中华人民共和国国家标准  
 
GB xxxx —xxxx 
 
  
中华人民共和国卫生部    发布 xxxx -xx-xx发布  
 xxxx -xx-xx实施  
 食品安全国家标准  
食品中叶酸 （叶酸盐） 的测定 
  GB  xxxx—xxxx  
 
4.1 前    言 
本标准代替 GB/T 5009.211 -2008《食品中叶酸的测定》。  
本标准与 GB/T 5009.211 -2008相比，主要变化如下：  
——修改了菌种名称 ,由干酪乳杆菌 改为鼠李糖乳杆菌 ； 
——删除了培养基和用于叶酸盐降解的鸡胰腺供货信息 。 
本标准中附录 A、B均为资料性附录。 （本标准中附录性质的说明）  
本标准所代替标准的历次版本发布情况为：  
—— GB/T 5009.211 -2008。  GB  xxxx—xxxx  
 
食品安全国家标准  
食品中叶酸 （叶酸盐） 的测定  
1 范围 
本标准规定了食品中叶酸 （叶酸盐） 的测定方法。  
本标准适用于食品中叶酸 （叶酸盐） 的测定。  
 
2 原理  
叶酸是细菌生长所必需的营养素，在一定控制条件下，细菌的生长响应与培养基中叶酸
含量呈线性关系。用比浊法测定试样液中细菌增殖后的混浊度，通过与标准曲线相比较计算
出试样中叶酸的含量。  
3 试剂和材料  
除非另有说明，本方法所用试剂均为分析纯，水为 GB/T 6682 规定的二级水。 
3.1 甲苯（C7H8）。 
3.2 磷酸钠（ Na3PO 4·12H 2O）。 
3.3 磷酸氢二钠（ Na2HPO 4·7H2O）。 
3.4 抗坏血酸（ C6H8O6）。 
3.5 无水乙醇（ C2H6O）。 
3.6 氢氧化钠（ NaOH）。 
3.7 盐酸（HCl）。 
3.8 鸡胰腺（Chicken Pancreas ）。 
3.9 木瓜蛋白酶（ Papain）。 
3.10 淀粉酶（ Taka -Diastase）。 
3.11 叶酸（ C19H19N7O6） ：纯度＞98 %。 
3.12 葡萄糖（ C6H12O6）。 
3.13 蛋白胨（ peptone）。 
3.14 酵母提取物（ yeast extract ）。 
3.15 琼脂。  
3.16 磷酸氢二钾（ K2HPO 4）。 
3.17 磷酸二氢钾（ KH 2PO 4·3H2O）。 
3.18 硫酸镁（ MgSO 4·7H2O）。 
3.19 氯化钠（ NaCl）。  GB  xxxx—xxxx  
 
