(57)【要約】  本発明は、十分な多様性を有し、プロテアーゼ活性を有する標的物質に結合する化合物のスクリーニングにも用いることができるライブラリーを効率よく製造する方法等を提供することを目的とする。  本発明は、下記式（Ｉ）  A−（Xaa0）n−B      （Ｉ）［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーの製造方法を提供するものである。【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーの製造方法であって：
N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAライブラリーを製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
前記mRNAライブラリーを用いて、無細胞翻訳系により前記前駆体ペプチドを発現させ、ペプチドライブラリーを製造する工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前記ペプチドライブラリーとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程と（ここでリーダー配列は、0〜50アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列をいう）、を含む方法。
【請求項２】
下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物と、前記式（Ｉ）で示されるペプチドをコードするmRNAとの複合体を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーの製造方法であって：
N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAライブラリーを製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
前記mRNAライブラリーの各mRNAの3’末端にピューロマイシンを結合させ、ピューロマイシン結合mRNAライブラリーを製造する工程と；
前記ピューロマイシン結合mRNAライブラリーを用いて、無細胞翻訳系により前記前駆体ペプチドを発現させ、ペプチド−mRNA複合体ライブラリーを製造する工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前記ペプチド−mRNA複合体ライブラリーとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程と（ここでリーダー配列は、0〜50アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列をいう）、を含む方法。
【請求項３】
前記式（Ｉ）において、−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−であり
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から20より選択される整数を示す。］、
前記アゾリン化合物には、Xaa1及びXaa２のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されている、請求項１又は２に記載のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法。
【請求項４】
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つを、以下の(i)〜(iv)の少なくとも1つの特徴を有するペプチドとする、請求項１から３のいずれか１項に記載の方法：
(i) mが2から40である（但し、7及び8を除く）；
(ii) nが1から20である（但し、3及び4を除く）；
(iii) Xaa1の少なくとも1つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つが親水性アミノ酸である。
【請求項５】
前記−（Xaa0）m−で示されるペプチドの少なくとも1つを、配列番号：１０〜５７のいずれかで表されるペプチドとする、請求項１から３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
前記アゾリン化合物の少なくとも1つが、アゾリン骨格を5以上有する、請求項１から５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
前記mRNAライブラリーの各mRNAは、前記リーダー配列を含むペプチドが、前記認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとの融合ペプチドとして発現されるように構成されている、請求項１から６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
前記アゾリン骨格の導入後、リーダー配列を前記前駆体ペプチドから切断する工程を含む、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記アゾリン骨格を導入する工程において、前記リーダー配列を含むペプチドと、前記認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとが別個のペプチドである、請求項１から６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
さらに、前記アゾリン化合物を大環状化する工程を含む、請求項１から９のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１１】
アゾール化合物ライブラリーの製造方法であって、
請求項１から１０のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法において、
前記アゾリン骨格の導入工程の後、アゾリン骨格が導入されたライブラリーと、アゾール骨格導入酵素とを、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下又は非存在下で反応させ、アゾリン骨格の少なくとも１つをアゾール骨格に変換する工程を含む方法（ここでリーダー配列は、0〜50アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列をいう）。
【請求項１２】
前記アゾール骨格導入酵素は、PatGのペプチダーゼドメインを欠損した変異体または点変異によってペプチダーゼ活性をなくした変異体である、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーであって：
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つは、mが7又は8でない、アゾリン化合物ライブラリー。
【請求項１４】
前記式（Ｉ）において、−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−であり
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から10より選択される整数を示す。］、
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つが、以下の(i)から(iv)の少なくとも1つの特徴を有する、請求項１３に記載のアゾリン化合物ライブラリー：
(i) mが2から40である（但し、7及び8を除く）；
(ii) nが1から20である（但し、3及び4を除く）；
(iii) Xaa1の少なくとも1つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログ又はこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つが親水性アミノ酸である。
【請求項１５】
前記アゾリン化合物のそれぞれが、そのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体を形成している、請求項１３又は１４に記載のアゾリン化合物ライブラリー。
【請求項１６】
上記式（Ｉ）で示されるペプチドのN末端及びC末端に、アゾリン骨格導入酵素の認識配列の全部または一部が結合している、請求項１３から１５のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリー。
【請求項１７】
下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾール骨格が導入されているアゾール化合物を2種以上含むアゾール化合物ライブラリーであって：
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つは、mが7又は8でない、アゾール化合物ライブラリー。
【請求項１８】
前記式（Ｉ）において、−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−であり
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から20より選択される整数を示す。］、
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つが、以下の(i)から(iv)の少なくとも1つの特徴を有する、請求項１７に記載のアゾール化合物ライブラリー：
(i) mが2から40である（但し、7及び8を除く）；
(ii) nが1から20である（但し、3及び4を除く）；
(iii) Xaa1の少なくとも1つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つが親水性アミノ酸である。
【請求項１９】
前記アゾール化合物のそれぞれが、そのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体を形成している、請求項１７又は１８に記載のアゾール化合物ライブラリー。
【請求項２０】
上記式（Ｉ）で示されるペプチドのN末端及びC末端に、アゾリン骨格導入酵素の認識配列の全部または一部が結合している、請求項１７から１９のいずれか１項に記載のアゾール化合物ライブラリー。
【請求項２１】
標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するスクリーニング方法であって、
請求項１から１０のいずれか１項に記載の方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー又は請求項１３から１６のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾリン化合物を選択する工程と、を含む方法。
【請求項２２】
標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するスクリーニング方法であって、
請求項２から１０のいずれか１項に記載の方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー又は請求項１５または１６に記載のアゾリン化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾリン化合物を選択する工程と、
前記選択したアゾリン化合物のmRNAの塩基配列を解析する工程と、を含む方法。
【請求項２３】
標的物質に結合するアゾール化合物を同定するスクリーニング方法であって、
請求項１１又は１２に記載の方法で製造されたアゾール化合物ライブラリー又は請求項１７から２０のいずれか１項に記載のアゾール化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾール化合物を選択する工程と、を含む方法。
【請求項２４】
標的物質に結合するアゾール化合物を同定するスクリーニング方法であって、
請求項１１又は１２に記載の方法で製造されたアゾール化合物ライブラリー又は請求項１９または２０に記載のアゾール化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾール化合物を選択する工程と、
前記選択したアゾール化合物のmRNAの塩基配列を解析する工程と、を含む方法。
【請求項２５】
標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するためのスクリーニング用キットであって、
請求項１から１０のいずれか１項に記載の方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー又は請求項１３から１６のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリーを含む、キット。
【請求項２６】
前記ライブラリーが、固相担体に固定されている、請求項２５に記載のキット。
【請求項２７】
標的物質に結合するアゾール化合物を同定するためのスクリーニング用キットであって、
請求項１１又は１２に記載の方法で製造されたアゾール化合物ライブラリー又は請求項１７から２０のいずれか１項に記載のアゾール化合物ライブラリーを含む、キット。
