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MEMORIA
DE LA
28ª REUNION ANUAL

Agosto 9-15, 1992

Santo Domingo, República Dominicana

Publicado por:

Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios y
Fundación de Desarrollo Agropecuario

Santo Domingo, República Dominicana

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FUNDACION
DE DESARROLLO
AGROPECUARIO, INC.
# Una nueva plaga en Republica dominicana, Flankliniella occidentalis (Pergande, 1985) (Thysanoptera, Thripidae)

J.P. Bournier, M. Reyes, A. Abud Antun

► To cite this version:

J.P. Bournier, M. Reyes, A. Abud Antun. Una nueva plaga en Republica dominicana, Flankliniella occidentalis (Pergande, 1985) (Thysanoptera, Thripidae). 28. Annual Meeting CFCS, Aug 1992, Santo Domingo, República Dominicana. hal-02846981

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UNA NUEVA PLAGA EN REPUBLICA

DOMINICANA, *Flankliniella occidentalis* (Pergande, 1985) (*Thysanoptera, Thripidae*)

J. P. Bournier*; J. Etienne**; M. Reyes<fnref n="1" />; A. Abub Antun<fnref n="2" />

RESUMEN

Procedente del oeste de Norte América, es introducido en Europa en 1985 y desde esta fecha en numerosos otros países del mundo, *Flankliniella occidentalis* (Pergande) fue encontrado por primera vez en República Dominicana, en abril de 1992. Polífago y vector del TSWV (Tomato Spotted Wilt Virus) en numerosas hortalizas y cultivos ornamentales. Este thrips es actualmente difícil de controlar tanto en cultivo de campo como en cultivo de invernadero.

INTRODUCCION

Existen alrededor de 5,000 especies de thrips que atacan a las plantas cultivadas, pero algunas especies causan daños en plantas de flores y hortícolas tales como: *Thrips tabaci*, *T. palmi*, *Heliothrips haemo-rrhoidalis* y *Frankliniella occidentalis*.

La multiplicidad y la rapidez de intercambios son el origen de la dispersión de numerosos fitófagos en el mundo entero. En el caso de los *Thysanoptera*, hay que recordar el caso del thrips del gladiolo (*Thrips simplex Morison*) originario de Australia, que a partir de 1935 ha invadido el conjunto de países con clima templado gracias al comercio de sus bulbos.

<footnote n="1">¹* CIRAD-CA, B.P. 5035, 34032. Montpellier Cedex 1, France.</footnote>

<footnote>** INRA-Centre Antilles-Guyane. Station de Zoologie et de Lutte Biologique, B.P. 1232, 97185 Pinte -a Pitre. Cedex Guadeloupe.</footnote>

<footnote>*** UASD Facultad de Ciencias Agronómicas y Veterinarias, Laboratorio de Lucha Biológica, Engombe, Santo Domingo, República Dominicana.</footnote>

<footnote n="1">1) En la actualidad, Coordinador Programa FST, CIBA, GEIBY</footnote>

<footnote n="2">2) Actualmente, Entomólogo del Centro de Servicios Agropecuarios de la JAD.</footnote>
# CONTENIDO

## Inauguración

## PAGINA

Palabras de Bienvenida del Dr. José Miguel Bonetti, Presidente de la Fundación de Desarrollo Agropecuario, Inc. (FDA) y Presidente de la 28ª Reunión Anual de la Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios (CFCS). 1

Palabras de Apertura por el Dr. Darsham Padda, Presidente de la Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios (CFCS). 6

Discurso Inaugural por el Ing. Agrón. Nicolás Concepción García, Secretario de Estado de Agricultura de la República Dominicana. 8

# SESIONES TECNICAS

## PROTECCION VEGETAL.

Buscando enfermar a *Thrips palmi* Karny (Thysanoptera: Thipidae) en Puerto Rico. G.A. Mejía Mesa. 10

Toxoptera citricidus (*Hemiptera: Aphididae*) en República Dominicana: Una Amenaza para las Plantaciones de Cítricos, J. Etienne, A. Abud-Antun, M. Reyes, F. Díaz. 22

The Bemisia tabaci Problem in Martinique, P. Ryckewaert. 31

Integrated Pest Management: A case study of HASP. C. Osbourne. 40

Patogenicidad y Fisiología de *Xanthomonas campestris* pv. *dieffencachiae* y el Efecto de Fertilizantes en el Desarrollo del Tizón Bacteriano del Anturio. N. Pérez, M. Zapata, y J. Beaver. 55
Más recientemente, el caso de *Thrips palmi Karny* es otro ejemplar: conocido desde 1925 en Indonesia, ha sido señalado a partir de 1964 de Pakistan a Bangladesh. En 1973 en Tailandia, en 1978 en Japón y Filipinas; a partir de 1982 su extensión geográfica es más importante; China, Nueva Caledonia, Hawaii, La Reunión; después en 1985, Martinica y Guadalupe. Después ha sido encontrado en 1988 en Puerto Rico y República Dominicana para noviembre de ese mismo año señalado en plantaciones de berenjenas (Abud et al. 1988).

Recientemente se ha notado su presencia en La Florida, U.S.A.

*F. occidentalis* (El thrips de flores del oeste o thrips de la alfalfa), conocido primeramente en el oeste americano: México, California, Colombia Británica, Alaska. En 1980, es señalado en Carolina del Sur sobre el algodón y, en 1983, Beshear nota su presencia en todos los Estados Unidos. En otoño de 1985, A. Lacas (in Lit) lo señala en España, Strauss y Shickedanz (1986). Señala la presencia de *F. occidentalis* durante el verano de 1985, en Alemania Occidental sobre violeta africana ó Saint paulia cultivada bajo invernadero. En la misma época, Zur Strassen (1986) hace una publicación sobre el diagnóstico de *F. occidentalis* y nota su presencia bajo invernadero, durante el año 1985 en el sur de Escandinavia. En septiembre de 1986, es determinado por primera vez en Francia (Bournier et Bournier, 1987) sobre plantas jóvenes de crisantemos provenientes de Holanda. Después podemos decir que ha invadido el conjunto de países de Europa, así como numerosos países de Africa del Sur (1987-1988), Kenia, Nueva Zelandia, la isla de La Reunión, la Colombia. En las Antillas, ha sido señalado por primera vez en La Martinica, sobre el crisantemo al final de 1989 y al comienzo de 1992 en la Guadalupe sobre fresa.

En la República Dominicana, es en abril de 1992 que ha sido colectada por J. Etienne sobre crisantemo bajo invernadero en el Valle de Constanza a una altitud de 1,200 mts.

*F. occidentalis* es un Thrysanoptera terebrantia de la familia de los thripidae. El presenta, sin embargo, variaciones intraespecífica que hacen en ciertos casos difícil su determinación. Es por esto, que en
El Arbol de NIM - Historia y Perpectivas de una Planta de Uso Múltiple. A. Brechelt. 70

Uso del NIM en Haití, A. Azael. 90

El Uso del NIM y su Aceptación por Pequeños Agricultores de Vegetales Zonas Bajas de República Dominicana. J. A. Adonys De Los Santos. 92

Liberación Experimental de *Trichogramma* spp. en Moca, República Dominicana, A. Peña, R. Guzmán. 95

Posibilidades contra *Diaprepes abbreviatus* L. (Coleoptera: curculionidae) en la República Dominicana, J. Etienne, M. Reyes, M. Castillo, F. Díaz, A. Abud-Antun. 104

Una Nueva Plaga en República Dominicana: *Frankiniella occidentalis* (PERGANDE, 1895) (Thysanoptera, Thripidae), J.P. Bournier, J. Etienne, M. Reyes, A. Abud-Antun. 113

Enemigos Naturales del Falso Medidor de la Soya Pseudoplusia includens (Walker) (Lepidóptera: Nocturidae) en Puerto Rico, F. Gallardo, E. Vargas. 120

Integrated Pest Management in Coffee. The Jamaican Experience. A.B. Williams. 124

Efecto de *Thanatephorus cucumeris* (Frank) Donk en la Germinación y Desarrollo de Plántulas de Cuatro Variedades de (Phaseolus vulgaris L.), G. Godoy, J. Arias, Y. Segura, F. Saladín y J.R. Steadman. 130

The Weeds of Tomato Field in Guadaloupe as Hosts of Phytophagous Nematodes and *Pseudomonas solanacearum*. F. Caudron, J. Fournet y A. Kermarec. 135

Efectos del Calcio sobre la Severidad del Tizón Temprano (*Alternaria solani*) en Tomate (Lycopersicun esculentum), R. M. Méndez Bautista, M. Sc. 149
el pasado, él ha sido descrito bajo diez nombres diferentes, actualmente siendo todos sinónimos.

## II. DIAGNOSIS (Figura I)

Nosotros daremos aquí solamente los caracteres típicos de la especie, pero es necesario hacer montaje entre portaobjetos y cubreobjetos para las observaciones microscópicas.

La hembra presenta una colocación que varía del marrón oscuro al amarillo muy claro; la forma estival es blanca amarilla pálida pero con una zona oscura más o menos importante sobre los tergitos abdominales; la forma invernal es completamente oscura; entre estos dos tipos de coloración se puede observar toda una serie de coloración intermediarias, en particular una con el torax anaranjado y el abdomen completamente oscuro; las antenas (Fig.b) tienen una coloración más o menos constante con una coloración oscura en las formas oscuras. Los segmentos I, II, VI y VIII de color oscuro, estando el I un poco más claro que el II; los segmentos III al V están en gran parte oscurecidos, pero presentando la parte basal más clara.

Las alas están ligeramente ahumadas. La cabeza presenta tres pares de pelos ocelares, los dos pares antiocelares poco desarrollados; se observa un tercer par de pelos interocelares bien desarrollado (61 um de longitud) insertado a media distancia entre el ocelo anterior y el ocelo posterior (Fig.a), cuatro pelos están situados sobre el margen posterior de los ojos, los que están hacia afuera son más largos (48 a 51 um).

El pronotum, como en todas las especies del género *Frankliniella* presenta 4 pares de pelos bien desarrollados (Fig.a): uno sobre el borde anterior (63 um), uno en el ángulo anterior (75 um), otro sobre el ángulo posterior externo (76 um). En fin, el par de pelos subcentrales del borde posterior mide 46 um de largo.

Las nervaduras del ala anterior presenta la quetotaxia siguiente: costal con 25 pelos, principal con 19 pelos regularmente espaciados desde la base hasta el apex, secundaria con 16 pelos; la escama vanal presenta 5 pelos, más uno central (Fig.d).
La Mustia Hilachosa: Una Enfermedad Severa en *Phaseolus vulgaris* L. en República Dominicana, G. Godoy, F. Saladín, J. Nin, J.R. Steadman. 162

Evaluación de *Xanthomonas campestris* pv. phaseoli y otras bacterias epifíticas en botones florales, vainas y granos de *Phaseolus vulgaris*, R. Angeles Ramos, A. 166

Alternativa para el Manejo Integrado en el Control del Virus del Mosaico Dorado de Frijol en República Dominicana, F. Saladín García, J.C. Nin, A. Sánchez. 175

Manejo Integrado de Arroz Rojo y otras malezas en el cultivo del arroz (*Oriza sativa* L.) en la República Dominicana, J. Coulombe, M. Castillo, J. D. Armenta y M. Rivas. 190

A Multispecies Herbicide Screening Test for the Phytotoxicity Evaluation of Four Herbicides on Seven Spices, J.R. Espaillat, E.C. French, D.L. Colvin, S. H. West. 203

## GERMOPLASMA

Production of West Indian Hot Pepper Seed, B. Cooper y M. Gordon. 222

Tomato Germplasm Evaluation of Growth and Productivity in the U.S., Virgin Island, C.D. Collingwood, Stafford M.A., Crowman, M.C. Palada. 232

Caracterización Agronómica de Algunos Tipos Comerciales de Guandul (*Cajanus cajan*) en República Dominicana, F. Saladín García, J.C. Nin, M. Herrera, F. Henríquez. 239

The Influence of Varied Stem Maturity on Rooting of Caribbean Oregano (*Lippia micromera* S.), J.R. Espaillat, E. C. French, S. H. West. 255

Evaluación Híbridos y Variedades de Maíz (*Zea mays* L.) del Programa UNPHU de Mejoramiento, J. Ricard Ortíz, P. Comalat Rodes. 264
Los tergitos abdominales IV al VIII presentan lateralmente un peine oblicuo, aquel del tergito VIII en posición ante-espiracular; el borde posterior de este mismo tergito presenta un peine donde los dientes están esparcidos en la base (Fig.c). La zona oscura del tergito abdominal presentada en la Fig. e, corresponde a la forma intermedia; esta mancha oscura puede estar más reducida, hasta casi desaparecer, o bien estar en toda la superficie del tergito; en el caso de forma oscura, el tergito es totalmente oscuro.

La presencia de esta mancha sobre los tergitos abdominales, así como el pelo post-ocular bien desarrollado deben permitir de hacer en la mayoría de los casos un diagnóstico correcto. No se debe olvidar, sin embargo, que más de 12 especies del género *Frankliniella* han sido indicadas en el Caribe.

El macho es netamente más pequeño que la hembra; es de coloración clara y difícil de distinguir de otros pertenecientes a otras especies del género *Frankliniella*.

### III. NOTA SOBRE LA BIOLOGIA DE *F. occidentalis*

La hembra inserta su huevo, de forma reniforme, dentro del parénquima de las hojas, de las flores y de frutos por medio de su oviscapto. El ciclo de *F. occidentalis* es de 16 a 18 días a 26 grado °C. La incubación de los huevos es de 4 días, la duración de la vida larval es de 3 días por cada estadio I y II. Al final del estado larval se refugia o bien se coloca en entrantes y salientes del vegetal o casi siempre en el suelo a algunos centímetros de la superficie.

El estado preninfal (prepupa) dura de 1 a 2 días, y el estado ninfal (pupa) dura de 2 a 3 días. La postura comienza a partir del tercer día después de la aparición de los adultos (a 15 grado °C., el ciclo puede durar de 3 a 4 veces más). La duración de la vida media de una hembra es de 40 días durante la cual pone alrededor de un huevo por día.

El conocimiento de los principales elementos de la biología de *F. occidentalis* es indispensable para orientar útilmente las técnicas a
The Use of Full-Sib Recurrent Selection in the Improvement of an Open Pollinated Corn Population for Sustainable Agricultural Systems, J. R. Espaillat, R. N. Gallaher, S. H. West. 276

Investigations on the Effects of Reduced intra-row, Fertilizer Rates and Cultivation Systems on Eddoes (*Colocasia an-tiquorum* L.) Production. A. Hosein. 292

Conditioned Yield Response of Corn Hybrids to Tillage and the Insecticides Used in Breeding Programs. J.R. Espaillat and R. N. Gallaher. 302

Horticultural Problems in the Tropics: Breeding for Less Favoured Environments. Olympia Gómez. 310

Comportamiento de Híbridos de Sorgo Granífero y sus Líneas parentales, F. Navarro, R. Celado, J.R. Ortiz, R. Pierre. 315

Habilidad Combinatoria de Ocho Líneas Elites Dominicanas de Maíz (*Zea mays* L.), J. Ricard Ortiz, P. Comalat Rodes. 330

Caracterización de Cultivares de Maíz Dominicano, F. Navarro. 344

Agronomic Comparison of Three Pennisetum Interspecific Hybrids and Forage Sorghum Millo Blanco in Puerto Rico, A. Sotomayor Ríos, S. Torres Cardona, C. Torres. 363

The Control of Casha (*Acacia spp*) on Native Pasture, M. B. Adjei. 374

Response of Hair Sheep Fed Silage Produced from Various Cropping Systems, C. Wildeus, M. B. Adjei, S. Wildeus. 384
poner en obra en mira a una lucha lo más eficaz posible contra esta
nueva plaga en República Dominicana.

#### IV. DAÑOS

F. occidentalis considerado anteriormente como una plaga secundaria, es un insecto picador, lamedor, que vacía las células. El adulto, así como las larvas del estado I y II pican los tejidos vegetales, inyectando su saliva que produce lisis del contenido celular. Este ataque produce deformaciones en las hojas y deformaciones y decoración en las flores; además se alimenta de néctar y polen en algunas plantas. Este líquido celular es aspirado por el insecto por medio de su bomba faringinia. El insecto, puede así, adquirir y después inocular virus, en particular, el Tomato Spotted Witt Virus (TSWV). Sakimura mostró (1961-1962) que la transmisión de este virus es llevado a cabo por los adultos a condición de que este se haya alimentado durante unos 30 minutos sobre plantas infectadas. Además de F. occidentalis, 5 especies son susceptibles a transmitir este virus. Estas son: F. schultzei, F. fusca, Thrips tabaci, Thrips setosus y Scirtothrips dorsalis.

La TSWV es una virosis conocida desde hace mucho tiempo, después de que fue puesta en evidencia en Australia para el año 1915. Después ha sido señalada en el mundo entero donde ataca los cultivos hortícolas de tomate, ají, ají picante, frijol, pepino, sandía y lechuga, los cuales son hospederas sensibles al TSWV. Muchas de las plantas florales son también sensibles a este virus como el crisantemo, la dalia y el gladiolo, todas estas plantas son frecuentemente cultivadas en República Dominicana y son por tanto, susceptibles de ser contaminadas por este virus.

#### V. CONCLUSION

Actualmente, solo la lucha química es utilizada para combatir el F. occidentalis. Diferentes principios activos son indicados para tratamiento del suelo o de las partes aéreas (Bournier, 1990). Sin embargo, la plasticidad ecológica y la gran polifagia de este insecto (más de 50 plantas hospederas son conocidas en Hawaii) han favore-
SUELO Y FERTILIDAD, FRUTAS TROPICALES,
FISIOLOGIA VECETAL

Perennial Peanut: Establishment and Adaptation on an Oxisol in Puerto Rico, E. Valencia, A. Sotomayor, S. Torres Cardona. 392

Efecto de la Aplicación de Fósforo en Suelos Acidos en Arroz Bajo Riego 400

Fertilización del Ají (*Capsicum annuum*, L.) Var. Cubanela con Niveles de N-P-K en un Suelo Mollisol, D. Ledesma, F. Inoa, A. Beale, J. Núñez. 408

Respuesta a la Aplicación de Nitrógeno y Fósforo a 2 Variedades de Maíz en 5 Localidades de Luperón, R. Pierre G., H. Barrero. 419

Efecto de la Epoca y Severidad de la Poda de la Raíz en el Crecimiento y Relación Agua/Planta del Melocotón "Belaire", R. Santos. 428

*Jessenia bataua*: A Unique Oil Palm With Potential for Commercial Cultivation, M.E.B. Joyner. 438

The Effects of Trellis and Pruning on Passion Fruit Yields, G. Robin. 455

Evaluación Preliminar de las Variedades de Mango (*Mangifera indica*), "Parvin" y "Tommy Atkims" Sobre Diferentes Patrones. I. M. Soto y A. Cedeño. 468

Response to Daylength of Non-converted and Millo Blanco, bicolor (L.) (Moench) Puerto Rico., A. Quiles Belén, S. Torres Cardona. 474

Evaluación de Sustratos para la Producción de Plántulas en Vivero, M. Betances, J. Morrobel. 487
cido su dispersión en el mundo haciendo que esta plaga sea difícil de controlar.

El "todo químico" utilizado frecuentemente contra este grupo de insectos (*F. occidentalis*, *T. tabaci*, *T. palmi*), no aporta generalmente más que una solución provisional con riesgos importantes: aparición de cepas o razas resistentes, destrucción de la fauna auxiliar (*Anthocoridae*, del género *Orius*, Phytoseiidae del género *Amblyseius*,...) presencia anormal y elevada de residuo en las producciones destinadas al consumo humano.

Importantes progresos se deben por tanto realizar antes de llegar a una lucha verdaderamente satisfactoria contra el *F. occidentalis* que es considerada en buen título como una verdadera plaga en todos los países donde está presente.

## BIBLIOGRAFIAS CITADAS

ABUD, A. et al. 1998. Un nuevo trípido, *Thrips palmi* Karney (1) en República Dominicana. UASD naturalista Postal No. 6188 del 20 de noviembre de 1988.

BESHEAR. R. J. New Recordos of Thrips in Georgia. J. Georgia Entomol. Soc. 1983, 18 (3), 342-344.

BOURNIER, A., Bournier, J. P. 1987. L'introduction en France d'un nouveau revegeur: *Frankliniella occidentalis*. Phytoma No. 388, Mai 1987; 14-17.

BOURNIER, J.P. 1990. La leitte chimique contre *Frankliniella occidentalis*. Phytoma No. 422, Novembre 1990, 35-39.

POWELL, C.C. Y R. K. LINDQUIST. 1989. Control de insectos, ácaros y enfermedades en cultivos ornamentales. The Ohio State University, Columbus. USA. May 10, 1989, 20-22.

SAKIMURA, K. 1961. Techniques for handling thrips in transmission experiments with the Tomato Spotted wilt virus. Plant Dis. Rep., 45: 766-775.
Estudio sobre los Efectos de Promalin, Acido Giberélico, Bencilaminopurina, Ancimidol, Clormequat, Alar y Acido Naftalenoacético en el Desarrollo y Crecimiento de la Fresa (*Fragaria x ananassa* Duch) Variedades "Tristar"/y "Tribute", J. M. Rivera, S. Salas. 503

Effect of Pigeonpea Hedgerows on Soil Water and Yield of Intercropped Pepper, M. C. Palada, Stafford M. A. Crossman, C. D. Collingwood. 517

## RAICES Y TUBERCULOS, TRANSFERENCIA DE TECNOLOGIA, MEDIO AMBIENTE

Yield Evaluation of Sweet Potatoes Cultivar in the U.S. Virgin Islands, M. C. Palada, Stafford M. A. Crowman, C. D. Collingwood. 533

Comparación de Cinco Marcos de Siembra de Dos Variedades de Batatas (*Ipomoea batatas*) (L.) (LAM), R. Hernández, A. Beale. 546

Parasitic Plants, J. L. Heinis. 554

La Mangosta (Hurón o Ardilla) *Herpestea auropuntatus*, Depredador de Proteínas Animales de Ciclo Corto, N. B. Fabián, A. A. Figueroa. 558

Use of Angora Goats in Vegetation Control, E. G. Rhoden, V. A. Khan, A. Woldeghebriel, C. K. Bronsi. 568

Los Efectos de las Políticas Gubernamentales en la Producción de Tabaco en la República Dominicana, P. P. Peña, G. H. Norton. 580

## RESUMENES DE POSTER

La Maisiculture, Une Opportunite De Diversification de L'Agriculture Caraibe, J. L. Fullier, D. Clavel, C. Welcker. 594
SAKIMURA, K. 1962. *Frankliniella occidentalis* (Thysanoptera, Thripidae) a vector of the Tomato Spotted With Virus, with especial reference to color forms. Ann. Entomol. Soc. Am. 55: 387-389.
Theresa: Un Outil D'Evaluation des Stocks Hydriques en Sols Argileux Gonflants - Application a la Maitrise de L'Eau au Niveau de la Parcelle, H. Ozier-Lafontaine. 594

Overview of Soil Organic Matter Research in Puerto Rico, M.A. Lugo-López. 595

Influence of Nitrogen Sources on Mineral Uptake of Vegetable Amaranth, B. McKelly, E. G. Rhoden, D. G. Mortley, Dr. E. G. Rhoden. 596

Bionomics of *Mirax insularis* the Coffee Leafminer Parasitoid: An Overlook of a Research Project in Puerto Rico. R. Inglés, F. Gallardo Covas. 597

Desarrollo de Métodos de Inoculación para Inducir Mustia Hilachosa en Frijol (*Phaseolus vulgaris*). T. Polanco, R. Rodríguez, J. Beaver, R. Echávez. 598

Agricultural and Environmental Geographic Information System. F. H. Beinroth, L. R. Pérez Alegría, J. W. Jones, J. P. Calixte. 598

Introduciendo la Espaldera Vertical de una Cuerda (sencilla) en la Chinola (*Passiflora edulis* F. D.)., M. Martínez, C. García. 600

Virgin Islands Pesticide Applicator Training Program. 601

Experience in Barbados with Inter-Cropping and Rotational-Cropping with Special Emphasis on Mechanisation. 603

Políticas y Lineamientos de Autores de Trabajos para la elaboración y publicación de las Memorias. 604

Junta Directiva y Oficiales de la Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios (CFCS). 606

Miembros Sustentantes 606
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# PALABRAS DE BIENVENIDA

Dr. José Miguel Bonetti
Presidente de la Fundación de Desarrollo Agropecuario, Inc. y
Presidente de la CFCS 1991-1992

Señoras y Señores:

Nos sentimos honrados con la presencia de tantas distinguidas personalidades del mundo científico que asisten a este evento. En nombre de la Fundación de Desarrollo Agropecuario y del Comité Organizador de la Vigésima Octava Reunión, les doy la más cálida bienvenida.

