# Ecloserie et production de larves

Christian Gillet

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Christian Gillet. Ecloserie et production de larves. La pisciculture en étang, INRA Publi., 1980. hal-01601608

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# ÉCLOSERIE ET PRODUCTION DE LARVES

C. GILLET

Laboratoire de Physiologie des Poissons
Centre national de Recherches zootechniques, I.N.R.A.
78350 Jouy-en-Josas

## Résumé

Dans beaucoup de pays européens, la pisciculture d'étang est devenue un système de production intensif, dont les rendements à l'hectare avoisinent souvent une tonne. De telles performances exigent une planification stricte. Il n'est plus possible de compter sur les alevins fournis par la reproduction naturelle des poissons, celle-ci étant plus ou moins bonne d'une année sur l'autre, en raison des variations imprévisibles du climat. La production d'alevins se fait maintenant dans des écloseries où l'on s'efforce de contrôler toutes les étapes du développement embryonnaire et larvaire des poissons.

La reproduction artificielle de la carpe commune (Cyprinus carpio) fait actuellement l'objet de techniques de développement très élaborées. L'incubation des œufs en carafe de Zug est devenue possible avec l'emploi du tannin qui supprime la viscosité des œufs. Le taux de survie des larves a été considérablement amélioré ces dernières années, avec la mise au point de nourriture artificielle et par le contrôle de la qualité et la quantité du zooplancton des étangs d'alevinage.

Des procédés similaires assurent la propagation des carpes herbivores (Ctenopharyngodon idella, Hypophtalmichthys molitrix) qui ne se reproduisent pas spontanément en Europe.

La production d'alevins de prédateurs se développe rapidement, ces poissons faisant actuellement l'objet d'une double demande : comme poissons de repeuplement pour les pêcheurs et pour l'empoissonnement des étangs de production. Des méthodes de reproduction artificielle et d'élevage larvaire existent maintenant pour le brochet (Esox lucius), le silure glane (Silurus glanis) et le sandre (Lucioperca lucioperca). La lutte contre le cannibalisme et la fourniture d'une nourriture artificielle appropriée sont les deux principaux problèmes que pose l'élevage larvaire de ces espèces.

Les recommandations de la commission européenne consultative pour les pêches dans les eaux intérieures (E.I.F.A.C.), pour améliorer les techniques de production larvaire sont les suivantes :

1. étude des facteurs gouvernant la prise de nourriture, détermination des besoins alimentaires des alevins ;

2. contrôle de la qualité des eaux et optimisation des différents facteurs de l'environnement ;

3. protection sanitaire ;

4. développement des critères définissant la qualité des alevins.

## Summary

### Hatcheries and larva production

In many European countries pond fish-farming has become an intensive system of production with yields often approaching one ton per hectare. Such performances require careful planning. It is no longer possible to count on fry from natural reproduction since reproduction may vary from one year to another due to unforeseeable climatic deviations. Fry are now produced in hatcheries where all stages of embryonic and larval development are monitored.

The common carp (Cyprinus carpio) is at present artificially reproduced by quite complex techniques. The eggs are incubated in Zug jars using tanin which does away with egg stickiness. The
larva survival rate has been improved considerably these last few years by artificial feeding and by controlling the quality and quantity of the zooplanckton in the fry ponds.

Similar processes insure the propagation of herbivorus carp (*Ctenopharyngodon idella*, *Hypophthalmichthys molitrix*) which do not reproduce spontaneously in Europe.

The production of predator fry is developing rapidly since these fish are used to restock ponds for (i) sport fishing and (ii) fish farming. Two methods of artificial reproduction and of larva rearing are employed for the pike (*Esox lucius*), the catfish (*Silurus glanis*) and the pike perch (*Lucioperca lucioperca*). The prevention of cannibalism and the determination of an appropriate supply of artificial food are the two main problems encountered in the rearing of the larvae of these species.

