(57)【要約】【課題】自然発生型の糖尿病の有用なモデル動物及びその作出方法の提供。【解決手段】非ヒト動物の受精胚を所定の培養液で培養する培養工程と、前記培養した胚を前記非ヒト動物の仮親に移植する移植工程と、前記仮親から産出子を産出する産出工程とを備えることを特徴とする糖尿病モデル動物の作出方法。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
非ヒト動物の受精胚を所定の培養液で培養する培養工程と、
前記培養した胚を前記非ヒト動物の仮親に移植する移植工程と、
前記仮親から産出子を産出する産出工程と、
を備えることを特徴とする糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項２】
妊娠中の前記非ヒト動物から受精胚を取り出す取出工程をさらに備え、前記培養工程では、前記取出工程にて取り出された前記受精胚を培養する、請求項１に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項３】
前記妊娠中の非ヒト動物は、遺伝子改変がなされていない非ヒト動物である、請求項１または２に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項４】
前記所定の培養液はαＭＥＭ培地である、請求項１乃至３のいずれか一項に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項５】
前記取出工程において取り出される胚は２細胞期の受精胚である、請求項１乃至４のいずれか一項に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項６】
前記培養工程では、前記取り出した胚を桑実期または初期胚盤胞期まで培養する、請求項１乃至５のいずれか一項に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項７】
前記産出工程で産出した産出子を通常食で飼育した後、高脂肪食で飼育する飼育工程をさらに備える、請求項１乃至６のいずれか一項に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項８】
前記非ヒト動物はマウスである、請求項１乃至７のいずれか一項に記載の糖尿病モデル動物の作出方法。
【請求項９】
請求項１乃至８のいずれか一項に記載の糖尿病モデル動物の作出方法にて作出された糖尿病モデル動物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、自然発症糖尿病モデル動物の作出法に関する。
【背景技術】
【０００２】
２型糖尿病を含む生活習慣病は、遺伝的背景（多数の原因遺伝子）、食生活や運動などの生活習慣、または、胚及び胎児期の環境などのさまざまな要因が影響して発症する多因子疾患である。特に２型糖尿病は深刻であり、現時点において日本国内の糖尿病が強く疑われる成人が推計で１千万人に上るが、今後さらに罹患者数は増大すると危惧されている。２型糖尿病の病態進展機構の解明、予防・治療薬の開発にはその病態を再現するモデル動物を用いることが有用である。
【０００３】
これまで糖尿病モデル動物は、１）遺伝的に発現する形質を有した自然発症の病態モデル動物、２）遺伝子改変による病態モデル動物、３）食餌誘発による病態モデル動物、４）妊娠動物の栄養制限により作出されたモデル動物、などが主であった（特許文献１、特許文献２参照）。
【０００４】
しかし１）と２）のモデル動物では、遺伝的に変異のない個体の発症メカニズムに適用できないこと、３）においては、食餌誘発のみでは、耐糖能異常は誘導されるが糖尿病やその合併症が観察されないこと、４）では栄養制限が母体を介しているため胚の時期や暴露されている環境を正確にコントロールすることはできないといった問題点がある。従って、糖尿病などに代表される生活習慣病の発症とそのメカニズムを解明し、発症の予防や治療をするためには、高頻度で重篤な生活習慣病を発症する新しいモデル動物を、簡単な方法で容易に作成できる作出技術の確立が重要である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特許第５８０４３７７号公報
【特許文献２】特開２００８−２０６４４０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、従来における前記諸問題を解決し、以下の目的を達成することを課題とする。すなわち、自然発生型の糖尿病の有用なモデル動物、及び、その簡単で低コストな作出方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法は、非ヒト動物の受精胚を所定の培養液で培養する培養工程と、前記培養した胚を前記非ヒト動物の仮親に移植する移植工程と、前記仮親から産出子を産出する産出工程とを備える。
