- J

Jack T.R., Rogoz E., Bramhill B. and Roberge P.R. (1994), ‘The characterization of sulfate-reducing bacteria in heavy oil waterflood operations’, *Microbiologically Influenced Corrosion Testing*, ASTM STP 1232, Kearns J.F. and Little B.J., Editors, ASTM

Jaffe L.F. and Nuticelli R. (1974), ‘An ultrasensitive vibrating probe for measuring steady electrical currents’, *J. Cell. Bio.*, 63, 614

Johnsen E. and Bardal E. (1986), ‘The effect of microbiological slime layer on stainless steel in natural seawater’, in *Corrosion/86*, paper No. 227, NACE International, Houston, TX

- K

Kashara K. and Kajiyama F. (1985), ‘Role of sulfate reducing bacteria in the localized corrosion of buried pipes’, in *Biologically Induced Corrosion*, Dexter S.C., Editor, Proceedings of the International Conference on Biologically Induced Corrosion, NACE

Kearns J.R., Scully J.R., Roberge P.R., Reichert D.L. and Dawson J.L. (1996), Editors, ASTM STP 1277, ‘Electrochemical noise measurement for corrosion applications’, West Conshohocken, PA

Kennedy J.F., Barker S.A. and Humphreys J.D. (1976), ‘Microbial cells living immobilized on metal hydroxides’, *Nature*, 261, 242

Keresztes Z., Telegdi J., Beczner J. and Kálmán E. (1998), ‘The influence of biocides on the Microbiologically Influenced Corrosion of mild steel and brass’, *Electrochemica Acta*, 43 (1-2), 77

King R.A. and Miller J.D.A. (1971), ‘Corrosion by sulphate-reducing bacteria’, *Nature*, 233, 491

King R.A., Miller J.D.A. and Smith J.S. (1973a), ‘Corrosion of mild steel by iron sulfides’, *Br. Corros. J.*, 8, 137

King R.A., Miller J.D.A. and Wakerley D.S. (1973b), ‘Corrosion of mild steel in cultures of sulfate-reducing bacteria: effect of changing the soluble iron concentration during growth’, *Br. Corros. J.*, 8, 89

King R.A., Dittmer C.K. and Miller J.D.A. (1976), ‘Effect of ferrous iron concentration on the corrosion of iron in semicontinuous cultures of sulfate-reducing bacteria’, *Br. Corros. J.*, 8, 105

Korber D.R., James G.A. and Costerton J.W. (1994), ‘Evaluation of feroxacin activity against established Pseudomonas fluorescens biofilms’, *Advances in Applied and Environmental Microbiology*, 60, 1663

- L

Le Bozec N. (2000), ‘Réaction de réduction de l’oxygène sur les aciers inoxydables en eau de mer naturelle. Influence du biofilm sur les processus de corrosion’, Thèse de l’Université de Bretagne Occidentale, spécialité Chimie Fine

Lee W.C. and Characklis W.G. (1991), ‘Anaerobic corrosion processes of mild steel in the presence and absence of anaerobic biofilms’, in *Biodeterioration and Biodegradation 8*, Rossmoore H.W., Editor, Elsevier Applied Science, London, 89
Lee W.C., Lewandowski Z., Okabe S., Characklis W.G. and Avci R. (1992), ‘Corrosion of mild steel underneath aerobic biofilms containing sulphate-reducing bacteria’, in *Corrosion/92*, paper No. 190, NACE International, Houston, TX

Lee W.C. and Characklis W.G. (1993a), ‘Corrosion of mild steel under anaerobic biofilms’, *Corrosion*, 49, 186

Lee W.C., Lewandowski Z., Okabe S., Characklis W.G. and Avci R. (1993b), ‘Corrosion of mild steel underneath aerobic biofilms containing sulphate-reducing bacteria, Part I: at low dissolved oxygen concentration’, *Biofouling*, 7, 197

Lee W.C., Lewandowski Z., Nielsen P.H., Morrison M., Characklis W.G. and Avci R. (1993c), ‘Corrosion of mild steel underneath aerobic biofilms containing sulphate-reducing bacteria, Part II: at high dissolved oxygen concentration’, *Biofouling*, 7, 217

Lee W.C., Lewandowski Z., Characklis W.G. and Nielsen P.H. (1994), ‘Microbial corrosion of mild steel in a biofilm system’, in *Biofouling and Biocorrosion in Industrial Water Systems*, Geesey G.G., Lewandowski Z. and Flemming H.C., Editors, Lewis Publishers, Boca Raton, FL, 205

Lee W., Lewandowski Z., Nielsen P.H. and Hamilton W.A. (1995), ‘Role of sulphate-reducing bacteria in corrosion of mild steel: a review’, *Biofouling*, 8 (3), 165

Lewandowski Z. (1994), ‘Dissolved oxygen gradients near microbially colonized surfaces’, in *Biofouling and Biocorrosion in Industrial Water Systems*, Geesey G.G., Lewandowski Z. and Flemming H.C., Editors, Lewis Publishers, Boca Raton, FL, 175

Lewandowski Z., Stoodley P. and Roe F. (1995), ‘Internal mass transport in heterogeneous biofilms. Recent advances’, in *Corrosion/95*, paper No. 222, NACE International, Houston, TX

Licina G.J., Nekoksa G. and Howard R.L. (1992), ‘An electrochemical method for on-line monitoring of biofilm activity in cooling tower’, in *Corrosion/92*, paper No. 177, NACE International, Houston, TX

Licina G.J. and Nekoksa G. (1993a), ‘On-line monitoring of microbiologically influenced corrosion in power plant environments’, in *Corrosion/93*, paper No. 403, NACE International, Houston, TX

Licina G.J., Nekoksa G. and Howard R.L. (1993b), ‘The BIOGEORGE™ probe. An electrochemical method for on-line monitoring of biofilm activity’, in *Proc. NSF-CONICET Workshop on Biocorrosion and Biofouling Metal/Microbe Interactions*, Videla H.A., Lewandowski Z. and Lutey R.W., Editors, Buckman Laboratories International Inc., Memphis, TN, 122

