# Revue Analytique des Maladies Fongiques Affectant la Production du Haricot Vert (Phaseolus vulgaris)

Édouard Cocou Goudjo

Doctorant en Phytopathologie, Protection des Végétaux et Physiologie Végétale, Département de Biologie Végétale, Faculté des sciences et techniques de l'Université d'Abomey Calavi- (FAST-UAC), Bénin

Hervé Banemane Soura

Docteur en Phytopathologie et Physiologie végétale, Institut Supérieur du Développement Durable, Université de Fada N'Gourma, Burkina Faso

Claude Kouassi Gnacadja

Docteur en Biotechnologie Alimentaire, Laboratoire d'Analyse des Aliments, Agence Gabonaise de Sécurité Alimentaire, Libreville (GABON)

Beatrice Michaela Iacomi

Professeure Associée, Maître Conférence en Pathologie Végétale, Département de Protection des Plantes, Faculté d'Agriculture, Université de Sciences Agricole et Medécine Vétérinaire de Bucarest (Roumanie)

Farid Abdel-Kader Baba-Moussa

Professeur Titulaire de Microbiologie et de Technologie Alimentaire, Département de Biologie Végétale, Faculté des sciences et techniques de l'Université d'Abomey Calavi- (FAST-UAC), Bénin

André Simplice Léopold Gnancadja

Professeur Titulaire en Pathologie Végétale et Physiologie Végétale, Département de Biologie Végétale, Faculté des Sciences et Techniques de l'Université d'Abomey Calavi- (FAST-UAC), Bénin

Doi:10.19044/esj.2023.v19n36p67

Submitted: 01 November 2023

Accepted: 15 December 2023

Published: 31 December 2023

Copyright 2023 Author(s)

Under Creative Commons CC-BY 4.0

OPEN ACCESS

Cite As:

Goudjo E.C., Soura H.S., Gnacadja C.K., Iacomi B.M., Baba-Moussa F.A.K. & Gnancadja A.S.L. (2023). *Revue Analytique des Maladies Fongiques Affectant la Production du Haricot Vert (Phaseolus vulgaris)*. European Scientific Journal, ESJ, 19 (36), 67.

https://doi.org/10.19044/esj.2023.v19n36p67

Résumé

Le haricot vert (Phaseolus vulgaris), largement consommé au Bénin et en Afrique de l'Ouest offre des avantages nutritionnels significatifs en tant que
source potentielle de protéines, de calories, de vitamines et de minéraux, suscitant un intérêt pour le marché mondial. Cependant, malgré ses atouts, sa production est confrontée à diverses contraintes. Cette revue analytique, basée sur des données de la littérature nationale et internationale dresse un état des lieux des contraintes biotiques liées à la production du haricot vert. De façon spécifique, la revue a permis d'inventorier toutes les maladies fongiques du haricot vert et d'identifier leurs méthodes de gestion. La rédaction de cette revue s'appuie sur une recherche bibliographique dans diverses bases de données de recherches. Les critères d'inclusion se concentrent sur les maladies fongiques et leurs méthodes de contrôle, excluant les données relatives aux maladies bactériennes, virales ainsi qu'aux bioagresseurs tels que les insectes, les acariens et les nématodes. Les résultats de cette étude révèlent que les agents phytopathogènes sont prédominants, entrainant des pertes de rendement pouvant atteindre 100%. L'application des mesures prophylactiques, combinée à l'intégration des méthodes de luttes biologique, culturale, génétique et chimique offrent une gestion efficace des agents phytopathogènes. En conclusion, des perspectives de recherches, axées sur l'épidémiologie et les méthodes de luttes, sont nécessaires pour réduire la dépendance du Bénin à l'importation venant de pays voisins.

**Mots-clés:** Contraintes biotiques, pathogènes fongiques, méthodes de gestion, haricot commun, Bénin
# Analytical Review of Fungal Diseases Affecting Green Bean (Phaseolus vulgaris) Production

Édouard Cocou Goudjo

Doctorant en Phytopathologie, Protection des Végétaux et Physiologie Végétale, Département de Biologie Végétale, Faculté des sciences et techniques de l'Université d'Abomey Calavi- (FAST-UAC), Bénin.

Hervé Banemane Soura

Docteur en Phytopathologie et Physiologie végétale, Institut Supérieur du Développement Durable, Université de Fada N'Gourma, Burkina Faso

Claude Kouassi Gnacadja

Docteur en Biotechnologie Alimentaire, Laboratoire d'Analyse des Aliments, Agence Gabonaise de Sécurité Alimentaire, Libreville (GABON)

Beatrice Michaela Iacomi

Professeure Associée, Maître Conférence en Pathologie Végétale, Département de Protection des Plantes, Faculté d'Agriculture, Université de Sciences Agricole et Medécine Vétérinaire de Bucarest (Roumanie)

Farid Abdel-Kader Baba-Moussa

Professeur Titulaire de Microbiologie et de Technologie Alimentaire, Département de Biologie Végétale, Faculté des sciences et techniques de l'Université d'Abomey Calavi- (FAST-UAC), Bénin

André Simplice Léopold Gnancadja

Professeur Titulaire en Pathologie Végétale et Physiologie Végétale, Département de Biologie Végétale, Faculté des Sciences et Techniques de l'Université d'Abomey Calavi- (FAST-UAC), Bénin

## Abstract

The Green beans (Phaseolus vulgaris) widely consumed in Benin and West Africa, offers significant nutritional benefits as a potential source of protein, calories, vitamins and minerals, generating interest in global market. However, despite its advantages, its production faces various constraints. This analytical review, based on data from national and international literature, provides an overview of the biotic constraints related to green beans production. Specifically, the review inventoried all fungal diseases of green beans and identified their management methods. The compilation of this review relies on a bibliographic search in various research databases. Inclusion criteria focused on fungal diseases and their control methods excluding data on bacterial and viral diseases and bio-aggressors such as insects, mites and nematodes. The results of this study reveal that phytopathogenic agents are predominant, leading to yield losses of up to 100%. The application of
prophylactic measures, combined with the integration of biological, cultural, genetic, and chemical control methods, offers effective management of phytopathogenic agents. In conclusion, research perspectives focused on epidemiology and control methods are necessary to reduce Benin's dependence on imports from neighboring countries.

