# Guide pratique des plantations d'arbres des forêts denses humides d'Afrique

Kasso Daïnou, Félicien Tosso, Charles Bracke, Nils Bourland, Eric Forni, Didier Hubert, Amand Mbuya Kankolongo, Jean-Joël Loumeto, Dominique Louppe, Alfred Ngomanda, et al.

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Kasso Daïnou, Félicien Tosso, Charles Bracke, Nils Bourland, Eric Forni, et al. Guide pratique des plantations d'arbres des forêts denses humides d'Afrique. Presses agronomiques de Gembloux, 322 p., 2021, 978-2-87016-176-0. hal-05177610

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Agronomie
Gembloux

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# GUIDE PRATIQUE DES PLANTATIONS D'ARBRES DES FORÊTS DENSES HUMIDES D'AFRIQUE

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Kasso DAÏNOU, Félicien TOSSO, Charles BRACKE, Nils BOURLAND, Éric FORNI, Didier HUBERT, Amand Mbuya KANKOLONGO, Jean Joël LOUMETO, Dominique LOUPPE, Alfred NGOMANDA, Anicet NGOMIN, Valérie Tchuante TITE, Jean-Louis DOUCET

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FONDS FRANÇAIS POUR L'ENVIRONNEMENT MONDIAL

KFW

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Presses Universitaires de Liège

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LIÈGE université

TERRA

Forest le Lîle
Agronomie
Gembloux

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GUIDE PRATIQUE DES PLANTATIONS D'ARBRES DES FORÊTS DENSES HUMIDES D'AFRIQUE

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Presses Universitaires de Liège
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DANS LA MÊME COLLECTION

Bogaert J., Halleux J.-M., 2015. Territoires périurbains. Développement, enjeux et perspectives dans les pays du Sud. 304 p.

Bogaert J., Colinet G., Mahy G., 2018. Anthropisation des paysages katangais. 312 p.

Boldrini S. et al., 2017. Guide Technique. Plantation agroforestière d'Acacia auriculifor-
mis dans le Haut Katanga. 53 p.

Boudru M., 1989. Forêt et sylviculture. Traitement des forêts. 356 p.

Boudru M., 1992. Forêt et sylviculture. Boisements et reboisements artificiels. 348 p.

Bousson E., 2003. Gestion forestière intégrée. Approche structurée basée sur l'analyse multicritère. 303 p.

Colson V., Granet A.-M., Vanwijnsberghe S., 2012. Loisirs en forêt et gestion durable. 304 p.

Dagnelie P. et al., 1988. Tables de production relatives à l'épicéa commun. 124 p.

Dagnelie P. et al., 2013. Cubage des arbres et des peuplements forestiers : tables et équations. 176 p.

Daïnou K. et al., 2016. Hautes Valeurs de Conservation (HVC) dans les Unités Fores-
tières d'Aménagement du Cameroun : concepts, choix et pratiques. 94 p.

Delvingt W., 2001. La forêt des hommes. Terroirs villageois en forêt tropicale africaine.
288 p.

Delvingt W., Vermeulen C., 2007. Nazinga. 312 p.

Doucet J.-L. et al., 2012. Regards croisés sur la foresterie communautaire. L'expérience camerounaise. 216 p.

Haurez B. et al., 2020. Élaboration et mise en oeuvre d'un plan de gestion de la faune. Guide technique à destination des gestionnaires des forêts de production d'Afrique centrale. Gembloux, Belgique : Presses agronomiques de Gembloux.

Malaisse F., 1997. Se nourrir en forêt claire africaine. Approche écologique et nutritionnelle. 384 p.

Malaisse F., 2010. How to Live and Survive in Zambezian open Forest (Miombo Ecoregion). 424 p.

Meunier Q., Moumbogou C., Doucet J.-L., 2015. Les arbres utiles du Gabon. 340 p.

Mignon J., Haubruge É., Francis F., 2016. Clé d'identification des principales familles d'insectes d'Europe. 87 p.

Nanson A., 2004. Génétique et amélioration des arbres forestiers. 712 p.

Tosso et al., 2020. Sentiers de suivi de la croissance, de la mortalité et de la phénologie des arbres tropicaux : guide méthodologique. 124 p.

Rondeux J., Thibaut A., 1996. Tables de production relatives au douglas. 152 p.

Rondeux J., 1997. La forêt et les hommes. Arrêt sur images 1900-1930. 94 p.

Rondeux J., 1999. La mesure des arbres et des peuplements forestiers. 544 p.
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# GUIDE PRATIQUE DES PLANTATIONS D'ARBRES DES FORÊTS DENSES HUMIDES D'AFRIQUE

Kasso Daïnou, Félicien Tosso, Charles Bracke, Nils Bourland,
Éric Forni, Didier Hubert, Amand Mbuya Kankolongo,
Jean Joël Loumeto, Dominique Louppe, Alfred Ngomanda,
Anicet Ngomin, Valérie Tchuante Tite, Jean-Louis Doucet
Photo de couverture : Kasso Dainou

2021

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http://hdl.handle.net/2268/259075

2021, LES PRESSES AGRONOMIQUES DE GEMBLOUX, A.S.B.L.

Passage des Déportés 2 — B-5030 Gembloux (Belgique)

Tél. : +32 (0) 81 62 22 42

E-mail : pressesagro.gembloux@uliege.be URL : www.pressesagro.be

D/2021/1665/176

ISBN 978-2-87016-176-0

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http://creativecommons.org/licences/by-nc-sa/4.0/deed.fr

Publié avec l'aide du Service public de Wallonie (Aides à la promotion de l'emploi)
# PRÉFACE

Depuis des décennies, des sylviculteurs, chercheurs et aménagistes des pays africains ont pris conscience de la réduction progressive du volume des ressources en bois d'œuvre. Pour faire face à ce défi, ils ont testé diverses méthodes de plantations des espèces locales d'arbres. Ces essais étaient parfois simplement motivés par la curiosité, ou la volonté de domestiquer un arbre jugé intéressant afin d'en disposer près de chez soi : pouvoir le cultiver à sa guise, en qualité comme en quantité. La sylviculture a ainsi nourri de nombreux ouvrages techniques. Si quelques-uns de ces ouvrages sont librement accessibles sur internet, la majorité est plutôt « dormante » ou uniquement consultable sous forme de rapport dans des bibliothèques institutionnelles : institutions de recherche scientifique, organismes étatiques de gestion des forêts, etc.

Par ailleurs, l'on pense que la plantation d'arbres originaires des forêts denses d'Afrique aboutit parfois à des résultats mitigés, voire médiocres. Cette situation a conduit à l'adoption et à la vulgarisation de plantations d'espèces exotiques (Tectona grandis, Gmelina arborea, Eucalyptus spp., etc.) au détriment des essences forestières locales. Les cas de succès de plantations d'arbres autochtones sont pourtant bien visibles mais peu connus et peu documentés. Il s'agit notamment des plantations de la réserve de Kienké-Sud au Cameroun ; des plantations de Yapo, Mopri et Sangoué en Côte d'Ivoire ; des plantations de l'arboretum de Mboku-Nsitu en République du Congo ; celles de Yangambi en République démocratique du Congo ; celles d'Ekouk au Gabon, etc. Depuis bientôt 20 ans, un partenariat entre l'association Nature+, Gembloux Agro-Bio Tech (GxABT/Université de Liège) et diverses entreprises forestières d'Afrique centrale (GRUMCAM, Pallisco, Precious Woods - CEB, SFID, Wijma) a également expérimenté diverses plantations d'enrichissement dans les zones dégradées des concessions exploitées. La combinaison des données récentes et de celles plus anciennes tirées de la littérature grise, offre ainsi de nombreuses informations sur les forces et les faiblesses des plantations d'espèces locales.

Dans le contexte actuel où les ressources ligneuses d'intérêt économique s'amenuisent, que ce soit dans les concessions de production de bois d'œuvre ou dans les zones agroforestières, la Commission des Forêts d'Afrique centrale (COMIFAC) a fait du développement des plantations forestières une de ses priorités. Dans son « Plan de Convergence 2015-2025 », la COMIFAC vise clairement « le développement et la mise en œuvre de programmes nationaux de reboisement ». Pour les sociétés forestières en particulier, le bénéfice de programmes intensifs de reboisement d'essences locales serait indéniable puisqu'une telle tâche assurerait le maintien sur le long terme des essences majeures commercialisées. Pour les populations dépendant directement des ressources forestières, cela engendrerait le maintien d'espèces produisant aussi des produits utiles dans leur vie quotidienne (fruits, graines, écorces, chenilles, etc.). Consciente de l'enjeu, la COMIFAC a appuyé l'initiative de Nature+ et de GxABT/ULiège visant à synthétiser
les informations disponibles sur les essais de plantations d'arbres locaux en zone de forêts denses humides tropicales.

Pour une telle intervention, la COMIFAC dispose du levier performant qu'est le Programme de Promotion de l'Exploitation Certifiée des Forêts (PPECF). Ce programme est une émanation du financement de la Coopération allemande à travers la KFW Bankengruppe. Il intervient dans la gestion durable des écosystèmes forestiers dans le bassin du Congo à travers trois volets : l'appui à la mise en place d'un cadre propice à la certification, l'amélioration de la qualité de l'exploitation industrielle et le renforcement de la communication sur l'exploitation durable industrielle. Comme critère d'appréciation, le PPECF se base sur la dynamique des surfaces exploitées respectant les normes légales ou de certification forestière. Or, dans certains pays du bassin du Congo, la légalité en matière de gestion forestière impose désormais l'installation par les concessionnaires de plantations d'essences locales dans les zones dégradées. La production d'un ouvrage synthétique mais complet, un guide illustré et accessible aux acteurs de la sylviculture des espèces locales, fait ainsi partie des initiatives soutenues par la COMIFAC.

L'élaboration et l'aboutissement de ce guide est le fruit de la parfaite collaboration entre différents organismes et structures intéressés par les méthodes de plantation d'arbres en zone de forêts denses tropicales. Outre les organismes précédemment cités (sociétés forestières, Nature+, GxBT/ULiège), l'ouvrage a bénéficié de la participation d'institutions nationales : la Cellule de Suivi de la Régénération, du Reboisement et de la Vulgarisation Sylvicole (CSRRVS/MINFOF) du Cameroun, le Service National de Reboisement (SNR) de la République du Congo, l'Institut National pour l'Étude et la Recherche Agronomique (INERA) de la République démocratique du Congo, l'Institut de Recherches en Écologie Tropicale (IRET) du Gabon et le Centre de Coopération Internationale en Recherche Agronomique pour le Développement (CIRAD) en France. Son contenu a aussi été enrichi par la participation d'experts du domaine. Il est particulièrement destiné aux administrations en charge des forêts, aux instituts de recherche, aux opérateurs économiques du secteur forestier, aux chercheurs, aux aménagistes et aux sylviculteurs. La COMIFAC est donc particulièrement fière d'avoir développé la collaboration et la mise en commun des savoirs dans cet ouvrage parfaitement vulgarisé et richement illustré.

Raymond Ndomba Ngoye

Secrétaire Exécutif de la COMIFAC
COMITÉ DE RÉDACTION

Kasso Daïnou, Félicien Tosso, Charles Bracke, Nils Bourland, Éric Forni, Didier Hubert, Mubuya Kankolongo, Jean Joël Loumeto, Dominique Louppe, Alfred Ngomanda, Anicet Ngomin, Valérie Tchuante Tite, Jean-Louis Doucet.

Dr Kasso Daïnou est responsable du programme « recherche appliquée et sylviculture » de Nature+ asbl. Fort de 16 années de travaux en gestion durable des forêts denses humides tropicales, il possède des compétences approfondies en aménagement forestier, en sylviculture tropicale, en écologie de reproduction et de régénération des arbres, et en génétique des populations d'arbres. Il combine approches appliquée et fondamentale dans ses activités et projets, essentiellement menés dans le bassin du Congo.

Dr Félicien Tosso est collaborateur scientifique à Gembloux Agro-Bio Tech (Université de Liège) au sein de Forest is Life. Il s'est spécialisé dans diverses disciplines (statistiques, cartographie forestière, sylviculture tropicale, aménagement forestier, écologie et génétique forestière). L'ensemble de ses travaux de recherche (appliquée et fondamentale) vise à fournir des solutions pour la gestion durable des écosystèmes forestiers tropicaux.

Ir Charles Bracke est directeur de Nature+ asbl. Au cours de ses 15 années d'expérience dans le bassin du Congo, il a développé des compétences solides en gestion et aménagement des écosystèmes forestiers, certification forestière, foresterie communautaire et agroforesterie. Son implication dans de nombreux projets en partenariat avec les exploitants forestiers et/ou avec les populations riveraines lui confère une compréhension approfondie des enjeux environnementaux, sociaux et économiques rencontrés au sein d'une concession forestière. En particulier, il dispose d'une expérience avérée dans le suivi de programmes d'enrichissement forestier dans des concessions forestières du bassin du Congo.

Dr Nils Bourland occupe le poste de Scientifique Sénior au Center for International Forestry Research (RDC), au Musée Royal de l'Afrique Centrale (Belgique) et chez Resources and Synergies Development (Singapour). Également titulaire d'un diplôme d'Ingénieur des Eaux et Forêts, il travaille sur la gestion des ressources naturelles en général, avec un focus tout particulier sur l'aménagement des forêts sèches et denses humides africaines. Impliqué depuis plus de 15 ans dans la conception et la gestion de multiples pépinières et programmes de plantations, il met cette solide expertise à profit, notamment dans la mise en œuvre de projets à vocation bois-énergie au cœur et en périphérie du bassin du Congo.

Ir Éric Forni est Ingénieur des Eaux et Forêts du CIRAD, basé au Congo. Il travaille depuis 1984 en Afrique centrale où il s'est d'abord occupé de plantations d'espèces locales avant de se spécialiser dans la gestion durable des forêts de production. Par
ses diverses activités – élaboration de plans d'aménagements sur plusieurs centaines de milliers d'hectares de forêt, propositions de règles de « bonne » gestion forestière, appui institutionnel aux administrations, expertise et conseil aux opérateurs privés et actuellement, gestion de dispositifs permanents d'étude de la dynamique forestière –, il s'est toujours efforcé à faire progresser et rendre effective la mise en œuvre des aménagements forestiers, tant par les États que par les concessionnaires forestiers.

Ir Didier Hubert est diplômé de Gembloux Agro-Bio Tech (Belgique) et a plus de 30 années d'expérience en milieu tropical, tant en Afrique de l'Ouest qu'en Afrique centrale. Spécialisé en aménagement forestier et en reboisement, il a élaboré et mis en œuvre des plans d'aménagement forestier sur plusieurs centaines de milliers d'hectare à des fins de production durable de bois d'œuvre ou d'énergie ainsi que pour la conservation ou la restauration de massifs forestiers. Ses activités dans le domaine du reboisement lui ont permis d'acquérir une bonne connaissance de la sylviculture de nombreuses espèces de forêts denses humides. Conseiller technique auprès du ministère en charge de l'Environnement du Cameroun entre 2011 et 2020, il est intervenu sur la préparation des stratégies nationales REDD et Climat. Chef d'équipe du bureau d'études allemand Eco-Consult, il intervient aujourd'hui dans le nord et l'est du Cameroun pour le développement des chaines de valeur bois-énergie et sur la restauration des paysages forestiers en zone de savane.

Pr Amand Mbuya Kankolongo est le Directeur Général de l'Institut National pour l'Étude et la Recherche Agronomiques (INERA, RDC) depuis plus de 5 ans. À ce titre, il gère les différents programmes de recherche dont ceux ayant trait à la gestion des ressources naturelles, notamment la gestion durable des forêts, les aspects de sylviculture, en plus de son expérience comme chercheur depuis plus de 30 ans comme sélectionneur de riz (10 ans) et maïs (23 ans). En outre grâce à différentes fonctions passées telles que Coordonnateur de la recherche et Directeur de Centre de recherche, il a acquis un solide bagage et est en mesure de traiter avec des partenaires techniques et financiers dans tous ces domaines.

Pr Jean Joël Loumeto est enseignant-chercheur à l'Université Marien NGOUABI de Brazzaville (Congo) depuis plus de 30 ans. Chef du Département de Biologie et Physiologie végétales, il est le responsable du module de sylviculture de la Faculté des Sciences et Techniques. Écologue de formation, ses activités au sein d'une équipe nommée « Biodiversité, Gestion des Écosystèmes et de l'Environnement (LBGE) » dont il est le responsable, portent sur le fonctionnement des écosystèmes forestiers : dynamique forestière, biomasse, système litière, phénologie, Produits Forestiers Non Li gneux (PFNL). Son implication dans la gestion des forêts du bassin du Congo s'exprime aussi par des fonctions au ministère en charge des Forêts et de l'Environnement du Congo d'une part, et d'autre part dans la conduite d'organisations de la société civile telles que le Forum national de la Conférence sur les Écosystèmes Forestiers Denses et Humides d'Afrique centrale (CEFDHAC) du Congo et le Réseau International Arbres Tropicaux du Congo (RIAT-Congo).
Ir Dominique Louppe est ingénieur des eaux et forêts, métier qu'il a exercé pendant 46 années, d'abord en réalisant des plantations industrielles avant d'être recruté par le Centre technique forestier tropical pour mener pendant 21 ans sur le terrain des travaux de recherche appliquée en Afrique, tant dans le domaine des plantations forrestières que de l'agroforesterie, de l'étude des forêts naturelles et de l'utilisation des bois. Tout en continuant ces activités en partie sur le terrain et fort de cette expérience, il a été éditeur scientifique des deux volumes sur les bois d'œuvre africains de l'encyclopédie PROTA ainsi que du Mémento du forestier tropical. Il est rédacteur scientifique de la revue Bois et Forêts des Tropiques.

Pr Alfred Ngomanda est Maître de Recherche au Centre National de la Recherche Scientifique et Technologique (CENAREST) du Gabon, organisme public de recherche dont il assure actuellement la direction exécutive en tant que Commissaire général. Il a dirigé pendant près de 10 ans l'Institut de Recherche en Écologie Tropicale (IRET, Gabon) et a supervisé des travaux de recherche couvrant différents aspects de l'écologie et de la biodiversité des forêts tropicales africaines. Pr Alfred Ngomanda est un expert reconnu en matière de mesure et suivi des stocks de carbone forestier. Il possède des connaissances approfondies sur l'écologie des arbres des forêts du bassin du Congo, grâce aux nombreux projets scientifiques qu'il a dirigés au cours des deux dernières décennies.

Ir Anicet Ngomin est ingénieur des eaux et forêts Hors échelle et diplômé d'Études supérieures spécialisées (DESS) en technologie des semences végétales. Il jouit d'une expérience professionnelle de 30 ans au sein du ministère des Forêts et de la Faune (MINFOF) du Cameroun, où il officie comme Directeur des Forêts et anime l'un des programmes phares, intitulé : « Aménagement des Forêts et renouvellement de la ressource ». Il a également des responsabilités connexes en matière de gestion forestière qui font de lui le point focal national de plusieurs initiatives sous-régionales et internationales et coordonnateur de nombreux programmes nationaux. Ses autres domaines d'expertise relatifs à la gouvernance forestière, la sylviculture, la restauration des paysages forestiers et le climat, ont conduit, sous sa coordination et en tant qu'ingénieur du marché de l'État, au développement du Système Informatique de Gestion des Informations Forestières de 2ème génération (SIGIF 2), à la publication en 2015 d'un ouvrage intitulé : « Sylviculture de 2ème Génération au Cameroun : Bases conceptuelles, schéma et leviers d'opérationnalisation – MINFOF-GIZ », et à l'élaboration du Programme national de Développement des Plantations Forestières (PNDPF).

Ir Valerie Tchuante Tite occupe le poste d'Expert en Suivi Évaluation à la COMIFAC, institution où il travaille depuis 2007 et où il a, entre autres, coordonné un projet régional sur le suivi des Objectifs de Développement Durable (ODD). Il cumule 23 ans d'expérience professionnelle dans le domaine de la conservation et la gestion durable des ressources naturelles et forestières en Afrique centrale, avec de fortes compétences dans le développement et l'opérationnalisation des systèmes de suivi-évaluation du
Plan de convergence, des projets et programmes sous-régionaux, la planification
stratégique et opérationnelle, et le développement des outils pour le suivi des ODD.
Il est ingénieur des eaux et forêts, titulaire d'un Diplôme d'Études professionnelles
approfondies en gestion de l'environnement.

Pr Jean-Louis Doucet est professeur à Gembloux Agro-Bio Tech (Université de Liège), à l'ERAIFT (RDC) et à l'USTM (Gabon). Il préside Forest is Life, une Cellule d'appui à la recherche et à l'enseignement de l'unité TERRA (Université de Liège), dont les activités concernent le fonctionnement des écosystèmes forestiers et agroforestiers, leurs réactions aux changements planétaires et la valorisation durable des ressources ligneuses et non ligneuses. Son approche privilégie les partenariats entre le monde universitaire, le secteur privé et le milieu associatif, ce qui lui permet de mener des recherches appliquées visant à améliorer la gestion des écosystèmes forestiers. Il est à l'origine des premiers enrichissements forestiers menés dans les concessions forestières d'Afrique centrale.
PHOTOGRAPHIES

A.D. – Armel Donkpegan

C.M. – Carl Moumbogou

D.H. – Didier Hubert

E.B. – Ehoarn Bidault (voir www.tropicos.org)

D.L. – Dominique Louppe

F.T. – Félicien Tosso

J.-F.G. – Jean-François Gillet

J.-L.D. – Jean-Louis Doucet

J.-Y.D. – Jean-Yves Devleeschouwer

K.D. – Kasso Daïnou

N.B. – Nils Bourland

P.F. – Philippe Frégeac

Q.M. – Quentin Meunier

S.B.A. – Sertillange Bienvenu Ango

T.S. – Tariq Stévart (voir www.tropicos.org)
REMERCIEMENTS

Cet ouvrage a été financé par le Programme de Promotion de l'Exploitation Certifiée des Forêts (PPECF), mis en œuvre par la Commission des Forêts d'Afrique Centrale (COMIFAC) grâce à des fonds de la KFW, et le Fonds Français pour l'Environnement Mondial (FFEM). Les auteurs remercient plus particulièrement Romain Lorent et Aurélie Ahmim-Richard qui ont soutenu le projet avec ferveur. Ils remercient aussi chaleureusement Sylvie Gourlet-Fleury, qui en dépit d'occupations prenantes, a toujours accordé du temps à la relecture des versions successives du manuscrit.

Le contenu de ce guide a été grandement enrichi par l'expérience sylvicole accumulée au sein de diverses concessions attribuées à des sociétés forestières engagées dans la gestion durable. Pour Precious Woods-CEB, nous remercions particulièrement Markus Brütsch, Frédéric Ober, Jean Mounguengui, Philippe Jeanmart, David Zakamdi, Markus Pfannkuch, Ernst Brugger, Jean-Marie Pasquier, Patrick Geffroy, Xavier Jaffret, Rémi Duval, Luis Teixeira, Hilaire Bingoulou, Roméo Yaba, Ghislain Mvong Aboghe, Grâce Messie, Armand Boubady, Isaac Youb, Romaric Ndonda Makemba, Handy Bounda, Stévy Ekome Nna, Jean-Bosco Bokomba, Augustin Assam, Blanchard Mombo Ngoulou, Thibault Lekeki, Jean Arnice Mboulamab, Jean-Louis Nziengui, Eddy Axel Mangoumbou Bouchedy, Léo Mboumba, Paulin Nso Nka. Pour GrumCam-AlpiCam, nous tenons à remercier particulièrement Angelo Piazzalunga, Mirco Moscatelli, Jean Ardène Zigigie, Olivier Mbick II, Frédéric Steve Mezanze, Paul Biyembe Zok, Mamoudou Aladji, Diane Mbaga et Serge Raoul Ebassa. Pour Pallisco, les personnes suivantes ont particulièrement contribué à la réalisation des plantations expérimentales : Paul Lagoute, Loïc Douaud, Michel Rougeron, Fousséni Fétéké, Yanick Serge Nkoulou Nkoulou, Patrice Tekam, Bienvenu Sertillange Ango, Théophile Ayol, Chamberlain Sembong, Gervais Edong Dong Djah, Walter Babolo Ntynti, Marcelin Djihe, Juslain Mpele, Sandrine Suzanne Tchuinmogne, Crepin Djopamde, Ismaïla Nana, Gabriel Nguele, Hermaine Bilbel, Clovis Aimé Kengni Di, Azor Sanoudji, Isaac Blaise Mbe, Éric Guentang Tetka, Jean Abat, Gael Priski Otsam, Samuel Nzouang, Patrick Anoumian, Marc Sidoine Djudom, Igor Boris Andoulo, Axel Joël Mpantoa, Roméo Mve Bohol, Francis Mgbamissoh et Rostand Masther Mankono. Les essais effectués chez SFID (quand cette société était détenue par Rougier) ont particulièrement bénéficié de l'appui de Jean-Pierre Champeaux, Paul-Emmanuel Huet, Frédéric Valentin, Yan Roue, Serge Djamen, Steve Ngapout, Benjamin Ngonde, Patrice Ondoua, Guy Roger Oyono, Benjamin Kachiwouo, Joselin Mouzome, Elvis Mebouomb, Victor Mogassi, Amidouh Dnadjoma, Simplice Mayeme, Jean-Félix Asso'olo, Martial Mianteng, Yves Tipi, Engelbert Obama et Thomas Azombo Zeh. Quant aux plantations installées et suivies par Wijma Cameroun, nous avons pu compter sur les contributions de Jacky Rivière, Sébastien Delion, Ngwendson Ekema Voma, Camille Simo Kamdem, Cyrille Bassoko, Elvis Egbe Ntui, Pascal Ndock, Roger Lapnet, Max Enguedi Amba et Carl Ngolle. Nous remercions aussi l'entreprise Millet pour son soutien financier aux activités de
reboisement menées au Gabon.

