## POSIBILIDAD DE LUCHA BIOLOGICA CONTRA

### Diaprepes Abbreviatus (L.) (COLEOPTERA: CURCULIONIDAE) EN REPUBLICA DOMINICANA

J. ETIENNE; M. REYES; M. CASTILLO, F. DIAZ A. ABUD ANTUN

## RESUMEN

Ante la importancia del problema planteado por las altas poblaciones de *D. abbreviatus* en las plantaciones de cítricos, parece necesario el orientar de manera diferente la lucha contra este picudo. En efecto, los tratamientos químicos regulares, el costo y su eficacia, a veces aleatoria, son probablemente el origen de los desequilibrios observados. La busqueda de los parasitoides de *D. abbreviatus* ha mostrado la presencia de 3 Eulophidae (*Aprostocetus? gala*, *A. haitiensis*, *Baryscapus fennahi*) y un solo Trichogrammatidae (*Brachyufens osborni*). Por tanto una primera posibilidad de lucha biológica está en curso en las plantaciones de Villa Altagracia, con la liberación de una nueva especie de Trichogrammatidae: *Ceratogramma etiennei*. Sumada a esta alternativa se encuentra la utilización del hongo Beauveria bassiana. Conviene recordar que tal lucha, que mira al restablecimiento del equilibrio biológico que favorece a este nuevo auxiliar y sobre todo al conjunto de enemigos natuales de *D. abbreviatus*, no podrá tener un efecto estable hasta después de varios años.

## INTRODUCCION

En la república Dominicana, la principal plaga de los cítricos es *Diaprepes abbreviatus* (L.) siendo necesario dirigir tratamientos para su control.

En el mes de abril de 1992 fueron colectados manualmente entre 2,000 a 2,500 adultos/hectáreas en Villa Altagracia. Esta población demues-

<footnote>* L. N. R. A. - Centre Antilles-Guyane, Station de Zooligie et Lutte Biologique - B. P. 1232- 97185 POINTE-A-PITRE CEDEX (F. W. I.)</footnote>

<footnote>** U. A. S. D. - Laboratorio de Lucha Biológica, Engombe. Santo Domingo, República Dominicana.</footnote>

<footnote>*** Proyecto Manejo Integrado de Diaprepes abbreviatus Villa Altagracia, República Dominicana.</footnote>
tra las altas poblaciones de *D. abbreviatus* registradas en plantaciones de cítricos.

En la actualidad existen en el país alrededor de 180,000 tareas (11,250 hectáreas) de ese cultivo, distribuidas en Villa Altagracia, Hato Mayor, Bayaguana, Higüey, El Seybo y Cotú entre otras localidades.

La baja efectividad y el alto costo de los tratamientos dirigidos a *D. abbreviatus* hacen necesario buscar mejores alternativas en el marco de un programa de lucha integrada contra esta importante plaga. La lucha biológica naturalmente se enmarca dentro de tal programa a través del uso de entomofágos y entomopatógenos.

Diferentes parasitoides de *D. abbreviatus* han sido señalados en ciertas islas de las Antillas por Fennah (1947). Más recientemente Etienne y Delvare (1991) han indicado seis (6) especies de Hymenoptera en las Antillas Francesas. Para la República Dominicana un Eulophidae: *Aprostocetus hatiensis* (Ghan) y un Trichogrammatidae: *Brachyfens osborni* (Dozier) son las dos especies reportadas. Después de 1990 las colectas realizadas, particularmente en la zona de Villa Altagracia, permiten encontrar en gran número *A. hatiensis* y de descubrir dos (2) Eulophidae todavía no señalados para República Dominicana: *Aprostocetus*? gala (Walker) y *Baryscapus fennahi* (Schauff).

Los tres (3) Eulophidae que han sido citados, los hemos ubicado en dos generos diferentes ya mencionados por Schauff (1987). Hemos adoptado en cierta forma la nomenclatura seguida por Graham (1987) y Lasalle & Graham (1990).

De acuerdo con estas observaciones nos ha parecido útil introducir en la República Dominicana, la nueva especie de Trichogrammatidae descubierta en Guadalupe y descrita por Delvare (1988) bajo el nombre de *Ceratogramma etiennei*, junto a la reproducción de *Beauveria bassiana* en laboratorio.

## 2. UTILIZACION DE ENTOMOFAGOS

Los parasitoides oofagos son auxiliares particularmente interesantes para la lucha biológica contra *D. abbreviatus*; esto ha sido indicado
con el establecimiento de *A. haitiensis* en Florida (*Beavers et al*, 1980). este parásito está presente en las plantaciones de cítricos de Villa Altagracia; aunque *Trichogrammatidae* no han sido reportados en el seguimiento de la UASD 1990-1992, en esa región ha sido considerada deseable la introducción de *C. etiennei*, conociendo su biológica capacidad de parasitismo (Etienne et al, 1990)

## 2.1 INTRODUCCION DE *C. etiennei*

Un total de 150 masas de huevos de *D. abbreviatus* parasitadas por *C. etiennei* fueron introducidas en la República Dominicana a partir de una cria proveniente de la Estación de Zoología y Lucha Biológica del Instituto Nacional de Investigaciones Agronómicas (INRA) de Guadalupe. En República Dominicana, las masas de huevos parasitadas fueron llevadas al Laboratorio de Lucha Biológica de la Universidad Autónoma de Santo Domingo, (UASD) y, después del establecimiento de la cría en laboratorio, se procedió a su liberación en el campo.

### CRIA DE *C. etiennei*

Una cría de *D. abbreviatus* fue establecida en el laboratorio a través de colectas periodicas en el campo de los adultos, los cuales fueron colocados en jaulas de madera y muselina con tamaño de 45x35x38cm. en lotes de 30 a 40 parejas. estos adultos fueron alimentados con hojas frescas de cítricos. Las posturas fueron obtenidas en ponederos construídos por tres (3) bandas de papel sulforizado presilladas escalonadamente según el procedimiento ya descrito por Beavers, (1982) y Wolcott, (1993). Los ponedores de 1.5x12 cm. son sujetos a las hojas de cítricos. Posteriormente los ponedores conteniendo las posturas son retirados diariamente y reemplazados. Las masas de huevos colectadas son utilizadas el mismo día para la cría de Trichogrammatidae.

La cría de *C. etiennei* ha sido constituída a partir de individuos provenientes de Guadalupe. Los Trichogrammatidae adultos son recibidos individualmente y sexados. Luego son colocados en tubos plásticos con diámetro de 30 mm. y altura de 70 mm. y tapados. Previamente al tapado se coloca una fina banda de papel humedecido
con agua y miel para asegurar la alimentación. Por cada tubo se colocan un (1) macho/3hembras. Al cabo de 14 días promedio comienza la emergencia de los adultos de *C. etiennei* los cuales son destinados una parte liberación en el campo y la otra para continuar sus multiplicación en laboratorio.

La metodología descrita ha sido la utilizada por Etienne et al (1990).

La implantación y despersión del parásito será determinada a partir del año 1993, con la colocación de ponedores.

Durante el mes de abril de 1992 fueron liberados en el campo un total de 3,000 adultos en la zona de Villa Altagracia. Entre mayo y junio de 1992 fueron liberados 1,500 y 1,800 adultos de *C. etiennei* respectivamente (Ver cuadro 1) para un total de 6,300 adultos.

<table><caption>CUADRO 1. Liberación de *C. etiennei* en la zona de Villa Altagracia, 1992</caption><thead><tr><td>Mes</td><td>No. de adultos liberados</td></tr></thead><tbody><tr><td>Abril</td><td>3,100</td></tr><tr><td>Mayo</td><td>1,500</td></tr><tr><td>Junio</td><td>1,800</td></tr><tr><td>TOTAL</td><td>6,300</td></tr></tbody></table>

### 3. UTILIZACION DE ENTOMOPATOGENOS

La utilización de entomopatógenos en el marco de la lucha integrada representa una medida alternativa de gran impacto para el control de *D. abbreviatus*. El hongo *Beauveria bassiana* posee características que lo definen junto a otros entomopatógenos como alternativa en la lucha contra *D. abbreviatus*. Por tal razón ha sido creado un pequeño laboratorio a través del Programa de Manejo Integrado de *D. abbreviatus* en Villa Altagracia.

### CRIA DE *Beauveria bassiana* EN LABORATORIO

Como medio de cultivo se utilizó arroz autoclavado en fundas de polipropileno e inoculadas con el patógeno, previamente mantenido en cultivo puro en placas de petri.
Se toman 400 gr. de arroz, se colocan en la funda y se les añade 200 cc de agua destilada. Las fundas son llevadas a la autoclave y se dejan durante 45 minutos a 121° C. Posteriormente se retirán y se dejan enfriar a temperatura ambiente (26°±2°C).

Las fundas luego son llevadas a una cámara de flujo laminar donde son inoculadas con la cuarta parte del cultivo de *B. bassiana* desarrollado en una placa de petri. Las fundas inoculadas se llevan a un cuarto climatizado con temperatura promedio de 27° + 1°C, donde existe una iluminación de 16 horas luz/día. Al cabo de tres días el patógeno se ha desarrollado sobre la superficie del arroz, cubriéndola con un micelio blanco. Al final de los tres días se transfiere el contenido de la funda a una bandeja plástica transparente de 35x25x12 cm. La bandeja se cubre con una tela de muselina y se lleva a una sala de esporulación, en condiciones sépticas. Al cabo de 12 a 15 días se recoge el material esporulado. A partir de aquí las esporas están listas para su utilización a nivel de campo.

## LIBERACION EN EL CAMPO

Para la aplicación en el campo, el material esporulado se mezcla en 10,01 de agua y se aplica con ragadera al tronco de la planta, tratando de cubrir la proyección del diámetro de la copa del árbol en el suelo; de tal forma que cuando las pequeñas larvas de *D. abbreviatus* caigan al suelo entren en contacto con las esporas de *B. bassiana*.

La efectividad de *B. bassiana* en el control de *D. abbreviatus* es promisoria si observamos los resultados obtenidos por Diaz (1992) en los cuales se señala un control superior al 90% de la plaga a nivel de campo en dosis de 200gr/5 l de agua/planta (ver anexo No 1)

## 4. CONCLUSIONES

Dos importantes agentes pueden ser una primera alternativa de lucha biológica contra *D. abbreviatus* en la República Dominicana, y corresponden al parasitoide *Ceratogramma etiennei*, y al hongo *Beauveria bassiana*.
La metodología para la reproducción de los agentes biológicos está definida y puesta en práctica en la República Dominicana.

La utilización de estos y otros controladores biológicos debe enmarcarse dentro de un programa de Manejo Integrado de Plagas en las plantaciones de cítricos.

## BIBLIOGRAFÍA

BEAVERS J.B., LOVESTRAND, S.A. and SELHIME A.G., 1980. Estabilisment of the exotic parasite: *Tetrastichus haitiensis* (Hymm: Eulophidae) and recovery of a new Trichogramma (Hymm; Trichogrammatidae) from root weevil egg masses in Florida. Entomophaga 25 (1); 91-94.

DELVARE G., 1988 *Ceratogramma etiennei* n. sp., parasite a la Guadeloupe de *Diaprepes abbreviatus* L., (Hymenoptera, Trichogrammatidae; Coleoptera, Curculionidae). Revue Fr. Ent., (NS) 10(1):1-4.

DIAZ F., 1992. Informe sobre avance del Proyecto Manejo Integrado de *Diaprepes abbreviatus* (L.) en Cítricos. Fundación Desarrollo Agropecuario, República Dominicana. (Mecanografiado). 15p.

ETIENNE J.,& DELVARE G., 1991. Les parasites de Diaprepes abbreviatus (Coleoptera: curculionidae) aux Antilles Francaises. Bull. Soc. ent. Fr., 96 (3): 295-299.

ETIENNE J., MAULEON H., PINTUREAU B., 1990. Biologie et dynamiquex de *Ceratogramma etiennei* (Hymenoptera; Trichogrammatidae) parasite de *Diaprepes abbreviatus* (Coleoptera: curculionidae) en Guadeloupe in RCLB, 5-7 Nov. 1990. Les colloques de I'INRA, 58: 459-468.

FENNAH R.G., 1947. The insect Pest of Food Crops in the lesser Antilles. Department of Agriculture Windward and leeward Islands. B.W.I.: 207 pp.
GRAHAM M.W.R. de V., 1987. A reclassification of the European Tetrastichinae (Hymenoptera: Eulophidae) with a revision of Certain genera. Bull. Brit Mus. Nat. Hist. (Ent.) 55(1): 1-392.

LASALLE J. & GRAHAM M.W.R. de V., 1990. On the identification of Baryscapus Ferster (Hymenoptera: Eulophidae: Tetrastichinae. Entomoligist's Gasette, 41: 121-126.

SACHAUFF M.E., 1987. Taxonomy and identification of the egg parasites (Hymenoptera: Platygastridae, Trichogrammatidae, Myrmidae and Eulophidae) of citrus weevils (Coleoptera: Curculionidae). Proc. Ent. Soc. Washington 89 (1): 31-42.

## Anexo 1. Superficie de Cítricos en República Dominicana. Julio 1992

<table><thead><tr><th>LUGAR</th><th>EMPRESA</th><th>SUPERFICIE*<br>(Hectárea)</th></tr></thead><tbody><tr><td>Villa Altagracia</td><td>Cítricos Dominicanos</td><td>2625</td></tr><tr><td rowspan="2">Hato Mayor</td><td>Barceló</td><td>1875</td></tr><tr><td>Agrodelta</td><td>1375</td></tr><tr><td>Bayaguana</td><td>Oscar de la Renta</td><td>500</td></tr><tr><td>El Seybo, Higüey, Otros</td><td>Productores Varios</td><td>4874</td></tr></tbody><tfoot><tr><td>TOTAL</td><td></td><td>11250</td></tr></tfoot></table>

## Anexo 2. Mortalidad (%) de larvas neonatales de Diaprepes abbreviatus (L.) expuestas a tratamiento de suelo con Beauveria bassiana.

<table><thead><tr><th rowspan="2">DOSIS<br>(gr/100)</th><th colspan="6">EVALUACIONES</th></tr><tr><th>1</th><th>2</th><th>3</th><th>4</th><th>5</th><th>6</th></tr></thead><tbody><tr><td>25</td><td>36.0</td><td>48.0</td><td>17.0</td><td>46.0</td><td>62.1</td><td>32.6</td></tr><tr><td>50</td><td>67.2</td><td>75.2</td><td>49.3</td><td>82.4</td><td>73.4</td><td>56.4</td></tr><tr><td>100</td><td>91.0</td><td>53.1</td><td>82.6</td><td>75.0</td><td>100.0</td><td>74.0</td></tr><tr><td>200</td><td>93.1</td><td>100.0</td><td>86.4</td><td>91.3</td><td>90.0</td><td>62.0</td></tr><tr><td>TESTIGO</td><td>11.0</td><td>5.0</td><td>23.0</td><td>8.0</td><td>39.0</td><td>16.0</td></tr></tbody></table>

<footnote>* Cada mes</footnote>

<footnote>Fuente: Díaz (1990)</footnote>
<table><caption>Anexo 3. Distribución geográfica de parasitoides oofagos de *D. abbreviatus* en la Región del Cibao.</caption><thead><tr><td>LUGAR</td><td>FAMILIA Y ESPECIES*</td></tr></thead><tbody><tr><td>Andros</td><td>3,7</td></tr><tr><td>Barbados</td><td>4</td></tr><tr><td>Belize</td><td>5</td></tr><tr><td>Cuba</td><td>3,7</td></tr><tr><td>Dominica</td><td>2,4</td></tr><tr><td>Florida</td><td>3,6,7,9</td></tr><tr><td>Guadalupe</td><td>1,2,3,8</td></tr><tr><td>Haití</td><td>3</td></tr><tr><td>Jamaica</td><td>2,3,4,10</td></tr><tr><td>Martinica</td><td>4,10</td></tr><tr><td>Montserrat</td><td>2,7</td></tr><tr><td>Puerto Rico</td><td>2,3,7</td></tr><tr><td>República Dominicana</td><td>2,3,4,7</td></tr></tbody></table>

*Eulophidae

1. Aproscetus sp.

2. A. gala

3. A. haitiensis

4. Baryscapus fennahi

5. Pediobius irregularis

*Mymaridae

6. Cleruchus sp.

*Trichogrammatidae

7. Brachyufens osborni

8. Ceratogramma etiennei

9. Trichogramma sp

* Platygsteridae

10. Fidiobia ritri

Fuente: Etienne y Delvare, 1991; modificado para República Dominicana.
<figure><img src="image_12.png" /></figure>

* Eulophidae

1. Aproscetus sp.

2. A. gala

3. A. haitiensis

4. Baryscapus fennahi

5. Pediobius irregularis

* Mymaridae

6. Cleruchus sp.

* Trichogrammatidae

7. Brachyufens osborni

8. Ceratogramma etiennei

9. Trichogramma sp.

* Platygsteridae

10. Fidiobiaritri

Fuente: Etienne y Delvare, 1991; modificado para República Dominicana.
UNA NUEVA PLAGA EN REPUBLICA

DOMINICANA, *Flankliniella occidentalis* (Pergande, 1985) (*Thysanoptera, Thripidae*)

J. P. Bournier*; J. Etienne**; M. Reyes<fnref n="1" />; A. Abub Antun<fnref n="2" />

RESUMEN

Procedente del oeste de Norte América, es introducido en Europa en 1985 y desde esta fecha en numerosos otros países del mundo, *Flankliniella occidentalis* (Pergande) fue encontrado por primera vez en República Dominicana, en abril de 1992. Polífago y vector del TSWV (Tomato Spotted Wilt Virus) en numerosas hortalizas y cultivos ornamentales. Este thrips es actualmente difícil de controlar tanto en cultivo de campo como en cultivo de invernadero.

INTRODUCCION

Existen alrededor de 5,000 especies de thrips que atacan a las plantas cultivadas, pero algunas especies causan daños en plantas de flores y hortícolas tales como: *Thrips tabaci*, *T. palmi*, *Heliothrips haemorrhoidalis* y *Frankliniella occidentalis*.

La multiplicidad y la rapidez de intercambios son el origen de la dispersión de numerosos fitófagos en el mundo entero. En el caso de los *Thysanoptera*, hay que recordar el caso del thrips del gladiolo (*Thrips simplex Morison*) originario de Australia, que a partir de 1935 ha invadido el conjunto de países con clima templado gracias al comercio de sus bulbos.

<footnote n="1">¹* CIRAD-CA, B.P. 5035, 34032. Montpellier Cedex 1, France.</footnote>

<footnote>** INRA-Centre Antilles-Guyane. Station de Zoologie et de Lutte Biologique, B.P. 1232, 97185 Pinte -a- Pitre. Cedex Guadeloupe.</footnote>

<footnote>*** UASD Facultad de Ciencias Agronómicas y Veterinarias, Laboratorio de Lucha Biológica, Engombe, Santo Domingo, República Dominicana.</footnote>

<footnote n="1">¹) En la actualidad, Coordinador Programa FST, CIBA, GEIBY</footnote>

<footnote n="2">²) Actualmente, Entomólogo del Centro de Servicios Agropecuarios de la JAD.</footnote>
Más recientemente, el caso de *Thrips palmi Karny* es otro ejemplar: conocido desde 1925 en Indonesia, ha sido señalado a partir de 1964 de Pakistan a Bangladesh. En 1973 en Tailandia, en 1978 en Japón y Filipinas; a partir de 1982 su extensión geográfica es más importante; China, Nueva Caledonia, Hawaïi, La Reunión; después en 1985, Martinica y Guadalupe. Después ha sido encontrado en 1988 en Puerto Rico y República Dominicana para noviembre de ese mismo año señalado en plantaciones de berenjenas (Abud et al. 1988).

Recientemente se ha notado su presencia en La Florida, U.S.A.

*F. occidentalis* (El thrips de flores del oeste o thrips de la alfaífa), conocido primeramente en el oeste americano: México, California, Columbia Británica, Alaska. En 1980, es señalado en Carolina del Sur sobre el algodón y, en 1983, Beshear nota su presencia en todos los Estados Unidos. En otoño de 1985, A. Lacas (in Lit) lo señala en España, Strauss y Shickedanz (1986). Señala la presencia de *F. occidentalis* durante el verano de 1985, en Alemania Occidental sobre violeta africana ó Saint paulia cultivada bajo invernadero. En la misma época, Zur Strassen (1986) hace una publicación sobre el diagnóstico de *F. occidentalis* y nota su presencia bajo invernadero, durante el año 1985 en el sur de Escandinavia. En septiembre de 1986, es determinado por primera vez en Francia (Bournier et Bournier, 1987) sobre plantas jóvenes de crisantemos provenientes de Holanda. Después podemos decir que ha invadido el conjunto de países de Europa, así como numerosos países de Africa del Sur (1987-1988), Kenia, Nueva Zelandia, la isla de La Reunión, la Colombia. En las Antillas, ha sido señalado por primera vez en La Martinica, sobre el crisantemo al final de 1989 y al comienzo de 1992 en la Guadalupe sobre fresa.

En la República Dominicana, es en abril de 1992 que ha sido colectada por J. Etienne sobre crisantemo bajo invernadero en el Valle de Constanza a una altitud de 1,200 mts.

*F. occidentalis* es un Thrysanoptera terebrantia de la familia de los thripidae. El presenta, sin embargo, variaciones intraespecífica que hacen en ciertos casos difícil su determinación. Es por esto, que en
el pasado, él ha sido descrito bajo diez nombres diferentes, actualmente siendo todos sinónimos.

## II. DIAGNOSIS (Figura I)

Nosotros daremos aquí solamente los caracteres típicos de la especie, pero es necesario hacer montaje entre portaobjetos y cubreobjetos para las observaciones microscópicas.

La hembra presenta una colocación que varía del marrón oscuro al amarillo muy claro; la forma estival es blanca amarilla pálida pero con una zona oscura más o menos importante sobre los tergitos abdominales; la forma invernal es completamente oscura; entre estos dos tipos de coloración se puede observar toda una serie de coloración intermediarias, en particular una con el torax anaranjado y el abdomen completamente oscuro; las antenas (Fig.b) tienen una coloración más o menos constante con una coloración oscura en las formas oscuras. Los segmentos I, II, VI y VIII de color oscuro, estando el I un poco más claro que el II; los segmentos III al V están en gran parte oscurecidos, pero presentando la parte basal más clara.

Las alas están ligeramente ahumadas. La cabeza presenta tres pares de pelos ocelares, los dos pares antiocelares poco desarrollados; se observa un tercer par de pelos interocelares bien desarrollado (61 um de longitud) insertado a media distancia entre el ocelo anterior y el ocelo posterior (Fig.a), cuatro pelos están situados sobre el margen posterior de los ojos, los que están hacia afuera son más largos (48 a 51 um).

El pronotum, como en todas las especies del género *Frankliniella* presenta 4 pares de pelos bien desarrollados (Fig.a): uno sobre el borde anterior (63 um), uno en el ángulo anterior (75 um), otro sobre el ángulo posterior externo (76 um). En fin, el par de pelos subcentrales del borde posterior mide 46 um de largo.

Las nervaduras del ala anterior presenta la quetotaxia siguiente: costal con 25 pelos, principal con 19 pelos regularmente espaciados desde la base hasta el apex, secundaria con 16 pelos; la escama vanal presenta 5 pelos, más uno central (Fig.d).
Los tergitos abdominales IV al VIII presentan lateralmente un peine oblicuo, aquel del tergito VIII en posición ante-espiracular; el borde posterior de este mismo tergito presenta un peine donde los dientes están esparcidos en la base (Fig.c). La zona oscura del tergito abdominal presentada en la Fig. e, corresponde a la forma intermedia; esta mancha oscura puede estar más reducida, hasta casi desaparecer, o bien estar en toda la superficie del tergito; en el caso de forma oscura, el tergito es totalmente oscuro.

La presencia de esta mancha sobre los tergitos abdominales, así como el pelo post-ocular bien desarrollado deben permitir de hacer en la mayoría de los casos un diagnóstico correcto. No se debe olvidar, sin embargo, que más de 12 especies del género *Frankliniella* han sido indicadas en el Caribe.

El macho es netamente más pequeño que la hembra; es de coloración clara y difícil de distinguir de otros pertenecientes a otras especies del género *Frankliniella*.

### III. NOTA SOBRE LA BIOLOGIA DE *F. occidentalis*

La hembra inserta su huevo, de forma reniforme, dentro del parénquima de las hojas, de las flores y de frutos por medio de su oviscapto. El ciclo de *F. occidentalis* es de 16 a 18 días a 26 grado °C. La incubación de los huevos es de 4 días, la duración de la vida larval es de 3 días por cada estadio I y II. Al final del estado larval se refugia o bien se coloca en entrantes y salientes del vegetal o casi siempre en el suelo a algunos centímetros de la superficie.