**Keywords:** Biotic constraints, fungal pathogens, management methods, common bean, Benin

## Introduction

Le haricot commun (*Phaseolus vulgaris*) constitue une légumineuse à graine originaire des régions tempérées et tropicales d'Amérique, d'Afrique et d'Asie (Wortmann, 2006). Il revêt une importance majeure en tant que légume directement consommé, etant la principale source alimentaire de légumineuses pour plus de 300 millions d'individus en Amérique latine, en Afrique Centrale et de l'Est (Godderis, 1995). A l'échelle mondiale, Il se positionne en tant que deuxième source de calories après le maïs (Broughton *et al.*, 2003).

En Afrique, la culture du haricot commun est présente dans diverses zones agro-écologiques à haute et moyenne altitude (Snapp *et al.*, 2018). Des millions de petits agriculteurs dans les pays en développement le considère comme un aliment essentiel dans la lutte contre la malnutrition (Meziadi *et al.*, 2016). En Afrique de l'Ouest, les principaux pays producteurs sont le Niger (Hassane, 2008), le Mali (Sidibe *et al.*, 2020), le Burkina Faso (Kambou *et al.*, 2019), et la Cote d'Ivoire (Brou *et al.*, 2018). Au Bénin, la culture est principalement réservée aux petits agriculteurs, qui l'associent avec d'autres cultures pour l'autoconsommation (Akouègninou *et al.*, 2006).

Le haricot commun est cultivé principalement en raison de sa richesse en protéines (20% à 25%) (Celmeli *et al.*, 2018), en fer et en fibres (Baudouin *et al.*, 2001 ; Nyabyenda, 2005) ainsi qu'en zinc, fibres, carbohydrates lents et vitamines (Pabra, 2013). Malgré son importance nutritionnelle, la production de haricot commun est confrontée à diverses contraintes biotiques principalement causées par des champignons (Meziadi *et al.*, 2016 ; Martins *et al.*, 2018), des bactéries (Djeugap *et al.*, 2014 ; Mbeugang *et al.*, 2017) et des virus (Mwaipopo *et al.*, 2018). C'est dans ce contexte que s'inscrit le présent travail, qui vise à dresser un état des lieux de la culture du haricot commun en vue de comprendre l'impact des contraintes biotiques liées à sa production.

## Méthodologie

La rédaction de cette revue s'est appuyée sur une recherche bibliographique exhaustive menée dans plusieurs bases de données, notamment Thèse.fr, Science Direct, Mémoire Online, Agora, Hal, Archives
Ouvertes, Web of Sciences, Google Scholar, et Hinari. Des termes clés tels que "Phaseolus vulgaris," "Common bean," "french bean," "maladies bactériennes, fongiques, virales," et "méthodes de lutte" ont été employés pour cibler les publications pertinentes.

Les études incluses couvrent des investigations réalisées en plein champ, en serre, ainsi que celles se penchant sur les approches influençant le rendement des cultures et la gestion des pathogènes. Au total, 306 publications scientifiques pertinentes, en lien avec les contraintes de la production du haricot vert, ont été collectées, traitées, et catégorisées en fonction des régions d'étude et des thèmes de recherche. Les critères d'inclusion se sont concentrés sur les maladies fongiques et les méthodes de contrôle, excluant ainsi les données relatives aux maladies bactériennes, virales, ainsi qu'aux bioagresseurs du haricot vert, tels que les insectes, les acariens, et les nématodes.

## Résultats

### 1. Synthèse des données des 306 publications scientifiques relatives aux maladies du haricot vert (Phaseolus vulgaris) utilisées pour la revue.

L'analyse de la synthèse des données issues de publications scientifiques a révélé trois principaux axes de distribution. Le premier axe a exposé la répartition géographique des publications sur les maladies du haricot vert, mettant en évidence que l'Amérique (45,75%) prédomine, suivie par (21,24%), l'Europe (15,68%), l'Afrique (14,70%) et l'Australie (2,61%) (Figure 1).

Par ailleurs, le deuxième axe de distribution a émergé des publications se rapportant aux principaux groupes de maladies phytopathogènes. La recherche sur les maladies du haricot vert s'est principalement concentrée sur les maladies fongiques, représentant la majorité avec 70,26% suivies des maladies virales (16,66%) et des maladies bactériennes (13,07%) (Figure 2). Enfin, le troisième axe a dévoilé la distribution des publications en fonction des thèmes de recherche explorés par les auteurs. En ce qui concerne les maladies fongiques du haricot commun, la recherche s'est particulièrement orientée vers les méthodes biologiques de gestion des agents pathogènes (25,18%), suivies par les approches génétiques (20,58%). Les caractérisations occupent la troisième position (18,30%) suivie par l'étude de l'incidence, de la sévérité et de la résistance (16,99%), l'identification des pathogènes (10,78%) et la lutte chimique contre les maladies (7,51%).
<figure><img src="image_1.png" /><figcaption>**Figure 1.** Répartition des publications scientifiques en fonction des zones d'étude</figcaption></figure>

<figure><img src="image_2.png" /><figcaption>**Figure 2.** Répartition des publications scientifiques en fonction des maladies</figcaption></figure>

<figure><img src="image_3.png" /><figcaption>**Figure 3.** Répartition des publications scientifiques en fonction des différentes thématiques de recherches</figcaption></figure>
Le tableau 1 ci-dessous présente une synthèse de la liste des affections fongiques du haricot vert. L'analyse de ce tableau met en lumière une diversité de maladies fongiques associées à la culture du haricot vert, répertoriant ainsi une vingtaine de pathogènes fongiques liée à cette culture.

