(57)【要約】      （修正有）【課題】マイコプラズマ・ニューモニアＰ３０タンパク質に対する抗体を用いて免疫反応を行う免疫学的検出方法において、マイコプラズマ・ニューモニアを高感度に検出する方法を提供。【解決手段】マイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いてマイコプラズマ・ニューモニアを免疫学的に検出する方法であって、ポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下、免疫反応を行う前記検出方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
マイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いてマイコプラズマ・ニューモニアを免疫学的に検出する方法であって、
ポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下、免疫反応を行う前記検出方法。
【請求項２】
免疫学的に検出する方法がイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法である請求項１に記載の検出方法。
【請求項３】
イムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法が以下の（Ａ）〜（Ｃ）の工程を含む請求項１又は２に記載の方法。
（Ａ）マイコプラズマ・ニューモニアを含むサンプルと、ポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液を混合する工程
（Ｂ）下記テストストリップのサンプル供給部に、前記（Ａ）で得られた混合物を供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一のマイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二のマイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体が固定化されている検出部を有する
（Ｃ）サンプル中のマイコプラズマ・ニューモニアとコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
【請求項４】
以下の構成（１）および（２）を含む、マイコプラズマ・ニューモニア検出キット。
（１）マイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬
（２）ポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液
【請求項５】
前記（１）のマイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬が以下の構成（１）’である請求項４に記載の検出キット。
（１）’少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一のマイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二のマイコプラズマ・ニューモニアのＰ３０タンパク質に対する抗体が固定化されている検出部を有するイムノクロマトグラフィー用テストストリップ
【請求項６】
マイコプラズマ・ニューモニアＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた免疫学的検出方法におけるサンプル希釈液であって、ポリオキシエチレン・アルキルアミンを含む前記希釈液。
【請求項７】
ポリオキシエチレンアルキルアミンと、マイコプラズマ・ニューモニアを含むサンプルとを接触させる工程を含む、マイコプラズマ・ニューモニアを免疫学的に検出するためのサンプル前処理方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、マイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出する方法に関する。特に、マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いてマイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
マイコプラズマ肺炎は、マイコプラズマ・ニューモニエ（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ  ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）を原因菌とする呼吸器系の感染症であり、小児の罹患率が高く、４歳未満が患者の３０％を、９歳未満が６０％以上を占める。
マイコプラズマ肺炎の多くの患者は気管支炎程度ですむが、一部は重症化して肺炎や他の合併症も併発するおそれがある。したがって、迅速な確定診断と適切な抗菌薬の選択が重要であることから、操作が簡便かつ迅速な検出が可能であるイムノクロマト分析が適している。
【０００３】
例えば、特許文献１には、マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に特異的なモノクローナル抗体を用いたイムノクロマト分析装置が開示されている。
また、特許文献２には、マイコプラズマ・ニューモニエのリボソームタンパク質Ｒｉｂｏｓｏｍａｌ  ＰｒｏｔｅｉｎＬ７／Ｌ１２に特異的な抗体を用いたイムノクロマト分析装置が開示されている。
ところで、抗体により検出をする場合、検出対象となる菌体やタンパク質を界面活性剤などで前処理をして抗体検出部位を露出させた上で検出する場合がある。
【０００４】
特許文献１では、ＨＬＢ値が１３〜１７の非イオン界面活性剤を含有する検体希釈液を前記イムノクロマト分析装置と共に使用するキットが開示されている。しかし、ＨＬＢ値が１３〜１７の非イオン界面活性剤の種類は膨大に存在するところ、実際に実施例に記載されているのは、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル（ｔｒｉｔｏｎＸ−１００）とポリオキシエチレンソルビタンモノオレート（ｔｗｅｅｎ２０）の１：１混合物と、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル（ノニデットｐ−４０）とポリオキシエチレン／ポリオキシプロピレン−アルキルエーテル（ノニオンＭＮ−８１１）の１：１混合物のみのわずか２例であり、その他の膨大な数のＨＬＢ値が１３〜１７の非イオン界面活性剤については使用できるかどうかは開示されていない。
