(57)【要約】【課題】カテコール基が導入された新規な修飾シルクフィブロインタンパク質等を提供すること。【解決手段】本発明の一態様に係る修飾シルクフィブロインタンパク質は、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の少なくとも一部がＤＯＰＡ（３,４−ジヒドロキシフェニルアラニン）残基となっている。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の少なくとも一部がＤＯＰＡ（３,４−ジヒドロキシフェニルアラニン）残基となっている、修飾シルクフィブロインタンパク質。
【請求項２】
シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の１０％以上がＤＯＰＡ残基となっている、請求項１に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質。
【請求項３】
分子量が１０万以上で４０万以下の範囲内である、請求項１又は２に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質。
【請求項４】
請求項１〜３の何れか一項に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を含む、組成物。
【請求項５】
親水性の液体である、請求項４に記載の組成物。
【請求項６】
さらに短繊維を含む、請求項４又は５に記載の組成物。
【請求項７】
上記短繊維はフィブロイン由来であり、当該短繊維に上記修飾シルクフィブロインタンパク質が付されている、請求項６に記載の組成物。
【請求項８】
請求項１〜３の何れか一項に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を、物品に保持させてなるか、物品間の界面に配してなる、構造体。
【請求項９】
物品の少なくとも一つは、繊維の集合体又は繊維である、請求項８に記載の構造体。
【請求項１０】
上記繊維の集合体又は繊維は、フィブロインを含んでいる、請求項９に記載の構造体。
【請求項１１】
請求項１から３の何れか一項に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を含む、表面改質用又は接着用の組成物。
【請求項１２】
請求項１から３の何れか一項に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を製造する方法であって、シルクフィブロインタンパク質をチロシナーゼで処理する工程を含む、製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、チロシン残基が選択的に修飾されてなる、修飾シルクフィブロインタンパク質、及びその利用等に関する。
【背景技術】
【０００２】
生物由来材料は、各材料に特有の性質を備えるとともに、環境に優しく、かつ生体適合性を有する等の優れた特性を有し、今後、ますます研究開発及び利用が進むことが期待されている。
【０００３】
例えば、イガイ（Mytilus edulis)が有する生物由来の接着性タンパク質Ｍｅｆｐ‐５は、濡れた表面に接着をするその接着能でも非常に注目を集めている。Ｍｅｆｐ‐５は、主にグリシン残基、Ｌ−リシン残基、及びＤＯＰＡ（３,４−ジヒドロキシフェニルアラニン）残基によって構成され、その接着能には、ＤＯＰＡ残基に由来するカテコール基が極めて重要な役割を果たしていることが明らかとされている。
【０００４】
非特許文献１には、Ｍｅｆｐ‐５を模した接着性ポリペプチドを合成することを目的として、パパインを用いてＬ−チロシンとＬ−リシンとのコポリペプチドを作製し、次いで、このコポリペプチドに含まれるＬ−チロシン残基を、チロシナーゼを用いてＤＯＰＡ残基に変換したポリペプチドを作製したことが記載されている。非特許文献１には、得られたポリペプチドは、２５％がリシン残基で、７５％がＬ−チロシン残基（５０％又は３０％）とＤＯＰＡ残基（２５％又は４５％）との合計であり、優れた接着能を示したことが記載されている。
【０００５】
非特許文献２には、シルクフィブロインタンパク質に対して、１）セリン残基のＯＨ基をカルボキシル基に変換して、当該タンパク質が有するカルボキシル基を富化すること、２）チロシン残基、リシン残基、及びヒスチジン残基を標的にしてポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を結合すること、並びに、３）カルボキシル基（セリン残基、グルタミン酸残基、及び、アスパラギン酸残基に由来）にDopamine hydrochlorideを反応させて、当該タンパク質にカテコール基を付すること、によって得られた修飾シルクフィブロインタンパク質が記載されている。非特許文献２には、得られた修飾シルクフィブロインタンパク質に関する接着能の評価が記載されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Biomacromolecules 2014, 15, 3206-3212
【非特許文献２】Biomacromolecules 2016, 17, 237-245
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
しかしながら、非特許文献１では、より多くのカテコール基を導入可能とするため、特定のアミノ酸（チロシン）を非常に多く含む、天然に存在するものとは異質なポリペプチドを合成するステップを必要とする。
【０００８】
