Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
SECRETARIA DE AGRICULTURA Y DESARROLLO RURAL  
PROYECTO de Norma Oficial Mexicana PROY -NOM -004-SAG/GAN -2018, Producción de miel  y 
especificaciones.  
Al margen un sello con el Escudo Nacional, que dice: Estados Unidos Mexicanos. - Secretaría de Agricultura, 
Ganadería, Des arrollo Rural, Pesca y Alimentación.  
LUCIANO VIDAL GARCÍA, Director General de Normalización Agroalimentaria de la Secretaría de 
Agricultura Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación, con fundamento en lo s Artículos 35 fraccio nes 
IV, XXII de la Ley  Orgánica de la Administración Pública Federal; 4o. de la Ley Federal de Procedimiento 
Administrativo; 17 y 18 de la Ley Federal de Sanidad Animal; 5,  6 y 7 del Reglamento de la Ley Federal de 
Sanidad Animal; 38 fracciones II y IX; 40 fracción I, 41, 43, 4 4, 45, 46, 47; 52 y 73 de la Ley Federal sobre 
Metrología y Normalización; 28 del Reglamento de la Ley Federal sobre Metrología y Normalización, y Artículo 
1, 2 inciso B fracción XVII, 17 fracciones I, XII y XIII, 29 fracción I, 36 fracción V del Reglament o Interior de la 
Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación, y  
CONSIDERANDO  
Que es función de la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación, el 
organizar y fomentar la producción pecuaria y consecuentemente, fortalecer la productividad y competitividad 
de los subsectores pecuarios y por consecuencia que los productos cumplan con las medidas necesarias para 
garantizar que éstos contengan los requerimientos necesarios con el fin de atender la s exigencias  del 
consumidor;  
Que la industria apícola es una actividad importante en el aspecto socioeconómico, ya que se tiene un 
inventario de 2 millones de colmenas con una producción anual que supera las 57 mil toneladas de miel, 
beneficiando en forma  directa e indirecta a más de 43 mil familias, a través de la generación de empleos;  
Que en los últimos cinco años se han exportado un promedio anual de 42 mil toneladas; y tan sólo en el 
2015, el valor de la exportación fue de 156 Millones de USD, cifra r écord en los últimos años, ubicando a 
México en el 3er . lugar mundial como país exportador de miel;  
Que actualmente la producción de miel de acuerdo a las características de sus sistemas, es susceptible de 
sujetarse a mecanismos de certificación, tendencia  que va en aumento, lo que permite diversificar el producto 
y comercializarse a mejores precios, como es el caso de la producción de miel orgánica,  requiriéndose en 
todo momento asegurar el cumplimiento de las especificaciones del producto.  
Que la poliniz ación es el proceso por el cual se favorece la reproducción de plantas así como la 
producción de frutos y semillas que son indispensables para la regeneración de ecosistemas y que 
constituyen un alto porcentaje de la alimentación de personas y animales. Su  aportación económica en el 
valor de la agricultura mundial está calculada en un 10% del valor de la misma, 43 mil millones de pesos  en 
México.  
Que las abejas son los principales agentes polinizadores y en los últimos años se ha registrado una alta 
mortan dad de colonias de abejas en el mundo, poniendo en riesgo la producción de alimentos así como el 
mantenimiento de los ecosistemas;  
Que las propiedades de la miel han favorecido el desarrollo del mercado nacional y propiciado la presencia 
de mieles adultera das un detrimento de la economía de los apicultores y en consecuencia de la infraestructura 
apícola nacional, requiriendo de acciones para evitar fraude al consumidor, y para proteger a la apicultura y 
por consiguiente a las abejas;  
Que como parte elementa l de las acciones para evitar fraude al consumidor, proteger la apicultura y a las 
abejas, es necesario contar con un instrumento que establezca las condiciones que se deben cumplir para la 
producción de miel.  
Que el presente Proyecto de Norma Oficial Mexi cana fue aprobado en la  Reunión del Subcomité 
Especializado en Ganadería, celebrada el 4 de septiembre de 2018, y posteriormente fue ratificado en la 
Quinta Sesión Ordinaria del Comité Consultivo Nacional de Normalización Agroalimentaria de la Secretaría de 
Agricultura Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación, de fecha 13 de septiembre de 2018, con el fin 
de ser publicado en el Diario Oficial de la Federación para efectos de consulta pública, de conformidad con lo 
previsto en el artículo 47 fracci ón I de la Ley Federal sobre Metrología y Normalización, para que todos 
aquellos interesados, dentro de los sesenta días naturales siguientes, contados a partir de la fecha de su 
publicación en el Diario Oficial de la Federación, presenten sus comentarios en idioma español, sustentados 
científica y técnicamente, ante el Subcomité de Normalización Especializado en Ganadería, del Comité 
Consultivo Nacional de Normalización Agroalimentaria, en el domicilio ubicado en Avenida Municipio Libre        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
No. 377 piso 4 Ala  A, Colonia Santa Cruz Atoyac, Delegación Benito Juárez, en la Ciudad de México, C.P. 
03310 o al siguiente correo electrónico: rvazquez.dgg@sagarpa.gob.mx.  
Que en razón de lo anterior y en ejercicio de las atribuciones conferidas en el Artículo 29 fracción  I del 
Reglamento Interior de la Secretaría de Agricultura Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación, he 
tenido a bien expedir el presente:  
PROYECTO DE NORMA OFICIAL MEXICANA PROY -NOM -004-SAG/GAN -2018,  PRODUCCIÓN DE MIEL 
Y ESPECIFICACIONES  
PREFACIO  
En la elaboración del presente proyecto de Norma Oficial Mexicana participaron las siguientes empresas e 
instituciones:  
ASOCIACIÓN NACIONAL DE EXPORTADORES DE MIEL DE ABEJAS, A.C.  
ASOCIACIÓN NACIONAL DE MÉDICOS VETERINARIOS ESPECIALISTAS EN ABEJAS, A.C.  
CENTRO NACIONAL DE SERVICIOS DE CONSTATACIÓN EN SALUD ANIMAL  
COMITÉ NACIONAL SISTEMA PRODUCTO APÍCOLA  
CONSEJO REGULADOR DE LA MIEL DE ABEJA MEXICANA, A.C.  
CONSEJO TÉCNICO CONSULTIVO NACIONAL DE SANIDAD ANIMAL  
FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES CUAUTITLÁN -UNAM  
FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES IZTACALA -UNAM  
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA -UNAM  
PROGRAMA NACIONAL PARA EL CONTROL DE LA ABEJA AFRICANA  
ÍNDICE  
1. Objetivo y Campo de Aplicación.  
2. Referencias.  
3. Definiciones.  
4. Consideraciones generales.  
5. Características, clasificación y designación de la miel.  
6. Especificaciones de la miel.  
7. Toma de muestras.  
8. Métodos de Prueba.  
9. Etiquetado.  
10. Miel como ingrediente.  
11. Evaluación de la conformidad.  
12. Sanciones.  
13. Bibliografía.  
14. Disposic iones transitorias  
1. Objetivo y campo de aplicación  
1.1 Objetivo: La presente Norma Oficial Mexicana establece las características generales para la 
producción de miel que propicien el cuidado de las abejas melíferas y su correcto desarrollo, así como, la s 
especificaciones que la miel debe cumplir para su comercialización, ya sea para  consumo directo y/o 
procesamiento; a fin de coadyuvar en el desarrollo de la apicultura nacional y la competitividad de la cadena 
de la miel.  
1.2 Campo de aplicación: Esta n orma es de observancia obligatoria a personas físicas o morales que se 
dediquen a la producción y/o comercialización de miel nacional o de importación, procedente de abejas 
melíferas, que se comercialice o se pretenda comercializar dentro del territorio de  los Estados Unidos 
Mexicanos en sus diferentes presentaciones, cuya denominación debe corresponder a la establecida en esta 
Norma Oficial Mexicana.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
1.3 La vigilancia y aplicación de esta Norma Oficial Mexicana corresponde a la Coordinación General de 
Gana dería y Delegaciones Estatales de la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y 
Alimentación, la Procuraduría Federal del Consumidor, en el ámbito de sus respectivas atribuciones.  
2. Referencias  
La presente norma no concuerda con ningu na Norma Internacional al momento de su elaboración y se 
complementa con la siguiente normativa y acuerdos vigentes o las que las sustituyan:  
2.1 NOM -051-SCFI/SSA1 -2010 , Especificaciones generales de etiquetado para alimentos y bebidas no 
alcohólicas preen vasados -Información comercial y sanitaria. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 
5 de abril de 2010.  
2.2 NOM -092-SSA1 -1994 , Bienes y servicios. Método para la cuenta de bacterias aerobias en placa. 
Publicada en el Diario Oficial de la Federaci ón el 12 de diciembre de 1995.  
2.3 NOM -110-SSA1 -1994 , Bienes y servicios. Preparación y dilución de muestras de alimentos para su 
análisis microbiológico. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 16 de octubre de 1995.  
2.4 NOM -111-SSA1 -1994 , Bienes y servicios. Método para la cuenta de mohos y levaduras en alimentos. 
Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 13 de septiembre de 1995.  
2.5 NOM -145-SCFI -2001 , Información comercial -Etiquetado de miel en sus diferentes presentaciones.  
Publicad a en el Diario Oficial de la Federación el 23 de abril de 2001.  
2.6 Modificación del inciso 4.2 y se eliminan los numerales 4.2.3 y 4.2.4 de la Norma Oficial Mexicana 
NOM -145-SCFI -2001, Información comercial -Etiquetado de miel en sus diferentes presentacio nes, publicada 
el 23 de abril de 2001 , publicada en el Diar io Oficial de la Federación el 5 de agosto de 2009.  
2.7 NMX -F-036-NORMEX -2006 , Alimentos, miel, especificaciones y métodos de prueba.  Publicada en el 
Diario Oficial de la Federación el 24 de enero de 2007.  
2.8 Acuerdo por el que se establecen los criterios para determinar los límites máximos de residuos tóxicos 
y contaminantes, de funcionamiento de métodos analíticos, el Programa Nacional de Control y Monitoreo de 
Residuos Tóxicos en los bienes de o rigen animal, recursos acuícolas y pesqueros, y Programa de Monitoreo 
de Residuos Tóxicos en animales, así como el módulo de consulta, los cuales se encuentran regulados por la 
Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación.  Publicado en el Diar io Oficial de 
la Federación el 9 de octubre de  2014.  
2.9 NOM -001-SAG/GAN -2015 , Sistema Nacional de Identificación Animal para Bovinos y Colmenas.  
Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 29 de  mayo de  2015.  
2.10 Modificación a la NOM -001-ZOO -1994 , Campaña Nacional contra la Varroasis de las abejas.  
Publicada en el Diario Oficial de la F ederación el 28 de diciembre de  2005.  
2.11 Ley de Productos Orgánicos. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 7 de febrero de  2006.  
2.12 Reglamento de Ley de Productos Orgánicos. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el  1 de 
abril de 2010.  