また、本発明者らの試験によれば、これらのポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル（ｔｒｉｔｏｎＸ−１００）、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレート（ｔｗｅｅｎ２０）、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル（ノニデットｐ−４０）のいずれもマイコプラズマ・ニューモニエＰ３０モノクローナル抗体を用いた検出において十分な感度が得られなかった。
【０００５】
特許文献２では、ポリオキシエチレンアルキルエーテルやＨＬＢ値が１２〜１５の非イオン界面活性剤を含有する検体希釈液を前記イムノクロマト分析装置と共に使用するキットが開示されている。しかし、実際に実施例に記載されているのは、ポリオキシエチレンセチルエーテル（Ｂｒｉｊ５８）、合成アルコールＥＯ付加物（レオコールＴＤ９０、１２０）のみであり、その他の膨大な数のＨＬＢ値が１２〜１５の非イオン界面活性剤については開示されていない。また、抗体は、マイコプラズマ・ニューモニエのリボゾームタンパク質Ｌ７／Ｌ１２に対する抗体のみについてしか確認されておらず、Ｐ３０タンパクに対する抗体についてのこれらの非イオン界面活性剤の効果については開示も示唆もされていない。
また、本発明者らの試験によれば、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０モノクローナル抗体を用いた検出において、ポリオキシエチレンセチルエーテル（Ｂｒｉｊ５８）、合成アルコールＥＯ付加物（レオコールＴＤ９０、１２０）のいずれを検体希釈液に添加した場合も十分な感度が得られなかった。
このように、マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いてマイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出する方法において、高感度で検出する方法についての技術は未だ確立されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開2017-9571号公報
【特許文献２】特開2014-167439号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いて免疫反応を行う免疫学的検出方法において、マイコプラズマ・ニューモニエを高感度に検出する方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究した結果、多数の界面活性剤のうちでもポリオキシエチレンアルキルアミン存在下で、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いて免疫反応を行うことにより、マイコプラズマ・ニューモニエを高感度に検出できることを見出し本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
＜１＞
マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いてマイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出する方法であって、
ポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下、免疫反応を行う前記検出方法。
＜２＞
免疫学的に検出する方法がイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法である＜１＞に記載の検出方法。
＜３＞
イムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法が以下の（Ａ）〜（Ｃ）の工程を含む＜１＞又は＜２＞に記載の方法。
（Ａ）マイコプラズマ・ニューモニエを含むサンプルと、ポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液を混合する工程
（Ｂ）下記テストストリップのサンプル供給部に、前記（Ａ）で得られた混合物を供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体が固定化されている検出部を有する
（Ｃ）サンプル中のマイコプラズマ・ニューモニエとコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
＜４＞
以下の構成（１）および（２）を含む、マイコプラズマ・ニューモニエ検出キット。
（１）マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬
（２）ポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液
＜５＞
前記（１）のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬が以下の構成（１）’である＜４＞に記載の検出キット。
（１）’少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体が固定化されている検出部を有するイムノクロマトグラフィー用テストストリップ
＜６＞
マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた免疫学的検出方法におけるサンプル希釈液であって、ポリオキシエチレン・アルキルアミンを含む前記希釈液。
＜７＞
