中华人民共和国国家标准  
 
GB 4789.38—xxxx 
 
 
食品安全 国家标准  
食品微生物学检验  大肠埃希氏菌计数  
 
 
 
（征求意见稿）  
 
中华人民共和国卫生部    发布 xxxx -xx-xx发布  xxxx -xx-xx实施  GB 4789.38—xxxx  
I 前    言 
本标准代替 GB/T 4789.38 -2008 《食品卫生微生物学检验  大肠杆菌计数》 。  
本标准与 GB/T 4789.38 -2008相比，主要修改如下：  
——修改了标准的中英文名称；  
——将大肠杆菌改为大肠埃希氏菌；  
——将月桂基磺酸盐胰蛋白胨改为月桂基硫酸盐胰蛋白胨 ； 
——将Korser柠檬酸盐肉汤改为西蒙氏柠檬酸盐培养基 ； 
——将VRB琼脂改为 VRBA； 
——将“第二法  大肠杆菌 VRB -MUG平板计数法 ”改为 “第二法  大肠埃希氏菌平板计数法 ”； 
——删除了 “第三法  大肠杆菌 PetrifilmTM测试片计数法 ”； 
——修改了附录 A。 GB 4789.38—xxxx  
1 食品安全国家标准  
食品微生物学检验  大肠埃希氏菌计数  
1 范围 
本标准规定了食品中大肠埃希氏菌（ Escherichia coli ）计数的方法。  
本标准适用于食品中大肠埃希氏菌的计数，其中第二法不适用于贝类产品。  
2 术语和定义 
2.1 大肠埃希氏菌  Escherichia coli  
广泛存在于人和温血动物的肠道中，能够在 44.5℃发酵乳糖产酸产气， IMViC（靛基质、甲基红、
VP试验、柠檬酸盐）生化试验为 ＋＋――或－＋――的革兰氏阴性杆菌。以此作为粪 便污染指标来评
价食品的卫生状况，推断食品中肠道致病菌污染的可能性。  
2.2 最可能数  most probable number : MPN  
    基于泊松分布的一种间接计数方法。  
3  设备和材料  
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：  
3.1  恒温培养箱： 36℃± 1℃。  
3.2  冰箱： 2℃～ 5℃。  
3.3  恒温水浴箱： 44.5℃± 0.2℃。  
3.4  天平：感量为 0.1g。 
3.5  均质器。  
3.6  振荡器。  
3.7  无菌吸管： 1 mL（具  0.01 mL刻度） 、 10 m L（具 0.1 mL刻度）或微量移液器及吸头。  
3.8  无菌锥形瓶：容量  500 mL。 
3.9  无菌培养皿：直径  90 mm。 
3.10  pH计或 pH比色管或精密 pH试纸。  
3.11  菌落计数器。  
3.12  紫外灯：波长 360nm～366nm,功率≤ 6 W。 GB 4789.38—xxxx  
2 4  培养基和试剂  
4.1 月桂基硫酸盐胰蛋白胨（ lauryl sulfate trypto se, LST）肉汤：见附录 A中A.1。 
4.2 EC肉汤（ E.coli broth） ：见附录 A中A.2。 
4.3  蛋白胨水：见附录 A中A.3。 
4.4  缓冲葡萄糖蛋白胨水 [甲基红(MR)和V-P试验用 ]：见附录 A中A.4。 
4.5  西蒙氏柠檬酸盐培养基：见附录 A中A.5。 
4.6  磷酸盐缓冲液：见附录 A中A.6。 
4.7  伊红美蓝（ eosin methylene blue,EMB ）琼脂：见附录 A中A.7。 
4.8  营养琼脂斜面：见附录 A中A.8。 
4.9  结晶紫中性红胆盐琼脂（ violet red bile,VRB A） ：见附录 A中A.9。 
4.10  VRBA -MUG：见附录 A中A.10。 
4.11  革兰氏染色液：见附录 A中A.11。 
4.12  Kovacs靛基质试剂：见附录 A中A.12。 
4.13  无菌 1 mol/L NaOH：见附录 A中A.13。 
4.14  无菌 1 mol/L HCl：见附录 A中A.14。 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 GB 4789.38—xxxx  
3 第一法   大肠埃希氏菌 MPN计数  
5   检验程序  
大肠埃希氏菌 MPN计数的检验程序见图 1。 
 