2.13 Acuerdo por el que se dan a conocer los Lineamientos para la Operación Orgánica de las actividades 
agropecuarias.  Publicado en el Dia rio Oficial de la  Federación el 29 de octubre de  2013.  
2.14 Ley Federal de Sanidad Animal, Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 25 de julio de 2007.  
2.15 Reglamento de la Ley Federal de Sanidad Animal. Publicada en el Diario Oficial de  la Fed eración el 
21 de mayo de  2012.  
2.16 NOM -002-SAG/GAN -2016 , Actividades técnicas y operativas aplicables al Programa Nacional para el 
Control de la Abeja Africana. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 5 de octubre de  2016.  
3. Definiciones  
Para los efectos de esta Norma Oficial Mexicana, se establecen las siguientes definiciones:  
3.1 Abeja melífera:  Insecto himenóptero Apis mellifera . 
3.2 Colmena tecnificada:  Nicho que aloja una colonia de abejas cuyos panales son móviles para permitir 
su manejo y aprovechamiento racional.        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
3.3 Miel:  “Es la sustancia dulce natural producida por abejas a partir del néctar de las flores o de 
secreciones de partes vivas de plantas o de excreciones de insectos succionadores de plantas que quedan 
sobre partes vivas de l as mismas y que las abejas recogen, transforman y combinan con sustancias 
específicas propias, y depositan, deshidratan, almacenan y dejan en el panal para que madure y añeje”.  
3.3.1  Miel del néctar de las flores:  Es la miel producida por abejas directamen te de los néctares de  las 
flores.  
3.3.2  Miel de mielada o mielatos:  Es la miel producida por abejas que procede principalmente de 
secreciones de partes extraflorales de las plantas o de excreciones de áfidos. (Insectos pertenecientes al 
orden Hemiptera su ccionadores de savia).  
3.4 Miel en panal:  Es la miel que no ha sido extraída de su almacén natural de cera y puede consumirse 
como tal. El panal deberá estar operculado y libre de larvas.  
3.5 Miel líquida:  Es la miel que ha sido extraída de los panales ope rculados, que cumple con lo señalado 
en el punto 3.3 y que se encuentra en estado líquido, sin presentar cristales visibles.  
3.6 Miel cristalizada:  Producto que cumple con lo señalado en el punto 3.3 y que se encuentra en estado 
sólido o semisólido granula do; es resultado del fenómeno natural de cristalización de los azúcares presentes 
en su composición natural que la constituyen.  
3.7 Miel Orgánica:  Producto que cumple con lo señalado en el punto 3.3 y además se obtiene conforme a 
los sistemas de producción  y procesamiento establecidos en la Ley de Productos Orgánicos y su Reglamento.  
3.8 Secretaría:  Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación.  
3.9 UFC:  Unidades formadoras de colonias de bacterias.  
4. Consideraciones generale s 
4.1 La producción de miel deberá realizarse a través de la reproducción, crianza y desarrollo de colonias 
de abejas melíferas, asegurando en todo momento el cuidado y el bienestar de éstas, para garantizar la 
producción de alimentos y el sustento de la b iodiversidad en México.  
4.2 El apicultor deberá utilizar colmenas tecnificadas en buen estado que garanticen el correcto manejo y 
cuidado de las abejas para minimizar el daño a las colonias.  
4.3 El apicultor deberá revisar sus apiarios con una periodicidad  de quince días como máximo, llevando 
registro de sus actividades, para detectar y atender las necesidades nutricionales, alteraciones en la biología y 
comportamiento de las abejas, entre otras.  
4.4 El apicultor deberá realizar un correcto manejo integral de las colonias, que permita contar con abejas 
sanas, nutridas y vigorosas, para prevenir cualquier factor que ponga en riesgo el desarrollo de las abejas y 
las características propias de la miel.  
4.5 El apicultor deberá cumplir los ordenamientos de la Ley  Federal de Sanidad Animal y su reglamento,  y 
aquellos otros que en matera de inocuidad, trazabilidad y buenas prácticas de producción de miel publique la 
Secretaría.  
4.6 El apicultor deberá cumplir los ordenamientos de la Modificación a la NOM -001-ZOO -1994, Campaña 
Nacional contra la Varroasis de las abejas, la NOM -002-SAG/GAN -2016 , Actividades técnicas y operativas 
aplicables al Programa Nacional para el Control de la Abeja Africana, y aquellos otros que en control de 
plagas y enfermedades apícolas publi que la Secretaría.  
4.7 El apicultor deberá cumplir los ordenamientos de la NOM -001-SAG/GAN -2015 , Sistema Nacional de 
Identificación Animal para Bovinos y Colmenas y las que en identificación de colmenas publique la Secretaría.  
4.8 A petición de parte, o cu ando lo determine necesario, la Secretaría podrá inspeccionar los apiarios 
para constatar el cumplimiento de la presente norma.  
5. Características, clasificación y designación de la miel  
5.1 El producto denominado miel que se comercialice o pretenda comerc ializarse dentro del territorio 
nacional, de origen nacional o de importación, en cualquiera de sus presentaciones deberá cumplir las 
disposiciones de la presente norma.  
5.2 La miel que se produzca, bajo sistemas vinculados a procesos de certificación, deb erá ajustarse a las 
disposiciones de la presente norma y a aquellas que para efectos de la certificación corresponda, determine la 
Secretaría o sus órganos desconcentrados.  
5.3 La miel no deberá contener ningún ingrediente adicional, debe estar libre de fr agmentos de insectos, 
así como de cualquier otra materia extraña; no deberá haber comenzado a fermentar  o producir 
efervescencia.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
5.4 La miel no deberá contener ningún aditivo como colorantes, saborizantes, conservadores e inhibidores 
microbianos.  
5.5 La miel no deberá adulterarse, por ejemplo con agua, glucosa, fructosa, melazas, almidones, gomas, 
dextrinas, o cualquier otro tipo de azúcares o jarabes.  
5.6 La miel no deberá someterse a ningún tratamiento químico o bioquímico que influya  en su 
cristalizac ión. 
5.7 Para la descristalización de la miel solamente podrán ser utilizados métodos físicos como 
calentamiento, los cuales no deberán modificar sus características.  
5.8 La miel de forma natural podrá encontrarse en estado líquido, con presencia parcial o  total de cristales 
y en panal.  
5.9 La miel puede designarse con el nombre de la región geográfica o topográfica, si ha sido producida 
exclusivamente en el área a que se refiere la denominación.  
5.10 La miel podrá designarse por su origen floral o de plant as si procede total o principalmente de esas 
fuentes en particular y posee las propiedades organolépticas, físicas, químicas y melisopalinológicas que 
corresponden a dicho origen.  
5.11 La procedencia de la miel puede ser verificada mediante el análisis pol ínico de la miel (identificación y 
ubicación geográfica de las mieles, basado en la presencia significativa de determinado tipo de granos  de 
polen).  
6. Especificaciones de la miel  
6.1 Sensoriales:  la miel no debe tener signos de fermentación, ni sabores  y olores absorbidos de materias 
extrañas durante su producción, extracción, sedimentación, filtración, envasado y/o almacenamiento, y deberá 
presentar las siguientes características:  
6.1.1  Color: propio característico derivado de la vegetación de origen, v ariable de: blanco agua, extra 
blanco, blanco, ámbar extra claro, ámbar claro, ámbar y oscuro.  
6.1.2  Olor: Propio característico derivado de la vegetación de origen.  
6.1.3  Sabor: Propio característico derivado de la vegetación de origen.  
6.1.4  Consistencia : Fluida, viscosa, total o parcialmente cristalizada.  
6.2 Físicas y químicas : la miel debe cumplir con las siguientes especificaciones físicas y químicas.  
6.2.1  Contenido aparente de azúcar reductor  expresado cómo % (g/100g) de azúcar Invertido.  Mínimo 
60.00 
6.2.2  Contenido de sacarosa % (g/100g). Máximo 5.00.  
6.2.3  Contenido glucosa % (g/100g). Máximo 38.00.  
6.2.4  Humedad % (g/100g). Máximo 20.00;  
6.2.5  Sólidos insolubles en agua % (g/100g). Máximo.  
6.2.6  Conductividad eléctrica (mS/cm). Máximo 0.80.  
6.2.7 Acidez expresada como miliequivalentes de ácido/kg. Máximo 40.00  
6.2.8  Hidroximetilfurfural (HMF), expresado en mg/kg en miel envasada más de 6 meses. Máximo 80.00.  
6.2.9  Hidroximetilfurfural (HMF), expresado en mg/kg en miel envasada menos de 6 meses. Máximo 40.00.  
6.2.10  Índice de diastasa (escala Schade).  Mínimo 8.0 (Para las mieles con bajo contenido enzimático, el 
índice mínimo de diastasa será de 3.0 siempre y cuando no exceda en el contenido en HMF de 15 mg/kg).  
6.3 Microbiológicas:  la miel debe cumplir con las siguientes especificaciones microbiológicas:  
6.3.1  Cuenta bacteriana total. Máximo 1000 UFC/g  
6.3.2  Hongos. Menor a 100 UFC/g  
6.3.3  Levaduras. Menor a 100 UFC/g  
6.4 Contaminantes y residuos tóxicos: el prod ucto regulado por la presente norm a se ajustará a las 
disposiciones del Acuerdo por el que se establecen los criterios para determinar los límites máximos de       (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
residuos tóxicos y contaminantes, de funcionamiento de métodos analíticos, el Programa Nacional de Control 
y Monitoreo de Residuos T óxicos en los bienes de origen animal, recursos acuícolas y pesqueros, y Programa 
de Monitoreo de Residuos Tóxicos en animales, así como el módulo de consulta, los cuales se encuentran 
regulados por la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural , Pesca y Alimentación y aquellos otros 
que para tal efecto publique la Secretaría.  
7. Toma de muestras  
7.1 Debe efectuarse de manera aleatoria y estadísticamente representativa por lote.  
7.1.2  Miel líquida: se debe agitar o mezclar hasta conseguir homogen eizar y después efectuar la toma de 
muestra en diferentes niveles con utensilios estériles. Si la miel tiene gránulos, meter el envase cerrado en 
baño de agua, sin sumergirlo, y calentar durante 30 minutos a 333 K (60 °C); si es necesario, hacer llegar la 
temperatura a 338 K (65 °C) hasta que la miel se licúe, es esencial agitar de vez en cuando. Tan pronto como 
la muestra se licúe, mezclar perfectamente y enfriar a temperatura ambiente. Es importante señalar que 
cuando lo que se desea determinar es el hidr oximetilfurfural, no se debe sobrecalentar la miel para no alterar 
el resultado.  
7.1.3  Miel en panal: Si el panal está operculado, cortar la parte superior y separar completamente la miel 
del panal filtrándola por tamiz, malla No. 40 (0,500 mm por 0,500 mm ). Si algunas porciones del panal o de 
cera pasan a través del tamiz, calentar la muestra y filtrar a través de una estopilla. Si la miel en el panal está 
granulada, calentar hasta que la cera se licue, remover, agitar y separar la cera.  