The recommendations of the European Advisory Board for Inland Water Fishing (E.I.F.A.C.) for improving larva production techniques are the following :

1. study of factors controlling food intake and determination of fry food requirements ;

2. control of water quality and optimization of various environmental factors ;

3. sanitary protection ;

4. development of criteria for defining fry quality.

## Introduction

La reproduction contrôlée des poissons en écloserie est, et sera d'une importance croissante pour assurer un approvisionnement fiable et continu d'alevins destinés à la pisciculture. Certaines branches de cette activité continuent à dépendre largement d'un approvisionnement d'alevins capturés à l'état sauvage, mais les disponibilités existant dans la nature peuvent fluctuer considérablement. Par exemple à Taïwan, les captures d'alevins de chanidés (*Chanos chanos*) ont varié d'un facteur 10 entre 1967 et 1970 (Chen, 1976).

Il existe actuellement en Europe des écloseries de grandes dimensions spécialisées dans la production d'alevins de poissons d'étang. L'écloserie de Szazhalombatta, en Hongrie, produit chaque année des dizaines de millions d'alevins de carpe, destinés à la pisciculture intensive en étang. L'écloserie de Lelystad, aux Pays-Bas, fournit plusieurs millions de « fingerlings » de brochet et diverses autres espèces pour le peuplement des lacs et canaux.

Ces deux écloseries disposent d'installations thermorégulées où se déroulent la phase finale de la maturation des géniteurs et l'incubation des œufs. Le premier grossissement larvaire fait parfois l'objet d'un élevage très intensif, dans des bassins thermorégulés, avec apport de nourriture naturelle ou artificielle.

Dans d'autres cas, le grossissement des larves s'effectue dans des étangs de premier alevinage, où l'on s'efforce de contrôler le mieux possible toutes les composantes de l'écosystème ainsi que leur évolution.

C'est pour la carpe commune, *Cyprinus carpio*, espèce largement élevée dans toute l'Europe, que le mode de fonctionnement des écloseries est le mieux établi. En premier exemple, nous développerons l'élevage de cette espèce en écloserie.

# I. La propagation de la carpe commune en écloserie

## A. Le contrôle du développement embryonnaire

### 1. Le problème posé par l'adhésivité des œufs

Au contact de l'eau douce, la couche la plus externe qui entoure l'œuf de carpe
devient collante. Dans ces conditions les œufs s'agglutinent et ne survivent pas après mise en incubateur.

L'emploi du tannin, à très faible concentration (0,35 %) permet de supprimer cette adhésivité de l'œuf (Woynarovich, 1962). Le tannin agit en coagulant les protéines (Horvath, 1977a), mais la durée du traitement doit être limitée à quelques secondes, autrement l'embryon risque d'être tué.

Le lait en poudre, le talc et les enzymes protéolitiques ont parfois été proposé pour diminuer l'adhésivité des œufs, mais seul l'emploi du lait en poudre semble se développer.

## 2. L'incubation artificielle

L'incubateur doit apporter à l'embryon l'oxygène dont il a besoin et évacuer les déchets de son métabolisme, essentiellement de l'ammoniaque. L'incubateur le plus utilisé pour la carpe est le vase de Zug dans lequel un brassage lent et régulier des œufs est assuré.

L'écloserie de Lelystad utilise des vases coniques (angle de 36°). Cette forme facilite l'accumulation des œufs morts en surface, le long des bords, d'où il est aisé de les extraire par siphonage.

Les premiers stades du développement embryonnaire sont très fragiles et leurs besoins en oxygène sont faibles, aussi le débit des incubateurs est réglé au minimum 0,5 l/mn pour 5 l d'œufs. Au stade œillé, les embryons deviennent plus résistants et leurs besoins en oxygène augmentant, le débit d'eau doit être accru : 3 l/mn pour 5 l d'œufs (Horvath, 1977a).

Des travaux récents attirent l'attention sur l'importance de la qualité physicochimique de l'eau utilisée pour l'incubation artificielle. Kaur et Toor (1978) ont réalisé l'incubation des œufs de la carpe à différents niveaux d'oxygénation. Au taux d'oxygène les plus bas, le pourcentage d'éclosion est très faible et le développement embryonnaire plus long (tabl. 1).

