培養（３次元培養）してスフェロイドを形成させる場合、まず、がん細胞を親水性ポリマー層から剥離させ、適当な培地に移す必要がある。しかしながら、血液中のがん細胞はそれほど多くないため、通常の培養方法でスフェロイドを形成させることは困難であった。特に、大腸がん患者の場合、血液中のがん細胞が非常に少なく、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ；７５（５）Ｍａｒｃｈ  １，  ２０１５に掲載されたＬａｕｒｅ  Ｃａｙｒｅｆｏｕｒｃｑらの実験では、スフェロイドが形成された確率は４％程度であった。
【０００７】
本発明は、前記課題を解決し、血液中のがん細胞のスフェロイドを従来よりも高確率で形成させることができるがん細胞の培養方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明は、血液中のがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉する工程と、前記親水性ポリマー層に捕捉された前記がん細胞を細胞解離用酵素によって剥離させる工程と、剥離させた前記がん細胞を含む溶液を遠心力１００〜１０００Ｇで遠心分離する工程と、人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によって前記がん細胞を培養する工程とを含むがん細胞の培養方法に関する。
【０００９】
前記人工基底膜は、膜厚が１．０〜３．０ｍｍであることが好ましい。
【００１０】
前記血液は、濃縮処理を施したものであることが好ましい。
【００１１】
前記血液は、治療前の患者から採取したものであることが好ましい。
【００１２】
前記親水性ポリマー層は、下記式（Ｉ）で表されるポリマー及びポリ（メタ）アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも１種の親水性ポリマーで形成されていることが好ましい。
【化１】
2020141617.tif 000002
（式中、Ｒ１は水素原子又はメチル基、Ｒ２はアルキル基を表す。ｍは１〜５、ｎは繰り返し数を表す。）
【００１３】
前記親水性ポリマー層は、下記式（Ｉ−１）で表される化合物及び（メタ）アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも１種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体で形成されていることが好ましい。
【化２】
2020141617.tif 000003
（式中、Ｒ１、Ｒ２、ｍは前記と同様。）
【発明の効果】
【００１４】
本発明によれば、血液中のがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉する工程と、前記親水性ポリマー層に捕捉された前記がん細胞を細胞解離用酵素によって剥離させる工程と、剥離させた前記がん細胞を含む溶液を遠心力１００〜１０００Ｇで遠心分離する工程と、人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によって前記がん細胞を培養する工程とを含むがん細胞の培養方法であるので、血液中のがん細胞のスフェロイドを従来よりも高確率で形成させることができる。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】検体Ａで形成されたがん細胞のスフェロイドの顕微鏡画像。
【図２】検体Ｂで形成されたがん細胞のスフェロイドの顕微鏡画像。
【図３】検体Ｃで形成されたがん細胞のスフェロイドの顕微鏡画像。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
本発明は、血液中のがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉する工程（捕捉工程）と、前記親水性ポリマー層に捕捉された前記がん細胞を細胞解離用酵素によって剥離させる工程（剥離工程）と、剥離させた前記がん細胞を含む溶液を遠心力１００〜１０００Ｇで遠心分離する工程（遠心分離工程）と、人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によって前記がん細胞を培養する工程（培養工程）とを含むがん細胞の培養方法である。
【００１７】
上記方法では、がん細胞の剥離を細胞解離用酵素で行うこと、また、遠心分離を遠心力１００〜１０００Ｇの条件で行うことで、剥離や遠心分離におけるがん細胞へのダメージを低減することができる。そして、これらを経て回収したがん細胞を、人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によって培養することで、がん細胞のスフェロイドを従来よりも高確率で形成させることが可能となる。
