**Research article**

African Journal Of Tropical
Entomology Research

OPEN ACCESS

<figure><img src="image_1.png" /></figure>

# Paramètres de la table de survie et dynamique des populations de la chenille défoliatrice, *Noorda blitealis* Walker (1859) (Lepidoptera: Crambidae), sur trois espèces du Moringa (Capparales : Moringaceae), en conditions expérimentales au Niger

®Mamane Sani Halilou<fnref n="1" />* ID

*Corresponding author, E-mail: hims.sani@yahoo.fr

Copyright © 2023 Halilou et al. | Published by LENAF/ IFA-Yangambi | License CC BY-NC-4.0

<figure><img src="image_2.png" /></figure>

Received: 19 May 2023

Accepted: 12 July 2023

Published : 20 Aug 2023

## RÉSUMÉ

*Noorda blitealis* Walker (1859) (Lepidoptera : Crambidae) est le principal ravageur des plantes de la famille Moringaceae au Sahel et au Niger en particulier. Cependant, la bioécologie de l'insecte est encore mal connue dans la sous-région. Le présent travail avait pour objectif d'étudier les paramètres biologiques du développement de *N. blitealis* et la dynamique de l'infestation de ses populations dans le contexte du Niger. Les expérimentations ont été conduites au laboratoire, pour l'étude des paramètres biologiques et au terrain, en station, en ce qui concerne la dynamique de la population de *N. blitealis* sur trois espèces du Moringa, à savoir *Moringa oleifera* Lamarck, *Moringa peregrina* (Forskal) Fiori et *Moringa stenopetala* (Barker f.) Cufodontis. Les résultats de l'étude au laboratoire sur les paramètres biologiques de *N. blitealis* ont montré que les espèces *M. oleifera* et *M. stenopetala* sont plus favorables au développement de l'insecte par rapport à *M. peregrina*. En effet, les poids des larves pré-nymphes et des chrysalides issues des élevages des larves sur *M. stenopetala* ont été significativement plus élevés que celui de ceux provenant de l'élevage sur *M. oleifera* et *M. peregrina*. Le taux de survie des œufs jusqu'à l'âge adulte a été plus faible chez les individus issus de l'élevage sur l'espèce *M. peregrina* comparativement aux espèces *M. oleifera* et *M. stenopetala*. L'expérience a montré que *N. blitealis* a bouclé son cycle du développement sur toutes les trois espèces du Moringa testées et qu'en général a une forte capacité reproductive. La dynamique d'infestation estimée en nombre des œufs et des larves a été similaire sur les trois espèces hôtes testées sans aucune influence significative quelle que soit la période de l'année. Cependant, les périodes de l'année subdivisée en mois semblent influencer significativement le nombre d'œufs et des larves par plant ainsi que le taux de la défoliation sur toutes les espèces testées. La forte densité des populations de *N. blitealis* ainsi que la sévérité des dégâts ont été enregistrés pendant la période d'Octobre à Novembre.

**Mots-clés** : Moringa, *Noorda blitealis*, biologie, infestation, Niger

## ABSTRACT

### Parameters of the life table and population dynamics of the defoliating caterpillar, *Noorda blitealis* Walker (1859) (Lepidoptera: Crambidae), on three species of Moringa (Capparales: Moringaceae), under experimental conditions in Niger

*Noorda blitealis* Walker (1859) (Lepidoptera: Crambidae) is the main pest of plants of the Moringaceae family in the Sahel and in Niger in particular. However, the bioecology of the insect is still poorly known in the sub-region. The objective of this work was to study the biological parameters of the development of *N. blitealis* and the dynamics of the infestation of its populations in the context of Niger. The experiments were conducted in the laboratory, for the study of biological parameters and in the field, in the station, with regard to the dynamics of the population of *N. blitealis* on three species of Moringa, namely *Moringa oleifera* Lamarck, *Moringa peregrina* (Forskal) Fiori and *Moringa stenopetala* (Barker f.) Cufodontis. The results of the laboratory study on the biological parameters of *N. blitealis* showed that the species *M. oleifera* and *M.*

<footnote n="1">¹Laboratoire de Gestion des Bioagresseurs, Faculté des Sciences et Techniques, Université Abdou Moumouni, BP 10 960 Niamey, Niger.</footnote>
stenopetala are more favorable to the development of the insect compared to *M. peregrina*. Indeed, the weights of pre-pupa and pupae larvae from rearing larvae on *M. stenopetala* were significantly higher than those from rearing on *M. oleifera* and *M. peregrina*. The survival rate of eggs to adulthood was lower in individuals reared on the species *M. peregrina* compared to the species *M. oleifera* and *M. stenopetala*. The experiment showed that *N. blitealis* completed its development cycle on all three Moringa species tested and that in general has a strong reproductive capacity. The estimated infestation dynamics in number of eggs and larvae was similar on the three host species tested without any significant influence regardless of the time of year. However, the periods of the year subdivided into months seem to significantly influence the number of eggs and larvae per plant as well as the rate of defoliation on all the species tested. The high population density of *N. blitealis* as well as the severity of the damage were recorded during the period from October to November.

**Keywords:** Moringa, *Noorda blitealis*, biology, infestation, Niger

## INTRODUCTION

La chenille défoliatrice, *Noorda blitealis* (Lepidoptera: Crambidae) est considérée comme étant le ravageur le plus redoutable du Moringa. En raison de la grande expansion de la culture du Moringa dans le monde, le ravageur élargit continuellement sa zone de distribution (Negusu, 2005; Kotikal & Math, 2016). La présence de *N. blitealis* a été signalée dans la plupart des pays d'Asie du Sud-Est, du Moyen-Orient et de la péninsule arabique. En Afrique, il a été signalé en Éthiopie, au Kenya, en Somalie, en Afrique du Sud, en Namibie, en Gambie, au Niger, à Madagascar et à la Réunion. Jusque-là *N. blitealis* ne s'attaque qu'aux plantes de la famille des Moringaceae (Foidl et al., 2001; Mridha, 2015; Manzo et al., 2016; Yiftach, 2018). Des dégâts d'importance économique sont enregistrés sur les espèces cultivées de *Moringa oleifera*, *Moringa stenopetala* et *Moringa peregrina*, (Nair, 1970; Butani & Verma, 1981; Butani & Jotwani, 1984; Gillett, 1997; Demuelenaere, 2001; Parrotta, 2001; Satti et al., 2013 et Halilou et al., 2021). Malgré son importance économique, *N. blitealis* a fait l'objet de très peu d'études en Afrique de l'Ouest. Les quelques travaux sur sa bioécologie ont été conduits dans le sous-continent Indien. La présence de l'insecte au Niger a été rapportée pour la première fois en 2010 (Ratnadass et al., 2011). Mais cela n'a été suivi, d'aucune autre investigation sur sa bioécologie et les dégats occasionnés au Niger. Cependant, la mise au point des méthodes de lutte contre un ravageur, nécessite au préalable une bonne connaissance de sa bioécologie qui, selon Lale & Vidal (2003), peut être influencée par l'environnement dans lequel il se développe et se reproduit. De même que la perception des producteurs sur la connaissance ainsi que les pratiques de contrôles de *N. blitealis* s'avèrent indispensables pour la mise en œuvre des stratégies efficaces de contrôle (Halilou et al., 2021). Le présent travail a pour objectif d'étudier la biologie de *N. blitealis*, la dynamique de ses populations au cours de l'année ainsi que la quantification des dégâts qu'il cause. La diversité de la plante hôte dans la famille des Moringaceae influencerait sur les paramètres biologiques et la dynamique des populations de *N. blitealis*. Ces éléments contribueront