Licina G.J., Nekoksa G. and Howard R.L. (1994a), ‘An electrochemical method for on-line monitoring of biofilm activity in cooling water using the BIOGEORGE™ probe’, in *Microbiologicaly Influenced Corrosion Testing*, Kearns J.R. and Little B.J., Editors, ASTM Publications STP 1232, American Society for Testing and Materials, Philadelphia, PA

Licina G.J. and Nekoksa G. (1994b), ‘Experience with on-line montioring of biofilms in power plant environment’, in *Corrosion/94*, paper No. 257, NACE International, Houston, TX

Licina G.J. and Nekoksa G. (1995), ‘The influence of water chemistry and biocide additions on the response of an on-line biofilm monitor’, in *Corrosion/95*, paper No. 527, NACE International, Houston, TX

Lillard R.S, Moran P.J. and Isaacs H.S. (1992), ‘A novel method for generating quantitative local electrochemical impedance spectroscopy’, *J. Electrochem. Soc.*, 139 (4), 1007
Little B.J., Wagner P.A., Gerchakov S.M., Walch M. and Mitchell R. (1986), ‘Probing microbiologically induced corrosion’, *Corrosion*, 42, 689

Little B.J., Wagner P. and Duquette D. (1987), ‘Microbiologically induced cathodic depolarization’, in *Corrosion/87*, paper No. 370, NACE Internation, Houston, TX

Lutterbach M.T.S. and de Franca F.P. (1997), ‘Biofilm formation monitoring in an industrial open water cooling system’, *Revista de Microbiologia*, 28 (2), 106

Lyndsay S.S. and Baedecker M. (1988), ‘Determination of aqueous sulfide in contaminated and natural water using the methylene blue method’, *Ground-Water Contamination: field methods*, ASTM STP 963, Collins A.G. and Johnson A.I., Editors, American Society for Testing and Materials, 349

## M

Ma H.Y., Cheng X.L., Chen, S.H., Li G.C., Lei S.B. and Yang H.Q. (1998), ‘Theoritical interpretation of impedance spectra for anodic iron dissolution in acidic solutions containing hydrogen sulphide’, *Corrosion*, 54, 8

Magot M. (1999), ‘La corrosion de l’acier par les bactéries sulfurtogènes’, *Bull. Soc. Fr. Micrbiol.*, 14 (4), 272

Mansfeld F. and Little B.J. (1990a), ‘The application of electrochemical techniques for the study of MIC. A critical review’, in *Corrosion/90*, paper No. 108, NACE International, Houston, TX

Mansfeld F., Tsai R., Shih H., Little B.J., Ray, R. and Wagner P. (1990b), ‘Results of exposure of stainless steels to natural seawater’, in *Corrosion/90*, paper No. 109, NACE International, Houston, TX

Mansfeld F. and Xiao H. (1994a), ‘Development of electrochemical test methods for the study of localized corrosion phenomena in biocorrosion’, in *Biofouling and Biocorrosion in Industrial Water Systems*, Geesey G.G., Lewandowski Z. and Flemming H.C., Editors, Lewis Publishers, Boca Raton, FL, 265

Mansfeld F. and Xiao H. (1994b), ‘Electrochemical techniques for detection of localized corrosion phenomena’, in *Microbiologically Influenced Corrosion Testing*, Kearns J.R. and Little B.J., Editors, ASTM Publications STP 1232, American Society for Testing Materials, Philadelphia, PA, 40

Mansfeld F., Chen C., Lee C.C. and Xiao H. (1996), ‘The effect of asymmetric electrodes on the analysis of electrochemical impedance and noise data’, *Corrosion Science*, 38 (3), 497

Mara D.D. and Williams D.J. (1972), ‘The mechanisms of sulfide corrosion by sulfate-reducing bacteria’, *Biodeterior. Mater.*, 2, 103

Mierisch A.M. and Taylor S.R. (1998), in *Electrically Based, Microstructural Characterization II*, Gerhardt R.A., Alim M.A., and Taylor S.R., Vol. 500, p.35, Materials Research Society, Warrendale, PA

Miller J.D.A. and Tiller A.K. (1970), ‘Microbial corrosion of buried and immersed metal’, in *Microbial Aspects of Metallurgy*, Miller J.D.A., Editor, Elsevier, New York, 61

Miller J.D.A. (1981), ‘Metals’, in *Microbial Biodeterioration*, Rose A.D., Editor, Academic Press, New York, 149
Mollica A. (1992), 'Biofilm and corrosion on active-passive alloys in seawater', *International Biodeterioration and Biodegradation*, 29, 213

Mollica A. and Ventura G. (1993a), 'Use of a biofilm electrochemical monitoring device for an automatic application of antifouling procedures in seawater', in *Proc. 12th International Corrosion Congress*, NACE International, Houston, TX, 3807

Mollica A. and Ventura G. (1993b), 'Electrochemical monitoring of biofilm growth and corrosivity in seawater: effect of intermittent chlorization', *OEBALIA*, XIX, Suppl., 313

Monfort Moros N., Frateur I., Tribollet B., Festy D. and Marchal R. (2000), 'Méthode et dispositif de détection de la corrosion induite microbiologiquement', Brevet N°00/06 114

Moosavi A.N., Dawdon J.L., Houghton C.J. and King R.A. (1986), 'The effect of sulphate-reducing bacteria on the corrosion of reinforced concrete', in *Biologically Induced Corrosion*, Dexter S.C., Editor, NACE-8 International Conference Series, NACE International, Houston, TX, 291

Murray J.N., Moran P.J. and Gileadi E. (1988), 'Utilization of the specific pseudocapacitance for determination of the area of corrosion steel structures', *Corrosion*, 44, 8

## - N

Nekoksa G. and Licina G.J. (1993), 'Apparatus for monitoring biofilm activity', in *Electric Power Research Institute, Palo Alto, US5246560, USA*

Newman R.C., Webster B.J. and Kelly R.G. (1991), 'The electrochemistry of SRB corrosion and related inorganic phenomena', ISIJ International, 31, 201

Nielsen P.H., Lee W.C., Lewandowski Z., Morrison M. and Charackils W.G. (1993), 'Corrosion of mild steel in an alternating oxic and anoxic biofilm system', *Biofouling*, 7, 267

## - P

Pankhania I.P. (1988), 'Hydrogen metabolism in sulphate-reducing bacteria and its role in anaerobic corrosion', *Biofouling*, 1, 27

