Ferrat, L., Wyllie-Echeverria, S., Rex, G.C., Pergent-Martini, C., Pergent, G., Zou, J., Romeo, M., Pasqualini, V., Fernandez, C., 2012. Posidonia oceanica and Zostera marina as Potential Biomarkers of Heavy Metal Contamination in Coastal Systems, Ecological Water Quality - Water Treatment and Reuse. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/32772

Kelly, J.R., Volpe, J.P., 2007. Native eelgrass (Zostera marina L.) survival and growth adjacent to non-native oysters (Crassostrea gigas Thunberg) in the Strait of Georgia, British Columbia 50, 143–150. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.017

Lyngby, J.E., Brix, H., 1984. The Uptake of Heavy Metals in Eelgrass Zostera marina and Their Effect on Growth. Ecological Bulletins 81–89.

Mascaró, O., Valdemarsen, T., Holmer, M., Pérez, M., Romero, J., 2009. Experimental manipulation of sediment organic content and water column aeration reduces Zostera marina (eelgrass) growth and survival. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 373, 26–34. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2009.03.001

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ralph, P.J., Tomasko, D., Moore, K., Seddon, S., Macinnis-Ng, C.M.O., 2006. Human impacts on seagrasses: Eutrophication, sedimentation, and contamination, in: Seagrasses: Biology, Ecology and Conservation. pp. 567–593. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-2983-7_24

Roca, G., Alcoverro, T., Krause-Jensen, D., Balsby, T.J.S., van Katwijk, M.M., Marbà, N., Santos, R., Arthur, R., Mascaró, O., Fernández-Torquemada, Y., Pérez, M., Duarte, C.M., Romero, J., 2016. Response of seagrass indicators to shifts in environmental stressors: A global review and management synthesis. Ecological Indicators 63, 310–323. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2015.12.007

Tweedley, J.R., Jackson, E.L., Attrill, M.J., 2008. Zostera marina seagrass beds enhance the attachment of the invasive alga Sargassum muticum in soft sediments. Marine Ecology Progress Series 354, 305–309. https://doi.org/10.3354/meps07242

Tyler-Walters, H., Williams, E., Mardle, MJ et Lloyd, KA, 2022. Évaluation de la sensibilité des pressions des contaminants - Développement de l'approche, application et examen des preuves. MarLIN (Marine Life Information Network), Marine Biological Association of the UK, Plymouth, p. 192.

Williams, S.L., 2007. Introduced species in seagrass ecosystems: Status and concerns. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, The Biology and Ecology of Seagrasses 350, 89–110. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2007.05.032

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " A5-7 Herbiers à *Zostera marina* sur sables médiolittoraux" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 172-174.
A6 - Vases du supralittoral et du médiolittoral

<table><thead><tr><th colspan="8">A6-1 Vases médiolittorales marines</th><th rowspan="3">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th colspan="8">CD_HAB 2577</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th></tr></thead><tbody><tr><td>Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td></tr><tr><td rowspan="15">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td rowspan="15">Les mollusques bivalves sont connus pour leur capacité de bioaccumulation de métaux lourds. Au-delà d'un certain seuil de concentration, de nombreux effets délétères peuvent être observés sur les conditions physiologiques de ces organismes (fermeture de valve, inhibition du taux de filtration, perturbation du comportement fouisseur...). Le stade de vie larvaire est généralement moins tolérant à une exposition aux métaux lourds que le stade adulte.<br/>Certaines espèces, telles que les polychètes dépositivores sont considérées comme opportunistes dans les habitats pollués par ces contaminants et présentent plus de résistance à cette pression. Une diminution de la richesse spécifique peut être observée.<br/>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.<br/>Les conditions de faible hydrodynamisme favorisent l'accumulation de matière organique due à un enrichissement en raison du faible renouvellement des eaux interstitielles et des sédiments fins et stables. Les sédiments avec une granulométrie fine à très fine et un pourcentage de vase important, ont une teneur en matière organique naturellement élevée à cause de la faible capacité de pénétration de l'oxygène. En prenant en compte ces conditions, un enrichissement en matière organique peut induire un changement de structure de la communauté des espèces d'invertébrés benthiques suivant le modèle de Pearson et Rosenberg, 1978, avec pour conséquence l'augmentation de l'abondance d'espèces opportunistes et une diminution de la diversité et de la richesse spécifique qui est observée.</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td rowspan="15">Publications examinées en comité de lecture : Bryan., 1984 ; Boening., 1999 ; Dauvin., 2008 ; Dong et al., 2021 ; Holt et al., 1995<br/>Littérature grise concernant un habitat similaire et la même pression : Ashley, 2016a-c ; Tillin et Rayment, 2016 ; Tillin et Ashley, 2016 ; Tillin et Garrard, 2016</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td></tr><tr><td>Chimique</td><td>Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td>F</td><td>H</td><td>M</td><td>H</td><td>M</td><td>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br/>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br/>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)<br/>- La composition du sédiment (granulométrie, teneur en matière organique)<br/>De plus, tant que le sédiment n'a pas retrouvé ses caractéristiques géochimiques de référence, l'habitat ne peut pas se rétablir complètement et il y a un risque de colonisation par des espèces opportunistes.</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bolam., 2011 ; Bouchet et al., 2008 ; Fitch et Crowe., 2010 ; Hargrave et al., 2008 ; Martinez-Garcia et al., 2015 ; Schratzberger & Warwick., 1999 ; Pearson & Rosenberg, 1978 ; Villnas et al., 2011</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat :<br/>- <b>Mya arenaria</b> est une espèce compétitrice pour l'espace et la nourriture. Elle peut modifier l'habitat et dominer les communautés benthiques. C'est également une source de nourriture pour de nombreux organismes (crabe, oiseaux...).<br/>- <b>Ruditapes philippinarum</b> est un compétiteur des espèces de palourdes indigènes pour l'espace et la nourriture. Par ses activités de bioturbation, cette espèce peut augmenter les processus de dépôts/remise en suspension des sédiments et ainsi diminuer leurs stabilités.<br/>- Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Streblospio benedictii</b>, <b>Gracilaria vermucophylla</b></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Basuyau et al., 2018 ; Bidegain & Juanes., 2013 ; Goulletquer., 2016 ; Sgro et al., 2005<br/>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Le Granché & Damerval., 2020<br/>Littérature grise concernant un habitat similaire et la même pression : Ashley, 2016a-c ; Tillin et Rayment, 2016 ; Tillin et Ashley, 2016 ; Tillin et Garrard, 2016</td></tr><tr><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td></tr></table>

Références

Ashley, M 2016a. [Nephtys hombergii], [Limecola balthica] and [Streblospio shrubsolii] in littoral sandy mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1130

Ashley, M 2016b. [Hediste diversicolor] in littoral mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1135

Ashley, M 2016c. [Nephtys hombergii] and [Streblospio shrubsolii] in littoral mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1100

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Basuyaux, O., Beck, F., Pezy, J.-P., Alex, Baffreau, R., Joncourt, Y., Tétard, X., Dauvin, J.-C., 2018. Evaluation of Ruditapes spp. Clam Stock on the Western Coast of Cotentin (English Channel). Journal of Marine Biology & Oceanography 2018. https://doi.org/10.4172/2324-8661.1000186

Bidegain, G., Juanes, J.A., 2013. Does expansion of the introduced Manila clam Ruditapes philippinarum cause competitive displacement of the European native clam Ruditapes decussatus? Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 445, 44–52. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2013.04.005

Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitors of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459–470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.

Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160–169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012
Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X., 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. Mar Pollut Bull 167, 112292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Le Granché & Damerval in : DORIS, 12/11/2020 : Mya arenaria Linnaeus, 1758, https://doris ffessm.fr/ref/specie/2048

Sgro, L., Mistri, M., Widdows, J., 2005. Impact of the infaunal Manila clam, Ruditapes philippinarum, on sediment stability. Hydrobiologia 550, 175–182. https://doi.org/10.1007/s10750-005-4375-z

Tillin, H.M. & Ashley, M. 2016. [Hediste diversicolor], [Limecola balthica] and [Scrobicularia plana] in littoral sandy mud shores. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/331

Tillin, H.M. & Garrard, S. L. 2016. [Tubificoides benedii] and other oligochaetes in littoral mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1093

Tillin, H.M. & Rayment, W., 2016. [Hediste diversicolor] and [Limecola balthica] in littoral sandy mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/209

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " A6-1 Vases médiolittorales marines" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 175-177.
<table><thead><tr><th colspan="8">A6-2<br>CD_HAB<br>2578</th><th rowspan="3">Description de l'évaluation</th><th rowspan="3">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th colspan="8">Vases supralittorales en milieu à salinité variable du schorre</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Physique</td><td rowspan="10">Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Argent</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les plantes halophytes sont considérées comme relativement tolérantes à cette pression. Elles sont considérées comme des bioindicateurs de la pollution aux métaux lourds dans l'environnement marin. Les concentrations accumulées varient en fonction du type de métal, du type de tissu et des variations saisonnières.</td><td rowspan="10">Publications examinées en comité de lecture : Williams et al., 1994</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Mercure</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Nickel</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Plomb</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Zinc</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td></tr><tr><td>Modification des apports en matériel organique</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="2">Chimique</td><td rowspan="2">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Biologique</td><td rowspan="10">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>L'espèce non-indigène *Spartina anglica* modifie la structure de la végétation de cet habitat et entre en compétition avec les phanérogames marines natives telles que *Spartina maritima*. Cette ENI favorise la fixation des sédiments, ce qui induit une augmentation de la sédimentation et une accélération des processus d'envasement.</td><td>Littérature grise concernant cette pression : Baffreau et al., 2018 ; GT IBMA., 2016</td></tr><tr><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>L'espèce non-indigène *Spartina anglica* modifie la structure de la végétation de cet habitat et entre en compétition avec les phanérogames marines natives telles que *Spartina maritima*. Cette ENI favorise la fixation des sédiments, ce qui induit une augmentation de la sédimentation et une accélération des processus d'envasement.</td><td>Littérature grise concernant cette pression : Baffreau et al., 2018 ; GT IBMA., 2016</td></tr></tbody></table>

## Références

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

GT IBMA. 2016. *Spartina anglica*. Base d'information sur les invasions biologiques en milieux aquatiques. Groupe de travail national Invasions biologiques en milieux aquatiques. UICN France et Onema.

