中华人民共和国国家标准  
 
GB xxxx —xxxx 
 
  
中华人民共和国卫生部    发布 xxxx -xx-xx发布  
 xxxx -xx-xx实施  
 食品安全国家标准  
食品中泛酸的测定  
 GB  xxxx—xxxx  
 前    言 
本标准代替 GB/T 5009.210 -2008 《食品中泛酸的测定》。  
本标准与 GB/T 5009.210 -2008相比，主要变化如下：   
——修改并细化了 适用于不同 前处理方法的食品分类  
——修改了酶解时吸取水解液的用量体积；  
——修改了检出限 ； 
本标准中附录 A为资料 /规范性附录。 （本标准中附录性质的说明）  
本标准所代替标准的历次版本发布情况为：   
—— GB/T 5009.210 -2008。 
 
 
 
 GB  xxxx—xxxx  
 食品安全国家标准  
食品中泛酸的测定  
 
1. 范围 
本标准规定了食品中泛酸的 测定方法。  
本标准适用于食品中泛酸的测定。  
2. 原理 
泛酸是植物乳杆菌 Lactobacillus plantarum （ATCC 8014 ）生长所必需的营养素，在一定
控制条件下， 植物乳杆菌 的生长响应与培养基中泛酸含量呈线性关系。用比浊法测定试样液
中细菌增殖后的混浊度，通过与标准曲线相比较计算出试样中泛酸的含量。  
3. 试剂和材料  
除非另有说明，本方法所用试剂均为分析纯，水为 GB/T 6682 规定的二级水。 
3.1 冰乙酸（C2H4O2）。 
3.2 三水合乙酸钠（ C2H3O2Na·3H2O）。 
3.3 氢氧化钠（ NaOH）。 
3.4 盐酸（ HCl）。 
3.5 三羟甲基氨基甲烷（ C4H11NO 3）。 
3.6 碳酸氢钾（ KHCO 3）。 
3.7 碳酸钠（ Na2CO 3）。 
3.8 磷酸氢二钾（ K2HPO 4）。 
3.9 磷酸二氢钾（ KH 2PO 4·3H2O）。 
3.10 硫酸镁（ MgSO 4·7H2O）。 
3.11 氯化钠（ NaCl）。 
3.12 硫酸亚铁（ FeSO 4·7H2O）。 
3.13 硫酸锰（ MnSO 4·H2O）。 
3.14 无水乙醇 （C2H6O）。 
3.15 Dowex 1 X8：200目~400目。  
3.16 碱性磷酸酶 (alkaline phosphatase) 。 
3.17 鸽子肝脏丙酮提取物 (liver acetone powder) 。 
3.18 D-泛酸钙（ C18H32CaN 2O10） ：纯度＞98 %。 
3.19 葡萄糖（ C6H12O6）。 GB  xxxx—xxxx  
 3.20 蛋白胨（ peptone）。 
3.21 酵母提取物（ yeast extract ）。 
3.22 琼脂。  
3.23 甲苯（ C7H8）。 
3.24 溴麝香草酚蓝（ C27H28Br2O5S） ：指示剂。  
3.25 溴甲酚绿（ C21H14Br4O5S） ：指示剂。  
3.26 乙酸溶液（ 0.2 mol/L ） ：吸取 11.8 mL冰乙酸（ 4.1） ，加水稀释至 1000 mL。 
3.27 乙酸钠溶液（ 0.2 mol/L ） ：称取 27.2 g三水合乙酸钠（ 4.2） ，加水溶解并稀释至 1000 mL。 
3.28 氢氧化钠溶液（ 1 mol/L） ：称取 4.0 g氢氧化钠 （4.3） ，加水溶解并稀释至 100 mL。 
3.29 氢氧化钠溶液（ 0.1 mol/L ） ：称取 0.4 g氢氧化钠（ 4.3） ，加水溶解并稀释至 100 mL。 
3.30 盐酸溶液（ 1 mol/L)：吸取 83 mL盐酸（ 4.4） ，用水稀释至 1000 mL。 
3.31 Tris缓冲液：称取 121 g三羟甲基氨基甲烷（ 4.5）溶于 500 mL水中，用冰乙酸（ 4.1）
调pH至 8.0～8.3，加水至 1000 mL，贮存于 2℃～ 4℃冰箱中，可保存 2周。  
3.32 生理盐水：称取 9 g氯化钠（ 4.11）溶于 1000 mL 水中。临用前，取生理盐水分装于 2～
4支试管中，每支约加 10 mL，塞好棉塞，于 121℃高压灭菌 10 min后备用。  
3.33 乙醇溶液（ 1+4） ：量取 200 mL无水乙醇（ 4.14）与 800 mL水混匀。  
3.34 碳酸钠溶液（ 0.08 mol/L ） ：称取 0.85 g碳酸钠（ 4.7） ，加水溶解并稀释至 100 mL。 
3.35 碱性磷酸酶溶液：称取 2 g碱性磷酸酶（ 4.16）加水溶解并稀释至 100 mL。临用现配，
