# Étude de la performance d'un parasitoïde oophage
Ooencyrtus pityocampae (Mercet) (Hymenoptera:
Encyrtidae) pour lutter contre des ravageurs d'un
écosystème méditerranéen

Hilal Tunca, Marine Venard, Etty Colombel, Elisabeth Tabone

► To cite this version:

Hilal Tunca, Marine Venard, Etty Colombel, Elisabeth Tabone. Étude de la performance d'un par- asitoïde oophage Ooencyrtus pityocampae (Mercet) (Hymenoptera: Encyrtidae) pour lutter contre des ravageurs d'un écosystème méditerranéen. Biotechnologie, Agronomie, Société et Environnement / Biotechnology, Agronomy, Society and Environment, 2019, 23 (3), pp.153-159. 10.25518/1780-4507.17951 . hal-02617899

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# Étude de la performance d'un parasitoïde oophage

*Ooencyrtus pityocampae* (Mercet) (Hymenoptera : Encyrtidae) pour lutter contre des ravageurs d'un écosystème méditerranéen

Hilal Tunca (1), Marine Venard (2), Etty-Ambre Colombel (2), Élisabeth Tabone (2)

Reçu le 24 novembre 2018, accepté le 22 mai 2019, mis en ligne le 19 juin 2019.

Cet article est distribué suivant les termes et les conditions de la licence CC-BY (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/deed.fr)

**Description du sujet.** Dans le cadre d'un projet de biocontrôle de la processionnaire du pin, *Thaumetopoea pityocampa* Denis & Schiffermüller, l'utilisation de parasitoïdes indigènes pour lutter contre ce ravageur a été étudiée au sein du Laboratoire Biocontrôle à l'UEFM (Unité Expérimentale Entomologie et Forêt Méditerranéenne) à l'INRA PACA.

**Objectifs.** Il est nécessaire de rechercher le meilleur hôte de substitution et de mettre au point son élevage. Plus particulièrement, l'espèce *Ooencyrtus pityocampae* (Mercet) a été étudiée.

**Méthode.** *Thaumetopoea pityocampa* étant une espèce allergisante, plusieurs hôtes de substitution ont été comparés pour l'élevage des parasitoïdes : *Philosamia ricini* (Danovan), *Nezara viridula* (L.) et *Halyomorpha halys* (Stål). Les caractéristiques biologiques et la fitness des descendants ont été comparées en conditions de laboratoire (25 ± 1 °C, 75 ± 5 % HR, 16L:8D).

**Résultats.** *Philosamia ricini* est le meilleur hôte de substitution pour l'élevage d*'O. pityocampae* pour ce qui est de la quantité et de la qualité des individus produits.

**Conclusions.** Cette étude servira de base à une réflexion sur les possibilités d'utiliser ce parasitoïde dans le cadre de la lutte biologique contre certains ravageurs méditerranéens.

**Mots-clés.** *Nezara viridula*, *Halyomorpha halys*, *Philosamia ricini*, élevage, hôte de substitution, biocontrôle, *Ooencyrtus pityocampae*.

## Study of the performance of an oophagous parasitoid *Ooencyrtus pityocampae* (Mercet) (Hymenoptera: Encyrtidae) to fight against Mediterranean ecosystem pests

**Description of the subject.** As part of a biocontrol program of the pine processionary, *Thaumetopoea pityocampa* Denis & Schiffermüller, the use of indigenous parasitoids to fight against this pest was studied in the UEFM Biocontrol Laboratory at INRA PACA.

**Objectives.** Firstly, a focus was placed on the rearing of indigenous parasitoids, in order to be able to test them at different experimental scales. More specifically, the species *Ooencyrtus pityocampae* (Mercet) was studied.

**Method.** *Thaumetopoea pityocampa* is allergenic; so, several substitute hosts were compared in order to rear pine processionary parasitoids: *Philosamia ricini* (Danovan), *Nezara viridula* (L.) and *Halymorpha halys* (Stål). Biological characteristics and descendants' fitness were compared in laboratory conditions (25 ± 1 °C, 75 ± 5% HR, 16L: 8D).