El estado preninfal (prepupa) dura de 1 a 2 días, y el estado ninfal (pupa) dura de 2 a 3 días. La postura comienza a partir del tercer día después de la aparición de los adultos (a 15 grado °C., el ciclo puede durar de 3 a 4 veces más). La duración de la vida media de una hembra es de 40 días durante la cual pone alrededor de un huevo por día.

El conocimiento de los principales elementos de la biología de *F. occidentalis* es indispensable para orientar útilmente las técnicas a
poner en obra en mira a una lucha lo más eficaz posible contra esta
nueva plaga en República Dominicana.

## IV. DAÑOS

F. occidentalis considerado anteriormente como una plaga secunda-
ria, es un insecto picador, lamedor, que vacía las células. El adulto,
así como las larvas del estado I y II pican los tejidos vegetales,
inyectando su saliva que produce lisis del contenido celular. Este
ataque produce deformaciones en las hojas y deformaciones y deco-
loración en las flores; además se alimenta de néctar y polen en algunas
plantas. Este líquido celular es aspirado por el insecto por medio de
su bomba faringinia. El insecto, puede así, adquirir y después
inocular virus, en particular, el Tomato Spotted Witt Virus (TSWV).
Sakimura mostró (1961-1962) que la transmisión de este virus es
llevado a cabo por los adultos a condición de que este se haya
alimentado durante unos 30 minutos sobre plantas infectadas. Ade-
más de F. occidentalis, 5 especies son susceptibles a transmitir este
virus. Estas son: F. schultzei, F. fusca, Thrips tabaci, Thrips
setosus y Scirtothrips dorsalis.

La TSWV es una virosis conocida desde hace mucho tiempo, después
de que fue puesta en evidencia en Australia para el año 1915.
Después ha sido señalada en el mundo entero donde ataca los cultivos
hortícolas de tomate, ají, ají picante, frijol, pepino, sandía y lechuga,
los cuales son hospederas sensibles al TSWV. Muchas de las plantas
florales son también sensibles a este virus como el crisantemo, la dalia
y el gladiolo, todas estas plantas son frecuentemente cultivadas en
República Dominicana y son por tanto, susceptibles de ser contami-
nadas por este virus.

## V. CONCLUSION

Actualmente, solo la lucha química es utilizada para combatir el *F. occidentalis*. Diferentes principios activos son indicados para tratamiento del suelo o de las partes aéreas (Bournier, 1990). Sin embargo, la plasticidad ecológica y la gran polifagia de este insecto (más de 50 plantas hospederas son conocidas en Hawaii) han favore-
cido su dispersión en el mundo haciendo que esta plaga sea difícil de controlar.

El "todo químico" utilizado frecuentemente contra este grupo de insectos (*F. occidentalis*, *T. tabaci*, *T. palmi*), no aporta generalmente más que una solución provisional con riesgos importantes: aparición de cepas o razas resistentes, destrucción de la fauna auxiliar (*Anthocoridae*, del género *Orius*, Phytoseiidae del género *Amblyseius*,...) presencia anormal y elevada de residuo en las producciones destinadas al consumo humano.

Importantes progresos se deben por tanto realizar antes de llegar a una lucha verdaderamente satisfactoria contra el *F. occidentalis* que es considerada en buen título como una verdadera plaga en todos los países donde está presente.

## BIBLIOGRAFIAS CITADAS

ABUD, A. et al. 1998. Un nuevo trípido, *Thrips palmi* Karney (1) en República Dominicana. UASD naturalista Postal No. 6188 del 20 de noviembre de 1988.

BESHEAR. R. J. New Record of Thrips in Georgia. J. Georgia Entomol. Soc. 1983, 18 (3), 342-344.

BOURNIER, A., Bournier, J. P. 1987. L'introduction en France d'un nouveau reveur: *Frankliniella occidentalis*. Phytoma No. 388, Mai 1987; 14-17.

BOURNIER, J.P. 1990. La leitte chimique contre *Frankliniella occidentalis*. Phytoma No. 422, Novembre 1990, 35-39.

POWELL, C.C. Y R. K. LINDQUIST. 1989. Control de insectos, ácaros y enfermedades en cultivos ornamentales. The Ohio State University, Columbus. USA. May 10, 1989, 20-22.

SAKIMURA, K. 1961. Techniques for handling thrips in transmission experiments with the Tomato Spotted wilt virus. Plant Dis. Rep., 45: 766-775.
SAKIMURA, K. 1962. *Frankliniella occidentalis* (Thysanoptera, Thripidae) a vector of the Tomato Spotted With Virus, with especial reference to color forms. Ann. Entomol. Soc. Am. 55: 387-389.
## ENEMIGOS NATURALES DEL FALSO MEDIDOR DE LA SOYA *Pseudoplusia includens* (Walker) (Lepidoptera: Nocturidae) EN PUERTO RICO.

Edgardo Vargas y Fernando Gallardo-Covas.
Técnico de Investigaciones Científica y Entomólogo Asociado, Depto. Protección de Cultivos, Estación Experimental Agrícola, R.U.M. Mayagüez Puerto Rico.

## RESUMEN

En la zona sur de Puerto Rico el falso medidor de la soya, *Pseudoplusia includens* (Walker) es una de las plagas más dañinas en el cultivo de las hortalizas (berenjena, pimiento, batata y tomate). El daño de esta larva es en toda la planta (hojas y frutas) de estos cultivos. Durante un año(de octubre de 1990 hasta octubre de 1991) se hizo un catastro en la zona sur de Puerto Rico para determinar los enemigos naturales del falso medidor de la soya. En este catastro se encontraron los siguientes enemigos naturales, *Glyptapanteles* sp. (Cameron) y *Cotesia* sp. (Hymenoptera Braconidae), *Copidosoma floridanum* (Ashmead) (Hymenoptera: Encyrtidae), *Voria ruralis* (Diptera: Ta-chinidae) y los depredadores: *Heza* sp. (Hemiptera: Reduviidae) y la *avispa Polistes Crinitus americanus* (F.) (Hymenoptera: Vespidae).

## INTRODUCCION

El falso medidor de la soya (FMS), *Pseudoplusia includens* (Walker), es una de las plagas más dañinas al cultivo de las hortalizas en P.R. El daño es causado por la larva en toda la planta (hojas y frutas). El FMS hace unos orificios en diferentes áreas de la hoja sin comérsela completamente y hace túneles en la fruta. El FMS ataca los cultivos en la zona sur de P.R. tales como: tomate, pimiento, berenjena, lechuga y batata. Durante el 1990-91 estos generaron a la economía agrícola del país un ingreso bruto de $17.0 millones de dólares (1). El uso indiscriminado de insecticidas, especialmente los piretroides, han creado resistencia a muchos insectos (2). De acuerdo a investigadores de la Universidad de Louisiana en los Estados Unidos el FMS tiene una resistencia de hasta 12x.(2). Para encontrar otras alternativas
que causen menos daños al ambiente y el hombre como el uso del control biológico, el siguiente catastro se realizó para detectar posibles enemigos naturales del FMS en P.R.

## MATERIALES Y METODOS

El catastro se efectuó semanalmente durante los meses de octubre del 1990 hasta octubre del 1991. Se efectuó durante la época de cada siembra de los cultivos, los cuales incluyeron: tomate, pimiento, berenjena, batata y lechuga. La colección de las larvas se hizo sacudiendo la planta sobre una friza de colección. Se pusieron las larvas dentro de envases plásticos de una onza, con una dieta preparada a base de habichuela según Greene et al. (3). Luego se llevaron a un cuarto de crianza en donde se desarrollaron y emergieron los parasitoides. Estos parasitoides se mandaron a identificar al USDA Taxonomic Services Unit, Systematic Entomology Lab, Maryland. Los datos finales se analizaron estadísticamente mediante análisis de varianza y las medias se compararon a base de la prueba de rangos múltiple de Duncan (P=0.05).

## RESULTADOS

Se encontraron los siguientes parasitoides: *Glyptapanteles* sp. (Cameron) y *Cotesia* sp. (Hymenoptero:Braconidae), *Copidosoma floridanum* (Ashmed) (Hymenoptera:Encyrtidae), *Vorias ruralis* (Diptera:Tachinidae). Los depredadores fueron: *Heza* sp. (Hemiptera:Reduviidae) y la avispa *Poliste Crinitus americanus* (Hymenoptero:Vespidae).

En batata hubo un porcentaje mayor de parasitismo cuando se comparó estadísticamente con berenjena, tomate, pimiento y lechuga (Fig. 1). No hubo diferencia significativa en el parasitismo del FMS en los hospederos de tomate, pimiento y lechuga. En berenjena fue menor comparado con los otros cultivos.

Con respecto al porcentaje de mortalidad no hubo diferencia significativa entre batata y lechuga y entre tomate, pimiento y lechuga (Fig. 2). Cuando se comparó la berenjena con los otros cultivos estos resultaron estadísticamente más bajos.
## LITERATURA CITADA

1. Agricultura, Departamento de Ofic. Estadísticas Agrícolas. 1990-91.

2. Field, L.L., C.O. Parker, and J.B. Penn. 1969. Agricultural statistics for Louisiana, 1908-1968. Louisiana State University, Dep. Agr. Econ. Res. Rep. 397. 128p.

3. Greene, G.L., N.C. Leppla, and W.A. Dickerson. 1976. Velvet-bean caterpillar. A reading procedure and artificial medium. J. Econ. Entomol. 69:487-488.
<figure><img src="image_13.png" /></figure>

FIGURA 1. Efecto del parasitismo del FMS en plantas hospederas. Letras iguales no difieren significativamente al P=0.05 de acuerdo a prueba múltiple de Duncan.

<figure><img src="image_14.png" /></figure>

FIGURA2. Efecto de mortalidad del FMS en plantas hospederas. Letras iguales no difieren significativamente al P=0.05 de acuerdo a prueba múltiple de Duncan.
# INTEGRATED PEST MANAGEMENT IN COFFEE
THE JAMAICAN EXPERIENCE

A.B. WILLIAMS

COFFEE INDUSTRY BOARD P.O. BOX 508, MARCUS
GARVEY DRIVE KINGSTON, JAMAICA.

## ABSTRACT

The discovery of coffee berry borer, *Hypothenemus hampei* in Jamaica in 1978 and its subsequent development as an economic pest, provided an opportunity for a multifaceted approach to integrated coffee pest management in that country. In 1986 coffee leaf rust *Hemileia vastatrix* was also discovered and control activities were incorporated into those for the berry borer.

The integrated approach to the management of these pests resulted in the reduction of borer infestation level from 33.7% in 1982 to 4.5% in 1987 and the effective containment and control of coffee leaf rust.

In addition to chemical and non-chemical control measures against coffee berry borer and leaf rust, the integrated pest management approach is supported by the promotion of a farm gate price incentive for the collection and processing of good quality coffee.

## BACKGROUND ON COFFEE INDUSTRY

Jamaica earns approximately US$10m annually from the export of coffee. Annual export is 20-25 thousand 60 kg bags compared to such countries as Brazil 18 million bags and Colombia 10 million bags: Jamaica's high profile on the international trade exists because of the demand for the high quality and flavour derived from its coffee and particularly Blue Mountain Coffee.
The Jamaican coffee industry is divided into:

1). The Cooperative Group which is comprises of approximately 25,000 small farmers organized into 19 Coffee Cooperatives. The farmers in this group are characterized by small acreage of less than 10 hectares and practice mixed cropping systems. Farm inputs are generally low and result in low productivity and income from any single crop.

2). The Private Commercial Group is comprised of approximately 500 farmers who produce coffee as a monocrop on farms of over 10 hectares in size. Productivity is high because of higher levels of input and technology. Most of these farmers are professionals in various fields other than agriculture and do not depend entirely on the income from coffee.

Since 1982 a number of Projects and Programmes have been put in place in a coordinated effort to expand production and develop new technologies. In that regard invaluable support have been obtained from Agencies such as the United Agency for International Development (USAID), Commonwealth Development Cooperation (CDC), the Overseas Economic Co-operation Fund (OECF) of Japan, the International Fund for Agricultural Development (IFAD), the European Economic Community (EEC) Interamerican Institute for Co-operation in Agriculture (IICA) and the Overseas Development Agency (ODA) of the United Kingdom (UK). These institutions working together have focussed on the industry to keep its conspicuous position despite its small relative size in the international trade.

## INTEGRATED PEST MANAGEMENT IN COFFEE

Prior to 1978 the use of chemicals in coffee in Jamaica was minimal because:

a) coffee was only one of the various crops in the mixed cropping system described earlier.
b) the relatively low incidence of pest and disease generally did not warrant chemical sprays.

c) the absence of major pests of coffee in Jamaica except for sporadic outbreaks of leaf minor *Leucoptera coffeella*

However **that** situation changed in 1978 when the most notorious known pest the coffee berry borer (*Hypothenemus hampei*) was observed for the first time in Jamaica. Then in 1986 the coffee leaf rust (*Hemeleia vastatrix*) was detected for the first time.

Four years after the berry borer appeared, the pest was found in all coffee growing areas and bean damage had reached 33%.

## CONTROL STRATEGY

In a coordinated effort with the Caribbean Agricultural Research and Development Institute (CARDI), the Jamaican Ministry of Agriculture, the University of the West Indies (UWI) and the Coffee Industry Board, the following steps were taken.

(a) Field surveys to establish the geographical distribution of the pest.

(b) Pesticide assay to determine which of the 15 - 20 chemicals available were most effective against the pest.

(c) Restricted routing of coffee to minimize distribution of the pest.

(d) Initiate research on the development of an effective integrated control programme.

(e) Public education utilizing the media (print and electronic), meetings with farmers and school communities.
(f) Co-operation and liaison with International Agencies and institutions in an effort to better understand the pest and how to manage it in the local situation.

All the above measures were consolidated into a National Control Programme with the major objective being to reduce the infestation levels to below 5% in five years.

## CHEMICAL CONTROL

Chemical control was effected through the application of one or two applications of enclosulfan annually. As of 1986 copper oxychloride was incorporated into the spray mixture for control of Coffee Leaf Rust.

Two applications at 4-6 week internals were made where borer infestation was high and coffee production significant. Where infestation was low and production less significant one application of spray mixture would be done.

The spray programme was organized on a national basis and involved the employment, training and supervision of spray personnel on a district or village basis. Spray applications would commence when 30% of the expected crop had reached the susceptible stage of infestation. That is, when young berries attained 2 mm in size.

Monitoring information was obtained through a communication network involving CARDI and CIB extension staff using two way VHF radio link-up as well as by way of formal written reports.

## NON-CHEMICAL CONTROL

CARDI developed a post harvest programme which was very effective, but even more importantly, sustainable with minimum financial input by the small coffee farmers. The emphasis was on the removal of residual berries from the trees and the ground, at the end of the commercial reaping period. The effort was supported by manipulation of the canopy of trees by pruning to improve productivity and create
easier access to spray applications and improved plant fertility by use of organic and inorganic fertilizers.

In order to maximize farmer participation, the extension services intensified its education process and by so doing motivated more farmers to undertake the post-harvest sanitation.

## QUALITY INCENTIVE

Collaboration efforts between CARDI, CIB and the co-operatives developed a programme to encourage the elimination of poor coffee berries by a floatation process. Those cooperatives and farmers with low float percentages got a higher farm gate price for coffee than those with high float percentages. The peer pressure which resulted from this approach was mostly responsible for farmers taking greater care and attention to their coffee.

## PERFORMANCE OF THE NATIONAL CONTROL PROGRAMME

The mean bean damage level of the 1987/88 coffee crop was recorded as 4.3%. At the same time field observations showed that Coffee Leaf Rust was effectively contained. There were few reports of defoliation caused by rust and high infection levels were observed only in fields that were poorly kept and low producing.

One negative result has been the observed increased incidence of leaf miner (Leucoptera coffeella) in many areas. During 1990 to 1991 leaf miner infestations had reached epidemic proportion in many areas. Prolonged drought during this period has been suggested as a major factor, but the depletion of natural enemies which result from enclosuresan applications is also an important contributing factor.

## CONCLUSION

1. Natural enemies operating in a low intensive farming system contributed significantly to the low endemic of pest and diseases in Jamaica prior to 1978. This points to the need for
future work on Integrated Pest Management to take into
consideration the importance of indigenous farming systems.

2. A well coordinated and executed Integrated Pest Management System in coffee has facilitated.

a) Effective control of the coffee berry borer

b) Containment and control of coffee leaf rust

c) Selective and controlled use of pesticides

d) The development of appropriate control measures relevant to a sustainable cropping system

e) Increase returns to farmers

f) A more informed farming community

ACKNOWLEDGEMENT

The author thanks the Caribbean Food Crops Society for the invitation
and opportunity of presenting this paper, CARDI, CIB and all those
persons for providing the information contained in it, and the USAID
Jamaica for paying all his trip expenses.
EL EFECTO DE Thanatephorus cucumeris (Frank)
Donk EN LA GERMINACION Y DESARROLLO DE
PLANTULAS DE CUATRO VARIEDADES DE

*Phaseolus vulgaris* L.

Godoy, G.; J. Arias; Y. Segura; F. Saladín y J. R. Steadman.
Dept. de Investigaciones, Secretaria de Estado de Agricultura.
Rep. Dominicana y Univ. of Nebraska-Lincoln, Lincoln, Ne.
USA. 68586-0722.

INTRODUCCION

*Thanatephorus cucumeris* (Frank) Donk. [anamorfo: *Rhizoctonia solani* Kuhn], es el patógeno causal de la mustia hilachosa. Esta enfermedad causa pérdidas severas en la producción de frijol común, *Phaseolus vulgaris* L., en Latinoamérica y el Caribe (4). El hongo, en el estado micelial, puede ser llevado en la semilla, permitiendo esto una asociación continua del patógeno y el hospedero apropiado así como su introducción a nuevas áreas ó campos (1). En la semilla de frijol, el micelio y/o esclerocios de *Rhizoctonia* pueden ser localizados en el endospermo, el embrión ó en la cutícula (1,8).

El efecto de *R. solani* en la pre y post-emergencia del frijol ha sido ampliamente estudiado a travez de los años (2, 7, 8), sin embargo, los aislamientos *Rhizoctonia*, referidos en estas investigacionés, corresponden a poblaciones ó grupos de anastomosis diferentes a aquellos causales de la mustia hilachosa (9).Los grupos de anastomo-sis (AG)son poblaciones de *R. solani* genéticamente independientes que difieren en morphología, patogenicidad y ecología, entre otros (9). Hasta el presente, han sido pocos los estudios específicos sobre el efecto del patógeno de la mustia hilachosa en la semilla de las leguminosas y los resultados de los mismos han sido contradictorios (4, 8).

El presente trabajo reporta resultados preliminares de estudios a nivel de casa-malla del agente causal de la mustia hilachosa, tanto asociado con la semilla directamente ó incorporado al suelo, y el efecto del mismo en la pre y post- emergencia del frijol común.
MATERIALES Y METODOS

Para la primera parte de este estudio se tomaron semillas de las
variedades Pompadour-Checa, PC-50 (semillas-rojo-moteado), H-
270 (semillas-negras) y Anacaona (semillas-blancas) cosechadas de
plantas con síntomas de mustia hilachosa en una parcela con un
historial de alta infestación anual en Buena Vista, San Juan de la
Maguana. El grupo AG prevalente en esta parcela es el AG-1-IB (6).
Las semillas se dividieron en tres grupos: 1. semillas manchadas y/o
con despigmentación variable en tamaño y color y en algunos casos
acompañadas de micelio y/o esclerocios del hongo ; 2. semillas
aparentemente limpias sin ningún tipo de despigmentación, manchado
ó presencia de estructuras del hongo (ambos grupos de semillas
procedieron de plantas infectadas), y 3. semillas testigos, aparente-
mente limpias, de las cuatro variedades, procedentes de una localidad
donde no se presentó la mustia hilachosa. En total, unas 1260 semillas
se sembraron en tarros plásticos ( día. 20 cm ) conteniendo suelo
areno-arcilloso (1:1 v/v, pH 7.5), previamente desinfestado con
fungicida a base de benzimidazole y por solarización por tres días de
continuo. Los tarros conteniendo los tratamientos fueron colocados
sobre mesas en la casa-malla. El experimento consistió en un diseño
completamente al azar con arreglo factorial con siete repeticiones.
Durante el período del estudio, la humedad en los tarros fue mantenida
a niveles de capacidad de campo para evitar stress de las plántulas.
La temperatura y humedad relativa en la casa-malla fluctuó entre
10-28°C y 30-70% respectivamente. Los parámetros a evaluar en este
estudio fueron los siguientes: % de germinación a los 7 y 9 días, %
de plántulas que sobrevivieron, tamaño y pecho de plántulas, y peso de
raíz a las dos semanas después de la siembra.

La segunda parte del estudio consistió en incorporar niveles de inóculo
de dos aislamientos de R. solani obtenidos de lesiones en trifolias de
plantas infectadas y posteriormente caracterizados dentro de los
grupos AG-1-IB y AG-2-2 (6) aislamientos BV y LV, respectivamente.
El inóculo se preparó de acuerdo a la metodología de Gaskill (5).
Suelo desinfestado se mezcló con inóculo para obtener concentracio-
nes de 0, 100 y 250 propágulos/kilo de suelo. Los tratamientos fueron
colocados en tarros plásticos y al cabo de 24 hrs. sembrados con
semillas de las variedades antes mencionadas. Esta vez las semillas
seleccionadas fueron colectadas de plantas sanas en parcelas de una localidad donde no se presentó la mustia hilachosa. El diseño experimental y los párametros a medir fueron similares a los indicados en la primera parte, sin embargo, en este caso el número de repeticiones fue reducido debido a daños post-inicio del experimento. Los parámetros ambientales en la casa-malla durante el período de estudio estuvieron dentro de los anteriormente señalados. En este experimento las informaciones obtenidas se basaron en los análisis de 720 semillas. Los datos obtenidos fueron analizados con el programa estadístico MSTAT-C (Michigan State University).

## RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Plántulas de las variedades PC-50, Pompadour Checa (rojo moteado), H-270 (negra), Anacaona (blanca) originadas de semillas testigos, no presentaron diferencias significativas ($P=0.05$) con aquellas origina-
das de semillas limpias en cuanto a germinación, supervivencia, altura y peso de plántulas y peso de la raíz a las dos semanas después de la siembra. En cambio, sí se observaron diferencias entre los testigos y las manchadas en cuanto a germinación y altura y peso de plántulas aunque no hubo diferencias significativas entre los tres grupos ó tipos de semillas en cuanto a supervivencia de plántulas y peso de la raíz (Cuadro I). El porcentaje de germinación de las semillas manchadas, procedentes de plantas infectadas por *R. solani*, es mayor que lo reportado por otros investigadores. El hongo, asociado con semillas de *P. vulgaris* reduce la germinación en un 40-60% (2), especialmente semillas cocechadas de plantas infectadas. Deakin et al (3), reportó una germinación entre 37-59% en materiales con semillas blancas y 60-80% en materiales con semillas pigmentadas, cuando fueron puestas en contacto directo con el hongo. Se ha asociado el factor color de semilla del frijol con la resistencia a *R. solani* (3,10). En nuestro estudio no se observaron diferencias varietales, aunque el número de materiales por coloración de semilla era limitado. Otros factores tales como el efecto del grupo AG del patógeno en la germinación y/o alguna(s) característica(s) genéticas de la variedad Anacaona pueden haber influido en estos resultados. La variedad Anacaona presentó un menor grado de infección y un menor % de semillas manchadas y transmisión del hongo en la semilla que las
demás variedades en Buena Vista en el Otoño de 1991 (Godoy, datos sin publicar).

En la segunda parte de nuestro estudio no se detectaron diferencias en el desarrollo de las plántulas en tarros conteniendo diferentes niveles de inóculo de los aislamientos BV (AG-1-IB) y LV (AG-2-2). La correlación entre niveles de inóculo y germinación fue mínima, $-0.23, P=0.28$ para BV y $-0.21, P=0.30$ para LV.

Los resultados obtenidos en esta investigación sugieren que el efecto del agente causal de la mustia hilachosa en la germinación y desarrollo de plántulas de frijol común es mínimo en comparación con áquellos reportados con aislamientos de *Rhizoctonia* causantes de la podre-dumbre de la raíz y el tallo.

## LITERATURA CITADA

1. Baker, K. F. (1947). Seed transmission of *Rhizoctonia solani* in relation to control of seedling damping-off. Phytop 37:912-924.

