(57)【要約】  以下の工程（１）および（２）含む糖液の製造方法によれば、セルロース含有バイオマスを加水分解して糖液を製造する際に加水分解で使用するセルラーゼの使用量を削減することができる。工程（１）：セルロース前処理物に水溶性無機塩を最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲になるように添加したものを糸状菌由来セルラーゼにより加水分解を行う工程、工程（２）：前記加水分解物を固液分離し、得られた溶液成分を限外濾過膜に通じてろ過し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収し、透過液として糖液を得る工程。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の工程（１）および（２）含む、糖液の製造方法。
工程（１）：セルロース前処理物に水溶性無機塩を最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲になるように添加したものを糸状菌由来セルラーゼにより加水分解を行う工程、
工程（２）：前記加水分解物を固液分離し、得られた溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収し、透過液として糖液を得る工程。
【請求項２】
工程（１）の水溶性無機塩が、ナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩およびアンモニウム塩からなる群から選ばれる１種類以上である、請求項１に記載の糖液の製造方法。
【請求項３】
工程（１）の水溶性無機塩が、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸ナトリウム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カルシウムおよび硫酸アンモニウムからなる群から選ばれる１種類以上である、請求項１または２に記載の糖液の製造方法。
【請求項４】
工程（１）のセルロース前処理物が、水熱処理、希硫酸処理およびアルカリ処理の群から選ばれる１以上の処理物である、請求項１から３のいずれかに記載の糖液の製造方法。
【請求項５】
糸状菌由来セルラーゼがトリコデルマ由来セルラーゼである、請求項１から４のいずれかに記載の糖液の製造方法。
【請求項６】
さらに工程（２）の糖液をナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過し、透過液として発酵阻害物質を除去し、非透過液として糖濃縮液を得る工程を含む、請求項１から５のいずれかに記載の糖液の製造方法。
【請求項７】
さらに工程（２）の糖液をナノ濾過膜に通じて濾過して得られる透過液を逆浸透膜に通じて濾過し、非透過液として得られる無機塩濃縮液を工程（１）の水溶性無機塩として再利用する工程を含む、請求項６に記載の糖液の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、セルロース含有バイオマスから糖液を製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、セルロース含有バイオマスを酸、熱水、アルカリなどで前処理した後、セルラーゼを添加し加水分解することで糖液を製造する方法が広く検討されている。しかしながら、こうしたセルラーゼを使用する糖液の製造方法の欠点として、セルラーゼの使用量が多く、かつセルラーゼの価格も高いため、糖液製造コストが増大するという課題がある。【０００３】
本課題を解決する手法として、セルロース加水分解に使用したセルラーゼを回収再利用する方法が提案されている。例えば、スピンフィルターによる連続固液分離を行い、得られた糖液を限外濾過膜に通じて濾過し、セルラーゼを回収する方法（特許文献１）、酵素糖化の段階において界面活性剤を投入することでセルラーゼ吸着を抑制し回収効率を向上させる方法（特許文献２）、酵素糖化後の残さを通電処理することでセルラーゼ成分を回収する方法（特許文献３）などが知られているが根本的な課題解決には至っていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２００６−８７３１９号公報
【特許文献２】特開昭６３−８７９９４号公報
【特許文献３】特開２００８−２０６４８４号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明の解決しようとする課題は、前述の通りセルロース含有バイオマスから糖液を製造する際のセルロースの加水分解におけるセルラーゼの使用量を削減することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者は、上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、セルロース加水分解物に水溶性無機塩を最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲で添加することによって、セルロース加水分解物に含まれるセルラーゼの回収量を向上できることを見出し、本発明を完成するに至った。【０００７】
すなわち、本発明は以下の［１］〜［７］の構成を有する。
［１］以下の工程（１）および（２）含む、糖液の製造方法。
工程（１）：セルロース前処理物に水溶性無機塩を最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲になるように添加したものを糸状菌由来セルラーゼにより加水分解を行う工程、
工程（２）：前記加水分解物を固液分離し、得られた溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過し、非透過液として糸状菌由来セルラーゼを回収し、透過液として糖液を得る工程。
［２］工程（１）の水溶性無機塩が、ナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩およびアンモニウム塩からなる群から選ばれる１種類以上である、［１］に記載の糖液の製造方法。
［３］工程（１）の水溶性無機塩が、塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸ナトリウム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カルシウムおよび硫酸アンモニウムからなる群から選ばれる１種類以上である、［１］または［２］に記載の糖液の製造方法。
［４］工程（１）のセルロース前処理物が、水熱処理、希硫酸処理およびアルカリ処理の群から選ばれる１以上の処理物である、［１］から［３］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［５］糸状菌由来セルラーゼがトリコデルマ由来セルラーゼである、［１］から［４］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［６］さらに工程（２）の糖液をナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過し、透過液として発酵阻害物質を除去し、非透過液として糖濃縮液を得る工程を含む、［１］から［５］のいずれかに記載の糖液の製造方法。
［７］さらに工程（２）の糖液をナノ濾過膜に通じて濾過して得られる透過液を逆浸透膜に通じて濾過し、非透過液として得られる無機塩濃縮液を工程（１）の水溶性無機塩として再利用する工程を含む、［６］に記載の糖液の製造方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明により、セルロース加水分解物からの糸状菌由来セルラーゼの酵素回収率が向上するため、糖液の製造工程に使用されるセルラーゼ使用量を削減できることができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】本発明の工程（１）の実施形態一例を示す概略フローである。バイオマス前処理物に残存するアンモニア、酸に対し、中和剤を添加することで、水溶性無機塩を調製するプロセスフロー概略である。
【図２】本発明の工程（１）の実施形態一例を示す概略フローである。バイオマス前処理物を固液分離し、分離した希硫酸処理液もしくはアンモニア処理液を中和することで、水溶性無機塩を調製するプロセスフロー概略である。
【図３】本発明の糖液の製造方法を実施するための装置構成の一例を示す図面である。
【符号の説明】
【００１０】
１  保温装置
２  加水分解槽
３  投入口
４  攪拌装置
５  水溶性無機塩調製槽
６  加水分解物の投入口
７  プレスろ過
８  コンプレッサー
９  プレス濾過濾液槽
１０  排出ライン
１１  精密濾過膜
１２  ＭＦポンプ
１３  精密濾過膜濾液槽
１４  ＵＦポンプ
１５  限外濾過膜
１６  糖液回収ライン
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明を実施するための形態に関し、工程ごとに詳細に説明する。
【００１２】
［工程（１）］
工程（１）におけるセルロース前処理物とは、セルロース含有バイオマスを加水分解のための前処理を行ったものを指す。セルロース含有バイオマスの具体例としては、バガス、スイッチグラス、ネピアグラス、エリアンサス、コーンストーバー、コーンコブ、稲わら、麦わら、椰子殻などの草本系バイオマス、あるいは樹木、ポプラ、ヤナギ、廃建材などの木質系バイオマス、さらに藻類、海草など水生環境由来のバイオマスのことを指す。こうしたバイオマスには、セルロースおよびヘミセルロース（以下、セルロースとヘミセルロースの総称として「セルロース」という。）の他に芳香族高分子であるリグニンを含有している。すなわち本発明では、糸状菌由来セルラーゼによるバイオマス加水分解効率を向上させるためにセルロース含有バイオマスの前処理を行い、その結果得られたものをセルロース前処理物という。
【００１３】
