(57)【要約】  ＰＨＡを生産可能なＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ属微生物の細胞中のＰＨＡ合成酵素の比活性を０．１Ｕ／ｍｇ−ｐｒｏｔｅｉｎ以下に制御することにより、１００ｇ／Ｌ以上の生産性にて、高分子量のＰＨＡを合成する微生物及び高分子のＰＨＡの製造方法を見出し、本発明を完成させた。この微生物及び方法を用いることにより重量平均分子量４００万以上のＰＨＡを工業的に効率よく生産することができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
ポリヒドロキシアルカン酸を生産可能なCupriavidus属微生物であって、
前記微生物が、下記（１）ないし（４）からなる群から選ばれる１以上の塩基配列からなるポリヒドロキシアルカン酸合成酵素をコードする遺伝子を含んでおり；
（１）配列番号９に示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列、
（２）配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ポリヒドロキシアルカン酸合成活性を有するポリペプチドをコードする塩基配列、
（３）配列番号１０に示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列、
（４）配列番号１０に示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ポリヒドロキシアルカン酸合成活性を有するポリペプチドをコードする塩基配列、
前記ポリヒドロキシアルカン酸合成酵素をコードする遺伝子が下記（ａ）ないし（ｄ）からなる群から選ばれる１以上の塩基配列により、細胞中のポリヒドロキシアルカン酸合成酵素の比活性が0.1U/mg-protein以下に制御されており；
（ａ）配列番号１１に示される塩基配列、
（ｂ）配列番号１１に示される塩基配列に対して85%以上の配列同一性を有し、かつ遺伝子の転写を制御する活性を有する塩基配列、
（ｃ）配列番号１２に示される塩基配列、
（ｄ）配列番号１２に示される塩基配列に対して85%以上の配列同一性を有し、かつ遺伝子の転写を制御する活性を有する塩基配列、
重量平均分子量が400万以上のポリヒドロキシアルカン酸を100g/L以上の生産性にて生産可能なCupriavidus属微生物。
【請求項２】
前記微生物が、Cupriavidus necatorである請求項１に記載の微生物。
【請求項３】
前記ポリヒドロキシアルカン酸が、P(3HB)、P(3HB-co-3HV)、及び、P(3HB-co-3HH)からなる群から選ばれる１以上のポリエステルである請求項１又は２に記載の微生物。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか１項に記載の微生物を用いる重量平均分子量400万以上のポリヒドロキシアルカン酸の製造方法。
【請求項５】
炭素源が糖である請求項４に記載の製造方法。
【請求項６】
炭素源が油脂及び／又は脂肪酸である請求項４に記載の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、高分子量ポリエステル生産微生物、特に高分子量ポリヒドロキシアルカン酸（以下ＰＨＡ）生産微生物、また、それを用い工業的に効率よく微生物にＰＨＡを産生させる方法に関する。【０００２】
また、本発明は、加工特性に優れた性質を示す超高分子量の生分解性ポリエステルの生産微生物に関する。さらに詳しくは、本発明は、ポリヒドロキシアルカン酸合成酵素比活性を高分子量のポリエステルが生産される程度に制御する技術に関する。また、本技術は概微生物を用い、工業的に超高分子量ポリエステルを高生産させる方法に関する。
【背景技術】
【０００３】
ＰＨＡは、広範な微生物によって生成されるポリエステル型有機分子ポリマーである。ＰＨＡは生分解性を有し、熱可塑性高分子であること、また、再生可能資源から産生されることから、環境調和型素材または生体適合型素材として工業的に生産し、多様な産業へ利用する試みが行われている。【０００４】
このＰＨＡを構成するモノマー単位は一般名３−ヒドロキシアルカン酸であって、具体的には３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸、３−ヒドロキシヘキサン酸、３−ヒドロキシオクタン酸、あるいはよりアルキル鎖の長い３−ヒドロキシアルカン酸が例示され、これらが単重合もしくは共重合することにより、ポリマー分子が形成される。【０００５】
