# Quelques techniques de production de poissons d'étangs

Roland Billard, Jacqueline Marcel

► To cite this version:

Roland Billard, Jacqueline Marcel. Quelques techniques de production de poissons d'étangs. Pisciculture Française d'Eau Vive et d'Etang, 1980, 59, pp.9-49. hal-01601240

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Submitted on 2 Jun 2020

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<figure><img src="image_1.png" /></figure>
# Quelques techniques de production de poissons d'étangs

par R. BILLARD (*) et Jacqueline MARCEL (*)(**)

## INTRODUCTION

Dans la plupart des plans d'eau naturels, la production de poissons est faible (quelques dizaines de kg/ha/an), alors que la productivité primaire est souvent plus élevée et devrait autoriser des productions de poissons plus importantes. L'idée de mieux valoriser la production naturelle des eaux est ancienne et une véritable agriculture des eaux (aquiculture) a été mise en place dans les pays comme la Chine, le Sud-Est asiatique et, plus récemment, en Europe de l'Est. Des méthodes d'exploitation ont progressivement été mises en place et se sont substituées à l'activité de cueillette. Mais ces techniques piscicoles ont été établies sur des plans d'eau aménagés, le plus souvent des étangs vidangeables. La méthodologie d'exploitation des plans d'eau non aménagés n'est pas encore parfaitement établie et on se trouve encore dans ce domaine dans une civilisation de cueillette. Ce retard est dû essentiellement à la difficulté de capture des poissons. En France, comme dans de nombreux pays industrialisés, la diversification des loisirs a conduit au développement de la pêche à la ligne qui effectue dans ces plans d'eau non aménagés des prélèvements qui, bien que non chiffrés, n'en sont pas moins importants et dépassent souvent la productivité naturelle. Le pêcheur devient ainsi partie intégrante du système d'exploitation des ressources naturelles et contribue à la valorisation des étangs et plans d'eau non vidangeables et souvent non pêchables par des engins. Dès que les captures vont dépasser la productivité naturelle, il faudra procéder à des aménagements (meilleure exploitation, repeuplement, bon équilibre des espèces). On se trouve donc en présence d'un savoir-faire connu concernant l'exploitation de type zootechnique de certaines espèces comme la carpe et la nécessité de mettre au point une véritable pisciculture de peuplement pour les eaux closes et pour une plus large variété d'espèces. En quoi une pisciculture de peuplement va-t-elle différer d'une pisciculture de production ? Il s'agit d'un débat loin d'être clos, mais nombre de techniques de pisciculture sont directement applicables à la production de poissons blancs de repeuplement. Les techniques et méthodes plus originales que nécessitera le peuplement vont davantage relever de la gestion des stocks et de l'équilibre des populations, ce qui constitue une phase post-production. Nous allons examiner dans ce document quelques techniques de production de poissons d'étangs en condition semi-intensive en se référant essentiellement aux expériences des pays d'Europe de l'Est. Les techniques vont en réalité se référer presque exclusivement à la carpe qui est la principale espèce cultivée. Mais plusieurs de ces techniques peuvent être transférées assez facilement après quelques mises au point complémentaires à d'autres espèces. Nous examinerons, en outre, quelques possibilités d'amélioration de ce type de production basée sur l'idée de soustraire la jeune larve ou le jeune alevin au milieu naturel lorsque les conditions sont défavorables (aléas climatiques par exemple) en procédant à un élevage en condition contrôlée pendant une courte période et de lâcher dans le milieu lorsque les conditions sont devenues favorables.

## I. - LA REPRODUCTION

### A. LES DIFFÉRENTS MODES DE REPRODUCTION

Comme indiqué précédemment, c'est la carpe qui a bénéficié des améliorations techniques les plus importantes. Traditionnellement, pour la plupart des espèces de poissons élevés en étangs, la reproduction se fait naturellement en étangs. Cette méthode est encore couramment utilisée en France mais a été abandonnée dans la plupart des autres pays (Europe de l'Est en particulier) en raison des aléas climatiques. En effet, dans ces pays à climat continental, les conditions thermiques ne sont pas toujours réunies et la reproduction peut ne pas avoir lieu certaines années froides. Cette forte dépendance de la température a conduit à élaborer une méthodologie complexe dans laquelle les géniteurs de carpe en particulier sont stockés pendant la saison froide en étangs dits d'hivernage assez profonds (1 à 2 m) pour ne pas être totalement pris en glace et, au contraire, sont placés au printemps en étangs peu profonds abrités du vent et se réchauffant rapidement. Dans ces étangs dits de prématuration, la somme des degrés-jours (voir ci-dessous) nécessaires à l'achèvement de la gamétogenèse et à la maturation finale est atteinte plus rapidement.

La reproduction proprement dite de ces géniteurs ainsi amenés à un stade de maturité avancé est obtenue selon divers procédés :

Dans la reproduction dite dirigée, les carpes sont placées dans des étangs de pose (DUBISCH ou HOFER) où la reproduction a lieu naturellement (photo 1). Après la reproduction, les géniteurs sont retirés et les œufs laissés à éclore. Les alevins sont enlevés après quelques jours et distribués dans les étangs de croissance. Dans la reproduction dite contrôlée, les techniques mises en œuvre sont plus sophistiquées et

<figure><img src="image_2.png" /><figcaption>Photo 1 : Étangs trayères de diverses dimensions (pisciculture de Ruda Sulowska, Pologne).</figcaption></figure>

<footnote>(*) Laboratoire de physiologie des poissons I.N.R.A., 78350 Jouy-en-Josas.</footnote>

<footnote>(**) Élève de l'E.P.H.E., laboratoire d'étude du développement post-embryonnaire des vertébrés inférieurs, 25, rue du Plat, 69288 Lyon cedex 1.</footnote>
font intervenir des injections hormonales (hypophysation) pour induire l'ovulation, l'insémination artificielle (méthode de Woynarovich) et l'incubation en bouteille de zug. Il existe, en outre, une méthode intermédiaire où les carpes reçoivent une injection hormonale avant d'être placées en frayères Dubisch. La méthode de reproduction contrôlée est détaillée ci-dessous.

## B. LA REPRODUCTION CONTROLÉE DE LA CARPE

### 1. Gestion du stock de géniteurs

L'âge à la puberté dépend de la taille des animaux, laquelle est liée à la température d'élevage et aux disponibilités alimentaires. Dans nos régions tempérées, la première reproduction a lieu à 2-3 ans pour les mâles et 3-4 ans pour les femelles. Généralement, les sujets retenus comme géniteurs sont âgés de 4 à 6 ans (2,5 à 5 kg) pour les mâles et 5 à 8 ans (4 à 7 kg) pour les femelles. Cependant, des individus plus jeunes et de plus petite taille peuvent aussi être utilisés comme reproducuteurs. Le sperme de mâles présente un excellent pouvoir fécondant dès le premier cycle sexuel. Chez les femelles, par contre, les œufs de la première reproduction sont deux fois plus petits que les œufs de la seconde (HULATA et MOAV, 1974). De même ZONOVA (1973) a signalé que la taille moyenne des ovules était positivement corrélée avec l'âge des femelles; cependant, la taille des œufs ne montre pas de corrélation avec la survie embryonnaire. L'âge à la réforme n'est pas strict. Les mâles sont réformés plus tôt que les femelles; afin de réduire l'importance du cheptel géniteurs, on peut n'utiliser les mâles que 2 ou 3 ans qui seraient commercialisés ensuite. Quant aux femelles SCHAPERCLAUS signale que des sujets de 20 ans don-

nent encore de bons produits sexuels. ZONOVA (1973) a cependant constaté que chez des femelles de 16 ans, le nombre d'ovules par unité de poids diminuait.

Il n'existe pas de doctrine bien établie concernant le choix des géniteurs. L'éleveur sélectionne en général ses géniteurs à partir des poissons de troisième année d'après leur taille et leur morphologie. La précité de la reproduction est un critère qui est quelquefois retenu (SMISEK, 1975).

Les animaux destinés à la reproduction sont stockés pendant les périodes estivales et automnales en étangs dits à géniteurs dont les caractéristiques sont voisines de celles des étangs de grossissement des carpes de 2 et 3e années (cf tableau 1). Les étangs à géniteurs occupent environ 4 % de la surface d'étang de l'exploitation piscicole. La surface de ce type d'étang est variable (1 à 10 ha avec une profondeur de 1 à 2 m) et le débit est de l'ordre de 1 l/sec/ha (photo 2).

Les géniteurs sont placés dans ces étangs immédiatement après la reproduction au début de l'été. La charge en géniteurs dépend de la productivité de l'étang. Des densités de carpes de 800 à 1000 kg/ha ont été signalées dans les étangs à géniteurs. On rapporte des densités de 1,5 à 2 tonnes dans le sud de la Chine, mais dans des étangs plus profonds (2-3 m) et pour des carpes phytophages (rapport FAO, 1977). Pour les mêmes espèces, les auteurs roumains ont établi que la densité ne doit pas dépasser 14 individus par ha (c'est-à-dire 100 kg). Pour le brochet, les charges de géniteurs sont plus élevées: 200 à 500 kg/ha (HUET, 1972) et jusqu'à 800 kg/ha (comm. pers. de PECHA, 1978) [photo 3].