セルロース含有バイオマスの前処理としては、酸処理、硫酸処理、希硫酸処理、アルカリ処理、水熱処理、亜臨界水処理、微粉砕処理、蒸煮処理、乾燥処理が挙げられるが、アルカリ処理、水熱処理または希硫酸処理は、他手法に比べ酵素糖化効率が優れ酵素使用量が少なくてすむことから、本発明においては水熱処理、希硫酸処理またはアルカリ処理であることが好ましい。
【００１４】
水熱処理は、セルロース含有バイオマスが、０．１〜５０重量％となるよう水を添加後、１００〜４００℃の温度で、１秒〜６０分処理する。こうした温度条件において処理することにより、セルロースの加水分解が起こる。処理回数は特に限定されず該処理を１回以上行えばよい。特に該処理を２回以上行う場合、１回目と２回目以降の処理を異なる条件で実施してもよい。
【００１５】
希硫酸処理は、硫酸の濃度は０．１〜１５重量％であることが好ましく、０．５〜５重量％であることがより好ましい。反応温度は１００〜３００℃の範囲で設定することができ、１２０〜２５０℃で設定することが好ましい。反応時間は１秒〜６０分の範囲で設定することができる。処理回数は特に限定されず前記処理を１回以上行えばよい。特に上記処理を２回以上行う場合、１回目と２回目以降の処理を異なる条件で実施してもよい。希硫酸処理によって得られた加水分解物は、酸を含んでおり、さらにセルラーゼによる加水分解反応を行うため、あるいは発酵原料として使用するために、中和を行う必要がある。
【００１６】
アルカリ処理は、セルロース含有バイオマスに対して、水酸化ナトリウム、水酸化カルシウム、アンモニアから選ばれるアルカリを作用させる方法である。アルカリ処理における、使用するアルカリとして、特にアンモニアが好ましく使用できる。こうしたアンモニア処理は、特開２００８−１６１１２５号公報や特開２００８−５３５６６４号公報に記載の方法の手法で実施することができる。例えば、使用するアンモニア濃度はセルロース含有バイオマスに対して０．１〜１５重量％の範囲で添加し、４〜２００℃、好ましくは９０〜１５０℃で処理する。添加するアンモニアは液体状態、あるいは気体状態のどちらであってもよい。さらに添加する形態は純アンモニアでもアンモニア水溶液の形態でもよい。処理回数は特に限定されず前記処理を１回以上行えばよく、前記処理を２回以上行う場合は、１回目と２回目以降の処理を異なる条件で実施してもよい。なお、アンモニア処理によって得られた処理物は、さらに酵素による加水分解反応を行うため、アンモニアの中和あるいはアンモニアの除去を行う必要がある。中和は、加水分解物より固形分を固液分離により除去したアンモニアに対し行ってもよいし、固形分を含んだままの状態で行ってもよい。中和に使用する酸試薬は特に限定されない。アンモニアの除去は、アンモニア処理物を減圧状態に保つことでアンモニアを気体状態に揮発させて除去することができ、除去したアンモニアは回収・再利用してもよい。
【００１７】
工程（１）では、前述のセルロース前処理物に水溶性無機塩を最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲になるよう添加することを特徴としている。水溶性無機塩の最終濃度が５ｇ／Ｌ未満である場合、後述の工程（２）における糸状菌セルラーゼの回収に効果はなく、一方で、３５ｇ／Ｌを超えると糸状菌セルラーゼそのものの活性が低下し、生成される糖量が減少するため好ましくない。
【００１８】
一般的に塩とは、酸由来のアニオンと、塩基由来のカチオンがイオン結合した化合物のことを指し、特に、「無機塩」とは、「炭素原子を含まない塩」のことを指し、無機酸（鉱酸）由来の塩化物イオン（Ｃｌ−）、硝酸イオン（ＮＯ３−）、燐酸イオン（ＰＯ４３−、Ｈ２ＰＯ４−、ＨＰＯ４２−）、硫酸イオン（ＳＯ４２−）、などと、ナトリウムイオン（Ｎａ＋）、カリウムイオン（Ｋ＋）、アンモニウムイオン（ＮＨ４＋）、カルシウムイオン（Ｃａ２＋）、マグネシウムイオン（Ｍｇ２＋）などがイオン結合した化合物のことを指す。これらの内、「水溶性無機塩」とは、前述した無機塩のうち、水に対する溶解性（水溶性）が少なくとも「５０ｇ／Ｌ」以上である無機塩のことを指す。特に、硫酸カルシウム（石膏）（ＣａＳＯ４）、燐酸カルシウム（ＣａＨＰＯ４、Ｃａ（Ｈ２ＰＯ４）２、Ｃａ３（ＰＯ４）２）に関しては、水溶性が「５０ｇ／Ｌ」未満であるため、水不溶性無機塩に分類され、本発明における水溶性無機塩からは除外される。
【００１９】
水溶性無機塩に対して、有機塩（あるいは水溶性有機塩）が存在する。有機塩とは、カルボン酸など炭素原子を含む酸由来のアニオン(−ＣＯＯ−)と他のカチオンがイオン結合した化合物のことを指し、本発明の無機塩とは区別される。例えば、セルロースの酵素による加水分解において、緩衝液として一般的に使用されている、酢酸塩（酢酸ナトリウムなど）、クエン酸塩（クエン酸ナトリウムなど）は有機塩であり、水溶性無機塩に対して、酵素回収に与える効果も異なる。水溶性無機塩は、有機塩に対して、それぞれの塩が解離した際のイオンサイズ（分子量）も小さく、それにより後述の工程（２）での酵素回収率が高くなるものと考えられる。
【００２０】
本発明において使用される水溶性無機塩は特に制限されないが、ナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩およびアンモニウム塩からなる群から選ばれるものが好ましく使用できる。またこれらの内、塩化ナトリウム、硫酸ナトリウム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カリウム、塩化カルシウムおよび硫酸アンモニウムからなる群から選ばれるものは原料価格が安く、かつ高い酵素回収率を得られるためより好ましく使用される。また、特に塩化ナトリウム、塩化カリウムなどの１価の無機塩では、後段のナノ濾過膜処理と組み合わせることによって、必要量以上を除去できるという利点を有し、硫酸アンモニウムでは、ナノ濾過膜により除去されないが、糖液を微生物の発酵原料として用いる場合、微生物生育の窒素源として利用されるため、水溶性無機塩としてさらに好ましく用いられる。なお、添加される水溶性無機塩は、１種類であってもよいし、複数種類であってもよい。その場合、例えば、塩化ナトリウム２．１ｇ／Ｌ、塩化マグネシウム０．２ｇ／Ｌ、硫酸アンモニウム２．７ｇ／Ｌの存在下での加水分解では、合計５ｇ／Ｌ（＝２．１＋０．２＋２．７）の前記無機塩を加水分解に添加したこととなる。
【００２１】
前記水溶性無機塩の添加は、セルロース前処理物に糸状菌由来セルラーゼを添加する前、あるいは糸状菌由来セルラーゼ添加した後のいずれであってもよい。但し、糸状菌由来セルラーゼの添加前に無機塩を添加しておく方が、糸状菌由来セルラーゼによるバイオマス前処理物の加水分解における微生物汚染、およびこれに伴う生成糖収率の減少、など抑制できるため好ましい。
【００２２】
前記水溶性無機塩は、粉体などの固形物、あるいは水溶液のいずれの状態で添加してもよいが、５〜５００ｇ／Ｌ程度の濃縮された無機塩水溶液を予め調製しておき、これを加水分解時に添加する方法が好ましい。無機塩を固体状態で添加すると、局所的に極めて高い無機塩濃度の状態が形成されるため、糸状菌由来セルラーゼの失活を引き起こす可能性があり、また、操業性の観点からも水溶液の方が好ましい。
【００２３】
前記水溶性無機塩の添加量は、水溶性無機塩の最終濃度が５〜３５ｇ／Ｌになるように添加すればよい。セルロース前処理物には、本来のセルロース系バイオマス由来、あるいは前処理由来の無機塩（リン、ナトリウム、カリウムなどの塩）を含んでいる。こうしたセルロース系バイオマスに本来含まれる無機塩などを含む無機物を測定する方法として、灰分含量を測定する手法、具体的には、８１５℃の空気存在下でバイオマス燃焼試験を行い、得られた固体残さの恒量を測定することによって無機物を測定する手法が知られており、該手法で測定されるセルロース系バイオマス由来の灰分は、バイオマス重量対比で概ね３重量％未満の数値である。但し、この灰分の多くは、シリカ（Ｓｉ）であり、これらシリカ系化合物の水溶性は極めて低く、水溶性無機塩とは異なる。セルロース前処理物をセルラーゼにより加水分解する場合、通常、固形物濃度が５０〜２５０ｇ／Ｌの範囲に調製されるが、その場合、仮にバイオマス由来の灰分すべてが水溶性無機塩であると仮定しても、その加水分解時における水溶性無機塩の濃度は、１．５〜３ｇ／Ｌの範囲となる。すなわち、本発明では、通常のセルロース前処理物の加水分解時と比較して、格段に高い水溶性無機塩の最終濃度範囲での加水分解であると言える。
【００２４】
水溶性無機塩の添加量、最終濃度は、イオンクロマトグラフィーを使用して測定すればよい。セルロース前処理物の加水分解反応において、若干の水溶性無機塩濃度の増大がある場合があるが、酵素投入前の水溶性無機塩の最終濃度を測定し、添加量を決定すればよい。
【００２５】
本発明で使用する水溶性無機塩は、試薬の水溶性無機塩があれば好ましいが、海水由来の水溶性無機塩、セルロース含有バイオマスを燃焼させた灰分由来の水溶性無機塩なども代替物として使用することができる。
【００２６】
海水中に含まれる水溶性無機塩は、採取地によって濃度は若干変動することが知られているが、一般的に、塩化ナトリウム２４〜２７ｇ／Ｌ、塩化マグネシウム２．５〜４ｇ／Ｌ、硫酸マグネシウム１〜２．５ｇ／Ｌ、塩化カリウム約０．７ｇ／Ｌ、を組成として含む水溶性無機塩の混合物である。海水のｐＨは、その塩組成により概ね決定され、一般的にはｐＨ８．２〜８．５の範囲にある。したがって、糸状菌由来セルラーゼの加水分解に最適なｐＨに調整した後、水溶性無機塩として海水を使用することができる。特に糸状菌由来セルラーゼとしてトリコデルマ由来セルラーゼを使用する場合、そのｐＨを４〜６の範囲に調整することが好ましく、この範囲外であると酵素の失活がおきることがある。ｐＨ調整には、硫酸、塩酸など一般的な酸を使用すればよく、特に限定されるものではない。
【００２７】
また、セルロース含有バイオマス、その前処理物、あるいは加水分解後に得られる糖化残さなどをボイラー燃焼させた灰分を水溶性無機塩の代替として使用することができる。こうした灰分には、カリウムを多く含み、これを水に溶解させ、ｐＨ調整することで水溶性無機塩の水溶液を調整することができる。灰分を水溶解させた際、ｐＨはアルカリ性となる。これはカリウムが、水酸化カリウムとなるためであり、硫酸、あるいは、塩酸で中和することによって、水溶性無機塩である塩化カリウムあるいは硫酸カリウムが形成される。また、灰分には、水不溶性のシリカを多く含むため、こうした水不溶性の無機物は、濾過など適当な手法で除去することが好ましい。