一方、非特許文献２では、原料として生物由来材料（シルクフィブロインタンパク質）を用いており、当該材料の有する特性を利用しつつ新たな機能性を導入する発想に基づくものである。しかしながら、より多くのカテコール基を導入可能とするために、カルボキシル基を富化するステップを設ける必要があるうえに、シルクフィブロインタンパク質にＰＥＧを導入している。したがって、結果として、シルクフィブロインタンパク質は大きく修飾されることとなっている。
【０００９】
本願発明は、これらの課題を解決するためになされたものであり、カテコール基が導入された新規な修飾シルクフィブロインタンパク質、及び、その容易な製造方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記の課題を解決するために、本発明は、例えば、以下のような態様を包含している。
１）  シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の少なくとも一部がＤＯＰＡ（３,４−ジヒドロキシフェニルアラニン）残基となっている、修飾シルクフィブロインタンパク質。
２）  シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の１０％以上がＤＯＰＡ残基となっている、１）に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質。
３）  分子量が１０万以上で４０万以下の範囲内である、１）又は２）に記載の修飾シルクフィブロインタンパク質。
４）  上記１）〜３）の何れかに記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を含む、組成物。
５）  親水性の液体である、４）に記載の組成物。
６）  さらに短繊維を含む、４）又は５）に記載の組成物。
７）  上記短繊維はフィブロイン由来であり、当該短繊維に上記修飾シルクフィブロインタンパク質が付されている、６）に記載の組成物。
８）  上記１）〜３）の何れかに記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を、物品に保持させてなるか、物品間の界面に配してなる、構造体。
９）  物品の少なくとも一つは、繊維の集合体又は繊維である、８）に記載の構造体。
１０）  上記繊維の集合体又は繊維は、フィブロインを含んでいる、９）に記載の構造体。
１１）  上記１）から３）の何れかに記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を含む、表面改質用又は接着用の組成物。
１２）  上記１）から３）の何れかに記載の修飾シルクフィブロインタンパク質を製造する方法であって、シルクフィブロインタンパク質をチロシナーゼで処理する工程を含む、製造方法。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の一態様によれば、カテコール基が導入された新規な修飾シルクフィブロインタンパク質、及び、その容易な製造方法等を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】（ａ）異なる濃度における、ＳＦ（シルクフィブロイン）からＤＯＰＡ−ＳＦへのチロシナーゼ触媒変性を示す写真に基づく図である。（ｂ）変性後のＤＯＰＡ−ＳＦ中のＤＯＰＡ量を示すグラフである。
【図２】ＨＰＬＣによるアミノ酸分析データを示すグラフである。（ａ）は１．０ｇ／ＬのＳＦ、（ｂ）は１．０ｇ／ＬのＤＯＰＡ−ＳＦ、（ｃ）は１．５ｇ／ＬのＤＯＰＡ−ＳＦ、（ｄ）は２．０ｇ／ＬのＤＯＰＡ−ＳＦ、（ｅ）は２．５ｇ／ＬのＤＯＰＡ−ＳＦ、（ｆ）はＤＯＰＡ（コントロール）の分析結果を示す。
【図３】（ａ）マイカシートの試料調製を示す写真に基づく図である。（ｂ）引張試験を示す写真に基づく図である。太線で囲まれた面積は被覆面積であり、１．５×１０２ｍｍ２（幅１０ｍｍ×長さ１５ｍｍ）である。
【図４】シルクフィルムの試料調製を示す模式図（ａ）と写真に基づく図（ｂ）、及び引張試験を示す写真に基づく図（ｃ）である。
【図５】糊付けしたマイカ試料の応力ひずみ曲線を示すグラフである。シルク濃度を（ａ）１．０ｇ／Ｌ、（ｂ）１．５ｇ／Ｌ、（ｃ）２．０ｇ／Ｌ、（ｄ）２．５ｇ／Ｌでそれぞれ試験を行った。伸長速度は１０ｍｍ／分で行った。
【図６】ＤＯＰＡ−ＳＦの接着性を示すグラフである。異なるシルク濃度及びｐＨにおける、マイカ基板に対するＤＯＰＡ−ＳＦの（ａ）破断ひずみ、（ｂ）接着強度、（ｃ）接着破壊エネルギー、及び（ｄ）ヤング率の測定結果を示すグラフである。＊はｐ＜０．０６において両群間に有意差があること、＊＊はｐ＜０．０１において両群間に有意差があることを示す。
【図７】（ａ）紙、（ｂ）ＰＰ、（ｃ）木材、（ｄ）シルクフィルムの糊付けした試料の応力ひずみ曲線を示すグラフである。シルク濃度及び伸長速度をそれぞれ、１．５ｇ／Ｌ及び１０ｍｍ／分に設定した。
【図８】異なるｐＨにおける、マイカ、紙、ＰＰ、木材、及びシルクフィルムに対する、ＤＯＰＡ−ＳＦの（ａ）破断ひずみ、（ｂ）接着強度、（ｃ）接着破壊エネルギー、及び（ｄ）ヤング率の測定結果を示すグラフである。＊はｐ＜０．０６において両群間に有意差があること、＊＊はｐ＜０．０１において両群間に有意差があることを示す。
【図９】（ａ）マイカ、（ｂ）紙、（ｃ）ＰＰ、（ｄ）木材、及び（ｅ）シルクフィルム上の、異なるｐＨにおける、ＳＦ及びＤＯＰＡ−ＳＦのＡＴＲ−ＦＴ−ＩＲスペクトルを示すグラフである。破線は、ランダムコイル構造のアミドＩ（１６５０ｃｍ−１）及びアミドＩＩ（１５４０ｃｍ−１）吸収を示す。点線は、βシート構造のアミドＩ（１６２５ｃｍ−１）吸収を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