<table><caption>**Tableau 1**
Caractéristiques techniques des étangs à carpe en Pologne
(Données aimablement communiquées par le docteur H. WIENIAWSKI)</caption><thead><tr><th rowspan="2">Caractéristiques</th><th rowspan="2">étangs hivernage<br>ts stades</th><th colspan="2">Reproduction</th><th colspan="2">Etangs d'alevinage</th><th rowspan="2">Stockage<br>avant vente<br>ts stades</th><th rowspan="2">Grossissement<br>adultes</th></tr><tr><th>Prématurité<br>tion<br>+ géniteurs +</th><th>Etangs de<br>fraise</th><th>1er Stade<br>+ alevins +</th><th>2e Stade</th></tr></thead><tbody><tr><td>Durée du séjour</td><td>hiver +</td><td>printemps +</td><td>12 à 48 h</td><td>3-5 semaines</td><td>14 mois environ</td><td>8-20 semaines</td><td>6-7 mois</td></tr><tr><td>Température °C</td><td>0,2 - 2,5</td><td>jusqu'à 20</td><td>20 - 25</td><td>17 - 25</td><td>15 - 25</td><td>0,2 - 2,5</td><td>8 - 27</td></tr><tr><td>Nombre d'étangs nécessaires</td><td>1 - 2</td><td>3</td><td>selon les<br>besoins</td><td></td><td>selon les<br>besoins</td><td>selon les<br>besoins</td><td>(1)</td></tr><tr><td>Superficie ha</td><td>0,02 - 2</td><td>0,02 - 0,1</td><td>0,01 - 0,03</td><td>0,5 - 2</td><td>differente</td><td>0,01 - 0,3</td><td>(1)</td></tr><tr><td>Profondeur m</td><td>1,8 - 2,5</td><td>1,0 - 1,5</td><td>0,3 - 1,0</td><td>0,4 - 1,0</td><td>0,6 - 1,5</td><td>1,5 - 2,5</td><td>0,7 - 2,5</td></tr><tr><td>Débit de l'eau</td><td>(2)</td><td>comme hiver-<br>nage</td><td>(3)</td><td>(3)</td><td>(3)</td><td>selon le<br>bilan<br>d'oxygène</td><td>(3)</td></tr><tr><td>Charge en début de cycle</td><td>jusqu'à<br>1000/ha</td><td>jusqu'à<br>500/ha</td><td>3 - 10/Etg<br>(2 0 1,0<br>5 0 3 0)</td><td>50 000 -<br>1 000 000/ha</td><td>10 000 -<br>40 000/ha</td><td>selon le<br> poids</td><td>(4)</td></tr><tr><td>- Nombre d'individus</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>- Poids individuel</td><td>1 - 8 Kg</td><td>4 - 8 Kg</td><td>4 - 8 Kg</td><td>1 mg</td><td>1 - 4 g</td><td>0,5 - 1,7 kg</td><td>(4)</td></tr><tr><td>- Poids total Kg</td><td>4000-8000/ha</td><td>2000-4000/ha</td><td></td><td></td><td>10 - 40/ha</td><td>10-200/m²</td><td>(4)</td></tr><tr><td>(Les Pertes pendant le cycle ( %<br>d'individus)</td><td>aléatoires</td><td>aléatoires</td><td>aléatoires</td><td>35 - 60</td><td>30 - 60</td><td>2 - 5</td><td>5 - 30</td></tr><tr><td>Pêche en fin de cycle</td><td>jusqu'à<br>1000/ha</td><td>jusqu'à<br>500/ha</td><td>3 - 10</td><td>20 000-700 000</td><td>5000 - 25 000</td><td>selon les<br>charges</td><td>(4)</td></tr><tr><td>- Nombre d'individus</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>- Poids individuel</td><td>4 - 8 Kg</td><td>4 - 8 Kg</td><td>4 - 8 Kg</td><td>1 - 4 g</td><td>30 - 70 g</td><td>0,5 - 1,7 Kg</td><td>(4)</td></tr><tr><td>- Poids total Kg/ha</td><td>4000-8000</td><td>2000-4000</td><td></td><td>100-800</td><td>200-1000</td><td></td><td>200-8000</td></tr></tbody></table>

<footnote>(1) Varie selon les techniques de production. (2) L'alimentation en eau des bassins d'hivernage a pour but d'oxygêner le milieu et de stabiliser la température. (3) Compensation des pertes d'eau par évaporation-et infiltration. (4) Varie selon la densité de l'élevage et le système d'exploitation (qui peut porter sur 2 ou 3 années).</footnote>
<figure><img src="image_3.png" /></figure>

**Photo 2 :** Étang pour géniteurs de carpes phytophages (les herbes sont rejetées dans l'étang après faucardage des berges et sont consommées par les carpes herbivores (Clénopharyngodon idella). Au premier plan, système de circulation des eaux à l'extérieur de l'étang (pisciculture de Golicz, Połogne).

<figure><img src="image_4.png" /></figure>

**Photo 3 :** Pêche en fin d'hiver d'un étang ayant servi au stockage de géniteurs brochet pendant la période hivernale (écloserie de Tabor, Tchécoslovaquie).

Si les conditions thermiques ne sont pas trop rigoureuses ou si la profondeur de ces étangs est suffisante (2 m), les géniteurs peuvent y demeurer durant l'hiver ; sinon, ils sont transférés en étangs d'hivernage pendant une période allant approximativement de novembre à mars (photo 4).

<figure><img src="image_5.png" /></figure>

**Photo 4 :** Étang d'hivernage. Pisciculture de Mika Alas, Yougoslavie.

Ce type d'étang représente environ 2 % de la surface de l'exploitation. La surface individuelle est faible, 0,30 à 0,50 ha (cf tableau 1), le débit d'eau doit être élevé afin de maintenir une bonne oxygénation. Quelquefois, des aérateurs mécaniques y sont disposés en permanence pendant l'hiver, ce qui prévient la formation de glace et assure l'oxygénation. La charge est de l'ordre de 1 à 4 individus par m². En fin d'hiver, les géniteurs sont placés en étangs de prématuration dont la superficie varie de 1 à 2,5 ha avec une profondeur de 0,40 à 1,40 m et représentent un volume d'eau de 8 000 à 10 000 m³. Les animaux sont maintenus dans ces étangs jusqu'à ce que la maturité sexuelle soit atteinte. Dans tous les étangs, et en particulier dans les étangs de prématuration, il est préférable de pratiquer l'élevage à sexes séparés afin d'éviter des pontes naturelles.

Les époques de passage des géniteurs dans les différents types d'étangs sont résumés dans la figure 1 en relation avec le stade du cycle reproducteur.

## 2. Importance des facteurs de l'environnement

Plusieurs facteurs du milieu ont une influence considérable sur les différentes phases de la gamétogénese, la maturation et l'ovulation. Les plus importants sont l'alimentation, la température, la teneur de l'eau en oxygène dissous, l'environnement social et la présence de substrat de ponte.

### a) La température

Le cycle reproducteur des poissons vivants dans les zones tempérées est sous la dépendance des changements dans la photopériode et la température.

<figure><img src="image_6.png" /><figcaption>Fig. 1. – État de maturation sexuelle des géniteurs lors de leur passage dans les différents types d'étangs.</figcaption></figure>
La photopériode est le facteur déterminant chez les salmonidés mais n'a qu'une importance réduite chez les cyprinidés où la température est l'élément le plus important. Dans les conditions naturelles, la gamétogénèse de la carpe redevient active (multiplication des ovogonies, phases de prévitellogénèse et de vitellogénèse) immédiatement après la ponte en mai-juin. Souvent, la gamétogénèse est achevée dès l'automne, mais la chute de température bloque alors les processus de maturation des follicules. Ces derniers ne redémarrent qu'au printemps suivant lorsque les conditions thermiques sont redevenues favorables. Les besoins thermiques sont très stricts et ont été quantifiés en degrés-jours. Ils servent d'ailleurs à définir l'époque à laquelle le traitement hormonal destiné à provoquer l'ovulation doit être appliqué. Le point de départ de la sommation des degrés-jours est habituellement (et arbitrairement) fixé au 1er janvier. On considère que les géniteurs sont matures lorsque la somme des degrés-jours atteint 1 000 à 1 100 pour la carpe commune, 1 300 à 1 500 pour les diverses carpes phytophages (BAKOS et al., 1975). Ces données sont susceptibles de varier selon les conditions thermiques des différents pays ; les valeurs ci-dessus ont été établies en Hongrie et dans le delta du Danube le nombre de degrés-jours ne serait que de 800 à 900 pour la carpe (MOLNAR, 1978, comm. pers.). Ces divergences proviennent pour une bonne part du choix arbitraire de la date du 1er janvier comme point de départ et, en toute rigueur, il serait préférable de considérer l'ensemble du cycle, c'est-à-dire de commencer le comptage des degrés-jours immédiatement après la ponte précédente. Les niveaux thermiques considérés comme optima sont de l'ordre de 15-17 °C au printemps mais les carpes peuvent supporter des températures de 30 °C (FRITZSCHE, 1978). En captivité et en conditions thermorégulées (température 20-24 °C), la gamétogénèse complète peut se produire (GUPTA, 1975), mais l'ovulation ne peut être obtenue qu'après injection hormonale ; il est ainsi possible d'obtenir plusieurs reproductions par an (MESKE et al., 1968, KOSSMANN, 1975). Lors de la fraye, les conditions thermiques supérieures à 17 °C sont nécessaires à la ponte ou au succès de l'hypophysation, mais JALABERT et al. (1977) ont montré que des ovulations pouvaient être obtenues à 14 °C. Des expériences récentes ont, d'autre part, montré que le poisson rouge ne se reproduit spontanément en aquarium qu'à 18 °C mais si on introduit dans l'eau un substrat constitué d'herbes ou de racines, la ponte peut se produire à 12 °C (STACEY et PETER, 1978) [photo 5].