【００２８】
また、セルロース含有バイオマスの前処理に使用した酸またはアルカリを中和し、中和によって生成した水溶性無機塩を利用することも可能である。例えば、セルロース含有バイオマスの前処理において、水酸化ナトリウム、アンモニアなどの水溶液を使用した場合、前処理後、固液分離をして得られたセルロース前処理物（固体）には、水酸化ナトリウム、アンモニア水溶液が残存する場合がある。こうしたセルロース前処理物（固体）中に残存したアルカリに対して、例えば、硫酸などで中和を行えば、硫酸ナトリウム、あるいは硫酸アンモニウムなどの無機塩を中和にて生成させることができる。すなわち、実際に「添加」した試薬はアルカリであるが、その中和によって必要量の水溶性無機塩が中和によって生成したことになる。このように酸を添加する糸状菌由来セルラーゼによる加水分解の工程によって水溶性無機塩の最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲に調製する場合においても、本発明の「水溶性無機塩を添加する」と言える。同様に、セルロース含有バイオマスの前処理において硫酸を使用した場合、中和にアンモニア、水酸化ナトリウムを使用することで、水溶性無機塩である硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムを生成させることができる（図１）。
【００２９】
また、セルロース含有バイオマスを酸またはアルカリで前処理した後に固液分離し、セルロース前処理物（固体）と溶液成分に分離した溶液成分や、セルロース前処理物（固体）を水などで洗浄して得られた溶液成分を中和して得られた水溶性無機塩を使用してもよい。当然ながら、中和により調製した無機塩を、セルロース前処理物（固体）に最終濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲に調製する場合においても、本発明の「水溶性無機塩を添加する」と言える（図２）。
【００３０】
表１に、前述した中和により水溶性無機塩を生成させる場合の、前処理と中和剤の組み合わせの例をまとめる。
【００３１】
【表１】
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【００３２】
一方、例えば、硫酸処理に対して、水酸化カルシウム（ライム）を中和剤として使用して、硫酸カルシウムを無機塩として生成させたとしても、水酸化カルシウムは水溶性無機塩ではないため、本発明から除外される。
【００３３】
工程（１）における水溶性無機塩の添加は、後述の工程（２）での糸状菌由来セルラーゼ回収率を高めるという効果に加え、加水分解工程における微生物汚染およびこれに伴う糖収率の減少を抑制することができる。加水分解に糸状菌由来セルラーゼを使用した場合の反応温度は、４０〜６０℃の範囲であるが、該温度範囲は処理物に含まれるバチルス属など乳酸菌、高温耐性酵母などの微生物の培養至適温度に相当するため、それら微生物によって、生成糖が消費されてしまう場合がある。本発明では、工程（１）において水溶性無機塩を添加することにより、こうした微生物のコンタミネーションに伴う生成糖の損失を大きく抑制することができる。すなわち、本発明では、水溶性無機塩を添加することによって、酵素回収率を高めるという効果に加え、糖収率が向上するというという別の効果も有する。
【００３４】
前述のセルロース前処理物について、工程（１）では糸状菌由来セルラーゼにより加水分解を行い、加水分解物を得ることを特徴としている。セルロースの加水分解とは、セルロースを低分子量化せしめることを指す。また、セルロースの加水分解においては、キシラン、マンナン、アラビナン、などのヘミセルロース成分も同時に加水分解される。加水分解物に含まれる単糖成分として、グルコース、キシロース、マンノース、ガラクトースなどであり、主な単糖成分は、セルロースの加水分解物であるグルコースである。また加水分解が不十分な場合、セロビオース、キシロビオースなどの２糖、セロオリゴ糖、キシロオリゴ糖などが含まれている。
【００３５】
工程（１）では、セルロース前処理物を糸状菌由来セルラーゼにより加水分解する。糸状菌の具体例としては、トリコデルマ属（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、セルロモナス属（Ｃｅｌｌｕｌｏｍｏｎａｓ）、クロストリジウム属（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ）、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）、フミコラ属（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）、アクレモニウム属（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）、イルペックス属（Ｉｒｐｅｘ）、ムコール属（Ｍｕｃｏｒ）、タラロマイセス属（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）、ファネロカエーテ（Ｐｈａｎｅｒｏｃｈａｅｔｅ）属、白色腐朽菌、褐色腐朽菌、などが挙げられる。本発明では、こうした糸状菌由来セルラーゼの中でも、セルロース分解活性が高いトリコデルマ由来セルラーゼを使用することが好ましい。
【００３６】
トリコデルマ由来セルラーゼとは、トリコデルマ属微生物由来のセルラーゼを主成分とする酵素組成物である。トリコデルマ属微生物は特に限定されないが、具体的にはトリコデルマ・リーセイＱＭ９４１４（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉ  ＱＭ９４１４）、トリコデルマ・リーセイＱＭ９１２３（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉＱＭ９１２３）、トリコデルマ・リーセイＲｕｔＣ−３０（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉＲｕｔ  Ｃ−３０）、トリコデルマ・リーセイＰＣ３−７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉ  ＰＣ３−７）、トリコデルマ・リーセイＡＴＣＣ６８５８９（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉ  ＡＴＣＣ６８５８９）、トリコデルマ・リーセイＣＬ−８４７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉＣＬ−８４７）、トリコデルマ・リーセイＭＣＧ７７（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉ  ＭＣＧ７７）、トリコデルマ・リーセイＭＣＧ８０（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｒｅｅｓｅｉＭＣＧ８０）、トリコデルマ・ビリデＱＭ９１２３（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ  ｖｉｒｉｄｅ９１２３）を例示することができる。また、前述のトリコデルマ属に由来する微生物であって、これらを変異剤あるいは紫外線照射などで変異処理を施し、セルラーゼ生産性が向上した変異株であってもよい。
【００３７】
本発明で使用するトリコデルマ由来セルラーゼは、セロビオハイドラーゼ、エンドグルカナーゼ、エキソグルカナーゼ、βグルコシダーゼ、キシラナーゼ、キシロシダーゼなどの複数の酵素成分を含む、セルロースを加水分解して糖化する活性を有する酵素組成物である。トリコデルマ由来セルラーゼは、セルロース分解において複数の酵素成分の協奏効果あるいは補完効果により効率的なセルロースの加水分解を実施することができる。特に本発明に使用するセルラーゼは、トリコデルマ由来セロビオハイドラーゼおよびキシラナーゼを含むことが好ましい。
【００３８】
セロビオハイドラーゼとは、セルロースの末端部分から加水分解していくことを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．９１としてセロビオハイドラーゼに帰属される酵素群が記載されている。
【００３９】
エンドグルカナーゼとは、セルロース分子鎖の中央部分から加水分解することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．４、ＥＣ３．２．１．６、ＥＣ３．２．１．３９、ＥＣ３．２．１．７３としてエンドグルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
【００４０】
エキソグルカナーゼとは、セルロース分子鎖の末端から加水分解することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．７４、ＥＣ３．２．１．５８としてエキソグルカナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
【００４１】
βグルコシダーゼとは、セロオリゴ糖あるいはセロビオースに作用することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．２１としてβグルコシダーゼに帰属される酵素群が記載されている。
【００４２】
キシラナーゼとは、ヘミセルロースあるいは特にキシランに作用することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．８としてキシラナーゼに帰属される酵素群が記載されている。
【００４３】
キシロシダーゼとは、キシロオリゴ糖に作用することを特徴とするセルラーゼの総称であり、ＥＣ番号：ＥＣ３．２．１．３７としてキシロシダーゼに帰属される酵素群が記載されている。
【００４４】