以下、本発明の実施の形態について、詳細に説明する。
【００１４】
〔１．修飾シルクフィブロインタンパク質〕
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質は、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の少なくとも一部がＤＯＰＡ（３,４−ジヒドロキシフェニルアラニン）残基となっているものである。
【００１５】
本明細書において、単に「シルクフィブロインタンパク質」又は「修飾前のシルクフィブロインタンパク質」と称する場合、カイコ（家蚕（Bombyx Mori)）の繭糸から精製可能なフィブロインタンパク質であって、そのＨ鎖（Heavy chain)の一部又は全体を少なくとも含むものか、その同等物を指す。シルクフィブロインタンパク質のＬ鎖(Light chain)の一部又は全体は、任意の成分として含まれていてもよい。その同等物とは、例えば、遺伝子工学的手法等を用いて作製される、少なくとも一次構造が同等（６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、又は９５％以上の配列同一性）なタンパク質を指す。すなわち、単に「シルクフィブロインタンパク質」等と称する場合は、そのチロシン残基をＤＯＰＡ残基にする修飾がなされる前の状態を指している。
【００１６】
なお、シルクフィブロインタンパク質のＨ鎖は、「グリシン‐アラニン-グリシン-アラニン-グリシン-セリン（又はチロシン）」の６アミノ酸残基からなる繰り返し配列を含んで構成される複数の結晶性領域（βシート構造をとる）と、結晶性領域間をつなぐ非晶性領域と、を含んで構成されているという、構造上の特徴を有していることが知られている。
【００１７】
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質では、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の１％以上、５％以上、好ましくは１０％以上がＤＯＰＡ残基となっている。修飾シルクフィブロインタンパク質では、より好ましくは、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の１５％以上、１６％以上、１７％以上、１８％以上、１９％以上、又は２０％以上がＤＯＰＡ残基となっている。修飾シルクフィブロインタンパク質では、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の２５％以上、３０％以上、３５％以上、４０％以上、４５％以上、５０％以上、５５％以上、６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、又は１００％（全て）がＤＯＰＡ残基となっていてもよい。
【００１８】
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質において、当該タンパク質を構成する全アミノ酸残基に占めるＤＯＰＡ残基の割合をモル％で示すとき、当該割合は特に限定されないが、一例では０．５モル％以上、０．６モル％以上、０．７モル％以上、０．８モル％以上、０．９モル％以上、１モル％以上、又は１．５モル％以上である。当該割合の上限も特に限定されないが、一例では１０モル％以下、９モル％以下、８モル％以下、７モル％以下、６モル％以下、５モル％以下、又は４．５モル％以下である。
【００１９】
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質は、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基が、トリヒドロキシフェニルアラニン（ＴＯＰＡ）残基又はドーパキノン残基となっている割合が好ましくは１％未満であり、より好ましくは０．５％未満であり、さらに好ましくは０％である。
【００２０】
また、シルクフィブロインタンパク質が有する性質を維持する観点では、本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質は、チロシン残基以外のアミノ酸残基は、修飾を受けていないことが好ましい場合がある。
【００２１】
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質では、その分子量が例えば１０万以上で４０万以下の範囲内であってもよく、２０万以上で４０万以下の範囲内であってもよく、３０万以上で４０万以下の範囲内であってもよく、３５万以上で４０万以下の範囲内であってもよい。なお、シルクフィブロインタンパク質のＨ鎖の全体は、分子量が凡そ３５万〜３８万程度の範囲内である。
【００２２】
〔２．修飾シルクフィブロインタンパク質を含む組成物〕
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質は、他の任意の成分と組み合わせられることによって、組成物を構成していてもよい。組成物の形態は、例えば、液状、ゲル状、不定形固体状、又は定形固体状等が挙げられ、特に限定されない。
【００２３】
（１）液状の組成物