### b) L'alimentation

L'alimentation interfère d'une façon notable sur l'état des géniteurs et la qualité des produits sexuels émis. On choisira donc les étangs les plus productifs comme étangs à géniteurs ou comme étangs de prématuration. Certains auteurs comme KAUSH (1975) font état d'un apport alimentaire exogène constitué de granulés riches en protéines (type truite) dans les bassins de prématuration au printemps dès que la température s'élève (> 6 °C). De même HORVATH (1978) réalise un apport exogène de nourriture riche en protéines et de basse valeur énergétique avec distribution d'antibiotiques au début et en fin d'hiver. On manque cependant d'informations précises sur les besoins nutritionnels des géniteurs.

### c) L'oxygène.

La consommation d'oxygène des géniteurs carpe est de l'ordre de 300 à 400 mg/O₂/kg de poids vif. Le

taux minimal d'oxygène est de l'ordre de 6 ppm. Le débit d'eau doit donc être ajusté en conséquence mais une aération mécanique peut être dispensée sur les étangs, en particulier pendant la nuit. Le pH de l'eau considéré comme satisfaisant varie entre 6,5 et 8,5 (SWINGLE, 1961).

Pour des carpes en croissance, en conditions intensives, STEFFENS (1969) considère que la teneur minimale en O₂ est de 4 ppm tandis que les pisciculateurs israéliens estiment qu'au cours des variations nycthemérales (période de 24 heures), l'oxygène ne doit pas descendre au-dessous de 20 % de la saturation.

<figure><img src="image_7.png" /><figcaption>Photo 5 : Exemple de substrat de ponte pour poisson rouge, constitué de fibres synthétiques et maintenu en surface par des éléments de polystyrène expansé.</figcaption></figure>

<caption>Fig. 2. - Plan de l'écloserie Félix (Roumanie) d'après NICO-LAU et al., 1978. Cette écloserie bénéficie d'un apport d'eau réchauffée sur la gauche (C) qui est mélangée avec l'eau à température ambiante (A) dans le bassin de thermorégulation (T), afin d'obtenir la température souhaitée.</caption>

1-2 : bassin d'accueil des géniteurs en provenance des étangs de prématuration.

3-9 : bassin de maturation et injection.

10-13 : étangs de premier alevinage.

14-16 : étangs de deuxième alevinage.

SI : salle d'incubation.

<figure><img src="image_8.png" /></figure>
### 3. La technique de reproduction artificielle.

La reproduction se décompose en trois opérations principales : l'hypophysation, qui a pour but d'induire l'ovulation ; le prélèvement des gamètes et l'insémination artificielle, puis le transfert dans les bouteilles de zug, après traitement des œufs pour en retirer la couche collante qui les entoure.

L'incubation se déroule dans les bouteilles de zug et après éclosion, les larves tombent dans des auges d'alevinage où se fait la résorption vitelline.

Ces opérations se déroulent en écloseries (fig. 2) et sont schématisées dans la fig. 3 (photo 6, a, b, c)

#### a) L'hypophysation.

#### a) Le principe de la technique et son application.

Dans les conditions de vie normale, des facteurs plus ou moins spécifiques de l'environnement favorisent et stimulent une décharge endogène d'hormones par la propre hypophyse des poissons qui ne se produit pas ou reste insuffisante en conditions défavorables. La technique d'hypophysation consiste, en fait, à procéder à un apport exogène d'hormone pour induire une phase du cycle reproducteur (ovulation) qui ne se produit pas spontanément dans le cas des poissons élevés en captivité (carpes) ou se trouvant dans un environnement écologique défavorable (absence de frayères enhérées pour le brochet ou d'eau courante supérieure à 20 °C pour les carpes chinoises).

Dans le cas de la carpe (fig. 3), les géniteurs sont retirés des étangs de prématuration lorsque le nombre des degrés-jours est atteint et sont transférés dans l'écloserie en bassins de stockage ou de maturation. La température est progressivement amenée aux environs de 20 °C (augmentation de 1 °C par jour). L'injection d'extraits hypophysaires bruts (photo 7) est alors pratiquée soit dans la musculature dorsale (photo 8) ou dans la cavité générale (photo 9) ; les femelles reçoivent deux injections : la première (priming) est de 0,3 mg/kg de poids vif et la seconde, administrée après 220 degrés-jours (soit 11 heures plus tard à 20 °C) est de 3 à 4 mg/kg. Pour les carpes chinoises, on détermine quelquefois la dose d'après la circonférence de la femelle (fig. 4). L'ovulation intervient après 240 degrés-heures environ et afin que les ovules ne soient spontanément émis, l'orifice génital est cousu lors de la deuxième injection. Les mâles ne reçoivent qu'une injection unique (1 mg/kg). Le rendement est en moyenne de 50 %, c'est-à-dire que la moitié seulement des femelles ovulent après traitement.

<figure><img src="image_9.png" /></figure>

<figure><img src="image_10.png" /></figure>

<figure><img src="image_11.png" /><figcaption>Photo 6 : Il existe des types très variés d'écloseries comportant batteries de bouteilles de Zug très simples ou plus complexes (a) ayant en aval des dispositifs de filtration et de chauffage très sophistiqués (b) et des structures permettant un élevage larvaire (c).</figcaption></figure>

<figure><img src="image_12.png" /><figcaption>Fig. 3. — Schéma des opérations d'hypophysation, d'insémination, d'incubation chez la carpe.</figcaption></figure>
<figure><img src="image_13.png" /></figure>

**Photo 7 :** Équipement de base pour la préparation des extraits hypophysaires. Les hypophyses sont broyées dans un mortier ou dans un broyeur conique (poter) avant injection à l'aide de seringues hypodermiques.

<figure><img src="image_14.png" /></figure>

**Photo 8 :** Injection d'extraits hypophysaires dans la musculature dorsale.

<figure><img src="image_15.png" /></figure>

**Photo 9 :** Injection intraabdominale d'extraits hypophysaires.

Dans le cas du brochet, des travaux récents réalisés au laboratoire ont montré qu'une seule injection d'hormone partiellement purifiée de saumon (0,1 mg/kg) provoquait l'ovulation chez les femelles, mais à condition que le traitement soit appliqué lors de la capture.

### b) Les problèmes liés à l'hypophysation et les limites de cette technique.

Cette technique, qui date de plus de 50 ans et qui a conduit à des progrès spectaculaires dans la production d'espèces très variées dans de nombreux pays, demande à être améliorée. Il est d'ailleurs à noter que cette technique n'a pas fait de progrès notables au

cours des dernières années, alors que l'on a enregistré une amélioration non négligeable des connaissances dans le domaine de la reproduction. Cette progression dans la connaissance des mécanismes qui contrôlent la reproduction permet au moins d'identifier les raisons du mauvais rendement de l'hypophysation et les problèmes majeurs posés par cette technique.

**Fig. 4.** — Abaque utilisée en Europe de l'Est, dans le cas de la carpe chinoise, pour déterminer la dose d'hypophyse à injecter, d'après la circonférence de la femelle (mg d'hypophyses/kg de poids corporel).

<figure><img src="image_16.png" /></figure>

### 1) Caractère composite des préparations hypophysaires.

Il existe de nombreuses hormones dans l'hypophyse et toutes ne sont pas favorables à la reproduction. En outre, l'activité biologique gonadotrope (c'est-à-dire favorable à la reproduction) est très hétérogène dans les préparations utilisées en pratique. C'est ainsi que nous avons mesuré des teneurs allant de 130 à 400 mg d'hormone (c-GTH) par mg dans différentes hypophyses utilisées en pratique. C'est dire que les doses administrées peuvent varier d'un facteur 3, ce qui est de nature à compromettre le succès de l'opération soit par excès soit par défaut de dosage. L'injection d'hypophyses complètes entraîne de plus un apport non négligeable de protéines étrangères à l'animal receveur. Toutes ces raisons font qu'il est préférable de disposer de l'hormone gonadotrope à l'état partiellement purifiée.

### 2) Le problème de la spécificité zoologique

L'hormone biologiquement la plus active sera celle qui provient de la même famille que l'animal receveur. C'est ainsi que l'hormone gonadotrope de salmonidés est plus active sur salmonidés que sur cyprinidés. Il est cependant possible, au moins dans certaines limites, de compenser cette plus faible activité en augmentant les doses mais l'opération sera plus coûteuse, ce qui conduit à utiliser si possible l'hormone homologue. Dans le cas du brochet, il est presque impossible de récolter des hypophyses en quantité suffisante ; il faut donc avoir recours à des sources hétérologues et il est apparu que des hormones gonadotropes partiellement purifiées de carpe et de saumon induisaient l'ovulation du brochet, alors que des préparations brutes de même origine étaient sans effet, ce qui souligne à nouveau la nécessité de purifier au moins partiellement le matériel utilisé.

### 3) Choix du moment optimal pour le traitement

L'administration de l'hormone doit être effectuée à un moment très précis du développement de l'ovaire. Plusieurs critères sont pris en considération : pour la carpe, on utilise généralement le nombre de degrés-jours et pour le brochet et la carpe, on se réfère aussi à la position de la vésicule germinative, c'est-à-dire du noyau de l'ovocyte qui doit être central ou subpériphérique : une biopsie ovarienne permet de recueillir des follicules et d'apprécier l'état d'avancement de l'ovogénèse.
### c) La collecte et les conditions de conservation des hypophyses.