トリコデルマ由来セルラーゼとしては、粗酵素物が好ましく使用される。粗酵素物は、トリコデルマ属の微生物がセルラーゼを産生するよう調製した培地中で、任意の期間該微生物を培養した培養上清に由来する。使用する培地成分は特に限定されないが、セルラーゼの産生を促進するために、セルロースを添加した培地が一般的に使用できる。そして、粗酵素物として、培養液をそのまま、あるいはトリコデルマ菌体を除去したのみの培養上清が好ましく使用される。
【００４５】
粗酵素物中の各酵素成分の重量比は特に限定されるものではないが、例えば、トリコデルマ・リーセイ由来の培養液には、５０〜９５重量％のセロビオハイドラーゼが含まれており、残りの成分にエンドグルカナーゼ、βグルコシダーゼ等が含まれている。また、トリコデルマ属の微生物は、強力なセルラーゼ成分を培養液中に生産する一方で、βグルコシダーゼに関しては、細胞内あるいは細胞表層に保持しているため培養液中のβグルコシダーゼ活性は低いため、粗酵素物に、さらに異種または同種のβグルコシダーゼを添加してもよい。異種のβグルコシダーゼとしては、アスペルギルス属由来のβグルコシダーゼが好ましく使用できる。アスペルギルス属由来のβグルコシダーゼとして、ノボザイム社より市販されている“Ｎｏｖｏｚｙｍｅ１８８”などを例示することができる。粗酵素物に異種または同種のβグルコシダーゼを添加する方法としては、トリコデルマ属の微生物に遺伝子を導入し、その培養液中に産生されるよう遺伝子組換えされたトリコデルマ属の微生物を培養し、その培養液を単離する方法でもよい。
【００４６】
糸状菌由来セルラーゼの加水分解反応温度は、１５〜１００℃の範囲が好ましく、４０〜６０℃がより好ましく、５０℃が最も好ましい。また、加水分解反応時のｐＨは、ｐＨ３〜９の範囲が好ましく、ｐＨ４〜５．５がより好ましく、ｐＨ５が最も好ましい。ｐＨ調整には、酸あるいはアルカリを目的のｐＨとなるように添加し調整することができる。また、適宜緩衝液を使用してもよい。
【００４７】
その他、セルロース前処理物の加水分解では、セルロース前処理物と糸状菌由来セルラーゼの接触を促進させるため、また加水分解物の糖濃度を均一にするため攪拌混合を行うことが好ましい。セルロース前処理物の固形分濃度は、１〜２５重量％の範囲であることがより好ましい。また、固形物濃度を１〜１０重量％の低濃度で設定することは、セルロース前処理物の加水分解効率が向上するという効果を有しているため、さらに好ましい。これは、糸状菌由来セルラーゼが、加水分解による生物であるグルコース、セロビオースなどの糖生成物により酵素反応が阻害されるという性質を有するためである。
【００４８】
［工程（２）］
工程（２）では、まず、工程（１）で得られた加水分解物を固液分離して溶液成分を回収する。固液分離は、スクリューデカンタなどの遠心分離法、加圧・吸引濾過などの濾過法、あるいは精密濾過などの膜濾過法といった公知の固液分離手法により実施することができる。こうした固液分離は１以上の複数手法組み合わせて実施してもよく、効率的に固形物を除去する手段であれば限定されない。但し、後段限外濾過膜のファウリングを抑制するという観点において、固液分離後の溶液成分には極力固形物が含まれないことが好ましく、具体的には遠心分離法もしくはフィルタプレスなどの濾過法にて１回目の固液分離した後、得られた溶液成分を、さらに精密濾過膜によって膜濾過することで、完全に固形物を除去することが好ましい。精密濾過膜とは、メンブレンフィルトレーションとも呼ばれ、圧力差を駆動力として、微粒子懸濁液から０．０１〜１０μｍ程度の粒子を分離除去できる分離膜である。精密濾過膜の表面には０．０１〜１０μｍの範囲の細孔を有し、その細孔以上の微粒子成分は膜側に分離除去することができる。精密濾過膜の材質は、酢酸セルロース、芳香族ポリアミド、ポリビニルアルコール、ポリスルホン、ポリフッ化ビニリデン、ポリエチレン、ポリアクリロニトリル、セラミック、ポリプロピレン、ポリカーボネート、ポリテトラフルオロエチレン（テフロン（登録商標））などが例示できるが特に限定されるものではないが、対汚性、薬品耐性、強度、濾過性といった観点において、ポリフッ化ビニリデン製の精密濾過膜であることが好ましい。
【００４９】
次に、溶液成分を限外濾過膜処理する。限外濾過膜とは、一般的に細孔径１．５ナノメートルから２５０ナノメートルの範囲であって、分子量１，０００〜２００，０００の範囲の水溶性高分子を非透過液として阻止することが可能な分離膜のことを指す。限外濾過膜は、糸状菌由来セルラーゼを回収できる分画分子量であればよく、好ましい分画分子量は１，０００〜１００，０００Ｄａ、より好ましくは１０，０００〜３０，０００Ｄａである。限外濾過膜の素材としては、ポリエーテルサルホン（ＰＥＳ）、ポリフッ化ビニルデン（ＰＶＤＦ）、再生セルロースなどの素材の膜を使用することができるが、セルロースは、糸状菌由来セルラーゼによる分解を受けるため、ＰＥＳ、ＰＶＤＦなどの合成高分子を素材とした限外濾過膜を使用することが好ましい。限外濾過膜形状は、チューブラー式、スパイラルエレメント、平膜などが好ましく使用できる。限外濾過膜の濾過は、クロスフロー方式、デッドエンド濾過方式が挙げられるが、ファウリングあるいはフラックスの面でクロスフロー濾過方式が好ましい。
【００５０】
溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過することにより、透過液として、糖液を得ることができる。得られる糖液は、糖液に本来含まれている固形物が固液分離によってほぼ完全に除去された液体である。一方、限外濾過膜に通じて濾過処理することで、非透過液側には、糖液中の着色物質、水溶性高分子が除去されるが、水溶性高分子に工程（１）で使用した糸状菌由来セルラーゼ成分が含まれる。回収される糸状菌由来セルラーゼ成分は、特に限定されないが、加水分解に使用した糸状菌由来セルラーゼ成分のうち、その全部の成分あるいは一部の成分に関して、非透過液として回収することができる。なお、非透過液には糖液由来の糖成分も含まれているため、こうした糖成分の回収を行うために、非透過液に加水して、さらに限外濾過膜に通じて濾過する操作を繰り返してもよい。
【００５１】
工程（２）の結果として、従来技術よりも回収酵素に含まれる糸状菌由来セルラーゼ酵素量が顕著に増大する効果が見られ、特に糸状菌由来セルラーゼ成分のうち、セロビオハイドラーゼおよびキシラナーゼが高効率で回収される。回収された糸状菌由来セルラーゼは、セルロース前処理物の加水分解に再利用することによって、糸状菌由来セルラーゼの使用量を削減することが可能になる。回収された糸状菌由来セルラーゼは、単独で加水分解に再利用してもよく、また未使用の糸状菌由来セルラーゼと混合して再利用してもよい。また、場合によっては、セルロースの加水分解以外の用途に有効活用してもよい。
【００５２】
工程（２）で得られた糖液は、さらにＷＯ２０１０／０６７７８５号に記載される方法である、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜に通じて濾過することにより、非透過液として、糖成分が濃縮された糖濃縮液を得ることができる。
【００５３】
ナノ濾過膜とは、ナノフィルター（ナノフィルトレーション膜、ＮＦ膜）とも呼ばれるものであり、「一価のイオンは透過し、二価のイオンを阻止する膜」と一般に定義される膜である。数ナノメートル程度の微小空隙を有していると考えられる膜で、主として、水中の微小粒子や分子、イオン、塩類等を阻止するために用いられる。
【００５４】
逆浸透膜とは、ＲＯ膜とも呼ばれるものであり、「一価のイオンを含めて脱塩機能を有する膜」と一般に定義される膜である。数オングストロームから数ナノメートル程度の超微小空隙を有していると考えられる膜で、主として海水淡水化や超純水製造などイオン成分除去に用いられる。
【００５５】
本発明で使用されるナノ濾過膜あるいは逆浸透膜の素材には、酢酸セルロース系ポリマー、ポリアミド、ポリエステル、ポリイミド、ビニルポリマー、ポリサルホンなどの高分子素材を使用することができるが、前記１種類の素材で構成される膜に限定されず、複数の膜素材を含む膜であってもよい。
【００５６】
本発明で用いるナノ濾過膜は、スパイラル型の膜エレメントが好ましく使用される。好ましいナノ濾過膜エレメントの具体例としては、例えば、酢酸セルロース系のナノ濾過膜エレメントであるＧＥ  Ｏｓｍｏｎｉｃｓ社製“ＧＥｓｅｐａ”、ポリアミドを機能層とするアルファラバル社製ナノ濾過膜エレメントのＮＦ９９またはＮＦ９９ＨＦ、架橋ピペラジンポリアミドを機能層とするフィルムテック社製ナノ濾過膜エレメントのＮＦ−４５、ＮＦ−９０、ＮＦ−２００、ＮＦ−２７０またはＮＦ−４００、あるいは架橋ピペラジンポリアミドを主成分とする東レ株式会社製ナノ濾過膜のＵＴＣ６０を含む同社製ナノ濾過膜エレメントＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０が挙げられ、より好ましくはＮＦ９９またはＮＦ９９ＨＦ、ＮＦ−４５、ＮＦ−９０、ＮＦ−２００またはＮＦ−４００、あるいはＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０であり、さらに好ましくはＳＵ−２１０、ＳＵ−２２０、ＳＵ−６００またはＳＵ−６１０である。
【００５７】
本発明で使用される逆浸透膜の素材としては、酢酸セルロース系のポリマーを機能層とした複合膜（以下、酢酸セルロース系の逆浸透膜ともいう）またはポリアミドを機能層とした複合膜（以下、ポリアミド系の逆浸透膜ともいう）が挙げられる。ここで、酢酸セルロース系のポリマーとしては、酢酸セルロース、二酢酸セルロース、三酢酸セルロース、プロピオン酸セルロース、酪酸セルロース等のセルロースの有機酸エステルの単独もしくはこれらの混合物並びに混合エステルを用いたものが挙げられる。ポリアミドとしては、脂肪族および／または芳香族のジアミンをモノマーとする線状ポリマーまたは架橋ポリマーが挙げられる。
【００５８】
