# Entre croissance et prédation

Maria Al Chidiac, Manel Benlakehal, Marine Giraud, Carla Maggio, Mathilde Vallette, Laurent Aussel

► To cite this version:

Maria Al Chidiac, Manel Benlakehal, Marine Giraud, Carla Maggio, Mathilde Vallette, et al. *Entre croissance et prédation. Médecine/Sciences*, 2025, 41 (10), pp.808-813. 10.1051/medsci/2025148. hal-05465574

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Submitted on 19 Jan 2026

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## Partenariat
médecine/sciences -
Écoles doctorales - Masters (68)

L'actualité scientifique vue
par les étudiants du Master 2
Microbiologie Fondamentale (MiF),
en partenariat avec l'Institut de Microbiologie,
Bioénergies et Biotechnologies (IM2B),
Aix Marseille Université

> Dans le cadre de l'unité d'enseignement « Rédiger en sciences » proposée par l'université d'Aix-Marseille, les étudiants du master 2 Microbiologie Fondamentale (MiF) - en partenariat avec l'Institut de Microbiologie, Bioénergies et Biotechnologie (IM2B) - ont été confrontés aux exigences de l'écriture scientifique. Deux thématiques leur ont été proposées : les nouvelles méthodes d'identification des bactéries du genre *Yersinia* et les mécanismes de division et de prédation de *Bdellovibrio bacteriovorus*. À partir de trois publications originales, les étudiants ont rédigé une nouvelle soulignant les résultats majeurs et l'impact des articles étudiés. Complété par un entretien avec les auteurs, l'ensemble offre un éclairage original sur la compréhension du vivant dans le domaine de la microbiologie et de la santé. <

amU

Faculté
des sciences

Aix Marseille Université

amU

Institut microbiologie,
bioénergies et biotechnologie

Aix Marseille Université

### Responsable de l'Unité d'Enseignement

Laurent Aussel

### Équipe pédagogique

Laurent Aussel - Professeur, Aix-Marseille Université - aussel@imm.cnrs.fr

Amel Latifi - Professeur, Aix-Marseille Université - latifi@imm.cnrs.fr

### Site web

https://sciences.univ-amu.fr/fr/formation/masters/master-microbiologie

Série coordonnée par Claire Deligne

## NOUVELLE

### Entre croissance et prédation

#### La symphonie cellulaire de *Bdellovibrio bacteriovorus*

Maria Al Chidiac<fnref n="1" />*, Manel Benlakehal<fnref n="1" />*, Marine Giraud<fnref n="1" />*, Carla Maggio<fnref n="1" />*, Mathilde Vallette<fnref n="1" />*, Laurent Aussel<fnref n="2" />

> La prédation est un mécanisme essentiel à la survie de certaines espèces bactériennes dans leur environnement. Les bactéries à division binaire, telles que *Bacillus subtilis*, donnent naissance à deux cellules filles. Leur cycle cellulaire a été étudié en profondeur depuis des années. Le mode de division non binaire reste quant à lui peu exploré en raison de sa complexité [1]. *Bdellovibrio bacteriovorus* est une delta-protéobactérie à Gram négatif caractéri-

sée par un mode de vie endobiotique obligatoire, nécessitant l'invasion et la prolifération à l'intérieur d'une autre bactérie, d'où son caractère « prédateur ». Sa motilité est assurée par un flagelle, nécessaire à la recherche de proies. Le contact s'établit par l'adhérence à la surface de la bactérie cible, suivie de sa pénétration, ce qui induit la formation du bdelloplaste (la proie infec- tée) [2] (→).

