(57)【要約】  乳酸脱水素酵素遺伝子を導入して乳酸生産能を付与した酵母の変異株であって、該変異株の培地ｐＨ３での乳酸生産能が該変異株の親株の乳酸発酵至適ｐＨにおける乳酸生産能と同等以上であることを特徴とする乳酸生産酵母変異株を培養して乳酸を製造する場合、培養時のアルカリ中和を簡略化することができるため、乳酸製造プロセスの簡略化および乳酸生産の低コスト化が可能となる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
乳酸脱水素酵素遺伝子を導入して乳酸生産能を付与した酵母の変異株であって、該変異株の培地ｐＨ３での乳酸生産能が該変異株の親株の乳酸発酵至適ｐＨにおける乳酸生産能と同等以上であることを特徴とする、乳酸生産酵母変異株。
【請求項２】
前記乳酸脱水素酵素遺伝子がＤ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子またはＬ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする、請求項１に記載の乳酸生産酵母変異株。
【請求項３】
前記乳酸脱水素酵素遺伝子がアメリカカブトガニ由来のＤ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする、請求項１または２に記載の乳酸生産酵母変異株。
【請求項４】
前記乳酸脱水素酵素遺伝子がアフリカツメガエル由来のＬ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする、請求項１または２に記載の乳酸生産酵母変異株。
【請求項５】
前記酵母がサッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属に属することを特徴とする、請求項１から４のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株。
【請求項６】
前記酵母がサッカロマイセス・セレビセ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）であることを特徴とする、請求項１から５のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株。
【請求項７】
受託番号がＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８７、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８８、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８９、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１１８９またはＮＩＴＥ  ＢＰ−１１９０として寄託されている酵母であることを特徴とする、請求項１から６のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株。
【請求項８】
請求項１から７のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株を培養することを特徴とする、乳酸の製造方法。
【請求項９】
前記乳酸生産酵母変異株の培養液をｐＨ３以下に維持することを特徴とする、請求項８に記載の乳酸の製造方法。
【請求項１０】
前記乳酸生産酵母変異株の培養液をアルカリ中和せずに培養することを特徴とする、請求項８に記載の乳酸の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、乳酸の製造に好適に用いられる乳酸生産酵母、さらには該酵母株を用いた乳酸の製造方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
生分解性ポリマーであるポリ乳酸は、大気中に二酸化炭素の排出問題やエネルギー問題の顕在化と共にサスティナビリティー（持続可能性）およびライフサイクルアセスメント（ＬＣＡ）対応型製品として強い注目を浴びている。現在主に生産されているポリ乳酸はＬ−乳酸ポリマーであり、ポリマー原料としての光学純度の高いＬ−乳酸が量産化されつつある。【０００３】
また、高い耐熱性を有するポリ乳酸として、ステレオコンプレックスポリ乳酸（Ｓｃ−ＰＬＡ）が注目されており、Ｓｃ−ＰＬＡの原料には、Ｌ−乳酸以外にもＬ−乳酸の光学異性体であるＤ−乳酸を必要とするため、光学純度の高いＤ−乳酸の製造方法の開発が進められている。【０００４】
前述の通り、ポリマー原料用の乳酸は高い光学純度が求められるため、該乳酸の製造方法としては現時点では微生物培養による乳酸発酵に限定されるが、その場合、微生物にとって乳酸生産に最適なｐＨ（以下、乳酸発酵至適ｐＨという。）に保持されながら微生物を培養する必要がある。例えば、乳酸発酵至適ｐＨが４．５付近にある乳酸生産酵母を培養して乳酸を製造する場合、乳酸生産酵母の乳酸生産性を維持するためにアルカリ中和により培養液のｐＨを乳酸発酵至適ｐＨに維持する必要があるが（特許文献１参照。）、そのために乳酸生産酵母培養液をアルカリ性物質で中和すると、添加するアルカリ性物質の量によっては後続する乳酸の分離・精製工程で石膏等の副産物が生じる場合があり、それによって乳酸の分離・精製工程が煩雑になってしまい、その結果、乳酸製造コスト高の要因になってしまっている。また、これまでに低ｐＨ耐性を有する乳酸生産酵母を利用して、該乳酸生産酵母の乳酸発酵至適ｐＨよりも低いｐＨ領域であるｐＨ３で乳酸を製造した例はあるものの、乳酸発酵至適ｐＨよりも低いｐＨ領域での乳酸生産性は、乳酸発酵至適ｐＨに調整した場合と比較して乳酸生産性が低下してしまうという問題がある（特許文献２参照。）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００９−１７１８７９号公報