<caption>TABLEAU 1</caption>

Influence du taux d'oxygène dissous dans l'eau sur le pourcentage d'éclosion et la durée du développement embryonnaire chez la carpe Cyprinus carpio.

<table><thead><tr><td>0² mg/l</td><td>% éclosion</td><td>Durée d'incubation</td></tr></thead><tbody><tr><td>0</td><td>0</td><td></td></tr><tr><td>1,2</td><td>4</td><td>120 heures</td></tr><tr><td>3,0</td><td>40</td><td>76 heures</td></tr><tr><td>6,0</td><td>65</td><td>73 heures</td></tr><tr><td>9,0</td><td>92</td><td>70 heures</td></tr><tr><td>12,0</td><td>98</td><td>68 heures</td></tr></tbody></table>

La température de l'eau contrôle la vitesse du développement embryonnaire qui est de l'ordre de 70 degrés-jour. L'embryon étant très sensible aux chocs thermiques, il est recommandé de stabiliser la température de l'eau à ± 1 °C entre 20 et 25 °C. Aux températures supérieures, il est difficile de satisfaire les besoins de l'embryon en oxygène, aux températures inférieures, les pertes dues aux saprolegnioses prennent une plus grande importance. Le principal traitement prophylactique appliqué pendant l'incubation est un bain quotidien de vert de malachite à 0,1 p.p.m.
### 3. L'éclosion

Lorsque les premières larves commencent à apparaître dans les incubateurs, il est possible de synchroniser l'ensemble des éclosions, par exemple en créant momentanément un déficit en oxygène dans l'incubateur par diminution du débit d'eau. L'anoxie stimule la sécrétion enzymatique d'une glande frontale de l'embryon qui lyse la coque de l'œuf.

Cette méthode permet de regrouper l'ensemble des éclosions sur 1/2 h environ.

### 4. La résorption

Pendant cette phase qui dure environ 70 degrés-jours, la larve de carpe reste fixée à un support. A Szazhalombatta, des jarres cylindroconiques sont utilisées pour la phase de résorption. Ce type d'incubateurs qui fonctionne sur le même principe que le vase de Zug évite l'accumulation des déchets, phénomène responsable de mortalité importante dans les auges d'alevinage (Horvath, 1977a).

## B. Le premier grossissement des larves en capuvité

### 1. Survie de l'alevin dans les conditions naturelles

L'alevin de carpe dans la nature commence par se nourrir de zooplancton (proies de 200 à 500 µm et surtout des rotifères (tabl. 2). Lorsqu'il n'a pas ce type de nourriture à sa disposition, l'alevin meurt rapidement car ses réserves vitellines sont très faibles. Les

<table><caption>TABLEAU 2.
Les principaux organismes composant la nourriture naturelle de la carpe</caption><thead><tr><th>Taille</th><th>Cyprinus carpio</th><th>Ctenopharyngodon idella</th><th>Hypophthalmichthys molitrix</th></tr></thead><tbody><tr><td>7-9 mm</td><td>Protozoaire - Rotifère<br/>Nauplius</td><td>Protozoaire - Rotifère<br/>Nauplius</td><td>Protozoaire - Rotifère<br/>Nauplius</td></tr><tr><td>10-12 mm</td><td>Idem + copépode</td><td>Idem + petite daphnie<br/>et cyclops</td><td>Idem + cladocère</td></tr><tr><td>13-17 mm</td><td>Idem</td><td>Daphnie - Copépode<br/>Organisme benthique</td><td>Idem</td></tr><tr><td>18-23 mm</td><td>Cladocère - Copépode<br/>petits animaux benthiques</td><td>Idem + détritus<br/>organiques</td><td>Idem + phytoplancton</td></tr><tr><td>24-30 mm</td><td>Idem + larve d'insecte<br/>et détritus organiques</td><td>Idem + phytoplancton</td><td>Phytoplancton principalement</td></tr></tbody></table>

autres facteurs de mortalité de l'alevin de carpe sont la prédation et les accidents climatiques. Les insectes aquatiques et certains copépodes comme les Cyclops sont capables de consommer un très grand nombre d'alevins de carpe, âgés de quelques jours. Une chute brutale de température et l'agitation de l'eau peuvent aussi anéantir la population d'un étang d'alevinage. Dans ces conditions, la mortalité des larves atteint
fréquemment 90 % lorsque celles-ci sont déversées dans des étangs à la fin de la période de résorption (Horvath, 1977a).