Agradezco la oportunidad que nos han brindado de celebrar por tercera vez en el país la reunión anual de esta Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios. A diferencia de la última reunión celebrada en el país en agosto de 1979, cuando el tema de preocupación en nuestros países era el costo de la factura petrolera, hoy la preocupación común tiene una significación mayor, pues se trata de la preservación del medio ambiente, de los recursos naturales y la búsqueda de medios y técnicas que hagan posible la producción agropecuaria en forma sostenible y eficiente.

El aumento de la productividad experimentado en la última mitad de este siglo ha sido posible principalmente por el uso creciente de fertilizantes inorgánicos y pesticidas sintéticos. El uso inadecuado de esta tecnología ha ocasionado severos problemas ambientales y daños a la salud, además de resistencia de plagas y contaminación por residuos de pesticidas. A través del Manejo Integrado de Plagas se trata de corregir estos trastornos, porque se hace un uso racional de químicos, variedades resistentes, control biológico y prácticas culturales mejoradas. Se espera que esto redunda en una reducción de costos, mejore la calidad de los productos, reduzca el consumo de insumos energéticos y de mano de obra y finalmente aumente y estabilice los rendimientos en un ambiente más sano.

Como empresario privado en la agropecuaria conozco muy bien los daños que ocasionan las plagas y las enfermedades a los cultivos. La última experiencia con el cultivo del algodón me obliga a afirmar que es utópico,
incosteable y en algunos casos hasta criminal, utilizar un sólo método para el control de plagas y cultivos específicos.

En la Fundación de Desarrollo Agropecuario reconocemos el rol capital de la investigación en el mejoramiento de la calidad de la vida de los habitantes de nuestros pueblos. Por eso, el desarrollo y la transferencia de tecnologías es nuestra actividad más importante, representando un esfuerzo sincero para ayudar a los centros de investigación a desarrollar sus propios programas de investigación. El Manejo Integrado de Plagas es una de nuestras áreas de mayor prioridad en la Fundación y es el área que ha recibido los mayores recursos en numerosos proyectos de investigación, además del Programa Nacional de Manejo Integrado de Plagas que se ejecuta conjuntamente con la Secretaría de Estado de Agricultura y la Junta Agroempresarial Dominicana.

Para la fecha de la reunión de 1979 presenciábamos una caída de los ingresos de las exportaciones agrícolas. Trece años después la situación se mantiene. Los ingresos por concepto de las exportaciones de azúcar, café, cacao, tabaco y de otros rubros tradicionales de exportación de la región, se mantienen en sus niveles más bajos, aunque se ha notado cierto dina-mismo en las exportaciones agrícolas no tradicionales.

Los profundos cambios económicos y políticos en el ámbito internacional de los últimos años, aunque han afectado de manera desigual a nuestros países, indican que cada vez será más cierto que para vender hay que competir y que para competir hay que ser eficiente, aún cuando esa producción esté destinada al mercado doméstico de nuestros respectivos países. Para el caso de la agropecuaria esta expresión resulta aún más entendible por dos simples razones: primero, los países caribeños somos mayormente productores agropecuarios; y segundo, en la agricultura tenemos un vasto campo para mejoras tecnológicas.

El concepto económico de la ventaja comparativa ya no es determinado principalmente por los recursos naturales de que dispone un país, sino por el nivel tecnológico empleado en la producción y por las políticas económi-cas y sociales de los gobiernos. Es la tecnología y los conocimientos, sin embargo, lo que perdurará en el largo plazo, porque las políticas de los gobiernos tienden a ser cambiantes y muchas veces fugaces. Es la tec-nología y los conocimientos lo que permitirá ofrecer alimentación perma-nente a precios razonables a nuestra creciente población.
A pesar de diferencias notables en el lenguaje y en las culturas, sin lugar a dudas, los pueblos del Caribe tendremos que compartir el futuro en muchas áreas, de las cuales la geográfica será por necesidad y la comercial y la tecnológica por razones de costos y de clima. No podremos evitar integrarnos de manera real y efectiva, sin excepciones ni privilegios, sino con justicia y disfrute pleno de nuestras prerrogativas nacionales, unidos todos, formando un solo bloque en búsqueda de un destino común. Somos nosotros, los que compartimos las tórridas aguas del Mar Caribe, quienes mejor conocemos nuestras necesidades y nuestros anhelos comunes y dependerá de nosotros mismos la búsqueda de vías expeditas y más idóneas para lograrlo.

Sin embargo, se requerirán reformas importantes en cada uno de nuestros países, reformas que a veces serán traumáticas para algunos. La República Dominicana ha iniciado ya algunas de esas reformas, pero faltan otras igualmente importantes que deberán ser implementadas en su debido momento.

Permitanme señalar, entre las reformas que faltan, la agrícola. Aunque las reformas iniciadas tenderán a corregir algunas de las distorsiones macroeconómicas que afectaban negativamente a la agricultura como sector, no hay dudas de que dentro del sector quedan pendientes aspectos importantes que deberán ser objeto de mejoras y que implicará una restructuración concienzuda en las áreas que brevemente expongo a continuación.

El aspecto institucional del sector no podrá ser ignorado entre las reformas que hace tiempo requiere el sector agropecuario y forestal. Los momentos actuales exigen de una nueva estructura institucional más ágil, más confiable, más conocedora y con mayor poder de decisión. Dentro de este aspecto institucional habrá que iniciar un diálogo sincero, que nos lleve a un consenso en cuanto al papel que deberá jugar la generación y la transferencia de tecnologías en la agropecuaria y la definición franca y realista de las responsabilidades del sector privado y del público en la solución de nuestras principales limitaciones tecnológicas. Los servicios a la producción, principalmente el crédito, semillas, mecanización y comercialización, no ayudarán mucho a la producción si no son objeto de reformas adecuadas, donde prime la eficiencia y la competencia leal entre las partes.

Por último, habrá que tomar muy en cuenta el rol de los incentivos en todo el proceso de reforma, principalmente en aquellos casos donde debe primar el bienestar colectivo sobre el particular. Habrá que determinar por ejemplo,
cómo se incentivará al agricultor de las laderas para que utilice prácticas agrícolas que no degraden el suelo, evitando así la formación de sedimentos en el fondo de las presas. Pero más importante aún será la forma en que el sector en su conjunto será incentivado.

Es un principio económico establecido que en una economía abierta los capitales fluyen de la actividad menos rentable a la más rentable. Debido a que los demás sectores, como el comercio importador, el turismo, etc., son mucho más rentables que el agropecuario, es fácil de entender por qué el sector agropecuario ha quedado huérfano, principalmente después de iniciado el proceso de reforma.

Yo no sé cual será la situación en los demás países del Caribe, pero en la República Dominicana, con una tasa de interés de 30% anual, no es posible lograr rentabilidad en cultivo alguno, y menos aquellos en que requieren cuatro o cinco años para empezar a producir.

Las reformas tienen que tomar en cuenta esa realidad o los sectores mencionados languidecerán por falta de recursos financieros. Será muy difícil que los dominicanos veamos desarrollar nuevamente proyectos como aquellos de palma aceitera, piñas para exportación, cítricos, flores, por sólo mencionar unos cuantos, si no se incentivan apropiadamente esos tipos de proyectos.

Los países que propugnan por una apertura total del comercio son los primeros que protegen a sus productores agropecuarios y a los servicios que le sirven de soporte. El apoyo de los países desarrollados a la agropecuaria ha hecho que, en tono jocoso, se utilice como criterio de diferenciación entre un país desarrollado y otro subdesarrollado. Por eso decíamos al principio que las ventajas comparativas hoy tienen un significado diferente, aunque muchos llegan hasta la falacia, al pensar que el tener solamente mano de obra barata nos coloca en ventaja con otros países con esquemas de incentivos a sectores considerados como prioritarios.

Señores representantes de la comunidad caribeña e invitados de otras regiones, el sector agropecuario y forestal no podrá escapar al proceso de cambios que experimenta el mundo actual, tanto a nivel regional como dentro de cada uno de los países que conforman este planeta. La resistencia a reformar lo que por décadas se debió hacer paulatinamente, sólo hará más penoso y costoso el proceso. Pero al mismo tiempo, debemos proceder con
muchas gracias, definiendo claramente los sectores que queremos realmente impulsar y los niveles de incentivos requeridos.

Bienvenidos una vez más a esta tierra generosa y hospitalaria. Espero que su estadía sea placentera y que esta reunión logre llenar las expectativas iniciadas el año pasado en la hermana República de Dominica.

Muchas gracias.
OPENING REMARKS

Delivered by Darshan S. Padda
Chairman of the Board, CFCS
August, 1992

Good morning, distinguished-members of the head table, members of the Board of Directors, CFCS members, ladies and gentlemen! On behalf of the Board of Directors of the Caribbean Food Crops Society, it is my pleasure to welcome you to the 28th annual meeting of the Society. Let's hope it is both personally and professionally rewarding for all. I would like to extend my congratulations to CFCS president Jose Miguel Bonetti and the organizing committee under Dr. Altagracia Rivera de Castillo for their efforts in preparing the technical sessions and the other events they have arranged for us. The theme of this year's meeting -"Integrated pest Management in Support of Sustainable Agriculture"- illustrates the wide-ranging relationships among agriculture, the environment and the populace at large.

Before I give you an update on the status of the meeting, let me recognize Dr. Miguel Lugo-Lopez and his wife, Aurora. Thanks to their diligent efforts, the Proceedings from Dominica and Guadeloupe are available for distribution at this meeting. Dr. Brian Cooper has finally come through with the Antigua Proceedings. This brings us completely up to date. I am proud of this achievement.

I would also like to recognize Dr. Reginald Walter for his efforts toward convening a symposium entitled "Food Industry Complements to IPM." Unfortunately, he was unable to secure proper funding for this project. However, I hope that he will be able to present the symposium in the future.

Martinique has agreed to host the 1993 meeting. And in 1994, after a ten-year cycle, the annual meeting will once again be held on St. Croix in the U.S. Virgin Islands. Barbados has officially invited us in 1995.

Allow me to take a minute to review the missions and goals of the Caribbean food Crops Society for our new members, guests, and representatives of our host country.

CFCS exists as an independent organization dedicated to fostering the interests of food production in the entire Caribbean region. It brings
together scientists, scholars, researchers, extensionists, growers and other
professionals to share and further knowledge of food production, distribu-
tion and Policy. It seeks to involve members from all four main language
groups in the region--English, Spanish, French and Dutch.

Membership is open to all people and corporate bodies interested in these
objectives. Dues for individuals and corporations are $25 per year and
sustaining memberships are available for $100 per year. Members receive
copies of the quarterly newsletter and annual proceedings, and the oppor-
tunity to interact with like-minded professionals at meetings like this held
on various locations in the Caribbean. At present, there are 350 active
members on the roll, representing 24 countries. Since its first meeting in
1964, the CFCS has convened annual meetings in 15 nations in the Carib-
bean.

We look forward to a very successful meeting here in the Dominican
Republic, Thank you!
# DISCURSO INAUGURAL

Ing. Agrón. Nicolás Concepción García
Secretario de Estado de Agricultura de la República Dominicana

Dr. José Miguel Bonetti, Presidente de la 28va. Reunión de la CFCS. Dr. Darsham Padda, Presidente de la CFCS. Demás miembros de la mesa directiva. Ing. Carlos Aquino González, nuestro candidato a presidir el IICA. Señoras y señores:

Es un gran honor para el país y el gobierno encabezado por el Honorable Señor Presidente de la República, Dr. Joaquín Balaguer, servir de anfitrión a esta 28va. Reunión Anual de la Sociedad Caribeña de Cultivos Alimenticios, la cual se extenderá hasta el día 15 del presente mes.

La producción, el procesamiento y la comercialización de los cultivos alimenticios en el área del Caribe, reclama la celebración de encuentros de este género, pues facilitan el trasiego de experiencias y el intercambio fecundo de informaciones, que permitirán la adopción de consecuentes políticas de trabajo para enfrentar con éxito los problemas regionales comunes.

Con mucho acierto, el tema escogido para este evento ha sido el Manejo Integrado de Plagas en Apoyo a una Agricultura Sostenible, la cual testimonia la singular importancia que en los últimos años, está adquiriendo el diseño de una estrategia multidisciplinaria para optimizar y regularizar la productividad agrícola.

La magnitud de los daños provocados por el *Thrips palmi*, la mosquita blanca, la roya, la chinche encaje del aguacate y otras en la zona caribeña, obliga a la realización de extraordinarios esfuerzos colectivos para mitigar y erradicar las plagas que afectan con mayor virulencia los rubros tradicionalmente cultivados. Es ya impostergable, la definición de los términos y elementos que caracterizarán la lucha mancomunada de los países del Caribe, contra los patógenos que comprometen seriamente la práctica agrícola, siendo de particular interés, la insistencia en la aplicación de eficientes medidas de previsión y el establecimiento de un adecuado y apropiado manejo.
La agricultura sostenible al reducir significativamente el uso de los pesticidas, contribuye a la preservación de la pureza ambiental y al garantizar la coexistencia y diversidad de numerosas especies vegetales de interés alimentario, favorece la conservación del equilibrio ecológico tan importante para la sobrevivencia del hombre sobre el planeta.

El programa de Manejo Integrado de Plagas en la República Dominicana, implementado por la FDA, la JAD y SEA, se está llevando a cabo en diferentes regiones del país, tratando de aportar soluciones que estén en concordancia y armonía con la fragilidad del medio ambiente.

Quiero, finalmente, felicitar a los organizadores de esta importante reunión, esperando que los productores, científicos, industriales y representantes de instituciones agrícolas de la región, discutan los problemas que mutuamente nos afectan y se formulen vías de solución que estimulen tanto la productividad como el respeto a la madre naturaleza.

Muchas gracias.
# BUSCANDO ENFERMAR A *Thrips palmi* KARNY (THYSANOPTERA: THRIPIDAE) EN PUERTO RICO

Gonzalo A. Mejía M., Fernando Gallardo C. y Rafael Inglés C. Departamento Protección de Cultivos, UPR-RUM
Mayagüez, Puerto Rico, 00680.

## RESUMEN

El trípido asiático amarillo, *Thrips palmi*, encontrado en Puerto Rico en 1987, es un insecto polífago de importancia económica mundial que adquiere resistencia a los insecticidas fácilmente. Con el propósito de encontrar una alternativa de control biológico se evaluaron en laboratorio contra esta plaga los hongos entomopatogénicos, *Beauveria bassiana*, *Metarhizium anisopliae* y *Paecilomyces* sp. Se utilizaron ninfas de Segundo estadio alimentadas en hojas de berenjena. En las pruebas de patogenicidad se encontró que los hongos *M. anisopliae* y *Paecilomyces* sp. infectaron a *T. palmi* ocasionando su muerte. Para determinar la dosis letal media (DL-50) de *Paecilomyces* sp. se aplicaron al tripido 0, 10, 50, 100, 500 y 1000 conidias por milímetro cuadrado. Se utilizó un diseño experimental completamente al azar en parcelas divididas, donde la parcela principal fue la concentración de conidias y la subparcela el tiempo de mortalidad. Excepuando al tratamiento testigo (0 conidias), todas las concentraciones fueron más del 50% de las poblaciones sin diferenciarse estadísticamente (GL= 5, F= 2.31, P= 0.05). Sin embargo, la dosis de 100 conidias fue la que mayor porcentaje de mortalidad ocasionó (70.73%) y la que más rápidamente eliminó el 50% de la población (8.09 días) (GL= 10, F= 76.99, P= 0.01**). Las mayores mortalidades ocasionadas por *Paecilomyces* sp. se presentaron entre los siete y nueve días después de aplicar las concentraciones de conidias (GL= 50, F= 3.12, P= 0.01**). Se concluye que en Puerto Rico existe un reservorio promisorio de nuevas asociaciones de enemigos naturales de *T. palmi* que se deben seguir investigando.

## INTRODUCCION

El trípido amarillo asiático, *Thrips palmi*, es un insecto polífago de importancia económica y de amplia distribución en Asia, Indonesia, Islas del Pacífico, Europa y de reciente introducción en América (Benbrook 1991; Bournier 1983, 1986; Denoyes et al. 1986, 1988; Etienne & Waetermenien 1989; Franqui et al. 1989; Guyot 1988; Hamasaki 1987; Johnson 1986;
Kawai 1986a; Pantoja et al. 1988; Strassen 1989). En 1985 se encontró en las islas de Martinica y Guadalupe en plantas de solanáceas, cucurbitáceas, liliáceas y leguminosas, desde entonces la berenjena (*Solanum melonqena* L.) para exportación se ha perjudicado considerablemente (Denoyes et al. 1986, 1988; Etienne & Waetermenien 1989; Guyot 1988). En Puerto Rico empezó a observarse en los años 1986-87 en hospederos semiejantes (Benbrook 1991; Franqui et al. 1989; Pantoja et al. 1988).

Este insecto posee un potencial reproductivo alto y los crecimientos poblacionales son "explosivos" causando daños severos y mortalidad en períodos cortos de tiempo (Benbrook 1991; Franqui et al. 1989; Hamasaki 1987; Kawai & Kitamura 1987 Kawai 1986b; Pantoja et al. 1988). Además es un transmisor potencial de enfermedades virosas (Benbrook 1991; Chen & Chan 1987; Honda et al. 1989) y tiene rápida capacidad para desarrollar resistencia a insecticidas (Anónimo 1987: Denoyes et al. 1986, 1988; Kawai & Kitamura 1987). El control químico soluciona parcialmente su problemática y crea inconvenientes de seguridad y contaminación ambiental. Sin embargo, hasta el momento no existen suficientes estrategias para su manejo. Para solucionar esto existe el consenso de desarrollar sistemas efectivos de manejo con enfoque multidisciplinario que incluyan varias estrategias de control (Benbrook 1991; Denoyes et al 1986; Kawai & Kitamura 1987). El uso de enemigos naturales como los entomopatógenos, no conllevaría alteraciones ecológicas e implicaría prácticas con principios agroecológicos sanos.

En cuanto al control biológico de *T. palmi*, la información disponible es relativamente escasa. En términos generales están los ácaros Phytoseiidae del género *Amblyseius* spp. (Hamasaki 1987; Kajita 1986), las chinches Anthocoridae del género *Orius* spp. (Johnson 1986; Kajita 1986; Kawamoto & Kawai 1988; Nagai et al. 1988a; Segarra-Carmona et al. 1990; Wei et al. 1984), Lygaeidae (*Geocoris* sp.), Miridae (*Rhinacloa* spp.), Pentatomidae (*Podisus* sp.) y Reduviidae (*Sinea* sp.) y el Chrysopidae *Chrysopa* sp. (Segarra-Carmona et al. 1990) como depredadores y un reporte reciente del hongo entomopatógeno *Neozygites* (=*Entomophthora*) *parvispora* (MacLeod & Carl) Rem. & Kell. atacando a *T. palmi* en niveles muy bajos (15%) en invernaderos hortícolas del Japón (Saito et al. 1989). Problemente algunas especies de este complejo de enemigos naturales actúen eficientemente sobre *T. palmi* y se encuentren distribuidas en Puerto Rico y/o el Caribe. Por esto se requiere hacer un reconocimiento detallado de enemigos naturales en las diferentes partes donde *T. palmi* se está distribuyendo
geográficamente para identificarlos, estudiarlos y conocer la eficiencia que ejecutan.

Respecto a los hongos que atacan insectos, la clase Hyphomycetes (Deuteromycotina) se considera la más importante por poseer la mayoría de las principales especies entomopatógenas (Lipa 1975; Madelin 1963; Rodríguez 1984; Subramanian 1983). Los géneros *Beauveria* Vuillemin, *Metarhizium* Sorokin y *Paecilomyces* Bain poseen en las especies más polífagas e importantes (Lipa 1975; Madelin 1963). Los hipomicetos como grupo son parásitos facultativos, predominan principalmente como saprófitos y los que atacan insectos son patógenos internos (Madelin 1963) que penetran principalmente a través de la cutícula de estos organismos mediante procesos mecánicos y/o enzimáticos característicos (Ferron 1981; Lipa 1975; Madelin 1963; Roberts & Yendol 1971; Weiser 1982). En la naturaleza estos hongos pueden sobrevivir bajo condiciones adversas por largos períodos de tiempo como saprófitos y/o mediante estructuras de supervivencia en el suelo y/o en los cadáveres de los insectos que atacan (Madelin 1963; Roberts & Yendol 1971). Estos hongos también son considerados candidatos para ser desarrollados como insecticidas microbianas (surges 1981).

Debido a que hasta el momento la información sobre enemigos naturales de *T. palmi* en el mundo es relativamente escasa y urge su conocimiento, los objetivos de este estudio fueron conocer la patogenicidad de los hongos entomopatógenos *Beauveria bassiana* (Balsamo) Vuillemin, *Metarhizium anisopliae* (Metschnikoff) Sorokin y *Paecilomyces* sp. en este insecto y encontrar la dosis y el tiempo letal medio de *Paecilomyces* sp. en ninfas de Segundo estadio del trípido alimentándose en hojas berenjena.

