(57)【要約】【課題】アクアポリンや角化マーカーの発現を促進する新たな技術を提供すること。【解決手段】以下の成分（Ａ）及び（Ｂ）から選ばれる１種以上を有効成分とする、アクアポリン発現促進剤。  （Ａ）豆乳の乳酸菌発酵処理物  （Ｂ）トリリノレイン【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の成分（Ａ）及び（Ｂ）から選ばれる１種以上を有効成分とする、アクアポリン発現促進剤。
（Ａ）豆乳の乳酸菌発酵処理物
（Ｂ）トリリノレイン
【請求項２】
前記アクアポリンが、アクアポリン１、アクアポリン３、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン６、アクアポリン８、アクアポリン９、アクアポリン１０及びアクアポリン１１から選ばれる１種又は２種以上のアクアポリンである、請求項１に記載のアクアポリン発現促進剤。
【請求項３】
豆乳の乳酸菌発酵処理物を有効成分とし、且つ前記アクアポリンが、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン６及びアクアポリン８から選ばれる１種又は２種以上のアクアポリンである、請求項１に記載のアクアポリン発現促進剤。
【請求項４】
以下の成分（Ａ）及び（Ｂ）から選ばれる１種以上を有効成分とする、角化マーカー発現促進剤。
（Ａ）豆乳の乳酸菌発酵処理物
（Ｂ）トリリノレイン
【請求項５】
前記角化マーカーが、フィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ及びケラチンから選ばれる１種又は２種以上の角化マーカーである、請求項４に記載の角化マーカー発現促進剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アクアポリン発現促進剤及び角化マーカー発現促進剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
表皮は、皮膚の最も外側にあり、外部からの異物の侵入や体の水分の蒸散を防ぐバリアとなって、内部を保護している。表皮の構造は、外側から角質層、透明層、顆粒層、有棘層及び基底層となっており、これらの各層のほとんどは角化細胞（ケラチノサイト）で構成されている。
この角化細胞は、基底層で毎日生まれては後から分裂して生じる細胞に徐々に押し上げられて角質層に達し、角質細胞に変化する。その後、角質層の最外層に達し、少しずつ自然にはがれ落ちる。この角化細胞の発生から脱落までを角化又はターンオーバーという。表皮においてこの角化が正常に行なわれることが、皮膚の正常な機能、すなわち皮膚防御機能において極めて重要であり、角化マーカーとしては、フィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ−１、トランスグルタミナーゼ−３、ケラチン−１、ケラチン−１０、ケラチン−１４、ケラチン−２０等が知られている。
【０００３】
また、表皮は、外界と体内の水分量の調節も行っており、内部の角化細胞の含水量が多くなっている。この角化細胞における保湿機能は、細胞膜に存在するアクアポリン分子機能によって調節されている。
【０００４】
また、紫外線や老化、環境の変化等によりダメージを受けた場合に、皮膚の皮膚防御機能や水分保持機能は低下するが、これらの機能低下には、角化細胞中の角化マーカーやアクアポリンの発現量の低下が関与していることが知られている。したがって、角化マーカーやアクアポリンの発現を促進させる成分を開発することは、皮膚の機能を改善する上で重要である。
【０００５】
アクアポリン発現促進剤としては、クリプトキサンチン（特許文献１）、各種植物抽出物（特許文献２、３、４）、ホスホセリン（特許文献５）等が知られている。また、フィラグリン発現促進剤としては、キンモクセイ抽出物（特許文献６、７）等が知られている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２０１４−１４４９６０号公報
【特許文献２】特開２０１３−８７０５７号公報
【特許文献３】特開２０１３−８７０５８号公報
【特許文献４】特開２０１３−９５６６７号公報
【特許文献５】特開２０１８−１８８４１３号公報
【特許文献６】特開２００９−２５６２６９号公報
【特許文献７】特開２００９−６７７４９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
しかしながら、従来のアクアポリン発現促進剤やフィラグリン発現促進剤は、効果が十分でない、安全性に懸念がある等の問題があった。
したがって、本発明の課題は、アクアポリンや角化マーカーの発現を促進する新たな技術を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
そこで、本発明者らは鋭意検討した結果、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインが、優れたアクアポリン発現促進効果及び優れた角化マーカー発現促進効果を有することを見出し、本発明を完成した。
【０００９】
すなわち、本発明は、以下の＜１＞〜＜５＞を提供するものである。
＜１＞  以下の成分（Ａ）及び（Ｂ）から選ばれる１種以上を有効成分とする、アクアポリン発現促進剤。
（Ａ）豆乳の乳酸菌発酵処理物
（Ｂ）トリリノレイン
＜２＞  前記アクアポリンが、アクアポリン１、アクアポリン３、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン６、アクアポリン８、アクアポリン９、アクアポリン１０及びアクアポリン１１から選ばれる１種又は２種以上のアクアポリンである、＜１＞に記載のアクアポリン発現促進剤。
＜３＞  豆乳の乳酸菌発酵処理物を有効成分とし、且つ前記アクアポリンが、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン６及びアクアポリン８から選ばれる１種又は２種以上のアクアポリンである、＜１＞に記載のアクアポリン発現促進剤。
＜４＞  以下の成分（Ａ）及び（Ｂ）から選ばれる１種以上を有効成分とする、角化マーカー発現促進剤。
（Ａ）豆乳の乳酸菌発酵処理物
（Ｂ）トリリノレイン
＜５＞  前記角化マーカーが、フィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ及びケラチンから選ばれる１種又は２種以上の角化マーカーである、＜４＞に記載の角化マーカー発現促進剤。
【発明の効果】
【００１０】
本発明のアクアポリン発現促進剤は、優れたアクアポリン発現促進効果を有する。
本発明の角化マーカー発現促進剤は、優れた角化マーカー発現促進効果を有する。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】調製例１における培養プロセスの順序を示す図。