## 2. Méthode permettant d'améliorer la charge et le rendement des étangs de l'alevinage (Tamas et Horvath, 1976)

L'usage d'un insecticide de la famille des organophosphorés, le Flibol E, permet de sélectionner un type de zooplancton approprié pour l'alevin de carpe. Ce produit est extrêmement toxique pour les crustacés du zooplancton, mais il l'est cent fois moins pour les rotifères et les larves de carpe (tabl. 3) et sa rémanence est faible. Le traitement des étangs d'alevinage, juste après la mise en eau, par 1 p.p.m. de Flibol, aboutit à une population de rotifères très importante tandis que les copépodes, prédateurs des alevins, sont éliminés (fig. 1A et B) (cf. aussi Balvay, 1980). Cette méthode permet d'obtenir en 4 semaines d'élevage une amélioration de 30 à 50 % des taux de survie des alevins pour des charges de l'ordre de 5 × 10⁶ larves/ha.

<figure><img src="image_2.png" /><figcaption>FIG. 1. — Modifications de la composition du zooplancton après application de pesticide organophosphoré (d'après Tamas et Horvath, 1976)</figcaption></figure>

A : étang témoin (sans poissons).

B : étang expérimental (sans poissons).
<caption>TABLEAU 3</caption>

Toxicité d'un pesticide organophosphoré (FLIBOL E) sur quelques composantes de la chaîne alimentaire en étang d'alevinage : crustacés (copépodes + cladocères), rotifères et larves de Ctenopharyngodon idella

<table><thead><tr><th>Exp No</th><th>Concentration en Flibol E (p.p.m.)</th><th>Mortalité copépodes + cladocères (%)</th><th>Mortalité des larves de C. idella (%)</th><th>Mortalité des rotifères (%)</th></tr></thead><tbody><tr><td>1</td><td>100</td><td>100</td><td>50</td><td>0</td></tr><tr><td>2</td><td>10</td><td>100</td><td>0</td><td>0</td></tr><tr><td>3</td><td>2</td><td>100</td><td>0</td><td>0</td></tr><tr><td>4</td><td>1</td><td>100</td><td>0</td><td>0</td></tr><tr><td>5</td><td>0</td><td>0</td><td>100</td><td>100</td></tr></tbody></table>

L'élevage se pratique dans des étangs de 1 000 m², peu profonds et préalablement fertilisés. Après quelques jours de grossissement, les besoins alimentaires des alevins se modifient (tabl. 2). Il est nécessaire d'introduire des souches de cladocères dans l'étang et de compléter l'alimentation avec une farine artificielle. A Szazhalombatta, 13,3 · 10⁶ alevins de 0,3 g ont été produits de cette façon avec un taux de survie de 62,5 % en trois semaines (Bakos et al., 1975).

### 3. Elevage larvaire intensif en bassin

Le premier grossissement des alevins de carpe dans des bassins thermorégulés est pratiqué avec succès dans plusieurs écloseries. Dans l'écloserie d'Ahrensburg, les larves sont élevées à raison de 50 000 par aquarium de 40 l. Un débit d'eau de 1 l/min est suffisant pour assurer l'oxygénation d'une telle installation (Kossman, 1976).