Carolina Levicek, en concertation étroite avec les auteurs, a réalisé les dessins du présent guide tout en contribuant à son édition. Les Presses agronomiques de Gembloux, et plus particulièrement Eléonore Beckers, ont été au cœur de l'édition de l'ouvrage. Diverses autres personnes ont significativement contribué à l'aboutissement du guide ; nous citerons notamment Marie-Alice Noizet, Jean-Yves De Vleeschouwer, Gauthier Ligot, Morgane Gaudin, Cédric Vermeulen, Faustin Joseph Dembi, Jean-François Gillet, Emmanuel Kasongo, Vincent Istace, Aichetou Ngoungoure Manjeli, Gloria Assimbo et Boniface Posho Ndoola.
TABLE DES MATIÈRES

<table><tr><td>PRÉAMBULE</td><td>20</td></tr><tr><td>1. AU DÉPART, UN PROGRAMME DE PLANTATION</td><td>23</td></tr><tr><td>2. CHOIX DES ESPÈCES PRIORITAIRES À PLANTER</td><td>29</td></tr><tr><td>2.1 Choix parmi les espèces exploitées</td><td>31</td></tr><tr><td>2.1.1 Espèces fortement exploitées</td><td>31</td></tr><tr><td>2.1.2 Espèces exploitées à faible régénération naturelle</td><td>31</td></tr><tr><td>2.1.3 Espèces exploitées à faible densité de population</td><td>31</td></tr><tr><td>2.1.4 Espèces exploitées jugées vulnérables</td><td>33</td></tr><tr><td>2.1.5 Promotion des espèces alternatives</td><td>33</td></tr><tr><td>2.2 Choix parmi les espèces à valeur socioculturelle</td><td>34</td></tr><tr><td>3. IDENTIFICATION DES SEMENCIERS ET GESTION DES SEMENCES</td><td>37</td></tr><tr><td>3.1 Planification de la collecte des semences</td><td>39</td></tr><tr><td>3.2 Semenciers – Considérations de base</td><td>42</td></tr><tr><td>3.3 Semenciers – Aspects physiques de l’arbre idéal</td><td>43</td></tr><tr><td>3.4 Semenciers – Nombre minimal de semences par lot et distance inter-arbres</td><td>45</td></tr><tr><td>3.5 Semenciers – Origines/sources des lots de semences</td><td>47</td></tr><tr><td>3.6 Semenciers et semences – Identification des bons arbres-mères</td><td>49</td></tr><tr><td>3.7 Semences – Méthodes de collecte et premier tri</td><td>51</td></tr><tr><td>3.8 Semences – Manipulation et conservation</td><td>52</td></tr><tr><td>4. PÉPINIÈRE : DE LA CONSTRUCTION À LA GESTION QUOTIDIENNE</td><td>57</td></tr><tr><td>4.1 Pourquoi investir dans une pépinière?</td><td>59</td></tr><tr><td>4.2 Choix du site de la pépinière et tâches préliminaires</td><td>60</td></tr><tr><td>4.3 Construction de la pépinière</td><td>64</td></tr><tr><td>4.3.1 Réalisation du plan de l’emprise de la pépinière</td><td>64</td></tr><tr><td>4.3.2 Estimation des besoins pour la construction du cœur de la pépinière</td><td>66</td></tr><tr><td>4.3.3 Construction proprement dite du cœur de la pépinière</td><td>67</td></tr></table>
<table>
  <tbody>
    <tr>
      <td>4.4 Matériel nécessaire au fonctionnement quotidien de la pépinière</td>
      <td>72</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.5 Choix du type de conteneur des plants</td>
      <td>73</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.6 Substrats et semis</td>
      <td>76</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.6.1 Propriétés du substrat idéal</td>
      <td>76</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.6.2 Dimensions, remplissage et rangement des sachets ou pots</td>
      <td>79</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.6.3 Prétraitements avant semis</td>
      <td>81</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.6.4 Modalités de semis</td>
      <td>88</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.7 Taux moyens de germination</td>
      <td>90</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.8 Bouturage - Cas de l'ayous (Triplochiton scleroxylon)</td>
      <td>92</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.9 Entretien quotidien de la pépinière</td>
      <td>96</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.9.1 Identification et suivi des lots de plants</td>
      <td>96</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.9.2 Entretien des infrastructures et du site de la pépinière</td>
      <td>100</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.9.3 Entretien et éducation des lots de plants</td>
      <td>100</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>4.9.4 Gestion des déchets polluants</td>
      <td>106</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5. CATÉGORISATION DES MILIEUX ET TYPES DE PLANTATION</td>
      <td>109</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.1 Catégories de milieux de plantation</td>
      <td>111</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.2 Exemples de milieux de plantation</td>
      <td>112</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.2.1 Enclaves savanicoles en milieu de forêt dense</td>
      <td>112</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.2.2 Du champ de culture à la forêt dégradée</td>
      <td>114</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.2.3 Parcs-forêt ou parcs de chargement</td>
      <td>114</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.2.4 Trouées d'abattage</td>
      <td>116</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.2.5 Layons forestiers et plantations en sous-bois forestier</td>
      <td>116</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.3 Types de plantation en milieux ouverts et intermédiaires</td>
      <td>120</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.3.1 Plantations pures ou monospécifiques</td>
      <td>120</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.3.2 Plantations en mélange ou plurispécifiques</td>
      <td>120</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>5.4 Types de plantation en milieux fermés</td>
      <td>122</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>6. MISE EN PLACE DE LA PLANTATION</td>
      <td>123</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>6.1 Critères de choix de la parcelle de plantation</td>
      <td>125</td>
    </tr>
  </tbody>
</table>
<table>
  <tbody>
    <tr>
      <td>6.2 Dégagement initial du site de plantation</td>
      <td>126</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>6.3 Densité de plantation et piquetage</td>
      <td>129</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>6.4 De la trouaison à la transplantation</td>
      <td>132</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>6.4.1 Trouaison de la parcelle</td>
      <td>132</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>6.4.2 Transport des plants et transplantation sur le site final</td>
      <td>132</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>7. DÉGAGEMENT ET ÉCLAIRCIE DES PLANTATIONS</td>
      <td>137</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>7.1 Dégagement des plantations</td>
      <td>139</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>7.2 Éclaircie des plantations</td>
      <td>140</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8. ITINÉRAIRE SYLVICOLE D'ESSENCES AUTOCHTONES DES FORÊTS DENSES AFRICAINES</td>
      <td>143</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.1 Description des éléments d'une fiche d'itinéraire de plantation</td>
      <td>145</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.2 Itinéraire sylvicole connu de 50 essences forestières</td>
      <td>151</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.3 Essences recommandables par type forestier</td>
      <td>254</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.3.1 Espèces recommandées pour les zones de forêt sempervirente</td>
      <td>254</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.3.2 Espèces recommandées pour les zones de forêt de transition</td>
      <td>255</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.3.3 Espèces recommandées pour les zones de forêt semi-décidue</td>
      <td>255</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>8.3.4 Perspectives liées aux effets du changement climatique global</td>
      <td>255</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9. FINANCEMENT ET RENTABILITÉ D'UN PROGRAMME DE PLANTATION FORESTIÈRE</td>
      <td>263</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.1 Coût de mise en œuvre d'un programme d'enrichissement forestier</td>
      <td>265</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.1.1 Coût pour des plantations en forêt dégradée avec une équipe permanente</td>
      <td>265</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.1.2 Coût pour des plantations en forêt dégradée combinant une équipe permanente et une équipe temporaire</td>
      <td>266</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.1.3 Coût pour des plantations en trouée d'abattage avec une équipe permanente</td>
      <td>267</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.2 Rentabilité financière des plantations d'arbres tropicaux</td>
      <td>267</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.2.1 Notions de valeur actualisée nette et de taux de rentabilité interne</td>
      <td>267</td>
    </tr>
    <tr>
      <td>9.2.2 Estimation de la rentabilité financière d'une plantation d'essences locales</td>
      <td>275</td>
    </tr>
  </tbody>
</table>
<table><tr><td>10. RECOMMANDATION FINALE</td><td>279</td></tr><tr><td>11. GLOSSAIRE ET ACRONYMES</td><td>283</td></tr><tr><td>12. RÉFÉRENCES</td><td>291</td></tr><tr><td>13. ANNEXES</td><td>299</td></tr></table>
# PRÉAMBULE

La sylviculture est une série d'actions destinée à influencer les caractéristiques et le développement d'un boisement naturel ou artificiel, afin d'en tirer un bénéfice quelconque. Le sylviculteur est une personne entretenant ou cultivant la forêt ou le boisement. À ce titre, **le gestionnaire d'une plantation d'arbres est aussi un sylviculteur**, terme qui désignera dans cet ouvrage tout intervenant actif d'un programme de reboisement par voies artificielles.

**Pertinence du guide** – L'installation d'une plantation d'arbres répond à un ou plusieurs objectifs : (i) la production de bois ; (ii) la conservation in-situ de ressources ligneuses spéciales ou d'un habitat exploité ou menacé (plantations conservatoires) ; (iii) la production d'un produit forestier non ligneux (PFNL : fruit, graine, feuille, écorce, etc.). L'initiative peut être volontaire ou imposée par une norme légale, afin de restaurer l'ambiance forestière après une activité ayant dégradé le milieu. Elle peut aussi être suggérée dans le cadre d'un processus de certification de gestion durable, en lien avec l'épuisement progressif de ressources forestières particulières. En particulier, les gestionnaires de concessions de forêt dense tropicale sont progressivement confrontés à la nécessité de planter des espèces locales, pour les raisons énoncées précédemment. Ce regain d'intérêt pour la mise en œuvre d'une sylviculture de plantation d'arbres se heurte néanmoins à des incertitudes autour des performances des espèces ligneuses locales. Pour le sylviculteur souhaitant limiter les risques d'échec, les seules solutions possibles consistent soit à effectuer préalablement ses propres expérimentations avant une mise en œuvre à plus large échelle, soit à se documenter suffisamment sur les espèces qui l'intéressent. Malheureusement, les publications pouvant conseiller les sylviculteurs concernent généralement des résultats sur une ou quelques espèces, dans un environnement spécifique et par une méthode particulière.

**Régions et publics cibles** – Ce guide ambitionne de fournir des recommandations aux sylviculteurs intéressés par les plantations d'espèces autochtones en milieu tropical humide. Il synthétise les connaissances acquises pour une série d'espèces ligneuses des forêts denses humides d'Afrique subsaharienne. **Le guide est basé sur des données publiées ou non, accumulées par des partenaires d'envergure internationale ou de pays d'Afrique centrale et occidentale.** Bien que n'ayant pas la prétention d'être basé sur une recherche documentaire exhaustive, le guide fournit un maximum d'informations pratiques et d'illustrations pour une cinquantaine d'espèces dont l'itinéraire sylvicole est relativement bien maîtrisé. Pour des raisons environnementales, le guide fait également le choix d'une sylviculture limitant le recours aux produits chimiques. Il propose des techniques offrant le meilleur compromis entre investissements et résultats.

Ce guide sera particulièrement utile aux entreprises d'exploitation de bois africain désireuses de mener des programmes sylvicoles sur le long terme. **Il devrait intéresser,**
en particulier, les sociétés certifiées par un label de légalité ou de gestion durable.

Mais elles ne constituent pas le seul public cible : l'ouvrage est également destiné aux techniciens forestiers, aux étudiants et enseignants de disciplines forestières.

**Structure de l'ouvrage** – Le document est organisé suivant la chronologie des activités mises en œuvre dans un programme de plantation. En fonction de l'information disponible pour une activité donnée, des espèces peuvent être évoquées dans un chapitre et pas dans un autre. Le guide comprend deux grandes parties techniques. La première englobe les chapitres un à sept qui abordent les aspects techniques généraux, depuis l'établissement du programme de plantation et la sélection des espèces, jusqu'à la plantation proprement dite et à sa gestion. La seconde partie correspond au huitième chapitre qui décrit l'itinéraire de plantation de 50 espèces à haute valeur socio-économique des forêts denses humides d'Afrique. Elle finit par un chapitre synthétisant les espèces recommandées par type de végétation. La troisième partie donne une estimation de l'investissement nécessaire à la mise en œuvre d'un programme de plantation d'arbres.

Les espèces décrites dans des fiches spécifiques font l'objet d'un important commerce international (30 des principales essences de bois d'œuvre) et sont fortement utilisées par les populations locales pour les PFNL qu'elles fournissent (une quinzaine d'espèces). À cette liste, ont été ajoutées quelques essences à promouvoir pour leurs utilités commerciales potentielles.

Les sigles, ainsi que certains mots et expressions potentiellement complexes sont écrits en bleu et définis dans le glossaire en fin d'ouvrage. Enfin, dans la mesure où les noms pilotes des espèces d'arbres varient parfois entre pays, il a été choisi d'utiliser la nomenclature de l'Association Technique Internationale des Bois Tropicaux[1] (ATIBT). Les noms pilotes sont accompagnés des noms scientifiques. Des encadrés sont proposés pour mieux expliquer certaines notions ; ils sont écrits sur un fond orange quand ils sont destinés à tout lecteur, et sur un fond vert quand ils sont supposés aborder davantage des notions plus complexes.
<figure><img src="image_15.png" /></figure>
<figure><img src="image_16.png" /></figure>

# 1. AU DÉPART, UN PROGRAMME DE PLANTATION
© K. Dainou

La planification écrite des actions à mener contribue au succès des programmes sylvicoles de moyenne à grande envergure.
À l'image d'un plan d'aménagement forestier, toute initiative de reboisement mérite que les objectifs et la stratégie qui en découle soient clairement énoncés, idéalement, sous forme écrite. Un tel document est le programme ou le projet de plantation. En fonction du sylviculteur, il peut être plus ou moins détaillé, techniquement et économiquement parlant, et préciser la chronologie des activités sur le moyen ou long terme. Dans tous les cas, le programme de plantation répond à trois interrogations de base : pourquoi ? quoi ? comment ?

1) **Pourquoi planter ?** La réponse à cette question revient **à identifier les problèmes à l'origine** de la décision de planter des arbres : soucis actuels ou prévisibles d'ordre environnemental, écologique, financier, etc. L'énoncé du problème revient aussi à définir les objectifs de l'action envisagée, en termes d'engvergure (Illustration 1) : finalités et résultats espérés (i) dans le temps (temps d'investissement, temps de récolte du produit final) ; et (ii) dans l'espace (superficie à planter et où planter).

2) **Quoi planter ?** Une espèce d'arbre n'est pas une autre, chaque espèce ayant ses spécificités et ses caractéristiques qui permettent ou non certaines activités. L'énoncé de l'objectif du projet de plantation conduit logiquement à **identifier les espèces susceptibles de répondre aux finalités de la démarche** (Illustration 1).

3) **Comment planter et gérer la plantation ?** Cette dernière question

regroupe l'ensemble des techniques qui seront mises en œuvre afin d'atteindre l'objectif final. Sachant que la production de plants en pépinière sera envisagée dans la majorité des cas, la stratégie de plantation englobe toutes les étapes allant de la collecte des semences à la conduite de la plantation établie. Tant que les objectifs initiaux et les espèces choisis resteront inchangés, cette série d'étapes reste également inchangée et devient un cycle (Illustration 1). Enfin, outre les aspects techniques, on n'oubliera pas que la gestion d'un projet de reboisement artificiel **inclut aussi des volets financiers, économiques, voire socioculturels**.

Ces trois principales questions résument les grandes étapes d'un programme de plantation d'arbres.

Dans la mesure où la première partie (problèmes et objectifs) dépend forte-ment de chaque sylviculteur, elle ne sera pas davantage développée, hormis les évocations d'objectifs de plantation figu-rant dans le **Préambule**. La seconde par-tie (espèces à planter) trouve des pistes de réponse dans le second chapitre du guide. Le choix final dépendra du sylvi-culteur et du contexte de plantation. La troisième partie d'un projet de planta-tion concentre les travaux techniques à mettre en œuvre, ainsi que les budgets requis et éventuellement les retombées futures. Ils sont largement décrits dans le présent ouvrage, du **Chapitre 3** au **Chapitre 8**, auxquels le lecteur est ren-voyé. Comme dans tout projet en milieu forestier, les activités d'enrichissement fo-restier requièrent des précautions pour la
sécurité des travailleurs (Photo 1). Cet aspect doit être développé dans le projet de plantation et les mesures appropriées doivent être énoncées, en phase avec les normes nationales ou de certification forestière, quand il s'agit d'une entreprise forestière certifiée. En particulier :

- chaque intervenant doit être doté de l'équipement de travail et de

protection individuelle adapté : tenue de travail, casque, lunettes de protection, gants, limes, machette, trousse de premiers secours, etc.;

- en cas d'usage d'une tronçonneuse, l'ouvrier la manipulant doit être formé à cet effet et pourvu des outils appropriés pour son usage.

<figure><img src="image_17.png" /><figcaption>Illustration 1. Schématisation des principales parties d'un programme de plantation.</figcaption></figure>
<figure><img src="image_18.png" /></figure>

**Photo 1.** La sécurité d'un projet de plantation débute en pépinière. Serpent (probablement la couleuvre émeraude, *Hapsidophrys smaragdinus*) surgi d'un lot de plantules de bété (Mansonia altissima) en pépinière. © K.D.

Ce genre de rencontre, inoffensif ou plus ou moins risqué, peut être géré en pépinière en adoptant certaines précautions : agiter chaque lot de grands plants à l'aide d'un bâton avant d'y plonger la main, être formé aux gestes de premiers secours, être formé à reconnaître les animaux venimeux, disposer d'un moyen de contact rapide des urgences.
<figure><img src="image_19.png" /></figure>
PLANTATION N°07

UFA 10044

Coordonnées GPS 0333829 0393629

Date de mise en place

Nombre de plants 1180

Mars 2010

Acajou 75 Plants

Bété 380 Plants

Dabéma 50 Plants

Doussié 75 Plants

Fraké

Okan

Padouk

Fraké

75 Plants

100 Plants

25 Plants

400 Plants

PARTENARIAT

<figure><img src="image_20.png" /></figure>

<figure><img src="image_21.png" /></figure>

PALLISCO

<figure><img src="image_22.png" /></figure>

gembloux
agro bio tech

2. CHOIX DES ESPÈCES PRIORITAIRES À PLANTER
© J.-L. Doucet

Choisir des espèces en fonction des conditions du milieu est une des clés du succès.
Les espèces prioritaires pour les plantations forestières pourraient être définies dans des textes légaux des pays d'Afrique subsaharienne ; des réflexions dans ce sens seraient en cours au Cameroun, par exemple[2]. En l'absence de telles listes d'espèces, le choix revient au sylviculteur en fonction du contexte et de ses objectifs.

Ainsi qu'expliqué en préambule, un accent a été mis sur les espèces de bois d'œuvre, en prenant en compte les préoccupations des concessionnaires forestiers. Ces derniers gèrent en effet 49,6 millions ha de forêt en Afrique centrale (dont 49 % sont aménagés[3]) et sont souvent confrontés à d'importants enjeux de pérennisation de la ressource.

## 2.1 Choix parmi les espèces exploitées

### 2.1.1 Espèces fortement exploitées

Les concessionnaires forestiers d'Afrique centrale focalisent l'essentiel de la production ligneuse sur une douzaine d'espèces : okoumé (Aucoumea klaineana), sapelli (Entandrophragma cylindricum), ayous (Triplochiton scleroxylon), tali (Erythrophleum spp.), azobé (Lophira alata), okan (Cylicodiscus gabunensis), iroko (Milicia spp.), padouk d'Afrique (Pterocarpus soyauxii), kosipo (Entandrophragma candollei), limba (Terminalia superba), sipo (Entandrophragma utile) et wengé (Millettia laurentii). Les quatre espèces les plus exploitées – okoumé, sapelli, ayous et tali – représentent plus de 75 % du volume officiellement commercialisé. Sans intervention humaine, il est certain que

les stocks exploitables de ces espèces diminueront au fil du temps. Ces espèces commerciales importantes, quel que soit l'état de leur régénération naturelle, devraient être incluses dans les programmes de plantation des concessions où elles sont exploitées.

### 2.1.2 Espèces exploitées à faible régénération naturelle

À l'échelle des concessions, certaines espèces peuvent afficher des problèmes de **régénération naturelle** (faible densité dans les premières classes diamétriques comparativement aux classes intermédiaires) ou de **reconstitution** (moindre abondance des effectifs exploitables futurs comparativement à ceux exploités aujourd'hui). Ces espèces peuvent être identifiées grâce aux données d'inventaire d'aménagement : (i) la distribution de leurs effectifs par classe diamétrique est un bon indicateur de l'état de la régénération (Illustration 2) ; (ii) le calcul du taux de reconstitution[4] donne une estimation des stocks futurs par rapport aux stocks actuels.

### 2.1.3 Espèces exploitées à faible densité de population

Les espèces parfois qualifiées de « spéciales » peuvent être ciblées dans les programmes de reboisement. Il s'agit notamment des espèces rares dans une concession (à très faible densité de population) et/ou de celles listées comme menacées à l'échelle nationale ou internationale. Il n'y a pas de texte légal portant sur les espèces rares dans les pays d'Afrique centrale, hormis en
République centrafricaine et en Répu-
blique du Congo. En pratique, de nom-
breux plans d'aménagement proposent
d'exclure de l'exploitation les espèces dont
la densité est inférieure à 5 tiges/km² à
dhp ≥ 20 cm (dhp = diamètre à hauteur de
poitrine, conventionnellement à 1,30 m).
Cette valeur semble un minimum puisque
d'autres travaux scientifiques suggèrent

un seuil d'exclusion plus élevé, de
10 tiges/km² à dhp ≥ 20 cm[5, 6]. Au sein
d'une concession, et sans préjuger des
densités observées dans les zones vois-
sines, **il est recommandé d'intégrer les
espèces localement rares, exploitées
ou non, dans le programme de reboise-
ment, pour autant qu'on puisse aisément
récolter les semences** (voir **Section 3**).

<figure><img src="image_23.png" /></figure>

**Illustration 2.** Répartitions par classes diamétriques des effectifs de populations d'arbres (structures diamétriques).

A – La structure est typique des populations naturelles «en équilibre», avec une réduction graduelle des effectifs des petites aux grandes tiges. B – La structure est dite «en cloche» et indique généralement un déficit de **régénération naturelle** chez cette espèce.

<footnote>i La République centrafricaine définit un seuil d'interdiction d'exploiter de : (i) 0,10 tige/ha à dhp ≥ 10 cm et pour les espèces ayant des effectifs nuls dans certaines classes diamétriques ; ou (ii) 0,02 tige/ha à dhp ≥ 20 cm lorsque toutes les classes diamétriques sont représentées. La République du Congo fixe le seuil d'interdiction d'exploiter à 0,02 tige/ha à dhp.</footnote>
### 2.1.4 Espèces exploitées jugées vulnérables

Pour ce qui est des espèces menacées, le sylviculteur peut avoir recours à des répertoires nationaux et internationaux pour l'identification des essences candidates au reboisement (Photo 2). En Afrique centrale, il n'y a qu'au Cameroun qu'on puisse trouver une « Liste rouge nationale »[7] (Encadré 1). Un ouvrage similaire existe en Afrique occidentale pour le Bénin.

À l'échelle internationale, on aura recours à certaines catégories de la Liste rouge de l'UICN et aux Annexes de la CITES (Encadré 1) qui seront comparées aux espèces inventoriées dans la concession. Sur cette base, les espèces aujourd'hui concernées sont : afrormosia (Pericopsis elata), bubinga (Guibourtica spp.), mukulungu (Autranella congelensis), wengé (Millettia laurentii) et zingana (Microberlinia bisulcata).