**Results.** *Philosamia ricini* was found to be the best host among these three substitute hosts because it gave the best productivity and the best parasitoid quality.

**Conclusions.** This study will help us to consider possibilities for the use of this parasitoid for the biological control of Mediterranean pests.

**Keywords.** *Nezara viridula*, *Halyomorpha halys*, *Philosamia ricini*, rearing, substitute host, biocontrol, *Ooencyrtus pityocampae*.

<footnote>(1) Université d'Ankara, Faculté d'Agriculture, Département de Protection des Plantes, 06110 Ankara, Turquie.
E-mail : hilal.tunca@ankara.edu.tr</footnote>

<footnote>(2) INRA, UEFM site Villa Thuret, Laboratoire BioContrôle, 90 Chemin Raymond, 06160 Antibes, France.</footnote>
# 1. INTRODUCTION

La processionnaire du pin, *Thaumetopoea pityocampa* Denis & Schiffermüller, est un lépidoptère ravageur de conifères (*Pinus nigra*, *Pinus nigra* var. ‘corsica’, *Pinus nigra* salzmannii, *Pinus pinaster*, *Pinus sylvestris*, *Pinus halepensis*). Bien implantée tout autour du bassin méditerranéen, cette espèce se propage depuis la fin du 20ᵉ siècle vers le nord de l'Europe et à des altitudes de plus en plus élevées (Carcanague, 1988 ; Battisti et al., 2005 ; Robinet et al., 2007 ; Imbert, 2012). Sa présence engendre une problématique phytosanitaire avec les arbres défoliés par les chenilles et un problème sanitaire à cause des urtications causées par leurs poils.

Les défoliations se traduisent par un ralentissement de la croissance et de l'activité de reproduction de l'arbre ainsi que par une fragilisation le rendant plus sensible aux attaques d'autres insectes xylophages, ainsi qu'aux stress hydrique et thermique. Ces attaques provoquent aussi des dommages à l'environnement en favorisant le développement d'espèces de feuillus indigènes qui modifient la composition de la flore et de la faune (Jacquet, 2012 ; Durand-Gillmann, 2014). En fonction du climat et des cycles de développement du ravageur, le niveau de dégâts varie d'une année à l'autre et peut atteindre des niveaux élevés et alarmants, provoquant parfois la mort des pins. De plus, sa capacité de mise en diapause contribue à créer un réservoir important de ravageurs, expliquant les explosions démographiques certaines années (Delorme et al., 2013). Les hausses de la température moyenne enregistrées ces dernières années ont pour principale conséquence la colonisation de nouveaux espaces aussi bien en altitude qu'en latitude. Pendant ce processus d'expansion, le ravageur est entré en contact avec de nouveaux hôtes (*Pinus mugo*, *Abies alba*, *Cedrus atlantica*, *Cedrus libani*, *Abies concolor* et *Pseudotsuga menziesii*), les larves se montrant aussi agressives que sur les hôtes traditionnels (Rousselet et al., 2013 ; DSF, 2016). De plus, les pins étant l'hôte d'autres espèces de Lépidoptères, dont certaines sont protégées, les attaques de processionnaire peuvent ainsi favoriser l'extinction de ces dernières.

La processionnaire du pin cause également d'importants problèmes sanitaires de par les soies urticantes libérées par les chenilles. Ces soies peuvent provoquer de très violentes réactions allergiques chez l'homme et les animaux. Le tourisme, dans les zones touchées, peut être impacté négativement par cette problématique (Rivière, 2011 ; Magen, 2014).

Afin de protéger les gestionnaires et les résidents, les populations de processionnaire doivent être endiguées et leur nuisibilité réduite en-dessous d'un certain seuil. Or, les instances européennes ont légiféré sur les traitements aériens et l'utilisation de produits

phytosanitaires en forêt. Le problème atteignant des proportions très inquiétantes dans certaines zones, la demande d'actions de contrôle, avec des méthodes écologiques et durables, par les services régionaux de protection des végétaux et les acteurs du secteur, devient pressante.