このようなＰＨＡの例として、３−ヒドロキシ酪酸（以下、3HBと略す）のホモポリマーであるポリ−３−ヒドロキシ酪酸（以下、P(3HB)と略す）が挙げられる。また、３−ヒドロキシ酪酸(3HB)と３−ヒドロキシ吉草酸（以下、3HVと略す）の共重合体（以下、P(3HB-co-3HV)と略す）が挙げられる。さらに、3HBと３−ヒドロキシヘキサン酸（以下、3HHと略す）の共重合体（以下、P(3HB-co-3HH)と略す）が挙げられる。【０００６】
ポリエステルはその分子量によって特性が変化し、繊維などに加工する際にはできるだけ高分子量であることが望ましい。微生物が産生するポリヒドロキシアルカン酸の分子量は、微生物毎に異なるものの、おおむね5万から100万であるので、より高分子量のＰＨＡの生産が研究された。【０００７】
Ralstonia eutropha由来のＰＨＡ合成に関する遺伝子を組み込んだ大腸菌を用い、培養時のｐＨ及びグルコース濃度をコントロールすることにより重量平均分子量が1000万を越えるP(3HB)の生産方法が示された。その中で高分子量P(3HB)では繊維状等への加工時に重要な物性（例えば引張り強度や再延伸性）が向上することが明らかにされている（非特許文献１、非特許文献２、非特許文献３参照）。【０００８】
インビトロでのP(3HB)生産ではＰＨＡ合成酵素濃度を変化させることにより、300万〜1200万の重量平均分子量を有するP(3HB)を生産可能であることも明らかにされた（非特許文献４参照）。【０００９】
誘導性プロモーターにより制御されたＰＨＡ合成酵素遺伝子等を有する発現ベクターを用いた大腸菌によるP(3HB)の生産では、誘導剤添加量で発現する酵素量を制御した結果、重量平均分子量を78万〜400万でコントロール可能であることが開示されている（特許文献１参照）。【００１０】
特許文献２ではＰＨＡ合成酵素遺伝子をバクテリアの染色体上に組み込んで発現させると、組み込み部位によって異なる分子量のＰＨＡを生産できることが開示されている。R. eutrophaの染色体上にAeromonas caviae由来のＰＨＡ合成酵素遺伝子と基質モノマーを供給する遺伝子を組み込んだ例では40万〜1000万の分子量を有する３−ヒドロキシヘキサン酸と３−ヒドロキシオクタン酸の共重合ポリエステルが蓄積された。しかしながらその生産性については言及されていない。【００１１】
P(3HB-co-3HH)の生産研究も多く報告されている。【００１２】
一方で、安価炭素源としてパーム油を使用し、R. eutrophaにA. caviae由来のＰＨＡ合成酵素変異体遺伝子と大腸菌由来の３−ケトアシル−ＡＣＰレダクターゼ遺伝子(fabG)とを導入した形質転換株を用い、64時間の培養で菌体生産量109.2g/L、ポリエステル含量68.6%、重量平均分子量510万のP(3HB-co-3HH)を生産したことが報告されている。（特許文献３）。【００１３】
上記のように、高分子量P(3HB)や、P(3HB-co-3HH)を製造する従来の技術は重量平均分子量400万以上を達成しているが、高価な原料を用いていたり、生産性が低かったりするなど、高分子量ポリエステルを工業的に安価に高生産させるには課題があった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１４】
【特許文献１】米国特許５８１１２７２号
【特許文献２】米国特許６５９３１１６号
【特許文献３】国際公開公報ＷＯ２００６−１０１１７６号
【非特許文献】
【００１５】
【非特許文献１】Appl. Microbiol. Biotechnol., 47: 140-3 (1997)
【非特許文献２】J. Macromol. Sci., Pure Appl. Chem., A35: 319-35 (1998)
【非特許文献３】Int. J. Biol. Macromol., 25: 87-94 (1999)
【非特許文献４】Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 92: 6279-83 (1995)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