3.20 硫酸亚铁（ FeSO 4·7H2O）。 
3.21 硫酸锰（ MnSO 4·H2O）。 
3.22 溴麝香草酚蓝（ C27H28Br2O5S） ：指示剂。  
3.23 磷酸缓冲液（ 0.05 mol/L ，pH 6.8） ：分别称取 4.35 g 磷酸钠（ 4.2）和 10.39 g磷酸氢二
钠（4.3） ，用水溶解至 1 L。临用前按大约 5 g/L的比例加入抗坏血酸（ 4.4） ，使 pH值为 6.8。 
3.24 乙醇溶液（ 1+4） ：量取 200 mL乙醇（ 4.5）与 800 mL水混匀。  
3.25 氢氧化钠乙醇溶液（ 0.01 mol/L ） ：称取 0.4 g氢氧化钠（ 4.6）用乙醇溶液（ 1+4）（4.24）
溶解并稀释至 1000 mL。 
3.26 氢氧化钠溶液（ 1 mol/L） ：称取 4 g氢氧化钠（ 4.6） ，加水溶解并稀释至 100 mL。 
3.27 盐酸溶液（ 1 mol/L） ：吸取 8.4 mL盐酸（ 4.7） ，用水稀释至 100 mL。 
3.28 鸡胰腺液：称取 100 mg鸡胰腺（4.8） ，加入 20 mL磷酸缓冲液（ 4.23） ，研磨至匀浆。
现用现配。  
3.29 蛋白酶 -淀粉酶液：分别称取 200 mg木瓜蛋白酶（ 4.9）和淀粉酶（ 4.10） ，加入 20 mL
磷酸缓冲液（ 4.23）研磨至匀浆。现用现配。  
3.30 叶酸标准储备液（ 20.0 g/mL） ：精确称取 20.0 mg叶酸（ 4.11）置于 1 L容量瓶中，用
氢氧化钠乙醇溶液（ 4.25）溶解并定容至刻度。储存于 棕色瓶中， 2℃～ 4℃冰箱保存 2年。
当叶酸（ 4.11）纯度不够或储存时间超过半年以上时需按附录 A进行浓度标定后再使用。  
3.31 叶酸标准中间液（ 20.0 ng/mL ） ：准确吸取 1.00 mL 叶酸标准储备液（ 4.30） ）置于 1 L
容量瓶中， 用氢氧化钠乙醇溶液 （ 4.25） 稀释并定容至刻度， 混匀后储存于棕色瓶中 2℃～ 4℃
冰箱保存 1年。  
3.32 叶酸标准工作液（ 0.200 ng/mL ） ：临用前吸取 1.00 mL叶酸标准中间液（ 4.31） ）置于 100 
mL容量瓶中，用水稀释定容至刻度。临用前现配。  
3.33 甲盐溶液：分别称取 25 g磷酸氢二 钾（ 4.16）和 25 g磷酸二氢钾（ 4.17） ，加水溶解并
稀释至 500 mL。加入 3滴~5滴甲苯， 2℃~ 4℃冰箱可保存 1年。  
3.34 乙盐溶液：分别称取 10 g硫酸镁（ 4.18）、0.5 g氯化钠（ 4.19）、0.5 g硫酸亚铁（ 4.20）
和0.5 g硫酸锰（ 4.21） ，加水溶解并稀释至 500mL。加 5滴盐酸（ 4.7），2℃~ 4℃冰箱保存 1
年。  
3.35 溴麝香草酚蓝溶液：称取 0.1 g溴麝香草酚蓝（ 4.22）于研钵中，加 1.6 mL 0.1 mol/L 氢
氧化钠溶液研磨，加少许水继续研磨至完全溶解，用水稀释至 250 mL。此指示剂变色终点
为草绿色（ pH 6.8）。 
3.36 基础培养液：可按附录 B配制叶酸测定用基础培养液，也可直接由试剂公司购买叶酸测
定培养基干粉（ folic acid casein medium ） ，用前根据需要量按说明书配制。效力相当。  
3.37 菌种储备用琼脂培养基：按表 1各成分用量称取或吸取混合后，加水至 100 mL，沸水
浴加热至琼脂完全溶化。趁热以溴麝香草酚蓝为外指示剂，用 1 mol/L盐酸溶液（ 4.27）调
节pH至指示剂呈草绿色，如过量用 1 mol/L氢氧化钠溶液（ 4.26）回调 pH 至6.8。尽快分
装于试管中，每管 3 mL～5 mL，视试管内径粗细而定，液面高度不得低于 2 cm。塞上棉塞，
121℃高压灭菌 10 min, 取出后直立放置，待冷却后于冰箱内保存。  
表1 菌种储备用 琼脂培养基配制一览表   GB  xxxx—xxxx  
 
试剂  用量  
葡萄糖  1.0 g  
蛋白胨  0.8 g  
酵母提取物干粉  0.2 g  
三水合乙酸钠  1.7 g  
甲盐溶液  0.2 mL  
乙盐溶液  0.2 mL  
琼脂  1.2 g  
4 仪器和设备  
4.1 天平：感量 0.1 mg。 
4.2 恒温培养箱： 37℃±1℃。  
4.3 压力蒸汽消毒器。  
4.4 涡旋振荡器。  
4.5 离心机。  
4.6 接种针和接种环。  
4.7 pH计：精度 ± 0.01。      
4.8 分光光度计。  
4.9 超净工作台。  
4.10 超声波振荡器。  
4.11 电炉。  
5 菌种的制备与保存  
5.1 菌种：鼠李糖乳杆菌 Lactobacillus casei （ATCC 7469 ）。 
5.2 储备菌种的制备：将鼠李糖乳杆菌菌种转接至菌种储备用琼脂培养基（ 4.37）中，在 37℃
±1℃恒温培养箱中培养 16 h～24 h。取出后放入 2℃～ 4℃冰箱中保存，至少每隔 7 d传种一
次。保存数周以上的储备菌种，不能立即用作接种液制备，需在使用前每天接种一次，连续
传代 2 次～ 3 次后方可使用，以增加细菌活力，提高细菌的灵敏度 。 
5.3 接种液的制备：试验前一天，取 1 mL叶酸标准工作液和 10 mL基础培养液混匀，分装
至4支5 mL离心管中，塞上棉塞， 于121℃高压灭菌 15 min后即为种子培养液。冷却后用
接种环将培养 了16 h～24 h的干酪乳杆菌储备菌种转种至 2支种子培养液中，于 37℃± 1℃
恒温培养箱中培养 16 h～20 h。取出后将种子培养液混悬，无菌操作下吸取 0.2 mL转种至另
2支已消毒的种子培养液中，于 37℃± 1℃再培养 6 h。振荡混匀，制成菌种混悬液，立即使
用。  
6 分析步骤（所有操作均需避光进行）  
6.1 试样提取  
6.1.1普通食品：准 确称取适量试样（约含 0.2 g～2 g叶酸） ，精确至 0.001g。一般谷薯类、 GB  xxxx—xxxx  
 