Williams, T.P., Bubb, J.M., Lester, J.N., 1994. Metal accumulation within salt marsh environments: A review. Marine Pollution Bulletin 28, 277-290. https://doi.org/10.1016/0025-326X(94)90152-X

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " A6-2 Vases supralittorales en milieu à salinité variable du schorre" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 178.
A6-3 Vases médiolittorales en milieu à salinité variable de la slikke

CD_HAB

2579

<table><thead><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="2">Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Chimique</td><td rowspan="10"> modification des apports en matériel organique</td><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Les mollusques bivalves sont connus pour leur capacité de bioaccumulation de métaux lourds. Au delà d'un certain seuil de concentration, de nombreux effets délétères peuvent être observés sur les conditions physiologiques de ces organismes (fermeture de valve, inhibition du taux de filtration, perturbation du comportement fouisseur...). Le stade de vie larvaire est généralement moins tolérant à une exposition aux métaux lourds que le stade adulte.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bryan., 1984 ; Boening., 1999 ; Dauvin., 2008 ; Dong et al., 2021 ; Holt et al., 1995</td></tr><tr><td>Cadmium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Certaines espèces, telles que les polychètes dépositivores sont considérées comme opportunistes dans les habitats pollués par ces contaminants et présentent plus de résistance à cette pression. Une diminution de la richesse spécifique peut être observée.</td><td>Littérature grise concernant un habitat similaire et la même pression : Ashley, 2016a-c ; Tillin et Rayment, 2016 ; Tillin et Ashley, 2016 ; Tillin et Garrard, 2016</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td>Attention : La toxicité des métaux lourds est plus importante dans ce type d'habitat soumis à des conditions de salinité variable, que lorsque la salinité est réduite. La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Les conditions de faible hydrodynamisme favorisent l'accumulation de matière organique due à un enrichissement en raison du faible renouvellement des eaux interstitielles et des sédiments fins et stables. Les sédiments avec une granulométrie fine à très fine et un pourcentage de vase important, ont une teneur en matière organique naturellement élevée à cause de la faible capacité de pénétration de l'oxygène. En prenant en compte ces conditions, un enrichissement en matière organique peut induire un changement de structure de la communauté des espèces d'invertébrés benthiques suivant le modèle de Pearson et Rosenberg, 1978, avec pour conséquence l'augmentation de l'abondance d'espèces opportunistes et une diminution de la diversité et de la richesse spécifique qui est observée.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bolam., 2011 ; Bouchet et al.,2008 ; Fitch et Crowe.,2010 ; Hargrave et al., 2008 ; Martinez-Garcia et al., 2015 ; Schratzberger & Warwick., 1999 ; Pearson & Rosenberg, 1978 ; Villnas et al.,2011</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>L'espèce non-indigène Mya arenaria est une espèce caractéristique du sous-habitat - A6-3.1 Vases médiolittorales en milieu à salinité variable nues.<br/>L'espèce non-indigène Spartina anglica est une espèce caractéristique du sous-habitat - A6-3.2 Vases médiolittorales en milieu à salinité variable avec couverture végétale<br/>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat:<ul><li><b>Ruditapes philippinarum</b> est un compétiteur des espèces de palourdes indigènes pour l'espace et la nourriture. Par ses activités de bioturbation, cette espèce peut augmenter les processus de dépôts/remise en suspension des sédiments et ainsi diminuer leurs stabilités.</li><li><b>Hemigrapsus Takanoi</b> et <b>Callinectes sapidus</b> sont des crabes non-indigènes, prédateurs de nombreux invertébrés benthiques (moules, balanes). Ces espèces sont en compétition pour la ressource et l'espace avec l'espèce native <b>Carcinus maenas</b>.</li><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Streblospio benedictii</b></li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Basuyeau et al., 2018 ; Bidegain & Juanes., 2013 ; Dauvin & Dufossé., 2011 ; Epifanio., 2013 ; Gouletquer., 2016 ; Pezi & Dauvin., 2015 ; Pisanu et al., 2020 ; Sgro et al., 2005</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018 ; Le Granché & Damerval., 2020</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : d'Avack et al., 2014 ; Latry & Blanchet., 2021</td></tr></table>

Références

Ashley, M 2016. [Hediste diversicolor] in littoral mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1135

Ashley, M 2016. [Nephtys hombergii] and [Streblospio shrubsolii] in littoral mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1100

Ashley, M 2016. [Nephtys hombergii], [Limecola balthica] and [Streblospio shrubsolii] in littoral sandy mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1130

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Basuyaux, O., Beck, F., Pezy, J.-P., Alex, Baffreau, R., Joncourt, Y., Tétard, X., Dauvin, J.-C., 2018. Evaluation of Ruditapes spp. Clam Stock on the Western Coast of Cotentin (English Channel). Journal of Marine Biology & Oceanography 2018. https://doi.org/10.4172/2324-8661.1000186

Bidegain, G., Juanes, J.A., 2013. Does expansion of the introduced Manila clam Ruditapes philippinarum cause competitive displacement of the European native clam Ruditapes decussatus? Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 445, 44–52. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2013.04.005

Boening, D.W., 1999. An Evaluation of Bivalves as Biomonitors of Heavy Metals Pollution in Marine Waters. Environ Monit Assess 55, 459–470. https://doi.org/10.1023/A:1005995217901

Bryan, G.J.M.e., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol 5 Ocean Management (Part 3), 1289-1431.

Dauvin, J.-C., 2008. Effects of heavy metal contamination on the macrobenthic fauna in estuaries: The case of the Seine estuary. Marine Pollution Bulletin, EMECS 7/ECSA 40, Caen (France), May 2006 57, 160–169. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2007.10.012
Dauvin, J.-C., Dufossé, F., 2011. Hemigrapsus sanguineus (De Haan, 1835) (Crustacea: Brachyura: Grapsoidea) a new invasive species in European waters: the case of the French English Channel coast (2008-2010). *Aquatic Invasions* 6, 329-338.

d'Avack, E.A.S., Tillin, H., Jackson, E.L. & Tyler-Walters, H., 2014. Assessing the sensitivity of seagrass bed biotopes to pressures associated with marine activities. *Joint Nature Conservation Committee, Peterborough, JNCC Report No. 505*, 83 pp

Dong, J.-Y., Zhao, L., Sun, X., Hu, C., Wang, Y., Li, W.-T., Zhang, P.-D., Zhang, X., 2021. Response of macrobenthic communities to heavy metal pollution in Laoshan Bay, China: A trait-based method. *Mar Pollut Bull* 167, 112292. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2021.112292

Epifanio, C.E., 2013. Invasion biology of the Asian shore crab Hemigrapsus sanguineus: A review. *Journal of Experimental Marine Biology and Ecology* 441, 33-49.
https://doi.org/10.1016/j.jembe.2013.01.010

Gothland, M., Dauvin, J.-C., Denis, L., Jobert, S., Ovaert, J., Pezy, J.-P., Spilmont, N., 2013. Additional records and distribution (2011-2012) of Hemigrapsus sanguineus (De Haan, 1835) along the French coast of the English Channel. *MBI* 4, 305-315. https://doi.org/10.3391/mbi.2013.4.4.05

Goulletquer, P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. 303 pp.

Holt, T.J., Jones, D.R., Hawkins, S.J. & Hartnoll, R.G., 1995. The sensitivity of marine communities to man induced change - a scoping report. Countryside Council for Wales, Bangor, Contract Science Report, no. 65.

Latry L., H. Blanchet., 2021. A6-3 – Vases médiolittorales en milieu à salinité variable de la slikke ; in La Rivière et al., 2022. Fiches descriptives des habitats marins benthiques de la Manche, de la Mer du Nord et de l'Atlantique. *PatriNat (OFB-CNRS-MNHN)*, Paris : 163-169.

Le Granché & Damerval in : DORIS, 12/11/2020 : Mya arenaria Linnaeus, 1758, https://doris ffessm.fr/ref/specie/2048

Pezy, J.-P., Dauvin, J.-C., 2015. Are mussel beds a favourable habitat for settlement of Hemigrapsus sanguineus (De Haan, 1835)? *Al* 10, 51-56. https://doi.org/10.3391/ai.2015.10.1.05

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Sgro, L., Mistri, M., Widdows, J., 2005. Impact of the infaunal Manila clam, *Ruditapes philippinarum*, on sediment stability. *Hydrobiologia* 550, 175-182. https://doi.org/10.1007/s10750-005-4375-z

Tillin, H.M. & Ashley, M. 2016. [Hediste diversicolor], [Limecola balthica] and [Scrobicularia plana] in littoral sandy mud shores. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) *Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews*, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from:
https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/331

Tillin, H.M. & Garrard, S. L. 2016. [Tubificoides benedii] and other oligochaetes in littoral mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) *Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews*, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1093

Tillin, H.M. & Rayment, W., 2016. [Hediste diversicolor] and [Limecola balthica] in littoral sandy mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) *Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews*, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 20-12-2019]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/209

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " A6-3 Vases supralittorales en milieu à salinité variable de la slikke" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. *PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD)*, Paris : 179-181.
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>L'algue envahissante <b>Sargassum muticum</b> colonise les zones fragmentées des herbiers à <b>Zostera marina</b> ayant subi une perturbation d'origine naturelle ou anthropique. L'algue invasive se développe surtout sur des substrats grossiers ou des rhizomes morts sur lesquels elle peut se fixer. L'espèce indigène est incapable de recoloniser son milieu une fois l'espèce invasive établie.</td><td rowspan="2">Publications examinées en comité de lecture : Den Hartog, 1997; Goulletquer et al., 1987; Kelly & Volpe, 2007; Tweedley et al., 2008; Viera et al., 2020; Williams., 2007</td></tr><tr><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>L'huître envahissante <b>Magallanas gigas</b> en tant que filtreur produit des biodépots ce qui entraîne l'augmentation de la teneur en matière organique des sédiments. Un enrichissement organique important peut conduire au développement de composés toxiques pour l'herbier (cf. pression Modification des apports en matériel organique).</td></tr><tr><td colspan="9"></td><td><b>Ruditapes philippinarum</b> est un compétiteur des espèces de palourdes indigènes pour l'espace et la nourriture. Par ses activités de bioturbation, cette espèce peut augmenter les processus de dépôts/remise en suspension des sédiments et ainsi diminuer leurs stabilités.</td><td>Littérature grise concernant la même pression : Baffreau et al., 2018</td></tr><tr><td colspan="9"></td><td>Autres espèces envahissantes pour cet habitat mais dont l'impact écologique est encore mal connu pour cet habitat : <b>Antithamnionella ternifolia</b>, <b>Gracilaria vermiculophylla</b>, <b>Neosiphonia harveyi</b></td><td>Littérature grise concernant directement la pression et l'habitat : d'Avack et al., 2022</td></tr></table>

Références

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Bonanno, G., Orlando-Bonaca, M., 2018. Trace elements in Mediterranean seagrasses and macroalgae. A review. Science of The Total Environment 618, 1152–1159.
https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2017.09.192

Boutahar, L., Maanan, Mohamed, Bououarour, O., Richir, J., Pouzet, P., Gobert, S., Maanan, Mehdi, Zourarah, B., Benhoussa, A., Bazairi, H., 2019. Biomonitoring environmental status in semi-enclosed coastal ecosystems using Zostera noltei meadows. Ecological Indicators 104, 776–793. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2019.04.039

Cullain, N., McIver, R., Schmidt, A.L., Milewski, I., Lotze, H.K., 2018. Potential impacts of finfish aquaculture on eelgrass (Zostera marina) beds and possible monitoring metrics for management: a case study in Atlantic Canada. PeerJ 6, e5630. https://doi.org/10.7717/peerj.5630

d'Avack E.A.S., Tyler-Walters H., Wilding, C. & Garrard S. L., 2022. [Zostera (Zosterella) noltei] beds in littoral muddy sand. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/318 - Last Updated: 06/02/2020

de Paz, L., Neto, J.M., Marques, J.C., Laborda, A.J., 2008. Response of intertidal macrobenthic communities to long term human induced changes in the Eo estuary (Asturias, Spain): Implications for environmental management. MARINE ENVIRONMENTAL RESEARCH 66, 288–299. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2008.04.004

den Hartog, C., 1997. Is Sargassum muticum a threat to eelgrass beds? Aquatic Botany 58, 37–41. https://doi.org/10.1016/S0304-3770(97)00007-7

Goulletquer, P., Lombas, I., Prou, J., 1987. Influence du temps d'immersion sur l'activité reproductrice et sur la croissance de la palourde japonaise <b>Ruditapes philippinarum</b> et l'huître japonaise Crassostrea gigas. Haliotis 16, 453–462.