【図２−１】乳酸菌生産物質１のアクアポリン１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図２−２】乳酸菌生産物質２のアクアポリン１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図２−３】フラクション１のアクアポリン１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図２−４】フラクション２のアクアポリン１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図３−１】乳酸菌生産物質２のアクアポリン１０発現促進効果の評価結果を示す図。
【図３−２】フラクション１のアクアポリン１０発現促進効果の評価結果を示す図。
【図４−１】乳酸菌生産物質２のアクアポリン１１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図４−２】フラクション１のアクアポリン１１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−１】乳酸菌生産物質１、フラクション１、トリリノレインのアクアポリン１発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−２】乳酸菌生産物質１、フラクション１、トリリノレインのアクアポリン１発現促進効果の評価結果を定量化した図。
【図５−３】乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、フラクション２、トリリノレインのアクアポリン３発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−４】乳酸菌生産物質１、フラクション２、トリリノレインのアクアポリン３発現促進効果の評価結果を定量化した図。
【図５−５】フラクション１のアクアポリン４発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−６】乳酸菌生産物質２のアクアポリン５発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−７】乳酸菌生産物質２のアクアポリン５発現促進効果の評価結果を定量化した図。
【図５−８】乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション２のアクアポリン６発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−９】乳酸菌生産物質１、フラクション２のアクアポリン６発現促進効果の評価結果を定量化した図。
【図５−１０】フラクション２のアクアポリン８発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−１１】乳酸菌生産物質１、フラクション１、フラクション２、トリリノレインのアクアポリン９発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−１２】フラクション２、トリリノレインのアクアポリン９発現促進効果の評価結果を定量化した図。
【図５−１３】乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、トリリノレインのアクアポリン１０発現促進効果の評価結果を示す図。
【図５−１４】乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、トリリノレインのアクアポリン１０発現促進効果の評価結果を定量化した図。
【図６−１】乳酸菌生産物質１のフィラグリン、インボルクリン、ロリクリン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図６−２】乳酸菌生産物質１のトランスグルタミナーゼ、ケラチン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図７−１】乳酸菌生産物質２のフィラグリン、インボルクリン、ロリクリン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図７−２】乳酸菌生産物質２のトランスグルタミナーゼ発現促進効果の評価結果を示す図。
【図８−１】フラクション１のフィラグリン、インボルクリン、ロリクリン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図８−２】フラクション１のトランスグルタミナーゼ、ケラチン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図９−１】フラクション２のフィラグリン、インボルクリン、ロリクリン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図９−２】フラクション２のトランスグルタミナーゼ、ケラチン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図１０−１】トリリノレインのフィラグリン、インボルクリン、ロリクリン発現促進効果の評価結果を示す図。
【図１０−２】トリリノレインのトランスグルタミナーゼ、ケラチン発現促進効果の評価結果を示す図。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明のアクアポリン発現促進剤、角化マーカー発現促進剤は、以下の成分（Ａ）及び（Ｂ）から選ばれる１種以上を有効成分とするものである。
（Ａ）豆乳の乳酸菌発酵処理物
（Ｂ）トリリノレイン
【００１３】
上記トリリノレインは、市販品を用いても公知の方法で合成したものを用いてもよい。
次に、上記「豆乳の乳酸菌発酵処理物」について詳細に説明する。
豆乳の乳酸菌発酵処理物は、豆乳を乳酸菌で発酵処理した発酵物である。豆乳の乳酸菌発酵処理物は、液状、半液状、固体状のいずれでもよい。
豆乳は、食品やその原料として用いられるものであればよい。例えば、無調整豆乳、調整豆乳、豆乳飲料、豆乳の乾燥粉末等の液状又は粉末状のものが挙げられ、豆乳の濃縮物や希釈物を用いてもよい。これらのうち１種を単独で用いても２種以上を組み合わせて用いてもよい。豆乳中の大豆固形分濃度は、好ましくは１〜１６％、より好ましくは２〜１０％である。なお、豆乳には、発酵処理に先立って加熱殺菌をしてもよい。
【００１４】
乳酸菌としては、ラクトバチルス（Lactobacillus）属、ストレプトコッカス（Streptococcus）属、エンテロコッカス（Enterococcus）属、ラクトコッカス（Lactococcus）属、ビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属のいずれかに属する乳酸菌が挙げられる。
乳酸菌としては、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、ストレプトコッカス（Streptococcus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌、ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する乳酸菌及びビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌から選ばれる１種又は２種以上の乳酸菌が好ましい。
