中华人民共和国国家标准  
 
 GB/T xxxx—xxxx 
 
 
  
中华人民共和国卫生部    发布 
 
 xxxx—xxxx发布  
 xxxx—xxxx实施  
 食品安全国家标准  
食品中T-2毒素的测定 
 GB/T xxxx—xxxx 
I 前    言 
本标准代替 GB/T 5009.118 -2008《谷物中 T-2毒素的测定》和 GB/T 2350 1-2009《食品中 T-2毒素
的测定免疫亲和层析净化高效液相色谱法 》。 
本标准与 GB/T 5009.118 -2008和GB/T 2350 1-2009相比，主要变化 如下：  
    ——修改了标准的中文名称，标准中文名称改为 《食品安全国家标准  食品中 T-2毒素的测定（理
化方法）》； 
——按照 GB//T 20001.4 -2001对标准的结构进行了修改 ; 
——新标准内容是由原 GB/T 50 09.118 -2008的三个方法 和GB/T 23501 -2009共四个方法组成， 将
GB/T 5009.209 -2008中的三个 方法分别作为第一 、 第二和第三 法， 而 GB/T 2350 1-2009的方法作为第 四法。 
 
 GB/T xxxx—xxxx 
1 食品安全国家标准  
食品中T-2毒素的测定  
1 范围  
本标准规定了 食品中玉米赤霉烯酮的测定方法。  
本标准第一法、第二法和第三法 适用于谷物中T-2毒素含量 的测定；第四法适用于 粮食和粮食制品、
酒类、酱油、醋、酱及酱制品中 T-2毒素含量的测定 。 
 