Pedersen A. and Hermansson M. (1989), 'The effects on metal corrosion by Serratia marcescens and a Pseudomonas sp.', *Biofouling*, 1 (4), 313

Pedersen A. and Hermansson M. (1991), 'Inhibition of metal corrosion by bacteria', *Biofouling*, 3 (1), 1

Peyton B.M. and Trux M.J. (1997), 'In situ biofilm coupon device', in *Battelle Memorial Institute, US5641642, USA*

Pfenning N. and Widdel F. (1982), 'The bacteria of the sulphur cycle', Phil. Trans., R. Soc. London B, 298, 433

Pope D.H., Duquette D.J., Wayne P.C. and Johannes A.H. (1983), 'Microbiologically influenced corrosion: a state of the art review', in *Materials Technology, 2nd edition*, MTI, St Louis, MO

Pope D.H., Duquette D.J., Johannes A.H. and Wayne P.C. (1984), 'Microbiologically influenced corrosion of industrial alloys', *Materials Performance*, 23 (4), 14
Postgate J.R. (1984), 'The Sulphate-Reducing Bacteria', 2nd edition, Cambridge University Press, Cambridge

- R

Revsbech N.P. (1989), 'An oxygen microelectrode with a guard cathode', *Limnol. Oceanogr.*, 34, 474

Rickard D.T. (1969), 'The chemistry of iron sulfide formation at low temperature', *Stockh. Contr. Geol.*, 20, 67

Ringas C. and Robinson F.P.A. (1987), 'Microbial corrosion of iron-based alloy', *J. S. Afr., Inst. Min. Metall.*, 87, 425

Roberge P.R. and Sastri V.S. (1994), 'On-line corrosion monitoring with electrochemical impedance spectroscopy', *Corrosion*, 50, 10

Rosales B.M. (1994), 'Electrochemical sensor of water and of the amount of microbial proliferation in fuel tanks', in *Microbial Corrosion*, European Federation of Corrosion, Institute of Materials, 15, 349

Rosenfeld I.L. and Danilov I.S. (1967), 'Electrochemical aspects of pitting corrosion', *Corrosion Science*, 7, 129

Ruck G.T., Walcott K.J., Thompson N.G. and Barlo T.J. (1985), GRI contract 5082-271-0759 Battelle Columbus Division

Ruseska I., Robbins J. and Costerton J.W. (1982), 'Biocide testing against corrosion-causing oil-field bacteria helps control plugging', *Oil and Gas Journal*, 80, 253

- S

Salvago G., Fumagalli G., Cristiani P. and Rocchini G. (1994), 'Biofilm monitoring and on-line control: 20-month experience in seawater', in *Microbial Corrosion*, European Federation of Corrosion, Editors, Institute of Materials, 301

Salvarezza R.C., de Mele M.F.L. and Videla H.A. (1979), 'The use of pitting potential to study the microbial corrosion of 2024 aluminium alloy', *International Biodeterioration Bulletin*, 15 (4), 125

Salvarezza R.C. and Videla H.A. (1980a), 'Passivity breakdown of mild steel in seawater in the presence of sulphate-reducing bacteria', *Corrosion*, 36 (10), 550

Salvarezza R.C. and Videla H.A. (1980b), 'The influence of sulphate reducing bacteria on the electrochemical behaviour of steel in seawater', in *Proc. 5th International Congress on Marine Corrosion and Fouling*, Barcelona, Spain, 7

Salvarezza R.C., de Mele M.F.L. and Videla H.A. (1981), 'Redox potential and the microbiological corrosion of aluminium and its alloys in fuel/water systems', *British Corrosion Journal*, 16 (3), 162

Salvarezza R.C., Videla H.A. and Arvia A.J. (1982), 'The electrodissolution and passivation of mild steel in alkaline sulfide solutions', *Corros. Sci.*, 22 (9), 815

Salvarezza R.C., Videla H.A. and Arvia A.J. (1983), 'The electrochemical behavior of mil steel in phosphate-borate-sulfide solutions', *Corros. Sci.*, 23, 717
Salvarezza R.C. and Videla H.A. (1986), 'Electrochemical behaviour of aluminum in Cladosporium resinaz cultures', in *Biodeterioration* 6, Barry S., Houghton D.R., Llewellyn G.C. and O'Rear C.E., Editors, London, CAB International Mycological Institute, U.K., 212

Schaschl E. (1980), 'Elemental Sulfur as a corrodent in dearated, neutral aqueous solutions', *Materials Performance*, 19, 9

Schlegel H.G. (1993), 'General microbiology', 7th edition, Cambridge University Press, Cambridge U.K.

Schmitt G. (1991), 'Effect of elemental sulfur on corrosion in sour gas systems', *Corrosion*, 47, 285

Schmitt G. (1997), 'Sophisticated electrochemical methods for MIC investigation and monitoring', *Materials and Corrosion*, 48 (9), 586

Schmitt G. (1999), 'Electrochemical investigations, testing and monitoring of biofilms', in *Bifouling and Materials*, Switzerland, C. 520, 19

Scotto V., Beggiato M., Marcenaro G. and Dellepiane R. (1993), 'Microbial and biochemical factors affecting the corrosion behaviour of stainless steels in seawater', in *Marine Corrosion of stainless steels: chlorination and microbial effects*, European Federation of Corrosion, Editor, Institute of Materials, 21

Shoesmith D.W., Taylor P., Bailey M.G. and Owen D.G. (1980), 'The formation of ferrous monosulfide polymorphs during the corrosion of iron by aqueous hydrogen sulfide at 21°C', *J. Electrochem. Soc.*, 127, 1007

Siebert O.W. (1986), 'Electrochemical Techniques for Corrosion Engineering', Baboian R., Editor, NACE International, Houston, TX, 81

Starkey R.L. and Wight K.M. (1945), 'Anaerobic corrosion of iron in soil', American Gas Association, New York

Stern M. and Geary A.L. (1957), 'Electrochemical polarisation. I.A. theoritical analysis of the shape of polarisation curves', *Journal of the Electrochemical Society*, 104, 33

Stewart P.S., Peyton B.M., Drury W.J. and Murga R. (1993), 'Quantitative observations of heterogeneities in Pseudomonas aeruginosa biofilms', *Applied and Environmental Microbiology*, 59, 327