このうち、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、及びエンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌を少なくとも含む組み合わせが好ましく、
ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌、及びビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌を少なくとも含む組み合わせがより好ましく、
ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、ストレプトコッカス（Streptococcus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌、及びビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌を少なくとも含む組み合わせが更に好ましく、
ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、ストレプトコッカス（Streptococcus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌、ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する乳酸菌及びビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌を少なくとも含む組み合わせが特に好ましい。また、２種以上の乳酸菌を用いる場合、２種以上の乳酸菌のうち共棲可能なものを共棲培養させた培養物を用いることが好ましい。
【００１５】
ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌としては、Ｌ．アシドフィラス（Lactobacillus acidophilus）、Ｌ．ブレビス（Lactobacillus brevis）、Ｌ．ジェンセニイ（Lactobacillus jensenii）、Ｌ．パラカゼイ（Lactobacillus paracasei subsp． paracasei）、Ｌ．ガセリー（Lactobacillus gasseri）、Ｌ．ブルガリクス（Lactobacillus delbrueckii subsp．bulgaricus）、Ｌ．ヘルベティカス（Lactobacillus helveticus）、Ｌ．カゼイ（Lactobacillus casei subsp． casei）、Ｌ．ラモナウサス（Lactobacillus rhamnosus）、Ｌ．デルブリッキィ（Lactobacillus delbrueckii subsp． delbrueckii）等が挙げられる。
【００１６】
ストレプトコッカス（Streptococcus）属に属する乳酸菌としては、Ｓ．サーモフィラス（Streptococcus thermophilus）等が挙げられる。エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌としては、Ｅ．フェシウム（Enterococcus faecium）等が挙げられる。ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する乳酸菌としては、Ｌ．ラクチス（Lactococcus lactis）等が挙げられる。ビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌としては、Ｂ．ロンガム（Bifidobacterium longum）、Ｂ．ビフィダム（Bifidobacterium bifidum）、Ｂ．アドレセンティス（Bifidobacterium adolescentis）等が挙げられる。
【００１７】
上記のような乳酸菌の具体的な菌株としては、例えば、ＪＣＭ１０２１株、ＪＣＭ１０２３株、ＪＣＭ１０２８株、ＪＣＭ１０３３株、ＪＣＭ１０３４株、ＪＣＭ１１３２株、ＪＣＭ１０６１株、ＪＣＭ１０６５株、ＪＣＭ１１０３４株、ＪＣＭ１１０３５株、ＪＣＭ１０５３株、ＪＣＭ１１０９株、ＪＣＭ１１１１株、ＪＣＭ１１３３株、ＪＣＭ１０１７株、ＪＣＭ１０１９株、ＪＣＭ１０２５株、ＪＣＭ１１３１株、ＪＣＭ１００２株、ＪＣＭ１１０３７株、ＪＣＭ１１０３８株、ＪＣＭ１００３株、ＪＣＭ１００４株、ＪＣＭ１１２０株、ＪＣＭ１１３４株、ＪＣＭ１１３６株、ＪＣＭ１１６５株、ＪＣＭ１５５３株、ＪＣＭ２００７５株、ＪＣＭ２００８８株、ＪＣＭ１７８３４株、ＪＣＭ２００２６株、ＪＣＭ５８０４株、ＪＣＭ５８０５株、ＪＣＭ１２１７株、ＪＣＭ７０５２株、ＪＣＭ１２５４株、ＪＣＭ１２５５株、ＪＣＭ１２７５株、ＫＯＥＩ株等が挙げられる。
【００１８】
乳酸菌は、１種を単独で用いてもよく、共棲可能な２種以上を組み合わせて用いてもよいが、５〜５０種を組み合わせて用いるのが好ましく、１０〜４５種を組み合わせて用いるのがより好ましく、１５〜４０種を組み合わせて用いるのが特に好ましい。なお、属が同じで株が異なるものを組み合わせてもよい。
【００１９】
豆乳の乳酸菌発酵処理を、乳酸菌の共棲培養物を用いて行う場合、発酵処理に先立って行われる乳酸菌の共棲培養、及び得られた共棲培養物を用いた発酵処理は、例えば、特開２００５−９７２８０号公報、特開２０１６−２０２１３９号公報、特許第４５４０３７６号公報等の記載を参考にして行うことができる。
【００２０】
ここで、乳酸菌の共棲培養について説明する。
共棲培養は、２種以上の乳酸菌を共棲培養する１次培養工程を含む方法で行うのが好ましい。より具体的には、１種又は２種以上の乳酸菌からなるグループを、第１グループから第ｋグループまでｋ個（ｋは２以上の整数であり、好ましくは６〜４８の整数、より好ましくは１２〜３６の整数、特に好ましくは２４である）作成し、そのグループごとに培養を行い、第１の乳酸菌培養物から第ｋの乳酸菌培養物までの合計ｋ個の乳酸菌培養物を得る予備培養工程と、第１の乳酸菌培養物から第ｋの乳酸菌培養物まで順番に隣り合う番号の乳酸菌培養物を２つずつ混合してｋ／２個（例えば、ｋ＝２４の場合は１２個）の１次培養用乳酸菌混合物を得て、それぞれを共棲培養する１次培養工程とを含む方法が挙げられる。
【００２１】
第１グループから第ｋグループまでの各グループにおいては、１次培養の際に共棲可能となるような１種又は２種以上の乳酸菌をそれぞれ選択すればよい。また、１つのグループに２種以上の乳酸菌を包含させる場合には、予備培養工程において継代培養したときでも、２種以上の乳酸菌の共棲状態が維持されるように選択すればよい。なお、共棲状態が維持されるとは、２種以上の乳酸菌が同時に存在し、それぞれ活性が維持されることをいう。なお、同種の乳酸菌が異なるグループに含まれていてもよい。
【００２２】
例えば、ｋ＝２４の場合における第１グループから第ｋグループまでの乳酸菌の組み合わせとしては、
第１〜４グループが、それぞれ、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌及びエンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループであり、