 第一法 高效液相色谱法  
2 原理  
试样中的 T-2毒素用甲醇 -水提取后，提取液经免疫亲和柱净化，浓缩、衍生、定容后，用配有荧
光检测器的液相色谱仪进行测定，外标法定量。  
3 试剂和材料  
除另有规定外，所用试剂均为分析纯，水为蒸馏水或相当纯度的去离子水。  
3.1 试剂 
3.1.1 甲醇（ CH 3OH）：色谱纯。 
3.1.2 乙腈（ CH 3CN）：色谱纯。 
3.1.3 甲苯（ C6H5CH 3）：色谱纯。 
3.2 试剂配制  
3.2.1 4-二甲基氨基吡啶（ DMAP）溶液：准确称取 0.0325  g 于100 mL 容量瓶中，用甲苯稀释至刻度。  
3.2.2 1-氰酸蒽（ 1-anthroyln itrile，1-AN）溶液：准确称取 0.0300 g于100 mL 容量瓶中，用甲苯稀释至
刻度。  
3.2.3甲醇 -水（ 8+2）：取 80 mL甲醇，加 20 mL水。  
3.3 标准品  
    T-2 毒素（ T-2 toxin）标准品：纯度 ≥98%。 
3.4 标准溶液配制   
3.4.1 T-2毒素标准储备液： 准确称取适量的 T-2 毒素标准品， 用乙腈配成浓度为 0.5 mg/mL  作为 T-2 的
标准储备液， -20 ℃冰箱中避光保存。  
3.4.2 T-2毒素标准工作液： 使用前用乙腈 将T-2毒素的标准储备液 稀释成适当 浓度的标准工作液。  
3.5 材料   
3.5.1 T-2 毒素免疫亲和柱。  
3.5.2 玻璃纤维滤纸。  GB/T xxxx—xxxx 
2 4 仪器和设备  
4.1 液相色谱仪配有荧光检测器。  
4.2 粉碎机。  
4.3 高速均质器。  
4.4 氮吹仪。  
4.5 离心机。  
4.6 涡旋混合仪。  
4.7 空气压力泵。  
4.8 玻璃注射器： 20 mL。 
4.9 天平：感量 0.0001  g。 
5 分析步骤  
5.1 提取  
称取试样 50 g（精确到 0.01 g）于500 mL玻璃混合杯中， 加入 100 mL甲醇 -水（8+2） ， 高速均质 2 min
后， 3 000 r/min离心 5 min，上清液经定量滤纸过滤，移取 10.0 mL滤液并加入 40.0 mL水稀释，混匀，
以玻璃纤维滤纸过滤，至滤液澄清后，进行免疫亲和柱净化操作。  
5.2 净化 
将免疫亲和柱连接于 20 mL玻璃注射器下。准确移取 10.0 mL（相当于 1.0 g样品）的 5.1提取滤
液注入玻璃注射器中，将空气压力泵与玻璃注射器相连接，调节压力使溶液以 1 mL/min 流速缓慢通过
免疫亲和柱，直至有部分空气通过柱体。以 10mL水淋洗柱子 1次，弃去全部流出液，并使部分空气
通过柱体。加入 1.5 mL甲醇（ 3.1.1）洗脱，流速约为 1 mL/min，收集洗脱液于玻璃试管中， 50 ℃以
下氮气吹干，待衍生。  
5.3 衍生 
于5.2净化后的样品中， 分别加入 50 L 4-二甲基氨基吡啶 （ DMAP） 溶液和 50 L 1-氰酸蒽 （ 1-AN）
溶液，涡旋混合 1 min，与 50 ℃±2 ℃恒温水浴中反应 15 min，在冰水中冷却 10 min。50 ℃以下氮气
吹干后，用 1.0 mL流动相  [5.4.1 b）]溶解，供液相色谱测定。  
5.4 测定 
5.4.1 液相色谱条件  
a） 色谱柱：  C18柱， 4.6 mm× 150  mm（内径），粒度 5 m，或相当者；  
b） 流动相：乙腈 -水（ 80+20）；  
c） 流速： 1.0 mL/min； 
d） 检测波长：激发波长 381 nm，发射波长 470 nm。 
e） 进样量： 20 L； 
f） 柱温：室温。  
5.4.2 色谱测定  
根据样液中 T-2毒素衍生物含量情况，选定浓度相近的标准工作溶液。标准工作溶液和样液中 T-2
毒素衍生物相应值均应该在仪器检测线性范围内。对标准工作溶液和样液等体积参插进样进行测定。
在上述色谱条件下， T-2毒素衍生物的保留时间约为 9.8 min。T-2毒素衍生物的标准色谱图见图 A.1。 
5.5 空白试验  
除不加试样外，均按上述步骤进行。  GB/T xxxx—xxxx 
3 6 分析结果的表述  
用外标法按式（ 1）计算试样中 T-2毒素衍生物的 含量，计算结果需要将空白值扣除：  
                              
m AVc AAX
S0
1000) ( 1000  …………………………………… （1） 
式中：  
X——  试样中 T-2毒素衍生物 的含量， 单位为微克每千克 （g/kg）； 
A ——样液中 T-2毒素衍生物的峰面积 ； 
AO ——空白样液中 T-2毒素衍生物的峰面积 ； 
c——标准工作 溶液中 T-2毒素衍生物 的浓度， 单位为微克每毫升 （g /mL）； 
V——样液最终定容体积， 单位为毫升（ mL）； 
AS——标准工作 溶液中 T-2毒素衍生物的峰面积；  
m——最终样液所代表的试样量，单位为克（ g）。 
 
