Red PARF Documento Técnico Nº 11
Red Panamericana de Armonización  
de la Reglamentación Farmacéutica
Grupo de Trabajo en Buenas Prácticas de Laboratorio
Buenas prácticas de la OMS  
para laboratorios de microbiología 
farmacéutica
Traducido de: World Health Organization. Annex 2: WHO good practices  
for pharmaceutical microbiology laboratories. En: WHO Expert Committee  
on Specifications for Pharmaceutical Preparations: forty-fifth report.  
Geneva: World Health Organization; 2011. (WHO technical report series; 961).
 Red PARF Documento Técnico Nº 11  Buenas prácticas de la OMS para laboratorios de microbiología farmacéutica
Red PARF Documento Técnico Nº 11 
Red Panamericana de Armonización 
de la Reglamentación Farmacéutica
Grupo de Trabajo en Buenas Prácticas de Laboratorio
Buenas prácticas de la OMS  para laboratorios de microbiología farmacéutica
Traducido de: World Health Organization. Annex 2: WHO good practices  
for pharmaceutical microbiology laboratories. En: WHO Expert Committee  
on Specifications for Pharmaceutical Preparations: forty-fifth report.  
Geneva: World Health Organization; 2011. (WHO technical report series; 961).
Washington, DCEnero de 2013
Edición original en inglés: Annex 2: WHO good practices for pharmaceutical microbiology laboratories. En: WHO Expert Committee 
on Specifications for Pharmaceutical Preparations: forty-fifth report. Geneva: World Health Organization; 2011. (WHO technical report 
series; 961). © World Health Organization, 2011
Organización Mundial de la Salud
Buenas prácticas de la OMS para laboratorios d e microbiología farmacéutica. Washington, DC: OPS, 2012. (Red PARF Documento 
Técnico Nº 11).
©Organización Mundial de la Salud, 2013. Todos los derechos reservados.
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la Salud podrá ser considerada responsable de daño alguno causado por su utilización.iii
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaÍndice
Antecedentes ................................................................................................................................ v
Introducción y alcance del documento  ....................................................................................... vii
Glosario  ....................................................................................................................................... ix
Buenas prácticas de la OMS para laboratorios de microbiología farmacéutica  ........................... 1
1. Personal  ............................................................................................................................ 1
2. Medio ambiente  ................................................................................................................ 2
3. Validación de métodos de ensayo  .................................................................................... 5
4. Equipamiento  .................................................................................................................... 5
5. Reactivos y medios de cultivo  .......................................................................................... 9
6. Materiales de referencia y cultivos de referencia  ........................................................... 11
7.  Muestreo  ......................................................................................................................... 12
8. Manejo e identificación de muestras  .............................................................................. 13
9. Eliminación de residuos contaminados  ......................................................................... 14
10. Garantía de calidad de resultados y control de calidad de desempeño  ......................... 14
11. Procedimientos de ensayos  ............................................................................................ 14
12. Informes de ensayos  ...................................................................................................... 14
Referencias  .......................................................................................................................... 15
Apéndice 1:  
Ejemplos de zonas en las que se podrían realizar las operaciones  .......................................... 17
Apéndice 2:  
Ejemplos de mantenimiento de equipos ..................................................................................... 19
Apéndice 3:  
Ejemplos de chequeos e intervalos de calibración para diferentes equipos de laboratorio  ....... 21
Apéndice 4:  
Ejemplos de calificación y monitoreo de equipos  ....................................................................... 23
Apéndice 5:  
Uso general de cultivos de referencia  ........................................................................................ 25v
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaAntecedentes
El Comité de Expertos sobre Especificaciones para Productos Farmacéuticos de la OMS 
adoptó en 2009 una versión revisada de las Buenas prácticas para laboratorios de control de 
calidad de productos farmacéuticos  (1).
Durante las inspecciones realizadas para la precalificación de laboratorios, los inspectores 
habían observado que algunos de los textos de estas guías podrían beneficiarse de lineamientos 
adicionales, con especial énfasis en microbiología.
En consecuencia, el Comité de Expertos recomendó que el Secretariado de la OMS iniciara 
el proceso de desarrollo de un nuevo texto sobre buenas prácticas para laboratorios de micro -
biología farmacéutica.
Se propone el siguiente texto para cubrir este tipo específico de laboratorio.vii
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaIntroducción y alcance del documento
Los laboratorios de microbiología farmacéutica pueden involucrarse en:
 ■ensayos de esterilidad;
 ■detección, aislamiento, recuento e identificación de microorganismos (bacterias, levadu -
ras y hongos filamentosos) y pruebas de endotoxinas bacterianas en diferentes materia -
les (ej. materias primas, agua), productos, superficies, vestimentas y el medio ambiente, y
 ■valoraciones usando microorganismos como parte del sistema de pruebas. 
Estas guías están destinadas a todos los laboratorios microbiológicos implicados en las acti -
vidades mencionadas anteriormente, sean ellos laboratorios independientes o un departamento 
o unidad dentro de un laboratorio de fabricación de productos farmacéuticos.
Estas guías están basadas, y suplementan los requisitos descritos, en Buenas prácticas para 
laboratorios de control de calidad de productos farmacéuticos  (1); Guías generales para el es -
tablecimiento, mantenimiento y distribución de sustancias químicas de referencia. Revisión  (2); 
Farmacopea Internacional, Cuarta Edición  (3); Primer Suplemento de la Farmacopea Internacio -
nal, Cuarta Edición  (4); y la Norma ISO/IEC 17025  (5).ix
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaGlosario
calibración
Conjunto de operaciones que establecen, bajo condiciones especificadas, la relación entre los 
valores indicados por un instrumento o sistema de medición (especialmente de pesada), registro 
y control, o los valores representados por una medición, y los correspondientes valores conoci -
dos de un estándar de referencia. Se deben establecer límites de aceptación de los resultados 
de la medición.
cepas de referencia
Microorganismos definidos al menos a nivel de género y especie, catalogados y descritos de 
acuerdo a sus características e indicando preferiblemente su origen (6). Se obtienen normalmen -
te de una colección nacional o internacional reconocida.
cultivos de referencia
Término colectivo para la cepa de referencia y los stocks de referencia.
cultivo de trabajo
Subcultivo primario de un stock de referencia ( 6).
especificidad (selectividad)
Capacidad del método para detectar la gama requerida de microorganismos que podrían estar 
presentes en la muestra. 
límite de cuantificación
Aplicado a ensayos microbiológicos cuantitativos. Número más bajo de microorganismos, dentro 
de una variabilidad definida, que se pueden contar bajo las condiciones experimentales del mé -
todo en evaluación.
límite de detección
Número más bajo de microorganismos que se pueden detectar, pero en cantidades que no pue -
den estimarse exactamente.
material de referencia
Material suficientemente homogéneo y estable con relación a una o más propiedades especifica -
das, el cual se ha establecido que es apto para el uso previsto en un proceso de medición. 
material de referencia certificado
Material de referencia, caracterizado por un procedimiento metrológicamente válido para una o 
más propiedades especificadas, acompañado por un certificado que proporciona el valor de la 
propiedad especificada, su incertidumbre asociada y una declaración de trazabilidad metrológica.
método de referencia
Método que ha sido validado como apto para su uso, contra el cual se puede comparar un mé -
todo alternativo.x
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11precisión
Grado de concordancia entre los resultados individuales.
repetibilidad
Grado de concordancia entre los resultados de mediciones sucesivas de la misma medida y bajo 
las mismas condiciones de medición (adaptado de ISO).