第５〜８グループのうち、２つのグループが、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌及びエンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループであり、残りの２つは、ビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌のみで構成されるもの、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌のみで構成されるものであり、
第９〜１２グループのうち、２つのグループが、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌及びエンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループであり、残りの２つのグループは、いずれも、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌のみで構成されるものであり、
第１３〜１６グループのうち、２つは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌のみで構成されるものであり、残りの２つのグループは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌、及びビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループと、ストレプトコッカス（Streptococcus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌、及びビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループであり、
第１７〜２０グループのうち、２つのグループが、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌及びストレプトコッカス（Streptococcus）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループであり、残りの２つのグループは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌、エンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌及びラクトコッカス（Lactococcus）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループと、ラクトコッカス（Lactococcus）属に属する乳酸菌のみで構成されるものであり、
第２１〜２４グループのうち、２つは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌のみで構成されるものであり、１つは、ビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する乳酸菌のみで構成されるものであり、残りの１つのグループは、ラクトバチルス（Lactobacillus）属に属する乳酸菌及びエンテロコッカス（Enterococcus）属に属する乳酸菌の組み合わせで構成されるグループである組み合わせが挙げられる。
【００２３】
予備培養工程及び１次培養工程における各培養は、好気条件下で行っても嫌気条件下で行ってもよいが、好気条件下で静置培養することが好ましい。また、培養に用いる培地は、乳酸菌の種類に応じて選択すればよいが、寒天含有培地が好ましい。市販品としては、日水製薬株式会社製ＧＡＭ半流動高層培地、日水製薬株式会社製ＢＬ寒天培地、日水製薬株式会社製変法ＧＡＭ寒天培地等が挙げられる。
また、予備培養工程及び１次培養工程における乳酸菌の添加量は、乳酸菌１種ごとに、培地に対して、好ましくは１〜１０％（ｗ／ｗ）である。
また、予備培養工程及び１次培養工程における各培養の培養温度は、通常３０〜４５℃であり、培養時間は通常３〜７２時間であるが、１次培養工程は、ｐＨが４．４〜４．８の範囲になるまで行うのが好ましい。
【００２４】
次に、豆乳の乳酸菌発酵処理について詳細に説明する。
豆乳に乳酸菌を接種する方法としては、例えば、豆乳に乳酸菌を添加して静置する方法、豆乳と乳酸菌を混合する方法、乳酸菌を適当な培地で培養した培養液と豆乳とを接触させる方法、豆乳を添加した適当な培地で乳酸菌を培養する方法等が挙げられる。
【００２５】
豆乳の乳酸菌発酵処理としては、２種以上の乳酸菌による共棲発酵処理（具体的には、上記の乳酸菌の共棲培養で得られた共棲培養物を用いた発酵処理）が好ましい。
ここで、第１の乳酸菌培養物から第ｋの乳酸菌培養物まで順番に隣り合う番号の乳酸菌培養物を２つずつ混合してｋ／２個の１次培養用乳酸菌混合物を得て、それぞれを共棲培養する上記の１次培養工程を行った場合には、第１、２グループの乳酸菌を含む第１の１次培養物から第ｋ−１、ｋグループ（例えば、ｋ＝２４の場合は第２３、２４グループ）の乳酸菌を含む第ｋ／２の１次培養物まで、順番に隣り合う１次培養物を２つずつ組み合わせて、この組み合わせたものを豆乳に含有せしめて発酵処理（２次培養）をすることが好ましい。
また、上記２次培養を行なう場合、２次培養で得られるｋ／４個（例えば、ｋ＝２４の場合は６個）の２次培養物の全てを組み合わせて、これを豆乳に含有せしめて発酵処理（３次培養）を更に行うことが好ましい。
【００２６】
２次培養、３次培養における各培養は、好気条件下で行っても嫌気条件下で行ってもよいが、好気条件下で静置培養することが好ましい。
また、２次培養、３次培養のいずれにおいても、豆乳に、必要に応じて、ブドウ糖、グルコース等の糖類；酵母エキス、ペプトン等の窒素源等を含有せしめてもよい。
２次培養においては、各１次培養物を培地ごと豆乳に含有せしめることができる。１次培養物の添加量は、１次培養物１種ごとに、豆乳に対して、好ましくは１〜１０％（ｗ／ｗ）である。３次培養においても、各２次培養物を培地ごと豆乳に含有せしめることができる。２次培養物の添加量は、２次培養物１種ごとに、豆乳に対して、好ましくは１〜１０％（ｗ／ｗ）である。
【００２７】
２次培養の培養温度は、通常３０〜４５℃であり、培養時間は通常３〜４８時間であるが、２次培養工程は、ｐＨが４．４〜４．８の範囲になるまで行うのが好ましい。
３次培養の培養温度は、通常３０〜４５℃であり、培養時間は通常１０時間〜１週間であるが、３段階に温度を変化させて培養するのが好ましい。具体的には、３０〜３７℃で１２〜３６時間培養した後、３８〜４５℃で２４〜７２時間培養し、更に３０〜３７℃で１２〜９６時間培養する方法が挙げられる。
【００２８】
また、上記のようにして得られる豆乳の乳酸菌発酵処理物は、アクアポリン発現促進剤、角化マーカー発現促進剤としてそのまま用いることができるが、殺菌（例えば、６０〜９０℃で１５〜６０分間行う加熱殺菌）、遠心分離による不溶物の除去及び上清の回収、ろ過による菌体等の除去及びろ液の回収、凍結乾燥や噴霧乾燥等の乾燥処理、脂質抽出による脂質分の回収、クロマトグラフィー等を必要に応じて適宜選択して行ったものを用いてもよい。