【００１８】
以下、上記方法を工程毎に説明する。
【００１９】
（捕捉工程）
この工程では、血液中のがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉する。これは、例えば、血液と親水性ポリマー層とを接触させることで実施できる。
【００２０】
親水性ポリマー層には、がん細胞は捕捉されるが、赤血球、白血球、血小板等の血球細胞は捕捉（吸着）されにくい。そのため、血液と親水性ポリマー層とを接触させた後に所定時間放置し、次いで、必要に応じてリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）等で洗浄することで、がん細胞を選択的に親水性ポリマー層に捕捉することができる。
【００２１】
血液と親水性ポリマー層との接触方法は特に限定されないが、例えば、親水性ポリマー層への血液の注入、滴下、噴霧等が挙げられる。
【００２２】
血液は、親水性ポリマー層に接触させる前に、濃縮処理を施すことが好ましい。濃縮処理により、血球細胞を減少させ、血液中のがん細胞の割合を高めることで、より多くのがん細胞を親水性ポリマー層に捕捉させることができる。濃縮処理の方法は特に限定されないが、遠心分離が好ましく、濃度勾配遠心分離がより好ましい。濃度勾配遠心分離は、例えば、Ｇｒｅｉｎｅｒ  Ｂｉｏ−Ｏｎｅ社のＯｎｃｏＱｕｉｃｋ（登録商標）によって行うことができる。
【００２３】
なお、手術や化学療法等の治療を行った場合、通常、血液中のがん細胞は減少する。そのため、より多くのがん細胞を捕捉し、スフェロイドが形成される確率を高めるという観点から、治療前の患者から採取した血液を使用することが好ましい。
【００２４】
親水性ポリマー層（親水性ポリマーにより形成される層）は、所定の基材に形成できる。基材としては、ポリアクリル酸メチル、ポリメタクリル酸メチル、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸等のアクリル樹脂（ポリアクリル樹脂）、シクロオレフィン樹脂（ポリシクロオレフィン）、カーボネート樹脂（ポリカーボネート）、スチレン樹脂（ポリスチレン）、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）等のポリエステル樹脂、ポリジメチルシロキサン、ソーダ石灰ガラス、ほうケイ酸ガラス等のガラス、等が挙げられる。
【００２５】
親水性ポリマー層（親水性ポリマーにより形成される層）の膜厚は、好ましくは１０〜５００ｎｍ、より好ましくは３０〜４００ｎｍ、更に好ましくは５０〜３５０ｎｍである。上記範囲内に調整することで、がん細胞に対する選択的捕捉性が良好となる。
【００２６】
親水性ポリマーは、親水性を有するものを適宜選択できる。例えば、１種又は２種以上の親水性モノマーの単独重合体及び共重合体、１種又は２種以上の親水性モノマーと他のモノマーとの共重合体等が挙げられる。前記単独重合体、共重合体としては、ポリアクリル酸、ポリアクリル酸エステル、ポリメタクリル酸、ポリメタクリル酸エステル、ポリアクリロイルモルホリン、ポリメタクリロイルモルホリン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミド等が挙げられる。
【００２７】
親水性モノマーは、親水性基を有する各種モノマーを使用できる。親水性基は、例えば、アミド基、硫酸基、スルホン酸基、カルボン酸基、水酸基、アミノ基、アミド基、オキシエチレン基等、公知の親水性基が挙げられる。
【００２８】
親水性モノマーの具体例としては、（メタ）アクリル酸、（メタ）アクリル酸エステル、（メトキシエチル（メタ）アクリレート等のアルコキシアルキル（メタ）アクリレート、ヒドロキシエチル（メタ）アクリレート等のヒドロキシアルキル（メタ）アクリレート）、（メタ）アクリルアミド、環状基を有する（メタ）アクリルアミド誘導体（（メタ）アクリロイルモルホリン等）、などが挙げられる。なかでも、（メタ）アクリル酸、（メタ）アクリル酸エステル、アルコキシアルキル（メタ）アクリレート、（メタ）アクリロイルモルホリンが好ましく、アルコキシアルキル（メタ）アクリレートがより好ましく、２−メトキシエチルアクリレートが特に好ましい。
【００２９】
他のモノマーは、親水性ポリマーの作用効果を阻害しない範囲内で適宜選択すれば良い。例えば、スチレン等の芳香族モノマー、酢酸ビニル、温度応答性を付与できるＮ−イソプロピルアクリルアミドなどが挙げられる。
【００３０】
なかでも、親水性ポリマーとしては、下記式（Ｉ）で表されるポリマー及びポリ（メタ）アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも１種が好ましい。