Kelly, J.R., Volpe, J.P., 2007. Native eelgrass (Zostera marina L.) survival and growth adjacent to non-native oysters (Crassostrea gigas Thunberg) in the Strait of Georgia, British Columbia 50, 143–150.
https://doi.org/10.1515/BOT.2007.017
Mascaró, O., Valdemarsen, T., Holmer, M., Pérez, M., Romero, J., 2009. Experimental manipulation of sediment organic content and water column aeration reduces Zostera marina (eelgrass) growth and survival. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 373, 26–34. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2009.03.001

Pearson, T., Rosenberg, R., 1977. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr Mar Biol Ann Rev 16: 229-311. Oceanography and Marine Biology 16.

Ralph, P.J., Tomasko, D., Moore, K., Seddon, S., Macinnis-Ng, C.M.O., 2006. Human impacts on seagrasses: Eutrophication, sedimentation, and contamination, in: Seagrasses: Biology, Ecology and Conservation. pp. 567–593. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-2983-7_24

Roca, G., Alcoverro, T., Krause-Jensen, D., Balsby, T.J.S., van Katwijk, M.M., Marbà, N., Santos, R., Arthur, R., Mascaró, O., Fernández-Torquemada, Y., Pérez, M., Duarte, C.M., Romero, J., 2016. Response of seagrass indicators to shifts in environmental stressors: A global review and management synthesis. Ecological Indicators 63, 310–323.
https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2015.12.007

Tweedley, J.R., Jackson, E.L., Attrill, M.J., 2008. Zostera marina seagrass beds enhance the attachment of the invasive alga Sargassum muticum in soft sediments. Marine Ecology Progress Series 354, 305–309. https://doi.org/10.3354/meps07242

Tyler-Walters, H., Williams, E., Mardle, MJ et Lloyd, KA, 2022. Évaluation de la sensibilité des pressions des contaminants - Développement de l'approche, application et examen des preuves. MarLIN (Marine Life Information Network), Marine Biological Association of the UK, Plymouth, p. 192.

Wilkes, R., Bennion, M., McQuaid, N., Beer, C., McCullough-Annett, G., Colhoun, K., Inger, R., Morrison, L., 2017. Intertidal seagrass in Ireland: Pressures, WFD status and an assessment of trace element contamination in intertidal habitats using Zostera noltei. Ecological Indicators 82, 117–130. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2017.06.036

Williams, S.L., 2007. Introduced species in seagrass ecosystems: Status and concerns. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, The Biology and Ecology of Seagrasses 350, 89–110.
https://doi.org/10.1016/j.jembe.2007.05.032

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat " A6-4 Herbiers à Zostera noltei sur vases médiolittorales" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 182-184
B1 - Roches ou blocs infralittoraux

<table><thead><tr><th colspan="10">B1-1 Roches ou blocs de la frange infralittorale</th></tr><tr><th colspan="10">CD_HAB 28446</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="15">Physique</td><td rowspan="15">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NR</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td rowspan="15">Les macroalgues possèdent des capacités de bioaccumulation des métaux lourds et sont considérés comme tolérantes à ces contaminants. Les premiers stades de vie de ces algues sont définis comme étant plus sensibles à cette pression avec un taux de croissance retardé et/ou réduit. Des études ont également mis en évidence des effets négatifs comme le blocage de l'absorption du carbone ou de la photosynthèse, réduisant ainsi la survie des individus. L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).<br/>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td rowspan="15">Publications examinées en comité de lecture : Bryan G.W., 1984 ; Lobban & Harrison., 1997<br/>Littérature grise concernant un habitat similaire ou un sous-habitat et la même pression : Cole et al., 1999 ; Tillin & Budd, 2016 ; Tillin, 2016 ; Stamp & Tyler-Walters, 2015.2021 ; Jasper & Hill, 2018</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td rowspan="15">Chimique</td><td rowspan="15"> modification des apports en matériel organique</td><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NB - La majorité des données disponibles traite de la sensibilité de cet habitat à l'eutrophisation, pression englobant l'enrichissement nutritif et organique. On ne peut donc pas dissocier et différencier leurs impacts sur l'habitat :<br/>L'eutrophisation entraîne le développement d'algues vertes éphémères à croissance rapide qui rentrent en compétition pour l'espace et la ressource lumineuse. D'autre part, la prolifération de ces algues vertes peut engendrer l'augmentation du nombre de mollusques brouteurs.<br/>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br/>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br/>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)</td><td rowspan="15">Littérature grise concernant la résilience de sous-habitats : Tillin & Budd, 2016 ; Tillin, 2016 ; Stamp & Tyler-Walters, 2015.2021 ; Jasper & Hill, 2018</td></tr><tr><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat :<br/>De nombreuses algues non-indigènes ont été identifiées comme propices à la colonisation de cet habitat. L'ensemble de ces espèces sont de véritables compétitrices vis-à-vis des espèces indigènes pour l'espace, la lumière et la ressource alimentaire. La propagation de ces espèces introduites entraîne une diminution de la couverture des macroalgues natives et dans certains cas la diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La composition de la communauté benthique est largement modifiée :</td></tr></tbody></table>
- *Undaria pinnatifida* est particulièrement résistante et colonise facilement ces milieux. Sa propagation dans l'habitat peut induire une modification de la composition en macroalgues, de l'abondance et de la diversité de la macrofaune benthique ainsi qu'une réduction des espèces d'algues sous la couverture d'Undaria pinnatifida.

- *Codium fragile* subsp. *fragile* colonise rapidement l'espace sur le substrat rocheux par rapport aux algues indigènes notamment dans des habitats déjà soumis à des perturbations. Pour exemple, cette algue non-indigène peut inhiber le recrutement des laminaires une fois établie dans l'habitat. La formation de zone dense de *Codium fragile* subsp. *fragile* peut modifier la structure biogénique de l'habitat, le flux d'eau, la pénétration de la lumière ainsi que le taux de sédimentation (rétention). De plus cette espèce non-indigène ne protège pas les invertébrés benthiques qui se réfugient habituellement sous les larges frondes des macroalgues.

- *Sargassum muticum* est une espèce non-indigène compétitrice pour l'espace et la lumière par rapport aux macroalgues natives à cause de ses longues frondes. Son importante biomasse peut fournir un habitat refuge pour la faune. Une modification de la communauté benthique ainsi qu'une diminution de la diversité spécifique et de la biomasse des macroalgues natives de l'habitat sont généralement observées.

- *Asparagopsis armata* possède un thalle en forme de "harpon" lui permettant de s'entremêler avec les autres organismes et de se propager rapidement.

- Autres espèces d'algues envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : *Grateloupia turuturu*, *Dasyphonia japonica*, *Griffithsia corallinoides*, *Bonnemaisonia hamifera*, *Antithamnionella ternifolia*, *Antithamnion densum*, *Lomentaria hakodatensis*

La faune benthique non-indigène, identifiée comme propice à la colonisation de cet habitat, rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité) :

- *Crepidula fornicata* est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.

- La colonisation des substrats rocheux par l'huître *Magallana gigas*, entraîne une augmentation de l'hétérogénéité du substrat. Cette espèce est une prédatrice de bivalves filtreurs et de cnidaires au stade larvaire. Cependant, peu d'impact concernant la communauté benthique native de cet habitat n'a été observé suite à l'introduction de cette ENI.

James., 2017 ; Mercer et al., 2009 ; Lejart., 2009 ; Levin et al., 2002 ; Ramsay-Newton et al., 2017 ; Ruesink et al., 2005 ; Salvaterra et al., 2013 ; Schaffelke & Hewitt., 2007 ; Schmidt & Scheibling., 2007 ; Silva et al., 2021 ; Simeonidis D., 1997 ; Stæhr et al., 2000 ; Stiger et al., 2015 ; Troost., 2010 ; Valentine et al., 2007 ; Williams & Smith., 2007

Littérature grise concernant la même pression : André & Müller., 2021 ; Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Burel et al., 2019 ; Chavanich., 2007 ; Grey., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; OFB & MNHN., 2021 ; Ohno., 2005 ; Pisanu et al., 2020 ; Scaps et al., 2021 ; Shalaeva., 2014 ; VLIZ Alien Species Consortium (2020) ; Wacquant et al., 2001 ;

Littérature grise concernant la résilience de sous-habitats : Tillin & Budd, 2016 ; Tillin, 2016 ; Stamp & Tyler-Walters, 2015.2021 ; Jasper & Hill, 2018

L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.
<table><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b>Didendnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li>L'ascidie <b>Ciona intestinalis</b> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</li><li><b>Styela clava</b> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles.</li><li><b>Botrylloides violasceus</b> possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.</li><li>Le bryozaire <b>Watersipora subatra</b> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées</li><li><b>Austrominius modestus</b> présente de nombreux avantages compétitifs par rapport aux espèces indigènes tels qu'un taux de reproduction élevé, une reproduction tout au long de l'année et un taux de filtration plus élevé que les autres espèces de balanes.</li><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Schizoporella unicornis</b>, <b>Asterocarpa humilis</b>, <b>Corella eumyota</b></li></ul></td></tr></table>

Références

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined.

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. Biol Invasions 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19. https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.
Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1-38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. Alien Invaders 133-148.

Chavanich S., 2007. Codium fragile subsp. tomentosoides. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Cole, S., Codling, I.D., Parr, W. & Zabel, T., 1999. Guidelines for managing water quality impacts within UK European Marine sites. Natura 2000 report prepared for the UK Marine SACs Project. 441 pp., Swindon: Water Research Council on behalf of EN, SNH, CCW, JNCC, SAMS and EHS. [UK Marine SACs Project.]

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traistedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. Aquatic Invasions 5, 175-179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. Al 3, 125-132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. Biol Invasions 20, 1049-1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters. https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009. ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581-590. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93. https://doi.org/10.1017/S1755267214000608

Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835-2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp Undaria pinnatifida. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Jasper, C. & Hill, J.M. 2018. [Laminaria digitata] on moderately exposed sublittoral fringe rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-07-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/93

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.
Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182–3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge: Cambridge University Press.

Lozano-Bilbao, E., González-Delgado, S., Alcázar-Treviño, J., 2021. Use of survival rates of the barnacle Chthamalus stellatus as a bioindicator of pollution. Environ Sci Pollut Res Int 28, 1247–1253.
https://doi.org/10.1007/s11356-020-11550-0

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Gouletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537–547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643–689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563–2576.
https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in: DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397–417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110–130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. Ecological Indicators 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.
Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. Mar. Ecol. Prog. Ser. 207, 79–88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Stamp, T.E. & Tyler-Walters, H. 2015. Alaria esculenta on exposed sublittoral fringe bedrock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/165

Stamp, T.E. & Williams, E.. 2021. Alaria esculenta forest with dense anemones and crustose sponges on extremely exposed infralittoral bedrock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/249

Stiger, V., klervi.lelann, Plouguerné, E., Connan, S., Deslandes, E., 2015. Distribution et expansion de l'algue rouge introduite Grateloupia turuturu sur le littoral des côtes Ouest de la France – potentiel de valorisation ?