7.1.4  En productos  a granel, tomar la muestra de varios puntos del contenedor para obtener una muestra 
representativa. La preparación y dilución de la muestra para la realización de los análisis de la cuenta total, 
mohos y levaduras se deben realizar conforme a lo estableci do en la Norma NOM -110-SSA1 , Bienes y 
servicios. Preparación y dilución de muestras de alimentos para su análisis microbiológico.  
7.2 Identificar la muestra con el nombre o denominación del producto, nombre del fabricante, país de 
origen, fecha de producci ón y lote.  
8. Métodos de prueba  
Para determinar las especificaciones de la miel que se establecen en la presente Norma Oficial Mexicana, 
se deben aplicar los métodos de prueba que se indican a continuación:  
8.1 DETERMINACIÓN DE MATERIA EXTRAÑA EN MIEL.  
8.1.2 Material  
8.1.2.1 Embudo de Hirsch o Buchner para filtración al vacío.  
8.1.2.2 Caja de Petri.  
8.1.2.3 Aguja de disección.  
8.1.2.4 Papel de filtración rápida del No. 8 para conteo o rayado a lápiz con líneas paralelas de 
aproximadamente 5 mm de separación . 
8.1.2.5 Material común de laboratorio.  
8.1.2.6 Tamices de tela 10 XX. Hechos a partir de seda con número de malla/línea XX y espesor de hilo 
10. Someter a ebullición la tela antes de cortarla. Efectuar un rayado con líneas paralelas separadas 
aproximadam ente de 5 a 7 mm, utilizando una pluma con tinta permanente y cortada en círculos de 85 mm  
de diámetro.  
8.1.3 Reactivos  
8.1.3.1 Agua destilada (H2O).  
8.1.3.2 Ácido nítrico concentrado (HNO3).  
8.1.4 Equipo e instrumentos de medición  
8.1.4.1 Balanza granata ria con una precisión de 0.1 g.  
8.1.4.2 Equipo de filtración al vacío.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
8.1.4.3 Microscopio binocular estereoscópico con objetivos que pueden ser de 3,  6, 7 y 10 X y oculares 
apareados de amplio campo visual de 10, 30 y 100 X respectivamente.  
8.1.4.4 Lámpar a para el microscopio o luz natural equivalente.  
8.1.4.5 Parrilla de calentamiento.  
8.1.5 Procedimiento  
Mezclar la muestra completamente y disolver 200 g en 200 mL de agua caliente acidificada con 5 ml de 
ácido nítrico. Filtrar de una sola vez a través de papel filtro colocado en el embudo Hirsch o Buchner. Lavar 
con una pequeña cantidad de agua. Colocar el papel filtro en una caja de Petri y examinar al microscopio 
utilizando una luz lo suficientemente intensa para que muestre los detalles en el papel filt ro. Contar explorando 
con una aguja de disección sobre toda la superficie del papel, línea por línea, voltear y explorar cada pieza del 
material pues algunos fragmentos son irreconocibles a menos que se muevan. No contar material dudoso.  
Procedimiento alte rno: Disolver 200 g de muestra en 500 mL de agua caliente. Filtrar de una vez a través 
de un tamiz de tela 10 XX colocado en un embudo de Hirsch o Buchner. Examinar al microscopio como se 
describió anteriormente.  
8.1.6 Cálculos y expresión de resultados.  
Reportar la presencia o ausencia de insectos enteros, fragmentos de insectos, pelos de roedor o cualquier 
otra materia extraña encontrada en 200 g de la muestra.  
8.2 MÉTODO MELISOPALINOLÓGICO  
Este método provee información acerca del origen botánico y geogr áfico de las mieles. Además de ser una 
herramienta para detectar contaminación por hollín, polvo, levaduras y otras partículas generalmente no 
presentes en la miel. En teoría, el origen geográfico y botánico puede ser determinado en cualquier miel cuyo 
polen no haya sido removido por filtración (i.e. mediante el empleo de filtros de diatomita).  
8.2.1 Análisis microscópico cualitativo y cuantitativo  
Este método se basa en la concentración de palinomorfos contenidos en la miel, previamente diluida en 
agua. Lo s palinomorfos son acetolizados siguiendo el método propuesto por Erdtman (1960), o bien, el 
sedimento puede ser examinado sin este tratamiento.  
8.2.2 Material  
8.2.2.1 Vasos de precipitado  
8.2.2.2 Tubos cónicos para centrífuga (de 100, 50 y 15  mL de capaci dad) 
8.2.2.3 Probetas (de 10, 25, 50 y 100 mL)  
8.2.2.4 Pipetas Pasteur  
8.2.2.5 Portaobjetos (de 25 x 75 mm)  
8.2.2.6 Cubreobjetos (de 22 x 22 mm)  
8.2.2.7 Etiquetas (de 13 x 19 mm)  
8.2.2.8 Palillos  
8.2.2.9 Agua destilada  
8.2.3 Reactivos y soluciones  
8.2.3.1 Ácido sulfúrico (químicamente puro)  
8.2.3.2 Anhídrido acético (químicamente puro)  
8.2.3.3 Ácido acético glacial (químicamente puro)  
8.2.3.4 Gelatina en polvo para uso en laboratorio  
8.2.3.5 Glicerina  
8.2.3.6 Fenol líquido  
8.2.3.7 Fucsina ácida  
8.2.3.8 Ácido clorhídrico (químicamente puro)  
8.2.3.9 Mezcla acetolítica        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
8.2.3.10 Laca transparente  
8.2.3.11 La solución de mezcla acetolítica se prepara en probeta con anhídrido acético y ácido sulfúrico en 
proporción 9:1 respectivamente. Para preparar 10 ml de mezcl a acetolítica, adicionar inicialmente nueve 
mililitros de anhídrido acético y posteriormente agregar cuidadosamente (deslizándolo lentamente por las 
paredes), un mililitro de ácido sulfúrico.  
8.2.3.12 La glicerogelatina se prepara pesando 14 g. de gelatina ; medir con probeta 66 ml de glicerina,  2 
ml de fenol y 38 ml de agua destilada. Mezclar la gelatina con la glicerina empleando un agitador magnético. 
Luego, adicionar el agua y continuar mezclando durante 20 minutos. Posteriormente, agregar el fenol sin dejar 
de agitar, hasta que se incorpore bien (aproximadamente 10 minutos)  a continuación separar una porción de 
la glicerogelatina para ser teñida con fucsina ácida al 0.5%. Finalmente, dejar fundiendo la gelatina a 40  °C 
durante 12 h. Una vez fundida la g elatina, retirarla del calor, dejarla enfriar y conservarla bien tapada en un 
lugar fresco y seco.  
8.2.4 Equipo e instrumentos de medición  
8.2.4.1 Fotomicroscopio óptico con contraste de fases.  
8.2.4.2 Colección palinológica de referencia.  
8.2.4.3 Catálogo s y artículos especializados.  
8.2.4.4 Listados florísticos regionales y locales.  
8.2.4.5 Centrífuga (de 2500 a 3000 rpm).  
8.2.4.6 Campana de extracción.  
8.2.4.7 Baño María.  
8.2.4.8 Agitador magnético.  
8.2.4.9 Parrilla (40°C).  
8.2.5 Muestreo y preparación d e la muestra  
Una muestra de laboratorio para análisis melisopalinológico deberá consistir de 100 a 200 g de miel.  
8.2.5.1 Transformación de la muestra de laboratorio en una muestra de ensayo  
En caso de mieles líquidas, se deben homogeneizar por medio de ag itación. Si la muestra está sucia con 
cera o restos de abejas, entonces se deja reposar, para que por densidad, las impurezas se congreguen en la 
superficie, luego estas serán removidas. Posteriormente se homogeniza la muestra y se toman 30  g, para  su 
procesamiento.  
Cuando las muestras de miel están cristalizadas, se derriten mediante ligero calentamiento en baño María 
a 40 ºC. Sin embargo, si la muestra está sucia con cera o restos de abejas, después del calentamiento se 
dejan reposar, para que por densid ad las impurezas se concentren en la superficie, luego éstas serán 
removidas. Posteriormente se homogeniza la muestra y se toman 30  g para su procesamiento.  
Si la miel se encuentra en panal. El panal deberá ser cuidadosamente desoperculado, se revisará 
detenidamente, para extraer con una pipeta, la miel de las celdillas que contengan exclusivamente este 
recurso. Posteriormente se homogeniza la muestra y se toman 30  g para su procesamiento.  
8.2.6 Procedimiento  
8.2.6.1 Acetólisis  
Tomar 30 gramos  de miel y mez clarla con 50 ml de agua caliente (temperatura máxima 40  ºC), luego 
centrifugar la muestra por 10 minutos a 2500 rpm. Posteriormente se decanta el sobrenadante y el sedimento 
(que contiene los granos de polen) es deshidratado con ácido acético glacial y co ncentrado nuevamente por 
centrifugación a 2500 rpm . Después se decanta el sobrenadante y se agrega al sedimento 2.5 ml de mezcla 
acetolítica, y el tubo se mantiene en baño María a 70 ºC durante 10 minutos, agitándolo constantemente. 
Finalmente se detiene  la reacción con ácido acético glacial.  
Nuevamente se concentra la muestra por centrifugación y se enjuaga varias veces con agua destilada, 
hasta neutralizar, concentrando la muestra entre cada lavada a 2500 rpm.  
8.2.6.2 Muestras acetolizadas con pastillas m arcadoras.  
Una vez concentrados los granos de polen y previo a la acetólisis se agrega una pastilla marcadora  (de 
Lycopodium). Posteriormente, se deshace dicha pastilla añadiendo ácido clorhídrico (al 10%) y se neutraliza la 
muestra con agua destilada. Po r último, se concentra el material a 2500 g y se procede a la acetólisis.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
8.2.6.3 Preparación de laminillas acetolizadas  
Preparar en una plancha un cubreobjetos con gelatina glicerinada a temperatura menor o igual a 40 ºC. 
Por otro lado, homogeneizar la mu estra de polen (sedimento que quedo en los tubos) con una pipeta Pasteur 
y colocar una gota sobre la gelatina ya derretida, mezclarlas lentamente con un palillo hasta que ambas se 
incorporen, luego colocar el portaobjetos y etiquetar la laminilla adecuadam ente con su número de catálogo.  
8.2.6.4 Preparación de laminillas no acetolizadas  
Paralelamente a la técnica de acetólisis es recomendable la elaboración de laminillas no acetolizadas, ya 
que la acetólisis destruye hifas de hongos, algas, levaduras y algun os granos de polen que son útiles para 
evaluar el tipo de miel. Con este fin, pesar 30 g de miel y aforar a 50 mL con agua destilada caliente 
(temperatura máxima 40 ºC). Centrifugar la solución por 10 minutos a 2500 rpm y decantar el  sobrenadante 
líquido.  