用前 2℃~4℃冰箱冷藏。  
3.36 碳酸氢钠溶液（ 0.02 mol/L ） ：称取 1 g碳酸氢钾（ 4.6） ，加水溶解并稀释至 500 mL。混
匀。  
3.37 活化 Dowex 1 X8：称取 100 g Dowex 1 X8（4.15）于锥形瓶中，加入 1 L盐酸溶液（ 4.30） 
于振荡器上充分振摇 10 min，用铺有滤纸的布氏漏斗过滤。再加入 1 L盐酸溶液重复振摇、
过滤。 加入 1 L水振摇 10 min， 过滤， 用水洗涤 Dowex 1 X8 10次。 逐滴加入 Tris缓冲液 （ 4.31）
调节 Dowex 1 X8 pH至8.0。2℃~4℃冰箱保存， 2天内用完。  
3.38 鸽子肝脏提取液：配制此试剂前一天将所用容器放入 2℃~4℃冰箱中冷藏过夜。  
3.38.1  称取 30 g鸽子肝脏丙酮提取物（ 4.17）放入冷的研钵中，冰浴条件下分两次加入 300 
mL碳酸氢钾溶液（ 4.36）研磨至匀浆，转入预冷的具塞离心管中，盖好塞后充分振摇， -20℃ 
冷冻 10 min后以 3000 r/min 离心 5 min，将上清液转至 500 mL预冷的广口瓶中。  
3.38.2  加150 g活化 Dowex 1 X8（4.37） ，放入冰浴中震摇 5 min，将混合液倒入离心管中，
3000 r/min 离心 5 min。将上清液移入另一 500 mL预冷的广口瓶中， -20℃冷冻 10 min。 
3.38.3  重复 4.38.2步骤操作一次。将上清液分装于具塞试管中（每管大约 3 mL），-20℃冷
冻保存。用前化冻并保存于 2℃~ 4℃冰箱内直至用时。  
3.39 泛酸标准储备液（ 40.0 g/mL） ：精确称取 43.5 mg预干燥至恒重的 D-泛酸钙（ 4.18）于
1000 mL 容量瓶中，用约 500 mL 水溶解，加入 10 mL乙酸溶液（ 4.26），100 mL乙酸钠溶
液（ 4.27） ，用水定容至刻度。加入 3滴~5滴甲苯（ 4.23）于 2℃～ 4℃冰箱中贮存 2年。  
3.40 泛酸标准中间液 （ 1.00 g/mL） ： 准确吸取 25.0 mL泛酸标准储备液 （ 4.39） 置于 1000 mL
容量瓶中，加入 10 mL乙酸溶液（ 4.26），100 mL乙酸钠溶液（ 4.27） ，用水定容至刻度。加GB  xxxx—xxxx  
 入3滴~5滴甲苯（ 4.23）于 2℃～ 4℃冰箱中贮存 1年。  
3.41 泛酸标准工作液 （ 0.020 g/mL） ： 准确吸取 2.00 mL泛酸标准中间液 （ 4.40） 置于 100 mL
容量瓶中，用水定容至刻度。此标准工作液现用现配。  
3.42 溴麝香草酚蓝溶液：称取 0.1 g溴麝香草酚蓝（ 4.24）于研钵中，加 1.6 mL 0.1 mol/L 氢
氧化钠溶液（ 4.29）研磨，加少许水继续研磨至完全溶解，用水稀释至 250 mL。此指示剂
变色终点为草绿色（ pH 6.8）。 
3.43 溴甲酚绿溶液：称取 0.1 g溴甲酚绿（ 4.25）于小研钵中 ，加 1.4 mL 0.1 mol/L 氢氧化钠
溶液研磨（ 4.29） ，加少许水继续研磨，直至完全溶解，用水稀释至 250 mL。此指示剂变色
终点为草绿色（ pH 4.5）。 
3.44 甲盐溶液：分别称取 25 g磷酸氢二钾（ 4.8）和 25 g磷酸二氢钾（ 4.9） ，加水溶解并稀
释至 500 mL。加入 3滴~5滴甲苯， 2℃~ 4℃冰箱可保存 1年。  
3.45 乙盐溶液：分别称取 10 g硫酸镁（ 4.10）、0.5 g氯化钠（ 4.11）、0.5 g硫酸亚铁（ 4.12）
和0.5 g硫酸锰（ 4.13） ，加水溶解并稀释至 500mL。加 5滴盐酸（ 4.4），2℃~ 4℃冰箱保存
1年。  
3.46 基础培养液：可按附录 A配制泛酸测定用基础培养液。也可直接由试剂公司购买泛酸
培养基干粉（ pantothenate medium ） ，用前根据需要量按说明书配制，效力相当。  
3.47 菌种储备用琼脂培养基：按表 1各成分用量称取或吸取后，加水至 100 mL，沸水浴加
热至琼脂完全溶化。趁热以溴麝香草酚蓝为外指示剂，用 1 mol/L盐酸溶液（ 4.30）调节指
示剂呈草绿色（ pH 6.8） ，如过量用 1 mol/L氢氧化钠溶液（ 4.28）回调 pH 至6.8。尽快分
装于试管中，每管 3 mL～5 mL，视试管内 径粗细而定，液面高度不得低于 2 cm。塞上棉塞，
121℃高压灭菌 10 min, 取出后直立放置，待冷却后于冰箱内保存。  
 