Tillin, H.M. & Budd, G., 2016. [Himanthalia elongata] and red seaweeds on exposed to moderately exposed lower eulittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-07-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/360

Tillin, H.M. 2016. [Mastocarpus stellatus] and [Chondrus crispus] on very exposed to moderately exposed lower eulittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 28-07-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/11

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. Journal of Sea Research 64, 145–165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica – Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327–359. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-1 Roches ou blocs de la frange infralittorale" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 185-190.
<table><thead><tr><th colspan="10">B1-2 Champs de blocs de la frange infralittorale</th></tr><tr><th colspan="10">CD_HAB 819</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td>Physique</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>NEv</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="14">Chimique</td><td rowspan="14">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td rowspan="14">Les macroalgues sont considérées comme étant bioaccumulatrices de métaux lourds. Cependant, des effets délétères peuvent apparaître notamment aux stades de vie les plus jeunes (sporophyte, gamétophyte) qui sont les moins tolérants à cette pression. Le mercure et le cuivre sont considérés comme étant les métaux lourds les plus toxiques. L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).<br>De nombreux organismes de la faune de cet habitat ont des capacités de bioaccumulation des contaminants et sont considérées comme des espèces sentinelles. Bien qu'il existe peu d'étude évaluant l'impact sur l'ensemble de l'habitat, des effets négatifs sur la morphologie ou la physiologie des individus peuvent être observés au-delà du seuil de tolérance. Le stade de vie larvaire est généralement moins tolérant à une exposition aux métaux lourds que le stade adulte. La perte d'une espèce structurante modifie l'assemblage de l'habitat.<br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>NeV</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modification des apports en matériel organique</td><td></td><td>H</td><td>F</td><td>H</td><td>F</td><td>F</td><td>F</td><td>Pour les zones soumises à un fort hydrodynamisme, on observe une dispersion et une élimination rapide de la matière organique. D'autre part, l'apport de matière organique est une ressource alimentaire pour les organismes vivants sous les blocs. Par conséquent, une augmentation de l'abondance des espèces peut être observée. La résistance et la résilience sont considérées comme haute - Sensibilité faible<br>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Cabral-Oliveira et al., 2014 ; Conde et al., 2020 ; Jones, 2017 ; Vinagré et al., 2016</td></tr><tr><td>Biologique</td><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Belsher & Pommellec., 1984 ; Bishop et al., 2013 ; Blum et</td></tr></tbody></table>
niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat :

De nombreuses **algues non-indigènes** ont été identifiées comme propices à la colonisation de cet habitat. L'ensemble de ces espèces sont de véritables compétitrices vis-à-vis des espèces indigènes pour l'espace, la lumière et la ressource alimentaire. La propagation de ces espèces introduites entraîne une diminution de la couverture des macroalgues natives et dans certains cas la diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La composition de la communauté benthique est largement modifiée :

- *Undaria pinnatifida* est particulièrement résistante et colonise facilement ces milieux. Sa propagation dans l'habitat peut induire une modification de la composition en macroalgues, de l'abondance et de la diversité de la macrofaune benthique ainsi qu'une réduction des espèces d'algues sous la couverture d'*Undaria pinnatifida*.

- *Codium fragile subsp. fragile* colonise rapidement l'espace sur le substrat rocheux par rapport aux algues indigènes notamment dans des habitats déjà soumis à des perturbations. Pour exemple, cette algue non-indigène peut inhiber le recrutement des laminaires une fois établie dans l'habitat. La formation de zone dense de *Codium fragile subsp. fragile* peut modifier la structure biogénique de l'habitat, le flux d'eau, la pénétration de la lumière ainsi que taux de sédimentation (rétention). De plus cette espèce non-indigène ne protège pas les inverterbrés benthiques qui se réfugient habituellement sous les larges frondes des macroalgues.

- *Sargassum muticum* est une espèce non-indigène compétitrice pour l'espace et la lumière par rapport aux macroalgues natives à cause de ses longues frondes. Son importante biomasse peut fournir un habitat refuge pour la faune. Une modification de la communauté benthique ainsi qu'une diminution de la diversité spécifique et de la biomasse des macroalgues natives de l'habitat sont généralement observées.

- *Asparagopsis armata* possède un thalle en forme de "harpon" lui permettant de s'entremêler avec les autres organismes et de se propager rapidement.

- Autres espèces d'algues envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : *Grateloupia turuturu*, *Dasyphonia japonica*, *Griffithsia corallinoides*, *Bonnemaisonia hamifera*, *Antithamnionella ternifolia*, *Antithamnion densum*, *Lomentaria hakodatensis*

La faune benthique non-indigène, identifiée comme propice à la colonisation de cet habitat, rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité) :

- *Crepidula fornicata* est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.

- La colonisation des substrats rocheux par l'huître *Magallana gigas*, entraîne une augmentation de l'hétérogénéité du substrat. Cette espèce est une prédatrice de

al., 2007 ; Bullard et al., 2007 ; Carver et al., 2006 ; Chapman et al., 2002 ; Collin et al., 2010 ; Davsi & Davis., 2008 ; Ehrold et al., 1998 ; Epstein & Smale., 2017 ; Floc'h et al., 1991 ; Gouletquer., 2016 ; Griffith et al., 2002 ; Grulois et al., 2010 ; Heiser et al., 2014 ; Herbert et al., 2016 ; James., 2017 ; Mercer et al., 2009 ; Lejart., 2009 ; Levin et al., 2002 ; Ramsay-Newton et al., 2017 ; Ruesink et al., 2005 ; Salvaterra et al., 2013 ; Schaffelke & Hewitt., 2007 ; Schmidt & Scheibling., 2007 ; Silva et al., 2021 ; Simeonidis D., 1997 ; Stæhr et al., 2000 ; Stiger et al., 2015 ; Troost., 2010 ; Valentine et al., 2007 ; Williams & Smith., 2007

Littérature grise concernant la **même pression** : André & Müller., 2021 ; Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Burel et al., 2019 ; Chavanich., 2007 ; Grey., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; OFB & MNHN., 2021 ; Ohno., 2005 ; Pisanu et al., 2020 ; Scaps et al., 2021 ; Shalaeva., 2014 ; VLIZ Alien Species Consortium (2020) ; Wacquant et al., 2001 ;

Littérature grise concernant un **sous-habitat et la même pression** : Tillin & Perry, 2016
Littérature grise concernant un **sous-habitat similaire et la même pression** : Tillin & Stamp, 2016

L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.
<table><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>bivalves filtreurs et de cnidaires au stade larvaire. Cependant, peu d'impact concernant la communauté benthique native de cet habitat n'a été observé suite à l'introduction de cette ENI.</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b>Didemnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li>L'ascidie <b>Ciona intestinalis</b> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b>Styela clava</b> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).</li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b>Botrylloides violasceus</b> possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.</li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li>Le bryozaire <b>Watersipora subatra</b> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées</li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b>Austrominius modestus</b> présente de nombreux avantages compétitifs par rapport aux espèces indigènes tels qu'un taux de reproduction élevé, une reproduction tout au long de l'année et un taux de filtration plus élevé que les autres espèces de balanes.</li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Schizoporella unicornis</b>, <b>Asterocarpa humilis</b>, <b>Corella eumyota</b></li></ul></td></tr></table>

Références

Alzieu, C., 2000. Impact of Tributyltin on Marine Invertebrates. Ecotoxicology 9, 71–76. https://doi.org/10.1023/A:1008968229409

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined.

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. Biol Invasions 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19. https://doi.org/10.1051/alr/2009004
Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/j.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1-38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. Alien Invaders 133–148.

Chavanich S., 2007. Codium fragile subsp. tomentosoides. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traustedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. Aquatic Invasions 5, 175–179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Crowe, T.P., Thompson, R.C., Bray, S., Hawkins, S.J., 2000. Impacts of anthropogenic stress on rocky intertidal communities. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery 7, 273–297.
https://doi.org/10.1023/A:1009911928100

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. Al 3, 125-132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. Biol Invasions 20, 1049–1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters.
https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Gibbs, P.E., Bryan, G., Spence, S., 1991. The impact of tributyltin (TBT) pollution on the Nucella lapillus (Gastropoda) populations around the coast of South-East England. undefined.

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009. ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581–590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93.
https://doi.org/10.1017/S1755267214000608
Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835-2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp Undaria pinnatifida. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182-3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge : Cambridge University Press.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537-547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Roveta, C., Annibaldi, A., Afghan, A., Calcinai, B., Di Camillo, C.G., Gregorin, C., Illuminati, S., Pulido Mantas, T., Truzzi, C., Puce, S., 2021. Biomonitoring of Heavy Metals: The Unexplored Role of Marine Sessile Taxa. Applied Sciences 11, 580. https://doi.org/10.3390/app11020580

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643-689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563-2576. https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in : DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397-417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110-130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003
Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. *Ecological Indicators* 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. Mar. Ecol. Prog. Ser. 207, 79–88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Tillin, H.M. & Perry, F., 2016. [Fucus serratus] and under-boulder fauna on exposed to moderately exposed lower eulittoral boulders. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 06-08-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/371

Tillin, H.M. & Stamp, T. 2016. [Laminaria digitata] and under-boulder fauna on sublittoral fringe boulders. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 06-08-2020]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/97

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. Journal of Sea Research 64, 145–165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica – Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327–359. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-2 Champs de blocs de la frange infralittorale" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 191-196.
De nombreuses **algues non-indigènes** ont été identifiées comme propices à la colonisation de cet habitat. L'ensemble de ces espèces sont de véritables compétitrices vis-à-vis des espèces indigènes pour l'espace, la lumière et la ressource alimentaire. La propagation de ces espèces introduites entraîne une diminution de la couverture des macroalgues natives et dans certains cas la diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La composition de la communauté benthique est largement modifiée :

- **Undaria pinnatifida** est particulièrement résistante et colonise facilement ces milieux. Sa propagation dans l'habitat peut induire une modification de la composition en macroalgues, de l'abondance et de la diversité de la macrofaune benthique ainsi qu'une réduction des espèces d'algues sous la couverture d'Undaria pinnatifida.

- **Codium fragile subsp. fragile** colonise rapidement l'espace sur le substrat rocheux par rapport aux algues indigènes notamment dans des habitats déjà soumis à des perturbations. Pour exemple, cette algue non-indigène peut inhiber le recrutement des laminaires une fois établie dans l'habitat. La formation de zone dense de **Codium fragile subsp. fragile** peut modifier la structure biogénique de l'habitat, le flux d'eau, la pénétration de la lumière ainsi que taux de sédimentation (rétention). De plus cette espèce non-indigène ne protège pas les invertrébrés benthiques qui se réfugient habituellement sous les larges frondes des macroalgues.

- **Sargassum muticum** est une espèce non-indigène compétitrice pour l'espace et la lumière par rapport aux macroalgues natives à cause de ses longues frondes. Son importante biomasse peut fournir un habitat refuge pour la faune. Une modification de la communauté benthique ainsi qu'une diminution de la diversité spécifique et de la biomasse des macroalgues natives de l'habitat sont généralement observées.

- **Asparagopsis armata** possède un thalle en forme de "harpon" lui permettant de s'entremêler avec les autres organismes et de se propager rapidement.