## MATERIALES Y METODOS

Las poblaciones de *Thrips palmi* se obtuvieron de hojas y flores de pimiento (capsicum annum L.) y berenjena (Solanum melongena L.)(Solanaceae) en el sur de la isla de Puerto Rico. Estas se llevaron y colocaron en follaje de plantas de berenjena sembrada en invernadero en la Estación Experimental Agrícola de la Universidad de Puerto Rico en Río Piedras. Una vez establecido allí, se trasladaron al laboratorio para agrupar 10 ninfas de Segundo estadio en pedazos de hojas de berenjena previamente desinfestados y colocados en placas "Petri" (90 mm de diámetro) como unidades experimentales del estudio.
Las pruebas de patogenicidad de hongos contra *T. palmi* se realizaron "In Vitro" en la Estación Experimental Agrícola de la Universidad de Puerto Rico en Río Piedras. Como fuentes de inóculos se utilizaron los hongos entomopatógenos *B. bassiana*, *M. anisopliae* y *Paecilomyces* sp. aislados de diferentes especies de insectos. Los criterios de selección de estos microorganismos se basaron en que tuvieran un rango amplio de hospederos, que fueran reconocidos ampliamente como reguladores eficientes de insectos y en que habitaran y/o sobrevivieran saprophyticamente en el suelo (Domsch et al. 1980). Esto par a aprovechar la condición biológica que posee *T. palmi* de empupar en el suelo.

*Beauveria bassiana* provino de Florida (USA) de una cepa que se desarrolló en el picudo negro del plátano *Cosmopolites sordidus* (Germar) (Coleoptera: Curculionidae).

*Metarhizium anisopliae* tuvo dos fuentes: una provino de Luisiana (USA) atacando al falso medidor de las hortalizas *Psedoplusia includens* (Walker) L.(Lepidoptera: Noctuidae) y la otra de uno de los invernaderos de la Estación Experimental Agrícola de la Universidad de Puerto Rico en el transcurso de este estudio, atacando naturalmente a *T. palmi* en julio de 1991.

El hongo *Paecilomyces* sp. se encontró atacando al trípido Cubano del laurel *Gynaikothrips ficorum* (Marchal) (Thysanoptera: Phlaeothripidae) en hojas del laurel de la India (*Ficus microcarpa* L.) en la ciudad de Mayagüez de Puerto Rico en junio de 1991.

Todos estos hongos se cultivaron en Agar de Saboraud Maltosa (ASM) + 2% de extracto de levadura (Y) a 25°C en una incubadora. Para las pruebas de patogenicidad se preparó y aplicó (como se indica adelante) sobre cuatro unidades experimentales una concentración de 100 conidias por milímetro cuadrado de cada hongo. Diariamente se evaluó la mortalidad, se observó la hemolinfa de trípidos muertos, se sembraron parte en el agar mencionado y se guardaron algunos cadáveres en cámaras húmedas para observar la esporulación y posterior siembra de los entomopatógenos.

Para la determinación de la dosis letal media de *Paecilomyces* sp. se prepararon seis concentraciones de conidias del hongo, 0, 10, 50, 100, 500 y 1000 conidias por milímetro cuadrado, suspendidas en agua destilada estéril al 0.01% de Triton X-100 (Rohm & Haas Co.). Para determinar el número de conidias se utilizó un hemocitómetro (Petroff-Hausser)⁹. Estas
suspenciones se asperjaron directamente con un atomizador a las unidades experimentales y éstas se mantuvieron a 25 °C en una incubadora luego de la aplicación.

Diariamente se registró el porcentaje de mortalidad y el número de días que ésta tardó en suceder. Todos los tratamientos se organizaron en un diseño completamente al azar con cuatro repeticiones en un arreglo de parcelas divididas; donde la parcela a principal fue la concentración de conidias y la subparcela el tiempo de mortalidad. La prueba de contrastes ortogonales se utilizó par a detectar la diferencia entre los tratamientos. El tiempo letal medio se obtuvo promediando los días en las unidades experimentales que presentaron aproximadamente el 50% de mortalidad.

## RESULTADOS Y DISCUSIÓN

En las pruebas de patogenicidad, la mortalidad de *T. palmi* fue mayor donde se aplicaron los hongos que en el tratamiento testigo (Figura 1). Sin embargo, los únicos hongos que cumplieron con los postulados de Koch fueron *M. anisopliae* y *Paecilomyces* sp. que se encontraron inicialmente atacando trípidos. Estos fueron los únicos que se recuperaron en las siembras sobre el agar utilizado y los que presentaron esporulación en las cámaras húmedas. Con los demás hongos aplicados no se obtuvieron estos resultados y se presume que la mortalidad de *T. palmi* pudo asociarse o deberse a otras causas indeterminadas. También pudo deberse al hecho de ser cepas de hongos desarrollados en insectos no relacionados taxonómicamente con *T. palmi*.

Los signos y síntomas de la enfermedad que se observaron en este estudio fueron referentes al comportamiento y apariencia del insecto y a la presencia de estructuras de los hongos. Se presentó pérdida del movimiento normal de *T. palmi*, éste se notó torpe, lento y débil al caminar y la coloración amarilla y brillante de la cutícula se tornó pálida y opaca. Luego el trípido murió y quedó momificado sobre el follaje. Finalmente, en el proceso de conidiogénisis y rompiendo las partes articuladas del insecto emergieron estructuras miceliales blanquecinos que se convirtieron en cuerpos fructíferos verdes en *M. anisopliae* y rosados en *Paecilomyces* sp. al cabo de unos 2-4 días después de la muerte del insecto. Respecto a los signos internos, solamente se observó la presencia de cuerpos hifales en la hemo-linfá de ninfas, pupas y adultos enfermos, y el micelio a través de la cutícula en el proceso de emergencia. En algunos casos la formación de los cuerpos
fructíferos ocurrió sin el crecimiento blanquecino previo en la cutícula de *T. Palmi*.

Ambas especies de hongos parecen ser muy promisorias para el control de este insecto y aparentemente existe un reservorio natural de nuevas asociaciones de enemigos naturales de *T. palmi* en Puerto Rico que se deben continuar buscando e investigando.

Respecto al estudio de dosis letal media, exceptuando el tratamiento testigo (0 conidias), todas las concentraciones de conidias de *Paecilomyces* sp. mataron más del 50% de las poblaciones de *T. palmi* (Cuadro 1). En el análisis de varianza no se presentaron diferencias significativas entre las dosis de conidias (GL=5, 18; F=2.31; P=0.087). Pero al efectuar las pruebas ortogonales se encontró que el testigo sí presentó diferencias significativas con los demás tratamientos (GL=1, 18; F=7.37; P=0.014). Aunque se presentó semejanza estadística entre las concentraciones de conidias, la dosis de 100 conidias fue la que siempre manifestó mayor mortalidad a través del tiempo (70.7%)(Cuadro 1).

En cuanto al tiempo de mortalidad, se presentaron diferencias altamente significativas entre los días de evaluación (GL=10, 180; F=76.99; P=0.01). Es decir, la mortalidad diaria de *T. palmi* fue diferente. Exceptuando al testigo, las mayores cifras de mortandad se observaron entre los 7 y 9 días después de aplicado el hongo y presentaron diferencias altamente significativas (GL=50, 180; F=3.12; P=0.01) (Cuadro 1).

Respecto al tiempo letal medio, el testigo fue el único tratamiento en donde no murió el 50% de las poblaciones de *T. palmi*. Todas las demás concentraciones de conidias del hongo mataron la mitad de los trípidos en un tiempo similar menor de 10 días. Sin embargo, la dosis de 100 conidias fue la que más rápidamente eliminó a esta cantidad del insecto (8.09 días) y la de 1000 la que más tardó en hacerlo (9.75 días) (Cuadro 1). Preliminarmente se puede afirmar que 100 conidias de *Paecilomyces* sp. por milímetro cuadrado es una concentración adecuada par a desarrollar otros trabajos de investigación con *T. palmi*.

## LITERATURA CITADA

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<figure><img src="image_3.png" /><figcaption>FIG.1.PRUEBAS DE PATOGENICIDAD DE HONGOS
ENTOMOPATOGENOS CONTRA *Thrips palmi*</figcaption></figure>
<table><caption>Cuadro 1. Porcentajes de Mortalidad de *Thrips palmi* Infestado con *Paezilomyces* sp.</caption><thead><tr><th rowspan="2">Dosis de conidias</th><th colspan="12">Días después de la infestación</th></tr><tr><th>1</th><th>2</th><th>3</th><th>4</th><th>5</th><th>6</th><th>7</th><th>8</th><th>9</th><th>10</th><th>11</th><th>Σ</th></tr></thead><tbody><tr><td>0</td><td>2.7</td><td>0</td><td>10.8</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>13.5 a</td></tr><tr><td>10</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>28.6</td><td>14.3</td><td>5.7</td><td>5.7</td><td>0</td><td>60 b</td></tr><tr><td>50</td><td>2.7</td><td>0</td><td>0</td><td>5.4</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>13.5</td><td>18.9</td><td>21.6</td><td>2.7</td><td>64.8 b</td></tr><tr><td>100</td><td>9.8</td><td>0</td><td>7.3</td><td>2.4</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>19.5</td><td>4.9</td><td>26.8</td><td>0</td><td>70.7 b</td></tr><tr><td>500</td><td>0</td><td>5.3</td><td>0</td><td>5.3</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>13.2</td><td>21.1</td><td>13.2</td><td>2.6</td><td>63.3 b</td></tr><tr><td>1000</td><td>7.9</td><td>2.6</td><td>5.3</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>10.5</td><td>15.8</td><td>5.3</td><td>2.6</td><td>52.6 b</td></tr><tr><td>Σ</td><td>23.1</td><td>7.9</td><td>23.4</td><td>13.1</td><td>0</td><td>0</td><td>0</td><td>85.3</td><td>75.0</td><td>72.6</td><td>13.6</td><td>10.9</td></tr><tr><td>Mortalidad acumulada</td><td>23.1a</td><td>31.0 a</td><td>54.4 ab</td><td>67.5 b</td><td>67.5 b</td><td>67.5 b</td><td>152.8 c</td><td>227.8 d</td><td>300.4 e</td><td>314 c</td><td>324.9 e</td><td>*</td></tr></tbody></table>

<footnote>* Tratamientos seguidos de la misma letra no son significativamente diferentes (P=0.014 para las dosis de conidias y P=0.01 para el tiempo de mortalidad) de acuerdo con la prueba de contrastes ortogonales.</footnote>
Toxoptera citicidus (HOMOPTERA: APHIDIDA) EN LA
REPÚBLICA DOMINICANA: UNA AMENAZA PARA
LAS PLANTACIONES DE CITRICOS

J. Étienne<fnref n="1" />; A. Abud Antún<fnref n="2" />; M. Reyes<fnref n="3" />; F. Díaz<fnref n="4" />

RESUMEN

En República Dominicana *Toxoptera citricidas* fue evidenciado en abril de 1992. La importancia de las poblaciones de este pulgón, particularmente en las grandes plantaciones de Villa Altagracia y Hato mayor así como su presencia en el valle de Constanza a 1200m de altura, hacen suponer que la especie está ampliamente repartida y que su implantación en el país no es reciente. Tomando en cuenta el interés económico de las plantaciones de cítricos para República Dominicana, la búsqueda de la tristeza (test ELISA) para eliminar eventuales focos de infestación y el uso de patrones de injerto resistentes para las nuevas plantaciones son, desde ahora, medidas a recomendar. Una lucha racional debe ser igualmente emprendida contra *T. citricidus*. El uso de insecticidas específicos y la introducción de parásitos (*Aphidius colemani*) deberán permitir un control satisfactorio de este vector.

<footnote n="1">¹INRA - Centre Antilles-Guyane, Station de Zoologie et Lutte Biologique, B.P. 1232. 97185 POINTE-A-PITRE CEDEX (F.W.I.).</footnote>

<footnote n="2">²UASD Facultad de Ciencias Agronómicas y Veterinarias. Laboratorio de Lucha Biológica. Engombe. Santo Domingo, República Dominicana. En la actualidad Entomólogo del centro de servicios agropecuarios de la JAD.</footnote>

<footnote n="3">³ Coordinador Programa FST.CIBA GEIGY</footnote>

<footnote n="4">⁴Coordinador proyecto Manejo Integrado Diaprepes abbreviatus. Consorcio Cítricos Dominicanos. Villa Altagracia. República Dominicana. En la actualidad entomólogo al servicio de FERSAN.</footnote>
# I. INTRODUCCION

En la República Dominicana, cinco especies de áfidos han sido mencionadas hasta el presente sobre los cítricos (Schumutterer - 1990): *Toxoptera aurantii* (Boyer de Fonscolombe) *Aphis spiraecola* Pathch= *A. citricola* (Van de Goot) y *Aphis gossypii* Glover son comunes en las plantaciones de cítricos, en tanto que *Aphis craccivora* kock y *Myzus persicae* (Sulzer) son menos frecuentes.

Ninguno de estos áfidos, ni siquiera *T. aurantii*, está verdaderamente ligado a los cítricos, y la mayoría de ellos, al contrario, presenta una gran polifagia. En abril de 1992, J. Etienne determinó el áfido oscuro *Toxoptera citricidus* (Kirkaldy) en localidades diversas. Contrariamente a las otras especies precedentes *T. citricidus* se desarrolla casi exclusivamente sobre Rutaceae y vive esencialmente sobre los brotes tiernos de cítricos.

Aparte de los daños directos que el áfido puede provocar, *T. citricidus* es sobretodo conocido como el vector más eficaz de la Tristeza de los Cítricos. Esta enfermedad virosa, con transmisión de manera semipersistente sobrevive en todos los países citricolas, en los cuales ha aparecido produciendo pérdidas económicas considerables en la región del Caribe. *T. citricidus* hasta el presente había sido señalado sólo en Trinidad (anónimo 1961). Su descubrimiento reciente en las Antillás, Santa Lucía, Martinica, Guadalupe (Lelant et al. 1992), así como en la República Dominicana (Etienne et al. 1992) muestran que el área de distribución de esta plaga se extiende peligrosamente hacia el norte en dirección hacia los Estados Unidos de Norteamérica.

Tomando en consideración la importancia económica de las plantaciones de cítricos para la República Dominicana y aunque la enfermedad no ha sido reconocida, la presencia de *T. citricidus* obliga necesariamente a hacer una investigación sistemática sobre la Tristeza de los Cítricos. En efecto, sólo un buen conocimiento de la situación fitosanitaria de esta enfermedad en el país (distribución geográfica del vector y eventuales focos de infestación) permitirá tomar las medidas concretas para la protección del cultivo de los cítricos.
## II. RECONOCIMIENTO Y DISTRIBUCION DEL T. CITRICIDUS EN LA REPUBLICA DOMINICANA

Strogan (1961) indica siete especies de áfidos sobre cítricos y dá para ellas las claves necesarias para su identificación. Estas siete especies existen en la República Dominicana pero sólo seis han sido encontradas hasta el presente en los cítricos, porque *Macrosiphum euphorbiae* (Thomas) no ha sido aún colectada sobre estas plantas.

Por ser el vector principal de la tristeza, *T. citricidus* representa la especie más peligrosa, pero ella es confundida con frecuencia con su especie vecina, *T. aurantii*. Por lo tanto, la identificación precisa de ambas es esencial para establecer un mano exacto de distribución de *T. citricidus*.

### 2.1 DIAGNOSIS SIMPLIFICADAS DE LAS DOS ESPECIES DE TOXOPTERA

Las dos especies de Toxoptera colectadas sobre cítricos son marrón oscuro o casi negro brillante en el estado adulto y marrón más pálido en el estado inmaduro. *T. citricidus* es un áfido marrón oscuro a negro brillante de tamaño generalmente muy superior a *T. aurantii*. Se puede distinguir los alados y los ápteros de estas especies según los criterios siguientes (fig. 1).

- Vena media con dos ramas, pterostigma negro, antenas con la base de los segmentos III, IV y V plálida y el apex opaco en los ápteros y en los alados... *T. aurantii*.

- Vena media con tres ramas, pterostigma levemente pigmentado (amarillento en los insectos vivos) antena con el segmento III negro en los alados y pálido desde la base hasta la apex de los ápteros... *T. citricidus*.

### 2.2 DISTRIBUCION

El mapa #1, establecido en abril de 1992 muestra que *T. citricidus* está presente en Santo Domingo, D. N., Engombe, Villa Altagracia, Bonao, Hato Mayor y Constanza. La importancia de las poblaciones de este áfido en todas las localidades es notable, especialmente en las plantaciones de Villa Altagracia, así como en el valle de Constanza a 1.200mts. de altitud. Lo que hace suponer que la especie está distribuida en todo el país y que su implantación es verdaderamente vieja.
Lo anterior fue ratificado por uno de los autores -Abud Antún- quien colectó y clasificó a *T. citricidus*, además de en los lugares citados, en las siguientes localidades: Guayacanes, San Pedro de Macorís, La Romana, Los Quemados, La Salvia (Prov. Monseñor Nouel), Azua (CIAZA), Paraiso y Las Caobas (Barahona), San Cristóbal y Santiago, entre otras localidades y provincias.

Según Millan P. (comunicación personal) también está presente en Yamasá, Bayaguana y Monte Plata.

La continuación sistemática de los trabajos sobre la distribución de *T. citricidus* permitirá la organización de una lucha más racional contra el mismo.

### III. IMPORTANCIA ECONOMICA DE LA TRISTEZA DE LOS CITRICOS

Tomando en consideración la importancia economica de las plantaciones de cítricos en la República Dominicana (alrededor de 1000 hectáreas y de las nuevas superficies que cada año se integran a ese cultivo, la presencia de *T. citricidus* hace pensar en una seria amenaza para el futuro del mismo en la República Dominicana. Como se indicó anteriormente, esté áfido es el principal vector de la Tristeza de los cítricos. Un sólo individuo infectado puede transmitir la enfermedad rápidamente (menos de 1 hora); en cambio, se necesita un gran número de otras especies que vivan sobre cítricos (*T. aurantii*, *A. gossypii*) para transmitir con éxito la enfermedad.

La presencia de *T. citricidus* aumenta por tanto de manera considerable las posibilidades de dispersión de la enfermedad a partir de eventuales focos existentes.

Millones de árboles han sido destruidos en otros países (Argentina, Brasil, etc.) por esta enfermedad cuyos síntomas son diferentes según las variedades. Según Leclant et al (1992) esta enfermedad afecta principalmente los cítricos injertados sobre naranja agria debido a la incompatibilidad al nivel de injerto, en tanto que sobre toronja y lima se constata sobretodo un desarrollo anormal con achaparramiento asociado a los síntomas de "Stem Pitting". En fin, cepas particularmente virulentas pueden provocar problemas de crecimiento en plantaciones de naranjas y mandarinas, que no son capaces de producir frutos de calidad comercial.
Actualmente a nivel de las Antillas, la Tristeza de los Cítricos ha sido puesta en evidencia solamente en Trinidad (Barbeau 1992). En República Dominicana aunque *T. citricidus* ha sido señalado recientemente, todo lleva a creer que el vector ha estado en el país desde hace largo tiempo (Etienne et al 1992). En estas condiciones es posible que la Tristeza como tal, esté ya presente en el país y por lo tanto, la investigación sobre esta enfermedad es primordial.

Diferentes técnicas han sido establecidas para la detección de esta enfermedad (Rocka Pena et Lee, 1991) pero a pesar de esto el índice del material vegetativo (test de ELISA) dá resultados rápidos (menos de 24 horas) y parece ser el más adecuado.

Desde ahora sería de mayor interés utilizar el test ELISA para el control de los viveros, ya que ha sido establecido por BAR-Goseph et al (1989) que la diseminación de la Tristeza por material infectado es la causa principal de la extensión de esa enfermedad. Al mismo tiempo es igualmente conveniente proceder al marcaje de los árboles "dudosos" en todos los grandes centros de producción de cítricos en la República Dominicana, a fin de circunscribir lo más rápidamente posible los focos eventuales de infección y poder tomar medidas en el lugar.

#### IV. CONCLUSION

Con la presencia de *T. citricidus* en la República Dominicana la investigación de la Tristeza (test de ELISA) se considera indispensable para conocer la situación fitosanitaria real de las plantaciones de cítricos frente a esta enfermedad.

Sin esperar los resultados de estas investigaciones, son recomendables la utilización de porta-injertos resistentes en las nuevas plantaciones, así como el seguimiento riguroso de los viveros con la finalidad de evitar la diseminación de material enfermo.

Estas medidas deben estar acompañadas de una lucha racional contra el vector *T. citricidus* utilizando cuando sea necesario, productos específicos tales como Pyrimicarbe. Con esto se lograría proteger los enemigos naturales de los áfidos (Braconidae, Coccinellidae, Syrphidae...), pero igualmente a los parásitos (eulophidae, Trichogrammatieda...) de *Diaprepes abbreviatus* (C.) que es por sí mismo una plaga de importancia para plantaciones de cítricos.
En fin, el estudio de himenopteros parásitos de *T. citricidus* en la República Dominicana debería ser iniciado porque aportaría conocimientos indispensables para orientar la lucha biológica contra este áfido. En efecto, según Stary et al (1987) la presencia del parásito *Lysiphebus testaceipes* (Cresson) es casi cierta en todas las Antillas Mayores, en cambio que la de *Aphidius colemani* Viereck es poco probable. Si tal fuere el caso, la introducción de este último parásito, común en Colombia y Venezuela, debe ser tomada en cuenta.

De forma más general, *T. citricidus* progresa hacia el norte por dos vías paralelas, una es la América Central, con la confirmación de su presencia en Costa Rica (Voeglin y Villalobos, 1992); la otra es el Arco Antillano como lo indica este trabajo. Si la progresión continua, se puede temer que México y cierta región del sur de los Estados Unidos sean invadidas próximamente por *T. citricidus*.

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<figure><img src="image_4.png" /><figcaption>FIG. 1. Distribución de T. citricoccus en República Dominicana</figcaption></figure>

Abil 1992

Abril - Julio 1992

Julio 1992
<figure><img src="image_5.png" /><figcaption>Figure 1. Principaux caractères de distinctin entre *T. citridus* et *T. aurantii*</figcaption></figure>
# THE *Bemisia tabaci* PROBLEM IN MARTINIQUE

P. Ryckewaert

CIRAD-CA B.P.427 Fort de France MARTINIQUE (F.W.I.)

## ABSTRACT

Since 1990, vegetable crops in Martinique have suffered severe problems caused by the rapid multiplication of the whitefly *Bemisia tabaci* (Gennadius) (Hemiptera, Aleyrodidae). The same phenomenon is found throughout the Caribbean and into the South of United States, and seems to be linked to the existence of a special form of this species, characterized by a low sensitivity to most insecticides.

Damage is found on most vegetable crops, but mainly on those grown in greenhouses. No whitefly-transmitted virus has been found in Martinique. Chemical control is insufficient and only a few authorized products are somewhat effective: phosalone, bifenthrine, profenofos, endosulfan.

The existence of a parasite wasp of the Eretmocerus genus and of several predators makes it possible to consider natural biological control of Bemisia as part of integrated pest management. This method has given good results on *Thrips palmi* and we compared nearby plots under intensive chemical control or integrated pest management. Six trials on tomatoes in open field show a slight development of *B. tabaci* populations under integrated pest management, whilst rapid multiplication was found under chemical control. However, in greenhouse cultivation, the right balance is rarely found, and damages are present.