Stockes P.S.N., Winters M.A., Zuniga P.O. and Schlottenmier D.J. (1994), 'Developments in on-line fouling and corrosion surveillance', in *Microbiologically Influenced Corrosion Testing*, Kearns J.R. and Little B.J., Editors, ASTM Publications STP 1232, American Society for Testing and Materials, Philadelphia, PA

Stoecker J.G. (1984), 'Guide for the investigation of microbiologically induced corrosion', *Materials Performance*, 23 (8), 48

Stratmann M et Streckel H (1990), 'On the atmospheric corrosion of metals which are covered with thin electrolyte layers. I, Verification of the experimental technique', *Corros. Sci.*, 30 (6-7), 681

Stratmann M et Streckel H (1992), 'Monitoring of blistering for organic coatings by a contact-free measurement', *Werkstoffe Korros.*, 43 (6), 316

Strommen R.D., Horn H. and Wold K.R. (1993), 'FSM: a unique method for monitoring corrosion of steel piping and vessels', *Materials Performance*, 3
- T

Tardy-Jacquenod C., Magot M., Laigret F., Kaghad M., Patel B.K., Guezennec J., Matheron R. and Caumette P. (1996), 'Desulfovibrio gabonensis sp. nov., a new moderately halophilic sulfate-reducing bacterium isolated from an oil pipeline', *Int. J. Syst. Bacteriol.*, 46(3), 710

Thomas C.J., Edyvean R.G.J. and Brook R (1988), 'Biologically enhanced corrosion fatigue', *Biofouling*, 1, 65

Tiller A.K. (1982), 'Aspects of microbial corrosion', in *Corrosion Processes*, Parkins R.N., Editor, Appl. Sci. Publ., London, 115

Tiller A.K. (1985), 'A review of european research effort on microbial corrosion', in *Biologically Induced Corrosion*, Dexter S.C., Editor, NACE-8, NACE International, Houston, TX, 8

Trulear M.G. and Characklis W.G. (1982), 'Dynamics of biofilm processes', *Journal WPCF*, 54, 1288

- V

Videla H.A. (1986a), 'Corrosion of mild steel induced by sulphate-reducing bacteria – a study of passivity breakdown by biogenic sulfides', in *Biologically Induced Corrosion*, Dexter S.C., Editor, NACE-8, NACE International, Houston, TX, 162

Videla H.A. (1986b), 'The action of Cladosporium resinae growth on the electrochemical behavior of aluminum', in *Biologically Induced Corrosion*, Dexter S.C., Editor, NACE-8, NACE International, Houston, TX, 215

Videla H.A., de Mele M.F.L. and Brankevich G.J. (1987), 'Microfouling of several metal surfaces in polluted seawater and its relation with corrosion', in *Corrosion/87*, paper No. 365, NACE International, Houston, TX

Videla H.A. (1988), 'Electrochemical interpretation of the role of microorganisms in corrosion', in *Biodeterioration 7*, Houghton D.R., Smith R.N. and Eggins H.O.W., Editors, Elsevier Applied Science, London, 359

Videla H.A. (1989), 'Metal dissolution/redox in biofilms', in *Structure and Function of Biofilms*, Characklis W.G. and Wilderer P.A., Editors, John Wiley & Sons, Chichester, U.K., 301

Videla H.A., de Mele M.F.L., Silva R.A., Bianchi F. and Gonzales Canales C. (1990), 'A practical approach to the study of the interaction between biofouling and passive layers on mild steel and stainless steel in cooling water', in *Corrosion/90*, paper No. 124, NACE International, Houston, TX

Videla H.A. (1991a), 'Microbially induced corrosion: an updated overview', in *Biodeterioration 8*, Rossmoore H.W., Editor, Elsevier Applied Science Ltd., London, 63

Videla H.A., Guiamet P.S., Pardini O.R., Echarte E., Trujillo D. and Freitas M.M.S. (1991b), 'Monitoring biofilms and MIC in an oilfield cater injection system', in *Corrosion/91*, paper No. 103, NACE International, Houston, TX

Videla H.A. and Characklis W.G. (1992), 'Biofouling and microbially influenced corrosion', *International Biodeterioration & Biodegradation*, 29 (3-4), 195

Videla H.A., Gomez de Savari S.G. and de Mele M.F.L. (1993), 'Early stages of bacterial biofilm and cathodic protection interactions in marine environments', in *Proceedings of 12th International Corrosion Congress*, NACE International, Houston, TX, 5B, 3687
Videla H.A. (1994), ‘Biocorrosion of nonferrous metal surfaces’, in *Biofouling and Biocorrosion in Industrial Water Systems*, Geesey G.G., Lewandowski Z. and Flemming H.C., Editors, Lewis Publishers, Boca Raton, FL, 223

Videla H.A., Viera M.R., Guiamet P.S. and Staibano Alais J.C. (1995a), ‘Effect of dissolved ozone on the passive behaviour of heat exchanger structural materials. Biocidal efficacy on bacterial biofilms’, in *Corrosion/95*, paper No. 199, NACE International, Houston, TX

Videla H.A., Viera M.R., Guiamet P.S. and Staibano Alais J.C. (1995b), ‘Combined action of oxidizing biocides for controlling biofilms ans MIC’, *Materials Performance*, 34, 40

Videla H.A. (1996), ‘Corrosion inhibition in the presence of microbial corrosion’, in *Corrosion/96*, paper 223, NACE International, Houston, TX

Von Wolzogen Kühr G.A.H. and Van der Vlugt L.R. (1934), ‘De grafiteering van gietijzer als electrobiochemisch proces in anaerobe gronden’, *Water (den Haag)*, 18, 147 (Traduction dans *Corrosion* (1961), 17, 293)

## W

Wagner P.A. and Ray R.I. (1994), ‘Surface analytical techniques for mmicrobiologically influenced corrosion. A review’, in *Microbiologically Influenced Corrosion Testing*, Kearns J.R. and Little B.J., Editors, ASTM Publication STP 1232, Americal Society for Testing and Materials, Philadelphia, PA, 153

Weimer P.J. and Ng T.K (1988), ‘Use of continuous culture to assess biocorrosion by sulphate-reducing bacteria’, in *Corrosion/88*, paper No. 90, NACE International, Houston, TX