【請求項２８】
前記ライブラリーが、固相担体に固定されている、請求項２７に記載のキット。
【請求項２９】
下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物の製造方法であって：
N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNA製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
前記mRNAを用いて、無細胞翻訳系により前記前駆体ペプチドを発現させる工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前記前駆体ペプチドとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程と（ここで、前記リーダー配列を含むペプチドと、前記認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとは別個のペプチドである。）、を含む方法。
【請求項３０】
アゾール化合物の製造方法であって、
請求項２９に記載の方法で製造したアゾリン化合物と、アゾール骨格導入酵素とを、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下又は非存在下で反応させ、アゾリン骨格の少なくとも１つをアゾール骨格に変換する工程を含む、方法。
【請求項３１】
アゾリン化合物又はアゾール化合物の製造用キットであって、アゾリン骨格導入酵素又はアゾール骨格導入酵素と、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドとを含むキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アゾリン化合物及びアゾール化合物のライブラリー等に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、様々なペプチドが、医薬品候補や研究用ツールとして注目されており、ペプチドライブラリーを開発し、標的物質に親和性を有するペプチドをスクリーニングしようとする様々な試みがなされている。
人工的にペプチドライブラリーを作製する方法としては、従来、化学合成による方法、二次代謝産物の生合成酵素を用いる方法、翻訳合成系などが用いられている。
しかしながら、化学合成による方法では、ライブラリーの多様性を大きくするのが困難である。また、スクリーニングや、化合物の構造と活性の相関解析にも時間を要する。
これに対し、二次代謝産物の生合成酵素を用いる方法によれば、迅速かつ簡便に、有機化学的手法では得られないような精巧な骨格の構築や化学変換が可能となる。しかしながら、酵素には基質特異性があるため、合成できる化合物の種類が限られ、大規模な化合物ライブラリーの構築に適用するのは難しい。【０００３】
細胞を使った翻訳合成系によれば、mRNAライブラリーを作製し、これをワンポットで翻訳することによって短時間で多様性に富んだペプチドライブラリーを構築することができる。また、mRNAディスプレイ法等と組み合わせることにより、スクリーニングにより得られたペプチドと、これをコードする核酸の情報を同時に得ることができるので、遺伝子型と表現型を容易に関連づけることができる。このように、翻訳系によるペプチドライブラリーの合成には優れた点が多いが、産生できるのは、ほぼペプチド性の化合物に限られる。
ライブラリーを用いたスクリーニングでは、プロテアーゼ活性を有する標的物質を阻害する化合物を同定することもしばしば必要とされる。しかしながら、ペプチド性化合物のライブラリーは、プロテアーゼによって切断されてしまうので、標的物質の活性を阻害する化合物を効率よくスクリーニングすることができない。【０００４】
翻訳後修飾酵素により、in vitroでペプチドライブラリーの各ペプチドを修飾することも考えられるが、所望の活性を有する酵素がin vitroで活性を有するとは限らない。また、酵素と反応させる前に、発現させたペプチドライブラリーを精製しなければならず、酵素の基質特異性も検討しなければならないので、所望の構造のペプチドで構成されるライブラリーを得ることは容易ではない。
修飾の有無や程度が特定できないライブラリーは、結局、化学合成系と同様に構造と活性の相関解析が必要となるため、有用性に劣るという問題がある。【０００５】
ところで、ホヤの共生藻Prochloron didemniが産生するpatellamideは、様々な生理活性を有すると考えられる低分子環状ペプチドであり、patA〜Gからなるpat遺伝子群の産物によるユニークな経路で生合成される。pat遺伝子群と、この生合成経路の概略を図１５に示す。
この生合成において前駆体となるのは、patE遺伝子産物のPatEペプチドである。patE遺伝子は超可変領域（カセット領域）を有するため、その産物は天然のコンビナトリアルライブラリーを構築する。
PatEペプチドは、カセット領域の両側に、翻訳後修飾酵素による認識配列を有する。翻訳後修飾酵素として働くのは、PatA、PatD及びPatGである。PatDは、PatEのカセットにおけるCys、Ser、及びThrにアゾリン骨格を導入し、Cysをチアゾリン骨格に、Ser及びThrをオキサゾリン骨格に変換する。
PatAは、PatEのカセット領域のN末端側の認識配列を切断する。
PatGは、2つのドメインからなり、N末端のオキシダーゼドメインは、PatDにより導入されたアゾリン骨格をアゾール骨格に、即ちチアゾリン骨格をチアゾール骨格に変換する。C末端側のペプチダーゼドメインは、PatEのカセット領域のC末端側の認識配列を切断しながら大環状化する。【０００６】
上述した天然のPatEのカセット領域について、M.S. Donia et al.（非特許文献１）には、下表に示す配列が記載されている。
【表１】
2012121392.tif 000002
【表２】
2012121392.tif 000003
【０００７】
この表によると、天然のカセット領域の配列には、(i) 7又は8残基である、(ii) カセット領域のN末端から2、4、6、8番目に、修飾を受けるSer/Thr/Cysが位置することが多い、(iii) 修飾を受ける残基（Ser/Thr/Cys）は並ぶことが少ない、(iv) Ser/Thr/Cys以外の残基には、Val、Ala、Ile、Phe、Leuなどの疎水性残基が多い、などの共通点がある。
従って、これらの共通点は、翻訳後修飾酵素であるPatD及びPatGの基質となるために必要であるようにも考えられた。しかしながら、これらのSer/Thr/Cysのうち、どれが修飾されているのか、されていないのかも不明であり、PatD及びPatGの基質特異性についてはこれまで明らかとなっていなかった。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Donia, M.S. et al., Nat. Chem. Biol., 2006, 2:729-735.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明は、十分な多様性を有し、プロテアーゼ活性を有する標的物質に結合する化合物のスクリーニングにも用いることができるライブラリーを効率よく製造する方法等を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、何らかの方法で天然のものより多様性に富んだPatEライブラリーを効率よく得ることができ、且つ、これを基質として翻訳後修飾酵素による修飾を加えることができれば、プロテアーゼ活性を有する標的物質に結合する化合物のスクリーニングにも用いることができるライブラリーを得ることができ、上記課題を解決できるものと考えた。
そして研究を重ねた結果、ある種のアゾリン骨格導入酵素はin vitroでもアゾリン骨格形成活性を有すること；かかるアゾリン骨格導入酵素の基質となるカセット領域の配列は、M.S. Donia et al.に記載されたものに限られず、カセット領域を2−40アミノ酸残基とすれば当該酵素の基質となり、カセット領域中のCys、Ser、Thr及び2,3-ジアミノ酸とこれらのアナログがアゾリン骨格へと変換されうることを見出した。
さらに、N末端から順に、PatEのリーダー配列、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、カセット領域、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドとして、PatEライブラリーを無細胞翻訳系により発現させ、これをアゾリン骨格導入酵素で修飾し、不要な領域を切断するという工程をワンポットで効率よく行うことができ、その結果、十分多様性に富み、プロテアーゼ活性を有する標的物質を用いるスクリーニングにも利用できるアゾリン化合物ライブラリーを得ることができることを確認した。
また、上記前駆体ペプチドにおいて、PatEのリーダー配列を従来知られていたリーダー配列の一部のみとした場合や完全に除去した場合、認識配列1及び2として従来知られていた配列とは異なる配列を用いた場合、認識配列1及び2を除去した場合などにも、該前駆体ペプチドがアゾリン骨格導入酵素の基質となりうることを見出した。さらに、リーダー配列部分を、カセット領域を含む前駆体ペプチドとは別個のペプチドとしても、当該ペプチドが反応系に存在すれば、カセット領域を含む前駆体ペプチドがアゾリン骨格導入酵素の基質となりうることを確認し、本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、
〔１〕下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーの製造方法であって：
N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAライブラリーを製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
前記mRNAライブラリーを用いて、無細胞翻訳系により前記前駆体ペプチドを発現させ、ペプチドライブラリーを製造する工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前記ペプチドライブラリーとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程と（ここでリーダー配列は、0〜50アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列をいう）、を含む方法；
〔２〕下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物と、前記式（Ｉ）で示されるペプチドをコードするmRNAとの複合体を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーの製造方法であって：
N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAライブラリーを製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
前記mRNAライブラリーの各mRNAの3’末端にピューロマイシンを結合させ、ピューロマイシン結合mRNAライブラリーを製造する工程と；
前記ピューロマイシン結合mRNAライブラリーを用いて、無細胞翻訳系により前記前駆体ペプチドを発現させ、ペプチド−mRNA複合体ライブラリーを製造する工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前記ペプチド−mRNA複合体ライブラリーとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程と（ここでリーダー配列は、0〜50アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列をいう）、を含む方法；
〔３〕前記式（Ｉ）において、−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−であり
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から20より選択される整数を示す。］、
前記アゾリン化合物には、Xaa1及びXaa２のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されている、上記〔１〕又は〔２〕に記載のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法；
〔４〕前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つを、以下の(i)〜(iv)の少なくとも1つの特徴を有するペプチドとする、上記〔１〕から〔３〕のいずれか１項に記載の方法：
(i) mが2から40である（但し、7及び8を除く）；
(ii) nが1から20である（但し、3及び4を除く）；
(iii) Xaa1の少なくとも1つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つが親水性アミノ酸である；
〔５〕前記−（Xaa0）m−で示されるペプチドの少なくとも1つを、配列番号：１０〜５７のいずれかで表されるペプチドとする、上記〔１〕から〔３〕のいずれか１項に記載の方法；