<table><caption>**Tableau I.** Récapitulative des maladies et des champignons phytopathogènes du haricot vert.</caption><thead><tr><td>N°</td><td>Noms maladies</td><td>Agent causal</td><td>Références</td></tr></thead><tbody><tr><td>01</td><td>Anthracnose</td><td>Colletotrichum lindemuthianum</td><td>Veloz-García et al., 2010</td></tr><tr><td>02</td><td>Fusarium root rot</td><td>Fusarium solani f. sp. Phaseoli</td><td>Mukuma et al., 2020</td></tr><tr><td>03</td><td>Brown rot</td><td>Rhizoctonia solani</td><td>Paparu et al., 2017</td></tr><tr><td>04</td><td>Sclerotinia root rot</td><td>Sclerotium rolfsii</td><td>Ferreira et al., 2020</td></tr><tr><td>05</td><td>Charcoal rot</td><td>Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. (syn Tiarosporella phaseolina (Tassi))</td><td>Díaz-Díaz et al., 2022</td></tr><tr><td>06</td><td>Pythian Root Rot</td><td>Pythium ultimum (P. ultimum var. ultimum)</td><td>Nzungize et al., 2011</td></tr><tr><td>07</td><td>Vascular fusarium disease</td><td>Fusarium oxysporum f. sp. Phaseoli</td><td>Kouame et al., 2021</td></tr><tr><td>08</td><td>Angular leaf spot</td><td>Phaeoisariopsis griseola (Sacc.) (syn: Pseudocercospora griseola)</td><td>Degu et al., 2020;</td></tr><tr><td>09</td><td>American powdery mildew</td><td>Erysiphe polygoni</td><td>Deng et al., 2022</td></tr><tr><td>10</td><td>Rust</td><td>Uromyces appendiculatus</td><td>Acevedo et al., 2013</td></tr><tr><td>11</td><td>Choanephora rot</td><td>Choanephora cucurbitarum</td><td>Berton et al., 2019</td></tr><tr><td>12</td><td>Myrothecium lesions</td><td>Myrothecium roridum Tode</td><td>Blancard, 2021; Iqbal et al., 2021</td></tr><tr><td>13</td><td>Black root rot</td><td>Berkeleyomyces basicola (syn. Thielaviopsis basicola; Chalara elegans)</td><td>Lessard et Tousignant, 2021</td></tr><tr><td>14</td><td>Corynesporiosis</td><td>Corynespora cassiicola</td><td>Blancard, 2021</td></tr><tr><td>15</td><td>Cercosporiosis</td><td>Cercospora canescens</td><td>Berton, 2019</td></tr><tr><td>16</td><td>White rot</td><td>Sclerotinia sclerotiorum</td><td>Gebily et al., 2021</td></tr><tr><td>17</td><td>Ascochyosis</td><td>Ascochyta phaseolarum</td><td>Koder et al., 2022</td></tr><tr><td>18</td><td>Mealy stains</td><td>Mycovellosiella phaseoli (syn. Ramularia phaseoli)</td><td>Milognon et al., 2020;</td></tr><tr><td>19</td><td>Alternariosis</td><td>Alternaria alternata</td><td>Govardhani et al., 2022</td></tr><tr><td>20</td><td>Gray mold</td><td>Botrytis cinerea</td><td>Aktaruzzaman et al., 2017</td></tr></tbody></table>

## 2. Maladies fongiques

### 2.1 Anthracnose

L'anthracnose une maladie endémique touchant de nombreuses espèces de légumineuses et de solanacées, est causée par le champignon *Colletotrichum lindemuthianum*. Décrite pour la première fois sur les haricots en 1875 par Lindemuth en Allemagne, cette maladie induit des lésions sur toutes les parties aériennes de la plante. Au niveau des feuilles, des taches allongées de teintes foncées (violettes, rouges ou brunes) se forment
principalement sur la face inférieure. Les tiges infectées présentent une fragilité accrue à un stade avancé de l'infection accompagnée de taches ovales noires allongées. Sur les gousses, les lésions adopte la forme de taches circulaires qui s'approfondissent rapidement vers leur centre, prenant une teinte brun fauve consécutive à la désintégration des tissus du péricarpe (Photo 1) (Veinnot-Bourgin, 1949). Les conductions favorables à l'infection des plantes et la propagation de la maladie comprennent des températures basses oscillant entre 14°C et 24°C, ainsi qu'une forte humidité. Cette maladie peut entraîner des pertes de rendement pouvant atteindre jusqu'à 90% (Sharma *et al.*, 2008). Le contrôle de l'anthracnose peut être effectué par l'utilisation de semences issues de variétés résistantes et d'extraits de plantes (Veloz-García *et al.*, 2010).

<figure><img src="image_4.png" /><figcaption>**Photo 1.** Symptômes de l'anthracnose sur les gousses de haricot vert www.topcropmanager.com</figcaption></figure>

## 2.2 Pourriture Fusarienne des Racines

La pourriture fusarienne des racines résulte de l'infection par le champignon *Fusarium solani f. sp. Phaseoli*, appartenant à l'embranchement des Ascomycota. Elle se caractérise par l'apparition de stries étroites, longues, de couleur rouges à brunes, observées sur la racine pivotante et l'hypocotyle des plantules matures. A stade avancé de l'infection, les plantes manifestent un aspect pâles, un développement rabougri, entrainant une croissance lente et des peuplements irréguliers (Photo 2) (Abawi et Pastor-Corrales, 1990). Les dommages infligés par le *Fusarium solani f. sp. Phaseoli* sont généralement plus importants dans les conditions environnementales suivantes telles que le semis profond, le compactage du sol, les températures fraîches, les variations du pH du sol, une faible fertilité, les dégâts causés par les pesticides ou les engrais, ainsi que les périodes d'inondations ou de sécheresse prolongée. Les pertes de rendement imputables à la pourriture fusarienne des racines peuvent atteindre jusqu'à 84 % (Schneider *et al.*, 2001) et peuvent être atténuées par des approches de lutte biologique, notamment l'utilisation de biopesticides (Kouamé *et al.*, 2021). Par ailleurs, les champignons du genre *Trichoderma* sp. exercent également une influence significative sur le pathogène (Boat *et al.*, 2019).
<figure><img src="image_5.png" /><figcaption>**Photo 2.** Symptômes de *Fusarium solani*. sp. phaseoli sur le haricot vert (Mukankusi, 2008)</figcaption></figure>