Enjuagar una vez más con 10  ml de agua destilada para retirar los azúcares que aún pudieran existir de la 
miel y centrifugar por 5 minutos a 2500 rpm, decantar nuevamente el sobrenadante líquido. Posteriormente 
agregar 1 mL de glicerogelatina teñida con f ucsina al 0.5% en el tubo que contiene la pastilla y homogenizar la 
muestra por resuspensión con una pipeta Pasteur, a continuación tomar 100 microlitros y colocarlos sobre el 
portaobjetos y extender la muestra con un cubreobjetos. Dejar secar la preparaci ón a temperatura ambiente y 
sellar con laca transparente con la finalidad de hacerla perdurable,  finalmente  etiquetar la laminilla 
adecuadamente con su número de catálogo.  
8.2.6.5 Realización del análisis microscópico  
La determinación del origen botánico  y geográfico se basa en la identificación taxonómica y conteo de los 
granos de polen acetolizados y naturales , así como otras partículas en la miel. La identificación se realiza 
empleando literatura especializada y por comparación con muestras palinológic as de la colección de 
referencia, resguardadas en la palinoteca del Laboratorio de Palinología del Instituto de Geología de la UNAM.  
8.2.6.5 Existen tres grados de precisión en el conteo de granos de polen presentes en el sedimento 
obtenido de la miel. Ade más, hay casos de mieles especiales:  
8.2.6.5.1 Estimación: Se basa en la identificación y conteo de 100 granos de polen.  
8.2.6.5.2 Determinación de frecuencias de clases: En este caso se identifican y cuentan de 200 -300 
granos de polen.  
8.2.6.5.3 Conteo ex presado en porcentajes: Es necesario la identificación y el conteo de 1200 granos de 
polen, para la obtención de porcentajes.  
8.2.6.5.4 Conteo en mieles con escaso sedimento: Para estos casos especiales, se pueden contar 50, 
100-150 o 600 granos de acuerdo  al grado de precisión requerido.  
8.2.6.5.5 Conteo en miel de mieladas: En los casos de mieles de mieladas, producidas a partir de plantas 
que presentan nectarios extraflorales, se registran escasos granos de polen. Por lo que el conteo de 50 a 600 
granos es suficiente.  
8.2.6.5.6 Otros elementos en las mieladas consisten en esporas e hifas de hongos y algas. Una hifa 
multicelular, o complejos de esporas o algas se cuentan como un solo elemento.  
8.2.6.5.7 Polen de plantas polinizadas por viento o que no pres enten nectarios: Anotar separadamente 
aquellos palinomorfos provenientes de plantas polinizadas por viento o plantas que estén reportadas como 
carentes de nectarios.  
8.2.6.5.8 Fungosporas patógenas, Esporas de Uredinaceae (royas), Ustilaginaceae y Peronosp oraceae: 
Se cuentan separadamente si están contenidas en apreciable cantidad. Todo esto se debe a que algunas 
veces las abejas colectan fungosporas en sus corbículas.  
8.2.7 Expresión de resultados  
Los resultados son presentados en tablas o en gráficas con su explicación detallada y análisis de las 
mismas, para lo cual se emplea la siguiente terminología:  
8.2.7.1 Términos para la presentación de frecuencias  
8.2.7.1.1 “Muy frecuente” Para granos de polen que constituyen más del 45% del total.  
8.2.7.1.2 “Frecu ente” Para granos de polen que constituyen 16 -45% del total.  
8.2.7.1.3 “Raros” Para granos que constituyen 3 -15% del total.  
8.2.7.1.4 “Esporádicos” Para granos que constituyen menos del 3%.        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
8.2.7.2 Términos para la presentación de clases de frecuencias.  
8.2.7.2.1 Polen predominante: Más del 45% de los granos contados.  
8.2.7.2.2 Polen secundario: 16 -45% de los granos contados.  
8.2.7.2.3 Polen de menor importancia: 3 -15% de los granos contados.  
8.2.7.2.4 Polen menor: Menos del 3% de los granos contados.  
8.2.7 .3 Polen con baja representatividad  
Cuando se cuentan 1200 granos de polen, las frecuencias son expresadas en porcentajes con una 
aproximación del 1%. En el caso de granos de polen con presencia menor al 1%, s ólo debe ser citado como 
“presente”.  
8.2.7.4 Plantas anemófilas y otras plantas carentes de nectarios  
8.2.7.4.1 Los siguientes términos deben emplearse:  
8.2.7.4.2 Muy frecuente: Mayor del 45% del total.  
8.2.7.4.3 Frecuente: 16 -45% 
8.2.7.4.4 Raro: 3 -15% 
8.2.7.4.5 Esporádico: Menos del 3% de los granos c ontados.  
8.2.7.5 Cálculo de cantidad absoluta de granos de polen  
Por medio del empleo de pastillas marcadoras, cuyo contenido de esporas de Lycopodium es conocido, se 
puede calcular la cantidad total de granos de polen por unidad de volumen. Para lo cual s e emplea la 
siguiente fórmula:  
Pconc  = esporas adicionadas  X polen contado . 
esporas contadas  volumen de miel  
 
Donde Pconc: Es la cantidad absoluta de granos de polen  
8.2.8 Interpretación  
8.2.8.1 Origen geográfico  
El origen geográfico puede ser establecid o por la presencia de polen característico que está limitado a 
cierta región. Sin embargo, la región a la cual la miel pertenece puede ser determinada por la combinación de 
ciertos granos de polen y los detalles pueden ser encontrados en literatura especia lizada (floras y catálogos 
palinológicos).  
8.2.8.2 Origen botánico  
La miel es derivada de diferentes recursos de plantas, las cuales pueden ser deducidas de las frecuencias 
del polen. En general, la miel puede ser producida principalmente por una única pla nta (miel unifloral), si el 
polen de la planta es predominante. El polen de plantas anemófilas y sin nectarios queda excluido cuando se 
calculan los porcentajes. Los casos especiales están constituidos por:  
8.2.8.2.1 Polen sobrerrepresentado: Algunos casos  de sobrerrepresentación de granos de polen lo 
constituyen Myosotis, Castanea sativa y Mimosa pudica . 
8.2.8.2.2 Polen subrepresentado: Algunos granos de polen que pueden estar subrepresentados se 
presentan en una lista. Si la frecuencia de cualquiera de el los es tan alta como el porcentaje señalado, 
entonces la miel es considerada principalmente de ese recurso (monofloral). Citrus  10-20%; Salvia  10-20%; 
Tilia 20-30%; Medicago  20-30%. El polen de Epilobium y Cucurbitaceae  también están subrepresentadas.  
8.2.8.3 Cantidad absoluta por unidad de volumen  
La cantidad absoluta de granos de polen, fungosporas y algas debe estar basada por lo menos en un 
conteo de 1200 elementos, considerando la cantidad exacta de miel procesada, empleando la fórmula 
previamente cita da. Lo que permite establecer los siguientes grupos:  
8.2.8.3.1 Grupo I: miel con menos de 20,000 granos de polen en 10 g.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
8.2.8.3.2 Grupo II: entre 20,001 y 100,000 granos de polen en 10  g. 
8.2.8.3.3 Grupo III: de 100,001 a 500,000 granos de polen en 10  g. 
8.2.8.3.4 Grupo IV: de 500,001 a 1,000,000 de granos de polen en 10 g.  
8.2.8.3.5 Grupo V: más de 1,000,000 de granos de polen en 10  g. 
8.3 DETERMINACIÓN DEL CONTENIDO DE HUMEDAD MÉTODO REFRACTOMÉTRICO.  
Este método se basa en el cambio de dirección que suf ren los rayos luminosos en el límite de la 
separación de dos medios, en los cuales es distinta la velocidad de propagación.  
8.3.1 Reactivos  
8.3.1.1 Alcohol.  
8.3.1.2 Éter de petróleo.  
8.3.1.3 Bromo naftaleno.  
8.3.2 Equipo e instrumentos de medición  
Refractó metro de Abbe (calibrado)  
8.3.3 Muestreo y preparación de la muestra  
La miel se prepara para la toma de muestra como se indica en el punto 1.2  
8.3.4 Procedimiento.  
Colocar el refractómetro en una posición tal que difunda la luz natural o cualquier otra for ma de luz 
artificial, que pueda utilizarse para iluminación. Hacer circular agua a 292 K (20 °C) a través de los prismas. 
Limpiar el refractómetro cuidadosamente con alcohol y éter de petróleo antes de hacer la lectura.  
Para cargar el refractómetro, abrir el doble pri sma girando el tornillo correspondiente y poner unas gotas 
de muestra sobre el prisma, cerrar y ajustar finalmente. Verificar la exactitud de refractómetro con agua a 293 
(20 °C). A esta temperatura, el índice de refracción del agua es de 1,333 0, o bien utilizar la placa de cuarzo 
que viene con el equipo, usando bromo naftaleno. Al efectuar la lectura hacer las correcciones necesarias.  
Mover el brazo giratorio del aparato hacia adelante y hacia atrás hasta que el campo visual se divida en 
dos pa rtes, una luminosa y otra oscura. La línea divisoria entre esas dos partes, se le conoce como “línea 
margen”. Ajustar la línea margen y leer directamente el índice de refracción.  
Nota: Este método incluye también a los refractómetros manuales (o portátiles ), en los cuales únicamente 
se coloca la muestra y se observa a contraluz para tomar la lectura directamente; para el caso de 
refractómetros digitales, seguir las instrucciones del manual de operación.  
8.3.5 Cálculos y expresión de resultados  
Obtener el po rcentaje correspondiente de humedad (porcentaje m/m) utilizando el Apéndice A de los 
presentes criterios técnicos. Si la determinación se hace a una temperatura diferente de 293 K (20 °C), 
corregir la lectura a la temperatura patrón de 293 K (20 °C), de ac uerdo a las siguientes correcciones:  
8.3.5.1 Para temperaturas superiores a 293 K (20 °C), sumar 0,00023 por cada K (°C).  
8.3.5.2 Para temperaturas inferiores a 293 K (20 °C), restar 0,00023 por cada K (°C).  
8.3.6 Informe de la prueba.  
Reportar el resultad o cómo % de humedad.  
8.4 DETERMINACIÓN DE GLUCOSA Y SACAROSA  
8.4.1 Método de glucosa -oxidasa  
La enzima glucosa oxidasa a un pH determinado, actúa sobre la glucosa oxidándola con formación de 
ácido glucurónico y peróxido de hidrógeno, éste por acción de la peroxidasa deja libre oxígeno activo que se 
hace reaccionar con la o -toluidina formando un complejo colorido que absorbe en la región visible a 530 nm.  
8.4.1.1 Materiales  
8.4.1.1.1 Matraz volumétrico de 100 ml.  
8.4.1.1.2 Tubos de ensaye de 18  X150 mm.  
8.4.1.1.3 Pipeta volumétrica de tipo "A".        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
8.4.1.1.4 Material común de laboratorio.  
8.4.1.2 Reactivos  
8.4.1.2.1 Glucosa oxidasa:  Tipo II, purificada de 15 000 20 000 u/g Sigma Chemical Co. G -6125 o 
equivalente.  