【０００８】
すなわち、受精胚を所定の培養液で培養し、仮親に移植するという簡単な手段にて、自然発生型の糖尿病の有用なモデル動物作出方法を提供することができる。また、当該モデル動物を作出するコストを削減することができる。
【０００９】
さらに上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法は、妊娠中の前記非ヒト動物から受精胚を取り出す取出工程をさらに備え、前記培養工程では、前記取出工程にて取り出された前記受精胚を培養してもよい。
【００１０】
さらに上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法において、前記妊娠中の非ヒト動物は、遺伝子改変がなされていない非ヒト動物であってもよい。すなわち、遺伝子改変のない自然発生糖尿病のモデル動物を作出することができる。従って、遺伝的に変異のない個体における自然発生糖尿病の発症メカニズム解明に好適である。
【００１１】
さらに上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法において、前記所定の培養液はαＭＥＭ培地であってもよい。すなわち、培地の入手が容易であるので本作出方法のコストを削減することができる。
【００１２】
さらに上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法において、前記取出工程において取り出される胚は２細胞期の受精胚であってもよい。また、前記培養工程では、前記取り出した胚を桑実期または初期胚盤胞期まで培養してもよい。
【００１３】
さらに上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法は、前記産出工程で産出した産出子を通常食で飼育した後、高脂肪食で飼育する飼育工程をさらに備える。
【００１４】
さらに上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法において、前記非ヒト動物はマウスであってもよい。すなわち、マウスはモデル動物として入手や飼育がし易いので本作出方法のコストを削減することができる。
【００１５】
上述の目的を達成するため、本発明の糖尿病モデル動物は、上述した作出方法にて作出される。すなわち、受精胚を所定の培養液で培養し、仮親に移植するという簡単な手段にて作出された、自然発生型の糖尿病の有用な、低コストのモデル動物である。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によれば、従来における前記諸問題を解決し、前記目的を達成することができる。すなわち、受精胚を所定の培養液で培養し、仮親に移植するという簡単な手段にて、自然発生型の糖尿病の有用な、低コストのモデル動物、及び、その作出方法を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】図１は、本発明の糖尿病モデル動物の作出方法の全体工程を示す。
【図２】図２は、培養液の違いが出産時の体重に与える影響を示す。
【図３】図３は、培養液の違いが離乳前の体重に与える影響を示す。
【図４Ａ】図４Ａは、培養液の違いが離乳後のオスの体重に与える影響を示す。
【図４Ｂ】図４Ｂは、培養液の違いが離乳後のメスの体重に与える影響を示す。
【図５】図５は、高脂肪食給餌による体重変化を示す。
【図６】図６は、本発明の糖尿病モデル動物が肥満していることを示す。
【図７】図７は、高脂肪食給餌前の耐糖能試験の結果を示す。
【図８】図８は、高脂肪食給餌後の耐糖能試験の結果を示す。
【図９】図９は、高脂肪食給餌後の体重推移を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１９】
本発明の発明者は、
１）遺伝子改変がなされていない非ヒト動物の受精胚を、
２）所定の培養液（ＭＥＭ培地）で培養し、
３）仮親に移植して出産させる
ことにより、その産子において糖尿病モデル動物が高頻度で出現することを見出した。
【００２０】
さらに成長後、高脂肪食の摂取により肥満、耐糖能異常や２型糖尿病症状が誘導されることを見出した。また、本発明の特徴である、受精胚の培養、仮親への移植及びその飼育等は、高度な技術を使用する必要はなく、簡単に低コストで実施できる。