 
 
 
 
 
 
 
36℃±1℃    48h±2h 
                     
 
 
 
 
44.5℃± 0.2℃    48 h± 2 h  
 
                                             
 
 
 
36℃±1℃    18h～24h 
 
                                                       
36℃±1℃   18h～24h 
 
                                              
                                                                   
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
图1  大肠埃希氏菌 MPN计数法检验程序  检样  
25g（mL）样品 + 225ml稀释液，均质  
10倍系列稀释  
选择适宜 3个连续稀释度的样品匀液，接种 LST肉汤管  
不产气  产气  
EC肉汤  
不产气  产气  
EMB平板划线  
可疑菌落移种营养琼脂斜面或平板  
IMViC生化试验，革兰氏染色  
阴性管  阳性管  
查MPN表 
报    告 GB 4789.38—xxxx  
4 6  操作步骤  
6.1  样品的稀释  
6.1.1  固体和半固体样品：称取 25g样品，放入盛有 225mL磷酸盐缓冲液的无菌均质杯内， 8 000 
r/min～10 000 r/min 均质 1 min～2 min，制成 1:10样品匀液，或放入盛有 225mL磷酸盐缓冲液的无菌
均质袋中，用拍击式均质器拍打 1 min～2 min制成 1:10的样品匀液。  
6.1.2  液体样品： 以无菌吸管吸取 25 mL样品置盛有 225mL磷酸盐缓冲液的无菌锥形 瓶 （瓶内预置适
当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成 1:10的样品匀液。  
6.1.3  样品匀液的 pH值应在 6.5～7.5之间，必要时分别用 1 mol/L  NaOH或1 mol/L HCl 调节。  
6.1.4  用1 mL无菌吸管或微量移液器吸取 1:10样品匀液 1mL， 沿管壁缓缓注入 9mL磷酸盐缓冲液的
无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面） ，振摇试管或换用 1支1 mL无菌吸管或吸头反
复吹打，使其混合均匀，制成 1:100的样品匀液。  
6.1.5  根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成 10倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释 1
次，换用 1支1 mL无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过 15 min。 
6.2  初发酵试验  
每个样品，选择 3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液） ，每个稀释度接种 3
管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（ LST）肉汤，每管接种 1 mL（如接种量超过 1mL，则用双料 LST肉汤） ，
36℃± 1℃培养 24h±2h，观察小倒管内是否有气泡产生， 24h±2h产气者进行复发酵试验，如未产气则
继续培养 48h±2h。 产气者进行复发酵试验。 如所有 LST肉汤管均未产气， 即可报告大肠 埃希氏菌 MPN
结果。  
6.3  复发酵试验  
用接种环从产气的 LST肉汤管中分别取培养物 1环，移种于已提前预温至 45℃的 EC肉汤管中，
放入带盖的 44.5℃± 0.2℃水浴箱内。水浴的水面应高于肉汤培养基液面，培养 24h±2h，检查小倒管内
是否有气泡产生，如未有产气则继续培养至 48h±2h。记录在 24h和48h内产气的 EC肉汤管数。如所
有EC肉汤管均未产气，即可报告大肠埃希氏菌 MPN结果；如有产气者，则进行 EMB平板分离培养。  
6.4  伊红美蓝平板分离培养  
轻轻振摇各产气管，用接种环取培养物分别划线接种于 EMB平板， 36℃± 1℃培养 18h～24h。观
察平板上有无具黑色中心有光泽或无光泽的典型菌落。  
6.5  营养琼脂斜面或平板培养  
从每个平板上挑 5个典型菌落，如无典型菌落则挑取可疑菌落。用接种针接触菌落中心部位，移种
到营养琼脂斜面或平板上， 36℃± 1℃，培养 18h～24h。取培养物进行革兰氏染色和生化试验。  
6.6  鉴定 
    取培养物进行靛基质试验、 MR-VP试验和柠檬酸盐利用试验。大肠埃希氏菌与非大肠埃希氏菌的
生化鉴别见表 1。 
表1  大肠埃希氏菌与非大肠埃希氏菌的生化鉴别  
靛基质（ I） 甲基红（ MR） VP试验（VP） 柠檬酸盐（ C） 鉴定（型别）  
＋ 
－ ＋ 
＋ － 
－ － 
－ 典型大肠埃希氏菌  
非典型大肠埃希氏菌  GB 4789.38—xxxx  
5 ＋ 
－ ＋ 
＋ － 
－ ＋ 
＋ 典型中间型  
非典型中间型  
－ 
＋ － 
－ ＋ 
＋ ＋ 
＋ 典型产气肠杆菌  
非典型产气肠杆菌  
注1：如出现表 1以外的生化反应类型，表明培养物可能不纯，应重新划线分离，必要时做重复试验。  
注2：生化试验也可以 选用生化鉴定试剂盒或全自动微生物生化鉴定系统等方法 ，按照产品说明书进行操作。  
7 大肠埃希氏菌  MPN 计数的报告  
大肠埃希氏菌为革兰氏阴性无芽胞杆菌，发 酵乳糖、产酸、产气， IMViC生化试验为＋＋ ――或
－＋－－。只要有 1个菌落鉴定为大肠埃希氏菌，其所代表的 LST肉汤管即为大肠埃希氏菌阳性。依
据LST肉汤阳性管数查 MPN表（见附录 B） ，报告每 g（mL）样品中大肠埃希氏菌 MPN值。 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 GB 4789.38—xxxx  
6 第二法  大肠埃希氏菌平板计数法  
8  检验程序  
大肠埃希氏菌平板计数法的检验程序见图 2。 
 