Il existe plusieurs méthodes de lutte alternatives contre la processionnaire du pin *T. pityocampa*: la lutte sylvicole, la lutte microbiologique (à partir de *Bacillus thuringiensis* kurstaki - Btk), le piégeage (piège à phéromone sexuelle et piège à chenilles), les méthodes mécaniques et la lutte biologique (Martin et al., 2015). La lutte biologique est le moyen le plus efficace et sans danger pour l'environnement contre un ravageur (van Lenteren, 2008).

Cette processionnaire a de nombreux ennemis naturels (Biliotti, 1958): virus, champignons, bactéries, prédateurs vertébrés et invertébrés, parasitoïdes des œufs, larves et chrysalides. Les parasitoïdes sont les principaux régulateurs des populations de *T. pityocampa* et plus particulièrement les espèces oophages, dont les larves se développent aux dépens des embryons de *T. pityocampa*. En France, quatre espèces ont été décrites : *Baryscapus servadeii* Domenichini (Chalcidien : Eulophidae) et *Ooencyrtus pityocampae* Mercet (Chalcidien : Encyrtidae) sont plus majoritairement représentés, tandis qu' *Anastatus bifasciatus* Geoffroy (Chalcidien : Eupelmidae) et *Trichogramma* sp. (Chalcidien : Trichogrammatidae) sont plus rarement présents (Imbert, 2012).

Dans ce contexte, un projet de recherche en protection biologique contre *T. pityocampa* est en réflexion avec, entre autres, une recherche de parasitoïdes oophages pouvant contrôler les populations de ravageurs dès le premier stade de leur développement. L'intérêt de cette méthode est d'intervenir avant l'apparition des larves (phytophages et allergisantes). *Ooencyrtus pityocampae*, un parasitoïde oophage élevé en laboratoire sur *Nezara viridula* L. (Pentatomidae), s'est montré efficace en milieu naturel pour lutter contre la processionnaire du pin (Tiberi et al., 1994). Présents naturellement en forêt, les individus d' *O. pityocampae* émergent deux mois avant la période de ponte de la processionnaire, ce qui fait qu'ils commencent leur cycle sur des hôtes intermédiaires avant de parasiter la processionnaire. Ils sont capables d'accomplir deux générations par an (Dulaurent, 2010).

L'objectif de notre projet est de pouvoir effectuer des lâchers de parasitoïdes en forêt, en période de ponte de cette processionnaire. Il est donc nécessaire de pouvoir produire, en grand nombre et à des couts raisonnables, ce parasitoïde. Pour l'étudier et développer des programmes de lutte biologique, son élevage sur un hôte de substitution adapté et facile à élever doit être développé (Bettencourt & Berti-Filho,
1999 ; Paron & Berti-Filho, 2000 ; Pereira et al., 2010 ;
Pastori et al., 2012), car son hôte naturel est inadapté
à une production de masse en laboratoire (cycle
univoltin et poils urticants). À ce jour, trois hôtes de
substitution sont retenus : *Philosamia ricini* Danovan
(Lepidoptera : Saturniidae), *Nezara viridula* L.
(Hemiptera : Pentatomidae) et *Halyomorpha halys*
Stål (Hemiptera : Pentatomidae). *Philosamia ricini*
est connu pour l'élevage de certaines espèces de
*Trichogramma* ainsi que pour celui d'Anastatus
japonicus Ashmead (Eupelmidae) (Pu et al., 1988 ;
Liu et al., 1998). *Ooencyrtus pityocampae* a déjà été
élevé en Italie sur *N. viridula* par Tiberi et son équipe
(1994) et *H. halys* est également utilisé en tant qu'hôte
de substitution pour *A. bifasciatus* par le Centre for
Agricultural Bioscience International (CABI, Suisse).