組成物の一例として、本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロンタンパク質を含む、親水性の液体が挙げられる。親水性の液体の一例は、上述の修飾シルクフィブロンタンパク質を含む水溶液である。水溶液とは、１）水のみを溶媒として含む溶液の他、２）水を主溶媒として含み、さらに、水ではない親水性の溶媒（一例では、メタノール、エタノール、プロパノール等の水溶性の有機溶媒）を含む溶液が挙げられる。ここで、主溶媒とは、水溶液を構成する全溶媒の中で最大の体積を占める溶媒を指し、主溶媒としての水は、例えば、全溶媒の５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、９５％以上の体積を占めている。
【００２４】
上述の液状の組成物（典型的には水溶液）における、修飾シルクフィブロンタンパク質の濃度は、用途等に応じて適宜設定すればよく特に限定されない。液状の組成物における、修飾シルクフィブロンタンパク質の濃度は、例えば、０．１ｇ／Ｌ以上であり、１ｇ／Ｌ以上であり、１．１ｇ／Ｌ以上であり、１．２ｇ／Ｌ以上であり、１．３ｇ／Ｌ以上であり、１．４ｇ／Ｌ以上である。修飾シルクフィブロンタンパク質の濃度の上限は、例えば、３ｇ／Ｌ以下であり、２ｇ／Ｌ以下であり、１．９ｇ／Ｌ以下であり、１．８ｇ／Ｌ以下であり、１．７ｇ／Ｌ以下であり、１．６ｇ／Ｌ以下である。この組成物の用途の一例は、接着用の組成物としての用途である。
【００２５】
液状の組成物は、さらに塩類、ｐＨ調整剤、安定剤、又は、各種添加剤などを含んでいてもよい。なお、液状の組成物（典型的には水溶液）のｐＨは、用途等に応じて適宜設定すればよく特に限定されない。液状の組成物のｐＨは、酸性又は中性である場合もあるが、アルカリ性が好ましい場合もあり、当該ｐＨは８以上、９以上、１０以上、１１以上、又は１２以上であってもよい。この組成物の用途の一例は、接着用の組成物としての用途である。
【００２６】
また、液状の組成物は、上記の修飾シルクフィブロインタンパク質が付される対象物をさらに含んでいてもよい。一例において、上記の対象物は、修飾シルクフィブロインタンパク質がその表面に付されることによって表面改質される。対象物の種類は特に限定されないが、一例では短繊維であり、好ましくはフィブロイン由来の短繊維（後述する）である。この組成物は、そのまま、又は、必要に応じて溶媒を除去した上で、後述する樹脂組成物の製造に用いることも出来る。
【００２７】
（２）固体状の組成物
組成物の一例として、本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロンタンパク質を含む、不定形又は定形の固体状の組成物が挙げられる。この組成物の一例は、その表面に修飾シルクフィブロインタンパク質が付された短繊維を含む、樹脂組成物である。短繊維の表面に修飾シルクフィブロインタンパク質が付されることで、樹脂組成物を構成する短繊維と樹脂との馴染みを向上させる。なお、樹脂組成物とは、成形後のもの（樹脂製品）も、成形前のものも含む概念である。
【００２８】
樹脂組成物を構成する樹脂の種類は特に限定されず、繊維強化樹脂（ＦＲＰ）を構成する樹脂を広く利用可能である。樹脂としては、例えば、ポリエステル系樹脂、ビニルエステル系樹脂、エポキシ系樹脂、フェノール系樹脂、及び、各種の熱可塑性樹脂等が挙げられる。
【００２９】
樹脂組成物を構成する短繊維の種類も特に限定されないが、好ましくはフィブロイン由来の短繊維である。本明細書において「フィブロイン」とは、昆虫又はクモ類の繭糸から精製可能なフィブロインタンパク質であって、そのＨ鎖の一部又は全体を少なくとも含むものか、その同等物か、これらに基づき作製された改変フィブロインタンパク質を指す。その同等物とは、例えば、遺伝子工学的手法等を用いて作製される、少なくとも一次構造が同等（６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、又は９５％以上の配列同一性）なタンパク質を指す。昆虫としては、例えば、カイコ（家蚕（Bombyx Mori)）やクワコ（Bombyx Mandarina）を含むカイコガ科や、ヤママユガ科等のチョウ目の昆虫；スズメバチ等のハチ目の昆虫；等のうち繭糸を産生するものが挙げられるが、特にこれらに限定されない。クモ類としては、ニワオニグモ、ナガコガネグモ、アメリカジョロウグモ、及びダーウィンダークスパイダー等が挙げられるが、特にこれらに限定されない。改変フィブロインタンパク質とは、天然のフィブロインタンパク質の一次構造を改変して得られた、人造のフィブロインタンパク質を指す。例えば、国際公開公報WO2018/034111、WO2017/131196、WO2017/131195に記載された改変フィブロインタンパク質等が挙げられる。さらに、改変フィブロイン由来タンパク質の例としては、国際公開公報WO2012/165477、WO2013/065651、WO2017/047504、WO2017/198655、WO2017/090665、WO2017/188430、WO2017/188434、及び／又はWO2017/222034、に記載のアミノ酸配列を有する改変されたフィブロイン由来タンパク質等が挙げられる。また、これらの公報に記載されたアミノ酸配列と、80%以上、90%以上、95%以上、配列同一性を有するアミノ酸配列も含まれる。
【００３０】
なお、由来によらず天然のフィブロインのＨ鎖は、グリシン残基、アラニン残基、セリン残基及びチロシン残基がリッチであり、複数の結晶性領域と、結晶性領域間をつなぐ非晶性領域と、を含んで構成されているという、構造上の特徴を共有している。
【００３１】
（３）用途の観点からとらえた組成物