〔６〕前記アゾリン化合物の少なくとも1つが、アゾリン骨格を5以上有する、上記〔１〕から〔５〕のいずれか１項に記載の方法；
〔７〕前記mRNAライブラリーの各mRNAは、前記リーダー配列を含むペプチドが、前記認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとの融合ペプチドとして発現されるように構成されている、上記〔１〕から〔６〕のいずれか１項に記載の方法；
〔８〕前記アゾリン骨格の導入後、リーダー配列を前記前駆体ペプチドから切断する工程を含む、上記〔７〕に記載の方法；
〔９〕前記アゾリン骨格を導入する工程において、前記リーダー配列を含むペプチドと、前記認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとが別個のペプチドである、上記〔１〕から〔６〕いずれか１項に記載の方法；
〔１０〕さらに、前記アゾリン化合物を大環状化する工程を含む、上記〔１〕から〔９〕のいずれか１項に記載の方法；
〔１１〕アゾール化合物ライブラリーの製造方法であって、
上記〔１〕から〔１０〕のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法において、
前記アゾリン骨格の導入工程の後、アゾリン骨格が導入されたライブラリーと、アゾール骨格導入酵素とを、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下又は非存在下で反応させ、アゾリン骨格の少なくとも１つをアゾール骨格に変換する工程を含む方法（ここでリーダー配列は、0〜50アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列をいう）；
〔１２〕前記アゾール骨格導入酵素は、PatGのペプチダーゼドメインを欠損した変異体または点変異によってペプチダーゼ活性をなくした変異体である、上記〔１１〕に記載の方法；
〔１３〕下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーであって：
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つは、mが7又は8でない、アゾリン化合物ライブラリー；
〔１４〕前記式（Ｉ）において、−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−であり
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から10より選択される整数を示す。］、
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つが、以下の(i)から(iv)の少なくとも1つの特徴を有する、上記〔１３〕に記載のアゾリン化合物ライブラリー：
(i) mが2から40である（但し、7及び8を除く）；
(ii) nが1から20である（但し、3及び4を除く）；
(iii) Xaa1の少なくとも1つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログ又はこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つが親水性アミノ酸である；
〔１５〕前記アゾリン化合物のそれぞれが、そのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体を形成している、上記〔１３〕又は〔１４〕に記載のアゾリン化合物ライブラリー；
〔１６〕上記式（Ｉ）で示されるペプチドのN末端及びC末端に、アゾリン骨格導入酵素の認識配列の全部または一部が結合している、上記〔１３〕から〔１５〕のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリー；
〔１７〕下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾール骨格が導入されているアゾール化合物を2種以上含むアゾール化合物ライブラリーであって：
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つは、mが7又は8でない、アゾール化合物ライブラリー；
〔１８〕前記式（Ｉ）において、−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−であり
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から20より選択される整数を示す。］、
前記式（Ｉ）で示されるペプチドの少なくとも1つが、以下の(i)から(iv)の少なくとも1つの特徴を有する、上記〔１７〕に記載のアゾール化合物ライブラリー：
(i) mが2から40である（但し、7及び8を除く）；
(ii) nが1から20である（但し、3及び4を除く）；
(iii) Xaa1の少なくとも1つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つが親水性アミノ酸である；
〔１９〕前記アゾール化合物のそれぞれが、そのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体を形成している、上記〔１７〕又は〔１８〕に記載のアゾール化合物ライブラリー；
〔２０〕上記式（Ｉ）で示されるペプチドのN末端及びC末端に、アゾリン骨格導入酵素の認識配列の全部または一部が結合している、上記〔１７〕から〔１９〕のいずれか１項に記載のアゾール化合物ライブラリー；
〔２１〕標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するスクリーニング方法であって、
上記〔１〕から〔１０〕のいずれか１項に記載の方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー又は上記〔１３〕から〔１６〕のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾリン化合物を選択する工程と、を含む方法；
〔２２〕標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するスクリーニング方法であって、
上記〔２〕から〔１０〕のいずれか１項に記載の方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー又は上記〔１５〕または〔１６〕に記載のアゾリン化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾリン化合物を選択する工程と、
前記選択したアゾリン化合物のmRNAの塩基配列を解析する工程と、を含む方法；
〔２３〕標的物質に結合するアゾール化合物を同定するスクリーニング方法であって、
上記〔１１〕又は〔１２〕に記載の方法で製造されたアゾール化合物ライブラリー又は上記〔１７〕から〔２０〕のいずれか１項に記載のアゾール化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾール化合物を選択する工程と、を含む方法；
〔２４〕標的物質に結合するアゾール化合物を同定するスクリーニング方法であって、
上記〔１１〕又は〔１２〕に記載の方法で製造されたアゾール化合物ライブラリー又は上記〔１９〕または〔２０〕に記載のアゾール化合物ライブラリーと、標的物質とを接触させ、インキュベートする工程と、
前記標的物質と結合したアゾール化合物を選択する工程と、
前記選択したアゾール化合物のmRNAの塩基配列を解析する工程と、を含む方法；
〔２５〕標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するためのスクリーニング用キットであって、
上記〔１〕から〔１０〕のいずれか１項に記載の方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー又は上記〔１３〕から〔１６〕のいずれか１項に記載のアゾリン化合物ライブラリーを含む、キット；
〔２６〕前記ライブラリーが、固相担体に固定されている、上記〔２５〕に記載のキット；
〔２７〕標的物質に結合するアゾール化合物を同定するためのスクリーニング用キットであって、
上記〔１１〕又は〔１２〕に記載の方法で製造されたアゾール化合物ライブラリー又は上記〔１７〕から〔２０〕のいずれか１項に記載のアゾール化合物ライブラリーを含む、キット；
〔２８〕前記ライブラリーが、固相担体に固定されている、上記〔２７〕に記載のキット；
〔２９〕下記式（Ｉ）
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
で示されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物の製造方法であって：
N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNA製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
前記mRNAを用いて、無細胞翻訳系により前記前駆体ペプチドを発現させる工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前記前駆体ペプチドとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程と（ここで、前記リーダー配列を含むペプチドと、前記認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとは別個のペプチドである。）、を含む方法；
〔３０〕アゾール化合物の製造方法であって、
上記〔２９〕に記載の方法で製造したアゾリン化合物と、アゾール骨格導入酵素とを、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下又は非存在下で反応させ、アゾリン骨格の少なくとも１つをアゾール骨格に変換する工程を含む、方法；及び
〔３１〕アゾリン化合物又はアゾール化合物の製造用キットであって、アゾリン骨格導入酵素又はアゾール骨格導入酵素と、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドとを含むキット、
に関する。
【発明の効果】
【００１１】
本発明に係る方法によれば、天然のPatEライブラリーよりもはるかに多様性に富んだアゾリン化合物ライブラリー及びアゾール化合物ライブラリーを、迅速且つ簡便な方法で得ることができる。
かかるアゾリン化合物又はアゾール化合物ライブラリーを用いれば、プロテアーゼ活性を有する標的物質に結合するアゾリン化合物又はアゾール化合物のスクリーニングを行うことが可能である。
また、本発明に係るアゾリン化合物又はアゾール化合物ライブラリーにmRNAディスプレイ法を応用し、アゾリン化合物又はアゾール化合物とそのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体のライブラリーを作製すれば、スクリーニングにより同定されたアゾリン化合物／アゾール化合物をコードする核酸配列を決定できるので、化合物の構造と活性との関係を容易に解析できる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１は、本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様を示す概略図である。
【図２】図２は、天然のPatEとカセット領域の配列が同一の前駆体ペプチドに、PatDでアゾリン骨格を導入する前後の質量分析の結果を示す。
【図３】図３は、カセット領域が12アミノ酸または16アミノ酸である前駆体ペプチドに、PatDでアゾリン骨格を導入する前後の質量分析の結果を示す。
【図４】図４は、Xaa1に親水性アミノ酸残基を含む前駆体ペプチドに、PatDでアゾリン骨格を導入する前後の質量分析の結果を示す。
【図５】図５は、様々な配列のカセット領域に対するPatDによるアゾリン骨格の導入実験を行った結果に基づき、PatDの基質許容性をまとめた結果を示す。それぞれの配列において、PatD反応後に導入されたヘテロ環の数をボックス中の色の濃さを指標として示した。色が濃いものほど該当するヘテロ環導入数の産物が多く観測された事を意味し、色は薄い物は副産物として観測されたことを意味する。
【図６】図６は、Glu-Cによりリーダー配列の切断を、質量分析により確認した結果を示す。PatEC1wt-GSをPatD処理及びGlu-C処理した場合（PatEC1wt-GS +PatD+Glu-C）、基質ペプチド非存在下（+PatD+Glu-C）には見られなかったピークが観測され（1880.5）、それは4個のヘテロ環を含むC末端の短鎖ペプチド部位に相当する。
【図７】図７は、リーダー配列を別個のペプチドとして反応系に加えた場合、リーダー配列なしの場合のそれぞれについて、PatDの基質許容性を調べた結果である。
【図８】図８は、リーダー配列の一部を欠失させて、PatDの基質許容性を調べた結果の一例である。
【図９】図９は、認識配列を変更して、PatDの基質許容性を調べた結果である。
【図１０Ａ】図１０Ａは、カセット配列に非天然型アミノ酸を含む基質を翻訳合成し、PatDの基質許容性を調べた実験の概要を示す。