本発明は、これまで必ずしも産業利用を可能にする生産性で生産できなかった分子量400万以上のＰＨＡを生産する微生物を育種することを課題とする。具体的には、微生物のＰＨＡ合成に関与する酵素の比活性を低位に制御することで、高分子量のＰＨＡを高生産する微生物の育種や微生物によるＰＨＡの製造を、工業的に効率よく行う方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明者らは、高分子量のＰＨＡを高生産する微生物を育種するための検討を鋭意行った。その結果、ＰＨＡ合成酵素の比活性を遺伝子レベルで制御することにより、様々な分子量のＰＨＡを高生産することを見出し、その中から、高分子量のＰＨＡを合成する方法を見出し、本発明を完成させた。【００１８】
本発明の特徴の１つは、細胞中のＰＨＡ合成酵素比活性が0.1U/mg-protein以下に制御され、かつ、100g/L以上の生産性にて高分子量ＰＨＡが生産可能なCupriavidus属に属する微生物である。【００１９】
本発明の高分子量ＰＨＡの重量平均分子量は400万以上であることが好ましい。【００２０】
本発明の微生物は、配列番号９又は１０で表されるアミノ酸配列をコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子、又は、該アミノ酸配列対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ＰＨＡ合成活性を有するポリペプチドをコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子を有する微生物であることが好ましい。【００２１】
本発明の微生物は、ＰＨＡ合成酵素遺伝子の転写を制御するプロモーターの塩基配列が配列番号１１、又は１２に記載の塩基配列、またはそれらの塩基配列と85%以上の配列同一性を有する塩基配列である上記微生物である。【００２２】
本発明の微生物は、特には、ＰＨＡを生産可能なCupriavidus属微生物であって、前記微生物が、下記（１）ないし（４）からなる群から選ばれる１以上の塩基配列からなるＰＨＡ合成酵素をコードする遺伝子を含んでおり；
（１）配列番号９に示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列、
（２）配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ＰＨＡ合成活性を有するポリペプチドをコードする塩基配列、
（３）配列番号１０に示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列、
（４）配列番号１０に示されるアミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ポリヒドロキシアルカン酸合成活性を有するポリペプチドをコードする塩基配列、
前記ポリヒドロキシアルカン酸合成酵素をコードする遺伝子が下記（ａ）ないし（ｄ）からなる群から選ばれる１以上の塩基配列により、細胞中のポリヒドロキシアルカン酸合成酵素の比活性が0.1U/mg-protein以下に制御されており；
（ａ）配列番号１１に示される塩基配列、
（ｂ）配列番号１１に示される塩基配列に対して85%以上の配列同一性を有し、かつ遺伝子の転写を制御する活性を有する塩基配列、
（ｃ）配列番号１２に示される塩基配列、
（ｄ）配列番号１２に示される塩基配列に対して85%以上の配列同一性を有し、かつ遺伝子の転写を制御する活性を有する塩基配列、
重量平均分子量が400万以上のポリヒドロキシアルカン酸を100g/L以上の生産性にて生産可能なCupriavidus属微生物である。【００２３】
本発明の微生物は、Cupriavidus necatorであることが好ましい。【００２４】
本発明の微生物を、糖、油脂、及び/又は脂肪酸など、該微生物が資化可能な原料を炭素源として用いて培養することによって高分子量ＰＨＡを生産することができる。【００２５】
本発明の高分子量ＰＨＡは、特にはP(3HB)、P(3HB-co-3HV)、P(3HB-co-3HH)である。【００２６】
本発明の別の特徴は、上記の微生物を用いる重量平均分子量400万以上のポリヒドロキシアルカン酸の製造方法である。
【発明の効果】
【００２７】
本発明により、産業上有用な高分子量ＰＨＡを、糖や油脂などの比較的安価、かつ再生可能資源より工業的に高効率に高生産することが可能となった。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】本発明の実施例９に係る各種形質転換体の培養時間と蓄積するポリエステルの重量平均分子量(Mw)を示した図である。