#### Encadré 1. Espèces menacées pour le bois d'œuvre

En Afrique subsaharienne forestière, des « Listes rouges nationales » de plantes ont été élaborées au Cameroun et au Bénin, suivant les critères de l'UICN. Toutefois, ces listes nationales fondent leur catégorisation sur la démarche adoptée par l'UICN pour sa Liste rouge globale, démarche et résultats qui méritent une révision d'après l'UICN elle-même, en ce qui concerne les végétaux tropicaux tout au moins. En attendant la finalisation de cette révision (révision en cours), il est suggéré de considérer comme menacées les espèces listées dans les deux catégories suivantes : « En danger critique » (CR ; l'espèce est confrontée à un risque élevé d'extinction à l'état sauvage) ; « En danger » (EN ; l'espèce est confrontée à un risque très élevé d'extinction à l'état sauvage).

Pour ce qui est des Annexes de la CITES, les Annexes I et II peuvent servir de source d'identification. L'Annexe I regroupe les espèces menacées d'extinction et qui ne peuvent être commercialisées en dehors de conditions exceptionnelles. L'Annexe II regroupe les espèces potentiellement menacées en cas de commerce international non contrôlé ; un permis d'exportation ou un certificat de réexportation est requis en cas de commercialisation.

Les espèces exploitées et considérées comme menacées aux échelles nationales ou internationales devraient être incluses dans les programmes de reboisement.

### 2.1.5 Promotion des espèces alternatives

De nombreuses espèces d'arbres ne sont pas aujourd'hui exploitées pour le bois

d'œuvre, bien qu'ayant des propriétés technologiques proches de celles des espèces traditionnellement commercialisées. Dans les plans d'aménagement,
ces espèces sont parfois nommées « es-
pèces de promotion », ou apparaissent
ailleurs sous le vocable « espèces peu
connues/peu utilisées » (Lesser Used Spe-
cies ou LUS, Less Known Timber Species
ou LKTS). Un ouvrage de l'ATIBT fournit
une liste d'espèces, actuellement com-
mercialisées ou à promouvoir, en fonc-
tion de leurs propriétés technologiques

et usages[8]. La promotion de ces espèces
méconnues est entretenue par des orga-
nismes tels que l'ATIBT, le FSC-Danemark,
l'OIBT, le WWF (Encadré 2). Afin de ne
pas répéter les erreurs du passé (c'est-
à-dire miser uniquement sur le potentiel
naturel), il est primordial d'envisager
dès à présent des plantations d'espèces
de promotion.

Encadré 2. Espèces à promouvoir pour le bois d'œuvre

La promotion des espèces de bois d'œuvre peu connues (ou LKTS pour « Less Known Timber Species») a débuté vers le début des années 2010, bien que divers auteurs aient suggéré auparavant la nécessité de diversifier les espèces tropicales exploitées. Un ouvrage de l'ATIBT fournit une liste d'espèces, actuellement commercialisées ou non, en fonction de leurs propriétés technologiques et usages (voir [8, p.16]). L'ATIBT continue de soutenir la vulgarisation des espèces peu connues (https://www.atibt.org/fr/projet/lkts-2020/). FSC-Danemark consacre un site web à cette problématique (http://www.lesserknowntimberspecies.com/). Il est aussi possible de trouver un guide du WWF proposant des alternatives aux principales espèces commerciales actuelles : https://www.worldwildlife.org/publications/guide-to-lesser-known-tropical-timber-species. Enfin, l'OIBT propose un site web analogue : http://www.tropicaltimber.info/fr/#panel2.

Les espèces de promotion devraient être incluses dans les programmes de re-
boisement : il s'agit d'une mesure de précaution permettant d'anticiper les effets
d'éventuelles exploitations soutenues de ces essences.

## 2.2 Choix parmi les espèces à valeur socioculturelle

Pour une bonne frange des ménages ru-
raux, l'objectif de plantation sera lié aux
produits autres que le bois de l'arbre :
écorce, feuille, abri pour chenilles, etc.
Les arbres à fruits et/ou à graines comes-
tibles prisés en Afrique varient d'une zone
à l'autre, mais on peut citer l'essessang
(Ricinodendron heudelotii), le manguier

sauvage (Irvingia gabonensis), le moabi
(Baillonella toxisperma, **Photo 3**)⁹,
ainsi que les arbres abritant périodiquement
des chenilles collectées par les populations
 locales, notamment le sapelli (Entandro-
 phragma cylindricum) et l'ayous (Triplochi-
ton scleroxylon)¹⁰. Promouvoir la planta-
tion de telles espèces est d'autant plus
pertinent que certaines – dites «concur-
rentielles»¹¹– sont à l'origine de conflits
sociaux entre les sociétés forestières
<figure><img src="image_24.png" /><figcaption>Afrormosia (Pericopsis elata) © F.T.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_25.png" /><figcaption>Bubinga (Guibourtia tessmannii) © J.-L.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_26.png" /><figcaption>Mukulungu (Autranella congoiensis) © J.-L.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_27.png" /><figcaption>Wengé (Millettia laurentii) © J.-L.D.</figcaption></figure>

**Photo 2.** Exemples d'espèces d'arbres commerciales jugées menacées par l'UICN et/ou la CITES.
et les **communautés rurales** (exemples : sapelli - *Entandrophragma cylindricum* et moabi - *Baillonella toxisperma*) : les deux parties gagneraient à accroître les effectifs de ces espèces d'arbres dans leur environnement commun.

<figure><img src="image_28.png" /><figcaption>**Photo 3.** Exemple d'une espèce à forte valeur socioculturelle et concurrentielle : le moabi (*Baillonella toxisperma*). Jeune arbre, et fruits et graines. © J.-L.D.</figcaption></figure>
<figure><img src="image_29.png" /></figure>

3. IDENTIFICATION DES SEMENCIERS ET GESTION DES SEMENCES
© K. Daïnou

La maîtrise de la collecte et de la gestion des semences garantit la production de plants performants.
La disponibilité, à moindre coût, d'organes de multiplication des plants (semence, boutures, etc.) est essentielle à la réalisation des plantations. **La semence s'entend ici comme la graine ou le fruit assurant la reproduction d'une plante.** Dans les zones tropicales humides, et en l'absence d'un système officiel d'approvisionnement en graines d'espèces locales, la grande majorité des sylviculteurs aura recours à des collectes directement au pied de **semenciers, encore nommés arbres-mères ou arbres-parents.** Dans ce cas, il est important de prendre en compte un certain nombre de recommandations pratiques pour constituer des **lots de semences** de bonne qualité.

La multiplication de plants par voie végétative (bouturage, greffage, etc.) est coûteuse et techniquement contraignante. Elle sera traitée uniquement pour l'ayous (*Triplochiton scleroxylon*), pour des raisons détaillées dans la **Section 4.8**.

## 3.1 Planification de la collecte des semences

Il s'agit de la première étape d'opérationnalisation d'un programme de plantation. Lorsque les objectifs de plantation et les espèces à planter sont définis, la connaissance des périodes de production de fruits matures des espèces ciblées est un prérequis. À titre indicatif et en fonction

de l'information fiable disponible, le **Tableau 1 fournit par région le calendrier de fructification d'une série d'espèces ligneuses africaines de bois d'œuvre et de PFNL**<sup>ii</sup> [12]. Des calendriers de fructification sont également fournis pour les **essences détaillées dans la Section 8**. L'Afrique centrale, traversée par l'équateur climatique<sup>iii</sup>, a été subdivisée en deux zones car la **phénologie** des espèces varie parfois de part et d'autre de cette **charnière climatique** [13, 14].

Dès que la période de fructification est connue ou que l'arbre cible a été observé avec des fruits immatures, une planification de la récolte est recommandée. D'une manière générale, il est déconseillé de récolter les fruits ou graines en tout début ou en fin de fructification. Durant la pleine période de la fructification, la nécessité de récolter rapidement ou non des **semences** matures va dépendre de leur aptitude à demeurer longtemps viables. Cette aptitude ramène à deux grands groupes de **semences** : (i) les **semences orthodoxes**, capables d'être stockées sur de longues périodes sans perte de leur viabilité ou **pouvoir germinatif** ; et (ii) les **semences récalcitrantes**, devant être rapidement semées car ne pouvant survivre à un long stockage. Malheureusement, ces dernières sont très répandues parmi les espèces tropicales des forêts denses

<footnote>ii La référence [12] fournit également d'intéressantes indications sur les périodes de fructification d'arbres d'Afrique de l'Ouest.</footnote>

<footnote>iii L'équateur climatique ou **charnière climatique** est une bande délimitant le climat boréal (dans l'hémisphère Nord ; une principale saison sèche de décembre à février) et le climat austral (largement dans l'hémisphère Sud ; saison sèche de juin à août). La **charnière climatique** se situe légèrement au nord de l'équateur géographique. En Afrique centrale, elle est à la hauteur de la limite sud du Cameroun. Les références [13] et [14] proposent des cartes de l'équateur climatique en Afrique.</footnote>
humides : 60 à 70 % des semences des espèces ligneuses perdraient leur viabilité en 3 à 6 mois au maximum, à température ambiante[15]. Les semences récalcitrantes, dont les grosses graines provenant de fruits charnus (moabi – Baillonella toxisperma,

mangue sauvage – *Irvingia gabonensis*, etc.), nécessitent quelques précautions entre le moment de récolte et le semis ; de plus amples explications sont fournies dans la **Section 3.8**.

<table><caption>**Tableau 1.** Calendrier mensuel de fructification d'espèces des zones tropicales humides d'Afrique centrale et occidentale (cf. **Section 8** pour les principales espèces décrites dans le guide).</caption><thead><tr><th>Nom pilote et calendrier de fructification</th><th>Nom latin</th><th>Nom pilote et calendrier de fructification</th><th>Nom latin</th><th>Nom pilote et calendrier de fructification</th><th>Nom latin</th></tr></thead><tbody><tr><td></td><td>Dacryodes klaineana</td><td>Afame</td><td>Panda oleosa</td><td>Afrika</td><td>Strombosia pustulata</td></tr><tr><td></td><td>Antiaris toxicaria</td><td>Akossika</td><td>Scottellia klaineana</td><td>Akpa</td><td>Tetrapleura tetraptera</td></tr><tr><td></td><td>Desbordesia glaucescens</td><td>Amvout</td><td>Trichoscypha acuminata</td><td>Andiroba</td><td>Carapa procera</td></tr><tr><td></td><td>Irvingia gabonensis</td><td>Andoung</td><td>Bikinia letestui</td><td>Anguacu</td><td>Ongokea gore</td></tr><tr><td></td><td>Pouteria altissima</td><td>Awoura</td><td>Julbernardia pellegriniana</td><td>Bodioa</td><td>Anopyxis klaineana</td></tr></tbody></table>

Ca = Cameroun (R. du Cameroun)

Ga = Gabon (R. gabonaise)

Gu = Guinée Conakry (R. de Guinée)

Li = Libéria (R. du Libéria)

RC = R. du Congo

RDC = R. D. du Congo

<figure><img src="image_30.png" /></figure>

Afrique centrale, nord de l'équateur climatique

Afrique centrale, sud de l'équateur climatique

Afrique occidentale

J. F. M. etc. = Janvier, Février, Mars, etc.
<figure><img src="image_31.png" /></figure>

<table><thead><tr><th>Nom pilote et calendrier de fructification</th><th>Nom latin</th><th>Nom pilote et calendrier de fructification</th><th>Nom latin</th><th>Nom pilote et calendrier de fructification</th><th>Nom latin</th></tr></thead><tbody><tr><td></td><td>Guibourtia demeusei - G. tessmannii - G. pellegriniana</td><td></td><td>Coula edulis</td><td></td><td>Scorodophloeus zenkeri</td></tr><tr><td></td><td>Afzelia bella</td><td></td><td>Pentaclethra eetveldeana</td><td></td><td>Coelocaryon preussii</td></tr><tr><td></td><td>Petersianthus macrocarpus</td><td></td><td>Klainedoxa gabonensis</td><td></td><td>Vitex doniana</td></tr><tr><td></td><td>Eribroma oblongum</td><td></td><td>Dialium pachyphyllum</td><td></td><td>Daniellia ogea</td></tr><tr><td></td><td>Terminalia ivorensis</td><td></td><td>Albizia ferruginea</td><td></td><td>Testulea gabonensis</td></tr><tr><td></td><td>Pentadesma butyracea</td><td></td><td>Bombax brevicuspe</td><td></td><td>Amphimas ferrugineus</td></tr><tr><td></td><td>Parkia bicolor</td><td></td><td>Chrysophyllum lacourtianum</td><td></td><td>Detarium macrocarpum</td></tr></tbody></table>
<figure><img src="image_32.png" /></figure>

<table><thead><tr><th>Nom pilote et calen-drier de fructification</th><th>Nom latin</th><th>Nom pilote et calen-drier de fructification</th><th>Nom latin</th><th>Nom pilote et calen-drier de fructification</th><th>Nom latin</th></tr></thead><tbody><tr><td></td><td>Annickia affinis</td><td>Mubola</td><td>Pentaclethra macrophylla</td><td>Oesungs</td><td>Pteleopsis hylodendron</td></tr><tr><td></td><td>Dacryodes normandii</td><td>Ossoko</td><td>Scyphocephalium mannii</td><td>Ovoge</td><td>Poga oleosa</td></tr><tr><td></td><td>Symphonia globulifera</td><td>Oligo</td><td>Dacryodes buettneri</td><td>Safoulir</td><td>Dacryodes edulis</td></tr><tr><td></td><td>Parinari excelsa</td><td>Tchitola</td><td>Prioria oxyphylla</td><td>Wamba</td><td>Tessmannia africana</td></tr></tbody></table>

Notes: Les données d'Afrique centrale au nord de l'équateur climatique proviennent du Cameroun (Djoum, Ma'an, Mamfe, Mbang, Mindourou) et du nord de la République du Congo (Pokola, Kabo) – Les données d'Afrique centrale au sud de l'équateur climatique proviennent du Gabon (Ekouk, Bambidie) et de la R. D. du Congo (Babusoko-Luki) – Les données d'Afrique occidentale proviennent de Guinée-Conakry (Sérédou en Guinée forestière) et des environs de Monrovia (Libéria[¹⁶]).

## 3.2 Semenciers – Considérations de base

La semence est souvent le point de départ de nouveaux arbres, et elle contient le patrimoine génétique hérité des arbres-patrons. Ce patrimoine sera donc aussi celui du futur arbre planté. Aujourd'hui, il est bien connu que les arbres héritent assez

fortement de leurs parents les caractères qualitatifs – cylindricité, rectitude, élagage naturel, tolérance aux maladies, goût des fruits (qualités organoleptiques), etc. – ainsi que les propriétés du bois, à commencer par sa densité. Au moins 30 à 60 % de la « valeur » affichée par l'arbre pour les caractères précités dépend de son « héritage génétique »
(Encadré 3)[17]. Une plantation créée à partir de graines issues d'un semencier tordu, par exemple, risque d'afficher une forte proportion d'arbres également torsus. L'influence de l'héritage génétique concernant les caractères dendrométriques – hauteur totale, volume du bois, accroissement en hauteur ou en diamètre, etc. – est théoriquement plus faible,

surtout quand l'environnement de l'arbre-mère est différent de celui des descendants (les plantations). **Néanmoins, des plantations créées à partir de semences issues d'arbres à forte croissance en hauteur affichent aussi d'excellentes croissances, à condition de rester dans le même type d'environnement que celui des semenciers**[17].

## Encadré 3. Héritage génétique ? Héritabilité plus exactement

Le terme « héritage génétique » utilisé ici correspond strictement à la notion d'héritabilité des caractères dits polygéniques (gouvernés par plusieurs gènes). Pour un caractère donné, pris dans un environnement donné, l'héritabilité génétique est une mesure de la contribution relative des parents à l'aspect ou la valeur physique (phénotype) de la descendance. La valeur de l'héritabilité varie de 0 à 1. Plus l'héritabilité est élevée, plus grande est l'implication génétique dans l'expression phénotypique du caractère. Inversement, une héritabilité proche de 0 indique un caractère fortement dépendant de l'environnement.

Pour davantage d'informations sur cette notion et une synthèse des résultats connus sur les arbres forestiers, le chapitre 6 de la référence [17] sera utile.

Par ailleurs, il est démontré que des graines issues de semenciers apparentés sont sujettes à la **dépression de consanguinité** : les arbres issus de telles semences affichent en moyenne des performances moindres (survie, croissance, résistance aux maladies) comparativement à des arbres issus de la libre pollinisation iv. **Des semenciers trop proches ou trop isolés des autres (ces derniers présentant un risque accru d'autopollinisation) peuvent présenter des graines appartenues susceptibles d'être affectées par la**

dépression de consanguinité.

Ces considérations de base seront essentielles dans le choix des semenciers.

### 3.3 Semenciers – Aspects physiques de l'arbre idéal

Le semencier idéal, encore nommé idéotype (Photo 4), doit afficher un certain nombre de caractéristiques assurant un « héritage génétique » optimal pour les caractères intéressants en sylviculture. Le Tableau 2 présente les traits de l'arbre-mère

<footnote>iv La référence [17] détaille les conséquences de la **dépression de consanguinité**. En particulier, le chapitre 5 et l'illustration en p. 90 de la référence sont éloquents.</footnote>
idéal. Ces caractéristiques ne sont pas exhaustives et peuvent varier en fonction des objectifs spécifiques de production de la plantation. Dans tous les cas, on recherchera des semenciers pas trop isolés d'autres arbres de la même espèce, exempts de maladies ou d'importants défauts physiques, et entourés d'individus répondant aux critères de l'idéotype (les autres idéotypes doivent se situer à une certaine distance du semencier visé ; Section 3.4).

En ce qui concerne la production de PFNL destinés à la consommation, il est important d'avoir recours à l'avis des habitants des villages voisins quand cela est possible. En effet, ils connaissent souvent les arbres offrant les qualités organoleptiques désirées (goût, couleur, odeur, s'il s'agit d'un fruit ou d'une graine) ou ceux à éviter absolument pour des raisons données.

<figure><img src="image_33.png" /></figure>

<figure><img src="image_34.png" /><figcaption>**Photo 4.** Idéotype d'ayous (Triplochiton scleroxylon) à gauche (A) et un contre-exemple à droite (B).
© J.-L.D.</figcaption></figure>

Pour la production de bois, les arbres parents devraient être des individus émergents de la canopée, **dominants** ou **co-dominants**, entourés d'arbres similaires : bien conformés, sains et sans défauts physiques. En forêt dense tropicale naturelle, à moins d'avoir affaire à une espèce grégaire, il est rarement possible de vérifier

l'aspect des arbres de la même espèce autour de l'arbre cible (du fait de la grande diversité floristique et des faibles densités par espèce). On se contentera souvent d'apprécier l'aspect de l'arbre cible et de quelques autres arbres conspecifiques environnants et aisément repérables.
En cas de planification d'une plantation conservatoire, l'aspect physique des arbres-mères importe peu. Les plantations conservatoires n'ont pas pour but une production socio-économique quelconque, mais le maintien du patrimoine

génétique de populations d'une espèce donnée. Un arbre tordu peut receler des caractéristiques intéressantes pour d'autres aspects (résistance aux maladies...), et mérite de figurer dans une telle plantation.

<table><caption>**Tableau 2.** Caractéristiques du semencier idéal pour la collecte de graines destinées à l'installation d'une plantation de bois ou d'un arbre PFNL.</caption><thead><tr><td>Pour tout objectif</td><td>Pour la production de bois</td><td>Pour la production de PFNL</td></tr></thead><tbody><tr><td><ul><li>Ne doit pas être trop isolé des arbres de la même espèce.</li><li>Arbre mature mais pas trop vieux.</li><li>Pas de symptôme de maladie : pourriture, tronc et/ou branches partiellement desséchés, etc.</li><li>Pas de défaut physique apparent : bosse, cannelure, écorçage anormal, feuillage peu dense ou avec des problèmes sanitaires, etc.</li><li>Arbre entouré d'autres arbres bien conformés, sains et vigoureux.</li></ul></td><td><ul><li>Dominant ou codominant.</li><li>Fût droit et élancé.</li><li>Fût cylindrique.</li><li>Pas de branches basses.</li><li>Arbre unicaule (une seule tige).</li></ul></td><td><ul><li>Organe correspondant qualitativement aux critères recherchés sur la base des connaissances locales (écorce, fruit, graine, etc.).</li><li>Production abondante/ importante de l'organe recherché (écorce, fruit, graine, etc.).</li></ul></td></tr></tbody></table>

## 3.4 Semenciers – Nombre minimal de semences par lot et distance inter-arbres

Le lot de semences désigne des graines ou des fruits collectés un jour donné près d'un arbre ou d'un groupe d'arbres précis. Un lot de semences destiné à une plantation de production de bois et collecté dans un peuplement naturel devrait être issu d'un mélange d'au moins 10 semenciers distants entre eux d'au moins 200 m (Illustration 3). Si cela s'avère difficile en pratique (du fait des délais de semis par exemple), le mélange devra être effectué lors de la plantation, en combinant des lots de plants. Les exigences en effectif de semenciers se fondent sur les faits suivants :

1) afin de parer aux dégâts dus aux maladies potentielles, il est toujours préférable de disposer d'une diversité génétique substantielle au sein des lots de graines. En milieu naturel, chaque arbre est pollinisé librement et génère un lot de graines de bonne diversité génétique, du fait de la multitude de pères (pollinisateurs). Une dizaine d'arbres-mères a priori non apparentés offre donc une diversité génétique non négligeable ;

2) la distance moyenne de dispersion des graines donne une idée du rayon dans lequel se situent des individus a priori apparentés. Il y a eu assez peu d'études sur les distances de dispersion de graines chez les arbres
tropicaux. Hormis pour quelques espèces zoochores bénéficiant de longues distances de dispersion de graines (de l'ordre de plusieurs kilomètres pour l'iroko – Milicia excelsa et le moabi – Baillonella toxisperma), les données disponibles font état de quelques dizaines ou centaines de mètres pour les arbres tropicaux d'Afrique et d'Amérique : 70 m pour le movingui (Distemonanthus benthamianus), 175 m pour

le tali (Erythrophleum suaveolens), 420 m pour le sapelli (Entandrophragma cylindricum), 350 m pour le sipo (Entandrophragma utile), 85 m pour le pin du Paraná (Araucaria angustifolia), 390 m pour le marupa (Simarouba amara), 40-60 m pour le parapará (Jacaranda copaia)º [18, 19, 20]. Une distance minimale d'environ 200 m pour définir des semenciers non apparentés semble donc un bon compromis.

<figure><img src="image_35.png" /></figure>

**Illustration 3.** Choix d'une population de semenciers selon des critères d'abondance (≥ 10 arbres), de conformation des arbres (sans défauts et maladies pour la majorité), et de distance minimale entre semenciers (200 m).

Dans cet exemple, le peuplement B sera préféré au peuplement A ; les arbres avec une croix ne seront pas sélectionnés pour les raisons ci-avant exposées.

<footnote>º Voir les rapports périodiques des projets P3FAC (Partenariat Public-Privé pour Gérer durablement les Forêts d'Afrique centrale) et AFRITIMB (Reproduction et flux de gènes des arbres commerciaux d'Afrique – vers une gestion forestière durable) sur le site web du collectif DYNAFAC (www.dynafac.org), mais aussi les références [18, 19, 20].</footnote>
Dans un contexte où aucune connaissance préalable de la qualité des semenciers n'est disponible, une expérimentation visant à identifier les bons arbres-mères

devrait être mise en place. Toutefois, elle nécessite une organisation rigoureuse et une disponibilité en temps non négligeable (Encadré 4).

## Encadré 4. Évaluation de la qualité des semenciers

Dans une région peu étudiée, on peut méconnaitre la qualité des semenciers. Dans ce cas, le sylviculteur, principalement dans un contexte de recherche scientifique, peut envisager leur évaluation grossière pendant 3 à 4 ans, dans le but de détecter les meilleurs semenciers. Cette tâche peut être conduite comme suit [17] :

1) chaque lot de semences contiendra alors les graines ou fruits d'un seul arbre-mère (section 3.6). Ce dernier sera numéroté, géoréférencé et décrit physiquement (défauts apparents, diamètre, qualité du fût, etc.) afin d'en garder la localisation et les caractéristiques ;

2) en pépinière, un lot de plants correspondra à un seul lot de semences (et donc un seul semencier) ;

3) pour autant que les conditions de semis, de lumière et d'entretien soient similaires, le suivi du comportement des plantules de chaque lot pourra indiquer les meilleurs semenciers a priori (croissance, survie, maladie, etc.). Bien entendu, le suivi peut se poursuivre en plantation en gardant l'identité des lots de plants ; cela peut devenir toutefois laborieux et exigera une grande rigueur ;

4) afin d'avoir des résultats fiables, les opérations (i) à (iii) devraient être répétées au moins deux à trois fois pour un même semencier (afin d'intégrer les variations entre années).

Si la récolte des semences de l'espèce blée ne peut se faire que dans une plantation d'origine inconnue (un arboretum par exemple), il est fortement recommandé que le lot de semences provienne alors d'au moins 30 arbres-mères.