indispensablement à fournir des informations nécessaires à la mise en place des outils d'aide à la décision pour une lutte efficace et durable contre cet insecte.

## MATERIEL ET METHODES

### Site expérimental

Les expérimentations en station se sont déroulées à l'Institut International de Recherche sur les Cultures des Zones Tropicales Semi Arides (ICRISAT) à Sadoré, dans la zone bioclimatique du Sahel. La station est située dans la partie Sud-Ouest du Niger (13°15 de latitude Nord et 2°18 de longitude Est) dans la région de Tillabéri (Niger), Département de Kollo, commune de Youri (Fig. 1).

<figure><img src="image_3.png" /><figcaption>**Figure 1.** Carte de localisation de la station de recherche de la Station de recherche de l'ICRISAT Centre Sahélien de Sadoré (ISC Sadore)</figcaption></figure>

### Conditions d'études au laboratoire

Les études de biologie de *N. blitealis* ont été effectuées dans le laboratoire d'entomologie de l'ICRISAT à Sadoré en 2019. La température a variée de 25 °C (minimum) à 30°C (maximum) et la moyenne était maintenue à 27,01 ± 0,82°C et l'humidité relative à 80,72 ± 12,07%.
## Matériel végétal

Le matériel végétal était constitué de trois espèces de Moringa à savoir, *Moringa stenopetala* Barker f. Cufodontis, *Moringa oleifera* Lamarck et *Moringa peregrina* Forskal Fiori. Les trois espèces sont cultivées en continue sur la station de recherche de l'ICRISAT à Sadoré, Niamey au Niger.

## Elevage de l'insecte en masse

Les élevages en masse de *N. blitealis* ont été mis en place à partir de larves collectées sur des plants de Moringa au sein même de la station de recherche de Sadoré. Ces dernières sont gardées dans des boites en plastique (12cm Φ x 14.5 cm de hauteur, Fig. 2) et pourvues chaque matin de feuilles fraiches de Moringa collectées sur des plants sains non traités d'insecticide. Les larves sont ainsi suivies jusqu'au dernier stade (L5). Elles sont ensuite transférées dans des boites (12cm Φ x 11.5 cm de hauteur) dont le fond est tapissé

d'une couche d'un sol sableux. Ce substrat est utilisé par les larves pour confectionner des cocons dans lesquels elles se nymphosent. Les boites sont gardées fermées en incubation jusqu'à l'émergence des adultes. Les adultes sont collectés puis regroupés dans des cages d'accouplement munis des pondoirs et de boules coton imbibées d'une solution de miel à 10% placées pour l'alimentation des adultes. Les pondoirs (Fig. 3) sont des morceaux du bois (branches du Moringa) (2 cm Φ x 9 cm de longueur) enroulés par des tissus blancs et accrochés dans les cages à l'aide d'un fil de fer plastifié. Les tissus sont préalablement poudrés avec la farine du blé afin de facilité la collecte des œufs pondus. Les œufs sont facilement collectés à l'aide d'un pinceau une fois que le tissu est déroulé du bois. Pour la mise en incubation, les œufs collectés peuvent être collés sur les papiers Bristol à l'aide d'une colle non toxique afin de faciliter la collecte des larves L1 pendant l'éclosion. L'élevage en masse de *N. blitealis* étant bien maitrisé, permettant ainsi la mise en place des différents essais biologiques au laboratoire.

<figure><img src="image_4.png" /><figcaption>**Figure 2.** Larves de *Noorda blitealis* nourries au laboratoire sur les feuilles du Moringa pour l'élevage en masse</figcaption></figure>

<figure><img src="image_5.png" /><figcaption>**Figure 1.** Préparation des pondoirs : A) Morceaux du bois de Moringa ; B) Poudrage du tissu ; C) Enroulement du tissu sur le bois et D) Pondoirs prêt à être accrochés dans les cages de ponte</figcaption></figure>