肉类、鱼类、乳类、 新鲜果蔬、藻类 2 g～5 g；蛋类、豆类、坚果类、饲料等 1 g ~3 g；内脏
0.2 g~1 g ；半流质或流质 5 g~10 g。转入 100 mL锥形瓶中，加 30 mL磷酸缓冲液（ 4.23），
振摇后于 121℃高压水解 15 min，取出冷却至室温。加入 1 mL鸡胰腺液（ 4.28） ，如试样中
含有蛋白质、淀粉需另 加入 1 mL蛋白酶 -淀粉酶液（ 4.29） 。加入 3滴~5滴甲苯，充分混合，
置于 37℃ ±  1℃恒温培养箱内酶解 16 h～20 h。取出，转入 100 mL容量瓶， 加水定容至刻
度，过滤。另取一支 25 mL刻度试管，加入 15 mL磷酸缓冲液， 1mL鸡胰腺液和 /或1 mL
蛋白酶 -淀粉酶液，混合，同试样一起温育后，加水定容至 25.0 mL后过滤，此为酶空白液。  
6.1.2营养素补充剂、强化剂及预混料：准确称取 0.1 g～0.5 g试样，精确至 0.001g，转入 100 
mL容量瓶中，加入 80 mL 氢氧化钠乙醇溶液（ 4.25）振摇提取过夜（ 4 h以上） ，用水定容
至刻度。  
6.2 稀释  
如有必要，用水对试样提取液进行适当 稀释，使稀释后试样 提取液中叶酸含量在 0.2 
ng/mL～0.4 ng/mL 范围内。  
6.3 测定管制备  
6.3.1 试样管和酶空白管：取 3支试管，分别加入试样提取液或酶空白液 0.5 mL、1.0 mL、
2.0 mL，补水至 5.0 mL，加入 5.0 mL 基础培养液（ 4.36） ，混匀。  
6.3.2 标准系列管：取试管分别加入叶酸标准工作液 0.00 mL、0.25 mL、0.50 mL、1.00 mL、
1.50 mL、2.00 mL、2.50 mL、3.00 mL、4.00 mL和5.00 mL，加水至 5.00 mL，相当于标准
系列管中叶酸含量为 0.00 ng、0.05 ng、0.10 ng、0.20 ng、0.30 ng、0.40 ng、0.50 ng、0.60 ng、
0.80 ng、1.00 ng。加 5.0 mL基础培养液（ 4.36），混匀。为保证标准曲线的线性关系，至少
应制备 2套标准系列管，绘制标准曲线时，以每点的均值计算。  
6.4 培养  
6.4.1 灭菌：将所有测定管塞好棉塞，于 121℃高压灭菌 15 min。 
6.4.2 接种和培养：快速冷却试管至室温，在无菌操作条件下，每管接种一滴菌种混悬液。
置于 37℃± 1℃恒温培养 箱中培养 20 h～40 h，直至获得最大混浊度，即再培养 2 h 透光率
变化不超过 2%。另准备一支标准管（含 0.0 ng叶酸）不接种作为对照。  
6.5 试样溶液的测定  
将培养好的试样管、酶空白管、标准系列管用旋涡混匀器混匀。用厚度为 1 cm比色杯，
于540 nm处，以未接种的标准管调节透光率为 100%，然后依次测定标准系列管、试样管和
酶空白管的透光率。如果接种后标准系列管中的 0管透光率在 90%以下，或与未接种的标准
管相比标准系列管透光率最大变化量在 40%以下时，说明有杂菌或不明来源的叶酸混入，需
重做实验。  
6.6 分析结果的 表述   
以标准系列管叶酸含量为横坐标，透光率为纵坐标，绘制标准曲线。从标准曲线查得试
样管或酶空白管中叶酸的相应含量，如果每个试样的三支试样管中有两支叶酸含量落在 0.20 
ng～1.0 ng范围内则可继续按式（ 1） 、式（ 2）进行结果计算，否则需重新取样测定。  
酶空白液中叶酸含量按式（ 1）计算：   GB  xxxx—xxxx  
 