(→ Voir m/s n° 5,
2017, page 519)

Ce phénomène correspond à la phase non-proliférative du prédateur. Dans le périplasme du bdelloplaste, *B. bacteriovorus* perd son flagelle et exploite les ressources nutritives de sa proie pour croître sous forme de filament. La septation<fnref n="1" /> de ce dernier provoque la lyse de la proie et la libération des cellules filles

<footnote n="1">¹Master 2 microbiologie fondamentale, Aix Marseille Université, Marseille, France.</footnote>

<footnote n="2">²Aix Marseille Université, CNRS LCB UMR7283, IMM, Marseille, France.</footnote>

<footnote>maria.al-chidiac@etu.univ-amu.fr</footnote>

<footnote>manel.benlakehal@etu.univ-amu.fr</footnote>

<footnote>marine.giraud.3@etu.univ-amu.fr</footnote>

<footnote>carla.maggio@etu.univ-amu.fr</footnote>

<footnote>mathilde.vallette@etu.univ-amu.fr</footnote>

<footnote>aussel@imm.cnrs.fr</footnote>

<footnote>*Ces cinq auteurs ont contribué de façon égale au travail.</footnote>

<footnote n="1">¹ La septation est le développement d'une cloison à l'intérieur d'une cellule bactérienne en division aboutissant à la formation de deux cellules filles.</footnote>
<figure><img src="image_2.png" /></figure>

prédatrices. L'originalité de ce bactéri-
vore réside en son mode de division non
binaire, où une seule cellule mère génère
plus de deux cellules filles. De plus, l'or-
ganisation spatiale de son chromosome
est particulière : l'origine de réplication
(ori) est située au pôle invasif de la
cellule, et le terminus (ter) au pôle non
invasif, au niveau du flagelle.

La présente nouvelle synthétise des tra-
vaux récents qui ont révélé comment
ce microorganisme, au cycle cellulaire
non binaire, parvient à orchestrer une
division multiple à partir d'une seule
cellule mère. Ces découvertes ouvrent de
nouvelles perspectives pour le dévelop-
pement de traitements alternatifs des
infections bactériennes.

La phase d'attaque

La phase d'attaque de *B. bacteriovorus*
constitue une étape cruciale de la pré-
dation durant laquelle cette bactérie
se prépare à envahir et dégrader une
autre cellule cible à Gram négatif. Tout
commence par la recherche active de
proies dans l'environnement. À ce stade,
les cellules prédatrices sont hautement
polarisées, avec un flagelle unipolaire
qui leur permet de se déplacer à grande
vitesse à la recherche d'une proie [1]. Ce
flagelle, situé à l'opposé du pôle invasif
de la cellule, est entouré d'une gaine qui
facilite les collisions rapides avec les
bactéries proies potentielles [3]. Le pôle
invasif est quant à lui équipé de *pilus* de
type IV, structure essentielle à l'atta-
chement à la surface de la bactérie
cible [4]. Ces *pilus* extrudés permettent
au prédateur de se fixer fermement
à la proie, avant sa pénétration dans
l'espace périplasmique de la cellule
infectée (Figure 1).

Après son attachement, *B. bacteriovorus*
procède à une invasion rapide et précise.
Le prédateur pénètre à travers un pore
qu'il crée dans la membrane externe et
le peptidoglycane de la proie, en exploi-
tant son petit gabarit et son bagage
enzymatique. Ce processus d'invasion
implique une modification enzymatique
de la paroi cellulaire au niveau du point

de contact, qui facilite la pénétration
sans endommager la structure globale
de la cellule proie [3]. Une fois dans le
périmplasme, la membrane externe de la
proie se referme autour du prédateur,
formant une structure appelée bdel-
loplaste [4]. Ce remodelage cellulaire
particulier permet à la proie de main-
tenir son intégrité osmotique tout en
étant l'hôte du prédateur, qui se prépare
pour la phase de croissance.

La phase d'attaque est un processus
coordonné, impliquant la motilité, l'at-
tachement spécifique et l'invasion de
la proie. Les *pilus* de type IV, le flagelle
unipolaire et les enzymes de *B. bacte-
riovorus* sont essentiels pour assurer son
entrée en phase proliférative.