2. Chorin, M. and A. Halfon-Meiri. (1962). Losses caused by *Rhizoctonia solani* borne on bean seed. Plant Dis. Rept 46:790-791.

3. Deakin, J. R and D. P. Dukes. (1975). Breeding snap beans for resistance to diseases caused by *Rhizoctonia solani* Kuehn.

4. Galvez, G. E; B. Mora and M. A. Pastor-Corrales (1989). Web blight.In: Bean Production Problems in the Tropics. (eds. H. F. Schwatz and M. A. Pastor-Corrales) p.195-209. CIAT, Colombia.

5. Gaskill, J. O. (1968). Breeding for Rhizoctonia resistance in sugar-beets. J. Am. Soc. SugarBeet Technol. 15:107-119.

6. Godoy, G; A. Mora, J. R. Steadman and F. Saladin (1992). Preliminary characterization of *Thanatephorus cucumeris*, causal agent of webblight of dry beans in the Dominican Republic. Ann. Rep. Bean Improv. Coop 35:90-91.
7. Leach, C. M., and M. Pierpoint. (1956). Seed transmission of *Rhizoctonia solani* in Phaseolus vulgaris and *P. lunatus*. Plant Dis. Reptr. 40: 907.

8. Michail, S. H. (1984). Ecology of Rhizoctonia in relation to seed infection/seed degradation. In: Progress in microbial ecology. 28-38. Print House(India).

9. Ogoshi, A. (1987). Ecology and Pathogenicity of anastomosis and intraspecific groups of *Rhizoctonia solani* Kuhn. Ann. Rev. Phytopathol. 25:125-143.

10. Prasad, K., and J. L. Weigle. (1976). Association of seed coat factors with resistance to *Rhizoctonia solani* in Phaseolus vulgaris. Phytopathol 66:342-345.

## CUADRO I. Efecto de *Thanatephorus cucumeris* (*R. solani* AG-1-IB) en la germinación y desarrollo de plántulas de *P. vulgaris*.

<table><thead><tr><th rowspan="2">TRATAMIENTO</th><th colspan="2">Germinación</th><th>Altura<sup>3</sup></th><th>Peso<sup>4</sup></th><th>Peso<sup>5</sup></th></tr><tr><th></th><th>Supervivencia</th><th>Plántulas</th><th></th><th></th></tr></thead><tbody><tr><td>Testigo</td><td>93.7 A</td><td>87 A</td><td>9.9 A</td><td>1.31 A</td><td>0.5 A.</td></tr><tr><td>Limpia</td><td>88.2 AB</td><td>82 A</td><td>9.6 A</td><td>1.27 A</td><td><strong>0.51 A.</strong></td></tr><tr><td>Manchada</td><td>85.7 B</td><td>80 A</td><td>8.7 B</td><td>1.12 B</td><td>0.55 A.</td></tr></tbody></table>

1> Germinación. Porcentaje a los 9 días después de la siembra.

2> Determinado a los 12 días después de la siembra.

3> " " " .En cm.

4> " " " .Peso fresco en gr.

5> " " " .Peso fresco en gr.

6> Números con la misma letra no son significativamente diferentes de acuerdo al test LSD α= 0.05.
LES MAUVAISES HERBES DE LA CULTURE DE LA TOMATE HOTES DE NEMATODES PHYTOPHAGES ET DE LA BACTERIE *PSEUDOMONAS SOLANACEARUM* EN GUADELOUPE.

CAUDRON F., FOURNET J., GRIMAULT V., KERMARREC A. & PRIOR P.

RESUME

En Guadeloupe, la production de tomate est freinée par la présence, dans le sol, de la bactérie *Pseudomonas solanacearum* et de divers nématodes phytophages (*Helicotylenchus*, *Meloidogyne*, *Pratylenchus*, *Rotylenchulus* et *Xiphinema*).

Un inventaire des mauvaises herbes de la culture de la tomate a été effectué a fin de déterminer celles qui hébergent la bactérie et des nématodes. Une analyse des systèmes racinaires des adventices prélevées en Grande-Terre et en Basse-Terre a été réalisée à cet effet au laboratoire.

Les familles et les espèces les plus souvent rencontrées sur les parcelles étudiées (*Portulaca oleracea*, *Ageratum conyzoides*, *Senna obtusifolia*, *Chamaesyce hirta*), hébergent effectivement *P. solanacearum* en même temps que certains nématodes phytophages. Le caractère polyphage de ces nématodes a également été confirmé, ainsi que le faible nombre de mauvaises herbes hôtes la bactérie.

Cette étude a mis en évidence un rôle négatif supplémentaire des mauvaises herbes dans l'écologie de la culture de tomate. Il apparaît, en zone tropicale où le désherbage est encore très souvent négligé, essentiel d'entretenir mieux les parcelles.

Mots-clés: Tomate, mauvaise herbes, *Pseudomonas solanacearum*, Nématodes phytophages, Plantes hôtes et réservoir.
# THE WEEDS OF TOMATO FIELDS IN GUADELOUPE AS HOSTS OF PHYTOPHAGOUS NEMATODES AND *Pseudomonas solanacearum*.

CAUDRON F., FOURNET J., GRIMAULT V., KERMARREC A. & PRIOR P.

## SUMMARY

In the French West Indies (Guadeloupe), tomato production is reduced by soil-borne bacteria (*Pseudomonas solanacearum*) and several phytophagous nematodes (*Helicotylenchus*, *Meloidogyne*, *Pratylenchus*, *Rotylenchulus* and *Xiphinema*).

A survey of the weeds present in tomato plots has been conducted in Grande-Terre and Basse-Terre of Guadeloupe in order to determine the hosts of the bacterium and nematodes by laboratory analysis of their root systems.

The most frequent weed families and species (*Portulaca oleracea*, *Ageratum conizoides*, *Senna obtusifolia* and *Chamaesyce hirta*) are all so hosts of *Pseudomonas*′*solanacearum* and of some phytophagous nematodes. The large polyphagy of these nematodes has been underlined. It appears that few weeds host the bacterium.

This study stresses a supplementary negative role played by weeds in the ecology of tomato fields. It seems essential to keep up the plots, specially in tropical regions, where weeding remains too often neglected.

**Key-words:** Tomato, Weeds, *Pseudomonas solanacearum*, Phytophagous nematodes, Host or Reservoir Plants.

## INTRODUCTION

Dans le cadre d'une diversification de la production végétale, à côté des plantes traditionnelles (canne à sucre, banane d'exportation), le développement agricole de la Guadeloupe tente de mettre en place des
systèmes robustes de cultures maraîchères, vivrières et ornementales, nécessitant moins d'intrants. La durabilité ("sustainability") de ces systèmes de culture dépend étroitement des itinéraires techniques retenus. En particulier, la conduite en monoculture (absence de rotations culturales) combinée à une utilisation aveugle de pesticides sont les principaux facteurs d'échec à moyen terme de ces cultures de diversification.

L'approche interdisciplinaire, réunissant pathologistes, nématologis-
tes et malherbologistes, est indispensable dans un cadre de recherches
systémiques où l'incidence biologique des trajectoires culturales est
analysée et expliquée afin d'amener des corrections aux décisions
techniques paysannes. Dans une première étude (FOURNET et al,
1990), le rôle de réservoir de nématodes (*Pratylenchus coffeae*) joué
par les mauvaises herbes des champs d'ignames a été souligné.

Le but de la présente enquête est de mieux connaître la fonction de
sites d'abri ("sheltered sites") jouée par les racines des mauvaises
herbes des cultures intensives de tomates en Guadeloupe. A cette fin,
la présence de nématodes (tous genres endoparasites) et de la bactérie
responsable du flétrissement bactérien (*Pseudomonas solanacearum*)
at été recherchée dans les racines des adventices, caractérisées au
préalable, des champs de tomates de l'île.

MATERIEL & METHODES

Les 192 prélèvements de mauvaises herbes ont été réalisés dans 24 parcelles cultivées en tomate dans les regions productrices de la Guadeloupe: en Grande-Terre calcaire (sols vertiques noirs) et plus sèche (zones de Moule, St François et Morne à l'Eau: 7 prospections), et en Basse-Terre, aux sols volcaniques (brun-rouille à halloysite), plus humide (zones de Vieux-Habitants et Baillif, 17 prospections). La bactérie responsable du flétrissement bactérien est présente partout mais ne s'exprime pas dans les sols vertiques (SCHMIT et al, 1989). Seule la tomate de variété Caraïbo, sélection INRA tolérante au flétrissement bactérien et à la chaleur (ANAIS & al., 1981), a été rencontrée.
Les adventices sont ramenées au laboratoire à l'état frais pour détermination fine sur la base des travaux de FOURNET (1978) et de FOURNET & HAMMERTON (1991). Les racines sont lavées à l'eau afin des éliminer nématodes et bactéries d' particules de sol adhérentes.

**Extraction des nématodes:** les nématodes sont extraits par brumisation à partir de 30g de racines fraîches préalablement lavées. Le rendement de cette technique a été comparée au préalable à la procédure performante (rapidité, rendement) de centrifugation-flotaison décrite par KERMARREC & SCOTTO LA MASSESE (1972). La brumisation a été retenue pour sa simplicité et, dès le 4ème jour d'extraction, le nombre cumulé de nématodes extraits est supérieur à l'extraction instantanée par la technique de la centrifugation-flotaison. La lecture du résultat se fait en quantifiant la présence de chaque genre sous la loupe binoculaire. Les espèces sont déterminées sous microscope, après fixation temporaire des nématodes.

**Extraction des bactéries:** un broyat racinaire est préparé dans de l'eau distillée stérile à partir du même échantillon iavé décrit ci-dessus. Un milieu sélectif à base de polymyxine B (100ppm) est ensemencé en boîtes de Petri avec le broyat selon la technique des trois secteurs. Après 48h de culture à 30°C, la présence de colonies de P. solanacearum est lue. Sur ce milieu KELMAN modifié (KELMAN, 1953), la forme muqueuse, virulente, de cette bactérie est aisément reconnaissable (ronde, irrégulière, fluide, blanche avec un centre rose). Seule cette forme sera quantifiée, et non le variant rugueux, avirulent, ou toute autre forme intermédiaire. Les détections en boîtes de Petri seront confimées par un test immunoenzymatique du type ELISA avec l'anticorps spécifique A-1110 lot 463 (CHILLET, 1989; GRIMAULT, 1990).

## RESULTATS

### 1- Aspect phytoécologiques:

Les 192 prélèvements de mauvaises herbes concernent 72 espèces végétales réparties dans 22 familles, dont les principales (76% des échantillons) sont, par ordre décroissant: Euphorbiacées, Poacées,
Astéracées, Amaranthacées, Portulacacées, Malvacées et Cypéracées (Tableau 1).

Certaines espèces particulièrement bien adaptées aux systèmes maraîchers sont très nettement dominantes: 11 d'entre-elles (15% des espèces) représentent 48% des échantillons (92 prélèvements/ 192). Il s'agit, en particulier, des espèces suivantes accompagnées de leurs occurences dans l'échantillonnage (: % de cultures comportant cette espèce):

<table><tr><td>Portulaca oleracea</td><td>(54)</td></tr><tr><td>Amaranthus viridis</td><td>(46)</td></tr><tr><td>Phyllanthus amarus</td><td>(42)</td></tr><tr><td>Euphorbia heterophylla</td><td>(38)</td></tr><tr><td>Ageratum conyzoides</td><td>(33)</td></tr><tr><td>Leptochloa filiformis</td><td>(33)</td></tr><tr><td>Cyperus rotundus</td><td>(29)</td></tr><tr><td>Echinochloa colonum</td><td>(29)</td></tr><tr><td>Eleusine indica</td><td>(29)</td></tr><tr><td>Chamaesyce hirta</td><td>(25)</td></tr><tr><td>Parthenium hysterophorus</td><td>(25)</td></tr></table>
<table><caption>Tableau 1: Mauvaises herbes des champs de tomate hôtes de nématodes phytophages et de l'agent du flétrissement bactérien, Pseudomonas solanacearum en Guadeloupe. N.: Nb d'échantillons; R.: Rotylenchulus reniformis; H.: Helicotylenchus dihystera; M.: Meloidogyne incognita; P.: Pratylenchulas coffeae; X.: Xiphinema americanum; PS: Pseudomonas solanacearum.</caption><thead><tr><th rowspan="2">N</th><th rowspan="2">MAUVAISES HERBES</th><th colspan="5">NEMATODES et BACTERIE</th></tr><tr><th>R.</th><th>H.</th><th>M.</th><th>P.</th><th>X.</th><th>PS.</th></tr></thead><tbody><tr><td></td><td><strong>AMARANTHACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Achyranthes aspera L. var.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Amaranthus dubius L.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 5</td><td>Amaranthus spinosus L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 11</td><td>Amaranthus viridis L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>ASTERACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 8</td><td>Ageratum conyzoides L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>: 1</td><td>Emilia fosbergh Nicholson</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Emilia sonchifolia (L.) DC.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Galinsoga parviflora Cav.</td><td></td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Lagascea mollis Cav.</td><td></td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 6</td><td>Parthenium hysterophorus L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Synedrella nodiflora (L.) Less.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 3</td><td>Vernonia cinerea (L.). Less.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>CAESALPINIACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Senna obtusifolia (L.)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Irwin & Barneby</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td>+</td></tr><tr><td>: 1</td><td>Senna occidentalis (L.) Link</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>CAPPARIDACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Cleome aculeata L.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Cleome viscosa L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>COMMELINACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Commelina diffusa Burm.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>CONVOLVULACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 3</td><td>Ipomoea batatas L.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Ipomoea nil (L.) Roth.</td><td></td><td>+</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Merremia aegyptia (L.) Urb.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td>+</td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>CUCURBITACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Cucumis anguria L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>CYPERACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 7</td><td>Cyperus rotundus L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 3</td><td>Torulinium odoratum (L.) Hoop.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td><strong>EUPHORBLACEAE</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Acalypha arvensis Poepp. & Endi.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 6</td><td>Chamaesyce hirta (L.) Millsp.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td>+</td></tr><tr><td>: 1</td><td>Chamaesyce hypericifolia (L.) Millsp.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
N MAUVAISES HERBES

NEMATODES et BACTERIE

<table><thead><tr><th></th><th></th><th>R.</th><th>H.</th><th>M.</th><th>P.</th><th>X.</th><th>PS.</th></tr></thead><tbody><tr><td>: 1</td><td>Chamaesyce hyssopifolia (L.) Small</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 3</td><td>Croton lobatus L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 9</td><td>Euphorbia heterophylla L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td></tr><tr><td>: 10</td><td>Phyllanthus amarus Schum. &Thonn.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td>+</td></tr><tr><td>: 2</td><td>Phyllanthus tenellus Roxb.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Phyllanthus urinaria L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>FABACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 4</td><td>Aeschynomene americana L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Crotalaria retusa L.</td><td></td><td>+</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Rhynchosia minima (L.) DC.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Sesbania sericea (Willd.) Link LYTHRACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Cuphea carthagenensis (Jacq.) Macbr.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>MALVACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Malachra capitata L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>+</td><td></td></tr><tr><td>: 3</td><td>Malachra fasciata Jacq.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Malvastrum coromandelianum (L.) Garcke</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Sida acuta Burm. f.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Sida rhombifolia L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Sida spinosa L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>+</td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Urena lobata L.</td><td></td><td>+</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>MIMOSACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Mimosa pigra L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Mimosa pudica L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>NYCTAGINACEA</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Boerhavia diffusa L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>OENOTHERACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Ludwigia erecta (L.) Hara.</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Ludwigia octovalvis (Jacq.) Raven</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>OXALIDACEA</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Oxalis barrelieri L.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>PASSIFLORACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Passiflora foetida L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>POACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Brachiaria fasciculata (Sw.) S. T. Blake</td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Digitaria bicornis (Lam.) R. & S.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td>+</td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Digitaria insularis (L.) Mez</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
<table><thead><tr><th rowspan="2">N</th><th rowspan="2">MAUVAISES HERBES</th><th colspan="6">NEMATODES et BACTERIE</th></tr><tr><th>R.</th><th>H.</th><th>M.</th><th>P.</th><th>X.</th><th>PS.</th></tr></thead><tbody><tr><td>: 7</td><td>Echinochloa colonum (L.) Link</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 7</td><td>Eleusine indica (L.) Gaertn.</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Eriochloa polystachya HBK.</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 8</td><td>Leptochloa filiformis Beauv.</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Panicum trichoides Sw.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Routboellia cochinchinensis (Lour.) Clayton</td><td></td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Rhynchelytrum repens (Willd.) C.E. Hubb.</td><td></td><td></td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Setaria barbata (Lam.) Kunth</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>PORTULACACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>13</td><td>Portulaca oleracea L.</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td></td><td>RUBIACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Diodia ocyrifolia Bremekamp</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 3</td><td>Spermacoce confusa Rendle</td><td>+</td><td></td><td></td><td>+</td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Spermacoce assurgens R. & P.</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td>+</td><td></td></tr><tr><td></td><td>SOLANACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Physalis angulata L.</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Solanum torvum Sw.</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>STERCULIACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 2</td><td>Melochia pyramidata L.</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Waltheria indica L.</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>ZYGOPHYLLACEAE</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>: 1</td><td>Kallstroemia pubescens (G. Don) Dandy</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

Ces données phytoécologiques sont en bon accord avec les résultats d'une étude antérieure, effectuée en Grande-terre seulement, sur 14 parcelles de tomate (Tableau 2, FOURNET J., comm.pers.) où les fréquences et abondances moyennes des principales espèces rencontraient (sur les 61 réпrioriées) étaient les suivantes:
<table><caption>Tableau 2: Principales espèces de mauvaises herbes répertoriées en Grande-Terre dans les cultures de tomate.</caption><thead><tr><th>Espèce végétale</th><th>Occurence %¹</th><th>Abondance moyenne %</th><th>Degré de liaison²</th></tr></thead><tbody><tr><td>Amaranthus crassipes</td><td>7</td><td>7</td><td>778</td></tr><tr><td>Amaranthus viridis</td><td>36</td><td>64</td><td>64</td></tr><tr><td>Brachiaria erucifomis</td><td>36</td><td>86</td><td>215</td></tr><tr><td>Brachiaria reptans</td><td>57</td><td>107</td><td>227</td></tr><tr><td>Cenchrus echinatus</td><td>7</td><td>14</td><td>259</td></tr><tr><td>Chamaesyce hypericifolia</td><td>36</td><td>86</td><td>-</td></tr><tr><td>Croton lobatus</td><td>36</td><td>64</td><td>-</td></tr><tr><td>Cyperus rotundus</td><td>86</td><td>229</td><td>168</td></tr><tr><td>Echinochloa colonum</td><td>79</td><td>229</td><td>400</td></tr><tr><td>Eleusine indica</td><td>71</td><td>164</td><td>313</td></tr><tr><td>Eleutheranthera ruderalis</td><td>57</td><td>107</td><td>-</td></tr><tr><td>Euphorbia heterophylla</td><td>57</td><td>150</td><td>-</td></tr><tr><td>Leptochloa filiformis</td><td>29</td><td>50</td><td>-</td></tr><tr><td>Parthenium hysterophorus</td><td>14</td><td>36</td><td>222</td></tr><tr><td>Phyllanthus amarus</td><td>57</td><td>93</td><td>233</td></tr><tr><td>Physalis angulata</td><td>36</td><td>36</td><td>495</td></tr><tr><td>Portulaca oleracea</td><td>57</td><td>114</td><td>677</td></tr><tr><td>Rottboellia cochinchinensis</td><td>14</td><td>50</td><td>-</td></tr><tr><td>Spermacoce confusa</td><td>43</td><td>86</td><td>165</td></tr><tr><td>Spermacoce riparia</td><td>29</td><td>57</td><td>933</td></tr></tbody></table>

¹: Occurence % = fréquence d'apparition de l'espèce dans les 14 échantillonnages.

²: Degré de liaison = mauvaises herbes les plus caractéristiques des cultures de tomate selon leur présence (i.e. fréquence dans les relevés et non leur abondance), et où 100 est le seuil d'absence de liaison.

-: non déterminé, et inférieur à 156

## 2- Aspects nématologiques:

Les nématodes classiquement rencontrés dans les cultures de tomate sont présents sur les racines des mauvaises herbes analysées dans cette étude: *Pratylenchus coffeae*, endoparasite migrant; *Meloidogyne incognita* et *Rotylenchulus reniformis*, semi-endoparasites sédentaires; *Helicotylenchus dihystera* et *Xiphinema americanum*, tous deux ectoparasites pouvant se fixer temporairement par le stylet (ou l'odontostyle, pour Xiphinema) à la surface racinaire.
<table><caption>Tableau 3: Fréquence d'apparition des espèces de nématodes parasites de la tomate sur les racines des adventices.</caption><thead><tr><th>Nématode</th><th>% d'espèces végétales concernées (sur N=72 taxons représentés)</th></tr></thead><tbody><tr><td>Rotylenchulus reniformis</td><td>54</td></tr><tr><td>Helicotylenchus dihystera</td><td>37</td></tr><tr><td>Meloidogyne incognita</td><td>25</td></tr><tr><td>Pratylenchus coffeae</td><td>22</td></tr><tr><td>Xiphinema americanum</td><td>7</td></tr></tbody></table>

Globalement, l'enquête souligne que les mauvaises herbes les plus caractéristiques des cultures de tomate sont aussi les plus porteuses de nématodes phytophages. Trois familles se distinguent nettement: Astéracées, Euphorbiacées et Poacées.

Le Tableau 4 reprend la liste des mauvaises herbes les plus représentées dans les cultures de tomates et y adjoint les présences des nématodes phytophages et de la bactérie dans leurs systèmes racinaires.
<table><caption>**Tableau 4. Présence des nématodes phytophages sur les mauvaises herbes les plus caractéristiques des cultures de tomate en Guadeloupe. Les adventices sont classées par ordre décroissant d'occurence. En gras, les hôtes (sans symptôme) de *Pseudomonas solanacearum*.*</caption><thead><tr><th rowspan="2"></th><th colspan="4">Mauvaises herbes</th><th rowspan="2">Nématodes</th><th rowspan="2">Pratylenchus</th><th rowspan="2">Xiphinema</th></tr><tr><th>Rotylerenchulus</th><th>Helicotylerenchulus</th><th>Melioldogyne</th><th>Pratylenchus</th></tr></thead><tbody><tr><td>Portulaca oleracea</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amaranthus viridis</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Phyllanthus amarus</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Euphorbia heterophylla</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td></tr><tr><td>Ageratum conyzoides</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Leptochloa filiformis</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cyperus rotundus</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Echinochloa colonum</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eleusine indica</td><td></td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chamaesyce hirta</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Parthenium hysterophorus</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Senna obtusifolia</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

**3- Aspects bactériologiques:**

En retenant tous les résultats positifs obtenus dans la détection de la présence de *P. solanacearum* dans les racines des adventices (tant par ELISA que par milieu sélectif), seules cinq espèces sur les 72 recensées se sont révélées porteuses (Tableau 4). Il s'agit de: *Ageratum conyzoides*, *Chamaesyce hirta*, *Phyllanthus amarus*, *Portulaca oleracea* et *Senna obtusifolia*. Il est à noter que le test ELISA de *Phyllanthus amarus* était négatif, alors que le milieu sélectif a permis de mettre en évidence la présence de colonies de la bactérie.

**CONCLUSION & DISCUSSION**

La salissure des cultures de tomate de la Guadeloupe par les mauvaises herbes représente un frein important à la production. Seul l'effet direct de compétition (spatiale et nutritionnelle) est pris en compte à ce jour. Les dominances spécifiques parmi les mauvaises herbes des maraî-
chages sont clairement cernées. Il s'avère, au travers de cette étude, que les adventices dominantes sont également des réservoirs asymptomatiques de nématodes phytophages et de l'agent du flétrissement bactérien. Ces effets, plus insidieux, viennent donc s'ajouter à la simple compétition et complexifient le problème posé par les mauvaises herbes dans le temps, face aux cycles de cultures maraîchères. La fonction d'abris sains pour des pathogènes et des parasites racinaires, jouée par les plus importantes de ces mauvaises herbès, repose le problème du désherbage d'une manière encore plus cruciale.

La présence de nématodes suit certaines mauvaises herbes néotropicales était déjà partiellement décrite par ailleurs: OGBUJI (1978) signale la reproduction de *Meloidogyne incognita* sur *Achyranthes aspersa*, *Ageratum conyzoides*, *Croton lobatus*, *Portulaca oleracea* et *Vernonia cinerea*.. TEDFORD et al.(1988) le signalent sur *Eleusine indica*, *Senna obtusifolia* et *Portulaca oleracea*.. FERNANDEZ & ORTEGA (1982) se sont intéressés au genre *Pratylenchus* sp.: nos résultats confirment leurs observations pour les adventices suivantes qui sont hôtes: *Echinocloa colona* et *Eleusine indica*.