【化３】
2020141617.tif 000004
（式中、Ｒ１は水素原子又はメチル基、Ｒ２はアルキル基を表す。ｍは１〜５、ｎは繰り返し数を表す。）
【００３１】
Ｒ２のアルキル基の炭素数は、１〜１０が好ましく、１〜５がより好ましい。なかでも、Ｒ２は、メチル基又はエチル基が特に好ましい。ｍは、１〜３が好ましい。ｎ（繰り返し単位数）は、１５〜１５００が好ましく、４０〜１２００がより好ましい。
【００３２】
また、親水性ポリマーとして、下記式（Ｉ−１）で表される化合物及び（メタ）アクリロイルモルホリンからなる群より選択される少なくとも１種の親水性モノマーと、他のモノマーとの共重合体も好適に使用できる。
【化４】
2020141617.tif 000005
（式中、Ｒ１、Ｒ２、ｍは前記と同様。）
【００３３】
親水性ポリマー層が形成された基材は、特開２０１８−５０５４８号公報に記載の方法等、公知の手法により、基材表面の全部又は一部に親水性ポリマー溶液・分散液をコーティングすることで、製造することができる。このような基材として、例えば、マルチウェルプレート、スライドチャンバー（チャンバー付スライドガラス）等が挙げられる。
【００３４】
親水性ポリマー層には、予め、フィブロネクチンを吸着させていてもよい。フィブロネクチンが吸着した親水性ポリマー層に血液を接触させることで、親水性ポリマー層により多くのがん細胞を捕捉することが可能となる。
【００３５】
捕捉工程後は、必要に応じて洗浄等を行った後、剥離工程に移行する。
【００３６】
（剥離工程）
この工程では、親水性ポリマー層に捕捉されたがん細胞を細胞解離用酵素によって剥離させる。これは、例えば、親水性ポリマー層に細胞解離用酵素を添加し、所定の時間（５〜３０分程度）反応させることで実施できる。反応は、室温（１〜３０℃程度）で行うことが好ましい。
【００３７】
細胞解離用酵素としては、トリプシン様酵素を用いることが好ましい。トリプシン様酵素は、従来使用されていたトリプシンと比較して、細胞の解離を温和に行うことができるもので、トリプシン様プロテアーゼ等が挙げられる。市販品としては、動物由来成分を含まない組換えプロテアーゼであるＴｒｙｐＬＥ（登録商標）  Ｅｘｐｒｅｓｓ等を使用できる。
【００３８】
剥離工程後は、必要に応じて親水性ポリマー層に培地等を添加した後、添加した培地等とともにがん細胞を回収し、遠心分離工程に移行する。
【００３９】
（遠心分離工程）
この工程では、剥離させたがん細胞を含む溶液を遠心力１００〜１０００Ｇで遠心分離する。
【００４０】
遠心力を上記範囲に調整することで、がん細胞へのダメージを抑制しながら、がん細胞と他の成分とを分離することができる。遠心力は、好ましくは２００〜８００Ｇ、より好ましくは２５０〜６００Ｇである。
【００４１】
遠心分離の時間は、がん細胞に与えるダメージやがん細胞の分離性等の観点から、適宜設定すればよいが、好ましくは１〜３０分、より好ましくは３〜１０分である。同様の観点から、温度は、室温（１〜３０℃程度）が好ましい。なお、遠心分離は、公知の遠心分離装置で実施できる。
【００４２】
遠心分離工程後は、がん細胞を含む分画を回収し、培養工程に移行する。
【００４３】
（培養工程）
この工程では、人工基底膜上で、ＥＳ細胞培地によってがん細胞を培養する。これは、例えば、がん細胞を含む分画を、人工基底膜が形成された基材に播き、ＥＳ細胞培地を添加して培養することで実施できる。
【００４４】
人工基底膜は、ラミニン、コラーゲンＩＶ型、エンタクチン、ヘパリン硫酸プロテオグリカン等を主成分（マトリクス成分）として、必要に応じて、ＥＧＦ（上皮成長因子）等の増殖因子等を含むものである。市販品としては、コーニング社製のマトリゲル（登録商標）等を使用できる。
【００４５】
人工基底膜の膜厚は、好ましくは１．０〜３．０ｍｍ、より好ましくは１．２〜１．５ｍｍである。
【００４６】
人工基底膜が形成された基材は、Ｔｈｉｎ  Ｇｅｌ法、Ｔｈｉｃｋ  Ｇｅｌ法、薄層コーティング法等の公知の手法により、人工基底膜を基材にコーティングすることで、製造することができる。使用できる基材は、親水性ポリマー層を形成する基材と同様である。
【００４７】
ＥＳ細胞（胚性幹細胞）培地としては、例えば、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（ダルベッコ改変イーグル培地／ハムＦ−１２混合培地）等を基本培地として、ペニシリン、ストレプトマイシン、ゲンタマイシン等の抗生物質；ウシ血清アルブミン、Ｎｏｇｇｉｎ、Ｒ−Ｓｐｏｎｄｉｎ、ＥＧＦ、ＨＧＦ（肝細胞増殖因子）、Ｗｎｔ３ａ等のタンパク質；ＨＥＰＥＳ（４−（２−ヒドロキシエチル）−１−ピペラジンエタンスルホン酸）等の緩衝液；Ｎ−アセチルシステイン、Ｙ−２７６３２等の阻害剤；Ｂ−２７（登録商標）、ＧｌｕｔａＭＡＸ（登録商標）等のサプリメント；等の添加物を加えたものを使用できる。添加物の量は特に限定されず、適宜調整すればよい。