Le premier repas des larves se compose de jaune d'œuf bouilli et finement broyé. Les huit jours suivants, les larves reçoivent comme nourriture des nauplii d'Artemia salina. Puis, de la farine pour alevin de saumon remplace progressivement les artemias. Kossman, (1976) a établi un bilan de cette méthode : 100 000 larves de carpes nécessitent 8 l d'œufs d'artemia, 50 kg de farine de saumon et 1 000 m³ d'eau pour atteindre le poids de 0,5 g. Les pertes seraient négligeables au cours de cette phase de grossissement.

En raison du prix et de la difficulté d'approvisionnement en œufs d'Artemia salina, un aliment de substitution a été recherché. La farine artificielle pour alevins de saumon ne donne pas des résultats satisfaisants lorsqu'elle est distribuée dès le premier jour (von Lukowicz, 1979).

La levure (Candida lipolytica) paraît constituer un bon aliment pour le démarrage des alevins de carpe (Appelbaum et Dor, 1979) (fig. 2).

### 4. Production de poisson d'un été

Certaines écloseries s'efforcent de produire de jeunes carpes pesant une centaine de grammes à l'automne. Il faut pour cela que la reproduction soit suffisamment précoce et que la croissance de tous les stades larvaires soit optimisée. Cette approche permet d'atteindre la taille commerciale après deux étés.

En Yougoslavie, la production de poissons de 100 g se fait dans des étangs de quelques hectares. Les alevins reçoivent un complément d'alimentation durant tout l'été.
<figure><img src="image_3.png" /><figcaption>FIG. 2. — Croissance en longueur de larves de carpe soumises à un régime alimentaire à base de levure (Candida lipolytica) et de nauplii d'Artémia salina.</figcaption></figure>

A l'automne, on repêche environ 20 000 poissons/ha, ce qui représente un rendement de 1,5 t/ha (Livojevic, 1968).

A Lelystad, l'utilisation des eaux réchauffées du rejet d'une Centrale thermique permet de récolter des animaux de 300 g à l'automne (fig. 3).

<figure><img src="image_4.png" /><figcaption>FIG. 3. — Production de carpes de 1 été de 300 g selon un scénario mettant en œuvre 3 sites d'élevage. Deux sites de production A et B sont initiés successivement en janvier et en mai dans l'écloserie. Cette méthode permet de maintenir les animaux sous température optimale pour la croissance et prolonge la période d'utilisation des sites de production.</figcaption></figure>
## II. Autres cyprinides propagés en écloserie

Les méthodes élaborées pour l'écloserie de carpe commune ont pu être transposées à la tanche (Tinca tinca) (von Lukowicz et Proske, 1979) au rotengle (Scardimus erythrophthalmus) (Klein-Breteler, 1979), et au gardon (Rutilus rutilus).

Les poissons phytophages aquatiques (Ctenopharyngodon idella et Hypophthalmichthys molitrix) introduits depuis une quinzaine d'années en Europe, sont obligatoirement élevés en écloserie car ces espèces ne se reproduisent pas spontanément en Europe.

### A. L'incubation artificielle des carpes herbivores

En raison du mode de reproduction particulier de ces animaux, quelques modifications ont été apportées à la méthode utilisée pour la carpe commune.

Les œufs de ces espèces augmentent de 50 à 100 fois leur volume lorsqu'ils sont mis au contact de l'eau. Ils ont d'autre part une densité très voisine de celle de l'eau et ne sont pas collants. Il est conseillé de mettre nettement moins d'œufs que pour la carpe commune dans chaque incubateur et de régler le débit de l'eau au minimum (Horvath, 1977a).

Après l'éclosion qui survient à 30 degrés-jours, les larves sont placees dans des jarres cylindroconiques pour la durée de la phase de résorption. Lorsque cette phase s'effectue dans des auges horizontales, les mortalités sont souvent très importantes, du fait de l'accumulation des déchets, mais aussi en raison du manque de courant. Ces espèces auraient besoin au cours de la résorption d'un courant d'eau comparable à celui qu'elles rencontrent dans la nature (Horvath, 1977a).