## Etude au laboratoire des paramètres biologiques de *Noorda blitealis*

Le cycle du développement de *N. blitealis* a été étudié sur trois espèces différentes de Moringa, *M. oleifera*, *M. stenopetala* et *M. peregrina*. Pour ce faire, un lot quarante-huit (48) larves L1 de *N. blitealis*,
nouvellement écloses, correspondant à chacune de
trois espèces du Moringa, sont introduites
individuellement dans des boites de forme cylindrique
(2cm Φ x 5cm de hauteur) contenant 10 g de folioles
des feuilles d'une des trois (3) espèces de Moringa.
Dans chacun des cas, les feuilles de Moringa sont
prélevées de plants ne faisaient l'objet d'aucun
traitement insecticide. Les plants sont préalablement
désinfectés à l'eau de javel (10%) avant d'être fournies
aux insectes. Dans chacune des boites, les feuilles sont
renouvelées au quotidien avec de nouvelles feuilles
fraiches de la même espèce de Moringa. Les larves
sont inspectées chaque matin au moment du
renouvellement des feuilles. La libération de la
capsule céphalique par une larve correspond à la mue
et donc au passage à un nouveau stade larvaire. Les
mensurations des larves au début de chaque stade
(après la libération de la capsule céphalique) ont été
faites à l'aide d'une règle graduée. Les tailles
moyennes de larve aux stades L1, L2, L3, L4 et L5
sont respectivement 03 ± 0,07 ; 2,38 ± 0,18 ; 8,08 ±
0,31 et 12,31 ± 0,44 11,62 ± 0,43 mm. Les données
collectées ont porté sur la durée de chaque stade
larvaire (L1 à L5) ainsi que la durée totale du
développement larvaire (de l'éclosion des œufs à la
pupaison). Les larves ont été pesées au 5ᵉ stade larvaire
juste avant la nymphose, et les chrysalides pesées une
fois la nymphose effectuée à l'aide d'une balance de
précision (RADWAG AS 220.R2). La longévité des
adultes, la fécondité des femelles et l'éclosion des
œufs ont été étudiées à partir des adultes de *N. blitealis*
émergeant des larves nourries sur les différentes
espèces de moringa. Au total, 10 ;7 et 13 couples de *N. blitealis* respectivement issus des élevages des larves
sur *M. oleifera*, *M. peregrina* et *M. stenopetala* ont été
suivis durant toute leur vie. Chaque couple est isolé
dans une boite (5cm Φ x 8,5cm de hauteur) dans
laquelle on dépose quelques feuilles de Moringa pour
servir de support pour la ponte. Un tampon de coton
imbibé d'une solution de miel à 10 % est placé dans
les boites pour l'alimentation des adultes. Les boites
sont examinées chaque jour afin de déterminer la durée
de la pré-ponte, la fécondité, et la longévité des adultes
mâles et femelles. Parallèlement les œufs pondus
étaient collectés de chacune des boites et mis en
incubation dans d'autres boites (2cm Φ x 5cm de
long). Des masses d'œufs collectées des femelles
issues de chacune des espèces du Moringa ont été
mises en incubation en même temps (soit 10, 7 et 13
masses de *N. blitealis* respectivement pour *M. oleifera*,
*M. peregrina* et *M. stenopetala*). Chaque jour, les œufs
sont observés et le nombre d'œufs éclos sont notés. Ce
qui a permis de déterminer la durée d'incubation des
œufs et les taux d'éclosion selon les espèces de
Moringa. Par ailleurs les paramètres de la table de vie
de la population de *N. blitealis* sur les trois espèces du
Moringa utilisées pour l'élevage des larves ont été

calculés en utilisant la formule de Birch (1948). Le
tableau 1 illustre ces principaux paramètres et
formules utilisés pour les calculer.

Étude en station de la dynamique des populations
de *Noorda blitealis*

Dispositif expérimental

Cette expérimentation a été conduite du mois d'aout
2020 au mois de juillet 2021 dans un dispositif
complètement randomisé comprenant trois (3)
traitements et trois (3) répétitions (=bloc) dans une
superficie de 16 m x 20 m (Fig. 4). Les trois (3)
traitements correspondent à trois (3) espèces de
Moringa, *M. oleifera*, *M. stenopetala* et *M. peregrina*.
Chaque parcelle élémentaire est constituée de neuf (9)
plants d'une espèce du Moringa plantée sur trois (3)
lignes de trois (3) plants aux écartements de 1 m x 2
m. Chaque bloc comprend une (1) parcelle élémentaire
de chacune des trois (3) espèces de Moringa, soit donc
trois (3) parcelles élémentaires par bloc.

<figure><img src="image_6.png" /><figcaption>**Figure 2.** Dispositif expérimental pour l'étude de la dynamique d'infestation de *Noorda blitealis* sur trois espèces du Moringa</figcaption></figure>

Pépinière et repiquage du Moringa

Les plants proviennent d'une pépinière mise en place
par nous même à partir du semis de graines dans des
pots en plastique. Le repiquage des plants des *Moringa*
sp. a eu lieu 120 jours environ après semis. La
préparation des poquets et apport de fumier organique
de 250 g par poquet puis des arrosages ont été
effectués avant la plantation.

Observations et collecte des données

Tous les plants de chacune des neuf (9) parcelles élémentaires (81 plants au total) du dispositif sont observés chaque semaine, soit une fréquence de quatre (4) semaines par mois durant les 12 mois de la durée de l'expérimentation. Sur chaque plant de Moringa, les larves, les pupes ainsi que les œufs de *N. blitealis* sont collectés et comptés tôt le matin une fois par semaine.
Les observations sur les dégâts dus à *N. blitealis* se font directement au champ selon Halilou (2022) et ont porté sur le nombre de feuilles attaquées du plant, le nombre total de feuilles du plant, le nombre de pétioles attaquées de la feuille, ainsi que le nombre total de pétioles de la feuille. Sur cette base les paramètres suivants ont été calculés selon les espèces et les mois de l'année : Nombres moyens des œufs et des larves selon les espèces et les mois de l'année;

Taux d'attaque (TA) par plant :

$$ \mathbf{TA} (\%) = \frac{(\text{Nombre des feuilles attaquées})}{(\text{Nombre total des feuilles})} \times 100 $$

Echelle des dégâts (ED) par feuille,

$$ \mathbf{ED} (\%) = \frac{(\text{Nombre des pétiolules attaqués})}{(\text{Nombre total des pétiolules})} \times 100 $$

Degré de défoliation (DD) par plant :

$$ \begin{gathered} \mathbf{DD} (\%) = \frac{\text{Pétiolules attaqués} \times \text{Feuilles attaquées}}{\text{Total pétiolules} \times \text{Total feuilles}} \times 100, \\ \text{ou } \mathbf{DD} (\%) = (\text{TA} \times \text{ED}) \times 100 \end{gathered} $$

<table><caption>**Tableau 1.** Formules de calcul des différents paramètres de la table de vie des populations de *Noorda blitealis*</caption><thead><tr><th>Définition et abréviation des paramètres</th><th>Formule de calcul</th></tr></thead><tbody><tr><td>Survie spécifique à l'âge et au stade qui correspond à la probabilité qu'un œuf nouvellement éclos survive ou existe à l'âge x et au stade j (Sxj)</td><td>Sxj = <sup>Nxj</sup>&frasl;<sub>N01</sub></td></tr><tr><td>Survie spécifique à l'âge qui correspond à la probabilité qu'un œuf nouvellement éclos survive ou existe à l'âge x (lx)</td><td>lx = &sum;<sub>j=1</sub><sup>k</sup> (Sxj)</td></tr><tr><td>Fécondité moyenne des individus à l'âge x (mx)</td><td>mx = <sup>&sum;<sub>j=1</sub><sup>&infin;</sup> (Sjxfjx)</sup>&frasl;<sub>&sum;<sub>j=1</sub><sup>&infin;</sup> (Sjx)</sub></td></tr><tr><td>Taux net de reproduction (R0) qui correspond au nombre de progénitures produit par femelle et par génération</td><td>R0 = &sum;<sub>x=1</sub><sup>&infin;</sup> (lxmx)</td></tr><tr><td>Taux d'accroissement intrinsèque qui est le nombre de femelles produit par femelle par jour (Rm)</td><td>Rm = <sup>ln(R0)</sup>&frasl;<sub>T</sub> ; T = <sup>&sum;<sub>x=1</sub><sup>&infin;</sup> (xltxmx)</sup>&frasl;<sub>&sum;<sub>x=1</sub><sup>&infin;</sup> (lxmx)</sub></td></tr><tr><td>Temps de doublement de la population qui est le temps nécessaire pour doubler la population initiale (TD)</td><td>TD = <sup>ln(2)</sup>&frasl;<sub>Rm</sub></td></tr><tr><td>Taux d'accroissement fini (λ)</td><td>λ = e<sup>(Rm)</sup></td></tr></tbody></table>