## INTRODUCTION

The Sweet Potato Whitefly *Bemisia tabaci* (Gennadius) has been known in Martinique for many years, but there were no signs of damage until 1990. Since that time, numerous problems have appeared on most vegetable crops and in particular on those grown under cover; it is thought that the first rapid multiplications of this pest appeared in Florida in 1986. Thereafter the phenomenon reached the Greater Antilles. In 1990, *B. tabaci* appeared simultaneously in all the Lesser Antilles.
At the moment, *Bemisia tabaci* is a major problem throughout the Caribbean, reaching as far as the southern United States.

## ECONOMIC IMPORTANCE

In Martinique, there are two types of damage: direct, through the sucking of sap and weakening of the plant; and indirect, with the appearance of sooty mould on leaves and fruits. Up to now we have not found proof of the transmission of any virus, notably the Yellow Leaf Curl, on crops on the island.

Two particular symptoms appear on tomatoes, and on squash and zucchini. On tomatoes, the ripening of fruit is affected (tomato Irregular Ripening); on the other two crops, a silvering appears on the leaves (Squash Silverleaf) along with a weakening of the plants.

In both cases the symptoms disappear when the whiteflies are eliminated. It would seem that it is insect's saliva which causes these reactions and not a pathogenic microorganism infected by Bemisia. Such phenomena have already been found in Florida.

Losses in production are essentially due to a reduction in the length of the harvest. The most significant losses are found in crops grown under cover, where environmental conditions favor the development of whitefly populations.

The most susceptible crops are tomatoes, eggplants, melons and cucumbers. Some moderately susceptible plants can be noted: cabbages, zucchini and lettuce. Finally, some crops are barely affected: sweet peppers, hot peppers, beans, onions and cristophines (chocho).

## CONTROLS AVAILABLE

### CHEMICAL CONTROL

Among the many insecticides tested against *B. tabaci*, only a few have shown any real effectiveness. We might mention bifenthrine (shock effect on adults), phosalone (on larvae and adults), profenofos and endosulfan. The bifenthrine profenofos mixture causes a high death rate of larvae and adults. The two active ingredients seem to act in synergy. Finally, imida-
chlorpride, a new active ingredient that has not yet been authorized, has given excellent results against *B. tabaci*.

It is worth noting that in Europe, buprofenzine (APPLAUD) works very well against larvae, whereas it has no effect in Martinique. Conversely, phosalone is not effective in Africa. This suggests the existence of a particular population of *B. tabaci* (a biotype) specific to the region.

- NATURAL BIOLOGICAL CONTROL

Two years ago, we found the presence of a microhymenoptera parasite of the Eretmocerus genus associated with *B. tabaci*. Since then, we have confirmed the presence of this wasp in other Lesser Antilles islands.

A predator has been found - the Orius insidiosus bug - which is also one of the principal enemies of *Thrips palmi*. Other predators are undoubtedly effective. Under cover, in conditions of high humidity, an entomopathogenic fungus appears which kills the adults and fixes them to the leaves before covering them with a white felting.

- PHYSICAL CONTROL

Whiteflies are generally attracted by the color yellow and in certain cases (nurseries, greenhouses) it is possible to use sticky yellow panels to trap the adults. Under our conditions, this method has proved to be insufficient to protect the crops, in addition to which there are practical and cost related problems.

Nevertheless, we do use some small sticky yellow panels or labels (of about 10 cm by 10cm) in order to assess the number of adults on test plots. This method is as valuable in open fields as it is in the greenhouse and makes it possible to see population variations over time.

Another method of protection consists of using woven insect-proof nets. The nets give adequate protection to nursery plants and young low growing crops (notably cucurbits). During a trial on a zucchini plot, part of which was covered by a net, we did not find a single symptom of silver leaf on the covered part during the initial blooming stage, while the other plants were clearly affected. However, the net has to be removed at the beginning of the actual blossoming to allow pollination of the flowers by the insects.
A third possibility consists of removing the leaves from the base of a tomato
crop in order to eliminate the unhatched larvae and pupae of the whitefly.
In a greenhouse trial using 2 isolated compartments, one of which had plants
whose leaves were removed 4 times before harvesting, we observed the
increase in the whitefly populations (Diagram 1).

Overall, we found a slightly larger quantity of whiteflies where the leaves had not been removed, but the difference was not significant, at least not in such conditions of low infestation.

A NEW APPROACH: THE INTEGRATED PEST MANAGEMENT

Chemical control does not solve the problems caused by *Bemisia tabaci* in any effective, long-lasting way. On addition, we are well aware of the disadvantages resulting from the excessive use of insecticides: pollution, residues in the parts eaten, various toxic effects, the risk that whiteflies or other pests may become resistant, the destruction of useful wildlife, the increase in other pest populations and the high cost of successive treatments.

The experiments done by CIRAD in Martinique since 1988 on *Thrips palmi* have shown that integrated pest management is necessary, based on three fundamental principles:

1) Respecting prophylatic measures : isolating the plot, nurseries and new plot not being downwind of previous crops, the removal of crops after the final harvest, good agronomic practices, etc..

2) Biological control. Under our conditions, this means just using the predators and parasites present in the environment. This is only possible so long as chemical control does not affect them too much. Consequently, reasoned chemical control is necessary.

3) Reasoned chemical control. First of all, the most pest-specific pesticide possible must be chosen which does not harm auxiliary arthropods. The insecticides usable in Martinique are given in Table 1. Most fungicides are compatible with biological control.

Subsequently, it is necessary to decide on the moment of spraying. You treat either when the pest appears, or when a certain threshold for a given
pest and plant is reached. For example, you can start a treatment against leaf miners from a fixed threshold, based on initial observations, of 3 mines per leaf on melons. Nevertheless, other pests or diseases endemic to a given region have to be treated systematically (timetable to be defined), alternatively using several products.

Integrated pest management has to take into consideration all the phytosanitary aspects of a crop, and the fight against *B. tabaci* should not be separated from that against other pests. In this methodology, we are not looking to eradicate a pest, but rather to maintain its population at a hard less level.

Over the last two years, we have carried out a certain number of trials of crops under integrated pest management as compared with crops treated in the usual way (intensive chemical control). Thus, in 1991 we began 6 trials on tomatoes in the field. Each of these covered 2 plots, one under intensive chemical control, and the other under reasoned chemical control.

On the second plot, no treatment was done against *B. tabaci* because the effective products are not compatible with biological control. Only the predators and parasites regulated the whitefly population. The increase in the whitefly population during the course of the trial is shown in Diagram 2. In this trial, as with the 5 others, the whitefly populations were always less, and sometimes considerably less, on the plots under reasoned chemical control, showing the greater effectiveness of natural biological control in relation to classic pesticides.

At the time of harvest, we noted from the trials a 60% parasitism rate of *B. tabaci* larvae by Eretmocerus under reasoned chemical management and of 1% on the other plot. The number and the cost of the treatments were clearly lower under reasoned management.

Other trials were carried out successfully against Bemisia on other open field crops. Regarding crops under cover, and in particular hydroponic ones, the results have not always been positive and some rapid multiplications of the pest have been found.

Several hypotheses can explain the rapid development of whitefly populations in greenhouses: favorable climatic conditions (temperature, humidity, lack of rain), nutritive quality of the sap, ...
## CONCLUSIONS

Integrated management seems to us to be the only lasting way of limiting *B. tabaci* populations, provided that the other pests are maintained at a level where they will not cause damage.

It is therefore necessary to define complete programs of reasoned chemical control for each crop in a given region.

In the near future, it seems timely to us to introduce new species of parasites or predators against *B. tabaci* and other pests in order to reinforce natural biological control.
<table><caption>TABLE 1: LIST OF INSECTICIDES-MITICIDES UTILIZABLE IN IPM PROGRAMS ON VEGETABLES</caption><thead><tr><td>PEST</td><td>ACTIVE INGREDIENTS</td><td>NOTES</td></tr></thead><tbody><tr><td>Thrips palmi</td><td>Oxamyl carbofuran</td><td>Spraying in the soil before planting</td></tr><tr><td>Aleurotrachellus trachoides (whitefly)</td><td>Buprofenzine*<br>Dichlorvos</td><td>don't repeat</td></tr><tr><td>Leaf miners</td><td>Cyromazine*<br>Abamectine</td><td>don't repeat</td></tr><tr><td>Caterpillars, worms</td><td>Bacilus thuringiensis<br>Teflubenzuron*<br>Diflubenzuron*<br>Trichlorfon</td><td>don't repeat</td></tr><tr><td>Aphids</td><td>Pyrimicarbe<br>Ethiophencarbe<br>Heptenophos</td><td>don't repeat</td></tr><tr><td>Beetles, Bugs</td><td>Dichlorvos<br>Heptenophos<br>Trichlorfon</td><td>don't repeat</td></tr><tr><td>Scales, Mealbugs</td><td>Buprofenzine*<br>Methidathion</td><td>only focused</td></tr><tr><td>Leafhoppers</td><td>Buprofenzine*</td><td></td></tr><tr><td>Mites</td><td>Fenbutatin oxyde<br>Azocyclotin<br>Bromopropylate<br>Dicofol<br>Tetradifon<br>Cyhexatin<br>Hexythiazox*<br>Clofentezine*<br>abamectine</td><td>don't repeat</td></tr></tbody></table>

*: Insect Growth Regulator

Don't repeat: because this chemical kills some beneficials insects or mmites (predators, parasites and pollinators)
TRIAL OF IPM PROGRAM ON TOMATO IN OPENFIELD
DIAGRAM 2: EVOLUTION OF POPULATION OF WHITEFLIES

<figure><img src="image_6.png" /><figcaption>No whiteflies / week on 2 sticky traps</figcaption></figure>
TRIAL OF LEAF-THINNING ON TOMATO UNDER COVER

<figure><img src="image_7.png" /><figcaption>DIAGRAM 1: EVOLUTION OF NUMBER OF WHITEFLIES ON YELLOW STICKY TRAPS</figcaption></figure>
# INTEGRATED PEST MANAGEMENT: A Case Study of HASP

Clarence Osbourne
Plant Protection Specialist MINAG/IICA
Hillside Agriculture Subproject

## ABSTRACT

The degradation of the environment on a global scale has warranted a rethinking of the treatment of pests. The control of pests is heavily weighted on the level of infestation and the concomitant losses in yield and therefore farm family income. The Hillside Agriculture Subproject in its quest to protect the environment from the potential ill effects of in indiscriminate use of chemicals, has been encouraging through onfarm demonstration, the practice of integrated pest management. The IPM strategy emphasizes natural control of pests through the promotion of disease resistant varieties of the major crops cocoa, coffee and coconut to establish and resuscitate hillside farms. The program has been effective through the use of cultural practices such as, land preparation, shade management, crop rotation, and intercropping. Other techniques used emphasize the discriminate use of chemicals and microbial pesticides. Fertilizer usage is done on the recommendations of soil analysis rather than broad spectrum application related to the crop requirements. This practice prevent excessive infiltration of chemicals in the underground water sources. The HASP IPM program is constrained by the reluctance of farmers over sixty years to carry out the cultural practices necessary to enhance the effectiveness of the program.

## Brief Description of Subproject Area

The subproject is located in the Northern Rio Cobre watershed area, St. Catherine, Jamaica.

It is aimed at promoting the growth of perennial crops on hillsides and to increase the socio-economic well being of the residents. The specific objective is to develop viable hillside agricultural production systems which will contribute to increasing sustainable income to small-scale farmers, while conserving watershed resources and strengthening farmers organizations which support production and marketing activities.
The project is jointly implemented by the Ministry of Agriculture through the Research and Development Division and the Inter American Institute for Cooperation on Agriculture (IICA). The project is executed by a multidisciplinary team of Plant Protectionist, Agronomists, Economist, and Rural Development Officer headed by a Technical Coordinator with expertise in farming systems research.

The major crops planted in this sub-project are perennial tree crops, legumes and vegetables. The sub-project is testing technologies that have been developed in Jamaica and elsewhere and are being utilized by the Community Boards. Such technologies are compared with the practice carried out by the farmers on their holdings. Intercropping and soil conservation measures are incorporated in these trials, using a farming systems research methodology.

The main beneficiaries of the sub-project are grouped in three categories with respect to the type of benefit, and the time period in which the benefits would be realized. The immediate and direct beneficiaries consisting of not less than 168 farmers. Other direct beneficiaries consisting of just over 2,000 farmers and indirect beneficiaries consisting of about five and a half thousand farmers that are outside of the immediate influence of the sub-project.

Major constraints to increased productivity and production include pests and diseases, shortage of high quality Planting materials, transportation, and the absence of effective systems of management for crops and soil conservation among others.

A number of problems have been identified by the farmers which have an impact on their production and income potential. The preliminary findings of the baseline reveal farmers perception of their constraints to farm development as lack of funds, high cost and unavailability of labour as well as praedial larceny.

In terms of the cultural practices, the survey revealed that though 87% of the farmers in the project claimed to have pruned their cocoa fields, a similar percentage reported being plagued by black pod. This justified the project' adoption of an intensive training program emphasizing field sanitation as an important aspect of the Pest Management Program.
The Sub-Project adopts a participatory strategy which includes farmers, farmers organizations, commodity boards and the relevant divisions of the Ministry of Agriculture in the design, implementation and evaluation stages. The strategy used for development, and transfer of technologies generated in the sub-project includes field days, training courses for technical personnel, reports and technical bulletins.

It is quite difficult to develop an Integrated Pest Management Program for the North Rio Cobre Watershed area, though the area is relatively small comprising approximately 2,618 acres (1047 hectares), the climatic conditions vary drastically from very dry to moderate to high rainfall.

Such a situation would suggest that the pattern of pest infestation/infection and the type of pest would vary in these areas, therefore the methods of control would vary.

In this paper the presenter focuses on the definition of Integrated Pest Management (IPM), methods of Integrated Pest Management utilized by the sub-Project as well as the successes and problems of the program.

## Integrated Pest Management (IPM)

For one to understand the concept of IPM, the definition of the term pest must be clear. The definition of a pest can be quite subjective, varying according to many factors, however, it may be defined in the widest sense as any animal or plant which harms or causes damage to man, his animal or plant, crops or possessions, or even just causes him annoyance.

In agriculture we are concerned when there is a loss in quantity and quality of crop caused by plant, insect or disease resulting in a loss of profits to the farmer. When a loss in yield reaches intolerable proportions, the pest can be defined as an economic pest. It was suggested by Edward and Heath (1964) that pest status is reached when there is a loss of 5% in yield, in a particular crop. Stern et al (1959) conceptualized the economic threshold level, which is the population density at which control measures should be initiated to prevent an increasing pest population from reaching the economic injury level i.e. the lowest pest population density that will cause economic damage, and this varies according to crop, season, and area.

An important point to remember about any pest is that it is only an economic pest at or above a certain population density, and that usually the control
measures employed against it are designed only to lower the population below a certain density at which the pest is considered to be an economic pest; only very rarely is complete eradication of the pest aimed at.

## Development of Pest Status

The most economic way in which a pest species attains pest status is simply by an increase in numbers. This can be achieved by providing the right environment for breeding, or upsetting the natural control of the population by such practices as agriculture which provides an unlimited supply of food for the potential pest. The population may still be kept in check by the predators and parasites, but often the natural control factors do not act quickly enough to check the pest. Under such conditions control methods must be employed by farmer so as to avoid crop loss.

Seasonal increases in number are usually controlled by climatic conditions and biological pressures. Climatic conditions include temperature, humidity, rainfall and sunlight, whereas the biological factors include competition - intra and interspecific, predation and parasitism.

It is with these factors in mind that one has to develop different Integrated Pest Management strategies at different locations on similar crops within the sub-project.

## Definition of Integrated Pest Management

The concept of Integrated Pest management is not new; Stern et al were some of the first to use the term to describe the integration of biological and chemical control measures into a cohesive insect pest management system.

More recently, the definition of Integrated Pest Management was broadened to describe the integration of all methods of controls which include biological, physical, chemical and genetic.

Another definition is that of FAO panel of experts on Integrated Pest Control (FAO 1967) which states that integrated pest control is a pest management system, that in the context of the associated environment and population dynamics of the pest species, utilizes all suitable techniques and methods in as compatible a manner as possible and maintain the pest populations at levels below those causing economic injury.
It should be noted that the two terms integrated control and integrated pest management are now used interchangeably, therefore one should not be confused if either term is used. The concept has also been broadened in recent times to involve different types of pests eg. insects, diseases and weeds.

Based on the definitions used, in discussing Integrated pest management the first consideration should be given to the use of natural mortality factors which include weather, diseases, predators and parasites and all efforts should be made to increase their action (Bottnell - 1979, Brader 1979). Methods that seriously disrupt natural regulation of pest populations should never be used.

The presence of a pest species does not necessarily mean that control methods have to be taken; low level infestations of some pests may be quite desirable, especially levels of pest that are non-injurious to agriculture can provide a source of food, reproductive hosts or shelter for natural enemies (Bottnell - 1979).

The concept of IPM is a management systems not one that eradicates the pest species. Control measures, including chemical pesticides are being used discriminately, when reduction or maintenance of the pest at a tolerable level is required. The need for such a control method is ascertained by determining the economic threshold level which has been described earlier. Measures that pose minimal risks to humans, beneficial to non-target organisms and the environment, are sought (Bottnell - 1979; Brader 1979).

## Methods of Integrated Pest Management Utilized by Sub-Project

There are a number of control methods involved in an IPM program. However, not all of these measures are compatible with the sub-project and further more, methods utilized fall in various combinations from time to time, based on the area, technical knowledge, season, and crop. Methods used by the sub-project include the following:

1. Introduction of resistant/tolerant varieties.

Utilization of pest resistant varieties cause a reduction in the pests equilibrium position. Varieties which are tolerant also keep the pest at equilibrium position.
Coffee and cocoa are the main tree crops within the sub project area. More recently coconuts have been introduced and this crop is fast becoming a major crop within the area. The Maypan and the Malayan Dwarf are varieties resistant to lethal yellowing disease and are now being planted extensively as replacement for the old susceptible varieties like the Jamaica Tall.

The variety of coffee being planted in the area is Typica. The variety is not as high yielding as other varieties, but it shows a reasonable amount of tolerance to a number of major pests and diseases of coffee.

It is very difficult to determine the major varieties of cocoa that was planted in the area prior to the intervention of the sub-project. Most of these varieties showed little resistance to the "black pod" disease and at the same time were low yielding. The Hillside Agricultural Project (HAP) and Cocoa Industry Board (CIB) entered into a contractual agreement in which a number of specially bred cocoa varieties were introduced into the sub-project area using the seed-at-stake method of establishment. Other such varieties were introduced by the seedling and budded plant method. These planting materials have been used to underplant existing fields and also to establish new ones. It is expected that through this method, the use of chemicals will be drastically reduced.

## 2. Cultural Practices

Since the introduction of chemicals, a number of these useful practices have been either ignored or forgotten. Such practices are often proved to be least expensive and at times most effective methods of control.

The sub-project stresses sustainability, and all methods used by the implementors are those that can be maintained and utilized by its beneficiaries, the farmers. Therefore improved cultural practices especially shade management, receive high priority and is an integral part of the Integrated Pest Management Program.

At times it is difficult to get farmers to change, however the Rural Socio-logist, whose role includes the study of farmers' behavioral patterns assists in encouraging the adoption of newer and more effective cultural practices.

It should be noted that a number of cropping systems have evolved under the influence of many interacting socioeconomic factors, including pest
pressure. In different situations, certain cultural practices may favor one pest while showing deleterious effects on others.

The cultural practices used by the sub-project are:

(a) land preparation - this activity includes (a) land clearings (b) tillage and (c) fallowing.

(a) Land Clearing

In land clearing, the field is cleared of weeds which are at times host plants for harmful pests. Tree trunks, rocks, rooted leaves etc. are also removed to prevent pests such as slugs and snails from finding suitable habitats. In general, proper field sanitation is maintained. This practice is most important as one is dealing with small farmers who have been planting the same crops on the same spot for several consecutive years.

(b) Tillage

This practice is done to a minimum, as the sub-project is emphasizing soil conservation on hillsides and till age would enhance soil erosion. However, minimum till age is done, which exposes the area in which the plant will be placed to the effects of sunlight. This method is effective against some pests, killing them through mechanical injury and or exposure to desiccation. Pest such as fiddler beetle grub that are serious root feeders are controlled in this way.

(c) Timing

Crops are planted so that their vulnerable stages occur when pests are absent or least abundant, or when conditions give them a competitive advantage over the pest, eg spring and fall.

Fortunately there are two (2) planting seasons in the project area -spring and fall. During these periods the rainfall is above average and leaf-miner ( ) are usually absent. Young coffee seedlings are quite susceptible to attack by this pest However, during wet conditions leaf-miners are usually quite rare or absent, therefore the young seedlings are able to establish themselves.
This control method requires the coincidence of planting dates with the rainfall period, as rain fed agriculture is being practiced.

### (d) Rotation of Host and Non-host Crops

This often provides an effective and economical means of reducing pest populations to sub-economical levels. However, populations of pest other than the target pest may increase on the alternate crop. Crop rotation is widely practiced within the sub-project especially in areas where there are new establishments of tree crops. It is the sub-projects mandate to find suitable cropping systems that are economically and culturally viable. The relevant data is being collected on a number of cropping systems and these findings are to be published as soon as they are complete.

### (e) Intercropping

It has been observed that pest problems are less in fields that are inter-cropped than in monocrops. The reasons suggested are quite complex, but it may involve differences in attractiveness (or predilection) to pests or micro-climatic effects caused by differences in crop structure.

### (f) Mixed Cropping

This is encouraged in the sub-project and is pronounced in most of the older fields, where one finds the main crop, banana, plantains, other tree crops, cocoa yams etc. However, in recently established fields, the crop mixed is in a more orderly fashion. A good example is the use of trees with small leaves (legume/coconut) as permanent shade in cocoa. This helps in the control of fiddler beetles lay their eggs between the leaves of plants (large leaves), when the eggs hatch, the larvae fall on ground and attack the roots of the of cocoa plants.

When legumes/coconuts are used as permanent shade, the fiddler beetles are unable to lay their eggs between these types of leaves, therefore the infestation is reduced, if present at all.

### (g) Pruning

Black Pod (Phytophthora palmivora) of cocoa is a major disease in the cocoa areas of the sub-project, where susceptible varieties were planted. This disease can be controlled using a copper based fungicide or by
changing the micro-climate of the fields to one that is to the detriment of the disease pest.

Change of the micro-climate is achieved by the process of pruning. Pruning allows more air and sunlight into the fields. It is also done to remove dead plant materials that provide habitat for termites and infected cocoa pods that are a source for the potential spread of the black pod disease. Pruning also assists in the control of rats. Fields that are very crowded and over shaded are good breeding grounds for rats. It is noted that pruned fields are less infested with rats than unpruned fields.

### 3. Fertilization

Plants that are healthy tend to resist and recover from pest attack quicker than those that are unhealthy and nutritionally deficient.

A fertilizer program has been instituted within the sub project. Soil analysis is being carried out in conjunction with the Rural Physical Department of the Ministry of Agriculture, so that the correct fertilizer recommendation and rate of application is used.

There is no empirical information at present on the effects of the fertilization programs however data have been collected and are being collated. Visual observations (qualitative) can justify the use of fertilizer. Fields that are fertilized look healthier than those that are unfertilized.

The use of fertilizers can be termed a prophylactic treatment; in that, it prepares the plants for adverse conditions it might have to withstand if and when there is an outbreak of pest infestation.