### B. La méthode chinoise (Tapiador et al., 1977)

La Chine, qui a à sa disposition d'importants stocks d'alevins sauvages dans ses rivières s'est cependant orientée vers la reproduction contrôlée des carpes herbivores. Les géniteurs, après hypophysation, sont placés dans des bassins circulaires de 10 m³ où un courant crée des conditions comparables à celles rencontrées par ces poissons dans la nature.

La ponte a lieu spontanément. Les œufs sont collectés dans un filet à plancton placé à la vidange du bassin. Ils sont ensuite transférés dans des bassins d'incubation circulaires, semblables aux bassins de ponte, où se déroule l'éclosion et la résorption.

### C. Le grossissement des larves

La première nourriture des carpes chinoises se compose de rotifères et de ciliés comme chez la carpe commune (tabl. 2). Les mêmes méthodes de grossissement sont utilisées.

## III. L'écloserie de poisson carnassier

Ces poissons font l'objet d'une demande sans cesse croissante pour le repeuplement des lacs et des cours d'eau. Ils sont aussi souvent utilisés comme espèces
d'accompagnement en carpiculture, car ils permettent de contrôler les espèces indésira-
bles qui viendraient à pulluler dans les étangs. Trois espèces de prédateurs sont élevées
dans les écloseries européennes : le brochet (Esox lucius), le silure glane (Silurus glanis)
et le sandre (Lucioperca lucioperca).

A. L'écloserie de brochet

1. Le contrôle du développement embryonnaire

a) L'incubation

Elle est pratiquée dans des bouteilles de Zug, identiques à celles utilisées pour les
carpes. Les œufs du brochet possèdent une certaine viscosité qui disparaît naturellement
après quelques jours. Le tannin peut être utilisé avec succès pour supprimer cette
viscosité, mais ce traitement n'est pas indispensable pour le brochet, contrairement à la
carpe (Huet, 1976).

Le développement embryonnaire dure 120 degrés-jours chez le brochet. Les tempé-
ratures convenant le mieux pour l'incubation sont comprises entre 7 et 12 °C (Huet, 1976).
Mais Hokanson (1973) a constaté qu'il existe une grande hétérogénéité dans la qualité
des œufs et que certains embryons tolèrent une gamme de température nettement plus
étendue que d'autres (fig. 4).

<figure><img src="image_5.png" /><figcaption>FIG. 4. — Effet de la température d'incubation sur la survie embryonnaire (mesurée par le pourcentage d'éclosion) pour des œufs de brochet de 2 origines différentes.</figcaption></figure>
En ce qui concerne la prophylaxie, au cours du développement embryonnaire, un traitement quotidien au vert de malachite (0,1 p.p.m.) est recommandé pour prévenir le développement des saprolegnioses.

### b) Eclosion et résorption

Il est conseillé de transférer les embryons vers 110 degrés-jours sur des clayettes où l'éclosion se produit dans de bonnes conditions. Généralement, les alevins sont maintenus jusqu'au 3/4 de la phase de résorption sur des clayettes munies de nombreux supports où les alevins se fixent grâce à une glande adhésive.

## 2. Le premier grossissement des larves

La première nourriture de l'alevin de brochet se compose de petites formes de zooplancton. Il existe actuellement une série de méthode allant du simple aménagement du milieu naturel jusqu'à la pisciculture intensive en bassin pour produire des fingerlings de quelques semaines, taille à laquelle ces poissons sont généralement commercialisés par les écloseries.

### a) La méthode extensive en étang d'alevinage

Cette technique a été développée par Huet (1976) et reprise par Bry et Gillet (1980), Souchon (1980).

Les étangs d'alevinage sont du même type que ceux utilisés pour la carpe. Généralement la charge initiale en alevins n'excède pas quelques individus par m². Les taux de survie, après quelques semaines d'élevage, atteignent 50 % dans les cas les plus favorables, lorsque la nourriture est disponible en grande quantité. Souvent les pertes sont beaucoup plus importantes, particulièrement en raison du cannibalisme précoce. Rhan (1972) a montré que ce phénomène pouvait apparaître dès que les alevins atteignent la taille de 23 mm.