## Analyses des données

Les données ont été analysées à l'aide du logiciel SPSS (IBM SPSS Statistics Version 25). Des statistiques descriptives (moyennes et erreurs standards) ont été calculées pour les différentes variables. Les données ont été soumises au test de significativité statistique des moyennes à l'aide d'ANOVA (analyse des variances) comparées par les tests Student Newman Keuls au niveau de 5%. Et lorsque les ANOVA sont significatives les moyennes sont soumises test Post hoc à l'aide du test de Ficher afin de déterminer les plus petites différences significatives (LSD) sous SPSS.

## RESULTATS

### Paramètres biologiques de *Noorda blitealis* en fonction de trois espèces

#### Poids des larves pré-nymphes et des chrysalides de *Noorda blitealis* selon la diète

Les résultats de la figure 1 révèlent, au terme du développement larvaire, les larves matures (stade 5) élevées sur *M. stenopetala* pèsent en moyenne 0,081 g

environ 1,74 et 1,16 fois plus que celles élevées respectivement sur *M. peregrina* et *M. oleifera* (F(2, 126) = 77,868 ; P < 0,001) (Fig. 5). Le poids des chrysalides issues de *M. stenopetala* est significativement plus élevé que celui de celles provenant de l'élevage sur *M. oleifera* et *M. peregrina* (F(2, 110) = 33,238 ; P < 0,001) (Fig. 5).

<figure><img src="image_7.png" /><figcaption>**Figure 3.** Poids des larves et des chrysalides de *Noorda. blitealis* nourries de trois espèces du Moringa</figcaption></figure>
## Durée de développement des populations de *Noorda blitealis* selon la diète

Les données consignées dans le tableau 2 montrent que les œufs pondus éclosent au bout de deux (2) à trois (3) jours sans aucune différence significative ($F_{(2, 141)} = 0,238$ ; p = 0,788) sur la provenance des femelles ayant pondus lesdits œufs. La durée de développement des larves de stade 1 et 2 de *N. blitealis* n'est pas influencée par les feuilles de l'espèce du Moringa dont elles se nourrissent ($F_{(2, 121)} = 12,613$ ; P < 0,001; Tableau 2). Cependant à partir du stade 3 les larves élevées sur l'espèce *M. peregrina* ont un développement significativement plus long que celles issues de *M. oleifera* et *M. stenopetala* (Tableau 2). La durée totale du développement larvaire était de 12 à 14 jours avec une moyenne, significativement plus longue, sur *M. peregrina* et *M. stenopetala*

comparativement à *M. oleifera* (Tableau 2). En général les adultes émergent six (6) à huit (8) jours après la pupaison de Moringa d'origine avec une moyenne, significativement plus longue, sur *M. peregrina* et *M. stenopetala* comparativement à *M. oleifera* (Tableau 2). La longévité des adultes ne semble pas être influencée par le type d'espèce du Moringa sur laquelle a été élevé *N. blitealis* quel que soit le sexe. De l'émergence à la mort, l'adulte mâle a duré en moyenne de 10 à 11 jours, et de 13 à 16 jours pour l'adulte femelle (Tableau 2). La durée de vie totale de l'insecte (de l'éclosion de la larve à la mort de l'adulte) varie en moyenne de 32 à 37 jours chez le mâle et de 37 à 40 chez la femelle dans ces conditions d'étude (Tableau 2). La durée de vie est significativement plus élevée chez les individus mâles issus d'élevage sur *M. peregrina* et sur *M. stenopetala* comparativement à l'espèce *M. oleifera* ($F_{(2, 27)} = 1,139$ ; P = 0,335).

<table><caption>**Tableau 2.** Durées des différents stades du développement de *Noorda blitealis* en fonction de l'espèce du Moringa utilisée pour l'élevage des larves</caption><thead><tr><th>Durée de développement</th><th></th><th>M. oleifera</th><th>M. peregrina</th><th>M. stenopetala</th><th>F-test</th></tr></thead><tbody><tr><td>Œufs</td><td></td><td>2,94 ± 0,09a*</td><td>2,85 ± 0,08a</td><td>2,90 ± 0,08a</td><td>F<sub>(2, 141)</sub> = 0,238 ;<br>P = 0,788</td></tr><tr><td>Larve L1</td><td></td><td>1,27 ± 0,06a</td><td>1,35 ± 0,07a</td><td>1,44 ± 0,07a</td><td>F<sub>(2, 141)</sub> = 1,456 ;<br>P = 0,237</td></tr><tr><td>Larve L2</td><td></td><td>1,57 ± 0,08a</td><td>1,83 ± 0,09a</td><td>1,78 ± 0,09a</td><td>F<sub>(2, 129)</sub> = 2,624 ;<br>P = 0,076</td></tr><tr><td>Larve L3</td><td></td><td>2,82 ± 0,10a</td><td>3,37 ± 0,09b</td><td>2,73 ± 0,10a</td><td>F<sub>(2, 127)</sub> = 11,518 ;<br>P < 0,001</td></tr><tr><td>Larve L4</td><td></td><td>2,34 ± 0,10a</td><td>2,73 ± 0,11b</td><td>2,69 ± 0,10b</td><td>F<sub>(2, 126)</sub> = 4,415 ;<br>P = 0,014</td></tr><tr><td>Larve L5</td><td></td><td>4,85 ± 0,21a</td><td>6,33 ± 0,15c</td><td>5,40 ± 0,17b</td><td>F<sub>(2, 110)</sub> = 16,480 ;<br>P < 0,001</td></tr><tr><td>Développement larvaire</td><td></td><td>12,36 ± 0,29a</td><td>14,45 ± 0,43b</td><td>14,15 ± 0,21b</td><td>F<sub>(2, 121)</sub> = 12,613 ;<br>P < 0,001</td></tr><tr><td>Chrysalide</td><td></td><td>7,45 ± 0,16b</td><td>8,10 ± 0,23c</td><td>6,48 ± 0,20a</td><td>F<sub>(2, 82)</sub> = 16,928 ;<br>P < 0,001</td></tr><tr><td rowspan="2">Longévité adulte</td><td>Mâle</td><td>10,50 ± 0,93a</td><td>10,43 ± 1,00a</td><td>11,31 ± 0,72a</td><td>F<sub>(2, 27)</sub> = 0,348 ;<br>P = 0,709</td></tr><tr><td>Femelle</td><td>15,40 ± 0,96a</td><td>13,43 ± 0,81a</td><td>16,08 ± 1,32a</td><td>F<sub>(2, 27)</sub> = 1,139 ;<br>P = 0,335</td></tr><tr><td rowspan="2">Cycle de vie</td><td>Mâle</td><td>32,90 ± 0,95a</td><td>36,86 ± 1,44b</td><td>35,38 ± 0,77b</td><td>F<sub>(2, 27)</sub> = 3,616 ;<br>P = 0,041</td></tr><tr><td>Femelle</td><td>37,80 ± 1,14a</td><td>39,86 ± 1,14a</td><td>40,15 ± 1,45a</td><td>F<sub>(2, 27)</sub> = 0,918 ;<br>P = 0,411</td></tr></tbody></table>