## 2.3 Pourriture brune

La pourriture brune constitue une pathologie fongique par le champignon *Rhizoctonia solani*. Les manifestations de la maladie se traduisent par le développement d'une fine toile mycélienne à la surface des feuilles et des gousses. Les feuilles présentent de grandes taches nécrotiques semblables à des brûlures, suivies d'une pourriture molle et de la formation de pseudo-sclérotes blanchâtres (Photo 3). Des conditions caractérisées par une humidité relative élevée et des variations de température comprises entre 20 et 30°C favorisent le développement de cette maladie. Rhizoctonia solani peut entraîner une réduction des rendements pouvant atteindre jusqu'à 100% (Otsyula *et al.*, 2003). La gestion de la pourriture brune peut être réalisée au moyen de l'utilisation de variétés résistantes, d'extraits de plantes, ainsi que de l'application de rhizobactéries (Ferreira *et al.*, 2020).

<figure><img src="image_6.png" /><figcaption>**Photo 3.** Symptômes de *Rhizoctonia solani* sur les feuilles de haricot vert (Chavez-Garcia *et al.*, 2022)</figcaption></figure>

## 2.4 Pourriture sclérotique des racines

La pourriture sclérotique des racines est engendrée par l'agent pathogène *Sclerotium rolfsii*, un organisme largement répandu à l'échelle mondiale, tant dans les régions tempérées que dans les zones tropicales, et caractérisé par une grande polyphagie. *Sclerotium rolfsii* est responsable de la fonte des semis chez les jeunes plants et de la pourriture du collet chez les
plantes hôtes plus matures (Photo 4). Dans des conditions climatiques et/ou
édaphiques propices, un mycélium dense et blanchâtre envahit les parties
malades, exposant ainsi les sclérotes (Blancard, 2009). *Sclerotium rolfsii*, en
tant que champignon ubiquiste, se développe sur une plage étendue de
températures (837°C, avec une croissance optimale entre 25°C et 30°C). La
sévitéré de l'infection par *Sclerotium rolfsii* peut entraîner des pertes de
rendement atteignant jusqu'à 100% sur les variétés sensibles (Paparu *et al.*,
2017). Diverses méthodes de gestion sont disponibles pour maîtriser cet agent
pathogène de la pourriture sclérotique, comprenant l'utilisation de variétés
résistantes ainsi que des approches de lutte biologique telles que l'emploi
d'extraits de plantes (Ferreira *et al.*, 2020).

<figure><img src="image_7.png" /><figcaption>**Photo 4.** Symptômes d'une plante attaquée par *Sclerotium rolfsii* ; A: Symptôme typique d'une plante infectée morte au champ, B: Symptômes à la suite d'une inoculation (Kwon *et al.*, 2012)</figcaption></figure>

2.5 Pourriture charbonneuse

La pourriture charbonneuse est une maladie fongique provoquée par le
pathogène tellurique *Macrophomina phaseolina* (Tassi) Goid (syn.
*Tiarosporella phaseolina* (Tassi)). En raison de sa polyphagie marquée, ce
pathogène est largement répandu à l'échelle mondiale et induit des atteintes
aux tiges, aux racines et aux semis des plantes. *Macrophomina phaseolina* est
capable d'infecter les plantes à tous les stades de leur croissance. Les
symptômes se manifestent par des lésions nécrotiques de teinte beige sur les
tiges et des taches brunes à foncées sur les feuilles (Photo 5). À un stade
avancé de l'infection, les tissus deviennent gris, recouverts de petites
ponctuations noires abondantes, et le champignon pénètre dans les gousses
avant de coloniser les graines à partir des pédoncules. Les pertes de rendement
attribuables à *Macrophomina phaseolina* peuvent atteindre de 80 à 100%
(Díaz-Díaz *et al.*, 2022). La gestion de la pourriture charbonneuse peut être
effectuée par l'utilisation de variétés résistantes et la mise en œuvre de la lutte
biologique, impliquant notamment la microflore rhizosphérique, notamment
des espèces bactériennes telles que Bacillus spp (Yolani *et al.*, 2021).
<figure><img src="image_8.png" /><figcaption>**Photo 5.** Symptômes de *Macrophomina phaseolina* sur le haricot vert www.forestryimages.org</figcaption></figure>

## 2.6 Pourriture Pythienne des Racines

La Pourriture Pythienne des racines est une maladie fongique occasionnée par un champignon du genre Pythium, faisant partie de la famille des Pythiaceae et de l'ordre des Pythiales. Le champignon en question, *Pythium ultimum* var. ultimum, est responsable de la fonte des semis et peut affecter soit les racines, soit la partie de la tige proche du niveau du sol ou du substrat, entraînant un phénomène d'étranglement (Photo 6). Les différentes espèces de *Pythium* se développent dans des conditions édaphiques variées, nécessitant des paramètres spécifiques de développement tels que des températures chaudes comprises entre 25 et 36°C, ainsi qu'un sol maintenu humide. En cas de conditions favorables, la pourriture pythienne peut entraîner des pertes de rendement atteignant jusqu'à 100% sur les variétés sensibles (Abawi et Corrales, 1990). La maîtrise de l'agent pathogène responsable de la pourriture pythienne peut être assurée par l'emploi de variétés résistantes (Nzungize et al., 2011), l'utilisation de produits chimiques, ainsi que le recours à des agents de lutte biologique tels que *Trichoderma* spp. et *Gliocladium* spp.