Westlake D.W.S., Semple K. and Obuewke C.D. (1986), ‘Corrosion by ferric iron-reducing bacteria isolated from oil production systems’, in *Biologically induced corrosion*, Dexter S.C., Editor, NACE-8 International Corrosion Conference Series, NACE International, Houston, 195

Whitham T.S. (1995), ‘Challenges to the prediction and monitoring of microbially influenced corrosion in the oil industry’, *Microbial Corrosion*, Proceedings of the 3rd International EFC Workshop, Tiller A.K. and C.A.C. Sequeira, Editors, EFC Publications N°15, The Institute of Materials

Whitham T. and Huizinga S. (1997), ‘Evaluation of electrochemical noise analysis as on on-line monitoring tool to distinguish between biofilm-associated localised corrosion and oxygen corrosion’, *Aspects of Microbially Induced Corrosion*, Thierry D., Editor, EFC Publications N°22, The Institute of Materials

Widdel F. and Pfenning N. (1977), ‘A new, anaerobic, sporing, acetate-oxidizing sulphate-reducing bacterium’, *Arch. Micorbiol.*, 112

Winters M.A., Stokes P.S.N., Zuniga P.O. and Schlottenmier D.J. (1993), ‘Developments in on-line corrosion and fouling monitoring in cooling water systems’, in *Corrosion/93*, paper No. 392, NACE International, Houston, TX

Wittman M.W. and Taylor S.R. (1995), in *Advances in Corrosion Protection by Organic coatings II*, Scantlebury J.D and Kendig M.W., Editors, PV 95-13, p.158, Teh Electrochemical Society Proceedings Series, Pennington, NJ
- Z

Zhao J.G., Frankel G., and McCreery R.L. (1998), ‘Corrosion protection of untreated AA-2024-T3 in chloride solution by a chromate conversion coating monitored with Raman spectroscopy’, *J. Electrochem. Soc.*, **145**, 2258

Zou F. and Thierry D. (1997), ‘Localized electrochemical impedance spectroscopy for studying the degradation of organic coatings’, *Electrochem. Acta*, **42**, 3293
## Liste des abréviations et des symboles

### Abréviations

AE : anneau externe

AI : anneau intermédiaire

AFM : microscope à force atomique

ATP : adénosine tri-phosphate

BEC : biocorrosion à électrodes concentriques (capteur de)

BSR : bactérie sulfato-réductrice

CABAS : corrosion des aciers par bactéries anaérobies sulfato-réductrices

CBEC : crayon de biocorrosion à électrodes concentriques (capteur)

DC : disque central

DO : densité optique

dsp : densité spectrale de puissance

ECS : électrode de référence au calomel saturé

EMS : eau de mer synthétique

M : métal

FAB : fermentation avec bactéries (milieu de)

FSB : fermentation sans bactéries (milieu de)

MEB : microscope électronique à balayage

MET : microscope électronique à transmission

MLS : milieu lactate et eau de mer synthétique

MME : mesure à micro-électrodes (sonde de)

ppm : partie par million

ppt : partie par millier

SBEC : secondaire de biocorrosion à électrodes concentriques (capteur de)

SDEX : spectroscopie à dispersion d'énergie des rayons X

SIE : spectroscopie d'impédance électrochimique

SPE : substances polymériques extracellulaires

ZRA : ampèremètre à résistance nulle

### Symboles :

βa, βc : pentes de Tafel anodique et cathodique

φ : phase

κ : conductivité de l'électrolyte

ρ : densité du métal

ρm : résistivité du métal

ω : pulsation

Φ, V ou E : potentiel

Ψ : densité spectrale de puissance

B : constante de Tafel

C : capacité

d : distance

f : fréquence

FC : coefficient d'empreinte

G : gain

Icorr : courant de corrosion

icorr : densité de courant de corrosion

ilocal : densité de courant local

Im(Z) : partie imaginaire de Z

j : nombre imaginaire

k : poids équivalent du métal

R : vitesse de corrosion

Re : résistance d'électrolyte

Re(Z) : partie réelle de Z

Rp : résistance de polarisation

Scorr : surface corrodée

t : temps

Z : impédance
# Liste des figures et des tableaux

## Listes des figures :

figure 1 : formation du biofilm (d'après Beardwood, 1995)

figure 2 : structure du biofilm (d'après Costerton, 1994)

figure 3 : cycle du soufre dans la nature (d'après Booth, 1971)

figure 4 : représentation non stéchiométrique de l'oxydation microbiologique des composés organiques du soufre (d'après Cragnolino et al., 1984)

figure 5 : cycle métabolique par réduction microbiologique du sulfate (d'après Cragnolino et al., 1984)

figure 6 : représentation des processus de transport et de transformation lors de la biocorrosion de l'acier au carbone dans un biofilm anaérobie stricte (d'après Lee et al., 1995)

figure 7 : représentation des processus de transport et de transformation lors de la biocorrosion de l'acier au carbone dans un biofilm aérobie/anaérobie (d'après Lee et al., 1995)

figure 8 : capteur BIOGEORGE™ (d'après Licina et al., 1993a)

figure 9 : capteur Bioscan™ (d'après Chalut et al., 1995)

figure 10 : système Robbins (d'après Ruseska et al., 1982)

figure 11 : réactions anodiques et cathodiques lors d'un couplage galvanique dans une cellule électrochimique

figure 12 : représentation du couplage galvanique par les courbes courant/tension pour les métaux $M_1$ et $M_2$

figure 13 : capteur de biocorrosion à électrodes concentriques (capteur BEC)

figure 14 : montage expérimental pour le suivi de biocorrosion en laboratoire

figure 15 : acquisition des grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion

figure 16 : montage électrique pour l'obtention des courbes courant/tension

figure 17 : schématisation du métabolisme de la souche Desulfovibrio gabonensis (adaptation d'après Cragnolino et al., 1984)

figure 18 : montage expérimental d'alimentation bactérienne et d'investigation électrochimique pour une expérience de biocorrosion

figure 19 : développement de biofilm à la surface du capteur BEC

figure 20 : amorçage électrochimique de la biocorrosion sur le capteur BEC

figure 21 : mesure du courant de corrosion circulant entre le disque central et l'anneau externe d'un capteur BEC