La phase de développement

Au sein du bdelloplaste, *B. bacteriovorus*
initie la duplication de son ADN géno-
mique par l'établissement de complexes
de réplication, ou « réplisomes ». La
ségrégation progressive des chromos-
omes est une caractéristique clé de
cette phase, garantissant que les nou-
velles copies d'ADN sont correctement
réparties dans chaque cellule avant la
division [4]. Cette ségrégation a été
observée par microscopie à fluorescence
en fusionnant ParB, une protéine du
complexe de partition du chromosome,
à la protéine fluorescente mcherry. Ce
phénomène permet de préserver l'inté-
grité et la fonctionnalité de l'informa-
tion génétique, tout en soulignant la
complexité du cycle de vie non binaire
de *B. bacteriovorus*.

Un autre aspect important de cette
phase de développement est l'influence
de la taille de la proie sur le nombre de
cellules filles produites. Des mutations
ont été réalisées sur le gène codant
la protéine MreB, impliquée dans la
régulation de la forme cellulaire des
bactéries, générant ainsi des variants
d'É. coli de taille différente, ce qui a
permis de démontrer que la taille de la
proie impactait directement la quan-
tité de ressources métabolisées à partir
du contenu cellulaire de la proie par

*B. bacteriovorus*. Ainsi, une proie de plus
grande taille fournirait plus de nutri-
ments, et engendrerait une descendance
plus importante. En revanche, ce nombre
est restreint dans une proie plus petite
dont les ressources sont limitées [1].
Cette capacité à s'adapter à la taille
de la proie démontre l'adaptabilité
de *B. bacteriovorus* pour survivre et se
reproduire dans divers environnements.

Le modèle de division non-binaire

L'étude de la dynamique de ségrégation du chromosome de *B. bacteriovorus* met en évidence un mécanisme asymétrique au niveau de l'origine de réplication (*ori*), ainsi qu'un découplage entre ségrégation et division cellulaire [4]. De plus, comme la taille de la proie influence le nombre de cellules filles prédatrices, il est important de comprendre les mécanismes spatio-temporels qui régissent la division cellulaire. Plusieurs protéines clés interviennent dans la coordination fine de la division cellulaire et la polarité. Parmi elles, DivIVA joue un rôle dans la ségrégation des chromosomes ainsi que lors de la polarisation de la cellule. La protéine RomR, localisée au pôle invasif, est nécessaire à la prédation et à la croissance de *B. bacteriovorus* indépendamment de la proie. D'autre part, lors de la division, FtsZ est stabilisée par son partenaire ZapA, et forme un anneau au site de constriction, permettant ainsi l'assemblage du "divisome", un complexe multi-protéique à l'origine de la division cellulaire, localisé au centre de la cellule.

Des expériences de microscopie de
fluorescence en « time-lapse » ont
été réalisées en fusionnant de DivIVA
à la gfp (green fluorescent protein)
et la protéine RomR à mcherry (fluo-
rochrome rouge). Ces expériences ont
montré qu'au cours de la croissance de
*B. bacteriovorus* dans le bdelloplaste,
DivIVA s'accumule aux sites de constric-
tion membranaire et aux deux pôles
de la cellule mère [5]. RomR, initiale-
ment localisée au pôle invasif, apparaît
<figure><img src="image_3.png" /><figcaption>**Figure 1. Cycle de vie et régulation de la division cellulaire du prédateur bactérien Bdellovibrio bacteriovorus.** La bactérie prédatrice *Bdellovibrio bacteriovorus* adhère à la surface d'une bactérie à Gram négatif identifiée comme sa proie à l'aide de ses pilus (phase d'attaque), créant un pore dans la membrane de celle-ci. Après son entrée, *B. bacteriovorus* exploite sa proie pour se diviser (phase de développement). Durant cette phase, les protéines RomR (points orange) et DivIVA (points verts) sont impliquées dans la croissance de la bactérie prédatrice et le contrôle spatio-temporel de son cycle cellulaire lors de la phase de développement intracellulaire. Ce dernier est modulé en fonction de la taille de la proie : chez les proies de petite taille (à gauche), le développement est rapide et la descendance peu nombreuse, chez les proies de grande taille (à droite), une phase de croissance prolongée permet de produire un plus grand nombre de cellules filles. Dans la phase de sortie, la membrane de la proie est dégradée et les cellules filles libérées. Figure réalisée avec BioRender.</figcaption></figure>

ensuite aux sites de division pendant la
phase proliférative, peu avant la sépara-
tion des cellules filles.