 
 
 
 
 
 
                       36℃±1℃    18h～24h 
 
 
 
 
 
图2  大肠埃希氏菌平板计数法检验 程序 
9  操作步骤  
9.1  样品的稀释  
按6.1进行。  
9.2  平板计数  
9.2.1  选取 2个～ 3个适宜的连续稀释度的样品匀液，每个稀释度接种 2个无菌平皿，每皿  1 mL。同
时取 1 mL稀释液加入无菌平皿做空白对照。  
9.2.2   将10mL～15mL 冷至 45℃±0.5℃的结晶紫中性红胆盐琼脂 （VRBA）倾注于每个平皿中。小心
旋转平皿，将培养基与样品匀液充分混匀。待琼脂凝固后，再加 3 mL～4 mL VRBA -MUG覆盖平板表
层。凝固后翻转平板， 36℃±1℃培养 18 h～24 h。 
9.3  平板菌落数的选择  
选择菌落数在 10CFU～100CFU之间的平板，暗室中  360 nm～366 nm 波长紫外灯照射下，计数平
板上发浅蓝色荧光的菌落。  
检验时用已知 MUG阳性菌株（如大肠埃希氏菌  ATCC 25922 ）和产气肠杆菌（如 ATCC 13048 ）做
阳性和阴性对照。  
10  大肠埃希氏菌平板计数的报告  检样  
25g（ml）样品 +225ml稀释液，均质  
选择 2个～3个适宜连续稀释度的样品匀液，接种 VRBA -MUG平板 10倍系列稀释  
紫外灯照射，计数发荧光菌落  
报告结果  GB 4789.38—xxxx  
7 两个平板上发荧光菌落数的平均数乘以稀释倍数， 报告每 g（mL） 样品中大肠埃希氏菌数， 以 CFU/g 
(mL)表示。若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于 1乘以最低稀释倍数报告。  
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 GB 4789.38—xxxx  
8 附录A 
培养基和试剂  
A.1  月桂基硫酸盐胰蛋白胨（ LST）肉汤 
A.1.1  成分 
胰蛋白胨或胰酪胨  20.0 g 
氯化钠  5.0 g 
乳糖  5.0 g 
磷酸氢二钾（ K2HPO 4） 2.75 g 
磷酸二氢钾（ KH 2PO 4） 2.75 g 
月桂基硫酸钠  0.1 g 
蒸馏水  1 000.0 mL  
pH6.8± 0.2   
A.1.2  制法 
将上述成分溶解于蒸馏水中，调节 pH。分装到有玻璃小倒管的试管中，每管  10 mL。121℃高压灭
菌 15 min。 
制备双料  LST 肉汤时，除蒸馏水外其他成分加倍。  
A.2  EC肉汤  
A.2.1   成分  
胰蛋白胨或胰酪胨  20.0 g 
3号胆盐或混合胆盐  1.5 g 
乳糖  5.0 g 
磷酸氢二钾（ K2HPO 4） 4.0 g 
磷酸二氢钾（ KH 2PO 4） 1.5 g 
氯化钠                                5.0 g 
蒸馏水  1 000.0 mL  
pH6.9± 0.1   
A.2.2  制法  
将上述成分溶解于蒸馏水中，调节 pH，分装到有玻璃小倒管的试管中，每管 8mL。121℃高压灭菌
15 min。 
A.3  蛋白胨水  
A.3.1  成分  
胰胨或胰酪胨  10.0g  
蒸馏水  1 000.0 mL  
pH6.9± 0.2   
A.3.2 制法  
加热搅拌溶解胰胨或胰酪胨于蒸馏水中。分装试管，每管 5mL。121℃高压灭菌 15 min。 
A.4  缓冲葡萄糖蛋白胨水（ MR-VP试验用）  
A.4.1   成分  GB 4789.38—xxxx  
9 多胨  7.0 g 
葡萄糖  5.0 g 
磷酸氢二钾（ K2HPO 4） 5.0 g 
蒸馏水  1 000.0  mL 
PH7.0   
A.4.2   制法  
将上述成分溶解于蒸馏水中，调节 pH，分装试管，每 管1 mL，121℃高压灭菌 15 min，备用。 
A.4.3  甲基红（MR）试验 
A.4.3.1 甲基红试剂 
A.4.3.1.1 成分  
甲基红         10.0 mg 
95%乙醇                 30.0 mL  
蒸馏水  20.0 mL  
A.4.3.1.2 制法  
10mg甲基红溶于 30 mL95% 乙醇中，然后加入 20 mL蒸馏水。  
A.4.3.1.3 试验方法  
取适量琼脂培养物接种于缓冲葡萄糖蛋白胨水， 36℃±1℃培养 2 d～5 d。滴加甲基红试剂一滴，立
即观察结 果。鲜红色为阳性， 黄色为阴性。  
A.4.4 V-P 试验 