P= 
0025
Vc …………………………………………………………………… （1） 
式中：   
P ——  鸡胰腺液或和蛋白酶 -淀粉酶液中叶酸含量，单位为纳克（ ng）； 
 c0 ——  从标准曲线上查得酶空白管中叶酸含量，单位为纳克（ ng）； 
 V0——  制备酶空白管时吸取的酶空白液体积，单位为毫升（ mL）； 
25 ——酶空白液总体积，单位为毫升（ mL）。 
试样中叶酸含量按式（ 2）计算：  
X = 
10001002
1
mPf VVc ……………………………………………… （2） 
式中：   
X ——  试样中叶酸含量，单位为微克每百克（ μg/100 g）； 
c ——  从标准曲线上查得试样管中叶酸含量，单位为纳克（ ng）； 
V1 ——制备试样管时吸取的试样液体积，单位为毫升（ mL）； 
V2 ——试样提取液定容体积，单位为毫升（ mL）； 
f ——  试样液稀释倍数；  
P ——鸡胰腺液或和蛋白酶 -淀粉酶液中叶酸含量，单位为纳克（ ng）； 
m ——  试样质量，单位为克（ g）； 
1000100
——由纳克每克（ ng/g）换算为微克每百克（ g/100g）的系数。  
注：营养素补充剂、强化剂及预混料等试样提取步骤中因无酶解处理，故无需计算酶空
白液中叶酸含量，即式（ 2）中 P = 0。 
7 精密度  
     在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的 15%。 
8 其他  
本方法的检出限：普通食品， 当称样量为 5 g时，检出限为 2 µg/100g；营养素补充剂、
强化剂及预混料， 当称样量为 1 g时，检出限为 2 µ g/100g。   
  GB  xxxx—xxxx  
 
 
附录  A 
（资料性附录）  
叶酸标准储备液浓度的测定  
 
A.1 测定  
准确吸取 1.0 mL标准储备液至 10 mL容量瓶中，用氢氧化钠溶液（ 0.1 mol/L ）定容至
刻度。以氢氧化钠溶液（ 0.1 mol/L ）调零点，比色杯厚度 1cm，波长 256 nm，用紫外分光光
度计测定 3次吸光度值，取平均值。  
A.2 计算   
叶酸标准溶液浓度按式（ A.1）计算标准储备液叶酸浓度。  
X1 =
31010MEA  ……………………………………………………………… （A.1） 
式中：   
X1 ——  标准储备液中叶酸浓度， 单位为微克每毫升（ g/mL）； 
A ——平均吸光度值；  
E ——  摩尔消光系数 24500；  
M ——  叶酸分子量 441.42； 
10 ——  稀释倍数；  
    103 ——  由克每升换算为微克每毫升的换算系数。  
  GB  xxxx—xxxx  
 