Il a été montré que les propriétés des œufs-hôtes (contenu nutritionnel, dureté du chorion, taille des œufs) peuvent affecter le taux de parasitisme ainsi que la qualité des parasitoïdes (Bai et al., 1992 ; Corrigan & Laing, 1994 ; Hoffman et al., 1995 ; Greenberg et al., 1998). De nombreux contrôles de qualité doivent donc être réalisés tout au long de la production de masse des parasitoïdes. L'identité de l'espèce doit être vérifiée et la potentialité (fécondité, longévité, taux de parasitisme, taux d'émergence) des individus surveillée (Hawlitzky, 1992). Lors de cette étude, les caractéristiques biologiques et la fitness des descendants, sur les trois hôtes de substitution pour la génération F5 d'O. pityocampae, ont été testées, en vue de les comparer et de choisir l'hôte le plus adapté à une production commerciale de cette espèce.

## 2. MATÉRIEL ET MÉTHODES

### 2.1. Matériel biologique

Le parasitoïde oophage *O. pityocampae* a été récupéré,
en laboratoire, à partir d'œufs de *T. pityocampa*
collectés en forêts de pin d'Alep et pin sylvestre au
Mont Ventoux (Vaucluse, France) en saison de ponte
de la processionnaire (aout 2016).

### 2.2. Technique d'élevage de *Philosamia ricini*

Les œufs de *P. ricini* proviennent des descendants de papillons, sortis de cocons initialement achetés en 2014 à la société « Office Pour les Insectes Et leur Environnement (Guyancourt, 78) » puis maintenus en élevage au laboratoire à Antibes à 25 °C, 75 %HR, 16L:8D.

Les cocons de *P. ricini* sont déposés sur le fond d'une cage (60 × 40 × 50 cm) recouvert d'essuietouts humidifiés, par aspersion, tous les jours. Les parois de la cage sont faites d'un voile à fin maillage (< 1 mm).

Après l'envol des adultes et accouplement, les femelles déposent les œufs qui seront par la suite récupérés sur les parois des cages à l'aide de boites en plastique (1 × 4 cm) aérées grâce à un orifice grillagé. Une partie des œufs (n = 100) est immédiatement utilisée pour les essais de parasitisme avec *O. pityocampae*. L'autre partie (n = 250 à 300) est stockée à côté de la cage jusqu'à l'émergence des larves. Ces dernières sont ensuite placées et élevées en groupes de 30 à 35 chenilles dans des boites en plastique de 41 comportant des ouvertures grillagées pour permettre une bonne aération. Chaque jour, les boites sont ouvertes et nettoyées, les cocons de nymphose sont récupérés et des feuilles fraiches d'Ailanthus altissima sont ajoutées en quantité suffisante (45 à 50 feuilles par jour) pour que les larves aient de quoi se nourrir jusqu'au lendemain.

### 2.3. Technique d'élevage de *Nezara virudula* et de *Halyomorpha halys*

Les individus de *N. virudula* et *H. halys* ont été collectés au stade adulte dans des potagers (Alpes-Maritimes, 06) en juin 2017 *via* une action de sciences participatives.

Les adultes sont installés dans des cages de ponte (60 × 40 × 50 cm) aux parois constituées d'un voile fin (< 1 mm). Les adultes sont nourris à l'aide de cacahuètes et de haricots plats et sont abreuvés *via* de petits récipients en plastique remplis d'eau et dans lesquels un coton dentaire trempe. Les œufs sont récupérés tous les jours sur les parois à l'aide d'un tube à hémolyse en plastique fermé ensuite par un bouchon de coton. Une partie des œufs (n = 50) est immédiatement utilisée pour les essais de parasitisme avec *O. pityocampae*. L'autre partie (n = 80) est conservée dans le tube jusqu'à l'émergence des larves qui sont ensuite transvasées dans la cage de ponte.