<figure><img src="image_9.png" /><figcaption>**Photo 6.** Symptômes de l'inoculation de *Pythium* sur les racines ; A: racines de haricot vert avec symptômes B: racines de haricot vert sans Symptômes (Nzungize et al., 2011)</figcaption></figure>

## 2.7 Fusariose vasculaire

La fusariose vasculaire constitue une maladie cryptogamique spécifique aux haricots, attribuable au champignon *Fusarium oxysporum* f. sp.
*phaseoli*. Les symptômes de cette maladie se manifestent sur l'ensemble des organes de la plante. Initialement, sur les feuilles, la fusariose vasculaire se traduit par un discret jaunissement des feuilles basales, suivi d'une sénescence prématurée (Photo 7). Le jaunissement progresse ensuite vers les autres feuilles à mesure que la maladie se propage dans le système vasculaire des racines et du collet. Ce processus aboutit à la nécrose du feuillage, qui prend une teinte allant du beige au brun. Au niveau de la tige, du collet, et des racines, le système vasculaire acquiert une coloration rougeâtre à brunâtre. Les plantes infectées présentent ultérieurement un ralentissement de la croissance, un flétrissement, et parfois des cas de mortalité. Fusarium oxysporum f. sp. *phaseoli* peut entraîner des réductions de rendement allant jusqu'à 80% (Schwartz *et al.*, 2005). Le contrôle du pathogène responsable de la fusariose vasculaire peut être assuré par l'utilisation de semences issues de variétés résistantes, l'application de biopesticides (Kouamé *et al.*, 2021), et l'emploi d'agents de contrôle biologique.

<figure><img src="image_10.png" /><figcaption>**Photo 7.** Symptômes de la fusariose vasculaire sur le haricot vert www.greenlife.co.ke</figcaption></figure>

## 2.8 Tache angulaire

L'agent causal de la tache angulaire est *Phaeoisariopsis griseola* (Sacc.) (syn : *Pseudocercospora griseola*), un champignon largement répandu dans les zones tropicales où l'on cultive des haricots communs. L'infection se manifeste par la formation de lésions sous forme de taches brunes, marron clair, ou argentées sur l'ensemble de la partie aérienne de la plante, notamment les feuilles, les pétioles, les tiges, et les gousses (Photo 8). Cette infection fongique est reconnue comme une maladie grave affectant les haricots dans de nombreuses régions. *Phaeoisariopsis griseola* peut infecter divers types de haricots, tels que les haricots communs, les haricots de Lima, les haricots d'Espagne, les haricots mungo, les haricots à œil noir, et même les pois. Une infection par ce champignon peut entraîner d'importantes pertes de rendement, pouvant atteindre jusqu'à 80% dans les pays tropicaux et subtropicaux (Muthomi *et al.*, 2011). La gestion de *Phaeoisariopsis griseola* peut être assurée par l'utilisation de semences provenant de variétés résistantes, et
l'application de fongicides peut contrôler efficacement la tache angulaire (Paparu *et al.*, 2014).

<figure><img src="image_11.png" /><figcaption>**Photo 8.** Symptômes de *Phaeoisariopsis griseola* sur *Phaseolus vulgaris*
www.apps.lucidcentral.org</figcaption></figure>

## 2.9 Oïdium américain

L'oïdium américain, l'une des maladies fongiques les plus fréquentes touchant divers types de haricots, est provoqué par le pathogène *Erysiphe polygoni*. Cette maladie peut affecter toutes les parties aériennes des plantes de haricots. Les premiers symptômes se manifestent par de petites taches blanches ou grisâtres sur la face supérieure des feuilles. Dans des cas d'infection sévère, les feuilles affectées peuvent progressivement se déformer vers le bas, mourir, et finalement tomber (Photo 9) (Schwartz *et al.*, 2005). Toutefois, des taches d'oïdium peuvent également apparaître sur les gousses de haricots mange-tout. Les conditions environnementales optimales pour le développement de l'oïdium sont généralement des températures modérées (15°C à 27°C) et des conditions ombragées. Bien que l'agent pathogène ne soit rarement responsable de dommages majeurs, certaines variétés peuvent subir des pertes de rendement significatives, allant jusqu'à 69% (Schwartz *et al.*, 2005). La gestion de l'oïdium peut être réalisée en mettant en œuvre plusieurs mesures prophylactiques, notamment la culture de variétés résistantes en plein soleil. Par ailleurs, l'adoption de bonnes pratiques culturales et l'application de fongicides peuvent être des approches efficaces pour prévenir, protéger, ou éradiquer l'oïdium.

<figure><img src="image_12.png" /><figcaption>**Photo 9.** Symptômes de l'oïdium sur le haricot vert www.growveg.com</figcaption></figure>
## 2.10 Rouille

La rouille est une maladie fongique attribuable au champignon basidiomycète *Uromyces appendiculatus*, un parasite obligatoire d'une grande virulence et largement répandu, affectant diverses variétés de haricots en ciblant leurs feuilles et leurs gousses. Les symptômes caractéristiques de la rouille se manifestent par de petites pustules blanchâtres, arrondies, mesurant entre 0,25 et 1 mm de diamètre, présentes des deux côtés du limbe, sur les pétioles et sur les gousses. *Uromyces appendiculatus* cible une gamme étendue de plantes. Les conditions optimales pour le développement du pathogène comprennent des zones fraîches avec des températures modérées, oscillant entre 17°C et 22°C, alternant avec une humidité élevée dépassant 95% (Khouader *et al.*, 2013). Cette maladie peut entraîner des pertes de rendement dépassant 50% chez le haricot commun, mais lorsque les conditions sont particulièrement propices au développement de la maladie, les pertes de rendement peuvent atteindre 100% (Acevedo *et al.*, 2013). La gestion de la rouille peut être effectuée par l'utilisation de cultivars résistants. *Trichoderma asperellum* est également employé dans des stratégies de lutte biologique contre *Uromyces appendiculatus* (CruzTriana *et al.*, 2018).