本発明の一実施形態に係る組成物の用途は特に限定されないが、上述した通り、修飾シルクフィブロインタンパク質を含む、表面改質用又は接着用の組成物と捉えることもできる。より具体的な用途の一例は、表面改質用の組成物や、接着用の組成物である。
【００３２】
〔３．構造体〕
本発明の一実施形態に係る構造体は、１）本発明に係る修飾シルクフィブロインタンパク質を物品に保持させてなるものであるか、２）本発明に係る修飾シルクフィブロインタンパク質を物品間の界面に配してなるものである。
【００３３】
ここで、物品の種類は特に限定されないが、好ましい一例は繊維の集合体又は繊維であり、より好ましい一例は、フィブロインを含んでいる繊維の集合体又は繊維である。ここで、フィブロインを含んでいる繊維とは、実質的にフィブロインのみからなる繊維であってもよい。なお、修飾シルクフィブロインタンパク質を物品間の界面に配してなる構造体の場合は、物品の少なくとも一つが繊維の集合体であることが好ましいが、他の物品は繊維の集合体でなくともよい。他の物品は、例えば、パルプ、プラスチック、鉱物及び金属、並びにこれら２種以上の混合物等からなるフィルム、シート、成形体等である。一例において、物品の少なくとも一つと、他の物品とは、修飾シルクフィブロインタンパク質を介して互いに接着されている。
【００３４】
繊維の集合体の形態は特に限定されず、例えば、不織布、織布、及び、紡糸等が挙げられる。繊維の形態は特に限定されず、例えば、短繊維等が含まれる。
【００３５】
修飾シルクフィブロインタンパク質を物品に保持させる方法や、物品間の界面に配する方法は特に限定されず、対象となる物品にとって適した方法を適宜採用すればよい。例えば、物品の表面にスプレーする、塗布する、又は物品に含浸する等の方法が挙げられる。
【００３６】
得られた構造体の用途は特に限定されないが、例えば、細胞の培養用の資材、医療用の資材（例えば、患部（傷口）の縫合用や被覆用の資材；移植用の細胞や組織の足場；薬剤を保持した担体；等）等を挙げることができる。
【００３７】
〔４．修飾シルクフィブロインタンパク質を製造する方法〕
本発明の一実施形態に係る修飾シルクフィブロインタンパク質を製造する方法は、シルクフィブロインタンパク質をチロシナーゼで処理する工程を含んでいる。チロシナーゼで処理をすることによって、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基の少なくとも一部がＤＯＰＡ（３,４−ジヒドロキシフェニルアラニン）残基に変換される。
【００３８】
一例では、チロシナーゼを用いた処理は、シルクフィブロインタンパク質を含んだ水溶液中で行われる。この水溶液の調製は、公知の方法に従って行うことができる（実施例も参照のこと）。
【００３９】
チロシナーゼを用いた処理（チロシン残基の酸化である）は、シルクフィブロインタンパク質に含まれるチロシン残基が、トリヒドロキシフェニルアラニン（ＴＯＰＡ）残基又はドーパキノン残基となることを抑制可能な緩和な条件下で行われることが好ましい。緩和な条件としては、１）比較的低温下で酵素反応を行うこと、２）酸性条件で酵素反応を行うこと、及び、３）空気を酸素の供給源とし、比較的大気圧に近い条件で酵素反応を行うこと、から選択される少なくとも一つ、好ましくは全ての条件を満たす条件が挙げられる。
【００４０】
上記１）の比較的低温下で酵素反応を行うとは、例えば、１５℃以上で３０℃未満の温度範囲内で酵素反応を行う事を指し、２０℃以上で３０℃未満の温度範囲内がより好ましく、２２℃又は２３℃以上で２７℃又は２８℃以下の温度範囲内がさらに好ましい。
【００４１】
上記２）の酸性条件で酵素反応を行うとは、例えば、シルクフィブロインタンパク質を含んだ水溶液のｐＨを、例えば、６以下として酵素反応を行う事を指し、５以下がより好ましく、４．５以下がさらに好ましい。なお、当該水溶液のｐＨは３．５以上が好ましい場合があり、４以上がより好ましい場合がある。
【００４２】
上記３）の空気を酸素の供給源とし、比較的大気圧に近い条件で酵素反応を行うとは、例えば、大気圧×０．８以上で大気圧×１．５以下の範囲内の気圧を示す空気が、シルクフィブロインタンパク質を含んだ水溶液の液面に接した状態で、酵素反応を行うことを指す。ここで空気の気圧は、大気圧×０．８以上で大気圧×１．２以下の範囲内であることがより好ましく、大気圧×０．９以上で大気圧×１．１以下の範囲内であることがさらに好ましい。シルクフィブロインタンパク質を含んだ水溶液中に、酸素源を添加すること（空気（酸素）をバブリングすることも含む）なく、酵素反応を行うことが好ましい場合がある。
【００４３】
なお、シルクフィブロインタンパク質は非常な高分子であるため、チロシン残基の酸化は、上述のような緩和な条件下では首尾よく進行しないと予想をしていた。従って、本願発明は、いわゆる当業者には予期しえない結果に基づき完成されたものである。
【００４４】
なお、チロシナーゼを用いた処理の処理時間は、どれほどのチロシン残基をＤＯＰＡ残基とするか等に応じて適宜設定すればよい。処理時間が長くなる程、チロシン残基をＤＯＰＡ残基となる割合が高くなる。処理時間の一例は、１時間以上で１２０時間以下の範囲内であり、他の例では１０時間以上で７２時間以下の範囲内であり、さらに他の例では１５時間以上で４８時間以下の範囲内である。
【００４５】
用いるチロシナーゼの種類や量も特に限定されない。チロシナーゼの由来としては、植物、微生物、動物由来等、特に限定されるものではないが、例えば、マッシュルームを含むキノコ由来のチロシナーゼ等が好適なものとして挙げられる。
【実施例】
【００４６】
〔材料及び方法〕
＜材料＞
