Readman J.A.J., 2016. Mixed turf of hydroids and large ascians with [Swiftia pallida] and [Caryophyllia (Caryophyllia) smithii] on weakly tide-swept circalittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/34 - Last Updated: 07/07/2016

Roveta, C., Annibaldi, A., Afghan, A., Calcinai, B., Di Camillo, C.G., Gregorin, C., Illuminati, S., Pulido Mantas, T., Truzzi, C., Puce, S., 2021. Biomonitoring of Heavy Metals: The Unexplored Role of Marine Sessile Taxa. Applied Sciences 11, 580. https://doi.org/10.3390/app11020580

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563-2576. https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Salvo, F., Mersereau, J., Hamoutene, D., Belley, R., Dufour, S.C., 2017. Spatial and temporal changes in epibenthic communities at deep, hard bottom aquaculture sites in Newfoundland. Ecological Indicators 76, 207-218. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2017.01.019

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in: DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397-417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110-130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Sheppard, C.R.C., Bellamy, D.J., Sheppard, A.L.S., 1980. Study of the fauna inhabiting the holdfasts of Laminaria hyperborea (gunn.) fosl. along some environmental and geographical gradients. Marine Environmental Research 4, 25-51. https://doi.org/10.1016/0141-1136(80)90057-4

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. Ecological Indicators 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. Mar. Ecol. Prog. Ser. 207, 79-88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Stamp T.E., 2015. [Laminaria hyperborea] and red seaweeds on exposed vertical rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1048 - Last Updated: 20/10/2015

Stamp T.E., 2015. [Laminaria hyperborea] on moderately exposed vertical rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1049 - Last Updated: 20/10/2015

Tillin H.M., 2016. [Hiatella arctica] with seaweeds on vertical limestone / chalk. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1089 - Last Updated: 14/04/2016

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica - Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.
Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327–359.
https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-7 Tombant de l'infralittoral" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 222-228.
Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat :

De nombreuses **algues non-indigènes** ont été identifiées comme propices à la colonisation de cet habitat. L'ensemble de ces espèces sont de véritables compétitrices vis-à-vis des espèces indigènes pour l'espace, la lumière et la ressource alimentaire. La propagation de ces espèces introduites entraîne une diminution de la couverture des macroalgues natives et dans certains cas la diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La composition de la communauté benthique est largement modifiée :

- **Undaria pinnatifida** est particulièrement résistante et colonise facilement ces milieux. Sa propagation dans l'habitat peut induire une modification de la composition en macroalgues, de l'abondance et de la diversité de la macrofaune benthique ainsi qu'une réduction des espèces d'algues sous la couverture d'Undaria pinnatifida.

- **Codium fragile subsp. fragile** colonise rapidement l'espace sur le substrat rocheux par rapport aux algues indigènes notamment dans des habitats déjà soumis à des perturbations. Pour exemple, cette algue non-indigène peut inhiber le recrutement des laminaires une fois établie dans l'habitat. La formation de zone dense de Codium fragile subsp. fragile peut modifier la structure biogénique de l'habitat, le flux d'eau, la pénétration de la lumière ainsi que taux de sédimentation (rétention). De plus cette espèce non-indigène ne protège pas les invertrébrés benthiques qui se réfugient habituellement sous les larges frondes des macroalgues.

- **Sargassum muticum** est une espèce non-indigène compétitrice pour l'espace et la lumière par rapport aux macroalgues natives à cause de ses longues frondes. Son importante biomasse peut fournir un habitat refuge pour la faune. Une modification de la communauté benthique ainsi qu'une diminution de la diversité spécifique et de la biomasse des macroalgues natives de l'habitat sont généralement observées.

- **Asparagopsis armata** possède un thalle en forme de "harpon" lui permettant de s'entremêler avec les autres organismes et de se propager rapidement.

- Autres espèces d'algues envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : **Grateloupia turuturu**, **Dasyphonia japonica**, **Griffithsia corallinoides**, **Bonnemaisonia hamifera**, **Antithamnionella ternifolia**, **Antithamnion densum**, **Lomentaria hakodatensis**

La faune benthique non-indigène, identifiée comme propice à la colonisation de cet habitat, rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité) :

- **Crepidula fornicata** est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.

2007 ; Bullard et al., 2007 ; Carver et al., 2006 ; Chapman et al., 2002 ; Collin et al., 2010 ; Davsi & Davis., 2008 ; Ehrold et al., 1998 ; Epstein & Smale., 2017 ; Floc'h et al., 1991 ; Goulletquer., 2016 ; Griffith et al., 2002 ; Grulois et al., 2010 ; Heiser et al., 2014 ; Herbert et al., 2016 ; James., 2017 ; Mercer et al., 2009 ; Lejart., 2009 ; Levin et al., 2002 ; Ramsay-Newton et al., 2017 ; Ruesink et al., 2005 ; Salvaterra et al., 2013 ; Schaffelke & Hewitt., 2007 ; Schmidt & Scheibling., 2007 ; Silva et al., 2021 ; Simeonidis D., 1997 ; Stæhr et al., 2000 ; Stiger et al., 2015 ; Troost., 2010 ; Valentine et al., 2007 ; Williams & Smith., 2007

**Littérature grise concernant la même pression** : André & Müller., 2021 ; Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Burel et al., 2019 ; Chavanich., 2007 ; Grey., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; OFB & MNHN., 2021a-c ; Ohno., 2005 ; Pisanu et al., 2020 ; Scaps et al., 2021 ; Shalaeva., 2014 ; VLIZ Alien Species Consortium (2020) ; Wacquant et al., 2001 ;

**Littérature grise concernant des sous-habitats** : Hiscock, 2002 ; Stamp, 2015 a-c ; Perry, 2016 a-b ; Perry & Hill, 2020 ; Perry et al., 2016 ; Tillin & Mainwaring, 2015 ; Tyler-Walters, 2002, 2015 ;

L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.
<table><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b>Didendnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li>L'ascidie <b>Ciona intestinalis</b> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</li><li><b>Styela clava</b> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).</li><li><b>Botrylloides violasceus</b> possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.</li><li>Le bryozaire <b>Watersipora subatra</b> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées</li><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Schizoporella unicornis</b>, <b>Asterocarpa humilis</b>, <b>Corella eumyota</b></li></ul></td></tr></table>

Références

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined. André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined.

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. Biol Invasions 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19. https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1–38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.
Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. *Alien Invaders* 133–148.

Chavanich S., 2007. Codium fragile subsp. tomentosoides. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traistedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. *Aquatic Invasions* 5, 175–179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. *Al* 3, 125–132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Dunlop, K., Harendza, A., Bannister, R., Keeley, N., 2021. Spatial response of hard- and mixed-bottom benthic epifauna to organic enrichment from salmon aquaculture in northern Norway. *Aquaculture Environment Interactions* 13, 455–475. https://doi.org/10.3354/aei00419

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). *Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science* 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, *Undaria pinnatifida*, from marinas into natural rocky reef communities. *Biol Invasions* 20, 1049–1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga *Undaria pinnatifida* on the coast of France and its possible establishment in European waters. https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009. ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. *Al* 4, 581–590. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez *Undaria pinnatifida*, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of *Undaria pinnatifida* in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93. https://doi.org/10.1017/S1755267214000608

Hiscock, K. 2002. Kelp in variable or reduced salinity. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) *Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews*, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/345

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp *Undaria pinnatifida*. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Kutti, T., Hansen, P.K., Ervik, A., Høisæter, T., Johannessen, P., 2007. Effects of organic effluents from a salmon farm on a fjord system. II. Temporal and spatial patterns in infauna community composition. *Aquaculture* 262, 355–366. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.10.008

Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. *Ecology* 83, 3182–3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. *Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control*. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021. a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.
OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Perry, F. & Hill, J.M., 2020. [Ascophyllum nodosum] with epiphytic sponges and ascidians on variable salinity infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/328

Perry, F., 2016a. Mixed fucoids, [Chorda filum] and green seaweeds on reduced salinity infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/356

Perry, F., 2016b. [Fucus ceranoides] and [Ulva] spp. on low salinity infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/283

Perry, F., Tillin, H.M. & Garrard, S. L. 2016. [Polyides rotunda] and/or [Furcellaria lumbricalis] on reduced salinity infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/3

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537–547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563–2576. https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Salvo, F., Mersereau, J., Hamoutene, D., Belley, R., Dufour, S.C., 2017. Spatial and temporal changes in epibenthic communities at deep, hard bottom aquaculture sites in Newfoundland. Ecological Indicators 76, 207–218. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2017.01.019

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in: DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397–417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110–130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. Ecological Indicators 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463
Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. Mar. Ecol. Prog. Ser. 207, 79-88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Stamp, T.E. 2015a. [Codium] spp. with red seaweeds and sparse [Saccharina latissima] on shallow, heavily-silted, very sheltered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/228

Stamp, T.E. 2015b. [Saccharina latissima] and [Psammechinus miliaris] on variable salinity grazed infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/359

Stamp, T.E. 2015c. [Saccharina latissima] with [Phyllophora] spp. and filamentous green seaweeds on variable or reduced salinity infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/184

Tillin, H.M. & Mainwaring, K., 2015. [Mytilus edulis] beds on reduced salinity tide-swept infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/259

Tyler-Walters, H., 2002. [Cordylophora caspia] and [Einhornia crustulenta] on reduced salinity infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/27

Tyler-Walters, H., 2015. [Hartlaubella gelatinosa] and [Conopeum reticulum] on low salinity infralittoral mixed substrata. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 07-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/86

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica – Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327-359. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-8 Roches ou blocs infralittoraux en milieu à salinité variable" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 229-234.
<table><thead><tr><th colspan="8">B1-9 Grottes marines, surplombs et autres microhabitats à biocénose sciaphile infralittoraux</th></tr><tr><th colspan="8">CD_HAB 28480</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Physique</td><td rowspan="10">Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td rowspan="10">Les macroalgues possèdent des capacités de bioaccumulation des métaux lourds et sont considérés comme tolérantes à ces contaminants. Les premiers stades de vie de ces algues sont définis comme étant plus sensibles à cette pression avec un taux de croissance retardé et/ou réduit. Des études ont également mis en évidence des effets négatifs comme le blocage de l'absorption du carbone ou de la photosynthèse, réduisant ainsi la survie des individus. L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).<br>La majorité des espèces de cet habitat ont des capacités de bioaccumulation des métaux lourds jusqu'à un certain seuil de tolérance. Au-delà de ces seuils, des effets négatifs sur la morphologie, la physiologie de ces espèces, peuvent être observés. Les stades de vie larvaire sont généralement plus intolérants à une exposition aux métaux lourds que les stades adultes.<br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bryan G.W., 1984 ; Crowe et al., 2000 ; Lobban & Harrison., 1997 ; Roveta et al., 2021 ; Sheppard et al., 1980</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td rowspan="10">Littérature grise concernant des sous-habitats : Tillin, 2015, 2016 ; Readman 2016a-d</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="7">Chimique</td><td rowspan="7">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td></td></tr><tr><td>Modification des apports en matériel organique</td><td>H</td><td>F</td><td>TH</td><td>F</td><td>TF</td><td>F</td><td>Lorsque l'habitat est soumis à un fort hydrodynamisme, les conditions sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique. L'apport de matière organique peut-être une source de nourriture pour les espèces suspensivores.<br>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)</td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats : Tillin, 2015, 2016 ; Readman 2016a-d</td></tr><tr><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr></tbody></table>