【特許文献２】特表２００９−５１７０４５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、乳酸生産酵母の培養による乳酸生産に伴って生じる培養液の低ｐＨ状態に耐性を有し、かつ低ｐＨ状態での乳酸生産能が乳酸発酵至適ｐＨでの乳酸生産能と同等以上である乳酸生産酵母変異株、および該変異株を用いた乳酸の製造方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題を解決するために、本発明者らが鋭意検討した結果、乳酸生産酵母に突然変異を付与することで、本発明の課題を解決できることを見出し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下の（１）〜（８）で構成される。
（１）乳酸脱水素酵素遺伝子を導入して乳酸生産能を付与した酵母の変異株であって、該変異株の培地ｐＨ３での乳酸生産能が該変異株の親株の乳酸発酵至適ｐＨにおける乳酸生産能と同等以上であることを特徴とする、乳酸生産酵母変異株。
（２）前記乳酸脱水素酵素遺伝子がＤ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子またはＬ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする、（１）に記載の乳酸生産酵母変異株。
（３）前記乳酸脱水素酵素遺伝子がアメリカカブトガニ由来のＤ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする、（１）または（２）に記載の乳酸生産酵母変異株。
（４）前記乳酸脱水素酵素遺伝子がアフリカツメガエル由来のＬ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする、（１）または（２）に記載の乳酸生産酵母変異株。
（５）前記酵母がサッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属に属することを特徴とする、（１）から（４）のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株。
（６）前記酵母がサッカロマイセス・セレビセ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）であることを特徴とする、（１）から（５）のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株。
（７）受託番号がＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８７、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８８、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８９、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１１８９またはＮＩＴＥ  ＢＰ−１１９０として寄託されている酵母であることを特徴とする、請求項１から６のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株。
（８）（１）から（７）のいずれかに記載の乳酸生産酵母変異株を培養することを特徴とする、乳酸の製造方法。
（９）前記乳酸生産酵母変異株の培養液をｐＨ３以下に維持することを特徴とする、（８）に記載の乳酸の製造方法。
（１０）前記乳酸生産酵母変異株の培養液をアルカリ中和せずに培養することを特徴とする、（８）に記載の乳酸の製造方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、乳酸による低ｐＨ状態でも乳酸生産酵母の乳酸生産能を維持することができるため、乳酸製造プロセスの簡略化および乳酸生産の低コスト化が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】Ｄ−乳酸生産酵母の親株であるＳＵ０４２株およびＤ−乳酸生産酵母変異株のＤ−乳酸生産能の比較を示す図である。
【図２】Ｄ−乳酸生産酵母の親株であるＳＵ０４２株およびＤ−乳酸生産酵母変異株の各ｐＨでの乳酸生産能の比較を示す図である。
【図３】Ｄ−乳酸生産酵母の親株であるＳＵ０４２株およびＤ−乳酸生産酵母変異株のアルカリ中和しない培養での乳酸生産能の比較を示す図である。
【図４】Ｌ−乳酸生産酵母の親株であるＨＩ００３株およびＬ−乳酸生産酵母変異株のＬ−乳酸生産能の比較を示す図である。
【図５】Ｌ−乳酸生産酵母の親株であるＨＩ００３株およびＬ−乳酸生産酵母変異株の各ｐＨでの乳酸生産能の比較を示す図である。
【図６】Ｌ−乳酸生産酵母の親株であるＨＩ００３株およびＬ−乳酸生産酵母変異株のアルカリ中和しない培養での乳酸生産能の比較を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明の乳酸生産酵母変異株は、公知の手法によって乳酸脱水素酵素遺伝子を導入して乳酸生産能を付与した酵母について、さらに変異処理を施すことによって得られた変異株のことをいう。以下、本発明の乳酸生産酵母変異株について詳細に説明する。