reproducibilidad
La reproducibilidad expresa la precisión entre laboratorios.
robustez
Capacidad del procedimiento para proporcionar resultados analíticos de exactitud y precisión 
aceptables bajo una variedad de condiciones.
sensibilidad
Fracción del número total de cultivos o colonias positivos que son correctamente asignados en 
una presunta inspección ( 7).
stocks de referencia
Conjunto de cultivos individuales idénticos obtenidos por medio de un único subcultivo de una 
cepa de referencia ( 6).
validación
Acción de demostrar, de acuerdo con los principios de las guías y regulaciones de buenas prác -
ticas de calidad (BPx, o GxP por sus siglas en inglés) que un procedimiento, proceso, equipo 
(incluyendo el software o hardware usado), material, actividad o sistema conduce en forma real 
y consistente a los resultados esperados.
verificación
Aplicación de métodos, procedimientos, ensayos y otras evaluaciones, además del monitoreo, 
para determinar el cumplimiento con los principios de BPx.1
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaBuenas prácticas de la OMS para  
laboratorios de microbiología farmacéutica
1. Personal
1.1  Los ensayos microbiológicos deben ser realizados y supervisados por una persona 
experimentada, calificada en microbiología o su equivalente. El personal debe tener 
entrenamiento básico en microbiología y experiencia práctica relevante antes de ser 
autorizado a realizar el trabajo que implican los ensayos microbiológicos.
1.2  Se deben mantener descripciones de los puestos de trabajo vigentes para todo el 
personal involucrado en ensayos y/o calibraciones, validaciones y verificaciones. El 
laboratorio también debe mantener registros de todo el personal técnico, describien -
do sus áreas de competencia, entrenamiento y experiencia.
1.3  Si el laboratorio incluye opiniones e interpretaciones de los resultados de los ensa -
yos en los informes, estos deben ser hechos por personal autorizado con experien -
cia adecuada y conocimientos relevantes de la aplicación específica incluyendo, por 
ejemplo, requisitos regulatorios y tecnológicos y criterios de aceptación.
1.4  La gerencia del laboratorio debe asegurar que todo el personal haya recibido un en -
trenamiento adecuado para la ejecución competente de los ensayos y el manejo de 
los equipos. Esto debe incluir entrenamiento en técnicas básicas, ej. vertido de medio 
de cultivo en placas, recuento de colonias, técnica aséptica, preparación de medios, 
dilución en serie y técnicas básicas de identificación, determinando la aceptabilidad 
con criterios objetivos cuando sea relevante. El personal solo puede realizar ensayos 
de muestras si se ha reconocido su competencia para realizar dichos ensayos o los 
realizan bajo supervisión adecuada. Se debe monitorear la competencia de manera 
continua con la previsión de un reentrenamiento, cuando sea necesario. Cuando un 
método o técnica no se usa regularmente, se debe verificar la competencia del perso -
nal para realizar dicho ensayo antes de llevarlo a cabo. En algunos casos es acepta -
ble relacionar la competencia a una técnica general o instrumento en uso en lugar de 
relacionarla a métodos particulares.
1.5  El personal debe estar entrenado en los procedimientos necesarios para la conten -
ción de microorganismos dentro de las instalaciones del laboratorio.
1.6 El personal debe estar entrenado en el manejo seguro de microorganismos.2
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 112. Medio ambiente
2.1 Dependencias
2.1.1 Los laboratorios microbiológicos y algunos equipos de apoyo (ej. autoclaves 
y material de vidrio) deben ser de dedicación exclusiva y estar separados de 
otras áreas, especialmente de las áreas de producción.
2.1.2  Los laboratorios microbiológicos deben estar diseñados para adaptarse a las 
operaciones que se llevan a cabo en los mismos. Debe haber espacio sufi -
ciente para todas las actividades de manera tal de evitar confusiones, conta -
minación y contaminación cruzada. Debe haber espacio suficiente y adecuado 
para las muestras, microorganismos de referencia, medios (con enfriamiento, 
si fuera necesario), ensayos y registros. Debido a la naturaleza de algunos 
materiales (ej. medios de cultivo estériles vs. microorganismos de referencia 
o cultivos incubados), puede ser necesario disponer de lugares de almacena -
miento separados.
2.1.3  Los laboratorios deben diseñarse adecuadamente y debe tenerse en cuenta la 
aptitud de los materiales de construcción para permitir una adecuada limpieza 
y desinfección y minimizar el riesgo de contaminación.
2.1.4  Los suministros de aire para los laboratorios y para las áreas de producción 
deben estar separados. Los laboratorios de microbiología deben contar con 
unidades de manejo de aire separadas y otras provisiones, incluyendo con -
troles de temperatura y humedad cuando se requieran. El aire suministrado al 
laboratorio debe ser de calidad adecuada y no debe representar una fuente de 
contaminación.
2.1.5 El acceso al laboratorio de microbiología debe estar restringido al personal 
autorizado. El personal debe estar al tanto de:
 ■los procedimientos adecuados de ingreso y salida, incluyendo la vestimenta;
 ■el uso previsto de un área determinada;
 ■las restricciones impuestas al trabajo dentro de tales áreas;
 ■las razones por las cuales se imponen tales restricciones, y
 ■los niveles apropiados de contención.
2.1.6  Las actividades del laboratorio, tales como la preparación de la muestra, la 
preparación de medios de cultivo y de equipos y el recuento de microorganis -
mos, deben estar segregadas en espacios diferentes o al menos por tiempos, 
con la finalidad de minimizar el riesgo de contaminación cruzada y los resulta -
dos falsos positivos o falsos negativos. Cuando se utilizan áreas no dedicadas 
se deben aplicar los principios de la gestión de riesgos. El ensayo de esterili -
dad siempre debe realizarse en un área de dedicación exclusiva.
2.1.7 Se debe considerar el diseño de áreas clasificadas que sean adecuadas para 
las operaciones a desarrollar dentro del laboratorio de microbiología. La clasi -3
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaficación se debe basar en la criticidad del producto y la operación a llevarse a 
cabo en el área. El ensayo de esterilidad debe realizarse en la misma clase de 
área usada para las operaciones de fabricación estéril/aséptica de productos. 
El Apéndice 1 presenta recomendaciones para la clasificación de zonas.
2.1.8  En general, los equipos de laboratorio no deben moverse rutinariamente en -
tre áreas de diferente clase de limpieza para evitar la contaminación cruzada 
accidental. Los equipos de laboratorio utilizados en el laboratorio de microbio -
logía no deben usarse fuera del área de microbiología, a menos que existan 
precauciones específicas para prevenir la contaminación cruzada.
2.2 Monitoreo ambiental en el laboratorio
2.2.1 Cuando sea necesario y apropiado (ej. en áreas para ensayos de esterilidad) 
debe establecerse un programa de monitoreo ambiental que cubra, por ejem -
plo, el uso de monitoreo de aire activo, placas de sedimentación o placas de 
contacto, diferenciales de presión y temperatura. Se deben definir límites de 
alerta y de acción. Debe realizarse un análisis de tendencia de los resultados 
del monitoreo ambiental.
2.3  Limpieza, desinfección e higiene
2.3.1 Se debe contar con un programa documentado de limpieza y  desinfección. 
Cuando sea relevante, se deben considerar los resultados del monitoreo am -
biental.
2.3.2  Se debe contar con un procedimiento para el manejo de derrames.
2.3.3 Se debe disponer de instalaciones adecuadas para lavado y desinfección de 
manos.