附录  B 
（资料性附录）  
叶酸测定用基础培养液的配制方法  
 
B.1 试剂  
B.1.1  无水乙醇（ C2H6O)。 
B.1.2  不含维生素的酪蛋白（ vitamin free casein ）。 
B.1.3  碳酸氢钠 （NaHCO 3）。 
B.1.4  碳酸氢钠（ NaHCO 3）溶液： 0.1 mol/L 。 
B.1.5  盐酸（ HCl）。 
B.1.6  盐酸溶液： 3 mol/L，1 mol/L。 
B.1.7  氢氧化钠（ NaOH）溶液： 10 mol/L，1 mol/L。 
B.1.8  胰酶（ pancreatin ）。 
B.1.9  甲苯。  
B.1.10  硅藻土。  
B.1.11  冰乙酸（C2H4O2）。 
B.1.12  乙酸溶液： 0.02 mol/L 。 
B.1.13  活性炭。  
B.1.14  硫酸腺嘌呤 （C10H10N10·H2SO 4）。 
B.1.15  盐酸鸟嘌呤 （C5H5N5O5· HCl） 
B.1.16  尿嘧啶（C4H4N2O2）。 
B.1.17  黄嘌呤 (C5H4N4O2)。 
B.1.18  氨水（ NH 5O）。 
B.1.19  三水合乙酸钠（ C2H3O2Na·3H2O）。 
B.1.20  核黄素（ C17H20N4O6）。 
B.1.21  生物素（ C10H16N2O3S）。 
B.1.22  对氨基苯甲酸 (C7H7NO 2)。 
B.1.23  盐酸吡哆醇 (C8H11NO 3· HCl)。 
B.1.24  盐酸硫胺素 (C12H17ClN 4OS· HCl)。 
B.1.25  泛酸钙（ C18H32CaN 2O10）。 
B.1.26  尼克酸（ C6H5NO 2）。 
B.1.27  聚山梨酯 -80（吐温 -80）。 
B.1.28  还原型谷胱甘肽（ C10H17N3O6S） 
B.1.29  L-天冬氨酸 （C4H7NO 4）。 
B.1.30  L-色氨酸（C11H12N2O2）。 
B.1.31  L-盐酸半胱氨酸（ C3H7NO 2S·HCl）。 
B.1.32  无水葡萄糖（ C6H12O6）。 
B.1.33  溴麝香草酚蓝（ C27H28Br2O5S）溶液：按 4.35配制。   GB  xxxx—xxxx  
 