【００１１】
酵母としては、サッカロマイセス属（Ｇｅｎｕｓ  Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、クルベロマイセス属（Ｇｅｎｕｓ  Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）、シゾサッカロミセス属（Ｇｅｎｕｓ  Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、トルロプシス属（Ｇｅｎｕｓ  Ｔｏｌｕｒｏｐｕｓｉｓ）、カンジダ属（Ｇｅｎｕｓ  Ｃａｎｄｉｄａ）、ピキア属（Ｇｅｎｕｓ  Ｐｉｃｈｉａ）、ヤロウィア属（Ｇｅｎｕｓ  Ｙａｒｒｏｗｉａ）、ハンゼヌラ属（Ｇｅｎｕｓ  Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）、イサケンキア属（Ｇｅｎｕｓ  Ｉｓｓａｃｈｅｎｋｉａ）、トリコスポロン（Ｇｅｎｕｓ  Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ）、ヤマダザイマ（Ｇｅｎｕｓ  Ｙａｍａｄａｚｙｍａ）に属する酵母を挙げることができる。具体的には、サッカロマイセス・セレビセ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、サッカロマイセス・コプシス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｏｐｓｉｓ）、サッカロマイセス・ソノレンシス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｏｎｏｒｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス・ウバルム（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｕｖａｒｕｍ）、カンジダ・ソノレンシス（Ｃａｎｄｉｄａ  ｓｏｎｏｒｅｎｓｉｓ）、カンジダ・グラブラータ（Ｃａｎｄｉｄａ  ｇｌａｂｒａｔａ）、カンジダ・リポリチカ（Ｃａｎｄｉｄａ  ｌｉｐｏｌｙｔｉｃａ）、カンジダ・メタネソルボサ（Ｃａｎｄｉｄａ  ｍｅｔｈａｎｅｓｏｒｂｏｓａ）、カンジダ・エタノリカ（Ｃａｎｄｉｄａ  ｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）、カンジダ・クルセイ（Ｃａｎｄｉｄａ  ｋｒｕｓｅｉ）、ピキア・クドリアヴゼビー（Ｐｉｃｈｉａ  ｋｕｄｒｉａｖｚｅｖｉｉ）、ピキア・ガレイホルミス（Ｐｉｃｈｉａ  ｇａｌｅｉｆｏｒｍｉｓ）、ピキア・デセルチコラ（Ｐｉｃｈｉａ  ｄｅｓｅｒｔｉｃｏｌａ）、ピキア・メンブラニファシエンス（Ｐｉｃｈｉａ  ｍｅｍｂｒａｎｉｆａｃｉｅｎｓ）、ピキア・ファメンタンス（Ｐｉｃｈｉａ  ｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）、トルロプシス・グラブラータ（Ｔｏｌｕｒｏｐｕｓｉｓ  ｇｌａｂｒａｔａ）、トルラスポラ・プレトリエンシス（Ｔｏｒｕｌａｓｐｏｒａ  ｐｒｅｔｏｒｉｅｎｓｉｓ）、クルベロマイセス・ラクティス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ  ｌａｃｔｉｓ）、クルベロマイセス・マルキシアヌス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ  ｍａｒｘｉａｎｕｓ）、クルベロマイセス・サモトレランス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ  ｔｈｅｒｍｏｔｏｌｅｒａｎｓ）、シゾサッカロミセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）、シゾサッカロミセス・ブルデリ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｂｕｌｄｅｒｉ）、イサケンキア・オリエンタリス（Ｉｓｓａｃｈｅｎｋｉａ  ｏｒｉｅｎｔａｌｉｓ）、ハンゼヌラ・ポリモルファ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）、ヤマダザイマ・スティプチック（Ｙａｍａｄａｚｙｍａ  ｓｔｙｐｔｉｃ）等の酵母である。なお、本発明で用いられる酵母として好ましいのはサッカロマイセス属に属する酵母であり、より好ましいのはサッカロマイセス・セレビセ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）である。
【００１２】
多くの酵母は本来酵素活性の高い乳酸脱水素酵素活性を発現せず、乳酸を高生産することはできない。したがって、乳酸生産酵母を得るためには、酵母に乳酸脱水素酵素遺伝子を導入することによって乳酸脱水素酵素活性を付与する必要がある。酵母に乳酸脱水素酵素遺伝子を導入して乳酸脱水素活性を付与する方法は公知であり、例えば、ＷＯ２０１０／１４０６０２号またはＷＯ２００９／０９９０４４号に開示される方法が挙げられる。
【００１３】