Références

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Crowe, T.P., Thompson, R.C., Bray, S., Hawkins, S.J., 2000. Impacts of anthropogenic stress on rocky intertidal communities. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery 7, 273-297. https://doi.org/10.1023/A:1009911928100

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge : Cambridge University Press.
Readman, J.A.J., 2016a. Anemones, including [Corynactis viridis] crustose sponges and colonial ascidians on very exposed or wave surged vertical infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 27-08-2020].
Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1120

Readman, J.A.J., 2016b. Crustose sponges and colonial ascidians with [Dendrodoa grossularia] or barnacles on wave-surged infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 27-08-2020]. Available from:
https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1140

Readman, J.A.J., 2016c. [Dendrodoa grossularia] and [Clathrina coriacea] on wave-surged vertical infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 27-08-2020]. Available from:
https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/190

Readman, J.A.J., 2016d. Crustose sponges on extremely wave-surged infralittoral cave or gully walls. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 27-08-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/158

Roveta, C., Annibaldi, A., Afghan, A., Calcinai, B., Di Camillo, C.G., Gregorin, C., Illuminati, S., Pulido Mantas, T., Truzzi, C., Puce, S., 2021. Biomonitoring of Heavy Metals: The Unexplored Role of Marine Sessile Taxa. Applied Sciences 11, 580. https://doi.org/10.3390/app11020580

Sheppard, C.R.C., Bellamy, D.J., Sheppard, A.L.S., 1980. Study of the fauna inhabiting the holdfasts of Laminaria hyperborea (gunn.) fosl. along some environmental and geographical gradients. Marine Environmental Research 4, 25-51. https://doi.org/10.1016/0141-1136(80)90057-4

Tillin, H.M. 2015. Foliose seaweeds and coralline crusts in surge gully entrances. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 27-08-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/31

Tillin, H.M. 2016. Coralline crusts in surge gullies and scoured infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 27-08-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/370

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-9 Grottes marines, surplombs et autres microhabitats à biocénose sciaphile infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 235-236.
B2 - Récifs biogéniques infralittoraux

<table><thead><tr><th colspan="2">B2-1 Récifs de moules (moulières) infralittoraux</th><th colspan="6"></th><th rowspan="2">Description de l'évaluation</th><th rowspan="2">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th>CD_HAB</th><th>28483</th><th></th><th></th><th></th><th></th><th></th><th></th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th></th><th></th></tr></thead><tbody><tr><td>Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="12">Chimique</td><td rowspan="6">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td rowspan="6"><b>Evaluation de la sensibilité pour l'argent, le cadium, le cuivre, le mercure, le zinc et le TBT :</b><br/>L'exposition à ces contaminants engendree une mortalité élevée de l'espèce caractéristique de cet habitat (&gt;75%).<br/><br/><b>Evaluation de la sensibilité pour le zinc :</b><br/>Aucune mortalité de l'espèce caractéristique n'est reportée pour les stades adulte et juvénile.</td><td rowspan="6">Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : Tyler-Walters et al., 2022<br/>L'ensemble des articles cités dans le rapport Tyler-Walters et al., 2022, font référence à des études expérimentales en laboratoire. Il est important de prendre en considération dans l'évaluation de sensibilité, que les études expérimentales entraînent des variations de réponses à l'exposition aux métaux puisque les concentrations et les durées d'exposition sont contrôlées et limitées.</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td></tr><tr><td rowspan="2">Mercure</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td></tr><tr><td>Nickel</td><td>H</td><td>F</td><td>TH</td><td>F</td><td>TF</td><td>F</td></tr><tr><td rowspan="2">Plomb</td><td>Nickel</td><td>H</td><td>F</td><td>TH</td><td>F</td><td>TF</td><td>F</td></tr><tr><td>Zinc</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td></tr><tr><td rowspan="6"> modification des apports en matériel organique</td><td>Tributylétain (TBT)</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td><b>Evaluation de la sensibilité pour les autres types de métaux lourds :</b><br/>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.<br/><br/><b>--&gt; Attention :</b> Les expositions à court terme (&lt;48h) aux métaux lourds peuvent sous-estimer la sensibilité de l'espèce caractéristique de cet habitat. En effet, les moules ont la capacité de fermer leur coquille durant plusieurs jours en réponse à cette perturbation.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><b>Le fort hydrodynamisme</b> auquel est soumis cet habitat favorise la dispersion et l'élimination rapide de la matière organique. L'espèce caractéristique de cet habitat (Mytilus edulis) adapte ses fonctions physiologiques (modification du taux de filtration et d'absorption, production de pseudofécès) en fonction du taux de concentration de matière organique présent. La résistance est donc considérée comme haute et la résilience très haute.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><b>Attention :</b> Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br/>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br/>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br/>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bayne et al., 2009 ; Giltrap et al., 2013 ; Harstein & Rowden., 2004 ; Lander et al., 2012 ; Reid et al., 2010 ; Villnas et al., 2011<br/><br/>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : Tillin & Mainwaring, 2022 ; Tillin & Tyler-Walters, 2022</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>La faune benthique non-indigène, identifiée comme propice à la colonisation de cet habitat, rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité). Elle peut également entraîner une modification de la structure de l'habitat (modification du substrat ou de la communauté benthique) :<ul><li>La colonisation des substrats rocheux par l'huître <b>Magallana gigas</b>, peut entraîner une modification de l'habitat. En effet, la colonisation par cette espèce peut fournir des sites refuges pour d'autres organismes et ainsi une augmentation de l'abondance et de la diversité spécifique peut être observée. D'autre part, <b>Magallana gigas</b> possède des capacités de filtration supérieur à l'espèce caractéristique de cet habitat (<b>Mytilus edulis</b>) engendrant une compétition pour la ressource alimentaire entre ces deux espèces filtreuses. Ces deux espèces produisent des biodépôts (fèces et pseudo-fèces) qui en s'accumulant peuvent induire un envasement du sédiment notamment pour les bancs de moules des sédiments meubles dans les zones de faibles hydrodynamisme (cf. pression Modification des apports en matériel organique).<br><b>Crepidula fornicata</b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé, modifie la couche de fond du sédiment et réduit la croissance l'espèce caractéristique Mytilus edulis. De plus, Crepidula fornicata a un taux dispersion larvaire élevée sur de larges zones. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.</li><li><b>Didemnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et concurrence les autres espèces suspensivores de l'habitat.</li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Androuin., 2018 ; Blanchard., 1997 ; Erhold et al., 1998 ; Herbert et al., 2016 ; Lejart., 2009 ; Padilla, 2010 ; Ruesink et al., 2005 ; Thieltgès., 2005 ; Troost et al., 2010 ; Valentine et al., 2007 ;<br><br>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; Pisanu et al., 2020<br><br>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : Tillin & Mainwaring, 2022 ; Tillin & Tyler-Walters, 2022</td></tr></table>
Références

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Bayne, B.L., Iglesias, J.I.P., Hawkins, A.J.S., Navarro, E., Heral, M., Deslous-Paoli, J.M., 1993. Feeding behaviour of the mussel, Mytilus edulis: responses to variations in quantity and organic content of the seston. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom 73, 813–829. https://doi.org/10.1017/S0025315400034743

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Giltrap, M., Ronan, J., Hardenberg, S., Parkes, G., McHugh, B., McGovern, E., Wilson, J.G., 2013. Assessment of biomarkers in Mytilus edulis to determine good environmental status for implementation of MSFD in Ireland. Marine Pollution Bulletin 71, 240–249. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2013.02.021

Hartstein, N.D., Rowden, A.A., 2004. Effect of biodeposits from mussel culture on macroinvertebrate assemblages at sites of different hydrodynamic regime. Marine Environmental Research 57, 339–357. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2003.11.003

Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835–2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4

Lander, T.R., Robinson, S.M.C., MacDonald, B.A., Martini, J.D., 2012. Enhanced Growth Rates and Condition Index of Blue Mussels (mytilus Edulis) Held at Integrated Multitrophic Aquaculture Sites in the Bay of Fundy. J. Shellfish Res. 31, 997–1007. https://doi.org/10.2983/035.031.0412

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Padilla, D.K., 2010. Context-dependent Impacts of a Non-native Ecosystem Engineer, the Pacific Oyster Crassostrea gigas. Integrative and Comparative Biology 50, 213–225.
https://doi.org/10.1093/icb/icq080

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Reid, G.K., Liutkus, M., Bennett, A., Robinson, S.M.C., MacDonald, B., Page, F., 2010. Absorption efficiency of blue mussels (Mytilus edulis and M. trossulus) feeding on Atlantic salmon (Salmo salar) feed and fecal particulates: Implications for integrated multi-trophic aquaculture. Aquaculture 299, 165–169. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.12.002

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643–689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicata reduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241–244.
https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z
Tillin, HM, Mainwaring, K., Williams, E. & Tyler-Walters, H. 2022. Lits de Mytilus edulis sur roche infralittorale balayée par les marées à salinité réduite. Dans Tyler-Walters H. et Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [en ligne]. Plymouth : Association de biologie marine du Royaume-Uni. [cité le 17-06-2022]. Disponible sur : https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/259

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. Journal of Sea Research 64, 145–165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Tyler-Walters, H., Tillin, H.M., Mainwaring, K., & Williams, E. 2022. Mytilus edulis beds on sublittoral sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 17-06-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/36

Tyler-Walters, H., Williams, E., Mardle, MJ et Lloyd, KA, 2022. Évaluation de la sensibilité des pressions des contaminants - Développement de l'approche, application et examen des preuves. MarLIN (Marine Life Information Network), Marine Biological Association of the UK, Plymouth, p. 192.