第二法   直接法  
7 原理  
将已知抗原吸附在固相载体表面，洗除未吸附的抗原，加人一定量的酶标记抗体与试样（含有抗
原）提取液的混合液，竞争温育后，在固相载体表面形成抗原 -抗体 -酶复合物。洗除多余部分，加入
酶的底物。在酶的催化作用下，底物发生降解反应，产生有色物质，通过酶标检测仪，测出酶底物的
降解量，从而推知被测试样中的抗原量。  
8 试剂和材料  
除非另有说明，本方法所用试剂均为分析纯，水为符合 GB/T 6682中规定的 一级水。 
8.1 试剂 
8.1.1 甲醇（CH 3OH）。 
8.1.2 石油醚 60 ℃～90 ℃或30 ℃～60 ℃。 
8.1.3 三氯甲烷（ CHCl 3）：色谱纯。  
8.1.4 无水乙醇 （C2H6O）。 
8.1.5 乙酸乙酯 （C4H8O2）。 
8.1.6 二甲基甲酰胺 （C3H7NO）。 
8.1.7 四甲基联苯胺 （TMB）。 
8.1.8 吐温 -20。 
8.1.9 30％过氧化氢 （H2O2）。 
8.1.10 抗T-2毒素单克隆抗体与辣根过氧化酶结合物。  
8.1.11 抗原： T-2毒素与载体蛋白 -牛血清白蛋白的结合物（ T-2-BSA）。  
8.2 试剂配制  
8.2.1 包被缓冲液为 pH 9.6 的碳酸盐缓冲液 ：称取 1.59 g 碳酸钠（ Na2CO 3）, 2.93  g 碳酸氢钠
（NaHCO 3），加水稀释至 1 000 mL 。 
8. 2.2 洗液为含 0.05％吐温 -20的pH 7.4的磷酸盐缓冲液（简称为 PBS-T）。配制方法为：  GB/T xxxx—xxxx 
4 称取 0.2 g磷酸二氢钾（ KH 2PO 4），2.9 g磷酸氢二钠 （Na2H PO 4· 12H 2O），8.0 g 氯化钠（ NaCl），
0.2 g氯化钾（ KCl），0.5mL吐温 -20，加水至 1 000  mL。 
9 仪器和设备  
所有玻璃器皿均用硫酸洗液浸泡，用自来水、蒸馏水冲洗。  
9.1 酶标检测仪。  
9.2 酶标板（ 40孔或 96孔）。  
9.3 电动振荡器。  
9.4 电热恒温水浴锅。  
9.5 具0.2 mL尾管的 10 mL小浓缩瓶。  
10 分析步骤  
10.1  提取  
称取 20 g粉碎并通过 20 目筛的试样，置 200 mL具塞锥形烧瓶中，加 8 mL水和 100 mL三氯甲烷 -无
水乙醇（4+1），密塞，振荡 1 h，通过滤纸过滤，取 25 mL滤液于蒸发皿中，置 90 ℃水浴上通风挥干。
用50 mL石油醚分次 溶解蒸发皿中残渣，洗入 250 ml分液漏斗中，再用 20 mL甲醇 -水（4+1）分次洗涤，
转入同一分液漏斗中，振摇 l.5 min，静置约 15 min，收下层甲醇 -水提取液过层析柱净化（层析柱的装
备：在层析柱下端与小管相连结处塞约 0.1 g脱脂棉，尽量塞紧，先装入 0.5 g中性氧化铝，敲平表面，
再加入 0.4 g活性碳，敲紧）。  
将过柱后的洗脱液倒人蒸发皿中，并于水浴锅上浓缩至干，趁热加 3 mL乙酸乙酯，加热至沸，挥
干，再重复一次，最后加 3 mL乙酸乙酯，冷至室温后转入浓缩瓶中。用适量乙酸乙酯洗涤蒸发皿，并
入浓缩瓶中，将浓缩瓶置 95 ℃水浴锅上，挥干冷却后，用含 20％甲醇的 PBS定容，供 ELISA检测之用。  
10.2  ELISA 检测 
10.2.1  用 T-2-BSA（4 g/mL）包被酶标板，每孔 100 L，4 ℃过夜；  
10.2.2  酶标板用 PBS-T洗3次，每次 3 min后，加人不同浓度的 T-2标准溶液（制作标准曲线）或试样提
取液（检测试样中的毒素含量）与抗体 -酶结合物溶液（ 1+100）的混合液（ 1+1，每孔 100 L，该混合
液应于使用的前一天配好， 4 ℃过夜备用），置 37℃ 1.5 h； 
10.2.3  酶标板洗 3次，每次 3 min后，加入底物溶液，每孔 100 L，37 ℃ 30 min； 
10.2.4  用1 mol/L硫酸溶液终止反应，每孔 50 L，于450 nm处测定吸光度值。  
11 分析结果的表述  
按式（ 2）计算：  
                               