Lorsque la plantation a un objectif de conservation, les effectifs de semenciers doivent être bien plus importants, avec un minimum absolu de 50 arbres-mères[17] de différents aspects physiques (idéotypes ou non) requis.

## 3.5 Semenciers – Origines/ sources des lots de semences

D'emblée, il faut signaler que l'achat de semences d'origine inconnue dans l'optique de mettre en place une plantation forestière ne devrait être fait qu'en dernier recours. En effet, l'achat de semences dont on ne connaît pas la provenance ne permet pas d'en apprécier la qualité. Toutefois, dans quelques pays africains, il existe des centres de
semences forestières qui commercia-
lisent des graines issues de peuplements
dûment identifiés ou sélectionnés pour
la valeur génétique des semenciers, et
parfois reconnus par l'OCDE<sup>vi</sup>. Il s'agit de
populations naturelles et de plantations
créées à cet effet, dénommées «peuplements à graines» et «vergers à graines»
(<strong>Photo 5</strong>). Les semences collectées dans

de tels boisements et commercialisées
sont idéales (Illustration 4). Contraire-
ment à l'Afrique occidentale, il n'existe
pas encore en Afrique centrale de centres
semenciers, de peuplements à graines ou
de vergers à graines reconnus par l'OCDE.
Certains pays disposent toutefois de pe-
tites banques de semences hébergées par
des instituts de recherche.

<figure><img src="image_36.png" /><figcaption>**Photo 5.** Plantation comparative de familles (groupes de demi-frères) de movingui (Distemonanthus benthamianus) au Gabon, destinée à être convertie en verger à graines après éclaircie. © J.-L.D.</figcaption></figure>

Hormis les populations «sélectionnées»,
les semences peuvent provenir de forêts
naturelles quelconques. Ce type de pro-
venance sera privilégié en l'absence de
peuplements et vergers à graines. Autant
que possible, on évitera des collectes

de semences dans des plantations d'ori-
gine inconnue : le risque qu'elles aient été
elles-mêmes créées à partir d'un nombre
limité de semenciers, éventuellement ap-
parentés, n'est pas négligeable, ce qui
engendrerait de nouvelles plantations

<footnote>vi OCDE : Organisation de Coopération et de Développement Économiques. Pour les normes et règles de commercialisation des semences forestières, voir : http://www.oecd.org/agriculture/forest/. À la date de septembre 2018, cinq pays africains seulement avaient un système de commercialisation de graines forestières agréé par l'OCDE : Burkina Faso, Kenya, Madagascar, Ouganda et Rwanda.</footnote>
souffrant de **dépression de consanguinité**.

Quel que soit le type de peuplement choisi pour la récolte des semences, on privilégiera des peuplements de

semenciers appartenant au même environnement (type de végétation forestière, climat, sol) que celui où sont planifiées les futures plantations.

<figure><img src="image_37.png" /></figure>

**Illustration 4.** Sources possibles de graines : A – **Verger à graines** d'arbres sélectionnés ; B – **Forêt naturelle** avec un peuplement riche en **idéotypes** ; C – **Plantation d'origine inconnue**. On préférera le **verger à graines** s'il existe (A), puis la forêt naturelle (B). La plantation d'origine inconnue (C) ne sera utilisée comme source de semenciers qu'en dernier ressort.

## 3.6 Semenciers et semences – Identification des bons arbres-mères

En l'absence d'une documentation pré-existante et pour autant que des plantations régulières soient prévues sur une longue période, il est recommandé de procéder pendant quelques années à des observations sur la qualité des graines et plantules par semencier, afin d'identifier les meilleurs arbres-mères dans la zone de collecte, tel qu'expliqué en **Section 3.4**. Dans ce cas, une fiche de caractérisation du semencier doit être utilisée. Le **Tableau 3** donne un modèle de fiche d'identification de semencier et de récolte de semences. Outre les informations de description du semencier et du lot de graines, il est important de :

1) attribuer un identifiant ou un code

au semencier, s'il n'en possède pas déjà. Cet identifiant reprend classiquement les initiales de l'espèce, suies d'un nombre unique (exemple : SAP 008 pour le sapelli n°8) ;

2) attribuer un identifiant ou numéro au lot de graines récolté : chaque récolte de graines se voit assigner un identifiant unique, indépendant de l'espèce récoltée, et qui peut être, par exemple, l'année de récolte suivie d'un nombre unique : 2019-001, 2019-002..., 2020-001, 2020-002, 2020-003, etc.

Le numéro de récolte permet de distinguer des récoltes successives qui seraient effectuées sur un même arbre au cours d'une même saison de fructification, afin d'évaluer par exemple l'effet de la date de récolte sur les performances de germignation et sur les plantules qui en résultent.
<table><caption>**Tableau 3.** Modèle de fiche de caractérisation de semencier et de récolte de semences.</caption><thead><tr><th colspan="3">Fiche d'identification de semencier et de récolte de graines</th></tr><tr><th colspan="3">Rappel: mettre les graines ou fruits dans des enveloppes ou sacs en papier ou en toile</th></tr><tr><th colspan="3">Données à récolter sur le terrain</th></tr><tr><td colspan="3">Ces données sont à inscrire sur l'enveloppe de récolte ou sur une feuille à glisser dans le sac.</td></tr><tr><th colspan="2">Données à récolter</th><th></th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="2">Identifiant (numéro) de récolte</td><td>N.B. Info à ajouter au bureau - Numérotation continue: 2019-001, 2019-002, etc.</td></tr><tr><td colspan="2">Nom du récolteur</td><td>Elvis Nhoulou</td></tr><tr><td colspan="2">Date de récolte</td><td>29/07/2019</td></tr><tr><td colspan="2">Essence récoltée</td><td>Sapelli</td></tr><tr><td colspan="2">Identifiant (numéro) de l'arbre</td><td>SAP 008</td></tr><tr><td colspan="2">N° de la concession ou ville/village proche</td><td>UFA 10.001</td></tr><tr><td rowspan="3">Position GPS de l'arbre</td><td>UTM</td><td>32 M</td></tr><tr><td>X</td><td>123456</td></tr><tr><td>Y</td><td>456123</td></tr><tr><td colspan="2">Hauteur estimée de la 1<sup>re</sup> grosse branche (m)</td><td>12</td></tr><tr><td colspan="2">Diamètre de l'arbre (cm)</td><td>75</td></tr><tr><td colspan="2">Nombre de graines ou fruits récoltés</td><td>412</td></tr><tr><td colspan="2">Qualité du fût</td><td>2</td></tr><tr><td colspan="2">Remarques éventuelles sur la cime de l'arbre</td><td>Une grosse branche morte</td></tr><tr><td colspan="2">Remarques éventuelles sur le fût de l'arbre</td><td>/</td></tr><tr><td colspan="2">Autres remarques</td><td>2 autres sapellis avec fleurs et fruits immatures dans les environs</td></tr></tbody></table>

**Notes :** La fiche a été partiellement complétée à titre d'illustration. L'identifiant de récolte est à inscrire au bureau et non sur le terrain, en tenant compte du dernier numéro assigné à la plus récente collecte. La qualité du fût est traditionnellement codée par un chiffre selon des normes propres à chacun ou à des secteurs d'activités.
## 3.7 Semences – Méthodes de collecte et premier tri

Il existe différentes démarches de collecte de semences : de l'escalade avec récolte dans le houppier de l'arbre au simple ramassage des fruits ou des graines tomées à son pied. C'est cette dernière approche qui sera développée ici, car elle est la moins onéreuse en temps, moyen et technicité.

Il n'y a pas de matériel spécifique de récolte à apprêter, en dehors des contenants

pour les semences. Les semences collectées ne doivent pas être stockées sur le terrain dans des sacs hermétiques – matériau plastique notamment – engendrant une augmentation de température, la fermentation de certains fruits, et le développement de champignons. Sur le terrain, on privilégiera des sacs et des enveloppes en papier pour les graines légères (Photo 6), et des sacs en tissu plus généralement (les sacs en jute par exemple) pour les autres types de semences.

<figure><img src="image_38.png" /><figcaption>Graines d'acajou d'Afrique (Khaya anthoteca) collectées dans une enveloppe en papier (à droite de l'image) et aérées dans une boîte en carton avant le semis</figcaption></figure>

<figure><img src="image_39.png" /><figcaption>Fruits de limba (Terminalia superba) collectés dans une enveloppe en papier et mis dans un endroit ombragé et ventilé près de la pépinière</figcaption></figure>

<figure><img src="image_40.png" /><figcaption>Extraction de graines de moabi (Baillonella toxisperma) sur le terrain dès la collecte des fruits charnus</figcaption></figure>

**Photo 6.** Exemples de collecte et de manipulation de semences de trois espèces tropicales. © K.D.
Les fruits ou les graines matures doivent faire l'objet d'un premier tri sur le terrain : (i) pour les graines contenues dans des fruits charnus, il faut les extraire de la chair dès que possible (Photo 6) ; (ii) les graines et fruits desséchés sont abandonnés ; (iii) les graines a priori abîmées, pourries ou présentant des trous sont également écartées. Les lots de graines collectés sont ensuite transportés à la pépinière ou dans ses annexes afin d'être traités, stoc-kés ou semés dès que possible.

## 3.8 Semences – Manipulation et conservation

Dans la majorité des cas, ce ne sont pas les graines qui sont directement collec-tées<sup>vii</sup> [21], mais plutôt les fruits, dont il faut parfois extraire les graines. Pour certains fruits secs indéhiscents (exemples : ové-ngkol – Guibourtia ehie, ayous – Triplochi-ton scleroxylon, etc.), l'extraction ne doit pas être faite. Lorsqu'il s'agit de fruits charnus, les graines doivent être ex-traites le plus tôt possible si cela n'a pas été fait immédiatement sur le terrain (Photo 6). D'une part, des pathogènes pourraient altérer les graines et, d'autre part, la chair contient souvent des subs-tances chimiques inhibant la germination. L'extraction se fait manuellement :

- à l'aide d'un outil plus ou moins tranchant, en veillant à ne pas

abîmer la graine : cas des graines de moabi (Baillonella toxisperma), d'andok (Irvingia gabonensis), etc. ;

- par trempage dans l'eau froide, tri-turation et collecte des graines au fond du récipient (Photo 7) : cas des graines d'iroko (Milicia excelsa), de bilinga (Nauclea diderrichii), etc.

Quel que soit le type de fruit charnu, il est important d'ôter soigneusement la chair entourant la graine et de faire un tri par un test de flottation dans l'eau : celles a priori viables tombent au fond du récipient de nettoyage ; celles qui flottent seraient «vides» et doivent être jetées. Cette re-marque n'est toutefois pas valable pour les espèces qui sont naturellement disper-sées par l'eau (le rikio – Uapaca spp., par exemple). Si l'extraction n'a pas été faite dans l'eau, il est recommandé d'effectuer néanmoins un nettoyage des graines ex-traites dans plusieurs seaux d'eau.

Idéalement, les graines collectées ou extraites (hormis certaines graines de légumineuses qui se conservent bien) doivent être semées dans les jours suivant la récolte (ne pas dépasser idéalement 2-3 jours de stockage ; la pépinière doit donc être appêtée en conséquence). Toutefois, le pépiniériste est parfois contraint de conserver les semences un certain temps avant le semis. La conserva-tion durant des délais plus ou moins longs

Pour davantage d'information sur les types de fruits des espèces forestières, voir la référence [21].

<footnote><sup>vii</sup> Les graines sont facilement obtenues des espèces à fruits dits déhiscents qui libèrent eux-mêmes leur contenu ; c'est le cas des gousses de diverses légumineuses ou des capsules de plusieurs Méliacées (Entan-drophragma spp., Khaya spp., etc.). Chez d'autres espèces, les graines sont «emprisonnées» dans des fruits secs indéhiscents ou des fruits charnus ou composés. L'extraction préalable des graines est nécessaire dans certains cas, notamment pour les baies et les drupes.</footnote>
<figure><img src="image_41.png" /><figcaption>**Photo 7.** Extraction de semences d'iroko (Milicia excelsa) par trituration dans un récipient d'eau.
© K.D.</figcaption></figure>

obéit à deux principes :

1) **séchage des semences** : outre divers mécanismes physiologiques, la forte teneur en eau de la graine ou du fruit est la première exigence pour une germination. Il s'ensuit que plus faible est le taux d'humidité de la graine ou du fruit, plus grande peut être la durée de conservation. Toutefois, certaines semences ne supportent pas une forte réduction de leur teneur en eau. Le séchage, quand il est possible, devra être progressif et réalisé dans un endroit ombragé et ventilé ;

2) **conservation à basse température** : dans certaines limites, plus basse est la température du lieu de stockage, meilleure est la durée de conservation. La faible température diminue le taux de respiration de la graine

tout en limitant le développement de champignons ou de moisissures nuisibles à sa viabilité.

Ces deux principes conduisent à classer les graines en deux grandes catégories (bien qu'il existe des classes intermédiaires) telles qu'abordées dans la **Section 3.1.** Les **graines orthodoxes** supportent une diminution de leur teneur en humidité (par séchage ou **dessiccation**) jusqu'à 5 % et peuvent être conservées durant des années à des températures très basses, sans perdre leur **pouvoir germinatif**. A contrario, les **graines récalcitrantes** ne supportent pas une forte **dessiccation** et ne peuvent pas être conservées très longtemps (**Encadré 5**). Il y a eu très peu de travaux sur ces aspects en Afrique intertropicale et il est donc difficile de desser une bonne catégorisation des espèces d'arbres des forêts d'Afrique[22, 23, 24].
## Encadré 5. Semences récalcitrantes et orthodoxes, et aptitudes à la dessiccation et à la dormance

La proportion d'arbres tropicaux – africains en particulier – présentant des *graines récalcitrantes* est mal connue. Beaucoup d'auteurs jugent le caractère *récalcitrant/orthodoxe des graines* sur la base de la viabilité et de la germination à température ambiante ; cette appréciation n'est ni indiquée, ni correcte. Le caractère récalcitrant ou orthodoxe doit s'apprécier en conditions contrôlées de température de stockage et de teneur en eau des graines.

Les *graines orthodoxes* sont souvent considérées comme *dormantes*, et inver-
sement, les *graines récalcitrantes* ne seraient pas *dormantes*. Ces appréciations
sont à nuancer. (i) 48 % des espèces d'arbres non-pionniers des forêts tropicales
auraient des graines supportant la *dessiccation* et «seulement» 43 % des arbres
des forêts denses humides tropicales auraient des *graines dormantes*. (ii) L'into-
lérance à la *dessiccation* est, certes, plus fréquente chez les espèces à graines
non-dormantes (mais seulement 31 % des cas), mais elle existe aussi chez les es-
pèces à *graines dormantes* (9 % des cas). (iii) Il est bien connu aujourd'hui que la
tolérance à la *dessiccation* est fortement liée à deux caractéristiques de la graine :
sa masse et l'épaisseur des téguments de la semence (les risques d'intolérance à
la *dessiccation* – et donc à la conservation – sont d'autant plus élevés que la masse
est importante et l'épaisseur tégumentaire est faible ; voir [22]).

Le **Tableau 4** donne des informations sur la durée de conservation des semences de quelques espèces africaines, initialement jugées **récalcitrantes**. **Il souligne surtout qu'une conservation au froid permet d'allonger significativement la durée de vie des graines,** sans atteindre toutefois les durées de conservation observées chez les **semences orthodoxes** (movingui – *Distemonanthus benthamianus* ; tali – *Erythrophleum ivorense* et E. *suaveolens* ; etc.). Outre les cas mentionnés dans le **Tableau 4**, on peut lister d'autres espèces susceptibles de présenter des graines conservables à des températures basses sur des périodes plus

ou moins longues (à expérimenter) : aiélé
(Canarium schweinfurthii), akui (Xylopia
aethiopica), bilinga (Nauclea diderrichiil,
doussié (Afzelia bipindensis), framiré (Ter-
minalia ivorensis), limba (Terminalia super-
ba), mukulungu (Autranella congolensis),
oboto (Mammea africana).

En résumé :

- il faut semer aussi vite que possible
*les graines collectées*. Plus la graine
est grosse, plus il est probable qu'elle
soit récalcitrante et elle devra être ra-
pidement semée. Les conteneurs de
semis (sachets remplis de substrat...)
doivent donc être appûtés avant la
collecte de telles graines ;

- le stockage des semences sur une courte période se fait dans un local relativement frais, ventilé et protégé des parasites et des animaux préda-teurs (rongeurs, etc.). Une pièce cli-matisée peut parfaitement convenir. Les graines seront étalées sur une table ou des étagères et protégées par des moustiquaires ;

- un stockage sur une longue durée (plus de 3 mois) nécessite généra-lement un réfrigérateur (Photo 8). Dans ce cas, il est recommandé de

stocker les graines dans des réci-pients hermétiquement clos, tels que les bocaux en verre et les boîtes métalliques ;

- il faut effectuer des tests périodiques de la viabilité des graines entrepo-sées. Dans la mesure où les durées de stockage dans de telles condi-tions (climatiseur, réfrigérateur) sont mal connues, il importe que le pépiniériste teste périodiquement la viabilité (par germination) des semences ainsi entreposées.

<table><caption>**Tableau 4.** Résultats d'essais de conservation à basse température de semences d'une série d'espèces d'arbres des forêts humides d'Afrique, a priori récalcitrantes[25, 26].</caption><thead><tr><td>Nom pilote</td><td>Nom latin</td><td>Température de stockage (°C)</td><td>Durée de stockage (mois)</td><td>Taux de germination après stockage (%)</td></tr></thead><tbody><tr><td>Acajou d'Afrique</td><td>Khaya anthotheca</td><td>15</td><td>6</td><td>55</td></tr><tr><td>Acajou d'Afrique</td><td>Khaya ivorensis</td><td>2</td><td>24</td><td>44</td></tr><tr><td>Ayous</td><td>Triplochiton scleroxylon</td><td>6</td><td>18</td><td>51</td></tr><tr><td>Iroko</td><td>Milicia excelsa</td><td>4</td><td>36</td><td>35</td></tr><tr><td>Kosipo</td><td>Entandrophragma candollei</td><td>2-4</td><td>24</td><td>96</td></tr><tr><td>Moabi</td><td>Baillonella toxisperma</td><td>4</td><td>11</td><td>53</td></tr><tr><td>Okoumé</td><td>Aucoumea klaineana</td><td>0-5</td><td>30</td><td>50-80</td></tr><tr><td>Sipo</td><td>Entandrophragma utile</td><td>2</td><td>8</td><td>92</td></tr><tr><td>Tiama</td><td>Entandrophragma angolense</td><td>2</td><td>5</td><td>76</td></tr></tbody></table>
<figure><img src="image_42.png" /><figcaption>**Photo 8.** Semences d'afrormosia (Pericopsis elata), de padouk (Pterocarpus soyauxii) et de sapelli (Entandrophragma cylindricum) stockées dans un réfrigérateur pour des semis ultérieurs. © K.D.</figcaption></figure>
<figure><img src="image_43.png" /></figure>

4. PÉPINIÈRE : DE LA CONSTRUCTION À LA GESTION QUOTIDIENNE
© J.-L. Doucet

Germination de graines de douka (Tieghemella africana) en pépinière.
## 4.1 Pourquoi investir dans une pépinière ?

Une pépinière est un investissement (Photo 9), et on peut s'interroger sur sa pertinence par rapport au semis direct de graines dans le site de plantation. Pour diverses raisons énumérées ci-dessous, la plantation via des plants préalablement éduqués est préférable.

1) Le semis direct des semences sur le site de plantation impose que ce site soit préparé avant la récolte des graines. La production de plants en pépinière permet une planification et une meilleure gestion du temps entre la récolte des semences et l'installation de la plantation.

2) L'installation d'une plantation étant déconseillée en saison sèche, le semis direct de graines récalcitrantes récoltées en fin de saison pluvieuse est extrêmement problématique voire impossible. On rappellera qu'une fraction notable des espèces d'arbres des forêts denses humides est à semences récalcitrantes.

3) Pour une espèce donnée, le lot de graines disponible à un moment donné est souvent limité. L'étape «pépinière» permet d'obtenir le maximum de plantules de tels lots

de graines (conditions optimisées pour la germination et le développement des plantules ; sélection des meilleurs plants).

4) Enfin, l'argument le plus important est que les plants éduqués en pépinière génèrent globalement de meilleures performances que ceux issus de semis directs dans le milieu final<sup>viii][27, 28]</sup>.

Compte tenu de ces éléments, il est recommandé d'utiliser des plants issus de pépinière pour l'installation de plantations. Le semis direct en milieu définitif peut aboutir à des résultats appréciables, mais requiert d'importantes précautions<sup>viii</sup>.

Structurellement, une pépinière peut être divisée en trois parties.

1) **Le cœur de la pépinière** : c'est la zone accueillant les semis et les plants en cours d'éducation.

2) **L'emprise de la pépinière** : il s'agit du cœur de la pépinière plus un couloir désherbé et propre d'au moins 3 m autour du cœur. Cette bande limite la pénétration des nuisibles et des pathogènes dans le cœur de la pépinière.

3) **La zone tampon de la pépinière** : c'est une bande d'au moins 10 m autour du cœur de la pépinière (donc

<footnote>viii Seules quelques dizaines d'études ont comparé les performances (survie, croissance des plants) entre semis directs en milieu définitif et plantations de plants préalablement éduqués en pépinière. Les résultats montrent que les taux de survie sont 40 à 60 % meilleurs avec les plants issus de pépinière. La différence en ce qui concerne la croissance en hauteur est plus nuancée : il n'est pas rare qu'elle soit similaire dans les deux cas pour les plants survivants, mais en définitive, le volume de bois obtenu sur une plantation créée avec des transplants sera supérieur à celui tiré d'une plantation qui a été ensemencée. Par ailleurs, quel que soit l'environnement, le semis direct exige davantage d'investissement pour l'entretien des plantations. Voir les références [27, 28] pour plus de détails.</footnote>
au moins 7 m autour de l'emprise) qui est débarrassée des grands arbres ou de toute autre structure de grande hauteur pouvant créer trop d'ombrage aux plants ou les endommager lors de chutes. Quelques arbustes ou arbrisseaux y sont tolérés, mais on y évitera autant que possible la prolifération de hautes herbes, de même que des espèces pouvant abriter des parasites susceptibles de contaminer les plants (par exemple les agrumes ou les piments souvent

couverts de cochenilles). Cette zone tampon doit être exempte d'arbres des espèces éduquées pour les mêmes raisons. Une partie de la zone tampon accueille l'abri de travail du pépiniériste, voire d'autres locaux annexes : local pour le stockage du matériel et des semences, structure de multiplication végétative, etc. Elle permet aussi la circulation des véhicules lors de l'évacuation des plants et pour l'approvisionnement en substrat.

<figure><img src="image_44.png" /><figcaption>**Photo 9.** Vue d'une pépinière d'une capacité de 20.000 plants. © K.D.</figcaption></figure>

## 4.2 Choix du site de la pépinière et tâches préliminaires

Le site devant abriter le corps de la pépinière doit répondre à différents critères.

1) La disponibilité permanente d'eau à proximité, pour l'arrosage des plants (rivière, puits, robinet). On évitera bien entendu l'eau salée, mais aus-

si, dans la mesure du possible, l'eau chlorée. En l'absence d'une source d'eau naturelle à proximité, un farge ou le creusage d'un puits d'eau devra être envisagé.

2) Un éclairement maximal : pas de grands arbres créant trop d'ombrage aux alentours ou à moins de 10 m des bords du cœur de la pépinière.
3) **Un drainage maximal.** Sur sol argileux, il faut préférer un terrain légèrement en pente (mais pas trop non plus) afin de favoriser l'écoulement de l'eau. Si nécessaire, des fossés de drainage peuvent être creusés. Sur sol sableux, un terrain parfaitement plat conviendra aussi.

4) **Un terrain relativement bien nivelé, sans bosses ou creux importants pouvant perturber le rangement des lots de plants ou induire l'apparition de flaques d'eau.**

5) **Un site facile d'accès et sécurisé**

contre les vols et les dégâts d' animaux (animaux domestiques notamment). Une clôture ceinturant la zone d'emprise peut être installée.

Lorsque le sol de la pépinière est argileux, peu perméable, il est recommandé d'étaler une couche de sable ou de gravier fin à moyen pour favoriser le drainage et ainsi éviter la formation de flaques d'eau, et pour ralentir le développement d'herbacées (Photo 10). Le site devrait être proche de sources de terreau et de sable, pour la préparation du substrat de développement des plantules. Enfin, les

<figure><img src="image_45.png" /><figcaption>A – Pépinières sur terrain plat, avec un sol argileux et des flaques d'eau. © N.B. & K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_46.png" /><figcaption>B – Pépinière dont l'emprise a été ensablée afin d'éviter la stagnation d'eau en saison pluvieuse. © K.D.</figcaption></figure>

**Photo 10.** Exemples de pépinières avec des gestions différentes du sol. Un bon nivellement de l'emprise peut réduire la formation de flaques d'eau ; l'étalage de sable sera envisagé dès que les flaques deviennent récurrentes.
palmes (feuilles de palmier) étant cou-
ramment utilisées comme ombrière des
pépinières en Afrique, la proximité d'une
palmeraie serait un atout supplémentaire.