8.4.1.2.2 Peroxidasa: Tipo I. P 8125.  
8.4.1.2.3 Diclorhidrato de o -toluidina  
8.4.1.2.4 Solución de glucosa oxidasa –peroxidasa:  En 200 mL de solución reguladora de pH 7.6, disolver 
60 mg de glucosa oxidasa y 16 mg de peroxidasa. Agregar una solución de 135 mg de diclorhidrato de  o-
toluidina en 260 mL de a gua destilada. Guardar en refrigeración en frasco oscuro. De ser necesario, filtrar 
antes de usar. Esta solución es estable por 6 semanas a 4 °C.  
8.4.1.2.5 Solución reguladora tris pH 7.6:  Disolver 48.44 g de tris (hidroximetil) aminometano en 500 mL de 
agua destilada, añadir 384 mL de ácido clorhídrico 0.8 M; ajustar el pH a 7.6 si es necesario y aforar a un litro 
con agua destilada.  
8.4.1.2.6 Ácido clorhídrico 4 .0 N:  En 500 mL de agua destilada agregar 330 mL de HCl concentrado 
(densid ad = 1.19 g/mL, pure za = a 37.2 %) moviendo constantemente y aforar a un litro con agua destilada.  
8.4.1.2.7 Ácido clorhídrico 6.0 N:  En 500 mL de agua destilada agregar 494 mL de HCl concentrado 
(densid ad = 1.19 g/mL, pureza = a 37.2 %), moviendo constantemente y aforar a un l itro con agua destilada.  
8.4.1.2.8 Ácido clorhídrico 0.8 N:  En 200 mL de agua destilada agregar 66 mL de HCl concentrado 
(densid ad = 1.19 g/mL, pureza = a 37.2 %), moviendo constantemente y aforar a un litro con agua destilada.  
8.4.1.2.9 Hidróxido de sodio 5 N:  Disolver 200 g de NaOH (reactivo analítico libre de carbonatos y 
humedad) en 500 mL de agua destilada y aforar a un litro con agua destilada.  
8.4.1.2.10 Solución patrón de glucosa 0.1 mg/ml:  En un matraz volumétrico de 250 mL, disolver 25 mg de 
glucos a (reactivo analítico) con 25 ml de agua. Calentar hasta ebullición durante 2 minutos y enfriar a 
temperatura ambiente y aforar al volumen con agua destilada.  
8.4.1.2.11 Indicador de fenolftaleína 0.1%:  En 50 mL de etanol disolver 0.1 g de fenolftaleína y llevar a  
100 ml con etanol.  
8.4.1.3 Equipo e instrumentos de medición  
Espectrofotómetro VIS  
8.4.1.4 Procedimiento  
Pesar un gramo de miel (con precisión de ± 0.0003 g) anotando el peso exacto, disolver en agua destilada, 
transferir a un matraz volumétrico de 100 mL y completar el volumen con agua destilada. Diluir una alícuota de 
5.0 mL en un matraz volumétrico de 100 mL y llevar a volumen con agua destilada. En cada uno de dos tubos 
de ensaye de 18X150 mm pasar con pipeta 2 porciones de 2.0 mL de la muestr a diluida tomados con una 
pipeta volumétrica de tipo "A".  
En una gradilla poner un tubo con 2.0 mL de agua, seguido de un tubo conteniendo 2.0 mL de la solución 
patrón de glucosa, 2 tubos conteniendo la muestra diluida y otro tubo con 2.0 mL de solución pa trón de 
glucosa. Repetir esta secuencia si se realizan más determinaciones. Agregar a cada tubo 5.0 mL del reactivo 
de glucosa -oxidasa (manteniendo a temperatura ambiente) a intervalos apropiados dependiendo de la técnica 
de medición que se va a emplear (p or ejemplo, de 30 a 60 segundos cuando se utilizan celdas de flujo; para 
celdas normales serán necesarios tiempos más largos) comenzando con un tubo de agua que será el testigo 
de reactivos. Después de 60 minutos de la adición del reactivo, agregar al prim er tubo 0.15 mL de ácido 
clorhídrico 4 N, mezclar perfectamente con un agitador vortex.  
Continuar con la misma secuencia de tiempo en las otras soluciones. Ajustar el cero del instrumento con el 
tubo que contiene agua y determinar la absorbancia del conten ido de cada tubo a 530 nm un minuto después 
de la adición del ácido, empleando celdas de vidrio de 1 cm de paso de luz.  
8.4.1.5 Cálculos y expresión de resultados  
Para determinar el % en peso de glucosa se hará de acuerdo a las siguientes fórmulas:  
µg de g lucosa antes de la hidrólisis =  (Absorbancia de la muestra) X (µg del estándar)  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
 (Absorbancia del estándar)  
  
% de glucosa =  (µg de la  glucosa antes de la hidrólisis) X (2.5 ) 
 (g de muestra ) 
Donde 2,5 = Es el factor 20  (factor de dilución) X  250 (volu men fracción) / (1000µ g) X 2 (volumen en tubo)  
8.4.2 Método de hidrólisis (para obtención de sacarosa)  
En un matraz de 50 mL poner 25 mL de la solución de miel, agregar 5,0 mL de ácido clorhídrico 6 N y 
poner en baño de agua a 333 K (60 °C) por 17 minutos,  enfriar la solución a temperatura ambiente  y 
neutralizar con hidróxido de sodio 5 N y ácido clorhídrico 0.8 N, utilizando fenolftaleína como indicador.  
Una vez que la muestra ha sido hidrolizada, se llevará a cabo la determinación de acuerdo al método 2. 4 
que se utilizó para la determinación de glucosa; emplee 3 tubos para la muestra y 2 para estándar.  
8.4.2.1 Cálculos y expresión de resultados  
Para determinar el % en peso se hará de acuerdo con las siguientes fórmulas:  
µg de glucosa  después de la hidróli sis =  (Absorbancia de la m uestra después de la hidrólisis)  (µg del 
estándar ) 
 (Absorbancia del estándar)  
% de sacarosa (referido en % glucosa) = (µg de la glucosa después de hidrólisis - µg glucosa antes de 
hidrólisis ) X (0.02375 ) 
 (g de muestra ) 
 
Dond e 0.02375 es el factor = µg de glucosa X 1.9 X 10 -6 X (½) X 250 X 100; µg glucosa X 1.9 = µg 
sacarosa;  
10-6 = µg / g; ½ = 2 mL analizados; 250 mL muestra diluida; 100 = para convertir a %.  
8.4.2.2 Informe de la prueba.  
Reportar como:  
8.4.2.2.1 % de azúcar invertido.  
8.4.2.2.2 % de sacarosa.  
8.4.2.2.3 % glucosa.  
8.5 DETERMINACIÓN DE ACIDEZ  
8.5.1 Método Potenciométrico  
El método se basa en la titulación potenciométrica del contenido de iones de hidrógeno, utilizando una 
solución de hidróxido de sodio valorada  hasta un pH de 8.5, adicionando después 10 mL del mismo hidróxido 
de sodio y titulando con ácido clorhídrico 0.05 N hasta un pH de 8.3.  
8.5.1.1 Materiales  
8.5.1.1.1 Bureta de 25 mL  
8.5.1.1.2 Pipeta volumétrica de 10 mL  
8.5.1.1.3 Vaso de precipitado de 250  mL 
8.5.1.1.4 Agitador magnético  
8.5.1.2 Reactivos  
8.5.1.2.1 Hidróxido de sodio grado reactivo  
8.5.1.2.2 Ácido clorhídrico grado reactivo  
8.5.1.3 Equipos e instrumentos de medición  
8.5.1.3.1 Potenciómetro        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
8.5.1.3.2 Balanza Analítica  
8.5.1.4 Preparación de soluciones  
8.5.1.4.1 Solución de hidróxido de sodio 0.05 N: Pesar 0,2 g de NaOH (GR), disolver en agua destilada y 
llevar a volumen de 100 mL.  
8.5.1.4.2 Solución de ácido clorhídrico 0.05 N: En 200 mL de agua destilada agregar 4.07 mL de HCl 
concentrado ( densidad 1.19 g/mL, pureza 37.6 %) moviendo constantemente. Llevar a volumen de 1000 mL 
con agua destilada.  
8.5.1.5 Procedimiento  
En un vaso de precipitado de 250 mL pesar 10 g de miel, agregar 75 mL de agua destilada libre de dióxido 
de carbono, disolver me zclando por medio de un agitador magnético. Introducir el electrodo del potenciómetro 
en la solución, tomar el pH. Titular con NaOH 0.05 N a una  velocidad aproximada de 5 mL/ minuto deteniendo 
la adición cuando el pH sea de 8,5 inmediatamente después agrega r 10 mL de hidróxido de sodio 0,05 N. 
Titular por retroceso con ácido clorhídrico 0.05 N hasta alcanzar un pH de 8.3. Hacer un testigo con 75 mL de 
agua destilada libre de dióxido de carbono.  
8.5.1.6 Cálculos y expresión de resultados  
Los datos se expresan  en miliequivalentes de ácido por kilogramo de miel (meq/kg)  
Acidez libre = (mL de hidróxido de sodio 0.05 N de la muestra ) - (mL de hidróxido  de sodio del blanco ) X 
50 
g de muestra  
Lactona = (10 - mL de ácido clorhídrico 0.05 N ) X 50 
 g de muestra  
Acidez total = Acidez libre + Lactona  
8.5.1.7 Informe de la prueba.  
Reportar como miliequivalentes de ácido/kg  
8.5.2 Método volumétrico  
Se basa en el proceso de neutralización de un ácido mediante un hidróxido en presencia de Fenolftaleina 
como indicador.  
8.5.2.1  Material  
8.5.2.1.1 Bureta de 25 mL  
8.5.2.1.2 Matraz Erlenmeyer de 125 mL  
8.5.2.1.3 Vaso de precipitado de 100 mL  
8.5.2.1.4 Agitador magnético  
8.5.2.2 Reactivos  
8.5.2.2.1 Hidróxido de sodio grado reactivo  
8.5.2.2.2 Fenolftaleí na grado reactivo  
8.5.2.2.3 Agua destilada  
8.5.2.3 Equipos e instrumentos de medición  
Balanza Analítica  
8.5.2.4 Preparación de soluciones  
8.5.2.4.1 Hidróxido de sodio 0.1N: Pesar 4.5 g de hidróxido de sodio, disolver con agua destilada libre de 
CO2, dejar enfriar y reposar 24 h, al día  siguiente llevar a volumen de 1000 mL y valorar.  
8.5.2.4.2 Indicador de fenolftaleína al 1%: Pesar 1 g de fenolftaleína, disolver en etanol y llevar a volumen 
de 100 ml.  
8.5.2.5 Procedimiento  
Pesar 5 g de muestra disolver con 75 mL de agua destilada libre  de CO2. Agregar 0.3 mL de fenolftaleína. 