ポリオキシエチレンアルキルアミンと、マイコプラズマ・ニューモニエを含むサンプルとを接触させる工程を含む、マイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出するためのサンプル前処理方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明は、ポリオキシエチレンアルキルアミン存在下、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いて免疫反応を行うことにより、マイコプラズマ・ニューモニエを高感度に検出できる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】本発明のテストストリップの模式構成図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
（サンプル）
本発明において、サンプルとは患者から採取した検体であって被検出対象であるマイコプラズマ・ニューモニエを含む可能性がある検体をいう。
患者検体は、そのままサンプルとして用いてもよく、適宜サンプル希釈液によって希釈してサンプルとしてもよい。また、適宜希釈し濾過したものをサンプルとして用いてもよい。なお、サンプル希釈液は、他では検体希釈液、サンプル抽出液、サンプル展開液、サンプル浮遊液などと呼ばれることもあるが、いずれも同義で用いられる。
【００１２】
（ポリオキシエチレンアルキルアミン）
本発明の免疫学的検出方法は、ポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下で免疫反応を行うことを特徴とする。ポリオキシエチレンアルキルアミンは、以下の一般式で示され、弱陽イオン性だが、オキシエチレンの増加に伴い、非イオン性が強くなり、水に対する親和性が大きくなる（ＨＬＢが大きくなる)という性質を有する。
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本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンとしては、水に対する溶けやすさを考慮し、ＨＬＢが５．０〜１８．０程度が好ましく、６．０〜１６．０がより好ましく、７．０〜１２．０がよりいっそう好ましく、９．０〜１１．０がもっとも好ましい。具体的には、アミート１０２（ＨＬＢ６．３）、アミート１０５（ＨＬＢ９．８）、アミート１０５Ａ（ＨＬＢ１０．８）、アミート３０２（ＨＬＢ５．１）、アミート３２０（ＨＬＢ１５．４）（花王）のほか、リボノールシリーズ（ライオン）やブラウノンシリーズ（青木油脂工業）、イオネットＥＰ−３００Ｓ（三洋化成）という商品名で販売されているものが挙げられる。
免疫反応系におけるポリオキシエチレンアルキルアミンの濃度は、０．０１％〜１０．０％が好ましく、０．１％〜５％がさらに好ましく、０．２％〜３％がよりいっそう好ましく、０．３〜１．５％がもっとも好ましい。
ポリオキシエチレンアルキルアミンを反応系に存在させる態様としては、免疫反応系に直接添加してもよいが、典型的には、後述するようにサンプル希釈液に含有させておき、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体と接触させることにより免疫反応系に存在させる態様が挙げられる。
【００１３】
(サンプル希釈液）
本発明のサンプル希釈液は、ポリオキシエチレンアルキルアミン含み、さらに緩衝液を含むものが好ましい。
本発明のサンプル希釈液中のポリオキシエチレンアルキルアミンの濃度範囲は、０．０１％〜１０．０％が好ましく、０．１％〜５％がさらに好ましく、０．２％〜３％がよりいっそう好ましく、０．３〜１．５％がもっとも好ましい。
【００１４】
本発明のサンプル希釈液に含まれる緩衝液としては、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液をあげることができる。本発明のサンプル希釈液は、上記化合物と緩衝液を含むものであればよく、上記化合物を含む緩衝液でもよく、さらに塩化ナトリウムなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリン(登録商標)などの防腐剤等を含んでもよい。塩類は塩化ナトリウムなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のｐＨを調整する目的で添加するものも含まれる。本発明のサンプル希釈液のｐＨは、６．０〜１０．０の範囲が好ましく、７．０〜９．０がより好ましく、７．５〜８．５がよりいっそう好ましい。
本発明のサンプル希釈液は、サンプルを希釈するための液であるから、マイコプラズマ・ニューモニエを含むサンプル（検体）をサンプル希釈液に添加して、サンプルを溶解、抽出、あるいは分散して希釈する役割を担っている。したがって、典型的には、テストストリップのサンプルパッドにサンプルを供給する時点でサンプルとサンプル希釈液は混合されている。しかし、このほかに、サンプルを直接あるいは他の本発明のサンプル希釈液以外の希釈液で希釈したものをサンプルパッドに供給し、同時にあるいは遅れて本発明のサンプル希釈液を前記サンプルパッドに供給する場合も本発明の検出方法に含まれる。
【００１５】
本発明の免疫学的検出方法としては、免疫反応を利用する検出方法であればいずれでもよく、例えば、粒子凝集イムノアッセイ法であるラテックス免疫凝集法（以下、ＬＴＩＡ法という）、代表的なサンドイッチ免疫測定法であり標識イムノアッセイ法でもあるＥＬＩＳＡ法、イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法等が挙げられるが、このうちでも特に、イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法が望ましい。イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法としては、フルースロー式とラテラルフロー式が挙げられるが、ラテラルフロー式のイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法が簡便かつ迅速であり望ましい。
前記ＬＴＩＡ法において本発明のサンプル希釈液を使う場合は、サンプルを本発明のサンプル希釈液で希釈した後、ラテックス試薬と混合することで免疫凝集反応を検出することができる。ラテックス試薬が、緩衝液を含む第一試薬とラテックス試薬を含む第二試薬からなる場合は、第一試薬として本発明の検体希釈液を使用することができる。
【００１６】