Lorsque le site retenu est fortement
pentu, un terrassement s'impose afin
de disposer de bandes plates (terrasses
ou platebandes ; Illustration 5). Les
bandes seront alors orientées perpendi-
culairement à la pente (Photo 11). Pour
une pépinière de dimensions et de ca-
pacité relativement modestes (20.000 à
30.000 plants au plus), cette tâche ne re-
quiert qu'un faible investissement :

- aucun engin lourd n'est néces-
saire. Une dizaine de personnes
peuvent achever le terrassement en
2-3 jours en fonction des conditions
propres au terrain, et à l'aide d'outils

simples : houes, plantoirs, machettes,
brouettes, pelles, pioches, cordeaux,
etc. ;

- on utilisera des planches de bois dur et résistant aux conditions du sol, ou simplement des tiges de bambou, partiellement enfoncées dans le sol, afin de délimiter les terrasses ;

- la largeur de chaque terrasse intégrera la largeur d'un bac et celle de l'allée jouxtant le bac. Par exemple : pour des bacs de 1,20 m de large qui seront séparés par des allées de 1 m de large, les planches de délimitation semi-enterrées devront donc être positionnées tous les 2,25 m environ sur la pente, en s'accordant une petite marge d'erreur (Encadré 6).

<figure><img src="image_47.png" /><figcaption>**Illustration 5.** Étapes du terrassement avant la construction d'une pépinière.</figcaption></figure>

A – Terrain pentu, site de la pépinière. B – Pose des planches verticales, légèrement enfoncées dans le sol, délimitant les futures terrasses. C – Déblai en amont et remblai de chaque terrasse.

D – Aspect final du site terrassé.
<figure><img src="image_48.png" /><figcaption>**Photo 11.** Construction d'une pépinière communautaire en bambou sur sol préalablement terrassé. © K.D.</figcaption></figure>

## Encadré 6. Calcul de la largeur de chaque terrasse lors du terrassement préalable à l'installation d'une pépinière

Rigoureusement, le calcul de la distance de positionnement de deux lignes contiguës des planches délimitant chaque terrasse (les délimitateurs) devrait intégrer la valeur de la pente du terrain. Par exemple :

1) pour des bacs séparés par des allées larges de « $a = 1 \text{ m}$ »,

2) pour des bacs unitaires larges chacun de « $b = 1,20 \text{ m}$ »,

3) à installer sur une pente d'angle « $x = 5,7 \text{ degrés}$ » par rapport à l'horizontale (en pourcentage, cela correspond à une pente de 10% = tangente de l'angle x),

4) le calcul de la distance sur pente «d» entre deux lignes de délimitation de chaque terrasse sera : $d = (a+b)/\cos(x) = 2,20 \text{ m} / 0,995 \approx 2,21 \text{ m}$.

En pratique, jusqu'à un angle de 10 degrés environ (pente de 17%), $\cos(x) \approx 1$, et peut donc être ignoré. Dans ce cas, la distance d donnant la largeur de chaque terrasse sera « $d \approx a+b$ », comme sur un terrain plat.
## 4.3 Construction de la pépinière

Le cœur de la pépinière est constitué d'un ensemble de bacs qui accueilleront les pots ensemencés et les lots de plants en cours d'éducation. Les dimensions d'un bac doivent être identiques à travers toute la pépinière, afin de faciliter le suivi et le décompte des plants. Les bacs sont séparés par des allées permettant les déplacements du pépiniériste et ses manipulations des plants au sein de chaque bac. Les sections ci-dessous décrivent deux modèles de pépinière, en bois dur et en bambou ; le sylviculteur est libre de les adapter à son contexte et selon ses connaissances propres.

La pépinière sera construite à l'aide de bois dur, adapté à l'extérieur et aux intemperies. Sur les sites où cela est possible, il est par exemple conseillé d'utiliser du padouk (Pterocarpus soyauxii) ou du tali (Erythrophleum suaveolens ou E. ivorense) découpé en planches et en poteaux de dimensions bien définies. Sur les sites où le bois dur est une ressource rare, des tiges de bambou de grandes dimensions peuvent également convenir, mais elles devront être régulièrement remplacées.

Dans la suite de cette section, on décrira la construction d'un modèle de pépinière d'une capacité de 8.000 plants, faite de planches de bois. À chaque étape, les spécificités en cas d'usage de tiges de bambou seront précisées. Aussi bien pour les pépinières en planches de bois qu'en bambou, il s'agit ici de modèles proposés par les auteurs, et qui peuvent être adaptés par tout un chacun.

### 4.3.1 Réalisation du plan de l'emprise de la pépinière

La première étape de la construction consiste à définir et à schématiser les dimensions de la pépinière. Une règle à respecter dans la mesure du possible est d'orienter les bacs suivant la direction est-ouest, afin de maximiser le rôle des ombrières. Pour le modèle montré par les Illustration 6 et Illustration 7, l'unité est un bac divisé en deux compartiments, chacun pouvant accueillir 200 plants, soit 400 plants par bac. Dans ce modèle, chaque bac a 1,2 m de large : 10 pots ayant chacun 10 à 12 cm de diamètre pourront être ainsi disposés par rangée, ce qui facilite le décompte ultérieur des plants de la pépinière. Il faut donc 20 bacs pour espérer une contenance de 8.000 plants. Chaque bac est numéroté (par exemple : 1, 2, 3, etc.) et est séparé des bacs voisins par une allée de 1 m de large (ceci répond avant tout au besoin d'y faire circuler facilement une brouette).

Avec une disposition de 4 x 5 bacs telle que présentée à l'Illustration 7, l'ensemble des bacs occupera un espace de 11,2 m x 23,0 m ≈ 257 m². En augmentant chaque côté de 6 m pour l'emprise (3 m à chaque extrémité), celle-ci couvrira donc 17,2 m x 29,0 m ≈ 499 m². En incluant une bande tampon (dégagée des grands arbres) d'une largeur de 7 m de chaque côté, l'espace initial nécessaire s'élèvera à 31,2 m x 43,0 m = 1.342 m². Rappelons que l'aménagement de la zone tampon est moins rigide que celui de l'emprise de la pépinière, hormis la nécessité d'y ôter tous les grands arbres et autres plantes connues pour être vectrices de maladies/parasites.
<figure><img src="image_49.png" /><figcaption>**Illustration 6.** Dimensionnement d'un modèle de bac de pépinière d'espèces forestières.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_50.png" /><figcaption>**Illustration 7.** Exemple de plan et dimensionnement d'une pépinière de capacité de 8.000 plants (20 bacs de 400 plants chacun). Chaque bac est dimensionné selon le schéma de l'**Illustration 6**.</figcaption></figure>
Un abri de travail est inclus dans l'exemple proposé. Une table et des chaises ou bancs doivent y être disponibles (Photo 12). Il n'y a pas de taille standard pour de tels

abris de travail ; nous recommandons néanmoins un minimum de 12 m² pour un travail optimal.

<figure><img src="image_51.png" /><figcaption>Photo 12. Vue d'un abri de travail d'une pépinière. © K.D.</figcaption></figure>

Un local fermé pour stocker le matériel est également proposé dans cet exemple. Il doit être construit en dur (bois ou tout autre matériel de construction de maison), pourvu de fenêtres pour l'aération, d'une table, d'étagères, et d'une porte sécurisée. Ici aussi, **un espace d'au moins 12 m² est un minimum pour une bonne organisation du matériel entreposé dans le local.**

### 4.3.2 Estimation des besoins pour la construction du cœur de la pépinière

L'Illustration 6 fournit les dimensions optimales par planche ou poteau. Une

précision importante est que les poteaux doivent être placés à l'extérieur des bacs, pour ne pas gêner le rangement des plants. On en déduit les besoins exacts en planches et poteaux qu'il faut pour les 20 bacs de cet exemple de pépinière (Tableau 5). Pour cet exemple, le volume de bois nécessaire est de 5,2 m³. En cas d'utilisation de tiges de bambou, les critères de largeur et d'épaisseur ne seront plus d'application, contrairement aux longueurs proposées qui restent quasi maintenues (voir **Section 4.3.3**).

Les besoins en bois pour la construction de l'abri de travail et du magasin de stockage ne sont pas estimés ici, ces
structures pouvant être librement dimensionnées comme déjà expliqué.

Pour une pépinière en planches de bois, le matériel additionnel nécessaire sera notamment :

- fil ou cordelette de plusieurs dizaines de mètres de long ;

- décamètre ou pentadécamètre ;

- piquets de 50 cm de long ;

- niveau de maçon ;

- marteau ;

- clous adaptés à la dureté du bois choisi ;

- brouettes ;

- plantoirs et/ou pioches si le sol est argileux ;

- houes si le sol est à dominante sableuse ou limoneuse ;

- pelles et/ou bêches.

<table><caption>**Tableau 5.** Besoins en planches et poteaux de bois pour une pépinière d'une capacité de 8.000 plants (voir Illustration 6 et Illustration 7).</caption><thead><tr><th>Partie du bac</th><th>Élément</th><th>Dimension :<br>longueur x largeur x épaisseur<br>(cm x cm x cm)</th><th>Nombre</th><th>Couleur selon<br>Illustration 6</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="3">Toit</td><td>Longueur du toit</td><td>250 x 8 x 4</td><td>80</td><td>Jaune</td></tr><tr><td>Largeur du toit</td><td>144 x 8 x 4</td><td>40</td><td>Orange</td></tr><tr><td>Milieu du toit</td><td>120 x 8 x 4</td><td>20</td><td>Noir</td></tr><tr><td rowspan="3">Base</td><td>Longueur de la base</td><td>250 x 20 x 4</td><td>80</td><td>Bordeaux</td></tr><tr><td>Largeur de la base</td><td>144 x 20 x 4</td><td>40</td><td>Rouge</td></tr><tr><td>Milieu de la base</td><td>120 x 20 x 4</td><td>20</td><td>Bleu clair</td></tr><tr><td rowspan="2">Poteau</td><td>Aux extrémités des bacs</td><td>250 x 8 x 8</td><td>80</td><td>Gris</td></tr><tr><td>Au centre des bacs</td><td>250 x 10 x 8</td><td>40</td><td>Bleu</td></tr></tbody></table>

Le volume total de bois nécessaire à la construction de cette pépinière est de 5,2 m³.

### 4.3.3 Construction proprement dite du cœur de la pépinière

Les différentes étapes de la construction sont schématisées à l'Illustration 8 et expliquées ci-dessous.

1. La première tâche consiste à s'assurer que les coins de la pépinière et des bacs soient à angle droit (90°).

Une astuce consiste à matérialiser un triangle dont les trois côtés mesurent 3 m, 4 m et 5 m : l'angle entre les côtés de 3 m et 4 m est alors droit et le sommet correspondant doit constituer un des coins de la pépinière.

2. Ensuite, à l'aide de la cordelette et du pentadécamètre, les piquets sont
<figure><img src="image_52.png" /></figure>

A

<figure><img src="image_53.png" /></figure>

B

<figure><img src="image_54.png" /></figure>

C

<figure><img src="image_55.png" /></figure>

D

<figure><img src="image_56.png" /></figure>

E

<figure><img src="image_57.png" /></figure>

F

<figure><img src="image_58.png" /></figure>

G

<figure><img src="image_59.png" /></figure>

H

**Illustration 8.** Principales étapes de la construction du cœur d'une pépinière.

A – Nettoyage et nivellement du site. B – Tracé du premier angle droit (un coin de la pépinière) suivant la règle du triangle de côtés 3 m, 4 m et 5 m. C – Piquetage suivant le schéma global prédéfini. D – Trouaison à l'emplacement des piquets. E – Assemblage des grands côtés des bacs.

F – Pose des grands cadres dans les trous et remblai. G – Fixation des petits côtés des bacs.

H – Pose de la toiture en palmes.
fichés dans le sol suivant le schéma de dimensionnement de la pépinière, afin de matérialiser les points de trouaison destinés aux poteaux des bacs. Pour garantir l'alignement, un opérateur oriente son collègue chargé du piquetage en se basant sur l'alignement des premiers piquets.

3) La trouaison est ensuite effectuée ; chaque trou a une profondeur de 50 cm.

4) Pendant qu'une équipe s'occupe de la trouaison, une autre aidée d'un menuisier assemble les poteaux et les planches des côtés les plus longs des bacs. Un premier cadre assemblé servira de gabarit pour les autres. Une fois cela achevé, ces cadres sont posés dans les trous, en veillant à vérifier l'horizontalité des cadres à l'aide du niveau de maçon ainsi que le positionnement des poteaux à l'extérieur des bacs. La hauteur des cadres peut être ajustée en remblayant légèrement certains trous si nécessaire.

5) Les petits côtés des bacs sont ensuite cloués progressivement, ainsi que les lattes internes divisant chaque bac en deux parties identiques. Au fur et à mesure de ces fixations, les trous sont progressivement refermés – le sol de remblai est bien damé – afin de stabiliser l'ossature créée.

6) Dès que l'ensemble des bacs est installé, on procède à la pose des palmes (ou de nattes de palmes tressées) au-dessus des bacs et allées. Il ne faut en effet pas omettre de couvrir aussi les allées, au risque d'avoir

une ombrière discontinue qui en limite l'efficacité. Seules les feuilles du palmier à huile doivent être utilisées car celles des autres palmiers se recroquevillent en séchant. Une alternative à l'utilisation des feuilles de palmier est le filet d'ombrière (Pheto 13). Il est plus coûteux mais est beaucoup plus durable. On choisira dans ce cas un filet permettant un éclairement relatif des plants d'environ 30-50 %[30].

La démarche est quasiment identique lorsqu'on utilise des tiges de bambou, hormis les spécificités ci-après (Illustration 9).

- La structure du bac est légèrement différente de celle précédemment décrite :

* il faut adapter la surface de chaque bac : 2,50 m x 1,20 m (et non 5 m x 1,20 m). Pour atteindre la capacité de 8.000 plants prise en exemple, il faudrait donc 40 bacs (et non 20 comme vu précédemment), qu'on peut accoler par paire, afin de garder la même surface d'emprise de la pépinière ;

* pour le toit de chaque bac, on n'a besoin que de deux bambous ou de rachis de raphia de 2,60 m de long (plutôt que 2,50 m) : la pose de support sur les petits côtés de la toiture n'est pas nécessaire ici ;

* il n'y a pas d'étape de préfabrication des cadres, et on n'utilise pas de clous pour associer les différents éléments formant un bac.
<figure><img src="image_60.png" /><figcaption>**Photo 13.** Ombrière en filet (matériau synthétique) d'une pépinière d'essences forestières. © K.D.</figcaption></figure>

- Pour chaque bac, des encoches sont pratiquées sur les quatre bambous à poser au sol : deux paires de petits trous superposés sont réalisées à environ 30-40 cm des extrémités.

- Toujours pour chaque bac, une encoche arrondie est réalisée à une des extrémités des quatre poteaux.

- Les poteaux sont d'abord posés dans les trous, et les écartements entre poteaux sont aussitôt figés à l'aide des quatre bambous posés au sol : les petites encoches pratiquées à environ 30-40 cm des extrémités servent à garantir le maintien de

ces bambous en y insérant de petits pieux enfoncés dans le sol.

- Les bambous peuvent aussi être fendus sur toute leur longueur et constituer 3 à 4 lattes fixées à l'aide de liens en rotin à des piquets plantés dans le sol. On utilise deux « lattes » superposées pour constituer le flanc d'une planche.

Enfin, rappelons que chaque bac doit être numéroté ; le numéro est soit directement inscrit à la peinture, en hauteur sur un poteau du bac, soit sur uneywante clouée sur un poteau (Photo 14).
A

<figure><img src="image_61.png" /></figure>

B

<figure><img src="image_62.png" /></figure>

C

<figure><img src="image_63.png" /></figure>

D

<figure><img src="image_64.png" /></figure>

**Illustration 9.** Schématisation des spécificités de la construction d'une pépinière à l'aide de tiges de bambou.

A – Trous pratiqués dans les tiges de bambou délimitant les bacs au sol. B – Des encoches en forme de demi-cercle sont pratiquées à une extrémité de chaque poteau. C – Les poteaux sont posés dans les trous et leur écartement est fixé à l'aide des tiges délimitant les bacs au sol.

Deux petits piquets sont insérés dans les trous et enfoncés dans le sol pour fixer ces éléments.

D – Des traverses sont posées dans les encoches des poteaux.

<figure><img src="image_65.png" /><figcaption>**Photo 14.** Bacs numérotés d'une pépinière d'espèces d'arbres forestiers. © K.D.</figcaption></figure>
## 4.4 Matériel nécessaire au fonctionnement quotidien de la pépinière

Outre le matériel pour l'entreposage des semences (Section 3.8) et la construction des infrastructures de la pépinière, un autre lot de matériel doit être acquis pour le bon fonctionnement quotidien de la pépinière. Les circonstances d'utilisation des éléments listés dans le Tableau 6 seront détaillées dans les sections suivantes du document. L'ensemble du matériel sera stocké dans le magasin sécurisé de la pépinière.

La pépinière doit disposer en permanence d'au moins deux exemplaires des principaux outils d'entretien quotidien : balai, cutter, bêche, seau, pulvérisateur, arrosoir, etc. Pour les pépinières de taille moyenne (plus de 15.000 plants), un système d'arrosage par tuyau mobile (fixé sur un robinet) est nécessaire. Pour les petites pépinières, il faut prévoir un endroit où remplir les arrosoirs : soit en aménageant un système de récupération d'eau de pluie, soit en allant chercher l'eau à une source proche.

<table><caption>Tableau 6. Matériel minimum requis pour le bon fonctionnement d'une pépinière d'espèces forestières.</caption><thead><tr><td>Tâches justifiant le besoin</td><td>Matériel</td></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="5">Remplissage des sachets, préparation des giroirs et semis</td><td>Carnet ou classeur avec fiches des semenciers et des récoltes</td></tr><tr><td>Sachets de pépinière en polyéthylène (10-12 cm de diamètre quand le pot est rempli)</td></tr><tr><td>Stock de terreau</td></tr><tr><td>Stock de sable fin à moyen</td></tr><tr><td>Stock de terre forestière</td></tr><tr><td rowspan="5">Prétraitement à l'acide de certaines graines dormantes</td><td>Tamis de maille 5 mm</td></tr><tr><td>Bocaux en verre</td></tr><tr><td>Bidon d'acide sulfurique à forte concentration (90 %)</td></tr><tr><td>Bidon d'entreposage de l'acide sulfurique usagé</td></tr><tr><td>Équipement de protection individuelle contre les produits corrosifs (combinaison totale, gants, masque, lunettes, bottes, etc.)</td></tr><tr><td rowspan="5">Entretien quotidien de l'emprise de la pépinière</td><td>Balai</td></tr><tr><td>Bêche et/ou pelle</td></tr><tr><td>Brouette</td></tr><tr><td>Houe</td></tr><tr><td>Râteau</td></tr></tbody></table>
<table><caption>**Tableau 6.** (Suite).</caption><thead><tr><th>Tâches justifiant le besoin</th><th>Matériel</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="9">Entretien quotidien des lots de plants</td><td>Arrosoir</td></tr><tr><td>Carnet ou classeur avec fiches d'identification et de suivi des lots</td></tr><tr><td>Machette</td></tr><tr><td>Marqueur indélébile</td></tr><tr><td>Panneau ou baguette de bois</td></tr><tr><td>Pots de peinture claire et sombre</td></tr><tr><td>Produits phytosanitaires : savon (ou liquide vais-selle), huile de neem, feuilles de tabac</td></tr><tr><td>Pulvérisateur</td></tr><tr><td>Seau</td></tr><tr><td>Sécateur</td></tr></tbody></table>

## 4.5 Choix du type de conteneur des plants

La question du conteneur des plants doit être rapidement tranchée dans tout programme de plantation. Trois modalités de support de plant peuvent être adoptées dans les pépinières d'espèces tropicales (Photo 15).

1) Les sachets en plastique sont de fins sacs en polyéthylène, individuels (un plant par sachet), assez fragiles et perforés de quelques trous sur les parois et dans le fond, pour l'évacuation du surplus d'eau d'arrosage. Leurs dimensions se situent préférentiellement entre 8-12 cm de diamètre et 15-20 cm de hauteur. Trop petits, ils n'offrent pas suffisamment de volume pour le développement de l'appareil racinaire. Trop grands, ils nécessitent beaucoup de substrat et sont lourds à transporter.

Les sachets ouverts sont remplis du substrat et ensemencés, puis déposés sur le sol dans les bacs. Ce sont ces sachets (ou pots) individuels qui sont transportés sur le site final de plantation.

2) Les plants à racines nues : dans ce système, les semis sont effectués sur des bandes de sol remué ou des bacs remplis d'une épaisse couche de substrat. Au moment de la transplantation en milieu final, les plants éduqués sont déterrés : le système racinaire doit être préparé (taillé) et est donc dénudé avant la transplantation. Tous les plants déterrés doivent être rapidement plantés, ou les racines sont enrobées de boue. Dans tous les cas, le risque de mortalité à ce stade est plus important qu'avec les plants produits en sachet. Ce système nécessite donc des espèces robustes et résistantes
(tel que le teck - Tectona grandis).

3) Les plaques multi-alvéoles (ou conteneurs à alvéoles) sont des conteneurs rigides, plus petits que les sachets et avec de grands trous à leur base. Les parois sont toujours rainurées verticalement pour induire un développement harmonieux des racines vers le bas. Ce type a montré

son efficacité surtout avec les es-
pèces à croissance rapide, dont le
développement dans ce support est
connu et maîtrisé. Le recours à ce
type de conteneur induit également
un investissement initial plus impor-
tant que pour les précédents, mais
les plants produits offrent générale-
ment une meilleure survie.

<figure><img src="image_66.png" /></figure>

Plants produits dans des sachets
en polyéthylène. © K.D.

<figure><img src="image_67.png" /></figure>

Semis sur des plates-bandes de
production de plants à racines
nues. © D.L.

<figure><img src="image_68.png" /></figure>

Exemple de plaque multi-alvéoles
© N.B.

<caption>**Photo 15.** Aperçu des différents types de conteneur.</caption>
Les conteneurs à alvéoles ont été utilisés par le passé dans de nombreuses pépinières d'espèces tropicales. **Malgré divers avantages par rapport aux autres méthodes de production** (un meilleur développement racinaire, la réutilisation des conteneurs, une moindre quantité de substrat par plante, des déplacements beaucoup plus faciles...), les premiers essais avec des plaques multi-alvéoles ont été souvent abandonnés[29] pour plusieurs raisons : (i) elles coûtent bien plus cher que les sachets et leur disponibilité n'est pas toujours garantie dans de nombreuses régions d'Afrique ; (ii) elles doivent être accrochées en hauteur ou posées sur un support trouvé haut d'au moins 30 cm (voire 1 m pour plus de confort du pépiniériste) pour le cernage des racines ; (iii) et compte tenu de leurs dimensions réduites, les conteneurs à alvéoles exigent l'utilisation d'un substrat organique très riche (compost notamment). L'utilisation de ces plaques ne sera

donc pas davantage développée ici, bien que pouvant être parfaitement envisagée dans des pépinières industrielles.