L'étude de la localisation des protéines
du divisome par microscopie de fluo-
rescence a montré que ZapA et FtsZ se
positionnent aux sites de constriction de
la cellule mère avant RomR. ParB, une
protéine liant l'ADN et marquant l'origine
de réplication de chaque copie du chro-
mosome durant la phase de croissance, a
été fusionnée à la protéine fluorescente
yfp (yellow fluorescent protein) afin de

suivre la progression de la réplication
et de la ségrégation chromosomique, en
parallèle avec RomR-mcherry. Une fois
le divisome assemblé, RomR se localise à
ces sites pour marquer la transition entre
la fin de la ségrégation des chromos-
omes et la libération des cellules filles.
Cette dynamique a été observée par
microscopie à fluorescence, en suivant
l'apparition des foyers de ParB-yfp et de
RomR-mcherry au cours de la phase de
croissance de *B. bacteriovorus*, ce qui a
permis de corréler temporellement l'ap-

partition des foyers de RomR avec la fin
de la ségrégation chromosomique [4].
L'abondance de nutriments dans la proie
accélère le taux de croissance de *B. bac-
teriovorus*, entraînant un allongement
du filament bactérien. Cette croissance
prolongée retarde la division en cellules
filles, qui n'intervient qu'après l'arrêt de
l'elongation du filament. Néanmoins, le
temps requis pour la division cellulaire
après la ségrégation des copies du chro-
mosome est fixe et soumis à une régula-
tion intrinsèque au prédateur [1].
<figure><img src="image_4.png" /></figure>

Des bactérivores à potentiel
antibiotique

L'émergence des bactéries à Gram néga-
tif multirésistantes aux antibiotiques
pose un défi de santé publique majeur.
L'étude du cycle de vie de B. bacterio-
vorus, qui se multiplie exclusivement
dans ces bactéries à Gram négatif et qui
entraine leur lyse, permet donc d'envi-
sager le développement de nouvelles
stratégies thérapeutiques.

Les lipopolysaccharides (LPS) de la
paroi de B. bacteriovorus ne présentent
pas de charges négatives sur leur lipide
A<fnref n="2" />, empêchant ainsi sa reconnaissance
par les cellules immunitaires et le
développement d'une réponse inflam-
matoire de l'hôte [6]. Cette caractéris-
tique ouvre la possibilité de combiner
ce prédateur à des agents antibac-
tériens pour restaurer la sensibilité
des bactéries pathogènes résistantes
à ces traitements. En effet, des tests
de viabilité des souches d'E. coli résis-
tantes à la colicine et aux carbapé-
nèmes montrent que le co-traitement
avec B. bacteriovorus HD100 et des
colicines améliore l'élimination de ces
pathogènes [7]. L'une des explications
de cette observation réside dans l'ana-

lyse protéomique du sécrétome<fnref n="3" /> de
B. bacteriovorus qui révèle la présence
de peptidases, de lipases, de DNAses et
RNAses [8]. Ces enzymes sont capables
de dégrader l'enveloppe de la proie et
son contenu cytoplasmique, entraînant
ainsi la lyse des cellules. L'exploitation
de cet arsenal moléculaire par modifi-
cation génétique du prédateur pourrait
potentialiser son effet antibactérien.
L'ensemble de ces découvertes suggère
une possible utilisation de ce préda-
teur comme antibiotique « vivant » pour
traiter les infections sévères causées par
des bactéries à Gram négatif multirésis-
tantes [9]. Cependant, la croissance de
B. bacteriovorus dans la proie nécessite
un environnement riche en oxygène,
une température de 30 °C, et un pH
légèrement alcalin, ce qui limite pour
l'instant son application chez l'homme
[10]. Il est donc important d'accroître
l'effort de recherche sur ce prédateur
pour approfondir la compréhension de
ses mécanismes d'invasion et de pro-
lifération dans l'hôte afin d'exploiter
ces connaissances pour développer des
stratégies thérapeutiques efficaces. ◊
Between growth and predation: the
cellular symphony of Bdellovibrio
bacteriovorus

LIENS D'INTÉRÊT

Les auterus déclarent n'avoir aucun lien d'intérêt concernant les données publiées dans cet article.