本発明で酵母に導入される乳酸脱水素酵素遺伝子は、乳酸脱水素酵素活性、すなわち還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤＨ）とピルビン酸を、酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ＋）と乳酸に変換する活性を持つタンパク質をコードしていれば特に限定はないが、Ｌ−乳酸を製造する場合には、ピルビン酸をＬ−乳酸に変換するＬ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子を用いることが好ましく、また、Ｄ−乳酸を製造する場合には、ピルビン酸をＤ−乳酸に変換するＤ−乳酸脱水素酵素をコードする遺伝子を用いることが好ましい。
【００１４】
前記乳酸脱水素酵素遺伝子は、酵母において活性のある乳酸脱水素酵素を発現しうる遺伝子であれば特に限定されないが、酵母において高い乳酸脱水素酵素活性を発現しうる乳酸脱水素酵素遺伝子としては、Ｌ−乳酸脱水素酵素遺伝子としてアフリカツメガエル（Ｘｅｎｏｐｕｓ  ｌａｅｖｉｓ）由来のもの（特開２００８−２９３２９号公報、ＷＯ２００９／０９９０４４号参照。）、Ｄ−乳酸脱水素酵素遺伝子としてアメリカカブトガニ（Ｌｉｍｕｌｕｓ  ｐｏｌｙｐｈｅｍｕｓ）由来のもの（ＷＯ２０１０／１４０６０２号参照。）が知られており、本発明においてもそれらの遺伝子を好ましく使用することができる。
【００１５】
前記乳酸生産酵母（以下、親株という。）から、本発明の乳酸生産酵母変異株を取得する方法としては、親株の乳酸発酵至適ｐＨ条件下またはそれより低いｐＨ値で培養しながら親株に突然変異を誘発し、引き続き乳酸発酵至適ｐＨ値よりも０．５以上低く、かつ乳酸を０．５〜１０％（ｗ／ｖ）含む選抜培地で培養することによって好ましく取得することができる。なお、本明細書でいう乳酸発酵至適ｐＨとは、ｐＨ４．０、４．５、５．０、５．５、６．０の各ｐＨ条件下において親株を一定時間回分培養した結果の乳酸生産性を培地中の乳酸濃度で定量した場合に乳酸生産性がピークとなるｐＨ条件のことであり、乳酸生産性がピークとなるｐＨに数値幅が見られる場合は、その下限値のｐＨを乳酸発酵至適ｐＨと見なす。酵母の乳酸発酵至適ｐＨは、使用する酵母の種に依存するものであり、例えば、乳酸生産酵母がサッカロマイセス・セレビセ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）である場合、特開２００９−１７１８７９号公報の参考例２の結果から、乳酸発酵至適ｐＨはｐＨ４．５であると判断することができる。
【００１６】
酵母に突然変異を誘発する方法としては、変異誘発剤、例えば、紫外線、放射線または変異誘発化合物によりランダムに変異を誘発する方法や、ケモスタットを用いた酸に馴化させることにより得られる自然変異導入方法、特定の遺伝的形質に変異を誘発させる位置指向性突然変異誘発法(ｓｉｔｅ  ｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ)を用いることができるが、本発明の乳酸生産酵母変異株を得る場合、変異誘発剤を用いてランダムに変異を誘発する方法であることが好ましく取得される。変異誘発剤を用いて変異を誘発して乳酸生産酵母変異株を取得する方法としては、例えば、野生型酵母に、変異操作、例えば化学的変異誘発剤であるＮ−メチル−Ｎ’−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）（微生物実験マニュアル、１９８６年、１３１頁、講談社サイエンティフィック社）、メタンスルホン酸エチル（ＥＭＳ：Ｅｔｈｙｌ  ｍｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎａｔｅ）、硫酸ジエチル（Ｄｉｅｔｈｙｌ  ｓｕｌｆａｔｅ）または１−メチル−ニトロニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ：１−Ｍｅｔｈｙｌ−ｎｉｔｒｏｎｉｔｒｏｓｏｇｕａｎｉｄｉｎｅ）を用いる方法（酵母遺伝子実験マニュアル、２００２年、９−１７項、丸善株式会社）、あるいは不均衡変異誘導プラスミド（特表２００６−５２１１１３号公報参照。）を用いる方法が挙げられる。なお、乳酸産生酵母変異株の作製の過程で、乳酸脱水素酵素活性が低下した変異株については、ＷＯ２０１０／１４０６０２号公報に開示される方法を用いた乳酸脱水素酵素遺伝子の再導入により乳酸脱水素酵素活性を復元することができる。
【００１７】
乳酸生産酵母に突然変異を誘発する際の培地の培地組成に特に限定はないが、本発明においては合成最少培地であるＳＤ培地が好ましく用いられる。また、乳酸生産酵母変異株を選抜するための選抜培地の培地組成としては、乳酸を一定量含む以外は特に制限はないが、合成最少培地であるＳＤ培地が好ましく用いられ、また、乳酸生産酵母変異株のコロニーを選抜可能な固形培地であることが好ましい。
【００１８】
前記乳酸生産酵母変異株の選抜培地に含まれる乳酸は特に限定されないが、Ｌ−乳酸生産酵母変異株を選択する場合はＬ−乳酸であることが好ましく、Ｄ−乳酸生産酵母変異株を選択する場合はＤ−乳酸であることが好ましい。なお、Ｌ−乳酸またはＤ−乳酸の光学純度は、９０〜９９．９％ｅ．ｅ．であることが好ましく、９９〜９９．９％ｅ．ｅ．であることがより好ましい。
【００１９】
また、乳酸脱水素酵素遺伝子が導入されていない酵母に突然変異を誘発して低ｐＨ耐性の酵母を取得し、該酵母に前記乳酸脱水素酵素遺伝子を導入することによっても本願発明の乳酸発酵酵母変異株を取得することができる。その場合の低ｐＨ耐性酵母を取得する方法は、前述の方法に準じて乳酸脱水素酵素遺伝子が導入されていない酵母に突然変異を誘発させればよい。
【００２０】