figure 22 : grandeurs électrochimiques lors de la formation du biofilm sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 23 : grandeurs électrochimiques lors de l'amorçage électrochimique de biocorrosion sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 24 : grandeurs électrochimiques lors de la mesure du courant de corrosion après conditionnement électrochimique sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 25 : grandeurs électrochimiques lors de la phase équivalente à la formation de biofilm sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 26 : grandeurs électrochimiques lors de l'amorçage électrochimique de biocorrosion sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 27 : grandeurs électrochimiques lors de la mesure de courant de corrosion après conditionnement électrochimique sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 28 : courbes courant/tension du disque central pour une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques
figure 29: courbes courant/tension de l'anneau externe pour une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 30: courbes courant/tension du disque central relatives à l'expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 31: courbes courant/tension de l'anneau externe relatives à l'expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 32: concentrations en espèces chimiques avant et après passage dans la cellule d'électrochimie pour une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 33: concentrations en espèces chimiques avant et après passage dans la cellule d'électrochimie pour une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions abiotiques

figure 34: disque central après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 35: biofilm présent sur le disque central après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 36: disque central après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 37: détail de la piqûre de corrosion sur le disque central après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 38: détail de l'anneau externe par MEB après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 39: biofilm présent sur l'anneau externe après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 40: film de FeS présent sur l'anneau externe après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions biotiques

figure 41: disque central après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions abiotiques

figure 42: piqûres de corrosion du disque central après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions abiotiques

figure 43: corrosion uniforme sur l'anneau externe après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions abiotiques

figure 44: détail de l'anneau externe après une biocorrosion amorcée électrochimiquement en conditions abiotiques

figure 45: amorçage mécanique de biocorrosion par grattage sur le capteur BEC

figure 46: grandeurs électrochimiques lors de la formation du biofilm sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 47: grandeurs électrochimiques lors de la mesure de biocorrosion sur un capteur BEC en conditions biotiques après amorçage mécanique

figure 48: grandeurs électrochimiques lors de l'étape équivalente à la formation du biofilm sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 49: enregistrement des constantes électrochimiques lors de la mesure du courant de corrosion sur un capteur BEC en conditions abiotiques après amorçage mécanique

figure 50: courbes courant/tension du disque central relatives à une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 51: courbes courant/tension de l'anneau externe relatives à une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 52: courbes courant/tension du disque central relatives à une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un capteur BEC en conditions abiotiques

figure 53: courbes courant/tension de l'anneau externe relatives à une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un capteur BEC en conditions abiotiques
figure 54 : concentrations en espèces chimiques avant et après passage dans la cellule d'électrochimie pour une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions biotiques

figure 55 : concentrations en espèces chimiques avant et après passage dans la cellule d'électrochimie pour une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions abiotiques

figure 56 : biofilm présent sur le disque central après une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions biotiques

figure 57 : biofilm présent sur l'anneau externe après une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions biotiques

figure 58 : dissolution du disque central après une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions biotiques

figure 59 : détail d'une piqûre de corrosion sur le disque central après une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions biotiques

figure 60 : piqûres de corrosion sur l'anneau externe après une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions biotiques

figure 61 : détail du disque central après une biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions abiotiques

figure 62 : détail de l'anneau externe après biocorrosion amorcée mécaniquement en conditions abiotiques

figure 63 : schématisation des courbes courant/tension lors d'un amorçage électrochimique de biocorrosion

figure 64 : schématisation des courbes courant/tension lors d'un amorçage mécanique de biocorrosion

figure 65 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion avec formation de biofilm et conditionnement simultanés sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 66 : disque central après une expérience de biocorrosion avec formation de biofilm et conditionnement simultanés

figure 67 : anneau externe après une expérience de biocorrosion avec formation de biofilm et conditionnement simultanés

figure 68 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion amorcée par pulse électrochimique sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 69 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion avec amorçage électrochimique de courte durée sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 70 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion avec amorçage électrochimique de forte intensité sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 71 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion avec un amorçage électrochimique nulle sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 72 : capteur SBEC

figure 73 : capteur CBEC

figure 74 : schématisation de la répartition du biofilm sur le capteur CBEC

figure 75 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques avec injection de glutaraldéhyde

figure 76 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques avec injection d'eau de Javel

figure 77 : grandeurs électrochimiques lors d'une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement avec changement de milieux, sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 78 : suivi de biocorrosion par le système CABAS dans le port de Brest, France

figure 79 : capteur BEC mis en place sur un pilier de support du port de Brest, France

figure 80 : sonde MME à fils d'argent

figure 81 : détail d'une sonde MME

figure 82 : montage expérimental pour la réalisation de cartographies de densité de courant
figure 83 : cycle de mesure avec déplacements de la sonde MME et de la cellule d'électrochimie

figure 84 : schématisation du déplacement relatif dans le plan X-Y de la sonde MME

figure 85 : cellule de biocorrosion montée sur table X-Y-Z

figure 86 : caméra vidéo et cellule de biocorrosion

figure 87 : schéma de principe de la mesure de la chute ohmique

figure 88 : montage électrique d'acquisition pour cartographie de densité de courant

figure 89 : cartographie pour une polarisation anodique de 5 µA du disque central

figure 90 : cartographie pour une polarisation cathodique de 5 µA du disque central

figure 91 : cartographie avec micro-électrodes de platine pour une polarisation anodique de 5 µA du disque central en milieu aérobie

figure 92 : cartographie avec micro-électrodes de platine pour une polarisation anodique de 5 µA du disque central en milieu anaérobie

figure 93 : cartographie avec micro-électrodes d'argent pour une polarisation anodique de 5 µA du disque central en milieu aérobie

figure 94 : cartographie avec micro-électrodes d'argent pour une polarisation anodique de 5 µA du disque central en milieu anaérobie

figure 95 : cartographie au temps t=0 heure

figure 96 : cartographie au temps t=2 heures

figure 97 : cartographie au temps t=4 heures

figure 98 : polarisation de 2 µA

figure 99 : polarisation de 4 µA

figure 100 : polarisation de 6 µA

figure 101 : polarisation de 8 µA

figure 102 : courant global par intégration des cartographies fonction du courant de polarisation