mDVVmc１
２１1  …………………………………… （2） 
式中：  
c—— T-2浓度，单位为纳克每克（ ng/g）； 
m1 ——酶标板上所测得的 T-2毒素的量 （ng），根据标准曲线求得，单位为纳克（ ng）； 
V1——试样提取液的体积，单位为毫升（ mL）； 
V2——滴加样液的体积，单位为毫升（ mL）； 
D——样液的总稀释倍数；  
m——试样质量，单位为克（ g）。 
 GB/T xxxx—xxxx 
5 第三法 间接法  
12 原理  
将已知抗原吸附在固相载体表面，洗除未吸附抗原，加入一定量抗体与待测试样（含有抗原）提
取液的混合液，竞争温育后，在固相载体表面形成抗原 -抗体复合物 。洗除多余抗体成分，然后加入酶
标记的抗球蛋自的第二抗体结合物，与吸附在固体表面的抗原 -抗体复合物相结合，再加入酶的底物。
在酶的催化作用下，底物发生降解反应，产生有色产物，通过酶标检 测仪，测出酶底物的降解量，从
而推知被测试样中的抗原量。  
13 试剂和材料  
除非另有说明，本方法所用试剂均为分析纯，水为符合 GB/T 6682 中规定的 一级水。 
13.1 试剂  
13.1.1 甲醇（CH 3OH）。 
13.1.2 石油醚 60 ℃～90 ℃或30 ℃～60 ℃。 
13.1.3 三氯甲烷（ CHCl 3）。 
13.1.4 无水乙醇 （C2H6O）。 
13.1.5 乙酸乙酯 （C4H8O2）。 
13.1.6 二甲基甲酰胺 （C3H7NO）。 
13.1.7 四甲基联苯胺 （TMB）。 
13.1.8 吐温 -20。 
13.1.9 30％过氧化氢 （H2O2）。 
13.1.10 抗体：杂交瘤细胞系 1 D7产生的抗 T-2毒素的特异性单克隆抗体。  
13.1.11 抗原： T-2毒素与载体蛋白 -牛血清白蛋白（ BSA）的结合物。  
13.1.12 兔抗鼠免疫球蛋白与辣根过氧化酶的结合物（酶标二抗） 。  
13.2 试剂配制  
13.2.1包被缓冲液为 pH 9.6的碳酸盐缓冲液 ,称取 1.59 g 碳酸钠 （ Na2CO 3）, 2.93 g 碳酸氢钠（NaHCO 3），
加水稀释至 1 000 mL 。 
13.2.2 洗液为含 0.05％吐温 -20的pH 7.4的磷酸盐缓冲液（简称为 PBS-T）。配制方法为：  
    称取 0.2 g磷酸二氢钾（ KH 2PO 4），2.9 g磷酸氢二钠 （Na2HPO 4· 12H 2O），8.0 g 氯化钠（ NaCl），0.2 
g氯化钾（ KCl），0.5 mL吐温 -20，加水至 1 000 mL 。 
13.2.3 底物缓冲液为 pH5.0的磷酸 -柠檬酸缓冲液，配制方法为：  
    0.1mol/L柠檬酸（C6H8O7·H2O） ，即称取柠檬酸 19.2 g ，加水至 1 000 mL，为甲液；  
    0.2mo l/L磷酸氢二钠（ Na2HPO 4），即称取磷酸氢二钠 71.7 g ，加水至 100 mL ，为乙液 ；取甲液