La présence de *Pseudomonas solanacearum* sur des mauvaises herbes saignés ("symptomless cariers") est rappelée par HAYWARD (1991): *Ageratum conyzoides*, *Phyllanthus niruri* et *Portulaca oleracea* en sont des exemples. Les rhizosphères de ces adventices sont considérées, par l'auteur, comme des sites protégés de survie pour la bactérie. QUIMIO & CHANG (1979, in HAYWARD, 1991) montrent que la présence de *Portulaca oleracea* augmente les populations de la bactérie dans les sols, et que le taux de flétrissement bactérien est plus élevé sur la tomate dans des sols qui avaient porté cette adventice relativement à ceux précédemment occupés par du riz ou du maïs. *Portulaca oleracea* est, dans le cas de la Guadeloupe, et au travers de cette étude, la mauvaise herbe nettement dominante et hôte sain de nématodes et de la bactérie. Toutefois, des adventices telles que *Ageratum conyzoides*, *Chamaesyce hirta* et *Senna obtusifolia* ne doivent en aucun cas être négligées: elles sont également porteuses saignées de *P.solanacearum*, et ici, avec des densités largement supérieures à celle détectée pour *Portulaca oleracea*.
Dans une stratégie de diversification de la production végétale basée
sur une agriculture durablement productive et à intrants réduits, la
gestion rationnelle des mauvaises herbes demeure une nécessité
absolue trop souvent négligée par l'agriculteur et son encadrement
technique.

BIBLIOGRAPHIE:.

ANAIS G., CLAIRON M., DAUDET F., KERMARREC A. et
DALY P., 1981. La tomate aux Antilles. INRA Antilles Guyane,
Document interne, 30pp.

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HAYWARD A.C., 1991. Biology and epidemiology of bacterial wilt caused by *Pseudomonas solanacearum*. Annu. Rev. Phytopathol., 29: 65-87.

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EFECTOS DEL CALCIO SOBRE SEVERIDAD DEL
TIZON TEMPRANO CAUSADO POR *Alternaria solani*
EN TOMATE (*Lycopersicon esculentum*)<fnref n="1" />

Rosa María Méndez Bautista<fnref n="2" />
Elkin Bustamante Rojas³

RESUMEN

Con el objetivo de determinar respuestas en severidad del tizón
temprano a la aplicación foliar de nitrato de Ca a un suelo fértil y a
otro no fértil, se realizó el presente trabajo bajo condiciones de
invernadero en el Centro Agronómico Tropical de Investigación y
Enseñanza (CATIE), Turrialba, Costa Rica. El diseño experimental
consistió en parcelas subdivididas con distribución en bloques al azar
y arreglo factorial. Plantas del cultivar Dina guayabo fueron inocu-
ladas con el hongo a los 45 y 60 días después de la siembra con una
suspensión de 8,000 conidias/ml. La severidad se determinó por el
tamaño de lesión en mm<fnref n="2" />. No hubo diferencias significativas para las
fuentes y niveles de aplicación, pero sí para la interacción fuente*ní-
vel.

El menor tamaño de lesión en las hojas se produjo al aplicar nitrato de Ca en dósis 2.4 g/2 kg de suelo. En aplicación foliar se registró menor tamaño de lesión al usar nitrato de Ca a una dósis de 16 g/1 de Ca. Con relación a las posiciones de hojas en las plantas, las fuentes se comportaron de igual manera, ya que las hojas superiores mostraron menor severidad que las inferiores.

<footnote n="1">¹Trabajo presentado en la XXVIII Reunión Anual de la Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios.</footnote>

<footnote n="2">²Lic. en Biología, M. Sc., Fitopatóloga, Investigadora Proyecto Título XII, SEA, CESDA, Apdo. postal No. 24, San Cristóbal, República Dominicana.</footnote>
INTRODUCCION

El tomate es una de las hortalizas más importantes por constituir un fuerte renglón de ingresos en el comercio de productos comestibles frescos e industrializados. Entre los principales patógenos que atacan el cultivo, se encuentra el hongo *Alternaria solani*, causante de la enfermedad conocida como tizón temprano o alternariosis. Esta enfermedad en el cultivo de tomate constituye uno de los problemas fitopatológicos más serios con que se enfrenta el productor en gran número de países. Las pérdidas provocadas por la enfermedad en el cultivo, pueden variar del 20 al 100% de acuerdo al cultivar y el nivel de infección.

En los últimos años el efecto de la nutrición mineral sobre las enfermedades de las plantas, ha recibido considerable atención, especialmente los macronutrimentos (Graham, 1983). Las fertilizaciones de Ca, P y N, así como la incorporación de materia orgánica, disminuyen la incidencia de enfermedades bacteriales y de algunos hongos, ya que estos elementos incrementan la población microbiana del suelo e inhiben a los organismos patogénicos por competencia biológica (Rodríguez, 1989). La defensa de las plantas ante el ataque de las enfermedades depende del vigor general que tengan, así como el desarrollo fenológico que presentan. Las plantas con estrés por nutrimentos son más susceptibles a las enfermedades. Si las plantas reciben elementos minerales en exceso, pueden también predisponerse al ataque de las enfermedades; por lo tanto, es necesario balancear la nutrición de las plantas buscando el nivel óptimo. Los elementos minerales están directamente involucrados en todos los mecanismos de defensa, ya que son componentes integrales de células, substratos y enzimas además de actuar como inhibidores y reguladores del metabolismo (Huber, 1980). Con la adición de compuestos calizos, como el carbonato cálcico (CaCO$_3$) ó el óxido de calcio (CaO), buena parte de los iones hidrógeno son sustituidos por iones de Ca. Encalar un suelo ácido hasta que alcance un pH alrededor de 6,5 es deseable para mantener en alto grado de disponibilidad la mayoría de los nutrimentos requeridos por las plantas. La práctica de encalar los suelos hasta alcanzar la neutralidad no es efectiva, ya que resulta en un descenso en la producción, ocasionado por la deficiencia de
nutrimentos, y por una disminución en la disponibilidad de P (Bonnet, 1968).

Los principales efectos de la cal sobre el suelo, pueden ser: Físicos: asocio de las partículas muy finas en suelos densos, formando una estructura granular favorable. Químicos: reducción de la acidez. Las plantas asimilan elementos tales como, P, Ca y Mn. Reduce la concentración del Fe, Al y Mg. Biológicos: estimula el metabolismo general de los organismos heterótrofos del suelo. Incrementa la actividad de la materia orgánica y del nitrógeno en un suelo ácido.

El objetivo general del presente trabajo fueron determinar: El efecto del Ca como inductor de resistencia en la interacción tizón temprano x tomate. Como objetivos específicos determinar:

* Efecto de la aplicación foliar de nitrato de Ca a diferentes niveles (dosis), estados fenológicos y posiciones de las hojas de tomate sobre la severidad del tizón temprano.

* La respuesta en severidad del tizón temprano a diferentes fuentes de Ca, niveles y posiciones de las hojas, en un suelo fértil y en un suelo no fértil.

## MATERIALES Y METODOS

El trabajo se realizó bajo condiciones de invernadero en el CATIE, Turrialba, Costa Rica. Se usaron dos suelos, perteneciente a la Serie Instituto del CATIE, clasificados como Isohyperthermic, halloysitic Typic Humitropept (Aguirre, 1971). El cultivar de tomate fué Dina guayabo, originario de Panamá y mejorado por su buena adaptación al trópico húmedo. Como fuentes de Ca se usaron el carbonato, fosfato (0-46-0) y nitrato. Para la inoculación se usaron esporas de *A. solani* y cámara húmeda.

Para el aislamiento de *A. solani* se utilizaron muestras frescas de plantas de tomate recolectadas en el campo, con síntomas típicos de tizón temprano. Se seleccionaron las hojas más representativas de las plantas infectadas por la enfermedad, las cuales fueron desinfectadas antes de la siembra en medio de cultivo agar-agua. Los aislamientos
puros de *A. solani* fueron obtenidos en medio de cultivo de jugo V-8. La esporulación del hongo fué inducida mediante el método de luz ultravioleta combinado con el método de Dhingra y Sinclair (1985). Para obtener la suspensión a la concentración requerida, el inóculo se centrifugó a 3,000 rpm durante 20 min. Posteriormente, se realizó el conteo de las esporas de *A. solani* usando un hematocímetro.

Las plantas fueron inoculadas con el hongo a los 45 y 60 días después de la siembra, con una suspensión de 8,000 conidias/ml. La inoculación se realizó colocando un disco de papel filtro impregnando de la suspensión del patógeno, en el penúltimo trifolio de las hojas inferiores y penúltimo de las superiores en cada planta. Las variables evaluadas fueron: severidad, tasa de desarrollo de la enfermedad (r) y pH del suelo. La severidad se determinó por el tamaño de la lesión en mm². A los 5, 7, 9 y 11 días después de la inoculación, se tomaron dos diámetros a las manchas producidas por *A. solani* en las hojas, luego se calculó el área, para determinar qué porcentaje de las hojas resultó afectado, con base en el índice de área foliar. En cuanto a la evaluación de la acidez, antes y después de la aplicación de los tratamientos al suelo, se medió el pH del suelo, y del suelo más plantas.

El ensayo se dividió en tres etapas; primero, se aplicó nitrato de Ca al follaje, en los estados de prefloración y floración del cultivo. En la segunda y tercera etapas se hicieron aplicaciones de carbonato, nitrato y fosfato de Ca en un suelo fértil y no fértil respectivamente. Las fuentes de Ca en los suelos fértil y no fértil, se aplicaron usando cuatro dosis (0,1,2; 2,4; 3, 6g de Ca/2 kg de suelo).

Los suelos usados fueron previamente caracterizados y desinfectados con bromuro de metilo en dosis de 1 lb/m³. Los tratamientos consistieron en la combinación de los factores estados x niveles x posiciones, para el ensayo de aplicación de Ca al follaje, y la combinación de fuentes x niveles x posiciones para la aplicación de fueites de Ca al suelo. El diseño experimental consistió en parcelas sub-divididas con distribución en bloques al azar con 3 repeticiones y arreglo factorial. Las unidades experimentales consistieron en macetas plásticas, conteniendo cada una 2 kg de suelo y 2 plantas de tomate. Los análisis de la información se realizaron sobre los datos transformados por la ecuación $Ln(Y) = ln(y) + rt$. Los datos trans-
formados fueron analizados por medio de regresión lineal, con la cual se determinó la pendiente de la recta para cada uno de los tratamientos.

# RESULTADOS Y DISCUSION

## Aplicación Foliar de Nitrato de Ca.

De acuerdo a los resultados obtenidos en los análisis de varianza, se encontró diferencias significativas para las posiciones de las hojas, en relación al grado de severidad expresado como el tamaño de la lesión en mm², en cada una de las hojas inoculadas. Las hojas superiores resultaron con menor tamaño de lesión que las inferiores (Fig. 1). También hubo diferencias significativas para las posiciones con respecto a la tasa de desarrollo de la enfermedad (r) (Fig. 2). La interacción estado* posición, presentó diferencias significativas, en función a la tasa de desarrollo de la enfermedad (r), en el estado de prefloración, las hojas inferiores presentaron mayor desarrollo de lesión que las superiores mientras que para el estado de floración, no se observó diferencias de comportamiento entre las posiciones de las hojas.

Para los testigos en estado de prefloración, las hojas inferiores presentaron mayor desarrollo de la enfermedad que las superiores. Al analizar la interacción (Est. x Niv. x Pos.) mediante el método de regresiones, se encontró que para el estado de floración, hoja inferior, el comportamiento de la enfermedad presentó una relación lineal, pues a medida que se aumentaron los niveles de Ca disminuyó la tasa de desarrollo de la enfermedad (r).

## Aplicación de Carbonato, Nitrato y Fosfato de Ca en un Suelo no Fértil

Los análisis de varianza arrojaron diferencias altamente significativas (P=0.0001) entre las posiciones de las hojas, tanto para la severidad, así como para la tasa de desarrollo de la enfermedad (r). En cuanto a la variable tamaño, a los nueve días después de la inoculación, se observó diferencia significativa, para la interacción fuente*posición. Los resultados al respecto se muestran a continuación en el cuadro 1.
<figure><img src="image_15.png" /><figcaption>Fig. 1. Severidad de tizón temprano en tomate en función al tiempo. Comparación de dos posiciones de las hojas.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_16.png" /><figcaption>Fig. 2. Desarrollo de la enfermedad para las posiciones de las hojas en la planta.</figcaption></figure>
<table><caption>Cuadro 1. Promedios para el tamaño de lesión respecto a la interacción fuente*n°posición a los nueve días después de la inoculación (ensayo 2)</caption><thead><tr><th>Fuentes</th><th>Posiciones</th><th>Tamaño lesión (mm²)</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="3">H. Superior</td><td>Carbonato de Ca</td><td>3.9</td></tr><tr><td>Nitrato de Ca</td><td>3.6</td></tr><tr><td>Fosfato de Ca</td><td>3.9</td></tr><tr><td rowspan="3">H. Inferior</td><td>Carbonato de Ca</td><td>4.8</td></tr><tr><td>Nitrato de Ca</td><td>4.8</td></tr><tr><td>Fosfato de Ca</td><td>5.4</td></tr></tbody></table>

Dicha interacción fué analizada mediante regresión lineal, cuadrática y cúbica, y no fué posible encontrar el modelo que explique el comportamiento de las fuentes con relación a las dosis de aplicación. Mediante comparación de medias, se encontró que el nitrato de Ca aplicado a una dosis de 1,2 g de Ca/2kg de suelo produjo mayor tamaño de lesión, mientras que la misma fuente a una dosis de 2,4 g de Ca/2kg de suelo, produjo el menor tamaño de lesión. La interacción fuente*n°nivel*n°posición, también presentó diferencias significativas para la variable tamaño a los 11 días después de la inoculación. A cada uno de los factores se le hizo separación de medias, y se determinó que el mayor tamaño de lesión se produjo en las hojas inferiores, al aplicar fosfato de Ca a una dosis de 2,4 g de Ca/2kg de suelo; mientras que el menor tamaño se presentó para las hojas superiores, cuando se aplicó nitrato de Ca a una dosis de 2,4/2kg de suelo.

## Aplicación de Carbonato, Nitrato y Fosfato de Ca en un Suelo Fértil

Cuando se aplicaron dichas fuentes en un suelo fértil, no hubo efecto de los tratamientos en ninguna de las variables evaluadas. Con respecto al tamaño de lesión, resultó una interacción nivel*n°posición, significativa a los 5 y 7 días después de la inoculación. Mediante comparación de medias se observó que el comportamiento de la
enfermedad para ambas fechas fue similar. Las hojas inferiores mostraron tamaño de lesión significativamente mayor que las hojas superiores con relación a los diferentes niveles de Ca. El modelo que mejor explica el comportamiento de las posiciones según los niveles, corresponde a las siguientes ecuaciones:

$$ * Y = 0,1975 + 1,2909 \text{ NC} - 0,2478 \text{ NC2 a los 5 DDI} $$

$$ * Y = 0,9687 + 0,9556 \text{ NC} - 0,1843 \text{ NC2 a los 7 DDI} $$

$$ * \text{NC} = \text{Niveles de Ca} $$

Al comparar los dos suelos usados se encontró diferencias significativas P=0.0001 para el tamaño de lesión; las hojas presentaron menor severidad cuando se usó un suelo fértil en comparación al suelo no fértil.

Para determinar la concentración de Ca en las hojas y el efecto de éste sobre la disponibilidad de algunos elementos, se realizaron análisis de varianza a fin de interpretar los resultados de análisis de tejido foliar obtenidos en el laboratorio de suelos del CATIE. Los resultados fueron los siguientes: Hubo diferencia altamente significativa para la fuente de variación Ca con respecto a los diferentes niveles (dosis) de nitrato de Ca aplicados al follaje. Según la ecuación de regresión el modelo que mejor explica el comportamiento del Ca, P y N en las hojas corresponde a una respuesta lineal positiva. Los resultados correspondientes a la aplicación de las fuentes de Ca a un suelo fértil y a otro no fértil se presenta en el cuadro 2.
<table><caption>Cuadro 2. Promedio para el contenido de calcio en hojas de tomate en respuesta a cuatro niveles de Ca aplicados a un suelo fértil y otro no fértil.</caption><thead><tr><th rowspan="2">Niveles</th><th>dosis</th><th colspan="2">Contenido de Ca (%)</th></tr><tr><th>(g/maceta)</th><th>S. Fértil</th><th>S. no Fértil</th></tr></thead><tbody><tr><td>1</td><td>0</td><td>2,7</td><td>1,1</td></tr><tr><td>2</td><td>1,2</td><td>2,8</td><td>1,5</td></tr><tr><td>3</td><td>2,4</td><td>3,0</td><td>1,6</td></tr><tr><td>3</td><td>3,6</td><td>3,3</td><td>1,7</td></tr></tbody></table>

El contenido de nutrimiento en las hojas, para los elementos P, N, K y Mg, no presentó diferencias significativas para las fuentes y los niveles de aplicación. El P en las hojas también aumentó en respuesta a los niveles de Ca, pero este caso sólo se presentó cuando se aplicó nitrato de Ca al follaje. En cuanto a la aplicación de fuentes de Ca al suelo, el contenido de N, P, K y Mg en las hojas, no presentó diferencias significativas, ya que se encontraban en concentración normal. Con relación a la acidez del suelo, se observó un aumento del pH a medida que se incrementaron las dosis de Ca (Fig. 3).

<figure><img src="image_17.png" /></figure>
## Discusión de Resultados

Con base en los resultados obtenidos en esta investigación es evidente que el Ca es un elemento que bajo ciertas condiciones tiene efectos importantes en la reducción del grado de severidad del tizón temprano en tomate. El menor desarrollo de lesión se obtuvo cuando se aplicó el nitrato de Ca a una dosis de 16 g/1 de Ca. Engelhard (1989), reporta que al hacer aplicaciones de compuestos conteniendo Ca particularmente nitrato y sulfato de Ca, sobre el control de Sclerotium rolfsii en tomate, se obtuvo una satisfactoria reducción de la enfermedad. También encontró que al hacer aplicaciones de nitrato de Ca en tomate previa inoculación con S. rolfsii, se redujo el nivel de desarrollo de la enfermedad. El efecto del nitrato de Ca se hizo notoriamente visible en las hojas superiores de las cuales presentaron menor severidad y desarrollo de lesión que las inferiores. Kelman (1989), reporta que la aplicación de Ca afecta la suavidad de los tejidos y la integridad de la pared celular de algunos cultivos, como es el caso del pepino y la papa. Las hojas jóvenes y en crecimiento activo tienen mayor grado de resistencia a la enfermedad, el efecto del nitrato de Ca sobre el control de la enfermedad, no se ejerce directamente sobre el patógeno, sino que se debe al efecto del nitrato que al aumentar la concentración de calcio en los tejidos vegetales, constituye una especie de barrera que hace que la planta presente cierto mecanismo de defensa ante el ataque del patógeno.

Cuando los factores FUE\*NIV estuvieron combinados, se encontró efecto positivo sobre el tamaño de lesión causado por A. solani. La efectividad del nitrato, sulfato y otras fuentes de Ca, sobre el crecimiento de algunos patógenos como en el caso del hongo S. rolfsii, está influenciada por ciertas condiciones tales como: textura del suelo, humedad, pH, dosis y métodos de aplicación (Punja, 1982). El nitrato de Ca como fuente resultó con mejores efectos sobre la severidad de la enfermedad; quizás esto se debe a que los nitratos son elementos muy solubles y por tanto el Ca haya sido absorvido y redistribuido en las plantas con mayor facilidad cuando se usó esta fuente de Ca. El carbonato de Ca fue aplicado 20 días antes de la siembra para su incorporación al suelo y por ende a la planta, como recomiendan algunos autores. Sin embargo otros como Sánchez (1981), reportan que en algunos suelos ácidos las aplicaciones ade-
cuadas de cal pueden tener efecto residual a largo plazo, y relativamente corto en otros. Bonnet (1968), considera que se obtienen mejores resultados con las fuentes o enmiendas calizas, cuando se aplica la cal por lo menos, 6 meses antes de la siembra. Mercadal (1989), encontró que el Ca tiene un importante efecto sobre la disminución de la marchitez bacterial en tomate causado por *Pseudomonas solanacearum*. Es posible que el tiempo de aplicación de carbonato de Ca, no haya sido el más recomendable para obtener mejores resultados. Alas (1989), afirma que las plantas con niveles adecuados de fertilidad presentan tolerancia al tizón temprano, pero que cuando se adiciona Ca esta tolerancia es mayor. Cuando se aplicaron las fuentes de Ca en un suelo con buena fertilidad, el efecto de éstas como tal no se hizo visible, ya que todos los tratamientos tuvieron un comportamiento similar.

El suelo fértil redujo significativamente la severidad y la tasa de desarrollo de la enfermedad en comparación con el suelo no fértil. Los niveles de infección del patógeno, así como los niveles de fertilidad de suelo y las condiciones del suelo al tiempo de la aplicación, influyen marcadamente en la respuesta de los compuestos de Ca sobre el control de la enfermedad (Engelhard, 1989). El pH del suelo aumentó considerablemente en respuestas a las aplicaciones de Ca.

Los análisis foliares se realizaron con el objetivo de conocer algunos aspectos nutricionales de la planta en los estados de prefloración y floración respectivamente. Además con el propósito de conocer de que manera el Ca influye en algunos nutrimentos de la planta. Cuando se aplicó el nitrato de Ca al follaje, se encontró que el contenido P, N y Ca en las hojas aumentó considerablemente conforme a la aplicación foliar de cuatro niveles de nitrato de Ca. La concentración de P en estado de prefloración fue mayor que en estado de floración. Los niveles (0 y 8 g/1 de Ca) no presentaron diferencias significativas entre sí, pero sí con respecto a los niveles (16 y 24 g/1 de Ca) que a su vez fueron iguales, teniendo éstos la mayor concentración de Ca. Aunque los resultados obtenidos en este experimento difieren de los obtenidos por los autores mencionados, coinciden con los reportes de otros autores quienes señalan entre los efectos químicos de la cal, una mejor asimilación de ciertos elementos por las plantas, entre ellos el
P, Ca y Mg (Firman, 1958). El encalado tiene efectos diferentes sobre la disponibilidad de P, pequeñas aplicaciones con carbonato de Ca son a menudo beneficiosas, en cambio cantidades demasiado altas resultan perjudiciales sin que éste efecto sea permanente (Black, 1975).

## BIBLIOGRAFÍA

AGUIRRE, V. (1971). Estudio de los suelos del área del Centro Tropical de Enseñanza e Investigación, IICA. Turrialba C. R. Tesis Mag. Sc. Turrialba, C. R. 139 p.

ALAS, J. (1989). Efecto del calcio y fósforo sobre la severidad del tizón temprano (*A. solani*) en tomate (*L. esculentum*) Tesis Mag. Sc. Turrialba, C. R., CATIE. 90 p.

BLACK, C. (1968). Relación suelo-planta. Tra. del inglés por Armando Rabuffetti. Buenos Aires, Hemisferio Sur. P 676-678.

BONNET, J. (1968). La ciencia del suelo. Rio Piedras, P. R. 233 p.

DHINGRA, O.D.; SINCLAIR, J. B. (1985). Basic plant pathology methods. Boca Ratón, Fla. CRC press. 355 p.

ENGELHARD, A. W. (1989). Management of diseases with macro and microelements soilborne plant pathogens St. Paul, Minnesota. 217 P.

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HUBER, D. M. (1980). The role of mineral nutrition in defense in plant disease. Ed. por J. G. Horsfall; E. B. Cowling. New York, Academic Press. p 381-406.

KELMAN, A.; MCGUIRE, R.; TZENG, K. C. (1989). Reducing the severity of bacterial soft rot by increasing the concentration of calcium in potato tubers. In Soilborne plant pathogens. Management
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MERCADAL, R. (1989). Incidencia a marchitez bacterial en el Cultivo de Tomate (L. esculentum Mill) en respuesta a niveles de estiércol y cal en Turrialba, C. R. Mag. Sc. Turrialba, C. R. CATIE. 115 P.

PUNJA, S. K; CARTER, J. D; CAMPBELL, G. M. et al. (1986). Effects of calcium and nitrogen fertilizers, fungicides and tillage practices onts of calcium and nitrogen fertilizers, fungicides and tillage practices on incidence of Sclerotium rolfsii on proccessing carrots. Plant Disease (EE. UU.) 70 (9) 819-824.