【図１０Ｂ】図１０Ｂは、図１０Ａの実験に用いた非天然型アミノ酸を示す。
【図１１】図１１は、図１０の実験の代表的な結果を示す。
【図１２】図１２は、mRNAディスプレイ法を用いたスクリーニングの概略を示す。
【図１３】図１３は、MMP12を標的として行ったmRNAディスプレイ法によるスクリーニングのセレクションの結果を示す。
【図１４】図１４は、図１３の方法で選択されたアゾリン含有化合物のMMP12に対する結合能力評価の結果である。
【図１５】図１５は、pat遺伝子群の構造と、patellamideの生合成経路を示す概略図である。
【図１６】図１６は、天然基質からかけ離れた合成ペプチドに対するPatDの基質許容性を調べた結果の一例である。
【図１７】図１７は、天然基質からかけ離れた合成ペプチドに対するPatDの基質許容性を調べた結果の一例である。
【図１８】図１８は、リーダー配列として、Lacticin481前駆体由来またはヒトアクチン由来の配列を用いた場合、PatEのリーダー配列をシャッフルした配列を用いた場合について、PatDの基質許容性を調べた結果である。
【図１９】図１９は、リーダー配列の一部を欠失させ、PatDの基質許容性を調べた結果である。
【図２０】図２０は、リーダー配列に点変異を導入して、PatDの基質許容性を調べた結果である。
【図２１】図９は、認識配列を変更させて、PatDの基質許容性を調べた結果である。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
（アゾリン化合物ライブラリーの製造方法）
本発明は、2種以上のアゾリン化合物を含むアゾリン化合物ライブラリーの製造方法を提供する。
本明細書において「アゾリン化合物」とは、下記式（Ｉ）で示されるペプチドのCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されている化合物をいう。
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から40より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。］
【００１４】
本発明の一態様において、アゾリン化合物は、式（Ｉ）における−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−である。
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から20より選択される整数を示す。］
アゾリン骨格が導入されたCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログは、Xaa1の位置にあっても、Xaa2の位置にあってもよい。
【００１５】
本明細書において「アミノ酸」は、その最も広い意味で用いられ、天然アミノ酸に加え、人工のアミノ酸変異体、誘導体を含む。本明細書においてアミノ酸は、天然タンパク性L-アミノ酸；D-アミノ酸；アミノ酸変異体及び誘導体などの化学修飾されたアミノ酸；ノルロイシン、β-アラニン、オルニチンなどの天然非タンパク性アミノ酸；及びアミノ酸の特徴である当業界で公知の特性を有する化学的に合成された化合物などが挙げられる。非天然アミノ酸の例として、α−メチルアミノ酸（α−メチルアラニンなど）、D-アミノ酸、ヒスチジン様アミノ酸（β-ヒドロキシ-ヒスチジン、ホモヒスチジン、α-フルオロメチル-ヒスチジン及びα-メチル-ヒスチジンなど)、側鎖に余分のメチレンを有するアミノ酸（「ホモ」アミノ酸）及び側鎖中のカルボン酸官能基アミノ酸がスルホン酸基で置換されるアミノ酸（システイン酸など）が挙げられる。
【００１６】
本明細書においてアミノ酸は、慣用される1文字表記又は3文字表記で表される。1文字表記又は3文字表記で表されたアミノ酸は、それぞれその変異体、誘導体を含むものとする。
【００１７】
Thrのアナログとしては、例えば以下の式で表されるものが挙げられるがこれに限定されない。
【化１】
2012121392.tif 000004
［式中、Rは、水素原子又は置換基を有していてもよい炭素数1−10のアルキル基又は置換基を有していてもよい芳香族基を示す。］
【００１８】
Cysのアナログとしては、例えば以下の式で表されるものが挙げられるがこれに限定されない。
【化２】
2012121392.tif 000005
［式中、Rは、水素原子又は置換基を有していてもよい炭素数1−10のアルキル基又は置換基を有していてもよい芳香族基を示す。］
【００１９】
Ser、Thrのアナログとしては、例えば以下のものが挙げられるが、これらに限定されない。
【化３】
2012121392.tif 000006
【００２０】
また、2,3-ジアミノ酸及びそのアナログとしては、例えば以下のものが挙げられるが、これらに限定されない。
【化４】
2012121392.tif 000007
［式中、Rは、水素原子又は置換基を有していてもよい炭素数1−10のアルキル基又は置換基を有していてもよい芳香族基を示す。］
【００２１】
本明細書において、「Cys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されている」とは、Cys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸において脱水反応が生じ、下記式で示されるアゾリン環が導入されることを意味する。
【化５】
2012121392.tif 000008
【００２２】
Ser、Thr、Cys、2,3-ジアミノプロピオン酸にアゾリン骨格を導入すると、それぞれ以下のようなオキサゾリン、チアゾリン骨格、またはイミダゾリン骨格を生じる。
Ser:
【化６】
2012121392.tif 000009
Thr:
【化７】
2012121392.tif 000010
Cys:
【化８】
2012121392.tif 000011
2,3-ジアミノプロピオン酸:
【化９】
2012121392.tif 000012
また、例えば、上述したThrのアナログ残基にアゾリン骨格を導入すると以下に示すオキサゾリン骨格を生じる。
【化１０】
2012121392.tif 000013
上述したCysのアナログ残基にアゾリン骨格を導入すると以下に示すイミダゾリン骨格を生じる。
【化１１】
2012121392.tif 000014
上述した2,3-ジアミノ酸のアナログ残基にアゾリン骨格を導入すると以下に示すチアゾリン骨格を生じる。
【化１２】
2012121392.tif 000015
【００２３】
上記式（Ｉ）において、Xaa0は、少なくとも1つのCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログを含む限り、任意のアミノ酸を示す。上述のとおり、PatD等のアゾリン骨格導入酵素は、7又は8アミノ酸の所定の規則性を有するカセット領域しか修飾しないと考えられていたが、後述する実施例に示されるとおり、mが2から40である幅広い配列が基質となりうる。
【００２４】
上記式（Ｉ）において、Xaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示す。上述のとおり、従来、PatD等のアゾリン骨格導入酵素の基質となるペプチドにおいては、修飾される残基は並ぶことが少ないと考えられていたが、後述する実施例に示されるとおり、Xaa1がCys、Ser又はThrであり、隣接するXaa2と同一のアミノ酸であっても、式（Ｉ）のペプチドは、アゾリン骨格導入酵素の基質となりうる。
また、従来、PatD等のアゾリン骨格導入酵素の基質となるペプチドにおいては、Ser、Cys、Thr以外の残基は疎水性アミノ酸残基が多いと考えられていたが、後述する実施例に示されるとおり、Xaa1が親水性アミノ酸であっても、アゾリン骨格導入酵素の基質となりうる。
【００２５】
上記式（Ｉ）において、mは2以上の整数であり、16以下、18以下、20以下、30以下、又は40以下の整数である。また、nは1以上の整数であり、8以下、9以下、10以下、又は20以下の整数でありうる。上述のとおり、従来、PatD等のアゾリン骨格導入酵素の基質となるのは、m=7又は8、即ちn=3又は4であると考えられていたが、後述する実施例に示されるとおり、mが9以上、nが5以上であっても、式（Ｉ）のペプチドはアゾリン骨格導入酵素の基質となりうる。
【００２６】
上記式（Ｉ）にいおて、A及びBは、それぞれ独立に0〜100アミノ酸からなるペプチドを示す。Aは、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1の全部又は一部を含みうる。また、PatEのリーダー配列の全部又は一部、Hisタグ、リンカー等を含んでいてもよい。Bは、認識配列2の全部又は一部を含みうる。また、Hisタグ、リンカー等を含んでいてもよい。A及びBの長さは、例えば、100、70、60、50、40、30、20、10、5、2、0アミノ酸とすることができるがこれらに限定されない。また、A及びBは、1又は数個のアミノ酸が修飾アミノ酸やアミノ酸アナログであってもよい。
【００２７】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様は、N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAライブラリーを製造する工程を含む。
【００２８】
アゾリン骨格導入酵素による認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいい、アゾリン骨格導入酵素がこれを認識して−（Xaa0）m−にアゾリン骨格を導入する限り、どのような配列であってもよい。アゾリン骨格導入酵素がPatDである場合、認識配列1としては、例えば、G（A/L/V）（G/E/D）（A/P）（S/T/C）（配列番号：２）を用いることができ、例えば、GLEAS（配列番号：３）としてもよい。アゾリン骨格導入酵素による認識配列2としては、（A/S）Y（D/E）G（A/L/V）（配列番号：４）含むものを用いることができる。例えば、かかる配列として、AYDGVEPS（配列番号：５）、AYDGV（配列番号：６）、AYDGVGSGSGS（配列番号：７）、AYDGVGGGGGG（配列番号：８）、AYDGVEGSGSGS（配列番号：９）としてもよい。
後述する実施例に示すとおり、上記前駆体ペプチドは、認識配列1及び／又は2がなくてもアゾリン骨格導入酵素の基質となりうるので、認識配列1及び2は、前駆体ペプチドの任意の構成要素である。
さらに、後述する実施例に示すとおり、認識配列1及び2として、従来認識配列として知られる配列とはまったく関係のない配列を用いても、上記前駆体ペプチドはアゾリン骨格導入酵素の基質となりうる。
特に、−（Xaa1−Xaa2）n−のN末端側の認識配列1は、存在したほうがアゾリン骨格導入酵素による修飾を受けやすいが、存在する限りその配列は特に限定されない。例えば、認識配列1としては、GGGGGやQQQQQやLLLLLやPPPPPなどの配列を用いてもよい。
【００２９】
後述のとおり、上記前駆体ペプチドは、そのN末端側にリーダー配列を含むペプチドをさらに融合させてもよい。
リーダー配列、アゾリン環導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン環導入酵素による認識配列2は、前駆体ペプチドにおいて隣接していてもよく、前駆体ペプチドとして無細胞発現系で発現し、アゾリン環導入酵素による修飾を受ける限り、間に1から数個のアミノ酸配列を挟んでいてもよい。
【００３０】
−（Xaa0）m−をコードするmRNAのライブラリーは、例えば、−（NNN）n−、−（NNK）n−、−（NNU）n−、−（NNG）n−、などの配列を含むDNAを合成し、これを転写することによって作製することができる。ここで、NはA/C/G/Tのうち任意の一つ、KはG/Tのうち任意の一つを意味し、NNN及びNNKは20種類のタンパク質性アミノ酸のうちの任意の一つを、NNU及びNNGはそれぞれ15及び14種類のタンパク質性アミノ酸のうちの任意の一つをコードする。
−（Xaa1−Xaa2）n−をコードするmRNAのライブラリーは、例えば、−（NNK−WSU）n−、−（NNK−UGU）n−などの配列を含むDNAを合成し、これを転写することによって作製することができる。ここで、NはA/C/G/Tのうち任意の一つ、KはG/Tのうち任意の一つ、WはA/Tのうち任意の一つ、SはC/Gのうち任意の一つを意味し、NNN及びNNKは20種類のタンパク質性アミノ酸のうちの任意の一つ、WSUはSer/Thr/Cysのうちの任意の一つ、UGUはCysをコードする。
このような構成とすることで、例えば、−（Xaa0）m−において、m＝10の場合、天然のアミノ酸20種のみ使用することを想定しても、理論的に2010種類の変異体を作製することができ、−（Xaa1−Xaa2）n−においてn=5の場合、205×35種類の変異体を作製することができるので、ライブラリーとしては十分なサイズとなる。
−（Xaa0）m−をコードするDNAの5’末端に認識配列1をコードするDNAを含み、3’末端側に認識配列2をコードするDNAを含むDNAを合成し、これを転写することによって、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAを得ることができる。また、認識配列1をコードするDNAの5’末端側に、さらにリーダー配列をコードするDNAを含むDNAを合成し、これを転写することによって、リーダー配列、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNAを得ることができる。