- Autres espèces d'algues envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : **Grateloupia turuturu**, **Dasyphonia japonica**, **Griffithsia corallinoides**, **Bonnemaisonia hamifera**, **Antithamnionella ternifolia**, **Antithamnion densum**, **Lomentaria hakodatensis**

La faune benthique non-indigène, identifiée comme propice à la colonisation de cet habitat, rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité) :

- **Crepidula fornicata** est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.

al., 2010 ; Davsi & Davis., 2008 ; Ehrold et al., 1998 ; Epstein & Smale., 2017 ; Floc'h et al.,1991 ; Goulletquer., 2016 ; Griffith et al., 2002 ; Grulois et al.,2010 ; Heiser et al., 2014 ; Herbert et al., 2016 ; James., 2017 ; Mercer et al., 2009 ; Lejart., 2009 ; Levin et al.,2002 ; Ramsay-Newton et al., 2017 ; Ruesink et al., 2005 ; Salvaterra et al., 2013 ; Schaffelke & Hewitt., 2007 ; Schmidt & Scheibling., 2007 ; Silva et al., 2021 ; Simeonidis D., 1997 ; Stæhr et al.,2000 ; Stiger et al., 2015 ; Troost., 2010 ; Valentine et al., 2007 ; Williams & Smith., 2007

Littérature grise concernant la même pression : André & Müller., 2021 ; Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Burel et al., 2019 ; Chavanich.,2007 ; Grey., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; OFB & MNHN., 2021a-c ; Ohno., 2005 ; Pisanu et al.,2020 ; Scaps et al., 2021 ; Shalaeva., 2014 ; VLIZ Alien Species Consortium (2020) ; Wacquant et al., 2001 ;

Littérature grise concernant un habitat similaire ou un sous-habitat et la même pression : Jasper C., 2015a-d ; Jasper et al.,2022a-b ; Stamp T.E., 2015a-d ; Stamp T.E. & Hiscock K., 2015 ; Stamp et al., 2020.2021.2022 ;

L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.
<table><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li>La colonisation des substrats rocheux par l'huître <b>Magallana gigas</b>, entraîne une augmentation de l'hétérogénéité du substrat. Cette espèce est une prédatrice de bivalves filtreurs et de cnidaires au stade larvaire. Cependant, peu d'impact concernant la communauté benthique native de cet habitat n'a été observé suite à l'introduction de cette ENI.</li><li><b>Didemnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li>L'ascidie <b>Ciona intestinalis</b> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</li><li><b>Styela clava</b> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).</li><li><b>Botrylloides violasceus</b> possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.</li><li>Le bryozaire <b>Watersipora subatra</b> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées</li><li><b>Austrominius modestus</b> présente de nombreux avantages compétitifs par rapport aux espèces indigènes tels qu'un taux de reproduction élevé, une reproduction tout au long de l'année et un taux de filtration plus élevé que les autres espèces de balanes.</li><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Schizoporella unicornis</b>, <b>Asterocarpa humilis</b>, <b>Corella eumyota</b></li></ul></td></tr></table>

Références

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined.

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. Biol Invasions 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19. https://doi.org/10.1051/alr/2009004
Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1-38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. Alien Invaders 133-148.

Chavanich S., 2007. Codium fragile subsp. tomentosoides. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traustedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. Aquatic Invasions 5, 175-179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Crowe, T.P., Thompson, R.C., Bray, S., Hawkins, S.J., 2000. Impacts of anthropogenic stress on rocky intertidal communities. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery 7, 273-297.
https://doi.org/10.1023/A:1009911928100

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. Al 3, 125-132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. Biol Invasions 20, 1049-1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters.
https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009. ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581-590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93.
https://doi.org/10.1017/S1755267214000608

Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835-2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4
Jasper C., 2015. [Saccharina latissima] forest on very sheltered upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/295 - Last Updated: 20/11/2015

Jasper, C., Lloyd, K.A., & Mardle, M.J., 2022a. Saccharina latissima and Laminaria digitata on sheltered sublittoral fringe rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/346

Jasper, C., Lloyd, KA, & Mardle, MJ, 2022b. Forêt de Saccharina latissima sur roche infralittorale supérieure très abritée. Dans Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [en ligne]. Plymouth : Association de biologie marine du Royaume-Uni. [cité le 11-07-2022]. Disponible sur : https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/295

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182-3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues . Cambridge : Cambridge University Press.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Gouletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537-547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Roveta, C., Annibaldi, A., Afghan, A., Calcinai, B., Di Camillo, C.G., Gregorin, C., Illuminati, S., Pulido Mantas, T., Truzzi, C., Puce, S., 2021. Biomonitoring of Heavy Metals: The Unexplored Role of Marine Sessile Taxa. Applied Sciences 11, 580. https://doi.org/10.3390/app11020580

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643-689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563-2576. https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4
Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in: DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397–417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110–130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Sheppard, C.R.C., Bellamy, D.J., Sheppard, A.L.S., 1980. Study of the fauna inhabiting the holdfasts of Laminaria hyperborea (gunn.) fosl. along some environmental and geographical gradients. Marine Environmental Research 4, 25–51. https://doi.org/10.1016/0141-1136(80)90057-4

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. Ecological Indicators 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. Mar. Ecol. Prog. Ser. 207, 79–88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Stamp T.E. & Hiscock K., 2015. Grazed [Laminaria hyperborea] forest with coralline crusts on upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/333 - Last Updated: 30/11/2015

Stamp T.E., 2015a. [Laminaria hyperborea] forest and foliose red seaweeds on moderately exposed upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/159 - Last Updated: 16/12/2015

Stamp T.E., 2015b. [Laminaria hyperborea] forest with dense foliose red seaweeds on exposed upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/192 - Last Updated: 16/12/2015

Stamp T.E., 2015c. Mixed [Laminaria hyperborea] and [Laminaria ochroleuca] forest on exposed infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/28 - Last Updated: 16/12/2015

Stamp T.E., 2015d. Mixed kelp s and seaweeds on upper infralittoral mixed substrata. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1046 - Last Updated: 20/10/2015

Stamp T.E., Hiscock K. & Garrard S. L., 2020. [Laminaria hyperborea] forest with a faunal cushion (sponges and polyclinids) and foliose red seaweeds on very exposed upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/44 - Last Updated: 10/01/2020

Stamp, T.E. & Williams, E.. 2021. Laminaria hyperborea forest, foliose red seaweeds and a diverse fauna on tide-swept upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/227
Stamp, T.E., Lloyd, K.A., & Mardle, M.J., 2022b. Mixed Laminaria hyperborea and Saccharina latissima forest on sheltered upper infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/20

Stamp, T.E., Lloyd, K.A., Mardle, M.J., & Tyler-Walters, H. 2022a. Mixed Laminaria hyperborea and Laminaria ochroleuca forest on moderately exposed or sheltered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1039

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. Journal of Sea Research 64, 145–165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica – Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327–359. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-3 Laminaires de l'infralittoral supérieur" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 197-203.
<table><thead><tr><th colspan="2">B1-4<br>CD_HAB<br>2623</th><th colspan="7">Laminaires de l'infralittoral inférieur</th><th rowspan="2">Description de l'évaluation</th><th rowspan="2">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="10">Physique</td><td rowspan="10">Champs électromagnétiques</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td rowspan="10">Les macroalgues sont considérées comme étant bioaccumulatrices de métaux lourds. Cependant, des effets délétères peuvent apparaître notamment aux stades de vie les plus jeunes (sporophyte, gamétophyte) qui sont les plus intolérants à cette pression. Le mercure et le cuivre sont considérés comme étant les métaux lourds les plus toxiques.<br>L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).<br><br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bryan G.W., 1984 ; Crowe et al., 2000 ; Lobban & Harrison., 1997 ; Roveta et al., 2021 ; Sheppard et al., 1980</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="10">Chimique</td><td rowspan="10"> modification des apports en matériel organique</td><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NB : La majorité des données disponibles traite de la sensibilité de cet habitat à l'eutrophisation, pression englobant l'enrichissement nutritif et organique. On ne peut donc pas dissocier et différencier leurs impacts sur l'habitat</td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats et la même pression : Hiscock et al., 2022 ; Stamp T.E., 2015a-g ; Stamp et al., 2022a-d</td></tr><tr><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Lorsque l'habitat est soumis à un fort hydrodynamisme, les conditions sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique. La résistance à l'eutrophisation est considérée comme modérée car des effets indirects de l'enrichissement organique (sédimentation, turbidité) peuvent impacter cet habitat.<br><br>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)</td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats et la même pression : Hiscock et al., 2022 ; Stamp T.E., 2015a-g ; Stamp et al., 2022a-d</td></tr></tbody></table>
Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/j.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1–38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. Alien Invaders 133–148.

Chavanich S., 2007. Codium fragile subsp. tomentosoides. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traustedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. Aquatic Invasions 5, 175–179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Crowe, T.P., Thompson, R.C., Bray, S., Hawkins, S.J., 2000. Impacts of anthropogenic stress on rocky intertidal communities. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery 7, 273–297.
https://doi.org/10.1023/A:1009911928100

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. Al 3, 125–132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. Biol Invasions 20, 1049–1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters.
https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009. ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581–590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93.
https://doi.org/10.1017/S1755267214000608
Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835-2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4

Hiscock, K., Stamp, T.E., Lloyd, K.A., Mardle, M.J., & Tyler-Walters, H. 2022. Saccharina latissima, Chorda filum and dense red seaweeds on shallow unstable infralittoral boulders or cobbles. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/363

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp Undaria pinnatifida. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182-3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge : Cambridge University Press.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Gouletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537-547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Roveta, C., Annibaldi, A., Afghan, A., Calcinai, B., Di Camillo, C.G., Gregorin, C., Illuminati, S., Pulido Mantas, T., Truzzi, C., Puce, S., 2021. Biomonitoring of Heavy Metals: The Unexplored Role of Marine Sessile Taxa. Applied Sciences 11, 580. https://doi.org/10.3390/app11020580

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643-689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563-2576. https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in: DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211
Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397–417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110–130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Sheppard, C.R.C., Bellamy, D.J., Sheppard, A.L.S., 1980. Study of the fauna inhabiting the holdfasts of Laminaria hyperborea (gunn.) fosl. along some environmental and geographical gradients. Marine Environmental Research 4, 25–51. https://doi.org/10.1016/0141-1136(80)90057-4

Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. Ecological Indicators 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. Mar. Ecol. Prog. Ser. 207, 79–88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Stamp, T.E. 2015a. Laminaria hyperborea park and foliose red seaweeds on moderately exposed lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/321

Stamp, T.E. 2015b. Laminaria hyperborea park with dense foliose red seaweeds on exposed lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/334

Stamp, T.E. 2015c. Laminaria hyperborea park with hydroids, bryozoans and sponges on tide-swept lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/179

Stamp, T.E. 2015d. Silted cape-form Laminaria hyperborea on very sheltered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1030

Stamp, T.E. 2015e. Laminaria hyperborea park and foliose red seaweeds on tide-swept lower infralittoral mixed substrata. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1047

Stamp, T.E. 2015f. Grazed Laminaria hyperborea park with coralline crusts on lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/3

Stamp, T.E. 2015g. Grazed, mixed Laminaria hyperborea and Saccharina latissima on sheltered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1058

Stamp, T.E., Hiscock, K. & Williams, E., Lloyd, K.A., Mardle, M.J., & Tyler-Walters, H. 2022a. Saccharina latissima and/or Saccorhiza polyschides on exposed infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/237
Stamp, T.E., Lloyd, K.A., & Mardle, M.J., 2022b. Mixed Laminaria hyperborea and Saccharina latissima park on sheltered lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/141

Stamp, T.E., Lloyd, K.A., & Tyler-Walters, H. 2022c. Mixed kelps with scour-tolerant and opportunistic foliose red seaweeds on scoured or sand-covered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/183

Stamp, T.E., Williams, E., Lloyd, K.A., Mardle, M.J., & Tyler-Walters, H. 2022d. Saccorhiza polyschides and other opportunistic kelps on disturbed sublittoral fringe rock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/118