Le peuplement des étangs par des fratries isolées diminuent les pertes dues au cannibalisme, ce qui pourrait s'expliquer par la plus grande homogénéité des lots frères-sœur (Bry et Gillet, 1980). Les performances de l'élevage en étang au-delà de l'âge de 3 mois sont exposés par ailleurs dans ce volume (Bry, 1980).

### b) La méthode semi-intensive en étang d'alevinage

Ces étangs sont régulièrement enrichis en zooplancton. Le pourcentage de survie des animaux n'excède pas 50 % mais cette méthode permet des charges importantes (60 à 120 larves/m²). La production des étangs d'alevinage de Lelystad, gérés de cette façon, a été de 22 fingerlings/m² pour une surface de 1,8 ha (Huet, 1976).

### c) La méthode intensive en bac d'élevage

Les larves de brochet reçoivent leur première alimentation dans des auges thermorégulées, en eau courante. Les densités d'élevage sont généralement de l'ordre de 4 000 individus/m².

— Alimentation naturelle.

Cette méthode est pratiquée par plusieurs écloseries en Europe. Il est nécessaire de
déverser des quantités considérables de zooplancton. Un alevin de brochet consomme-rait 60 000 crustacés du zooplancton pour atteindre la taille de 5 cm (Einsele, 1953). Dans certaines écloseries situées en bordure de lac, le plancton arrive directement dans les auges à partir d'un réservoir où le plancton du lac est stocké et concentré. Une technique de collecte est développée par Barnabé dans ce volume.

— Alimentation artificielle (Westers, 1979).

Cette méthode est pratiquée avec succès aux U.S.A. Dans les écloseries du Michigan, trois années de suite 100 000 hybrides (mâle *Esox lucius* et femelle *Esox masquinongy*) ont été élevés jusqu'à la taille de 18 cm avec un aliment artificiel spécialement élaboré pour le brochet. Pour habituer l'alevin du brochet à prendre une nourriture artificielle, il est nécessaire de distribuer la nourriture très fréquemment. Au cours de la phase initiale du nourrissage, des distributeurs automatiques fonctionnent toutes les 5 mn, 16 h par jour.

La propreté des auges d'alevinage est l'une des conditions nécessaires à la réussite de cette technique. Dans les écloseries du Michigan, des systèmes de déflecteurs, placés en bordure des bassins, empêchent l'accumulation des déchets. Dans ces conditions, les taux de survie sont supérieurs à ceux observés avec les autres méthodes de grossissement (tabl. 4).

<caption>TABLEAU 4</caption>

Survie des brochets hybrides élevés en permanence avec une alimentation artificielle (Hybride : *Esox lucius* mâle et *Esox masquinongy* femelle) (d'après Westers, 1979).

<table><thead><tr><td>Pertes cumulées</td><td>Stade</td></tr></thead><tbody><tr><td>27 %</td><td>Fingerlings 5 cm</td></tr><tr><td>50 %</td><td>Fingerlings 10 cm</td></tr><tr><td>58,6 %</td><td>Brochets de 140 g, 18,5 cm</td></tr></tbody></table>

La charge en poissons est maintenue aux environs de 30 kg/m³. La quantité d'eau nécessaire est voisine de celle que requièrent des méthodes extensives.

## B. L'écloserie de silure glane

Ces poissons sont élevés depuis plusieurs années en écloserie en partant de la récolte des œufs dans des nids sur lesquels les silures viennent frayer. Plus récemment, Horvath (1977b) a montré l'intérêt de la fécondation et de l'incubation artificielle chez cette espèce.

### 1. L'incubation artificielle

Les œufs fécondés sont placés dans des bouteilles du Zug. Les œufs du silure possèdent une couche adhésive mais l'emploi du tannin comme chez la carpe n'a pas permis de résoudre ce problème (Fijan, 1976). Les embryons de silure étant très sensibles aux chocs, le courant d'eau qui parcourt les incubateurs ne doit pas agiter les œufs (Horvath, 1977a).