<figure><img src="image_13.png" /><figcaption>**Photo 10.** Symptômes d'*Uromyces appendiculatus* sur haricot vert www.invasive.org</figcaption></figure>

## 2.11 La pourriture de Choanephora

La pourriture de Choanephora est une maladie fongique attribuable au champignon *Choanephora cucurbitarum*, engendrant des nécroses sur les feuilles et les gousses (Photo 11). Pendant la phase de fructification, des têtes d'épingle noires se forment sur les gousses. *Choanephora cucurbitarum* est un champignon opportuniste, fréquemment observé sur des organes blessés, excessivement mûrs, ou floraux (Berton, 2019). Les mesures prophylactiques contre ce champignon incluent l'évitement de l'irrigation par aspersion en fin de journée, l'élimination des fleurs et des fruits pourris pendant la culture, l'orientation des rangs selon la direction des vents dominants, et le maintien d'un espacement adéquat entre les plantes pour favoriser une ventilation optimale dans la parcelle (Berton, 2019).
<figure><img src="image_14.png" /><figcaption>**Photo 11.** Symptôme de *Choanephora cucurbitarum* sur haricot vert (Berton, 2019).</figcaption></figure>

## 2.12 Lésions à Myrothecium

La lésion à Myrothecium est une maladie cryptogamique causée par le champignon *Myrothecium roridum Tode* (1790). En tant que parasite facultatif et polyphage, *M. roridum* peut induire des symptômes sur les feuilles, les tiges, et les fruits. Sur les feuilles, les symptômes se manifestent sous la forme de taches concentriques brunes à foncées qui fusionnent. Sur les tiges, des lésions plus ou moins cancéreuses peuvent se former. Des altérations surviennent sur les fruits avant et après la récolte (Photo 12). Sur les parties affectées, *M. roridum* produit des masses discrètes grisâtres à noires (sporodochies). Le champignon peut persister dans le sol sous forme saprophyte sur la matière organique. La conservation et la dissémination de *M. roridum* se font via les graines. Son développement est favorisé par des conditions climatiques chaudes et humides, avec une germination optimale de ses conidies à 28°C (Blancard, 2021). Pour contrer *M. roridum*, il est recommandé d'utiliser des semences saines ou de les désinfecter. L'élimination des plantes et des fruits malades, ainsi que des débris végétaux, est essentielle. Des traitements fongicides sont préconisés pendant la période de floraison (Blancard, 2021).

<figure><img src="image_15.png" /><figcaption>**Photo 12.** Symptôme de *Myrothecium roridum* sur haricot vert (Berton, 2019)</figcaption></figure>
## 2.13 Pourriture noire des racines

Berkeleyomyces basicola (Berkeley & Broome) (syn. Thielaviopsis basicola [Berk. & Br.] Ferraris) (syn. Chalara elegans) est un champignon Ascomycète appartenant à la famille des Ceratocystidaceae. Il affecte divers hôtes, en particulier les plantes ornementales telles que le bégonia, le cyclamen, le fuchsia, la gerbera, la pensée, le poinsettia, ainsi que des légumes tels que la carotte, le concombre, le haricot, le pois, et la tomate. Les symptômes incluent le jaunissement, la défoliation, le rabougrissement, et le flétrissement des feuilles (Photo 13). Au niveau du collet, des fissures longitudinales noires, un gonflement, et une pourriture noire sont observés. Les racines présentent de petites lésions rouges à brunes formant des zones irrégulières de 3 à 20 mm de diamètre, réparties de manière aléatoire sur l'épiderme, évoluant ensuite vers une coloration noire. Le champignon Thielaviopsis basicola survit pendant plusieurs années dans les sols ou les résidus de culture sous forme de chlamydospores, avec une germination optimale à 25°C et dans un sol ayant un pH compris entre 5,0 et 8,5 (Lessard & Tousignant, 2021). Des mesures prophylactiques rigoureuses doivent être mises en œuvre pour prévenir son développement. Pour la production en serre, il est essentiel d'acquérir du matériel végétal sain, d'éviter la réutilisation du matériel contaminé, de prévenir le stress hydrique, la fertilisation excessive, et les basses températures du sol. Le maintien du pH du sol à 5,6, l'élimination et la destruction du matériel infecté, la stérilisation de l'équipement, et le contrôle des insectes sont également recommandés (Lessard & Tousignant, 2021).

<figure><img src="image_16.png" /><figcaption>**Photo 13.** Symptôme de *Chalara elegans* sur haricot vert www.iiriphyto.com</figcaption></figure>

## 2.14 Corynesporiose

La Corynesporiose est une maladie fongique engendrée par le champignon *Corynespora cassiicola*, largement répandu à l'échelle mondiale. Ce champignon, très polyphage, est identifié sur des Cucurbitaceae dans de nombreux pays tropicaux ou subtropicaux humides, avec une fréquence plus élevée sur le melon, bien que ses dommages soient moindres dans ce cas. *Corynespora cassiicola* peut persister de manière prolongée sur des débris végétaux, survivant pendant plus de deux ans. Les symptômes de *Corynespora cassiicola* se manifestent par des taches chlorotiques, plus ou moins délimitées
par les nervures, sur le limbe des feuilles matures (Photo 14). Ces taches s'étendent, prennent une forme circulaire, et évoluent rapidement pour adopter une teinte brun clair au centre et plus foncée à la périphérie. Des pluies abondantes, des périodes prolongées d'humidité, et des températures variant de 24 à 31°C, avec une optimum autour de 28°C, favorisent le développement du champignon (Blancard, 2021). La gestion de la corynesporiose implique l'application de mesures prophylactiques. Il est recommandé de pratiquer des rotations culturales étendues avec des cultures non sensibles, d'éviter de nouvelles plantations à proximité de cultures affectées ou sensibles, et d'éliminer les vieilles feuilles malades au moment de la récolte, sans les laisser sur le sol (Blancard, 2021).