【図２】本発明の実施例１０に係る各種形質転換体の培養時間と菌体中のＰＨＡ合成酵素比活性を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００２９】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００３０】
C. necatorを宿主にてＰＨＡを生産する場合、そのＰＨＡの重量平均分子量は数10万〜200万程度であり、従来400万以上の分子量を有するＰＨＡを培養液あたりのＰＨＡ生産量として100g/L以上の高生産性を維持したままで達成することは困難であった。しかしながら、本発明によれば、100g/L以上の高生産性を維持したまま、平均重量分子量400万以上の高分子量のＰＨＡを生産することが可能となる。
【００３１】
本発明におけるCupriavidus属に属する微生物は、ＰＨＡ合成酵素比活性が0.1U/mg-protein以下に制御され、かつ、100g/L以上のＰＨＡ生産性を有している微生物である。これら微生物が生産するＰＨＡの分子量は、平均重量分子量400万以上であり、さらには400万超であり、特には420万以上である。
【００３２】
本発明で得られるＰＨＡの生産量は100g/L以上であるが、これは110g/L以上、さらには120g/L以上、特には130g/L以上にも達しうる。
【００３３】
本発明において制御するＰＨＡ合成酵素比活性は0.1U/mg-protein以下が好ましく、0.06U/mg-protein以下がさらに好ましく、0.05U/mg-protein以下がより好ましく、0.04U/mg-protein以下がさらにより好ましく、0.03U/mg-protein以下がもっとも好ましい。ＰＨＡを生産するために宿主に外来のＰＨＡ合成酵素遺伝子を導入しながら、0U/mg-protein超かつ0.1U/mg-protein以下に制御することで、平均重量分子量400万以上のＰＨＡを培養液に対して100g/L以上の生産性で製造することができる。
【００３４】
ＰＨＡ合成酵素遺伝子としては、C. necator H16株が元来保有する配列番号９に記載するアミノ酸配列をコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子、又は、該アミノ酸配列対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ＰＨＡ合成活性を有するポリペプチドをコードするＰＨＢ合成酵素遺伝子や、A. caviaeが元来保有するＰＨＡ合成酵素遺伝子、又は、該アミノ酸配列に対して85%以上の配列同一性を有し、且つ、ＰＨＡ合成活性を有するポリペプチドをコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子が利用出来る。上記配列同一性はさらに好ましくは90%以上であり、さらにより好ましくは95%以上である。例えば配列番号１０に記載するアミノ酸配列を有するＰＨＡ合成酵素をコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子などが利用できる。また、いうまでも無く、その他のＰＨＡ合成酵素遺伝子も好適に利用出来る。
【００３５】
上記ＰＨＡ合成酵素遺伝子の細胞内での転写を制御するプロモーターとしては、例えばこれまでCupriavidus属細菌での転写活性が知られていなかった配列番号１２に記載する大腸菌のLacオペロン由来のlacプロモーター（以下、lacP）や、配列番号１１に記載のC. necator H16株由来のPhasin遺伝子由来のphasinプロモーター（以下、phaP）が好ましい。配列番号１１や１２に記載の塩基配列と85%以上の配列同一性を持つ塩基配列であり、遺伝子の転写を制御する活性を有する限り本発明に好適に用いることができる。上記配列同一性はさらに好ましくは90%以上であり、さらにより好ましくは95%以上である。細胞中のＰＨＡ合成酵素比活性を0.1U/mg-protein以下に制御可能であれば、あらゆるプロモーターが好適に利用できる。
【００３６】
本発明におけるＰＨＡ合成酵素比活性は、Gerngrossらによる方法(Biochemistry, 33, 9311-9320 (1994))を用いて測定する。具体的には実施例にしめした方法を用いて測定することができる。
【００３７】