【００２９】
そして、後記実施例に示すように、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、優れたアクアポリン発現促進効果を有する。アクアポリンとしては、アクアポリン１、アクアポリン３、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン６、アクアポリン８、アクアポリン９、アクアポリン１０及びアクアポリン１１から選ばれる１種又は２種以上のアクアポリンが挙げられる。上記の有効成分の中でも、豆乳の乳酸菌発酵処理物は、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン６及びアクアポリン８から選ばれる１種又は２種以上のアクアポリンの発現を促進する効果にも優れ、広範な種類のアクアポリンの発現を促進することができる。
したがって、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、皮膚の他、口腔内や鼻粘膜、眼、腎臓、肺、大腸、小腸、脳内等の体内に存在するアクアポリンの発現を促進でき、皮膚保湿の維持、強化等に特に有用である。また、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、アクアポリン発現促進剤となり得、アクアポリン発現促進のために使用することができる。アクアポリン発現促進剤は、アクアポリン発現促進に有効な医薬品、化粧品若しくは食品として、又は医薬品、化粧品若しくは食品に配合する素材として使用可能である。
【００３０】
また、後記実施例に示すように、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、優れた角化マーカー発現促進効果を有し、フィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ及びケラチンから選ばれる１種又は２種以上の角化マーカーの発現を促進するのにより適し、フィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ−１、トランスグルタミナーゼ−３、ケラチン−１及びケラチン−１０から選ばれる１種又は２種以上の角化マーカーの発現を促進するのに特に適する。
したがって、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、皮膚等の体内に存在する角化マーカーの発現を促進でき、表皮角化の調節、皮膚防御機能の維持、強化に有用である。また、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、角化マーカー発現促進剤となり得、角化マーカー発現促進のために使用することができる。角化マーカー発現促進剤は、角化マーカー発現促進に有効な医薬品、化粧品若しくは食品として、又は医薬品、化粧品若しくは食品に配合する素材として使用可能である。
【００３１】
なお、食品は、アクアポリン発現促進や角化マーカー発現促進をコンセプトとし、その旨を表示した保健機能食品、例えば機能性表示食品、特定保健用食品、栄養機能食品等とすることが可能である。具体的な形態としては、皮膚保湿の維持、強化等を目的とした清涼飲料水、カプセル剤、錠剤、ゼリー、顆粒剤、パン、麺類、菓子、調味料などが挙げられ、また、液体や粉末の形でサプリメントや食品へ添加する素材とすることも可能である。なお、老人性乾皮症やアトピー性皮膚炎の患者で皮膚保湿の強化を求める人々にとっては、症状改善の補助食品となる可能性がある。
【００３２】
本発明のアクアポリン発現促進剤、角化マーカー発現促進剤の適用手段は、経口、注射、皮膚外用等のいずれでもよいが、経口又は皮膚外用が好ましく、皮膚外用がより好ましい。
本発明のアクアポリン発現促進剤、角化マーカー発現促進剤を経口投与する場合、その剤形としては、錠剤、顆粒剤、カプセル剤等の固形製剤；半固形製剤；液状製剤等が挙げられる。医薬品、食品のいずれの場合においても、これらの剤形にしてよい。また、経口投与用組成物とする場合には、上記の有効成分に加えて、賦形剤、崩壊剤、結合剤、滑沢剤等の添加剤を含有せしめることができる。
本発明のアクアポリン発現促進剤、角化マーカー発現促進剤を皮膚外用剤とする場合、その剤形としては、軟膏剤、クリーム剤、乳液、ゲル剤、ペースト剤、ローション等が挙げられる。これらの皮膚外用剤とする場合には、上記の有効成分に加えて、通常の外用剤において基材や添加剤として用いられる各種成分を含有せしめることができる。例えば、天然動植物油脂、半合成油脂、炭化水素油、高級脂肪酸、高級アルコール、エステル油、シリコーン油、フッ素系油剤等の固体、半固体又は液状の油剤；水；低級アルコール、糖アルコール、ステロール等のアルコール類；アラビアゴム、トラガカント等の植物系高分子；キサンタンガム、デキストラン等の微生物系高分子；カルボキシメチルデンプン等のデンプン系高分子；カルボキシメチルセルロースナトリウム等のセルロース系高分子；各種アニオン性、カチオン性、ノニオン性、両性界面活性剤等の界面活性剤；金属セッケン、デキストリン脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステル等の油溶性ゲル化剤；酸化チタン、炭酸マグネシウム、雲母、ヒドロキシアパタイト等の無機粉体；ポリアミドパウダー等の有機粉体；有色顔料；パール顔料；保湿剤；防腐剤；ｐＨ調整剤；キレート剤；清涼剤；抗炎症剤；美白剤、細胞賦活剤、血行促進剤等の美肌成分等を使用することができる。
【００３３】
本発明のアクアポリン発現促進剤中、豆乳の乳酸菌発酵処理物及びトリリノレインから選ばれる１種以上の含有量としては、０．１〜８０質量％が好ましく、０．１〜５０質量％がより好ましく、０．１〜３０質量％が特に好ましい。
本発明の角化マーカー発現促進剤中、豆乳の乳酸菌発酵処理物及びトリリノレインから選ばれる１種以上の含有量としては、０．１〜８０質量％が好ましく、０．１〜５０質量％がより好ましく、０．１〜３０質量％が特に好ましい。
【００３４】
本発明のアクアポリン発現促進剤は、豆乳の乳酸菌発酵処理物及びトリリノレインから選ばれる１種以上として、成人一日あたり、１０ｍｇ〜５ｇを摂取又は塗布することが好ましい。
本発明の角化マーカー発現促進剤は、豆乳の乳酸菌発酵処理物及びトリリノレインから選ばれる１種以上として、成人一日あたり、１０ｍｇ〜５ｇを摂取又は塗布することが好ましい。
【実施例】
【００３５】
以下、実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
【００３６】
〔調製例１〕