<figure><img src="image_17.png" /><figcaption>**Photo 14.** Symptômes de *Corynespora cassiicola* sur le haricot vert (Berton, 2019)</figcaption></figure>

## 2.15 *Cercosporiose*

La cercosporiose est une maladie fongique provoquée par le champignon *Cercospora* sp. Elle se caractérise par des taches nécrotiques circulaires, entourées d'un halo jaune, sur les feuilles (Photo 15). Ces lésions présentent un aspect rouillé sur la face supérieure du feuillage et se manifestent comme des zones nécrotiques sombres sur la face inférieure. De plus, la sporulation du champignon est souvent clairement observable sous le feuillage des haricots (Berton, 2019). Les champs gravement touchés par cette maladie peuvent subir des pertes de rendement pouvant atteindre jusqu'à 50 % (Pande et al., 2009). Des mesures prophylactiques sont préconisées, telles que l'évitement de l'irrigation par aspersion, surtout en fin de journée, l'utilisation de semences saines, l'élimination des feuilles des plantes infectées, et la promotion d'une ventilation adéquate dans le champ grâce à un espacement optimal entre les plantes (Berton, 2019).
<figure><img src="image_18.png" /><figcaption>**Photo 15.** Tache foliaire de *Cercospora* sp. sur haricots longs (Berton, 2019)</figcaption></figure>

## 2.16 Sclérotiniose

La sclérotiniose est une maladie fongique causée par le champignon *Sclerotinia sclerotiorum*. Elle se caractérise par des taches humides, molles, et irrégulières qui s'agrandissent rapidement dans des conditions fraîches et humides, conduisant à une pourriture sèche blanchâtre avec de larges cercles concentriques (Photo 16). Une plage de température entre 4 et 29°C, avec une température optimale située entre 20 et 24°C, favorise le développement de ces lésions. Dans des conditions favorables, l'agent causal de la sclérotiniose peut entraîner une réduction du rendement pouvant atteindre jusqu'à 100% (Ploper et al., 2016). La gestion de la sclérotiniose peut être réalisée en suivant des mesures prophylactiques telles que le maintien d'un bon drainage du sol, une densité de semis modérée, une fertilisation azotée raisonnable, le contrôle des mauvaises herbes qui retiennent l'humidité, et l'alternance avec des cultures non hôtes. L'utilisation de semences résistantes et l'application de l'agent de lutte biologique Streptomyces spp sont également recommandées (Gebily et al., 2021).

<figure><img src="image_19.png" /><figcaption>**Photo 16.** Plante attaquée par *S. sclerotiorum* www.panprama-agro.com</figcaption></figure>

## 2.17 Ascochytose

L'ascochytose est une maladie fongique provoquée par *Ascochyta phaseolarum*. Elle se caractérise par des lésions noires et concentriques d'un
diamètre de 1 à 3 cm (Photo 17). Cette maladie se manifeste généralement aux premiers stades de développement des gousses et s'intensifie à mesure qu'elles mûrissent (Liu *et al.*, 2016). Le champignon a la capacité de se propager de manière systémique dans la plante. Des variations de température comprises entre 16 et 24°C, associées à une humidité élevée, sont des conditions propices au développement de ce champignon. Les pertes de rendement peuvent atteindre jusqu'à 75 % (Schwartz *et al.*, 1981). La gestion de l'Ascochytose nécessite une approche intégrée combinant des méthodes culturales, chimiques et biologiques (Buruchara, 2006). Cependant, l'utilisation de variétés résistantes demeure une stratégie de gestion particulièrement efficace contre cette maladie.

<figure><img src="image_20.png" /><figcaption>**Photo 17.** Taches des Ascochyta sur le haricot (Koder, 2022) ; (A) Anneaux concentriques sur une marge sombre sur les feuilles de haricots montrent des anneaux concentriques avec une marge sombre, (B) Tache sur des gousses de haricot.</figcaption></figure>

## 2.18 Taches farineuses

Les taches farineuses représentent une maladie fongique causée par *Mycovellosiella phaseoli* (syn. *Ramularia phaseoli*). Elle se caractérise par des taches jaunes diffuses qui peuvent évoluer en nécroses brunâtres et irrégulières sur la face supérieure des feuilles (Photo 18). Ces lésions se distinguent par un duvet blanc abondant recouvrant leur surface inférieure, constituant les fructifications du champignon et conférant à la maladie un aspect farineux caractéristique. Actuellement, peu d'informations sont disponibles sur l'épidémiologie et la survie du champignon responsable de cette maladie, bien que sa dissémination soit favorisée par le vent. Les zones d'altitude intermédiaire, situées entre 1 000 et 1 400 mètres, sont propices au développement de cette maladie. Les mesures de lutte contre cette maladie ne sont pas encore clairement définies, mais l'utilisation de variétés résistantes adaptées aux conditions écologiques des zones endémiques est recommandée. Des produits chimiques tels que le bénomyl (500 g m.a./ha), le thiophanateméthyl (500 g m.a./ha) et le mancozèbe (2 000 g m.a./ha) ont démontré une protection efficace. De plus, des pratiques prophylactiques telles que l'élimination des plantules issues de graines germées hors saison et la
sélection de graines saines au moment du semis peuvent être mises en œuvre
(Milognon *et al.*, 2020).

<figure><img src="image_21.png" /><figcaption>**Photo 18.** Symptôme de *Mycovellosiella phaseoli* sur la feuille d'un haricot vert www.forestryimages.org</figcaption></figure>

**2.19 **Alternariose****

L'alternariose représente une maladie fongique majeure affectant les haricots verts, causée par le champignon *Alternaria alternata* (Fr.) Keissler. Cette maladie est répandue dans les régions tempérées, tropicales et subtropicales (Govardhani *et al.*, 2022). Les symptômes initiaux de la maladie se manifestent par de petites lésions brunes irrégulières qui évoluent en vastes zones nécrotiques (Photo 19). La gestion d'** Alternaria alternata** implique diverses stratégies de lutte, comprenant des méthodes chimiques et biologiques, des pratiques agricoles, ainsi que l'utilisation de variétés résistantes. Parmi ces stratégies, l'application de *Trichoderma* spp. et de Bacillus subtilis se distingue comme une approche prometteuse dans le domaine de la lutte biologique (Govardhani *et al.*, 2022).