### 4. Outbreak Control of Certain Pests

Under normal conditions, when there is a balance between natural enemies, resistant varieties and cultural practices, further actions against certain pest may not be necessary. However, certain changes such as climate, or even cropping pattern may cause a flare up of certain pests. At the point when one considers it to be of economic importance, remedial measures may be taken.

Remedial measures are taken in the form of:
1. Selective use of chemical pesticides to avoid disruption of the natural enemy complex through:

(a) Use of Specific Chemicals.

At times there is the flare up of caterpillars (Lepidoptera sp) on crops such as corn, cucumber etc. which are used as intercrops. A good type of chemical that is used or recommended is the Pyrethroids. However, in using this type of chemical indiscriminately, there is always an upsurge in mites. This is due mainly to the fact that pyrethroids destroy the natural enemies of mites. therefore favoring a situation for an increase in the mite population.

It is always borne in mind when making recommendations for use of chemicals what ill-effects they have on natural enemies of certain pests therefore before any chemical is used, adequate information of its actions is checked out from dealers, researchers.

(b) Use of Minimal Dosage.

In using minimal dosage it is less likely that the natural enemies of the pest will be adversely affected. Minimal dosages are usually more specific to the pest than the natural enemies of the pest.

(c) Application of Pesticides to Restricted Areas.

This method is being used specifically for soil-borne pests. In fields where soil-borne pests such as nematodes, fiddler beetle, grubs etc. are detected and warrant control measures, chemicals such as Furadan and Mocap (Nematicides/Insecticides) are used restrictively. Such chemicals are not broadcasted over the entire field, but are placed in and around the root zone of affected plants. This method of application proves quite effective in controlling such pests, and at the same time is less costly and does not destroy a lot of beneficial soil-borne organisms.

(d) Use of Poisonous Baits

Rats are controlled by two (2) methods, such as field sanitation and poisonous baits.
The main type of bait used is Warfarin which is used at a rate of eight (8) lbs/acre in cocoa fields. These baits are placed in a Joint of bamboo at a rate of 12-16 sites/acre. The joint of bamboo is opened at either end so as to allow the pest free entry and exit. It is then securely fastened in the cocoa tree. Regular checks are carried out to see that adequate bait is in place at all time. Baits are usually set at the time the cocoa pods are maturing and not year round.

In setting the baits as mentioned above, domestic animals are not placed at a risk of consuming such and dying from its effect. Baits are also used to control pests such as slugs and snails. This method is used mainly after field sanitation has failed to control these pests.

Metaldeyhyde and cornmeal mixed at a rate of 1:10 respectively have proved quite effective as a control. However, as with Warfarin, this chemical mixture is always placed out of the reach of domestic animals.

## 5. Microbial Pesticide

We have been using only one of these pathogens - *Bacillus thuringiensis*, a bacterium. It is specific for a wide range of pests and is commonly used on cabbage crops which are used in the intercropping of the main program. This pesticide does not destroy other beneficial insects, therefore there is hardly any likelihood of a shift in the equilibrium position of other pests.

### High Points of the Project

#### (a) Staff

The sub-project has the technical capability to monitor the on-farm trials making good reports as to the status of particular pests. Regular field inspections are carried out by the field team under the guidance of the Plant Protectionist. The reports from the field team is critically assessed and the necessary remedial action taken.

The Core Team of Rural Sociologist and Economist lend respectively their skills to facilitate technology transfer to cost the various technologies, advising both staff and farmers of which is most economically viable.
## (b) Political Commitment

There is political commitment to the sub-project indicated in the support of activities as well as popular mobilization of interest in the sub project.

## (c) Enthusiastic Farmers

Very few farmers have shown any reluctance to change. There are still a few farmers who are using "wood ash" to control insect pests, and are unaware of the difference between a fungicide and an insecticide, however, with regular training programs through field days and visits to demonstration plots, it is envisaged that the necessary change will eventually come.

## (d) Low Volume of Chemicals being Used

The sub-project is a Watershed Management project, therefore large scale usage of chemicals could contaminate major aquifers in the area.

So far, we have been fortunate to have used over the past two years, quite a small amount of chemicals over an estimated 168 acres of land.

<table><tr><td>Fungicide</td><td>2.6 kg</td></tr><tr><td>Insecticide</td><td>1243.86 ml</td></tr><tr><td>Nematicide</td><td>65.99 kg</td></tr><tr><td>Slugicide</td><td>8.075 kg.</td></tr><tr><td>Rodenticide</td><td>55.22 kg.</td></tr><tr><td>Herbicide</td><td>155.75 l.</td></tr></table>

## e) Produce Quality

Farmers under the sub-project are able to sell produce of high quality to higglers, wholesalers and consumers. There is a monthly Market Fair put on by the sub-project farmers where their ground provisions, vegetables, market cane, fruits etc. are sold. This started with the guidance of the sub-project staff and it has proven quite successful. Consumers have not complained about the quality of the produce even though at times they complain about the price.
(f) Close Association with other Organizations

The sub-project is very fortunate to have the cooperation of all the Commodity Boards that it impinges on. There is never any problem in harnessing the expertise from any of these organizations.

## 6. Problems

(a) A major problem is that of the sustainability of the technologies that are being transferred to the farmers.

At present there is quite a high rate of adoption, but will it be so after the sub-project has been phased out? It is the first time that farmers in these areas are getting the quality extension service but will they revert to their traditional methods after the phasing out.

(b) Getting Farmers to Change

For some farmers it is difficult to adopt new technologies. Various ingenuous ways have to be worked out to achieve this. Farmers were taught prior to the sub-project's intervention that they should spray at the first sign of any pest or more so to spray as a preventative method of control. This sort of indoctrination is quite difficult to change at this point in time.

(c) Types of Chemicals Used/Purchased by Farmers

Farmers are purchasing a number of quite toxic and out dated chemicals from firms that are not up-to-date on the types of chemicals that are available presently

Farmers are still using chemicals such as Chlorodane, D.D.T. and others that have serious ecological effects on the food chains among other effects.

(d) Farmers Age

There is the need for younger farmers to come in the system. More than 60% of the farmers in the sub-project are above the age of 60 years. Farmers at this age tend to be less inclined to adopt new methods and proof more difficult to influence, as they are at the point where they are scaling down their farming activities.
## CONCLUSION

The Hillside Agriculture Subproject as a watershed management project has to find ways of controlling the various pests that affect crops being produced in the area and at the same time minimize the use of harmful pesticides that can contaminate major aquifers. In trying to achieve this the use of pest control measures compatible with the subproject environment is critical.

Pest management methods will change from time to time based on a number of factors, however it is of great importance that proper records are kept and operations documented, so that one is able to draw on the past experiences of similar projects. This is what the Hillside Agriculture Project seeks to achieve.
## SEASONAL CALENDAR

<table><thead><tr><th>Jan</th><th>Feb</th><th>Mar</th><th>Apr</th><th>May</th><th>Jun</th><th>Jul</th><th>Aug</th><th>Sep</th><th>Oct</th><th>Nov</th><th>Dec</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="11">RAINS</td></tr><tr><td colspan="11">PLANT PESTS</td></tr><tr><td colspan="11">Nematodes</td></tr><tr><td>Leaf Miner</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Berry Borer</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rats</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wood Pecker</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Black Ants</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Slugs</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cut Worms</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fidler Beetle</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Potato Beetle</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="11">PLANT DISEASES</td></tr><tr><td>Anthracnose</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Black Pod</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Leaf Spot</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wilt</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Soft Rot</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sooty Mould</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="11">Sour sop Gall,</td></tr><tr><td>Early & Late Blight</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
PATOGENICIDAD Y FISIOLOGIA DE *Xanthomonas campestris* pv. *dieffenbachiae* Y EL EFECTO DE FERTILIZANTES EN EL DESARROLLO DEL TIZON BACTERIANO DEL ANTURIO

Noraima Pérez, M. Zapata y J. Beaver*.
Departamento de Protección de Cultivos y *Departamento de
Agronomía y Suelos. Universidad de Puerto Rico, Mayagüez,
Puerto Rico, 00680.

RESUMEN

En Puerto Rico la enfermedad del tizón bacteriano en plantas de anturio (Anthurium andreanum Lind.) es común en las áreas húmedas del centro de la isla. Aunque la enfermedad no se ha estudiado mucho, se sabe que es causada por la bacteria *Xanthomonas campestris* pv. *dieffenbachiae* (Xcd). En esta investigación la patogenicidad y fisiología de la bacteria se determinó en 20 aislamientos de síntomas bacterianos en Adjuntas, Las Marias y Mayagüez, Puerto Rico. La patogenicidad se determinó en las variedades "Nitta", "Ozaki Red" y "Splash", resultando un grupo patógeno y otro no patógeno. Se determinaron dos biotipos del patógeno mediante la exoenzima B amilasa en agar de almidón. Las características de cultivo se determinaron en medios semiselectivos y no selectivos, encontrándose diferencias fisiológicas en agar de celobiosa-almidón. La identidad de los aislamientos patogénicos y no patogénicos se reconfirmó mediante cromatografía de capa fina y espectrofotometría por la presencia del pigmento xantomonadina. Los resultados indican la existencia de ambos grupos patológicos de Xcd asociados a los síntomas de la enfermedad bacteriana en A. andreanum. La aplicación de los fertilizantes 19-6-12 y 20-20-20 disminuyó significativamente la severidad del tizón bacteriano en la var. "Ozaki Red".

ABSTRACT

The bacterial blight of anthurium (Anthurium andreanum Lind.) is
common in the humid and central regions of Puerto Rico. Although
the disease has not been studied in detail, the bacterium Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae (Xcd) is known as the causal agent. In this research, the pathogenicity and physiology of 20 bacterial isolates from Adjuntas, Las Marías and Mayaguez, Puerto Rico were studied. The pathogenicity of the isolates on cultivars "Nitta", "Ozaki Red" and "Splash" was determined. Pathogenic and non pathogenic groups were determined. Two biotypes of the pathogen were identified based on the enzyme activity of B amylase on starch agar media. Colony characteristics were determined in semi-selective and non-selective growth media. Physiological differences in cellobiose starch agar were found. The identity of pathogenic and nonpathogenic isolates was confirmed by the presence of xanthomonadin pigment by thin layer chromatography and spectrophotometry. The results indicate the existence of the both pathological groups of Xcd associated with bacterial disease of Anthurium andreanum. The utilization of 19-6-12 and 20-20-20 fertilizers decreased the severity of bacterial blight in cultivar "Ozaki Red".

INTRODUCCION

En el cultivo del anturio, Anthurium andreanum Lind., se han determinado organismos patógenos que afectan la calidad de las hojas y flores de la planta. Entre los patógenos más comunes e importantes se encuentra la bacteria Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae (McCulloch y Pirone, 1939), agente causal del tizón bacteriano. Los síntomas que causa la bacteria se han descrito como tizones o manchas necróticas rodeadas por márgenes cloróticos. Estos síntomas se expresan mayormente en las hojas y con menor frecuencia en las flores. La bacteria también puede invadir los tejidos vasculares y causar la muerte de la planta.

El tizón bacteriano se informó en Puerto Rico en el 1986 (Sánchez, 1986). En la actualidad la enfermedad es un factor limitante en la producción de anturios en Adjuntas y Las Marías y los métodos de control utilizados no han sido muy efectivos. En este trabajo se presenta información sobre las características patológicas y fisiológicas de Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae (Xcd) y la utilización de fertilizantes como estrategia de control.
# MATERIALES Y METODOS

## Características Patológicas y Fisiológicas de Xcd

Se utilizaron 20 aislamientos puros con características de Xanthomonas, provenientes de lesiones típicas del tizón bacteriano en tejidos foliares de Anthurium andreanum, obtenidos de Adjuntas, Las Marías, Mayaguez y Xcd tipo de Brasil como testigo (Cuadro 1). Las pruebas de patogenicidad se hicieron en tres variedades de anturio: "Nitta", "Ozaki Red" y "Splash". Los tratamientos (20 aislamientos y el testigo) se inocularon a las 24 horas de crecimiento en agar de levadura, dextrosa y calcio a una concentración de 104 cfu. El método de inoculación consistió en hacer una pequeña laceración al tejido presionando el inóculo con presillas previamente esterilizadas según el método de Zapata (1991). La determinación del pigmento xantomonadina se hizo mediante cromatografía de capa fina en una placa de sílice, según el método de Schaad (1988), con las siguientes modificaciones: 6 ml de metanol para hacer las extracciones de los pigmentos y la deposición de 60 l/muestra en gotas de 3 l. La placa de sílice se colocó dos veces en metanol para eliminar las impurezas. En la determinación de los espectros de absorción se usaron 3 ml de la extracción de cada pigmento en celdas de cristal. Los espectros se determinaron en un espectrofotómetro Shimadzu, modelo UV 2101.

Se utilizaron los siguientes medios de cultivos para determinar las características fisiológicas de los aislamientos: agar de levadura, dextrosa y calcio (YDCA), agar de nutrientes (NA), agar de almidón (SA) y agar de celobiosa-almidón (CS). Se determinó la actividad de la exoenzima -amilasa añadiendo gotas de una solución de iodo al agar de almidón (Schaad, 1988).

## Efecto de los Fertilizantes 19-6-12 (Osmocote) y 20-20-20 (AgroTotal) en el Desarrollo del Tizón Bacteriano

Las plantas de Anthurium andreanum variedades "Lady Jane", "Ozaki Red" y "Rosa" las donó el Laboratorio de Cultivo de Tejido Oglessby, Florida. Estas se transplantaron a tiestos plasticos de 6" color blanco, con mezcla de suelo "Sunshine Mix #1" y al momento del experimento tenían 15 meses de edad.
El aislamiento de Xcd (No. 147) proviene de la var. "Splash" y fue seleccionado por su alta virulencia en siete plantas hospederas (Cuadro 1). El método de inoculación fue desctrito en la sección anterior. El diseño experimental consistió de un arreglo de parcelas divididas completamente al azar con ocho tratamientos (seis niveles de fertilizantes y dos controles). Las unidades experimentales fueron la mitad de las hojas jóvenes inoculadas en diferentes fechas. El lado izquierdo de la hoja se inoculó a tiempo 0 (identificado por A) y el lado derecho (B) 15 días luego de haber comenzado los tratamientos de fertilización.

Los fertilizantes y las concentraciones utilizadas fueron los siguientes: 0.8 g, 0.16 g y 0.08 g/planta de 19-6-12 (Osmocote) cada dos meses; 0.19 g, 0.04 g y 0.02 g/planta de 2020-20 (AgroTotal) cada 15 días, un control inoculado sin fertilizante y un control no inoculado sin fertilizante. Las lecturas se hicieron cada 10 días, luego de las inoculaciones. Los síntomas de necrosis, clorosis y acuosidad se midieron en mm separationes. Las medidas de cada síntoma se sumaron para analizar el progreso de la enfermedad y el efecto de los fertilizantes. El experimento se condujo bajo condiciones de invernadero a temperaturas de 28 a 35°C y humedad de 60 a 85 %.

# RESULTADOS

## Características Patológicas y Fisiológicas de Xcd

En la prueba de patogenicidad se encontró que 12 de 20 aislamientos causaron enfermedad a las plantas de anturio (Cuadro 2). Los síntomas iniciales fueron acuosidades alrededor de las inoculaciones que más tarde se necrotizaban. A medida que la enfermedad avanzaba, se formaban extensas áreas necróticas rodeadas de clorosis difusas. Estos síntomas fueron similares a los expresados por la Xcd tipo de Brasil. Las ocho bacterias restantes, a pesar de mostrar características morfológicas similares al género Xanthomonas, no causaron patogenicidad en las hojas.

Los índices de refracción (Rf) de los pigmentos obtenidos de los aislamientos patogénicos fueron entre 0.49 y 0.53 lo que resulta similar al Rf de Xcd tipo de Brasil (Cuadro 3). Cinco aislamientos no patógenos (146, 187, 174, 176, 170), mostraron un Rf similar al Xcd
de Brasil y tres (161, 199, 185) con Rf diferentes al testigo (Cuadro 3).

En la determinación del espectro de absorción de los pigmentos se separaron dos grupos según la patogenicidad: el grupo patogénico con espectros (441-444 nm) similares al Xcd tipo y el grupo no patogénico con varios espectros de absorción (Cuadro 3). En el grupo no patogénico, 4 aislamientos mostraron un espectro de absorción de un pico, mientras que otros 4 mostraron espectros de absorción con dos y tres picos (Cuadro 3). En la figura 1 (a-c) se representan los picos de tres aislamientos no patogénicos comparados con el testigo, Xcd (Fig. 1d). El aislamiento 146 (Fig. la) mostró un pico similar al testigo (Fig. 1d). De igual forma, los aislamientos del grupo patogénico mostraron picos semejantes al testigo. Los aislamientos 161 (Fig. 1b) y 170 (Fig. 1c) mostraron dos y tres picos, respectivamente, diferentes al testigo (Fig. 1d).

En agar YDC los 20 aislamientos mostraron colonias circulares de elevación convexa, márgenes lisos y pigmentación amarilla. El grupo de las patógenas mostraron crecimiento mucoide o grasoso con un diámetro entre 5 y 6 mm semejantes al testigo (Xcd). En las no patógenas el crecimiento fue menor a excepción de los aislamientos 174, 176 y 161 que tuvieron un diámetro semejante al grupo patógeno (Cuadro 4). En adición, la pigmentación de estos tres aislamientos fue amarillo intenso con tendencia a pegarse a la superficie de la madera. En NA el crecimiento de las colonias fue menor que en YDC y la pigmentación de los cultivos varió en intensidad: 17 resultaron con un tono de amarillo pálido semejantes al testigo y 3 de amarillo intenso.

En agar SA también se observaron crecimientos mucoides en todos los cultivos, siete bacterias hidrolizaron el almidón: tres del grupo de las patógenas (155, 157, 207), tres del grupo de las no patógenas (187, 176 y 161) y el testigo (Cuadro 4). En el medio CS, el aislamiento 199 no creció mientras que el resto de los aislamientos mostraron diferencias en pigmentación y tamaño de la colonia: 14 aislamientos presentaron una pigmentación rojiza de 2 a 4 mm de diámetro, los aislamientos 151, 155 y 34 tuvieron un crecimiento mucoide y granular semejante al testigo (XCD tipo) pero diferentes en tamaño. El cultivo 146 mostró una pigmentación Verde con un arreglo
distorsionado en el centro, el 185 fue color crema y uno tercero, 170, color amarillo (Cuadro 4).

## Efecto de los Fertilizantes 19-6-12 (Osmocote) y 20-20-20 (AgroTotal) en el Desarrollo del Tizón Bacteriano.

Las tres variedades de anturio mostraron síntomas a partir de los 10 días de inoculación. La var. "Ozaki Red" mostró mayor susceptibilidad seguida por la var. "Rosa" y luego "Lady Jane". El análisis estadístico reflejó diferencias significativas en la interacción de los fertilizantes y variedades a partir de los 20 días. No se encontraron diferencias significativas en el desarrollo de la enfermedad a los 15 días de haber inoculado el lado opuesto de la hoja.

En las variedades "Rosa" y "Lady Jane" se observó que las concentraciones de 0.80 y 0.16 g de 19-6-12 (Osmocote) y 0.19 g de 20-20-20 (AgroTotal) disminuyeron la severidad de la enfermedad a los 50 días (Cuadro 5). Mientras que 0.08 g de 19-612, 0.04 g y 0.02 g de 20-20-20 no mostraron efecto de reducción en la severidad de la enfermedad (Cuadro 5). El análisis estadístico no demostró diferencias significativas entre los tratamientos en estas dos variedades.

En la var. "Ozaki Red" se observó el desarrollo progresivo de la enfermedad hasta los 40 días. Las tres concentraciones de 19-6-12 disminuyeron significativamente la enfermedad a los 50 días (Cuadro 5). La reducción en la severidad de los síntomas a los 40 y 50 días, cuando se utilizó la concentración de 0.16 g de Osmocote, se puede explicar por la disminución en la clorosis. Los síntomas desarrollados en las plantas de "Ozaki Red" tratadas con 0.19 g del fertilizante 20-20-20 fueron significativamente menores que las del control inoculado (Cuadro 5).

# DISCUSIÓN

## Características Patológicas y Fisiológicas de Xcd

Según las características observadas en los cultivos, las bacterias que causaron enfermedad a las plantas de anturio corresponden a Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae (Xcd). Los síntomas expresados en las plantas fueron manchas necróticas rodeadas por clorosis.
Estos síntomas fueron comparados con los expresados por los de Xcd tipo de Brasil, encontrando similitudes en la expresión de la enfermidad. Estos resultados guardan relación con investigaciones realizadas por Nishijima y Fujiyama (1985) y Guevara y Debrot (1984), quienes informaron el agente causal de la enfermedad en Hawaii y Venezuela.

La presencia del pigmento en los grupos patógenos y no patógenos fue comprobada al determinar el Rf y el espectro de absorción. Según Schaad (1988), el espectro de absorción de la xantomonadina es de 443 nm. Los aislamientos que mostraron espectros entre 441 a 445 contienen el pigmento xantomonadina. Esto comprueba que las bacterias del grupo patógeno son Xcd. Algunas del grupo no patógeno son Xcd asociadas al anturio en calidad epifítica, sin causar daño. Los aislamientos que mostraron varios picos de absorción podrían o no estar relacionados con Xcd pero se necesita hacer más estudios con relación a éstos.

La actividad indirecta de la exoenzima amilasa se determinó en 6 cultivos (207, 155, 157, 187, 176 y 174) que fueron comparados con la Xcd tipo. El resto de los cultivos patógenos no hidrolizaron el almidón lo que sugiere que estos no contienen la enzima. Los resultados demuestran que existen diferencias fisiológicas dentro del grupo patógenico de Xcd. Estos resultados concuerdan con estudios realizados en Jamaica, donde también encontraron grupos de Xcd con respuestas diferentes en la hidrólisis del almidón (Young, 1991; Norman y Alvarez, 1989). Estos resultados indican la presencia de dos biotipos en la bacteria Xcd en Puerto Rico.

El medio de CS fue desarrollado para la detección rápida de Xcd y otros grupos de Xanthomonas (Norman y Alvarez, 1989). Según Norman y Alvarez, las bacterias que no hidrolizan el almidón crecen muy bien en este medio. Las fuentes de energía que provee el medio no son igualmente utilizadas por todos los aislamientos indicando diferencias fisiológicas y de crecimiento entre los aislamientos crecidos en CS.

## Efecto de los Fertilizantes 19-6-12 (Osmocote) y 20-20-20 (AgroTotal) en el Desarrollo del Tizón Bacteriano.

Las recomendaciones de fertilización para el crecimiento y desarrollo de las plantas de anturio se han basado en bajos niveles de fertilización.
Poole y Graves (1969) y Poole y McConnell (1970) recomiendan concentraciones de 300 lb/acre de N anuales de 14-14-14 (Osmocote). Higaki et al. (1979), recomiendan aplicaciones de 300 lbs de N/acre/año de formulaciones de 5-1010, 10-20-20 ó 16-16-16. Rodríguez (1979), recomienda aplicaciones de 2 a 4 onzas de Osmocote (14-14-14) cada 3 a 4 meses y aspersionés foliares de un abono soluble.