A.4.4.1 6% α-萘酚-乙醇溶液  
成分及制法：取 α-萘酚 6.0 g，加无水乙醇溶解，定容至 100 mL。 
A.4.4.2  40 %氢氧化钾溶液 ： 
成分及制法：取氢氧化钾 40 g，加蒸馏水溶解，定容至 100 mL。 
A.4.4.3 试验方法  
取适量琼脂培养物接种于缓冲葡萄糖蛋白胨水， 36℃±1℃培养 2 d～4 d。加入 6% α -萘酚 -乙醇溶液
0.5 mL和40 %氢氧化钾溶液 0.2 mL，充分振摇试管，观察结果。阳性反应立刻或于数分钟内出现红色，
如为阴性，应放在 36℃± 1 ℃继续培养 4 h 再进行观察。  
A.5 西蒙氏柠檬酸盐培养基  
A.5.1  成分  
柠檬酸钠  2.0 g  
氯化钠  5.0 g  
磷酸氢二钾  1.0 g  
磷酸二氢铵  1.0 g  
硫酸镁  0.2 g  
溴百里香酚蓝  0.08 g  
琼脂  8.0 g～18.0g  
蒸馏水  1 000.0 mL  
pH 6.8± 0.2   
A.5.2  制法  
将各成分加热溶解，必要时调节 pH。每管分装 10 mL，121℃高压 15 min，制成斜面。  
A.5.3实验方法  
挑取培养物接种于整个培养基斜面， 36℃±1℃培养 24h±2h，观察结果。阳性者培养基变为蓝色。  GB 4789.38—xxxx  
10 A.6  磷酸盐缓冲液  
A.6.1  成分  
磷酸二氢钾（ KH 2PO 4）                34.0 g 
蒸馏水  500.0 mL 
pH7.2  
A.6.2  制法  
贮存液：称取 34.0g的磷酸二氢钾溶于 500mL蒸馏水中，用大约 175mL的1 mol/L氢氧化钠 调节 pH，
用蒸馏水稀释至 1000mL后贮存于冰箱。  
稀释液：取贮存液 1.25mL，用蒸馏水稀释至 1 000mL，分装于适宜容器中， 121℃高压灭菌 15 min。 
A.7  伊红美蓝琼脂（ EMB） 
A.7.1  成分  
蛋白胨                                  10.0 g 
乳糖                                    10.0 g 
磷酸氢二钾（ K2HPO 4）                   2.0 g 
琼脂                                    15.0 g 
伊红γ（水溶液）          0.4g或2％水溶液 20.0 mL  
美蓝                  0.065g或0.5％水溶液 13.0 mL 
蒸馏水  1 000 .0 mL 
pH7.1± 0.2   
A.7.2  制法  
在1 000 mL 蒸馏水中煮沸溶解蛋白胨、磷酸盐和琼脂，加水补足。分装于三角烧瓶中。每瓶 100 mL
或200 mL，调节 pH，高压灭菌。使用前将琼脂融化，于每  100mL琼脂中加  5 mL灭菌的 20％乳糖溶液，
2mL的2％的伊红  γ 水溶液和 1.3mL 0.5 ％的美蓝水溶液，摇匀，冷至 45℃～50℃倾注平皿。  
A.8  营养琼脂斜面  
A.8.1  成分  
牛肉膏                                  3.0 g 
蛋白胨  5.0 g 
琼脂  15.0 g 
蒸馏水  1 000 .0 mL 
pH7.3± 0.1   
A.8.2  制法  
将上述成分加于蒸馏水中，煮沸溶解，调节 pH。分装合适的试管， 121℃高压灭菌 15 min。灭菌后
摆成斜面备用。  
A.9  结晶紫中性红胆盐琼脂（ VRBA） 
A.9.1  成分  
蛋白胨                                  7.0 g 
酵母膏                                  3.0 g 
乳糖                                   10.0 g 
氯化钠                                  5.0 g 
胆盐或 3号胆盐                           1.5 g 
中性红                                 0.03 g GB 4789.38—xxxx  
11 结晶紫                                0.002  g 
琼脂                                15g～18 g 
蒸馏水  1 000 .0 mL 
 pH7.4± 0.1  
A.9.2  制法  