表1 菌种储备用培养基配制一览表  
 
 
 
 
 
 
 
 
4. 仪器和设备  
4.1 天平：感量 0.1 mg。 
4.2 恒温培养箱： 37℃±1℃。  
4.3 压力蒸汽消毒器。  
4.4 涡旋振荡器。  
4.5 离心机。  试剂  用量  
葡萄糖  1.0 g  
蛋白胨  0.8 g  
酵母提取物  0.2 g  
三水合乙酸钠  1.7 g  
甲盐溶液  0.2 mL  
乙盐溶液  0.2 mL  
琼脂  1.2 g  GB  xxxx—xxxx  
 4.6 超声波振荡器。  
4.7 接种针和接种环。  
4.8  pH计：精度 ±  0.01。      
4.9 分光光度计。  
4.10 超净工作台。  
4.11 电炉。 
5 菌种的制备与保存  
5.1 菌种：植物乳杆菌 Lactobacillus plantarum （ATCC  8014 ）。 
5.2 储备菌种的制备：将植物乳杆菌 Lactobacillus plantarum （ATCC  8014 ）菌种接种于菌
种储备用琼脂培养基（ 4.47）中，在 37℃±1℃恒温箱中培养 16 h～24 h，取出后放入 2℃～
4℃冰箱中保存。至少每隔 7 d传种一次。保存数周以上的储备菌种，不能立即用作接种液制
备，需在使用前每天接种一次，连续传代 2次～ 3 次后方可使用， 以增加细菌活力，提高细
菌的灵敏度。  
5.3 接种液的制备： 试验前一天，取 2 mL泛酸标准工作液和 3 mL基础培养液混合，分装于
两支 10 mL离心管中， 塞好棉塞， 于 121℃高压灭菌 10 min后即为种子培养液。 将 培养 16 h～
24 h的植物乳杆菌 Lactobacillus plantarum （ATCC  8014 ）储备菌种转种至 2支种子培养
液中，于 37℃±1℃恒温培养箱中培养 16 h～20 h。取出后 3000 r/min 离心 10 min，弃上清液，
用已灭菌的生理盐水淋洗 2次， 3000 r/min 离心 10 min，弃上清液。再加入 3 mL灭菌生理
盐水，混匀后 立即使用。  
6 分析步骤（所有操作均需避光进行）  
6.1 试样提取  
6.1.1  以谷物、肉、蛋、豆、乳、果蔬等 为基质的食品 （含强化食品 和保健食品 ） 
6.1.1.1水解：准确称取适量试样至 100 mL锥形瓶中（精确至 0.001g） ，使泛酸含量大致在
50 µg~200 µg。 一般食品试样称取 1 g～10 g； 强化 /保健食品试样称取 0.3 g~2 g 。加10 mL Tris
缓冲液（ 4.31）、30 mL水，混匀。于 121℃高压条件下水解 15 min。冷却至室温，转移至 100 
mL容量瓶中，用水定容至刻度（ V1） ，过滤。  
6.1.1.2酶解：吸取 适量水解液（ 1.0 mL~10.0 mL ，V2）于 25 mL具塞刻度试管底部，在冰浴
条件下，分别小心加入预冷的 0.1 mL碳酸氢钠溶液（ 4.35）、0.4 mL碱性磷酸酶溶液、 0.2 mL
鸽子肝脏提取液和 0.4 mL水。分别小心混匀每个试管，避免混合物粘附于试管壁，加 1滴
甲苯， 37℃± 1℃温箱中培养过夜（ 4 h以上） 。加水至 20 mL，以溴甲酚绿溶液为外指示剂，
用冰乙酸调节 pH至 4.5，加水定容至 25.0 mL（V3） ，过滤。  
6.1.1.3 调节 pH值：吸取适量的澄清酶解液（ 2.0 mL~10.0 mL ，V4）于 25 mL具塞刻度试管
中，以溴麝香草酚蓝溶液为外指示剂，用 0.1 mol/L 氢氧化钠溶液（ 4.29）调节 pH至6.8，
用水定容至 25.0 mL（V5）。根据试样中泛酸含量必要时用水对试样提取液进行稀释（ f） ，使