El uso del fertilizante 19-6-12 (Osmocote) a concentraciones de 0.80 y 0.16 g disminuyó la severidad del tizón bacteriano en las tres variedades de anturio. La var. "Ozaki Red" fue más susceptible a la enfermedad que las variedades "Rosa" y " Lady Jane". El efecto beneficioso de la fertilización resultó significativo en la reducción de los síntomas en la var. "Ozaki Red". En las variedades "Rosa" y "Lady Jane" se observó que altas concentraciones de 19-6-12 y 20-20-20 aparentemente disminuyeron la severidad de los síntomas, pero las diferencias no fueron significativas.

En el Syngonium y Schefflera se ha encontrado un efecto similar en la reducción de los síntomas causados por Xanthomonas campestris pv. syngonii y Xc pv. hederae, respectivamente. Chase (1989) y Chase y Poole (1987), encontraron una reducción significativa en los síntomas cuando se aumentó la concentración de los fertilizantes 19-6-12 (Osmocote) y 20-20-20 sobre lo recomendado.

El fertilizante 19-6-12 (Osmocote) ofrece varias ventajas sobre el 20-20-20 para el manejo de un plantel de anturio porque la aplicación se hace cada 2 meses, se incorpora fácilmente al suelo sin riesgo de toxicidad a bajas concentraciones y el nitrógeno no se pierde rápidamente como en la formulación 20-20-20. Por el contrario, el 20-20-20 requiere aplicaciones frecuentes y el nitrógeno se lava fácilmente.

## LITERATURA CITADA

Chase, A. R. 1989. Effect of nitrogen and potassium fertilizer rates on severity of Xanthomonas blight of *Synqonium podophyllum*. Plant Disease 73: 972-975.
Chase, A. R., and Poole, R. T. 1987. Effects of fertilizer rates on severity of *Xanthomonas* leaf spot of schefflera and dwarf schefflera. Plant Disease 71:527-529.

Irey, M. S. and Stall, R. E. 1981. Value of Xanthomonadins for Identification of pigmented Xanthomonas campestris pathovars. Proc. Fifth Int. Conf. Plant Path. Bact. Cali, Columbia. 85-95.

Guevara, Y. M. and Dębrot, E. C. 1984. Tizón bacteriano de la Cala (*Anthurium anderanum* Lind) en Venezuela. Agronomía Tropical. Vol 34: 4-6.

Nishijima, W. T. and Fujiyama, D.K. 1985. Bacterial Blight of Anthurium. Hawaii Inst. Trop. Agri. and Human Resources, Univ. Hawaii at Manoa, Commodity Fact Sheet AN-4 (A). 3pp.

Norman, D., and Alvarez, A. 1989. A rapid method for presumptive identification of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae and other xanthomonads. Plant Disease. 73:654-658 pp.

Poole, R. T. and McConnell, D. B. 1970. Effects of shade levels and fertilization on flowering of *Anthurium andreanum* "Nitta" and "Kaumana". Proc. Amer. Soc. Hort. Sci. Tropical Region. 15:189-195.

Poole, R. T. and Graves, B. A. 1969. Nitrogen, phosphorus and potassium fertilization of *Anthurium andreanum* "Nitta" and "Kaumana". Proc. Amer. Soc. Hort. Sci. Tropical Region 13:367-372.

Rodríguez, S. J. 1979. Observaciones sobre el cultivo de anturio (*Anthurium andreanum* Lind.). Pub.128. Estación Experimental Agrícola, Univ. de Puerto Rico, Recinto de Mayaguez. 12 pp.

Schaad, N. W. 1988. Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria. 2nd Ed. APS PRESS.

Young, F. A. 1991. A survey of anthurium bacteria blight in Jamaica as Base for Developing Research Strategies. Jagrist Vol:3 No.1 13-17.

Zapata, M. 1991. Incorporation of resistance to Xanthomonas campestris pv. phaseoli. SOPCA, Estación Experimental Agrícola, Rio Piedras.
<figure><img src="image_8.png" /><figcaption>Fig. 1. Espectros de absorbancia de tres aislamientos no patógenos comparados con Xcd tipo de Brasil. a) 146 muestra un pico de 444.0 nm, b) 161 muestra dos picos: 1.446.5, 3.497.5, d) Xcd tipo Brasil con un pico de 445.5.</figcaption></figure>
<table><caption>Cuadro 1. Origen de los Aislamientos Bacterianos.</caption><thead><tr><th>A</th><th>Localidad</th><th>Variedad</th><th>Tejido</th></tr></thead><tbody><tr><td>30</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>58</td><td>Mayagüez</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>63</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>65</td><td>Adjuntas</td><td>Ozaki red</td><td>hoja</td></tr><tr><td>213</td><td>Adjuntas</td><td>Splash</td><td>hoja</td></tr><tr><td>34</td><td>Adjuntas</td><td>Ozaki red</td><td>hoja</td></tr><tr><td>147</td><td>Las Marías</td><td>Splash</td><td>hoja</td></tr><tr><td>80</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>207</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>flor</td></tr><tr><td>151</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>155</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>157</td><td>Adjuntas</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>146</td><td>Las Marías</td><td>Roja</td><td>hoja</td></tr><tr><td>187</td><td>Mayaguez</td><td>Nitta</td><td>flor</td></tr><tr><td>176</td><td>Mayaguez</td><td>Coral</td><td>flor</td></tr><tr><td>174</td><td>Adjuntas (L)</td><td>Nitta</td><td>semilla</td></tr><tr><td>161</td><td>Adjuntas (L)</td><td>Nitta</td><td>flor</td></tr><tr><td>199</td><td>Mayaguez</td><td>Philodendron</td><td>hoja</td></tr><tr><td>170</td><td>Adjuntas (L)</td><td>Nitta</td><td>hoja</td></tr><tr><td>185</td><td>Mayaguez</td><td>Ozaki red</td><td>hoja</td></tr><tr><td>Testigo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>XCD</td><td>Brasil</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

1 A= número de aislamiento de lesiones bacterianas crecidos en YDCA, XCD= Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae tipo de Brasil.
<table><caption>Cuadro 2. Patogenicidad de los aislamientos en tres variedades de anturio.</caption><thead><tr><th>A<sub>1</sub></th><th>Nitta</th><th>Ozaki red</th><th>Splash</th></tr></thead><tbody><tr><td>30</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>58</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>63</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>65</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>213</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>34</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>147</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>80</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>207</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>151</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>155</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>157</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr><tr><td>146</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>187</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>176</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>174</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>161</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>199</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>170</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>185</td><td>-</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Testigo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>XCD</td><td>+</td><td>+</td><td>+</td></tr></tbody></table>

<footnote n="1">1 A= número de aislamiento de lesiones bacterianas crecidos en YDCA; XCD= Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae tipo de Brasil.</footnote>
<table><caption>Cuadro 3. Determinación del índice de refracción y espectrofotometría de bacterias aisladas del tejido foliar del anturio (Anthurium andreanum L.).</caption><thead><tr><th></th><th>A<sup>1</sup></th><th>R<sub>f2</sub></th><th>Largo de onda<sup>3</sup>/nm</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="4">Patógenas</td></tr><tr><td></td><td>30</td><td>.50</td><td>441.0</td></tr><tr><td></td><td>58</td><td>.50</td><td>441.0</td></tr><tr><td></td><td>63</td><td>.52</td><td>441.0</td></tr><tr><td></td><td>65</td><td>.51</td><td>441.0</td></tr><tr><td></td><td>213</td><td>.53</td><td>441.0</td></tr><tr><td></td><td>34</td><td>.52</td><td>441.5</td></tr><tr><td></td><td>147</td><td>.52</td><td>441.5</td></tr><tr><td></td><td>80</td><td>.50</td><td>442.0</td></tr><tr><td></td><td>207</td><td>.51</td><td>443.0</td></tr><tr><td></td><td>151</td><td>.50</td><td>444.0</td></tr><tr><td></td><td>155</td><td>.50</td><td>444.0</td></tr><tr><td></td><td>157</td><td>.49</td><td>444.5</td></tr><tr><td colspan="4">No Patógenas</td></tr><tr><td></td><td>146</td><td>.52</td><td>444.0</td></tr><tr><td></td><td>187</td><td>.53</td><td>444.0</td></tr><tr><td></td><td>176</td><td>.53</td><td>445.0</td></tr><tr><td></td><td>174</td><td>.54</td><td>445.5</td></tr><tr><td></td><td>161</td><td>.78</td><td>446.0; 474.5</td></tr><tr><td></td><td>199</td><td>.68; .84</td><td>446.0; 472.0</td></tr><tr><td></td><td>170</td><td>.53; .61; .67</td><td>441.5; 466.5; 497.5</td></tr><tr><td></td><td>185</td><td>.61; .94</td><td>413.0; 437.0; 466.5</td></tr><tr><td colspan="4">Testigo</td></tr><tr><td></td><td>XCD</td><td>.51</td><td>445.5</td></tr></tbody></table>

1 A= número de aislamientos de lesiones bacterianas crecidos en YDCA; XCD= Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae tipo de Brasil. 2 Rf= índice de refracción del pigmento xantomonadina y otros pigmentos extraídos en metanol usando cromatografía de capa fina en silica. 3 Las medidas del espectro de absorción se tomaron en un espectrofotómetro Shimadzu mod. W 2401.
<table><caption>Cuadro 4. Característica de los aislamientos en distintos medios de cultivo.</caption><thead><tr><th rowspan="2">A<sup>1</sup></th><th colspan="4">Medios de cultivo<sup>2</sup></th></tr><tr><th>YDCA</th><th>NA</th><th>SA</th><th>CS</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="5"><strong>Patógenas</strong></td></tr><tr><td>30</td><td>6<sup>3</sup></td><td>4</td><td>9 (0)<sup>4</sup></td><td>5 g<sup>5</sup></td></tr><tr><td>58</td><td>4</td><td>3</td><td>4 (0)</td><td>2 r</td></tr><tr><td>63</td><td>5</td><td>4</td><td>6 (0)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>65</td><td>4</td><td>3</td><td>6 (0)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>213</td><td>4</td><td>3</td><td>5 (0)</td><td>3 r</td></tr><tr><td>34</td><td>5</td><td>4</td><td>6 (0)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>147</td><td>4</td><td>3</td><td>6 (0)</td><td>3 r</td></tr><tr><td>80</td><td>4</td><td>3</td><td>5 (0)</td><td>3 r</td></tr><tr><td>207</td><td>4</td><td>3</td><td>4 (8)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>151</td><td>5</td><td>4</td><td>7 (0)</td><td>6 g</td></tr><tr><td>155</td><td>5</td><td>3</td><td>7 (9)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>157</td><td>5</td><td>4</td><td>7 (9)</td><td>4 r</td></tr><tr><td colspan="5"><strong>No Patógenas</strong></td></tr><tr><td>146</td><td>3</td><td>2</td><td>4 (0)</td><td>4 v</td></tr><tr><td>187</td><td>3</td><td>4</td><td>4 (8)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>176</td><td>4</td><td>4</td><td>3 (6)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>174</td><td>5</td><td>3</td><td>3 (4)</td><td>10 r</td></tr><tr><td>161</td><td>4</td><td>4</td><td>4 (0)</td><td>4 r</td></tr><tr><td>199</td><td>3</td><td>2</td><td>3 (0)</td><td>0</td></tr><tr><td>170</td><td>3</td><td>2</td><td>4 (0)</td><td>3 a</td></tr><tr><td>185</td><td>3</td><td>3</td><td>4 (0)</td><td>3 c</td></tr><tr><td colspan="5"><strong>Testigo</strong></td></tr><tr><td>XCD</td><td>6</td><td>5</td><td>9 (6)</td><td>8 v</td></tr></tbody></table>

1 A= número de aislamiento de lesiones bacterianas, XCD= Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae tipo de Brasil. 2 Crecimiento en los medios de cultivo: agar de levadura, dextrosa y calcio (YDCA), agar de nutrientes (NA); agar de almidón (SA). 3 Diámetro de crecimiento de las colonias en mm. 4 Hidrólisis causada por la actividad de la enzima B amilasa. Agar de celobiosa-almidón (CS), 5 color de las colonias en CS: a= amarillo, c= crema, r= rojo, v= Verde, g= granular.
<table><caption>Cuadro 5. Efecto de los fertilizantes 19-6-12 (Osmocote) y 20-20-20 (AgroTotal) en el desarrollo del tifán en tres variedades de anturio.</caption><thead><tr><th rowspan="2">Variedad</th><th rowspan="2">1°</th><th rowspan="2"></th><th rowspan="2">g<fnref n="2" /></th><th colspan="7">Días</th></tr><tr><th>10</th><th>20</th><th>30</th><th>40</th><th>50</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>Fertilizantes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>19-6-12</td><td>0.80</td><td>0.1</td><td>3.2</td><td>5.9</td><td>6.9</td><td>6.2</td></tr><tr><td>(Osmocote)</td><td>0.16</td><td>0.2</td><td>2.5</td><td>5.6</td><td>13.0*</td><td>9.1</td></tr><tr><td>+</td><td>0.08</td><td>0.3</td><td>2.7</td><td>3.5</td><td>4.5</td><td>6.4</td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>20-20-20</td><td>0.19</td><td>0.2</td><td>2.6</td><td>7.7</td><td>10.0</td><td>8.4</td></tr><tr><td>(AgroTotal)</td><td>0.04</td><td>0.0</td><td>3.4</td><td>7.4</td><td>8.1</td><td>11.9</td></tr><tr><td>+</td><td>0.02</td><td>0.9</td><td>2.6</td><td>4.2</td><td>6.8</td><td>7.2</td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>Control</td><td>0</td><td>0.2</td><td>0.2</td><td>0.7</td><td>1.0</td><td>0.7</td></tr><tr><td>Control</td><td>0.80</td><td>0.2</td><td>1.4</td><td>4.7</td><td>7.0</td><td>9.2</td></tr><tr><td>19-6-12</td><td>0.16</td><td>0.0</td><td>1.0</td><td>0.0</td><td>0.2</td><td>1.0</td></tr><tr><td>(Osmocote)</td><td>0.08</td><td>0.4</td><td>1.7</td><td>3.2</td><td>3.2</td><td>4.0</td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>20-20-20</td><td>0.19</td><td>0.0</td><td>0.2</td><td>0.4</td><td>1.0</td><td>0.7</td></tr><tr><td>(AgroTotal)</td><td>0.04</td><td>0.0</td><td>1.5</td><td>1.7</td><td>1.5</td><td>2.6</td></tr><tr><td>+</td><td>0.02</td><td>0.0</td><td>1.7</td><td>1.2</td><td>1.5</td><td>2.6</td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>Control</td><td>0</td><td>0.0</td><td>0.0</td><td>0.0</td><td>0.0</td><td>0.0</td></tr><tr><td>Control</td><td>0.80</td><td>0.1</td><td>2.7</td><td>2.2</td><td>2.2</td><td>2.5</td></tr><tr><td>19-6-12</td><td>0.16</td><td>0.6</td><td>9.1</td><td>13.1*</td><td>16.6*</td><td>15.0*</td></tr><tr><td>(Osmocote)</td><td>0.08</td><td>0.2</td><td>5.2*</td><td>19.4</td><td>27.0*</td><td>18.6*</td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>20-20-20</td><td>0.19</td><td>2.6</td><td>11.6</td><td>12.7*</td><td>14.0*</td><td>17.4*</td></tr><tr><td>(AgroTotal)</td><td>0.04</td><td>0.1</td><td>7.0*</td><td>18.7</td><td>23.0</td><td>25.5</td></tr><tr><td>+</td><td>0.02</td><td>1.1</td><td>10.1</td><td>22.2</td><td>18.7</td><td>20.4</td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>+</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5"></td><td rowspan="5"></td><td>Control</td><td>0</td><td>0.0</td><td>0.0</td><td>0.0</td><td>0.0</td><td>0.0</td></tr><tr><td>Control</td><td>0</td><td>0.6</td><td>10.4</td><td>19.0</td><td>22.0</td><td>22.1</td></tr><tr><td>Dosage*</td><td>1.1</td><td>2.6</td><td>4.8</td><td>4.0</td><td>4.7</td><td>4.7</td></tr></tbody></table>

<footnote n="1">¹ I=Inoculadas con Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae (No 147) de Puerto Rico</footnote>

<footnote n="2">² g=Granos de fertilizantes por planta.</footnote>
# EL ARBOL NIM-HISTORIA Y PERSPECTIVAS DE UNA PLANTA DE USO MULTIPLE

Dr. Andrea Brechelt Proyecto "Fabricación de Insecticidas Naturales" IPL-GTZ

## RESUMEN

Los derivados de Nim (Azadirachta indica A. Juss) han sido usados tradicionalmente por agricultores de Asia y Africa contra insectos-plagas de importancia en el hogar, en medicina y en la agricultura. A diferencia de los insecticidas ordinarios basados en ingredientes activos simples, los principios de la bioactividad de Nim, son un complejo de compuestos con comportamientos y efectos fisiológicos diversos sobre los insectos.

La problemática actual de los insecticidas sintéticos, su uso indiscriminado, la creación de resistencias en plagas y como resultado la contaminación del medio ambiente tanto como el envenenamiento de animales, organismos benéficos y seres humanos ha creado una gran necesidad de encontrar insecticidas altamente eficientes y específicos pero, que respeten la flora y fauna así, como la salud humana. Por lo tanto ahora se está intentando elaborar sistemas de manejo integrado de plagas con el uso de insecticidas botánicos como el Nim. Estos insecticidas además tienen la ventaja de ser un árbol que tiene varios usos más. Sin embargo, todavía no es posible satisfacer la alta demanda ya existente de los productos extraídos del Nim por el problema de la disponibilidad del árbol en Latinoamérica y el Caribe.

## INTRODUCCION

En muchos países tropicales, el uso permanente e indiscriminado de productos químicos en el control de insectos que atacan cultivos ha causado varios problemas graves. Especialmente en la producción intensiva de hortalizas bajo riego y en el monocultivo de p.e. tomate y berenjena ha creado condiciones óptimas para la explosión de las poblaciones de varias plagas.
Hasta ahora la única solución para el agricultor ha sido el aumento de la frecuencia y así el uso inadecuado de insecticidas sintéticos. Al mismo tiempo ha aumentado la selección de individuos resistentes dentro de la población de los insectos. Resultó que para un control exitoso de la mayoría de las plagas claves en las hortalizas muy a menudo hay que aumentar la dosificación con peligros indudables para el medio ambiente tanto flora como fauna y la salud humana.

Actualmente se está investigando a nivel mundial sobre un árbol que se llama Nim (Azadirachta indica A. Juss). Originario de la India y Birmania, el Nim pertenece a la familia Meliaceae y desde hace muchas generaciones en la India lo están usando por sus efectos curativos en la medicina humana y veterinaria tanto como en la protección vegetal.

Más de 20 ingredientes activos están identificados y alrededor de 200 insectos-plagas están confirmados como controlables con extractos del Nim.

Como el Nim es un árbol de las zonas secas, bajas y tropicales y en estas zonas, especialmente en cultivos bajo riego, la problemática de la intoxicación del medio ambiente por el uso indiscriminado de insecticidas químicos ha llegado a un nivel inaceptable, la situación para una formación del árbol y el aprovechamiento de sus productos es favorable y recomendable.

## HISTORIA Y AMBITO ECOLOGICO

*Azadirachta indica* A. Juss es natural de la India. Actualmente ha sido introducido en las regiones tropicales de muchos países como Australia, China, Fijí, Papua Nueva Guinea, Las Filipinas, Mauricio, países de Asia, Africa, América Central, de Sudamérica, el Caribe, Puerto Rico e Islas Vírgenes.

Para su desarrollo óptimo necesita una precipitación entre 800 y 1800 mm anual, una temperatura de 20° C hasta 27° C y mucho sol (Tabla 1). Sin embargo, acepta también condiciones fuera de este rango óptimo y es tolerante a la salinidad, alcalinidad y sequía. Así es un
árbol de lugares marginales de zonas secas y bajas hasta 800m sobre el nivel del mar.

Azadirachta indica es de rápido crecimiento, con un tronco recto, una raíz principal muy profunda, corona redonda y puede llegar a una altura de 20-25 m. Tiene flores blancas y frutos alargados de forma oval (Tabla 2), de color verde que se torna amarilla en la madurez, las semillas miden entre 1.2 y 1.8 cm. de longitud. La floración y formación de frutos ocurre una o dos veces en épocas específicas del año dependiendo de las condiciones climáticas.

Casi todas las partes del árbol son amargas y contienen sustancias activas. Mucho antes del desarrollo de insecticidas sintéticos, fueron usadas en la protección vegetal por agricultores de la India (Bhasin 1927). Pero las sustancias del Nim también fueron conocidas por sus efectos antisépticos y curativos en la medicina humana y veterinaria como jabón, antiparásito, pasta dental, etc.

El advenimiento de los insecticidas sintéticos de amplio espectro de rápida eficiencia y de aparentemente fácil aplicación como organoclorinados, organofosforados y carbamatos, todos con una distinta toxicidad, tanto como el desarrollo rápido de la medicina humana y veterinaria moderna en los países tropicales desplazaron el Nim como fuente de productos naturales y por muchos años se olvidaron del árbol.

Sin embargo, después de conocer los efectos secundarios negativos de muchos productos sintéticos se aumentó el interés en un manejo integrado de plagas y dentro de este sistema usar insecticidas botánicos que controlan eficientemente las plagas claves, afectan menos los benéficos, no contaminan el medio ambiente ni envenenen los alimentos humanos. Entre otros como Piretrina, Nicotina y Rotenona se recordaron del Nim y hace alrededor de 20 años empezaron investigaciones y estudios intensivos para descubrir la utilidad real de productos del Nim en la sanidad vegetal moderna (Schmutterer et. al. 1981, Schmutterer y Ascher 1984, Schmutterer y Ascher 1987).

Con ayuda de la Cooperación Técnica Alemana (GTZ) se ha desarrollado desde hace 16 años un proyecto a nivel supraregional con el
objetivo de realizar investigaciones sobre varios aspectos importantes en el uso del Nim, como p.é. analizar los ingredientes activos, identificar las plagas controlables y las condiciones óptimas para del desarrollo del árbol.

Desde 1987 existe la sede exterior de este proyecto en el Instituto Politécnico Loyola/República Dominicana para realizar trabajos prácticos directamente con los agricultores y reconocer la aceptación del método en el campo.

## INGREDIENTES ACTIVOS Y SU MODO DE ACCION

Durante los últimos años, 25 diferentes ingredientes activos han sido aislados, entre ellos por lo menos 9 que afectan el crecimiento y el comportamiento de insectos (Jones et. al. 1989).

Los ingredientes típicos de *Azadirachta indica* son Triterpenoides o también llamados Limonoides. De los cuales los derivados de Azadirachtina, Nimbin y Salannin son los más importantes (Tabla 3) con efectos específicos a las diferentes fases de los insectos (Tabla 4). La composición y la proporción entre Azadirachtina, Salannin y Nimbin depende de las partes del árbol y por lo tanto los efectos del extracto varían según la materia prima (Gruber 1991). Generalmente en las semillas la concentración de los tres ingredientes es la más alta pero depende de las condiciones ambientales y el tratamiento durante el procesamiento del despulpado, secado y del análisis (Tabla 5).