シルクフィブロイン（ＳＦ）は、カイコBombyx moriの繭から得、それぞれ異なる濃度の水溶液（１．０、１．５、２．０及び２．５ｇ／Ｌ）を調製した。ＳＦの調製は、Rockwood, D. N.; Preda, R. C.; Yucel, T.; Wang, X.; Lovett, M. L. Kaplan, D. L. Materials Fabrication from Bombyx mori Silk Fibroin. Nat. Protoc. 2011, 6, 1612-1631、及びTsuchiya, K.; Masunaga, H.; Numata, K. Tensile Reinforcement of Silk Films by the Addition of Telechelic-Type Polyalanine. Biomacromolecules 2017, 18, 1002-1009に記載のプロトコルによって調製した。マッシュルーム由来のチロシナーゼはシルマアルドリッチ社から購入した。ポリプロピレン（ＰＰ）樹脂は、アーテック社から購入した。シルクフィルムは、Numata, K.; Ifuku, N.; Masunaga, H.; Hikima, T.; Sakai, T. Silk Resin with Hydrated Dual Chemical-Physical Cross-Links Achieves High Strength and Toughness. Biomacromolecules 2017, 18, 1937-1946に記載の方法に従って、ＳＦ水溶液から調製した。他の試料は、注記がない限り、精製することなく入手したまま使用した。
【００４７】
＜ＳＦ中のチロシン単位のＤＯＰＡへの酵素的変性＞
ＳＦ水溶液（１．０ｍＬ）に対して、変性リン酸緩衝液（１．０ｍＬ；４０ｍＭボロン酸、０．３Ｍ  ＮａＣｌ、０．２Ｍアスコルビン酸、０．２Ｍリン酸緩衝液、ｐＨ４．２）及びチロシナーゼ（最終濃度:１３００Ｕ／ｍＬ）を添加した。得られた溶液を、大気下において２５℃で２４時間撹拌し、ＤＯＰＡ−ＳＦ溶液（ｐＨ４．２）を得た。反応中、ガラス試料ボトルのキャップは開放した。ＤＯＰＡ量は、アミノ酸組成分析、すなわちニンヒドリン法によって評価した。簡潔に説明すると、アミノ酸組成分析は、高速アミノ酸分析器Ｌ−８９００及びＬ８５００Ａ（日立ハイテクノロジーズ社）を用いて、加水分解したアミノ酸について行った。天然アミノ酸に加え、ＤＯＰＡ（シグマアルドリッチ社）を使用して分析器を較正し、図２に示すピークをＤＯＰＡのピークとした。
【００４８】
＜接着強度の評価＞
上記で調製したＤＯＰＡ−ＳＦ溶液はさらなる精製を行わずに、接着テストに使用した。５．０Ｍ  ＮａＯＨ溶液をＤＯＰＡ−ＳＦ溶液に加えることによって、異なるｐＨ（７．０、８．０、１０及び１２）を有するＤＯＰＡ−ＳＦ溶液を作製した。
【００４９】
試料調製の写真に基づく図と引張試験を図３及び４に示す。図３の（ａ）の上図に示すように、これらのＤＯＰＡ−ＳＦ溶液の２０μＬを、劈開してすぐのマイカシート（mica sheet）に塗布した。もう１枚のマイカシートを被覆した後、接触を強化するため、図３の（ａ）の下図に示すように、糊付けしたシート（pasted sheet）をダブルクリップで留めて、室温で２４時間放置した。被覆体の幅は１０ｍｍ、長さは１５ｍｍであり、全体の被覆面積は１．５×１０２ｍｍ２であった。試料の接着機能は、１０ｍｍ／分の伸長速度で、引張試験装置（ＥＺ−Ｔｅｓｔ、島津製作所社）によって評価した。図３の（ｂ）に示すように、グリップ間の初期距離は、２５ｍｍに設定した。測定は、相対湿度が約４０％および２５℃下で行った。破断ひずみ、接着強度、接着破壊エネルギー及びヤング率を、調製した試料の応力ひずみ曲線に基づいて分析した。実験は、各条件で５回実施した。紙、ＰＰ樹脂及び木材との接着機能に関するテストもまた、同条件で行った。
【００５０】
シルクフィルムの試料調製は以下のとおりに変化を持たせた。その理由は、試料を他と同一条件で作製し、糊付けした試料について引張試験を行うと、被覆点以外で破断してしまったためである。図４の（ａ）に示すように、シルクフィルムの試料調製はまず、幅が１０ｍｍ、長さが１０ｍｍのシルクフィルムを、平坦な木材シート（幅１０ｍｍ×長さ４０ｍｍ）の上に、強力瞬間接着剤によって糊付けした。そして、２０μＬのＤＯＰＡ−ＳＦ溶液をシルクフィルム表面に添加した。図４の（ｂ）に示すように、硬化条件は他のものと同一とした。但し、被覆は幅１０ｍｍ×長さ５ｍｍ（全体の被覆面積：０．５×１０２ｍｍ２）に変更した。また、図４の（ｃ）に示すように、グリップ間の初期距離は３５ｍｍに変更した。伸長速度は、１０ｍｍ／分に維持した。
【００５１】
＜ＡＴＲ−ＦＴ−ＩＲ測定＞
全反射減衰（Attenuated total reflection、ＡＴＲ）−ＦＴ−ＩＲは、Ｇｅプリズムを使用するＭＩＲａｃｌｅＡ単反射ＡＴＲユニットを備える、ＩＲＰｒｅｓｔｉｇａｅ−２１フーリエ変換赤外分光光度計（島津製作所社）を用いて測定した。５０μＬのＤＯＰＡ−ＳＦ溶液（１．５ｇ／Ｌ）であってそれぞれ異なるｐＨ（４．２、７．０、８．０、１０、１２）の溶液を、試料調製のため、各表面に滴下し、１６時間室温で乾燥させた。測定は、６００〜３８００ｃｍ−１で行った。同条件で得られたバックグランドスペクトルは、各試料のスキャンから差し引いた。
【００５２】
＜統計解析＞
機械的特性に関する実験における有意差は、両側分布である、対応のある関連２群のｔ検定または対応のない独立２群ｔ検定によって決定した。ｐ＜０．０６（＊）およびｐ＜０．０１（＊＊）において、統計的に有意差があるとした。