La grande majorité des pépiniéristes en milieu tropical aura donc à choisir entre la technique des plants à racines nues et celle des plants éduqués en sachet plastique (sachet en polyéthylène). Le **Tableau 7** compare ces deux approches. Les pépiniéristes choisissant la méthode des racines nues le font généralement parce qu'elle paraît moins onéreuse et moins contraignante. Toutefois, en pratique, les exigences techniques de la méthode des racines nues sont rarement respectées lors de l'éducation des plants, ce qui engendre des plants plus fragiles et des plantations nettement moins performantes en termes de survie et de croissance[30, 31]. **Pour ces raisons, la méthode utilisant des sachets plastiques comme support de production est à privilégier, et sera donc développée dans la suite du document.**

<table><caption>**Tableau 7.** Spécificités des deux méthodes classiques de production de plants en pépinière.</caption><thead><tr><th colspan="2">Spécificités de la production en racines nues par rapport à la production en sachets plastiques</th></tr></thead><tbody><tr><td>Technicité et main d'œuvre requises pendant l'éducation en pépinière</td><td><p>Plus grande technicité requise pour :</p><ul><li>la production de compost afin de maintenir la fertilité des planches pendant les phases de production des plants ;</li><li>la mise en place d'un système de maintien de la fertilité des planches, par jachère améliorée (rotation des planches et semis de plantes améliorantes en période de repos) et/ou complet renouvellement régulier des substrats ;</li><li>l'habillage des racines, très délicat et moins aisé à contrôler dans ce cas ;</li><li>le prélèvement des plants pour la transplantation, qui abîme souvent les racines ;</li><li>le transport des plants à racines nues vers le site final, qui exige souvent des traitements préliminaires (par exemple, enrobage préalable des racines dans un bain de boue au minimum) ;</li><li>les délais de transplantation qui doivent être très courts et qui impliquent une parfaite organisation.</li></ul></td></tr></tbody></table>
<table><caption>Tableau 7. (Suite)</caption><thead><tr><th colspan="2">Spécificités de la production en racines nues par rapport à la production en sachets plastiques</th></tr></thead><tbody><tr><td>Technicité et main d'œuvre requises pendant l'éducation en pépinière</td><td>Ces obligations techniques font que, pour une pépinière de taille moyenne par exemple (≈15.000 plants), un seul pépiniériste suffit pour le système des sachets tandis qu'une à deux personnes supplémentaires seront nécessaires à mi-temps ou à deux-tiers-temps lors d'une production équivalente à racines nues.</td></tr><tr><td>Rendement en plantation</td><td>Moyennes de taux de survie et de croissance initiale des plants produits en racines nues plus faibles que celles des plants produits en sachet.</td></tr></tbody><thead><tr><th colspan="2">Spécificités de la production en sachets plastiques par rapport à la production en racines nues</th></tr></thead><tbody><tr><td>Technicité requise pendant l'éducation en pépinière</td><td>La production en sachets nécessite aussi un minimum de maîtrise technique spécifique :<ul><li>remplissage des sachets afin de limiter les problèmes racinaires ;</li><li>remplacement des sachets abîmés ou déchirés pendant l'éducation ;</li><li>limitation du développement des chignons racinaires par cernage racinaire.</li></ul></td></tr><tr><td>Transplantation en milieu définitif</td><td>La méthode des sachets est plus contraignante durant la phase de transplantation :<ul><li>le transport des plants est plus laborieux : pots lourds et encombrants. Des véhicules de grande capacité sont nécessaires ;</li><li>les trous de plantation sont plus grands : l'investissement humain et en temps est plus important ;</li><li>Les sachets doivent être récupérés et évacués en suivant la politique de gestion des déchets de l'entreprise.</li></ul></td></tr></tbody></table>

## 4.6 Substrats et semis

### 4.6.1 Propriétés du substrat idéal

Le bon substrat de pépinière doit être suffisamment poreux pour faciliter l'aération du milieu et le développement des racines et des microorganismes, tout en mettant à disposition des plants les éléments nutritifs nécessaires. Les propriétés du substrat adéquat de pépinière sont les suivantes :

1) une granulométrie (texture) ni trop fine, ni trop grossière. Cela s'apprécie en essayant de faire un boudin du substrat légèrement humidifié. Si le boudin est aisément construit

et ne se casse pas facilement, le substrat est dominé par l'argile. Si le boudin ne peut être formé, c'est le sable qui domine. Les cas intermédiaires indiquent donc un substrat dont la texture est appropriée à la pépinière. En Afrique centrale par exemple, la majorité des sols est de texture argileuse, ce qui impose le mélange avec du sable ;

2) une bonne richesse en éléments nutritifs (fertilité). Malheureusement, l'appréciation visuelle de la richesse du substrat est bien plus délicate et plus subjective. On retiendra qu'en milieu peu perturbé
par l'homme, la couche arable des sols forestiers jusqu'à 10-20 cm est suffisamment riche[29]. Le terreau, généralement collecté autour des maisons en zone rurale, affiche aussi une bonne fertilité ;

3) la présence d'organismes bénéfiques aux racines des plants. Environ 90 % des plantes ont des mycorhizes[32] : il s'agit d'associations mutuellement bénéfiques entre des

racines et des champignons, ces derniers améliorant la disponibilité en eau et en nutriments pour la plante, ainsi que la résistance aux maladies (Encadré 7)[33]. Par ailleurs, à quelques exceptions près, les légumineuses bénéficient aussi d'associations bactériennes améliorant la disponibilité d'azote absorbable[34]. Sachant que le sol forestier renferme localement ces organismes

## Encadré 7. Fréquence et rôle des associations mycorhiziennes et bactériennes chez les plantes

Les mycorhizes sont des associations entre les hyphes (éléments filamenteux de nutrition) d'un champignon et les racines d'une plante. Il s'agit d'une symbiose : la plante voit sa surface racinaire démultipliée et en échange, le champignon reçoit les composés carbonés issus de la photosynthèse. La majorité des arbres tropicaux développent surtout des endomycorhizes, à vésicules et arbuscules : toutes les familles sont concernées à l'exception des Dipterocarpaceae (cette famille ne présente que des ectomycorhizes). Les mycorhizes favorisent l'absorption par la plante du phosphore mais aussi de l'azote, du magnésium, du cuivre, du manganèse et du zinc. L'accès à l'eau est également facilité et une meilleure protection des racines contre des agents pathogènes a été prouvée. Tous les mécanismes à l'origine de ces résistances aux maladies ne sont pas encore connus, mais il a été démontré que des champignons mycorhiziens produisaient des antibiotiques, des substances phénoliques et de l'acide oxalique qui détruisent certains pathogènes racinaires. Les mycorhizes pourraient même permettre des échanges de substances et d'informations entre arbres voisins en les mettant en contact. Pour plus de détails, lire par exemple la référence [33].

Quant aux associations bactériennes, un total de 11 familles de plantes, dont les légumineuses, sont connues pour fixer l'azote atmosphérique via les nodules de bactéries établies sur leurs racines. Ces associations ont été démontrées chez 700 espèces d'arbres, majoritairement tropicales, et 3.000 autres espèces sont soupçonnées d'en faire autant. Les genres de légumineuses n'offrant pas (ou rarement) de telles associations sont : *Bauhinia*, *Caesalpinia*, *Cassia*, *Delonix*, *Haematoxylon*, et *Parkinsonia*. Pour plus de détails, lire par exemple la référence [34].
symbiotiques, il est donc fortement recommandé d'inclure une fraction de terre arable prélevée dans des zones où poussent naturellement les espèces à produire, dans le substrat des pépinières d'espèces forestières.

Le substrat de pépinière doit donc être constitué d'un mélange de terreau, de sable et de terre arable forestière (Illustration 10), particulièrement pour les légumeuses grégaires. Le sable fin (diamètre

de grain de moins de 0,5 mm) est forte- ment déconseillé, car il réduit fortement la porosité du substrat ; on utilisera des sables de 0,5-1 mm de grain pour les ger- minations, ou 1-2 mm de diamètre pour les boutures. En fonction de la granulo- métrie du sol forestier, **les mélanges pré- conisés sont résumés dans le Tableau 8, bien qu'il n'existe pas de règle générale en la matière.**

<figure><img src="image_69.png" /><figcaption>Illustration 10. Exemple de constitution d'un substrat de pépinière à partir d'un sol forestier argileux, de terreau et de sable. Le mélange doit être bien retourné afin d'être bien homogène.</figcaption></figure>
<table><caption>**Tableau 8.** Dosage des éléments du substrat de pépinière en fonction de la texture du sol local.</caption><thead><tr><td>Texture du sol arable de la zone</td><td>Volume de terre arable forestière</td><td>Volume de terreau ou compost</td><td>Volume de sable</td></tr></thead><tbody><tr><td>Sol argileux</td><td>1</td><td>2</td><td>2</td></tr><tr><td>Sol limoneux</td><td>1</td><td>1</td><td>1</td></tr><tr><td>Sol sableux</td><td>1</td><td>1</td><td>0</td></tr></tbody></table>

Dans certains cas, l'ajout d'autres substances peut être envisagé afin d'améliorer la capacité de rétention d'eau du substrat, voire sa fertilité : fibres de coco, vermiculite, perlite. Afin d'amoindrir les coûts, on n'évoquera ici que l'ajout complémentaire de produits aisément trouvables en Afrique et peu coûteux, tels que la cendre, la sciure de bois ou du broyat de charbon de bois. Toutefois, il est primordial de tester l'effet de tels ajouts sur un échantillon de plants, avant de les générer : leur influence positive sur la croissance des plants n'est pas toujours avérée, et il faut être particulièrement méfiant avec la sciure issue de scieries : (i) elle peut contenir des résidus de produits de traitement du bois (insecticides) nocifs aux plantules ; (ii) sa décomposition dans le sol nécessite d'importantes quantités d'azote dont la plante est ainsi privée.

### 4.6.2 Dimensions, remplissage et rangement des sachets ou pots

Contrairement aux idées reçues, il n'est pas recommandé d'utiliser de trop grands sachets dans les pépinières d'arbres tropicaux. Les sachets recommandés sont perforés et ont une hauteur de 18-20 cm pour un diamètre – sachet rempli – de 10-12 cm. Dans le cas des arbres fruitiers greffés, l'utilisation de sachets de plus

grand volume est indiquée (le lent développement de ces plants nécessite un séjour plus long : un volume initialement important de substrat évite aussi de rempoter trop fréquemment) : jusqu'à 30 cm de haut pour 20 cm de diamètre.

Bien que semblant anodin, le remplissage des sachets (ou pots) est une tâche délicate et importante pour le pépiniériste. Comparativement aux conteneurs à alvéoles et aux planches pour la production à racines nues, l'usage de sachets augmente le risque d'un moins bon développement racinaire : enroulement des racines et formation de chignons racinaires (agglomérat de racines coincées au bas du sachet) ne sont malheureusement pas rares. Afin de limiter ces risques, il convient d'appliquer rigoureusement la procédure suivante, sachant que le remplissage se fait soit à la main, soit à l'aide d'une petite pelle, soit grâce à une boîte de conserve transformée en cylindre (les deux disques aux extrémités sont ôtés) (Illustration 11) :

1) le substrat composé doit être sec : un substrat humide provoque l'éclatement du sachet ;

2) verser une grosse poignée de substrat dans le sachet et s'assurer qu'il pénière dans les deux coins du sachet ;
3) rentrer profondément les coins du sachet à l'aide de l'index et du pouce ;

4) compléter le substrat dans le sachet jusqu'aux deux tiers de la hauteur ;

5) tasser le contenu du sachet en le laissant tomber à plusieurs reprises d'une hauteur de 20 cm environ. Il ne faut

surtout pas tasser le contenu avec les doigts ou la paume de la main ;

6) il faut remplir à ras bord le sachet en continuant à le tasser (toujours par lâchers répétés), et finir en y ajoutant une dernière poignée de substrat formant un dôme et donnant une impression de « trop plein ».

<figure><img src="image_70.png" /><figcaption>Illustration 11. Principales étapes de remplissage et de rangement des sachets de pépinière.</figcaption></figure>

A – Enfoncement des coins vers l'intérieur ; B – tassement optimal par lâchers successifs ;

C – rangement des sachets dans les bacs.

Les sachets remplis sont ensuite disposés dans les bacs par rangées d'effectifs identiques. **Autant que possible, il est recommandé d'adopter des rangées de 10 sachets, car le décompte du stock en est grandement facilité** : il suffit de compter le nombre de rangées sur la longueur (grand côté) du bac et de le multiplier par 10 pour connaître l'effectif des

rangées complètes du lot de plants. Le dimensionnement des bacs et de la pépinière doit donc en tenir compte, c'est-à-dire qu'il faut avoir déjà défini le type de sachet de la pépinière avant de définir la taille des bacs et de la pépinière entière. Exemple : dans le cas de la pépinière précédemment construite (Illustration 6 et Illustration 7) :
- sur une rangée (largeur du bac : 1,2 m), 10 sachets de 11 cm de diamètre chacun s'étaleront sur 1,1 m ;

- chacun des deux compartiments des bacs devrait accueillir 200 plants, soit 20 rangées de 10 plants chacune. Vingt rangées s'étaleront sur 2,2 m sur la longueur du bac. Celui-ci étant long de 2,5 m, un espace de 30 cm demeurera libre ;

- l'espace de 30 cm sur la longueur doit être laissé vide : cela facilite l'entretien des plants par le pépiniériste en permettant leur tri et leur déplacement régulier (Section 4.9.3).

### 4.6.3 Prétraitements avant semis

Les semences de certaines espèces peuvent être semées directement, mais d'autres nécessitent un traitement préalable (il ne sera plus évoqué ici le cas des graines à ôter des fruits charnus ; Section 3.7).

1) **Enlèvement de l'arille.** Certaines semences sont arillées, c'est-à-dire qu'elles possèdent un appendice ou une enveloppe charnue, plus ou moins développée (Photo 16). On citera notamment les graines d'akui (Xylopia aethiopica), d'avodiré (Turaeanthus africanus), du bossé clair (Leplaea cedrata), du bossé foncé (Leplaea thompsonii), du bubinga (Guibourtia pellegriniana et G. tessmannii), du doussié (Afzelia spp.), de l'ilomba (Pycnanthus angolensis), du niové (Staudtia kamerunensis). En général, cette pièce devra être ôtée de la graine avant le semis car elle contient des substances retardant la germination. Des expériences ponctuelles peuvent permettre d'affiner cette règle ; pour le genre Guibourtia par exemple, des essais montrent que le maintien de l'arille aboutissait à de meilleurs taux de germination.

<figure><img src="image_71.png" /><figcaption>**Photo 16.** Graines avec et sans arille du doussié (Afzelia bipindensis). © A.D.</figcaption></figure>
2) **Trempage dans l'eau pour tri ou accélération de la germination.** Avec la température, l'eau est le principal élément nécessaire à la germination : celle-ci débute lorsque les graines ont absorbé suffisamment d'eau et gonflent. Certains pépiniéristes se basent sur ce principe pour faire un dernier tri des graines ou pour accélérer la germination :

- dans un récipient, verser au moins quatre volumes d'eau pour un volume de graines ;

- trier par flottation : cela concerne surtout la plupart des graines extraites des fruits charnus ou provenant des gousses. Celles qui sont a priori viables tombent au fond du récipient ou flottent entre deux eaux. Celles restant en surface après quelques minutes sont considérées dégradées et donc éliminées<sup>ix</sup>.

3) **Levée de la dormance des graines.** Certaines espèces présentent des graines dites dormantes : tout en étant vivantes, elles sont incapables de germer après récolte même en étant placées dans les conditions optimales de germination (eau, température, lumière, etc.)<sup>22, 23, 24, 35, 36</sup>. Il s'agit notamment de l'aiélé (Carnarium schweinfurthii), de l'angueuk

(Ongokea gore), du bilinga (Nauclea diderrichii), du coula (Coula edulis), du framiré (Terminalia ivorensis), du limba (Terminalia superba), du lo (Parkia bicolor), du movingui (Distemonanthus benthamianus), du mukulungu (Autranella congensis), de l'oboto (Mammea africana), du tali (Erythrophleum suaveolens et E. ivorense). La dormance ou une apitude à supporter la dessiccation et de longues durées de conservation est également suspectée chez des espèces telles que l'ayous (Triplochiton scleroxylon) et l'iroko (Milicia excelsa)<sup>[37]</sup>. Pour les semences concernées, il existe différentes méthodes de levée de la dormance physique ; les principales sont exposées dans le **Tableau 9**. Lorsqu'il s'agit d'une dormance embryonnaire (**Encadré 8**), seule une période prolongée de développement de l'embryon permet la germination.

L'utilisation de l'acide sulfurique est une des rares transgressions à la règle de la non-utilisation de produits chimiques dans ce guide ; elle s'avère simplement quasi inévitable pour des espèces à forte importance économique telles que le tali (Erythrophleum ivorense et E. suaveolens ; **Photo 17**) ou le movingui (Distemonanthus benthamianus).

<footnote><sup>ix</sup> Cette règle n'est toutefois pas applicable aux graines naturellement dispersées par l'eau (cas des graines du rikio – *Uapaca guineensis*).</footnote>
<table><caption>**Tableau 9.** Pratiques de levée de la dormance physique de graines, ou d'amélioration du pouvoir germinatif.</caption><thead><tr><th>Traitements</th><th>Principales étapes</th><th>Espèces ayant bénéficié d'un test positif</th></tr></thead><tbody><tr><td>Traitement à l'eau froide</td><td><ul><li>Mettre les graines dans un récipient contenant de l'eau à température ambiante.</li><li>Laisser séjourner pendant 3 à 48 heures au maximum.</li><li>Pour les durées supérieures à 12 heures, remplacer l'eau toutes les 12 heures environ.</li></ul>Remarque : essayer aussi des alternances de trempage et séchage, de 24 heures chacun (bons résultats avec le framiré – Terminalia ivorensis).</td><td><ul><li>Emien – Alstonia boonei</li><li>Framiré – Terminalia ivorensis</li><li>Iroko – Milicia excelsa</li><li>Limba – Terminalia superba</li><li>Nsangomo – Allanblackia spp.</li><li>Oboto – Mammea africana</li><li>Onié – Garcinia kola</li></ul></td></tr><tr><td>Traitement à l'eau chaude (non bouillante)</td><td><ul><li>Faire bouillir de l'eau dans un récipient.</li><li>La laisser refroidir pendant 10 à 15 minutes, puis y verser les graines.</li><li>Laisser tremper pendant 1 à 2 jours.</li></ul></td><td><ul><li>Aiéle – Canarium schweinfurthii</li><li>Akui – Xylopia aethiopica</li><li>Fuma – Ceiba pentandra</li><li>Iroko – Milicia excelsa</li></ul></td></tr><tr><td>Traitement à l'eau bouillante</td><td><ul><li>Faire bouillir de l'eau dans un récipient.</li><li>Enlever le récipient du feu et y déverser aussitôt les graines.</li><li>Laisser ainsi pendant 2 minutes.</li><li>Jeter l'eau chaude.</li><li>Verser les graines dans de l'eau froide.</li><li>Laisser tremper pendant 1 à 2 jours.</li></ul></td><td><ul><li>Fuma – Ceiba pentandra</li><li>Akui – Xylopia aethiopica</li></ul></td></tr><tr><td>Scarification manuelle</td><td>Deux principales options, à tester séparément :<ul><li>placer les graines dans un tambour rotatif (exemple : bétonnière) contenant ou tapissé d'un matériau abrasif (ciment durci, gravier, papier de verre, etc.) et effectuer plusieurs minutes de rotation ;</li><li>OU, détruire partiellement, à la main, le tégument à l'aide d'un outil approprié : pince, marteau, lime, cutter/machette, etc.</li></ul>Remarque : le trempage dans l'eau froide après la scarification peut accélérer la germination.</td><td><ul><li>Ayous – Triplochiton scleroxylon</li><li>Emien – Alstonia boonei</li><li>Essessang – Ricinodendron heudelotii</li><li>Fuma – Ceiba pentandra</li><li>Ilomba – Pycnanthus angolense</li><li>Iroko – Milicia excelsa</li><li>Limba – Terminalia superba</li><li>Mukulungu – Autranella congo-lensis</li></ul></td></tr><tr><td>Traitement à l'acide sulfurique (H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>)</td><td><ul><li>Préparer ou se procurer de l'acide sulfurique concentré à 90-95 %.</li><li>Mettre une quantité suffisante d'acide dans un bocal en verre.</li><li>Y déverser les graines.</li><li>Laisser l'ensemble pendant 2 à 45 minutes (le temps est d'autant plus long que les graines auront été stockées longtemps).</li><li>Verser l'acide dans un bocal ou bidon d'acide usagé.</li><li>Rincer les graines abondamment à l'eau froide.</li><li>Verser les graines dans un récipient contenant de l'eau froide.</li><li>Laisser ainsi l'ensemble pendant 1 à 24 heures.</li></ul></td><td><ul><li>Fuma – Ceiba pentandra</li><li>Tali – Erythrophleum spp.</li><li>Movingui – Distemonanthus benthamianus</li><li>Lo – Parkia bicolor</li></ul></td></tr></tbody></table>
## Encadré 8. Les différents types de dormance de graines

Il existe quelques variantes dans la typologie des dormances, mais la plus citée comprend cinq classes de dormance (voir la référence [35]) :

1) **La dormance physique** est due à des téguments imperméables à l'eau ou à l'effet «barrière physique» des téguments. La dormance ne peut être levée que lorsqu'une fente ou une fissure est opérée dans les téguments.

2) **La dormance morphologique** désigne l'état de graines ayant un embryon trop petit. Ce dernier est soit différencié (les cotylédons et la radicule sont distincts), soit indifférencié : les cotylédons et la radicule ne sont pas distincts. Seul un développement supplémentaire de l'embryon permet la levée de la dormance.

3) **La dormance physiologique** est due à un facteur interne limitant le déclenchement de la germination au niveau de l'embryon. En général, une période en milieu froid (stratification à froid) et/ou l'application d'acide gibbérellique est nécessaire pour lever la dormance. Cette forme de dormance concerne les espèces de climat tempéré ou froid.

4) **La dormance morphophysiologique** désigne le cas où une dormance physiologique s'ajoute à l'immaturité de l'embryon. Les deux contraintes devront être levées avant la germination.

5) **La dormance combinée** implique une dormance physique (téguments imperméables) et une dormance physiologique (l'embryon ne croît pas).

Certains auteurs regroupent sous le vocable «dormance embryonnaire» les dormances affectant d'une manière ou d'une autre l'embryon (dormances morphologique, physiologique et morphophysiologique). On voit parfois aussi l'expression «dormance tégumentaire» assimilée à la dormance physique.

Des tests d'imbibition d'eau permettent de savoir si la dormance d'une semence est de type physique (la semence ne grossit pas après un séjour dans l'eau) ou embryonnaire (la semence grossit, mais ne germe pas).

L'usage de l'acide sulfurique oblige toutefois à des précautions impératives (Photo 18). Les structures ne pouvant disposer de l'équipement nécessaire à la manipulation de l'acide ne sont pas autorisées à utiliser ce produit.

Les étapes et précautions sont détaillées à l'**Illustration 12**. Certaines de ces étapes et des règles à suivre sont rappelés ci-dessous.

- Le pépiniériste et son éventuel assistant doivent être habillés suivant des
<figure><img src="image_72.png" /><figcaption>**Photo 17.** Graines de tali (*Erythrophleum suaveolens*) traitées à l'acide sulfurique et rincées. La décoloration des téguments, du brun vers des teintes orangées, est un bon indicateur du succès du traitement. © K.D.</figcaption></figure>

règles strictes : combinaison totale adaptée aux manipulations de produits acides (blouse, gants en nitrile ou en néoprène, bottes, lunettes de protection, masque nasal).

- Bien que d'autres matériaux puissent supporter l'acide, il est recommandé d'utiliser des récipients en verre lors de telles manipulations.

- Si l'on ne dispose que d'acide à 95-98 %, il sera nécessaire de le diluer pour atteindre la valeur optimale de 90 %. On doit toujours verser l'acide sur l'eau car d'importantes éclaboussures se produisent lorsque l'eau est versée sur l'acide. Le mélange des deux dégage une forte chaleur et il conviendra de laisser refroidir le mélange avant le traitement des graines. Par précaution, on veillera toujours à éloigner

sa tête de la verticale du bocal où s'effectue le mélange.

- Il n'y a pas de temps idéal de trempage des graines dans l'acide (bien que souvent compris entre 10 et 60 minutes) : le délai de trempage peut varier avec l'espèce, le semencier, mais aussi en fonction de la date de récolte des graines. C'est particulièrement le cas de certaines légumineuses dont l'intensité de la dormance s'accroît au fil du temps et de la dessiccation des graines. Le pépiniériste devra tester plusieurs temps (avec de petites quantités d'un lot de graines) afin de déterminer la durée optimale.

- Il n'y a pas de temps idéal de trempage des graines dans l'eau, après le trempage dans l'acide et le rinçage. Ici aussi, le pépiniériste devra tester
plusieurs temps (avec de petites quantités d'un lot de graines ; d'une à trois heures généralement) afin de déterminer la durée optimale.

- L'acide utilisé doit être stocké dans

un bidon dédié à cet effet : il ne devra surtout pas être versé au sol. Il sera confié à une structure spécialisée dans la gestion des produits chimiques.

<figure><img src="image_73.png" /></figure>

<figure><img src="image_74.png" /></figure>

**Photo 18.** Deux pépiniéristes, A et B, s'apprêtant à traiter des graines à l'acide sulfurique.

Le pépiniériste en A commet l'erreur de ne pas vêtir une combinaison parfaitement adaptée (l'imperméable ne protège pas contre l'acide), contrairement au pépiniériste en B dont aucune partie du corps, y compris l'arrière de la tête, n'est exposée. © K.D.
A

<figure><img src="image_75.png" /></figure>

Lunettes

Bocal en verre

<figure><img src="image_76.png" /></figure>

<figure><img src="image_77.png" /></figure>

Eau froide

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Gants

<figure><img src="image_79.png" /></figure>

Combinaison

<figure><img src="image_80.png" /></figure>

Bidon à acide usagé

Masque

<figure><img src="image_81.png" /></figure>

Bidon à acide

<figure><img src="image_82.png" /></figure>

Bottes en
caoutchouc

B

Écarter la tête pour éviter les vapeurs

<figure><img src="image_83.png" /></figure>

C

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Laisser tremper dans l'acide

<figure><img src="image_85.png" /></figure>

<figure><img src="image_86.png" /></figure>

D

<figure><img src="image_87.png" /></figure>

E

<figure><img src="image_88.png" /></figure>

F

<figure><img src="image_89.png" /></figure>

Laisser tremper dans l'eau

G

<figure><img src="image_90.png" /></figure>

Semer tout de suite !