2.4 Instalaciones para el ensayo de esterilidad
2.4.1  Las instalaciones para el ensayo de esterilidad tienen requisitos ambientales 
específicos para asegurar la integridad de los ensayos realizados. Las Bue -
nas prácticas de fabricación (BPF) de la OMS para productos farmacéuticos 
estériles ( 8) requieren la ejecución del ensayo de esterilidad y especifican los 
requisitos para el mismo. Esta sección detalla los requisitos de cuarto limpio 
para una instalación de ensayo de esterilidad. 
2.4.2 El ensayo de esterilidad se debe realizar bajo condiciones asépticas, las cua -
les deben ser equivalentes a las normas de calidad de aire requeridas para la 
fabricación aséptica de productos farmacéuticos. Las dependencias, servicios 
y equipos deben estar sujetos a un proceso de calificación apropiado.
2.4.3 El ensayo de esterilidad se debe llevar a cabo dentro de una zona protegida 
con flujo de aire unidireccional de Grado A o una cabina de bioseguridad (si se 
justifica), que debe localizarse dentro de un cuarto limpio con un entorno de 
Grado B. Alternativamente, el ensayo puede realizarse dentro de un aislador. 4
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11Se debe tener cuidado con el diseño de las instalaciones y los patrones de 
flujo de aire de los ambientes, para asegurar que el flujo de aire unidireccional 
no sea perturbado.
2.4.4 La clasificación de cuartos limpios y los equipos de manejo de aire de las 
instalaciones para ensayos de esterilidad deben recalificarse por lo menos 
una vez al año por una persona o contratista competente. El ambiente debe 
cumplir con los límites de partículas no viables y viables y se debe realizar la 
verificación de la integridad de los filtros de partículas de aire de alta eficiencia 
(HEPA, por sus siglas en inglés). No obstante, se puede justificar una fre -
cuencia alternativa de monitoreo basada en la gestión de riesgos de calidad 
(QRM, por sus siglas en inglés). Se debe documentar el mapeo de los puntos 
de muestreo para el monitoreo rutinario, así como el tiempo de exposición, y 
debe especificarse en procedimientos escritos la frecuencia de todos los tipos 
de monitoreo microbiológico ambiental.
2.4.5  El aire suministrado a las zonas de Grado A y B debe filtrarse a través de filtros 
HEPA terminales.
2.4.6  Deben proveerse alarmas apropiadas del flujo de aire, diferenciales de pre -
sión e instrumentos indicadores [BPF: Sistemas de calentamiento, ventilación 
y aire acondicionado para formas farmacéuticas no estériles ( 8); y BPF para 
productos farmacéuticos estériles ( 8)]. 
2.4.7  Se deben tomar y registrar las lecturas de presión en los cuartos desde medi -
dores externos a menos que sea instalado un sistema de monitoreo continuo 
validado. Como mínimo, se deben tomar las lecturas antes de que ingrese 
el operador al cuarto del ensayo. El medidor de presión se debe rotular para 
indicar el área en servicio y las especificaciones aceptables.
2.4.8  El ingreso al cuarto limpio debe realizarse a través de un sistema de exclusas 
y un vestuario donde se requiere que los operadores se pongan vestimenta 
de cuarto limpio. El último vestuario debe tener en condiciones “de reposo” el 
mismo grado de limpieza que el cuarto de ensayo al que comunica. Los ves -
tuarios deben ser de tamaño adecuado para facilitar el cambio de vestimenta. 
Debe haber una clara demarcación de las diferentes zonas.
2.4.9  La vestimenta para el operador del ensayo de esterilidad debe cumplir con los 
principios de la sección 10 de las BPF de la OMS para productos farmacéuti -
cos estériles ( 8). Los operadores deben estar entrenados y certificados en los 
procedimientos de vestimenta y se deben mantener los registros del entrena -
miento.
2.4.10 Los accesorios y acabados de las dependencias deben cumplir con la sección 
11 de las BPF de la OMS para productos farmacéuticos estériles ( 8).
2.4.11 El monitoreo microbiológico ambiental debe reflejar la instalación utilizada 
(cuarto o aislador) e incluir una combinación de métodos de muestreo de aire 
y superficie apropiados para la instalación, como por ejemplo:5
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéutica ■muestreo de aire activo;
 ■placas de sedimentación (exposición);
 ■superficie de contacto 
 ■placas RODAC para detección y recuento de microorganismos, hisopos o 
películas flexibles, e
 ■impresiones de los guantes del operador.
El monitoreo microbiológico ambiental de la zona del ensayo de esterilidad se 
debe realizar durante cada sesión de trabajo bajo las condiciones operativas 
(dinámicas).
Se debe contar con especificaciones escritas, incluyendo límites de alerta y 
acción apropiados para la contaminación microbiana. Los límites para el mo -
nitoreo microbiológico ambiental se presentan en las BPF de la OMS para 
productos farmacéuticos estériles ( 8). 
3. Validación de métodos de ensayo
3.1  Los métodos de ensayo estándares (farmacopeicos) se consideran validados. Sin 
embargo, se necesita demostrar que el método de ensayo específico a ser utilizado 
por un determinado laboratorio para el análisis de un producto dado es adecuado 
para su uso en la recuperación de bacterias, levaduras y hongos filamentosos en 
presencia del producto específico. El laboratorio debe demostrar que los criterios de 
desempeño del método de ensayo estándar pueden ser satisfechos por el laboratorio 
antes de introducir el ensayo como ensayo de rutina (verificación del método) y que el 
método de ensayo específico para un producto dado es adecuado (aptitud del método 
de ensayo incluyendo controles positivos y negativos).
3.2  Los métodos de ensayo que no se basan en las farmacopeas u otras referencias 
reconocidas deben ser validados antes de su uso. La validación debe incluir, cuando 
sea apropiado, determinación de la exactitud, precisión, especificidad, límite de de -
tección, límite de cuantificación, linealidad y robustez. Los potenciales efectos inhibi -
torios de la muestra deben tomarse en cuenta al analizar diferentes tipos de muestra. 
Los resultados deben evaluarse con métodos estadísticos apropiados, ej. los descri -
tos en las farmacopeas nacionales, regionales o internacionales.
4. Equipamiento
Cada equipo, instrumento u otro dispositivo utilizado para el análisis, verificación y calibra -
ción debe identificarse individualmente.
Como parte de su sistema de calidad, el laboratorio debe tener un programa documentado 
para la calificación, calibración, verificación del desempeño y mantenimiento de sus equi -
pos y un sistema para el monitoreo del uso de los mismos.
4.1 Mantenimiento de equipos6
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 114.1.1 El mantenimiento de los equipos esenciales debe llevarse a cabo en interva -
los predeterminados de acuerdo con un procedimiento documentado. Deben 
mantenerse registros detallados. (Para ejemplos de mantenimiento de equi -
pos y de intervalos, ver Apéndice 2).
4.2 Calificación
4.2.1  Para la calificación de los equipos ver las secciones 8 y 12 de Buenas prácti -
cas para los laboratorios de control de calidad de productos farmacéuticos ( 1).
4.3 Calibración, verificación de desempeño y monitoreo de uso
4.3.1  La fecha de calibración y mantenimiento y la fecha en que debe realizarse la 
recalibración deben indicarse claramente en una etiqueta adherida al instru -
mento.