figure 103 : cartographie après traitement mathématique pour une polarisation de 2 µA

figure 104 : cartographie après traitement mathématique pour une polarisation de 4 µA

figure 105 : cartographie après traitement mathématique pour une polarisation de 6 µA

figure 106 : cartographie après traitement mathématique pour une polarisation de 8 µA

figure 107 : valeur brute et après traitement mathématique du courant global fonction du courant de polarisation

figure 108 : densités de courant sur un coupon métallique en milieu EMS au temps initial

figure 109 : densités de courant sur un coupon métallique en milieu FAB après formation de biofilm

figure 110 : densités de courant sur un coupon métallique en milieu FAB après amorçage mécanique de biocorrosion

figure 111 : densités de courant sur un coupon métallique en milieu FAB 24 heures après amorçage mécanique de biocorrosion

figure 112 : récapitulatif complet d'une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un coupon unique d'acier au carbone en présence de bactéries sulfato-réductrices.

figure 113 : densités de courant après amorçage mécanique de biocorrosion sur un coupon métallique en conditions biotiques

figure 114 : densités de courant 144 heures après amorçage mécanique de biocorrosion sur un coupon métallique en conditions biotiques

figure 115 : piqûres de biocorrosion à la surface du coupon métallique

figure 116 : pénétration des piqûres de biocorrosion à la surface du coupon métallique
figure 117 : modèle de Randles pour une interface métal/électrolyte

figure 118 : représentation de Nyquist

figure 119 : représentation de Bode

figure 120 : montage pour l'investigation par spectroscopie d'impédance électrochimique

figure 121 : impédance électrochimique du disque central au temps initial

figure 122 : impédance électrochimique de l'anneau externe au temps initial

figure 123 : impédance électrochimique du disque central après formation du biofilm

figure 124 : impédance électrochimique de l'anneau externe après formation du biofilm

figure 125 : impédance électrochimique du disque central après conditionnement électrochimique

figure 126 : impédance électrochimique de l'anneau externe après conditionnement électrochimique

figure 127 : impédance électrochimique du disque central avec un courant anodique de corrosion de 2,7 µA

figure 128 : impédance électrochimique de l'anneau externe avec un courant cathodique de corrosion de 2,7 µA

figure 129 : résistance de polarisation et capacité pour le disque central lors d'une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 130 : résistance de polarisation et capacité pour l'anneau externe lors d'une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 131 : impédance électrochimique du disque central après grattage mécanique

figure 132 : impédance électrochimique de l'anneau externe après grattage mécanique

figure 133 : impédance électrochimique du disque central avec un courant anodique de corrosion de 5,3 µA

figure 134 : impédance électrochimique de l'anneau externe avec un courant cathodique de corrosion de 5,3 µA

figure 135 : résistance de polarisation et capacité pour le disque central lors d'une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 136 : résistance de polarisation et capacité pour l'anneau externe lors d'une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur un capteur BEC en conditions biotiques

figure 137 : impédance électrochimique au temps initial sur coupon métallique

Figure 138 : impédance électrochimique après formation de biofilm sur coupon métallique

Figure 139 : impédance électrochimique après grattage mécanique sur coupon métallique

figure 140 : impédance électrochimique 24 heures après injection d'eau de Javel lors d'une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur coupon métallique

figure 141 : définition idéalisée du bruit électrochimique en tension

figure 142 : définition idéalisée du bruit électrochimique en courant

figure 143 : chaîne de mesure du bruit électrochimique en courant et en potentiel

figure 144 : enregistrements temporels mesurés avec une résistance de 1kΩ (courbe A) et avec le capteur en conditions passivantes (courbe B)

figure 145 : DSP correspondant aux enregistrements temporels mesurés sur une résistance de 1kΩ (courbe A) et à partir du capteur en conditions passivantes (courbe B)

figure 146 : enregistrement temporel avec transitoires de courant de type montée brutale-chute exponentielle

figure 147 : enregistrements temporels associés à une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions abiotiques (courbe A) et en présence de bactéries sulfato-réductrices (courbe B)

figure 148 : DSP associées à une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions abiotiques (courbe A) et en présence de bactéries sulfato-réductrices (courbe B)

figure 149 : fluctuations de potentiel et de courant après 24 heures de mesure de corrosion lors d'une biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur BEC en conditions biotiques
figure 150 : fluctuations de potentiel et de courant après 48 heures de mesure de corrosion lors d'une biocorrosion amorcée électrochimiquement sur capteur BEC en conditions biotiques

figure 151 : fluctuations de courant avec changement de milieu d'alimentation lors d'une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur capteur BEC en conditions biotiques

figure 152 : détail d'un transitoire de courant après 24 heures de mesure de corrosion lors d'une biocorrosion amorcée électrochimiquement sur capteur BEC en conditions biotiques

figure 153 : fluctuations de potentiel et de courant après 24 heures de mesure de courant lors d'une biocorrosion amorcée mécaniquement sur capteur BEC en conditions biotiques

figure 154 : fluctuations de courant avant et après changement de milieu lors d'une biocorrosion amorcée mécaniquement sur capteur BEC en conditions biotiques

figure 155 : fluctuations de courant après changement de milieu lors d'une biocorrosion amorcée mécaniquement sur capteur BEC en conditions biotiques

figure 156 : fluctuations de potentiel avant amorçage mécanique lors d'une expérience de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques

figure 157 : fluctuations de potentiel corrigées de la dérive avant amorçage mécanique lors d'une expérience de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques

figure 158 : fluctuations de potentiel corrigées de la dérive après amorçage mécanique lors d'une expérience de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques

figure 159 : fluctuations de potentiel corrigées de la dérive 24 heures après amorçage mécanique lors d'une expérience de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques

figure 160 : fluctuations de potentiel corrigées de la dérive 96 heures après amorçage mécanique lors d'une expérience de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques

figure 161 : fluctuations de potentiel corrigées de la dérive 192 heures après amorçage mécanique lors d'une expérience de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques

figure 162 : fluctuations de potentiel corrigées de la dérive 24 heures après injection de biocide lors d'une expérience de biocorrosion amorcée mécaniquement sur coupon métallique en conditions biotiques