Les hypophyses doivent naturellement être prélevées lorsque la concentration en hormone gonadotrope est maximale. Les périodes de l'année où ces conditions sont réalisées ne sont pas connues avec précision, mais il semble que la charge maximale en hormone gonadotrope soit observée en automne et au printemps. Les hypophyses doivent être recueillies aussi rapidement que possible après le sacrifice des animaux. Les conditions de traitement varient suivant la destination des hypophyses. Dans le cas de collectes en vue d'hypophysation, la technique généralement pratiquée dans les pays d'Europe de l'Est consiste à placer les hypophyses dans de l'acétone froide et de les mettre à sécher à l'air libre. Lorsque les hypophyses sont destinées à des expérimentations de laboratoire, elles sont placées dans de l'azote liquide (– 190 °C) puis lyophilisées.

Il n'existe pas d'étude systématique visant à définir les conditions de stockage des hypophyses de carpes, mais il semble que des hypophyses séchées puissent se conserver plusieurs années sans perte notable d'activité biologique, pourvu que la conservation soit pratiquée en atmosphère sèche (afin d'éviter les risques de déshydratation). Nous avons vu que des préparations hypophysaires plus ou moins purifiées (élimination des composants autres que gonadotropes) doivent nécessairement être utilisées dans le cas d'induction de la ponte de certaines espèces comme le brochet. Les conditions de stockage de ces préparations purifiées sont plus strictes que pour les hypophyses entières comme l'ont montré DONALDSON et al (1978) dans le cas des salmonidés. En atmosphère sèche, l'activité gonadotrope d'une préparation hypophysaire de saumon (SG-G100) se maintient pendant six mois à 35 °C. Par contre, en atmosphère humide, la conservation ne dépasse pas dix jours à 35 °C. Après dilution dans une solution physiologique (CIINa 8,5 ‰ + albumine séri-que à 0,1 ‰) la durée de conservation est inférieure à une semaine.

### b) L'insémination artificielle (fig. 3)

#### a) La carpe

Après ovulation, les ovules s'écoulent librement par l'orifice génital de la femelle et un léger massage abdominal facilite la collecte. Ils sont recueillis dans des récipients secs en vue de la fécondation. Une ♀ donne entre 60 000 et 100 000 œufs par kg de poids vif. Le sperme est récolté de la même façon (photo 10). La méthode d'insémination reste assez primitive. Les ovules sont répartis par lots de 200 g (ce qui correspond à la

<figure><img src="image_17.png" /><figcaption>**Photo 10:** Une technique plus élaborée consiste à prélever le sperme dans une seringue et de le répartir ensuite sur plusieurs pontes, ce qui simplifie les opérations de manipulation des géniteurs. D'autre part, on contrôle mieux la quantité de sperme utilisée.</figcaption></figure>

capacité d'accueil d'une bouteille de zug) et on ajoute quelques gouttes de sperme prélevées au moins sur trois mâles différents. Les ovules et le sperme sont d'abord mélangés pendant quelques minutes, puis on procède à une série de traitements qui a pour but d'éliminer la couche adhésive qui entoure l'œuf afin de prévenir la prise en masse des œufs après mise en incubateur. Cette technique est due à WOYNAROVICH (1962).

Une première solution dite de fécondation (4 ‰ NaCl, 3 ‰ urée) est ajoutée au mélange œufs-spermatozoïdes (1 volume d'œufs, 2 volumes de solution) ; elle assure la mise en mouvement du sperme et la fécondation de l'œuf tout en empêchant le collage. Le mélange est remué pendant 1 heure (photos 11 et 12). Les œufs sont ensuite lavés plusieurs fois avec une seconde solution contenant 85 ‰ d'urée et subissent un dernier bain avec du tannin (1,5 ‰) pendant 10 secondes.

Cette méthode est longue à appliquer et ne suppose pas totalement le collage. En se fondant sur des

<figure><img src="image_18.png" /><figcaption>**Photo 11:** Lot d'œufs en cours de brassage après avoir été mélangés avec la solution de fécondation.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_19.png" /><figcaption>**Photo 12:** Dispositif mécanique permettant le brassage d'un grand nombre de lots (écloserie d'Ovidui, Roumanie).</figcaption></figure>

critères purement morphologiques, RUBTSOV (1976) estime que l'emploi du tannin pourrait avoir un effet néfaste sur le développement embryonnaire. KONOVALO et RUBTSOV (1972) estiment également que le fait de débarrasser les œufs de leur couche collante provoque des pertes importantes et des alevins plus pe-
tits. HUISMAN (1976) et MOROZ et LUZHIN (1976) ne constatent pas ce phénomène dans leurs expériences.

De nombreuses variantes de la méthode WOYNARO-VICH sont utilisées : suppression de la 2ᵉ solution ou emploi de dose plus ou moins forte de tannin. Des essais de fertilisations et de rinçages dans du lait frais entier dilué à 1/5 avec de l'eau ont donné de bons résultats ; cependant, une méthode simple, pratique d'emploi et fiable n'apparaît pas dans la littérature.

### b) Autres espèces

Cette technique d'insémination dite de WOYNARO-VICH est applicable pour les espèces dont les œufs sont collants (sauf pour le poisson-chat – HUISMAN, 1976). Pour d'autres espèces cultivées comme les carpes phytophages, on procède simplement au mélange des gamètes et on ajoute la solution n° 1 mentionnée ci-dessus. Pour le brochet, une technique a été mise au point plus récemment (fig. 5).

<figure><img src="image_20.png" /><figcaption>Fig. 5. – L'insémination artificielle du brochet. Les ovules sont prélevées par massage abdominal et recueillis sur un plâteau. Le sperme est aspiré dans une pipette ou une seringue et versé sur les ovules en même temps que le dilueur. L'ensemble est mélangé par transvasement et laissé à reposer 10 à 12 mn avant passage en incubateur (d'après BILLARD et al., 1976).</figcaption></figure>

### c) L'incubation

L'incubation des œufs de carpe s'effectue en bouteilles ; le type Zug-Weiss, d'une contenance de 7,5-8 l est souvent utilisé, mais il en existe de nombreux modèles et de volumes variés (fig. 6, photo 13). HUISMAN (communication personnelle) a construit des jarres coniques ayant un angle de 36° dans lesquelles on obtient une bonne homogénéisation des œufs vivants et une localisation préférentielle des œufs morts ou blancs à la périphérie d'où ils sont faciles à éliminer parAPHONNAGE (photo 14).

<figure><img src="image_21.png" /></figure>

<figure><img src="image_22.png" /><figcaption>Fig. 6. – Les zones de reproduction (ZR), de croissance (ZC) et d'hivernage (ZH) dans un étang (d'après VOICAN et al., 1975).</figcaption></figure>

<figure><img src="image_23.png" /></figure>

Les bouteilles de zug reçoivent environ 250 à 300 g d'œufs fécondés. Le débit de l'eau est de 1,5 l/mn pendant les premières heures pendant lesquelles l'œuf est très fragile, puis de 3 l/mn jusqu'à l'embryonnement et réduit à 1,5 l/mn pour l'éclosion. Ce réglage du débit est important et doit permettre à la masse d'œufs d'avoir un mouvement très lent et régulier, d'où la nécessité d'avoir des œufs bien décollés les uns des autres pour en permettre l'oxygénation. L'incubation des œufs de carpe se fait à une température de 20 °C et dure 4 à 5 jours. Pour éviter le développement des champignons, un bain de vert malachite peut être préconisé.

Cet aspect de l'oxygénation de l'eau est très important et KAUR et TOOR (1978) montrent que chez la carpe, le taux d'éclosion est très dépendant du taux d'oxygène dissous (98 % à 12 mg/l d'oxygène, 4 % à 1,2 mg/l), le seuil minimum étant de 6 ml/l d'O₂. Le taux d'oxygène influence aussi la durée d'incubation qui décroit lorsque l'O₂ augmente (120 h à 1,2 mg/l d'O₂ et 68 h à 12 mg/l) ; des malformations ne sont pas observées. Pour la brème, GULIDOV et POPOVA (1977) ont trouvé que la survie des œufs embryonnés était meilleure à 17 qu'à 9 ppm d'O₂, mais qu'en sursaturation, 34 ppm, la survie était diminuée.

Le niveau thermique auquel est pratiquée l'incubation est important ; HUET fait état de température comprise 20 et 24 °C pour la carpe. Pour le brochet, LILLELUND (1967) a montré que le développement embryonnaire était plus complet à basse température et qu'à l'éclosion, les larves étaient plus grosses et morphologiquement plus avancées que si l'incubation était pratiquée à plus haute température.

<caption>Photo 13 : Type d'incubateur utilisé pour les carpes chinoises (pisciculture de Mika Alas, Yougoslavie). Photo de gauche.</caption>

<caption>Photo 14 : Incubateur pour œufs de brochet (écloserie de Lelystad, Hollande). Photo de droite.</caption>

Suite de l'étude en page 41

<figure><img src="image_24.png" /></figure>
### d) L'écllosion et l'élevage larvaire

Lorsque les premières éclosions ont lieu, on peut soit siphonner les œufs sur des clayettes de grillage fin, soit laisser les larves éclore dans la bouteille d'où elles seront évacuées par le système de trop-plein (voir type KAZANSKII) dans le bassin de résorption (photo 15). Il est aisé d'obtenir des éclosions synchrones en arrêtant l'alimentation d'eau quelques instants, ce qui provoque un déficit d'oxygène dans le milieu et une augmentation de l'activité de l'embryon et l'écllosion. Il est important de pratiquer cette opération lorsque les embryons sont à un stade de développement suffisamment avancé car LINDROTH (1946) obtient chez le brochet des éclosions à 80 % du développement embryonnaire par manque d'oxygène, ce qui lui fait supposer que l'écllosion ne constitue pas un stade bien défini du développement embryonnaire.