本発明で使用される逆浸透膜の具体例としては、例えば、東レ株式会社製ポリアミド系逆浸透膜モジュールである超低圧タイプのＳＵＬ−Ｇ１０、ＳＵＬ−Ｇ２０、低圧タイプのＳＵ−７１０、ＳＵ−７２０、ＳＵ−７２０Ｆ、ＳＵ−７１０Ｌ、ＳＵ−７２０Ｌ、ＳＵ−７２０ＬＦ、ＳＵ−７２０Ｒ、ＳＵ−７１０Ｐ、ＳＵ−７２０Ｐの他、逆浸透膜としてＵＴＣ８０を含む高圧タイプのＳＵ−８１０、ＳＵ−８２０、ＳＵ−８２０Ｌ、ＳＵ−８２０ＦＡ、同社酢酸セルロース系逆浸透膜ＳＣ−Ｌ１００Ｒ、ＳＣ−Ｌ２００Ｒ、ＳＣ−１１００、ＳＣ−１２００、ＳＣ−２１００、ＳＣ−２２００、ＳＣ−３１００、ＳＣ−３２００、ＳＣ−８１００、ＳＣ−８２００、日東電工株式会社製ＮＴＲ−７５９ＨＲ、ＮＴＲ−７２９ＨＦ、ＮＴＲ−７０ＳＷＣ、ＥＳ１０−Ｄ、ＥＳ２０−Ｄ、ＥＳ２０−Ｕ、ＥＳ１５−Ｄ、ＥＳ１５−Ｕ、ＬＦ１０−Ｄ、アルファラバル製ＲＯ９８ｐＨｔ、ＲＯ９９、ＨＲ９８ＰＰ、ＣＥ４０４０Ｃ−３０Ｄ、ＧＥ製ＧＥ  Ｓｅｐａ、Ｆｉｌｍｔｅｃ製ＢＷ３０−４０４０、ＴＷ３０−４０４０、ＸＬＥ−４０４０、ＬＰ−４０４０、ＬＥ−４０４０、ＳＷ３０−４０４０、ＳＷ３０ＨＲＬＥ−４０４０、ＫＯＣＨ製ＴＦＣ−ＨＲ、ＴＦＣ−ＵＬＰ、ＴＲＩＳＥＰ製ＡＣＭ−１、ＡＣＭ−２、ＡＣＭ−４などが挙げられる。
【００５９】
ナノ濾過膜および／または逆浸透膜を使用して、糖液を濃縮する効果として、糖液中の糖濃度を高めるとともに、透過液として発酵阻害物質を除去できるという利点を有する。ここでいう発酵阻害物質とは、後段発酵工程で発酵を阻害する糖以外の成分のことを指し、具体的には、芳香族化合物、フラン系化合物、有機酸、１価無機塩などを例示することができる。こうした代表的な、芳香族化合物およびフラン系化合物の例としては、フルフラール、ヒドロキシメチルフルフラール、バニリン、バニリン酸、シリンガ酸、コニフェリルアルデヒド、クマル酸、フェルラ酸などを例示できる。有機酸、酢酸、ギ酸、などを例示することができる。糖濃縮液の糖濃度は、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜の処理条件によって、５０〜４００ｇ／Ｌの範囲で任意に設定することができ、糖濃縮液の用途等に応じて任意に設定すればよい。また前述した発酵阻害物質をより除去したい場合、糖液あるいは糖濃縮液に加水し、ナノ濾過膜および／または逆浸透膜で目的の糖濃度となるまで濃縮すればよく、この際、透過液として発酵阻害物質を除去することができる。なお、逆浸透膜に比べ、ナノ濾過膜を使用した方が、発酵阻害物質の除去効果が高いため好ましい。ナノ濾過膜を使用するか、あるいは逆浸透膜を使用するかは、糖液に含まれる発酵阻害物質の濃度、あるいは後段発酵で影響を鑑みて選択すればよい。
【００６０】
糖液をナノ濾過膜に通じて濾過して糖濃縮液を得る場合、ナノ濾過膜透過液をさらに逆浸透膜に通じて濾過することにより、非透過液として無機塩濃縮液を得ることができる。無機塩濃縮液は工程（１）で添加された水溶性無機塩を主成分とするものであるため、工程（１）において好ましく再利用されうる。
【００６１】
［糖液の用途］
本発明により得られた糖液を発酵原料として化学品を生産する能力を有する微生物を生育させることで、各種化学品を製造することができる。ここでいう発酵原料として微生物を生育させるとは、糖液に含まれる糖成分あるいはアミノ源を微生物の栄養素として利用し、微生物の増殖、生育維持を行うことを意味している。化学品の具体例としては、アルコール、有機酸、アミノ酸、核酸など発酵工業において大量生産されている物質を挙げることができる。こうした化学品は、糖液中の糖成分を炭素源として、その代謝の過程において生体内外に化学品として蓄積生産する。微生物によって生産可能な化学品の具体例として、エタノール、１，３−プロパンジオール、１，４−ブタンジオール、グリセロールなどのアルコール、酢酸、乳酸、ピルビン酸、コハク酸、リンゴ酸、イタコン酸、クエン酸などの有機酸、イノシン、グアノシンなどのヌクレオシド、イノシン酸、グアニル酸などのヌクレオチド、カダベリンなどのアミン化合物を挙げることができる。さらに、本発明の糖液は、酵素、抗生物質、組換えタンパク質などの生産に適用することも可能である。こうした化学品の製造に使用する微生物に関しては、目的の化学品を効率的に生産可能な微生物であればよく、大腸菌、酵母、糸状菌、担子菌などの微生物を使用することができる。
【００６２】
［装置構成］
本発明の糖液の製造方法を実施するための装置構成の一例を図３に示す。加水分解槽（２）は、セルロース前処理物を加水分解するためのものであり、４０℃〜６０℃の温度範囲にて保温可能な保温装置（１）、セルロース前処理物を投入する投入口（３）、セルロース前処理物を混合する攪拌装置（４）、水溶性無機塩を調製、保持および添加するための水溶性無機塩調製槽（５）有していればよい。加水分解物の固液分離を行うプレス濾過（７）は、加水分解物の投入口（６）、コンプレッサー（８）を有していればよい。プレス濾過の濾液は、プレス濾過濾液槽（９）に回収される。プレス濾過濾液槽（９）は、ＭＦポンプ（１２）を介して、精密濾過膜（１１）と連結している。精密濾過膜（１１）で分離された固形物は、プレス濾液槽（９）に濃縮され、排出ライン（１０）にて排出される。精密濾過膜の濾液は、精密濾過膜濾液槽（１３）に回収される。さらに精密濾過膜濾液槽は、ＵＦポンプ（１４）を介して、限外濾過膜（１５）と連結しており、糸状菌由来セルラーゼを非透過液として分離・回収でき、糖液は限外濾過膜（１５）の濾液として糖液回収ライン（１６）より回収される。
【実施例】
【００６３】
以下に、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されるものではない。【００６４】
（参考例１）セルロース前処理物の調製
１）セルロース前処理物１の調製（アンモニア処理）
セルロースとして、稲藁を使用した。前記セルロースを小型反応器（耐圧硝子工業製、ＴＶＳ−Ｎ２  ３０ｍｌ）に投入し、液体窒素で冷却した。この反応器にアンモニアガスを流入し、試料を完全に液体アンモニアに浸漬させた。リアクターの蓋を閉め、室温で１５分ほど放置した。次いで、１５０℃のオイルバス中にて１時間処理した。処理後、反応器をオイルバスから取り出し、ドラフト中で直ちにアンモニアガスをリーク後、さらに真空ポンプで反応器内を１０Ｐａまで真空引きし乾燥させた。これをバイオマス前処理物２として以下実施例に使用した。【００６５】
２）セルロース前処理物２の調製（水熱処理）
セルロースとして、稲藁を使用した。前記セルロースを水に浸し、撹拌しながら１８０℃で２０分間オートクレーブ処理（日東高圧株式会社製）した。その際の圧力は１０ＭＰａであった。処理後は溶液成分（以下、水熱処理液）と固形分に遠心分離（３０００Ｇ）を用いて固液分離し、固形分をセルロース前処理物３として以下実施例に使用した。【００６６】
（参考例２）糖濃度の測定
糖液に含まれるグルコースおよびキシロース濃度は、下記に示すＨＰＬＣ条件で標品との比較により定量した。
カラム：Ｌｕｎａ  ＮＨ２（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ社製）
移動相：ミリＱ：アセトニトリル＝２５：７５（流速０．６ｍＬ／分）
反応液：なし
検出方法：ＲＩ（示差屈折率）
温度：３０℃。【００６７】
（参考例３）トリコデルマ由来セルラーゼの調製
トリコデルマ由来セルラーゼを以下の方法で調製した。【００６８】
［前培養］
コーンスティップリカー５％（ｗ／ｖｏｌ）、グルコース２％（ｗ／ｖｏｌ）、酒石酸アンモニウム０．３７％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸アンモニウム０．１４（ｗ／ｖｏｌ）、リン酸二水素カリウム０．２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化カルシウム二水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸マグネシウム七水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化亜鉛０．０２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化鉄(ＩＩＩ)六水和物０．０１％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸銅(ＩＩ)五水和物０．００４％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化マンガン四水和物０．０００８％（ｗ／ｖｏｌ）、ホウ酸０．０００６％（ｗ／ｖｏｌ）、七モリブデン酸六アンモニウム四水和物０．００２６％（ｗ／ｖｏｌ）となるよう蒸留水に添加し、１００ｍＬを５００ｍＬバッフル付き三角フラスコに張り込み、１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌した。放冷後、これとは別にそれぞれ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌したＰＥ−ＭとＴｗｅｅｎ８０をそれぞれ０．０１％（ｗ／ｖｏｌ）添加した。この前培養培地にトリコデルマ・リーセイＡＴＣＣ６８５８９を１×１０５個／ｍＬになるように植菌し、２８℃、７２時間、１８０ｒｐｍで振とう培養し、前培養とした（振とう装置：ＴＡＩＴＥＣ社製  ＢＩＯ−ＳＨＡＫＥＲ  ＢＲ−４０ＬＦ）。【００６９】
［本培養］