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. Journal of Sea Research 64, 145-165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica - Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 38, 327-359.
https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-4 Laminaires de l'infralittoral inférieur" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 204-210.
<table><thead><tr><th colspan="7">B1-5<br>CD HAB<br>2624</th><th rowspan="2">Description de l'évaluation</th><th rowspan="2">Commentaire Indice de confiance</th></tr><tr><th>Catégorie</th><th>Pression</th><th>Résist.</th><th>IC résist.</th><th>Résil.</th><th>IC Résil.</th><th>Sensib.</th><th>IC sensib.</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="15">Chimique</td><td rowspan="15">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Champs électromagnétiques</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Les macroalgues sont considérées comme étant bioaccumulatrices de métaux lourds. Cependant, des effets délétères peuvent apparaître notamment aux stades de vie les plus jeunes (sporophyte, gamétophyte) qui sont les plus intolérants à cette pression. Le mercure et le cuivre sont considérés comme étant les métaux lourds les plus toxiques.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bryan G.W., 1984 ; Crowe et al., 2000 ; Lobban & Harrison., 1997 ; Roveta et al., 2021 ; Sheppard et al., 1980</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).</td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats et la même pression : Tillin & Budd, 2002 ; Tillin, 2016</td></tr><tr><td>Cadmium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats similaires et la même pression : Stamp et al.,2021.2022 ; Tillin & Rayment, 2015 ; Perry et al., 2015 ;</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td rowspan="5">Modification des apports en matériel organique</td><td rowspan="5"> modification des apports en matériel organique</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>NB : La majorité des données disponibles traite de la sensibilité de cet habitat à l'eutrophisation, pression englobant l'enrichissement nutritif et organique. On ne peut donc pas dissocier et différencier leurs impacts sur l'habitat</td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats et la même pression : Tillin & Budd, 2002 ; Tillin, 2016</td></tr><tr><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Lorsque l'habitat est soumis à un fort hydrodynamisme, les conditions sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique. La résistance à l'eutrophisation est considérée comme modérée car des effets indirects de l'enrichissement organique (sédimentation, turbidité) peuvent impacter cet habitat.</td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats similaires et la même pression : Stamp et al.,2021.2022 ; Tillin & Rayment, 2015 ; Perry et al., 2015 ;</td></tr><tr><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)</td><td></td></tr><tr><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>NEv</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>
<table><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>bivalves filtreurs et de cnidaires au stade larvaire. Cependant, peu d'impact concernant la communauté benthique native de cet habitat n'a été observé suite à l'introduction de cette ENI.<br/>- Didemnum vexillum est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.<br/>- L'ascidie Ciona intestinalis est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.<br/>- Styela clava peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).<br/>- Botrylloides violasceus possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.<br/>- Le bryozaire Watersipora subatra colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées<br/>- Austrominius modestus présente de nombreux avantages compétitifs par rapport aux espèces indigènes tels qu'un taux de reproduction élevé, une reproduction tout au long de l'année et un taux de filtration plus élevé que les autres espèces de balanes.<br/>- Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : Schizoporella unicornis, Asterocarpa humilis, Corella eumyota</td><td>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined.

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. Biol Invasions 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19. https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America. https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020
Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin 7, 1-38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. Alien Invaders 133-148.

Chavanich S., 2007. Cadmium fragile subsp. tomentosoides. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traustedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. Aquatic Invasions 5, 175-179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Crowe, T.P., Thompson, R.C., Bray, S., Hawkins, S.J., 2000. Impacts of anthropogenic stress on rocky intertidal communities. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery 7, 273-297.
https://doi.org/10.1023/A:1009911928100

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. Al 3, 125-132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583-588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. Biol Invasions 20, 1049-1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2

Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters.
https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009. ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581-590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93.
https://doi.org/10.1017/S1755267214000608

Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835-2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp Undaria pinnatifida. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.

Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182-3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge : Cambridge University Press.
McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Gouletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Perry F., Tillin H.M. & Garrard S. L. 2015. [Sargassum muticum] on shallow slightly tide-swept infralittoral mixed substrata. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1055 - Last Updated: 14/12/2015

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537–547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y

Roveta, C., Annibaldi, A., Afghan, A., Calcinai, B., Di Camillo, C.G., Gregorin, C., Illuminati, S., Pulido Mantas, T., Truzzi, C., Puce, S., 2021. Biomonitoring of Heavy Metals: The Unexplored Role of Marine Sessile Taxa. Applied Sciences 11, 580. https://doi.org/10.3390/app11020580

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643–689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Salvaterra, T., Green, D.S., Crowe, T.P., O'Gorman, E.J., 2013. Impacts of the invasive alga Sargassum muticum on ecosystem functioning and food web structure. Biol Invasions 15, 2563–2576. https://doi.org/10.1007/s10530-013-0473-4

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in : DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schaffelke, B., Hewitt, C.L., 2007. Impacts of introduced seaweeds 50, 397–417. https://doi.org/10.1515/BOT.2007.044

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110–130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Sheppard, C.R.C., Bellamy, D.J., Sheppard, A.L.S., 1980. Study of the fauna inhabiting the holdfasts of Laminaria hyperborea (gunn.) fosl. along some environmental and geographical gradients. Marine Environmental Research 4, 25–51. https://doi.org/10.1016/0141-1136(80)90057-4
Silva, C.O., Lemos, M.F.L., Gaspar, R., Gonçalves, C., Neto, J.M., 2021. The effects of the invasive seaweed Asparagopsis armata on native rock pool communities: Evidences from experimental exclusion. *Ecological Indicators* 125, 107463. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2021.107463

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stæhr, P., Pedersen, M., Thomsen, M., Wernberg, T., Krause-Jensen, D., 2000. Invasion of Sargassum muticum in Limfjorden (Denmark) and its possible impact on the indigenous macroalgal community. *Mar. Ecol. Prog. Ser.* 207, 79–88. https://doi.org/10.3354/meps207079

Stamp, T.E., Lloyd, K.A., & Tyler-Walters, H. 2022. Dense Desmarestia spp. with filamentous red seaweeds on exposed infralittoral cobbles, pebbles and bedrock. In Tyler-Walters H. Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. [cited 11-07-2022]. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1042

Stamp, TE, Tyler-Walters, H., Williams, E. & Lloyd, KA, 2021. Halidrys siliquosa et varechs mixtes sur roche infralittorale balayée par les marées avec sédiments grossiers. Dans Tyler-Walters H. et Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [en ligne]. Plymouth : Association de biologie marine du Royaume-Uni. [cité le 11-07-2022]. Disponible sur : https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/258

Tillin H.M. & Budd G., 2002. Foliose red seaweeds on exposed lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/65 - Last Updated: 30/05/2002

Tillin H.M. & Rayment W., 2015. [Polyides rotunda], [Ahnfeltia plicata] and [Chondrus crispus] on sand-covered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/222 - Last Updated: 07/12/2015

Tillin H.M., 2016. Dense foliose red seaweeds on silty moderately exposed infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1090 - Last Updated: 30/03/2016

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. *Journal of Sea Research* 64, 145–165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. *Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference* 342, 109–121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

VLIZ Alien Species Consortium (2020). Dasysiphonia japonica – Siphoned Japan weed. Non-native species of the Belgian part of the North Sea and adjacent estuaries anno 2020. Flemish Institute for the Sea (VLIZ). 7 pp.

Wacquant Claude, Grulois Daphné, Lamare Véronique in : DORIS, 20/01/2021 : Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar, https://doris ffessm.fr/ref/specie/1616

Williams, S.L., Smith, J.E., 2007. A Global Review of the Distribution, Taxonomy, and Impacts of Introduced Seaweeds. *Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics* 38, 327–359. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.38.091206.095543

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-5 Roches ou blocs infralittoraux à couverture végétale autre que les laminaires" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. *PatriNat* (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 211-216.
<table><tr><td>Biologique</td><td>Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>La faune benthique non-indigène introduit se fixe sur le substrat rocheux ou les algues indigènes caractéristiques de l'habitat et rentre en concurrence pour l'espace et les ressources alimentaires avec les espèces indigènes ayant les mêmes modes d'alimentation (filtreuses pour la majorité):<ul><li><b>Crepidula fornicata</b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.</li><li><b>Didemnum vexillum</b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des sur des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</li><li><b>L'ascidie Ciona intestinalis</b> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</li><li><b>Styela clava</b> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).</li><li><b>Botrylloides violasceus</b> possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.</li><li><b>Le bryozaire Watersipora subatra</b> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées</li><li><b>Austrominius modestus</b> présente de nombreux avantages compétitifs par rapport aux espèces indigènes tels qu'un taux de reproduction élevé, une reproduction tout au long de l'année, un taux de filtration plus élevé que les autres espèces de balanes.</li><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b>Schizoporella unicornis</b>, <b>Asterocarpa humilis</b>, <b>Corella eumyota</b></li></ul></td><td>Publications examinées en comité de lecture :Bishop et al., 2013 ; Blum et al., 2007 ; Bullard et al., 2007 ; Carver et al., 2006 ; Collin et al., 2010 ; Davis & Davis., 2008 ; Erhold et al., 1998 ; Gouletquer., 2016 ; Griffith et al., 2002 ; Herbert et al., 2016 ; Mercer et al., 2009 ; Lejart., 2009 ; Levin et al., 2002 ; Ruesink et al., 2005 ; Schmidt & Scheibling., 2007 ; Simeonidis., 1997 ; Stiger et al., 2015 ; Troost., 2010 ; Valentine et al., 2007</td></tr><tr><td colspan="9"><b>Littérature grise concernant la même pression</b> : André & Müller., 2021 ; Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Burel et al., 2019 ; Grey., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; OFB & MNHN., 2021 ; Pisanu et al.,2020 ; Scaps et al., 2021 ; Shalaeva., 2014</td></tr><tr><td colspan="9"><b>Littérature grise concernant des sous-habitats similaires</b> : De-Bastos & Hill, 2016 ; Tillin & Hill, 2016.</td></tr><tr><td colspan="9"><b>Littérature grise concernant des espèces caractéristiques</b> : Budd, 2008 ; Hill, 2000, 2007 ; Readman, 2016</td></tr><tr><td colspan="9">L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>

Références

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638

Baffreau, A, Pezy, JP, Rusig, AM, Mussio I, Dauvin JC., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. Biol Invasions 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x
Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). Aquat. Living Resour. 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters, vol. 5. Ocean Management, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Budd G.C., 2008. Alcyonium digitatum Dead man's fingers. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/species/detail/1187 - Last Updated: 08/05/2008

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/J.JEMBE.2006.10.020

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences 2746.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traustedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. Aquatic Invasions 5, 175–179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. AI 3, 125–132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

De-Bastos E.S.R. & Hill J., 2016. [Polydora] sp. tubes on moderately exposed sublittoral soft rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/247 - Last Updated: 30/03/2016

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009.ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. AI 4, 581–590.
https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Herbert, R.J.H., Humphreys, J., Davies, Clare.J., Roberts, C., Fletcher, S., Crowe, Tasman.P., 2016. Ecological impacts of non-native Pacific oysters (Crassostrea gigas) and management measures for protected areas in Europe. Biodivers Conserv 25, 2835–2865. https://doi.org/10.1007/s10531-016-1209-4

Hill J.M. 2000. Jassa falcata an amphipod. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/species/detail/1391 - Last Updated: 08/08/2000

Hill J.M., 2007. Polydora ciliata A bristleworm. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/species/detail/1410 - Last Updated: 24/04/2007

Lejart, M., 2009. Etude du processus invasif de Crassostrea gigas en Bretagne: Etat des lieux, dynamique et conséquences écologiques (phdthesis). Université de Bretagne occidentale - Brest.
Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182-3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta, 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Perry F., Tillin H.M. & Garrard S. L. 2015. [Sargassum muticum] on shallow slightly tide-swept infralittoral mixed substrata. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1055 - Last Updated: 14/12/2015

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Readman J.A.J., 2016. [Sagartiogeton undatus] and [Ascidiella aspersa] on infralittoral sandy mud. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1119 - Last Updated: 03/07/2016

Ruesink, J.L., Lenihan, H.S., Trimble, A.C., Heiman, K.W., Micheli, F., Byers, J.E., Kay, M.C., 2005. Introduction of Non-Native Oysters: Ecosystem Effects and Restoration Implications. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 36, 643-689. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.36.102003.152638

Scaps Patrick, Müller Yves, André Frédéric, Ziemski Frédéric in : DORIS, 21/01/2021 : Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767), https://doris ffessm.fr/ref/specie/211

Schmidt, A.L., Scheibling, R.E., 2007. Effects of native and invasive macroalgal canopies on composition and abundance of mobile benthic macrofauna and turf-forming algae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology 341, 110-130. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.003

Shalaeva A., 2014. Corella eumyota. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Simeonidis D., 1997, GUIDE SOUS-MARIN DES COTES ATLANTIQUES FRANÇAISES, ed. Delachaux & Niestlé, 160p.