将上述成分溶于蒸馏水中，静置几分钟，充分搅拌，调节 pH。煮沸 2min，将培养基冷至 45℃～50℃
倾注平板。使用前临时制备，不得超过 3h。 
A.10  VRBA-MUG  
A.10.1  成分  
蛋白胨                                  7.0 g 
酵母膏                                  3.0 g 
乳糖                                   10.0 g 
氯化钠                                  5.0 g 
胆盐或 3号胆盐                           1.5 g 
中性红                                 0.03 g 
结晶紫                                0.002  g 
琼脂                                15g～18 g 
蒸馏水  1 000 .0 mL 
4-甲基伞形酮 -β-D-葡萄糖苷（ MUG）      0.1 g 
pH7.4± 0.1   
A.10.2  制法 
将上述成分溶于蒸馏水中，静置几分钟，充分搅拌，调节 pH。煮沸 2min，将培养基冷至 45℃～50℃
使用。  
A.11  革兰氏染色液  
A.11.1  结晶紫染色液    
A.11.1.1   成分      
结晶紫                                 1.0 g 
95％乙醇                             20.0 mL 
1％草酸铵水溶液                      80.0 mL 
A.11.1.2   制法  
将结晶紫完全溶解于乙醇中，然后与草酸铵溶液混合。  
A.11.2  革兰氏碘液  
A.11.2.1  成分  
碘                                   1.0 g 
碘化钾                                2.0 g 
蒸馏水                            300.0 mL 
A.11.2.2   制法  
将碘与碘化钾先行混合，加入少许蒸馏水充分振摇，待完全溶解后，再加蒸馏水至 300mL。 
A.11.3  沙黄复染液  
A.11.3.1  成分  
沙黄                              0.25 g 
95％乙醇                         10.0 mL GB 4789.38—xxxx  
12 蒸馏水                           90.0 mL 
A.11.3.2   制法  
将沙黄溶解于乙醇中，然后用蒸馏水稀释。  
A.11.4  染色法  
A.11.4.1   涂片在火焰上固定，滴加结晶紫染液，染 1min，水洗。  
A.11.4.2  滴加革兰氏碘液，作用 1min，水洗。  
A.11.4.3   滴加 95％乙醇脱色约 15s～30s，直至染色液被洗掉，不要过分脱色，水洗。  
A.11.4.4   滴加复染液，复染 1min，水洗、待干、镜检。  
A.12  Kovacs靛基质试剂  
A.12.1  成分  
对二甲氨基苯甲醛               5.0 g 
戊醇                          75.0 mL 
盐酸（浓）                    25.0 mL 
A.12.2  制法  
将对二甲氨基苯甲醛溶于戊醇中，然后慢慢加入浓盐酸即可。  
A.12.3 试验方法  
将培养物接种蛋白胨水， 36℃±1℃培养 24h±2h后，加 Kovacs靛基质试剂 0.2 mL～0.3 mL，上层出
现红色为靛基质阳性反应。  
A.13  1mol /L NaOH：  
A.13.1 成分 
NaOH                           40.0 g 
蒸馏水                        1 000 .0 mL 
A.13.2 制法： 
称取40g氢氧化钠溶于 1000mL蒸馏水中， 121℃高压灭菌 15min。 
A.14  1mol /L HCl：  
A.14.1 成分 
HCl                          90.0 mL 
蒸馏水                        1 000.0 mL 
A.14.2 制法： 
移取浓盐酸 90mL，用蒸馏水稀释至 1000 mL，121℃高压灭菌 15min。 
 