コーンスティップリカー５％（ｗ／ｖｏｌ）、グルコース２％（ｗ／ｖｏｌ）、セルロース（アビセル）１０％（ｗ／ｖｏｌ）、酒石酸アンモニウム０．３７％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸アンモニウム０．１４％（ｗ／ｖｏｌ）、リン酸二水素カリウム 0.2%（ｗ／ｖｏｌ）、塩化カルシウム二水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸マグネシウム七水和物０．０３％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化亜鉛０．０２％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化鉄(ＩＩＩ)六水和物０．０１％（ｗ／ｖｏｌ）、硫酸銅(ＩＩ)五水和物０．００４％（ｗ／ｖｏｌ）、塩化マンガン四水和物０．０００８％（ｗ／ｖｏｌ）、ホウ酸０．０００６％（ｗ／ｖｏｌ）、七モリブデン酸六アンモニウム四水和物０．００２６％（ｗ／ｖｏｌ）となるよう蒸留水に添加し、２．５Ｌを５Ｌ容撹拌ジャー（ＡＢＬＥ社製  ＤＰＣ−２Ａ）容器に張り込み、１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌した。放冷後、これとは別にそれぞれ１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌したＰＥ−ＭとＴｗｅｅｎ８０をそれぞれ０．１％添加し、あらかじめ前記の方法にて液体培地で前培養したトリコデルマ・リーセイＡＴＣＣ６８５８９を２５０ｍＬ接種した。その後、２８℃、８７時間、３００ｒｐｍ、通気量１ｖｖｍにて培養を行い、遠心分離後、上清を膜濾過（ミリポア社製  ステリカップ−ＧＶ  材質：ＰＶＤＦ）した。この前述条件で調製した培養液に対し、βグルコシダーゼ（Ｎｏｖｏｚｙｍｅ１８８）をタンパク質重量比として、１／１００量添加し、これをトリコデルマ由来セルラーゼとして、以下、実施例に使用した。【００７０】
（参考例５）糸状菌由来セルラーゼの回収酵素量の測定方法
工程（２）で回収できる糸状菌由来セルラーゼの回収酵素量は、１）結晶セルロース分解活性、２）セロビオース分解活性、３）キシラン分解活性、の３種の分解活性（以下、活性値という。）を測定することにより定量した。【００７１】
１）結晶セルロース分解活性
酵素液に対し、結晶セルロースであるアビセル（Ｍｅｒｃｈ社製、Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  Ｍｉｃｒｏｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ）を１ｇ／Ｌ、酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ  ５．０）を１００ｍＭとなるよう添加し、５０℃で２４時間反応させた。反応液は１ｍＬチューブで調製し、前記条件にて回転混和しながら反応を行った。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のグルコース濃度を測定した。グルコース濃度は、参考例２に記載の方法に準じて測定した。結晶セルロース分解活性は、生成したグルコース濃度（ｇ／Ｌ）をそのまま活性量として使用し、回収酵素量の比較に使用した。【００７２】
２）セロビオース分解活性
酵素液に対し、セロビオース（和光純薬工業株式会社製）５００ｍｇ／Ｌ、酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ  ５．０）を１００ｍＭとなるよう添加し、５０℃で０．５時間反応させた。反応液は１ｍＬチューブで調製し、前記条件にて回転混和しながら反応を行った。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のグルコース濃度を測定した。グルコース濃度は、参考例２に記載の方法に準じて測定した。セロビオース分解活性は、生成したグルコース濃度（ｇ／Ｌ）をそのまま活性量として使用し、回収酵素量の比較に使用した。【００７３】
３）キシラン分解活性
酵素液に対し、キシラン（Ｂｉｒｃｈ  ｗｏｏｄ  ｘｙｌａｎ、和光純薬工業株式会社製）１０ｇ／Ｌ、酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ  ５．０）を１００ｍＭとなるよう添加し、５０℃で４時間反応させた。反応液は１ｍＬチューブで調製し、前記条件にて回転混和しながら反応を行った。反応後、チューブを遠心分離し、その上清成分のキシロース濃度を測定した。キシロース濃度は、参考例２に記載の方法に準じて測定した。キシロース分解活性は、生成したキシロース濃度（ｇ／Ｌ）をそのまま活性量として使用し、回収酵素量の比較に使用した。【００７４】
（参考例６）無機イオン濃度の測定
糖液に含まれるカチオンおよびアニオン濃度は、下記に示すＨＰＬＣ条件で、標品との比較により定量した。【００７５】
１）カチオン分析
カラム：Ｉｏｎ  Ｐａｃ  ＡＳ２２（ＤＩＯＮＥＸ社製）
移動相：４．５ｍＭ  Ｎａ２ＣＯ３／１．４ｍＭ  ＮａＨＣＯ３（流速１．０ｍＬ／分）
反応液：なし
検出方法：電気伝導度（サプレッサ使用）
温度：３０℃。【００７６】
２）アニオン分析
カラム：Ｉｏｎ  Ｐａｃ  ＣＳ１２Ａ（ＤＩＯＮＥＸ社製）
移動相：２０ｍＭメタンスルホン酸（流速１．０ｍＬ／分）
反応液：なし
検出方法：電気伝導度（サプレッサ使用）
温度：３０℃。【００７７】
（比較例１）セルロース前処理物の加水分解
参考例１で調製したセルロース前処理物１および２（各０．５ｇ）に蒸留水を加え、参考例３で調製したトリコデルマ由来セルラーゼ０．５ｍＬを添加し、総重量が１０ｇとなるようさらに蒸留水を添加した。さらに本組成物のｐＨが４．５〜５．３の範囲となるよう希釈硫酸あるいは希釈苛性ソーダで調整した。ｐＨを調整した本組成物を枝付試験管に移し（東京理化器械株式会社製  φ３０  ＮＳ１４／２３）、５０℃にて２４時間保温および攪拌し加水分解を行った（東京理化社製：小型メカニカルスターラー  ＣＰＳ−１０００、変換アダプター、三方コック付添加口、保温装置  ＭＧ−２２００）。加水分解物を遠心分離（３０００Ｇ、１０分）にて固液分離し、溶液成分（６ｍＬ）と固形物に分離した。得られた溶液成分の糖濃度（グルコースおよびキシロース濃度）は、参考例２記載の方法で測定した。また、溶液成分は、さらにマイレクスＨＶフィルターユニット（３３ｍｍ、ＰＶＤＦ製、細孔径０．４５μｍ）を使用して濾過を行った。得られた濾液は、分画分子量１００００の限外濾過膜（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ  ｓｔｅｄｉｍ  ｂｉｏｔｅｃｈ社製  ＶＩＶＡＳＰＩＮ  ２０  材質：ＰＥＳ）で濾過し、膜画分が１ｍＬになるまで４５００Ｇにて遠心した。蒸留水１０ｍＬを膜画分に添加し、再度膜画分が１ｍＬになるまで４５００Ｇにて遠心した。この後、膜画分から酵素を回収した。回収酵素の各活性は、参考例４に準じて測定した。【００７８】
（比較例２）酢酸ナトリウム（有機塩）を含むセルロース前処理物の加水分解１
参考例１で調製したセルロース前処理物１および２（各０．５ｇ）に蒸留水を加え、酢酸ナトリウム５Ｍ（ｐＨ５．２）を０．２ｍＬ（最終濃度１００ｍＭ、８．２ｇ／Ｌ）をさらに加え、参考例３で調製したトリコデルマ由来セルラーゼ０．５ｍＬを添加し、総重量が１０ｇとなるようさらに蒸留水を添加した。前記、酢酸緩衝液の添加する操作以外は、比較例１と同じ手順で行い、糖濃度および回収できた各酵素活性を測定した。【００７９】
【表２】
2012133495.tif 000003
【００８０】
【表３】
2012133495.tif 000004
【００８１】
（実施例１）水溶性無機塩を添加するセルロース前処理物の加水分解１
参考例１で調製したセルロース前処理物１（０．５ｇ）に蒸留水を加え、水溶性無機塩（塩化ナトリウム、塩化カリウム、硫酸ナトリウム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カルシウム、硫酸アンモニウム）を、それぞれ最終濃度５ｇ／Ｌ、１０ｇ／Ｌ、２５ｇ／Ｌ、３５ｇ／Ｌ、５０ｇ／Ｌ、１００ｇ／Ｌになるように加え、参考例３で調製したトリコデルマ由来セルラーゼ０．５ｍＬを添加し、総重量が１０ｇとなるようさらに蒸留水を添加した。前記、酢酸緩衝液の添加する操作以外は、比較例１と同じ手順で行い、糖濃度および回収できた各酵素活性を測定した。【００８２】
各種水溶性無機塩の添加量と糖生成量との関係を表４、表５に示す。水溶性無機塩添加３５ｇ／Ｌまでは、グルコースおよびキシロースの生成量は、比較例１および２（表２および３）と同じであるが、５０ｇ／Ｌ以上になると生成糖が減少することが判明した。これは、水溶性無機塩濃度が高すぎるため、酵素反応が阻害されたためと考えられる。一方、５〜３５ｇ／Ｌの範囲では、大きな生成糖の減少は確認されなかった。【００８３】
【表４】
2012133495.tif 000005
【００８４】
【表５】
2012133495.tif 000006
【００８５】
次に、水溶性無機塩を添加し加水分解を行い、得られた溶液成分より酵素を回収した結果を表６〜８に示す。表５および表６に示すように、セロビオース分解活性およびキシラン分解活性は、水溶性無機塩濃度５０ｇ／Ｌ以上で活性が低下することが判明した。その一方で、表７に示すように、水溶性無機塩濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲で、キシラン分解活性で１．２倍以上、結晶セルロース分解活性で２倍以上、高まることが判明した。また、水溶性無機塩濃度５〜３５ｇ／Ｌの範囲でのセロビオース分解活性は大きな変化は確認されなかったが、水溶性無機塩濃度が５０ｇ／Ｌ以上になると活性は低下することが判明した。【００８６】
【表６】
2012133495.tif 000007
【００８７】
【表７】
2012133495.tif 000008
【００８８】
【表８】
2012133495.tif 000009
【００８９】
（実施例２）水溶性無機塩を添加するセルロース前処理物の加水分解２
セルロース前処理物２（０．５ｇ）に関して同様の蒸留水を加え、実施例１と同じ手順で加水分解を実施した。得られた糖濃度および回収できた各酵素活性を測定した。各種水溶性無機塩の添加量と糖生成量との関係を表９、表１０に示す。水溶性無機塩添加３５ｇ／Ｌまでは、比較例１および２（表２および３）と同じであるが、５０ｇ／Ｌ以上になるとグルコースおよびキシロースの生成量が減少することが判明した。これは、水溶性無機塩濃度が高すぎるため、酵素反応が阻害されたためと考えられる。一方、５〜３５ｇ／Ｌの範囲では、大きな生成糖の減少は確認されなかった。【００９０】
【表９】
2012133495.tif 000010
【００９１】
【表１０】
2012133495.tif 000011
【００９２】