Titular con NaOH 0.1N La titulación se concluye cuando se obtiene un vire levemente rosáceo del indicador en 
la muestra de miel.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
8.5.2.6 Cálculos y expresión de resultados  
Los datos se expresan en miliequivalentes de ácido por kilogramo de miel (meq/kg)  
8.6 DETERMINACIÓN DE CENIZAS (SUBSTANCIAS MINERALES)  
8.6.1 Material  
Cápsula de platino  
8.6.2 Equipos e instrumentos de medición  
Mufla  
8.6.3 Procedimiento  
En una cápsula de platino calcinada hasta peso constante (± 0. 0003 g del peso de la cápsula), pesar de  5 
a 10 g de miel, poner bajo una lámpara infrarroja de 375 w hasta carbonizar la muestra evitando pérdidas por 
formación de espuma y derrames. Una vez que la muestra haya sido carbonizada y no presente espuma, 
calcinar en una mufla a 600 °C hasta peso constante.  
8.6.4 Cálculos y expresión de resultados  
% sólidos de cenizas = peso de cenizas  X 100  
peso de la muestra  
8.7 DETERMINACIÓN DE COLOR (Escala Pfund)  
8.7.1 Equipos e instrumentos de medición  
Colorímetro Pfund ( Escala 0 -144 mm)  
8.7.2 Procedimiento  
Tomar una muestra de miel y colocarla directamente en la cubeta del colorímetro cubriéndola totalmente. 
Determinar el color de la muestra de miel comparándola contra la escala Pfund.  
8.7.3 Cálculos y expresión de result ados  
El resultado se debe emitir de acuerdo a la escala del aparato, y aplicar la corrección marcada para cada 
lectura conforme al siguiente cuadro:  
Color  Graduación en mm  
Blanco agua  0 - 8 
Extra blanco  9 - 16 
Blanco  17 - 34 
Ámbar extra claro  35 - 50 
Ámbar claro  51 - 84 
Ámbar  85 - 114 
Obscuro  115 - 140 
 
8.8 DETERMINACIÓN DE SÓLIDOS INSOLUBLES EN AGUA  
Disolver 20 g de miel en una cantidad adecuada de agua destilada a 353 K (80 °C) y mezclar, filtrar a 
través de un crisol fino de vidrio sinterizado "S hoot" (tamaño del poro de 15 -40 ì) previamente secado y tarado 
a peso constante, lavar a fondo con agua caliente a 353 K (80 °C) hasta eliminación de los azúcares. Dejar 
secar el crisol durante una hora a 408 K (135 °C), enfriar y pesar con aproximación de  0.1 mg.  
8.8.1 Cálculos  
% sólidos insolubles en agua = peso de sólidos insolubles X 100  
peso de la muestra  
8.9 DETERMINACIÓN DEL CONTENIDO DE AZÚCAR REDUCTOR  
El método es una modificación del procedimiento de Lane y Eynon (1923), que consiste en reducir la  
modificación de Soxhlet de la solución de Fehling titulándola, en el punto de ebullición, con una solución de los 
azúcares reductores de la miel, utilizando azul de metileno como indicador interno. Para lograr la máxima       (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
exactitud en este tipo de determina ción, es preciso que la reducción de la solución de Fehling durante el 
proceso de normalización y en la determinación de los azúcares reductores en la solución de miel se realice a 
volumen constante. Por lo tanto, es esencial efectuar una titulación prelim inar para determinar el volumen de 
agua que debe añadirse antes de realizar las determinaciones para satisfacer este requisito.  
8.9.1 Reactivos y soluciones  
Modificación de Soxhlet de la solución de Fehling:  
8.9.1.1 Solución A:  Disolver 69.28 g de sulfato de cobre pentahidrato (CuSO4°5H2O) con agua destilada 
hasta obtener 1 litro de solución. Conservar durante un día antes de efectuar la titulación).  
8.9.1.2 Solución B:  Disolver 346 g de tartrato de potasio y sodio (KNaC4H4O6°4H2O) y 100 g de hidróxido 
de s odio (NaOH) con agua destilada hasta obtener 1 litro. Filtrar la solución con un filtro  de asbesto 
preparado.  
8.9.1.3 Solución patrón de azúcar invertido (10 g/l):  Pesar exactamente 9.5 g de sacarosa pura, añadir  5.0 
mL de ácido clorhídrico (HCl puro al 36.5 por ciento p/p, aproximadamente) y diluir con agua hasta obtener 
unos 100 mL; conservar durante varios días esta solución acidificada a la temperatura ambiente (alrededor de 
7 días a 12 – 15 °C, o 3 días a 20 - 25 °C ) y diluir después hasta 1 litro. ( El azúcar invertido acidificado al 1.0 
por ciento permanece estable durante varios meses). Neutralizar un volumen apropiado de esta solución con 
solución de hidróxido de sodio 1 N (40 g/L) inmediatamente antes de utilizarla y diluir hasta obtener la 
concen tración necesaria (2 g/L) para la normalización. Disolver 2 g en agua destilada y diluir hasta 1 litro.  
8.9.1.4 Crema de alúmina:  Preparar una solución saturada fría de alumbre (sulfato de aluminio y potasio, 
KAl(SO4 )2 ° 24 H2O) en agua. Añadir hidróxido d e amonio agitando constantemente hasta obtener una 
solución alcalina al tornasol, dejar que el precipitado se sedimente; lavar por decantación con agua hasta que 
el agua procedente de los lavados, tratada con solución de cloruro de bario (12%) muestre sólo  ligeros 
indicios de sulfato. Verter el agua sobrante y conservar la crema restante en una botella taponada.  
8.9.2 Equipos e instrumentos de medición  
8.9.2.1 Parrilla eléctrica con control de temperatura.  
8.9.2.2 Balanza analítica con sensibilidad de 0.1 m g. 
8.9.3 Preparación de la muestra de ensayo  
8.9.3.1 Primer procedimiento (aplicable a mieles que puede contener sedimentos).  
8.9.3.1.1 Tomar una muestra de 25 g (P1) de la miel homogeneizada, pesarla exactamente y ponerla en 
un matraz volumétrico de 100 m L; añadir 5 mL de crema de alúmina, diluir con agua a 20 °C hasta completar 
el volumen y filtrar.  
8.9.3.1.2 Diluir 10 mL de esta solución con agua destilada hasta obtener 500 mL (solución diluida de miel).  
8.9.3.2 Segundo procedimiento.  
8.9.3.2.1 Pesar cui dadosamente una cantidad representativa de unos 2 g (P2) de la muestra de miel 
homogeneizada, disolver con agua destilada y diluir en un matraz graduado hasta obtener 200 mL de solución 
(solución de miel).  
8.9.3.2.2 Diluir 50 mL de la solución de miel con agua destilada hasta obtener 100 mL (solución diluida  de 
miel).  
8.9.4 Normalización de la solución de Fehling modificada  
Normalizar la solución A modificada de Fehling, de forma que 5.0 mL exactamente, mezclados con 5.0 mL, 
aproximadamente, de la solución  B de Fehling, reaccionen por completo con 0.005 g de azúcar invertido, 
añadido en forma de 25 mL de solución diluida de azúcar invertido (2 g/L).  
8.9.5 Titulación preliminar  
Al final de la titulación de la reducción, el volumen total de los reactivos añad idos debe ser de 35 mL. Esto 
se consigue añadiendo el volumen adecuado de agua antes de comenzar la titulación. Puesto que en los 
criterios de composición de la norma para la miel se especifica que ésta debe contener más de 60% de 
azúcares reductores (calc ulados como azúcar invertido), es necesaria una titulación preliminar para 
determinar que el volumen de agua que es preciso añadir a una muestra dada para que permita asegurar que Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
la reacción se realice a volumen constante. Para calcular el volumen de agua  que hay que añadir, se resta de 
25 mL del volumen de solución diluida de miel empleado en la titulación preliminar (X mL).  
Verter con una pipeta volumétrica 5.0 mL de la solución A de Fehling en un matraz Erlenmeyer de 250 mL, 
y añadir aproximadamente 5 m L de la solución B de Fehling. Añadir 7.0 mL de agua destilada, un poco de 
piedra pómez en polvo, u otro regulador adecuado de la ebullición, y adicionar con una bureta unos 15 mL  de 
solución diluida de miel. Calentar la mezcla sobre una tela metálica y m echero o sobre una parrilla de 
calentamiento hasta lograr la ebullición. Mantener en ebullición moderada durante 2 minutos. Añadir 1.0 mL 
de solución ac uosa de azul de metileno al 0.2 %, sin interrumpir la ebullición, y completar la titulación durante 
un tiempo total máximo de ebullición de 3 minutos, con pequeñas adiciones repetidas de solución diluida de 
miel, hasta que el indicador pierda el color. Se debe observar el color del líquido sobrenadante. Tomar nota 
del volumen total de solución de miel (X mL) que se ha utilizado.  
8.9.6 Determinación  
Calcular la cantidad de agua que es necesario añadir para que, al final de la titulación, el volumen total de 
los reactivos sea de 35 mL; para ello, restar de 25 mL la titulación preliminar (X mL) Verter con una pip eta  5.0 
mL de la solución A de Fehling en un matraz Erlenmeyer de 250 mL, y añadir aproximadamente 5.0 mL  de la 
solución B de Fehling.  
Añadir agua destilada (25 - X mL), un poco de piedra pómez en polvo u otro regulador adecuado de la 
ebullición y, de un a bureta, todo el volumen, menos 1.5 mL de la solución diluida de miel determinada en  la 
titulación preliminar. Calentar la mezcla sobre una tela metálica y mechero o sobre una parrilla de 
calentamiento, hasta lograr la ebullición y manteniéndola en forma  moderada durante 2 minutos. Añadir  1.0 
mL de solución de azul de metileno al 0.2 por ciento sin interrumpir la ebullición hasta los 3 minutos, con 
pequeñas adiciones repetidas de solución diluida de miel, hasta que el indicador pierda el color. Tomar  nota 
del volumen total de solución diluida de miel. La diferencia entre titulaciones duplicadas no debe ser mayor de 
0.1 mL.  
8.9.7 Cálculo y expresión de los resultados  
Cuando se haya empleado el primer procedimiento (8.9.3.1):  
C = 25   X  1000  
P1 Y1 
Cuando se haya empleado el segundo procedimiento (8.9.3.2):  
C =  2   X  1000  
  P2  Y2 
Donde:  
C = g de azúcar invertido por 100 g de miel  
P1 = peso (g) de la muestra de miel empleada según el procedimiento  
P2 = peso (g) de la muestra de miel empleada según el proc edimiento  
Y1 = volumen (mL) de solución diluida de miel consumida durante la determinación efectuada según 
procedimiento  
Y2 = volumen (mL) de solución diluida de miel consumida durante la determinación efectuada según el 
procedimiento.  
8.9.8 Criterios de a ceptación y rechazo  
Para la exactitud y la reproducibilidad de la determinación, es esencial establecer para cada muestra 
individual cual es el volumen de agua necesario para obtener un volumen total de mezcla reactiva en mL.  
En la siguiente tabla se prese ntan algunos volúmenes típicos que es posible encontrar en la titulación 
preliminar para los contenidos de incremento del azúcar invertido indicados, en el supuesto de que la muestra 
de ensayo (primer procedimiento) pese unos 25 g o que la muestra de ensay o (segundo procedimiento) pese 
aproximadamente 2 g.  