【００３１】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様は、上記mRNAライブラリーを用いて、無細胞翻訳系により上記前駆体ペプチドを発現させ、ペプチドライブラリーを製造する工程を含む。
無細胞翻訳系は、例えば、リボソームタンパク質、アミノアシルtRNA合成酵素（ARS）、リボソームRNA、アミノ酸、GTP、ATP、翻訳開始因子（IF）伸長因子(EF)、終結因子(RF)、およびリボソーム再生因子(RRF)、ならびに翻訳に必要なその他の因子を含む。発現効率を高くするために大腸菌抽出液や小麦胚芽抽出液を用いてもよい。他に、ウサギ赤血球抽出液や昆虫細胞抽出液を用いてもよい。
これらを含む系に、透析を用いて連続的にエネルギーを供給することで、数百μgから数mg/mLの蛋白質を生産することができる。遺伝子DNAからの転写を併せて行うためにRNAポリメレースを含む系としてもよい。市販されている無細胞翻訳系として、大腸菌由来の系としてはロシュ・ダイアグノスティックス社のRTS-100（登録商標）、PGI社のPURESYSTEM（登録商標）等、小麦胚芽抽出液を用いた系としてはゾイジーン社やセルフリーサイエンス社のもの等を使用できる。
無細胞翻訳系によれば、発現産物を精製することなく、同じ容器に翻訳後修飾酵素を添加して、ワンポットでペプチドを修飾することができる。
【００３２】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様は、アゾリン骨格導入酵素と、上記ペプチドライブラリーとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Cys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程を含む。より具体的には、Ser及びThrには、オキサゾリン骨格が、Cysにはチアゾリン骨格が、2,3-ジアミノ酸にはイミダゾリン骨格が導入される。
【００３３】
リーダー配列は、アゾリン骨格導入酵素による修飾を受けやすくする配列であり、この目的を果たす限り、どのような配列であってもよい。後述する実施例に示されるとおり、リーダー配列が存在しなくても、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドは、アゾリン骨格導入酵素の基質となりうる。リーダー配列は、例えば、5アミノ酸、7アミノ酸、10アミノ酸、20アミノ酸、30アミノ酸、40アミノ酸、50アミノ酸程度とすることができる。
【００３４】
リーダー配列としては、例えば、以下のアミノ酸配列、このアミノ酸配列の部分配列、又は、このアミノ酸配列において1から数個のアミノ酸が欠失、付加、若しくは置換されたアミノ酸配列からなるペプチドを用いることができる。
MNKKNILPQQGQPVIRLTAGQLSSQLAELSEEALGDA（配列番号：１）
配列番号：１のアミノ酸配列の部分配列としては、このアミノ酸の連続した4アミノ酸以上、5アミノ酸以上、または6アミノ酸以上の配列を含むものとすることができる。配列番号：１のどこに位置する部分であるかは特に限定されないが、例えば、配列番号：１のアミノ酸配列のうちC末端の4アミノ酸、5アミノ酸、又は6アミノ酸を含むものとすることができる。
さらに、後述する実施例に示すとおり、リーダー配列として、従来リーダー配列として知られるPatEのリーダー配列とはまったく関係のない配列を用いても、上記前駆体ペプチドはアゾリン骨格導入酵素の基質となりうる。例えば、リーダー配列として、別のペプチド由来（Lacticin481前駆体）のMKEQNSFNLLQEVTESELDLILGAなどの配列や、ヒトアクチン由来のMILASLSTFQQMWISKQEYDEAGDAなどの配列、PatEのリーダー配列をシャッフルしたMELQLRPSGLEKKQAPISELNIAQTQGGDSQVLALNAなどの配列を用いてもよい。
リーダー配列として、ヘリシティ（alpha helicity）の高い配列を用いてもよい。
【００３５】
本明細書において、「アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で」という場合、当該ペプチドは、反応系において、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとは別個のペプチドとして存在してもよいし、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドに融合していてもよい。
天然のPatDの基質においては、リーダー配列、認識配列1、カセット配列、及び認識配列2が融合しているが、後述する実施例に示すとおり、本発明者らは、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドをアゾリン骨格導入酵素と反応させる際、リーダー配列を独立したペプチドとしてその反応系に加えても、当該前駆体ペプチドがアゾリン骨格導入酵素の基質となりうることを見出した。
リーダー配列を、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとは別個のペプチドとすると、それぞれのペプチド（すなわちリーダー配列を含むペプチドと前駆体ペプチド）を短くすることができるので、調製が容易になる。リーダー配列も融合している場合、標的分子への結合の際に立体的な障害となる可能性があるため、スクリーニング先立って切断しておくことが望ましいが、もともと別個のペプチドとしておけば、切断する必要がない。
それぞれのペプチドは、翻訳合成によって調製してもよく、化学合成によって調製してもよい。
【００３６】
アゾリン骨格導入酵素としては、PatD及びこれと相同性を有する酵素が挙げられる。PatDと相同性を有する酵素としては、例えば、Leeらの報告（Lee, S. W. et al., PNAS vol.105, No.15, 5879-5884, 2008）に含まれるものを用いることができるがこれらに限定されない。
アゾリン骨格導入酵素は、アゾリン骨格導入酵素を産生する微生物から抽出・精製したものであっても、遺伝子組換え法によって発現させたものであってもよい。例えば、常法に従い、N末端にHisタグが付与されたコンストラクトとして大腸菌内で発現し、Hisタグを利用して精製することができる。アゾリン骨格導入酵素は、アゾリン骨格を導入する限り、その変異体であってもよい。
アゾリン骨格導入酵素とペプチドライブラリーとの反応は、上述した前駆体ペプチドを発現させたのと同じ容器内で、即ちワンポットで、前駆体ペプチドを精製することなく、アゾリン骨格導入酵素を添加して行うことができる。アゾリン骨格導入酵素とペプチドライブラリーとの反応は、例えば、アゾリン骨格導入酵素がPatDの場合、終濃度0.1μM〜50μM、反応温度4℃〜45℃、反応時間5分〜100時間等の範囲において、当業者が適宜条件を選択して行うことができる。
反応の確認は、例えば、MALDI-TOF-MSを用いて質量変化を測定することにより行うことができる。
【００３７】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様として、リーダー配列を、認識配列1、−（Xaa1−Xaa2）n−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドと融合させた場合には、当該前駆体ペプチドからリーダー配列を切断する工程を行ってもよい。これにより、−（Xaa0）m−で表されるカセット領域部分が、標的物質と結合しやすくなる。
リーダー配列の切断も、アゾリン骨格導入酵素の反応を行ったのと同じ容器内に、ペプチダーゼを加えることによって行うことができる。
リーダー配列の切断は、リーダー配列、認識配列1、リーダー配列と認識配列1の結合部位、認識配列1とカセット領域の結合部位、カセット領域と認識配列2との結合部位のいずれを切断して行ってもよく、切断する部位の配列に応じてペプチダーゼが選択される。ペプチダーゼとしては、トリプシン、Glu-C、Lys-C、Asp-N、Lys-N、Arg-C、トロンビン、Factor Xa、prescission protease、TEV protease、エンテロキナーゼ、HRV 3C Protease等が挙げられるがこれらに限定されない。
一例として、アゾリン骨格導入酵素の認識配列1をGLEASとする場合、エンドプロテイナーゼGlu-Cを用いて行うことができ、GluとAlaの間で切断することが可能である。Glu-Cの反応は、公知の方法に従って行うことができる。
【００３８】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様は、アゾリン化合物と、前記式（Ｉ）で示されるペプチドをコードするmRNAとの複合体を2種以上含むアゾリン化合物ライブラリーを製造するものである。これにより、アゾリン化合物ライブラリーを、mRNAディスプレイ（Nemoto, N. et al., FEBS Lett. 1997, 405−408; Roberts, R.W. and Szostak, J.W. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1997, 94,12297−12302）に応用することができる。
このようなアゾリン化合物−mRNA複合体ライブラリーを用いて、標的物質に結合するアゾリン化合物のスクリーニングを行えば、選択されたアゾリン化合物−mRNA複合体に対し、逆転写反応を行ってcDNAを含む複合体を得て、その塩基配列を決定することができる。
アゾリン化合物−mRNA複合体の作製は、例えば、公知の方法でmRNAライブラリーの各mRNAの3’末端にピューロマイシンを結合させ、ピューロマイシン結合mRNAライブラリーを作製し、このピューロマイシン結合mRNAライブラリーを用いて、無細胞翻訳系により前駆体ペプチドを発現させることにより行うことができる。
こうして、ペプチド−mRNA複合体ライブラリーを得た後、PatDと反応させ、必要に応じてリーダー配列を切断し、アゾリン化合物ライブラリーを得ることができる。
【００３９】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様においては、式（Ｉ）で示させるペプチドの少なくとも1つが、以下の(i)〜(iv)の少なくとも1つの特徴を有する。
(i) mが2〜40（但し、7及び8を除く）。mは、例えば、2、3、4、5、6、9、10、12、14、16、20、30、40である；
(ii) nが1〜20（但し、3及び4を除く）。nは、例えば、1、2、5、6、7、8、10、15、20である；
(iii) Xaa1の少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は少なくとも5つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は少なくとも5つが親水性アミノ酸である。
(i)〜(iv)の特徴を有するペプチドは、従来PatD等のアゾリン骨格導入酵素の基質とはなり得ないと考えられていたものを含み、本発明者らが初めてアゾリン骨格導入酵素の基質となり得ることを確認したものである。
【００４０】
今般、初めてアゾリン骨格導入酵素の基質となることが確認されたカセット配列として、以下のものが挙げられる。
【表３】
2012121392.tif 000016
【表４】
2012121392.tif 000017
【表４−２】
2012121392.tif 000018
【００４１】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様においては、アゾリン化合物の少なくとも1つが、アゾリン骨格を5以上有する。
従来、アゾリン骨格導入酵素を用いても、天然のPatEのカセット領域にアゾリン骨格は5以上導入されないものと考えられていた。アゾリン骨格を5以上有するアゾリン化合物は、本発明者らが初めて合成したものである。
【００４２】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様においては、アゾリン化合物の少なくとも1つが、Ser/Thr/Cysから得られた通常のオキサゾリン/チアゾリン以外のアゾリン骨格を有する。
従来、アゾリン骨格導入酵素を用いても、天然のPatEのカセット領域に存在するSer/Thr/Cys以外にはアゾリン骨格は導入されないものと考えられていた。Dap/tBuSer/iPrSer/PhSer/EtSerなどの非タンパク質性アミノ酸から誘導されたイミダゾリン骨格や置換型アゾリン骨格がPatD等のアゾリン骨格導入酵素によって導入された化合物は、本発明者らが初めて合成したものである。
【００４３】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの製造方法の一態様では、リーダー配列の切断の前又は後に、アゾリン化合物を大環状化する工程を含む。アゾリン化合物の大環状化は、ペプチドを大環状化する公知の方法又はそれに準ずる方法を用いて行うことができ、例えば、国際公開第2008/117833号に開示された方法やTimmermanらの方法（Timmerman, P et al., ChemBioChem 2005, 6:821-824）に従って行うことができる。