また、本発明は、ポリオキシエチレンアルキルアミンと、マイコプラズマ・ニューモニエを含むサンプルとを接触させる工程からなるマイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出するためのサンプル前処理方法も提供する。
典型的には、ポリオキシエチレン・アルキルアミンを検体希釈液に含有させ、当該検体希釈液とサンプルを混合することにより前処理を行うことができる。
【００１７】
（被検出物質）
本発明の被検出物質はマイコプラズマ・ニューモニエである。本発明は、直接的には、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いて、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質を検出することにより、マイコプラズマ・ニューモニエの存在を検出し、または定量する。
【００１８】
（イムノクロマトグラフィー用を利用した検出）
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、サンプルを不溶性メンブレン中を展開させることにより、サンプル中の被検出物質とコンジュゲートとの複合体を検出するテストストリップである。当該テストストリップは、（１）サンプル供給部（２）展開部（３）検出部、とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する。
本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンは、前記サンプル希釈液に含まれている態様のほか、テストストリップを構成するパッドの一部に含浸させる態様もあり得る。例えば、サンプルパッド、サードパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンなどである。また、本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンは、フィルターチップに含浸される態様もあり得る。
【００１９】
コンジュゲートは、被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体が標識体に固定化されたものであり、コンジュゲートの存在様式としては、コンジュゲートパッドとして、あるいは、サンプルパッド、サードパッド、不溶性メンブレン以外の別のパッドに含浸された状態で存在してもよいし（タイプＡ）、サンプルパッドの一部にコンジュゲート部として存在してもよいし（タイプＢ）、さらには、テストストリップとは別に、検体と混合されるように個別のコンジュゲート試薬として存在してもよい（タイプＣ）。
【００２０】
以下、コンジュゲートの存在様式が上記タイプＡのテストストリップについて説明する。
サンプルの流れ方向の上流より下流に向かって、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、サードパッド、不溶性メンブレンの順に配置され、それぞれ上下の層と少なくとも一部が重複するように配置される。このような配置例のテストストリップを図１に示す。
このようなテストストリップのサンプルパッドに、被検出物質を含有するサンプルが供給されると、被検出物質はサンプルパッドを通過して下流側のコンジュゲートパッドへと流れる。コンジュゲートパッドでは、被検出物質とコンジュゲートが接触して複合体（凝集体）を形成しながら当該パッドを通過する。その後、複合体はコンジュゲートパッドの下面に接触して配置された多孔質サードパッドを通過し、不溶性メンブレンへと展開される。
不溶性メンブレンには、その一部に被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体が固定化されているため、該複合体がここで免疫反応により結合して固定化されることになる。固定化された複合体は、コンジュゲートに由来する吸光度、反射光、蛍光、磁気等を検出する手段により検出される。
【００２１】
次に、コンジュゲートの存在様式がタイプＢのテストストリップについて説明する。
上記タイプＡのテストストリップとの違いは、サンプルパッドとコンジュゲートパッドが一体になった点であり、つまり、サンプルパッドの一部にサンプル供給部およびコンジュゲート部が構成されている点である。
上記サンプル供給部は、被検出物質を含有するサンプルを供給する部位であり、上記コンジュゲート部は、コンジュゲートを含有する部位であり、サンプル供給部がコンジュゲート部の上流側となる。
【００２２】
次に、コンジュゲートの存在様式がタイプＣのテストストリップについて説明する。
上記タイプＡのテストストリップとの違いは、コンジュゲートパッドが存在せず、コンジュゲートは個別のコンジュゲート試薬として存在する点である。例えば、フィルター中にコンジュゲートが内蔵されたフィルターチップが挙げられる。このようなフィルターチップを使って、サンプル希釈液及び被検出物質を通過させることでコンジュゲートと被検出物質が結合し、複合体（凝集体）を形成する。これをコンジュゲートパッドを有さないこと以外はタイプＡと同一の前記テストストリップに供給することで、被検出物質を検出することができる。
コンジュゲートパッドやフィルターチップには、このほかに、本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンを含ませることもできる。
【００２３】
（サンプルパッド）
本発明に用いられるサンプルパッドとは、サンプルを受け入れる部位であり、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維（グラスファイバー）、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。該サンプルパッドには、後述するコンジュゲートパッドの機能を併せ持たせることも出来る。また、サンプルパッドには、抗体固定化メンブレンにおける非特異的反応（
吸着）を防止・抑制する目的で、通常使用されるブロッキング試薬を含ませることができる。
サプルパッドには、このほかに、本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンを含ませることもできる。
【００２４】
（サードパッド）
サードパッドは、試料の性状等により必要に応じて配置されることが望ましく、サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体を透過させることができるものであればいずれでもよい。