前記手法によって選抜された酵母株が、本発明の乳酸生産酵母変異株であるかどうかについては、変異株の培地ｐＨ３の条件下での乳酸生産能と、変異株または親株の乳酸発酵至適ｐＨの条件下での乳酸生産能を培地中の乳酸濃度で定量比較した場合に、培地ｐＨ３の条件下での乳酸生産能が乳酸発酵至適ｐＨでの乳酸生産能と同等以上であることを確認することによって判断することができる。また、変異株の中、変異株の培地ｐＨ３の条件下での乳酸生産能と、変異株または親株の乳酸発酵至適ｐＨの条件下での乳酸生産能を培地中の乳酸濃度で定量比較し、培地ｐＨ３の条件下での乳酸生産能が乳酸発酵至適ｐＨでの乳酸生産能より劣ったとしても、原因が乳酸脱水素酵素遺伝子に変異が入り、乳酸脱水素酵素活性の低下に起因する場合、前述の通り損傷した乳酸脱水素酵素遺伝子を復元することにより本発明の乳酸生産酵母変異株を得ることができる。ここで、培地ｐＨ３での乳酸生産性を判断基準とした根拠としては、特開２００９−１７１８７９号公報の参考例３において、乳酸生産酵母をアルカリ中和しないで回分培養した場合の培地ｐＨが２．８であったことが開示されており、乳酸生産酵母をアルカリ中和しないで回分培養して乳酸を製造する場合の培地ｐＨは３付近で推移すると推定したことによる。乳酸生産能を比較するために使用される培地に特に制限はないが、合成完全培地であるＳＣ培地または粗糖を用いた天然培地（特開２００９−１４２２１０または特開２００９−１７１８７９参照。）が好ましく用いられる。
【００２１】
前記手法によって得られた本発明の乳酸生産酵母変異株の具体例としては、ＷＯ２０１０／１４０６０２号公報に記載のアメリカカブトガニ由来のＤ−乳酸脱水素酵素遺伝子を導入したＤ−乳酸生産性酵母の変異株であって、受託番号がＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８７、ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８８またはＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８９や、ＷＯ２００９／０９９０４４号に記載のアフリカツメガエル由来のＬ−乳酸脱水素酵素遺伝子を導入したＬ−乳酸生産性酵母の変異株であって、受託番号がＮＩＴＥ  ＢＰ−１１８９またはＮＩＴＥ  ＢＰ−１１９０として独立行政法人製品評価技術基盤機構に寄託されている乳酸生産酵母変異株が挙げられる。
【００２２】
次に、本発明の乳酸生産酵母変異株（以下、変異株という。）を利用した乳酸の製造方法について説明する。なお、本明細書でいう乳酸とは、フリー体、乳酸塩および誘導体を包含するものとする。
【００２３】
変異株を培養する培地としては、該変異株が資化可能な炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、該酵母の培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれも使用することができる。具体的には、炭素源としては、グルコース、フルクトース、スクロース、ガラクトース、マルトース、ラフィノース、トレハロース、ソルボース、セロビオース、ラクトース、メリビオース、メレジトース、イヌリン、キシロース、アラビノース、リボース、ラムノース、グルコサミン、エリスリトール、リビトール、マンニトール、グルシトール、サリシン、スターチ、デンプン等の炭水化物またはその加水分解物、バイオマス由来のセルロースなどからの糖化液、酢酸、プロピオン酸、クエン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコールを用いることができる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩またはその他の含窒素化合物の他、ペプトン、肉エキス、コーンスティープリカー等を用いることができる。無機物としては、リン酸第一カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウムなどを用いることができる。これら炭素源、窒素源、無機塩類等は、培養開始時に一括して添加しても良いし、培養中分割して、または連続的に添加するもできる。
【００２４】
変異株の培養は、通常、振とう培養または通気攪拌培養等の好気条件下から、通気を実施しないような嫌気条件下までの範囲で、乳酸の生産性が良い条件を設定することができるが、微好気から嫌気の条件下で培養することが好ましい。また、培養温度は変異株が乳酸を生産できるような温度条件であれば特に制限はないが、２５〜３７℃が好ましく、２８〜３５℃がより好ましい。
【００２５】
変異株培養時の培養液のｐＨは、例えば、水酸化カルシウム、炭酸カルシウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア水、アンモニアガスなどのアルカリ性物質、乳酸、酢酸、コハク酸、ピルビン酸、イタコン酸、クエン酸などの有機酸、あるいは塩酸、硫酸などの鉱酸によって適宜調整されてもよく、また、培養液のｐＨが一定の範囲内に保たれるように緩衝されてもよいが、後述の通り、培養液へのアルカリ性物質の添加量によっては後続の乳酸の分離・精製工程で石膏が生じる原因となってしまう場合があることから、培養液ｐＨをｐＨ３以下に維持することが好ましい。なお、培養液ｐＨを目的のｐＨ値に維持するとは、培養液ｐＨを目的のｐＨ値になるように制御することをいい、培養工程に該制御操作が含まれていれば、培養期間中に一時的に培養液ｐＨが目的のｐＨ値を上回ることは許容される。また、培養前の培地ｐＨが目的のｐＨ値を上回っていたとしても、培養により生産される乳酸によって培養液ｐＨが目的のｐＨ値以下になる場合についても、培養液ｐＨを目的のｐＨ値に維持する操作であると見なすものとする。