<figure><img src="image_25.png" /><figcaption>**Photo 15:** Cages employées pour le développement larvaire des carpes chinoises (écloserie d'Ovidui).</figcaption></figure>

Les larves restent sur les clayettes suspendues aux parois ou dans les bassins de résorption et sont maintenues à une température de 20 °C jusqu'à la résorption complète de la vésicule, c'est-à-dire environ 4 jours. A ce moment, les alevins ont besoin de recevoir une nourriture ; ils sont généralement transférés à ce stade dans les étangs de premier alevinage, mais quelques expériences montrent qu'un élevage larvaire est possible en condition de captivité pour la carpe (KOSSMAN, 1975 ; HUISMAN, 1976) comme pour d'autres espèces (photos 16 et 17). La température d'élevage varie entre 20 et 25 °C, la charge est de 50 000 alevins dans des aquariums de 40 l, puis après 7 à 10 jours, les alevins passent en auges de 100 l contenant 30 000 à 50 000 individus où ils peuvent être élevés pendant 4 à 5 semaines. Le débit d'eau est de l'ordre de 6 à 10 l/min par auge. En ce qui concerne l'alimentation du brochet, HUISMAN (1976) obtient les meilleurs résultats en distribuant du jaune d'œuf le premier jour, puis des artémias jusqu'à 20 g, mais KOSSMANN nourrit aux granulés « jeux saumons » les alevins de carpe de 14 jours. Entre 15 jours et 3 mois, LUSTUN et al (1974), estiment que le plancton constitue la meilleure nourriture pour les alevins de carpe, mais la comparaison portait seulement avec d'autres aliments à base de végétaux (mais, soja) ; le poids de 2 g est obtenu en 8-9 semaines à 23 °C. Les pertes sont généralement faibles pendant l'élevage larvaire ; ASKEROV (1971) donne des taux de survie de 66,8 à 97 % suivant les bassins ou appareils dans lesquels se trouvent les larves pour une durée d'élevage de 6 à 10 jours à une température de 18,4 à 22,7 °C. Pendant l'alevinage en captivité, les pertes sont considérées comme très faibles et KOSSMAN (1975) a estimé qu'après élevage en captivité et passage des alevins en été dans des étangs, la survie de $C_0^+$ atteignait 50 à 80 % à l'automne.

<figure><img src="image_26.png" /><figcaption>**Photo 16:** Serre de production de plancton destiné à l'élevage larvaire. L'eau est chauffée par serpentins recevant des effluents thermiques (pisciculture de Saint-Laurent-les-Eaux).</figcaption></figure>

<figure><img src="image_27.png" /><figcaption>**Photo 17:** Prototype de terrain d'une écloserie-nourricerie destinée à l'élevage de juvéniles de carpes. Système de chauffage autonome. Le plancton est produit en étangs à proximité immédiate de l'écloserie et est pompé après concentration dans le bassin d'élevage placé sous serre (pisciculture de Zabieniec, Pologne).</figcaption></figure>

## II. — LE CYCLE D'ÉLEVAGE ET LA GESTION DES ÉTANGS

Nous avons déjà examiné les différents étangs servant à l'élevage, au stockage ou à la manipulation des géniteurs. L'élevage et les types d'étangs utilisés pour la production des sujets destinés à la consommation ou au repeuplement ont été largement décrits dans de nombreuses publications et traités de pisciculture (SCHAPERCLAUS, 1962 ; CHAUDERON, 1970 ; HUET, 1970 ; ARRIGNON, 1976). Nous ne ferons ici que reprendre certains aspects récents de la production de poissons d'étangs en se référant à nouveau à l'espèce dont l'élevage est le mieux connu, c'est-à-dire la carpe.

### A. — LES DIFFÉRENTS TYPES D'ÉTANGS

Dans le cadre d'une pisciculture rationnellement aménagée, les différentes étapes du développement du poisson se déroulent dans des étangs différents. En
réalité, les phases de reproduction, de croissance et d'hivernage se déroulent naturellement dans un même étang, mais dans des zones géographiquement différentes (fig. 7). On a reconstitué ces zones dans des étangs séparés, c'est ainsi que l'étang frayère est peu profond et enherbé, l'étang de croissance est de profondeur moyenne et l'étang d'hivernage sera le plus profond. La rationalisation de la production a en plus conduit à diviser la croissance en différentes phases et à séparer les poissons de 1er, 2e et 3e années. L'idée de grouper les animaux par classe d'âge est ancienne (en Europe, l'un des pionniers en ce domaine est le Tchèque Jan DUBRAVIUS, 1488-1553). Les types d'étangs successifs qui accueillent les poissons au cours de leurs différentes phases de croissance sont schématisés dans la figure 8 (photo 18). Quelques caractéristiques sont données pour ces étangs dans le tableau 1.

<figure><img src="image_28.png" /><figcaption>**Fig. 8.** — Les sources d'aliments de poissons élevés en étangs au cours de la période de croissance (repris de JANE-CEK, 1976).</figcaption></figure>

<figure><img src="image_29.png" /></figure>

<figure><img src="image_30.png" /></figure>

<figure><img src="image_31.png" /></figure>

<figure><img src="image_32.png" /></figure>

<figure><img src="image_33.png" /><figcaption>**Photo 18:** De même qu'il est diversement exploité, l'étang montre une grande diversité dans son intégration dans le paysage, qu'il soit industriel (a), agraire (b), ou forestier (c). Quelquefois, il exploite rationnellement l'espace rural (d).</figcaption></figure>
## 1. Les étangs d'alevinage

Les étangs d'alevinage sont de petite taille ; ils sont généralement choisis parmi les plus riches et font l'objet d'une préparation spéciale. Ils sont laissés à sec en hiver et au printemps, ce qui autorise une poussée de végétation avant le lâcher (association graminés et légumineuses). En outre, on dispose du fumier en tas en périphérie de l'étang dès la fin de l'hiver. A la mise en eau pratiquée quelque temps avant le lâcher des alevins, on procède à un épandage d'engrais (acide phosphorique et azote). Il s'ensuit un développement important de plancton. Le déversement des alevins est pratiqué ensuite et se fait généralement en bordure d'étang en zone herbeuse, abritée du vent. La taille à laquelle les jeunes sont lâchés varie ; lorsqu'ils proviennent de l'écloserie, ils sont déversés 4 à 5 jours après l'éclosion (température d'élevage : 20 °C) et lorsqu'ils ont été produits en étangs frayères, les alevins sont transférés à des âges variables : 5-9 jours pour HUET (1970), 15-20 jours pour ANGHEL et CONSTANTIN (1972) [cf. fig. 9]. Une alimentation complémentaire constituée de céréales broyées ou de granulés est quelquefois distribuée au cours des premières semaines (photo 19). La charge dépend des disponibilités alimentaires de l'étang ; pour la carpe, la littérature rapporte des densités de 30 000 à 80 000 individus/ha. Dans le cas de la méthode en deux phases qui comporte deux

étangs d'alevinage, les densités peuvent atteindre, dans la première phase, 50 000 à 200 000 individus/ha (HUET, 1970). Des densités de 1 500 000 individus ont même été rapportées (CHIMITS et KRECZMER, 1947). Dans les étangs de second alevinage, le nombre d'alevins $C_v$ déversés dépend de la taille souhaitée en fin de cycle (entre 10 000 et 50 000). Dans le cas de carnassiers comme le brochet, les charges sont plus faibles ; HUET fait état de charges de 10 000 à 25 000 alevins/ha en étangs de production de brochetons de 6 à 8 semaines, tandis que pour les mêmes animaux, CHAUDERON (1970) et BRY (non publié) rapportent des densités de 30 à 40 000 individus/ha. Ce qui compte est, en réalité, la quantité de brochetons de 8 semaines recueillis et il semble que la production ne puisse guère dépasser 1 à 2 individus au m² dans les meilleurs cas, soit 10 à 20 000 à l'ha.

<figure><img src="image_34.png" /><figcaption>Photo 19 : Etang d'alevinage avec distribution automatique d'aliments (pisciculture de Jegricka, Yougoslavie).</figcaption></figure>

<caption>Fig. 9. - Schéma des opérations de reproduction et de premier alevinage.</caption>

A : Hypophysation

B : Insémination artificielle

C : Incubation

D : Alevinage (20-25 °C)

1 : étang à géniteurs

2 : étang d'alevinage

3 : étang de pose

4 : étang d'alevinage

## 2. Les étangs de croissance et engraissement

Lorsque le cycle de production porte sur trois années, les étangs qui reçoivent les $C_1-C_2$ sont quelquefois appelés étangs de croissance, mais leurs caractéristiques ne sont pas très différentes des étangs d'engraissement dans lesquels les poissons atteignent leur taille commerciale. Ces caractéristiques sont d'ailleurs très variables surtout en ce qui concerne les surfaces qui varient de quelques hectares à plusieurs centaines d'hectares. La profondeur est aussi variable, mais la meilleure productivité en monoculture de carpes est obtenue dans le cas d'étangs dont la profondeur moyenne est de 1,5 m. La charge dépend de la richesse et les formules d'empoissonnement utilisées se réfèrent à la production escomptée, ce qui suppose une bonne connaissance de la productivité de chaque étang.