RÉFÉRENCES

1. Santin YG, Lamot T, Raaphorst R van, et al. Modulation of prey size reveals adaptability and robustness in the cell cycle of an intracellular predator. *Curr Biol* 2023 ; 33 : 2213-22.e4.

2. Jurkevitch É, Jacquet S. Bdellovibrio et organismes apparentés - Des prédateurs bactériens hors du commun ! *Med Sci (Paris)* 2017 ; 33 : 519-27.

3. Kaplan M, Chang Y-W, Oikonomou CM, et al. Bdellovibrio predation cycle characterized at nanometre-scale resolution with cryo-electron tomography. *Nat Microbiol* 2021 ; 8 : 1267-79.

4. Kaljević J, Saaki TNV, Govers SK, et al. Chromosome choreography during the non-binary cell cycle of a predatory bacterium. *Curr Biol* 2021 ; 31 : 3707-20.e5.

5. Remy O, Santin YG, Jonckheere V, et al. Distinct dynamics and proximity networks of hub proteins at the prey-invading cell pole in a predatory bacterium. *J Bacteriol* 2024 ; 206 : e0001424.

6. Dwidar M, Monnappa AK, Mitchell RJ. The dual probiotic and antibiotic nature of Bdellovibrio bacteriovorus. *BMB Rep* 2012 ; 45 : 71-8.

7. Upatissa S, Mun W, Mitchell RJ. Pairing Colicins B and E5 with Bdellovibrio bacteriovorus To Eradicate Carbapenem- and Colistin-Resistant Strains of Escherichia coli. *Microbiol Spectr* 2023 ; 11 : e0017323.

8. Rendulic S, Jagtap P, Rosinus A, et al. A predator unmasked: life cycle of Bdellovibrio bacteriovorus from a genomic perspective. *Science* 2004 ; 303 : 689-92.

9. Cavallo FM, Jordana L, Friedrich AW, et al. Bdellovibrio bacteriovorus: a potential "living antibiotic" to control bacterial pathogens. *Crit Rev Microbiol* 2021 ; 47 : 630-46.

10. Seidler RJ, Starr MP. Factors Affecting the Intracellular Parasitic Growth of Bdellovibrio bacteriovorus Developing Within Escherichia coli. *J Bacteriol* 1969 ; 97 : 912-23.

<footnote n="2">² Le lipide A est le constituant lipidique le plus interne des trois régions de la molécule de LPS (ou endotoxine). Sa nature hydrophobe lui permet d'ancrer le LPS dans le feuillet externe de la membrane externe.</footnote>

<footnote n="3">³ Le sécrétome bactérien est l'ensemble des protéines bactériennes libérées ou sécrétées hors des cellules.</footnote>
## Entretien avec Géraldine Laloux

Géraldine Laloux est professeure à l'Université catholique de Louvain (UCLouvain) et chercheuse qualifiée au Fonds de la recherche scientifique (FNRS) en Belgique. En 2009, à l'issue de son doctorat en microbiologie à l'Université de Namur en Belgique, elle réalise un premier séjour post-doctoral à l'université de Yale aux États-Unis, puis un

second à l'Université catholique de Louvain à Bruxelles. En 2017, elle obtient un poste de chercheuse permanente au FNRS. Sa thématique de recherche actuelle porte sur la caractérisation des mécanismes du prédateur bactérien *Bdellovibrio bacteriovorus* pour proliférer au sein de ses proies.

<figure><img src="image_5.png" /></figure>

© Jan Van de Vel - RED227 / Institut de Doyre

### Quels ont été les éléments déclencheurs qui vous ont conduit à choisir *Bdellovibrio bacteriovorus* comme sujet de recherche ?