また、本発明におけるＰＨＡ合成の炭素源としては、Cupriavidus属細菌が資化可能であればどんな炭素源でも使用可能であるが、好ましくは、グルコース、フルクトース、シュークロースなどの糖類、パーム油、パーム核油、コーン油、やし油、オリーブ油、大豆油、菜種油、ヤトロファ油などの油脂やその分画油類、ラウリン酸、オレイン酸、ステアリン酸、パルミチン酸、ミリンスチン酸などの脂肪酸やそれらの誘導体などが好ましい。
【００３８】
本発明のCupriavidus属細菌は、ＰＨＡを合成すれば種を問わないが、好ましくは、C. necator、より好ましくはC. necator H16を用いることが出来る。勿論、前記微生物を人工的に突然変異処理して得られる変異株、遺伝子工学的手法により変異処理された菌株も使用できる。
【００３９】
本発明におけるプロモーター、およびＰＨＡ合成酵素は宿主染色体上に存在してもよいし、プラスミド上に存在してもよい。
【００４０】
ＰＨＡの種類としては、微生物が生産するＰＨＡであれば特に限定されないが、好ましくは、炭素数4〜16の３−ヒドロキシアルカン酸から選択される構成成分を重合して得られるＰＨＡや炭素数4〜16の３−ヒドロキシアルカン酸から選択される構成成分を共重合して得られる共重合ＰＨＡが良い。例えば炭素数4の３−ヒドロキアルカン酸を重合して得られるポリヒドロキシブチレートP(3HB)、炭素数4と6の３−ヒドロキシアルカン酸を共重合して得られるポリヒドロキシブチレートヘキサノエートP(3HB-co-3HH)、炭素数4と5の３−ヒドロキシアルカン酸を共重合して得られるポリヒドロキシブチレートバレレートP(3HB-co-3HV)、炭素数4〜14の３−ヒドロキシアルカン酸を重合或いは共重合して得られるポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）などが挙げられる。製造するＰＨＡ種はホストに用いるCupriavidus属細菌に例えば公知のＰＨＡ合成に関する遺伝子を導入することで適宜選択することができる。ＰＨＡ合成酵素比活性を0.1U/mg-protein以下に制御する限り、本発明の効果を得ることが可能になる。
【００４１】
培養方法としては、培地に炭素源を添加する方法を用いる微生物の培養方法であれば、培地組成、炭素源の添加方法、培養スケール、通気攪拌条件や培養温度、培養時間などに一切限定されないが、連続的、または、間欠的に培地に炭素源を添加する培養方法がより好ましい。
【００４２】
本発明のＰＨＡの製造方法は、上述した培養方法によって微生物内にＰＨＡを蓄積させ、その後、周知の方法を用いて菌体からＰＨＡを回収すれば良い。例えば、次のような方法により行うことができる。培養終了後、培養液から遠心分離機等で菌体を分離し、その菌体を蒸留水およびメタノール等により洗浄し、乾燥させる。この乾燥菌体から、クロロホルム等の有機溶剤を用いてＰＨＡを抽出する。このＰＨＡを含んだ溶液から、濾過等によって菌体成分を除去し、そのろ液にメタノールやヘキサン等の貧溶媒を加えてＰＨＡを沈殿させる。さらに、濾過や遠心分離によって上澄み液を除去し、乾燥させてＰＨＡを回収する方法などが挙げられる。
【００４３】
微生物菌体の生産量は吸光度法や乾燥菌体重量測定法などの公知の方法で測定でき、また、微生物が産生する物質の生産量はGC法、HPLC法などの公知の方法で測定できる。細胞中に蓄積されたＰＨＡの含量は、加藤らの方法(Appl. MicroBiol. Biotechnol., 45, 363 (1996); Bull. Chem. Soc., 69, 515 (1996))に従い、培養細胞からクロロホルムなどの有機溶媒を用いて抽出し、乾燥することで測定出来る。
【実施例】
【００４４】
以下に実施例で本発明を詳細に説明するが、本発明はこれら実施例によって何ら制限されるものではない。なお全体的な遺伝子操作は、Molecular Cloning (Cold Spring Harbor Laboratory Press, (1989))に記載されているように行うことができる。また、遺伝子操作に使用する酵素、クローニング宿主等は、市場の供給者から購入し、その説明に従い使用することができる。なお、酵素としては、遺伝子操作に使用できるものであれば特に限定されない。【００４５】
（製造例１）プロモーターを連結していないP(3HB-co-3HH)合成酵素遺伝子導入ベクターの構築