稀释后试样提取液中泛酸浓度在 0.02 g/mL ~ 0.03 g/mL 范围内。  GB  xxxx—xxxx  
 6.1.1.4 酶空白液：另取一试管分别 加入 10.0 mL Tris 缓冲液、 0.1 mL 碳酸氢钠溶液、 0.4 mL
碱性磷酸酶溶液、 0.2 mL鸽子肝脏提取液和 0.4 mL水， 混匀后于 37℃± 1℃温箱中培养过夜。
以溴麝香草酚蓝为外指示剂， 用 0.1 mol/L 氢氧化钠溶液调节 pH至6.8， 加水定容至 25.0 mL，
即为酶空白液。  
6.1.2  以糖果、淀粉、饮料为基质的食品 及营养素补充剂等  
固体准确称取 0.200 g～5.000g， 液体准确吸取 3.0 mL～10.0 mL， 转入 100 mL锥形瓶中，
加入乙醇溶液（ 1+4）80 mL，振摇提取过夜（ 4 h以上至试样完全溶解） ，用水定容至 100 mL
（V1） 。根据试样中泛酸含量用水对进行适当稀释（ f），使稀释后试样提取液中泛酸浓度在
0.02 g/mL～0.03 g/mL 范围内。  
6.2 测定管制备   
6.2.1 试样管和酶空白管：取 4支试管，分别加入 1.0 mL、2.0 mL、3.0 mL、4.0 mL试样酶
解液（ V6）或酶空白液（ V0） ，补水至体积为 5.0 mL，再加入 5.0 mL基础培养液（ 4.46） ，混
匀。  
6.2.2 标准系列管：分别吸取泛酸标准工作液 0.0 mL、1.0 mL、2.0 mL、3.0 mL、4.0 mL、5.0 
mL于试管中， 相当于标准系列管中泛酸含量为 0.0 g、0.020 g、0.040 g、0.060 g、0.080 
g、0.100 g泛酸。加水至 5.0 mL，再加入 5.0 mL 基础培养液（ 4.46） ，混匀。 为保证标准
曲线的线性关系，至少应制备 2套标准系列管，绘制标准曲线时，以每点的均值计算。  
6.3 培养  
6.3.1 灭菌：将所有测定管塞好棉塞，于 121℃高压灭菌 10 min。 
6.3.2 接种和培养：待试管冷却至室温后，在无菌操作条件下，每管接种一滴接种液。置于
37℃±1℃恒温培养箱中培养 16 h～20 h，直至达到最大混浊度， 即再培养 2 h 透光率变化不
超过 2%。另准备一支标准管（含 0.0 g泛酸）不接种作为对照。  
6.4 试样溶液的测定  
将培养好的试样管、酶空白管、标准系列管用旋涡混匀器混匀。用厚度为 1 cm比色杯，  
在640 nm处，以未接种的标准管调节透光率为 100%，然后依次测定标准系列管、试样管和
酶空白管的透光率。如果接种后标准系列管中的 0管透光率在 90%以下，或与未接种的标准
管相比标准系列管透光率最大变化量在 40 %以下时，说明有杂菌或不明来源的泛酸混入，
需重做实验。  
6.5 分析结果的表述   
以标准系列管 泛酸含量为横坐标，透光率为纵坐标，绘制标准曲线。从标准曲线查得
试样管和酶空白管中泛酸的相应含量，如果每个试样的 4支试样管中有 2支以上泛酸含量
在0.02 g～0.1 g范围内，则可继续进行结果计算，否则需重新取样测定 。 
食品试样首先按式（ 1）计算酶空白液中泛酸含量，然后按式（ 2）计算试样中泛酸含
量。  
P= 
0025
Vc ……………………………………………………………………… （1） 
式中：   
P ——酶空白液中泛酸含量，单位为微克（ g）； GB  xxxx—xxxx  
 c0 ——从标准曲线上查得酶空白管中泛酸含量，单位为微克（ g）； 
V0——制备酶空白管时吸取的酶空白液体积，单位为毫升（ mL）； 
25 ——酶空白液总体积，单位为毫升（ mL）。 
 