また、本発明のサードパッドの平均孔径は、１〜１００μｍが例示され、５〜８０μｍが好ましく、１０〜６０μｍがより好ましく、１５〜５５μｍがさらに好ましく、２０〜５０μｍが特に好ましく、２５〜４５μｍが最も好ましい。
サードパッドには、このほかに、本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンを含ませることもできる。
【００２５】
（不溶性メンブレン）
本発明に用いられる不溶性メンブレンは、被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体が固定化された少なくとも１つの検出部を有する。被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体の不溶性メンブレン担体への固定化は、従来公知の方法で実施することができる。ラテラルフロー式のイムノクロマト試薬の場合には、上記の抗体を所定の濃度で含有する液を調製し、ノズルから液を一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、上記液をライン状に不溶性メンブレン担体に塗布し、乾燥させることにより固定化させることができる。上記液の抗体の濃度は０．１〜５ｍｇ／ｍＬが好ましく、０．５〜２ｍｇ／ｍＬがさらに好適である。また、抗体の不溶性メンブレン担体への固定化量は、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化でき、０．５〜２μＬ／ｃｍが好適である。
なお、上記ラテラルフロー式のイムノクロマト試薬を用いた測定方法は、サンプルが毛細管現象により不溶性メンブレン担体に対して並行方向に移動するように展開する方式の測定方法である。
また、上記の抗体を所定の濃度で含有する液は、緩衝液に抗体を添加することにより調製することができる。該緩衝液の種類としては、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液をあげることができる。緩衝液のｐＨは６．０〜９．５の範囲が好ましく、６．５〜８．５がより好ましく、７．０〜８．０がさらに好ましい。緩衝液には、さらに塩化ナトリウムなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリン(登録商標)などの防腐剤等を含んでもよい。塩類は塩化ナトリウムなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のｐＨを調整する目的で添加するものも含まれる。
不溶性メンブレンに抗体を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして抗体を固定化した部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。
なお、不溶性メンブレンには、従来からイムノクロマト試薬で用いられているコントロール捕捉試薬を固定化してもよい。該コントロール捕捉試薬は、アッセイの信頼性を担保するための試薬であって、コンジュゲートパッドに含ませたコントロール試薬を捕捉するものである。例えば、コンジュゲートパッドに標識されたスカシ貝由来ヘモシアニン（以下、ＫＬＨという）をコントロール試薬として含む場合には、抗ＫＬＨ抗体などがコントロール捕捉試薬に該当する。コントロール捕捉試薬を固定化する位置は、アッセイ系の設計に適合するよう適宜選択することができる。
不溶性メンブレンには、このほかに、本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンを含ませることもできる。
【００２６】
本発明で用いられる不溶性メンブレンを構成するメンブレンとしては、従来からイムノクロマト試薬の不溶性メンブレン担体として用いられている公知のメンブレンが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類、セラミックス等からなる繊維から構成されるメンブレンがあげられる。具体的には、ザルトリウス社、ミリポア社、東洋濾紙社、ワットマン社などから市販されているガラス繊維ろ紙やセルロースろ紙などが挙げられる。中でも、ザルトリウス社、UniSart CN140が好ましい。また、この不溶性メンブレン担体の孔径と構造を適宜選択することにより、コンジュゲートとサンプル中の被検出物質との複合体が不溶性メンブレン担体中を流れる速度を制御することが可能である。
【００２７】
上記イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上に配置させることが好ましい。該固相支持体は、サンプル及びコンジュゲートの毛管流を妨げない物質で構成する。また、イムノクロマトグラフィー用テストストリップを固相支持体上に接着剤等で固定化してもよい。この場合、接着剤の成分等においてもサンプル及びコンジュゲートの毛管流を妨げない物質で構成する。該イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、イムノクロマトグラフィー用テストストリップの大きさ、サンプルの添加方法や添加位置、不溶性メンブレンの検出部の形成位置、シグナル
の検出方法などを考慮した適当な容器（ハウジング）に格納・搭載して使用することができ、このように格納・搭載された状態を「デバイス」という。
【００２８】
（マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体）
本発明のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体とは、該タンパク質を特異的に検出できる抗体であればポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれでもよく、このうちでもモノクローナル抗体が好ましい。
マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体は、例えば、マイコプラズマ・ニューモニエ菌体から抽出したＰ３０タンパク質またはクローニングされたＰ３０タンパク質の遺伝子を大腸菌などの宿主で遺伝子工学的に発現させて抽出精製した組み換えＰ３０タンパク質、又はＰ３０タンパク質の一部を構成するポリペプチドを免疫用抗原として、常法に従って得ることができる。ポリクローナル抗体の場合は、前記免疫用抗原でマウスなどの動物を免疫した抗血清から得ることができ、モノクローナル抗体は、マウスなどの動物に免疫した後、この免疫された動物の脾臓細胞とミエローマ細胞とを細胞融合して得られた融合細胞をＨＡＴ含有培地で選択した後に増殖させて、Ｐ３０タンパク質を利用して、例えば、抗Ｐ３０タンパク質抗体産生株をスクリーニングすることにより得ることができる。
【００２９】
本発明のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体は、当該抗体と実質的に同等のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体フラグメントおよび改変抗体も含む。抗体フラグメントとしてはＦａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント、Ｆａｂ’フラグメント、ｓｃＦｖフラグメントなどが挙げられる。
本発明のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する第一の抗体である標識抗体と第二の抗体である固定化抗体は、それぞれ、ポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよいが、少なくともいずれか一方がモノクローナル抗体である方が好ましく、両方がモノクローナル抗体である方がより好ましい。
また、第一の抗体と第二の抗体は、Ｐ３０タンパク質に存在する異なるエピトープを認識する抗体であることが好ましい。
【００３０】
Ｐ３０タンパク質は分子量３０ＫＤａの接着タンパク質の１つである。マイコプラズマ・ニューモニエの菌体においては、接着器官の先端部の細胞表面に局在しており、細胞膜内に埋没しているＮ末端と細胞膜外に存在するＣ末端を持つ膜貫通型タンパク質である。
また、Ｃ末端側にはプロリンを多く含むアミノ酸配列の繰り返し構造が存在する。一般的にプロリンを含むアミノ酸配列からなる領域は、立体的な高次構造をとることが知られており、抗体の反応するエピトープとなり得ることが知られている。
本発明のＰ３０タンパク質に対する抗体は、Ｐ３０タンパク質を特異的に認識できる抗体であればよく、モノクローナル抗体としては、Ｐ３０タンパク質の細胞外領域における、プロリンを多く含むアミノ酸配列の繰り返し構造からなる部分を認識するモノクローナル抗体が好ましい。
また、本発明のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体は、市販の抗Ｐ３０モノクローナル抗体を用いてもよい。市販の抗Ｐ３０モノクローナル抗体の例としては、Ｍｅｒｉｄｉａｎ社のＣ０１９３９Ｍ、Ｃ０１９４０Ｍ、Ｃ０１９４１Ｍ、Ｃ０１９４２Ｍ、Ｃ０１９４３Ｍなどが挙げられる。
【００３１】
（抗Ｐ３０モノクローナル抗体の調製例）
以下の試験に用いた抗Ｐ３０モノクローナル抗体は、当業者がモノクローナル抗体を製造するために通常行う方法（ＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｎａｔｕｒｅ、第２５６巻４９５頁（１９７５年）等）により得られた。
【００３２】
（標識体）
本発明で用いられる標識体は、従来からイムノクロマトグラフィー用テストストリップに用いられている公知の標識体を用いることができる。例えば、金コロイド粒子や白金コロイド粒子などのコロイド状金属粒子、カラーラテックス粒子、磁性粒子、蛍光粒子などが好ましく、特に金コロイド粒子、カラーラテックス粒子が好ましい。
【００３３】
（コンジュゲート）
本発明で用いられるコンジュゲートは、上記のような標識体に被検出物質であるマイコプラズマ・ニューモニエに対して免疫学的に反応する抗体が固定化されたものである。コンジュゲートは、金コロイド粒子に抗マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体が固定化されたものが好ましい。
被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体を標識体へ固定化させる方法としては、物理吸着、化学結合等が挙げられ、物理吸着により固定化させるのが一般的である。
【００３４】
（キット）
本発明のマイコプラズマ・ニューモニエの検出キットは、マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬及びポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液を含むものであればよい。
また、本発明のイムノクロマトグラフィーを利用したマイコプラズマ・ニューモニエ検出キットは、マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いたイムノクロマトグラフィー用テストストリップおよびポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液を含むものであればよい。
本検出キットは、他に検出に必要な試薬、試験用チューブ、サンプル採取用の器具、取扱い説明書、テストストリップ格納用のハウジングなどを含んでもよい。
【００３５】
(その他)
本明細書中、上流または下流という意味は、サンプルの流れる方向の上流側、下流側という意味で用いる。すなわち、本発明のテストストリップで上からサンプルパッド、コンジュゲートパッド、サードパッド、不溶性メンブレンが一部で重なるように積層されている場合、サンプルパッドがもっとも上流であり、不溶性メンブレンが下流ということになる。また、不溶性メンブレンの下流側端部が重なるように上にエンドパッドが積層されることがあるが、この場合、エンドパッドがもっとも下流である。
【実施例】
【００３６】
〔実施例１〕サンプル希釈液への界面活性剤の添加検討（１）
１．試験材料
（１）テストデバイス
マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対するモノクローナル抗体を使用したイムノクロマトグラフィー用テストストリップを含むテストデバイスを製造した。  
図１に、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