Stamp T.E., 2015. Dense [Desmarestia] spp. with filamentous red seaweeds on exposed infralittoral cobbles, pebbles and bedrock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1042 - Last Updated: 16/12/2015

Tillin H.M. & Budd G., 2002. Foliose red seaweeds on exposed lower infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/65 - Last Updated: 30/05/2002
Tillin H.M. & Hill J.M., 2016. Piddocks with a sparse associated fauna in sublittoral very soft chalk or clay. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/152 - Last Updated: 05/02/2016

Tillin H.M. & Rayment W., 2015. [Polyides rotunda], [Ahnfeltia plicata] and [Chondrus crispus] on sand-covered infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/222 - Last Updated: 07/12/2015

Tillin H.M., 2016. Dense foliose red seaweeds on silty moderately exposed infralittoral rock. In Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews, [on-line]. Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom. Available from: https://www.marlin.ac.uk/habitat/detail/1090 - Last Updated: 30/03/2016

Troost, K., 2010. Causes and effects of a highly successful marine invasion: Case-study of the introduced Pacific oyster Crassostrea gigas in continental NW European estuaries. Journal of Sea Research 64, 145-165. https://doi.org/10.1016/j.seares.2010.02.004

Valentine, P.C., Carman, M.R., Blackwood, D.S., Heffron, E.J., 2007. Ecological observations on the colonial ascidian Didemnum sp. in a New England tide pool habitat. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference 342, 109-121. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.021

## Citation

Miquerol L., La Rivière M., 2023. Evaluation de la sensibilité de l'habitat "B1-6 Roches ou blocs infralittoraux à dominance animale" à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques ; in Miquerol L., La Rivière M., Sauboua P., 2023. Evaluation de la sensibilité des habitats marins benthiques des trois façades métropolitaines à quatre pressions physiques, chimiques et biologiques. PatriNat (OFB-MNHN-CNRS-IRD), Paris : 217-221.
<table><thead><tr><th colspan="2">B1-7<br>CD HAB</th><th colspan="7">Tombant de l'infralittoral</th><th></th><th></th></tr><tr><th colspan="2">Catégorie</th><th colspan="7">Pression</th><th>Description de l'évaluation</th><th>Commentaire Indice de confiance</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="2">Physique</td><td colspan="7">Champs électromagnétiques</td><td>Source d'information insuffisante pour établir une évaluation.</td><td></td></tr><tr><td rowspan="15">Chimique</td><td rowspan="15">Contamination par ETM, métalloïdes et organo-métaux</td><td>Argent</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td rowspan="15">Les macroalgues possèdent des capacités de bioaccumulation des métaux lourds et sont considérés comme tolérantes à ces contaminants. Les premiers stades de vie de ces algues sont définis comme étant plus sensibles à cette pression avec un taux de croissance retardé et/ou réduit. Des études ont également mis en évidence des effets négatifs comme le blocage de l'absorption du carbone ou de la photosynthèse, réduisant ainsi la survie des individus. L'absorption de métaux lourds par les algues peut être influencée par différents facteurs (lumière, teneur en azote des algues, durée d'émersion, température, salinité, présence d'autres polluants, l'âge des frondes).<br>De nombreux organismes de la faune de cet habitat ont des capacités de bioaccumulation des contaminants et sont considérées comme des espèces sentinelles. Bien qu'il existe peu d'étude évaluant l'impact sur l'ensemble de l'habitat, des effets négatifs sur la morphologie ou la physiologie des individus peuvent être observés au-delà du seuil de tolérance. Le stade de vie larvaire est généralement moins tolérant à une exposition aux métaux lourds que le stade adulte. La perte d'une espèce structurante modifie l'assemblage de l'habitat.<br>Attention : La sensibilité des espèces à cette pression dépend du temps d'exposition et du taux de concentration des contaminants dans le milieu. Elle est différente en fonction des espèces et du type de contaminant présent. Elle dépend également des conditions abiotiques du milieu telles que la salinité ou la température et la taille des sédiments.</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Bryan G.W., 1984 ; Crowe et al., 2000 ; Lobban & Harrison., 1997 ; Roveta et al., 2021 ; Sheppard et al., 1980</td></tr><tr><td>Arsenic</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats et la même pression : Tillin & Budd, 2002 ; Tillin, 2016</td></tr><tr><td>Cadium</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant plusieurs sous-habitats similaires et la même pression : Stamp et al.,2021.2022 ; Tillin & Rayment, 2015 ; Perry et al., 2015 ;</td></tr><tr><td>Chrome</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cobalt</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cuivre</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mercure</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nickel</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plomb</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zinc</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tributylétain (TBT)</td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td><td>Nev</td><td></td></tr><tr><td colspan="2">Modification des apports en matériel organique</td><td>H</td><td>F</td><td>H</td><td>F</td><td>F</td><td>F</td><td></td><td>Lorsque l'habitat est soumis à un fort hydrodynamisme, les conditions sont propices à la remise en suspension et à l'élimination rapide de la matière organique. De plus, la surface rocheuse verticale de cet habitat limite le dépôt de matière organique. L'apport de matière organique peut-être une source de nourriture pour les espèces suspensivores.<br>A noter : Les filtreurs épibenthiques sessiles sont particulièrement vulnérables à l'augmentation de charge en particules dans l'eau. En effet, un niveau élevé par particules en suspensions peut obstruer leur système de filtration altérant ainsi les fonctions physiologiques telles que l'alimentation ou l'oxygénation des tissus.<br>Attention : Plusieurs facteurs doivent être pris en compte pour évaluer la sensibilité de cet habitat à l'échelle locale :<br>- Les conditions hydrodynamiques influençant la remise en suspension et la dispersion de la matière organique<br>- La composition et les caractéristiques biologiques des espèces caractéristiques ou associées de l'habitat (recrutement et dispersion larvaire)</td><td>Publications examinées en comité de lecture : Dunlop et al.,2021 ; Kutti et al.,2007a ; Salvo et al.,2017<br>Littérature grise concernant des sous-habitats similaires : Stamp, 2015a-b ; Tillin, 2016<br>Littérature grise concernant des espèces caractéristiques : Budd, 2008 ; Readman 2016</td></tr></tbody></table>
<table><tr><td rowspan="2">Biologique</td><td rowspan="2">Introduction ou propagation d'espèces non-indigènes</td><td>A</td><td>H</td><td>A</td><td>H</td><td>TH</td><td>H</td><td>Aucune information ne permet de confirmer la présence des espèces non-indigènes citées ci-dessous dans cet habitat. Cependant elles peuvent avoir été identifiées dans des habitats ou des niveaux bathymétriques similaires et peuvent donc constituer une menace potentielle pour cet habitat :<br/><br/>De nombreuses <strong>algues non-indigènes</strong> ont été identifiées comme propices à la colonisation de cet habitat. L'ensemble de ces espèces sont de véritables compétitrices vis-à-vis des espèces indigènes pour l'espace, la lumière et la ressource alimentaire. La propagation de ces espèces introduites entraîne une diminution de la couverture des macroalgues natives et dans certains cas la diminution de la diversité et de la richesse spécifique. La composition de la communauté benthique est largement modifiée :<br/>- <strong>Undaria pinnatifida</strong> est particulièrement résistante et colonise facilement ces milieux. Sa propagation dans l'habitat peut induire une modification de la composition en macroalgues, de l'abondance et de la diversité de la macrofaune benthique ainsi qu'une réduction des espèces d'algues sous la couverture d'Undaria pinnatifida.<br/>- <strong>Codium fragile subsp. fragile</strong> colonise rapidement l'espace sur le substrat rocheux par rapport aux algues indigènes notamment dans des habitats déjà soumis à des perturbations. Pour exemple, cette algue non-indigène peut inhiber le recrutement des laminaires une fois établie dans l'habitat. La formation de zone dense de <strong>Codium fragile subsp. fragile</strong> peut modifier la structure biogénique de l'habitat, le flux d'eau, la pénétration de la lumière ainsi que taux de sédimentation (rétention). De plus cette espèce non-indigène ne protège pas les invertrébrés benthiques qui se réfugient habituellement sous les larges frondes des macroalgues.<br/>- <strong>Sargassum muticum</strong> est une espèce non-indigène compétitrice pour l'espace et la lumière par rapport aux macroalgues natives à cause de ses longues frondes. Son importante biomasse peut fournir un habitat refuge pour la faune. Une modification de la communauté benthique ainsi qu'une diminution de la diversité spécifique et de la biomasse des macroalgues natives de l'habitat sont généralement observées.<br/>- <strong>Asparagopsis armata</strong> possède un thalle en forme de "harpon" lui permettant de s'entremêler avec les autres organismes et de se propager rapidement.<br/>- Autres espèces d'algues envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <strong>Grateloupia turuturu</strong>, <strong>Dasyphonia japonica</strong>, <strong>Griffithsia corallinoides</strong>, <strong>Bonnemaisonia hamifera</strong>, <strong>Antithamnionella ternifolia</strong>, <strong>Antithamnion densum</strong>, <strong>Lomentaria hakodatensis</strong></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Publications examinées en comité de lecture : Belsher & Pommellec., 1984 ; Bishop et al., 2013 ; Blum et al., 2007 ; Bullard et al., 2007 ; Carver et al., 2006 ; Chapman et al., 2002 ; Collin et al., 2010 ; Davsi & Davis., 2008 ; Ehrold et al., 1998 ; Epstein & Smale., 2017 ; Floc'h et al.,1991 ; Gouletquer., 2016 ; Griffith et al., 2002 ; Grulois et al.,2010 ; Heiser et al., 2014 ; Herbert et al., 2016 ; James., 2017 ; Mercer et al., 2009 ; Lejart., 2009 ; Levin et al.,2002 ; Ramsay-Newton et al., 2017 ; Ruesink et al., 2005 ; Salvaterra et al., 2013 ; Schaffelke & Hewitt., 2007 ; Schmidt & Scheibling., 2007 ; Silva et al., 2021 ; Simeonidis D., 1997 ; Stæhr et al.,2000 ; Stiger et al., 2015 ; Troost., 2010 ; Valentine et al., 2007 ; Williams & Smith., 2007</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant la même pression : André & Müller., 2021 ; Baffreau et al., 2018 ; Blanchard et al., 2009 ; Burel et al., 2019 ; Chavanich.,2007 ; Grey., 2009 ; Mckenzie et al., 2007 ; OFB & MNHN., 2021a-c; Ohno., 2005 ; Pisanu et al.,2020 ; Scaps et al., 2021 ; Shalaeva., 2014 ; VLIZ Alien Species Consortium (2020) ; Wacquant et al., 2001 ;</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant des sous-habitats similaires : Stamp, 2015a-b ; Tillin, 2016</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Littérature grise concernant des espèces caractéristiques : Budd, 2008 ; Readman 2016</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>L'indice de confiance est haut en raison de la nature permanente des impacts liés à cette pression.</td></tr></table>
<table><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td><ul><li><b><i>Crepidula fornicata</i></b> est un compétiteur spatial et trophique pour les espèces indigènes. L'empilement des crépidules augmente la complexité du substrat colonisé. Cela empêche également le recrutement larvaire des espèces indigènes. Les zones de fortes densités de crépidules modifient les conditions hydro-sédimentaires de l'habitat. Ces tapis denses et épais de crépidules favorisent l'accumulation et la rétention de biodépôts (fèces et pseudo-fèces) engendrant ainsi un enrichissement organique avec pour conséquence l'envasement de l'habitat.</ul><ul><li>La colonisation des substrats rocheux par l'huître <b><i>Magallana gigas</i></b>, entraîne une augmentation de l'hétérogénéité du substrat. Cette espèce est une prédatrice de bivalves filtreurs et de cnidaires au stade larvaire. Cependant, peu d'impact concernant la communauté benthique native de cet habitat n'a été observé suite à l'introduction de cette ENI.</ul><ul><li><b><i>Didemnum vexillum</i></b> est une ascidie coloniale capable de coloniser des substrats artificiels et naturels (galets, cailloutis, roche) ainsi que des organismes (moules, huîtres, algues...). Elle se développe rapidement formant dans certains cas des tapis étendus sur le substrat, modifiant la structure de l'habitat et entrant en compétition avec les espèces natives de l'habitat.</ul><ul><li><b><i>L'ascidie Ciona intestinalis</i></b> est capable de filtrer une importante quantité d'eau. C'est une véritable compétitrice pour la nourriture face aux espèces suspensivores indigènes. De plus, cette ascidie solitaire peut former des agrégats denses formant un nouveau substrat.</ul><ul><li><b><i>Styela clava</i></b> peut se fixer aussi bien sur des substrats durs que des espèces telles que les algues, les gorgones ou les annélides tubicoles (spirographes).</ul><ul><li><b><i>Botrylloides violasceus</i></b> possède une faible capacité de dispersion et se retrouve par conséquent en grande concentration de manière localisée sur le substrat.</ul><ul><li>Le bryozaire <b><i>Watersipora subatra</i></b> colonise les roches ou blocs rocheux en formant des plaques encroûtantes ou partiellement foliacées</ul><ul><li><b><i>Austrominius modestus</i></b> présente de nombreux avantages compétitifs par rapport aux espèces indigènes tels qu'un taux de reproduction élevé, une reproduction tout au long de l'année et un taux de filtration plus élevé que les autres espèces de balanes.</ul><ul><li>Autres espèces envahissantes mais dont l'impact écologique est mal connu pour cet habitat : <b><i>Schizoporella unicornis</i></b>, <b><i>Asterocarpa humilis</i></b>, <b><i>Corella eumyota</i></b></ul></td></tr></table>