Je venais d'effectuer deux stages post-doctoraux : le premier sur la polarité et l'organisation intracellulaire de *Caulobacter crescentus* et le second sur la biogènèse et la réponse au stress chez *E. coli*. Cela m'a permis de développer un attrait pour la microscopie et l'organisation intracellulaire. Cette question était déjà très étudiée chez *C. crescentus* et je ne voulais pas travailler à nouveau sur *E. coli*. J'ai donc pris un arbre phylogénétique des bactéries et je les ai recherchées une par une avec une liste de critères prédéfinis. Je voulais orienter mes recherches dans le domaine de la biologie cellulaire fondamentale, idéalement en lien avec l'enveloppe bactérienne, avoir des outils génétiques disponibles et un sujet peu étudié avec des applications possibles. Et c'est là qu'est apparu *B. bacteriovorus*.

### Quels sont les défis rencontrés avec ce sujet de recherche ?

Comme il s'agit d'un organisme relativement peu étudié, il a fallu créer et optimiser de nouveaux protocoles. Au vu de la taille de cette bactérie, l'observation de cellules vivantes par microscopie et la visualisation des protéines fluorescentes intracellulaires représentaient des verrous technologiques d'envergure.

### Quelles sont les contraintes liées à l'étude de cette bactérie ?

La contrainte se trouve au niveau de sa culture. C'est une bactérie prédatrice qui exige la présence de proies afin de se reproduire et nous effectuons donc des co-cultures avec *E. coli*. Concernant les approches génétiques, les gènes essentiels à la prédation sont nombreux. Pour cela, nous avons mis en place des outils tel que « CRISPR interférence » afin de pouvoir diminuer l'expression génique au lieu de l'inactiver. Cela permet l'étude des gènes essentiels comme ceux associés à la prédation.

### Quels sont les obstacles actuels à l'utilisation de *B. bacteriovorus* en thérapie ?

Il nous manque certaines informations fondamentales sur la prédation et son mode de fonctionnement. Il y a de nombreuses limites telles que le contexte physiologique. *B. bacteriovorus* a besoin d'un pH légèrement alcalin et d'une concentration en oxygène élevée. Ce ne sont que quelques exemples et il existe d'autres contraintes comme le fait que certaines molécules du sérum

humain soient potentiellement toxiques pour *B. bacteriovorus*. Pour l'instant, les tests ne se font que sur des modèles *in vitro* ou animaux, ils sont loin d'être transposables à un modèle humain. Plusieurs questions restent en suspens : quel serait l'impact de la présence de *B. bacteriovorus* sur le microbiote ? Quel est le processus d'élimination par le système immunitaire de l'hôte ? Donc pour l'instant, on est loin de pouvoir l'utiliser ce microorganisme en tant qu'antibiotique « vivant ».

### Que pouvez-vous nous dire de l'approche basée sur la biologie synthétique ?

C'est une approche que nous prenons au sérieux. Nous avons pour objectif à court terme d'identifier des protéines de *B. bacteriovorus* ayant des activités antimicrobiennes ou de fragilisation de l'enveloppe bactérienne. Nous cherchons à caractériser les protéines impliquées dans la modification et la digestion de certains composants bactériens, ce qui implique d'identifier les protéines sécrétées à chaque moment de la prédation. Dans une optique thérapeutique, il est possible d'envisager l'utilisation d'enzymes sécrétées par *B. bacteriovorus* en tant qu'adjuvant afin d'augmenter l'efficacité des antibiotiques.

Cette bactérie présente également un intérêt dans son aptitude à éradiquer les biofilms. Cependant, elle a du mal à pénétrer la couche interne du biofilm à cause de sa densité. Les biofilms, dont les compostions peuvent être variables, constituent un domaine de recherche dans lequel il reste beaucoup à découvrir.