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8–18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B2-1 Récifs de moules (moulières) infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 237-240.
<table><thead><tr><th colspan="2">B2-2<br>CD_HAB<br>28485</th><th colspan="7">Récifs d'huîtres infralittoraux</th><th rowspan="2">Description de l'évaluation</th><th rowspan="2">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th></tr></thead><tbody><tr><td>Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="15">Chimique</td><td rowspan="10">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td rowspan="10">L'espèce structurante de cet habitat est considérée comme bioindicatrice de la présence de contaminants tels que les ETM, métalloïdes et organo-métaux. Elle possède une forte capacité de bio-accumulation de ces contaminants dans ses tissus. Les métaux lourds peuvent induire des effets délétères sur les stades embryonnaires et larvaires ayant des répercussions sur le stade adulte (retard de croissance, taille réduite).<br><br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Araújo et al., 2021 ; Boening., 1999 ; Coglianese, M.P., Martin, M., 1981 ; Chouvelon et al., 2022 ; Rainbow & Philips., 1993</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="2">Tributylétain (TBT)</td><td></td><td>A</td><td>M</td><td>A</td><td>M</td><td>TH</td><td>M</td><td></td><td rowspan="2">L'exposition au TBT de l'espèce caractéristique de cet habitat engendre un retard de croissance au stade larvaire, des modifications des tissus ainsi qu'une malformation de la coquille due à une anomalie du processus de calcification. Les expositions prolongées à de fortes concentrations de TBT induisent des effets irréversibles -> Sensibilité très haute.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Alzieu et al., 1981 ; Alzieu, C., 2000 ; Chagot et al., 1990<br>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td>H</td><td>M</td><td>TH</td><td>M</td><td>TF</td><td>M</td><td>Le fort hydrodynamisme auquel est soumis cet habitat favorise la dispersion et l'élimination rapide de la matière organique. En tant qu'espèce filtreuse, l'huître adapte ses fonctions physiologiques (modification du taux de filtration et d'absorption, production de pseudofécès) en fonction du taux de concentration de matière organique présent. La résistance est donc considérée comme haute et la résilience très haute.<br><br>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bayne et al., 2009 ; Giltrap et al., 2013 ; Harstein & Rowden., 2004 ; Lander et al., 2012 ; Reid et al., 2010 ; Villnas et al., 2011<br><br>Littérature grise concernant un sous-habitat et la même pression : Perry et al., 2020</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>La faune benthique non-indigène, identifiée comme propice à la colonisation de cet habitat, rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité). Elle peut également entraîner une modification de la structure de l'habitat (modification du substrat ou de la communauté benthique) :<ul><li><b>Crepidula fornicata</b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé, modifie la couche de fond du sédiment. De plus, <b>Crepidula fornicata</b> a un taux dispersion larvaire élevée sur de larges zones. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement du sédiment.</li><li><b>Didendnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des sur des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et concurrence les autres espèces suspensivores de l'habitat.</li><li><b>Urosalpinx cinerea</b> est un bigorneau perceur, prédateur majeur des organismes bivalves comme les huîtres.</li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Androuin., 2018 ; Blanchard., 1997 ; Erhold et al., 1998 ; Thieltg., 2005 ; Valentine et al., 2007 ; Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; Pisanu et al., 2020 ; Littérature grise concernant un sous-habitat et la même pression : Perry et al., 2020</td></tr><tr><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td></tr></table>

Références

Alzieu, C., 2000. Environmental impact of TBT: the French experience. Science of The Total Environment, TBT Costs and Benefits- A 258, 99–102. https://doi.org/10.1016/S0048-9697(00)00510-6

Alzieu, C., Heral, M., Thibaud, Y., Dardignac, M.-J., Feuillet, M., 1981. Influence des Peintures Antisalissures a Base d'Organostanniques sur la Calcification de la Coquille de l'Huitre Crassostrea gigas. Revue des Travaux de l'Institut des Pêches Maritimes 45, 101–116.

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Araújo, D.F., Knoery, J., Briant, N., Ponzevera, E., Chouvelon, T., Auby, I., Yepez, S., Bruzac, S., Sireau, T., Pellouin-Grouhel, A., Akcha, F., 2021. Metal stable isotopes in transplanted oysters as a new tool for monitoring anthropogenic metal bioaccumulation in marine environments: The case for copper. Environmental Pollution 290, 118012. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2021.118012

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Bayne, B.L., Iglesias, J.I.P., Hawkins, A.J.S., Navarro, E., Heral, M., Deslous-Paoli, J.M., 1993. Feeding behaviour of the mussel, Mytilus edulis: responses to variations in quantity and organic content of the seston. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom 73, 813–829. https://doi.org/10.1017/S0025315400034743

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19. https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitor of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459–470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

Chagot, D., Alzieu, C., Sanjuan, J., Grizel, H., 1990. Sublethal and histopathological effects of trace levels of tributyltin fluoride on adult oysters Crassostrea gigas. Aquat. Living Resour. 3, 121–130. https://doi.org/10.1051/alr:1990012

Chouvelon, T., Auby, I., Mornet, L., Bruzac, S., Charlier, K., Araújo, D.F., Gonzalez, J.-L., Gonzalez, P., Gourves, P.-Y., Méteigner, C., Perrière-Rumèbe, M., Rigouin, L., Rozuel, E., Savoye, N., Sireau, T., Akcha, F., 2022. Role of suspended particulate material on growth and metal bioaccumulation in oysters (Crassostrea gigas) from a French coastal semi-enclosed production area, Arcachon Bay. Journal of Marine Systems 103778. https://doi.org/10.1016/j.jmarsys.2022.103778
Coglianese, M.P., Martin, M., 1981. Individual and interactive effects of environmental stress on the embryonic development of the Pacific oyster, Crassostrea gigas. I. The toxicity of copper and silver. Marine Environmental Research 5, 13-27. https://doi.org/10.1016/0141-1136(81)90019-2

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Giltrap, M., Ronan, J., Hardenberg, S., Parkes, G., McHugh, B., McGovern, E., Wilson, J.G., 2013. Assessment of biomarkers in Mytilus edulis to determine good environmental status for implementation of MSFD in Ireland. Marine Pollution Bulletin 71, 240-249. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2013.02.021

Hartstein, N.D., Rowden, A.A., 2004. Effect of biodeposits from mussel culture on macroinvertebrate assemblages at sites of different hydrodynamic regime. Marine Environmental Research 57, 339-357. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2003.11.003

Lander, T.R., Robinson, S.M.C., MacDonald, B.A., Martini, J.D., 2012. Enhanced Growth Rates and Condition Index of Blue Mussels (mytilus Edulis) Held at Integrated Multitrophic Aquaculture Sites in the Bay of Fundy. J. Shellfish Res. 31, 997-1007. https://doi.org/10.2983/035.031.0412

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Perry, F., Tyler-Walters, H., & Garrard, S. L. 2020. [Ostrea edulis] beds on shallow sublittoral muddy mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 13-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/69

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Rainbow, P.S., Phillips, D.J.H., 1993. Cosmopolitan biomonitors of trace metals. Marine Pollution Bulletin 26, 593-601. https://doi.org/10.1016/0025-326X(93)90497-8

Reid, G.K., Liutkus, M., Bennett, A., Robinson, S.M.C., MacDonald, B., Page, F., 2010. Absorption efficiency of blue mussels (Mytilus edulis and M. trossulus) feeding on Atlantic salmon (Salmo salar) feed and fecal particulates: Implications for integrated multi-trophic aquaculture. Aquaculture 299, 165-169. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2009.12.002

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicata reduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241-244. https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8-18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B2-2 Récifs d'huîtres infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 241-243.
<table><thead><tr><th colspan="2">B2-3<br>CD_HAB<br>28486</th><th colspan="7">Récifs de polychètes tubicoles infralittoraux</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="2">Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="12">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td rowspan="12">Une étude rapporte les capacités de bioaccumulation de métaux lourds, par une autre espèce de polychète tubicole, Sabellaria alveolata.<br><br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td rowspan="12">Publications examinées en comité de lecture : Chouikh et al., 2022</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td rowspan="2">Chimique</td><td>Modification des apports en matériel organique</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir des scores de résistance et de résilience<br><br>L'espèces ingénieur de cet habitat est un suspensivore qui se nourrit de la matière organique en suspension et produit des biodépôts (fèces et pseudo-fèces) en abondance. L'enrichissement en matière organique produit par cette espèce peut modifier la composition du sédiment et la communauté d'espèces invertébrés benthiques associées.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bruschetti et al., 2011</td></tr><tr><td>Biologique</td><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>NA</td><td></td><td>NA</td><td></td><td>NA</td><td></td><td>Cet habitat est constitué par l'espèce non-indigène Ficopomatus enigmaticus.<br><br>Littérature grise concernant la pression : Le Gal et al., 2021</td><td></td></tr></tbody></table>

## Références

Bruschetti, M., Bazterrica, C., Fanjul, E., Luppi, T., Iribarne, O., 2011. Effect of biodeposition of an invasive polychaete on organic matter content and productivity of the sediment in a coastal lagoon. Journal of Sea Research 66, 20–28. https://doi.org/10.1016/j.seares.2011.04.007

Chouikh, N., Gillet, P., Cheggour, M., Maarouf, A., El Hachimi, Y., Mounir, A., Alahyane, H., Mouabad, A., 2022. Bioaccumulation of Trace Metals in Sabellaria alveolata (Annelida: Polychaeta) and Their Controlling Factors Along the Essaouira Protected Coastal Area (Atlantic Coast of Morocco). Ocean Sci. J. https://doi.org/10.1007/s12601-022-00057-z

Le Gal A., Decaris F.-X., Derrien-Courtel S., Derrien R., 2021. B2-3 – Récifs de polychètes tubicoles infralittoraux ; in La Rivière et al., 2022. Fiches descriptives des habitats marins benthiques de la Manche, de la Mer du Nord et de l'Atlantique. PatriNat (OFB-CNRS-MNHN), Paris : 235-237.

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B2-3 Récifs de polychètes tubicoles infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 244.
B3 - Sédiments grossiers infralittoraux

<table><thead><tr><th>B3-1<br>CD_HAB</th><th colspan="7">Cailloutis infralittoraux<br>28488</th><th></th><th></th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Physique</td><td rowspan="10">Champs électromagnétiques<br><br>Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td rowspan="2">L'espèce caractéristique de cet habitat <i>Ophiothrix fragilis</i> est capable de bioaccumuler les métaux lourds mais aucune information concernant les effets de cette accumulation n'est disponible.</td><td rowspan="2">Publications examinées en comité de lecture : Gounin et al., 1995</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td rowspan="2">Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td rowspan="2">Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression : Jackson A., 2008 ; Tillin, 2016 ; Readman & Hiscock, 2016 ;</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="2">Chimique</td><td rowspan="2">Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Les conditions de fort hydrodynamisme de cet habitat sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique. De plus, la taille des sédiments facilite le drainage de l'eau empêchant l'accumulation de la matière organique.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Dunlop, 2021 ; Keeley et al., 2019 ; Salvo et al., 2017 ; Trannum et al., 2019 ; Pezzola, 2021</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat:<ul><li><b>Crepidula fornicata</b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat. Cette modification sédimentaire peut avoir des conséquences sur les organismes sessiles de cet habitat (cf. pression Modification des apports en matériel organique).</li><li><b>Didemnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture: Androuin, 2018; Blanchard, 1997; Bullard et al., 2007; Ehrhold et al., 1998; Gouletquer, 2016; Griffith et al., 2002; Mercer et al., 2009; Thieltges et al., 2005; Valentine et al., 2007</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant la même pression: Baffreau et al., 2018; Blanchard, 2009; McKenzie et al., 2017; Pisanu et al., 2020</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats et une pression similaire: Tillin, 2016; Readman & Hiscock, 2016</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11-19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Dunlop, K., Harendza, A., Bannister, R., Keeley, N., 2021. Spatial response of hard- and mixed-bottom benthic epifauna to organic enrichment from salmon aquaculture in northern Norway.
Aquaculture Environment Interactions 13, 455-475. https://doi.org/10.3354/aei00419

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Gouletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Gounin, F., Davoult, D., Richard, A., 1995. Role of a dense bed of Ophiothrix fragilis (Abildgaard) in the transfer of heavy metals at the water-sediment interface. Marine Pollution Bulletin 30, 736-741.
https://doi.org/10.1016/0025-326X(95)00065-U
Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581–590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Jackson, A. 2008. Ophiothrix fragilis Common brittlestar. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/species/detail/1198

Keeley, N., Valdemarsen, T., Woodcock, S., Holmer, M., Husa, V., Bannister, R., 2019. Resilience of dynamic coastal benthic ecosystems in response to large-scale finfish farming. AQUACULTURE ENVIRONMENT INTERACTIONS 11, 161–179. https://doi.org/10.3354/aei00301

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Mercer, J., 2009. Potential effects of the invasive colonial ascidian (Didemnum vexillum) on pebble-cobble bottom habitats in Long Island Sound, USA. Al 4, 133–142.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.1.14

Pezzola, C., 2021. Monitoring of benthic indicators of organic enrichment under aquaculture sites over mixed bottom substrates during a fish production cycle (research_project_2).