【００４４】
（アゾール化合物ライブラリーの製造方法）
本発明はまた、2種以上のアゾール化合物を含むアゾール化合物ライブラリーの製造方法を提供する。本発明のアゾール化合物ライブラリーの製造方法において使用される用語のうち、上述したアゾリン化合物ライブラリーの製造方法においても使用される用語は、特に断りがない限り同義と解される。
本明細書において「アゾール化合物」とは、下記式（Ｉ）で示されるペプチドの、Cys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾール骨格が導入されている化合物をいう。
A−（Xaa0）m−B      （Ｉ）
［式中、m個のXaa0は、任意のアミノ酸を示すが、少なくとも1つはCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸であり、mは、2から20より選択される整数を示し、A及びBは、それぞれ独立に0から8アミノ酸からなるペプチドを示す。］
【００４５】
本発明の一態様において、アゾール化合物は、式（Ｉ）における−（Xaa0）m−が、−（Xaa1−Xaa2）n−である。
［式中、n個のXaa1は、それぞれ独立に任意のアミノ酸を示し、n個のXaa2は、それぞれ独立にCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログからなる群より選択されるアミノ酸を示し、nは、1から10より選択される整数を示す。］
アゾール骨格が導入されたCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログは、Xaa1の位置にあるものでも、Xaa2の位置にあるものでもよい。
【００４６】
本明細書において、「Cys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾール骨格が導入されている」とは、Cys、Ser、Thrの脱水反応によって生じたアゾリン環の酸化反応が振興し、下記式で示されるアゾール環が導入されることを意味する。
【化１３】
2012121392.tif 000019
【００４７】
Ser、Thr、Cys、2,3-ジアミノ酸にアゾール骨格を導入すると、それぞれ以下のようなオキサゾール又はチアゾール又はイミダゾール骨格を生じる。
Ser：
【化１４】
2012121392.tif 000020
Thr：
【化１５】
2012121392.tif 000021
Cys：
【化１６】
2012121392.tif 000022
Dap：
【化１７】
2012121392.tif 000023
【００４８】
例えば、上述したThrの人工アナログ残基にアゾール骨格を導入すると以下に示すオキサゾール骨格を生じる。
【化１８】
2012121392.tif 000024
【００４９】
また、上述したCysの人工アナログ残基にアゾール骨格を導入すると以下に示すチアゾール骨格を生じる。
【化１９】
2012121392.tif 000025
【００５０】
また、上述したジアミノ酸の人工アナログ残基にアゾール骨格を導入すると以下に示すイミダゾール骨格を生じる。
【化２０】
2012121392.tif 000026
【００５１】
本発明のアゾール化合物ライブラリーの製造方法の一態様は、上述したアゾリン化合物ライブラリーの製造方法において、アゾリン骨格を導入する工程の後、アゾリン骨格が導入されたライブラリーと、アゾール骨格導入酵素とを反応させ、アゾリン骨格の少なくとも１つをアゾール骨格に変換する工程を含む。Ser及びThrに導入されたオキサゾリン骨格はオキサゾール骨格に、Cysに導入されたチアゾリン骨格はチアゾール骨格に、2,3-ジアミノ酸に導入されたイミダゾリン骨格はイミダゾール骨格にそれぞれ変換される。アゾリン骨格が導入されたライブラリーと、アゾール骨格導入酵素とを反応させる工程は、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で行ってもよい。アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドは、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドと同一であってもよいし、別のペプチドを用いてもよい。
アゾール骨格導入酵素としては、PatG及びこれと相同性を有する酵素が挙げられる。PatGと相同性を有する酵素としては、例えば、Leeらの報告（Lee, S. W. et al., PNAS vol.105, No.15, 5879-5884, 2008）に含まれるものを用いることができるがこれらに限定されない。
アゾール骨格導入酵素との反応は、アゾリン骨格導入酵素による反応を行ったのと同じ
容器内に、アゾール骨格導入酵素を添加することによって行うことができる。
【００５２】
本発明のアゾール化合物ライブラリーの製造方法の一態様は、アゾール骨格導入酵素としてPatGのペプチダーゼドメインを欠損した変異体もしくは点変異によりペプチダーゼ活性を無くした変異体を用いる。PatGは、2つのドメインからなり、天然においては、N末端のオキシダーゼドメインがPatDで構築されたアゾリン骨格をアゾール骨格に変換し、C末端のペプチダーゼドメインが、修飾後のペプチド部位の切り出し、大環状化を行っている。従って、本発明のアゾール化合物ライブラリーの製造方法では、ペプチダーゼドメインを欠損した変異体もしくは点変異によりペプチダーゼ活性を無くした変異体を用いることができる。
【００５３】
（アゾリン化合物ライブラリー）
本発明は、2種以上のアゾリン化合物ライブラリーも提供する。ここで使用される用語のうち、上述したライブラリーの製造方法においても使用される用語は、特に断りがない限り同義と解される。
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの一態様は、以下の(i)〜(iv)の少なくとも1つの特徴を有するアゾリン化合物を少なくとも1種含む。
(i) mが2〜20（但し、7及び8を除く）。mは、例えば、2、3、4、5、6、9、10、12、14、16、20、30、40であり得る；
(ii) nが1〜10（但し、3及び4を除く）。nは、例えば、1、2、5、6、7、8、10、15、20であり得る；
(iii) Xaa1の少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は少なくとも5つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は少なくとも5つが親水性アミノ酸である。
(i)〜(vi)の特徴を有するペプチドは、従来PatD等のアゾリン骨格導入酵素の基質とはなり得ないと考えられていたものを含み、本発明者らが初めてアゾリン骨格導入酵素の基質となり得ることを確認したものである。
【００５４】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの一態様は、アゾリン化合物のそれぞれが、そのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体を形成している。mRNAディスプレイに応用可能なライブラリーである。
【００５５】
本発明のアゾリン化合物ライブラリーの一態様は、上記式（Ｉ）で示されるペプチドのN末端及びC末端に、アゾリン骨格導入酵素の認識配列の全部または一部が結合している。
アゾリン骨格導入酵素の認識配列は、無細胞翻訳系で発現させたペプチドをアゾリン骨格導入酵素で修飾するために必要であり、本発明の方法でアゾリン化合物ライブラリーを作製し、ペプチダーゼでリーダー配列を切断する場合、N末端及びC末端にこれらの配列の全部又は一部が残存することがある。
例えば、認識配列1をGLEAS（配列番号：３）とし、リーダー配列をGlu−Cで切断する場合、カセット領域のN末端側には、Ala−Serが残る。
【００５６】
（アゾール化合物ライブラリー）
本発明は、2種以上のアゾール化合物ライブラリーも提供する。ここで使用される用語のうち、上述したライブラリーの製造方法においても使用される用語は、特に断りがない限り同義と解される。
【００５７】
本発明のアゾール化合物ライブラリーの一態様は、以下の(i)〜(iv)の少なくとも1つの特徴を有するアゾリン化合物を少なくとも1種含む。
(i) mが2〜20（但し、7及び8を除く）。mは、例えば、2、3、4、5、6、9、10、12、14、16、20、30、40である；
(ii) nが1〜10（但し、3及び4を除く）。nは、例えば、1、2、5、6、7、8、10、15、20である；
(iii) Xaa1の少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は少なくとも5つがCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログから選択されるアミノ酸である；及び
(iv) Xaa1の少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は少なくとも5つが親水性アミノ酸である。
(i)〜(iv)の特徴を有するペプチドは、従来PatD等のアゾリン骨格導入酵素の基質とはなり得ないと考えられていたものを含み、本発明者らが初めてアゾリン骨格導入酵素の基質となり得ることを確認したものである。従って、アゾリン骨格導入酵素によりアゾリン骨格が導入された後、アゾール骨格導入酵素による修飾を行ってアゾール骨格を導入できるものと理解される。
【００５８】
本発明のアゾール化合物ライブラリーの一態様は、アゾール化合物のそれぞれが、そのペプチド部分をコードするmRNAとの複合体を形成している。mRNAディスプレイに応用可能なライブラリーである。
【００５９】
本発明のアゾール化合物ライブラリーの一態様は、上記式（Ｉ）で示されるペプチドのN末端及びC末端に、PatDの認識配列の全部または一部が結合している。
PatDの認識配列は、無細胞翻訳系で発現させたペプチドをPatDで修飾するために必要であり、本発明の方法でアゾール化合物ライブラリーを作製し、ペプチダーゼでリーダー配列を切断する場合、N末端及びC末端にこれらの配列の全部又は一部が残存することがある。
例えば、認識配列1をGLEASとし、リーダー配列をGlu−Cで切断する場合、カセット領域のN末端側には、Ala−Serが残る。
【００６０】
（アゾリン化合物のスクリーニング方法）
本発明は、標的物質に結合するアゾリン化合物を同定するスクリーニング方法を提供する。
本発明のスクリーニング方法の一態様は、本発明に係るアゾリン化合物ライブラリーの製造方法又は本発明に係るアゾリン化合物ライブラリーと、標的物質を接触させてインキュベートする工程を含む。
本明細書において、標的物質は特に限定されず、低分子化合物、高分子化合物、核酸、ペプチド、タンパク質等とすることができる。特に、本発明のライブラリーによれば、標的物質がプロテアーゼ活性を有する場合にも用いることができる。
標的物質は、例えば、固相担体に固定して、本発明のライブラリーと接触させることができる。本明細書において、「固相担体」は、標的物質を固定できる担体であれば特に限定されず、ガラス製、金属性、樹脂製等のマイクロタイタープレート、基板、ビーズ、ニトロセルロースメンブレン、ナイロンメンブレン、PVDFメンブレン等が挙げられ、標的物質は、これらの固相担体に公知の方法に従って固定することができる。
標的物質と、ライブラリーは、適宜選択された緩衝液中で接触させ、pH、温度、時間等を調節して反応させる。
【００６１】
本発明のスクリーニング方法の一態様は、標的物質と結合したアゾリン化合物を選択する工程をさらに含む。標的物質への結合は、例えば、ペプチドを検出可能に標識する公知の方法に従って標識しておき、上記接触工程の後、緩衝液で固相担体表面を洗浄し、標的物質に結合しているアゾリン化合物を検出して行う。
検出可能な標識としては、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ等の酵素、125I、131I、35S、3H等の放射性物質、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ダンシルクロリド、フィコエリトリン、テトラメチルローダミンイソチオシアネート、近赤外蛍光材料等の蛍光物質、ルシフェラーゼ、ルシフェリン、エクオリン等の発光物質、金コロイド、量子ドットなどのナノ粒子が挙げられる。酵素の場合、酵素の基質を加えて発色させ、検出することもできる。また、ペプチドにビオチンを結合させ、酵素等で標識したアビジン又はストレプトアビジンを結合させて検出することもできる。
【００６２】
単に結合の有無又は程度を検出・測定するのみでなく、標的物質の活性の亢進又は阻害を測定し、かかる亢進活性又は阻害活性を有するアゾリン化合物を同定することも可能である。このような方法により、生理活性を有し、医薬として有用なアゾリン化合物の同定も可能となる。
【００６３】
アゾリン化合物ライブラリーが、アゾリン化合物−mRNA複合体で構成される場合、上述の方法で、標的物質に結合するアゾリン化合物を選択した後、選択したアゾリン化合物のmRNAの塩基配列を解析する工程を行ってもよい。