Listes des tableaux :

tableau 1 : séquence réactionnelle de la théorie de la dépolarisation cathodique

tableau 2 : vitesses de corrosion de l'acier doux par l'activité des BSR en absence et en présence d'oxygène

tableau 3 : méthodes de détection du biofilm et de la corrosion influencée microbiologiquement

tableau 4 : caractéristiques géométriques des électrodes constitutives du capteur de biocorrosion à électrodes concentriques (capteur BEC)

tableau 5 : pourcentages élémentaires de l'acier au carbone du capteur BEC

tableau 6 : caractéristiques géométriques de la cellule d'électrochimie

tableau 7 : composition en g/L du milieu contenu dans le barillet 1

tableau 8 : composition en g/L du milieu contenu dans le barillet 2

tableau 9 : composition en g/L du milieu de préculture pour le démarrage de la culture bactérienne

tableau 10 : composition en g/L d'un milieu gélosé pour évaluation de la pureté d'une culture de bactéries sulfato-réductrices

tableau 11 : milieux secondaires utilisés lors d'expériences de biocorrosion

tableau 12 : chronologie des changements de milieux et de paramètres électrochimiques lors d'un amorçage électrochimique de biocorrosion sur un capteur BEC

tableau 13 : chronologie des changements de milieux et paramètres électrochimiques pour un amorçage mécanique de biocorrosion sur capteur à électrodes concentriques

tableau 14 : caractéristiques géométriques des électrodes constitutives du capteur SBEC
tableau 15: caractéristiques géométriques des électrodes constitutives du capteur CBEC

tableau 16 : récapitulatif pour une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur SBEC en conditions biotiques

tableau 17 : récapitulatif pour une expérience de biocorrosion amorcée électrochimiquement sur un capteur CBEC en conditions biotiques

tableau 18 : grandeurs électrochimiques obtenues par traitement de cartographie pour une expérience de biocorrosion avec amorçage mécanique sur un coupon métallique en conditions biotiques

tableau 19 : configurations expérimentales pour une étude par SIE lors d'une expérience de biocorrosion

tableau 20 : valeurs obtenues par traitement des diagrammes après couplage lors d'une biocorrosion avec conditionnement électrochimique sur capteur BEC en conditions biotiques

tableau 21 : valeurs obtenues par traitement des diagrammes au temps initial et après formation de biofilm sur capteur BEC en conditions biotiques

tableau 22 : valeurs obtenues par traitement des diagrammes après couplage lors d'une biocorrosion amorcée mécaniquement sur capteur BEC en conditions biotiques

tableau 23 : valeurs obtenues par traitement des diagrammes après grattage mécanique de biocorrosion sur coupon métallique en conditions biotiques
**Résumé** : ce travail de thèse s'inscrit dans le cadre de l'étude de la corrosion influencée microbiologiquement des aciers au carbone et plus particulièrement dans le cas de milieux anaérobies salins (3% de NaCl) contenant des bactéries sulfato-réductrices (*Desulfovibrio gabonensis*, DSM 10636).

Dans ces milieux, des corrosions fulgurantes par piqûre prennent place sous le biofilm recouvrant le substrat métallique. Un capteur à électrodes concentriques permet d'amorcer le phénomène de biocorrosion en recréant les conditions propices à un démarrage de piqûre, puis en mesurant le courant de corrosion résultant.

L'amorce de piqûre est réalisée par conditionnement électrochimique des électrodes constitutives du capteur ou par une suppression locale du biofilm par grattage mécanique, conduisant à une corrosion de type galvanique qui sera par la suite entretenue par le métabolisme bactérien. Ce protocole est applicable à une étude sur site industriel pour la détection et le suivi du comportement vis à vis de la biocorrosion des structures métalliques (brevet EN 00/06114, mai 2000).

Par la suite, une application à caractère fondamental utilise le capteur de biocorrosion pour des études par Spectroscopie d'Impédance Electrochimique (SIE), par Analyse du Bruit Electrochimique et par cartographie de courant à l'aide de micro-électrodes. La technique de SIE met ainsi en évidence l'importance des produits de corrosion (FeS) dans l'amorce de la biocorrosion sur un acier au carbone. De plus, selon la méthode d'amorçage appliquée, l'analyse de bruit électrochimique fait apparaître des processus supplémentaires (dégagement gazeux) qui perturbent la détection de la biocorrosion. L'initiation de la biocorrosion sur une surface propre à proximité d'un biofilm est confirmée par la cartographie de courant.

Ces différents résultats ont donc amené à considérer le capteur à électrodes concentriques comme un outil indispensable pour une étude de la biocorrosion en laboratoire ou sur site industriel.

**Abstract** : this work concerns the microbiologically influenced corrosion of carbon steels in saline anaerobic media (3% of NaCl) containing sulfato-reducing bacteria (*Desulfovibrio gabonensis*, DSM 10636).

In these media, extreme localised corrosion occurs by pitting under the biofilm covering the metallic substrate. A sensor with concentric electrodes was designed to initiate the phenomenon of biocorrosion, recreating the favourable conditions for growth of a corrosion pit, and then measuring the corrosion current maintained by bacterial activity.

The pit initiation was achieved through either of two methods. The electrochemical conditioning involved driving the potential difference between inner and outer electrodes to values corresponding to a galvanic corrosion that can be maintained by the bacterial metabolism. The mechanical process involved removal of a portion of the biofilm by scratching, yielding galvanic potential differences equivalent to that found by the conditioning technique. This protocol was found to be applicable to a biocorrosion study on industrial site for the monitoring of the metallic structures deterioration (patent EN 00/06114, May 2000).

Thereafter, a fundamental application uses the biocorrosion sensor for Electrochemical Impedance Spectroscopy (EIS), Electrochemical Noise Analysis (ENA) and current density cartography by the means of micro-electrodes. Thus, the EIS technique reveals the importance of the FeS corrosion products for initiation of biocorrosion start on carbon steel. In addition, depending on the method used to create a pit, the ENA gives rise to supplementary processes (gaseous release) disturbing the biocorrosion detection. The beginning of a biocorrosion process on a clean surface surrounded with biofilm was confirmed by the current density cartography.

These different results establish the sensor with concentric electrodes as an indispensable tool for biocorrosion studies, both in the laboratory and on industrial sites.