【００４８】
培養条件は適宜設定することができるが、例えば、培養温度は、好ましくは２０〜４５℃、より好ましくは３０〜４０℃である。培養時間は、好ましくは１〜２０日、より好ましくは３〜１５日である。ＣＯ２濃度は、好ましくは１〜１０％、より好ましくは３〜８％である。
【００４９】
以上の工程により、血液中のがん細胞のスフェロイドを高確率で形成することができる。得られたスフェロイドは、サンガー法やＲＮＡシークエンスによる解析、ＰＤＸモデルの作成等に利用可能である。
【実施例】
【００５０】
実施例に基づいて、本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらのみに限定されるものではない。
【００５１】
（検査器具の作製）
ＡＩＢＮ（アゾビスイソブチロニトリル）を用いて、２−メトキシエチルアクリレートを８０℃で６時間熱重合し、ポリ２−メトキシエチルアクリレートを作製した（分子量Ｍｎ：約１５０００、Ｍｗ：約５００００）。そして、得られたポリ２−メトキシエチルアクリレートの０．２５Ｗ／Ｖ％メタノール溶液を作製した。
チャンバー付スライドガラスに、作製したポリ２−メトキシエチルアクリレート溶液（０．２５Ｗ／Ｖ％）を注入し、乾燥させることで、親水性ポリマー層を作製した。ＴＥＭ観察で測定した親水性ポリマー層の膜厚は１３５ｎｍであった。
次いで、ポリ２−メトキシエチルアクリレートがコーティングされた部分（親水性ポリマー層）にフィブロネクチンを吸着させ、４０℃で１時間放置した後、ＰＢＳで洗浄することで、検査器具を作製した。
【００５２】
（ＥＳ細胞培地の作製）
まず、下記成分を混合し、混合物Ａを得た。
ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地  ５００ｍｌ
ペニシリン−ストレプトマイシン混合溶液  ５ｍｌ
ゲンタマイシン  ２５０μｌ
１Ｍ  ＨＥＰＥＳ  ５ｍｌ
Ｎ−アセチルシステイン  ８１．６ｍｇ
【００５３】
次いで、下記成分を混合し、混合物Ｂを得た。
混合物Ａ  ５０ｍｌ
Ｂ−２７（５０Ｘ）  １ｍｌ
ＧｌｕｔａＭＡＸ（１００Ｘ）  ５００μｌ
ウシ血清アルブミン  ０．５ｇ
【００５４】
そして、下記成分を混合することで、ＥＳ細胞培地を得た。
混合物Ｂ  １ｍｌ
ｍＮｏｇｇｉｎ溶液（２５μｇ／ｍｌ）  ２μｌ
ｈＲ−Ｓｐｏｎｄｉｎ溶液（５００ｎｇ／ｍｌ）  １０μｌ
ｍＥＧＦ溶液（２５μｇ／ｍｌ）  ２μｌ
ｍＨＧＦ溶液（２５μｇ／ｍｌ）  ２μｌ
ｍＷｎｔ３ａ溶液（１０μｇ／ｍｌ）  １０μｌ
５ｍＭ  Ｙ−２７６３２  ２μｌ
５０μＭ  ヒドロコルチゾン  １０μｌ
【００５５】
（実施例）
がん患者から採取した血液を、ＯｎｃｏＱｕｉｃｋを用いて遠心分離し、がん細胞を分離（濃縮）した。次いで、がん細胞を含む分画を検査器具に注入し、室温で一晩放置した後、ＰＢＳで洗浄することで、がん細胞を選択的に親水性ポリマー層に捕捉した。
【００５６】
ＴｒｙｐＬＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓ  ２００μｌを検査器具に添加し、室温で３０分間放置することで、親水性ポリマー層からがん細胞を剥離させた。その後、培地  ２ｍｌを添加し、当該培地とともにがん細胞を回収した。
【００５７】
１５ｍＬの遠心分離管に、剥離させたがん細胞を含む溶液を入れて、室温、遠心力３００Ｇの条件で５分間遠心分離した。
【００５８】
遠心分離によって得られたがん細胞を含む分画を、マトリゲル（膜厚：１．２ｍｍ）がコーティングされたチャンバースライドに播き、ＥＳ細胞培地を添加し、温度３７℃、ＣＯ２濃度５％の条件下で、所定の時間培養した。
【００５９】
以上の実験を、下記検体Ａ〜Ｃに対して行った。
検体Ａ  大腸がんステージＩＶ、肝転移の患者から採取した血液  （培養時間：７日）
検体Ｂ  大腸がんステージＩＶ、肺転移の患者から採取した血液  （培養時間：１３日）
検体Ｃ  大腸がんステージＩＶ、肝転移の患者から採取した血液  （培養時間：５日）
【００６０】
培養後の状態を顕微鏡で確認し、図１〜３に示す顕微鏡画像を得た。図１〜３中の矢印で示した部分ががん細胞のスフェロイドであり、検体Ａ〜Ｃの全てにおいて、スフェロイドが形成されていることが分かる。
【００６１】
他の検体についても同様の実験を行った結果、がん細胞のスフェロイドが形成される確率は、約５０％であった。
【図１】
2020141617.tif 000008
【図２】
2020141617.tif 000009
【図３】
2020141617.tif 000010