## Fécondité de la femelle selon la diète

Quelle que soit l'espèce de Moringa sur laquelle a été élevé *N. blitealis*, les femelles qui en émergent commencent à pondre trois (3) à quatre (4) jours après l'émergence sans aucune différence significative sur

leur provenance (Tableau 3). Les femelles issues de *M. stenopetala* pondent en moyenne plus d'œufs (242,2) que les femelles émergeant de *M. oleifera* (222,1) et *M. peregrina* (174) sans aucune différence significatives (Tableau 3).

<footnote>*Les différentes lettres indiquent des différences significatives entre les différentes espèces végétales (p < 0,05)</footnote>
<table><caption>**Tableau 3.** Durée de pré-ponte, durée de ponte, ponte journalière, ponte totale et taux éclosion des œufs de *Noorda blitealis* sur différentes espèces du Moringa</caption><thead><tr><th>Espèce</th><th>Durée de pré-ponte</th><th>Durée de ponte</th><th>Ponte journalière</th><th>Ponte totale</th></tr></thead><tbody><tr><td><i>M. oleifera</i></td><td>3,7 ± 0,3 a*</td><td>2,8 ± 0,2 a</td><td>85,6 ± 15,6 a</td><td>222,1 ± 30,4 a</td></tr><tr><td><i>M. peregrina</i></td><td>3,8 ± 0,3 a</td><td>3,0 ± 0,3 a</td><td>63,4 ± 11,9 a</td><td>174 ± 24,8 a</td></tr><tr><td><i>M. stenopetala</i></td><td>3,6 ± 0,2 a</td><td>3,4 ± 0,2 a</td><td>76 ± 8,6 a</td><td>242,2 ± 22,6 a</td></tr><tr><td rowspan="2">F-Test</td><td>F(2, 27) =0,163</td><td>F(2, 27) =1,638</td><td>F(2, 27) =0,691</td><td>F(2, 27) =1,519</td></tr><tr><td>P =0,85</td><td>P =0,213</td><td>P =0,51</td><td>P =0,237</td></tr></tbody></table>

## Analyse de la table de survie

Le taux de survie spécifique à l'âge au jour x (lx) représente la probabilité qu'un œuf de *N. blitealis* survive jusqu'à un âge au jour x selon l'espèce du Moringa. Le taux d'éclosion des œufs est d'environ 96% en moyenne quelle que soit l'origine des femelles les ayant pondus. La diète (espèce du Moringa) n'a pas influencé le taux d'éclosion d'œufs (F(2, 27) =0,234 ; P =0,793). Le taux de survie des œufs, à la fin du stade larvaire, le plus élevé a été observé sur *M. oleifera*. De même, jusqu'à 60 % des œufs, pondus par les femelles issues d'élevage sur *M. oleifera*, ont normalement survécu jusqu'au stade adulte, suivis des œufs sur *M. stenopetala* (58 %). Tandis que le taux de survie des œufs le plus faible au stade adulte a été observé sur *M. peregrina* avec seulement 34 %. Le sex ratio exprimé en pourcentage des individus femelles sur le nombre total des populations émergées était de 55% sur *M.*

stenopetala, de 60% sur *M. peregrina* et de 63% sur *M. oleifera*.

## Paramètres de population de *Noorda blitealis*

Les valeurs du taux net de reproduction et du taux d'accroissement intrinsèque sur *M. oleifera* et sur *M. stenopetala* étaient significativement plus élevées que celles sur *M. peregrina* (Tableau 4). En raison de la fécondité plus élevée enregistrée, le taux d'accroissement intrinsèque (λ= 1,132) était significativement plus élevé sur *M. stenopetala* que les deux autres espèces végétales (Tableau 4). L'espèce du Moringa n'influence pas le temps de génération moyen (T) qui varie de 37 à 40 jours environ. Par contre le temps (TD) nécessaire pour le doublement de la population initiale était significativement plus élevé sur *M. peregrina* (7 jours) que sur le *M. oleifera* (5,50 jours) et sur *M. stenopetala* (5,69 jours) (Tableau 4).

<table><caption>**Tableau 4.** Paramètres de la population de *Noorda blitealis* nourri de trois espèces du Moringa</caption><thead><tr><th>Espèce</th><th>R0</th><th>TG</th><th>Rm</th><th>TD</th><th>λ</th></tr></thead><tbody><tr><td><i>M. oleifera</i></td><td>127,20 ±18,61b*</td><td>37,80 ±1,14a</td><td>0,128 ±0,006b</td><td>5,50 ±0,31a</td><td>1,137 ±0,007a</td></tr><tr><td><i>M. peregrina</i></td><td>59,14 ±8,44a</td><td>39,86 ±1,14a</td><td>0,101 ±0,002a</td><td>7,00 ±0,22b</td><td>1,106 ±0,003a</td></tr><tr><td><i>M. stenopetala</i></td><td>140,54 ±13,11b</td><td>40,15 ±1,45a</td><td>0,123 ±0,004b</td><td>5,69 ±0,21a</td><td>1,132 ±0,004b</td></tr><tr><td rowspan="2">F-Test</td><td>F(2, 27) =7,016</td><td>F(2, 27) =0,918</td><td>F(2, 27) =7,827</td><td>F(2, 27)</td><td>F(2, 27) =8,241</td></tr><tr><td>P = 0,004</td><td>P =0,411</td><td>P =0,002</td><td>=8,284</td><td>P =0,002</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>P =0,002</td><td></td></tr></tbody></table>

## Evolution de la ponte de *Noorda blitealis* en station en fonction des mois et par espèce du Moringa

Le nombre d'œufs moyen par plant varie de 0 à 85 sur *M. oleifera*, 0 à 89 sur *M. peregrina* et 0 à 68 sur *M. stenopetala* (Fig. 6). Les périodes de l'année subdivisé en mois ont influencé significativement le nombre d'œufs par plant sur toutes les espèces testées, *M. oleifera* (F(11, 312) =16,141 ; P<0,001), *M. peregrina* (F(11, 312)= 10,223 ; P<0,001) et *M. stenopetala* (F(11, 312)= 13,314 ; P<0,001).