Por ciento de azúcar invertido y relación de agua destilada que se debe añadir.  
CONTENIDO DE AZÚCAR 
INVERTIDO (%)  VOLUMEN DE AGUA DESTILADA 
QUE SE DEBE AÑADIR (mL)  
60 8.3       (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
65 9.6 
70 10.7 
75 11.6 
 
8.10 DETERMINACIÓN DE HIDROXIMETILFURFURAL (HMF)  
8.10.1 Método Winkler  
8.10.1.1 Reactivos y soluciones  
8.10.1.1.1 Agua grado cromatográfico.  
8.10.1.1.2 Ácido acético glacial grado reactivo.  
8.10.1.1.3 Isopropanol grado reactivo.  
8.10.1.1.4 Para -toluidina espec ial para análisis de hidroximetilfurfural.  
8.10.1.1.5 Ácido barbitúrico.  
8.10.1.1.6 Estándar de hidroximet ilfurfural con una pureza de 99 % aproximadamente.  
8.10.1.2 Material  
8.10.1.2.1 Frasco color ámbar de 100 y 1000 mL.  
8.10.1.2.2 Gradilla para tubos de ensayo.  
8.10.1.2.3 Matraz Erlenmeyer de 125 mL.  
8.10.1.2.4 Matraces volumétricos de 50, 100 y 250 mL.  
8.10.1.2.5 Papel filtro Whatman.  
8.10.1.2.6 Pipeta de 250 mL.  
8.10.1.2.7 Pipeta volumétrica de 1, 2 y 5 mL.  
8.10.1.2.8 Tubos de ensaye de 18 x 150 mm.  
8.10.1.2.9 Vaso de precipitado de 100 mL.  
8.10.1.3 Equipos e instrumentos de medición  
8.10.1.3.1 Espectrofotómetro ultravioleta visible  
8.10.1.3.2 Agitador Vortex  
8.10.1.3.3 Balanza Analítica  
8.10.1.3.4 Baño María  
8.10.1.3.5 Pipeteador automático o  propipeta  
8.10.1.3.6 Refrigerador  
8.10.1.4 Preparación de soluciones  
8.10.1.4.1 Ácido barbitúrico 0.5 %: Pasar por un matraz volumétrico de 100 mL, 500 mg de ácido 
barbitúrico, disolver en aproximadamente 70 mL de agua destilada en baño María, enfriar y completar  hasta 
el volumen.  
8.10.1.4.2 p-toluidina 10 %:  Disolver en un matraz volumétrico de 100 mL, 10 g de p -toluidina con 50 mL 
de isopropanol, calentando suavemente en baño maría, enfriar, agregar 10 mL de ácido acético glacial y llevar 
al volumen con isopropanol . Dejar reposar 24 horas antes de usar. Guardar en frasco ámbar en refrigeración.  
8.10.1.5 Preparación de estándares  
Solución stock de HMF: Pesar 20 mg aproximadamente de estándar de hidroximetilfurfural, diluir con agua 
destilada y llevar a volumen de 100  mL. 
8.10.1.6 Preparación de la curva estándar de HMF  
Preparar diluciones de HMF que contengan 1, 2, 3, 4, y 5 µg/mL, agregar 5.0 mL de p -toluidina y 1.0 mL 
de ácido barbitúrico, agitar por 1 o  2 minutos. Transferir rápidamente a celdas de 1.0 cm de paso d e luz y leer 
la absorbancia a 550 nm cuando haya alcanzado su máximo desarrollo de color (1 a 4 minutos), utilizando 
agua tratada de igual manera como en el testigo.  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
8.10.1.7 Preparación de la muestra y determinación  
Disolver 10 g de miel con 20 mL de agua , tomar con pipeta 2 alícuotas de 2.0 mL de solución de miel y 
agregar a cada uno 5.0 mL de p -toluidina. A uno de los tubos agregar 1.0 mL de agua (testigo) y al otro  1.0 
mL de ácido barbitúrico, agitar por 1 o 2 minutos. Transferir rápidamente a celdas d e 1 cm y leer la 
absorbancia de la muestra a 550 nm, ajustando a cero con el testigo.  
8.10.1.8 Cálculos y expresión de los resultados  
Determinar el contenido de HMF interpolando el valor de absorbancia obtenida en la gráfica preparada con 
las absorbancias de la curva de calibración o utilizar la siguiente fórmula:  
mg de HMF/100 g de miel =   (Absorbancia de la muestra) (10)     X   19.2  
  g de muestra  
Donde: 19.2 = Factor de extinción molar del HMF  
8.10.2 Método de cromatografía de líquidos de alta resolució n (HMF método HPLC)  
El Hidroxymetilfurfural (HMF) es determinado en una solución acuosa de miel limpia y filtrada, usando un 
HPLC de fase reversa con detector UV, las señales de las muestras son comparadas con soluciones 
estándares de concentración conocid a. 
8.10.2.1 Material  
8.10.2.1.1 Matraz volumétrico clase “A” de 50 mL y 100 mL.  
8.10.2.1.2 Sistema de filtración con membranas 0.45 µm. 
8.10.2.1.3 Acrodiscos de 0.45 µm. 
8.10.2.1.4 Viales con tapa de teflón para HPLC.  
8.10.2.1.5 Tubos de centr ífuga de poli propileno con tapón de rosca.  
8.10.2.1.6 Matraz Kitazato.  
8.10.2.1.7 Pipetas clase “A”.  
8.10.2.1.8 Micropipeta volumen adecuado.  
8.10.2.2 Reactivos  
8.10.2.2.1 Agua HPLC.  
8.10.2.2.2 Metanol HPLC.  
8.10.2.2.3 Estándar de 5 -Hidroximetil -2-furancarbaldehído (HM F). 
8.10.2.3 Equipos e instrumentos de medición  
8.10.2.3.1 Sistema de cromatografía de líquidos.  
8.10.2.3.2 Sistema de bombas.  
8.10.2.3.3 Detector de UV -Visible o arreglo de diodos de longitud de onda variable.  
8.10.2.3.4 Columna HPLC de 250 x 4.6 mm o 125  x 4.6 mm empacada con ODS (C18) de 5 mm de 
tamaño de partícula.  
8.10.2.3.5 Inyector manual o automuestreador con loop de 20 mL.  
8.10.2.3.6 Sistema de degasificación por helio, membrana de vacío, ultrasoniso o agitación.  
8.10.2.3.7 Graficador, integrador e lectrónico o estación de datos con el software cromatográfico apropiado.  
8.10.2.3.8 Agitador mecánico.  
8.10.2.3.9 Balanza Analítica.  
8.10.2.4 Preparación de soluciones  
Estándar stock: Cuidadosamente pesar 10 mg del estándar de referencia de Hidroxymetilfur fural dentro de 
un matraz ámbar de 100 mL con tapón, disolver y llevar a volumen con agua destilada, tapar y agitar.  
8.10.2.5 Preparación de la curva estándar de HMF  
Preparar una matriz de soluciones acuosas con concentraciones de 1, 2, 5, y 10 mg/L estas soluciones se 
tienen que preparar el día de su uso; filtrar cada uno de los estándares dentro de los viales usando un 
acrodisco de 0.45 µm tapar el vial con septa de teflón.        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
8.10.2.6 Preparación de la muestra  
Cuidadosamente pesar 10 g de la muestra de miel  disolver en aproximadamente 25 mL de agua destilada 
y transferir a un matraz volumétrico de 50 mL diluir a volumen con agua destilada, filtre la solución  a través de 
una membrana 0.45 µ m, esta solución está lista para leer en el cromatógrafo.  
8.10.2.7 Procedimiento  
Fijar los siguientes parámetros cromatográficos de acuerdo con el manual de operación del equipo:  
8.10.2.7.1 Flujo: 0,5 mL/min  
8.10.2.7.2 Fase móvil: Agua 90%, Metanol 10%.  
8.10.2.7.3 Longitud de onda: 285 nm  
8.10.2.7.4 Volumen de inyección: 20 mL 
8.10.2.7.5 Tiempo de análisis: aproximadamente 7 minutos.  
8.10.2.7.6 Correr la fase móvil a través del sistema a un flujo de 0.5 mL/min hasta obtener una línea base 
estable. Inyectar 20 mL de cada una de las soluciones patrón. Obtener el cromatograma de  cada una de ellas. 
Elaborar una curva de calibración, graficando el área del pico en función de la concentración. Ajustar la curva 
por medio de mínimos cuadrados (regresión lineal). De la misma forma inyectar las muestras filtradas y 
obtener su cromatogra ma. Identificar el pico correspondiente a HMF comparando el tiempo de retención 
contra el obtenido en las soluciones patrón. Calcular la concentración a partir de la curva de calibración. 
Asegurarse de que las concentraciones de HMF de las muestras caen de ntro del intervalo de la curva de 
calibración. De no ser así, efectuar la dilución correspondiente y volver a analizar.  
8.10.2.8 Cálculos y expresión de resultados  
De la ecuación de la recta obtenida: y= mx + b  
Donde:  
y= área del pico correspondiente al HM F en la muestra.  
m= pendiente,  
x= concentración de HMF en la muestra (mg/L).  
b= ordenada al origen.  
Despejar X para obtener la concentración de HMF en la muestra y aplicar la siguiente fórmula:  
mg/kg de HMF = (Conc. de HMF en la muestra) (50) (factor de di lución 10)  
8.11 DETERMINACIÓN DE LA ACTIVIDAD DE LA DIASTASA  
Se basa en el método de Schade y otros (1958), modificado por White y otros (1959) y por Hadorn (1961).  
8.11.1 Reactivos y soluciones  
8.11.1.1 Solución primaria de yodo:   Disolver 8.8 g de yodo r eactivo analítico, en 30 o  40 mL de agua que 
contenga 22 g de yoduro de potasio reactivo analítico, y diluir con agua destilada en un matraz aforado de 1 
litro, aforar a volumen.  
8.11.1.2 Solución de yodo 0.0007 N:  Disolver 20 g de yoduro de potasio reacti vo analítico en un matra z 
volumétrico de 500 mL con 30 o  40 mL de agua destilada. Añadir 5.0 mL de solución primaria de yodo y aforar 
al volumen. Preparar una solución nueva cada dos días.  
8.11.1.3 Amortiguador de acetato -pH 5.3:  Disolver 87 g de acetato de sodio trihidratado (Na CH3 COO  3 
H20) en 400 mL de agua destilada, añadir unos 10.5 mL de ácido acético glacial disolver en un poco de agua 
destilada y completar hasta 500 mL. Ajustar el pH a 5.3 con acetato de sodio o ácido acético, según el caso, 
utilizando un potenciómetro.  
8.11.1.4 Solución de cloruro de sodio 0.5 M:  Disolver 14.5 g de cloruro de sodio (NaCl), reactivo analítico, 
en agua destilada hervida, y completar hasta 500 mL transferir a un frasco ámbar con tapón hermético; el 
tiempo de conserv ación está limitado por la formación de moho.  