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LA MUSTIA HILACHOSA: UNA ENFERMEDAD
SEVERA DE *Phaseolus vulgaris* L. EN REPUBLICA
DOMINICANA.

Godoy, G; A. Mora; F. Saladin y J.R. Steadman. Dept.de Investigaciones, Secretaria de Estado de Agricultura. República Dominicana y Dept.of Plant Pathology, Univ. of Nebraska-Lincoln, Ne. USA. 68586-0722.

INTRODUCCION

La mustia hilachosa, causada por el hongo *Thanatephorus cucumeris*
(Frank) Donk [anamorfo: *Rhizoctonia solani* Kuhn], es endémica en
las zonas productoras de frijol común en la Rep. Dominicana.
Pérdidas en campos de producción de semillas, de la variedad
comercial Pompadour Checa, han sido estimadas en un 80% (2) tanto
en peso como en la calidad de la semilla. Prácticas culturales tales
como arado profundo, rotación de cultivos y cultivos intercalados para
modificar el microclima no han resultado efectivas para controlar la
enfermedad cuando las condiciones son favorables para el desarrollo
de las misma (1,2).

La aplicación al follaje de fungicidas a base de fentin acetato o
carbendazim ha sido, hasta el presente, el medio más eficiente para
controlar la enfermedad y evitar ciertos niveles de pérdidas en la
cantidad y calidad de la producción de frijol en Rep. Dominicana(2).
Esta práctica, sin embargo, resulta costosa para productores pequeños
y medianos debido al alto costo de los fungicidas y a la necesidad de
hacer múltiples aplicaciones para controlar la mustia hilachosa. El uso
de variedades tolerantes y con alta capacidad productiva ofrece una
alternativa para un manejo más económico de esta enfermedad.
Investigaciones básicas sobre la epidemiología y ecología de este
patógeno en la región del Caribe son necesarias para desarrollar
estrategias de manejo y selección de germoplasma más adecuadas.

Este trabajo reporta la distribución, epidemiología y variabilidad del
agente causal de la mustia hilachosa.
## MATERIALES Y METODOS

Durante las épocas del cultivo, Otoño-Invierno 90/91 y 91/92 se visitaron unas 22 localidades distribuidas en los Valles del Cibao (250 msnm) y San Juan de la Maguana (400 msnm). Parcelas de productores fueron evaluadas en cuanto a la incidencia y severidad de la mustia, sintomatología en tallo y/o follaje. Se tomaron muestras de tejidos de la planta que mostraban lesiones de diferentes tamaños. Las muestras fueron procesadas y examinadas en el laboratorio de fitopatología de la Estación Experimental de Arroyo Loro en San Juan de la Maguana. Porciones de tejidos con sintomatología variable fueron teñidas con algodón azul en lactophenol y examinadas para determinar la presencia de micelio caraterístico de *Rhizoctonia* y/o estructuras sexuales (basidia). Otras porciones fueron sembradas en medio Agar-Agua (conteniendo fungicida metalaxyl y sulfato de estreptomicina) las hifas de las colonias desarrolladas fueron transferidas a Papa-Dextrosa-Agar para su posterior identificación cultural (8,9). La condición nuclear y el grupo de anastomosis (AG) se determinó para los aislamientos obtenidos en las diferentes localidades muestreadas de acuerdo a técnicas desarrolladas por Kronland et al. (7).

Grupos de dos o tres aislamientos por localidad fueron seleccionados para determinar la patogenicidad y cumplir con los postulados de Koch. Hojas y tallos de plántulas de frijol de la variedad Pompadour-Checa fueron inoculadas con discos de agar (día. 0.5 cm) conteniendo micelio de colonias de los aislamientos seleccionados. Las plántulas fueron mantenidas por 48 hrs. a 95% de humedad y a temperaturas entre 25-28° C y posteriormente evaluadas por su patogenicidad.

## RESULTADOS Y DISCUSION

El estado micelial de *T. cucumeris* (Frank) Donk fue aislado de todas las muestras de hojas y/o vainas de plantas de frijol con sintomatología similar a la mustia hilachosa. Todos los aislamientos obtenidos de las muestras colectadas fueron patogénicos en la variedad Pompadour-Checa. Durante los períodos del cultivo en 1990/91 y 91/92 la enfermedad causó daños en campos de frijol en las provincias de La Vega, Moca, Salcedo, San Francisco de Macorís y Santiago. La incidencia fluctuó entre un 70-100% y la severidad entre 17-70% en
ambos períodos. Síntomas iniciales observados en los campos visitados son similares a los causados por basidiosporas. Las lesiones pequeñas, circulares, de coloración marrón rojiza, coalescen y se expanden bajo condiciones de alta humedad, formando zonas acuosas y extendiéndose a toda la hoja y a otras partes de la planta. Independientemente de los daños causados al follaje, no se observaron daños en la base del tallo al inicio de la enfermedad.

En Centro América las basidiosporas no contribuyen significativamente a la epidemia de la mustia hilachosa ya que aparecen tarde en el ciclo del cultivo(5). En Rep. Dominicana, sin embargo, el estado basidial ha sido observado en las primeras etapas del cultivo en todas las localidades visitadas. La himenia (a partir de la cual se origina la basidia y basidiosporas) fue observada tanto en la superficie del suelo como en el envés de las trifolias de frijol en la parte inferior de la canopia. Colonias de *Rhizoctonia* fueron también obtenidas en trampas aéreas colocadas en parcelas experimentales establecidas en Buena Vista, San Juan de la Maguana durante el Otoño 91 y 92 (3,4). La diseminación de basidiosporas por el viento contribuye a un rápido desarrollo de la enfermedad en el follaje.

Se desconoce, hasta el momento, si el salpique de suelo conteniendo materia órganica con micelio y/o esclerocios es también fuente de inóculo primario. En Costa Rica, se ha reportado que suelo infestado es la fuente principal de inóculo en campos de frijol con mustia hilachosa (5). Resultados obtenidos en parcelas experimentales en Buena Vista indican que la población de *Rhizoctonia* fluctúa entre 1-19 propágulos/100 gramos de suelo y está compuesta mayormente de otras especies y grupos AG de *Rhizoctonia*, ninguno de los cuales causan la mustia hilachosa. Más información es necesaria antes de iniciar medidas tendentes a disminuir la población de Rhizoctonia en suelo de campos infestados.

En el muestreo llevado a cabo en el período 90/91 se determinó que el grupo AG más prevalente es el AG-2-2(6). Esto fue confirmado en el período 91/92. Hasta el presente se ha determinado que en solo dos localidades, Buena Vista, San Juan de la Maguana y Cotúf, Sánchez Ramírez (A. Matsuda, comunicación personal) la mustia hilachosa es causada por el grupo AG-1-IB.
LITERATURA CITADA

1. CRSP/HABICHUELA-CAUPI.(1988). Reporte Anual. Proyecto
Univ. de Nebraska/SEA- Rep. Dominicana/Univ. de Puerto Rico.

2. ------------------(1989).------------------.

3. ------------------ ( 199 1 ). ------------------.

4.------------------(1992).------------------.

5. Galindo, J. J; Abawi, G. S.; Thurston, H. D. y Galvez, G. E(1983). Source of inoculum and development of bean web blightin Costa Rica. Plant Dis.67(9):1016-1021.

6. Godoy, G; A. Mora, J. R. Steadman and F. Saladin. (1992). Preliminary characterization of *Thanatephorus cucumeris*, causal agent of web blight of dry beans in the Dominican Republic. Ann. Rep. Bean Improv. Coop 35:90-91.

7. Kronland, W. C., and Stanghelli, M. E. 1988. Clean slide technique for the observation of anastomosis and nuclear condition of *Rhizoctonia solani*. Phytop. 78:820-822.

8. Parmeter, J. R., Jr. and Whitney, H. S. 1970. pp 7-19 In: *Rhizoctonia solani*: Biology and Pathology. Ed. J. R. Parmeter, Jr. Univ. of California. Press, Berkeley.

9. Sherwood, R. T. 1969. Morphology and physiology in four anastomosis groups of *Thanatephorus cucumeris*. Phytop. 59: 1924-1929.
EVALUACION DE Xanthomonas campestris pv. phaseoli y OTRAS BACTERIAS EPIFITICAS EN BOTONES FLORALES, FRUTOS Y GRANOS DE Phaseolus vulgaris<fnref n="1" />

Rosendo Angeles Ramos<fnref n="2" />
Adalgisa Mora<fnref n="3" />

RESUMEN

Se evaluaron poblaciones de *X. c. p.v. phaseoli* y otras bacterias epifíticas en 5 genotipos de *P. vulgaris* (Frijol) y su efecto en la bacteriosis común bajo condiciones de campo. Se usó un RCBD con 5 tratamientos y 4 réplicas. Se muestreó 5 veces incluyendo botones florales, frutos (vainas) en crecimiento, vainas llenas, granos maduros o secos y granos secos cosechados, todos asintomáticos. Las bacterias se aislaron y contaron en MXP, y las pruebas de patogenicidad se efectuaron en casa malla. Se encontró un número insignificante de muestras (2.3%) con poblaciones epifíticas de *Xanthomonas* no patogénicas en frijol. Además bacterias pigmentarias residentes de taxonomía y función desconocidas, fueron aisladas en la mayoría de las muestras desconocidas, fueron aisladas en la mayoría de las muestras (91.0%). Las poblaciones más altas de *X. c. pv phaseoli* en las vainas en crecimiento se obtuvieron de las líneas pompadour M y BAT. 1385 seguidas de PC-50, pompadour H y PM-23. En las vainas llenas las poblaciones en orden decreciente se recuperaron de pompadour M, Pc-50, pompadour H, PM-23 y BAT-1385. Igualmente pompadour H tuvo la población más elevada en sus granos maduros, seguida de pompadour M. La bacteria no se detectó en los granos maduros de BAT-1385 ni en los granos secos de PC-50 y PM-23 antes de la cosecha; tampoco fué recuperada de los botones florales ni de los granos cosechados.

<footnote n="1">¹ Trabajo presentado en la XXVII Reunión Anual de la Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios, Sto. Dgo. Rep. Dominicana, Agosto 1992.</footnote>

<footnote n="2">² Ing. Agrón. M.S., Fitopatólogo, Investigador Proyecto Título XII, SEA, CESDA, Aptdo. Postal 24, San Cristóbal, Rep. Dom.</footnote>

<footnote n="3">³ Ing. Agrón., Técnico Proyecto Título XII, SEA, EEAL, San Juan, Rep. Dominicana.</footnote>
INTRODUCCION

La mayoría de las especies de bacterias, sean patogénicas o saprofíticas, se pueden multiplicar como epifíticas sobre la superficie de las plantas a condición de tener nutrientes disponibles los cuales son suplidos externamente o por la planta hospedera (3). Algunas bacterias pueden colonizar plantas de frijol y multiplicarse como epífitas antes del desarrollo de la enfermedad (5).

*Xanthomonas campestris* pv. *phaseoli*, agente causal de la enfermedad denominada tizón común, puede presentar una fase epifítica la cual ha sido detectada en las vainas, semillas y hojas de frijol (2,4,6,7). Igualmente, esta bacteria y otras *Xanthomonas* pectolíticas fueron aisladas como epifíticas en malezas asintomáticas en la República Dominicana (1).

Parece probable que las poblaciones epifíticas de *X. c. phaseoli* en frijol pueden eventualmente conducir al desarrollo de epidemias de la enfermedad dependiendo de la aparición de factores ambientales favorables al patógeno. Weller y Saettler (7) mostraron una correlación positiva entre la severidad de la enfermedad y el número de bacteria en la hoja. Además reportaron que bajo condiciones de campo los síntomas de la enfermedad aparecían cuando los niveles de poblaciones de la bacteria alcanzaban $5 \times 10^6$ CFU por folíolo.

Poblaciones epifíticas de la bacteria del tizón común en las hojas de varios genotipos de frijol han sido estudiados en la Rep. Dominicana (Godoy G., sin publicar) por tanto, el presente trabajo se realizó con el objetivo de determinar poblaciones de *X. c. phaseoli* y otras bacterias epifíticas en botones florales, vainas y granos en 5 genotipos de frijol y su efecto en el desarrollo de la enfermedad bajo condiciones de campo.

MATERIALES Y METODOS

El ensayo fue llevado a cabo en los terrenos de la Estación Experimental Arroyo Loro, en San Juan de la Maguana, R. D. Se utilizó un diseño de bloques al azar con 5 tratamientos y 4 repeticiones. Los tratamientos incluyeron las líneas pompadour M, pompadour H y
BAT-1385 con tolerancia a la bacteriosis común y la variedad PC-50 así como la línea PM-23 ambas susceptibles. El ensayo constaba de 20 parcelas con 6 hileras de 4 m cada una; la distancia entre hileras era de 0.50 m de 0.10 m entre plantas.

## Muestreos

Se realizaron un total de 5 muestreos los cuales incluyeron botones florales, vainas en crecimiento, vainas llenas, granos maduros y secos antes de cosechar y granos secos después de la cosecha.

El muestreo de botones florales se realizó tomando una muestra por parcela, totalizando 20 muestras. Los botones florales fueron cortados con una tijera esterilizada por sumersión en alcohol y depositados en tubos de ensayo conteniendo 10 ml de buffer de fosfato, esparcién-dola sobre la superficie del medio de cultivo con una espátula desinfectada con alcohol flameado al mechero, girando la placa sobre un plato rotatorio.

El aislamiento para los 4 muestreos siguientes fue similar. Se añadió 10 ml de buffer a cada funda con una muestra y se dejó incubar por dos horas. Luego se prepararon diluciones en serie desde original hasta 10⁻⁵, las placas petri se dividieron en dos y de cada muestra se sembró 100 microlitros en 5 gotas por medio plato de MXP usando las diluciones 10⁻¹, 10⁻³ y 10⁻⁵. Los conteos de colonias se realizaban a los 4-6 días después de la siembra.

## Pruebas de Patogenicidad

Luego se realizaban los conteos de colonias de bacterias en MXP, se seleccionaban colonias típicas de Xanthomonas para ser inoculadas en hojas trifoliadas de frijol de la variedad PC-50 bajo condiciones de casa malla. Al mismo tiempo se escogían una o varias colonias de otras bacterias que se inoculaban para comparación. Como control se inoculaba una planta sin bacteria y otra con un aislamiento patogénico de X. c. pv phaseoli.

En las primeras 4 pruebas se inocularon un total de 40 aislamientos, 5 de botones florales, 15 de vainas en crecimiento, 14 de vainas llenas
y 6 de granos maduros y secos. Las evaluaciones, se realizaban cada 7 días. Se repitió una prueba general de patogenicidad con 36 aislamientos, incluyendo 5 de granos secos, en la casa malla del Centro Sur de Desarrollo Agropecuario (CESDA) en San Cristóbal, República Dominicana. En esta prueba se incluyeron 3 controles sin bacteria y 2 aislamientos patogénicos de *X. c. pv phaseoli* (V4 y Epif. IV4).

## RESULTADOS Y DISCUSION

En todos los casos cuando se aislaban colonias amarillas con hidrólisis de almidón en MXP se clasificaban como *Xanthomonas* y si resultaban patogénicas en hojas de frijol, se identificaba el aislamiento como *X. c. pv phaseoli*. Los aislamientos que no presentaban esas características se clasificaron como otras bacterias.

En el conteo de bacterias epífíticas provenientes de botones florales, prevaleció el crecimiento de bacterias pigmentarias sin hidrólisis del almidón, las cuales no fueron cuantificadas. Solamente se detectaron dos muestras con una población de *Xanthomonas* no patogénicas de $1.0 \times 10^3$ CFU/ml.
Cuadro 1. Poblaciones de Bacterias Epifíticas de Vainas en Crecimiento y Vainas Llenas

POBLACIONES (LOGIO CFU/ml)

<table><thead><tr><th rowspan="2">Rep/trat.</th><th colspan="2">X.c.pv phaseoli</th><th colspan="2">Xanthomonas</th><th colspan="2">Otras Bacterias b</th></tr><tr><th>V. Crecim.</th><th>V. Llenas</th><th>V. Crecim.</th><th>V. Llenas</th><th>V. Crecim.</th><th>V. Llenas</th></tr></thead><tbody><tr><td>1- Pomp-M</td><td>NC (1)</td><td>3.00(2)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.74</td><td>2.83</td></tr><tr><td>2- Pomp-H</td><td>4.54(1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>5.46</td><td>2.62</td></tr><tr><td>I 3- Bat-1385</td><td>2.60 (2)</td><td>1.87 (1)</td><td>ND</td><td>2.48 (1)</td><td>3.63</td><td>2.67</td></tr><tr><td>4- PC-50</td><td>ND</td><td>2.65(1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>7.62</td><td>NC</td></tr><tr><td>5- PM-23</td><td>2.98(1)</td><td>ND</td><td>2.65 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>4.00</td></tr><tr><td>1</td><td>NC</td><td>1.40 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>5.78</td><td>3.28c</td></tr><tr><td>2</td><td>3.73 (1)</td><td>4.57 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>4.75</td><td>2.40</td></tr><tr><td>II 3</td><td>ND (1)</td><td>ND</td><td>6.00 (1)</td><td>ND</td><td>6.95</td><td>2.57</td></tr><tr><td>4</td><td>2.90 (1)</td><td>NC</td><td>ND</td><td>ND</td><td>7.50</td><td>6.66</td></tr><tr><td>5</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>4.61</td><td>2.70d</td></tr><tr><td>1</td><td>ND</td><td>1.70 (1)</td><td>ND</td><td>1.70 (1)</td><td>7.56</td><td>1.70</td></tr><tr><td>2</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>5.38</td><td>3.15</td></tr><tr><td>III 3</td><td>ND</td><td>3.40 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>3.43</td><td>2.70c</td></tr><tr><td>4</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>3.45</td><td>2.60</td></tr><tr><td>5</td><td>6.00 (2)</td><td>4.00 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>6.00</td><td>4.78</td></tr><tr><td>1</td><td>ND</td><td>NC (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>3.15</td><td>4.36</td></tr><tr><td>2</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>7.67</td><td>3.48</td></tr><tr><td>IV 3</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>6.00 c</td><td>2.92</td></tr><tr><td>4</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>4.10 c</td><td>3.28</td></tr><tr><td>5</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>3.65</td><td>NC</td></tr></tbody></table>

NC = No Contables, ND = No detectada

a = Promedio de 2 muestras para V. crecimiento y 4 para V. llenas

b = Incluye uno 6 más tipos de colonias pigmentarias

c = Una Muestra NC, d = Dos Muestras NC

Los números en paréntesis indican el No. de muestras con X. c. pv. phaseoli o Xanthomonas
Cuadro 2. Poblaciones de Bacterias Epifíticas de Granos Maduros y
Granos Secos Cosechados (GSC).

POBLACIONES (LOGIO CFU/ml)

<table><thead><tr><th rowspan="2">Rep/trat.</th><th colspan="2">X.c.pv phaseoli</th><th colspan="2">Xanthomonas</th><th colspan="2">Otras Bacterias b</th></tr><tr><th>GM-S</th><th>GSC</th><th>GM-S</th><th>GSC</th><th>GM-S</th><th>GSC</th></tr></thead><tbody><tr><td>1- Pomp-M</td><td>1.40(1)(M)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.18</td><td>3.70d</td></tr><tr><td>2- Pomp-H</td><td>ND (M)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.00</td><td>4.40e</td></tr><tr><td>3- BAT-1385</td><td>ND (M)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.18</td><td>NC</td></tr><tr><td>4- PC-50</td><td>ND (S)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.54</td><td>2.78c</td></tr><tr><td>5- PM-23</td><td>ND (S)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>6.99</td><td>NC</td></tr><tr><td>1</td><td>6.81 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.30</td><td>NC</td></tr><tr><td>2</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.00c</td><td>NC</td></tr><tr><td rowspan="4">II</td><td>3</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.23</td><td>NC</td></tr><tr><td>4</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.23</td><td>NC</td></tr><tr><td>5</td><td>3.40 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>3.43</td><td>NC</td></tr><tr><td>1</td><td>2.94 (1)</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>4.25</td><td>NC</td></tr><tr><td rowspan="4">III</td><td>3</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.87</td><td>NC</td></tr><tr><td>4</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.23</td><td>NC</td></tr><tr><td>5</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.76</td><td>NC</td></tr><tr><td>1</td><td>ND</td><td>NC</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.65</td><td>4.89</td></tr><tr><td rowspan="4">IV</td><td>3</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>3.73</td><td>4.53</td></tr><tr><td>4</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.79</td><td>3.11</td></tr><tr><td>5</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>ND</td><td>2.99</td><td>3.15</td></tr></tbody></table>

NC = No Contables, ND = No Detectadas, M = Grano Maduro

S = Grano Seco

a = Promedio de 4 muestras

b = Incluye uno ó más tipos de colonias pigmentarias

c = Una Muestra NC, d = Dos Muestras NC, e = Tres Muestras NC
<table><caption>Cuadro 3. Porcentajes de muestras *X. c. phaseoli* epifítica y Evaluación final de la Bacteriosis foliar</caption><thead><tr><th></th><th>Bótones Florales</th><th>Vainas Crecim.</th><th>Vainas Llenas</th><th>GM-S</th><th>Foliar</th></tr></thead><tbody><tr><td>POMPADOUR-M</td><td>0</td><td>25.0</td><td>31.2</td><td>0</td><td>4.0</td></tr><tr><td>POMPADOUR-H</td><td>0</td><td>25.0</td><td>6.2</td><td>0</td><td>3.2</td></tr><tr><td>BAT-1385</td><td>0</td><td>37.5</td><td>12.5</td><td>0</td><td>3.1</td></tr><tr><td>PC-50</td><td>0</td><td>12.5</td><td>12.5</td><td>0</td><td>3.7</td></tr><tr><td>PM-23</td><td>0</td><td>25.0</td><td>6.2</td><td>0</td><td>3.8</td></tr></tbody></table>

M = Grano maduro

S = Grano seco

a/ Según escala del 1-9

Los resultados demuestran que un número poco significativo de muestras (2.3%) presentaron poblaciones epifíticas de *Xanthomonas* no patogénicas en hojas de frijol. Mientras que otras bacterias pigmentarias residentes de taxonomía y función no determinadas fueron aisladas en la mayoría de las muestras de botones florales, vainas y granos de frijol de los 5 genotipos incluídos en el ensayo. En términos generales, la presencia *X. c. pv phaseoli* epifítica fue esporádica y las poblaciones detectadas fueron bajas. Las poblaciones más altas (tomando en cuenta las muestras que no pudieron contarse por su elevado número de colonias en la dilución más baja) en las vainas en crecimiento, se presentaron en las líneas pompadour-M y BAT-1385 seguidas de la PC-50, pompadour-H y PM-23. En las vainas llenas las poblaciones más elevadas se encontraron en los materiales pompadour-M y PC-50, seguidos en orden descendente por la pompadour-H, PM-23 y BAT-1385 (Cuadro 1).

En los granos maduros la cantidad de la bacteria fue mayor en pompadour-H que en pompadour-M. Pero la bacteria del tizón común no se recuperó de los granos maduros de la BAT-1385 ni de los granos secos de PC-50 y PM-23 antes de la cosecha. Tampoco se detectó en
los granos secos cosechadas (Cuadro 2) ni en los botones florales de ninguno de los materiales incluídos en el ensayo.

El mayor porcentaje de muestras (37.5%) con *X. c. pv phaseoli* epifítica en las vainas en crecimiento, se encontró en la línea BAT-1385, mientras que los porcientos más elevados (31.2% y 18.8%) en vainas llenas y granos maduros se detectaron en la pompadour-M, la cual presentó un grado de ataque foliar ligeramente superior a los demás genotipos (4.0). Por tanto, no se observó relación entre la tolerancia o susceptibilidad del material y el % de muestras que contenían la bacteria (7).

El ataque foliar de la bacteriosis por infección natural en los materiales ensayados fue bajo y no se observaron síntomas notables en las vainas, lo cual pudo estar influenciado por las bajas poblaciones del patógeno en su fase epifítica, ya que las condiciones ambientales parece que no favorecieron la multiplicación y diseminación de la bacteria (3). Resultados similares fueron obtenidos para la fase foliar epifítica del patógeno (G. Godoy, comunicación personal).

## BIBLIOGRAFÍA

1. Angeles Ramos, R.; Vidaver, A. K. and Flynn P. (1991) Characterization of epiphytic *Xanthomonas campestris pv phaseoli* and pectolytic *Xanthomonads* recovered from symptomless weeds in the Dominican Republic. Phytopatholog 81:677-681.

2. Cafati, C. R. and Saettler A. W. (1990). Transmission of *Xanthomonas phaseoli* in seeds of resistant and susceptible *phaseolus* genotypes. phytopathology 70:638-640.