**Illustration 12.** Étapes et mesures de précaution de levée de dormance de graines à l'aide d'acide sulfurique.

A – Équipement et matériels nécessaires. B – Acide versé dans un bocal en verre, la tête du manipulateur hors de la verticale. C – Graines mises à tremper dans l'acide et régulièrement remuées. D – Acide surnageant versé dans un bidon d'acide usagé. E – Plusieurs rinçages des graines. F – Graines trempées dans de l'eau. G – Semis immédiat après trempage dans l'eau.
4.6.4 Modalités de semis

Le semis constitue la principale voie de
production des plants dans une pépinière
d'espèces forestières, du fait de son coût
et de sa technicité plus faibles que les mé-
thodes de multiplication végétative (bou-
turage, greffage, etc.). Les modalités de
semis diffèrent en fonction de la taille des
semences (Illustration 13).

1) **Pour les semences de taille petite à moyenne** (exemple du wengé – Millettia laurentii), le semis se fera directement dans les conteneurs, les sachets ou pots remplis de substrat. On sème normalement une graine par pot. Toutefois, lorsque les graines sont assez petites et qu'on dispose d'un stock important, deux à trois graines peuvent être semées dans un même pot. Si toutes germent, soit on élimine les semis les plus faibles, soit on repique le surplus de semis robustes dans d'autres pots afin de n'avoir qu'un seul plant par pot.

Un petit trou est réalisé au milieu
du pot à l'aide d'un doigt et la se-
mence y est déposée, puis recou-
verte de terre. À ce stade, deux pré-
cautions importantes doivent être
respectées :

- la profondeur du trou doit être deux fois celle du plus faible diamètre de la semence : le principe est de recouvrir la semence d'une couche de terre dont l'épaisseur est similaire au plus petit diamètre de la semence ;

- il est crucial de tasser très

légèrement le substrat recouvrant
la graine afin que celle-ci soit
parfaitement enveloppée et en
contact avec le substrat.

2) **Pour les semences plus grosses**, il ne faut pas les enterrer totalement, elles doivent juste être enfoncées dans le substrat. On veillera à ce que la radi-cule soit directement au contact du substrat. Pour les Sapotacées (moa-bi – *Baillonella toxisperma*, douka – *Tieghemella africana*, longhi – *Chrys-sophyllum* spp., aniégré – *Pouteria* spp., mukulungu – *Autranella* spp. etc.), cela suppose que la cicatrice de la graine soit enfoncée dans le substrat.

3) **Pour les graines ou fruits ailés** (exemples du sapelli – *Entandrophragma cylindricum* ou du bété – *Mansonia altissima*), la partie globu-leuse est enterrée légèrement tandis que l'aile subsiste à l'extérieur. Il peut être utile de couper l'aile afin d'éviter le déterrement en cas de coup de vent.

4) **Pour les très petites graines** (exemples du bilinga – *Nauclea diderrichii*, et de l'iroko – *Milia excelsa*), elles doivent être semées dans un ger-moir (**Photo 19**), puis les plantules émergentes seront repiquées dans les pots.

Le germoir est une caissette à fond perforé, un grand récipient troué, ou une portion d'un bac aménagé à cet effet et placée dans une zone ombragée et à l'abri des parasites et pathogènes. Le substrat est soit
<figure><img src="image_91.png" /><figcaption>**Illustration 13.** Semis en fonction de la forme des semences.</figcaption></figure>

A – Semence de taille moyenne et plus ou moins arrondie, recouverte de terre d'épaisseur équivalente à son diamètre. B – Semence globuleuse avec cicatrice : seule la cicatrice est enterrée. C – Semence à une aile («planeur lourd») : seule la partie globuleuse est enterrée.

D – Semence à deux ailes ou entourée d'une aile : enterrer à plat.

uniquement du sable, soit celui utilisé pour les sachets, mais il y a dans ce cas un fort risque de **fonte de semis** (pourriture de la graine ou de la partie de la tigelle au ras du sol, généralement sous l'action de champignons). Ce risque peut être réduit en mélangeant les semences à de la poudre de charbon de bois pour les graines de bilinga (Nauclea diderrichii) et d'iroko (Milicia spp.).

Les graines sont réparties sur la surface du germoir, puis sont recouvertes d'une fine couche de sable. L'arrosage se fait à l'aide d'un pulvérisateur afin de ne pas dénuder les semis ou les expulser du germoir. Le repiquage dans les pots doit être précédé d'un copieux arrosage (facilitant l'extraction des racines) et se fait lorsque les plantules ont deux à trois feuilles.
<figure><img src="image_92.png" /></figure>

A - Germoir rudimentaire fait de bambou, pour de faibles productions de plants (iroko - Milicia excelsa, en l'occurrence)

<figure><img src="image_93.png" /></figure>

B - Germoir durable fait de planches et destiné à d'importantes productions de plants (iroko - Milicia excelsa, en l'occurrence)

**Photo 19.** Modèles de germoir de pépinière en fonction des moyens et des objectifs de production. © K.D.

## 4.7 Taux moyens de germination

Dans les conditions de pépinière, une graine sera considérée comme ayant germé lorsque la tigelle aura émergé. Dans les conditions de pépinière et de traitement de graines décrites ci-avant (voir le **Tableau 9** pour les graines nécessitant des prétraitements), l'expérience accumulée sur différents sites au Cameroun, au Gabon et en Guinée-Conakry permettent de classer les espèces en trois catégories en fonction de leur **pouvoir germinatif**, c'est-à-dire le pourcentage moyen de graines germant après semis (**Tableau 10**):

- germination médiocre, lorsqu'un peu moins d'une graine sur trois germe (pouvoir germinatif inférieur à 33%);

- germination passable, pour des pouvoirs germinatifs compris entre 34 et 66%;

- bonne germination, lorsque plus de deux tiers des graines germent (pouvoir germinatif supérieur à 67%).

La précédente classification est basée sur des valeurs moyennes de pouvoir germinatif de plusieurs lots de graines (donc de plusieurs semenciers) collectés pendant plusieurs années. On peut être confronté à des résultats s'écartant sensiblement de ces prévisions si on se base sur des graines d'un ou deux semenciers seulement. De plus, il ne s'agit pas de tests de germination en laboratoire, mais de relevés enregistrés dans des conditions normales de fonctionnement d'une pépinière.
Toutes espèces confondues, on obtient cette valeur permet d'estimer les be-un taux de germination moyen de 55%; soins en semences d'une pépinière.

<table><caption>Tableau 10. Catégorisation d'espèces d'arbres selon leur pouvoir germinatif.</caption><thead><tr><th colspan="2">Germination médiocre<br>1-33 %</th><th colspan="2">Germination passable<br>34-66 %</th><th colspan="2">Bonne germination<br>67-100 %</th></tr></thead><tbody><tr><td>Abalé</td><td>Petersianthus macrocarpus</td><td>Ako</td><td>Antiaris toxicaria</td><td>Acajou<br>d'Afr.</td><td>Khaya spp.</td></tr><tr><td>Abam</td><td>Chrysophyllum lacourtianum</td><td>Avodiré</td><td>Turraeanthus africana</td><td>Afrormosia</td><td>Pericopsis elata</td></tr><tr><td>Aiélé</td><td>Canarium schweinfurthii</td><td>Ayous</td><td>Triplochiton scleroxylon</td><td>Akui</td><td>Xylopia aethiopica</td></tr><tr><td>Angueuk</td><td>Ongokea gore</td><td>Azobé</td><td>Lophira alata</td><td>Amvout</td><td>Trichoscypha<br>acuminata</td></tr><tr><td>Framiré</td><td>Terminalia ivorensis</td><td>Bété</td><td>Mansonia altissima</td><td>Andiroba</td><td>Carapa procera</td></tr><tr><td>latandza</td><td>Albizia ferruginea</td><td>Bossé clair</td><td>Leplaea cedrata</td><td>Dibétou</td><td>Lovoa trichilioides</td></tr><tr><td>Niové</td><td>Staudtia kamerunensis</td><td>Bubinga</td><td>Guibourtia tessmannii</td><td>Doussié</td><td>Afzelia bipindensis</td></tr><tr><td>Onzabili</td><td>Antrocaryon klaineanum</td><td>Dabéma</td><td>Piptadeniastrum<br>africanum</td><td>Ébène<br>d'Afr.</td><td>Diospyros crassiflora</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Douka</td><td>Tieghemella africana</td><td>Fuma</td><td>Ceiba pentandra</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Eyong</td><td>Eribroma oblongum</td><td>Kosipo</td><td>Entandrophragma candollei</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Ilomba</td><td>Pycnanthus angolensis</td><td>Lati<br>parallèle</td><td>Amphimas<br>pterocarpoides</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Iroko</td><td>Milicia excelsa</td><td>Limbali</td><td>Gilbertiodendron<br>dewevrei</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Limba</td><td>Terminalia<br>superba</td><td>Lo</td><td>Parkia bicolor</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Moabi</td><td>Baillonella<br>toxisperma</td><td>Lotofa</td><td>Sterculia rhinopetala</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Movingui</td><td>Distemonanthus<br>benthamianus</td><td>Niangon</td><td>Tarrietia utilis</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Mukulungu</td><td>Autranella<br>gabonensis</td><td>Oboto</td><td>Mammea africana</td></tr></tbody></table>
<table><caption>Tableau 10. (Suite)</caption><thead><tr><th>Germination médiocre<br>1-33%</th><th colspan="2">Germination passable<br>34-66%</th><th colspan="2">Bonne germination<br>67-100%</th></tr></thead><tbody><tr><td rowspan="7"></td><td>Okoumé</td><td>Aucoumea klaineana</td><td>Okan</td><td>Cylicodiscus gabunensis</td></tr><tr><td>Ossabel</td><td>Dacryodes normandii</td><td>Padouk</td><td>Pterocarpus soyauxii</td></tr><tr><td>Ozigo</td><td>Dacryodes buettneri</td><td>Padouk</td><td>Pterocarpus mildbraedii</td></tr><tr><td>Rikio</td><td>Uapaca guineensis</td><td>Pao rosa</td><td>Bobgunnia fistuloides</td></tr><tr><td>Tali</td><td>Erythrophleum ivorense</td><td>Sapelli</td><td>Entandrophragma cylindricum</td></tr><tr><td>Tali</td><td>Erythrophleum suaveolens</td><td>Sipo</td><td>Entandrophragma utile</td></tr><tr><td>Wengé</td><td>Millettia laurentii</td><td>Tiama</td><td>Entandrophragma angolense</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Tchitola</td><td>Prioria oxyphylla</td></tr></tbody></table>

Notes : Les pouvoirs germinatifs ayant permis cette catégorisation proviennent de 3-55 lots de graines par espèce, chaque lot étant un ensemble de graines d'un seul semencier collectées à une date donnée. Ces lots ont été testés en pépinière (semis dans des pots tels que décrits en **Section 4.6**) au Cameroun (Djoum, Ma'an, Mamfe, Mbang et Mindourou), au Gabon (Bambidie) et en Guinée-Conakry (Sérédou-Malwéta).

## 4.8 Bouturage – Cas de l'ayous (Triplochiton scleroxylon)

L'ayous (Triplochiton scleroxylon) est une des trois espèces les plus exploitées en Afrique centrale. Toutefois, la plantation de cette espèce se heurte à de sérieux écueils[38] : non seulement les années de fructification abondante sont rares (tous les 4 à 7 ans environ, bien qu'une flo- raison survienne généralement annuel-lement), mais en plus, les fruits avortent fréquemment suite à du parasitisme. La

production de plants via des boutures de tige et branche (fragments végétaux destinés à générer des copies du plant original) s'est rapidement avérée être une alternative pour la production de plants d'ayous. Le bouturage peut être directement effectué dans les pots[39], ou dans des bacs spéciaux nommés pro- pagateurs (Illustration 14)[40]. L'efficience (coût/résultats) de la seconde approche étant meilleure, elle sera préférée.

Le modèle de propagateur est présenté à l'Illustration 14[41]. Le propagateur ou

<footnote>* Le schéma a été adapté du dessin original de la référence [41].</footnote>
bac de bouturage est caractérisé par une assez forte humidité, un ombrage d'environ 40 %, et une parfaite propreté. Le propagateur est placé sous abri et est fermé par un couvercle en plastique transparent afin de conserver l'atmosphère confinée et une forte humidité ambiante, évitant le dessèchement des boutures. **Il est impondérable que le substrat d'enracinement soit relativement poreux** : soit du sable de grain de 1-2 mm, soit du broyat de charbon de bois, voire parfois de la fibre de noix de coco mélangée à la terre (1/5e de terre). Idéalement, le propagateur doit être étanche de sorte que l'eau stagnant dans la couche de gravier et de cailloux mette plusieurs jours à s'évaper : cela limité les besoins d'arrosage. En pratique, cette étanchéité est rarement obtenue et un arrosage quotidien à l'aide d'un pulvérisateur est généralement effectué.

**Le Tableau 11 détaille la procédure de bouturage de branche de l'ayous (Triplochiton scleroxylon).** Quelques compléments importants sont présentés ci-après.

- **La désinfection régulière de la structure formant le propagateur** (l'ossature en bois et la bâche translucide la couvrant) doit être faite une fois par semaine, en la nettoyant avec de l'eau javellisée (Tableau 11).

- **Le trempage de la base des boutures dans de l'eau de Javel diluée** juste avant le repiquage dans le propagateur. Pour ce faire, la dilution doit être importante. Par exemple, l'expérience a montré qu'un trempage

des boutures dans un mélange d'un volume d'eau de Javel pour 10 volumes d'eau, pendant une minute, procure de bons résultats.

- **Un parc à clones doit être installé à proximité du bac de bouturage** pour fournir régulièrement des boutures (Photo 20). Il s'agit d'une plantation d'ayous régulièrement taillée afin que les branches se développent à hauteur d'homme. Les plants de cette plantation - boutures ou semis - devront provenir d'au moins 30 arbres-mères différents répondant aux critères de bons semenciers (Section 3.3). Des travaux montrent aussi que les chances d'enracinement de l'ayous dépendent de la hauteur de prélèvement des boutures, l'optimum se situant vers 30-50 cm du sol.

- **En l'absence de parc à clones, les boutures seront prélevées en fût sur des idéotypes juvéniles.** Ces arbres-mères (Section 3.3) ne devront pas avoir plus de 20 cm de diamètre. Ils seront recepés à un mètre du sol et les boutures seront prélevées à une hauteur de 30-50 cm du sol.

- **Le taux de reprise des boutures d'ayous est très variable, et dépend aussi en partie de l'expérience du pépiniériste.** Un débutant sera satisfait d'un succès de 30 % quand une personne expérimentée respectant scrupuleusement les normes techniques atteindra aisément 50-60 % de taux d'enracinement. L'influence d'hormones d'enracinement sur
<figure><img src="image_94.png" /><figcaption>Illustration 14. Modèle de propagateur de boutures d'ayous.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_95.png" /><figcaption>**Photo 20.** Parc à clones d'ayous (Triplochiton scleroxylon) près d'une pépinière d'espèces d'arbres tropicaux. © K.D.</figcaption></figure>
ce succès semble discutable, bien que de telles hormones influencent positivement la vigueur du système racinaire : nombre et longueur des racines[40]. On recommandera ici

l'usage d'une solution d'acide salicylique – dont est dérivé le principe actif de l'aspirine (acide acétylsalicylique ; **Tableau 11**).

<table><caption>**Tableau 11.** Principales étapes du bouturage de l'ayous (Triplochiton scleroxylon).</caption><thead><tr><td>Tâches</td><td>Procédures</td></tr></thead><tbody><tr><td>Choix des arbres-mères en forêt</td><td>Les chances de bouturage sont meilleures sur des plants juvéniles ; il vaut mieux choisir des tiges ayant au maximum 20 cm de diamètre, exemptes de maladies et ayant de bonnes conformations telles que décrites en Section 3.3. Les arbres-mères sont recepés à 1 m du sol ; les boutures seront récoltées sur les rejets et les branches peu lignifiés qui se développeront entre 30 et 50 cm de haut (après 2 semaines environ).</td></tr><tr><td>Quand bouturer ?</td><td>Les périodes idéales semblent être la fin des saisons sèches et le début des saisons de pluies ; exemple : février-avril et août-septembre au nord de l'équateur. Le développement de parasites s'avère plus important au plus fort des saisons de pluies.</td></tr><tr><td>Récolte des boutures</td><td>Les boutures mesurent 6-10 cm de long et portent 1-2 feuilles et un nœud. Les feuilles sont découpées aux ciseaux afin d'avoir un diamètre d'environ 7 cm (pour limiter l'évapotranspiration et la demande en eau de la bouture). La base de la bouture est coupée en biais à environ 5 cm du nœud. Le fragment au-dessus du nœud est sectionné (Photo 21).</td></tr><tr><td>Transport des boutures au propagateur</td><td>Il faut éviter le dessèchement des boutures. Si nécessaire, les envelopper dans une étoffe propre et humide mise dans un sac en plastique fermé (hermétique) afin de conserver un maximum d'humidité. Dans tous les cas, le délai de transport doit être aussi court que possible.</td></tr><tr><td>Pré-traitement optionnel</td><td>Pour améliorer l'enracinement des boutures, certains pépiniéristes préconisent de tremper très brièvement la base des boutures (maximum 5 mm) dans un fongicide puis dans une poudre hormonale d'acide indole-butyrique (AIB).<br/>Le fongicide peut être remplacé par de l'eau de Javel fortement diluée (≈1 volume pour 10 volumes d'eau ; une minute de trempage) dont l'influence sur le bouturage est démontrée. Quant à l'hormone de bouturage, elle peut être remplacée par une solution d'aspirine[42] (un comprimé de 500 mg dans 5 litres d'eau ; 5-10 minutes de trempage).</td></tr><tr><td>Repiquage</td><td><ul><li>Il faut enfoncer environ 3-4 cm de la partie basse de la bouture dans le substrat du propagateur.</li><li>Les feuilles de deux boutures voisines ne doivent pas se toucher.</li><li>On peut repiquer environ 150-200 boutures par m².</li><li>Il faut arroser (au pulvérisateur) immédiatement après le repiquage.</li></ul></td></tr></tbody></table>
<table><caption>Tableau 11. (Suite)</caption><thead><tr><td>Tâches</td><td>Procédures</td></tr></thead><tbody><tr><td>Entretien des boutures dans le propagateur</td><td><ul><li>Arroser le propagateur seulement si l'humidité y semble faible (plus de buée sur la toile de plastique, les feuilles des boutures ne sont plus humides).</li><li>Quand l'arrosage est nécessaire, arroser 2 fois par jour : matin (avant 9 h) et en fin d'après-midi (vers 17 h).</li><li>Les boutures moisies ou mortes doivent être aussitôt ôtées.</li><li>En cas d'infestation par des cochenilles, pulvériser une décoction de feuilles de tabac, une solution à base d'huile de neem, ou la préparation suivante : dans un litre d'eau, ajouter une cuillère à café de savon noir liquide, une cuillère à café d'huile végétale et une cuillère à café d'alcool à 90°.</li><li>La structure du bac de bouturage (bâche translucide et armature en bois) doit être nettoyée chaque semaine avec de l'eau de Javel diluée (1 volume d'eau de Javel pour 3-5 volumes d'eau).</li></ul></td></tr><tr><td>Séjour dans le propagateur</td><td>Les boutures séjournent dans le propagateur pendant 3-4 semaines, délai de développement des racines.</td></tr><tr><td>Développement des boutures enracinées</td><td>Au terme du séjour dans le substrat du propagateur, les boutures sont repiquées dans des pots «classiques». Les pots sont ensuite stockés dans un second bac assez similaire au bac de bouturage dans la mesure où l'humidité y est maintenue forte.<br>Lorsque les nouvelles feuilles sont bien développées, les boutures peuvent être mises en lots dans les bacs classiques, sous ombrière, de la pépinière.</td></tr></tbody></table>

L'expérience au Cameroun, sans usage d'hormone ni de substitut d'hormone, aboutit à des taux d'enracinement en pépinière variant de 35 à 60 % selon la rigueur de travail du pépiniériste.

## 4.9 Entretien quotidien de la pépinière

### 4.9.1 Identification et suivi des lots de plants

Pour une gestion rigoureuse des plants d'une pépinière, il importe que chaque lot de plants (groupe de plantules issues de semences collectées un même jour d'un même semencier) soit décrit et suivi via une fiche reprenant un minimum de

caractéristiques (Tableau 12) : localisation dans la pépinière (numéro du bac), co-des de récolte et du semencier, date de semis, prétraitement éventuel effectué, date des premières germinations, etc. Ces informations servent non seulement à retrouver aisément le lot de plants dans la pépinière et à le retracer depuis son origine, mais aussi à estimer à terme divers paramètres : délai et pourcentage de germination, temps de séjour optimal en pépinière, etc. Par ailleurs, un petit panneau ou une baguette en bois est posée près du lot et reprend un minimum d'éléments clés de la fiche : espèce, code du lot de plants, date de semis, nombre de graines semées (Photo 22).
<figure><img src="image_96.png" /><figcaption>Parc à clones d'ayous en cours de traitement contre les cochenilles (avec une solution à base d'huile de neem).</figcaption></figure>

<figure><img src="image_97.png" /><figcaption>Découpe des feuilles d'une bouture.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_98.png" /><figcaption>Vue d'une bouture montrant la section nette et propre de la base.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_99.png" /><figcaption>Boutures installées dans le propagateur.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_100.png" /><figcaption>Boutures enracinées installées dans des pots dans un compartiment du propagateur.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_101.png" /><figcaption>Plants issus de boutures transférés dans un bac de pépinière.</figcaption></figure>

**Photo 21.** Vue de quelques étapes de la procédure de bouturage de l'ayous (Triplochiton scleroxylon). © K.D.
<table><caption>**Tableau 12.** Modèle de fiche de caractérisation et de suivi d'un lot de plants.</caption><caption>Fiche d'identification et de suivi des lots de plants</caption><tbody><tr><td colspan="2"><b>1) Caractérisation du lot</b></td></tr><tr><td colspan="2">Les informations en caractères gras sont à indiquer sur l'étiquette du lot en pépinière.</td></tr><tr><td><b>Numéro du lot en pépinière</b> (code : numéro continu)</td><td>2019-089</td></tr><tr><td><b>Numéro de bac</b></td><td>5</td></tr><tr><td><b>Numéro de récolte</b> (à recopier de la fiche de récolte)</td><td>2019-008</td></tr><tr><td><b>Date de récolte</b> (à reprendre de la fiche de récolte)</td><td>29/07/2019</td></tr><tr><td><b>Essence</b></td><td>Sapelli</td></tr><tr><td><b>Nom du pépiniériste</b> qui a semé</td><td>Anicet Makemba</td></tr><tr><td><b>Date de semis</b></td><td>01/08/2019</td></tr><tr><td><b>Caractéristiques du substrat</b></td><td>Terreau + sable + terre forestière</td></tr><tr><td><b>Nombre total de graines semées</b></td><td>391</td></tr><tr><td><b>Prétraitement</b> (oui ou non, si oui préciser lequel)</td><td>Non</td></tr><tr><td><b>Étude spéciale</b> (oui ou non, si oui indiquer le projet d'étude)</td><td>Oui; thèse de Jean Boubady</td></tr><tr><td colspan="2"><b>2) Suivi du lot</b> (une fois par mois au moins)</td></tr><tr><td colspan="2">Faire l'inventaire une fois par mois. Estimer la hauteur moyenne du lot. Noter les sorties et morts au fur et à mesure.</td></tr><tr><th>Date</th><th>Nom du mesureur</th><th colspan="3">Plants sortis</th><th colspan="2">Plants restants</th></tr><tr><td></td><td></td><th>Nombre</th><th>Taille (cm)</th><th>Destination</th><th>Plants morts: nombre</th><th>Nombre</th><th>Taille (cm)</th></tr><tr><td>01/09/2019</td><td>A Makemba</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>250</td><td>5</td></tr><tr><td>01/10/2019</td><td>A Makemba</td><td></td><td></td><td></td><td></td><td>290</td><td>9</td></tr><tr><td>01/11/2019</td><td>A Makemba</td><td></td><td></td><td></td><td>2</td><td>288</td><td>10</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

**Note** : La fiche a été partiellement complétée à titre d'illustration.

Les principaux éléments à retenir sont :

1) <u>il faut renseigner une fiche par lot de plants</u> : il y aura donc autant de fiches que de <u>lots de plants</u> dans la pépinière. Il est impératif que la fiche soit établie le jour-même du semis. L'ensemble des fiches d'une pépinière est ordonné dans un classeur ;

2) <u>un code unique est attribué à chaque lot de plants</u>, à l'image de ce qui se fait pour les lots de graines. On adoptera une numérotation continue indépendante de l'espèce (001, 002, 003, etc.), et pouvant être combinée à l'année : dans ce cas, la numérotation

peut redémarrer par 001 chaque année : 2018-001, 2018-002... 2019-001, 2019-002, etc. ;

3) <u>le suivi périodique de l'ensemble des lots de plants</u> de la pépinière : cet inventaire permet d'avoir une idée du stock disponible et de planifier les tâches de plantation en milieu final ;

4) <u>la taille ou hauteur moyenne d'un lot est mesurée sur un «plant moyen» du lot (visuellement identifié), à l'aide d'une règle ou d'une latte graduée.</u> Il ne s'agit donc pas de la moyenne exacte des hauteurs de tous les plants du lot.
<figure><img src="image_102.png" /><figcaption>A – Baguettes de lots de plants : inscription via un marqueur indélébile.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_103.png" /><figcaption>B – Pancartes de lots de plants : inscription par des peintures.</figcaption></figure>

**Photo 22.** Identification des lots de plants en pépinière via A – des baguettes ou B – des panneaux annotés. © K.D.
## 4.9.2 Entretien des infrastructures et du site de la pépinière

Les règles en la matière sont simples et reprises dans le **Tableau 13**. L'armature en bois de la pépinière doit toujours être

en bon état, ainsi que l'ombrière. On doit protéger le sol contre la formation de boue et de flaques d'eau, en y étalant du sable ou du gravier fin.