特開2007-259708号明細書に記載の発現ベクターpCUP2EEREP149NS/171DG（C. necator H16のＰＨＢオペロンプロモーター（以下、REP）＋ＰＨＡ合成酵素）をテンプレートとして配列番号１及び配列番号２で示されるプライマー１及び２を用いて、PCRを行った。PCRは(1)98℃で2分、(2)98℃で15秒、60℃で30秒、68℃で2分を25サイクル繰り返し、ポリメラーゼはKOD-plus-（東洋紡社製）を用いた。PCRで得たDNA断片を末端リン酸化およびEcoRI、MunI消化した。このDNA断片を、MunI消化した特開2007-259708号明細書に記載のベクターpCUP2とDNAリガーゼ（Ligation High（東洋紡社製））にて連結し、プロモーターを連結していないP(3HB-co-3HH)合成酵素遺伝子を有するプラスミドベクターpCUP2/149NS171DGdPを作製した。【００４６】
（製造例２）プロモーターを連結していないP(3HB)合成酵素遺伝子導入ベクターの構築
C. necator H16のゲノムをテンプレートとして配列番号１及び配列番号２で示されるプライマー１及び２を用いて、PCRを行った。PCRは(1)98℃で2分、(2)98℃で15秒、60℃で30秒、68℃で2分を25サイクル繰り返し、ポリメラーゼはKOD-plus-（東洋紡社製）を用いた。PCRで得たDNA断片を末端リン酸化およびEcoRI、MunI消化した。このDNA断片を、MunI消化した特開2007-259708号明細書に記載のベクターpCUP2とDNAリガーゼ（Ligation High（東洋紡社製））にて連結し、プロモーターを連結していないP(3HB)合成酵素遺伝子を有するプラスミドベクターpCUP2/phbCdPを作製した。【００４７】
（製造例３）lacP連結P(3HB-co-3HH)合成酵素遺伝子発現ベクターの構築
pCR-Blunt2-TOPO(invitrogen社製)をテンプレートとして、配列番号３及び配列番号４で示されるプライマー３及び４を用いて、PCRを行った。PCRは(1)98℃で2分、(2)98℃で15秒、60℃で30秒、68℃で30秒を25サイクル繰り返し、ポリメラーゼはKOD-plus-（東洋紡社製）を用いた。得られた増幅断片を末端リン酸化、及びMunI処理し、MunI処理したpCUP2phaCdPベクターに連結し、プラスミベクターpCUP2/lacP149NS171DGを作製した。【００４８】
（製造例４）phaP連結P(3HB-co-3HH)合成酵素遺伝子発現ベクターの構築
C. necator H16のゲノムをテンプレートとして、配列番号５及び配列番号６で示されるプライマー５及び６を用いて、PCRを行った。PCRは(1)98℃で2分、(2)98℃で15秒、60℃で30秒、68℃で30秒を25サイクル繰り返し、ポリメラーゼはKOD-plus-（東洋紡社製）を用いた。得られた増幅断片を末端リン酸化、及びMunI処理し、MunI処理したpCUP2/149NS171DGdPベクターに連結し、プラスミベクターpCUP2/phaP149NS171DGを作製した。【００４９】
（製造例５）lacP連結P(3HB)合成酵素遺伝子発現ベクターの構築
プラスミドとしてpCUP2phbCdPを使用した以外は実施例３と同じ方法にて、プラスミドベクターpCUP2/lacPphbCを作製した。【００５０】
（製造例６）phaP連結P(3HB)合成酵素遺伝子発現ベクターの構築
プラスミドとしてpCUP2phbCdPを使用した以外は実施例４と同じ方法にて、プラスミドベクターpCUP2/phaPphbCを作製した。【００５１】
（製造例７）野生型プロモーター連結P(3HB-co-3HH)合成酵素遺伝子発現ベクターの構築
WO2005/098001国際公開公報明細書に記載のプラスミドベクターpJRDdTC+149NS171DGをEcoRI処理し、A. caviae由来のＰＨＡオペロンプロモーター（ACP）、及びＰＨＡ合成酵素遺伝子断片を得た。この断片をpCUP2をMunIで切断した部位に挿入して発現ベクターpCUP2/ACP149NS/171DGを構築した。【００５２】
（製造例８）C. necator H16 REP連結P(3HB)合成酵素発現ベクターの構築
C. necator H16のゲノムをテンプレートとして、配列番号７及び配列番号８で示されるプライマー７及び８を用いて、PCRを行った。PCRは(1)98℃で2分、(2)98℃で15秒、60℃で30秒、68℃で3分を25サイクル繰り返し、ポリメラーゼはKOD-plus-（東洋紡社製）を用いた。得られた増幅断片を末端リン酸化、及びEcoRI処理し、MunI処理したpCUP2ベクターに連結し、プラスミベクターpCUP2/REPphbCを作製した。【００５３】