プラスチック製粘着シート（a）に不溶性メンブレン（b）を貼り、次いで、サードパッド(g)、コンジュゲートパッド（d)、サンプルパッド（e）を順に配置装着し、反対側の端には吸収パッド(ｆ)を配置装着した。コンジュゲートパッドには、金コロイドに抗Ｐ３０タンパク質モノクローナル抗体（表に示す標識抗体S08214R）を感作したコンジュゲートが含浸されており、不溶性メンブレンには、抗Ｐ３０タンパク質モノクローナル抗体（固定化抗体Ｓ０８２１０Ｒ、塗布濃度０．７５ｍｇ／ｍＬ、塗布量１．０μＬ／ｃｍ）、およびコントロール試薬（ヤギ抗マウスＩｇＧ、塗布濃度０．７５ｍｇ／ｍＬ、塗布量１．０μＬ／ｃｍ）が流れ方向に対して垂直にライン上に固定化されている。各パッドは、上下のパッドとその一部が接するように積層して配置される。抗Ｐ３０タンパク質モノクローナル抗体からなるラインをテストライン（ｃ１）、コントロール試薬からなるラインをコントロールライン（ｃ２）という。
このように各構成要素を重ね合わせた構造物を一定幅に切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。テストストリップを専用のプラスチック製ハウジングに格納・搭載し、イムノクロマトテストデバイス（図示せず）の形態にした。
【００３７】
（２）サンプル希釈液
ポリオキシエチレンアルキルアミンを１．０％、ＮａＣｌを５０ｍＭとなるように２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．５）に添加してサンプル希釈液を調整した。添加剤としてＢＳＡ０．２５％を添加した。
【００３８】
（３）サンプル
ＮＢＲＣより受領し、凍結したマイコプラズマを遠心にて濃縮し、表中の倍率で生理食塩水により希釈したものを検体として用いた。各サンプル希釈液３００μＬに各検体１５μＬを懸濁し、サンプルとした。
【００３９】
２．試験方法
テストデバイスにサンプル１２０μＬを滴下し、１５分後にテストラインの発色強度を「カラーチャート」という色見本を用いて以下の基準で目視で評価した。
＋：発色が見られる
±：発色が見られるが弱いあるいは非常に弱い
−：発色が一切見られない
【００４０】
３．試験結果
結果を表１に示す。テストラインの発色強度を「ｍｙｃｏ」の列に、コントロールラインの発色強度を「ｃｏｎｔ」の列に記載した。限界希釈率以下（検出できる範囲の希釈率）の結果に網掛けを付した。後述する参考例と同様の試験において、比較的感度の高かったエマルゲン１０８（０．５％）を使用した場合より本発明のサンプル希釈液を使用した場合に感度が高いかどうかを本発明の評価基準とした。
本結果によれば、ポリオキシエチレンアルキルアミンを添加したサンプル希釈液を使用してマイコプラズマ・ニューモニエを検出した場合、エマルゲン１０８の検出限界は希釈率４０倍であったところ、本発明のアミート１０５は３２０倍でも検出が可能であった。
【００４１】
【表１】
2020024093.tif 000003
【００４２】
〔実施例２〕サンプル希釈液への界面活性剤の添加検討（２）
実施例１において、標識抗体をS08222Rに変えた以外は同様に感度評価試験を行った。
結果を表２に示す。本結果によれば、エマルゲン１０８の検出限界は希釈率８０倍であったところ、本発明のアミート１０５は１２８０倍でも検出が可能であった。
【００４３】
【表２】
2020024093.tif 000004
【００４４】
〔実施例３〕サンプル希釈液への界面活性剤の添加検討（３）
実施例１において、標識抗体をS08224Rに変えポリオキシエチレンアルキルアミン２種の添加濃度を０．１％に変更した以外は同様に感度評価試験を行った。
結果を表３に示す。本結果によれば、エマルゲン１０８の検出限界は希釈率８０倍であったところ、本発明のアミート１０５、アミート３２０は３２０倍でも検出が可能であった。
【００４５】
【表３】
2020024093.tif 000005
【００４６】
〔実施例４〕サンプル希釈液への界面活性剤の添加検討（４）
実施例１において、標識抗体をS08228Rに変えた以外は同様に感度評価試験を行った。
結果を表４に示す。
本結果によれば、エマルゲン１０８の検出限界は希釈率１６０倍であったところ、本発明のアミート１０５は６４０倍でも検出が可能であった。
【００４７】
【表４】
2020024093.tif 000006
【００４８】
以上、実施例１〜４より、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対するモノクローナル抗体のいずれの抗体を用いた場合も、本発明のポリオキシエチレンアルキルアミン存在下で免疫反応を行うことにより、マイコプラズマ・ニューモニエを高感度に検出することが可能となった。
【００４９】
〔参考例〕界面活性剤のスクリーニング
上記実施例に先駆け、検出感度を上げる化合物探索のためノニオン性界面活性剤及びアニオン性界面活性剤について感度評価試験を行った。上記実施例１〜４は検出下限を評価したが、本スクリーニングではテストラインの発色強度を評価した。
（１）試験方法
実施例１と同じテストデバイスにサンプル１２０μＬを滴下し、１５分後にテストラインの発色強度を「カラーチャート」という色見本を用いて目視で評価した。サンプル希釈液は表５に示す組成の界面活性剤０．１％及び１．０％の２種の濃度で、ＮａＣｌを５０ｍＭとなるように２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．５）に添加して調整した。添加剤としてＢＳＡ０．２５％を添加した。
評価基準は、いずれかの界面活性剤濃度で、対照のエマルゲン１０８に対して発色強度の顕著な増強を認めた条件を◎、増強を認めた条件を○、低下あるいは発色を認めなかった条件を×として３段階で相対的に評価した。
（２）試験結果
結果を表５に示す。本結果によれば、アニオン性界面活性剤はいずれも感度が悪く、検出が不能であり、ノニオン性界面活性剤ではポリオキシエチレンアルキルアミンがいずれも感度が高いことがわかった。本結果より、さらに複数のモノクローナル抗体においても検出感度が高いかどうかを確認し、検出可能な濃度範囲を調べるべく上記実施例にて試験を行った。
【００５０】
【表５】
2020024093.tif 000007
【産業上の利用可能性】
【００５１】