【００２６】
変異株の培養方法としては、目的とする乳酸を発酵生産しうる形態であれば特に制限はなく、例えば、バッチ培養、フェドバッチ培養、ケモスタット培養、連続培養などを採用できるが、バッチ培養またはＷＯ２００７／０９７２６０に記載されている膜利用連続培養を好ましく採用することができる。
【００２７】
前記変異株の培養液に含まれる乳酸は、当業者にとって公知の手法、例えば、晶析、有機溶媒による抽出、イオン交換、エステル化蒸留、ＷＯ２００９／００４９２２に開示されるナノ濾過膜による精製と蒸留を組み合わせた分離・精製方法、あるいはそれらの組み合わせによって分離・精製することができる。なお、乳酸発酵酵母を乳酸発酵至適ｐＨに調整して培養する場合、培養工程でのアルカリ中和により培養液中の乳酸が乳酸塩として存在することになるが、該培養液からのフリー体の乳酸を分離・精製する場合、乳酸塩の解塩工程が必要で、乳酸塩の解塩工程では硫酸などの酸成分が必要となり、また、それに伴って生じる石膏などの副生物を除去する工程を伴うことになる。本発明の変異株の特徴を利用すれば、変異株の培養工程でのアルカリ中和のアルカリ添加量を少量にする、あるいはアルカリ中和しないことで培養液のｐＨをｐＨ３以下に維持しながら乳酸を生産することが可能になり、その結果、フリー体の乳酸の分離・精製工程での解塩工程を省略または簡略化することができるため、本発明の乳酸の製造方法は、フリー体の乳酸を製造する場合に好ましく適用される。
【実施例】
【００２８】
以下に実施例を示し、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例の記載に限定されるものではない。【００２９】
（参考例１）アメリカカブトガニ由来のＤ−乳酸脱水素酵素遺伝子を導入した酵母
本発明の乳酸生産酵母変異株を得るための親株として、ＷＯ２０１０／１４０６０２号に記載されるアメリカカブトガニ由来のＤ−乳酸脱水素酵素遺伝子を酵母（サッカロマイセス・セレビセ）に導入したＳＵ０４２株を使用した。【００３０】
（参考例２）アフリカツメガエル由来のＬ−乳酸脱水素酵素遺伝子を導入した酵母
本発明の乳酸生産酵母変異株を得るための親株として、ＷＯ２００９／０９９０４４号に記載されるアフリカツメガエル由来のＬ−乳酸脱水素酵素遺伝子を酵母（サッカロマイセス・セレビセ）に導入したＨＩ００３株を使用した。【００３１】
（参考例３）乳酸濃度および光学純度のＨＰＬＣによる分析方法
乳酸の濃度は、以下の条件でＨＰＬＣ法により測定した。
カラム：Ｓｈｉｍ−Ｐａｃｋ  ＳＰＲ−Ｈ（株式会社島津製作所製）
移動相：５ｍＭ  ｐ−トルエンスルホン酸（流速０．８ｍＬ／分）
反応液：５ｍＭ  ｐ−トルエンスルホン酸、２０ｍＭ ビストリス、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ・２Ｎａ（流速０．８ｍＬ／分）
検出方法：電気伝導度
温度：４５℃。【００３２】
また、乳酸の光学純度は、以下の条件でＨＰＬＣ法により測定したＬ−乳酸およびＤ−乳酸濃度の測定結果から、次式に基づいて計算した。
カラム：ＴＳＫ−ｇｅｌ  Ｅｎａｎｔｉｏ  Ｌ１（東ソー株式会社製）
移動相：１ｍＭ  硫酸銅水溶液
流速：１．０ｍｌ／分
検出方法：ＵＶ２５４ｎｍ
温度：３０℃
Ｄ−乳酸光学純度（％ｅ．ｅ．）＝１００×（Ｄ−Ｌ）／（Ｌ＋Ｄ）
Ｌ−乳酸光学純度（％ｅ．ｅ．）＝１００×（Ｌ−Ｄ）／（Ｌ＋Ｄ）
ここで、ＬはＬ−乳酸の濃度であり、ＤはＤ−乳酸の濃度を表す。【００３３】
（比較例１）乳酸生産酵母の乳酸生産能評価
参考例１に記載のＳＵ０４２株を、表１の発酵培地に２％（ｗ／ｖ）Ｄ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）を加えた培地５ｍｌ（ｐＨ３、水酸化カルシウムでｐＨ調整。）、サッカロマイセス・セレビセの乳酸発酵至適ｐＨ（特開２００９−１７１８７９号公報の実施例に記載の乳酸発酵酵母の乳酸生産性からｐＨ４．５が乳酸発酵至適ｐＨであると判断した。）になるよう調整した表１の発酵培地５ｍｌ（ｐＨ４．５）でそれぞれ３０℃、７２時間振とう培養した。乳酸生産酵母変異株の親株となるＳＵ０４２株について、培地ｐＨ３での乳酸生産能と乳酸発酵至適ｐＨ条件下（ｐＨ４．５）での乳酸生産能を酵母の乳酸生産量で比較した結果、図１に見られるとおり培地ｐＨ３での乳酸生産能は、乳酸発酵至適ｐＨ条件下での乳酸生産性より約５５％まで低下することが確認できた。なお、本乳酸生産能評価結果は３回以上再現性を得た結果である。【００３４】
【表１】
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【００３５】
（実施例１）乳酸生産酵母変異株の作製および乳酸生産能評価
参考例１に記載のＳＵ０４２株にＥＭＳ（シグマ−アルドリッチ社製）による変異処理を行った。ＳＵ０４２株をサッカロマイセス・セレビセの乳酸発酵至適ｐＨ（ｐＨ４．５）に調整されたＳＤ培地２ｍｌで２４時間培養し、さらに該培養液の０．５％を同様のＳＤ培地に植菌して２４時間培養しつつ、ＥＭＳを添加して乳酸生産酵母に突然変異を誘発させ、その後、突然変異誘発のための培養液の５％を２％（ｗ／ｖ）Ｄ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）含有ＳＤ培地２ｍｌ（ｐＨ２．８、水酸化カルシウムでｐＨ調整。）に植菌して２４時間培養した。【００３６】