### 2.4. Technique d'élevage d'Ooencyrtus pityocampae

Une femelle *O. pityocampae* de la génération F4 âgée de 5 jours, issue des femelles élevées depuis leur émergence des œufs de la processionnaire sur *P. ricini*, est mise dans un tube en verre (1 × 17 cm) avec 50 œufs, âgés de 1 à 2 jours, de *P. ricini*, *H. halys* ou *N. viridula*. Les tubes contiennent des gouttes de miel pour que les femelles vivent assez longtemps pour avoir le temps de pondre (Tunca et al., 2016). Ces tubes sont placés en enceinte climatique à 25 ± 1 °C, HR 65 ± 5 % et 16L:8D de photopériode. Les parasitoïdes émergents sont placés dans d'autres tubes en verre avec une goutte de miel. Les tubes sont bouchés par du coton et sont remis en enceinte climatique (25 ± 1 °C, HR 65 ± 5 % et 16L:8D).
## 2.5. Paramètres biologiques testés

Pour chaque hôte de substitution, nous avons testé indépendamment cinq paramètres biologiques d'O. pityocampae : le taux de parasitisme, le taux d'émergence, la durée de développement, la longévité et la fécondité.

## 2.6. Statistiques

Les données ont été traitées avec Minitab Excel® et les tests statistiques ont été réalisés avec Minitab (Minitab Release 14 ; SAS Institute). Les résultats de différentes mesures :

- taux de parasitisme,

- taux d'émergence,

- durée de développement,

- longévité,

- fécondité

d'O. pityocampae ont été évalués statistiquement en utilisant une analyse de variance (ANOVA) complétée par une comparaison multiple des moyennes par le test de Duncan. Les résultats ont été exprimés en moyenne ± erreur standard de la moyenne (MSE). Les pourcentages ont été transformés en valeurs d'Arcsin avant l'ANOVA.

# 3. RÉSULTATS

## 3.1. Taux de parasitisme d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur les trois hôtes de substitution

L'analyse statistique a montré que la différence du taux de parasitisme est hautement significative entre les espèces testées ($F_{(2,44)} = 15,26, p < 0,001$). Le taux de parasitisme d'O. pityocampae (F5) est plus important sur le lépidoptère P. ricini (74,88 %) que sur les deux punaises H. halys et N. viridula (Tableau 1).

## 3.2. Taux d'émergence d'Ooencyrtus pityocampae (F5)

L'analyse statistique a montré que la différence du taux d'émergence d'O. pityocampae est hautement significative entre les trois espèces testées ($F_{(2,44)} = 11,60, p < 0,001$). Le taux d'émergence d'O. pityocampae est plus important sur P. ricini (80,32 %) et N. viridula (72,29 %) que sur H. halys (Tableau 2).

## 3.3. Durée de développement d'Ooencyrtus pityocampae (F5)

Pour ce qui est de la durée de développement, la différence est significative entre P. ricini et les deux

<table><caption>Tableau 1. Le taux moyen de parasitisme (%) d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur les trois hôtes de substitution — Ooencyrtus pityocampae (F5) parasitism rate (%) on the three substitute hosts.</caption><thead><tr><td>Halyomorpha halys</td><td>Nezara viridula</td><td>Philosamia ricini</td></tr></thead><tbody><tr><td>54,66<sup>c</sup></td><td>65,55<sup>b</sup></td><td>74,88<sup>a</sup></td></tr></tbody></table>

Entre les trois hôtes testés, les valeurs avec différentes lettres sont significativement différentes ($p < 0,001$) — the values with different letters are significantly different ($p < 0,001$) between the three tested hosts.

<table><caption>Tableau 2. Le taux moyen d'émergence (%) d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur trois hôtes de substitution — Ooencyrtus pityocampae (F5) emergency rate (%) on the three substitute hosts.</caption><thead><tr><td>Halyomorpha halys</td><td>Nezara viridula</td><td>Philosamia ricini</td></tr></thead><tbody><tr><td>66,42<sup>b</sup></td><td>72,29<sup>a</sup></td><td>80,32<sup>a</sup></td></tr></tbody></table>

Entre les trois hôtes testés, les valeurs avec différentes lettres sont significativement différentes ($p < 0,001$) — the values with different letters are significantly different ($p < 0,001$) between the three tested hosts.

autres hôtes de substitution ($F_{(2,411)} = 56,19, p < 0,001$). La durée de développement d'O. pityocampae (F5) est plus longue (19,48 %) sur P. ricini (Tableau 3).