De janvier à août les œufs sont presque absentes sur des plants de Moringa, puis le nombre croit exponentiellement en septembre pour rapidement attendre un pic en novembre et enfin décroit en décembre (Fig. 6). Cette dynamique d'infestation par le nombre des œufs est similaire sur les trois espèces hôtes testées sans aucune influence significative quelle que soit la période de l'année.

<footnote>*Les différentes lettres indiquent des différences significatives entre les différentes espèces végétales (p <0,05)</footnote>

<footnote>*Les différentes lettres indiquent des différences significatives entre les différentes espèces végétales (p <0,05)</footnote>
<figure><img src="image_8.png" /><figcaption>**Figure 4.** Evolution de la ponte de *Noorda blitealis* en fonction de l'espèce du Moringa et des mois de l'année</figcaption></figure>

## Evolution de la population larvaire de *Noorda blitealis* en station en fonction des mois et espèce du Moringa

Le nombre de larves par plant varie de 0 à 60 sur *M. oleifera*, 1 à 50 sur *M. peregrina* et 0 à 53 sur *M. stenopetala* (Fig. 7).

La période de l'année exprimée en mois a influencé significativement l'infestation de populations larvaires par plant sur toutes les espèces testées, *M. oleifera* ($F_{(11, 312)} = 12,028$ ; $P<0,001$), *M. peregrina* ($F_{(11, 312)} = 15,574$ ; $P<0,001$) et *M. stenopetala* ($F_{(11, 312)}= 9,539$; $P<0,001$).

<figure><img src="image_9.png" /><figcaption>**Figure 5.** Evolution des larves de *Noorda blitealis* en fonction de l'espèce du Moringa et des mois de l'année</figcaption></figure>

Tout comme pour le cas des œufs, de janvier à août les œufs sont presque absentes des plants de Moringa, puis le nombre croit exponentiellement en septembre

pour rapidement attendre un pic en novembre et enfin décroit en décembre. En outre, l'évolution d'infestation larvaire n'est pas influencée significativement par espèces hôtes testées quelle que soit la période de l'année (Fig. 7).

## Variation du taux de défoliation de *Noorda blitealis* en station en fonction des mois et espèce du Moringa

Les dégâts causés par *N. blitealis* suivent une dynamique presque similaire à celle des larves, à la différence qu'on enregistre un petit pic en mai où la défoliation varie de 8,1 % sur *M. peregrina*, 9,5 % sur *M. stenopetala* et 24,7 % sur *M. oleifera*, sans aucune différence significative (Figure 8). Ensuite les dégâts deviennent insignifiants en juin et juillet avant de remonter en août pour attendre un pic en octobre avec un taux significativement plus élevé sur *M. oleifera* comparativement aux espèces *M. peregrina* et *M. stenopetala* ($F_{(2, 87)} = 3,448$ ; $P=0,020$). En ce moment la défoliation est de l'ordre de 80% sur *M. oleifera* de 67 % *M. peregrina* et de 74 % sur *M. stenopetala* (Fig. 8). Le taux de défoliation des plants tout en demeurant très importants décroit progressivement en novembre à janvier. On enregistre très peu de dégâts de février à avril. La défoliation était significativement plus élevée sur *M. oleifera* comparativement aux espèces *M. peregrina* et *M. stenopetala* en mois de janvier ($F_{(2, 86)} = 5,398$; $P<0,01$) et en mois d'Avril ($F_{(2, 93)}= 3,074$ ; $P=0,031$) (Fig. 8).

<figure><img src="image_10.png" /><figcaption>**Figure 6.** Evolution du taux d'infestation *Noorda blitealis* en fonction de l'espèce et les mois de l'année</figcaption></figure>
DISCUSSION

Dans la présente étude, il a été montré que divers
paramètres de la table de survie de *N. blitealis* sur trois
espèces du Moringa sont généralement différents. Les
paramètres démographiques de ce ravageur ont été
déjà déterminés sur diverses variétés de *M. oleifera*
(Selvi & Muthukrishnan, 2011). En général, la
diversité intra-spécifique de cette espèce végétale a
montré qu'elle a une grande influence sur les
performances de *N. blitealis* (Selvi & Muthukrishnan,
2011). Plusieurs études ont montré que les
performances du développement des plusieurs espèces
de l'ordre de Lépidoptères comme *Spodoptera
frugiperda* sont fonction des espèces végétales avec
lesquelles elles sont nourries (Soper et al., 2013 ;
Dowd & Sattler, 2015 ; Wang et al., 2020 ; He et al.,
2021). Les critères d'évaluation de performance
comprennent la longévité, la fécondité, la croissance et
le développement sur différentes espèces végétales
(Wilmar et al., 2016). Les taux de croissance plus
rapides et la fécondité plus élevée des insectes sur les
plantes hôtes indiquent la pertinence et la qualité
nutritionnelle d'une plante hôte (Soper et al., 2013).
Les résultats de cette étude montrent que le temps
nécessaire pour le développement larvaire et pour
l'incubation des chrysalides de *N. blitealis* est
différent sur les différentes espèces du Moringa avec
des durées plus longues sur le *M. prergrina*. De même
que les poids des larves L5 et des chrysalides ont été
plus élevés sur *M. stenopetala*, suivi de *M. oleifera* en
fin sur *M. peregrina*. Cependant le sex ratio des
populations de *N. blitealis* élevé sur les trois espèces
du Moringa comme supports alimentaires n'a pas été
influencé. Sanou et al. (2019) ont également fait les
mêmes observations avec *Bactrocera dorsalis* élevé
sur trois supports alimentaires (*Citrus reticulata
Blanco, Amygdalus persica* L., *Malus pumila* Mill.,
Red Fuji). Il apparaît alors que le sex ratio semble être
peu sensible aux sources alimentaires au regard des
études de Ekesi et al. (2007) et Gomina (2015).
L'étude de Yang et al. (2006) sur la composition
nutritionnelle des feuilles fraîches des Moringa a
ultérieurement montré que la teneur en éléments
nutritifs (matière sèche, protéine, β carotène et
calcium) est essentiellement plus importante dans les
espèces *M. stenopetala* et *M. oleifera* par rapport à *M.
beregrina*. Dans cette étude, *N. blitealis* a pu terminer
son cycle de vie sur les trois différentes espèces du
Moringa, bien que les valeurs des traits d'histoire de
vie soient significativement différentes en faveur des