Références

André F., Müller Y., in : DORIS, 25/01/2021 : Schizoporella unicornis (Johnston in Wood, 1844), https://doris ffessm.fr/ref/specie/3638
Baffreau, A., Pezy, J.P., Rusig, A.M., Mussio, I., Dauvin, J.C., 2018. Les espèces marines animales et végétales introduites en Normandie. pp.6-9

Belsher, T., Pommellec, S., 1984. Expansion de l'algue d'origine japonaise Sargassum muticum (Yendo) Fensholt, sur les côtes françaises, de 1983 à 1987. undefined.

Bishop, J.D.D., Roby, C., Yunnie, A.L.E., Wood, C.A., Lévêque, L., Turon, X., Viard, F., 2013. The Southern Hemisphere ascidian Asterocarpa humilis is unrecognised but widely established in NW France and Great Britain. *Biol Invasions* 15, 253–260. https://doi.org/10.1007/s10530-012-0286-x

Blanchard, M., 2009. Recent expansion of the slipper limpet population (Crepidula fornicata) in the Bay of Mont-Saint-Michel (Western Channel, France). *Aquat. Living Resour.* 22, 11–19.
https://doi.org/10.1051/alr/2009004

Blum, J.C., Chang, A.L., Liljesthröm, M., Schenk, M.E., Steinberg, M.K., Ruiz, G.M., 2007. The non-native solitary ascidian Ciona intestinalis (L.) depresses species richness. *Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, Proceedings of the 1st International Invasive Sea Squirt Conference* 342, 5–14. https://doi.org/10.1016/j.jembe.2006.10.010

Bryan, G.W., 1984. Pollution due to heavy metals and their compounds. In *Marine Ecology: A Comprehensive, Integrated Treatise on Life in the Oceans and Coastal Waters*, vol. 5. *Ocean Management*, part 3, (ed. O. Kinne), pp.1289-1431. New York: John Wiley & Sons.

Budd G.C., 2008. Alcyonium digitatum Dead man's fingers. In *Tyler-Walters H. and Hiscock K. (eds) Marine Life Information Network: Biology and Sensitivity Key Information Reviews*, [on-line].
*Plymouth: Marine Biological Association of the United Kingdom*. Available from: https://www.marlin.ac.uk/species/detail/1187 - Last Updated: 08/05/2008

Bullard, S.G., Lambert, G., Carman, M., Byrnes, J.E.K., Whitlatch, R., Ruiz, G., Miller, R.J., Harris, L., Valentine, P., Collie, J., Pederson, J., McNaught, D., Cohen, A., Asch, R., Dijkstra, J., Heinonen, K.B., 2007. The colonial ascidian Didemnum sp. A: Current distribution, basic biology and potential threat to marine communities of the northeast and west coasts of North America.
https://doi.org/10.1016/j.JEMBE.2006.10.020

Burel, T., Le Duff, M., Ar Gall, E., 2019. Updated check-list of the seaweeds of the French coasts, Channel and Atlantic Ocean. *An Aod - Les cahiers naturalistes de l'Observatoire marin* 7, 1–38.

Carver, C., Mallet, A., Vercaemer, B., 2006. Biological Synopsis of the Solitary Tunicate Ciona Intestinalis. *Canadian Manuscript Report of Fisheries and Aquatic Sciences* 2746.

Chapman, A.S., Scheibling, R., Chapman, A., 2002. Species introductions and changes in the marine vegetation of Atlantic Canada. *Alien Invaders* 133–148.

Chavanich S., 2007. Cadmium fragile subsp. tomentosoides. In: *Invasive Species Compendium*. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Collin, S., Oakley, J., Sewell, J., Bishop, J., 2010. Widespread occurrence of the non-indigenous ascidian Corella eumyota Traustedt, 1882 on the shores of Plymouth Sound and Estuaries Special Area of Conservation, UK. *Aquatic Invasions* 5, 175–179. https://doi.org/10.3391/ai.2010.5.2.07

Crowe, T.P., Thompson, R.C., Bray, S., Hawkins, S.J., 2000. Impacts of anthropogenic stress on rocky intertidal communities. *Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery* 7, 273–297.
https://doi.org/10.1023/A:1009911928100

Davis, Martin, Davis, Mary, 2008. First record of Styela clava (Tunicata, Ascidiacea) in the Mediterranean region. *Al* 3, 125–132. https://doi.org/10.3391/ai.2008.3.2.2

Dunlop, K., Harendza, A., Bannister, R., Keeley, N., 2021. Spatial response of hard- and mixed-bottom benthic epifauna to organic enrichment from salmon aquaculture in northern Norway. *Aquaculture Environment Interactions* 13, 455–475. https://doi.org/10.3354/aei00419

Ehrhold, A., Blanchard, M., Auffret, J.-P., Garlan, T., 1998. Conséquences de la prolifération de la crépidule (Crepidula fornicata) sur l'évolution sédimentaire de la baie du Mont-Saint-Michel (Manche, France). *Comptes Rendus de l'Académie des Sciences - Series IIA - Earth and Planetary Science* 327, 583–588. https://doi.org/10.1016/S1251-8050(99)80111-6

Epstein, G., Smale, D.A., 2018. Environmental and ecological factors influencing the spillover of the non-native kelp, Undaria pinnatifida, from marinas into natural rocky reef communities. *Biol Invasions* 20, 1049–1072. https://doi.org/10.1007/s10530-017-1610-2
Floc'h, J., Pajot, R., Wallentinus, I., 1991. The Japanese brown alga Undaria pinnatifida on the coast of France and its possible establishment in European waters. https://doi.org/10.1093/ICESJMS/47.3.379

Goulletquer P. 2016. Guide des organismes exotiques marins. Belin. p. 303.

Grey E., 2009.ciona intestinalis. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Griffith, K., Mowat, S., Holt, R., Ramsay, K., Bishop, J., Lambert, G., Jenkins, S., 2009. First records in Great Britain of the invasive colonial ascidian Didemnum vexillum Kott, 2002. Al 4, 581–590. https://doi.org/10.3391/ai.2009.4.4.3

Grulois, D., 2010. Etude de la dispersion et du recrutement à différentes échelles spatiales chez Undaria pinnatifida, une macro-algue introduite le long des côtes bretonnes (Theses). Paris 6.

Heiser, S., Hall-Spencer, J.M., Hiscock, K., 2014. Assessing the extent of establishment of Undaria pinnatifida in Plymouth Sound Special Area of Conservation, UK. Mar. Biodivers. Rec. 7, e93. https://doi.org/10.1017/S1755267214000608

James, K., 2017. A review of the impacts from invasion by the introduced kelp Undaria pinnatifida. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.35162.75205

Kutti, T., Hansen, P.K., Ervik, A., Høisæter, T., Johannessen, P., 2007. Effects of organic effluents from a salmon farm on a fjord system. II. Temporal and spatial patterns in infauna community composition. Aquaculture 262, 355–366. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.10.008

Levin, P.S., Coyer, J.A., Petrik, R., Good, T.P., 2002. Community-Wide Effects of Nonindigenous Species on Temperate Rocky Reefs. Ecology 83, 3182–3193. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[3182:CWEONS]2.0.CO;2

Lobban, CS & Harrison, PJ, 1997. Écologie et physiologie des algues. Cambridge : Cambridge University Press.

McKenzie, C. H.; Reid, V.; Lambert, G.; Matheson, K.; Minchin, D.; Pederson, J.; Brown, L.; Curd, A.; Gollasch, S.; Goulletquer, P.; Occhipinti-Ambrogi, A.; Simard, N.; And Therriault, T. W. (Eds.), 2017. Alien Species Alert: Didemnum vexillum Kott, 2002: Invasion, impact, and control. https://doi.org/10.17895/ICES.PUB.2138

OFB & UICN France. 2021.a Botrylloides violaceus. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.b Styela clava. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

OFB & UICN France. 2021.c Watersipora subatra. Base d'information sur les espèces exotiques envahissantes. Centre de ressources Espèces exotiques envahissantes. UICN France et Office français de la biodiversité.

Ohno & Mizuta., 2005. Undaria pinnatifida. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

O'Riordan R., 2009. Austrominius modestus. In: Invasive Species Compendium. Wallingford, UK: CAB International. www.cabi.org/isc.

Pisanu, B., Massé, C., Thévenot, J., Bachelet, G., Bierne, N., Curd, A., Guérin, L., Gouillieux, B., Labrune, C., Monteaudouin, X.D., Nowaczyk, A., Pezy, J., Raybaud, V., Viard, F., Vincent, D., Souquière, A., 2020. Proposition d'espèces non-indigènes pour les façades maritimes du territoire métropolitain à soumettre à réglementation. Archimer, archive institutionnelle de l'Ifremer.

Ramsay-Newton, C., Drouin, A., Hughes, A.R., Bracken, M.E.S., 2017. Species, community, and ecosystem-level responses following the invasion of the red alga Dasysiphonia japonica to the western North Atlantic Ocean. Biol Invasions 19, 537–547. https://doi.org/10.1007/s10530-016-1323-y