3. Henis, Y. and Bashan, Y. (1986) Epiphytic survival of bacterial leaf pathogens. En: Microbiology of the phyllosphere. Ed. N. J. Fokkema and J. Van Den Heuvel. Cambridge University Press, Cambridge, USA.

4. Ishimaru, C.; Eskridge, K. M. and Vidaver, A. K. (1991) Distribution analysis of naturally occurring epiphytic populations of
*Xanthomonas campestris pv phaseoli* on dry beans; phytopathology 81:262-268.

5 Morris, C. E. and Rouse, D. I. (1982). Diversity of epiphytic bacterial communities on bean (*phaseolus vulgaris*) leaves and pods based on nutrient utilization (abstr.) phytopathology 72:936.

6- Weller, D. M. and Saettler, A. W. (1980). Evaluation of seedborne *Xanthomonas phaseoli* and *Xanthomonas phaseoli* var. fuscans as primary inocula in bean blights. Phytopathology 70:148-152.

7- Weller, D. M. and Saettler, A. W. (1980). Colonization and distribution of *Xanthomonas phaseoli* and *X. phaseoli* var. fuscans in field grown navy beans. Phytopathology 70:500-506.
ALTERNATIVA PARA EL MANEJO INTEGRADO EN
EL CONTROL DEL VIRUS DEL MOSAICO DORADO
DEL FRIJOL EN REPUBLICA DOMINICANA

Por: Ing. Agrón. Freddy Saladín García
Ing. Agrón. Julio César Nin
Ing. Agrón. Alfonsina Sánchez
Lic. Aridia figueroa R.

INTRODUCCIÓN

El presente trabajo abarca los resultados obtenidos en los estudios sobre identificación del patógeno; determinación de pérdidas económicas; determinación de eficiencia de insecticidas en el control del insecto-vector; determinación de plantas hospederas del virus y del vector; evaluación de población del insecto-vector; desarrollo de materiales mejorados con tolerancia a la enfermedad y evaluación en fincas de productores de un paquete tecnológico para un manejo integrado en el control del Virus del Mosaico Dorado del Frijol-BGMV y de su vector *Bemisia tabaci* Genn.; llevado a cabo por el Departamento de Investigaciones Agropecuarias, DIA-SEA a través del Programa Nacional de Investigación en Leguminosas Alimenticias - Proyecto Título XII-CIAT y Proyecto Sistemas de Cultivos-CIID.

Es una enfermedad de importancia económica por los graves daños que produce en la merma del rendimiento y calidad del grano en el orden del 5-100% en las plantaciones comerciales del Valle de San Juan de la Maguana, durante las épocas de siembra de Otoño-Invierno correspondiente a los meses de Septiembre-Enero.

A partir de 1989, con la ampliación de nuevas áreas de siembra en la planicie de Azua, la enfermedad ha diezmado plantaciones comerciales, situación ésta, que se agrava mucho más por el sistema de producción de cultivos imperantes en mantener un ciclo contínuo de siembra de solanáceas y cucurbitáceas, las cuales son hospederos naturales del insecto vector de la enfermedad, conocido popularmente con el nombre de Mosquita Blanca.
De igual modo se reporta la incidencia de la enfermedad en zonas como en Padre de las Casas, Moca y San Rafael del Yuma-Higüey, Mao y Línea Noroeste en diferentes niveles de importancia económica.

La pérdida total de la producción se origina cuando la infección ocurre dentro de los primeros 32 días a partir de la siembra, fase en la cual se inicia la floración en las variedades precoces y la fase de prefloración en las variedades tardías.

Durante la fase de floración, la enfermedad produce el abortamiento de las flores, mientras que en la fase de llenado de las vainas, produce la deformación de éstas, con la consecuente reducción del tamaño y peso de las semillas.

# 1. RESULTADOS DE ESTUDIOS SOBRE DETERMINACION DE PERDIDAS ECONOMICAS DEL BGMV (6,7,12).

Las informaciones sobre pérdida causadas por esta enfermedad a nivel del Valle de San Juan de la Maguana, estaban basadas en datos de observaciones en plantaciones comerciales por lo que se requería de llevar a cabo un estudio sistemático para que se pudiera determinar con mayor precisión, los daños que produce el virus según época de infección y como afectaba a los componentes del rendimiento de la planta de frijol.

Las evaluaciones sobre las pérdidas, se llevaron a cabo en los materiales Pompadour Checa y la variedad Negro Sureño, esta última es un material promisorio introducido de la universidad de Michigan, con la denominación de H-270.

Para el estudio se hicieron tratamientos con protección química a base de carbofuran (Furadan 5g) en dósis de 2.5 gr por metro lineal, aplicado al momento de la siembra y aplicaciones sucesivas de monocrotophos (Azodrin 60) en dósis de 1.5% a los 14-21-30 y 45 días a partir de la siembra.
En el Cuadro 1, se indican los resultados obtenidos en la determinación de pérdidas económicas.

<table><caption>Cuadro 1. PERDIDAS DEL RENDIMIENTO PROMEDIO POR PLANTA PRODUCIDOS POR VMDF EN DOS MATERIALES DE FRIJOL Y SEGUN EPOCA DE SIEMBRA, 1987-1988</caption><thead><tr><th rowspan="2">Epoca de infección</th><th colspan="2">Rendimiento Obtenido - Gr/Planta</th><th rowspan="2">% Pérdidas<br>Rendimiento</th></tr><tr><th>Control Químico</th><th>Sin Control</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="4">A. Variedad Pompadour Checa.</td></tr><tr><td>32 Días</td><td>10.2</td><td>0.2</td><td>98.0</td></tr><tr><td>39 "</td><td>7.3</td><td>0.8</td><td>89.0</td></tr><tr><td>46 "</td><td>5.8</td><td>1.1</td><td>81.0</td></tr><tr><td>53 "</td><td>6.6</td><td>1.4</td><td>78.8</td></tr><tr><td>60 "</td><td>7.1</td><td>2.1</td><td>70.4</td></tr><tr><td colspan="4">B. Negro Sureño</td></tr><tr><td>32 Días</td><td>8.2</td><td>0.0</td><td>100.0</td></tr><tr><td>39 "</td><td>8.6</td><td>0.5</td><td>94.0</td></tr><tr><td>46 "</td><td>7.4</td><td>0.7</td><td>90.5</td></tr><tr><td>53 "</td><td>7.8</td><td>2.1</td><td>73.1</td></tr><tr><td>60 "</td><td>8.5</td><td>4.3</td><td>49.4</td></tr></tbody></table>

Nota: La época de infección está calculada en base al número de días a partir de la siembra.

Comentarios:

a) El virus del Mosaico Dorado del Frijol causa graves daños al cultivo en el Valle de San Juan de la Maguana en el orden del 49-100% de merma del rendimiento según época de infección y variedad cultivada.

b) La aplicación de Carbofuran 5g (Furadan) al suelo en dósis de 2.5 gr por metro lineal al momento de la siembra, seguida de aplicaciones sucesivas de Monocrotophos (Azodrin 60) en dósis de 1.5% a los 14-21-30 y 45 días a partir de la siembra asegura un incremento al rendimiento en el orden de 81-85% con relación al **no** control del insecto vector y según variedad utilizada.
## Conclusiones:

A. EL VMDF reduce el número de granos/vaina y el rendimiento por planta en un 100%, cuando la infección se produce dentro de los primeros 32 días a partir de la siembra.

B. La reducción en un 84-94% en los componentes de rendimiento en cuanto al número de vainas/plantas; No de granos/vainas y rendimiento total por planta, se produce cuando la infección tiene lugar entre los 39-46 días a partir de la siembra.

C. Cuando la infección se produce entre los 53-60 días a partir de la siembra, la pérdida en el rendimiento promedio/planta fluctúa entre 61-78%. La mayor pérdida se reporta en el tipo Pompadour checa.

## II RESULTADOS DE ESTUDIOS SOBRE LA DINÁMICA DE POBLACION DE *Bemisia tabaci*. Genn. (6,7,8,14)

Uno de los mecanismos para enfrentar la problemática que representa el VMDF en el Valle de San Juan de la Maguana, es mediante el conocimiento de como fluctúa la población del insecto vector de acuerdo a la época de siembra, con el propósito de establecer mecanismos de control del mismo, según fase del cultivo y que permitan mantener una baja población y consecuentemente un bajo nivel de infección del virus.

Dos trabajos en este sentido se realizaron en el período 1987-1992, los datos colectados señalan diferencias altamente significativas entre las épocas de siembra. Las menores poblaciones de *Bemisia tabaci* correspondían a las épocas de siembra comprendidas entre el 25 de Dic.-15 de Enero, en el primer estudio llevado a cabo en 1987-88, coincidiendo con un período de temperaturas bajas y pluviometría inapreciable.

Se observó que el período crítico para la infección del virus se corresponde con los primeros 14 días a partir de la siembra, si se detectan poblaciones altas del insecto durante este período, el número de plantas enfermas es importante.
En sentido general, el cultivo de frijol es más atractivo para el insecto vector dentro de los primeros 28 días a partir de la siembra, mientras que durante los 35-42 días, las poblaciones del mismo son bajas.

En el cuadro 2, se indican los valores encontrados del número total de plantas enfermas según en el período de siembra.

<table><caption>Cuadro 2. POBLACION DE *Bemisia tabaci* Y TOTAL DE PLANTAS ENFERMAS DE VMDF SEGUN PERIODO DE SIEMBRA. 1987-88</caption><thead><tr><th>Período de Siembra</th><th>Número de B. tabaci</th><th>Total Enfermas</th><th>Plantas</th></tr></thead><tbody><tr><td>A 25 Dic.-15 Enero</td><td>46</td><td>187</td><td></td></tr><tr><td>B. 5 Sept.-25 Sept.</td><td>113</td><td>100</td><td></td></tr><tr><td>C. 5 Oct. - 15 Dic.</td><td>110</td><td>371</td><td></td></tr><tr><td>D. 25 Enero- 19 Febre.</td><td>100</td><td>379</td><td></td></tr></tbody></table>

Nota: El número de Mosquita blanca/período de siembra, se corresponde con el número promedio de las tres épocas de cada período en base a muestreo con red entomológica. El total de plantas enfermas es la sumatoria de las plantas encontradas para cada período del estudio.

Comentarios:

En las dos épocas definitivas de siembra en el Valle de San Juan (A y B), el número de *Bemisia tabaci* es menor que en las siembras fuera de época (C y D).

Las bajas temperaturas y pluviometría inapreciable que se registran durante la época de invierno (25 Dic.-15 Enero) en el valle, inciden para mantener una baja población del insecto vector. La siembra de otoño (5 Sept.-25 Sept.), es la época de menor incidencia del VMDF, aunque la población de la mosquita blanca se mantiene a niveles similares a la siembra fuera de época.
Una segunda evaluación de los niveles de población del insecto-vector se llevó a cabo en Dic. 91-Marzo 1992, en dos épocas de siembra: Temprana en fecha 23-24 de Diciembre en dos lugares del valle de San Juan y Tardía en fecha 14 de Enero en un solo lugar del valle y utilizando dos materiales tolerantes y dos materiales susceptibles a la enfermedad. Los datos de evaluación de la población de mosca blanca, plantas enfermas y rendimiento se indican en el cuadro 3.

<caption>Cuadro 3. EVALUACION DE POBLACION DE B. tabaci Genn SEGUN FASE DEL CULTIVO, INCIDENCIA DEL BGMV Y RENDIMIENTO OBTENIDO EN CUATRO GENOTIPOS DE FRIJOL. 1991-92</caption>

No. de Adultos B. tabaci / Fase

I. Siembra Temprana: 23-24 de Diciembre

A. Lugar-EEAL-SJM

<table><thead><tr><th></th><th colspan="7">Genotipo Evaluado</th></tr></thead><tbody><tr><th>Pomp. J</th><td>0.0</td><td>1.0</td><td>1.0</td><td>3.0</td><td>7.0</td><td>0.71</td><td>513</td></tr><tr><th>PR-JB-569</th><td>0.0</td><td>1.0</td><td>9.0</td><td>8.0</td><td>14.0</td><td>1.20</td><td>867</td></tr><tr><th>Pomp. G</th><td>1.0</td><td>3.0</td><td>5.0</td><td>1.0</td><td>14.0</td><td>1.13</td><td>817</td></tr><tr><th>PM-18-SM</th><td>0.0</td><td>2.0</td><td>4.0</td><td>3.0</td><td>67.0</td><td>1.24</td><td>896</td></tr></tbody></table>

B. Lugar-Manoguayabo-SJM

<table><tbody><tr><th>Pomp. J</th><td>0.0</td><td>0.0</td><td>5.0</td><td>4.0</td><td>---</td><td>1.72</td><td>1240</td></tr><tr><th>PR-JB-569</th><td>0.0</td><td>0.0</td><td>1.0</td><td>5.0</td><td>---</td><td>1.91</td><td>1380</td></tr><tr><th>Pomp. G</th><td>0.0</td><td>0.0</td><td>5.0</td><td>4.0</td><td>---</td><td>1.87</td><td>1351</td></tr><tr><th>PM-18-SM</th><td>0.0</td><td>0.0</td><td>5.0</td><td>4.0</td><td>---</td><td>1.85</td><td>1337</td></tr></tbody></table>

II. Siembra Tardía: 14 de Enero de 1992

C. Lugar-Las Ovejas-SJM

<table><tbody><tr><th>Pomp. J</th><td>---</td><td>9.0</td><td>25.0</td><td>29.0</td><td>1.0</td><td>---</td><td>---</td></tr><tr><th>PR-JB-569</th><td>---</td><td>10.0</td><td>18.0</td><td>14.0</td><td>90.0</td><td>---</td><td>---</td></tr><tr><th>Pomp. G</th><td>---</td><td>14.0</td><td>25.0</td><td>6.0</td><td>8.0</td><td>---</td><td>---</td></tr><tr><th>PM-18-SM</th><td>---</td><td>47.0</td><td>25.0</td><td>35.0</td><td>288.0</td><td>---</td><td>---</td></tr></tbody></table>

Nota: La cantidad de mosca blanca/genotipo/fase del cultivo, corresponde al total de 12 plantas evaluadas mediante trampas plásticas en 6 muestras de 2 plantas/geno-
El número total de plantas afectadas con BGMV corresponde al total de plantas observadas desde la fase de floración hasta maduración.

Comentarios: Es evidente el bajo número de plantas afectadas con BGMV entre los genotipos tolerantes Pomp. J. y G en relación con los susceptibles y bajo condición de alta presión del insecto vector como se indica en el área de las Ovejas como siembra tardía en relación a la siembra temprana.

Los resultados de esta segunda evaluación confirman la importancia que juega la época de siembra temprana para evitar una mayor incidencia de la enfermedad en las plantaciones de frijol.

### III. DETERMINACION DE PLANTAS HOSPEDERAS DE B. tabaci Genn. y DEL VIRUS DEL MOSAICO DORADO DEL FRIJOL (2,3,5,6)

El BGMV no se transmite por las semillas por lo que el geminivirus se mantiene como fuente de inóculo primario en plantas cultivadas y malezas.

Los trabajos de recolección de malezas con síntomas de amarillamientos típicos de geminivirus se llevaron a cabo para la identificación posterior del agente causal mediante pruebas de hibridación de porciones del DNA mediante el macerado de las muestras y una metodología específica para llevar a cabo la hibridación en la Universidad de Wisconsin-Madison.

Las especies colectadas y analizadas se encuentran:

<table><thead><tr><th>Género y Especie</th><th>Nombre vulgar</th><th></th></tr></thead><tbody><tr><td>Phaseolus lunatus</td><td>Haba</td><td></td></tr><tr><td>Macroptilium lathyroides</td><td></td><td>Frijolito</td></tr><tr><td>Euphorbia hyssopifolia</td><td></td><td>Yerba lechera</td></tr><tr><td>Euphorbia heterophylla</td><td></td><td>"</td></tr><tr><td>Cassia tora</td><td></td><td>Brusca hembra</td></tr><tr><td>Ipomoea ssp.</td><td></td><td>Bejuco de tabaco</td></tr><tr><td>Euphorbia hirta</td><td></td><td>Yerba lechera</td></tr><tr><td>Sida ssp.</td><td></td><td>Escoba</td></tr><tr><td>Lagacea mollis</td><td></td><td>----------------</td></tr><tr><td>Eclipta alba</td><td></td><td>Yerba de tajo</td></tr></tbody></table>
Acalypha hananeus

Jatropha gossypifolia

Rhynchosia minima

Malva sp.

Rabo de zorra

Túa-Túa

Frijolito

De estos géneros, solamente el Phaseolus lunatus dió una respuesta similar al BGMV de acuerdo a la prueba de hibridación.

El análisis de Sida, Euphorbia, Jatropha, Rhynchosia y Malva, indica que la sintomatología que presentan no se corresponde con la del BGMV, mientras que el Macroptilium lathyroides no dió ninguna reacción en un primer análisis, catalogándose luego como el geminivirus del mosaico dorado de *M. lathyroides*.

Sin embargo la práctica cultural de eliminación de estas malezas hospederas del insecto vector y que presentan síntomas de amarillamientos por geminivirus de los lotes de producción comercial de frijol tanto del interior del campo como de los contornos de las parcelas ha dado buenos resultados en el control de la enfermedad conjuntamente con la eliminación de las plantas enfermas de frijol.

La razón de ser de esta medida radica en que el color amarillento que presentan las malezas y plantas de frijol enfermas es un atrayente para la mosca blanca y pueden servir de fuente de inóculo.

En el futuro deben realizar actividades encaminadas a determinar el papel que juegan estos tipos diferentes de geminivirus en el complejo viral que representa el BGMV.

## IV. RESULTADOS OBTENIDOS EN EL MEJORAMIENTO VARIETAL. (10,11,12,14)

### 1. Selección de Materiales con Fuentes de Resistencia.

Las introducciones y selecciones de líneas a través de los viveros internacionales procedente del CIAT-PROFRIJOL, han permitido identificar fuentes de tolerancia a la enfermedad, entre las cuales, se pueden citar: G-Murasakisaya; A-420; A-429; DOR-303; DOR-364; DOR-482; DOR-483 Y DOR-476, principalmente.
De éstas, la línea DOR-303, es del tipo de grano rojo moteado lo cual favorece para una mejor combinación en el color del grano del tipo pompadour checa y mocana mientras que las demás del código DOR son del tipo de rojo pequeño uniforme de origen mesoamericano que han presentado problemas de combinación con los del tipo pompadour que son de origen andino, las demás son de color tipo garrapata y tienen buena tolerancia al BGMV.

Dentro de los materiales criollos, se han identificado las líneas Pompadour J y Pompadour G, que presentan un buen grado de tolerancia a la enfermedad. Al igual que la DOR-303, son de hábito de crecimiento indeterminado IIb y están siendo utilizadas como fuentes de resistencia en el programa de mejoramiento.

Las observaciones en el campo y laboratorio indican que el insecto vector tiene preferencia por las variedades con pubescencia en las hojas, hecho el cual, se manifiesta en las líneas glabras DOR-303 y A-420, a las cuales, el insecto forma colonias en las hojas en número menor que en el tipo Pompadour Checa que es una variedad pubescente con un grado de 6 en una escala de valoración con un rango de 1 = Glabro y 9 = Pubescencia abundante.

De igual modo, las variedades de frijol blanco tienen hojas glabras así como los materiales de la colección nacional del tipo Pompadour, en los cuales se mantiene la tendencia de ser menos colonizados por la mosca blanca. Esta característica es de importancia para los trabajos de mejoramiento varietal en el cultivo de frijol.

En el programa nacional se encuentran líneas avanzadas en generación F5-F6, procedente de cruzamientos entre los tipos criollos mejorados para bacteriosis común con materiales tolerantes al BGMV para su posterior evaluación a nivel de campo.
Entre estos materiales se encuentran:

<table><tr><td>1. CESDA-PC-HII-F6-SF3</td><td>Fuente</td><td>PC-18-SM / Pomp. G.</td></tr><tr><td>2. CESDA-PM-6F6-HII-SM</td><td>"</td><td>Pomp. J. / PC-18-SM</td></tr><tr><td>3. CESDA-PM-1F5-HII-SF2</td><td>"</td><td>PC-18-SM / Pomp. G.</td></tr><tr><td>4. PACASAS-9</td><td>"</td><td>Colección criolla</td></tr><tr><td>5. CIAT-1</td><td>"</td><td>Sel. 973 / (DOR-301/G10089)</td></tr><tr><td>6. CIAT-3</td><td>"</td><td>Sel. 973 / Sel. 987 / (A-429/G121)</td></tr><tr><td>7. CIAT-5</td><td>"</td><td>Sel. 973 / Sel. 987 / (A-429/G4450)</td></tr></table>

En resumen el programa nacional de mejoramiento está desarrollando a mediano y largo plazo, líneas con tolerancia al BGMV con características fenotípicas de color, forma y tamaño del grano similares a los tipos comerciales de pompadour.

V. MEDIDAS CUARENTENARIAS ADOPTADAS POR LA SECRETARIA DE ESTADO DE AGRICULTURA-SEA.

Con el propósito de frenar el incremento poblacional de la mosca blanca en la planicie de Azua, la SEA estableció una serie de medidas cuarentenarias para evitar el fomento de cultivos hospederos y destrucción de residuos de cosecha a través de una Comisión para el Estudio, Prevención y Control de la Mosquita Blanca a fin de reducir el efecto al mínimo de esta plaga en las plantaciones comerciales existentes en dicha zona de producción.

Mediante resolución No. 17/89 de fecha 2 de febrero de 1989 se consideraron las siguientes medidas:

a) Prohibición de siembra de algodón en la provincia de Azua en cualquier época del año.

b) La prohibición de cultivos hospederos de la mosca blanca según familia y época que se detallan a continuación.

<table><thead><tr><td>Familia</td><td>Cultivos</td><td>Epoca de Prohibición</td></tr></thead><tbody><tr><td>Cucurbitáceas</td><td>Melón, Pepino, Pepino dulce, Auyamas, Cundeamor y Calabazas</td><td>1ro. Marzo-1ro. Sept.</td></tr></tbody></table>
Solanáceas Berenjena, Ajíes, Tomate, Papa y Tabaco. 1ro. Feb.-1ro. Sept.

Leguminosas Frijol, Guandul bajo riego, Cowpea y Haba. 1ro. Feb.-1ro. Sept.

c) Cultivos alternativos para la época de prohibición: Maíz; Ajonjolí; Girasol; Yuca; Cartamo; Maíz; Sorgo; Cebolla; Cebollín; Plátano; Guineo y Rulo.

d) Una serie de acciones encaminadas a prohibir el traslado de material vegetativo hospedero a cualquier otra región, restricción de asistencia crediticia y técnica para el fomento de cultivos prohibidos y un plan de eliminación de residuos de cosecha.

Después de ejecutar las medidas cuarentenarias originarias, se procedió a su modificación por las resoluciones Nos. 23/90 bis y 44/90 de fechas 12/10/90 y 29/3/90, respectivamente.

Por medio de las cuales se prohibía la siembra de frijol durante todo el año en la planicie de azua, favoreciendo la siembra de guandul y Cowpea, prohibiendo la siembra en el valle de San Juan de la Maguana durante el ciclo de siembra de Otoño que comprende los meses de final de agosto-15 de noviembre lo cual representaba una reducción de 64000-96000 tareas equivalentes a unas 4000-6000 Ha, establecido además el período de siembra de invierno entre el 15 de noviembre-8 de enero.

De igual modo se prohibía la siembra de solanáceas y cucurbitáceas hasta el 15 de noviembre y facultaba a la Comisión el derecho de eliminar u ordenar la destrucción de los cultivos hospederos que pudieran ser plantados en la época de prohibición.

Este conjunto de medidas acompañadas de reuniones técnicas de trabajo con personal de investigación-extensión, productores e instituciones del sector agropecuario público y privado, permitió crear el consenso sobre el beneficio que representan para reducir los niveles de población de la mosca blanca para permitir una producción de frijol en la época de invierno con la seguridad de que la incidencia del BGMV se reduciría conjuntamente con el paquete tecnológico desa-
rrollado por el Programa Nacional de Investigación en Leguminosas Alimenticias-Proyecto Título XII-DIA-SEA.