Ｌ．アシドフィラス（Lactobacillus acidophilus）、Ｌ．ブレビス（Lactobacillus brevis）、Ｌ．ジェンセニイ（Lactobacillus jensenii）、Ｌ．パラカゼイ（Lactobacillus paracasei subsp． paracasei）、Ｌ．ガセリー（Lactobacillus gasseri）、Ｌ．ブルガリクス（Lactobacillus delbrueckii subsp．bulgaricus）、Ｌ．ヘルベティカス（Lactobacillus helveticus）、Ｌ．カゼイ（Lactobacillus casei subsp． casei）、Ｌ．ラモナウサス（Lactobacillus rhamnosus）、Ｌ．デルブリッキィ（Lactobacillus delbrueckii subsp． delbrueckii）、Ｓ．サーモフィラス（Streptococcus thermophilus）、Ｅ．フェシウム（Enterococcus faecium）、Ｌ．ラクチス（Lactococcus lactis）、Ｂ．ロンガム（Bifidobacterium longum）、Ｂ．ビフィダム（Bifidobacterium bifidum）、Ｂ．アドレセンティス（Bifidobacterium adolescentis）の１６種の乳酸菌の食品用市販品を準備して、図１に示すように、これらの１６種の乳酸菌でＮｏ．１〜Ｎｏ．２４の２４グループを作成し、各グループの菌種について継代培養を行なった後、１次〜３次培養を行い、最終培養液を滅菌することで、豆乳の乳酸菌発酵処理物を調製した。この発酵処理物を「乳酸菌生産物質１」とも称する。具体的な手順を以下に示す。なお、図１は、上記グループ作成プロセスから３次培養プロセスまでの各プロセスを示した図である。また、図１中の「Ｎｏ．」はグループ番号である。
【００３７】
グループＮｏ．１  ：  Ｅ．フェシウム及びＬ．ヘルベティカス
グループＮｏ．２  ：  Ｅ．フェシウム及びＬ．アシドフィラス
グループＮｏ．３  ：  Ｅ．フェシウム及びＬ．ガセリー
グループＮｏ．４  ：  Ｅ．フェシウム、Ｌ．アシドフィラス及びＬ．ブレビス
【００３８】
グループＮｏ．５  ：  Ｅ．フェシウム、Ｌ．アシドフィラス及びＬ．ブレビス
グループＮｏ．６  ：  Ｅ．フェシウム、Ｌ．アシドフィラス、Ｌ．ブレビス及びＬ．パラカゼイ
グループＮｏ．７  ：  Ｂ．アドレセンティス単体
グループＮｏ．８  ：  Ｌ．デルブリッキィ及びＬ．ガセリー
【００３９】
グループＮｏ．９  ：  Ｌ．デルブリッキィ単体
グループＮｏ．１０  ：  Ｅ．フェシウム、Ｌ．ジェンセニイ、Ｌ．パラカゼイ及びＬ．ブレビス
グループＮｏ．１１  ：  Ｌ．アシドフィラス単体
グループＮｏ．１２  ：  Ｅ．フェシウム及びＬ．ガセリー
【００４０】
グループＮｏ．１３  ：  Ｌ．パラカゼイ単体
グループＮｏ．１４  ：  Ｌ．ガセリー、Ｅ．フェシウム及びＢ．ビフィダム
グループＮｏ．１５  ：  Ｂ．ロンガム、Ｓ．サーモフィラス及びＥ．フェシウム
グループＮｏ．１６  ：  Ｌ．ガセリー単体
【００４１】
グループＮｏ．１７  ：  Ｌ．ブルガリクス及びＳ．サーモフィラス
グループＮｏ．１８  ：  Ｌ．ガセリー、Ｌ．ラクチス及びＥ．フェシウム
グループＮｏ．１９  ：  Ｌ．ガセリー、Ｓ．サーモフィラス及びＬ．ブルガリクス
グループＮｏ．２０  ：  Ｌ．ラクチス単体
【００４２】
グループＮｏ．２１  ：  Ｌ．ガセリー及びＥ．フェシウム
グループＮｏ．２２  ：  Ｌ．ラモナウサス単体
グループＮｏ．２３  ：  Ｌ．カゼイ単体
グループＮｏ．２４  ：  Ｂ．ロンガム単体
【００４３】
（継代培養）
培地１０ｍＬに、グループＮｏ．１の各乳酸菌を１白金耳ずつ播種し、３２℃で１２時間培養した。次に、継代して３７℃で１２時間培養し、さらに再度継代して４０℃で２４時間培養した後、その培養液を５℃で冷蔵保存しておいた。
また、グループＮｏ．２〜Ｎｏ．２４の乳酸菌についても、上記と同様にして継代培養を行なった。
なお、培地は、日水製薬株式会社製ＧＡＭ半流動高層培地、日水製薬株式会社製ＢＬ寒天培地、日水製薬株式会社製変法ＧＡＭ寒天培地の３種類を、各グループの乳酸菌に応じて使い分けた。
【００４４】
このようにして継代培養することで得られた各グループの培養液について同定試験を行った。同定試験は、日本食品分析センターに依頼した。すなわち、各グループの検体を寒天平板培地に直接接種・培養し、優勢に生育した形状の異なる集落を釣菌してグループ毎に乳酸菌を分離し、この分離菌について形態観察、生理的性状試験及び菌体内ＤＮＡのＧＣ含有量の測定を行い、以下の文献を参考に同定を行った。
同定の結果、Ｂ．ロンガム以外に合計３４種類の菌株が特定されるとともに、それらが各グループ内で共棲状態を維持していることが確認された。
【００４５】
１．Sneath,P．H．A., Mair,N．S., Sharpe,M．Ｅ． and Holt,J．G． ： "Bergey's Manual of Systematic Bacteriology" Vol．2, （1986） Williams & Wilkins．
２．Holt,J．G., Krieg,N．R., Sneath,P．H．A., Staley,J．T． and Williams,S．T． ： "Bergey's Manual of Determinative Bacteriology"Ninth Edition（1994）Williams & Wilkins．
３．光岡知足：“腸内菌の世界”,（1984）叢文社．
４．辨野義巳：微生物6,3-14（1990）．
５．厚生省生活衛生局監修：“食品衛生検査指針-微生物編-”（1990）日本食品衛生協会．
６．Schleifer,K．H． and Kilpper-Balz,R. : Int.J.Syst.Bacteriol.,34,31-34（1984）．
【００４６】
（１次培養）
次に、図１に示す１次培養（１）〜（１２）の共棲培養を行なった。
すなわち、１次培養用培地５０ｍＬに、上記継代培養で得られた培養液を表１に示す条件で添加し、１次培養用培地のｐＨ値が４．６になるまで３７℃で約６〜１２時間培養した。
なお、１次培養用培地は、日水製薬株式会社製ＧＡＭ半流動高層培地、日水製薬株式会社製ＢＬ寒天培地、日水製薬株式会社製変法ＧＡＭ寒天培地の３種類を、継代培養で得られた培養液に含まれる乳酸菌に応じて使い分けた。
【００４７】
【表１】
2020203871.tif 000002
【００４８】
（２次培養）
次に、図１に示す２次培養（１３）〜（１８）の共棲培養を行なった。
すなわち、豆乳１６００ｍＬにブドウ糖０．５％（ｗ／ｗ）、酵母エキス０．４％（ｗ／ｗ）を添加することで、２次培養用培地を調製し、この２次培養用培地に、上記１次培養プロセスが終了した乳酸菌を表２に示す条件で１次培養用培地ごと投入し、ｐＨ値が４．５５になるまで３７℃で約６〜１０時間培養した。
【００４９】
【表２】
2020203871.tif 000003
【００５０】
（３次培養）
次に、図１に示す３次培養（１９）の共棲培養を行なった。
すなわち、豆乳１０００Ｌにブドウ糖０．５％（ｗ／ｗ）、酵母エキス０．４％（ｗ／ｗ）を添加することで、３次培養用培地を調製し、この３次培養用培地に、上記２次培養プロセスが終了した全ての乳酸菌を２次培養用培地ごと投入した。なお、２次培養（１３）〜（１８）で得た培養液は、それぞれ約１７２０ｍＬ使用した。
そして、３２℃で２４時間、次に４０℃で４８時間、さらに３７℃で４８時間の条件で培養を行なった。
上記の３次培養プロセスで得られた乳酸菌と培地とを含む最終培養液を、８５℃以上で１５分間加熱して滅菌することで、乳酸菌生産物質１（ヨーグルト様物質）を得た。
【００５１】
〔調製例２〕