Los Nimbines y Salannines causan efectos repelentes y anti-alimentarios (Gruber 1991) en el caso de varios insectos de las órdenes Coleoptera, Homoptera, Heteroptera, Orthoptera, Nemátodos, etc. (Schmutterer 1990) dependiendo también del estado del desarrollo de los insectos. En algunos casos los insectos afectados prefieren morir que alimentarse de hojas tratadas con Nim.

Azadirachtina y sus derivados causan generalmente una inhibición del crecimiento y alteran la metamorfosis. Estas sustancias provocan un desorden hormonal en diferentes etapas en el desarrollo del proceso de crecimiento del insecto influyendo las hormonas de la muda y de la juvenilidad. Así los insectos no son capaces de desarrollarse de
una manera normal y resultan deformaciones de la piel, de las alas, patas y otras partes del cuerpo. En la mayoría de estos efectos se pueden notar en los eštados larvales, como son los estados de los insectos que más se alimentan de la sustancias vegetales tratadas con Nim.

Azadirachtina también puede reducir la fecundidad de hembras y causar la esterilidad parcial o total de los huevos. Este efecto también se debe a cambios en el equilibrio hormonal.

El aceite, parte importante de los productos del Nim, inhibe la deposición de los huevos y lleva a una alteración del comportamiento de varios insectos.

Una descripción de los diferentes efectos biológicos se encuentran en Schmutterer (1990) y Gruber (1991).

La extracción de los ingredientes activos es posible de tres maneras:

-Extraer el aceite de Nim, que contiene ca. 5% de los ingredientes activos, mezclarlo con emulsificantes y aplicarlo en agua como cualquier otro aceite (ULV). Esta forma del Nim tiene un espectro de acción limitado y el peligro de fitotoxicidad por el uso del producto es demasiado concentrado.

-Hacer un concentrado usando las semillas desaceitadas con solventes orgánicos como alcoholes. En el mercado de los Estados Unidos ya existen dos productos a base de Nim, se llaman Margosan-O y Azatin, pero solamente para ornamentales.

-Hacer un simple extracto acuoso usando semillas molidas o también las semillas desaceitadas con 50 gramos por litro de agua, dejando reposar 8 horas. La cantidad puede ser más pequeña dependiendo del contenido de Azadirachtina de las semillas y dependiendo también del tipo de plaga.

En el trabajo diario con los productos en la República Dominicana, se recomienda el extracto acuoso. Para éste existen recomendaciones concretas para más de 10 cultivos y contra más de 20 insectos-plagas.
Por su modo de acción y según muchas investigaciones realizadas, Nim no es tóxico para benéficos, animales de sangre caliente o para el hombre (Schmutterer 1990). Sin embargo, se puede suponer que artrópodos parasíticos especialmente sus larvas que absorben una gran cantidad de Azadirachtina por sus víctimas también van a estar afectados en una manera u otra por el Nim. Por otro lado, en comparación al control convencional de plagas el método Nim fomenta su dinámica y la densidad de su población.

La mezcla de varios ingredientes activos en productos de Azadirachtaindica, evita el desarrollo rápido de individuos resistentes dentro de la población. Según ensayos de Völlinger (1989), Plutella xylostella tratado permanentemente con una solución de 16% Azadirachtina después de 42 generaciones todavía no enseñó resistencia mencionable.

Uno de los problemas en la práctica es la falta de persistencia de los ingredientes activos en el campo. Es cierto que así no sucede una acumulación de las sustancias en el medio ambiente que pueda ser un peligro para el equilibrio del mismo, pero también exige aplicaciones muy frecuentes que pueden causen pérdidas económicas por la preparación y el material usado. Hasta ahora los productos del Nim solamente se mantienen 9 días en el campo con una concentración aceptable.

## INSECTOS AFECTADOS

Según Jacobson (1987) y Saxena (en prensa) los derivados de Nim afectan alrededor de 200 especies de insectos pertenecientes a los órdenes Coleóptera, Díptera, Heteróptera, Hemíptera, Homóptera, Hymenóptera, Lepidóptera y Ortóptera en adición a 3 ácaros y 5 nemátodos (Tabla 6). Áunque por ser tan específico no afecta o afecta poco al hombre, benéficos y animales de sangre caliente. El rango de plagas que se puede controlar con Nim es muy amplio y así se puede sustituir una gran cantidad de insecticidas sintéticos.
## OTROS USOS

A parte del uso como insecticida botánico existen varias posibilidades más de aprovechar el árbol y/o sus productos (Tabla 7).

Como árbol, su uso en la reforestación en zonas marginales, su plantación como rompeviento y contra erosión, tanto como el aprovechamiento de su sombra y su madera como tal es indudable.

Las ramas, la corteza y las hojas se introducen como materia prima para medicina, pasta dental, cosmética, forraje y abonos orgánicos, entre otros. Casi el mismo uso y mucho más se puede dar a las semillas. Las semillas generalmente se usan para la multiplicación y en forma de extractos acuosos, aceite, extracto alcohólico, etc., como insecticida.

Además del potencial grande como insecticida casi todas las partes del árbol tienen todavía otras funciones o se pueden desarrollar otros productos para ser usados. Esta situación se presenta raras veces en la naturaleza y hace el Nim tan valioso.

## CONCLUSION

### Situación actual

En la actualidad, varios países están realizando programas o proyectos con Nim, p.e. en Birmania, Ceylán, La India, Niger, Benin, Ecuador, Venezuela, Costa Rica, Nicaragua, República Dominicana y Haití. En otros están recién empezando.

Es cierto que en ningún otro país los trabajos con productos del Nim están tan avanzados como en el caso de la República Dominicana, realizando ya el control de plagas con el Nim directamente con los agricultores y colaborando con una gran cantidad de organizaciones estatales, no estatales y privadas para difundir informaciones y el método también en zonas donde hasta ahora no se influya directamente. En la zona seca en el sur de la República Dominicana muchos agricultores que cultivan tomate, berenjena, molondrón, repollo,
pepino, maíz y otras hortalizas usan Nim como único insecticida y la demanda crece cada día más.

Generalmente aplican el extracto acuoso y para tener suficiente semillas ellos mismos siembran el árbol y preparan su producto sin ser dependientes de otras organizaciones. Lamentablemente esta situación no se presenta en todos los casos, porque la multiplicación masiva de árboles de Nim se inició en la República Dominicana hace cinco (5) años y la cantidad todavía no es suficiente.

¿Cuántos árboles son necesarios para aplicar una superficie de 1 hectárea durante 1 año con 50 gr. por litro de extracto acuoso?

Si la frecuencia promedio es de 20 aplicaciones anualmente y se usa ca. 436 litros por hectárea, un agricultor va a demandar 436 kg de semillas secas para la preparación de insecticida, dependiendo del cultivo y la incidencia de plagas. La producción de semillas por árbol depende de su edad y las condiciones climáticas, pero generalmente es:

<table><thead><tr><td>Edad del árbol en años</td><td>Producción Anual</td><td>Cantidad para la Producción de 436 kg</td></tr></thead><tbody><tr><td>3</td><td>5 kg</td><td>87</td></tr><tr><td>6</td><td>10 kg</td><td>44</td></tr><tr><td>10</td><td>20 kg</td><td>21</td></tr><tr><td>Más de 10</td><td>25 kg</td><td>17</td></tr></tbody></table>

A esta cantidad no se ha llegado en todas las regiones. Sin embargo, en otros lugares hay mucho Nim en producción sin usarlo y está desarrollándose un mercado de semillas para satisfacer la demanda.

## Perspectivas

En el futuro en la República Dominicana la propagación del uso de Nim más y más será una responsabilidad de organizaciones que realizan extensión agrícola en el campo. Como objetivo más impor-
tante se presentará la siembra del árbol y la producción suficiente de semillas para cubrir la demanda a nivel nacional.

A nivel internacional y después de verificar los resultados, también en la República Dominicana es importante aprovechar todas las ventajas y usos del Nim, tanto en diferentes formas de insecticidas como otros productos (Tabla 7). Los productos como jabón, pasta dental, aceite formulado, extractos alcohólicos, junto con otros son un potencial increíble, pero requieren un cierto nivel de comercialización y producción industrial. A largo plazo el uso múltiple de *Azadirachta indica* llegará a hacer la siembra del árbol más económica y aceptable.

Aparte del uso múltiple la situación dada con los insecticidas sintéticos con resultados poco satisfactorios y a veces peligrosos, supuestamente aumentará en el futuro el deseo de encontrar y usar una alternativa como el Nim con efectos positivos a su propagación y aceptación. Dentro de un manejo integrado de plagas, Nim puede ser un insecticida botánico económico, eficiente y seguro.

Por el momento parecę ser que la única restricción para el uso de los productos del Nim, tanto en la República Dominicana como en otros países es el bajo número de árboles productores de frutos. Solucionar este cuello de botella será la tarea de los próximos años.

## Agradecimiento

Agradezco al Ing. Jehová Peña Cornielle y la Sra. Evelin Jiménez por su valiosa ayuda en la redacción del texto.
<table><caption>Tabla 1. Pretensión al Lugar y Ambito Ecológico de Azadirachta indica para los Factores Lluvia, Suelo, Temperatura y Luz</caption><thead><tr><th>LIMITE DEL CRECIMIENTO</th><th>CRECIMIENTO Y PRODUCCION DE FRUTOS REDUCIDOS</th><th>AMBITO OPTIMO DEL CRECIMIENTO VEGETATIVO/GENERATIVO</th><th>CRECIMIENTO Y PRODUCCION DE FRUTOS REDUCIDOS</th><th>LIMITE DEL CRECIMIENTO</th></tr></thead><tbody><tr><td>≤ 300</td><td>500</td><td>Precipitaciones 800 anuales 1800 (mm)</td><td>2000</td><td>2500</td></tr><tr><td>+4 (noche)</td><td>+10</td><td>+20 Temperatura +27 (°C)</td><td>+40</td><td>+49</td></tr><tr><td>≥ 85% Arena ≥ 30% Piedras</td><td>75-85 % Arena</td><td>Suelo (%Arenas finas 0-0,2mm) 50-75% Arena Arcilla 25-45%</td><td>Arcilla 45-70%</td><td>Arcilla ≥70%</td></tr><tr><td>≤1,8 x 1,8</td><td>3 x 3</td><td>Distancia entre las plantas (m) 44 x 5 ≥ 7 X 7</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
<figure><img src="image_9.png" /><figcaption>TABLA 2:
EL ARBOL NIM (Azadirachta indica A. Juss) Y SUS PARTES</figcaption></figure>
<figure><img src="image_10.png" /><figcaption>TABLA 3:
ESTRUCTURA MOLECULAR DE AZADIRACHTINA, NIMBIN Y SALANNIN</figcaption></figure>
<table><caption>TABLE 4. Ingredientes activos de las semillas de Azadirachta indica A. Juss y sus efectos principales contra las plagas de cultivos (según Gruber, 1991 adaptado).</caption><thead><tr><th rowspan="2">Plagas (Insectos, nemátodos)</th><th colspan="5">Grupos de compuestos del Nim y sus efectos más importantes</th><th rowspan="2">Productos del Nim</th></tr><tr><th>Nimbine<br>Efectos repelentes</th><th>Salaminine<br>Antialmentarios</th><th>Azadirachtine</th><th>Inhibición de<br>poner los hato<br>voes</th><th>ACEITES</th></tr></thead><tbody><tr><td>Lepidoptera Coleoptera<br>Hymenoptera (Larvas)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Extractos de las semillas, rícos en azadirachtina</td></tr><tr><td>Coleoptera (Adultos)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Extractos de las semillas, con aceite y azadirachtina; aceite de Nim.</td></tr><tr><td>Diptera (Larvas)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Extractos de las semillas, rícos de Azad.</td></tr><tr><td>Homoptera, Heteroptera<br>(Larvas, ninfas)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Aceite de las semillas, enriquecidas de azadirachtina</td></tr><tr><td>Homoptera, Heteroptera<br>(Adultos)</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Acetos de las semillas, extractos de hojas con Azad</td></tr><tr><td>Orthoptera</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Extractos de semillas y hojas con aceite. Extracto del aceite con azadirachtina</td></tr><tr><td>Tysanoptera</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Extractos de las semillas con aceite</td></tr><tr><td>Nemátodos</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Extractos de hojas y semillas rícos en Nimbin.</td></tr></tbody></table>
<table><caption>TABLA 5. CONTENIDO DE AZADIRACHTIN Y ACEITE EN MUES-TRAS DE SEMILLAS ORIGINADO DE NICARAGUA, HAITI, REP. DOM. (Gruber 1991, ERMEL 1992)</caption><thead><tr><th>Origen de la muestra</th><th>Contenido de aceite</th><th>Contenido de Azadirachtina en la materia seca</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="3">NICARAGUA</td></tr><tr><td>* Sébaco I</td><td>41.8%</td><td>4.03 mg/g x</td></tr><tr><td>* Sébaco II</td><td>42.2%</td><td>4.00 mg/g x</td></tr><tr><td>* Sta. Isabel</td><td>41.0%</td><td>3.83 mg/g x</td></tr><tr><td>* Mateare</td><td>40.3%</td><td>5.49 mg/g x</td></tr><tr><td>* San Francisco</td><td>42.15%</td><td>4.03 mg/g x</td></tr><tr><td colspan="3">HAITI</td></tr><tr><td>* Muestra 1</td><td>50.9%</td><td>4.20 mg/g</td></tr><tr><td>* Muestra 2</td><td>52.6%</td><td>2.70 mg/g</td></tr><tr><td>* Muestra 3</td><td>46.3%</td><td>2.50 mg/g</td></tr><tr><td>* Muestra 4</td><td>50.6%</td><td>2.80 mg/g</td></tr><tr><td>* Muestra 5</td><td>47.3%</td><td>2.80 mg/g</td></tr><tr><td colspan="3">REPÚBLICA DOMINICANA</td></tr><tr><td>* Baní</td><td></td><td>4.90 mg/g</td></tr><tr><td>* Azua</td><td>51.2%</td><td>4.20 mg/g</td></tr><tr><td>* Cumayasa</td><td>49.7%</td><td>2.60 mg/g</td></tr><tr><td>* San Cristóbal</td><td>46.4%</td><td>4.20 mg/g</td></tr><tr><td>* Barahona</td><td>49.6%</td><td>5.40 mg/g</td></tr><tr><td colspan="3">X Promedio de cuatro (4) años (1986-89)</td></tr></tbody></table>
<table><caption>TABLA 6: Especies de artrópodos afectados por los derivados del Nim. (Jacobson 1986, Saxena 1988 adaptado)</caption><thead><tr><th>NOMBRE CIENTIFICO</th><th>NOMBRE COMUN</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="2"><strong>COLEOPTEROS:</strong></td></tr><tr><td>Callosobruchus anális (Fab.)</td><td>gorgojo pulsor</td></tr><tr><td>Diabrotica balteata LeConte</td><td>cotorrita Verde manchada</td></tr><tr><td>Diabrotica undecimpunctata Mannerheim</td><td>cotorrita punctata</td></tr><tr><td>Dicladispa armigera Oliver</td><td>hispa del arroz</td></tr><tr><td>Epilachna varivestis Mulsant</td><td>escarabajo mexicano del frijol</td></tr><tr><td>Epitrix fuscula Crotch</td><td>pulguita de la berenjena</td></tr><tr><td>Henosepilachna vigintioctopunctata (Fab.)</td><td>escarabajo coccinelido</td></tr><tr><td>Leptinotarsa decemlineata (Say)</td><td>escarabajo colorado de papas</td></tr><tr><td>Madurasia obscurella Jacoby</td><td>escarabajo galerucido</td></tr><tr><td>Myllocerus sp.</td><td>escarabajo grisáceo del algodón</td></tr><tr><td>Ooteca bennigseni Weise</td><td>escarabajo del follaje</td></tr><tr><td>Schematiza cardiae Barber</td><td>escarabajo</td></tr><tr><td colspan="2"><strong>DIPTEROS:</strong></td></tr><tr><td>Aedes togoi (Theobald) (= Anopheles stephensi Liston)</td><td>mosquito</td></tr><tr><td>Anastrepha ludens (Loew)</td><td>mosca del fruto de México</td></tr><tr><td>Anastrepha suspensa (Loew)</td><td>mosca del fruto del Caribe</td></tr><tr><td>Calliphora vicina R-D</td><td>mosca voladora azul</td></tr><tr><td>Culex quinquefasciatus Say.</td><td>mosquito sureño del hogar</td></tr><tr><td>Dacus cucurbitae Coquillet</td><td>mosca del melón</td></tr><tr><td>Liriomyza sativae Blanchard</td><td>minador de hojas de hortalizas</td></tr><tr><td>Liriomyza trifolii (Burgess)</td><td>minador de hojas de cebolla</td></tr><tr><td>Melanagromyza abtusa (Malloch)</td><td>mosca minadora del legumbre del frijol.</td></tr><tr><td>Musca domestica L.</td><td>mosca del hogar (doméstica)</td></tr><tr><td>Ophiomya phaseoli (Tryon)</td><td>mosca del frijol</td></tr><tr><td>Orseolia oryzae (Wood-Mason)</td><td>mosca de la agalla del arroz</td></tr></tbody></table>
Phormia regina (Meigen)

Phormia terraenovae R-D

Phytomyza ilicis Curtis

mosca voladora negra

mosca voladora

minador de hojas

## HEMIPTEROS:

Antestiopsis orbitalis

bechuana (Kirk.)

Calocoris angustatus Leth.

Leptocorisa oratorius F.

Scotinophora coarctata F.

chinche del café Este Africano

chinche de la espiga del sorgo

chinche del arroz

chinche negro de Palawan

## HOMOPTEROS:

Amrasca devastans (Distant)

Aphis citricola van der Goot

Aphis gossypii Glover

Bemisia tabaci (Gennadius)

Diaphorina citri Kuway

Empoasca fascialis (Jac.)

Empoasca lybica de Berg.

Jacobiella facialis

Lipaphis erysimi (Kalt.)

Melanaphis sacchari (Zehntner)

Myzus persicae (Sulzer)

Rhopalosiphum maidis (Fitch)

Rhopasiphum nymphaeae (L.)

Toxoptera aurantii (Fonscolombe)

salta hoja del algodón

áfido de los cítricos

áfido del algodón

mosca blanca

psilido de los cítricos

salta hoja del algodón

salta hoja del algodón

salta hoja de la berenjena

áfido de la mostaza

áfido de la caña de azúcar

áfido verde

áfido del maíz

áfido de lalila de agua

áfido negro de los cítricos

## HYMENOPTEROS:

Athalia lugens proxima (Klug.)

Fenusa pusilla (Lepeletier)

Formica polyctena Foerster

mosca de la mostaza

minador de la hoja

hormiga de la madera
LEPIDOPTEROS:

Achea janata L. semi-medidor de la higuereta

Alabama agrillacea gusano medidor del algodón

Amsacta moorei Butler oruga peluda roja

Boarmia (=Ascotis) selenaria (Schiff) medidor gigante

Chilo partellus (Swinhoe) - barrenador manchado del tallo

Corcyra cephalonica (Stainton) mariposa del arroz

Crocidolomia binotalis Zell. oruga de la cabeza del repollo

Diaphania hyalinata (L.) oruga verde del pepino

Earias fabia Stol (=Earias vittella (F.)) oruga manchada de la capsula

Euchysops cnejus (F.) mariposa azul

Feltia subterranea gusano cortador

Helicoverpa Zea gusano bellotero

Heliothis armigrea Hubner oruga bellotera del algodón

Heliothis virescens (Fabricius) gusano de botones del tabaco

Hellula undalis (F.) perforador brote del repollo

Keiferia lycopersiella minador de las hojas del tomate

Maliarpha separatella Rag. barrenador blanco

Manduca sexta (Linnaeus) gusano verde del tabaco

Maruca testulalis (Geyer) barrenador de la legumbre del guandul

Mocis latipes langosta medidora de gramineas

Ostrinia furnacalis (Guenee) barrenador asiático del maíz

Ostrinia nubilalis (Hubner) barrenador europeo del maíz

Phthorimaea operculella (Zell) polilla de la papa

Phyllocnistis citrella Stainton minador hoja de los cítricos

Pieris brassicae (L.) mariposa del repollo

Pieris rapae (L.) oruga del repollo

Plutella xylostella (L.) palomilla del repollo

Scirpophaga incertulas (Wlk.) taladrador amarillo del tallo del arroz

Scrobipalpa ergasima (Meyr.) taladrador del tallo del tabaco

Selepa docilis But. noctuido

Sesamia nonagrioides (Lef.) taladrador del tallo
<table><tr><td>Spilosoma obliqua (Wlk.)</td><td>oruga peluda del yute</td></tr><tr><td>Spodoptera eridania (Cram.)</td><td>gusano de flota</td></tr><tr><td>Spodoptera exigua (Hübner)</td><td>gusano de la cebolla</td></tr><tr><td>Spodoptera frugiperda (J.E. Smith)</td><td>gusano cogollero del maŕz</td></tr><tr><td>Spodoptera mauritia<br>acronynctoides (Boisd.)</td><td>gusano de flota del arroz</td></tr><tr><td>Syllepta derogata (F.)</td><td>enrolador hoja del<br>molodrón</td></tr><tr><td>Trichoplusia ni (Hb.)</td><td>gusano medidor del repollo</td></tr></table>

NEMATODO:

<table><tr><td>Heterodera glycines<br>(Ichino, 1952)</td><td>nemático que forma quistes<br>en soya.</td></tr><tr><td>Meloidogyne incognita<br>(Kofoid & White)</td><td>nemático de agalla</td></tr></table>

ORTOPTEROS:

<table><tr><td>Blatta orientalis L.</td><td>cucaracha oriental</td></tr><tr><td>Blattella germanica (L.)</td><td>cucaracha alemana</td></tr><tr><td>Byrsotria fumigata G-M</td><td>cucaracha</td></tr><tr><td>Gromphadorhina portentosa<br>(Schaum)</td><td>cucaracha</td></tr><tr><td>Periplaneta americana (L.)</td><td>cucaracha americana</td></tr><tr><td>Supella longipalpa (F.)</td><td>cucarachas con banda marrones</td></tr><tr><td>Zonocerus variegatus L.</td><td>salta monte variegado</td></tr></table>

OSTRACODA (CLASE CRUSTACEA):

<table><tr><td>Heterocypris luzonensis Neale</td><td>ostracodo</td></tr></table>

THYSANOPTERA:

<table><tr><td>Frankliniella occidentalis<br>(Pergande)</td><td>trips de las flores</td></tr><tr><td>Stenchaetothips biformis<br>(Bagnall)</td><td>trípido del arroz</td></tr></table>
<table><caption>Tabla 7. Posibilidades de Utilización del Arbol Nim.</caption><thead><tr><th rowspan="2">ARBOL</th><th colspan="5">NIM</th></tr><tr><th>MADERA</th><th>CORTEZA, RAMA</th><th>HOJAS</th><th>FLORES</th><th>SEMILLAS</th></tr></thead><tbody><tr><td>-Reforestación</td><td>-Para construcción</td><td>-Medicina</td><td>-Forraaje</td><td>-Miel</td><td>-ACEITES</td></tr><tr><td>-Sombra</td><td>-Leña</td><td>-Materia colorante</td><td>-Abono orgánico</td><td></td><td>■ Medicina</td></tr><tr><td>-Rompeviento</td><td>-Carbón</td><td>-Pasta de dientes</td><td>-Medicina</td><td></td><td>■ Jabón</td></tr><tr><td>-Retención de agua</td><td>-Otros productos de madera</td><td>-Cosméticas</td><td>-Insecticida</td><td></td><td>■ Combustible<br>■ Insecticida</td></tr><tr><td>-Protección contra la erosión</td><td></td><td>-Materia adhesiva</td><td></td><td></td><td>-TORTA<br>■ Torta<br>■ Nemáticida<br>■ Abono orgánico<br>■ Inhibición de nitrificación</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>-POLVO DE SEMILLAS COMO INSECTICIDAS</td></tr></tbody></table>
BIBLIOGRAFIA

Bhasin, H.D. 1927: *Chem. Abstr.* 21, 2754.