espèces *M. stenopetala* et *M. oleifera*. En effet, le
temps nécessaire pour le doublement de la population
de *N. blitealis* le plus élevé a été observé sur *M.
peregrina* tandis que le nombre de progénitures
produit par femelle et par génération (ou taux net de
reproduction) (R0) le plus élevé a été obtenu sur les
espèces *M. stenopetala* et *M. oleifera*. En plus, la
valeur de λ la plus élevée était sur *M. stenopetala*. Le
taux net de reproduction (R0) et le taux
d'accroissement intrinsèque (Rm) sont des indicateurs
importants de la dynamique des populations d'insectes
(INSEE, 2007 ; Kabore et al., 2019). Les
comparaisons de R0 et Rm fournissent souvent des
informations considérables au-delà de celles
disponibles à partir de l'analyse indépendante des
paramètres de l'histoire de vie individuelle (Shirvani et
al., 2019). Les plantes hôtes ont des effets
remarquables sur les études de table de survie. La mise
en place d'une stratégie efficace de lutte contre les
ravageurs et respectueuse de l'environnement est
impossible sans la connaissance de base de la table de
survie (Shirvani et al., 2019). La construction de tables
de survie sur différents ravageurs cibles, en particulier
ceux qui sont économiquement importants, et leur
application dans les programmes de contrôle valent
sans aucun doute une piste indispensable (Binsin et al.,
2023). L'étude en station sur la dynamique
d'infestation des populations de *N. blitealis* a permis
de constater que les nombres des œufs et des larves
sont relativement faibles et stables dans la période
allant du mois de janvier jusqu'en août. Les nombres
des larves et des œufs ont augmenté progressivement
dans le mois de septembre pour ensuite atteindre leur
pic dans les mois d'octobre (pour les larves) et de
novembre (pour les œufs). Ainsi une diminution de
l'infestation est enregistrée à partir du mois de
décembre. Cette dynamique d'infestation de *N.
blitealis* a été déjà décrite par les producteurs du
Moringa au Niger (Halilou et al., 2021). Le degré de
défoliation (DD) exprime concrètement les pertes en
biomasse foliaire des plants du Moringa. Les résultats
ont montré que le DD a été significativement très
influencé par la période de l'année, sur toutes les trois
espèces hôtes suivies en stations. On a observé les
mêmes tendances pour le DD que la dynamique
d'infestations de *N. blitealis*, c'est-à-dire que les DD
les plus élevés ont été enregistrés dans les mois
d'octobre et novembre quelle que soit la plante hôte.
Selon Halilou (2022), les espèces telles que *M.
peregrina* et *M. oleifera* semblent plus buissonnantes
et plus vigoureuses en matière de régénération des
feuilles après défoliation, ainsi elles peuvent être
tolérantes que *M. stenopetala* en certaines périodes de
l'année. Cette variabilité d'incidence de *N. blitealis*
serait due aux conditions météorologiques locales
comme il a été rapporté par plusieurs études sur
différentes espèces d'insectes en Afrique. (Ba et al.,
2008; Caniço et al., 2020 et Halilou et al., 2021).
D'autres facteurs peuvent intervenir comme la
morphologie de chaque plante, notamment la taille des
feuilles utilisées comme substrats de ponte fournis à
un insecte, ainsi que l'environnement peuvent
influencer la ponte de ce dernier (Binda de Assis et al.,
2023, Ndiaye et al., 2023). La population de l'insecte
s'intensifie vers la fin de la saison des pluies, de
septembre à novembre profitant ainsi de l'humidité
résiduelle de la saison. Le développement de la
population se voit limité à partir de décembre jusqu'en
mai du fait des conditions climatiques défavorables
comme la période du froid de décembre à janvier et la
période de forte chaleur de mars à mai comme il a été
rapporté par Cherian & Basheer (1939), Munj et al.
(1998) selon Halilou et al. (2021), la dynamique des
populations de *N. blitealis* ainsi que la sévérité des
dégâts sont fonction des périodes de l'année. En effet,
la saisonnalité influe sur la dynamique des populations
d'insectes (Mano et al., 2023). Globalement la chenille
de *N. blitealis* s'attaque à toutes les trois espèces
observées en station.

CONCLUSION

Il ressort de l'étude du laboratoire que les deux espèces *M. Stenopetala* et *M. oleifera* se sont montrées plus favorables pour le développement de l'insecte *N. blitealis* par rapport à l'espèce *M. Peregrina*. Les durées totales moyennes du cycle du développement étaient plus longues qu'il s'agit du mâle ou de la femelle sur *M. Peregrina* suivi de *M. oleifera* mais les plus courtes ont été observées sur *M. Stenopetala*. Tandis que la fécondité, les poids de larve L5 et de chrysalide, taux de pupaison et d'émergence sont plus faibles sur *M. Peregrina* par rapport aux *M. Stenopetala* et *M. oleifera*. L'étude en station montre que l'évolution d'infestation ainsi que les dégâts varient significativement selon les mois de l'année du fait de variation des conditions météorologiques. Les populations de l'insecte sont en effet plus intenses en période d'octobre-novembre. Il faut noter que la chenille de *N. blitealis* s'attaque à toutes les trois espèces observées en station. Ces données ouvrent des perspectives, aux services techniques, de mise en place des stratégies raisonnées de lutte contre *N. blitealis*

pendant la période où l'infestation est intense sur le
terrain.

Conflits d'intérêt

L'auteur déclare qu'il n'y a aucun conflit d'intérêt à
propos de cet article.

Remerciements

Ce travail entre dans le cadre du projet de thèse financé
par le l'ICRISAT-Niger. Un sincère remerciement aux
directeurs et encadreurs de la thèse, M. BA Malick
Niango, Entomologiste Principal, à l'ICRISAT au
Niger et Directeur de Recherche à l'Institut de
l'Environnement et de Recherche Agricole (INERA),
Burkina Faso et M. Doumma Ali, Professeur Titulaire
en Entomologie à l'Université Abdou Moumouni de
Niamey.