B.1.34  溴酚蓝（ C19H10Br4O5S）溶液： 0.1 g/100  mL，无水乙醇（ B.1.1）配制。此指示剂变
色终点为草绿色（ pH 3.5）。 
B.1.35  酪蛋白液：可按下列任一种方法制备。  
B.1.35.1 酶解酪蛋白液：称取 60 g不含维生素的酪蛋白（ B.1.2）至 1 L烧杯中，慢慢加入 1 
L碳酸氢钠溶液（ B.1.4） ，以防止结块，用 10 mol/L 氢氧化钠溶液（ B.1.7）调节 pH 值至
8.0。加入 300 mg胰酶（ B.1.8） ，搅拌 20 min，使胰酶充分混匀。加入 2.5 mL甲苯（ B.1.9），
置37 ℃  1 ℃恒温培养箱中酶解 48 h～72 h。 从恒温培养箱中取出酪 蛋白酶解液， 于 121℃
高压 30 min以终止反应，冷却至室温。加入 10 g硅藻土（ B.1.10） ，搅拌均匀，用布氏漏斗
过滤，滤液用约 60 mL冰乙酸（ B.1.11）调节 pH 值至 3.7。称取 12 g活性炭（ B.1.13） ，加
入滤液中准确搅拌 10 min，用铺有 10 g硅藻土的布氏漏斗过滤，滤液从“称取 12 g活性
炭„„”开始重复操作二次。最终滤液用水稀释至 1200 mL。取 10 mL酶解酪蛋白液于平皿
中150 ℃烘干至恒重，如固体含量  < 40 mg/mL ，则弃除酪蛋白液，重新制备。制备好的酪
蛋白液加 1 mL ~ 3 mL 甲苯（ B.1.9），2℃～ 4℃冰箱冷藏保存 1年。  
B.1.35.2 酸解酪蛋白液：称取 50 g不含维生素酪蛋白（ B.1.2）于 500 mL烧杯中，加 200 mL
盐酸溶液（ B.1.6） ，于 121℃高压水解 6 h。将水解物转移至蒸发皿内，在沸水浴上蒸发至膏
状。 加 200 mL水使之溶解后再蒸发至膏状， 如此反复 3次， 以除去盐酸。 以溴酚蓝 （ B.1.34）
作外指示剂，用 10 mol/L 氢氧化钠（ B.1.7）调节 pH值至指示剂颜色转为草绿色（ pH 3.5）。
加20 g活性炭（ B.1.13） ，振摇约 20 m in，过滤。重复活性炭处理直至滤液呈淡黄色或无色。
滤液加水稀释至 1000 mL，加 1 mL ~ 3 mL 甲苯，置 2℃～ 4℃冰箱中保存 1年。  
注：每次蒸发时不可蒸干或焦糊，以避免所含营养素破坏。  
B.1.36  腺嘌呤 -鸟嘌呤 -尿嘧啶溶液。分别称取硫酸腺嘌呤（ B.1.14） 、盐酸鸟嘌呤（ B.1.15）
以及尿嘧啶（ B.1.16）各 0.1 g于250 mL烧杯中，加 75 mL水和 2 mL盐酸（ B.1.5） ，加热
使其完全溶解后冷却。若有沉淀产生，再加盐酸数滴，加热，如此反复直至冷却后无沉淀产
生为止，加水至 100 mL。加 3滴~5滴甲苯，贮存于棕色试剂瓶中，置 2℃～ 4℃于冰箱中可
保存 1年。  
B.1.37  黄嘌呤 (C5H4N4O2)溶液：称取 0.4 g黄嘌呤（ B.1.17） ，加 10 mL氨水（ B.1.18） ，加
热溶解，加水至 100 mL。加 3滴~5滴甲苯，贮存于棕色试剂瓶中， 2℃～ 4℃冰箱保存 1年。 
B.1.38  乙酸缓冲液（ 1.6 mol/L ，pH 4.5） ：称取 63 g三水合乙酸钠（ B.1.19） ，用 200 mL水
溶解，加大约 20 mL冰乙酸（ B.1.11） ，调节 pH至4.5，混合后，用水稀释至 500 mL。 
B.1.39  维生素液：称取 100 mg核黄素（B.1.20）用400 mL乙酸缓冲液（ B.1.38）溶解。取
25 mg 碳酸氢钠 （B.1.3）溶解于 500 mL水中，加入 2 mg生物素（ B.1.21），200 mg对氨基
苯甲酸（B.1.22），400 mg盐酸吡哆醇（ B.1.23），40 mg盐酸硫胺素 （B.1.24），80 mg泛酸
钙（ B.1.25），80 mg尼克酸（ B.1.26）溶解。将上述两种溶液混合，加水至 1000 mL。加入
3滴~5滴甲苯，贮存于棕色试剂瓶中， 2℃～ 4℃冰箱保存 1年。  
B.1.40  聚山梨酯 -80溶液（ Tween -80） ：将 10 g聚山梨酯 -80（B.1.27）溶于乙醇（ B.1.1）中
并稀释至 100 mL，2℃～ 4℃冰箱保存。  
B.1.41  还原型谷胱甘肽（ C10H17N3O6S）溶液：称取 0.1 g还原型谷胱甘肽（ B.1.28） ，加 100 
mL水溶解，贮于棕色瓶中， 2℃～ 4℃冰箱保存。   GB  xxxx—xxxx  
 
B.1.42  甲盐溶液：按 4.33配制。  
B.1.43  乙盐溶液：按 4.34配制。  
B.2 基础培养液  
配制 250 mL基础培养液，按表 B.1吸取液体试剂，混合后加水 150 mL，依次加入固体
试剂，煮沸搅拌 2 min。以溴麝香草酚蓝为外指示剂，用 1 mol/L氢氧化钠溶液调节基础培
养液 pH值直至指示剂变为草绿色 （ pH 6.8） ； 如果指示剂变蓝说明加入的氢氧化钠溶液过量，
以1 mol/L 盐酸溶液回调 pH值至 6.8。加入乙盐溶液 5 mL，用磷酸缓冲液（ 4.23）补至 250 
mL。2℃～ 4℃冰箱内可保存 7 d。配制时可根据基础培养液用量按比例增减。  
表B.1 叶酸测定用基础培养液 配制一览表  
液体试剂  用量  固体试剂  用量  
酪蛋白液  50 mL  L-天冬氨酸  0.15 g  
腺嘌呤 -鸟嘌呤 -尿嘧啶溶液  5.0 mL  L-盐酸半胱氨酸  0.10 g  
黄嘌呤溶液  1.25 mL  L-色氨酸  0.10 g  
维生素液 I 2.5 mL  无水葡萄糖  10 g 
聚山梨酯 -80溶液  0.25 mL  三水合乙酸钠  10 g 
甲盐溶液  5.0 mL    
还原型谷胱甘肽溶液  1.25 mL    
 
 
______________________________