24.3 mL，乙液 25.7 mL，加水至 100 mL，即可。  
13.2.4 底物溶液 :取50 L TMB（10mg TMB 溶于 1 mL二甲基甲酰胺中）溶液 +10 mL底物缓冲液 +10 L 
30％过氧化氢，混匀。  
13.3 标准溶液 配制  
13.3.1 T-2毒素标准储备液： 用甲醇将T-2毒素配成 1 mg/mL作为标准 贮备液， -20 ℃冰箱贮存。  
13.3.2 T-2毒素标准工作液： 于检测当天，精密吸取 贮备液，用 20%甲醇的 PBS（配制方法同 PBS-T，不
加吐温 -20即可）稀释成制备标准曲线的所需浓度。  GB/T xxxx—xxxx 
6 14 仪器和设备  
所有玻璃器皿均用硫酸洗液浸泡，用自来水、蒸馏水冲洗。  
14.1 酶标检测仪。  
14.2 酶标板（ 40孔或 96孔） 。  
14.3 电动振荡器。  
14.4 电热恒温水浴锅。  
14.5 具0.2 mL尾管的 10 mL小浓缩瓶  
15 分析步骤  
15.1 提取  
    称取 20 g粉碎并通过 20目筛的试样， 置 200 mL具塞锥形烧瓶中， 加 8 mL水和 100 mL三氯甲烷 -无水
乙醇（4+1），密塞，振荡 1 h，通过滤纸过滤，取 25 mL滤液于蒸发皿中，置 90 ℃水浴上通风挥干。
用50 mL石油醚分次溶解蒸发皿中残渣，洗入 250 ml,分液漏斗中，再用 20 mL甲醇 -水（4+1）分次洗涤，
转入同一分液漏斗中，振摇 l.5 min，静置约 15 min，收下层甲醇 -水提取液过层析柱净化（层析柱的装
备：在层析柱下端与小管相连结处塞约 0.1 g脱脂棉，尽量塞紧，先装入 0.5 g中性氧化铝，敲平表面，
再加入 0.4 g活性碳，敲紧）。  
    将过柱后的洗脱液倒入蒸发皿中，并于水浴锅上浓缩至干，趁热加 3 mL乙酸乙酯，加热至沸，挥
干，再重复一次，最后加 3 mL乙酸乙酯，冷至室温后转入浓缩瓶中。用适量乙酸乙酯洗涤蒸发皿，并
入浓缩瓶中，将浓缩瓶置 95 ℃水浴锅上，挥干冷却后，用含 20％甲醇的 PBS定容，供 ELISA检测之用。  
15.2 ELISA检测 
15.2.1 用 T-2-BSA（4 g/mL）包被酶标板，每孔 100 L，4 ℃过夜；  
15.2.2 酶标板用 PBS-T洗3次，每次 3 min后，加入不同浓度的 T-2标准溶液（制作标准曲线）或试样提
取液（检测试样中的毒素含量）与抗体溶液的混合液（ 1+1，每孔 100 L，该混合液应于 使用的前一天
配好， 4 ℃过夜备用），置 37 ℃ 1 h； 
15.2.3 酶标板洗 3次，每次 3 min后，加入酶标二抗，每孔 100 L，37 ℃ l.5 h； 
15.2.4 同上述洗涤后，加入底物溶液，每孔 100 L，37 ℃ 30 min;  
15.2.5 用1 mol/L硫酸溶液终止反应，每孔 50 L，于450 nm处测定吸光度值。  
16 分析结果的表述  
按式（ 3）计算：  
                               