4.3.2  La frecuencia de calibración y verificación de desempeño se determinará por 
la experiencia documentada y se basará en la necesidad, el tipo y el desem -
peño previo del equipo. Los intervalos entre la calibración y verificación deben 
ser más cortos que el tiempo en el que el equipo ha demostrado desviarse de 
los límites aceptables. (Para ejemplos de chequeos e intervalos de calibración 
para los diferentes equipos de laboratorio, ver el Apéndice 3; y para califica -
ción y monitoreo de equipos, ver el Apéndice 4). El desempeño de los equipos 
debe ajustarse a criterios de aceptación predefinidos.
4.3.3  Dispositivos de medición de temperatura
4.3.3.1 Cuando la temperatura tiene un efecto directo sobre el resultado de 
un análisis o es crítica para el correcto funcionamiento de los equi -
pos, los dispositivos de medición de temperatura deben ser de la ca -
lidad apropiada para alcanzar la exactitud requerida (ej. termómetros 
de líquido en vidrio, termocuplas y termómetros de resistencia de 
platino (TRP) empleados en las incubadoras y autoclaves).
4.3.3.2 La calibración de los dispositivos debe ser trazable a estándares de 
temperatura nacionales o internacionales.
4.3.4 Incubadoras, baños de agua y hornos
La estabilidad de la temperatura, la uniformidad de la distribución de la tempe -
ratura y el tiempo necesario para alcanzar condiciones de equilibrio en las in -
cubadoras, baños de agua, hornos y cuartos de temperatura controlada deben 
establecerse inicialmente y documentarse, en particular para los usos habitua -
les (por ejemplo, posición y altura de las pilas de placas de Petri y el espacio 
libre entre las mismas). La constancia de las características registradas duran -
te la validación inicial del equipo debe chequearse y registrarse después de 
cada reparación o modificación significativa. La temperatura de operación de 
estos equipos debe monitorearse y registrarse. Se debe considerar el uso de 
los equipos al determinar cuáles son los controles de temperatura requeridos.7
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéutica4.3.5 Autoclaves, incluidos los preparadores de medios
4.3.5.1 Los autoclaves deben poder cumplir con las tolerancias de tiempo y 
temperatura especificadas; el monitoreo exclusivo de la presión no 
es aceptable. Los sensores utilizados para controlar o monitorear los 
ciclos operativos requieren calibración y el desempeño de los tempo -
rizadores debe verificarse.
4.3.5.2 La validación inicial debe incluir estudios de desempeño (distribución 
espacial de la temperatura) para cada ciclo operativo y cada confi -
guración de carga usada en la práctica. Se debe repetir este proce -
so después de cualquier reparación o modificación significativa (ej. 
reemplazo de la sonda termorreguladora o programador, cambio en 
la disposición de la carga o en el ciclo operativo) o cuando sea indi -
cado por los resultados de los controles de calidad en los medios o 
la evaluación de riesgos. Se deben colocar sensores de temperatura 
suficientes dentro de la carga (ej. en recipientes llenos de líquido/me -
dio) para permitir demostrar las diferencias debidas a la ubicación. 
En el caso de los preparadores de medios, cuando el calentamiento 
uniforme no se pueda demostrar por otros medios, el uso de dos 
sensores, uno junto a la sonda de control y otro distante, en general, 
se considera apropiado. La validación y revalidación deben consi -
derar la pertinencia de los tiempos de ascenso y descenso de las 
temperaturas así como el tiempo de permanencia a la temperatura 
de esterilización. 
4.3.5.3 Deben proporcionarse instrucciones operativas claras, basadas en 
los perfiles de calentamiento determinados para los usos habituales 
durante la validación/revalidación. Se deben establecer los criterios 
de aceptación/rechazo y mantener los registros de operación del au -
toclave, incluyendo la temperatura y el tiempo, para cada ciclo.
4.3.5.4 El monitoreo puede realizarse a través de uno de los siguientes pro -
cedimientos: 
 ■uso de una termocupla y registrador para generar un gráfico o 
impresión;
 ■observación directa y registro de la temperatura máxima alcanza -
da y el tiempo a esa temperatura.
Además de monitorear directamente la temperatura de un autoclave, 
la eficiencia de su funcionamiento durante cada ciclo se puede che -
quear por el uso de indicadores químicos o biológicos para los pro -
pósitos de esterilización o descontaminación. La cinta de autoclave 
o las tiras indicadoras deben utilizarse sólo para demostrar que una 
carga ha sido procesada, pero no para demostrar que se ha comple -
tado un ciclo aceptable.8
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11Los laboratorios deben tener un autoclave dedicado a la desconta -
minación. No obstante, en casos excepcionales, un único autoclave 
puede ser aceptable siempre que se tomen precauciones exhausti -
vas para separar las cargas de descontaminación y de esterilización, 
y se cuente con un programa de limpieza documentado que conside -
re tanto los entornos interno como externo del autoclave.
4.3.6 Pesas y balanzas 
Las pesas y balanzas deben calibrarse en forma trazable a intervalos regula -
res (de acuerdo a su uso previsto) usando las pesas estándares apropiadas, 
trazables a pesas estándares certificadas.
4.3.7 Equipo volumétrico
4.3.7.1 Los laboratorios de microbiología deben llevar a cabo la verificación 
inicial del equipo o material volumétrico (dispensadores automáticos, 
dispensadores/dilutores, pipetas mecánicas de carga manual y pipe -
tas desechables) y luego hacer chequeos regulares, según corres -
ponda, para asegurar que el equipo se desempeña dentro de las 
especificaciones requeridas. La verificación inicial no es necesaria 
para el material de vidrio que haya sido certificado para una toleran -
cia específica. El equipo volumétrico se debe chequear en cuanto a 
la exactitud del volumen entregado en función del volumen definido 
(varios volúmenes en el caso de instrumentos de volúmenes varia -
bles) y se debe medir la precisión de las entregas de volumen repe -
tidas. 
4.3.7.2 En el caso de equipos volumétricos desechables de uso único, los 
laboratorios deben obtenerlos de compañías con un sistema de cali -
dad relevante y reconocido. Después de la validación inicial de la ap -
titud de un equipo, se recomienda efectuar chequeos aleatorios de la 
exactitud del mismo. Si el proveedor no tiene un sistema de calidad 
reconocido, los laboratorios deben chequear cada lote de equipos 
para determinar su aptitud.
4.3.8 Otros equipos 
Los conductímetros, medidores de oxígeno, medidores de pH y otros instru -
mentos similares deben verificarse regularmente o antes de cada uso. Las 
soluciones amortiguadoras usadas en la verificación deben almacenarse en 
condiciones apropiadas y etiquetarse con una fecha de vencimiento.
Cuando la humedad sea importante para el resultado del ensayo, los higróme -
tros deben calibrarse, y la calibración debe ser trazable a estándares naciona -
les o internacionales.
Los temporizadores, incluyendo el temporizador del autoclave, se deben veri -
ficar usando un temporizador calibrado o la señal horaria nacional.9
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaCuando se utilizan centrífugas en los procedimientos del ensayo, se debe ha -
cer una evaluación de las revoluciones por minuto (rpm). Cuando sea crítica, 
la centrífuga debe calibrarse.
5. Reactivos y medios de cultivo 
Los laboratorios deben asegurar que la calidad de los reactivos y los medios utilizados es 
apropiada para el ensayo en cuestión.
5.1 Reactivos 
5.1.1 Los laboratorios deben verificar la aptitud de cada lote de reactivos críticos 
para el ensayo, inicialmente y durante su vida útil.