（実験例１）形質転換体の作製
製造例３〜８にて作製した発現ベクター、及び特開2007-259708号明細書に記載の発現ベクターpCUP2EEREP149NS/171DGを導入した各種形質転換体を電気パルス法により作製した。ベクターを導入する宿主としては、特開2007-259708号明細書に記載されているC. necator H16株のphbC遺伝子破壊株であるΔB1133株を用いた。作製した形質転換体をそれぞれ、ΔB+pCUP2/lacP149NS171DG（実施例１）、ΔB+pCUP2/phaP149NS171DG（実施例２）、ΔB+pCUP2/lacPphbC（実施例３）、ΔB+pCUP2/phaPphbC（実施例４）、ΔB+pCUP2/ACP149NS/171DG（比較例１）、ΔB+pCUP2/REPphbC（比較例２）、ΔB+pCUP2EEREP149NS/171DG（比較例３）とした。遺伝子導入装置はBiorad社製のジーンパルサーを用い、キュベットは同じくBiorad社製のgap0.2cmのものを用いた。キュベットに、コンピテント細胞400μlと発現ベクター20μlを注入してパルス装置にセットし、静電容量25μF、電圧1.5kV、抵抗値800Ωの条件で電気パルスをかけた。パルス後、キュベット内の菌液をNutrientBroth培地（DIFCO社製）で30℃、3時間振とう培養し、選択プレート（NutrientAgar培地（DIFCO社製）、カナマイシン100mg/L）で、30℃にて2日間培養して、形質転換体を取得した。【００５４】
（実験例２）ＰＨＡの生産
種母培地の組成は1w/v%Meat-extract、1w/v%Bacto-Trypton、0.2w/v%Yeast-extract、0.9w/v%Na2HPO4・12H2O、0.15w/v%KH2PO4、5×10-6w/v%カナマイシンとした。【００５５】
前培養培地の組成は1.1w/v%Na2HPO4・12H2O、0.19w/v%KH2PO4、1.29w/v%(NH4)2SO4、0.1w/v%MgSO4・7H2O、2.5w/v%パームＷオレイン油、0.5v/v%微量金属塩溶液（0.1N塩酸に1.6w/v%FeCl3・6H2O、1w/v%CaCl2・2H2O、0.02w/v%CoCl2・6H2O、0.016w/v%CuSO4・5H2O、0.012w/v%NiCl2・6H2Oを溶かしたもの。）とした。【００５６】
ポリエステル生産培地の組成は0.385w/v%Na2HPO4・12H2O、0.067w/v%KH2PO4、0.291w/v%(NH4)2SO4、0.1w/v%MgSO4・7H2O、0.5v/v%微量金属塩溶液（0.1N塩酸に1.6w/v%FeCl3・6H2O、1w/v%CaCl2・2H2O、0.02w/v%CoCl2・6H2O、0.016w/v%CuSO4・5H2O、0.012w/v%NiCl2・6H2Oを溶かしたもの。）とした。炭素源はパーム核油を分別した低融点画分であるパーム核油オレインを単一炭素源として用いた。【００５７】
実験例１で作製した各種形質転換株のグリセロールストック(50μl)を種母培地(10ml)に接種して24時間培養し、1.8Lの前培養培地を入れた3Lジャーファーメンター（丸菱バイオエンジ製MDL-300型）に1.0v/v%接種した。運転条件は、培養温度30℃、攪拌速度500rpm、通気量1.8L/minとし、pHは6.7〜6.8の間でコントロールしながら28時間培養した。pHコントロールには7%水酸化アンモニウム水溶液を使用した。【００５８】
ポリエステル生産培養は6Lの生産培地を入れた10Lジャーファーメンター（丸菱バイオエンジ製MDL-1000型）に前培養種母を5.0v/v%接種した。運転条件は、培養温度28℃、攪拌速度400rpm、通気量3.6L/minとし、pHは6.7から6.8の間でコントロールした。pHコントロールには7%水酸化アンモニウム水溶液を使用した。培養は約65時間行い、培養終了後、遠心分離によって菌体を回収、メタノールで洗浄、凍結乾燥し、乾燥菌体重量を測定した。【００５９】
得られた乾燥菌体約1gに100mlのクロロホルムを加え、室温で一昼夜攪拌して、菌体内のポリエステルを抽出した。菌体残渣をろ別後、エバポレーターで総容量が約30mlになるまで濃縮後、約90mlのヘキサンを徐々に加え、ゆっくり攪拌しながら、1時間放置した。析出したポリエステルをろ別後、50℃で3時間真空乾燥した。乾燥ポリエステルの重量を測定し、ポリエステル生産量を算出した。その結果を表１に示した。【００６０】