突然変異処理した培養液について、水酸化カルシウムでｐＨ２．８、ｐＨ３．０になるよう調整した２％（ｗ／ｖ）Ｄ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）含有ＳＤ寒天培地、ｐＨ４．５のＳＤ寒天培地でそれぞれ７２時間培養し、ｐＨ２．８の寒天培地から１株（ＫＳ５２）、ｐＨ３．０の寒天培地から１株（ＫＳ７８）、ｐＨ４．５のＳＤ寒天培地から１株（ＫＳ４５）を選抜した。【００３７】
選抜した３株について、それぞれ表１に２％（ｗ／ｖ）Ｄ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）を加えた発酵培地５ｍｌ（ｐＨ３、水酸化カルシウムでｐＨ調整。）での乳酸生産能の評価結果を親株の乳酸発酵至適ｐＨ（ｐＨ４．５）条件下で７２時間培養した結果を図１に示す。選抜した株の乳酸生産能は、いずれも親株の乳酸発酵至適ｐＨでの乳酸生産能と同等以上であり、また、親株のｐＨ３での乳酸生産能の約１．８倍であることを確認した。この結果から、選抜した３株は、いずれも乳酸による低ｐＨ状態において耐性を有する乳酸生産酵母変異株であると判断し、独立行政法人製品評価技術基盤機構に寄託した（ＫＳ４５株の受託番号：ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８７、ＫＳ５２株の受託番号：ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８８、ＫＳ７８株の受託番号：ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８９）。なお、本乳酸生産能評価結果は３回以上再現性を得た結果である。【００３８】
（実施例２〜４、比較例２）乳酸生産酵母変異株のバッチ発酵での乳酸生産能評価
乳酸生産酵母変異株ＫＳ４５株（実施例２）、ＫＳ５２株（実施例３）、ＫＳ７８株（実施例４）と、親株であるＳＵ０４２株（比較例２）について、それぞれ表２に示す乳酸発酵培地を用いてバッチ発酵によりＤ−乳酸を製造した。なお、培地組成である粗糖には“沖縄の優糖精”（ムソー株式会社）を用い、該培地は高圧蒸気滅菌（１２１℃、１５分）して用いた。【００３９】
乳酸生産能評価のための運転条件を以下に示す。
反応槽容量（乳酸発酵培地量）：２Ｌ（１Ｌ）、温度調整：３０℃、反応槽通気量：０．２Ｌ／ｍｉｎ、反応槽攪拌速度：４００ｒｐｍ、ｐＨ調整：５Ｎ  水酸化カルシウム懸濁液により適宜調整。【００４０】
まず、変異株３株をそれぞれ試験管で５ｍｌの表１の乳酸発酵培地で一晩振とう培養した（前々培養）。前々培養液を新鮮な前々培養と同様な発酵培地５０ｍｌに植菌し５００ｍｌ容の坂口フラスコで２４時間振とう培養した（前培養）。前培養液の全量を植菌してから本培養を行った。本培養はｐＨを５、４．５、４、３、２．８にそれぞれ調整しながら７２時間培養した。それぞれのバッチ培養の結果を図２に示す。その結果、変異株３株はいずれもｐＨ３以下の低ｐＨ状態であっても親株の乳酸発酵至適ｐＨ（ｐＨ４．５）と同等以上の乳酸生産能を示し、９９．９ｅ．ｅ．以上の高い光学純度のＤ−乳酸を生産した。一方、親株はｐＨ３以下の低ｐＨ状態では乳酸発酵至適ｐＨと比較して乳酸生産能が大きく減少した。【００４１】
【表２】
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【００４２】
（実施例５、比較例３）乳酸生産酵母変異株をアルカリ中和せずに培養した場合の乳酸生産能評価
乳酸生産酵母変異株ＫＳ７８株（実施例５）と、その親株であるＳＵ０４２株（比較例３）をそれぞれ表２の乳酸発酵培地５ｍｌ（ｐＨ５）に植菌し、３０℃、７２時間の条件で振とう培養した場合の乳酸生産能を図３に示す。アルカリ中和せずに培養をしたことによって、それぞれの培養液のｐＨはｐＨ２．５まで低下したにも関わらず、変異株は親株の約９倍の乳酸生産能を示し、本発明の変異株を利用すれば培養工程でアルカリ中和せずに乳酸を高生産できることが確認できた。【００４３】
（比較例４）乳酸生産酵母の乳酸生産能評価
参考例２に記載のＨＩ００３株を、表１の発酵培地に２％（ｗ／ｖ）Ｌ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）を加えた培地５ｍｌ（ｐＨ３、水酸化カルシウムでｐＨ調整。）、サッカロマイセス・セレビセの乳酸発酵至適ｐＨになるよう調整した表１の発酵培地５ｍｌ（ｐＨ４．５）でそれぞれ３０℃、７２時間振とう培養した。乳酸生産酵母変異株の親株となるＨＩ００３株について、培地ｐＨ３での乳酸生産能と乳酸発酵至適ｐＨ条件下（ｐＨ４．５）での乳酸生産能を酵母の乳酸生産量で比較した結果、図４に見られるとおり培地ｐＨ３での乳酸生産能は、乳酸発酵至適ｐＨ条件下での乳酸生産性より約７０％まで低下することが確認できた。なお、本乳酸生産能評価結果は３回以上再現性を得た結果である。【００４４】
（実施例６）乳酸生産酵母変異株の作製および乳酸生産能評価
参考例２に記載のＨＩ００３株にＥＭＳ（シグマ−アルドリッチ社製）による変異処理を行った。ＨＩ００３株をサッカロマイセス・セレビセの乳酸発酵至適ｐＨ（ｐＨ４．５）に調整されたＳＤ培地２ｍｌで２４時間培養し、さらに該培養液の０．５％を同様のＳＤ培地に植菌して２４時間培養しつつ、ＥＭＳを添加して乳酸生産酵母に突然変異を誘発させ、その後、突然変異誘発のための培養液の５％を２％（ｗ／ｖ）Ｌ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）含有ＳＤ培地２ｍｌ（ｐＨ２．８、水酸化カルシウムでｐＨ調整。）に植菌して２４時間培養した。【００４５】