<figure><img src="image_22.png" /><figcaption>**Photo 19.** Symptômes d'**Alternaria alternata** sur une feuille et une gousse de haricot vert www.growingproduccom</figcaption></figure>

**2.20 **Pourriture grise****

*Botrytis cinerea* Pers. est un champignon ubiquiste et polyphage appartenant à la famille des Moniliaceae, causant la pourriture grise. Il peut
infecter plus de 230 espèces végétales, notamment des cultures crucales en
serre et en plein champ, telles que les pommes, les tomates, les fraises et les
haricots verts (Zhang *et al.*, 2015). *B. cinerea* engendre d'importantes pertes
économiques pour les haricots verts, tant au cours des périodes de croissance
que lors du stockage et du transport. Les symptômes de la pourriture grise se
caractérisent par des lésions grises gorgées d'eau, accompagnées d'un
mycélium blanc à grisâtre sur les feuilles et les gousses (Photo 20). La gestion
de la pourriture grise peut être assurée par l'usage de fongicides ou par
l'introduction d'agents de lutte biologique tels que *Trichoderma harzianum*
(Zhang *et al.*, 2015).

<figure><img src="image_23.png" /><figcaption>**Photo 20.** Symptômes de *B. cinerea* sur les feuilles de haricot vert (Nyabyenda *et al.*, 2005)</figcaption></figure>

Discussion

Le haricot vert (*Phaseolus vulgaris*), une légumineuse à graines, est exposé à diverses contraintes, notamment les maladies, comme d'autres légumineuses. Notre revue révèle que plusieurs groupes d'agents phytopathogènes affectent le haricot vert, principalement des champignons (Meziadi *et al.*, 2016 ; Martins et al., 2018), des bactéries (Djeugap *et al.*, 2014 ; Mbeugang *et al.*, 2017), et des virus (Mwaipopo *et al.*, 2018). Près d'une vingtaine de pathogènes fongiques ont été identifiés sur cette culture, dont la plupart sont également présents sur d'autres légumineuses telles que le pois antaque (*Lablab purpureus* L.) (Khan *et al.*, 2020 ; Ema *et al.*, 2022), l'arachide (*Arachis hypogaea* L.) (Adhilakshmi et al., 2013), la fève (*Vicia faba* L.), et le pois (*Pisum sativum*) (Bougoufa et Guendouzi, 2018).

Ces pathogènes fongiques se manifestent de manière variée sur les plants de haricot, induisant des lésions de formes diverses affectant tous les organes de la plante, telles que des tâches, stries, nécroses, brûlures, pourritures, flétrissures, jaunissements, rabougrissements, défoliations, et chloroses. Une diversité similaire de symptômes a été observée sur d'autres légumineuses telles que *Vigna unguiculata* (Alves *et al.*, 2019), *Lablab purpureus* L. (Khan *et al.*, 2020 ; Ema *et al.*, 2022), *Vicia faba* L., et *Pisum sativum* (Bougoufa et Guendouzi, 2018).

La revue souligne que les maladies fongiques constituent la principale
catégorie de maladies affectant le haricot vert, une constatation similaire à
celle de Boussaber et al., 2012, qui indiquent que 83 % des maladies des plantes sont attribuables aux champignons. Des mesures prophylactiques, telles que des pratiques culturales appropriées (densité des semis, écartement entre les plants, drainage du sol), l'utilisation raisonnée de fertilisants et de semences de qualité, peuvent être mises en place pour prévenir ces maladies. En ce qui concerne la gestion des maladies, des approches génétiques, telles que la production de semences résistantes, des méthodes biologiques utilisant des extraits végétaux et des agents biologiques (rhizobactéries, Trichoderma), ainsi que des méthodes chimiques impliquant l'utilisation de composés chimiques (acide salicylique, bénomyl, thiophanate-méthyl), ont été identifiées. Ces stratégies de prévention et de lutte sont également observées dans la gestion des affections fongiques sur d'autres cultures telles que le niébé (Rabo et al., 2021 ; Mahomed et al., 2022), le pommier (Lahlali et al., 2021), et les cultures maraîchères (Fangue-Yapseu et al., 2023).

**Conclusion**

Le haricot vert (Phaseolus vulgaris), en dépit de son importance nutritionnelle, économique, et agronomique, demeure vulnérable à de multiples attaques d'agents phytopathogènes. Il est la cible d'une vingtaine de champignons pathogènes, lesquels, dans des conditions de développement idéales, induisent des niveaux de sévérité variables mais significatifs, impactant le rendement de la culture. La mise en œuvre de bonnes pratiques agricoles, comprenant le travail du sol, l'élimination des résidus de culture, l'utilisation de variétés résistantes, le traitement des semences, ainsi que le respect de la densité et de l'espacement entre les plantes, permet d'éviter certaines maladies au sein des parcelles cultivées et prévient l'introduction d'agents pathogènes virulents.

En cas d'infection des plantes, l'emploi d'extraits de plantes, de bactéries, et de champignons, tels que les rhizobactéries et le Trichoderma respectivement, contribue à atténuer la sévérité de ces pathogènes. La lutte chimique, via l'utilisation de produits chimiques, et la lutte génétique, à travers la sélection et la création de variétés résistantes, s'avèrent être des stratégies efficaces pour réduire la pression parasitaire sur les plantes et préserver les cultures contre les pertes économiques occasionnées.

**Conflit d'intérêts** : Les auteurs n'ont signalé aucun conflit d'intérêts.

**Disponibilité des données** : Toutes les données sont incluses dans le contenu de l'article.

**Déclaration de financement** : Les auteurs n'ont obtenu aucun financement pour cette recherche.
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