### Avez-vous des facilités à modifier génétiquement cette bactérie ?

*B. bacteriovorus* peut être transformée avec des plasmides réplicatifs ou non. Nous pouvons introduire des mutations au nucléotide près dans le chromosome grâce à la recombinaison homologue. Évidemment, comparé à un organisme modèle, il y a beaucoup moins d'outils à disposition. Ainsi, nous adaptons les protocoles, par exemple avec la mise au point de « CRISPR interférence » et de promoteurs inductibles. Cependant, toutes ces expériences nécessitent un certain temps puisqu'il faut environ trois semaines à un mois pour obtenir et valider un mutant. Ce délai est dû à la méthode que nous utilisons pour réaliser ces mutations. D'abord, nous intégrons un plasmide par recombinaison homologue, puis nous excisons ce plasmide via une contre-sélection. Chaque étape prend plusieurs jours car ces modifications génétiques demandent du temps pour être sélectionnées, puis contre-sélectionnées. Ensuite, il faut cribler les recombinants car nous avons, en théorie, 50 % de chances de revenir à une situation sauvage par rapport à la situation mutante. En fonction des modifications que nous introduisons, nous obtenons plus de souches sauvages que mutantes. Enfin, nous validons par PCR et séquençage, en caractérisant la souche selon divers aspects, comme sa capacité de prédation.

### Une découverte récente chez *B. bacteriovorus* vous a-t-elle récemment marquée ?

Une série d'adhésines aux structures très particulières a été découverte récemment. Bien que leur rôle soit encore à tester *in vivo*, elles pourraient servir à l'adhésion à différentes proies. De plus, un autre aspect fascinant concerne une protéine « histone-like », identifiée chez *B. bacteriovorus*, qui ressemble aux histones eucaryotes. Cependant, les études ne permettent pas encore
<figure><img src="image_6.png" /></figure>

de déterminer sa fonction. Cela reste à explorer. Concernant les prédateurs plus généralement, il reste beaucoup de mécanismes à découvrir, notamment ceux permettant l'attaque et l'attaquement à la proie. Il est également intéressant d'étudier les mécanismes de transduction du signal et l'impact des changements physiologiques dans l'environnement et dans la proie. Les stratégies de prédation et leur diversité sont grandement sousestimées à cause de l'absence de signature génétique propre à la prédation. En effet, les informations à disposition ne représenteraient qu'une très faible partie du monde de la prédation bactérienne. Dans le cas de *B. bacteriovorus*, nous nous intéressons principalement à l'aspect moléculaire et mécanistique : les différentes voies de signalisation qui induisent les mécanismes de prédation et comment *B. bacteriovorus* reconnaît sa proie.

*Quelles grandes questions restent à élucider chez cette bactérie ?*

Les mécanismes moléculaires du cycle cellulaire et l'interaction avec la proie restent des points clés. Une question majeure est de savoir comment *B. bacteriovorus* initie la réplication de son ADN une fois dans sa proie. Quel est le lien entre l'initiation de ces processus et la prédation ? Nous savons déjà qu'une proie plus grande permet à *B. bacteriovorus* de croître plus longtemps et de produire plus de cellules filles. Il y a probablement un mécanisme de détection des ressources, mais nous devons encore identifier ce signal au niveau moléculaire.

*Votre recherche s'inspire-t-elle de travaux précédents ?*

Tout à fait. Des études datant des années soixante sont notamment une source d'inspiration majeure. Beaucoup de mécanismes ont été proposés à l'époque, mais il n'y avait pas les outils pour les tester. Aujourd'hui, avec les techniques modernes, nous pouvons revisiter ces hypothèses pour apporter des preuves expérimentales directes.

*Existe-t-il des similitudes génomiques entre B. bacteriovorus et d'autres prédateurs endobiotiques ?*

Les prédateurs endobiotiques sont relativement rares et, dans l'évolution, ils sont proches de *B. bacteriovorus*, bien qu'ils présentent des différences morphologiques et dans leurs modes de prédation. *B. bacteriovorus* et *Myxococcus xanthus* possèdent des similitudes au niveau des machineries macromoléculaires qui indiquent des adaptations particulières, liées à leurs modes de vie respectifs.

*Quelles sont les autres pistes de recherche qui vous tiennent à cœur ?*

Nous nous intéressons de plus en plus aux interactions avec la proie et aux machineries moléculaires présentes à la surface de *B. bacteriovorus*, comme les *pilus* et les systèmes de sécrétion. Nous savons que ces structures sont essentielles, mais nous ignorons encore leurs rôles spécifiques.