## 3. Les étangs d'hivernage et de stockage

Les étangs d'hivernage ne sont utilisés que dans les zones enneigées et froides où l'eau est prise en glace sur plusieurs dizaines de centimètres. Les $C_1-C_2$, $C_2-C_3$ et les géiteurs y sont stockés mais pas les $C_0-C_1$ qui sont le plus souvent laissés en étangs d'alevinage avec un plus fort débit d'eau. Ces étangs d'hivernage sont profonds (1,8 à 2,5 m) et reçoivent un débit d'eau important pour assurer l'oxygénation du milieu (photo 20). En effet, la glace de surface empêche les échanges gazeux avec l'atmosphère. Les étangs de stockage ont les mêmes caractéristiques et sont destinés à contenir les poissons entre la pêche et la commercialisation. Ils doivent être facile d'accès et sont généralement situés à proximité d'une unité de tri et de pesage. Une autre originalité de ces étangs réside dans leur petite surface et la forte concentration des animaux. Ces derniers n'en souffrent pas ; d'ailleurs, les

<figure><img src="image_35.png" /></figure>
carpes laissées en liberté dans des lacs et grands étangs se concentrent en des points privilégiés en hiver dès que la température descend en dessous de 8 °C (JOHNSEN et HASLER, 1977).

<figure><img src="image_36.png" /></figure>

**Photo 20 :** Exemple d'étang de stockage entre récolte (octobre) et commercialisation (en hiver). Dispositif de transport par wagonnets. Au centre de l'étang, une arrivée d'air comprimé permet l'oxygénation. Cet étang a reçu un chaulage. Au printemps, ce type d'étang est utilisé comme étang frayère (pisciculture de Jegricka, Yougoslavie).

## B. - LES FORMULES D'EMPOISSONNEMENT

Le nombre de poissons à ensemencer N va dépendre du rendement annuel de l'étang R (en kg/ha) et du poids individuel P (en kg) des poissons récoltés auquel il faut ajouter les pertes x.

Dans le cas d'étangs d'engraissement, la formule la plus simple est :

soit, dans le cas d'un rendement de 500 kg/ha de poissons de 1 kg, avec 20 % de perte :

$$N = \frac{500}{1} \times \frac{100}{80} = 625 \text{ individus.}$$

Dans le cas de pépinière produisant des C₀+ ou des C₁, des formules plus complexes ont été établies ; par exemple, celle de VOICAN et al. (1975) développée ci-dessous dans l'exemple d'une pépinière de 20 ha d'étang dont les caractéristiques sont les suivantes :

- Rendement (R) 1 000 kg/ha.

- Poids individuel des Cᵣ (g) 5 g.

- Poids des C₀+ à l'automne (G) 70 g.

- Perte pendant le 1er alevinage (p₁) 50 %.

- Perte pendant le 2e alevinage (p₂) 40 %.

- Perte pendant l'incubation 70 %.

- Perte à la fécondation 30 %.

- Nombre d'œufs produits par kg de femelle 60 000.

- Poids moyen d'une femelle 4 kg.

- Sex-ratio 1♀ - 2♂.

- Répartition des surfaces :

S₁ reproduction 2 % 0,4 ha.

S₁ 1er alevinage 8 % 1,6 ha.

S₂ 2e alevinage 90 % 18 ha.

Calcul du nombre de Cᵣ (Ncᵣ) à mettre en second alevinage :

$$N_{Cv} = \frac{S_2 \times R \times 100}{(G - g)(100 - p_2)} \quad \text{soit} \\ \frac{18 \times (1000 \times 100)}{(0,070 - 0,005)(100 - 40)} = 462 000 C_v$$

Calcul du nombre de C₀ à mettre en premier alevinage :

$$N_{C0} = N_{Cv} + p_1 = \frac{N_{Cv} \times 100}{(100 - p_1)} \\ \text{soit } \frac{462 000}{50} = 924 000 C_0 \text{ au total,} \\ \text{soit } \frac{924 000}{1,5} = 557 500 C_0 / \text{ha.}$$

Calcul du nombre de géniteurs nécessaires :

Se déduit des opérations suivantes qui tiennent compte de la survie à chaque stade.

- Nombre d'œufs fécondés : (924 000 × 100) : (100 × 70) = 3 080 000

- Nombre d'œufs déposés : (3 080 000 × 100) : (100 - 30) = 4 400 000

- Kg de femelles :

4 400 000 : 60 000 = 73, soit 73 : 4 = 18 individus

- Nombre de mâles : 18 × 2 = 36

Compte tenu du succès de l'hypophysation de 50 % seulement, il faut multiplier par 2 le nombre de femelles, soit 36.

VOICAN et al. (1975) rapportent aussi la formule plus directe de SUHOVERHOV pour le calcul du nombre de géniteurs N<sub>G</sub> (N<sub>G</sub> = nombre de familles 1♂ + 2♂)

$$N_G = 2 \left[ \frac{S \times R \times 100 \times K}{g \times V \times n} \right] + \frac{N}{n}$$

- 2 correspond à un succès d'hypophysation de 50 % ;

- S est la surface d'étang à ensemencer ; si des ventes d'alevins ont lieu, on applique le coefficient K correspond, N est alors le nombre de C₀+ exportées ;

- V survie entre C₀ et C₀+

- n nombre de C₀ produites par femelle.

## . - LA FUMURE DES ÉTANGS

### 1. Conditions et doses

De très nombreuses observations et expériences ont démontré que l'apport de fertilisants entraîne une augmentation de la productivité des étangs qui intéresse tous les niveauxrophiques (HOWELL, 1942 ; SWINGLE, 1947). Un certain nombre de précautions sont nécessaires et surtout il est indispensable de s'assurer du niveau de phosphore et d'azote dans l'eau avant de procéder à un apport d'engrais. Les valeurs maximales au-dessous desquelles on fertilisera les étangs de grossissement sont de 0,2 à 0,3 mg/l pour le phosphore (inorganique) et 1,5 à 2 mg/l pour l'azote. En production plus intensive avec polyculture, on admet des teneurs de 3 à 5 mg/l pour l'azote (MOLNAR, communication personnelle). Les sources d'engrais sont essentiellement les engrais minéraux en Europe, dont les doses peuvent atteindre 200 à 400 kg d'ammonitrates à 30 ou 33 % d'azote et 100 à 300 kg de superphosphates à 16 % de P₂O₅ dans le cas de production intensive. Le tableau 2 présente des doses appliquées en Tchécoslovaquie ; l'épandage est réalisé en plusieurs fois et l'introduction d'urée, qui a un effet différé, prolonge l'effet du traitement. Dans les étangs d'alevinage, les besoins en fertilisants sont plus faibles et la teneur optimale des eaux en N est de 0,1 mg/l. L'amendement calcaire est aussi pratiqué (photo 20). En Tchécoslovaquie, les étangs sont typés selon la teneur de
l'eau en calcaire (JANECEK, 1976) et les doses de calcaire :

<table><thead><tr><th rowspan="2">Type d'étang</th><th colspan="2">Teneur en</th><th rowspan="2">Teneur en CaO libre mg/l</th><th rowspan="2">Alcalinité meqv</th><th rowspan="2">pH</th></tr><tr><th>CaO mg/l</th><th>CaO<sub>3</sub> mg/l</th></tr></thead><tbody><tr><td>Pauvre</td><td>0-14</td><td>0-15</td><td>0-0,1</td><td>0-0,5</td><td>3,5-10</td></tr><tr><td>Moyen</td><td>14-42</td><td>25-75</td><td>0,1-1,2</td><td>0,5-1,5</td><td>5,5-10</td></tr><tr><td>Riche</td><td>&gt; 42</td><td>&gt; 75</td><td>&gt; 1,2</td><td>&gt; 1,5</td><td>6,5-10</td></tr></tbody></table>

(calcaire pulvérisé à 45 % de CaO) à appliquer sont les suivantes, compte tenu de l'alcalinité de l'eau

<table><thead><tr><th rowspan="2">Alcalinité (meqv)</th><th colspan="2">Dose en q/ha pour une profondeur d'eau de 1 m</th></tr><tr><th>Début de saison</th><th>Fin de saison</th></tr></thead><tbody><tr><td>&lt; 0,5</td><td>10-20</td><td>6-10</td></tr><tr><td>0,5-1</td><td>6</td><td>4</td></tr><tr><td>1,1-1,5</td><td>3</td><td>2</td></tr><tr><td>1,6-2,0</td><td>1</td><td>0</td></tr><tr><td>&gt; 2,0</td><td>0</td><td>0</td></tr></tbody></table>

Le fumier est aussi employé, mais seulement dans les étangs d'alevinage et à des doses allant jusqu'à 3 t/ha. D'autres fertilisants organiques sont employés, comme le purin (jusqu'à 5 m³/ha) ou divers effluents domestiques, y compris des effluents de lagunage.

Les fumures ne sont généralement appliquées que dans certaines limites thermiques (entre 18 et 25 °C). Au-delà de 25 °C, des apports de fertilisants peuvent entraîner des blooms d'algues qui vont réduire les teneurs en O₂. Les amendements et la fumure minérale ne sont pas recommandés lorsque le pH est supérieur à 9, en cas de fumure organique importante et lorsque la production est très intensive (apports de granulés et débit d'eau important).