【００５３】
＜検討例１：チロシナーゼによるＳＦの酵素的変性＞
表面とＤＯＰＡのカテコール相関作用が接着機能において重要である。したがって、ＤＯＰＡから２，４，５−トリヒドロキシフェニルアラニン（ＴＯＰＡ）及びドーパキノンへの酸化は、その接着性を最大化することへの妨げになる。これまでに、本発明者らは、チロシナーゼ触媒酸化において、さらなる酸化を行わずに、ポリペプチドのチロシン残基からＤＯＰＡに変換する、効率的かつ適切な条件を見出している（Numata, K.; Baker, P. J. Synthesis of Adhesive Peptides Similar to Those Found in Blue Mussel (Mytilus edulis) Using Papain and Tyrosinase. Biomacromolecules 2014, 15, 3206-3212）。したがって、本発明者らによって見出された穏やかな酸化条件を本実験のＳＦ変性に適用することにした。
【００５４】
２５℃で２４時間、ＳＦ溶液をチロシナーゼで処理した。その結果を図１に示す。図１の（ａ）の上の写真に基づく図はチロシナーゼ処理前の溶液、下の写真に基づく図はチロシナーゼ処理後の容器を示す。均一なＳＦ溶液は、図１の（ａ）に示す通り、若干濁った。
【００５５】
反応後のＤＯＰＡ量は、アミノ酸組成分析（図２）によって特定した。図１の（ｂ）はＤＯＰＡ−ＳＦ中のＤＯＰＡ量を示すグラフである。縦軸はＤＯＰＡ量（ｍｏｌ％）、横軸はシルク濃度（ｇ／Ｌ）である。図１の（ｂ）に示すように、約１．０ｍｏｌ％のＤＯＰＡがＤＯＰＡ−ＳＦに含まれると算出され、シルク濃度を変化させても、ＤＯＰＡ量はほぼ一定していた。また、変性反応における変換率は、ＳＦ中のチロシン単位に基づいて、約１９％と算出された。
【００５６】
＜検討例２：ＤＯＰＡ−ＳＦの接着機能の評価＞
接着機能は引張試験によって評価した。試料は２つのマイカ表面間に、ＤＯＰＡ−変性ＳＦ溶液（ＤＯＰＡ−ＳＦ）を塗布することで調製し、引張試験機を用いて測定した（図３）。応力ひずみ曲線（図５）に基づく、異なるシルク濃度及びｐＨについての、破断ひずみ、接着強度、接着破壊エネルギー、およびヤング率といった接着性の概略を図６に示す。ＳＦの機械的特性は湿度及び温度によって左右されるため、測定条件を、相対湿度が約４０％および２５℃下で維持して行った。
【００５７】
図６の各図の縦軸は、（ａ）が破断ひずみ（％）、（ｂ）が接着強度（ＭＰａ）、（ｃ）が接着破壊エネルギー（ＫＪ／ｍ３）、（ｄ）がヤング率（ＭＰａ）を示す。横軸は各図ともシルク濃度（ｇ／Ｌ）を示す。各濃度の６本の棒は、左から、ＳＦ、ｐＨ４．２のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ７．０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ８．０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ１０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ１２のＤＯＰＡ−ＳＦを塗布したときの結果を示す。
【００５８】
図６の（ｂ）および（ｃ）に示すように、いずれのシルク濃度及びｐＨにおいても、接着強度及び破壊エネルギーの両方とも、ＤＯＰＡの導入によって明らかに改善された。一方、最大値（それぞれ０．９７ＭＰａおよび１９．１ＫＪ／ｍ３)は、１．５ｇ／ＬのＤＯＰＡ−ＳＦであってｐＨ１０で得られた。また、図６の（ｄ）に示すように、変性前のＳＦのヤング率と比較して、ＤＯＰＡ−ＳＦのヤング率の増加も観察された。これは、マイカの界面およびシルクがより強く相互作用することによって、シルクの元々の優れた特性が、ＤＯＰＡ−ＳＦにも発現し始めたことによると考えられる。これらの結果は、ＳＦの接着機能がＤＯＰＡ変性によって改善したことを示唆する。
【００５９】
さらに詳細には、より高いｐＨであると、より高い接着性を示すように思われた。例えば、図６の（ｂ）に示すように、ＤＯＰＡ−ＳＦ（１．５ｇ／Ｌ）のｐＨ１０における接着強度は、ｐＨ４．２における接着強度と比べて１．４倍大きかった。Ｍｅｆｐ−５（Mytilus edulis foot protein 5）等の海洋接着タンパク質（Marine adhesive proteins）は、ＤＯＰＡのみならず、リシンについても豊富であることが知られ、ＤＯＰＡのカテコールとリシンのアミノ基とともにネットワークを形成する。量は多くないが（０．２ｍｏｌ％）、ＳＦは元々リシン単位を含む。よって、高ｐＨにおいて水素脱離リシン及びＤＯＰＡの双方が存在することは、Ｍｅｆｐ−５と類似の方法で、ＤＯＰＡ相互作用から生じる接着性を強化した。さらに、接着機能は、ＤＯＰＡ−ＳＦの濃度が１．５ｇ／Ｌを超えると、低下した。この傾向は、人工接着ポリペプチド中の過剰量のＤＯＰＡが、その接着強度に有意に寄与しないという報告と一致する。非変性ＳＦの濃度と接着強度との間の直線的相関関係が確認された。このことは、シルク自体が、カテコール部位がなくても、マイカ基板に結合可能であることを示していることは特筆すべきことである。Kaplanらは、ＳＦをチタンまたはアルミニウムシートに塗布したときに類似の特徴が得られたことを報告している。また、Kaplanらは、ＳＦとシャミ革との接着性についても検討している。Kaplanらの報告ではＳＦ自体が高い接着性を有する可能性を示唆しているが、ＤＯＰＡ変性は、接着機能を改善するだけでなく、適用可能な表面の種類を広げるという観点から重要である。
【００６０】