5.2   Medios 
5.2.1  Los medios pueden prepararse en el laboratorio o comprarse, ya sea parcial 
o totalmente preparados. Los proveedores de los medios deben estar apro -
bados y calificados. El proveedor calificado puede certificar algunos de los 
parámetros de calidad detallados posteriormente. La prueba de promoción del 
crecimiento y, si fueran apropiadas, otras pruebas de desempeño adecuadas 
(ver la sección 5.2.2), deben realizarse para todos los medios, en cada lote y 
en cada envío. Cuando el proveedor de medios totalmente preparados está 
calificado y provee certificación de la promoción del crecimiento para cada 
lote de medio y las condiciones de transporte han sido calificadas, el usuario 
puede confiar en el certificado del fabricante con una verificación periódica de 
sus resultados. 
5.2.2  El desempeño adecuado de los medios de cultivo, diluyentes y otros líquidos 
de suspensión se debe chequear, cuando sea relevante, en relación a: 
 ■recuperación o mantenimiento de la supervivencia de los microorganismos 
objetivo o blanco. Se debe demostrar una recuperación del 50-200% des -
pués de la inoculación de no más de 100 unidades formadoras de colonias 
(UFC o ufc);
 ■inhibición o supresión de los microorganismos diferentes al objetivo o 
blanco; 
 ■propiedades bioquímicas (diferenciales y de diagnóstico), y
 ■otras propiedades adecuadas (ej. pH, volumen y esterilidad). 
Se prefieren los procedimientos cuantitativos para la evaluación de la recupe -
ración o supervivencia.
5.2.3  Las materias primas (tanto formulaciones comerciales deshidratadas como 
componentes individuales) y los medios deben almacenarse bajo las condicio -
nes apropiadas recomendadas por el fabricante, ej. ambiente fresco, seco y 
oscuro. Todos los envases, especialmente aquellos de medios deshidratados, 10
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11deben estar herméticamente sellados. Los medios deshidratados que estén 
apelmazados o agrietados o muestren un cambio de color no deben utilizarse.
5.2.4  Para la preparación se debe usar agua de calidad microbiológica adecuada 
y libre de sustancias bactericidas, inhibidoras o interferentes, a menos que el 
método de ensayo especifique algo diferente.
5.2.5  Los medios conteniendo antimetabolitos o inhibidores se deben preparar utili -
zando material de vidrio dedicado para esos medios, debido a que el arrastre 
de estos agentes dentro de otros medios podría inhibir el crecimiento y la 
detección de microorganismos presentes en la muestra en análisis. Si no se 
emplea material de vidrio dedicado, los procedimientos de lavado para el ma -
terial de vidrio deben estar validados.
5.2.6 La distribución de los medios después de la esterilización debe realizarse bajo 
flujo de aire unidireccional (UDAF, por sus siglas en inglés) para minimizar 
la posibilidad de contaminación ambiental. Esto debe considerarse como un 
requisito mínimo para los medios que se usan en ensayos de productos esté -
riles, e incluye el enfriamiento de los medios, ya que las tapas de los envases 
necesitarán ser retiradas durante el enfriamiento para prevenir la condensa -
ción. 
5.2.7 Los medios en placa a ser irradiados pueden requerir la adición de un an -
tioxidante y secuestrador de radicales libres que protege de los efectos del 
proceso de irradiación. Los medios irradiados deben validarse mediante la 
realización de pruebas cuantitativas de promoción del crecimiento en ambos 
medios, irradiados y no irradiados. 
5.2.8 Se debe determinar y verificar el periodo de vida útil de los medios prepara -
dos, bajo condiciones definidas de almacenamiento.
5.2.9 Los lotes de los medios deben ser identificables y su conformidad con las 
especificaciones de calidad debe quedar documentada. Para los medios 
comprados, el laboratorio usuario debe asegurarse de que será notificado 
por el fabricante de cualquier cambio en las especificaciones de calidad del 
producto.
5.2.10 Los medios deben prepararse de acuerdo con todas las instrucciones del fa -
bricante, teniendo cuidadosamente en cuenta especificaciones tales como el 
tiempo y la temperatura de esterilización. 
5.2.11 Los dispositivos de microondas no deben utilizarse para la fusión de los me -
dios debido a la distribución desigual del proceso de calentamiento. 
5.3  Etiquetado 
5.3.1  Los laboratorios deben asegurar que todos los reactivos (incluidas las solucio -
nes stock o de reserva), medios, diluyentes y otros líquidos de suspensión, es -
tén adecuadamente etiquetados para indicar, según corresponda, la identidad, 
concentración, condiciones de almacenamiento, fecha de preparación, fecha 11
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticade vencimiento validada y/o períodos de almacenamiento recomendados. La 
persona responsable de la preparación se debe poder identificar a partir de los 
registros.
5.4  Reanimación de microorganismos
5.4.1 La reanimación de microorganismos es necesaria cuando las metodologías 
de ensayo pueden producir células dañadas sub-letalmente. Por ejemplo, por 
exposición a:
 ■efectos dañinos del proceso, ej. calor;
 ■agentes antimicrobianos; 
 ■conservantes;
 ■extremos de presión osmótica; y
 ■extremos de pH. 
5.4.2 La reanimación de microorganismos se puede lograr mediante:
 ■exposición a un medio líquido como una simple solución salina a tempera -
tura ambiente durante 2 horas;
 ■exposición a un medio de reparación sólido durante 4-6 horas.
6. Materiales de referencia y cultivos de referencia
6.1 Estándares internacionales y sustancias de referencia farmacopeicas
6.1.1. Los materiales de referencia y materiales de referencia certificados son gene -
ralmente usados en un laboratorio de microbiología para calificar, verificar y 
calibrar equipos.
Siempre que sea posible, estos materiales de referencia deben utilizarse en 
matrices apropiadas.
Los estándares internacionales y las sustancias de referencia farmacopeicas 
se emplean, por ejemplo, para:
 ■determinar potencia o contenido;
 ■validar métodos;
 ■comparar métodos;
 ■realizar controles positivos; y
 ■realizar las pruebas de promoción del crecimiento.
Si fuera posible, los materiales de referencia deben usarse en matrices apro -
piadas.
6.2  Cultivos de referencia
6.2.1  Los cultivos de referencia se requieren para establecer el desempeño acepta -
ble de los medios (incluidos los kits de ensayos), para validar métodos, verifi -12
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11car la aptitud de los métodos de ensayo y para determinar o evaluar el desem -
peño en curso. La trazabilidad es necesaria, por ejemplo, cuando se establece 
el desempeño de los medios para las validaciones de los métodos y kits de 
ensayos. Para demostrar la trazabilidad, los laboratorios deben utilizar cepas 
de referencia de microorganismos obtenidas directamente de una colección 
nacional o internacional reconocida, cuando éstas existan. Alternativamente, 
se pueden emplear derivados comerciales para los cuales el laboratorio ha 
demostrado la equivalencia de todas las propiedades relevantes en el punto 
de uso. 
6.2.2  Las cepas de referencia pueden ser subcultivadas una sola vez para propor -
cionar stocks de referencia. Se deben realizar chequeos de pureza y bioquí -
micos en forma paralela según correspondan. Se recomienda almacenar los 
stocks de referencia en alícuotas ya sea congeladas o liofilizadas. Los cultivos 
de trabajo para el uso rutinario deben ser subcultivos primarios de los stocks 
de referencia (ver el Apéndice 5 sobre el uso general de cultivos de referen -
cia). Si los stocks de referencia han sido descongelados, no deben volver a 
congelarse ni reutilizarse. 