X = 
1000100) (
21 3
45
6
V mVPf VVV
Vc ……………………….………………… （2） 
式中：   
X ——  试样中泛酸含量，单位为毫克每百克（ mg/100 g ）； 
 c ——  从标准曲线上查得试样管中泛酸含量，单位为微克（ g）； 
V1 ——  试样水解液的定容体积，单位为毫升（ mL）； 
V2 ——  试样酶解时吸取的水解液体积，单位为毫升（ mL）； 
V3 ——  试样酶解液的定容体积，单位为毫升（ mL）； 
V4 ——  试样稀释时吸取的酶解液体 积，单位为毫升（ mL）； 
V5 ——  试样稀释液的定容体积，单位为毫升（ mL）； 
V6——  制备试样管时吸取的试样稀释液体积，单位为毫升（ mL）； 
f——  试样稀释倍数；  
P ——  酶空白液中泛酸含量，单位为微克（ g）； 
m ——  试样质量，单位为克（ g）； 
1000100
——由微克每克（ g/g）换算为毫克每百克（ mg/100g）的系数。  
营养素补充剂、强化剂、预混料等试样按式（ 3）计算泛酸含量。  
X = 
1000100
61
Vmf Vc ……………………….…….……….……….……………… （3） 
式中：  
 X ——  试样中泛酸含量，单位为毫克 每百克（ mg/100 g ）； 
c ——  从标准曲线上查得试样管中泛酸含量，单位为微克（ g）； 
V1 ——  试样水解液的定容体积，单位为毫升（ mL）； 
V6——  制备试样管时吸取的试样稀释液体积，单位为毫升（ mL）； 
f——试样稀释倍数；  
m ——  试样质量，单位为克（ g）； 
1000100
——由微克每克（ g/g）换算为毫克每百克（ mg/100g）的系数。  
 