次に、水溶性無機塩を添加し加水分解を行い、得られた溶液成分より酵素を回収した結果を表１１〜１３に示す。セロビオース分解活性およびキシラン分解活性は、水溶性無機塩添加量５０ｇ／Ｌ以上では回収酵素活性が低下することが判明した。その一方で、水溶性無機塩５〜３５ｇ／Ｌの範囲で、セロビオース分解活性で、２倍以上、キシラン分解活性で１．２倍以上、結晶セルロース分解活性で２倍以上、高まることが判明した。一方、水溶性無機塩添加量が５０ｇ／Ｌ以上になると活性は低下することが判明した。【００９３】
【表１１】
2012133495.tif 000012
【００９４】
【表１２】
2012133495.tif 000013
【００９５】
【表１３】
2012133495.tif 000014
【００９６】
（実施例３）水溶性無機塩としての海水利用
実施例１および２において、水溶性無機塩５ｇ／Ｌ〜３５ｇ／Ｌ添加することにより回収酵素活性が高まることが確認できた。そこで、水溶性無機塩を含む水溶液として「海水」にて代替できるか検討した。海水は、神奈川県三崎漁港付近で採取した海水（ｐＨ８．３、固形物溶解量３．２％）を使用し、これをマイレクスＨＶフィルターユニット（３３ｍｍ、ＰＶＤＦ製、細孔径０．４５μｍ）を使用して濾過を行ったものを使用した。なお海水のｐＨ調整には硫酸を使用し、ｐＨ５．０（海水１Ｌ当たり硫酸５０ｍｇ添加）に調整した。この海水（ｐＨ５）の水溶性無機塩濃度を参考例６に準じて測定したところ、塩化ナトリウム２５ｇ／Ｌ、塩化マグネシウム３．２ｇ／Ｌ、硫酸マグネシウム２ｇ／Ｌであることが判明した。すなわち、実施例３で使用した海水は、水溶性無機塩を３０．２ｇ／Ｌの濃度で含むことが分かった。【００９７】
次に、前述の海水（ｐＨ５）を水溶性無機塩として使用して、参考例１で調製したバイオマス前処理物１および２の加水分解を行った。バイオマス前処理物１および２（０．５ｇ）に蒸留水および海水（ｐＨ５）を加え、参考例３で調製したトリコデルマ由来セルラーゼ０．５ｍＬを添加し、総重量が１０ｇとなるようさらに蒸留水を添加した。海水は、最終濃度１／２希釈、すなわち水溶性無機塩濃度で１５．１ｇ／Ｌとなるように添加した。ｐＨ調整は、海水のｐＨを予め５に調整してあるので実施の必要はなかった。加水分解、固液分離、は、比較例１と同じ手順で実施した。得られた溶液成分の糖濃度（グルコースおよびキシロース濃度）は、参考例２記載の方法で測定した。また、溶液成分は、さらにマイレクスＨＶフィルターユニット（３３ｍｍ、ＰＶＤＦ製、細孔径０．４５μｍ）を使用して濾過を行い、比較例１と同じ手順で、回収酵素を得た。回収酵素の各活性は、参考例４に準じて測定した。その結果、表１４、表１５に示すように、比較例１に対し、海水の添加により、セロビオース分解活性、結晶セルロース分解活性、およびキシラン分解活性は海水添加においても向上することが判明した。【００９８】
【表１４】
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【００９９】
【表１５】
2012133495.tif 000016
【０１００】
（実施例４）加水分解工程における水溶性無機塩添加のタイミング
水溶性無機塩の添加のタイミングを決定するために、セルラーゼ添加前、セルラーゼ添加直後、セルラーゼ添加後２３時間、に関して糖生成量、回収酵素活性を比較した。水溶性無機塩は、塩化ナトリウムを使用し、添加濃度は１０ｇ／Ｌで実施した。その結果、表１６に示すように、セルラーゼ添加前あるいは添加直後（例えば反応０時間）において、水溶性無機塩を添加する方が回収酵素活性、特に結晶セルロース分解活性を高める点で好ましいことが判明した。【０１０１】
【表１６】
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【０１０２】
（実施例５）ナノ濾過膜による糖濃縮および１価無機塩の除去
ナノ濾過膜による糖濃縮および１価無機塩の除去を検討するために、糖液の大量調製を行った。糖液の大量調製は、セルロース前処理物１（１ｋｇ）にトリコデルマ由来セルラーゼ２０ｇを添加し、さらに塩化ナトリウムを最終濃度１０ｇ／Ｌとなるように添加後、総重量が２０ｋｇとなるようさらに蒸留水を添加した。さらに本組成物のｐＨが４．５〜５．３の範囲となるよう希釈硫酸あるいは希釈苛性ソーダで調整した。この液を液温が４５〜５０℃を保つよう保温しながら、かつｐＨが４．５〜５．３の範囲を保つように希釈硫酸、希釈苛性ソーダを添加して２４時間酵素とバイオマス前処理物２を反応させた。次に得られた酵素糖化スラリー液１０Ｌを用いて以下の手順でプレス濾過を実施した。プレス濾過は小型フィルタプレス装置（薮田産業製フィルタプレス  ＭＯ−４）を用いた。ろ布はポリエステル製織布（薮田産業製  Ｔ２７３１Ｃ）を使用した。スラリー液１０Ｌを小型タンクの中に入れて下から圧縮空気で曝気しながら液投入口を開いてエアーポンプ（タイヨーインタナショナル製  ６６０５３−３ＥＢ）で徐々に濾室内にスラリー液を投入した。次に濾室に付設されているダイヤフラムを膨らませて圧搾工程を行った。徐々に圧搾圧力を上昇させていき、０．５ＭＰａまで上昇させてから約３０分間放置して濾液を回収した。得られた溶液成分の総量は９．０Ｌであった。残りの液成分については装置デッドボリュームのために損失した。得られた溶液成分の糖濃度を測定したところグルコース濃度が１６ｇ／Ｌ、キシロース濃度が１０ｇ／Ｌであった。【０１０３】
次に、固液分離の溶液成分を限外濾過膜に通じて濾過し、回収酵素と糖液成分に分離した。回収酵素は、分画分子量１００００の限外濾過膜（ＧＥ製  ＳＥＰＡ  ＰＷシリーズ  機能面材質：ポリエーテルスルホン）の平膜をセットした小型平膜濾過装置（ＧＥ製  Ｓｅｐａ（登録商標）  ＣＦ  ＩＩ  Ｍｅｄ／Ｈｉｇｈ  Ｆｏｕｌａｎｔ  Ｓｙｓｔｅｍ）を使用して実施した。原水側流速２．５Ｌ／分、膜フラックスが０．１ｍ／Ｄと一定になるように操作圧力を制御しながら９Ｌのうち５Ｌを濾過した。【０１０４】
得られた糖液１Ｌを使用してナノ濾過膜濃縮を実施した。ナノ濾過膜はＤＥＳＡＬ−５Ｌ（デザリネーション社製）を使用し、このナノ濾過膜を小型平膜濾過装置（ＧＥ製  Ｓｅｐａ（登録商標）  ＣＦ  ＩＩ  Ｍｅｄ／Ｈｉｇｈ  Ｆｏｕｌａｎｔ  Ｓｙｓｔｅｍ）にセットし、原水温度を２５℃、高圧ポンプの圧力を３ＭＰａで濾過処理を行った。この処理により、０．２Ｌのナノ濾過膜濃縮液および０．８Ｌの透過液を得た（５倍濃縮）。このときのグルコース、キシロース、ナトリウムイオン、塩化物イオン濃度は表１７に示す通りであり、ナノ濾過膜の糖濃縮により糖濃度に対する塩化ナトリウム濃度を低減できることが判明した。【０１０５】
【表１７】
2012133495.tif 000018
【０１０６】
（実施例６）ナノ濾過膜による糖濃縮および１価無機塩の除去２（透析濾過）
実施例６で得られたナノ濾過膜の濃縮液０．３ＬにＲＯ水０．３Ｌを加水し、合計０．６Ｌに調整し、さらにこの溶液をナノ濾過膜に通じて濾過し、０．３Ｌの濃縮液（ナノ濾過膜濃縮液２）と０．３Ｌの透過液（ナノ濾過膜透過液２）を得た（２倍濃縮）。このときのグルコース、キシロース、ナトリウムイオン、塩化物イオン濃度は表１８に示す通りであり、ナノ濾過膜濃縮液をさらにナノ濾過膜に通じて濾過することにより、１価無機塩濃度をさらに低減できることが判明した。【０１０７】
【表１８】
2012133495.tif 000019
【０１０８】
（実施例７）逆浸透膜による無機塩濃縮液の回収
実施例５で得られたナノ濾過膜の透過液０．８ＬをＲＯ膜処理に通じて、無機塩濃縮液の回収を行った。ＲＯ膜は架橋全芳香族系逆浸透膜“ＵＴＣ８０”（東レ株式会社製）を使用し、このＲＯ膜を小型平膜濾過装置（ＧＥ製  “Ｓｅｐａ”（登録商標）  ＣＦ  ＩＩ  Ｍｅｄ／Ｈｉｇｈ  Ｆｏｕｌａｎｔ  Ｓｙｓｔｅｍ）にセットし、原水温度を２５℃、高圧ポンプの圧力を３ＭＰａで濾過処理を行った。この処理により０．６４Ｌの透過液を得た（５倍濃縮）。このときのグルコースおよびキシロース、ナトリウムイオン、塩化物イオン濃度は表１９に示す通りであり、ナノ濾過膜の透過液として含まれる無機塩をさらに逆浸透膜に通じて濾過することにより、無機塩濃縮液を得られることが判明した。また透過液としては、無機塩および糖を含まない純水を得ることができた。【０１０９】
【表１９】
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【０１１０】
（実施例８）希硫酸処理セルロース前処理物の調製、アンモニア中和、糸状菌セルラーゼによる加水分解
セルロース含有バイオマスとしてサトウキビバガスを希硫酸水（１ｗｔ％、１０ｇ／Ｌ、）に浸し、撹拌しながら１９０℃で１０分間オートクレーブ処理（日東高圧株式会社製）した。その際の圧力は１０ＭＰａであった。処理後は小型フィルタプレス装置（薮田産業製フィルタプレス）を用いて固液分離し、溶液成分（以下、硫酸処理液という。）（０．５Ｌ）と固形分に分離した。固形物の固形物濃度は、約５０％であった。固形物は、さらにＲＯ水に再度懸濁させ、再度小型フィルタプレスを行うことで、固形物中に含まれる硫酸成分の除去を行った。この硫酸除去を行って得られた固形物を、以下、セルロース前処理物３と呼ぶ。【０１１１】
次に、０．５Ｌの硫酸処理液に対し、アンモニア水（２８％溶液、和光純薬工業株式会社製）６ｍＬを徐々に添加し、ｐＨ７付近まで中和を行った。この際、硫酸イオンとアンモニウムイオンとの中和反応にて、水溶性無機塩である硫酸アンモニウム（（ＮＨ４）２ＳＯ４）約１３ｇが生成したものと推定できる。中和後の硫酸処理液に関して、糖成分を分析したところ、キシロースが２３ｇ／Ｌ、グルコースが１ｇ／Ｌ含まれていた。以下、これを中和Ｃ５糖液と呼ぶ。【０１１２】
次に、セルロース前処理物３と中和Ｃ５糖液の混合を行った。セルロース前処理物３の固形物１ｇに対して中和Ｃ５糖液を１０ｍＬ添加し混合した（固形物濃度１０ｗｔ％）。混合後、希硫酸および水酸化ナトリウム水溶液を使用して、ｐＨ５に調製した。その後、セルラーゼを添加して、加水分解反応を行った。セルラーゼは、ジェネンコア社の“アクセルレースＤｕｅｔ”を購入し使用した。添加量は、前記セルラーゼを０．２ｍＬ添加した。反応は比較例１と同じ条件で行い、５０℃で２４時間混合し実施した。得られた加水分解物に含まれる糖濃度（グルコース・キシロース）を表２１に示す。【０１１３】