6.2.3  Normalmente, los cultivos de trabajo no se deben subcultivar. Usualmente, 
no más de cinco generaciones (o pasajes) de la cepa de referencia original 
pueden ser subcultivadas si ello está definido en un método estándar o si el 
laboratorio puede proveer pruebas documentales de que no ha habido cambio 
en ninguna propiedad relevante. Derivados comerciales de las cepas de refe -
rencia sólo pueden ser usados como cultivos de trabajo.
7.  Muestreo
Para los principios generales, referirse a las Buenas prácticas para los laboratorios de con -
trol de calidad de productos farmacéuticos ( 1).
7.1  Cuando los laboratorios de ensayo son responsables del muestreo primario para ob -
tener las muestras de ensayo, es altamente recomendable que este muestreo esté 
cubierto por un sistema de garantía de calidad y sea objeto de auditorías periódicas.
7.2  Cualquier proceso de desinfección utilizado en la obtención de la muestra (ej. desin -
fección de los puntos de muestreo) no debe comprometer el nivel microbiano dentro 
de la muestra.
7.3.  El transporte y almacenamiento de las muestras deben realizarse en condiciones 
que mantengan la integridad de la muestra (ej. refrigerada o congelada, cuando co -
rresponda). Los análisis de las muestras se deben realizar lo más pronto posible 
después del muestreo. Para las muestras en las que sea posible un crecimiento en la 
población microbiana durante el transporte y el almacenamiento, se deberá demos -
trar que las condiciones de almacenamiento, el tiempo y la temperatura no afectarán 
la exactitud del resultado de los ensayos. Las condiciones de almacenamiento deben 
monitorearse y registrarse. La responsabilidad del transporte y almacenamiento entre 13
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticael muestreo y la llegada al laboratorio de ensayo debe estar claramente documenta -
da.
7.4  El muestreo debe realizarse solo por personal capacitado. Se debe llevar a cabo en 
condiciones asépticas utilizando equipos estériles. Se deben tomar las precauciones 
adecuadas para asegurar que se mantenga la integridad de la muestra, usando en -
vases estériles sellados para la recolección de las muestras cuando corresponda. 
Puede ser necesario monitorear las condiciones ambientales en el sitio de muestreo, 
por ejemplo, la contaminación del aire y la temperatura. El tiempo del muestreo se 
debe registrar, si fuese necesario.
8. Manejo e identificación de muestras
8.1 El laboratorio debe tener procedimientos que cubran la entrega y recepción de las 
muestras y la identificación de las mismas. Si la muestra es insuficiente o se encuen -
tra en malas condiciones debido al deterioro físico, temperatura incorrecta, envases 
rotos o etiquetado deficiente, el laboratorio debe consultar con el cliente antes de 
decidir si va a analizar o rechazar la muestra. 
8.2  El laboratorio debe registrar toda la información relevante, ej.
 ■fecha y, cuando sea relevante, la hora de la recepción;
 ■condición de la muestra al momento de la recepción y, cuando sea necesario, la 
temperatura; y
 ■características de la operación de muestreo (incluyendo la fecha y condiciones de 
muestreo).
8.3  Las muestras en espera de los ensayos deben almacenarse en condiciones ade -
cuadas para minimizar los cambios en cualquier población microbiana presente. Las 
condiciones de almacenamiento deben estar validadas, definidas y registradas. 
8.4  Los envases y etiquetas de las muestras pueden estar altamente contaminados y 
deben manipularse y almacenarse con cuidado a fin de evitar la propagación de la 
contaminación. Los procesos de desinfección aplicados al envase exterior no deben 
afectar la integridad de la muestra. Se debe destacar que el alcohol no es esporicida.
8.5  El submuestreo por parte del laboratorio, inmediatamente antes del ensayo, puede 
ser requerido como parte del método de ensayo. Puede ser apropiado llevarlo a cabo 
de acuerdo a normas nacionales o internacionales, cuando existan, o por métodos in -
ternos validados. Los procedimientos de submuestreo deben diseñarse para recoger 
una muestra representativa.
8.6  Debe haber un procedimiento escrito para la retención y eliminación de muestras. Si 
la integridad de las muestras se puede mantener, puede ser apropiado almacenar las 
muestras hasta que se obtengan los resultados de los ensayos o por más tiempo, si 14
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11fuera necesario. Las porciones de muestras del laboratorio que se sabe están conta -
minadas deben descontaminarse antes de su eliminación (ver sección 1 1.1).
9. Eliminación de residuos contaminados 
9.1  Los procedimientos para la eliminación de materiales contaminados deben diseñarse 
para minimizar la posibilidad de contaminación del ambiente o materiales de trabajo. 
Esta cuestión corresponde a las buenas prácticas de gestión del laboratorio y debe 
ajustarse a las regulaciones ambientales o sanitarias y de seguridad nacionales e 
internacionales. 
10. Garantía de calidad de resultados y control de calidad de 
desempeño
10.1 Control de calidad interno
10.1.1 El laboratorio debe contar con un sistema de garantía de calidad o control 
de calidad interno (ej. manejo de desvíos, uso de muestras con agregados 
(spiked), repeticiones de ensayos y participación en ensayos de competencia 
o aptitud) para asegurar la consistencia de resultados día a día y su conformi -
dad con los criterios establecidos.
11. Procedimientos de ensayos
11.1 Los ensayos deben realizarse normalmente de acuerdo a los procedimientos descri -
tos en las farmacopeas nacionales, regionales o internacionales.
11.2 Pueden emplearse procedimientos de ensayos alternativos siempre que estén debi -
damente validados y su equivalencia con métodos oficiales haya sido demostrada.
12. Informes de ensayos
12.1 Si el resultado de un recuento es negativo, éste deberá informarse como “no detec -
tado para una unidad definida” o “menor que el límite de detección para una unidad 
definida”. El resultado no deberá informarse como “cero para una unidad definida” 
a menos que esto sea un requisito regulatorio. Los resultados de los ensayos cuali -
tativos deben informarse como “detectado/no detectado en una cantidad o volumen 
definido”. Estos también pueden expresarse como “menor que un número específico 
de microorganismos para una unidad definida” cuando el número especificado de 
microorganismos supera el límite de detección del método y esto ha sido acordado 
con el cliente. En los datos crudos el resultado no debe informarse como cero para 
una unidad definida a menos que sea un requisito regulatorio. Un valor informado “0” 
puede usarse para la entrada de datos y cálculos o el análisis de tendencias en bases 
de datos electrónicas.15
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéutica12.2 Cuando el informe de ensayo incluye una estimación de la incertidumbre del resul -
tado del ensayo, cualquier limitación (particularmente si la estimación no incluye el 
componente aportado por la distribución de microorganismos dentro de la muestra) 
debe aclarase con el cliente.
Referencias
1.  Good practices for pharmaceutical quality control laboratories. In: WHO Expert Commit -
tee on Specifications for Pharmaceutical Preparations. Forty-fourth report. Geneva, World 
Health Organization. WHO Technical Report Series, No. 957, 2010, Annex 1.
2.  General guidelines for the establishment, maintenance and distribution of chemical referen -
ce substances. Revision. En: WHO Expert Committee on Specifications for Pharmaceutical 
Preparations. Forty-first report. Geneva, World Health Organization. WHO Technical Report 
Series, No. 943, 2007, Annex 3.
3.  The International Pharmacopoeia, Fourth Edition. Geneva, World Health Organization, 2006. 
Disponible también en CD-ROM.
4.  The International Pharmacopoeia, Fourth Edition, First Supplement. Geneva, World Health 
Organization, 2008. Disponible también en CD-ROM.