mDVVmc１
２１1  ………………………………… …（3） 
式中：  
c—— T-2浓度，单位为纳克每克（ ng/g）； 
m1 ——酶标板上所测得的 T-2毒素的量 （ng），根据标准曲线求得，单位为纳克（ ng）； 
V1——试样提取液的体积，单位为毫升（ mL）； 
V2——滴加样液的体积，单位为毫升（ mL）； 
D——样液的总稀释倍数；  
m——试样质量，单位为克（ g）。 
 GB/T xxxx—xxxx 
7 第四法  免疫亲和层析净化高效液相色谱法  
17 原理  
用提取液提取试样中的 T-2毒素，经免疫亲和柱净化、 1-蒽腈衍生化后，用高效液相色谱荧光检测
器测定，外标法定量。  
18 试剂和材料  
除非另有说明，本方法所用试剂均 为分析纯，水为 GB/T 6682 规定的一级水。  
18.1 试剂 
18.1.1 甲醇（CH3OH）：色谱纯。  
18.1.2 乙腈（CH 3CN）：色谱纯。  
18.2 试剂配制  
18.2.1 提取液：甲醇 +水（ 80+20）。 
18.2.2 4-二甲基氨基吡啶（ DMAP）溶液： 0.325  g/L。准确称取 0.0325  g 4-二甲基氨基吡啶，用甲苯溶
解并定容至 100 mL。 
18.2.3 1-蒽腈（ 1-anthroylnitrile ，1-AN）溶液：0.3 g/L。称取 0.030  g 1-蒽腈于 100 mL 容量瓶中，用甲
苯溶解并定容至 100 mL。 
18.3 标准品  
T-2毒素标准品：纯度 ≥98%。 
18.4 标准溶液配制  
18.4.1 T-2毒素标准储备液：准确称取一定量的 T-2毒素标准品，用乙腈配成浓度为 0.1mg/mL 的标准储
备液， -20 ℃冰箱中避光保存，可使用 3个月。  
18.4.2 T-2毒素标准工作液：根据使用需要，准确吸取一定量的 T-2 毒素标准储备液，用乙腈稀释，分
别配成相当于 5 ng/mL、10 ng/mL 、50 ng/mL 、100 ng/mL 、200 ng/mL 的标准工作液， 4 ℃保存，可使
用7d。 
18.5 材料  
18.5.1 T-2 毒素免疫亲和柱。  
18.5.2 玻璃纤维滤纸：直径 11 cm，孔径 1.5 m，无荧光特性。  
19 仪器和设备  
19.1 天平：感量 0.001  g。 
19.2 液相色谱仪：配有荧光检测器。  
19.3 高速万能粉碎机 :转速 10 000 r/min 。 
19.4 均质器：转速大于 10 000 r/min 。 
19.5 涡旋混合器。  
19.6 玻璃注射器： 10 mL。 
19.7 氮气吹干仪。  
19.8 试验筛： 1 mm孔径。  
19.9 空气压力泵。  GB/T xxxx—xxxx 
8 19.10 超声波发生器 ：功率大于 180 W。 
20 分析步骤  
20.1 试样的制备与提取   
20.1.1 粮食和粮食制品：将样品研磨，硬质的粮食等用高速万能粉碎机磨细并通过试验筛（ 19.8），
不要磨成粉末。称取 25 g（精确到 0.01 g）磨碎的试样与容量瓶中，用提取液（ 18.2.1）定容至100.0  mL，
混匀，转移至均质杯中，高速均质 2 min。定量滤纸过滤，移取 10.0 mL滤液于 50 mL容量瓶中，加水定
容至刻度，混匀，用玻璃纤维滤纸过滤至滤液澄清，收集滤液 A于干净的容器中。  
20.1.2 酒类：取脱气酒类试样 （含二氧化碳的酒 类样品试用前先置于 4 ℃冰箱冷藏 30 min，过滤或超
声脱气）或其他不含二氧化碳的酒类试样 20 g（精确到 0.01 g）于 50 mL容量瓶中，用甲醇定容至刻度，
混匀，定量滤纸过滤，移取 10.0 mL滤液于 50 mL 容量瓶中，加水定容至刻度，混匀，用玻璃纤维滤