8.11.1.5 Solución de almidón:  
8.11.1.5.1 Preparación de almidón soluble: En un matraz cónico sumergido en un baño de agua, y provisto 
de un refrigerante de reflujo, hervir durante una hora 20 g de fécula de pap a, en una mezcla de 100 mL de 
etanol al 95% y 7.0 mL de ácido clorhídrico 1 M. Enfriar, filtrar a través de un crisol filtrante con placa cerámica 
y tamaño de los poros de 90 a 150 µ m; lavar con agua hasta que el agua de lavado no dé reacción a los Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
cloruro s. Dejar escurrir perfectamente y secar el almidón al aire a 35 °C. El almidón soluble debe conservarse 
en un frasco de vidrio ámbar con tapón hermético.  
8.11.1.5.2 Determinación del contenido de humedad del almidón soluble: Pesar con exactitud una cantida d 
de, aproximadamente, 2 g de almidón soluble y extenderla formando una capa delgada sobre el fondo de un 
pesafiltros (diámetro de aproximadamente 5 cm). Secar durante una hora y media a 130 °C. Dejar enfriar en 
un desecador y pesar de nuevo. La pérdida de  peso respecto de 100 g representa al contenido de humedad. 
El contenido de humedad de dicho almidón debe ser de 7 -8 % m/m, según la humedad del aire en que se ha 
secado la muestra.  
8.11.1.5.3 Preparación de la solución de almidón: Emplear un almidón con u n índice de azul comprendido 
entre 0.5 – 0.55 (Unidades de absorbancia = índice de azul) utilizando una celda de vidrio de 1 cm de paso de 
luz; para determinar el índice de azul utilícese el método descrito más adelante. Pesar una cantidad de 
almidón equiv alente a 2.0 g de almidón anhídro. Mezclar con 90 mL de agua en un matraz cónico de 250 mL. 
Llevar rápidamente a ebullición, agitando la solución cuando sea posible, calentando sobre una parrilla 
eléctrica o utilizando mechero con malla de alambre grueso p referiblemente con el centro de asbesto. Hervir 
con suavidad durante 3 minutos, tapar y dejar enfriar espontáneamente hasta la temperatura ambiente. 
Trasvasar a un matraz volumétrico de 100 mL en un baño de agua a 40 °C hasta que el líquido alcance esa 
temperatura, y completar hasta volumen a 40 °C.  
8.11.2 Método para determinar el índice de azul del almidón  
Disolver, por el método anterior, una cantidad de almidón equivalente a 1 g de almidón anhídro; enfriar la 
solución, añadir 2.5 mL de solución amortigu adora de acetato y completar el volumen de 100 mL del matraz 
volumétrico. Mezclar en un matraz volumétrico de 100 mL, 75 mL de agua destilada, 1 mL de ácido clorhídrico 
1 M y 1.5 mL de solución de yodo 0.02 N. A continuación, añadir 0.5 mL de solución de a lmidón y completar 
con agua hasta el volumen. Dejar reposar una hora en la oscuridad y leer después en un espectrofotómetro a 
660 nm, empleando una celda de vidrio de 1 cm de paso de luz, y un testigo que contenga todos los reactivos, 
excepto la solución d e almidón. La lectura en la escala de absorbancia = índice de azul.  
8.11.3 Equipos e instrumentos  
8.11.3.1 Baño de agua a 40 ± 0.2 °C.  
8.11.3.2 Espectrofotómetro que permita leer a 660 nm.  
8.11.4 Muestreo y preparación de las muestras  
La muestra de miel se  prepara como se indica en el punto 7.1.2, sin calentar.  
8.11.5 Preparación de las muestras de ensayo  
Solución de miel: pesar 10.0 g de miel en un vaso de precipitados de 50 mL y añadir 5.0 mL de solución 
de amortiguadora de acetato y 20 mL de agua destila da para disolver la muestra. Disolver completamente la 
muestra agitando la solución fría. Adicionar 3.0 mL de solución de cloruro de sodio en un matraz aforado de 
50 mL, pasar a este matraz la muestra de miel disuelta y completar el volumen hasta 50 mL.  
Es esencial que la miel haya sido mezclada con la solución amortiguadora antes de entrar en contacto con 
el cloruro de sodio.  
8.11.6 Normalización de la solución de almidón  
Calentar la solución de almidón a 40 °C y con una pipeta adicionar 5 mL de esta soluc ión en 10 mL de 
agua a 40 °C, mezclar bien. Mediante una pipeta, verter 1.0 mL de esta última solución en 10 mL de solución 
de yodo 0,0007 N, diluida con 35 mL de agua y mezclar bien. Leer la absorbancia a 660 nm contra un testigo 
de agua, utilizando una c elda de vidrio 1 cm. La absorbancia debe ser de 0.760 ± 0.020. En caso necesario, 
ajustar el volumen de agua añadido hasta la absorbancia exacta.  
8.11.7 Determinación de la absorbancia mediante una pipeta  
Verter 10 mL de solución de miel en una probeta gra duada de 50 mL y colocar ésta en un baño de agua a 
40 ± 2 °C, justo con el matraz que contiene la solución de almidón. Transcurrido 15 minutos, adicionar con una 
pipeta 5.0 mL de solución de almidón en la solución de miel, mezclar y poner en marcha un cron ómetro. A 
intervalos de 5 minutos, tomar porciones de 1.0 mL y adicionarlas con 10 mL de solución de yodo 0.0007 N. 
Mezclar. Determinar inmediatamente la absorbancia a 660 nm en el espectrofotómetro, empleando una celda 
de 1 cm. Seguir tomando porciones de  1.0 mL a intervalos hasta lograr una absorbancia menor de 0.235.  
8.11.8 Cálculos y expresión de los resultados        (Primera Sección)  DIARIO OFICIAL  Jueves 20 de diciembre de 2018  
Representar gráficamente la absorbancia en función del tiempo (minutos) sobre un papel cuadriculado. 
Trazar una línea recta que una por lo menos  los tres últimos puntos de la gráfica, para determinar el momento 
en que la mezcla de reacción alcanza la absorbancia de 0.235. Dividir 300 por el tiempo en minutos para 
obtener el índice de diastasa (ID). Este índice expresa la actividad de la diastasa e n mililitros de solución al 1 
por ciento hidrolizada por la enzima contenida en 1 g de miel, en 1 hora, a 40 °C. Este índice de diastasa 
corresponde al índice de la escala de Gothe.  
Actividad de la diastasa = milil itros de solución de almidón (1 %) / gramos  de miel / hora a 40 °C.  
8.12 DETERMINACIÓN DE DEXTRINAS  
8.12.1 Procedimiento  
En una cápsula de porcelana disolver, con aproximadamente 4.0 mL de agua, 8 g de miel (4 g para miel 
obscura), transferir a un matraz volumétrico de 100 mL, en caso de quedar res iduos en la cápsula, disolver 
con 2.0 mL de agua, agregar esta solución al matraz y lavar la cápsula con 2 porciones de 1.0 mL de agua, 
agregar 5.0 a 6.0 mL de alcohol absoluto antes de cada decantación.  
Llevar el matraz al volumen con alcohol absoluto, ag itado constantemente. Dejar que las dextrinas se 
sedimenten y el líquido sea claro. Decantar el líquido claro a través de papel filtro y lavar el residuo del matraz 
con 10 mL de alcohol, pasando los lavados a través del filtro. Disolver las dextrinas en el  matraz con agua 
hirviendo y filtrar en el papel ya usado, lavar recibiendo el filtrado en una cápsula tarada conteniendo arena 
seca, el matraz y el filtro varias veces con pequeñas porciones de agua caliente. Evaporar en baño de agua 
seca hasta peso const ante a 343 K (70 °C) bajo una presión de aproximadamente 50 mm de mercurio.  
Disolver las dextrinas con agua y llevar a volumen conocido con agua, usando 50 mL de agua por cada 
0.5 g de precipitado. Determinar los az úcares reductores antes y después de la i nversión.  
8.12.2 Cálculos y expresión de los resultados  
Calcular el peso de azúcar invertida después de la inversión y el de sacarosa.  
Cálculos para dextrinas:  
g de dextrinas = g del filtrado X (g azúcares reductores + g azúcar invertida + sacarosa)  
% de d extrinas = g de dextrinas   X 100  
  g de muestra  
8.13 Para las pruebas microbiológicas los métodos de prueba se establecen en la NOM -110-SSA1 -1994 
Bienes y servicios. Preparación y dilución de muestras de alimentos para su análisis microbiológico y la NOM -
111-SSA1 -1994 Bienes y servicios. Método para la cuenta de mohos y levaduras en alimentos.  
9. Etiquetado  
9.1 El etiquetado deberá sujetarse a lo establecido en la NOM -145-SCFI -2001: Información comercial -
etiquetado de miel en sus diferentes presentaciones y  en la NOM -051-SCFI -2010 -Especificaciones generales 
de etiquetado para alimentos y bebidas no alcohólicas pre envasados. Además el producto que sea 
etiquetado como miel, deberá cumplir con lo indicado en la presente Norma Oficial Mexicana y especificar su 
país de origen. En caso de mezclas que contengan miel procedente de diferentes países, se debe especificar 
la proporción.  
10. Miel como ingrediente  
10.1 Los productos que ostenten contener miel como ingrediente, ésta deberá cumplir las especificaciones 
establecidas en la presente norma, indicando en la etiqueta la proporción contenida o utilizada  para su 
elaboración.  
11. Evaluación de la conformidad  
11.1 La evaluación de la conformidad del producto objeto de la presente Norma Oficial Mexicana, se 
llevará a  cabo en laboratorios oficiales, y en laboratorios acreditados en los términos de lo dispuesto por la 
Ley Federal sobre Metrología y Normalización.  
12. Sanciones  
El incumplimiento a las disposiciones contenidas en la presente Norma, será sancionado conform e a lo 
establecido en la Ley Federal sobre Metrología y Normalización.  
13. Bibliografía  Jueves 20 de diciembre de 2018  DIARIO OFICIAL  (Primera Sección)      
13.1 Codex Stan 12 –1981, Rev. En 1987 y 2001.  
13.2 Manual de Apicultura Básica. SAGARPA 2001.  
13.3 CONABIO 2008. Mieles Peninsulares y Diversidad. Comisión Nacional par a el Conocimiento y uso de 
la Biodiversidad -Corredor Biológico Mesoamericano -México. México.  
13.4 Directiva 2001/110/CE del Consejo de 20 de diciembre de 2001. Relativa a la miel.  
14. Disposiciones transitorias  
Artículo único.  El presente Proyecto de Norma  Oficial Mexicana estará a disposición de los interesados, 
para que presenten sus comentarios, por un periodo de 60 días naturales siguientes al de su publicación en el 
Diario Oficial de la Federación.  
Ciudad de México , a 13 de septiembre de 2018. - El Dire ctor General de Normalización Agroalimentaria de 
la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación , Luciano Vidal  García .- 
Rúbrica.