Readman, J.A.J. & Hiscock, K. 2016. [Halcampa chrysanthellum] and [Edwardsia timida] on sublittoral clean stone gravel. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from:
https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/80

Salvo, F., Mersereau, J., Hamoutene, D., Belley, R., Dufour, S.C., 2017. Spatial and temporal changes in epibenthic communities at deep, hard bottom aquaculture sites in Newfoundland. Ecological Indicators 76, 207–218. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2017.01.019

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicatareduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241–244.
https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z

Tillin, H.M. 2016. Sparse fauna on highly mobile sublittoral shingle (cobbles and pebbles). In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1080

Trannum, H.C., Borgersen, G., Oug, E., Glette, T., Brooks, L., Ramirez-Llodra, E., 2019. Epifaunal and infaunal responses to submarine mine tailings in a Norwegian fjord. Marine Pollution Bulletin 149, 110560. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2019.110560

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B3-1 Sédiments grossiers infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 245-247.
<table><thead><tr><th colspan="8">B3-2 Sables grossiers et graviers infralittoraux</th><th rowspan="3">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th colspan="8">CD_HAB 7138</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="12">Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="12">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les mollusques bivalves sont connus pour leur capacité de bioaccumulation de métaux lourds. Au delà d'un certain seuil de concentration, de nombreux effets délétères peuvent être observés sur les conditions physiologiques de ces organismes (fermeture de valve, inhibition du taux de filtration, perturbation du comportement fouisseur...). Le stade de vie larvaire est généralement moins tolérant à une exposition aux métaux lourds que le stade adulte.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bryan., 1984 ; Boening., 1999 ; Dauvin., 2008 ; Dong et al., 2021 ; Holt et al., 1995</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Certaines espèces, telles que les polychètes dépositivores sont considérées comme opportunistes dans les habitats pollués par ces contaminants et présentent plus de résistance à cette pression. Une diminution de la richesse spécifique peut être observée.</td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression : Ashley & Marshall., 2007 ; Readman et al., 2016 ; Tillin et al., 2016a-c</td></tr><tr><td rowspan="2">Chimique</td><td rowspan="2">Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td>H</td><td>M</td><td>H</td><td>M</td><td>F</td><td>M</td><td>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Les conditions hydrodynamiques de cet habitat sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique. De plus, les sédiments avec une granulométrie importante (type sable, gravier...) ont une capacité de pénétration de l'oxygène plus grande que des sédiments de faible granulométrie (type vase). Une modification des apports en matière organique pour cet habitat peut induire des conditions favorables (augmentation des ressources alimentaires) à l'augmentation d'espèces opportunistes tolérantes tout en maintenant l'abondance d'espèces sensibles associées à cet habitat.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Hartsein & Rowden., 2004 ; Keeley et al., 2019 ; Lin & Bailey-Brock, 2008 ; Pearson & Rosenberg, 1978 ; Villnas et al., 2011</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>La résistance est qualifiée de haute et la résilience de haute.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br/>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br/>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br/>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)<br/>De plus, tant que le sédiment n'a pas retrouvé ses caractéristiques géochimiques de référence, l'habitat ne peut pas se rétablir complétement et il y a un risque de colonisation par des espèces opportunistes.</td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression : Ashley & Marshall., 2007 ; Readman et al., 2016 ; Tillin et al., 2016a-c</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat:<ul><li><b>Crepidula fornicata</b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.</li><li><b>Didendnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li><b>Rapana venosa</b> est une espèce non-indigène vivant sur des fonds sableux, coquilliers ou vaseux. C'est un véritable prédateur de mollusques bivalves (moules, huîtres, coquilles saint-jaques...). Enfoui dans le sédiment, ce mollusque est particulièrement difficile à détecter.</li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture: Androuin., 2018; Blanchard., 1997; Bouget et al.,2001; Bullard et al.,2007; Ehrhold et al., 1998; Goulletquer., 2016; Griffith et al.,2002; Joly et al.,2002; Le Duff et al., 2013; Mercer et al.,2009; Thieltges et al., 2005; Valentine et al.,2007</td></tr><tr><td>Littérature grise concernant la même pression: Baffreau et al., 2018; Blanchard., 2009; McKenzie et al.,2017; Pisanu et al.,2020; Zenetos., 2016</td></tr><tr><td colspan="2"></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression: Ashley & Marshall, 2007; Readman & Hiscock, 2016; Tillin, 2016 a-c;</td></tr><tr><td colspan="2"></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Ashley, M. & Marshall, C., 2007. [Hesionura elongata] and [Microphthalmus similis] with other interstitial polychaetes in infralittoral mobile coarse sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/379

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11-19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitors of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459-470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

Bouget, J.-F., Camus, P., Joly, J.-P., 2001. Ocinebrellus inornatus (Recluz, 1851), Rapana venosa (Valenciennes, 1846): deux nouveaux gastéropodes introduits dans la Baie de Quiberon.

Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.
Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160-169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012

Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X., 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. Mar Pollut Bull 167, 112292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581-590. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Hartstein, N.D., Rowden, A.A., 2004. Effect of biodeposits from mussel culture on macroinvertebrate assemblages at sites of different hydrodynamic regime. Marine Environmental Research 57, 339-357. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2003.11.003

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Joly, J.-P., Bouget, J.-F., Hirata, T., 2002. Le gastéropode prédateur Rapana venosa : point sur les connaissances et expérimentations au laboratoire.

Keeley, N., Valdemarsen, T., Woodcock, S., Holmer, M., Husa, V., Bannister, R., 2019. Resilience of dynamic coastal benthic ecosystems in response to large-scale finfish farming. AQUACULTURE ENVIRONMENT INTERACTIONS 11, 161-179. https://doi.org/10.3354/aei00301

Le Duff, M., Cadiou, S., Grall, J., 2013. Rapana venosa (Valenciennes, 1846), une nouvelle trouvaille inquiétante. An aod-les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 2, 27-30.

Lin, D.T., Bailey-Brock, J.H., 2008. Partial recovery of infaunal communities during a fallow period at an open-ocean aquaculture. Marine Ecology Progress Series 371, 65-72. https://doi.org/10.3354/meps07675

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Mercer, J., 2009. Potential effects of the invasive colonial ascidian (Didemnum vexillum) on pebble-cobble bottom habitats in Long Island Sound, USA. Al 4, 133-142. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.1.14

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.
Readman, J.A.J. & Hiscock, K. 2016. [Halcampa chrysanthellum] and [Edwardsia timida] on sublittoral clean stone gravel. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/80

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicata reduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241-244.
https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z

Tillin, H.M. 2016a. Cumaceans and [Chaetozone setosa] in infralittoral gravelly sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1112

Tillin, H.M. 2016b. [Glycera lapidum] in impoverished infralittoral mobile gravel and sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1137

Tillin, H.M. 2016c. [Moerella] spp. with venerid bivalves in infralittoral gravelly sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1111

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8-18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

Zenetos A., 2016. Rapana venosa. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B3-2 Sables grossiers et graviers infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 248-251.
B3-3 Sables grossiers et graviers infralittoraux en milieu à salinité variable

CD_HAB 2584

<table><thead><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Physique</td><td rowspan="10">Champs électromagnétiques</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est également différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td>Littérature grise concernant la même pression : Tyler-Walters et al., 2022</td></tr><tr><td rowspan="10">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Chimique</td><td rowspan="10">Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Les conditions hydrodynamiques de cet habitat sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique.<br>De plus, les sédiments avec une granulométrie importante (type sable, gravier...) ont une capacité de pénétration de l'oxygène plus grande que des sédiments de faible granulométrie (type vase).<br>Une modification des apports en matière organique peut induire des effets positifs sur cet habitat (augmentation des ressources alimentaires) puisque la faune associée est considérée comme tolérante à un enrichissement organique.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Hartsein & Rowden, 2004 ; Keeley et al., 2019 ; Lin & Bailey-Brock, 2008 ; Pearson & Rosenberg, 1978 ; Villnas et al., 2011</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>La résistance est qualifiée de haute et la résilience de très haute.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)<br>De plus, tant que le sédiment n'a pas retrouvé ses caractéristiques géochimiques de référence, l'habitat ne peut pas se rétablir complétement et il y a un risque de colonisation par des espèces opportunistes.</td><td>Littérature grise concernant un habitat similaire et la même pression : Tillin, 2016 ;</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat:<ul><li><b>Crepidula fornicata</b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.</li><li><b>Didendnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li><b>Rapana venosa</b> est une espèce non-indigène vivant sur des fonds sableux, coquilliers ou vaseux. C'est un véritable prédateur de mollusques bivalves (moules, huîtres, coquilles saint-jaques...). Enfoui dans le sédiment, ce mollusque est particulièrement difficile à détecter.</li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Androuin., 2018 ; Blanchard., 1997 ; Bouget et al.,2001 ; Bullard et al.,2007 ; Ehrhold et al., 1998 ; Gouletquer., 2016 ; Griffith et al.,2002 ; Joly et al.,2002 ; Le Duff et al., 2013 ; Mercer et al.,2009 ; Thieltgès et al., 2005 ; Valentine et al.,2007a-b</td></tr><tr><td></td><td>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard., 2009 ; McKenzie et al.,2017 ; Pisanu et al.,2020 ; Zenetos., 2016</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant un habitat similaire et la même pression : Tillin, 2016 ;<br>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Bouget, J.-F., Camus, P., Joly, J.-P., 2001. Ocinebrellus inornatus (Recluz, 1851), Rapana venosa (Valenciennes, 1846) : deux nouveaux gastéropodes introduits dans la Baie de Quiberon.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Gouletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. AI 4, 581–590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3
Hartstein, N.D., Rowden, A.A., 2004. Effect of biodeposits from mussel culture on macroinvertebrate assemblages at sites of different hydrodynamic regime. Marine Environmental Research 57, 339-357. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2003.11.003

Joly, J.-P., Bouget, J.-F., Hirata, T., 2002. Le gastéropode prédateur Rapana venosa : point sur les connaissances et expérimentations au laboratoire.