調製例１で得た乳酸菌生産物質１を遠心分離（１００００ｒｐｍ，４℃，１０分間）し、得られた上清（淡黄色液体、ｐＨ＝約３．８）を回収した。この上清を「乳酸菌生産物質２」とも称する。
【００５２】
〔調製例３〕
調製例１で得た乳酸菌生産物質１を凍結乾燥し粉末化した。この凍結粉末１５ｇを、ジエチルエーテル２００ｍＬに懸濁させ、２０分間超音波処理し、濾過（ＡＤＶＡＮＴＥＣ  ５Ｃ，１５０ｍｍ）し濾液を集めた。また、濾過で生じた残渣に対して上記と同じ処理を行い、この濾液を前記の濾液と合わせロータリーエバポレーターで濃縮し、脂質を得た。収量は２．７ｇだった。
次に、得られた脂質１．５ｇをオープンカラムクロマトグラフィー法にて以下の条件で分画した。展開液を１２ｍＬずつフラクションに分けていき、１番目のフラクションを「フラクション１」とし、２番目のフラクションを「フラクション２」とした。
（分画条件）
カラム容器：アズワン製クロマトグラフ管（内径３ｃｍ）
担体：ワコーゲル  ６０Ｎ，６３〜２１２μｍ（充填高さ２０ｃｍ）
展開溶媒：ヘキサン９５質量部とエタノール５質量部との混液  ６００ｍＬ
【００５３】
〔試験例１−１〕
１２ウェルのプレート１ウェルに培地（ＨｕＭｅｄｉａ−ＫＧ２）を０．８ｍＬ添加し、正常ヒト表皮角化細胞（新生児由来）を５×１０5個播種した後、３日間培養（３７℃、９５％Ａｉｒ、５％ＣＯ2）して７０〜８０％コンフルエントにした。その後、乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１又はフラクション２を０．１％（ｗ／ｗ）加えて培養した。なお、乳酸菌生産物質１を添加した培地の培養時間は７２時間、乳酸菌生産物質２を添加した培地の培養時間は４８時間、フラクション１を添加した培地の培養時間は７２時間、フラクション２を添加した培地の培養時間は２４時間である。
その後、上清を捨てて、細胞を完全に溶解させた。全ＲＮＡを抽出し、ＲＮＡを逆転写してｃＤＮＡを作製し、定量リアルタイムＰＣＲを用いてアクアポリン−１の遺伝子発現量を検出した（ｎ＝５）。結果を図２−１〜図２−４に示す（なお、各図中のコントロールはサンプル未添加群である）。
【００５４】
〔試験例１−２〕
乳酸菌生産物質２又はフラクション１を０．５％（ｗ／ｗ）加えて２４時間又は７２時間培養したときのアクアポリン−１０の遺伝子発現量を、試験例１−１に記載の手法に準じて検出した（ｎ＝５）。結果を図３−１〜図３−２に示す（なお、各図中のコントロールはサンプル未添加群である）。
乳酸菌生産物質２又はフラクション１を０．１％（ｗ／ｗ）加えて７２時間培養したときのアクアポリン−１１の遺伝子発現量を、試験例１−１に記載の手法に準じて検出した（ｎ＝５）。結果を図４−１〜図４−２に示す（なお、各図中のコントロールはサンプル未添加群である）。
【００５５】
〔試験例１−３〕
１２ウェルのプレート１ウェルに培地（ＨｕＭｅｄｉａ−ＫＧ２）を０．８ｍＬ添加し、正常ヒト表皮角化細胞（新生児由来）を５×１０5個播種した後、３日間培養（３７℃、９５％Ａｉｒ、５％ＣＯ2）して７０〜８０％コンフルエントにした。その後、乳酸菌生産物質１、フラクション１又はトリリノレイン（東京化成製標準品）を、０．０２％（ｗ／ｗ）、０．１％（ｗ／ｗ）又は０．５％（ｗ／ｗ）加えて７２時間培養した。
その後、上清を捨てて、細胞を完全に溶解させた。１００℃でタンパク質を変性させた後、ポリアクリルアミドゲルで電気泳動を行うことでタンパク質を分離させ、膜（メンブレン）に転写した。イムノブロック（ケー・エー・シー社製）を用いてブロッキングした後、一次抗体（ｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  １）を加えて４℃で一晩インキュベートした。次いで、洗浄した後、二次抗体（ｇｏａｔ  ａｎｔｉ−ｒａｂｂｉｔ  ＩｇＧ）を加えて室温で１時間インキュベートした。洗浄した後、発光・発色基質（Ｌｕｍｉｎａｔａ  Ｆｏｒｔｅ（Ｍｅｒｃｋ社製））を加えてインキュベートした後、化学発光検出装置（Ｆｕｊｉｆｉｌｍ製ＬＡＳ４００）を用いてシグナルを検出した。なお、ポリアクリルアミドゲルへの試料のロード量が均一であることは、一次抗体として抗β−アクチン抗体を用いた同様の実験で検証した。
その後、Ｆｕｊｉｆｉｌｍ製ＬＡＳ４００を用いてアクアポリン−１発現量を定量化した。
アクアポリン−１発現量の測定結果を図５−１、図５−２に示す。なお、図５−２中のＬＡＢＭ１は、乳酸菌生産物質１を意味する（以下同じ）。
【００５６】
〔試験例１−４〕
乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、フラクション２又はトリリノレイン（東京化成製標準品）を加えて４８時間又は７２時間培養したときのアクアポリン−３発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定及び定量化した。なお、一次抗体にはｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  ３を使用した。
アクアポリン−３発現量の測定結果を図５−３、図５−４に示す。
【００５７】
〔試験例１−５〕
フラクション１を加えて７２時間培養したときのアクアポリン−４発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定した。なお、一次抗体にはｍｏｕｓｅ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  ４を使用した。
アクアポリン−４発現量の測定結果を図５−５に示す。
【００５８】
〔試験例１−６〕
乳酸菌生産物質２を加えて２４時間培養したときのアクアポリン−５発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定及び定量化した。なお、一次抗体にはｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  ５を使用した。
アクアポリン−５発現量の測定結果を図５−６、図５−７に示す。なお、図５−７中のＬＡＢＭ２は、乳酸菌生産物質２を意味する（以下同じ）。
【００５９】
〔試験例１−７〕
乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２又はフラクション２を加えて７２時間培養したときのアクアポリン−６発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定及び定量化した。なお、一次抗体にはｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  ６を使用した。
アクアポリン−６発現量の測定結果を図５−８、図５−９に示す。
【００６０】
〔試験例１−８〕
フラクション２を加えて７２時間培養したときのアクアポリン−８発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定した。なお、一次抗体にはｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  ８を使用した。
アクアポリン−８発現量の測定結果を図５−１０に示す。
【００６１】
〔試験例１−９〕