mRNAの塩基配列の解析は、まず逆転写反応によってcDNAを合成し、該cDNAの塩基配列を解析することにより行うことができる。これにより、遺伝子型と表現型の関係を簡単に特定することができる。
また、逆転写反応の後、さらに転写を行い、再びmRNAライブラリーへと変換し、標的化合物を用いたスクリーニングを繰り返すことによって、標的物質に対する結合能の強いアゾリン化合物を濃縮することができる。
【００６４】
（アゾール化合物のスクリーニング方法）
本発明は、標的物質に結合するアゾール化合物を同定するスクリーニング方法を提供する。
本発明のスクリーニング方法の一態様は、本発明に係るアゾール化合物ライブラリーの製造方法又は本発明に係るアゾール化合物ライブラリーと、標的物質を接触させてインキュベートする工程を含む。
アゾール化合物のスクリーニング方法は、上述したアゾリン化合物のスクリーニング方法に準じて行うことができる。
【００６５】
（スクリーニング用キット）
本発明は、アゾリン化合物又はアゾール化合物のスクリーニング用キットを提供する。
本発明のスクリーニング用キットの一態様は、本発明に係る製造方法で製造されたアゾリン化合物ライブラリー若しくはアゾール化合物ライブラリー、又は、本発明に係るアゾリン化合物ライブラリー若しくはアゾール化合物ライブラリーを含む。  本発明のスクリーニング用キットは、他に、標的物質とアゾリン化合物又はアゾール化合物との結合を検出するのに必要な試薬及び装置を含む。かかる試薬及び装置としては、例えば、固相担体、緩衝液、標識用試薬、酵素、酵素反応停止液、マイクロプレートリーダーが挙げられるがこれらに限定されない。
本発明のスクリーニング用キットにおいては、ライブラリーが、固相担体にアレイ状に固定されていてもよい。
【００６６】
（アゾリン化合物の製造方法）
本発明は、式(Ｉ)で表されるペプチドにおいて、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格が導入されているアゾリン化合物の製造方法も提供する。
当該方法は、N末端から順に、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1、−（Xaa0）m−、及びアゾリン骨格導入酵素による認識配列2を含む前駆体ペプチドをコードするmRNA製造する工程と（ここで、認識配列1及び2は、0〜10アミノ酸からなるアゾリン骨格導入酵素による認識配列をいう。）；
上記mRNAを用いて、無細胞翻訳系により前駆体ペプチドを発現させる工程と；
アゾリン骨格導入酵素と、前駆体ペプチドとを、アゾリン骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、Xaa0のCys、Ser、Thr、2,3-ジアミノ酸、及びこれらのアナログの少なくとも1つにアゾリン骨格を導入する工程とを含む。
ここで、リーダー配列を含むペプチドと、認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとは別個のペプチドである。
本方法によれば、リーダー配列を含むペプチドと認識配列1、−（Xaa0）m−、及び認識配列2を含む前駆体ペプチドとを、それぞれより短いペプチドとすることができるので、調製するのが容易である。調製は化学合成、翻訳合成、これらの組合せ等によって行うことができる。また、スクリーニングに先立って、リーダー配列を切り離す必要もない。
したがって、本方法は、本発明のスクリーニング方法によって、標的物質に結合するアゾリン化合物が同定された後、当該アゾリン化合物を大量に調製する場合に特に有利である。
【００６７】
（アゾール化合物の製造方法）
本発明は、上述のアゾリン化合物の製造方法によって得られたアゾリン化合物を用いて、アゾール化合物を製造する方法も包含する。
当該方法は、アゾリン化合物と、アゾール骨格導入酵素とを、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドの存在下で反応させ、アゾリン骨格の少なくとも１つをアゾール骨格に変換する工程を含む。
本方法によれば、リーダー配列を含むペプチドとアゾリン化合物とを、それぞれより短いペプチドとすることができるので、調製するのが容易である。調製は化学合成、翻訳合成、これらの組合せ等によって行うことができる。また、スクリーニングに先立って、リーダー配列を切り離す必要もない。
したがって、本方法は、本発明のスクリーニング方法によって、標的物質に結合するアゾール化合物が同定された後、当該アゾール化合物を大量に調製する場合に特に有利である。
【００６８】
（アゾリン化合物又はアゾール化合物の製造用キット）
本発明に係るアゾリン化合物とアゾール化合物の製造用キットは、上記方法でアゾリン化合物又はアゾール化合物を製造するので、アゾリン骨格導入酵素又はアゾール骨格導入酵素と、アゾール骨格導入酵素の基質のリーダー配列を含むペプチドとを含む。
当該キットは、その他必要な試薬や器具、取扱説明書等を含んでいてもよい。
【実施例】
【００６９】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれらの実施例に何ら限定されない。【００７０】
以下の実施例においてアゾリン化合物ライブラリーの合成スキームを図１に示す。
［１］PatDの発現・精製
pET16bのプラスミドにPatDの遺伝子を導入し、N末端に10xHisタグが付与されたコンストラクトのプラスミドを作製した。大腸菌BL21(DE3)pLysS株に形質転換し、30℃で培養した。O.D.が0.4に達した所でIPTG 0.1mMを添加し、大量発現を誘導した後、オーバーナイトで培養した。回収した菌体をLysis Buffer(1M NaCl, 10mM Imidazole, 50mM HEPES-Na(pH7.5))で懸濁した後、超音波で破砕した。フィルターで濾過したサンプルを、His-Trap HPカラムを用いて精製した。カラムはあらかじめ10CVのBuffer A(500mM NaCl, 25mM Imidazole, 50mM HEPES-Na(pH7.5))で平衡化し、サンプル注入後、Buffer B(500mM NaCl, 500mM Imidazole, 50mM HEPES-Na(pH7.5))濃度を徐々に上げることによって、サンプル中のタンパク質を分離し、純粋なPatDフラクションを得た。得たサンプルを、Amicon Ultra(Millipore) 30kDaを用いて約4倍に濃縮した。その後PD-10(GE lifescience)を用いてStore Buffer(200mM NaCl,25mM HEPES(pH7.5), 10% glycerol)にバッファ交換し、80℃で保存した。【００７１】
［２］PatEプラスミド(pET16b)の構築
pET16bに、以下のPatE配列をサブクローニングした。
ATGAACAAGAAAAACATCCTGCCCCAACAAGGTCAACCGGTTATCCGCTTAACCGCAGGACAGTTGAGCTCGCAACTCGCCGAACTGTCTGAAGAAGCACTGGGCGACGCGGGGTTGGAGGCAAGCGTTACGGCGTGTATCACGTTTTGTGCGTACGATGGCGTTGAGCCATCTATTACGGTCTGCATTAGTGTCTGCGCCTATGATGGGGAGTAA（配列番号：５８）【００７２】
［３］基質ペプチドのDNAの作製
［３-１］PatEpreの作製
PatEプラスミドを鋳型に、2回のPCRによりPatEpreのDNAを作製した。下線部は、認識配列1のGLEAS（配列番号：３）をコードするDNAである。配列番号：５９の４８位〜１５３位がリーダー配列のコード領域である。
GGCGTAATACGACTCACTATAGGGTTAACTTTAACAAGGAGAAAAACATGAACAAGAAAAACATCCTGCCCCAACAAGGTCAACCGGTTATCCGCTTAACCGCAGGACAGTTGAGCTCGCAACTCGCCGAACTGTCTGAAGAAGCACTGGGCGACGCGGGGTTGGAGGCAAGC（配列番号：５９）
PatEpreは、リーダー配列と認識配列（下線部）を含んだ以下のアミノ酸配列からなるペプチドをコードする。
MNKKNILPQQGQPVIRLTAGQLSSQLAELSEEALGDAGLEAS
PatEpreのPCRに使用したプライマーを下表に示す。プライマーの配列は、後掲するプライマー一覧に示す。
【表５】
2012121392.tif 000027
【００７３】
［３-２］基質ペプチドのDNAの作製
［３-２-１］認識配列2がAYDGVEPSのもの
PatEpreを鋳型に、2回もしくは3回のPCRによりカセット領域に変異を有するmutantのDNAを作製した。得られたペプチドの配列は、以下のとおりである。
MNKKNILPQQGQPVIRLTAGQLSSQLAELSEEALGDAGLEAS（XXX）AYDGVEPS
カセット領域に当たる（XXX）内の配列および使用したプライマーを以下に示す。プライマーの配列は、後掲するプライマー一覧に示す。
【表６】
2012121392.tif 000028
【表７】
2012121392.tif 000029
【表７−２】
2012121392.tif 000030
【００７４】
［３-２-２］認識配列2がAYDGVEPS（配列番号：５）以外のペプチド
同様に、PatEpre2を鋳型として２、３回のPCRを行い、C末配列がAYDGVEPS以外となるペプチドのDNAも調製した。
MNKKNILPQQGQPVIRLTAGQLSSQLAELSEEALGDAGLEAS（XXX）（YYY）
（XXX）はカセット領域、（YYY）は認識配列2を示す。
【表８】
2012121392.tif 000031
使用したプライマーを以下に示す。プライマーの配列は、後掲するプライマー一覧に示
す。
【表９】
2012121392.tif 000032
【００７５】
［４］PatD酵素反応
３-２で調製したDNAを、Kawakamiらの方法（Kawakami et al., Chemistry & Biology 15, 32-42 (2008)）に従って2.5μlスケールの無細胞タンパク質発現系で転写・翻訳した後、40mM Tris-HCl(pH8.0), 8mM DTT, 4mM MgCl2, 0.8mM ATP（それぞれ終濃度）を加えて溶液条件を整えた後、リコンビナントPatDを加えた。
下記のような2条件で反応を行った。
【表１０】
2012121392.tif 000033
【００７６】
［５］MALDI-TOF-MSによるペプチドの質量測定
MatrixとしてSinapinic Acidを用いて、MALDI-TOF-MSによってペプチドの質量を測定し、PatD添加による質量変化の有無を確認した。質量変化により、導入されたアゾリン環の個数がわかる。
カセット領域のアミノ酸配列が野生型PatEと同じであるC1wtをPatDで修飾したときの質量分析の結果を図２に示す。この結果、4つのアゾリン環形成を示す分子量変化が見られた。
また、カセット領域が12アミノ酸（式（Ｉ）においてn=6）であるC1m10、及び16アミノ酸（式（Ｉ）においてn=8）であるC1m38の結果を図３に示す。C1m10は6つ、C1m38は8つのアゾリン環が導入されていることが確認された。
その他の代表的な結果を図４に示す。図４に示されるとおり、従来はPatDの基質になると考えられていなかったようなCys、Ser、Thr以外に親水性残基が存在する場合にも、PatDによる修飾を受けることが確認された。
このような実験の結果確認されたPatDの基質許容性を図５に示す。図示されるとおり、これまでにPatDの基質になると考えられていなかった配列を含む、多様な配列がPatDにより修飾を受けることが確認され、PatDは、アゾリン化合物ライブラリー合成に十分な基質許容性を有することがわかった。【００７７】
［６］Glu-C酵素反応
PatD酵素反応後、5.0μlの反応液に対してGlu-C（Roche）0.5μgを添加、25℃で2時間インキュベートし、ペプチドを切断した。このような実験の結果得られたリーダー配列の切断された修飾ペプチドの質量分析を図６に示す。【００７８】
［７］Glu-C酵素反応後の質量測定
Matrixとしてα-CHCAを用いて、MALDI-TOF-MSによってペプチドの質量を測定し、リーダー配列が切断されたペプチドを確認した。
結果の一例を図６に示す。リーダー配列が切断されたペプチドの形成が確認された。【００７９】
［８］ライブラリーの合成
ライブラリー構築に適した非翻訳領域を持つPatEpre2のDNAを調製した。下線部は、認識配列1のGLEAS（配列番号：３）をコードするDNAである。配列番号：６１の４６位〜１５１位がリーダー配列のコード領域である。
TAATACGACTCACTATAGGGTTAACTTTAAGAAGGAGATATACATATGAACAAGAAAAACATCCTGCCCCAACAAGGTCAACCGGTTATCCGCTTAACCGCAGGACAGTTGAGCTCGCAACTCGCCGAACTGTCTGAAGAAGCACTGGGCGACGCGGGGTTGGAGGCAAGC（配列番号：６１）
PatEpre2を鋳型に、ランダム塩基を含むプライマーを用いて、2回もしくは3回のPCRにより、下記のような2種類のライブラリーを作製した。【００８０】
［８-１］（XC）nライブラリー
下記の配列を有する二本鎖DNAを調製した。(n=3-8)