突然変異処理した培養液について、水酸化カルシウムでｐＨ２．８になるよう調整した２％（ｗ／ｖ）Ｌ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）含有ＳＤ寒天培地、ｐＨ４．５のＳＤ寒天培地でそれぞれ７２時間培養し、ｐＨ２．８の寒天培地から１株（ＫＳ２４）、ｐＨ４．５のＳＤ寒天培地から１株（ＫＳ３０）を選抜した。【００４６】
選抜した２株について、それぞれ表１に２％（ｗ／ｖ）Ｌ−乳酸（＞９９．９ｅ．ｅ．）を加えた発酵培地５ｍｌ（ｐＨ３、水酸化カルシウムでｐＨ調整。）での乳酸生産能の評価結果を親株の乳酸発酵至適ｐＨ（ｐＨ４．５）条件下で７２時間培養した結果を図４に示す。選抜した株の乳酸生産能は、いずれも親株の乳酸発酵至適ｐＨでの乳酸生産能と同等以上であり、また、親株のｐＨ３での乳酸生産能の約１．７倍であることを確認した。この結果から、選抜した２株は、いずれも乳酸による低ｐＨ状態において耐性を有する乳酸生産酵母変異株であると判断し、独立行政法人製品評価技術基盤機構に寄託した（ＫＳ２４株の受託番号：ＮＩＴＥ  ＢＰ−１１８９、ＫＳ３０株の受託番号：ＮＩＴＥ  ＢＰ−１１９０）。なお、本乳酸生産能評価結果は３回以上再現性を得た結果である。【００４７】
（実施例７〜８、比較例５）乳酸生産酵母変異株のバッチ発酵での乳酸生産能評価
乳酸生産酵母変異株ＫＳ２４株（実施例７）、ＫＳ３０株（実施例８）と、親株であるＨＩ００３株（比較例５）について、それぞれ表２に示す乳酸発酵培地を用いてバッチ発酵によりＬ−乳酸を製造した。培地及び培養条件などは前記実施例２〜４と比較例２と同様である。その結果、変異株２株はいずれもｐＨ３以下の低ｐＨ状態であっても親株の乳酸発酵至適ｐＨ（ｐＨ４．５）と同等以上の乳酸生産能を示し、９９．９ｅ．ｅ．以上の高い光学純度のＬ−乳酸を生産した。一方、親株はｐＨ３以下の低ｐＨ状態では乳酸発酵至適ｐＨと比較して乳酸生産能が大きく減少した。【００４８】
（実施例９、比較例６）乳酸生産酵母変異株をアルカリ中和せずに培養した場合の乳酸生産能評価
乳酸生産酵母変異株ＫＳ２４株（実施例７）と、その親株であるＨＩ００３株（比較例５）をそれぞれ表２の乳酸発酵培地５ｍｌ（ｐＨ５）に植菌し、３０℃、７２時間の条件で振とう培養した場合の乳酸生産能を図６に示す。アルカリ中和せずに培養をしたことによって、それぞれの培養液のｐＨはｐＨ２．５まで低下したにも関わらず、変異株は親株の約３倍の乳酸生産能を示し、本発明の変異株を利用すれば培養工程でアルカリ中和せずに乳酸を高生産できることが確認できた。
【産業上の利用可能性】
【００４９】
本発明の乳酸生産酵母変異株は、食品用途や医薬用途で使用され、また、生分解性ポリマーの原料となる乳酸の製造に利用することができる。
【受託番号】
【００５０】
ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８７（寄託機関の名称：独立行政法人製品評価技術基盤機構  特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）、寄託機関のあて名：〒２９２−０８１８  日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８、寄託日：２０１１年４月２５日）
ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８８（寄託機関の名称：独立行政法人製品評価技術基盤機構  特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）、寄託機関のあて名：〒２９２−０８１８  日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８、寄託日：２０１１年４月２５日）
ＮＩＴＥ  ＢＰ−１０８９（寄託機関の名称：独立行政法人製品評価技術基盤機構  特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）、寄託機関のあて名：〒２９２−０８１８  日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８、寄託日：２０１１年４月２５日）
ＮＩＴＥ  ＢＰ−１１８９（寄託機関の名称：独立行政法人製品評価技術基盤機構  特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）、寄託機関のあて名：〒２９２−０８１８  日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８、寄託日：２０１１年１２月２２日）
ＮＩＴＥ  ＢＰ−１１９０（寄託機関の名称：独立行政法人製品評価技術基盤機構  特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）、寄託機関のあて名：〒２９２−０８１８  日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８、寄託日：２０１１年１２月２２日）
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【国際調査報告】
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