乳酸菌生産物質１、フラクション１、フラクション２又はトリリノレイン（東京化成製標準品）を加えて２４時間又は４８時間培養したときのアクアポリン−９発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定及び定量化した。なお、一次抗体にはｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  ９を使用した。
アクアポリン−９発現量の測定結果を図５−１１、図５−１２に示す。
【００６２】
〔試験例１−１０〕
乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１又はトリリノレイン（東京化成製標準品）を加えて７２時間培養したときのアクアポリン−１０発現量を、試験例１−３に記載の手法に準じて測定及び定量化した。なお、一次抗体にはｒａｂｂｉｔ  ａｎｔｉ−ａｑｕａｐｏｒｉｎ  １０を使用した。
アクアポリン−１０発現量の測定結果を図５−１３、図５−１４に示す。
【００６３】
図２−１〜図５−１４に示すとおり、豆乳の乳酸菌発酵処理物（乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、フラクション２）及びトリリノレインは、優れたアクアポリン発現促進効果を有することがわかった。特に、豆乳の乳酸菌発酵処理物は、広範な種類のアクアポリンの発現を促進した。
【００６４】
〔試験例２〕
１２ウェルのプレート１ウェルに培地（ＨｕＭｅｄｉａ−ＫＧ２）を０．８ｍＬ添加し、正常ヒト表皮角化細胞（新生児由来）を５×１０5個播種した後、３日間培養（３７℃、９５％Ａｉｒ、５％ＣＯ2）して７０〜８０％コンフルエントにした。その後、乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、フラクション２又はトリリノレイン（東京化成製標準品）を０．０２％（ｗ／ｗ）、０．１％（ｗ／ｗ）又は０．５％（ｗ／ｗ）加えて４８時間又は７２時間で培養した。その後、上清を捨てて、細胞を完全に溶解させた。全ＲＮＡを抽出し、ＲＮＡを逆転写してｃＤＮＡを作製し、定量リアルタイムＰＣＲを用いてフィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ−１、トランスグルタミナーゼ−３、ケラチン−１及びケラチン−１０の遺伝子発現量を検出した（ｎ＝５）。結果を図６−１〜図１０−２に示す（なお、各図中のコントロールはサンプル未添加群である）。
【００６５】
図６−１〜図１０−２に示すとおり、乳酸菌生産物質１、乳酸菌生産物質２、フラクション１、フラクション２及びトリリノレインは、フィラグリン、インボルクリン、ロリクリン、トランスグルタミナーゼ−１、トランスグルタミナーゼ−３、ケラチン−１及びケラチン−１０の発現を促進した。
図６−１〜図１０−２の結果から、豆乳の乳酸菌発酵処理物、トリリノレインは、優れた角化マーカー発現促進効果を有することがわかった。
【図１】
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【図２−１】
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【図２−２】
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【図２−３】
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【図２−４】
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【図３−１】
2020203871.tif 000009
【図３−２】
2020203871.tif 000010
【図４−１】
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【図４−２】
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【図５−１】
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【図５−２】
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【図５−３】
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【図５−４】
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【図５−５】
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【図５−６】
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【図５−７】
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【図５−８】
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【図５−９】
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【図５−１０】
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【図５−１１】
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【図５−１２】
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【図５−１３】
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【図５−１４】
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【図６−１】
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【図６−２】
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【図７−１】
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【図７−２】
2020203871.tif 000030
【図８−１】
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【図８−２】
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【図９−１】
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【図９−２】
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【図１０−１】
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【図１０−２】
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