7 精密度  GB  xxxx—xxxx  
 在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 15%。 
 
8 其他  
本方法的检出限： 以谷物、肉、蛋、豆、乳、果蔬等为基质的食品， 当称样量为 5 g时，
检出限为 160 g/100g；以糖果、淀粉、饮料为基质的食品 及营养素补充剂等， 当称样量为 5 
g时，检出限为 40 g/100g。 
 
 
 
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 附 录 A 
（资料性附录）  
泛酸测定用基础培养液的配制方法  
 
A.1  试剂  
A.1.1  不含维生素的酪蛋白（ vitamin free casein ）。 
A.1.2  盐酸（ HCl）。 
A.1.3  盐酸溶液： 3 mol/L，1 mol/L。 
A.1.4  氢氧化钠（ NaOH）溶液： 10 mol/L，1 mol/L。 
A.1.5  活性炭。  
A.1.6  硫酸腺嘌呤 （C10H10N10·H2SO 4）。 
A.1.7  盐酸鸟嘌呤 （C5H5N5O5· HCl） 
A.1.8  尿嘧啶（C4H4N2O2）。 
A.1.9  L-胱氨酸（C6H12N2O4S2）。 
A.1.10  L-色氨酸或 DL-色氨酸（C11H12N2O2）。 
A.1.11  核黄素（ C17H20N4O6）。 
A.1.12  盐酸硫胺素 (C12H17ClN 4OS· HCl)。 
A.1.13  生物素（ C10H16N2O3S）。 
A.1.14  乙酸（C2H4O2）溶液：0.02 mol/L 。 
A.1.15  对氨基苯甲酸 (C7H7NO 2) 。 
A.1.16  尼克酸（ C6H5NO 2）。 
A.1.17  盐酸吡哆醇 (C8H11NO 3· HCl)。 
A.1.18  无水乙醇 （C2H5OH）。 
A.1.19  乙醇溶液（ 1+3）。 
A.1.20  聚山梨酯 -80（吐温 -80）。 
A.1.21  无水葡萄糖（ C6H12O6）。 
A.1.22  三水合乙酸钠（ C2H3O2Na·3H2O）。 
A.1.23  甲苯（ C7H8）。 
A.1.24  溴酚蓝（ C19H10Br4O5S）溶液：称取 0.1 g溴酚蓝，用少量乙醇（ A.1.18）溶解后，用
乙醇稀释至 100 mL。此指示剂变色终点为草绿色（ pH 3.5）。 
A.1.25  溴麝香草酚蓝（ C27H28Br2O5S）溶液：按 4.42配制。  
A.1.26  酸解酪蛋白液： 称取 50 g不含维生素的酪蛋白 （ A.1.1）于 500 mL烧杯中， 加 200 mL 
3 mol/L盐酸溶液（ A.1.3） ，于 121℃高压水解 6 h。将水解物转移至蒸发皿内，在沸水浴上
蒸发至膏 状。加 200 mL水使之溶解后再蒸发至膏状，如此反复 3次，以除去盐酸。以溴酚
蓝溶液作外指示剂，用 10 mol/L 氢氧化钠溶液（ A.1.4）调节 pH值至指示剂颜色转为草绿
色（ pH 3.5） 。加 20 g活性炭（ A.1.5） ，振摇约 20 min，过滤。重复活性炭处理直至滤液呈淡
黄色或无色。滤液加水稀释至 1000 mL，加 1 mL ~ 3 mL 甲苯（ A.1.23） ，置 2 ℃ ~ 4℃冰箱