 
 
 
 
 
 
 GB 4789.38—xxxx  
13 附录B 
大肠埃希氏菌最可能数（ MPN）检索表  
B.1  大肠埃希氏菌最可能数（ MPN）检索表  
每g（ml）检样中大肠埃希氏菌最可能数（ MPN）的检索表 B.1。 
表B. 1  大肠埃希氏菌最可能数（ MPN）检索表  
阳性管数  MPN  95%置信区间  阳性管数  MPN  95%置信区间 
0.10 0.01 0.001  下限  上限  0.10 0.01 0.001  下限  上限  
0 
0 
0 
0 
0 
0 
1 
1 
1 
1 
1 
1 
1 
1 
2 
2 
2 
2 
2 
2 0 
0 
1 
1 
2 
3 
0 
0 
0 
1 
1 
2 
2 
3 
0 
0 
0 
1 
1 
1 0 
1 
0 
1 
0 
0 
0 
1 
2 
0 
1 
0 
1 
0 
0 
1 
2 
0 
1 
2 ＜3.0 
3.0 
3.0 
6.1 
6.2 
9.4 
3.6 
7.2 
11 
7.4 
11 
11 
15 
16 
9.2 
14 
20 
15 
20 
27 - 
0.15 
0.15 
1.2 
1.2 
3.6 
0.17 
1.3 
3.6 
1.3 
3.6 
3. 
4.5 
4.5 
1.4 
3.6 
4.5 
3.7 
4.5 
8.7 9.5 
9.6 
11 
18 
18 
38 
18 
18 
38 
20 
38 
42 
42 
42 
38 
42 
42 
42 
42 
94 2 
2 
2 
2 
2 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 
3 2 
2 
2 
3 
3 
0 
0 
0 
1 
1 
1 
1 
2 
2 
2 
2 
3 
3 
3 
3 0 
1 
2 
0 
1 
0 
1 
2 
0 
1 
2 
3 
0 
1 
2 
3 
0 
1 
2 
3 21 
28 
35 
29 
36 
23 
38 
64 
43 
75 
120 
160 
93 
150 
210 
290 
240 
460 
1100  
＞1100  4.5 
8.7 
8.7 
8.7 
8.7 
4.6 
8.7 
17 
9 
17 
37 
40 
18 
37 
40 
90 
42 
90 
180 
420 42 
94 
94 
94 
94 
94 
110 
180 
180 
200 
420 
420 
420 
420 
430 
1000  
1000  
2000  
4100  
- 
注1：本表采用 3个稀释度 [0.1g (mL) 、0.01g (mL) 和0.001g (mL) ]，每个稀释接种 3管。  
注2：表内所列检样量如改用 1g (mL)、0.1g  (mL) 和0.01g(mL) 时，表内数字应相应降低 10倍；如改用 0.01g(mL) 、0.001g 
(mL)、0.0001g (mL) 时，则表内数字应相应增高 10倍，其余类推。