## 3.4. Longévité d'Ooencyrtus pityocampae (F5)

Une différence significative de la longévité a été observée chez les femelles entre les trois hôtes de substitution ($F_{(2,106)} = 40,66, p < 0,001$). La longévité moyenne des O. pityocampae est plus importante pour ceux issus d'œufs de P. ricini (48,91 jours) et d'H. halys (44,37 jours) que pour ceux issus des œufs de N. viridula (Tableau 4).

## 3.5. Fécondité d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur trois hôtes de substitution

Sur l'ensemble du suivi, les rendements observés varient significativement d'un hôte à l'autre ($F_{(2,34)} = 35,34, p < 0,001$). Le maximum de descendants a été obtenu pour P. ricini avec une production totale, pour les 12 femelles, de 67 descendants en moyenne contre 51 pour H. halys et 42 pour N. viridula (Tableau 5).

# 4. DISCUSSION

Le développement de programmes de lutte biologique suit certaines étapes. L'une de ces étapes est l'élevage de masse qui se définit par la production d'insectes
<table><caption>**Tableau 3.** La durée moyenne de développement (jours) d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur trois hôtes de substitution — Ooencyrtus pityocampae (F5) development time (days) on the three substitute hosts.</caption><thead><tr><td>Halyomorpha halys</td><td>Nezara viridula</td><td>Philosamia ricini</td></tr></thead><tbody><tr><td>17,90<sup>b</sup></td><td>18,24<sup>b</sup></td><td>19,48<sup>a</sup></td></tr><tr><td>n = 175</td><td>n = 126</td><td>n = 111</td></tr></tbody></table>

Entre les trois hôtes testés, les valeurs avec différentes lettres sont significativement différentes (*p* < 0,001) — the values with different letters are significantly different (*p* < 0.001) between the three tested hosts; n : le nombre d'individus *O. pityocampae* testés — number of *O. pityocampae* individuals tested.

<table><caption>**Tableau 4.** Longévité moyenne (jours) d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur trois hôtes de substitution — Ooencyrtus pityocampae (F5) longevity (days) on the three substitute hosts.</caption><thead><tr><td>Halyomorpha halys</td><td>Nezara viridula</td><td>Philosamia ricini</td></tr></thead><tbody><tr><td>44,37<sup>b</sup></td><td>38,62<sup>c</sup></td><td>48,91<sup>a</sup></td></tr><tr><td>n = 35</td><td>n = 37</td><td>n = 35</td></tr></tbody></table>

Entre les trois hôtes testés, les valeurs avec différentes lettres sont significativement différentes (*p* < 0,001) — the values with different letters are significantly different (*p* < 0.001) between the three tested hosts; n : le nombre d'individus *O. pityocampae* testés — number of *O. pityocampae* individuals tested.

<table><caption>**Tableau 5.** Fécondité moyenne (nombre d'individus) d'Ooencyrtus pityocampae (F5) sur trois hôtes de substitution — Ooencyrtus pityocampae (F5) fecundity (individuals number) on the three substitute hosts.</caption><thead><tr><td>Halyomorpha halys</td><td>Nezara viridula</td><td>Philosamia ricini</td></tr></thead><tbody><tr><td>50,72<sup>b</sup></td><td>41,50<sup>c</sup></td><td>66,91<sup>a</sup></td></tr><tr><td>n = 11</td><td>n = 12</td><td>n = 13</td></tr></tbody></table>

Entre les trois hôtes testés, les valeurs avec différentes lettres sont significativement différentes (*p* < 0,001) — the values with different letters are significantly different (*p* < 0.001) between the three tested hosts; n : le nombre d'individus *O. pityocampae* testés — number of *O. pityocampae* individuals tested.