【００２１】
すなわち、本発明は、自然発症する糖尿病モデル動物を遺伝子操作なしに作出する、低コストの糖尿病モデル動物及びその作出方法である。
【００２２】
本発明の従来技術と対比して優れた点は、所定の培養液による体外培養のみという単純操作により高頻度で重篤な再現性の高い自然発症糖尿病モデル動物が作出できたことであり、これまで類似の技術はない。すなわち、遺伝子操作は不要であり、また、作出環境のコントロールも容易である。今後、このモデル動物を解析することで、生活習慣病の胚時の起源、発症機構の解明、発症予測技術、創薬に用いることが期待できる。
【００２３】
前記非ヒト動物としてのモデル動物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、マウス、ラット、モルモット等の齧歯類動物；ウサギ、ブタ、イヌ、ネコ、サル、ヒツジ、ウシ、ウマ、チンパンジー、マーモセットなどの、ヒトを除く哺乳類動物が挙げられる。これらの中でも、マウス、ラット、モルモットが好ましく、マウスがより好ましい。
【実施例】
【００２４】
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に制限されるものではない。
【００２５】
本実施例では、非ヒト動物として、マウスを例にして説明するが、前述したように本発明はマウスに限定されるものではない。
【００２６】
＜糖尿病モデルマウスの作成方法＞
図１に本発明の自然発症糖尿病モデルマウス（ＭＥＭマウス）の作成方法を示す。ホルモン投与により過排卵処理をした８週齢以上の非近交系ＩＣＲ系統のメスマウスを非近交系ＩＣＲ系統のオスマウスと同じ飼育ケージに入れ交配させ、翌日の午前中に膣栓により交尾を確認できたメスマウスを別のケージに分け、さらにその翌日に頸椎脱臼により安楽死させ、卵管を採取する。その後卵管灌流により、２細胞期の受精胚を回収する（取出工程）。その後、取出した胚を桑実期および初期胚盤胞期までの約４８時間、所定の培養液（αＭＥＭ培地、詳細は後述する）にて培養する（培養工程）。培養した胚を８週齢以上の偽妊娠マウス（仮親）の卵管または子宮に移植する（移植工程）。その後仮親を出産するまで育成し自然出産させる（出産工程）。出産後、通常食飼料（例えば、ＳＬＣ社、Ｈｉ−Ｄｕｒａｂｉｌｉｔｙ  ＩＲＲＤ  Ｍ／Ｒ）で飼育し、成熟する８週齢以降において、高脂肪食飼料（例えば、オリエンタル酵母工業社、Ｆ２ＷＴＤ）を給餌する（飼育工程）。これらの通常食及び高脂肪食は、例示以外の物を用いてもかまわない。
【００２７】
培養工程では、所定の培養液として、通常マウス胚培養で一般的に使われているＣＺＢやＫＳＯＭに代えて、細胞培養で広く用いられているαＭＥＭ培地（ヌクレオシド含有のＧｉｂｃｏ社製αＭＥＭ（＃１２５７１−０６３、以下αＭＥＭ（＋ｎｕｃ）と表記、またはヌクレオシド不含の富士フイルム和光純薬社αＭＥＭ（＃１３５−１５１７５、以下αＭＥＭ（−ｎｕｃ）と表記）を用いた。なお、一般的に、αＭＥＭ培地が受精卵の培養に用いられることはない。上記αＭＥＭ培地は容易に入手可能である。
【００２８】
また、対照群として、マウス胚の培養に標準培養液ＣＺＢ培地を用い、αＭＥＭ培地と同条件で培養して得られたマウス（ＣＺＢマウス）、及び自然交配により得られたマウス（自然交配マウス）を使用した。
【００２９】
＜ＭＥＭマウスの出産時の体重＞
ＭＥＭマウスおよび対照群マウスの産子について出産したその日に体重を測定した結果を図２に示す。図２に示すように、αＭＥＭ培地（＋ｎｕｃおよび−ｎｕｃ）により胚を培養したＭＥＭマウスは、ヌクレオシドの含有および不含にかかわらず、ＣＺＢマウス及び自然交配マウスより体重が増加する傾向にあることが明らかである。このことから、胚時の培養環境がその後の胎児の成長に影響を与えることが示唆された。図２において体重は各実験群の平均体重であり、（）内は、測定したマウスの個体数を表示している。
【００３０】
＜ＭＥＭマウスの離乳前の体重推移＞
各マウス産子について、出産日から離乳（３週齢）までの体重推移について測定した。その結果を図３に示す。図３に示す通り、離乳前の体重は、出産時の体重に似て、培養液中のヌクレオシドの有無にかかわらずＭＥＭマウスが一番重く、次にＣＺＢマウス、そして自然交配マウスの順番になり、出産後の体重推移に胚の培養液の違いが影響することが認められた。図３において体重は各実験群の平均体重であり、（）内は測定したマウスの個体数を表示している。
【００３１】
＜ＭＥＭマウスの離乳後の体重推移＞