次に、異なる表面に対するＤＯＰＡ−ＳＦの接着性を評価した。異なるｐＨのＤＯＰＡ−ＳＦ溶液（１．５ｇ／Ｌ）を、紙、ＰＰ樹脂、木材およびシルクフィルムといった基板に塗布した。図７はこれら４種類の基板に糊付けした試料の応力ひずみ曲線を示す。図８は、これら４種類の基板に対する、破断ひずみ（ａ）、接着強度（ｂ）、接着破壊エネルギー（ｃ）、およびヤング率（ｄ）といった接着性の概略を示す。
【００６１】
図８において、横軸は各図とも、左から、マイカ、紙、ＰＰ、木材、シルクフィルムの結果を示す。また、各基板の６本の棒は、左から、ＳＦ、ｐＨ４．２のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ７．０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ８．０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ１０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ１２のＤＯＰＡ−ＳＦを塗布したときの結果を示す。但し、シルクフィルムの場合は、左から、ｐＨ８．０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ１０のＤＯＰＡ−ＳＦ、ｐＨ１２のＤＯＰＡ−ＳＦを塗布したときの結果を示す。
【００６２】
図３および４に示すように、シルクフィルムの被覆面積（０．５×１０２ｍｍ２）は、他の基板（１．５×１０２ｍｍ２）と比較して１／３にした。その理由は、試料を他の基板の条件で調製すると、引張試験において、試料の破裂が、接着点ではないところで生じてしまったからである。試料調製に失敗したため、ＳＦ、ｐＨ４．２のＤＯＰＡ−ＳＦ及びｐＨ７．０のＤＯＰＡ−ＳＦについて、シルクフィルムを基板として用いた引張試験は実行できなかった。
【００６３】
図８に示すように、ＤＯＰＡ−ＳＦ溶液は、マイカのみならず、他のいずれの基板に対しても、ＳＦと比較して、高い接着機能を示した。特に、高いｐＨにおいて、ＤＯＰＡ−ＳＦ溶液は高い接着機能を示した。図８の（ｂ）に示すように、シルクフィルムの被覆面積は他の基板と比較して小さかったにもかかわらず、シルクフィルムが最も接着強度が高かった。
【００６４】
一方、図８の（ｄ）に示すように、紙、ＰＰおよび木材において測定したヤング率は、マイカと比較して、ＳＦおよびＳＦ−ＤＯＰＡにおいてほぼ一定していた。この結果は、ＤＯＰＡ−ＳＦがこれらの基板の表面に比較的弱く接着し、マイカと比較して、シルク自体のヤング率が発現する前に表面の開裂が起こったことによる。しかしながら、この結果は重要ではない。逆に、シルクフィルムにおいて測定したヤング率は約２００ＭＰａであり、この値は各基板の中で最も高かった。
【００６５】
上述のとおり、様々な基板の表面に対してＤＯＰＡ−ＳＦは機能を発揮し、シルクフィルムを基板として用いたときに最も強く相互作用を示した。そして、ＤＯＰＡ−ＳＦは、顕著な接着性を発揮することが分かった。
【００６６】
＜検討例３：表面上のＤＯＰＡ−ＳＦの二次構造の評価＞
材料表面上のＤＯＰＡ−ＳＦの二次構造に関する情報を得るために、ＡＴＲ−ＦＴ−ＩＲ測定を行った（図９）。試料は、ＳＦ及びＤＯＰＡ−ＳＦ溶液（１．５ｇ／Ｌ、５０μＬ）を表面に塗布し、室温で１６時間乾燥させることで調製した。図９に示すように、すべての試験表面上のＳＦは、主にはランダムコイル配置をとっていた。これは、アミドＩおよびアミドＩＩの吸収ピークである１６５０及び１５４０ｃｍ−１のブロードなピークが根拠となっている。一方、ＤＯＰＡ溶液のｐＨを変化させたところ、２つの異なる傾向が観察された。１つ目の傾向は、ピークトップが、紙、ＰＰ及び木材のいずれに対してもｐＨ変化に応じては変化しなかった。２つ目の傾向は、１６５０ｃｍ−１のピークは、マイカ及びシルクフィルムでは、ｐＨの上昇に従って、低周波数側に若干シフトした。これらの結果は、βシート構造の形成が、マイカ及びシルクフィルムでは、高いｐＨでより強められたことを示唆する。これらの表面において優れた接着性が観察されたので、ＤＯＰＡ−ＳＦの接着機能は、シルク骨格構造の物理的相互作用によって増強されたと結論づけた。また、チロシン部位のＤＯＰＡ変性はβシート構造を形成するＳＦの能力には影響しなかった。
【００６７】
＜まとめ＞
カイコ由来ＳＦのチロシナーゼ触媒変性によって、ＤＯＰＡ変性ＳＦを作製するのに成功した。アミノ酸組成分析によって、ＳＦ中のチロシン残基の１９％がＤＯＰＡに変換されたことが示され、ＤＯＰＡ部位が約１ｍｏｌ％であるＤＯＰＡ−ＳＦ溶液が得られた。ＤＯＰＡの量は多くはないが、マイカ表面に対するＤＯＰＡ−ＳＦの接着機能が有意に改善されたことは、引張試験で確認された。ｐＨが高くなるほど、より高い接着機能を示した。ＤＯＰＡ−ＳＦは、マイカのみならず、紙、ＰＰ、木材およびシルクフィルムといった種々の種類の基板に対しても、優れた接着性を示した。さらに、接着機能が、ＤＯＰＡ−ＳＦのβシート構造の形成によってさらに増強されることがＡＴＲ−ＦＴ−ＩＲ測定によって確認された。この簡便でありながら強力なアプローチは、環境的に無害な天然接着材料を製造するための新たな視点を提供する。
【産業上の利用可能性】
【００６８】
本発明は、例えば、表面改質用又は接着用の組成物等として工業用材料用途等に利用することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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