5.  ISO/IEC 17025 (2005) General requirements for the competence of testing and calibration 
laboratories.
6.  ISO 11133-1 (2000) Microbiology of food and animal feeding stuffs —Guidelines on prepara -
tion and production of culture media — Part 1: General guidelines on quality assurance for 
the preparation of culture media in the laboratory.
7.  ISO 13843 (2000) Water quality — Guidance on validation of microbiological methods.
8.  WHO good manufacturing practices: main principles for pharmaceutical products. En: Quali -
ty assurance of pharmaceuticals. A compendium of guidelines and related materials. Volume 
2, 2nd updated edition. Good manufacturing practices (GMP) and inspection. Geneva, World 
Health Organization, 2007, y actualizaciones subsiguientes, incluyendo WHO GMP for ste -
rile pharmaceutical products. En: WHO Expert Committee on Specifications for Pharmaceu -
tical Preparations. Forty-fifth report. Geneva, World Health Organization. WHO Technical 
Report Series, No. 961, Annex 6, 2011; and GMP: Heating, ventilation and air-conditioning 
systems for non-sterile pharmaceutical dosage forms. En: WHO Expert Committee on Spe -
cifications for Pharmaceutical Preparations. Forty-fifth report. Geneva, World Health Organi -
zation. WHO Technical Report Series, No. 961, 2011, Annex 5.
Lecturas adicionales
ISO 7218 (2007) Microbiology of food and animal feeding stuffs — General requirements and 
guidance for microbiological examinations.
ISO 6887-1 (1999) Microbiology of food and animal feeding stuffs — Preparation of test samples, 
initial suspension and decimal dilutions for microbiological examination — Part 1: General 
rules for the preparation of the initial suspension and decimal dilutions.16
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11ISO Guide 30 (1992) Terms and definitions used in connection with reference materials.
ISO 9000 (2008) Quality management systems — fundamentals and vocabulary .
ISO Guide 99 (1993) International vocabulary of basic and general terms in metrology (VIM).
ISO (CIPM):1995. Guide to the expression of uncertainty in measurements. Draft ISO/DIS 16140. 
(1999) Food microbiology. Protocol for the validation of alternative methods.
Draft ISO/FDIS (2003) 11133-2. Microbiology of food and animal feeding stuffs. Guidelines on 
preparation and production of culture media. Part 2 - Practical guidelines on performance 
testing on culture media.
EN 12741 (1999). Biotechnology—Laboratories for research, development and analysis—Gui -
dance for biotechnology laboratory operations.
Draft ISO/DIS 16140. (1999) Food microbiology. Protocol for the validation of alternative methods.
Draft Quality Risk Management. Disponivel em: <http://www.who.int/medicines/services/ex -
pertcommittees/pharmprep/QualityRiskManagement-QAS10-376_18082010.pdf>. Acesso 
em 07/03/2012.17
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaApéndice 1:  
Ejemplos de zonas en las que se podrían realizar 
las operaciones
Zona Grado de la instalación Propuesta
Recepción de muestra Sin clasificar Sin clasificar
Preparación de medios Sin clasificar Sin clasificar
Carga de autoclave Sin clasificar Sin clasificar
Descarga de autoclave dentro del área del ensayo de 
esterilidadGrado B ISO 5 (flujo turbulento) y <10 ufc/m3
Ensayo de esterilidad - flujo de aire unidireccional 
(UDAF, por sus siglas en inglés)Grado A ISO 5 (UDAF) y <1 ufc/m3
Ensayo de esterilidad - entorno del UDAF Grado B ISO 5 (flujo turbulento) y <10 ufc/m3
Ensayo de esterilidad - aislador Grado A (NVP y microbiología 
únicamente)ISO 5 (UDAF) y <1 ufc/m3
Ensayo de esterilidad - entorno del aislador Sin clasificar Sin clasificar
Incubadora Sin clasificar Sin clasificar
Recuento Sin clasificaraSin clasificara
Descontaminación Sin clasificar Sin clasificar
Notas: ufc, unidad formadora de colonias; (a) Las etapas críticas deben realizarse bajo flujo laminar19
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaApéndice 2:  
Ejemplos de mantenimiento de equipos
Esta información se proporciona como ejemplo y la frecuencia se debe basar en la nece -
sidad, tipo y desempeño previo del equipo y en las recomendaciones de los manuales de los 
fabricantes.
Tipo de equipo Requisito Frecuencia sugerida
Incubadoras  ▪Limpiar y desinfectar superficies 
internas ▪Mensualmente
Refrigeradores  ▪Cuando se requiera (ej. cada 3 meses)
Congeladoras, hornos  ▪Cuando se requiera (ej. anualmente)
Baños de agua  ▪Vaciar, limpiar, desinfectar y volver a 
llenar ▪Mensualmente, o cada 6 meses si se 
usa un biocida
Centrífugas  ▪Realizar servicio de mantenimiento  ▪Anualmente
 ▪Limpiar y desinfectar  ▪Cada vez que se usan
Autoclaves  ▪Realizar inspección visual de la junta, 
limpiar/drenar la cámara ▪Regularmente, según recomendaciones 
del fabricante
 ▪Realizar servicio de mantenimiento 
completo ▪Anualmente o según recomendaciones 
del fabricante
 ▪Realizar chequeo de seguridad de la 
cámara de esterilización ▪Anualmente
Cabinas de seguridad, cabinas de flujo 
unidireccional ▪Realizar servicio de mantenimiento 
completo y chequeo mecánico ▪Anualmente o según recomendaciones 
del fabricante
Microscopios  ▪Realizar servicio de mantenimiento 
completo ▪Anualmente
Medidores de pH  ▪Limpiar electrodo  ▪Cada vez que se usan
Balanzas, dilutores gravimétricos  ▪Limpiar  ▪Cada vez que se usan
 ▪Realizar servicio de mantenimiento  ▪Anualmente
Destiladores  ▪Limpiar y desincrustar  ▪Según se requiera (ej. cada 3 meses)
Desionizadores, unidades de ósmosis 
inversa ▪Reemplazar cartucho/membrana  ▪Según recomendaciones del fabricante
Jarras anaerobias  ▪Limpiar/desinfectar  ▪Después de cada uso
Dispensadores de medios, material 
volumétrico, pipetas y material de 
servicio general ▪Descontaminar, limpiar y esterilizar 
según corresponda ▪Cada vez que se usan
Sembradores de placas en espiral ( spiral 
platers ) ▪Realizar servicio de mantenimiento  ▪Anualmente
 ▪Descontaminar, limpiar y esterilizar  ▪Cada vez que se usan
Laboratorio  ▪Limpiar y desinfectar superficies de 
trabajo ▪Diariamente y durante el uso
 ▪Limpiar pisos, desinfectar fregaderos y 
lavabos ▪Diariamente
 ▪Limpiar y desinfectar otras superficies  ▪Cada 3 meses21
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaApéndice 3:  
Ejemplos de chequeos e intervalos de calibración 
para diferentes equipos de laboratorio
Esta información se proporciona como ejemplo y la frecuencia se debe basar en la necesi -
dad, tipo, desempeño previo y criticidad del equipo.