## VI. CONVALIDACION DE TECNOLOGIA DESARROLLADA PARA EL MANEJO DEL VIRUS DEL MOSAICO DORADO. (4,15,16).

La convalidación de la tecnología desarrollada se llevó a cabo con la participación en la ejecución del personal técnico del Proyecto de Sistemas de Cultivos-DIA-SEA en el valle de San Juan de la Maguana, están basados en los siguientes factores de estudios considerados en la actividad:

a) Siembra en época adecuada para el cultivo (25 Dic.-10 Enero).

b) Eliminación de plantas hospederas del virus y del insecto vector, del campo de producción y de los bordes de las parcelas.

c) Aplicaciones preventivas de insecticida a base de monocrotophos (Azodrin 60), en dosis de 1.5 cc/litro de agua a los 14 - 21 y 40 días a partir de la siembra.

d) Eliminación de plantas enfermas dentro del campo de producción.

Los resultados obtenidos confirman la eficacia de la tecnología desarrollada, indicando que dependiendo de la presión de la enfermidad, los incrementos de rendimiento son del orden del 59 - 26% con relación a las prácticas tradicionales de los agricultores del valle.

Los datos de dos parcelas de convalidación en fincas de productores, arrojan los siguientes resultados:

<table><thead><tr><th>Parcelas de Validación</th><th>Rendimiento QQ/ta</th><th>Obtenido Kg/ha</th><th>Incremento %</th><th>Total Plt. con VMDF-%</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="5"><strong>Parcela A</strong></td></tr><tr><td>Manejo Agricultor</td><td>1.32</td><td>957</td><td>100.0 Ref.</td><td>3.8</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td>Manejo<br>Recomendado</td><td>2.11</td><td>1,525</td><td>159.3</td><td>4.3</td></tr></table>

## Parcela B

<table><tr><td>Manejo Agricultor</td><td>1.03</td><td>747</td><td>100.0 Ref</td><td>65.0</td></tr><tr><td>Manejo<br>Recomendado</td><td>1.30</td><td>914</td><td>126.2</td><td>26.8</td></tr></table>

En la pasada época de siembra de invierno final de Noviembre 1991-Marzo 1992, los productores del valle se acogieron a las recomendaciones técnicas desarrolladas y concentraron la siembra en el mes de diciembre lo cual favoreció la reducción drástica del BGMV a niveles insignificantes, obteniendo niveles de productividad de 1.5 - 3.0 QQ/ta equivalente a 1192-2168 kg/ha de acuerdo a evaluación realizada en parcelas de 7 productores del valle en una superficie total de 1210 tareas equivalente a 76.1 Ha.

La evaluación de la productividad obtenida según finca de producción se indica a continuación:

<table><thead><tr><th>Lugar<br>Parcela</th><th>Propietario<br>Parcela</th><th>Area<br>Sembrada</th><th>Productividad<br>Obtenida</th></tr></thead><tbody><tr><td>Los Melones</td><td>Macho de la Rosa</td><td>180 ta - 11.3 ha</td><td>2.5 Qq/ta1807Kg/ha</td></tr><tr><td>Lucero</td><td>Ricardo Carderón</td><td>200 ta - 12.6 ha</td><td>2.0 Qq/ta-1445 Kg/ha</td></tr><tr><td>Km 12 SJM/LM</td><td>Hnos Matos</td><td>400 ta - 25.2 ha</td><td>3.0 Qq/ta-2168Kg/ta</td></tr><tr><td>Pedro Corto</td><td>Hnos Matos</td><td>65 ta - 4.1 ha</td><td>3.0 Qq/ta-2168Kg/ha</td></tr><tr><td>Manoguayabo</td><td>Pedro Merán</td><td>300 ta 18.9 ha</td><td>2.5 ta-1807 Kg/ha</td></tr><tr><td>EEAL-SJM</td><td>SEA-PROFRIJOL</td><td>25 ta - 1.5 ha</td><td>1.5 ta - 1192 Kg/ha</td></tr><tr><td>El Aromal</td><td>Alcibiádez Báez</td><td>40 ta 2.5 ha</td><td>2.0 Qq/ta-1445 Kg/ha</td></tr></tbody></table>

En conclusión, la aplicación del paquete tecnológico desarrollado para el control del Virus del Mosaico Dorado del Frijol-BGMV, con las medidas complementarias de cuarentena de prohibición de cultivos hospederos permiten dentro del esquema de manejo integrado un control eficiente de la enfermedad y una rentabilidad en la producción comercial de frijol en el valle de San Juan de la Maguana.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS CONSULTADAS

1. Abreu, Andrés. 1978. "Identificación del Mosaico Dorado en la Habichuela (Phaseolus vulgaris L.) en República Dominicana". Investigación Vol. IV. pp:21-24.

2. Agudelo, Fernado. 1977. "Consideraciones sobre los Amarillamientos y Mosaicos de la Habichuela (Phaseolus vulgaris L.) en la República Dominicana". San Cristóbal, R. D. Proyecto de Investigación Agropecuario -PIDAGRO- SEA.

3. Jurgens, Gerhard. Proyecto Domínico-Alemán, 1977. Lista de las Malezas qué Afectan Cultivos en la República Dominicana.

4. Peña, Cándido et al. "Ensayos de Insecticidas contra Plagas Vectores de Virus en el Cultivo de Habichuela en la zona de San Juan, R. D. "Investigación, Vol. III (2) pp:8-15.

5. Maxwell Douglas P. 1989. Comunicación Personal sobre Resultados de Análisis de Malezas Colectadas en República Dominicana. Universidad de Wisconsin-Madison.

6. et al. Macroptilium Latyroides Infected by a Geminivirus from Bean Golden Mosaic Geminivirus in the Dominican Republic.

7. Sánchez, Alfonsina y Mora, Amancio. 1988. Pérdidas Económicas Causadas por el Virus del Mosaico Dorado del Frijol en el Cultivo de Habichuela (Phaseolus vulgaris L.) en San Juan de la Maguana. Tesis de Grado para Optar al Título de Ingeniero Agrónomo. Escuela de Agronomía. - UNPHU.

8. Consideraciones Generales Sobre el Virus del Mosaico Dorado en Habichuela. Primer Taller Regional sobre el Virus del Mosaico Dorado de la Habichuela. San Juan de la Maguana - Septiembre de 1986.

9. y Alcántara G. Francisco. 1988. "Dinámica de Población de Bemisia tabaci G. en el Cultivo de Habichuelas". Tesis
de Grado para Optar al Título de Ingeniero Agrónomo. Escuela de Agronomía. UNPHU.

10. Figueroa, Aridia. 1988. Avances sobre Trabajos de Inoculación de Materiales Mejorados para Mosaico Dorado. Reunión Técnica de Programación Anual. Programa Nacional de Investigación en Leguminosas Alimenticias - Proyecto Título XII. CESDA - San Cristóbal, R. D. Mayo 1988.

11. Proyecto Título XII, Resultados de Evaluación de Vivero Internacional de Mosaico Dorado. Reporte Técnico Octubre - Diciembre 1986. SEA - DIA-UN-UPR. pp:12-13.

12. Selección de Materiales Segregantes en F5-F7. Reporte Técnico Enero - Marzo 1987. SEA-DIA-UN-UPR. pp:17-18.

13. Determinación de Pérdidas Económicas en VMDF. Reporte Técnico Abril - Junio 1987. SEA-DIA-UN-UPR. pp:15-16.

14. Resultados de Evaluación del Vivero Internacional de Mosaico Dorado. Reporte Técnico Abril - Junio 1987. SEA-DIA-UN-UPR. pp:13.

15. Evaluación de la Población de Bemisia tabaci Genn. según fase del cultivo, incidencia del BGMV y rendimiento obtenido en cuatro genotipos de frijol. Reporte Técnico Enero-Marzo 1992. SEA-DIA-UN-UPR. pp:15

16. Proyecto Sistemas de Cultivos. Resultados Obtenidos en Parcelas de Validación y Transferencia de Tecnología para el Control del Virus del Mosaico Dorado en Habichuela, durante 1988-1989 en San Juan de la Maguana. Reporte Anual 1989.
MANEJO INTEGRADO DEL ARROZ ROJO Y OTRAS
MALEZAS EN EL CULTIVO DE ARROZ *Oryza sativa*
L. EN REPUBLICA DOMINICANA

J. Coulombe, M. Castillo, J. L. Armenta y M. Rivas

RESUMEN

La máxima disminución del rendimiento relativo (%) de dos varie-
dades comerciales de arroz, por efecto de diferentes poblaciones
de arroz rojo/m² fluctuó entre 84% (La Ceiba, R. D.) y 98% (Limón
del Yuna, R. D.) (Fig.1). La combinación de; inundación gradual
temprana y desyerbo mecánico fue uno de los tratamientos más
efectivos en el control del arroz rojo (Fig.2), al igual que inundar
durante 19 días antes de la siembra y realizar dos desyerbos
mecánicos (20 y 32 DDS) y dos manuales (61 y 82 DDS), lo cual se
manifestó en mayor rendimiento y menor costo que el resto de
tratamientos estudiados (Fig.3). La aplicación temprana de la mezcla
de herbicidas tradicionales (Propanil + 2,4-D) en combinación
con un desyerbo mecánico y uno manual, también ejercen un control
efectivo y económico sobre el arroz rojo y las otras malezas de hoja
ancha, gramíneas y cyperáceas (Fig.4). Adicionalmente la misma
mezcla de herbicidas complementada con dos desyerbos mecánicos y
uno manual tuvieron un adecuado control del arroz rojo y las otras
malezas, con un rendimiento superior al tratamiento sin desyerbo
mecánico, cercano a los 800 kg/ha (Fig.5). Finalmente, la aplicación
de la mezcla tradicional de herbicidas (20 DDS) más un desyerbo
mecánico (23 DDS) y Fenoxaprop-etil (37 DDS), resultó ser un
tratamiento más eficiente que el practicado tradicionalmente por el
agricultor, ya que superó a éste en 1239 kg/ha (Fig.6). Este campo
se caracterizó por estar infestado por biotipos de *Echinochloa* spp.
con tolerancia al Propanil, razón por la cual se recurrió al graminicida
Fenoxaprop-etil.

<footnote>Red de Mejoramiento de Arroz para el Caribe, Apartado Postal 711-IICA, Santo Domingo, República Dominicana.</footnote>
INTRODUCCION

Las malezas afectan severamente la producción de arroz en República Dominicana. La práctica más común para controlarlas, consiste en la aplicación de 2,4-D y Propanil en postemergencia, seguido generalmente por dos desyerbos manuales. Campos con alta infestación de malezas, especialmente *Echinochloa* spp. el número de desyerbos manuales puede llegar hasta cuatro; contribuyendo así a incrementar el costo de producción. Por otra parte, el arroz rojo (*Oryza sativa* L.) se ha convertido en uno de los problemas más graves en aproximadamente 34% del área arrocera de República Dominicana.

En 1989, CRIN introdujo del IRRI una sembradora manual en hileras y desyerbadora cónica manual, la cual permite mecanizar tanto la siembra como el desyerbo entre las hileras del arroz.

Resultados preliminares de investigaciones colaborativas con CEDIA, Fomento Arrocero y CRIN, indican que estos equipos ofrecen grandes perspectivas para la siembra directa y en el control de las malezas en el cultivo de arroz. Estos equipos fueron utilizados en nuestros estudios de manejo integrado de las malezas, en siembra de arroz con semilla pregerminada.

El objetivo del presente trabajo es, dar a conocer algunos de los resultados más importantes obtenidos desde el primer semestre de 1990 hasta Mayo de 1992, entre los que se incluyen: la interferencia del arroz rojo con el arroz comercial, el efecto del manejo del agua de riego y del desyerbo mecánico en el control del arroz rojo y varios aspectos del desyerbo mecánico en combinación con herbicidas, para el control del arroz rojo y otras malezas.

MATERIALES Y METODOS

Los diferentes estudios a que se hacen alusión en el presente trabajo se establecieron en diseños experimentales en bloques al azar, parcelas divididas y sub-sub-divididas. A los datos tomados se les practicaron
análisis de varianza, pruebas de comparación de medias de tratamiento (Duncan) y análisis de regresión y económicos para algunos casos, cuyos detalles explicativos aquí hemos obviado.

## RESULTADOS Y DISCUSION

### Interferencia del arroz rojo con el arroz comercial.

En la Figura 1 se puede observar la disminución del rendimiento (84% en Juma 64 y 98% en ISA 40) de dos variedades comerciales de arroz en relación a diferentes niveles de infestación de arroz rojo. Dicho efecto sobre el rendimiento fue diferente para las dos variedades, debido a diferencias morfológicas de los "biotipos" de arroz rojo y a características agronómicas diferentes de ISA 40 y Juma 64.

En Limón del Yuna, los biotipos de arroz rojo fueron principalmente plantas de porte alto y con gran capacidad de ahijamiento; mientras que en La Ceiba, Bonao la infestación provino de una mezcla de plantas de porte alto e intermedia, los cuales ejercieron una menor competencia con la variedad Juma 64. En Limón del Yuna hubo acame de ISA 40 (CICA 8), tanto en las parcelas infestadas, como en las parcelas sin infestación de arroz rojo, aumentando el acame a medida que aumentó el nivel de infestación.

### Manejo de agua de riego y desyerbo mecánico en el control de arroz rojo.

En la Figura 2a, se observa el efecto positivo de combinar el momento de la inundación gradual y del desyerbo mecánico en el control del arroz rojo. Tanto en los tratamientos sin desyerbo mecánico, como con un desyerbo mecánico, el rendimiento disminuyó de manera sostenida a medida que se retrasó el inicio de la inundación gradual (Fig. 2b). La mejor combinación fue un desyerbo mecánico con la inundación gradual a los 5 días después de la siembra, lo cual dio un
control de 66% del arroz rojo (Fig. 2a) y un aumento del rendimiento de 25% (Fig. 2b).

La Figura 3a muestra el beneficio de combinar la preparación del suelo con una lámina de agua durante 19 días, antes de la siembra, y dos desyerbos mecánicos, posibles de realizarlos debido a la siembra directa en hileras (T1), lo cual dio un mejor control del arroz rojo que el herbicida Oxyfluorfen aplicado en lámina de agua, en presiembra (T3). El desyerbo mecánico a los 20 y 32 días después de la siembra (T2) dio un control del arroz rojo semejante al Oxyfluorfen. Todos los tratamientos tuvieron un efecto positivo no sólo en el control del arroz rojo, sino también en el incremento del rendimiento, esto en comparación a la práctica del agricultor (T4), (Fig. 3a y 3b).

En la Figura 3c se observa que los costos totales del desyerbo por efecto de combinar la lámina de agua y desyerbo mecánico (T1), fueron más bajos, en comparación de los otros tratamientos. La práctica del agricultor resultó ser la más costosa, debido a los gastos de desyerbo manual. El tratamiento T2 disminuyó su eficiencia económica en comparación al tratamiento T1, debido a los gastos más altos en desyerbo manual para el control del arroz rojo y de las demás malezas, principalmente *Ischaemum rugosum* y cyperáceas (Fig. 3c), las cuales fueron mejor controladas por el mantenimiento de la lámina de agua durante 19 días antes de la siembra (T1). Los altos gastos de desyerbo manual del tratamiento T3 (Oxyfluorfen) fueron debidos, por una parte, a la dificultad de reconocer las plantas de arroz rojo en la siembra al voleo y por otra parte, a sacar las plantas de *Ischaemum rugosum* que los herbicidas no controlaron.

Desyerbo mecánico en combinación con herbicidas en el control del arroz rojo y otras malezas.

De acuerdo con los estudios conducidos con productores cooperantes en la comunidad de Los Barros, Bonao, se observó que la aplicación en postemergencia de 2,4-D y Propanil antes de haberse dado un primer desyerbo con la desyerbadora cónica, redujo ligeramente las
gramíneas y casi todas las cyperáceas y hojas anchas no controladas por el desyerbo mecánico (Fig. 4a).

Aunque el control químico redujo la población de malezas y favoreció el desyerbo manual tardío acostumbrado, esto no se reflejó en un incremento significativo del rendimiento (Fig. 4b) ni en la disminución del costo total del control de las malezas (Fig. 4c); esto se debe muy probablemente a que los desyerbos mecánicos (25 y 32 DDS) se practicaron antes del período crítico de competencia, que suele ser alrededor de los 35 DDS.

En otro estudio, se determinó que dos desyerbos mecánicos redujeron significativamente el arroz rojo, así como las gramíneas no controladas con la mezcla de 2,4-D y Propanil (Fig. 5a). Se observó también que el primer desyerbo mecánico hecho 5 días antes o 4 días después de la aplicación de la mezcla de 2,4-D y Propanil, no influyó en la eficiencia de la desyerbadora cónica manual sobre el control de las gramíneas y el arroz rojo. A pesar de que un desyerbo manual fue realizado a los 85 días después la siembra para todos los tratamientos, los dos desyerbos mecánicos permitieron incrementar de manera sostenida el rendimiento, en 644 kg/ha (después) y 786 kg/ha (antes), esto en comparación con el tratamiento al que sólo se aplicó la mezcla de herbicidas (sin), (Fig. 5b).

En 1991-92 se realizó otro estudio en Juma, Bonao. En la Figura 6a se puede observar el efecto de diferentes tratamientos para el control de malezas-biotipos de *Echinochloa colona* tolerantes al Propanil, así como cyperáceas y de hoja ancha. La combinación de los tratamientos M₁ Y M₂ superaron al testigo-práctica del agricultor en 1240 y 779 kg/ha respectivamente, notándose un efecto muy significativo sobre el rendimiento (461 kg/ha) del desyerbo mecánico en M₁, en comparación con M₂.

La Figura 6b presenta los costos y beneficios adicionales de la cosecha que tuvieron los tratamientos M₁ Y M₂ en comparación con la práctica del agricultor (M₃). Se observa que los controles complementarios
de malezas en M₁ Y M₂ a la aplicación de la mezcla de 2,4-D + Propanil en un campo con alta infestación de *Echinochloa colona* permitieron beneficios adicionales.
<figure><img src="image_18.png" /><figcaption>Figura 1. Interferencia del arroz rojo con el arroz comercial. República Dominicana 1990 & 1991.</figcaption></figure>
<figure><img src="image_19.png" /><figcaption>Figura 2. Resultados del manejo de agua de riego y de un desyerbo mecánico a los 23 días después la siembra (DDS). La Ceiba, República Dominicana. 1991.</figcaption></figure>
a) Efecto sobre el control de arroz rojo

<figure><img src="image_20.png" /><figcaption>Plantas de arroz rojo (BIO/m2)</figcaption></figure>

b) Efecto sobre el rendimiento

<figure><img src="image_21.png" /></figure>

c) Costos de los tratamientos

<figure><img src="image_22.png" /><figcaption>Figura 3. Resultados de various métodos de control del arroz rojo.
Los Barros, República Dominicana. Primer semestre, 1991.</figcaption></figure>

T1 = Laminación de aguas arriba, 19 días, semillas en Milanes, derrame mediano a 20 y 22 DAS, y derrame meanal a 61 y 82 DAS.

T2 = Semillas en bilaterales, derrame mediano a 30 y 32 DAS, y derrame meanal a 51 y 82 DAS.

T3 = Ovihucón en bilaterales de aguas súbrane al viento, 2, 4 D = Preparo a 25 DAS, y derrame meanal a 61 y 82 DAS (Cultivo con-

T4 = Semillas al viento, 2, 4 D = Preparo + Indicadores a 25 DAS, y derrame meanal a 61 y 82 DAS (Prueba del aguacate).

Ter = Ovihucón en bilaterales de aguas súbrane al viento, 2, 4 D = Preparo a 25 DAS, y derrame meanal a 61 y 82 DAS (Cultivo con-

Ter = Ovihucón en bilaterales de aguas súbrane al viento, 2, 4 D = Preparo + Indicadores a 72, 0,35, 2,5 y 2,7 kg, a la hua, reproductiva.

Notar 1105 = 12,65 DAS
<figure><img src="image_23.png" /><figcaption>Figura 4. Efecto de la aplicación de 2,4-D + propanil en combinación con el desyerbó macánico. Los Barros, República Dominicana, 1991.</figcaption></figure>

Indicación de 2,4-D + Propionil (40-50 + 2,0 kg/ha) a 20 DAS. En los dos tratamientos, desyerbó macánico a 25 y 30 DAS, y desyverbó macánico a 65 DAS, 1 DAS a 12,45 DAS.
<figure><img src="image_24.png" /><figcaption>Figura 5. Efecto del desyerbo mecánico antes o después de la aplicación de 2,4 D + Propanil. Los Barros, República Dominicana. 1991.</figcaption></figure>

Antes: primer desyerbo mecánico a los 15 DOS. Después: primer desyerbo mecánico a los 24 DOS. En todos los tratamientos: aplicación de 2,4 D + Propanil (0.25 + 2 kg t.a./ha) a 20 DOS; segundo desyerbo mecánico a 33 DOS; y desyerbo manual a 85 DOS.
<figure><img src="image_25.png" /><figcaption>Figura 6. Eficiencia de métodos de control de malezas con alta infestación de *Echinochloa colona*. Juma, República Dominicana, 1992.</figcaption></figure>

$M_1$ = Propanil + 2,4 D a 20 DDS; seguido por un desyerto mecánico a 23 DDS; y Fenoxaprop-etil a 37 DDS

$M_2$ = Propanil + 2,4 D a 20 DDS; seguido por Fenoxaprop-etil a 37 DDS.

$M_3$ = Propanil + 2,4 D a 20 DDS (práctica del agricultor).

DDSs: Propanil, 2,4 D y fenoxaprop-etil = 2.88, 0.25 y 0.15 kg i.a./ha, respectivamente.

Nota: Un desyerto manual en todos los tratamientos $M_1$ y $M_2$ y dos en $M_3$. 1 US$ = 12.45 DDS.
## CONCLUSIONES

1. El manejo integrado del arroz rojo y otras malezas, requiere de la acción combinada de diferentes métodos de control (químico, preventivo, cultural y biológico), ya que la aplicación de un solo método resulta ineficaz.

2. La máxima baja del rendimiento de Juma 64 (84%) e ISA 40 (98%) fue causada por la interferencia de altas poblaciones de diferentes biotipos de arroz rojo, por metro cuadrado.

3. La siembra directa en hileras facilita combinar el desyerbo mecánico, con el control químico, manual y cultural.

4. La combinación del manejo del agua de riego antes y después de la siembra, así como el desyerbo mecánico, resultaron en un manejo apropiado del arroz rojo y otras malezas, con bajos costos.

5. Observaciones prácticas de campo, indican que existen biotipos de *Echinochloa colona* que toleran altas dósis de Propanil, razón por la cual es conveniente combinar el desyerbo mecánico y herbicidas-griminicidas como el Fenoxapro-etil para un manejo adecuado de dicha maleza.

6. El control químico de malezas en general, fórmula tradicional (Propanil + 2,4-D), sugiere ser económica y efectiva, siempre y cuando se complemente con uno o dos desyerbos mecánicos, en siembra directa en hileras.

## AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen a los Ings. Jesús Rosario y Ariano Tejada del Departamento Fomento Arrocero; a los Ings. Petronila Quezada y Omar Medina del Centro de Investigaciones Arroceras; a los Ings. Cesar Moquete y Victoriano Rodríguez del CRIN; y a los agricultores cooperantes, por sus importantes contribuciones en diferentes partes de los estudios.
A MULTISPECIES HERBICIDE SCREENING TEST
FOR THE PHYTOTOXICITY EVALUATION ON
SEVEN SPICES.

J.R. Espaillat, S.H. West, E.C. French, D.L. Colvin.

University of Florida, IFAS
Agronomy Department
304 Newell Hall
Gainesville, Florida, 32611

ABSTRACT

A herbicide screening experiment determined the phytotoxicity (phyto) effect of norflurazon (NOR), simazine (SIM), bentazon (BEN), dicamba (DIC) and a nontreated control on sage (*Salvia Officinalis* L.), pot marjoram (*Origanum onites*), wild marjoram (*Origanum vulgare* subsp. *vulgare*), lavender (*Lavandula angustifolia*), winter savory (*Satureja Montana*), rosemary (*Rosmarinus officinalis* L.), and sweet marjoram (*Origanum mejorana*). A strip-split plot design with four reps was sprayed with each herbicide at three rates. Phyto rating was determined 21 days after application. Differences between herbicides, rates and spices was significant. Interactions between each pair of factors and between the three treatments were significant. NOR proved to be the least phytotoxic herbicide. NOR was safe at ½ X in wild marjoram, lavender, winter savory, rosemary and sweet marjoram and at 1 X in lavender and rosemary; BEN at ½ X in sage, pot marjoram, winter savory and rosemary, and at 1 X in rosemary; and DIC at ½ X in sage, rosemary and sweet marjoram showed potential. SIM killed the exposed plants at all rates.