<table><caption>**Tableau 13.** Principales règles d'entretien d'un site de pépinière.</caption><thead><tr><td>Règles</td><td>Description</td></tr></thead><tbody><tr><td>Le site doit être aussi propre que possible.</td><td>Toute l'emprise de la pépinière (le cœur de la pépinière et la bande de 3 m environ autour) doit être constamment désherbée et débarrassée de détritus organiques et autres, y compris des feuilles mortes.</td></tr><tr><td>L'ombrière de palmes est régulièrement renouvelée.</td><td>Cela est à faire lorsque les palmes séchées ne procurent plus suffisamment d'ombre aux plants.</td></tr><tr><td>L'ossature en bois ou en bambou de la pépinière est renouvelée si nécessaire.</td><td>Le renouvellement est progressif, aux endroits où l'armature est dégradée (poteaux, planches, etc.).</td></tr><tr><td>La formation de flaques d'eau et de boue est limitée.</td><td>Du sable grossier ou du gravillon est étalé en cas de stagnation d'eau et de formation de zones boueuses dans l'emprise de la pépinière.</td></tr><tr><td>Les déchets sont gérés convènablement.</td><td>Les déchets non biodégradables (les sachets de pépinière...) sont collectés et sont soit stockés et remis à une structure de recyclage, soit enterrés dans des fosses bien identifiées. Dans tous les cas, ils ne peuvent pas être brûlés pour ne pas générer de fumées toxiques.</td></tr><tr><td>Les plants d'agrumes et de palmes sont absents de l'emprise de la pépinière.</td><td>Les plants de piment, d'oranger, de citronnier, etc. drainent d'importantes colonies d'insectes parasites : cochenilles, aleurodes et pucerons qui facilitent l'installation d'autres maladies fongiques telles que la fumagine (Encadré 9), encore appelée «dépôt noir». Elle s'attaque aux feuilles et y forme une sorte de suie noire réduisant sérieusement la photosynthèse.</td></tr></tbody></table>

## 4.9.3 Entretien et éducation des lots de plants

L'entretien et l'éducation des plants passent par une série de mesures et de précautions détaillées dans le **Tableau 14**.

### 1) Gestion des lots de plants hors problèmes sanitaires

Généralement, la germination des graines d'un même lot est étalée dans le temps. Certaines plantules vont se

développer plus vite que d'autres. Les plantules doivent donc être périodiquement déplacées afin que les plus petites ne soient pas surmontées et ombragées par les plus grandes. De plus, le déplacement des pots limite l'enracinement des plants dans le sol de la pépinière (Photo 23). Lors du déplacement, les racines débordant du pot seront sectionnées à l'aide d'un outil tranchant (cernage des racines).
Le déplacement peut révéler aussi des sachets endommagés ; un rempôtage est alors nécessaire, c'est-à-dire le transfert du plant dans un nouveau sachet de substrat, après un cernage racinaire (il faut sectionner les racines

trop longues avant de déposer le plant dans le nouveau sachet). **Dans tous les cas, le substrat des pots préalablement utilisés ne devra plus jamais servir à de nouveaux rempotages.**

<figure><img src="image_104.png" /></figure>

<figure><img src="image_105.png" /><figcaption>**Photo 23.** Exemples de plants nécessitant un rempotage. L'enracinement important (photo de gauche) aurait pu être évité si les pots avaient été régulièrement déplacés. © K.D.</figcaption></figure>

## 2) Gestion des nuisibles et des maladies

La gestion des parasites des plantes fait sans doute partie des plus délicates tâches du pépiniériste. Toutes les maladies et attaques ne peuvent être exposées dans ce document, mais les plus courantes sont décrites. Lorsqu'il s'agit de parasites d'assez grande taille et peu nombreux (chenilles par exemple), l'éradication manuelle peut suffire à régler le problème. Dans le cas contraire, tel que l'envahissement des plants par des dépôts noirs, des

cochenilles et/ou des pucerons, on aura recours à des produits à base d'huile de neem (Azadirachta indica; facile à trouver sur tous les marchés africains), de feuilles de neem ou de décoction de feuilles de tabac<sup>xi</sup> (Enca dré 9; voir les modalités pratiques au Tableau 14). Par ailleurs, quelle que soit la solution aqueuse adoptée, l'ajout de savon (savon noir, savon liquide de vaisselle, etc.) favorise la pénétration du principe actif.

<footnote>xi On fera attention à l'entreposage de la décoction de feuilles de tabac qui est relativement toxique pour l'homme, particulièrement pour les enfants.</footnote>
## Encadré 9. Le dépôt noir et sa cohorte d'insectes : cochenilles, pucerons, aleurodes

Le dépôt noir ou fumagine est causé par des champignons. Il apparaît sur les feuilles des plants sous forme d'une couche noire uniformément répartie, un peu comme une poussière de charbon collée aux feuilles. La fumagine n'est nuisible que lorsqu'elle s'étale sur tout le feuillage du plant : elle réduit alors la photosynthèse. Son développement est lié à la présence de parasites tels que les cochenilles, les aleurodes (mouches blanches) et les pucerons : le champignon s'étend via les sécrétions sucrées déposées sur les feuilles par ces insectes. Les cochenilles farineuses sont de minuscules insectes blancs au corps mou. Les aleurodes sont de minuscules mouches blanches ailées. Enfin, les pucerons présentent diverses couleurs et sont tout aussi petits que les aleurodes.

Il n'y a pas de traitement préventif contre la fumagine et les insectes qui la favorisent. Quel que soit le parasite, et s'il est rapidement détecté, un traitement local des feuilles atteintes (arrachage ou nettoyage avec un chiffon imbibé d'alcool) peut suffire. Dans le cas contraire, des insecticides naturels détaillés dans le **Tableau 14** pourront être utilisés. Enfin, la mise en quarantaine et le brûlage des lots atteints doivent être appliqués si le problème prend de l'ampleur.

### 3) Sélection des plants pour la transplantation finale

Une troisième tâche mérite une attention particulière en pépinière : la sélection finale des plants destinés à la plantation (Photo 24). Plusieurs expériences ont prouvé qu'un plant plus petit que la moyenne n'a quasiment aucune chance de rattraper un plant plus grand, à un même âge. Il est donc recommandé de ne sélectionner que les plants les plus vigoureux pour la transplantation : 50-70 % seulement du lot de plants[30]. La sélection doit se faire peu de temps (2-3 semaines seulement) avant la date prévue pour la transplantation. Si le programme sylvicole est basé sur des objectifs commerciaux ou de renta-

bilité, le reste des plants ne doit pas être maintenu dans la pépinière : plus long est le séjour en pépinière et plus important est le risque d'avoir des défauts racinaires, et donc une moindre performance en plantation. La fraction restante du lot servira alors à des besoins moins « nobles » (boisements autour des maisons, en bordure de route, etc.) ou sera détruite.

En fonction des espèces, la hauteur optimale de transplantation en milieu final varie de 30 cm à 80 cm. Cet aspect sera détaillé au cas par cas dans les itinéraires spécifiques (voir **Section 8**).
<figure><img src="image_106.png" /><figcaption>Plantule à tige tordue © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_107.png" /><figcaption>Plantule fourchue © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_108.png" /><figcaption>Plantule avec un système racinaire émergent doublée d'une tige tordue © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_109.png" /><figcaption>Plantule avec la racine principale tordue et enracinée en pépinière © J.-L.D.</figcaption></figure>

**Photo 24.** Exemples de plantules à éliminer lors de la sélection pour la transplantation en milieu final.
<table><caption>**Tableau 14.** Principales tâches de gestion quotidienne des lots de plants.</caption><thead><tr><th>Tâches</th><th>Description</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="2">Durant toute la durée d'éducation des plants</td></tr><tr><td>Présence d'une baguette ou d'une pancarte identifiant le lot</td><td>L'inscription sur la baguette (Section 4.9.1) est faite à l'aide d'un mar- queur indélébile.</td></tr><tr><td>Rangement des pots par rangée de 10 dans chaque lot</td><td>Deux lots différents peuvent cohabiter dans un même bac ou compar- timent de bac, à condition de laisser un espace vide large d'environ 30 cm. Pour chaque lot, les plants sont alignés par rangée de 10 pots suivant la largeur des bacs.</td></tr><tr><td>Désherbage/nettoyage des bacs et allées</td><td>Les allées et l'espace au sein des bacs doivent être propres. Cette tâche est assurée 2-3 fois par semaine par le pépiniériste.</td></tr><tr><td>Désherbage et binage des pots</td><td>Les pots de plants sont régulièrement désherbés. Avec l'arrosage régulier, la couche superficielle du substrat dans les pots tend à être compactée. Il faut ameubler et réaérer la couche supérieure du substrat à l'aide d'un outil rigide. Le pépiniériste y consacre 2-3 séances par semaine.</td></tr><tr><td>Arrosage</td><td>Le substrat des pots ne doit jamais être sec pendant plus de 24 heures. L'humidité du substrat peut être vérifiée en y enfonçant un doigt. Les plants sont arrosés au moins une fois par jour aux heures les moins chaudes (à éviter entre 10 h et 16 h).</td></tr><tr><td>Retrait des plants morts ou fortement parasités</td><td>Les plants morts ou fortement attaqués par des parasites sont aussitôt retirés des lots, et les vides sont comblés avec de nouveaux pots. Le substrat des plants morts ou malades ne doit pas être réutilisé. Cette tâche est effectuée au moins 3 fois par semaine par le pépinié- riste, en dehors des phases de tri formel des lots (voir ci-dessous).</td></tr><tr><td>Déplacement, tri des plants et rempotage</td><td>De nombreuses essences possèdent une racine principale (dite «racine pivotante» ou «pivot») qui tend à percer le sachet de pépinière ; la plante s'enracine alors dans le sol de la pépinière. Une telle plante risque d'afficher de mauvaises performances en plantation. Les mesures à prendre sont les suivantes :
- arrosage préalable des plants. Cela est nécessaire avant toute manipulation des plantes ;
- déplacement périodique des pots. Après 1-2 mois de développe- ment, les pots sont régulièrement déplacés au sein du bac. Cela limite le risque d'enracinement et le tri des plants est effectué en même temps (voir ci-dessous les mesures pour les plants morts ou malades). Les plants peu développés sont regroupés vers l'extré- mité la moins ombragée du bac ;
- rempotage des plants et habillage des racines. Le rempotage consiste à changer le pot d'un plant lorsque le pot est dégradé. L'habillage des racines s'impose : le plant est délicatement ôté du pot et les racines longues sont sectionnées à l'aide d'un sécateur ou d'une machette à défaut. Le plant est remis dans un nouveau pot de substrat et est arrosé.
Le déplacement des plants d'un lot doit être fait une fois par mois envi- ron, dès que la hauteur moyenne du lot atteint 15-20 cm, ou quand des racines commencent à déborder du sachet.</td></tr></tbody></table>
<table><caption>Tableau 14. (Suite)</caption><thead><tr><td>Tâches</td><td>Description</td></tr></thead><tbody><tr><td>Gestion des maladies</td><td>Des solutions simples contre des maladies courantes (Photo 25) sont présentées ci-dessous.<ul><li>Présence de dépôt noir (fumagine), de cochenilles, de chenilles défoliatrices et d'insectes phyllophages ou suceurs (aleurodes, psylles, etc.). Toutes les espèces végétales peuvent être concrèmentées. Les cochenilles s'observent sur les plantules d'ayous (Triplochiton scleroxylon) tandis que les psylles colonisent les plants de movingui (Distemonanthus benthamianus) et d'okoumé (Aucoumea klaineana), mais pas exclusivement. Les chenilles sur les feuilles doivent être ôtées manuellement et tuées. La pulvérisation d'une solution à base d'huile de neem (Azadirachta indica; deux à trois cuillères à soupe par litre d'eau), ou une macération de feuilles de neem (500 g de feuilles pour 5 litres d'eau; 24 heures de macération), ou une décoction de feuilles de tabac (300 g de feuilles pour 10 litres d'eau) est souvent efficace. Du savon (liquide vaisselle, savon noir, etc.) devra être ajouté pour une bonne adhérence aux feuilles.</li><li>Présence d'öidium sur le feuillage. Cette maladie due à des champignons apparaît sous forme d'un duvet poudreux et blanc sur les feuilles, les rendant boursouflées. Il faut réduire l'arrosage des plants infestés, arracher et brûler les parties touchées. En cas de forte infestation, la pulvérisation régulière de lait dilué (deux tasses de lait en poudre dans 5 litres d'eau) ou d'une solution de bicarbonate de soude (une cuillère à café dans un litre d'eau) permet d'éradiquer la maladie.</li><li>Présence de galles («boules») sur les parties non lignifiées. Cette maladie touche surtout les plants d'iroko (Milicia spp.)<sup>xii</sup>. Dès l'apparition des galles, l'enlèvement manuel puis l'érasement au sol des feuilles, branches ou bourgeons touchés suffisent souvent à endiguer le phénomène.</li><li>Présence d'insectes foreurs de tige. Cette affection touche l'okan (Cylicodiscus gabunensis), l'afrormosia (Pericopsis elata), les acajous (Khaya spp.), le bubinga (Guibourtia tessmannii et G. pellegriniana) et le wengé (Millettia laurentii). Cela s'observe par l'apparition de minuscules trous sur les tiges; l'insecte y pénètre et s'y développe. Outre les trous souvent difficiles à voir, le symptôme est le flétrissement du plant. On doit vérifier chaque plant du lot, en inclinant la tige qui se cassera si elle est creuse, et rassembler et mettre en quarantaine ou brûler rapidement tous les plants ayant des trous sur leur tige.</li></ul></td></tr></tbody></table>

<footnote>xii Les galles colonisant les feuilles et bourgeons terminaux de l'iroko (Milicia excelsa) sont dues à l'insecte *Phytolyma lata*. L'insecte pond exclusivement ses œufs sur cette espèce d'arbre. Plus le plant est exposé à la lumière et plus il a des chances d'être colonisé.</footnote>
<table><caption>Tableau 14. (Suite)</caption><thead><tr><th>Tâches</th><th>Description</th></tr></thead><tbody><tr><td colspan="2">Durant les 4-6 dernières semaines avant la transplantation en milieu final</td></tr><tr><td>Mise en lumière progres- sive</td><td>Afin d'être prêts pour le milieu final (site de plantation), les plants doivent être progressivement exposés à la lumière. L'ombrière est pro- gressivement réduite au fil des semaines, par enlèvement de quelques palmes au-dessus des lots à planter.<br>Au début, l'exposition à la lumière ne doit être faite qu'aux heures les moins chaudes de la journée, de 17 h à 8 h par exemple. À deux semaines de la plantation, l'exposition accrue au soleil est permanente, mais jamais à 100 % : quelques palmes doivent toujours être gardées.</td></tr><tr><td>Sélection des meilleurs plants à transplanter</td><td>Pour la quasi-totalité des espèces, les plantules maintiennent après transplantation les tendances de croissance en hauteur exprimées en pépinière. Seulement une fraction de 50-70 % des meilleurs plants de chaque lot doit être sélectionnée et transplantée.<br>Lorsque le stock de plants est suffisant dans la pépinière, il est préfé- rable de ne pas maintenir plus longtemps en pépinière les plants non sélectionnés : ils pourront être utilisés autour des habitations, le long des routes, ou détruits.</td></tr></tbody></table>

### 4.9.4 Gestion des déchets polluants

En pépinière, les principaux polluants, dans le contexte de la production de plants telle que décrite ici, proviennent de l'acide sulfurique et des pots (sachets en polyéthylène).

L'acide sulfurique usagé, utilisé pour la levée de dormance de certaines graines (exemple du tali – *Erythrophleum suaveolens* ; Section 4.6.3) doit être :

- dans un premier temps, stocké dans un bidon dédié (Photo 26). L'opération se fait en adoptant toutes les précautions décrites dans la Section 4.6.3 ;

- dans un second temps, le bidon d'acide usagé devra être récupéré par une société spécialisée. De telles sociétés existent dans les pays africains (par exemple : le

groupe BOCOM dans plusieurs pays d'Afrique centrale) et doivent donc être contactées pour définir les modalités de récupération.

Les sachets en polyéthylène proviennent aussi bien de la pépinière (vieux sachets) que des sites de plantation (sachets déchirés après la mise en terre finale des plants). Dans les deux cas, ces sachets sont généralement rapportés près de la pépinière. Ils sont soit récupérés par une société spécialisée dans leur recyclage, soit une fosse de déchets non biodégradables est creusée : les sachets y sont entassés, et la fosse est refermée lorsqu'elle est pleine. Il est conseillé de creuser une fosse aussi large et profonde que possible (sans être un puits) afin que ne soit créée autour de la pépinière une multitude de petites fosses.
<figure><img src="image_110.png" /><figcaption>Chenille défoliatrice sur limba (Terminalia superba). © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_111.png" /><figcaption>Dépôt noir sur tali (Erythrophleum suaveolens). © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_112.png" /><figcaption>Galles sur iroko (Milicia excelsa). © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_113.png" /><figcaption>Tige d'afrormosia (Pericopsis elata) trouée et déséchant à cause d'un insecte foreur. © K.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_114.png" /></figure>

<figure><img src="image_115.png" /><figcaption>Oïdium sur wengé (Millettia laurentii). © J.-L.D.</figcaption></figure>

<figure><img src="image_116.png" /><figcaption>Tige de bubinga (Guibourtia tessmannii) déséchant du fait d'un insecte foreur. © F.T.</figcaption></figure>

**Photo 25.** Quelques problèmes phytosanitaires couramment observés dans les pépinières d'espèces forestières.
<figure><img src="image_117.png" /><figcaption>**Photo 26.** Acide usagé versé dans un bidon spécifique. © K.D.</figcaption></figure>
<figure><img src="image_118.png" /></figure>

# 5. CATÉGORISATION DES MILIEUX ET TYPES DE PLANTATION
© K. Daïnou

Parcelle en forêt dégradée en cours de reboisement.
## 5.1 Catégories de milieux de plantation

Les milieux de plantation peuvent être classés en fonction du degré d'ouverture de la canopée (ou du niveau moyen d'encoleillement du site de plantation). On peut distinguer trois grands types de milieu (Tableau 15) :

1) **Le milieu ouvert ou le plein découvert.** Il s'agit de plantations établies dans des environnements sans couvert arboré notable pendant plusieurs années : le couvert arboré n'excède pas 20-30 % environ (petits champs de culture vivrière, jeunes jachères, enclaves de savane au cœur de massifs forestiers, etc.).

2) **Le milieu fermé.** Les plantations sont installées dans le sous-bois forestier ou dans de petites ouvertures forêtières, et sont donc sous l'effet d'un important ombrage. La couverture arborée a atteint rapidement – au bout de quelques années – une valeur supérieure à 50 % (cas de petites trouées d'abattage et de plantations en layons ; voir Section 5.2).

3) **Le milieu semi-fermé ou intermédiaire.** Il s'agit de plantations installées en conditions intermédiaires à celles des deux cas précédents. Pendant les trois à cinq premières années, les plants sont soumis à un encoleillement modéré correspondant à un couvert d'environ 30-50 %. C'est le cas de parcs-forêt abandonnés (ayant servi au stockage temporaire des grumes en forêt) et des grandes trouées d'abattage.

Certains habitats seront à cheval entre les milieux fermés et intermédiaires, en fonction de leurs caractéristiques spécifiques : les vieilles jachères ou jeunes forêts secondaires, et les parcelles de cultures aimant l'ombrage (cacaoyère, caféière, etc.).

Si le degré d'ombrage est bien un critère fondamental pour la distinction des types de milieu ou habitat forestier, il n'existe pas de méthode simple pour l'estimer. Il existe néanmoins une approche simplifiée permettant d'estimer grossièrement la couverture arborée d'un site ; elle est décrite dans l'**Encadré 10**[43]. Dans le contexte de la plantation d'arbres, les avantages et inconvénients de chaque type de milieu sont essentiellement déterminés par deux critères : l'ombrage (ou l'encoleillement) durant au moins les 5 à 10 premières années, et la nature de la compétition végétale. L'expérience accumulated conduit à préférer un ombrage faible à intermédiaire[44, 45, 46] et la non-prolifération des herbacées[47, 48, 49] sur le site de plantation (Encadré 10). En fonction de l'espèce, une ouverture de la canopée doit toutefois être planifiée à un moment donné, tenant compte de l'évolution des performances (croissance, survie). **L'ombrage intermédiaire peut être dû à la présence d'arbres maintenus sur le site de plantation, ou apporté par des plants à croissance rapide et à fort couvert.**

Ci-dessous, sont décrits des exemples de milieux de plantation les plus courants en zone de forêt dense humide. Ils sont listés des milieux les plus ouverts aux milieux les plus fermés.
## Encadré 10. Besoins en lumière et compétition végétale (arborée et herbacée) comme contraintes majeures aux plantations

Pour la grande majorité des espèces, les besoins en lumière varient en fonction de l'âge ou de la hauteur des plants. Si les espèces plantées préfèrent des milieux relativement éclairés, on sait désormais que même les espèces les plus *héliophiles* supportent, voire préfèrent un léger ombrage durant leurs premières années de vie en plantation[47]. Pour cette raison, les environnements intermédiaires (Tableau 15) paraissent souvent avantageux, mais la source d'ombrage (arbres et arbustes bordants, maintenus sur le site, ou plantés à croissance rapide) sera cruciale pour le développement à long terme de la plantation. Autant que possible, les arbustes et les jeunes arbres offrant un houppier bien plus bas que les grands arbres, seront préférés.

Le sylviculteur sera ensuite confronté à la difficulté d'estimer l'ombrage sur le site de plantation. Il n'existe pas de méthode simple permettant cela. L'expérience montre toutefois qu'avec des densités d'arbustes et de jeunes arbres d'environ 30-50 tiges/ha (soit 1,5 à 2 tiges par carré de 20 m x 20 m), on obtient l'ombrage modéré souhaité.

La compétition végétale peut provenir des ligneux ou des herbacées, parfois des deux. Une dominance de la composante herbacée sur le site de plantation sera fortement préjudiciable au développement des plants d'arbres forestiers[44]. De ce point de vue, les milieux fermés, peu propices à la prolifération d'herbacées *héliophiles*, représenteraient l'idéal, mais sont pénalisés par l'ombrage trop important qui y règne. À nouveau, les environnements à ombrage intermédiaire offriraient le meilleur compromis.

## 5.2 Exemples de milieux de plantation

### 5.2.1 Enclaves savanicoles en milieu de forêt dense

Les savanes (formations avec moins de 40 % de couvert arboré) évoquées ici sont des zones dominées par des graminées pérennes et entourées d'une forêt dense, typique de la région. Ces enclaves plus ou moins étendues de savane au cœur

des massifs de forêts denses sont dues à des perturbations humaines ou des facteurs environnementaux, historiques ou contemporains, voire à la présence de cuirasses latéritiques. Certaines de ces enclaves sont les milieux ouverts au sein des «forêts à Marantacées et Zingiberacées», fréquentes au Gabon et en République du Congo (Photo 27). Dans tous les cas, on y note aujourd'hui (i) une forte exposition à l'ensoleillement, (ii) la présence rare d'arbres et une lente colonisation