Tipo de equipo Requisito Frecuencia 
sugerida
Termómetros de referencia (líquido en vidrio)  ▪Recalibración completa trazable  ▪Cada 3 años
 ▪Único punto (ej. chequeo del punto de congelación)  ▪Anualmente
Termocuplas de referencia  ▪Recalibración completa trazable  ▪Cada 3 años
 ▪Chequeo con termómetro de referencia  ▪Anualmente
Termómetros de trabajo y termocuplas de 
trabajo ▪Chequeo con termómetro de referencia en el punto de 
congelación y/o el rango de temperatura de trabajo ▪Anualmente
Balanzas  ▪Calibración completa trazable  ▪Anualmente
Pesas de calibración  ▪Calibración completa trazable  ▪Anualmente 
Pesas de chequeo  ▪Chequeo con pesas calibradas o chequeo en balanza 
inmediatamente después de una calibración trazable ▪Anualmente
Material de vidrio volumétrico  ▪Calibración gravimétrica con la tolerancia requerida  ▪Anualmente
Microscopios  ▪Calibración trazable del micrómetro de platina (cuando 
corresponda) ▪Inicialmente
Higrómetros  ▪Calibración trazable  ▪Anualmente
Centrífugas  ▪Calibración trazable o chequeo con un tacómetro 
independiente, según corresponda ▪Anualmente23
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaApéndice 4:  
Ejemplos de calificación y monitoreo de equipos
Esta información se provee como ejemplo y la frecuencia se debe basar en la necesidad, tipo, 
desempeño previo y criticidad del equipo.
Tipo de equipo Requisito Frecuencia sugerida
Equipo con temperatura controlada 
(incubadoras, baños, refrigeradores, 
congeladores) ▪Establecer estabilidad y uniformidad de 
la temperatura ▪Inicialmente, cada 2 años y después de 
una reparación/modificación
 ▪Monitorear la temperatura  ▪Diariamente/cada vez que se usan
Hornos esterilizantes  ▪Establecer estabilidad y uniformidad de 
la temperatura ▪Inicialmente, cada 2 años y después de 
una reparación/modificación
 ▪Monitorear la temperatura  ▪Cada vez que se usan
Autoclaves  ▪Establecer las características de 
cargas/ciclos ▪Inicialmente, cada 2 años y después de 
una reparación/ modificación
 ▪Monitorear la temperatura/presión/ 
tiempo ▪Cada vez que se usan
Áreas de Grado A utilizadas para 
ensayos de esterilidad:
 ▪cabinas de seguridad de flujo 
unidireccional
 ▪aisladores ▪Establecer el desempeño  ▪Inicialmente, cada año y después de 
una reparación/modificación
 ▪Monitoreo microbiológico  ▪Cada vez que se usan
 ▪Monitorear el flujo de aire  ▪Semestralmente
 ▪Probar la integridad de los filtros HEPA  ▪Semestralmente
Cabinas de flujo unidireccional  ▪Establecer el desempeño  ▪Inicialmente y después de una 
reparación/modificación
 ▪Monitoreo microbiológico  ▪Semanalmente
 ▪Monitorear el flujo de aire  ▪Semestralmente
 ▪Probar la integridad de los filtros HEPA  ▪Semestralmente
Temporizadores  ▪Chequear contra la señal de tiempo 
nacional ▪Anualmente
Microscopios  ▪Chequear alineamiento  ▪Diariamente/cada vez que se usan
Medidores de pH  ▪Ajustar utilizando dos soluciones 
amortiguadoras de calidad apropiada ▪Diariamente/cada vez que se usan
Balanzas  ▪Chequear el cero y la lectura contra 
una pesa de chequeo ▪Diariamente/cada vez que se usan
Desionizadores y unidades de ósmosis 
inversa ▪Chequear la conductividad  ▪Semanalmente
 ▪Investigar la presencia de 
contaminación microbiana ▪Mensualmente
Dilutores gravimétricos  ▪Chequear el peso del volumen 
dispensado ▪Diariamente
 ▪Chequear la razón de dilución  ▪Diariamente
Dispensadores de medios  ▪Chequear el volumen dispensado  ▪En cada ajuste o reemplazo
Pipeteadores/Pipetas  ▪Chequear la exactitud y precisión del 
volumen dispensado ▪Regularmente (a definir de acuerdo con 
la frecuencia y naturaleza del uso)
Continúa...24
Serie red PArF - d ocumento  técnico  nº 11Tipo de equipo Requisito Frecuencia sugerida
Sembradores de placas en espiral  ▪Establecer desempeño contra el 
método convencional ▪Inicialmente y anualmente
 ▪Chequear la condición del estilete y el 
arte de los puntos de inicio y final ▪Diariamente/Cada vez que se usan
 ▪Chequear el volumen dispensado  ▪Mensualmente
Contadores de Colonias  ▪Chequear contra el número contado 
manualmente ▪Anualmente
Centrífugas  ▪Chequear la velocidad con un 
tacómetro calibrado e independiente ▪Anualmente
Jarras anaerobias/ incubadoras  ▪Chequear con un indicador anaerobio  ▪Cada vez que se usan
Ambiente del laboratorio  ▪Monitorear la contaminación microbiana 
del aire y superficies utilizando, ej. 
muestreadores de aire, placas de 
sedimentación, placas de contacto o 
hisopos ▪Basándose en la evaluación de riesgos, 
se debe establecer un programa 
apropiado de monitoreo ambiental
Nota: HEPA, (filtro) de partículas de aire de alta eficiencia....Continuación Apéndice 425
Buenas  prácticas  de la OMs para laBOrat OriOs de MicrOBiOl Ogía farMacéuticaApéndice 5:  
Uso general de cultivos de referencia
Todas las partes del proceso deben estar completamente documentadas y se deben mante -
ner registros detallados de todas las etapas. Se deben realizar chequeos de pureza y pruebas 
bioquímicas según correspondan.Cepa de referencia
De una fuente reconocida por una agencia de 
acreditación.
Stock de referencia G1
Liofilizado, almacenado en nitrógeno líquido, 
ultracongelado, etc.  
Condiciones especificadas y tiempos de 
almacenamiento recomendadosCultivo de trabajo
Condiciones especificadas y tiempos 
de almacenamiento recomendados
Uso rutinario
Stock de referencia G2
Liofilizado, almacenado en nitrógeno líquido, 
ultracongelado, etc.  
Condiciones especificadas y tiempos de 
almacenamiento recomendadosCultivo de trabajo
Condiciones especificadas y tiempos 
de almacenamiento recomendados
Uso rutinario
Stock de referencia G3
Liofilizado, almacenado en nitrógeno líquido, 
ultracongelado, etc.  
Condiciones especificadas y tiempos de 
almacenamiento recomendadosCultivo de trabajo
Condiciones especificadas y tiempos 
de almacenamiento recomendados
Uso rutinario
Stock de referencia G4
Liofilizado, almacenado en nitrógeno líquido, 
ultracongelado, etc.  
Condiciones especificadas y tiempos de 
almacenamiento recomendadosCultivo de trabajo
Condiciones especificadas y tiempos 
de almacenamiento recomendados
Uso rutinario
Cultivo de trabajo
Condiciones especificadas y tiempos de 
almacenamiento recomendados
Uso rutinarioRed PARF Documento Técnico Nº 11
Red Panamericana de Armonización  
de la Reglamentación Farmacéutica
Grupo de Trabajo en Buenas Prácticas de Laboratorio
Buenas prácticas de la OMS  
para laboratorios de microbiología 
farmacéutica
Traducido de: World Health Organization. Annex 2: WHO good practices  
for pharmaceutical microbiology laboratories. En: WHO Expert Committee  
on Specifications for Pharmaceutical Preparations: forty-fifth report.  
Geneva: World Health Organization; 2011. (WHO technical report series; 961).
 Red PARF Documento Técnico Nº 11 Buenas prácticas de la OMS para laboratorios de microbiología farmacéutica