INTRODUCTION

The ability to compete in price and quality with traditional herb
production areas of the world requires the understanding of production
constraints and, the incorporation of appropriate, improved and
efficient production technologies (Lewis, 1984), According with
Morris and Craker (1990) an important factor in herb production in the USA is the organic farming philosophy tightly associated with the production of herbs in gardens and small production areas. However, as Ikerd (1989) emphasizes efficient and environmentally sound techniques either of organic or inorganic precedence should be the goal of every production package when more extensive production areas are to be considered.

Hill and Barclay (1987) state that weed impact, control and herbicide effect should be evaluated for any plant been domesticated as a crop. Because of the diverse nature and market value of spices in the global food market, few manufacturers seek to obtain approval for the use of their chemicals on such crops. In the USA hand-weeding is a limiting factor due to high cost of labor. According to Freed and Davies (1980) in many areas of the Caribbean control over the use of pesticides is low, farmers generally pay no attention to the human risk when using pesticides. Moreover, as pointed by Weir and Shapiro (1981) residue levels of pesticides in imported minor crops has become an issue for American consumers. In the above situations, it is important to have labeled herbicides in herbs and spices.

There are a number of herbicides which have been tested in different countries interested in supplying the world herb market. Countries such as England, Israel, France, Russia and Yugoslavia are developing strong herb industries based on modern production practices. The Ministry of Agriculture, Fisheries, and Food (1980) of England had been testing and recommending the following herbicides for use in herbs; aminothiazole, chlorbufam, dalapon, EPTC, glyphosate, paraquat, pentanochlor, simazine, 2,3,6-TBA and trifluralin. Simazine and Terbacil has been labeled as preemergence herbicides in established mint (Menta spp), both spearmint and peppermint, at rates of 2 lb and 1.4 lb of commercial product acre⁻¹, respectively (Appleby and Brewster, 1980) and (Daniel, 1976). On Sage (Salvia officinalis L.), simazine is labeled post-planting in two applications, in September and in April, at rates of 1 and 2 lb active ingredient (ai) acre⁻¹, respectively. Also on Sage, Propachlor pre-plant incorporated (PPI) at 4 lb ai acre⁻¹ has shown promises for the control of annual weeds.
On established lavender (*Lavendula angustifolia*) for oil production, terbacil at 0.8 lb ai acre⁻¹ on light soils, and trifluralin at 1 lb ai acre⁻¹ incorporated before planting (Kaspova et al, 1980) (Nagy and Szalay, 1977). On Rosemary (*Rosmarinus officinalis* L.) grown as nursery stock, Simazine, PPI at up to 1 lb ai acre⁻¹ has been used. According to the Florida PEST-BANK Pesticide Product Data of February 1991, Treflan® and EH 951® are registered for use in Rosemary and Devrinol® is registered for use in Sweet marjoram, Winter savory, and Basil. In Florida no herbicide has been labeled for use on Sage, Lavender, Wild marjoram and Oregano.

Herbicide labeling and weed control is one of the major production constraints for the potential expansion of the herb industry in Florida and the Caribbean. Under these guidelines the objectives were defined as follows: I) Determine the most promising herbicide for each spice for further evaluation under field conditions, II) Determine the rate of tolerance of each spice to herbicides, and III) Evaluate the phytotoxicity symptoms of four post-emergence logarithmic applied herbicides on seven spices.

## MATERIALS AND METHODS

Cuttings of seven spices were rotted in January 1990 on perlite for 21 days. Hotbed temperature during rotting was 28°C. Rotted cuttings were transplanted to multi-cell plant tray in Metromix 350 soil-media. During the winter plants were grown under adequate irrigation and weekly fertilization with Peter's 20-20-20 liquid fertilizer at 1 teaspoon per gallon of water. White flies were controlled with safer insecticidal soap® on a preventing schedule at 75 ml per gallon of water.

On June 1990, the plants were transplanted to white disposable styrofoam cups of 0.30 liter fluid capacity. The soil-media was made of 75 % soil from the green acres (G.A.) agronomy farm, mixed with 25 % peat moss. The soil mixture was used in order to use a representative soil of the region while increasing water retention. The mixed soil-media was sterilized with Bromo-o-gas® (methyl bromide). Irrigation was provided daily and fertilization with peter's 20-20-20 was applied when needed.
At the beginning growth of most spices was slow. By December 1990, plants were growing well and roots penetrated through the cups to the soil. Pruning of some of the species was necessary in order to keep the less aggressive ones under optimum growing conditions. The plants were grown at the experimental site until the moment of treatment application on September 11, 1991.

Because of the number of herbs and herbicides included in this study, an innovation of the multispecies screening design proposed by Aldrich (1951) and Talbert et al (1983) was used. Four herbicides were selected to be tested at three rates. The test was set in a strip-split plot design with four replications. Herbicide treatments were the vertical factor (A). The selection of the herbicides was done base on the possibility each product has to be labelled for use on edible crops. Also, these herbicides have a high LD₅₀. Norflurazon (Zorial®)[4-chloro-5-(methylamino)-2-(∞,∞,∞-trifluoro-m-tolyl)-3(2H)-pyridazinone] was herbicide one with acute oral LD₅₀ of 8,000 mg/kg. Simazine (Princep®) 2-chloro-4,6-bis (ethylamino)-5-triazine was herbicide two with acute oral LD₅₀ of 5,000 mg/kg. Bentazon (Basagran®) (3-(1-methylethyl)-1H-2, 1,3-benzothiadiazin-4(3H)-one 2,2-dioxide) was herbicide three with acute oral LD₅₀ of 2,063 mg/kg. Dicamba (Banvel®) 3,6 dichloro-o-anisic acid was herbicide four with acute oral LD₅₀ of 1,028 mg/kg. All of these are being widely researched for use on a variety of fruit and vegetables.

<table><caption>Table 1. Selected herbicides and the calculated IX rate.</caption><thead><tr><th colspan="3">Herbicide treatments</th><th rowspan="2">Crop<sup>§</sup></th><th colspan="3">Dosis</th></tr><tr><th>No</th><th>Common</th><th>Trade</th><th>Product per acre</th><th>lb ai per gal</th><th>lb ai per acre</th></tr></thead><tbody><tr><td>1-</td><td>Norflurazon</td><td>Zorial</td><td>Soybean</td><td>1.25 lb</td><td>0.80</td><td>1.0</td></tr><tr><td>2-</td><td>Simazine</td><td>Princep</td><td>Asparagus</td><td>3.00 gt</td><td>4.0</td><td>3.0</td></tr><tr><td>3-</td><td>Bentazon</td><td>Basagran</td><td>Peppermint</td><td>3.00 pt</td><td>4.0</td><td>1.5</td></tr><tr><td>4-</td><td>Dicamba</td><td>Banvel</td><td>Asparagus</td><td>3.00</td><td>4.0</td><td>0.038</td></tr><tr><td>4-</td><td>Control</td><td>Water</td><td>n/a</td><td>0.75 pt</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

<footnote>§ The recommended rate for a sensitive, edible crop was selected. Norflurazon is used mainly on grain and legumes field crops. All selected rates are recommended for coarse soils.</footnote>
Rate treatments were the horizontal factor (B). They consisted of three logarithmic increased rates; half of the recommended rate (½ X), the recommended rate (1 X) in pounds of ai per gallon of commercial product recommended for a vegetables crop, and double the recommended rate (2 X). Within each set there were 5 units for each one of the 4 herbicides and a non-sprayed control (Table 1). A single experimental unit (one plant of each spice) is included in each unit. Seven spices were considered the sub-plot factor (C). They were the following: 1) Sage (*Salvia Officinalis* L.), 2) Pot marjoram (*Origanum onites*), 3) Wild marjoram (*Origanum vulgare* subsp. *vulgare*), 4) Lavender (*Lavandula angustifolia*), 5) Winter savory (*Satureja montana*), 6) Rosemary (*Rosmarinus officinalis* L.), and 7) Sweet marjoram (*Origanum majorana*).

The logarithmic spray system specified by Danielson and Gentner (1966) was implemented. It consisted of an adjustable shield unit and a 2 gallons carbon dioxide (CO²) powered sprayer (Figure 1). The adjustable shield unit was made of two inches pvc tube frame and two plexiglass shields. Burrill et al. (1976) methodology was used to calibrate the equipment at 20 gallons acre⁻¹ and 30 psi nozzle pressure using a 8005 tee jet nozzle. Height was controlled by resting and sliding the boom at top of the plexiglass shields on the pvc frame (Figure 1). The spayed area was isolated by placing each sub-plot within the two plexiglass shields. The speed was controlled by the movement of the boom over the shield. The required amount of ai was calculated following Neal (1976) manual for small dosage of pesticides.

The phytotoxicity evaluation was done on October 2, 21 days after treatment applications. Since the effect(s) of a given herbicide on a particular spice is unknown, four different symptoms were considered (Frans et al, 1986). Foliage burning, stunting, chlorosis, and wilting in a scale of 1 to 5 were used as visual criteria. The rating scale was divided as follows: 1 = no symptom (active growing plant), 2 = 1-20 % of plant affected, 3 = 21-50 % of plant affected, 4 = 51-80 % of plant affected, 5 = 81-100 % of plant affected.

As recommended by Derr and Appleton (1988), and Eagle (1981) only one person should evaluate the treatments so that the phytotoxi-
<figure><img src="image_26.png" /><figcaption>Figure 1. Adjustable shield unit for target and application height control.</figcaption></figure>

city symptoms and intensity are assessed in the same manner. As recommended by Burrill et al (1976) in preliminary screening trials, qualitative data usually satisfy, but in more advanced trials a combination of both qualitative and quantitative data are normally collected.

Statistical analysis included the analysis of variance (ANOVA), least significance difference (LSD) for a strip-split plot design where two main-plot means at the same combination of subplot and sub-subplot treatments, following Gomez and Gomez (1976) procedure. Each mean was compared against each other and against the control. A single LSD value (1.119) was used for comparison of all means, because the mean square of E (A), E (B) and E (C) are not significant larger than E (D) (Table 2). Also, the minimum significance difference (MSD) was calculated. It allowed the selection of those herbicides and/or rates which did not cause phytotoxicity symptoms significantly different from the average of the three controls included at each rate. Data were analyzed using MS&TAT 4.0 statistical program.
RESULTS AND DISCUSSION

The analysis of variance showed a highly significant difference between herbicide, rate and spice treatments. Also, there was highly significant interactions between each pair of factors and between the three treatment factor. Also, there was a significant difference for the three two-factor interactions; herbicide-rate (A X B), herbicide-spice (A X C), and rate-spice (B X C) (Table 2). The interactions A X B and A X C were significant at 0.01 level of probability. While, the B X C interaction was significant at the 0.05 level.

<table><caption>Table 2. Analysis of variance of a 3-factor experiment with split treatments arranged in strips.</caption><thead><tr><th>Source</th><th>Degrees of Freedom</th><th>Mean Square</th><th>F value</th><th>Probab.</th><th>Level of Significance</th></tr></thead><tbody><tr><td>Replication</td><td>3</td><td>1.988</td><td>2.04</td><td>0.178</td><td>NS</td></tr><tr><td>Vertical Factor (A)</td><td>3</td><td>45.790</td><td>47.10</td><td>0.000</td><td>**</td></tr><tr><td>Error (A)</td><td>9</td><td>0.972</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Horizontal Factor (B)</td><td>2</td><td>91.128</td><td>387.58</td><td>0.000</td><td>**</td></tr><tr><td>Error (B)</td><td>6</td><td>0.235</td><td>10.20</td><td>0.000</td><td>**</td></tr><tr><td>AXB</td><td>18</td><td>0.775</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Error (C)</td><td>6</td><td>15.565</td><td>24.83</td><td>0.000</td><td>**</td></tr><tr><td>Subplot</td><td>18</td><td>1.609</td><td>2.57</td><td>0.000</td><td>**</td></tr><tr><td>Factor (C)</td><td>12</td><td>1.368</td><td>2.18</td><td>0.013</td><td>*</td></tr><tr><td>AXB</td><td>36</td><td>1.090</td><td>1.74</td><td>0.008</td><td>**</td></tr><tr><td>BXC</td><td>216</td><td>0.627</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>AXBXC</td><td>335</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Error (D)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Total</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

Legend: factor(A)= herbicide, factor(B)= rate, and factor(C)=spices. (*,**) = different at the 95% and 99%, respectively. (NS)= nonsignificant.
Least significant difference (LSD) analysis between herbicides over all rates and spices showed norflurazon to be the less toxic herbicide with a rating of 3.0. Bentazon and dicamba followed with an average phytotoxicity rating of 3.56 and 4.03, respectively. The highest phytotoxicity rating was obtained with simazine (4.77) which killed most of the exposed plants when the herbicide rate was doubled. The average for the three rates over all herbicides and spices followed the expected trend. Using half of the recommended rate (1/2 X) was the least phytotoxic followed by the recommended rate (1 X), and the worst phytotoxic response was obtained by doubling the rate (2 X) which killed most of the plants. Since the data showed high level of interaction, the results and discussion of each spice will be in separate sections.

## Sage

Phytotoxicity increased with the herbicides rates. At 1/2 X Bentazon and Dicamba were not significant different from the control (Table 3). The MSD value (0.914) over the control means (1.25), place these herbicides within the area of acceptance (Figure 2). At 1 X and 2 X, all herbicides caused phytotoxicity greater than 50 % (average rating of 3.0). Norflurazon appears to be the least phytotoxic when used at 1 X and 2 X rates with average rating of 3.50 and 4.00 respectively. However, LSD analysis showed all herbicides were different from the control at 1 X and 2 X rates.

Sage was sensitive to Simazine at all rates, having symptoms of necrosis even at the 1/2 X rate. Dicamba caused twisted, virus-like leaves and malformation of tips at 1 X. Bentazon did not caused phytotoxicity at 1/2 X, the foliage was necrotic at 1 X and 2 X rates. Norflurazon at 1/2 X caused the senescence of some leaves, but the plants recovered.

## Pot marjoram

Pot marjoram was the most sensitive to increased rates of herbicides, among the seven spices. All herbicides and rates caused phytotoxic damage to the plants which were significantly different from the
untreated controls (Table 4). However, the MSD value (0.914) over the controls mean (1.67), place Bentazon at ½ X within the margin of acceptance for further research (Figure 3). At 1 X and 2 X the four herbicides caused phytotoxicity symptoms greater than 50%. As in Sage, Norflurazon was the least toxic when used at 1 X and 2 X rates. Simazine and Dicamba were lethal even at ½ X. At the 2 X rate, LSD analysis showed all herbicides different from the control at P = 0.05.

The phytotoxicity symptoms to Pot marjoram were as follows. Norflurazon caused bleaching of the foliage at ½ X and 1 X. Leaves were pale with between vein chlorosis. Bentazon caused the chlorosis of tender leaf tissue at ½ X and the dead of the plant at higher rates. Simazine and Dicamba were very toxic at all rates, causing rapid plant necrosis and dead.

## Wild marjoram

A varied degree of phytotoxic symptoms among herbicides were obtained with wild marjoram. At ½ X rate, norflurazon and bentazon were not significant difference (P = 0.05) from the control (Table 3). At 1 X, norflurazon was the only herbicide no significant difference from the control. At 2 X, LSD value found significance difference between all herbicides and the control, most herbicides caused the burning and dead of the plants. MSD value (0.914) over the control mean value allows the use of norflurazon and bentazon in further research (Figure 4). At ½ X, both herbicides were less than 50% phytotoxic. While at 1 X only norflurazon did not exceed the 50% damage to the foliage.

Since the level of tolerance of wild marjoram to norflurazon appears to be high, only a yellowing of the tips was observed at ½ X and 1 X. Bentazon stunted the plants, and malformation of the tips was observed at ½ X. Simazine was very toxic to wild marjoram, causing complete necrosis at all rates. Also, dicamba caused necrosis at all rates.
## Lavender

This oil producing herb was relatively tolerant to the herbicides under evaluation. At 1/2 X and 1 X, norflurazon phytotoxicity was not significantly different from the control (P = 0.05) (Table 5). At both rates, norflurazon did not caused phytotoxicity symptoms in 20 % of the foliage. The MSD value (0.914) over the control mean (1.08), allows the selection of norflurazon for further testing (Figure 5). At 2 X all herbicides caused very phytotoxic effects, the killing of all plants in a set was common.

Norflurazon was the least toxic of the herbicides under study. At 1/2 X not phytotoxic symptom was apparent, but at 1 X some chlorosis could be seen. Bentazon caused burning of the foliage. Dicamba caused yellowing of the tips at low rate and dead of plants at 2 X. Simazine was very toxic at all rates causing rapid necrosis and dead of the plants.

## Winter savory

Winter savory was a difficult plant to grow under the conditions of the experiment. Before spray the plants were not completely healthy which produce a high control mean (3.08). However, a trend existed in the data. At 1/2 X norflurazon and bentazon were not significant different from the control. Also, at 1 X bentazon was not significance different from the control (Table 3). However, the bad conditions of the control plants gave a high MSD value (4.02) which allows the selection for further research of norflurazon, bentazon and dicamba at 1/2 X and norflurazon and bentazon at 1 X (Figure 6). Bentazon at 1/2 X did not caused phytotoxicity symptoms in more than 50 % of the foliage. At 2 X all herbicides killed the plants.
<table><caption>Table 3. Least significant difference (LSD) comparison between herbicide means at three rates and LSD between herbicide means and their control.</caption><thead><tr><th rowspan="2">Herbicide</th><th colspan="3">Rate</th></tr><tr><th>½ X</th><th>1 X</th><th>2 X</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="4"><strong>Sage</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>2.25 a b</td><td>3.50 a</td><td>4.00 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>3.75 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>1.75 b</td><td>4.00 a</td><td>4.75 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>2.00 b</td><td>4.25 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>1.00 b</td><td>1.50 b</td><td>1.25 b</td></tr><tr><td colspan="4"><strong>Pot marjoram</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>2.75 b</td><td>3.50 b</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>2.50 b</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>1.00 c</td><td>1.25 c</td><td>2.75 b</td></tr><tr><td colspan="4"><strong>Wild marjoram</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>1.25 b</td><td>2.00 b</td><td>4.50 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>2.00 b</td><td>4.25 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>4.25 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>1.00 b</td><td>1.50 b</td><td>1.50 b</td></tr><tr><td colspan="4"><strong>Lavender</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>1.25 b</td><td>1.75 c</td><td>4.75 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>4.50 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>2.50 b</td><td>3.75 b</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>2.25 b</td><td>3.75 b</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>1.00 b</td><td>1.25 c</td><td>1.00 b</td></tr><tr><td colspan="4"><strong>Winter savory</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>3.25 b</td><td>4.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>3.00 b</td><td>3.75 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>3.75 b</td><td>4.50 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>2.25 b</td><td>2.75 a</td><td>4.25 a</td></tr><tr><td colspan="4"><strong>Rosemary</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>1.00 b</td><td>1.50 b</td><td>3.50 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>3.50 a</td><td>4.75 a</td><td>4.25 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>1.25 b</td><td>1.75 b</td><td>4.00 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>1.25 b</td><td>2.25 b</td><td>3.75 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>1.25 b</td><td>1.25 b</td><td>1.25 b</td></tr><tr><td colspan="4"><strong>Sweet marjoram</strong></td></tr><tr><td>Norflurazon</td><td>1.75 b</td><td>3.00 b</td><td>4.25 a</td></tr><tr><td>Simazine</td><td>4.50 a</td><td>5.00 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Bentazon</td><td>3.50 a</td><td>4.25 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Dicamba</td><td>3.25 a</td><td>4.50 a</td><td>5.00 a</td></tr><tr><td>Control</td><td>2.00 b</td><td>3.00 b</td><td>2.25 b</td></tr></tbody></table>

note: mean followed by the same letter (a, b, c, d) are nonsignificant difference between them at P=0.05.
<figure><img src="image_27.png" /><figcaption>Figure 2. Response of Sage to increasing rates of four selected herbicides</figcaption></figure>

<figure><img src="image_28.png" /><figcaption>Figure 3. Response of Pot marjoram to increasing rates of four selected herbicides</figcaption></figure>
<figure><img src="image_29.png" /><figcaption>Figure 4. response of Wild marjoram to increasing rates of four selected herbicides</figcaption></figure>

<figure><img src="image_30.png" /><figcaption>Figure 5. response of lavender to increasing rates of four selected herbicides</figcaption></figure>
The phytotoxicity symptoms on winter savory can be described as follows. Norflurazon at ½ X caused the yellowing and some necrosis of the leaf tips across plant canopy. Simazine caused the complete necrosis and death of the foliage at all rates. Bentazon at ½ X did not demonstrate phytotoxicity symptoms, but at 1 X some bronzing was observed. Dicamba caused bleached, virus-like malformations of the tips.

## Rosemary

Rosemary was the spice most tolerance to increased rates of herbicides. At ½ X and 1 X rates norflurazon, bentazon and dicamba caused phytotoxicity damage not significant difference from the control (Table 3). The only exception was simazine which at all rates caused phytotoxicity symptoms greater than 50 %. The MSD value (0.914) over the control means (1.25) allows the use of norflurazon, bentazon and dicamba at ½ X in further research. Norflurazon and bentazon can be used at the 1 X rate (Figure 7).

Minor phytotoxicity symptoms in Rosemary were the following. Norflurazon at 2 X caused chlorosis of the foliage, but plants recovered 1 month after spraying. Simazine, the most toxic of the herbicides, caused severe burning and necrosis to more than 80 % of the foliage at all rates. Bentazon and Dicamba caused necrosis and dead of the plants at 2 X.

## Sweet marjoram

Sweet marjoram was a difficult plant to grow. At herbicide application the plants were not completely healthy giving a control mean of 2.42. At ½ X and 1 X norflurazon was not significance difference from the control. At 2 X all herbicides were significance difference from the control (Table 3). The MSD (0.914) value over the control means (2.42) permits the use of norflurazon and dicamba at ½ X in further research. Also, norflurazon can be used at the 1 X rate (Figure 8).
<figure><img src="image_31.png" /><figcaption>Figure 6. response of Winter savory to increasing rates of four selected herbicides</figcaption></figure>

<figure><img src="image_32.png" /><figcaption>Figure 7. response of Rosemary to increasing rates of four selected herbicides</figcaption></figure>
<figure><img src="image_33.png" /></figure>

The phytotoxic symptoms observed on Sweet marjoram were as follows: norflurazon at 1 X and 2 X caused loss of foliage of the plants, bentazon and dicamba at all rates caused yellowing and defoliation in various degrees, simazine was very toxic causing the dead of plants at all rates.

## CONCLUSIONS

The screened herbicides, produce different phytotoxicity levels on the seven spices under study. Phytotoxicity increased with rate increase. On the average, over all spices, norflurazon was the least toxic herbicide. It was followed by bentazon and dicamba. The worst phytotoxicity rating was obtained with simazine which caused necrosis and senescence of sprayed plants at 1 X and 2 X rates.

The MSD value allowed the further testing of the herbicides which did not caused phytotoxicity damage which differentiate from the control plants. On Sage, a relative tolerance spice, bentazon and dicamba at ½ X should be tested under field conditions. They caused some leave senescence, but the plants recovered. On Pot marjoram, the most sensitive of all spices, bentazon at ½ X gave promising results. However, chlorosis of tender leaves was observed. On Wild
marjoram, a relatively tolerance spice, norflurazon and bentazon at ½ X gave promising results for further research. Although, some yellowing of the tips and stunting of plants were produced by both herbicides, respectively.

On Lavender, a tolerance spice, norflurazon at 1 X should be further researched. No phytotoxicity was observed at this rate. On Winter savory, a spice difficult to growth, norflurazon and bentazon at ½ X are promising herbicides. Some yellowing of the tips were caused by norflurazon. No phytotoxicity was produced by bentazon at this rate. On Rosemary, the most tolerant spice, norflurazon, bentazon and dicamba at ½ X and norflurazon and bentazon at 1 X can be tested under field conditions. No phytotoxicity symptoms were observed at both rates. On Sweet marjoram, a spice difficult to growth under the experimental conditions, norflurazon and dicamba at ½ X can be further tested under field conditions. Both herbicides caused yellowing and the lost of the foliage at various degrees. The phytotoxicity symptoms evaluated for each one of the spices agreed with consulted literature.

The use of replicated herbicide screening tests is of great utility in obtaining preliminary herbicide data. Herbicide phytotoxicity on new crops and cultivars can be obtained for several herbicides and rates with accuracy. The most promising products can be selected before extensive and time consuming field experiments are needed. Weed control, residue analysis and tolerance levels should be determined before these products can be labeled on the tested spices.

## REFERENCES

* Aldrich, R.J. 1951. A field technique for screening new herbicides. Proc. Northeast Weed Contr. Conf. 5:29-30.

* Appleby, A.P., and B.D. Brewster. 1980. Weed control in mint. Proc. Annu. Meet. Oreg. Essent. Oil Grow. League 3:50-52.