次に、前記加水分解物より比較例１と同じ条件で酵素回収を行った。回収酵素の各活性（セロビオース分解活性、アビセル分解活性、キシラン分解活性）は、参考例４に準じて測定した。回収酵素活性を表２０に示す。【０１１４】
（比較例３）希硫酸処理セルロース前処理物の調製、水酸化カルシウム中和、糸状菌由来セルラーゼによる加水分解
前記実施例８との比較のため、中和を水酸化カルシウムで行った場合の比較例を示す。なお、水酸化カルシウムで中和を行うことにより、硫酸イオンとカルシウムイオンの塩である硫酸カルシウム（ＣａＳＯ４）が生成する。硫酸カルシウム（石膏）は、水に対する溶解度が約２ｇ／Ｌ程度（２５℃）であるため、本比較例における加水分解は、水溶性無機塩を添加した加水分解ではない。【０１１５】
本比較例では、硫酸処理液の中和に際し、アンモニア水ではなく、硫酸カルシウム粉末を添加し、ｐＨ７付近に調製すること、中和後に生成した硫酸アンモニウムを遠心にて除去すること以外は、実施例７に準じて実施した。具体的には、硫酸処理液、固形物（セルロース前処理物３）は実施例７に準じて実施した。【０１１６】
次に、０．５Ｌの硫酸処理液に対し、水酸化カルシウム（和光純薬工業株式会社製）を３．７ｇ、徐々に添加し、ｐＨ７付近まで中和を行った。この際、硫酸イオンとカルシウムイオンとの中和反応にて、水不溶性無機塩である硫酸カルシウム（（ＮＨ４）２ＳＯ４）約７ｇが生成したものと推定できる。中和後の硫酸処理液は、さらに遠心分離（３０００Ｇ、２０分）を行い、水不溶性無機塩である硫酸カルシウムを除去し、その上澄み液を得た。この上済み液に関して、糖成分を分析したところ、キシロースが２２ｇ／Ｌ、グルコースが１ｇ／Ｌ含まれていた。以下、これを中和Ｃ５糖液（比較例２）と呼ぶ。【０１１７】
次に、セルロース前処理物３と中和Ｃ５糖液の混合（比較例２）を行い、さらにセルラーゼを添加して、実施例７と同じ手順で加水分解反応を行った。得られた加水分解物に含まれる糖濃度（グルコース・キシロース）を表２０に示す。【０１１８】
次に、加水分解物より比較例１と同じ条件で酵素回収を行った。回収酵素の各活性（セロビオース分解活性、アビセル分解活性、キシラン分解活性）は、参考例４に準じて測定した。回収酵素活性を表２０に示す。その結果、実施例８と比較して糸状菌由来セルラーゼによる加水分解により生成する糖濃度は大きく差がないことが判明した。一方で、回収酵素活性に関しては、実施例８のアンモニアを使用した中和、すなわち硫酸アンモニウム存在下で加水分解を行う方がより向上することが判明した。【０１１９】
【表２０】
2012133495.tif 000021
【０１２０】
（参考例６）フミコラ属セルラーゼの調製
フミコラ属セルラーゼは、フミコラ・グリセア（Ｈｕｍｉｃｏｌａ  ｇｒｉｓｅａ  ＮＢＲＣ３１２４２）を参考例３の方法と同じ前培養、本培養にて調製した。この前述条件で調製した培養液に対し、βグルコシダーゼ（Ｎｏｖｏｚｙｍｅ１８８）をタンパク質重量比として、１／１００量添加し、これをフミコラ属セルラーゼとして、以下の実施例および比較例に使用した。【０１２１】
（比較例４）セルロース前処理物３の加水分解
実施例８のセルロース前処理物３を使用して、比較例１の記載に準じて、水溶性無機塩を添加しない場合の加水分解と酵素の回収を実施した。その際、糸状菌由来セルラーゼとして、参考例３で調製したトリコデルマ属由来セルラーゼ、および参考例６で調製したフミコラ属由来セルラーゼを使用して加水分解を実施した。糖生成量と回収酵素活性を表２１に示す。【０１２２】
【表２１】
2012133495.tif 000022
【０１２３】
（実施例９）水溶性無機塩を添加したセルロース前処理物の加水分解３
実施例８で調製したセルロース前処理物３（０．５ｇ）に蒸留水を加え、実施例１と同じ手順で加水分解を実施した。得られた糖濃度および回収できた各酵素活性を測定した。各種水溶性無機塩の添加量と糖生成量との関係を表２３および２４に示す。水溶性無機塩添加３５ｇ／Ｌまでは比較例４（表２１）と同じであるが、５０ｇ／Ｌ以上になるとグルコースおよびキシロースの生成量が減少することが判明した。これは、水溶性無機塩濃度が高すぎるため、酵素反応が阻害されたためと考えられた。一方、５〜３５ｇ／Ｌの範囲では、大きな生成糖の減少は確認されなかった。【０１２４】
【表２２】
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【０１２５】
【表２３】
2012133495.tif 000024
【０１２６】
次に、水溶性無機塩を添加し加水分解を行い、得られた溶液成分より酵素を回収した結果を表２４〜２６に示す。セロビオース分解活性およびキシラン分解活性は、水溶性無機塩添加量５０ｇ／Ｌ以上では回収酵素活性が低下することが判明した。その一方で、水溶性無機塩５〜３５ｇ／Ｌの範囲で、セロビオース分解活性で、２倍以上、キシラン分解活性で１．２倍以上、結晶セルロース分解活性で２倍以上、高まることが判明した。但し、水溶性無機塩の添加量が５０ｇ／Ｌ以上になると活性は低下することが判明した。【０１２７】
【表２４】
2012133495.tif 000025
【０１２８】
【表２５】
2012133495.tif 000026
【０１２９】
【表２６】
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【０１３０】
（実施例１０）水溶性無機塩を添加したセルロース前処理物の加水分解４
実施例８で調製したセルロース前処理物３（０．５ｇ）に蒸留水を加え、参考例６記載のフミコラ属由来セルラーゼを使用する以外は、実施例１と同じ手順で加水分解を実施した。得られた糖濃度および回収できた各酵素活性を測定した。各種水溶性無機塩の添加量と糖生成量との関係を表２８、表２９に示す。水溶性無機塩添加３５ｇ／Ｌまでは、比較例４（表２１）と同じであるが、５０ｇ／Ｌ以上になるとグルコースおよびキシロースの生成量が減少することが判明した。これは、水溶性無機塩濃度が高すぎるため、酵素反応が阻害されたためと考えられる。一方、５〜３５ｇ／Ｌの範囲では、大きな生成糖の減少は確認されなかった。【０１３１】
【表２７】
2012133495.tif 000028
【０１３２】
【表２８】
2012133495.tif 000029
【０１３３】
次に、水溶性無機塩を添加し加水分解を行い、得られた溶液成分より酵素を回収した結果を表２９〜３１に示す。セロビオース分解活性およびキシラン分解活性は、水溶性無機塩添加量５０ｇ／Ｌ以上では回収酵素活性が低下することが判明した。その一方で、水溶性無機塩５〜３５ｇ／Ｌの範囲で、セロビオース分解活性で、２倍以上、キシラン分解活性で１．２倍以上、結晶セルロース分解活性で２倍以上、高まることが判明した。但し、水溶性無機塩添加量が５０ｇ／Ｌ以上になると活性は低下することが判明した。【０１３４】
【表２９】
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【０１３５】
【表３０】
2012133495.tif 000031
【０１３６】
【表３１】
2012133495.tif 000032
【０１３７】
（実施例１１）糖液を発酵原料とするエタノール発酵
実施例６のナノ濾過膜濃縮液２を発酵原料として使用して、酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｃｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ  ＯＣ−２：ワイン酵母）によるエタノール発酵試験を行った。前述酵母をＹＰＤ培地（２％グルコース、１％酵母エキス（Ｂａｃｔｏ  Ｙｅａｓｔ  Ｅｘｔｒａｃｔ  ＢＤ社製）、２％ポリペプトン（日本製薬株式会社製）にて、１日間２５℃で前培養を行った。次に、得られた培養液を、ｐＨ６に水酸化ナトリウムにて調整したナノ濾過膜濃縮液糖液（グルコース濃度７４ｇ／Ｌ）に対し、１％（２０ｍＬ）となるように添加した。微生物を添加後、２５℃で２日間インキュベートした。この操作で得られた培養液に含まれるエタノール蓄積濃度は、ガスクロマトグラフ法（Ｓｈｉｍａｄｚｕ  ＧＣ−２０１０キャピラリーＧＣ  ＴＣ−１（ＧＬ  ｓｃｉｅｎｃｅ）  １５  ｍｅｔｅｒ  Ｌ．＊０．５３ｍｍ  Ｉ．Ｄ．，ｄｆ１．５μｍを用いて、水素塩イオン化検出器により検出・算出。）により定量した。その結果、培養液中には２４ｇ／Ｌのエタノールが含まれることが確認できた。すなわち、本発明により得られる糖液を発酵原料とすることによりエタノールが製造できることが確認できた。【０１３８】
（実施例１２）糖液を発酵原料とする乳酸発酵
実施例６のナノ濾過膜濃縮液２を発酵原料として使用して、ラクトコッカス・ラクティスＪＣＭ７６３８株（乳酸菌）による乳酸発酵試験をおこなった。前述乳酸菌をＹＰＤ培地（２％グルコース、１％酵母エキス（Ｂａｃｔｏ  Ｙｅａｓｔ  Ｅｘｔｒａｃｔ／ＢＤ社）、２％ポリペプトン（日本製薬株式会社製）にて、１日間３７℃で前培養を行った。次に、得られた培養液を、ｐＨ７に水酸化ナトリウムにて調整したナノ濾過膜濃縮液糖液（グルコース濃度７４ｇ／Ｌ）に対し、１％（２０ｍＬ）となるように添加し、ラクトコッカス・ラクティスＪＣＭ７６３８株を２４時間、３７℃の温度で静置培養した。培養液に含まれるＬ−乳酸濃度を以下条件で分析した。
カラム：Ｓｈｉｍ−Ｐａｃｋ  ＳＰＲ−Ｈ（株式会社島津製作所製）
移動相：５ｍＭ  ｐ−トルエンスルホン酸（流速０．８ｍＬ／ｍｉｎ）
反応液：５ｍＭ  ｐ−トルエンスルホン酸、２０ｍＭ  ビストリス、０．１ｍＭ  ＥＤＴＡ・２Ｎａ（流速０．８ｍＬ／ｍｉｎ）
検出方法：電気伝導度
温度：４５℃。【０１３９】
分析の結果、Ｌ−乳酸が６５ｇ／Ｌ蓄積していることが確認され、本発明により得られる糖液を発酵原料とすることにより乳酸を製造できることが確認できた。
【産業上の利用の可能性】
【０１４０】
本発明の糖液の製造方法は、セルロースを含むバイオマスから化学品を製造するための発酵原料となる糖液の製造に利用できる。また、本発明で製造した糖液は、各種化学品の発酵原料として使用することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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