【表１】
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【００６１】
（実験例３）  ポリエステルの重量平均分子量(Mw)分析
実験例２にて培養した各種形質転換体の分子量を測定した。ポリエステルの重量平均分子量(Mw)分析はゲル・パーミッション・クロマトグラフィー法により行った。抽出したポリエステル約15mgを10mlのクロロホルムに溶解し、0.2μmのフィルターで濾過して測定用サンプルとし、その0.05mlを用いて分析した。測定システムはSLC-10A（島津製作所製）、カラムはShodex GPC K-806L（昭和電工製）を2本直列に接続し、40℃で測定した。移動層は1.0ml/分のクロロホルムとし、RI検出器（RID-10A、島津製作所製）を用いた。標準品としては同様に処理したポリスチレン（昭和電工製、重量平均分子量：約700万、約107万、15万、3万）を用い、検量線によりポリエステルの重量平均分子量を算出した。結果を図１に示した。【００６２】
（実験例４）  ＰＨＡ合成酵素比活性測定
ＰＨＡ合成酵素比活性は、以下の方法にて測定した。【００６３】
実験例１にて培養した培養液を2ml採取し、4℃で10000×g、1分間の遠心分離を行い菌体を集めた。この菌体を緩衝液（0.5M  リン酸カリウムバッファー）で2回洗浄し、1mlの同緩衝液に懸濁した。これを超音波処理して菌体を破砕した後、15000×g、4℃、5分間の遠心分離した上清を粗酵素液として用いた。【００６４】
ＰＨＡ合成酵素比活性はCoAの放出を測定することによって算出し、具体的にはGerngrossらによる方法（Biochemistry, 33, 9311-9320 (1994)）を用いた。なお、タンパク質の定量はウシ血清アルブミンをスタンダードとして、Bio-Radプロテインアッセイ試薬（バイオラッド社製）を用いたブラッドフォード法で測定した。結果を図２に示した。【００６５】
（実験例５）3HH組成分析
各形質転換体により生産されたポリエステルの3HH組成分析は以下のようにガスクロマトグラフィーによって測定した。乾燥ポリエステルの約20mgに2mlの硫酸−メタノール混液(15:85)と2mlのクロロホルムを添加して密栓し、100℃で140分間加熱することでポリエステル分解物のメチルエステルを得た。冷却後、これに1.5gの炭酸水素ナトリウムを少しずつ加えて中和し、炭酸ガスの発生がとまるまで放置した。4mlのジイソプロピルエーテルを添加してよく混合した後、遠心して、上清中のポリエステル分解物のモノマーユニット組成をキャピラリーガスクロマトグラフィーにより分析した。ガスクロマトグラフは島津製作所GC-17A、キャピラリーカラムはGLサイエンス社製NEUTRA BOND-1（カラム長25m、カラム内径0.25mm、液膜厚0.4μm）を用いた。キャリアガスとしてHeを用い、カラム入口圧100kPaとし、サンプルは1μlを注入した。温度条件は、初発温度100〜200℃まで8℃／分の速度で昇温、さらに200〜290℃まで30℃/分の速度で昇温した。上記条件にて分析した結果、形質転換体ΔB+pCUP2/lacP149NS171DG、同ΔB+pCUP2/phaP149NS171DG、同ΔB+pCUP2/ACP149NS/171DG、同ΔB+pCUP2EEREP149NS/171DGを用いて製造したＰＨＡ（配列番号１０に記載ＰＨＡ合成酵素をコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子を導入した形質転換体）はP(3HB-co-3HH)を合成することを確認した。また、形質転換体ΔB+pCUP2/lacPphbC、同ΔB+pCUP2/phaPphbC、同ΔB+pCUP2/REPphbＣ（配列番号９に記載するＰＨＡ合成酵素をコードするＰＨＡ合成酵素遺伝子を導入した形質転換体）は3HHモノマーを含まないP(3HB)を合成することを確認した。
【図１】
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【図２】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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