各マウスについて、離乳（３週齢）から成熟（８週齢）までの体重推移について測定した。その結果を図４Ａ及び図４Ｂに示す。図４Ａはオスマウスの測定結果であり、図４Ｂはメスマウスの測定結果である。図４Ａ及び図４Ｂに示す通り、体外で受精胚を培養したマウス群の離乳以降の体重は、オスメスともに、体外培養した培養液の種類にかかわらず４週齢以降は差がみられなくなる傾向であった。ただし、αＭＥＭ（＋ｎｕｃ）培地由来のオスは他の培地に比べ８週齢においても重い結果となった。一方、自然交配マウスは、８週齢においても、体外で受精胚を培養したマウス群より体重が少なく、培地の種類に関係なく体外培養の影響がマウスの８週齢においても認められた。図４Ａ及び図４Ｂにおいて体重は各実験群の平均体重であり、（）内は、測定したマウスの個体数を表示している。
【００３２】
＜ＭＥＭマウスの高脂肪食給餌による体重推移＞
各マウスについて、成熟（８週齢）後から高脂肪食給餌に移行し、体重推移（オス）を測定した。その結果を図５に示す。図５に示す通り、高脂肪食に移行後の体重はＭＥＭマウスにおいてもっとも顕著な体重増加がみられた。なお、図示していないが、αＭＥＭ（＋ｎｕｃ）及びメスマウスでも同様の傾向が見られた。図５において体重は各実験群の平均体重であり、（）内は、測定したマウスの個体数を表示している。
【００３３】
高脂肪食開始後５０日後のＭＥＭマウスの肥満の様子を図６に示す。図６に示す通り、高脂肪食開始後５０日後のＭＥＭマウスは極度の肥満である。
【００３４】
＜ＭＥＭマウスの通常食の耐糖能試験＞
離乳後通常食下で成熟した（８週齢）、高脂肪食に移行する直前の各マウスについて、ブドウ糖負荷時の血糖値変化（耐糖能試験または糖負荷試験）を測定した。その結果を図７に示す。図７に示す通り、高脂肪食に移行する前では、ＭＥＭマウスの血糖値変化はＣＺＢマウスおよび自然交配マウスと差が認められなかった。遺伝子改変マウスでは生まれたときから異常を示すことが多いが、ＭＥＭマウスは高脂肪食を与えなければ耐糖能試験において正常である。図７において（）内は、測定したマウスの個体数を表示している。
【００３５】
＜ＭＥＭマウスの高脂肪食給餌後の耐糖能試験＞
成熟（８週齢）以降に、高脂肪食に移行した各マウス（オス）について、高脂肪食に移行して４週間後にブドウ糖負荷時の血糖値変化（耐糖能試験または糖負荷試験）を測定した。その結果を図８に示す。図８に示す通り、高脂肪食飼育下では、ＭＥＭマウスのブドウ糖負荷後１５分から１２０分後にかけて血糖値がＣＺＢマウスおよび自然交配マウスより高い結果となり、ＭＥＭマウスの耐糖能異常が示された。なお、図示していないが、αＭＥＭ（＋ｎｕｃ）及びメスマウスでも同様の傾向が見られた。図８において（）内は、測定したマウスの個体数を表示している。図７及び図８に示した結果から、ＭＥＭマウスは、通常食下で正常であったにもかかわらず高脂肪食を与えた後、高頻度で耐糖能異常を示すので、自然発生型の糖尿病の有用なモデル動物であることがわかる。
【００３６】
＜ＭＥＭマウスの高脂肪食給餌による体重変化＞
高脂肪食に移行後４週間で糖代謝異常を示したＭＥＭマウス（オス、αＭＥＭ（−ｎｕｃ））について、さらに体重推移（オス）を１２週にわたり測定した。その結果を図９に示す。図９に示す通り、高脂肪食に移行後の体重は４匹のＭＥＭマウスのうち２匹（個体＃２と＃３）が１０週以降体重減少及びマウスの尿の甘い匂いが観察された。このことから、この２匹については糖尿病が重症化または合併症を発症したと考えられる。一方、高脂肪食下の体重減少はＭＥＭマウス（αＭＥＭ（＋ｎｕｃ））においても同様に観察され、オスメスとも体重が減少し、１３週までに体重が減少した後に死亡した（オスメス合わせて５匹中４匹が死亡）。一方、自然交配マウスや通常の食餌下におけるＭＥＭマウスでは体重減少や死亡は見られなかった。
【００３７】
上述したように、本発明は、遺伝子改変を行わない自然発生型の糖尿病モデル動物、及び、その作出方法に関するものであり、受精胚を所定の培養液で培養し、仮親に移植するという簡単な手段にて、低コストで、自然発生型の糖尿病の有用なモデル動物、及び、その作出方法を提供することができるという格別な効果を有する。
【００３８】
なお、上記実施例では、自然交配したマウスから受精胚を取り出し培養したが、人工授精による受精胚を用いてもかまわない。また、図６から明らかなように、本モデル動物は肥満症のモデル動物としても有用である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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