Keeley, N., Valdemarsen, T., Woodcock, S., Holmer, M., Husa, V., Bannister, R., 2019. Resilience of dynamic coastal benthic ecosystems in response to large-scale finfish farming. AQUACULTURE ENVIRONMENT INTERACTIONS 11, 161–179. https://doi.org/10.3354/aei00301

Le Duff, M., Cadiou, S., Grall, J., 2013. Rapana venosa (Valenciennes, 1846), une nouvelle trouvaille inquiétante. An aod-les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 2, 27-30.

Lin, D.T., Bailey-Brock, J.H., 2008. Partial recovery of infaunal communities during a fallow period at an open-ocean aquaculture. Marine Ecology Progress Series 371, 65–72. https://doi.org/10.3354/meps07675

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Mercer, J., 2009. Potential effects of the invasive colonial ascidian (Didemnum vexillum) on pebble-cobble bottom habitats in Long Island Sound, USA. AI 4, 133–142. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.1.14

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicatareduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241–244. https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z

Tillin, H.M. 2016. Sublittoral coarse sediments in variable salinity (estuaries). In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 17-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/53

Tyler-Walters, H., Williams, E., Mardle, M.J. & Lloyd, K.A., 2022. Sensitivity Assessment of Contaminant Pressures - Approach Development, Application, and Evidence Reviews. MarLIN (Marine Life Information Network), Marine Biological Association of the UK, Plymouth, pp. 192

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8–18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

Zenetos A., 2016. Rapana venosa. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B3-3 Sables grossiers et graviers infralittoraux en milieu à salinité variable" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 252-254.
B3-4
CD_HAB

Bancs de maërl sur sables grossiers et graviers infralittoraux
2635

<table><thead><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td rowspan="10">Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.<br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Wilson et al., 2004</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : Perry &amp; Tyler-Walters., 2020</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Chimique</td><td rowspan="10">Modification des apports en matériel organique</td><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>La matière organique sédimente, s'accumule sur les thalles et entre les interstices. On observe un changement de structure de la communauté des espèces d'invertébrés benthiques remplacées par des espèces opportunistes (détritivores). Le maërl perd ses capacités photosynthétiques ainsi que ses facultés de régénération et de croissance.<br>De plus, un enrichissement en matière organique peut induire un changement de structure de la communauté des espèces d'invertébrés benthiques suivant le modèle de Pearson et Rosenberg, 1978, avec pour conséquence l'augmentation de l'abondance d'espèces opportunistes et une diminution de la diversité et de la richesse spécifique due à une perte des espèces sensibles.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Grall &amp; Hall-Spencer, 2003 ; Hall-spencer et al., 2006 ; Pearson &amp; Rosenberg, 1978 ; Wilson et al., 2004</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : Perry &amp; Tyler-Walters., 2020</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Biologique</td><td rowspan="10">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>La résilience de cet habitat est >25 ans (taux de croissance 1 mm/an).<br>Crepidula fornicata est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) dans les thalles de maërl qui se retrouvent obstrué. (Cf. pression Modification des apports en matériel organique).<br>Autre espèce non-indigène dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : Dasysiphonia japonica</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Androuin., 2018 ; Blanchard., 1997 ; Ehrhold et al., 1998 ; Gouletquer., 2016 ; Grall &amp; Hall-Spencer., 2003 ; Peña et al., 2014 ; Sjøtun et al., 2008<br>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard., 2009 ; Pisanu et al., 2020<br>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : Perry &amp; Tyler-Walters., 2020<br>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
Références

Androuin Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Grall, J., Hall-Spencer, J.M., 2003. Problems facing maerl conservation in Brittany. Aquatic Conserv: Mar. Freshw. Ecosyst. 13, S55–S64. https://doi.org/10.1002/aqc.568

Hall-Spencer, J., White, N., Gillespie, E., Gillham, K., Foggo, A., 2006. Impact of fish farms on maerl beds in strongly tidal areas. Marine Ecology Progress Series 326, 1–9.
https://doi.org/10.3354/meps326001

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Peña, V., Bárbara, I., Grall, J., Maggs, C.A., Hall-Spencer, J.M., 2014. The diversity of seaweeds on maerl in the NE Atlantic. Mar Biodiv 44, 533–551. https://doi.org/10.1007/s12526-014-0214-7

Perry, F., Tyler-Walters, H., & Garrard, S. L. 2020. [Phymatolithon calcareum] maerl beds in infralittoral clean gravel or coarse sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from:
https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/170

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Sjøtun, K., 2008. Present distribution and possible vectors of introductions of the alga Heterosiphonia japonica (Ceramiales, Rhodophyta) in Europe. Al 3, 377–394.
https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.4.3

Wilson, S., Blake, C., Berges, J.A., Maggs, C.A., 2004. Environmental tolerances of free-living coralline algae (maerl): implications for European marine conservation. Biological Conservation 120, 279–289. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2004.03.001

Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B3-5 Bancs de maërl sur sables grossiers et graviers infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 255-256.
B4 - Sédiments hétérogènes infralittoraux

<table><thead><tr><th colspan="8">B4-1<br>CD_HAB<br>7159</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Chimique</td><td rowspan="10">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td colspan="7">Champs électromagnétiques</td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="5">Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les mollusques bivalves sont connus pour leur capacité de bioaccumulation de métaux lourds. Au delà d'un certain seuil de concentration, de nombreux effets délétères peuvent être observés sur les conditions physiologiques de ces organismes (fermeture de valve, inhibition du taux de filtration, perturbation du comportement fouisseur...).</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Boening., 1999 ; Bryan., 1984 ; Dauvin., 2008 ; Dong et al., 2021 ; Holt et al., 1995 ; Lobban & Harrison., 1997</td></tr><tr><td>Cadmium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Une étude a mis en évidence, l'inhibition du recrutement des larves de l'espèce Limaria hiansdans une zone exposée au TBT.</td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Certaines espèces, telles que les polychètes dépositivores, sont considérées comme opportunistes dans les habitats pollués par ces contaminants et présentent davantage de résistance à cette pression. Une diminution de la richesse spécifique peut -être observée.</td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les macroalgues possèdent des capacités de bioaccumulation des métaux lourds et sont considérés comme tolérantes à ces contaminants. Les premiers stades de vie de ces algues sont définis comme étant plus sensibles à cette pression avec un taux de croissance retardé et/ou réduit. Des études ont également mis en évidence des effets négatifs comme le blocage de l'absorption du carbone ou de la photosynthèse, réduisant ainsi la survie des individus. L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).</td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats et une pression similaire : Readman, 2016 ; Perry, 2016 ; Tillin & Rayment, 2001 ; Stamp, 2015 ; Perry et al., 2015 ; Stamp & Hiscock, 2015 ; Tyler-Walters et al., 2018 ;</td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td></td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Modification des apports en matériel organique</td><td>V</td><td>H</td><td>V</td><td>M</td><td>V</td><td>M</td><td>Les sédiments avec une granulométrie importante (sable, gravier...) ont une capacité de pénétration de l'oxygène plus importante que des sédiments de faible granulométrie (vase) et par conséquent possède une capacité de résistance et de résilience plus élevée. En prenant en considération cette remarque :<br/>- Pour des secteurs soumis à un hydrodynamisme modéré, l'apport de matière organique a un impact positif (source de nourriture) avec une augmentation de l'abondance des espèces d'invertébrés benthiques. La diminution de la richesse et de la diversité spécifique reste modérée. La résistance est qualifiée de modérée et la résilience de haute -&gt; Sensibilité modérée<br/>- Pour les secteurs soumis à un faible hydrodynamisme, l'enrichissement en matière organique peut induire un changement de structure de la communauté des espèces d'invertébrés benthiques suivant le modèle de Pearson et Rosenberg, 1978, avec pour conséquence l'augmentation de l'abondance d'espèces opportunistes et une diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La résistance est qualifiée de faible et la résilience de modérée -&gt; Sensibilité haute.<br/>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br/>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br/>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br/>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)<br/>De plus, tant que le sédiment n'a pas retrouvé ses caractéristiques géochimiques de référence, l'habitat ne peut pas se rétablir complétement et il y a un risque de colonisation par des espèces opportunistes.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Dauvin et al., 2020 ; Hartsein & Rowden., 2004 ; Keeley et al., 2013 ; Lin & Bailey-Brock., 2008 ; Pearson & Rosenberg, 1978 ; Pereira et al., 2004 ; Villnas et al., 2011</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats et une pression similaire : Readman, 2016 ; Perry, 2016 ; Tillin & Rayment, 2001 ; Stamp, 2015 ; Perry et al., 2015 ; Stamp & Hiscock, 2015 ; Tyler-Walters et al., 2018 ;</td></tr></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>La présence de l'espèce non-indigène Sargassum muticum est documentée dans le sous-habitat B4-1.9 - Sédiments hétérogènes infralittoraux à Sargassum muticum.</td><td rowspan="2">Publications examinées en comité de lecture : Androuin., 2018 ; Blanchard., 1997 ; Bouget et al.,2001 ; Bullard et al.,2007 ; Ehrhold et al., 1998 ; Goulletquer., 2016 ; Griffith et al.,2002 ; Joly et al.,2002 ; Le Duff et al., 2013 ; Mercer et al.,2009 ; Thieltgés et al., 2005 ; Valentine et al.,2007</td></tr><tr><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>L'espèce non-indigène Crepidula fornicata colonise localement cet habitat, formant des bancs sur les sédiments hétérogènes.<br/>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat :<ul><li>Didendnum vexillum est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li>Rapana venosa est une espèce non-indigène vivant sur des fonds sableux, coquilliers ou vaseux. C'est un véritable prédateur de mollusques bivalves (moules, huîtres, coquilles saint-jaques...). Enfoui dans le sédiment, ce mollusque est particulièrement difficile à détecter.</li></ul></td><td>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard., 2009 ; Lutrand et al., 2021 ; McKenzie et al.,2017 ; Pisanu et al.,2020 ; Zenetos., 2016<br/>Littérature grise concernant des sous-habitats et une pression similaire : Readman, 2016 ; Perry, 2016 ; Tillin & Rayment, 2001 ; Stamp, 2015 ; Perry et al., 2015 ; Stamp & Hiscock, 2015 ; Tyler-Walters et al., 2018 ;<br/>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11-19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitors of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459-470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

Bouget, J.-F., Camus, P., Joly, J.-P., 2001. Ocinebrellus inornatus (Recluz, 1851), Rapana venosa (Valenciennes, 1846) : deux nouveaux gastéropodes introduits dans la Baie de Quiberon.

Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020
Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160-169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012

Dauvin, J.-C., Pezy, J.-P., Baffreau, A., Bachelet, Q., Baux, N., Méar, Y., Murat, A., Poizot, E., 2020. Effects of a salmon fish farm on benthic habitats in a high-energy hydrodynamic system: The case of the Rade de Cherbourg (English Channel). Aquaculture 518, 734-832. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.734832

Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X., 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. Mar Pollut Bull 167, 112-292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581-590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Hartstein, N.D., Rowden, A.A., 2004. Effect of biodeposits from mussel culture on macroinvertebrate assemblages at sites of different hydrodynamic regime. Marine Environmental Research 57, 339-357. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2003.11.003

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Joly, J.-P., Bouget, J.-F., Hirata, T., 2002. Le gastéropode prédateur Rapana venosa : point sur les connaissances et expérimentations au laboratoire.

Keeley, N., Valdemarsen, T., Woodcock, S., Holmer, M., Husa, V., Bannister, R., 2019. Resilience of dynamic coastal benthic ecosystems in response to large-scale finfish farming. AQUACULTURE ENVIRONMENT INTERACTIONS 11, 161-179. https://doi.org/10.3354/aei00301

Le Duff, M., Cadiou, S., Grall, J., 2013. Rapana venosa (Valenciennes, 1846), une nouvelle trouvaille inquiétante. An aod-les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 2, 27-30.

Lin, D.T., Bailey-Brock, J.H., 2008. Partial recovery of infaunal communities during a fallow period at an open-ocean aquaculture. Marine Ecology Progress Series 371, 65-72.
https://doi.org/10.3354/meps07675

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge: Cambridge University Press.

Lutrand A., Houbin C., Thiébaut E., 2021. B4-1 – Sédiments hétérogènes infralittoraux; in La Rivière et al., 2021. Fiches descriptives des habitats marins benthiques de la Manche, de la Mer du Nord et de l'Atlantique. PatriNat (OFB-CNRS-MNHN), Paris: 259-264.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Mercer, J., 2009. Potential effects of the invasive colonial ascidian (Didemnum vexillum) on pebble-cobble bottom habitats in Long Island Sound, USA. Al 4, 133-142.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.1.14

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Pereira, P.M.F., Black, K.D., McLusky, D.S., Nickell, T.D., 2004. Recovery of sediments after cessation of marine fish farm production. Aquaculture 235, 315-330.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.12.023
Perry, F., 2016. [Sabella pavonina] with sponges and anemones on infralittoral mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 29-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1088

Perry, F., Tillin, H.M. & Garrard, S. L. 2015. [Sargassum muticum] on shallow slightly tide-swept infralittoral mixed substrata. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1055

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Readman, J.A.J., 2016. [Crepidula fornicata] with ascidians and anenomes on infralittoral coarse mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 29-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1139

Stamp, T.E. & Hiscock, K. 2015. [Saccharina latissima] and [Chorda filum] on sheltered upper infralittoral muddy sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 29-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/58

Stamp, T.E. 2015. [Saccharina latissima] and red seaweeds on infralittoral sediments. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 29-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1033

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicata reduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241-244.
https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z

Tillin, H.M. & Rayment, W., 2001. [Venerupis corrugata], [Amphipholis squamata] and [Apseudes holthuisi] in infralittoral mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/354

Tyler-Walters, H., Trigg, C. & Perry, F., 2018. [Limaria hians] beds in tide-swept sublittoral muddy mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/112

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8-18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

Zenetos A., 2016. Rapana venosa. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B4-1 Sediments hétérogènes infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 257-261.
B4-2 Sédiments hétérogènes infralittoraux en milieu à salinité variable

CD_HAB 2592

<table><thead><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="15">Chimique</td><td rowspan="15">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td colspan="7">Champs électromagnétiques</td><td colspan="2">Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td></tr><tr><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les mollusques bivalves sont connus pour leur capacité de bioaccumulation de métaux lourds. Au delà d'un certain seuil de concentration, de nombreux effets délétères peuvent être observés sur les conditions physiologiques de ces organismes (fermeture de valve, inhibition du taux de filtration, perturbation du comportement fouisseur...).</td><td rowspan="15">Publications examinées en comité de lecture : Boening., 1999 ; Bryan., 1984 ; Dauvin., 2008 ; Dong et al., 2021 ; Holt et al., 1995 ; Lobban & Harrison., 1997<br>Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression : De-Bastos & Tyler-Walters, 2016 ; Readman & Rayment, 2016 ; Stamp & Garrad, 2022 ; Stamp, 2022 ; Tyler-Walters, 2016.2022 ; Hiscock, 2016</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Une étude a mis en évidence, l'inhibition du recrutement des larves de l'espèce Limaria hians dans une zone exposée au TBT.</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Certaines espèces, telles que les polychètes dépositivores, sont considérées comme opportunistes dans les habitats pollués par ces contaminants et présentent davantage de résistance à cette pression. Une diminution de la richesse spécifique peut être observée.</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les macroalgues possèdent des capacités de bioaccumulation des métaux lourds et sont considérés comme tolérantes à ces contaminants. Les premiers stades de vie de ces algues sont définis comme étant plus sensibles à cette pression avec un taux de croissance retardé et/ou réduit. Des études ont également mis en évidence des effets négatifs comme le blocage de l'absorption du carbone ou de la photosynthèse, réduisant ainsi la survie des individus. L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).</td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
<table><tr><td></td><td>Modification des apports en matériel organique</td><td>V</td><td>H</td><td>V</td><td>M</td><td>V</td><td>M</td><td>Les sédiments avec une granulométrie importante (type sable, gravier...) ont une capacité de pénétration de l'oxygène plus importante que des sédiments de faible granulométrie (type vase) et par conséquent possède une capacité de résistance et de résilience plus élevée. En prenant en considération cette remarque :<br/>- Pour les secteurs soumis à un <strong>fort hydrodynamisme</strong>, la matière organique remise en suspension est rapidement éliminée. La résistance est qualifiée de haute et la résilience très haute -&gt; <strong>Sensibilité très faible</strong>.<br/>- Pour les secteurs soumis à un <strong>hydrodynamisme modéré</strong>, l'apport de matière organique a un impact positif (source de nourriture) avec une augmentation de l'abondance des espèces d'invertébrés benthiques. La diminution de la richesse et de la diversité spécifique reste modérée. La résistance est qualifiée de modérée et la résilience comme haute -&gt; <strong>Sensibilité Faible</strong><br/>- Pour les secteurs soumis à de faible hydrodynamisme, l'enrichissement en matière organique peut induire un changement de structure de la communauté des espèces d'invertébrés benthiques suivant le modèle de Pearson et Rosenberg, 1978, avec pour conséquence l'augmentation de l'abondance d'espèces opportunistes et une diminution de la diversité et de la richesse spécifique est observée. La résistance est qualifiée comme faible et la résilience comme haute -&gt; <strong>Sensibilité modérée</strong><br/><strong>Attention</strong>: Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale:<br/>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br/>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br/>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)<br/>De plus, tant que le sédiment n'a pas retrouvé ses caractéristiques géochimiques de référence, l'habitat ne peut pas se rétablir complètement et il y a un risque de colonisation par des espèces opportunistes.</td><td>Publications examinées en comité de lecture: Dauvin et al., 2020; Hartsein & Rowden., 2004; Keeley et al., 2013; Lin & Bailey-Brock., 2008; Pearson & Rosenberg, 1978; Pereira et al., 2004; Villnas et al., 2011</td></tr><tr><td>Biologique</td><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td><strong>Le sous habitat B4-2.2 est représenté entre autres par l'espèce non-indigène Crepidula fornicata.</strong><br/><strong>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigèness citées ci-dessous, dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifié dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat</strong><br/>De nombreuses <strong>algues non-indigènes</strong> ont été identifiées comme introduites dans cet habitat, notamment dans les <strong>zones de blocs rocheux</strong>. L'ensemble de ces espèces sont de véritables compétitrices vis-à-vis des espèces indigènes pour l'espace, la lumière et la ressource alimentaire. La propagation de ces espèces introduites entraîne une diminution de la couverture des macroalgues natives et dans certains cas la diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La composition de la communauté benthique est largement modifiée:<br/>- <strong>Undaria pinnatifida</strong> est particulièrement résistante et colonise facilement ces milieux. Sa propagation dans l'habitat peut induire une modification de la composition en macroalgues, de l'abondance et de la diversité de la macrofaune benthique ainsi qu'une réduction des espèces d'algues sous la couverture d'Undaria pinnatifida.</td><td>Publications examinées en comité de lecture: Androuin., 2018; Blanchard., 1997; Blum et al., 2007; Bouget et al., 2001; Bullard et al., 2007; Carver et al., 2006; Davis & Davis., 2008; Ehrhold et al., 1998; Epstein & Smale., 2017; Floc'h et al., 1991; Gouletquer., 2016; Griffith et al., 2002; Grulois., 2010; Heiser et al., 2015; Husa., 2004; James., 2017; Joly et al., 2002; Le Duff et al., 2013; Mercer et al., 2009; Newton., 2013; Ramsay-Newton et al., 2017; Ryland et al., 2009; Salvaterra et al., 2013; Schaffelke et al., 2007; Silva et al., 2021; Simeonidis., 1997; Simon et al., 2001; Stiger et al., 2015; Stiger-Pouvreau et al., 2015; Thieltgés et al., 2005; Valentine et al., 2007; Williams & Smith., 2007</td></tr></table>
<table><tr><td><p><strong>Sargassum muticum</strong> est une espèce non-indigène compétitrice pour l'espace et la lumière par rapport aux macroalgues natives à cause de ses longues frondes. Son importante biomasse peut fournir un habitat refuge pour la faune. Une modification de la communauté benthique ainsi qu'une diminution de la diversité spécifique et de la biomasse des macroalgues natives de l'habitat sont généralement observées.</p><p><strong>Asparagopsis armata</strong> possède un thalle en forme de "harpon" lui permettant de s'entremêler avec les autres organismes et de se propager rapidement. Autres espèces d'algues envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : Grateloupia turuturu, Dasyphonia japonica, Griffithsia corallinoides, Bonnemaisonia hamifera, Antithamnionella ternifolia, Antithamnion densum, Lomentaria hakodatensis</p><p>La faune benthique non-indigène introduit se fixe sur le substrat rocheux ou les algues indigènes caractéristiques de l'habitats et rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité) :</p><ul><li><strong>Didendnum vexillum</strong> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li><strong>Rapana venosa</strong> est une espèce non-indigène vivant sur des fonds sableux, coquilliers ou vaseux. C'est un véritable prédateur de mollusques bivalves (moules, huîtres, coquilles saint-jaques...). Enfoui dans le sédiment, ce mollusque est particulièrement difficile à détecter. - Didemnum vexillum est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li><strong>L'ascidie Ciona intestinalis</strong> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</li><li><strong>Styela clava</strong> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).</li><li><strong>Le bryozaire Watersipora subatra</strong> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées.</li></ul></td><td><p><strong>Littérature grise concernant la même pression</strong> : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard., 2009 ; Grey., 2009 ; McKenzie et al., 2017 ; Ohno & Mizuta., 2005 ; OFB & UICN France. 2021 ; Pisanu et al., 2020 ; Scaps et al., 2021 ; VLIZ Alien Species Consortium (2020) ; Wacquant et al., 2021 ; Zenetos., 2016</p><p><strong>Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression</strong> : De-Bastos & Tyler-Walters, 2016 ; Readman & Rayment, 2016 ; Stamp & Garrad, 2022 ; Stamp, 2022 ; Tyler-Walters, 2016 ; Hiscock, 2016 ; Latry L. & Blanchet H., 2021</p><p>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</p></td></tr></table>

Références

Androuin, T., 2018. Ecologie trophique de l'espèce ingénieur Crepidula fornicata et implications pour le fonctionnement de son habitat (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010
Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitors of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459-470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

Bouget, J.-F., Camus, P., Joly, J.-P., 2001. Ocinebrellus inornatus (Recluz, 1851), Rapana venosa (Valenciennes, 1846) : deux nouveaux gastéropodes introduits dans la Baie de Quiberon.

Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1-38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160-169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012

Dauvin, J.-C., Pezy, J.-P., Baffreau, A., Bachelet, Q., Baux, N., Méar, Y., Murat, A., Poizot, E., 2020. Effects of a salmon fish farm on benthic habitats in a high-energy hydrodynamic system: The case of the Rade de Cherbourg (English Channel). Aquaculture 518, 734832. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.734832

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. AI 3, 125-132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

De-Bastos, E. & Tyler-Walters, H., 2016. [Aphelochaeta] spp. and [Polydora] spp. in variable salinity infralittoral mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/114

De-Bastos, E. & Tyler-Walters, H., 2016. [Aphelochaeta] spp. and [Polydora] spp. in variable salinity infralittoral mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/114

Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X., 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. Mar Pollut Bull 167, 112292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. Biol Invasions 20, 1049-1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters. https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Grey E., 2009.ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. AI 4, 581-590. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3
Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Hartstein, N.D., Rowden, A.A., 2004. Effect of biodeposits from mussel culture on macroinvertebrate assemblages at sites of different hydrodynamic regime. Marine Environmental Research 57, 339–357. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2003.11.003

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93. https://doi.org/10.1017/S1755267214000608

Hiscock, K. 2016. Filamentous green seaweeds on low salinity infralittoral mixed sediment or rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/157

Hiscock, K. 2016. Filamentous green seaweeds on low salinity infralittoral mixed sediment or rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/157

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Husa, V., Sjøtun, K., Lein, T.E., 2004. The newly introduced species Heterosiphonia japonica Yendo (Dasyaceae, Rhodophyta): geographical distribution and abundance at the Norwegian southwest coast. Sarsia 89, 211–217. https://doi.org/10.1080/00364820410006600

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp Undaria pinnatifida. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Joly, J.-P., Bouget, J.-F., Hirata, T., 2002. Le gastéropode prédateur Rapana venosa : point sur les connaissances et expérimentations au laboratoire.

Keeley, N., Valdemarsen, T., Woodcock, S., Holmer, M., Husa, V., Bannister, R., 2019. Resilience of dynamic coastal benthic ecosystems in response to large-scale finfish farming. AQUACULTURE ENVIRONMENT INTERACTIONS 11, 161–179. https://doi.org/10.3354/aei00301

Latry L., Blanchet H., 2021. B4-2 – Sédiments hétérogènes infralittoraux en milieu à salinité variable ; in La Rivière *et al.*, 2022. Fiches descriptives des habitats marins benthiques de la Manche, de la Mer du Nord et de l'Atlantique. PatriNat (OFB-CNRS-MNHN), Paris : 265-270.

Le Duff, M., Cadiou, S., Grall, J., 2013. Rapana venosa (Valenciennes, 1846), une nouvelle trouvaille inquiétante. An aod-les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 2, 27–30.

Lin, D.T., Bailey-Brock, J.H., 2008. Partial recovery of infaunal communities during a fallow period at an open-ocean aquaculture. Marine Ecology Progress Series 371, 65–72. https://doi.org/10.3354/meps07675

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge : Cambridge University Press.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Mercer, J., 2009. Potential effects of the invasive colonial ascidian (Didemnum vexillum) on pebble-cobble bottom habitats in Long Island Sound, USA. AI 4, 133–142. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.1.14

Newton, C., Bracken, M.E.S., McConville, M., Rodrigue, K., Thornber, C.S., 2013. Invasion of the Red Seaweed Heterosiphonia japonica Spans Biogeographic Provinces in the Western North Atlantic Ocean. PLOS ONE 8, e62261. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0062261

OFB & UICN France. 2021. Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.
Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Pereira, P.M.F., Black, K.D., McLusky, D.S., Nickell, T.D., 2004. Recovery of sediments after cessation of marine fish farm production. Aquaculture 235, 315-330.
https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.12.023

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537-547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Readman, J.A.J. & Rayment, W.J. 2016. [Crepidula fornicata] and [Mediomastus fragilis] in variable salinity infralittoral mixed sediment. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/52

Ryland, J.S., Blauwe, H.D., Lord, R., Mackie, J.A., 2009. Recent discoveries of alien Watersipora (Bryozoa) in Western Europe, with redescriptions of species. Zootaxa 2093, 43-59.
https://doi.org/10.11646/zootaxa.2093.1.3

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563-2576.
https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in: DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397-417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. Ecological Indicators 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Simon, C., Ar Gall, E., Deslandes, E., 2001. Expansion of the red alga Grateloupia doryphora along the coasts of Brittany (France). Hydrobiologia 443, 23-29. https://doi.org/10.1023/A:1017587918604

Stamp, T.E., Williams, E., Lloyd, K.A., & Mardle, M.J., 2022. Saccharina latissima and Gracilaria gracilis with sponges and ascidians on variable salinity infralittoral sediment. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 29-06-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1056

Stamp, TE, Garrard, SL, Lloyd, KA, & Mardle, MJ, 2022. Saccharina latissima avec Psammechinus miliaris et/ou Modiolus modiolus sur sédiment infralittoral à salinité variable. Dans Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [en ligne]. Plymouth : Association de biologie marine du Royaume-Uni. [cité le 29-06-2022]. Disponible sur : https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1036

Stiger, V., klervi.lelann, Plouguerné, E., Connan, S., Deslandes, E., 2015. Distribution et expansion de l'algue rouge introduite Grateloupia turuturu sur le littoral des côtes Ouest de la France – potentiel de valorisation ?

Stiger-Pouvreau, V., Thouzeau, G., 2015. Marine Species Introduced on the French Channel-Atlantic Coasts: A Review of Main Biological Invasions and Impacts. Open Journal of Ecology 05, 227.
https://doi.org/10.4236/oje.2015.55019

Thieltges, D.W., 2005. Benefit from an invader: American slipper limpet Crepidula fornicata reduces star fish predation on basibiont European mussels. Hydrobiologia 541, 241-244.
https://doi.org/10.1007/s10750-004-4671-z
Tyler-Walters, H., 2016. Mats of [Bonnemaisonia] on infralittoral muddy gravel. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 30-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/317

Tyler-Walters, H., Williams, E., Mardle, M.J. & Lloyd, K.A., 2022. Sensitivity Assessment of Contaminant Pressures - Approach Development, Application, and Evidence Reviews. MarLIN (Marine Life Information Network), Marine Biological Association of the UK, Plymouth, pp. 192

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8–18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica – Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327–359. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

Zenetos A., 2016. Rapana venosa. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B4-2 Sédiments hétérogènes infralittoraux en milieu à salinité variable" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 262-268.
Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 1997. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. undefined.

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11-19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Grall, J., Hall-Spencer, J.M., 2003. Problems facing maerl conservation in Brittany. Aquatic Conserv: Mar. Freshw. Ecosyst. 13, S55-S64. https://doi.org/10.1002/aqc.568

Hall-Spencer, J., White, N., Gillespie, E., Gillham, K., Foggo, A., 2006. Impact of fish farms on maerl beds in strongly tidal areas. Marine Ecology Progress Series 326, 1-9.
https://doi.org/10.3354/meps326001

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Peña, V., Bárbara, I., Grall, J., Maggs, C.A., Hall-Spencer, J.M., 2014. The diversity of seaweeds on maerl in the NE Atlantic. Mar Biodiv 44, 533-551. https://doi.org/10.1007/s12526-014-0214-7

Perry, F. & Tyler-Walters, H., 2018. Maerl beds. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/255

Perry, F., Tyler-Walters, H., & Garrard, S. L. 2020. [Phymatolithon calcareum] maerl beds in infralittoral clean gravel or coarse sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 16-09-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/170

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Sjøtun, K., 2008. Present distribution and possible vectors of introductions of the alga Heterosiphonia japonica (Ceramiales, Rhodophyta) in Europe. Al 3, 377-394.
https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.4.3

Wilson, S., Blake, C., Berges, J.A., Maggs, C.A., 2004. Environmental tolerances of free-living coralline algae (maerl): implications for European marine conservation. Biological Conservation 120, 279-289. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2004.03.001

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B4-3 Bancs de maërl sur sédiments hétérogènes envasés infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 269-270.
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>L'algue envahissante <b>Sargassum muticum</b> colonise les zones fragmentées des herbiers à <b>Zostera marina</b> ayant subi une perturbation d'origine naturelle ou anthropique. L'algue invasive se développe surtout sur des substrats grossiers ou des rhizomes morts sur lesquels elle peut se fixer. L'espèce indigène est incapable de recoloniser son milieu une fois l'espèce invasive établie.<br/>L'huître envahissante <b>Magallanas gigas</b> en tant que filtreur produit des biodépots ce qui entraîne l'augmentation de la teneur en matière organique des sédiments. Un enrichissement organique important peut conduire au développement de composés toxiques pour l'herbier (cf. pression Modification des apports en matériel organique).<br/>Les larves de l'ascidie coloniale <b>Didendnum vexillum</b> se fixent sur les rhyzomes et les feuilles de la zostère. Son développement bloque les flux de lumière réduisant ainsi la photosynthèse. La croissance, la reproduction et la survie de l'herbier sont impactées par cette espèce invasive.<br/>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Antithamnionella ternifolia</b>, <b>Gracilaria vermiculophylla</b>, <b>Neosiphonia harveyi</b></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bullard et al., 2007 ; Den Hartog, 1997 ; Griffith et al., 2002 ; Kelly & Volpe, 2007 ; McKenzie., 2017 ; Mercer., 2009 ; Long & Grosholz, 2015 ; Tweedley et al., 2008 ; Valentine et al., 2017 ; Williams et al., 2007</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Blanchard., 2009 ; Pisanu et al.,2020</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant directement l'habitat et la pression : d'Avack et al.,2022</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004 Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Bonanno, G., Orlando-Bonaca, M., 2018. Trace elements in Mediterranean seagrasses and macroalgae. A review. Science of The Total Environment 618, 1152–1159.
https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2017.09.192