Gruber, A. K. 1991: *Wachstum, Fruchtertrag und Azadirachtingehalt der Samen von Antelaea azadirachta L. auf verschiedenen Standorten in Nicaragua*. Dissertation Berlin.

Jacobson, M. 1987: *Neem research and cultivación in the western hemisphere*. In: *Proc. 3rd Int. Neem Conf., Nairobi 1986, Eschborn (GTZ)*, 33-44.

Jones, Ph. S., Ley, S. V., Morgan, E.D. and Santafianos, D. 1989: *The Chemistry of the Neem Tree*. In: *Focus an Phytochemical Pesticides Vol. 1: The Neem Tree, Boca Raton, Florida*. Ed. Jacobson, M., 19-46.

Schmutterer, H. 1990: *Properties and potentials of natural Pesticides from the Neem Tree, Azadirachta indica*. *Annu. Rev. Entomol.* 35, 271-297.

Schmutterer, H. and Ascher, K. R. S. 1984: *Proc. 2nd. Int. Neem Conf. Rauischholzhausen 1983, Eschborn (GTZ)*.

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Schmutterer, H.; Ascher, K. R. S. and Rembold, H. 1981: *Proc. 1st Int. Neem Conf., Rottach-Egern 198Q, Eschborn (GTZ)*.

Vollinger, M. 1987: *le possible development of resistance against neem seed Kernel extract and deltamethrin in Plutella xylostella*. In: *Proc. 3rd. Int. Neem Conf., Nairobi, 1986, Eschborn (GTZ)*, 543-554.
SIMPLE, NEEM-BASED INSECTICIDE
PRODUCTION AND USE BY HAITIAN SMALL
FARMERS IN HAITI

By Ariel Azael*

Neem (Azadirachta indica) was introduced to Haiti in the early 1970's. About 1,000,000 neem trees can now be found scattered throughout the country, mainly in the Cul-de-Sac, Leogane and Petit-Goave Plains. These trees all originate from 12 seeds harvested from a single tree in Africa.

Originally planted for reforestation, not much attention was given to alternative uses of neem until 1977, when its insecticide properties were reported in the "Turrialba" review. These beneficial properties were confirmed by the present author during field trials with beans.

More recently, Dominique (1990) working with corn found that aqueous extracts from nature neem seeds could be used to effectively control the Fall Army Worm (Spodoptera frugiperda) both by repellency and disturbance of larval development.

Since March 1992, the IICA Office in Haiti has been involved in the development of a humanitarian assistance project called in creole "Manje Jodi ak Demen" (Food for Today and Tomorrow). The primary objective of this project is to assist peasant farmers to increase production of their most staple crops such as corn, beans, sorghum and rice. A major emphasis is devoted to increasing production using simple, low cost technologies which involve local resources.

This approach will result in a sustainable improvement to agricultural production.

IICA is working with farmers in six areas throughout Haiti: Dubourg in the North, Maribaroux in the Northeast, Deux Barriers and Mauge in the Artibonite, and Vialet and Tapion in the South. In addition to

<footnote>* Specialist in technology generation and transfer at IICA-Haiti.</footnote>
other farming techniques, farmers are trained to produce and use three kinds of neem-based insecticides: Neem Juice (an aqueous extract of mature neem seeds), Neem Oil and Neem Paste (cake residue after oil extraction).

Neem juice is prepared by hand-depulping of mature neem seeds and subsequent hand-grinding in the rural mortar called a "pilon". The aqueous extract (three handfuls of depulped seeds in one gallon of water is sprayed with an artesanal broom over the corn plants. Neem paste is prepared from stone-dehusked neem sedds, ground in a mortar and the oil extracted by hand trituration. Neem oil is used at the rate of 2 small spoonfuls in one large "marmite" (about 2,5 kg) of beans and corn. Neem paste is put in the corn plant verticillium where rain or dew will perform the aqueous extraction.

Neem Juice is now being used to effectively control the Fall Army Worm in corn; neem paste is being used for the same purpose in areas where water is scarce, and neem oil is used to control insect pests in corn and bean seeds stocked for future seeding.

Farmers in the project areas have also discovered from their own experimentation that neem juice can be use to control external parasites in cattle and pigs.

The second phase of the project will target farmers in 14 additional zones.
EL USO DEL NIM Y SU ACEPTACION POR
PEQUEÑOS AGRICULTORES DE VEGETALES EN
ZONAS ARIDAS DE REPUBLICA DOMINICANA

Ing. Agrón. Juan Adonys de los Santos
"Fabricación de Insecticidas Naturales" IPL/GTZ

En la República Dominicana en zonas como el Sur/Suroeste del país, existen condiciones climatológicas y necesidades del mercado (exportación y agroindustrias), que no permiten una rotación de cultivos; dando como resultado una alta incidencia de plagas y a su vez altos costos de producción por el uso indiscriminado de plaguicidas; sumándose con éstos, residuos en productos agrícolas, la contaminación del ambiente y resistencias de las plagas, contra los insecticidas más comunes.

En investigaciones hechas con cuarenta agricultores, se ha probado que:

* En comparación con la forma tradicional de cultivar y la tecnología Nim, los costos totales difieren según el cultivo, estableciéndose diferencias de igualdad o más bajos.

* Por la reducción del uso de insecticidas químicos se disminuyen los costos para la aplicación de los mismos.

* Por la preparación trabajosa del insecticida natural Nim y la alta frecuencia de la aplicación se aumentan los costos de mano de obra.

Los resultados mencionados anteriormente, junto con otras ventajas del árbol Nim por ej. falta de residuos y contaminación, producción de madera, leña, carbón y sombra ha causado un gran aumento de la demanda y la aceptación en el campo.

Los agricultores antes señalados, han aceptado con facilidad la tecnología Nim; obteniendo sus propias experiencias con el insecticida, que se extrae mezclando las semillas molidas del árbol (Azadirá-
chta indica) con agua; controlando las plagas más importantes como, la mosca blanca (Bemisia tabaci), algunos gusanos, chinches en la berenjena, pepino, tomate, ají, molondrón y otras que detallaremos más adelante en orden de mayor control.

Para la preparación del extracto acuoso; deben cosecharse las semillas maduras, directamente de la planta o recogiéndolas en el suelo después de caer, luego se procede a despulpar; la pulpa es dulce, por lo que se debe lavar para un mejor secado, luego se recomienda dar un sol directo, pero sostenidas en sacos u otros materiales que eviten el contacto con el lugar donde se sequen; después se le deben dar tres o cuatro soles sombreados, para que la semilla pierda humedad sin ser afectada su sustancia activa, a causa del calor directo del sol. Otro paso importante es la molienda, se hace en un pilón o mortero, un molino eléctrico o manual, de esta harina se toman 10 kg. para un tanque de 55 galones de agua, dicha cantidad se utiliza en 4 a 8 tareas, dependiendo del tipo de cultivo, tamaño de la planta, incidencias de las plagas y manejo del aplicador. Los agricultores reciben del proyecto al precio de costo, la semilla molida importada desde Haití, y otros equipos, como tanques, canastos, coladores, para facilitar las aplicaciones. El polvo debe mezclarse 8 a 24 horas antes de la aplicación, para lograr mejor disolución de la sustancia activa en la mezcla.

Al momento de colar, se debe mover bien la mezcla, introduciéndole lentamente el canasto, esta práctica facilita el colado.

En la aplicación, se trata de cubrir por debajo de las hojas, para localizar mayor número de insectos adultos, huevos, larvas y pupas.

Finalmente, queremos especificar, que el Nim no es un mata todo, sino que su efecto va a depender del tipo de insecto y hábitos alimenticios del mismo. En el caso de las larvas, la acción es hormonal, inhibiendo procesos tales como: formación y desprendimiento de la piel, formación de óvulos y huevos; también la locomoción y el comportamiento.
Plagas fáciles de combatir con Nim:

* Gusanos de Mariposas

* Moscas Blancas (*Bemisia tabaci*)

* Afidos

* Chinches pequeños

* Larvas de Moscas Minadoras

Plagas menos fáciles de combatir:

* Taladradores de Frutas

* Saltamontes

* Gorgojos

* Taladradores de Tallos

Plagas difíciles de combatir:

* Acaros

* Thrips

* Epitreix
LIBERACION EXPERIMENTAL DE *Trichogramma* spp. EN UN CAMPO DE YUCA EN MOCA, REP. DOM.

Angel A. Peña¹, Ramón E. Guzman² y Rosa Guzman³

INTRODUCCION

Los efectos indeseables provocados por el uso indiscriminado de los pesticidas, han llegado a ocasionar lo que se ha llamado "el síndrome del círculo vicioso de los pesticidas", o sea el uso de dosis de insecticidas cada vez más altas, de productos cada vez más tóxicos, y con una frecuencia mucho más próxima, hecho que ha producido la ruina de muchos productores agrícolas en varios países (Flint and van den Bosch, 1981).

A su vez, la dependencia exclusiva en el uso de insecticidas, ha provocado muchas distorsiones ecológicas, entre las más relevantes se pueden citar las tres Rs, esto es, resistencia, resurgencia, y reemplazamiento o explosión de plagas secundarias (Pedigo 1984).

Esta situación ha provocado un interés inusitado en la búsqueda de alternativas para el control de plagas, surgiendo como relevante entre estas últimas el control biológico de insectos. Dentro de la gama de tácticas disponibles del control biológico: control biológico clásico, incrementación y conservación y otros, las liberaciones inundativas e inoculativas han adquirido gran relevancia en los últimos años como métodos para mantener altar poblaciones de enemigos naturales en los agroecosistemas.

Diversas especies de *Trichogramma* spp. han sido usadas en liberaciones inundativas en varios países para atacar huevos de *Manduca sexta* en tabaco, *Heliothis zea* en algodón y en otros cultivos (Herzog & Funderburk, 1985). Cuatro razas de T. evanes-

<footnote>1, 2, 3 Encargado y técnicos del proyecto producción masiva de *Trichogramma* del Laboratorio de Control Biológico, Facultad de Ciencias Agronómicas y Veterinarias, Finca Exp. Engombe, UASD.</footnote>
cens han sido caracterizadas en Rusia en diferentes áreas y usadas contra varios grupos de hospederos: noctuidae, tortricidad y pylalidae (Caltagirone, 1985).

En la República Dominicana se inicia formalmente la producción de *Trichogramma* spp. en 1989 cuando es inaugurado el Laboratorio de Producción Másiva de *Trichogramma* spp. bajo la iniciativa del Dr. Modesto Reyes. Este laboratorio está ubicado en la Finca Experimen-tal de Engombe de la Facultad de Ciencias Agronómicas y Veterina-rias de la Universidad Autónoma de Santo Domingo. Desde entonces, el laboratorio se ha mantenido produciendo el parasitoide a niyel experimental pero no tenemos datos hasta ahora de como se comporta a nivel de campo.

El objetivo del presente trabajo es realizar liberaciones y evaluaciones experimentales a nivel de campo con miras a comenzar a operar el laboratorio a nivel comercial, mediante la venta de huevos parasitados con *Trichogramma* spp. a los productores agrícolas.

# MATERIALES Y METODOS

## a) Material Biológico

El material biológico utilizado consistió en huevos de la palomilla de los granos almacenados *Sitotroga cerealella* Olivier, parasitados con *Trichogramma* spp. Las polillas pertenecen a la cría que se mantiene en el laboratorio desde el momento de su inauguración. Los parásitos proceden de colecciones realizadas en varias provincias del país, tales como: La Vega, Moca, Esperanza, Mao, Santiago Rodríguez, San Cristóbal y Baní.

De estas colecciones la procedente de Mao, Valverde fue la que con mayor éxito se reprodujo en el laboratorio, la cual denominamos "Cepa Mao". Posteriormente a la primera liberación colectamos huevos del gusano de flota de la yuca *Erinnyis ello* L. (Lepidoptera: Sphingidae) parasitados por *Trichogramma* spp. en la ciudad de Moca. Los parasitoides emergidos fueron usados para iniciar otra
colonia, la cual denominamos "Cepa Moca". El material utilizado como alimento para la cría de la palomilla es sorgo rojo (*Sorghum saccharatum* (L.))

## b) Proceso de Producción

La producción de *Trichogramma* spp. se realiza en una sala de cría. En dicha sala hay varios gabinetes, cada uno de los cuales tiene las siguientes dimensiones: 6'3" de alto, por 21.6" de ancho así como de profundidad. Este gabinete cuyo marco está hecho de tubos galvanizados de 17 mm de diámetro. Posee, además, 3 angulares metálicos a cada lado separados por una distancia de 16.7" cada uno.

Debajo del último angular el marco está formado por tubos galvanizados. Desde este marco al piso hay una distancia de 22". Este último marco está forrado de un plástico transparente grueso formando una especie de embudo en cuya parte más estrecha se fija la tapa de un frasco plástico grande cuyo centro con 96 mm de diámetro le fue cortado, a la cual luego se ajusta el frasco plástico para colectar las polillas y sus huevos.

En cada uno de los angulares se colocan 4 bandejas de madera, de manera que cada gabinete contiene 12 bandejas. Dichas bandejas están hechas por trozos de madera de 2.5 cm de espesor y 5 cm de ancho. Están formadas por un marco con la pieza superior de 49.5 cm de largo y la inferior de 45 cm; las dos piezas laterales miden 38 cm desde la superior a la inferior. Además, hay una pieza en el centro del marco. El ancho del marco es de 45 cm. Este marco está cubierto completamente de saran, excepto en la parte frontal que tiene una abertura de 2.5 cm de alto a todo lo largo del marco. La malla está fijada a la madera mediante planchas finas de madera.

Estas bandejas son llenadas con 10 lbs. de sorgo rojo cada una. Luego de llenado el gabinete con las bandejas e infestado con los huevos de la polilla, es cerrado con tela. La tela es sellada luego, junto al "embudo" plástico con cinta pegante (masking tape). Los potes
plásticos son retirados diariamente de los gabinetes y sustituidos por otros vacíos.

Las polillas contenidas en los frascos retirados son llevadas a la sala de cernido, donde luego de pasar por una serie de cernidores con diferentes diámetros de aberturas, se obtienen los huevos limpios. Estos huevos son luego desinfectados con Tetracloruro de Carbono para eliminar cualquier contaminante.

Una vez desinfectados los huevos, son llevados a la sala de parasitación. Allí son adheridos a cintas de cartulina de 20 pulg. cuadradas (10" de largo x 2" de ancho) con goma arábiga. Luego, son introducidos en los frascos que contienen los *Trichogramma* ya emergidos. Después de cuatro días de exposición a los parásitos las cintas son retiradas y colocadas en frascos de emergencia. De estos frascos los parásitos son usados para liberación, previo deslarve, realizado en los mismos.

### c) Las Liberaciones

Las liberaciones del parasitoide *Trichogramma* spp. fueron hechas en una finca plantada de yuca (*Manihot esculenta* Crantz) situada en la sección Monte de la Jagua, de la ciudad de Moca, Provincia Espaillat. Esta finca es propiedad de los esposos Dr. Antonio M. Franco Pérez y Lic. Clara López Taveras. Las variedades de yuca plantada fueron "Americanita" y "Bilín".

Se hicieron 4 liberaciones en las siguientes fechas: 19/12/91, 31/1/92, 14/4/92 y 26/5/92 respectivamente. Las liberaciones se hicieron en un área de 90 tareas (5.625 Ha.). La dosis aplicada fue de una pulg. cuadrada de cartulina parasitada (3,000 huevos) por tarea (0.0625 ha.).

Previo a cada liberación se hizo una evaluación del parasitismo natural que a la vez nos revelaba el estado de infestación de la yuca por el gusano de la flota. El número de hojas de yuca evaluadas por planta
fue como sigue: de 2-4 meses de edad, 6 hojas; de 4-6 meses, 8 hojas; y de más de 6 meses, 10 hojas. En cada hoja se buscaban huevos del gusano de flota sanos y huevos parasitados. Los huevos sanos eran aquellos que se presentaban de color verde olivo o amarillento. Huevos parasitados fueron considerados aquellos de color oscuro al momento de ser evaluados.

Terminada la evaluación se procedía a la liberación. En la primera liberación los técnicos con los frascos conteniendo los parásitos ya emergidos, se detenían en la zona de liberación por unos 60 segundos con los frascos abiertos, de donde emergían los parásitos. Sin embargo, a partir de la segunda liberación, y debido a que el procedimiento anterior consumía mucho tiempo, decidimos cambiarlo. Esta vez, las cartulinas, conteniendo los parásitos que emergerían en uno o dos días después de la liberación, fueron cortadas en pedazos de 1 pulgada y adheridos a una hoja de la planta con cinta adhesiva. Las liberaciones fueron hechas aunque la infestación de la plaga fuera baja.

## RESULTADOS Y DISCUSIÓN

*Trichogramma* spp. es considerada el artrópodo entomófago más usado en programas de incremento de enemigos naturales en el mundo, aunque los resultados sobre su efectividad para reducir poblaciones de plagas son controversiales (King et al. 1985). Arias y Belloti (1988?) reportan que *Trichogramma* presentó un parasitismo más alto en un campo donde se hicieron liberaciones que en el que no se hizo. Estos autores reportan en otros ensayos que en un campo en que se hicieron liberaciones de *Trichogramma* presentó un aumento en parasitismo de 22% con relación al testigo en que no se hicieron liberaciones.

Los resultados de las liberaciones de nuestro ensayo pueden ser vistos en la Fig. 1. Como puede verse el parasitismo natural previo a la primera liberación fue de 42% con 145 huevos contados. Las tres evaluaciones siguientes mostraron una declinación gradual, alcanzando el parasitismo un 57% en la segunda liberación para 7 huevos
contados, en el tercero fue de 0, y en el último de 50% para 6 huevos contados.

Un parasitismo natural de 42% en la primera evaluación también indicaba una amenaza del gusano de flota, sin embargo, después de la liberación de *Trichogramma* el parasitismo fue reforzado de tal manera que 41 días después sólo 6 huevos en un total de 90 plantas evaluadas fueron detectados y de ellos 4 estaban parasitados. Nosotros aplicamos una dosis de 16 pulgadas por ha., otros autores han usado entre 15 a 20 y aún mayor (Reyes y Belloti, 1988?). Ya señalamos más arriba que el método de liberación que usamos predominante- mente fue el de adherir las cartulinas con huevos parasitados a las hojas de yuca. King et al. (1985) citan que *Trichogramma* ha sido liberado típicamente usando tarjetas suspendidas sobre la planta o distribuidas al azar en el campo. Nosotros consideramos que las liberaciones hechas contribuyeron a reducir la población de *E. ello* antes que pudiera hacer daño.

Un significativo dato suministrado por el propietario fue que en una plantación de yuca situada al lado de aquella en que hicimos las liberaciones, ellos hicieron 5 aplicaciones de insecticidas para conte- ner ataques del gusano de flota. De estas aplicaciones 4 fueron hechas con monocrotophos (Azodrin) y una con carbaryl (Sevin). El propie- tario nos informó que ellos se aprestaban a realizar la primera aplicación de insecticida en la finca experimental cuando la yuca tenía 2 meses y medio pero no lo hicieron debido a que le aconsejamos que esperaran algunos días para ver el resultado de la primera liberación. Pasadas algunas semanas la infestación cayó a niveles insignificantes y la aplicación de insecticida no fue necesaria.

Otro dato que podría confirmar la anterior conclusión nos fué sumi- nistrado también por el propietario de la finca experimental. Este nos comunicó que una plantación de yuca vecina (unas 20 tareas) fue atacada por el gusano de flota en enero de 1992. Esta finca, situada como a 1 Km. de la finca en que hicimos las liberaciones, fue atacada en el centro de la plantación por larvas de *E. ello* pero afortunada-
mente apareció una manada de garzas (*Bubulcus ibis*) y contuvo el ataque. Posteriormente hubo otro ataque de gusanos en esta plantación pero fue controlado con insecticida.

Estas dos plantaciones vecinas nos sirven como testigo referenciales, ya que en la parcela de liberación no separamos ningún lote como testigo. Los ataques del gusano mencionado nos indican que la plaga está presente en el área experimental y que para poder obtener una buena cosecha hay que realizar varias aplicaciones de insecticidas contra el gusano de flota.

En conclusión ninguna aplicación de insecticida fue hecha durante todo el ciclo comercial del cultivo. Esto nos muestra alguna evidencia de que las liberaciones inundativas de *Trichogramma* spp. fueron efectivas en la reducción de la población de *Erinnyis ello* a niveles insignificantes.

## BIBLIOGRAFÍA

Arias, B. y A. C. Bellotti. 1988? Control biológico de *Erinnyis ello* (L.) en yuca. Importancia de *Trichogramma* spp. como parte de ese control. pp. 21-30.

Caltagirone, L. E. 1985. Identifying and discriminating among biotypes of parasites and predators. In: Biological Control in Agricultural IPM Systems. Ed. by M. A. Hoy and D. C. Herzog. pp. 189.

Flint, M. L. and R. van den Bosch. 1981. The cost of pest control: economic, social and environmental. In: Introduction to Integrated Pest Management. Plenum Press, N. Y. p. 83-105.

Herzog, D. C. and J. E. Funderburk. 1985. Plant resistance and cultural practice interactions with biological control. In: Biological Control in Agricultural IPM Systems. Eds. M. A. Hoy and D. C. Herzog. Academic Press, Inc. pp. 67-88.
King, E. G., K. R. Hopper and J. E. Powell. 1985. Analysis of systems for biological control of crop arthropod pests in the U.S. by augmentation of predators and parasites. In: Biological Control in Agricultural IPM Systems. Eds. M. A. Hoy and D. C. Herzog. Academic Press, Inc. pp. 201-227.

Pedigo, L. P. 1984. Integrated pest management. In: McGraw-Hill Yearbook of Sciences & Technology 1985, McGraw-Hill, N. Y.pp. 22-31.

Reyes Q., J. A. y A. C. Belloti. 1988?. Consideraciones básicas para la utilización de *Trichogramma* spp. en yuca. p. 19-20.
<figure><img src="image_11.png" /><figcaption>Fig. 1. Número total y porcentaje de huevos de E. ello parasitados por Trichogramma spp.</figcaption></figure>