## 2. Valorisation de la fumure.

Nous avons déjà mentionné que la fumure augmente la productivité de tous les niveaux trophiques. Pour valoriser au mieux cet apport de fertilisants, il est nécessaire d'exploiter ces différents niveaux trophiques par association d'espèces ; c'est la polyculture qui sera développée plus loin. A ce problème de la diversification

des espèces, s'ajoute celui du rapport prédateur/proie optimal. Dans les conditions de gestion actuelle des étangs, une forte augmentation de la quantité de zooplancton se produit au printemps mais elle est de courte durée et la biomasse zooplantonique diminue en début d'été (fig. 7). Certains auteurs estiment que cette diminution est liée à une prédation trop forte de l'ichtyo-faune sur le zooplancton qui est consommé trop jeune, c'est-à-dire à une taille encore trop faible et qui ne peut ainsi grossir et utiliser au mieux le phytoplancton dont la production a augmenté du fait de la fumure. Pour maintenir une croissance du poisson satisfaisante, on procède à un apport alimentaire (céréales et granulés) [fig. 8] (photo 21).

## D. - LA POLYCULTURE EN ÉTANGS

Par polyculture, on entend l'élevage simultané de plusieurs espèces dans le même plan d'eau. L'objectif est d'utiliser au mieux tous les niveaux trophiques. Traditionnellement, les pisciculteurs chinois associent les différentes espèces de carpes et obtiennent des rendements de plusieurs tonnes à l'ha avec apport de fumure organique (lisiers, composts divers, effluents domestiques).

En Europe de l'Est, la monoculture de carpe reste la règle, mais différentes associations d'espèces apparaissent maintenant dans les réservoirs d'eau potable. Cependant, en Tchécoslovaquie, l'association de carpe/corégone existe traditionnellement. En Roumanie, on a procédé à un apport de carpe chinoise dans les piscicultures commerciales et les rendements dépassent 1 t/ha avec apport de fumure minérale. Les pisciculteurs israéliens, à l'image de nombreux mariculteurs, se sont montrés encore plus imaginatifs puisqu'ils n'hésitent pas à associer en eau de mer plusieurs espèces de poissons avec différents invertébrés comme des mollusques et obtiennent des rendements spectaculaires. En eau douce, des associations existent traditionnellement en France comme carpe/tanche/gardon/brochet et autres et des alevinages combinés de black-bass/gardon et carpe ont été proposés par WURTZ (1952). Ces associations sont à développer ; il est impératif de s'assurer du bon équilibre numérique des espèces mises en présence.

<table><caption>Tableau 2. - Doses d'entrais azotés et phosphates applicables sur des étangs d'engrainement (d'après JANECEK, 1976).</caption><thead><tr><th rowspan="3">Teneur de l'eau<br>en éléments<br>mg/l</th><th colspan="4">Doses pour une profondeur de 1 m (1) en kg/ha</th></tr><tr><th colspan="2">Dose forte appliquée en début de saison<br>(avril-mai)</th><th colspan="2">Dose faible appliquée en fin de saison<br>(juin-juillet)</th></tr><tr><th>Unités de P</th><th>Superphosphates (2)</th><th>Unités de P</th><th>Superphosphates</th></tr></thead><tbody><tr><td>Phosphore inorganique</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0</td><td>3</td><td>42</td><td>2</td><td>28</td></tr><tr><td>0,1</td><td>2</td><td>28</td><td>1</td><td>14</td></tr><tr><td>0,2</td><td>1</td><td>14</td><td>0</td><td>0</td></tr><tr><td>0,3</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td></tr><tr><td>Azote inorganique (3)</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>(0) 0</td><td>15</td><td>50</td><td>33</td><td>33</td></tr><tr><td>(0,25) 0,5</td><td>10</td><td>33</td><td>22</td><td>17</td></tr><tr><td>(0,5) 1,0</td><td>5</td><td>17</td><td>11</td><td>0</td></tr><tr><td>(0,75) 1,5</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td></tr></tbody></table><table><thead><tr><th>Unités<br>de N</th><th>Nitrate amm :<br>30 % N</th><th>Urée<br>46 % N</th><th>Unités<br>de P</th><th>Nitrate amm :<br>30 % N</th><th>Urée<br>46 % N</th></tr></thead><tbody><tr><td>15</td><td>50</td><td>33</td><td>10</td><td>33</td><td>22</td></tr><tr><td>10</td><td>33</td><td>22</td><td>5</td><td>17</td><td>11</td></tr><tr><td>5</td><td>17</td><td>11</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td></tr><tr><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td></tr></tbody></table>

<footnote>(1) Pour les étangs plus profonds, les doses sont affectées d'un coefficient linéaire jusqu'à une profondeur de 1,50 m (coef. 1,1 pour 1,1 m, 1,2 pour 1,2 m, etc.), au-delà de 1,5 m, on considère que la photosynthèse ne transforme plus efficacement les minéraux en matière organique.</footnote>

<footnote>(2) Superphosphate à 7 % de P (16 % P₂O₅).</footnote>

<footnote>(3) Entre parenthèses teneur de l'eau en azote ammoniacal.</footnote>
<figure><img src="image_37.png" /></figure>

<figure><img src="image_38.png" /></figure>

**Photo 21 :** L'apport alimentaire est le plus souvent constitué de céréales (qui complète économiquement la nourriture naturelle des carpes, riche en protéines). Les céréales sont stockées en bordure d'étang (a), transférées quelquefois mécaniquement sur bateau (b) et distribuées en des points précis marqués de piquets. Les refus sont contrôlés avant chaque distribution.

## E. - LE CONTROLE DE LA VÉGÉTATION DANS LES ÉTANGS

Il existe souvent, dans les plans d'eau exploités ou non, une végétation indésirable, qu'il s'agisse d'algues (oscillatoria, algues filamenteuses) ou de plantes supérieures flottantes immergées ou émergées (photo 22). Cette végétation est indésirable car elle utilise des matières nutritives qui seraient mieux valorisées par le phytoplancton, elle gêne la pêche, abrite des parasites des poissons ou des larves de moustiques, protège de la prédation des poissons fourrage qui deviennent alors trop abondants. La végétation peut cependant être utile dans le cas des étangs frayères, des aires de fraies du brochet et des étangs d'alevinage, mais, dans ces cas, le contrôle de cette végétation est facile par de bonnes pratiques culturales (photo 23). La lutte contre la végétation nuisible n'est pas aisée, mais différents moyens existent. Le premier réside dans la bonne gestion culturelle de l'étang, tant dans la conception même de l'étang (en maintenant par exemple les bords abrupts dans les étangs d'engraissement pour éviter la végétation marginale) que dans les pratiques culturales (assec et apports d'engrais). L'emploi de fertilisants a été conseillé

dès 1941 par SMITH et SWINGLE pour prévenir le développement de végétation indésirable. Une application d'engrais précoce et périodique (toutes les trois semaines) provoque un développement d'algues qui limite la pénétration de la lumière au fond et par la croissance de la végétation enracinée.

<figure><img src="image_39.png" /></figure>

**Photo 22 :** Réduction notable de la surface en eau utile par développement excessif de la végétation supérieure en bordure.

<figure><img src="image_40.png" /></figure>

**Photo 23 :** Façon culturale en automne dans un petit étang expérimental (pisciculture de Midiniki, Pologne).

Ce contrôle de la végétation par voie biologique grâce à l'introduction de poissons phytophages est élegant, mais nous ne disposons pas, en France, d'espèces phytophages natives vraiment efficaces et on doit avoir recours à des introductions comme *Ctenopharyngodon*. Cette espèce semble effectivement capable de limiter le développement de plantes supérieures lorsque la température de l'eau dépasse 18-20 °C. Elle peut cependant se nourrir d'invertébrés et ainsi entrer en compétition avec d'autres espèces. Cette espèce peut valoriser la production de plans d'eau qui comportent de la végétation, à condition de pouvoir capturer ces carpes et les commercialiser. L'importation d'espèces étrangères n'est pas sans inconvénients et les Roumains qui ont accidentellement introduit, en même temps que les carpes chinoises, un petit poisson *Pseudorhasbora parva* constatent que cette espèce sans valeur commerciale ou sportive se développe et colonise un peu tous les milieux (GIURCA et ANGELESCU, 1971).

L'emploi de produits chimiques pour lutter contre la végétation ne doit vraiment être fait qu'en dernier recours et l'efficacité n'est jamais garantie. Restent les moyens mécaniques comme le faucardage qu'il ne faut pas négliger.
## F. - LA CONCEPTION ET LA CONSTRUCTION DES ÉTANGS.