纸过滤至滤液澄清，收集滤液 B于干净的容器中。  
20.1.3 酱油、醋、酱及酱制品：称取 25 g（精确到 0.01 g）混匀的试样，用甲醇定容至 50.0 mL,超声提
取10 min，定量滤纸过滤，移取 10.0 mL滤液于 50 mL 容量瓶中，加水定容至刻度 ，混匀，用玻璃纤维
滤纸过滤至滤液澄清，收集滤液 C于干净的容器中。  
20.2 净化 
将免疫亲和柱连接于玻璃注射器（ 19.6）下，准确移取 20.1中的滤液  A 或 B 或 C 10.0  mL，注
入玻璃注射器中。将空气压力泵与玻璃注射器相连接，调节压力，使溶液以约 1 滴/s的流速通过免疫
亲和柱，直至空气进入亲和柱中。再用 10 mL水淋洗免疫亲和柱，流速约为 1 滴/s～2 滴/s，直至空气
进入亲和柱中，弃去全部流出液，抽干小柱。  
20.3 洗脱 
准确加入 1.0 mL甲醇洗脱，流速约为 1 滴/s，收集全部洗脱液 D于干净的玻璃试管中。  
20.4 衍生  
20.4.1 T-2毒素标准工作液的衍生：取不同浓度的 T-2毒素标准工作液各 1 mL,在50 ℃下用氮气吹干，加
入50 L 4-二甲基氨基吡啶（ DMAP）溶液（ 18.2.2）和 50 L 1-蒽腈（ 1-AN）溶液（ 18.2.3），在涡旋
混合器上混匀 1 min，50 ℃反应 15 min，在冰水中冷却 10 min后取出， 50 ℃下氮气吹干，用 1.0 mL流动
相（ 20.5）溶解， HPLC测定。  
20.4.2 样品的衍生：将洗脱液 D在50 ℃下用氮气吹干，按 20.4.1步骤进行 。 
20.5 高效液相色谱参考条件  
a） 色谱柱：  C18柱， 5 m，150 mm× 4.6  mm或相当者；  
b） 流动相：乙腈 +水（ 75+25）；  
c） 流速： 1.0 mL/min； 
d） 柱温： 35 ℃； 
e） 进样量： 20 L； 
f） 检测波长：激发波长 381 nm，发射波长 470 nm。 
20.6 定量测定  
以T-2毒素标准工作液浓度为横坐标，以锋面积积分值为纵坐标，绘制标准工作曲线，用标准工作
曲线对试样进行定量，标准工作溶液和试样溶液中 T-2毒素的相应值均应该在仪器检测线性范围内。在
上述色谱条件下， T-2毒素标准品色谱图参见 B.1。 
20.7 空白试验  GB/T xxxx—xxxx 
9 除不加试样外，空白试验应与测定平行进行，并采用相同的分析步骤。  
20.8 平行试验  
按以上步骤，对同一试样进行平行试验测定。  
21 结果计算  
试样中 T-2毒素的含量按式（ 4）计算：  
                             
fmV ccX010001000 ) (1  …………………………………… （4） 
式中：  
X——  试样中 T-2毒素的含量， 单位为微克每千克 （g/kg）； 
c1 ——  试样溶液中 T-2毒素的浓度， 单位为纳克每毫升 （ng/mL）； 
c2——空白试样溶液中 T-2毒素的浓度， 单位为纳克每毫升 （ng/mL）; 
V——衍生化后甲醇定容体积，单位为毫升（ mL）； 
m——试样的质量，单位为克（ g）。 
f——稀释倍数；  
结果检测以两测定值的算术平均值表示。计算结果表示到小数点后 1位。  
 
 GB/T xxxx—xxxx 
10 附  录 A 
    （资料性附录）  
第一法中 T-2标准品的液相色谱图  
 
图 A.1 T -2标准品的液相色谱图  
 
 
 
 
 GB/T xxxx—xxxx 
11 附  录 B 
    （资料性附录）  
第四法中 T-2标准品的液相色谱图  
 
图 B.1 T -2标准品的液相色谱图