Le développement embryonnaire dure 70 degrés-jours et l'éclosion se déroule dans des auges d'alevinage.
## 2. Le premier grossissement des larves du silure glane

Cet élevage se pratique soit en bassin, soit en étang. En captivité, les larves reçoive, comme première nourriture des tubifex hachés (Horvath, 1977a) ou bien de la farine pour alevin de saumon (Huissman, 1976). Les rendements sont élevés (90 % de survie) mais le prix de revient d'une nourriture naturelle comme les larves de tubifex représente une charge importante. En étang, les larves consomment du zooplancton. Bien que les jeunes silures puissent avaler des copépodes, il est conseillé d'éliminer ceux-ci des étangs car certains cyclops sont des prédateurs pour les larves de silure. Un traitement aux organophosphorés permet de sélectionner un type de plancton adapté aux besoins alimentaires des larves de silure. Le pourcentage de survie des alevins de silure élevés en étang était de 30 % au bout de quelques semaines en 1978, à l'écloserie de Szazhalombatta (Horvath, 1979).

### C. L'écloserie de sandre

Cette espèce est très estimée pour la qualité de sa chaire dans de nombreux pays. Antalfi (1979) a récemment décrit une méthode de propagation du sandre en écloserie. Les techniques sont voisines de celles utilisées pour l'élevage du brochet.

Les carafes de Zug peuvent être employées pour le développement embryonnaire du sandre, à condition de traiter préalablement les œufs avec du tannin pour supprimer leur adhésivité.

Au cours de la phase de résorption de la vésicule vitelline, les larves de sandre nagent verticalement. Des incubateurs du type cylindroconiques conviennent bien pour le déroulement de cette phase.

Toutes les tentatives d'alimentation artificielle se sont jusqu'à présent soldées par des échecs (Westers, 1979). Le grossissement des larves s'effectue donc obligatoirement en étang. Les taux de survie sont généralement très faibles car le sandre se nourrit sélectivement avec certaines espèces de zooplancton et il manifeste comme le brochet, un cannabalisme précoce (Antalfi, 1979).

## Discussion et conclusion

L'élevage des différentes espèces de poissons d'étang en écloserie tend actuellement à se standardiser : les mêmes incubateurs peuvent être employés pour le brochet, le sandre, le silure et la carpe. Les périodes de reproduction de ces différentes espèces se succèdent au printemps, il est donc possible d'utiliser les mêmes installations d'alevinage une grande partie de l'année, d'autant plus que la technique de circuit fermé avec thermorégulation est opérationnelle (Marie, 1979). La reproduction de la carpe en contre saison, obtenue grâce au contrôle de la température des élevages améliore encore les performances des écloseries.

Pour valoriser le travail des écloseries, des taux de survie élevés sont nécessaires.

Cela permet de tirer le meilleur profit de l'énorme potentiel reproducteur des poissons (plusieurs milliers, voire même centaines de milliers d'œufs par kg de femelle). Dans ces conditions, il est possible de réduire le cheptel des géniteurs et de diminuer les ponctions effectuées dans les stocks de reproducteurs sauvages, particulièrement pour le brochet.

La gestion de l'eau est devenue un problème sérieux pour les écloseries de poissons d'étang, installées sur les parties basses des rivières et de ce fait menacées par toutes les
sources de pollution situées en amont. Dans ces circonstances, le recyclage de l'eau, associé à des méthodes d'élevage intensif est intéressant. Cependant, l'utilisation de ces techniques implique la maîtrise parfaite des problèmes liés à la prophylaxie. Dans le cas contraire, la concentration des agents pathogènes aboutit rapidement à l'anéantissement des élevages. Tous ces faits ont été pris en compte, pour établir plusieurs recommandations concernant la production massive du frai et des alevins en eau douce (Huisman, 1979):

- étudier les besoins alimentaires des larves et des alevins;

- optimiser les différents facteurs de l'environnement, particulièrement la qualité physicochimique de l'eau;

- améliorer la protection sanitaire;

- rechercher des critères définissant la qualité des alevins de repeuplement.

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