Brix, H., Lyngby, J.E., Schierup, H.-H., 1983. Eelgrass (Zostera marina L.) as an indicator organism of trace metals in the Limfjord, Denmark. Marine Environmental Research 8, 165–181.
https://doi.org/10.1016/0141-1136(83)90049-1

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Cullain, N., McIver, R., Schmidt, A.L., Milewski, I., Lotze, H.K., 2018. Potential impacts of finfish aquaculture on eelgrass (Zostera marina) beds and possible monitoring metrics for management: a case study in Atlantic Canada. PeerJ 6, e5630. https://doi.org/10.7717/peerj.5630
d'Avack, E.A.S., Tyler-Walters, H., Wilding, C.M. & Garrard, S.L., 2022. Zostera (Zostera) marina beds on lower shore or infralittoral clean or muddy sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-06-2022].
Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/257

de Paz, L., Neto, J.M., Marques, J.C., Laborda, A.J., 2008. Response of intertidal macrobenthic communities to long term human induced changes in the Eo estuary (Asturias, Spain): Implications for environmental management. MARINE ENVIRONMENTAL RESEARCH 66, 288–299. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2008.04.004

den Hartog, C., 1997. Is Sargassum muticum a threat to eelgrass beds? Aquatic Botany 58, 37–41. https://doi.org/10.1016/S0304-3770(97)00007-7

Ferrat, L., Wyllie-Echeverria, S., Rex, G.C., Pergent-Martini, C., Pergent, G., Zou, J., Romeo, M., Pasqualini, V., Fernandez, C., 2012. Posidonia oceanica and Zostera marina as Potential Biomarkers of Heavy Metal Contamination in Coastal Systems, Ecological Water Quality - Water Treatment and Reuse. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/32772

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581–590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Kelly, J.R., Volpe, J.P., 2007. Native eelgrass (Zostera marina L.) survival and growth adjacent to non-native oysters (Crassostrea gigas Thunberg) in the Strait of Georgia, British Columbia 50, 143–150.
https://doi.org/10.1515/BOT.2007.017

Long, Grosholz, 2015. Overgrowth of eelgrass by the invasive colonial tunicate Didemnum vexillum: Consequences for tunicate and eelgrass growth and epifauna abundance. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 473, 188–194. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2015.08.014

Lyngby, J.E., Brix, H., 1989. Heavy metals in eelgrass (Zostera marina L.) during growth and decomposition. Hydrobiologia 176, 189–196. https://doi.org/10.1007/BF00026554

Mascaró, O., Valdemarsen, T., Holmer, M., Pérez, M., Romero, J., 2009. Experimental manipulation of sediment organic content and water column aeration reduces Zostera marina (eelgrass) growth and survival. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 373, 26–34. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2009.03.001

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

Mercer, J., 2009. Potential effects of the invasive colonial ascidian (Didemnum vexillum) on pebble-cobble bottom habitats in Long Island Sound, USA. Al 4, 133–142.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.1.14

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ralph, P.J., Tomasko, D., Moore, K., Seddon, S., Macinnis-Ng, C.M.O., 2006. Human impacts on seagrasses: Eutrophication, sedimentation, and contamination, in: Seagrasses: Biology, Ecology and Conservation. pp. 567–593. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-2983-7_24

Roca, G., Alcoverro, T., Krause-Jensen, D., Balsby, T.J.S., van Katwijk, M.M., Marbà, N., Santos, R., Arthur, R., Mascaró, O., Fernández-Torquemada, Y., Pérez, M., Duarte, C.M., Romero, J., 2016. Response of seagrass indicators to shifts in environmental stressors: A global review and management synthesis. Ecological Indicators 63, 310–323.
https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2015.12.007

Tweedley, J.R., Jackson, E.L., Attrill, M.J., 2008. Zostera marina seagrass beds enhance the attachment of the invasive alga Sargassum muticum in soft sediments. Marine Ecology Progress Series 354, 305–309. https://doi.org/10.3354/meps07242
Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

Williams, S.L., 2007. Introduced species in seagrass ecosystems: Status and concerns. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, The Biology and Ecology of Seagrasses 350, 89–110.
https://doi.org/10.1016/j.jembe.2007.05.032

Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " B4-4 - Herbiers à Zostera marina sur sédiments hétérogènes infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 271-274.
# B5 - Sables infralittoraux

<table><thead><tr><th colspan="10">B5-1 Sables fins à moyens mobiles infralittoraux</th></tr><tr><th colspan="10">CD_HAB 7141</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th></th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td>Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="15">Chimique</td><td rowspan="10">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td rowspan="10">La majorité des espèces de cet habitat ont des capacités de bioaccumulation des métaux lourds jusqu'à un certain seuil de tolérance. Au-delà de ces seuils, des effets négatifs sur la morphologie, la physiologie de ces espèces peuvent être observés. Le stade de vie larvaire est généralement moins tolérant à une exposition aux métaux lourds que le stade adulte.<br/>Certaines espèces, telles que les <strong>polychètes dépositivores</strong>, sont considérées comme opportunistes dans les habitats pollués par ces contaminants et présentent davantage de résistance à cette pression. Une diminution de la richesse spécifique peut être observée.<br/><strong>Attention</strong>: La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture: Boening, 1999; Bryan, 1984; Dauvin, 2008; Dong et al., 2021; Gounin et al., 1995; Holt et al., 1995</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="2">Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td><td rowspan="2"><strong>Attention</strong>: La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend des conditions physico-chimiques de l'habitat telles que la salinité ou la température mais également de la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture: De Paz et al., 2008; Incera et al., 2003; Mucha & Costa., 1999; Rodil et al., 2007</td></tr><tr><td>H</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>TF</td><td>H</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td>H</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>TF</td><td>H</td><td>Les conditions de fort hydrodynamisme de cet habitat sont propices à l'élimination rapide de la matière organique. De plus, le caractère très mobile du sédiment facilite le drainage de l'eau et limite l'accumulation de la matière organique.</td><td>Littérature grise: Littérature grise concernant des sous-habitats et la même pression: Tillin et al., 2019; Readman & Garrard, 2019; McQuillan & Tillin, 2006; Hill, 2008; Tillin, 2016; Lutrand et al., 2021</td></tr><tr><td>Biologique</td><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr></tbody></table>

## Références

* Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitors of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459-470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

* Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.

* Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160-169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012
de Paz, L., Neto, J.M., Marques, J.C., Laborda, A.J., 2008. Response of intertidal macrobenthic communities to long term human induced changes in the Eo estuary (Asturias, Spain): Implications for environmental management. MARINE ENVIRONMENTAL RESEARCH 66, 288–299. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2008.04.004

Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X.. 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. Mar Pollut Bull 167, 112292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Gounin, F., Davoult, D., Richard, A., 1995. Role of a dense bed of Ophiothrix fragilis (Abildgaard) in the transfer of heavy metals at the water-sediment interface. Marine Pollution Bulletin 30, 736–741. https://doi.org/10.1016/0025-326X(95)00065-U

Hill J.M., 2008. Echinocardium cordatum Sea potato. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/species/detail/1417

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Incera, M., Cividanes, S.P., Lastra, M., López, J., 2003. Temporal and spatial variability of sedimentary organic matter in sandy beaches on the northwest coast of the Iberian Peninsula. Estuarine, Coastal and Shelf Science, Beaches - What Future? 58, 55–61. https://doi.org/10.1016/S0272-7714(03)00040-4

Lutrand A., Houbin C., Thiébaut E., 2021. B5-1 – Sables fins à moyens mobiles infralittoraux ; in La Rivière *et al.*, 2022. Fiches descriptives des habitats marins benthiques de la Manche, de la Mer du Nord et de l'Atlantique. PatriNat (OFB-CNRS-MNHN), Paris : 281-286.

McQuillan, R. M. & Tillin, H.M. 2006. Dense [Lanice conchilega] and other polychaetes in tide-swept infralittoral sand and mixed gravelly sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 05-10-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/116

Mucha, A.P., Costa, M.H., 1999. Macrozoobenthic community structure in two Portuguese estuaries: Relationship with organic enrichment and nutrient gradients. Acta Oecologica. https://doi.org/10.1016/S1146-609X(99)00130-7

Readman, J.A.J. & Garrard, S.M., 2019. [Sertularia cupressina] and [Hydrallmania falcata] on tide-swept sublittoral sand with cobbles or pebbles.. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 05-10-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/223

Tillin, H.M. 2016. [Abra prismatica], [Bathyporeia elegans] and polychaetes in circalittoral fine sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 05-10-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1133

Tillin, H.M., Tyler-Walters, H. & Garrard, S. L. 2019. Infralittoral mobile clean sand with sparse fauna. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 05-10-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/262

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " B5-1 – Sables fins à moyens mobiles infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 275-276.
Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.

Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160–169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012

Dauvin, J.-C., Pezy, J.-P., Baffreau, A., Bachelet, Q., Baux, N., Méar, Y., Murat, A., Poizot, E., 2020. Effects of a salmon fish farm on benthic habitats in a high-energy hydrodynamic system: The case of the Rade de Cherbourg (English Channel). Aquaculture 518, 734832. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.734832

De-Bastos, E. & Rayment, W.J. 2016. Semi-permanent tube-building amphipods and polychaetes in sublittoral sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 06-10-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/136

Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X., 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. Mar Pollut Bull 167, 112292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Gounin, F., Davoult, D., Richard, A., 1995. Role of a dense bed of Ophiothrix fragilis (Abildgaard) in the transfer of heavy metals at the water-sediment interface. Marine Pollution Bulletin 30, 736–741. https://doi.org/10.1016/0025-326X(95)00065-U

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Keeley, N., Valdemarsen, T., Woodcock, S., Holmer, M., Husa, V., Bannister, R., 2019. Resilience of dynamic coastal benthic ecosystems in response to large-scale finfish farming. AQUACULTURE ENVIRONMENT INTERACTIONS 11, 161–179. https://doi.org/10.3354/aei00301

Mucha, A.P., Costa, M.H., 1999. Macrozoobenthic community structure in two Portuguese estuaries: Relationship with organic enrichment and nutrient gradients. Acta Oecologica. https://doi.org/10.1016/S1146-609X(99)00130-7

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Pearson TH, Rosenberg R. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Tillin, H.M. & Garrard, S.M., 2019. [Nephtys cirrosa] and [Bathyporeia] spp. in infralittoral sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 06-10-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/154

Villnas, A., Perus, J., Bonsdorff, E., 2011. Structural and functional shifts in zoobenthos induced by organic enrichment - Implications for community recovery potential. JOURNAL OF SEA RESEARCH 65, 8–18. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.06.004

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " B5-2 – Sables fins propres infralittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 277-278.