### LE PROBLÈME DES CONNAISSANCES BIOLOGIQUES EN GÉNIE PISCICOLE

Il convient d'examiner au moins sommairement le problème de l'établissement d'une exploitation de production de poissons d'étang. En ce qui concerne la construction de l'étang proprement dite, il n'y a pas de problèmes techniques majeurs; les lois de l'hydraulique sont bien connues et les moyens mécaniques comme les matériaux de construction ne font plus désormais obstacle à la réalisation d'étangs (photos 24 & 25). Des

<figure><img src="image_41.png" /><figcaption>**Photo 24:** Le moyen le plus simple pour l'établissement d'un étang consiste à barrer une dépression en 2 drumlins comme en Dombes, par une chaussée qui est le plus souvent empruntée par une route. Ce type d'étang ne reçoit que les eaux pluviales.</figcaption></figure>

problèmes d'ordre économique peuvent surgir (ce type de construction coûte cher), mais ce sont surtout des problèmes d'ordre biologique qui limitent actuellement la conception d'une exploitation piscicole. Avant d'entreprendre la création d'une pisciculture d'étangs destinée à produire du poisson de repeuplement ou de consommation, il faut, d'entrée, connaître les procédés d'élevage et le type de reproduction qui seront pratiqués, ainsi que les espèces élevées. De ce choix dépendra l'agencement même de l'exploitation – proportion des différents types d'étangs, présence ou non d'étang frayère, d'écloserie plus ou moins sophistiquée, etc. – Or, ce genre de décision ne peut être prise actuellement, faute de connaissances dans la maîtrise de l'élevage de la plupart des espèces. Les informations les plus complètes concernent la carpe et, bien qu'il existe encore de sérieuses lacunes pour cette espèce, un schéma d'exploitation peut cependant être établi. La

<figure><img src="image_42.png" /><figcaption>**Photo 25:** Un type d'étang plus sophistique comporte endiguement de tout le pourtour et circulation périphérique d'eau avec système distinct d'admission et d'évacuation (pisciculture de Ruda Sulowska, Pologne).</figcaption></figure>

figure 10 donne le plan d'une pépinière (pisciculture de production de $C_1$) en Roumanie et le tableau 3 donne quelques informations chiffrées sur quelques types d'étangs (cf. aussi fig. 2). JANECEK (1976), a rapporté quelques caractéristiques des étangs à forte productivité (> 250 kg/ha/an); surface d'environ 5 ha, peu de sédiments, profondeur de 1 à 2 m, débit d'eau suffisant et réglable (3 à 5 l/sec./ha), végétation (plantes supérieures) réduite. L'étang ne doit pas être complètement rempli en été et la hauteur d'eau sur les bords doit être faible.

Les études à entreprendre dans un proche avenir devraient s'attacher à définir, dans des unités pilotes, des schémas d'exploitation souples et polyvalents utilisables pour plusieurs espèces. Comme la reproduction des espèces se succède dans le temps, il serait possible d'utiliser au mieux les équipements de l'écloserie et la structure de l'exploitation devrait permettre la production de carpe, tanche, gardon, brochet, sandre, etc., séparément ou simultanément. On retrouve ainsi la notion de polyculture déjà examinée.

### REMERCIEMENTS

Ce travail a été réalisé à la demande du Club halieutique interdépartemental et s'intègre dans les collaborations C.S.P./I.N.R.A. Une présentation en a été faite au congrès dudit Club, à Dax.

<table><caption>**Tableau 3** Quelques caractéristiques d'étangs de production de carpe (d'après VOICAN et al., 1975)</caption><thead><tr><th>Type d'étang<br>Caractéristiques</th><th>Reproduction</th><th>1<sup>er</sup> alevinage</th><th>2<sup>e</sup> alevinage</th><th>Hivernage</th><th>Quarantaine</th></tr></thead><tbody><tr><td>Surface (ha)</td><td>0,10</td><td>0,5-1,5</td><td>5-10</td><td>0,3-0,5</td><td>0,10</td></tr><tr><td>Profondeur moyenne (m)</td><td>0,30</td><td>0,40</td><td>0,80</td><td>1-2</td><td>0,60-0,70</td></tr><tr><td>Profondeur maximale<br>au canal d'évacuation (m)</td><td>0,60-0,80</td><td>0,60-0,80</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Largeur de la digue (m)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>au sommet</td><td>0,30</td><td>0,60</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>à la base</td><td>1</td><td>1</td><td>2</td><td>2</td><td>1</td></tr><tr><td>Profondeur du canal<br>collecteur (m)</td><td>0,30-0,40</td><td>0,30-0,40</td><td>0,50-0,60</td><td>0,40</td><td></td></tr><tr><td>Largeur du canal</td><td></td><td></td><td>0,40</td><td>0,30</td><td></td></tr><tr><td>Durée de remplissage (j)</td><td>0,2</td><td>1</td><td>5-10</td><td>10</td><td>0,3</td></tr><tr><td>Durée de vidange (j)</td><td>0,1</td><td>0,5</td><td></td><td></td><td>0,2</td></tr><tr><td>Débit d'eau (l/sec/ha)</td><td>5</td><td>1</td><td>1,5</td><td>&gt; 5</td><td>2</td></tr></tbody></table>
<figure><img src="image_43.png" /><figcaption>**Fig. 10.** - Plan de la pépinière piscicole du Butimanou (Roumanie) [d'après VOICAN et al., 1975].</figcaption></figure>

## CONCLUSION

La méthodologie de la production de carpe en condition semi-intensive est maintenant bien établie. Elle est basée sur un savoir-faire accumulé par des générations de pisciculteurs. Des améliorations restent nécessaires, en particulier dans le domaine de la reproduction où le stock de géniteurs est élevé (on peut le réduire en améliorant la technique d'hypophysation dont le rendement actuel est faible et l'insémination par une meilleure utilisation du sperme, ce qui permettrait une diminution du nombre de femelles dans le premier cas et de mâles dans le second). Des progrès restent à faire dans le domaine de la gestion de l'étang et de l'appréciation des potentialités de production qui est essentielle pour décider du nombre de sujets de repeuplement à lâcher. Cependant, l'un des points faibles de la méthode de production qui est actuellement pratiquée est sa dépendance vis-à-vis des accidents climatiques, surtout pour les stades larvaires et post-larvaires. Les larves mis à 5 jours en étang de premier alevinage sont très vulnérables aux fluctuations thermiques et des mortalités importantes peuvent se produire, surtout dans nos climats où un début de printemps chaud peut induire des reproductions précoces. Les reproductions tardives ont ainsi plus de chances de succès, mais la taille des alevins à l'automne sera faible. Pour pallier à ces inconvénients, nous suggérons une phase d'élevage des jeunes stades en écloserie, en conditions thermorégulées optimales, avec apport alimentaire, jusqu'à ce que les individus soient suffisamment résistants pour être replacés en étang ou jusqu'à ce que les conditions du milieu soient devenues plus favorables dans ces étangs. Nous avons vu qu'un tel élevage est possible pour les alevins de carpe (KOSSMAN, 1975 et HUISMAN, 1976) et semble possible sans problème majeur pour nombre d'autres espèces de poissons blancs. On est ainsi en droit d'espérer une meilleure survie larvale et une taille plus forte au déversement. En effet, l'élevage en conditions contrôlées autorise une meilleure croissance qui sera plus régulière ; la surveillance des animaux est facilitée et permet le contrôle de cette croissance et de l'état sanitaire de l'élevage, ainsi que l'application de traitements préventifs ou curatifs.

La durée de croissance effective sera plus longue, permettant ainsi d'obtenir dès le premier automne des poissons ayant une taille $C_1 + (fig. 9)$. La stratégie de production s'en trouve simplifiée puisque des sujets de repeuplement peuvent être obtenus dans l'année même. Cette méthode présente quelques inconvénients ; il faudra, bien sûr, chauffer l'eau et travailler en circuit fermé, mais du fait qu'il s'agit des premiers stages, les volumes nécessaires sont faibles et les coûts limités. L'inconvénient majeur réside dans la nécessité de disposer d'un personnel ayant une bonne technicité.

<figure><img src="image_44.png" /><figcaption>**Fig. 11.** - Bilan de l'eau au cours de l'année dans une pisciculture d'étang :</figcaption></figure>

## RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES

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## STAGE D'INITIATION A LA PHOTOGRAPHIE EN AQUARIUM

A la suite du vif intérêt suscité par le premier stage d'initiation à la photographie en aquarium qu'elle a organisé au début de l'année, l'ASSOCIATION FRANÇAISE DES AQUARIOPHILES organise un nouveau stage le samedi 14 juin 1980, de 8 h 30 à 20 heures (ou peut-être plus tard dans la soirée), selon le programme suivant :

* De 8 h 30 à 11 h 30, **THÉORIE**. - Exposés illustrés de diapositives sur les matériels et les techniques de prises de vue.

* De 11 h 30 à 13 h 30, **DÉJEUNER**.

* De 14 heures à 16 h 30, **PRATIQUE**. - Séance de prises de vues où les stagiaires pourront mettre à profit les instructions théoriques qu'ils auront reçues le matin et réaliser ainsi leurs propres photos.

* De 16 h 30 à 18 h 30, **SYNTHÈSE**. - Examen et analyse critique des résultats des épreuves qui auront été réalisées l'après-midi et qui viendront d'être dévollappées entre-temps par les animateurs. Sélection et projection des meilleures photos.

* Conclusion et dîner.

Quelques matériels (boîtier, objectifs et accessoires...) pourront éventuellement être prêtés aux stagiaires. Les films seront fournis par l'A.F.A.

Pour tout renseignement complémentaire et inscription, écrire à l'A.F.A., PARC FLORAL DE PARIS, 75012 PARIS ou téléphoner (uniquement le samedi après midi) au 365.11.50.

Selon le nombre de participants, les ateliers seront constitués d'au plus huit stagiaires. Le nombre de places par session étant toutefois limité, seuls les premiers inscrits seront retenus pour cette session.

Participation au frais de 75 à 150 F sans hébergement ni repas :

- 75 F pour les adhérents de l'A.F.A. (cotisation annuelle: 60 F + frais d'inscription de première année: 10 F);

- 100 F pour les adhérents d'une autre association aquariophile que l'A.F.A. sur présentation de la carte ;

- 150 F pour les autres participants.