中可保存 1年。  GB  xxxx—xxxx  
 注：每次蒸发时不可蒸干或焦糊，以避免所含营养素破坏。  
A.1.27  腺嘌呤 -鸟嘌呤 -尿嘧啶溶液：分别称取硫酸腺嘌呤（ A.1.6） 、盐酸鸟嘌呤（ A.1.7）和
尿嘧啶（ A.1.8）各 0.1 g于250 mL烧杯中，加 75 mL水和 2 mL盐酸（ A.1.2） ，加热使其完
全溶解后冷却。若有沉淀产生，再加盐酸数滴，加热，如此反复直至冷却后无沉淀产生为止。
用水稀释至 100 mL，加 3滴~5滴甲苯，贮存于棕色试剂瓶中，置 2℃~ 4℃冰箱中可保存 1
年。  
A.1.28  胱氨酸 -色氨酸溶液：分别称取 4 g L -胱氨酸（ A.1.9）和 1 g L -色氨酸或 2g DL -色氨
酸（ A.1.10）于 800 mL水中，加热至 70 ℃ ~ 80℃，逐滴加入 3 mol/L盐酸溶液（ A.1.3），
不断搅拌，直至完全溶解为止。冷却至室温后加水稀释至 1000 mL。加 3滴~5滴甲苯，贮存
于棕色试剂瓶中，于 2℃~ 4℃冰箱中可保存 1年。  
A.1.29  维生素液 I。分别称取 20 mg核黄素（ A.1.11）和 10 mg盐酸硫胺素（ A.1.12） ，加入
1.0 mL生物素溶液（ 40 µg/mL） ，用 0.02 mol/L 乙酸溶液（ A.1.14）溶解并定容至 1000 mL。
加入 3滴~ 5滴甲苯，贮存于棕色试剂瓶中， 2℃~ 4℃冰箱可保存 1年。  
A.1.30  维生素液 II：分别称取 10 mg对氨基苯甲酸（ A.1.15）、50 mg尼克酸（ A.1.16）和
40 mg盐酸吡哆醇（ A.1.17） ，溶于 1000 mL 乙醇溶液（ A.1.19）中。加入 3滴~5甲苯，贮存
于棕色试剂瓶中， 2℃~ 4℃冰箱可保存 1年。  
A.1.31  聚山梨酯 -80溶液：将 25 g聚山梨酯 -80（A.1.20）用乙醇（ A.1.18）溶解并稀释至 250 
mL。2℃~ 4℃冰箱可保存 1年。  
A.1.32  甲盐溶液：按 4.44配制。  
A.1.33  乙盐溶液：按 4.45配制。  
A.2 基础培养液  
配制 250 mL基础培养液，按表 A.1各成分用量吸取液体试剂，混合后加水 150 mL，依
次加入固体试剂，煮沸搅拌 2 min。以溴麝香草酚蓝溶液为外指示剂，用 10 mol/L 或1 mol/L
氢氧化钠溶液调节基础培养液 pH值直至指示剂变为草绿色（ pH 6.8） ；如果指示剂变蓝说明
加入的氢氧化钠溶液过量，以 1 mol/L 盐酸溶液回调指示剂至草绿色。加入乙盐溶液 5 mL，
用水补至 250 mL。2℃~ 4℃冰箱内可保存 7 d。配制时可根据基础培养液用量按比例增减。  
表A.1 泛酸测定用基础培养液配制一览表  
液体试剂  用量  固体试剂  用量  
酸解酪蛋白液  25 mL  无水葡萄糖  10 g 
腺嘌呤 -鸟嘌呤 -尿嘧啶溶液  5.0 mL  三水合乙酸钠  8.3 g  
维生素溶液 I 5.0 mL    
维生素溶液 II 5.0 mL    
胱氨酸 -色氨酸溶液  25 mL    
聚山梨酯 -80溶液  0.25 mL    
甲盐溶液  5.0 mL    
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