TAATACGACTCACTATAGGGTTAACTTTAAGAAGGAGATATACATATGAACAAGAAAAACATCCTGCCCCAACAAGGTCAACCGGTTATCCGCTTAACCGCAGGACAGTTGAGCTCGCAACTCGCCGAACTGTCTGAAGAAGCACTGGGCGACGCGGGGTTGGAGGCAAGC(NNKTGT)nGCGTACGATGGCGTTGGT（配列番号：６２）
このDNAを翻訳合成すると、以下のようなペプチドが合成される。
MNKKNILPQQGQPVIRLTAGQLSSQLAELSEEALGDAGLEAS(XC)nAYDGVGSGSGS（配列番号：６３）【００８１】
［８-２］（X-C/S/T）nライブラリー
下記の配列を有する二本鎖DNAを調製した。(n=3-6)
TAATACGACTCACTATAGGGTTAACTTTAAGAAGGAGATATACATATGAACAAGAAAAACATCCTGCCCCAACAAGGTCAACCGGTTATCCGCTTAACCGCAGGACAGTTGAGCTCGCAACTCGCCGAACTGTCTGAAGAAGCACTGGGCGACGCGGGGTTGGAGGCAAGC(NNKWST)nGCGTACGATGGCGTTGGT（配列番号：６４）
このDNAを翻訳合成すると、以下のようなペプチドが合成される。
MNKKNILPQQGQPVIRLTAGQLSSQLAELSEEALGDAGLEA(X C/S/T)nAYDGVGSGSGS（配列番号：６５）
それぞれのライブラリー構築に用いたプライマーの種類を下に示す。プライマーの配列は、後掲するプライマー一覧に示す。
【表１１】
2012121392.tif 000034
【００８２】
［９］リーダー配列についての検討（１）
リーダー配列の要否を検討するために、上記［１］〜［８］と同様の方法で、基質ペプチドからリーダー配列を除いた場合と、リーダー配列を基質ペプチドとは別個のペプチドとして翻訳合成して反応系に加えた場合、及び化学合成したリーダー配列を終濃度1 uM、10 uM、50 uMになるように加えた場合とについて実験した。カセット配列は、8アミノ酸（VTACITFC）とした。
結果を図７に示す。リーダー配列が基質ペプチドに融合していると酵素による修飾効率は高くなるものの、リーダー配列がなくても1分子の脱水は見られ、酵素の基質となるためにリーダー配列は必須ではないことがわかった。また、リーダー配列が反応系に存在していれば、基質ペプチドと融合していなくても4分子の脱水が見られ、基質ペプチドは十分に修飾されることが確認された。このことは、リーダー配列が基質の選択に必要なのではなく、リーダー配列の構造が酵素の活性化に寄与し、反応効率に影響を与えていることを示唆する。【００８３】
［１０］リーダー配列についての検討（２）
上記［１］〜［８］と同様の方法で、図８及び図１９に示されるようにリーダー配列の一部を欠失させ、PatDによる酵素活性を確認した。
図８及び図１９に示されるとおり、PatDによる修飾を受けるために、全長のリーダー配列は必須ではないことがわかった。また、C末端側の配列がPatDによる修飾に重要であり、リーダー配列のC末端を含んでいれば、例えば、6アミノ酸程度でもPatDによる修飾を十分に受けることが確認された。【００８４】
［１１］リーダー配列についての検討（３）
上記［１］〜［８］と同様の方法で、図１８に示されるようにリーダー配列の全体を全く別のペプチド配列に置換し、PatDによる酵素活性を確認した。
図１８に示されるとおり、PatDによる修飾を受けるために存在が必要なリーダー配列は、PatEのリーダー配列に制限されず、例えばヒトActinの部分配列や、Lacticin481の前駆体ペプチドのリーダー配列、PatEのリーダー配列をシャッフルした配列などであってもよいことが確認された。【００８５】
［１２］リーダー配列についての検討（４）
上記［１］〜［８］と同様の方法で、図２０に示されるようにリーダー配列の一部アミノ酸に点変異を導入し、PatDによる酵素活性を確認した。
図２０に示されるとおり、PatDによる修飾を受けるために、PatEのリーダー配列においては、28番目のGlu、29番目のLeu、31番目のGlu、32番目のGlu、34番目のLeuがPatDによる修飾に重要であることが確認された。【００８６】
［１３］認識配列についての検討
上記［１］〜［８］と同様の方法で、図９及び図２１に示されるように認識配列を欠失させた場合や、配列を変えた場合、配列を追加した場合について、PatDによる酵素活性を検討した。
図９及び図２１に示されるとおり、認識配列2が存在しなくても、基質ペプチドは4分子の脱水を受けた。認識配列1を除くと、2分子の脱水しか生じなかったが、認識配列1も酵素活性に必須ではないことが確認された。また、認識配列をGGGGGやQQQQQやLLLLLやPPPPPに変更しても十分に修飾（4分子の脱水）を受けた。さらに、リーダー配列と認識配列の間にGGGGGを挿入した場合、認識配列とカセット配列の間にGGGGGを挿入した場合でも十分に修飾（4分子以上の脱水）を受けた。認識配列2の下流に追加の配列を付加した場合でも十分に修飾を受けた。
これらの結果から、認識配列1が存在したほうがPatDによる修飾効率は高くなるが、その配列は特に限定されず、認識配列2の存否はPatDによる修飾効率にほとんど影響しないことが示唆された。また、認識配列2の下流に配列を付加しても修飾効率にほとんど影響しないことも示唆された。【００８７】
［１４］カセット配列に非天然型アミノ酸を含む基質に対するPatDの修飾効率の検討
図１０Ａに示すとおり、カセット配列に非天然型アミノ酸を含む基質を翻訳合成し、PatDによる修飾を行った。用いたアミノ酸を図１０Ｂに示す。代表的な結果を図１１に示す。図１１に示されるとおり、従来はPatDの基質になると考えられていなかったようなThrの異性体、置換型のSer、ジアミノ酸などもPatDによる修飾を受け、対応するアゾリン環骨格に変換されることが確認された。【００８８】
［１５］その他の基質についての検討
以下の配列を有する基質をそれぞれ合成し、PatDによる修飾を確認した。結果を下表に示す。代表的な結果を図１６及び図１７に示す。
【表１１−２】
2012121392.tif 000035
【００８９】
［１６］mRNAディスプレイ法を用いたスクリーニング
上述の方法で得られたアゾリン化合物ライブラリーを用いて、マトリックスメタロプロテアーゼ（Matrix metalloproteinase; MMP）12に結合する化合物をmRNAディスプレイ法を用いてスクリーニングした。【００９０】
［１６-１］MMP12の精製
MMP12はC末端に6xHisタグとAviタグが付与されたコンストラクトとして大腸菌内で発現した。精製はHisタグを利用して行った。
また、Aviタグは同じプラスミドに組み込まれているbirAが発現するBirAによってビオチン化されるため、mRNAディスプレイの際にMMP12をストレプトアビジンビーズで固定化するために付与した。【００９１】
［１６-２］mRNAライブラリーの作製
［８］で得られたDNAライブラリーをT7 RNAポリメラーゼを用いて転写することで対応するmRNAを得た。【００９２】
［１６-３］mRNAディスプレイ
以下の「ピューロマイシンリンカーとの連結」から「回収したペプチドの配列情報の増幅」までのサイクルを繰り返し、アゾリン含有化合物ライブラリーからMMP12に結合するペプチドを選択した。
［１６-３-１］ピューロマイシンリンカーとの連結
下記の配列で表されるピューロマイシンリンカーを上記の mRNA ライブラリーとアニールさせ、T4 RNA ligase で連結した。(SPC18 はCとOの総数が18であるPEGを表す。）
pdCTCCCGCCCCCCGTCC(SPC18)5CC(Pu)
［１６-３-２］翻訳
ピューロマイシンリンカーの連結されたmRNAライブラリーを翻訳し、ペプチドライブラリーを合成した。合成されたペプチドのC末端にピューロマイシンが結合することで、mRNAとペプチドが連結される。
［１６-３-３］PatDによる翻訳
mRNAによってタグ付けされたペプチドライブラリーをPatDにより翻訳後修飾し、カセット配列内にアゾリン環を導入した。
［１６-３-４］逆転写
ペプチドと結合しているmRNAを逆転写し、アゾリン修飾ペプチド-mRNA-DNA複合体を合成した。
［１６-３-５］プロテアーゼGlu-Cによる切断
Glu-Cを加え、リーダー配列を切断した。
［１６-３-６］MMP12に結合するアゾリン修飾ペプチドの取得
ストレプトアビジンビーズに固定化したMMP12に、調製したアゾリン含有化合物ライブラリーを混合し、4°Cで30分インキュベートした。上澄みを除去し、残ったビーズをバッファーで洗浄した。ビーズにPCR用の溶液を加えて95°Cで5分間加熱し、ペプチドをビーズからはがして上澄みを回収した。
［１６-３-７］回収したアゾリン修飾ペプチドの配列情報の増幅
MMP12に結合して回収されてきたアゾリン修飾ペプチド-mRNA-DNA複合体に含まれるDNAを、PCRによって増幅した。得られたDNAを転写してmRNAとした。
［１６-３-８］選択されたアゾリン含有化合物配列の同定
上記の一連の操作を繰り返し、DNAの回収率に変化が見られなくなったところで増幅されたDNAを用いてTAクローニングを行い、得られたアゾリン含有化合物の配列を同定した。
［１６-３-９］選択されたアゾリン含有化合物の結合能力評価
mRNAディスプレイのスキームに従って、ただしmRNAライブラリーからではなく選択されたペプチドのmRNAから一連の操作を行い、選択されたアゾリン含有化合物がMMP12が結合したビーズに結合するかどうか調べた。また、PatDによる翻訳後修飾を行う条件と行わない条件で操作を行った。その結果、得られた配列についてPatDによる修飾がある時のみMMP12に結合し、それらの配列においてアゾリン骨格がMMP12への結合に寄与していることが示唆された。【００９３】
mRNAディスプレイ法のイメージを図１２に示す。
セレクションの結果を図１３に示す。
セレクションの結果選択された5種類のアゾリン含有化合物A〜Eについて配列を解析し（データ示さず）、MMP12に対する結合能力を評価した結果を図１４に示す。【００９４】
以下に使用したプライマーの塩基配列一覧を示す。
【表１２】
2012121392.tif 000036
【表１３】
2012121392.tif 000037
【表１３−２】
2012121392.tif 000038
【表１３−３】
2012121392.tif 000039
【表１４】
2012121392.tif 000040
【配列表フリーテキスト】
【００９５】
配列番号１は、PatEのリーダー配列のアミノ酸配列である。
配列番号２及び３は、それぞれ、アゾリン骨格導入酵素による認識配列1の一例である。
配列番号４−９は、それぞれ、アゾリン骨格導入酵素による認識配列2の一例である。
配列番号１０−５７は、新たにアゾリン骨格導入酵素の基質となることが確認されたアミノ酸配列である。
配列番号５８は、PatEをコードする核酸の塩基配列である。
配列番号５９は、PatEpreをコードする核酸の塩基配列である。
配列番号６０は、野生型PatEのカセット領域のアミノ酸配列である。
配列番号６１は、PatEpre2をコードする核酸の塩基配列である。
配列番号６２は、（XC）nライブラリーの各化合物のペプチド部分をコードする核酸の塩基配列である。
配列番号６３は、（XC）nライブラリーの各化合物のペプチド部分のアミノ酸配列である。
配列番号６４は、（X-C/S/T）nライブラリーの各化合物のペプチド部分をコードする核酸の塩基配列である。
配列番号６５は、（X-C/S/T）nライブラリーの各化合物のペプチド部分のアミノ酸配列である。
配列番号６６−１７２は、本願実施例で用いられたプライマーの塩基配列である。
【図１】
2012121392.tif 000041
【図２】
2012121392.tif 000042
【図３】
2012121392.tif 000043
【図４】
2012121392.tif 000044
【図５】
2012121392.tif 000045
【図６】
2012121392.tif 000046
【図７】
2012121392.tif 000047
【図８】
2012121392.tif 000048
【図９】
2012121392.tif 000049
【図１０Ａ】
2012121392.tif 000050
【図１０Ｂ】
2012121392.tif 000051
【図１１】
2012121392.tif 000052
【図１２】
2012121392.tif 000053
【図１３】
2012121392.tif 000054
【図１４】
2012121392.tif 000055
【図１５】
2012121392.tif 000056
【図１６】
2012121392.tif 000057
【図１７】
2012121392.tif 000058
【図１８】
2012121392.tif 000059
【図１９】
2012121392.tif 000060
【図２０】
2012121392.tif 000061
【図２１】
2012121392.tif 000062
【国際調査報告】
2012121392.tif 000063
2012121392.tif 000064
2012121392.tif 000065
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