本発明によれば、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いて行う免疫反応をポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下で行うことにより、マイコプラズマ・ニューモニエを高感度に検出できる。
【符号の説明】
【００５２】
（ａ）プラスチック製粘着シート
（ｂ）不溶性メンブレン
（ｃ１）テストライン
（ｃ２）コントロールライン
（ｄ）コンジュゲートパッド
（ｅ）サンプルパッド
（ｆ）吸収パッド
（ｇ）サードパッド 
【図１】
2020024093.tif 000008
【手続補正書】
【提出日】平成30年9月20日(2018.9.20)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いてマイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出する方法であって、
ポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下、免疫反応を行う前記検出方法。
【請求項２】
免疫学的に検出する方法がイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法である請求項１に記載の検出方法。
【請求項３】
イムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法が以下の（Ａ）〜（Ｃ）の工程を含む請求項１又は２に記載の方法。
（Ａ）マイコプラズマ・ニューモニエを含むサンプルと、ポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液を混合する工程
（Ｂ）下記テストストリップのサンプル供給部に、前記（Ａ）で得られた混合物を供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体が固定化されている検出部を有する
（Ｃ）サンプル中のマイコプラズマ・ニューモニエとコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
【請求項４】
以下の構成（１）および（２）を含む、マイコプラズマ・ニューモニエ検出キット。
（１）マイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬（２）ポリオキシエチレンアルキルアミンを含むサンプル希釈液
【請求項５】
前記（１）のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた検出試薬が以下の構成（１）’である請求項４に記載の検出キット。
（１）’少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一のマイコプラズマ・ニュ
ーモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二のマイコプラズマ・ニューモニエのＰ３０タンパク質に対する抗体が固定化されている検出部を有するイムノクロマトグラフィー用テストストリップ
【請求項６】
マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体を用いた免疫学的検出方法におけるサンプル希釈液であって、ポリオキシエチレンアルキルアミンを含む前記希釈液。
【請求項７】
ポリオキシエチレンアルキルアミンと、マイコプラズマ・ニューモニエを含むサンプルとを接触させる工程を含む、マイコプラズマ・ニューモニエを免疫学的に検出するためのサンプル前処理方法。 
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１２
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００１２】
（ポリオキシエチレンアルキルアミン）
本発明の免疫学的検出方法は、ポリオキシエチレンアルキルアミンの存在下で免疫反応を行うことを特徴とする。ポリオキシエチレンアルキルアミンは、以下の一般式で示され、弱陽イオン性だが、オキシエチレンの増加に伴い、非イオン性が強くなり、水に対する親和性が大きくなる（ＨＬＢが大きくなる)という性質を有する。
2020024093.tif 000009
本発明のポリオキシエチレンアルキルアミンとしては、水に対する溶けやすさを考慮し、ＨＬＢが５．０〜１８．０程度が好ましく、６．０〜１６．０がより好ましく、７．０〜１２．０がよりいっそう好ましく、９．０〜１１．０がもっとも好ましい。具体的には、アミート（登録商標、以下同じ。）１０２（ＨＬＢ６．３）、アミート１０５（ＨＬＢ９．８）、アミート１０５Ａ（ＨＬＢ１０．８）、アミート３０２（ＨＬＢ５．１）、アミート３２０（ＨＬＢ１５．４）（花王）のほか、リポノール（登録商標）シリーズ（ライオン）やブラウノンシリーズ（青木油脂工業）、イオネット（登録商標）ＥＰ−３００Ｓ（三洋化成）という商品名で販売されているものが挙げられる。
免疫反応系におけるポリオキシエチレンアルキルアミンの濃度は、０．０１％〜１０．０％が好ましく、０．１％〜５％がさらに好ましく、０．２％〜３％がよりいっそう好ましく、０．３〜１．５％がもっとも好ましい。
ポリオキシエチレンアルキルアミンを反応系に存在させる態様としては、免疫反応系に直接添加してもよいが、典型的には、後述するようにサンプル希釈液に含有させておき、マイコプラズマ・ニューモニエＰ３０タンパク質に対する抗体と接触させることにより免疫反応系に存在させる態様が挙げられる。 
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４０】
３．試験結果
結果を表１に示す。テストラインの発色強度を「ｍｙｃｏ」の列に、コントロールライ
ンの発色強度を「ｃｏｎｔ」の列に記載した。限界希釈率以下（検出できる範囲の希釈率
）の結果に網掛けを付した。後述する参考例と同様の試験において、比較的感度の高かっ
たエマルゲン１０８（登録商標、以下同じ。）（０．５％）を使用した場合より本発明のサンプル希釈液を使用した
場合に感度が高いかどうかを本発明の評価基準とした。
本結果によれば、ポリオキシエチレンアルキルアミンを添加したサンプル希釈液を使用
してマイコプラズマ・ニューモニエを検出した場合、エマルゲン１０８の検出限界は希釈
率４０倍であったところ、本発明のアミート１０５は３２０倍でも検出が可能であった。