capables d'atteindre les objectifs d'un programme de lutte biologique avec un ratio cout/bénéfice acceptable et un nombre d'individus, par génération, excédant de dix mille à un million de fois la moyenne de la productivité naturelle (Chambers, 1977; Leppla, 2014). L'élevage de masse peut avoir des effets négatifs sur la performance des insectes (Sorensen et al., 2012). Pour cela, les élevages de masse doivent être bien planifiés et l'hôte de substitution doit être bien choisi. Les parasitoïdes produits doivent être de bonne qualité, c'est-à-dire qu'ils doivent être capables

de lutte efficacement contre les ravageurs ciblés (Penn et al., 1998).

Pour étudier et développer le programme de lutte biologique de *T. pityocampa* à l'aide de *O. pityocampae*, il est nécessaire de développer l'élevage de masse du parasitoïde sur un hôte de substitution. Halperin (1990) a montré que le parasitoïde *O. pityocampae* peut être élevé sur les œufs de *Bombyx mori*. Cette conclusion coïncide avec les résultats proposés par Samra et al. (2016), les œufs du ver à soie conservés au froid pouvant être utilisés pour élever des parasitoïdes *Ooencyrtus* spp.

Sur les trois hôtes de substitution choisis, *P. ricini* s'avère être le plus performant en ce qui concerne la quantité et la qualité des *O. pityocampae* produits. Cependant, l'élevage de masse ne peut se faire que si les hôtes de substitution sont faciles à élever. Il serait donc intéressant de comparer la faisabilité des élevages des trois hôtes étudiés d'un point de vue technique et économique (disponibilité de la plante-hôte, cout matériel et main-d'œuvre, temps d'élevage, fécondité, etc.) et de retenir l'hôte qui aura le meilleur compromis entre une bonne adaptation au parasitoïde et un élevage plus facile et moins couteux. Des éléments de réponse à l'avantage des trois hôtes peuvent déjà être avancés : courte durée de leur cycle de développement et bonne fécondité (Tiradon et al., 2013). À 25 °C, il faut environ 60 jours de développement entre l'œuf et le stade adulte pour *P. ricini* avec une fécondité moyenne de 300 œufs par femelle. Le cycle de *N. viridula* est de 26 jours et aboutit à une production moyenne de 266 œufs par femelle, tandis que *H. halys* se développe en 35 jours pour une production moyenne de 308 œufs par femelle (données non publiées). À l'inverse, à leur désavantage pour un élevage de masse, *N. viridula* montre de la consanguinité au bout de quelques générations seulement, ce qui nécessite de faire des croisements manuels de fratries, tandis que l'alimentation de *P. ricini* nécessite des quantités phénoménales de feuilles de troène ou d'ailante (45-50 feuilles par jour) suivant la saison (comm. pers. UEFM). Un autre élément à prendre en compte est la possibilité d'élever différents parasitoïdes, utiles en lutte biologique, sur un même hôte de substitution pour une simplification de production et de commercialisation. À ce jour, *P. ricini* s'est révélé un bon hôte pour l'élevage de *O. kuvanae* Howard, parasitoïde oophage de *Lymania dispar* L. (données non publiées), tandis qu'*H. halys* permet l'élevage d'*A. bifasciatus*, autre parasitoïde oophage de ravageurs forestiers (CABI, Suisse).

## 5. CONCLUSIONS

Pour l'élevage de masse du parasitoïde oophage de l'espèce *O. pityocampae*, le lépidoptère *P. ricini* semble
être le meilleur des trois hôtes de substitution, du point de vue rendement et qualité des individus produits. Il restera par la suite à démontrer qu'O. pityocampae, après de nombreuses générations issues de l'élevage sur hôte de substitution, se révèle efficace sur les œufs de la processionnaire du pin.

## Remerciements

Nous remercions Jean Claude Martin et Estelle Morel pour leur intérêt et leurs conseils précieux.

## Bibliographie

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