REFERENCES

Ayyar, T.V.R. (1963). *Pest of drumstick. In: Handbook of economic Entomology for South India*, Namrutha publications, Madras. pp. 249-250.
https://www.entomoljournal.com/archives/2020/vol8issue4/PartV/8-4-235-123.pdf

Ba, N. M., Dakouo, D., Nacro, S. & Karamage, F. (2008). Seasonal abundance of lepidopteran stemborers and diopsid flies in irrigated fields of cultivated (Oryza sativa) and wild rice (Oryza longistaminata) in western Burkina Faso. *International Journal of Tropical Insect Science*, 28, 30-36.
https://DOI:10.1017/s1742758408930435

Binda de Assis, C. H., Aguiar R. L., Holtz A. M. et al. (2023). Population dynamics of thrips (Insecta: Thysanoptera) in cut chrysanthemum cultivated under photoselective screens. *Journal of Entomology and Zoology Studies* 11(2), 57-63.
https://doi.org/10.22271/j.ento.2023.v11.i2a.9184

Binsin, C., Ahmad, H. & Abu Hasan, H. (2023). Age-stage, two-sex life table analysis of black soldier fly, *Hermetia illucens* (Diptera: Stratiomyidae), reared on different organic wastes. *Journal of Asia-Pacific Entomology*, 26(2),102-108.
https://doi.org/10.1016/j.aspen.2023.102108

Birch, L. C. (1948). The intrinsic rate of natural increase of an insect population. *Journal of Animal Ecology*, 17(1), 15-26.
https://doi.org/10.2307/1605
Butani, D.K. and Jotwani, M.G. (1984). *Insects in vegetables*. Periodical Expert Book Agency, Delhi, India. 356p. https://www.scirp.org/(S(351jmbntvnsjt1aadkpo szje))/reference/ReferencesPapers.aspx?ReferenceID=1011354

Butani, D.K. & Verma, S. (1981). Insect pests of vegetables and their control- drumsticks. *Pesticides*, **15**(10), 29-32.

Caniço, A., Mexia A., & Santos, L. (2020). Seasonal Dynamics of the Alien Invasive Insect Pest *Spodoptera frugiperda* Smith (Lepidoptera: Noctuidae) in Manica Province, Central Mozambique. *Insects*, **11**, 512. https://doi.org/10.3390/insects11080512

Demuelenaere, E. (2001). *Moringa stenopetala*, a subsistence resource in the Konso district. Proceding International Workshop Development Potential for Moringa Products. Dar-Es-Salaam, Tanzania. pp. 2-29.

Dowd, P. F. and Sattler, S. E. (2015). *Helicoverpa zea* (Lepidoptera: Noctuidae) and *Spodoptera frugiperda* (Lepidoptera: Noctuidae) Responses to Sorghum bicolor (Poales: Poaceae) Tissues from Lowered Lignin Lines. *Journal of Insect Sciences*, **15** (2). https://10.1093/jisesa/ieu162

Ekesi, S., Nderitu, P. W. & Chang, L. C. (2007). Adaptation to and small-scale rearing of invasive fruit fly Bactrocera invadens (Diptera: Tephritidae) on artificial diet. *Annals of Entomological Society of America*, **100**(4), 562-567. https://doi.org/10.1603/0013-8746(2007)100[562:ATASRO]2.0.CO;2

Foidl, N., Makkar, H.P.S., et Becker, K. (2001). Potentiel de *Moringa oleifera* en agriculture et dans l'industrie. In: Development potentiel for Moringa product : International Workshop, 29th October-2 November 2001. Dar es Salaam, Tanzania. https://agritop.cirad.fr/511819/

Gamatié, M. (2005). *Description des Filières Feuilles de Moringa au Niger*. INRA Moringanews-CTA. 9p.

Gillett, M.P.T. (1997). Brief notes on some species of micro-moths newly recorded from AI Ain: (Lepidoptera: Micro-Heterocera: Pyralidae). *Tribulus*, **7**(1), 19-20.

Gomina, M. (2015). *Contribution à la connaissance des mouches des fruits (Diptera : Tephritidae) et de leurs parasitoïdes au sud du Togo*. Thèse de doctorat, Université de Lomé, Togo. 190p. https://agritrop.cirad.fr/575402/

Halilou, M. S. (2022). *Bioécologie et gestion intégrée des populations de N. blitealis Walker, chenille défoliatrice du Moringa au Niger*. Thèse de Doctorat : Université Abdou Moumouni de Niamey, Entomologie Appliquée, Niamey (Niger), 138 p.

Halilou, M. S., Ba, M. N., Karimoune, L., & Doumma A. (2021). Farmers’ knowledge, perceptions and management of the moringa tree defoliator, *Noorda blitealis* Walker (Lepidoptera: Crambidae), in *Niger. International Journal of Tropical Insect Sciences*. 42(1) page 905. https://doi.org/10.1007/s42690-021-00617-1

He, L., Wu, Q., Gao, X., & Wu, K. (2021). Population life tables for the invasive fall armyworm, *Spodoptera frugiperda* fed on major oil crops planted in China. *Journal of Integrative Agriculture*, 20(3), 745-754. https://doi.org/10.1016/S2095-3119(20)63274-9

INSEE (2007). Bilan démographique 2006: un excédent naturel record (janvier 2007) (http://www.insee.fr/fr/ffc/ipweb/ip1118/ip1118.html)

Kabore, A., Ba, N. M., Clementine D.-B., & Sanon, A. (2019). Towards development of a parasitoid cottage industry of the parasitoid wasp *Habrobracon hebetor* (say): optimum rearing and releases conditions for successful biological control of the millet head miner *Heliocheilus albipunctella* (De Joannis) in the Sahel. https://doi.org/10.1007/s42690019-00005-w

Kotikal, Y. K., & Math, M. (2016). Insect and non-insect pests associated with Drumstick, *Moringa oleifera* (Lamk.). Entomol Ornithol Herpetol. https://doi.org/10.4172/2161-0983.1000180

Mano, E., Ouedraogo, B., Kambou, G. & Somida, I. (2023). Diversité, abondance et comportement trophique des parasitoïdes contre le ravageur Helicoverpa armigera (Hübner 1808) en culture de tomates biologiques au Burkina Faso. *International Journal of Biological and Chemical Science*, **17**(1), 1-12. https://doi.org/10.4314/ijbcs.v17i1.1

Manzo, M.L., Halidou, D.M., Hallarou, M., Illo, A., Rabani, A., Donnen, P. & Dramaix, M. (2016). Composition de la poudre des feuilles sèches de *Moringa oleifera* dans trois régions du Niger. *African Journal of Food, Agriculture, Nutrition*
and Development, Volume 16 No. 4.
https://doi.org/10.18697/ajfand.76.15115

Mridha, M.A.U. (2015). Prospects of Moringa Cultivation in Saudi Arabia. ISSN: 2090-4274. *Journal of Apply Environment and Biological Sciences*, 5(3), 39-46.
http://www.sciepub.com/reference/197122

Nair, M.R.G.K. (1970). *Insects and mites of crops in India*. New Jack Printing Works Private Limited, Bombay. 404p.
https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/19870542318

Ndiaye, A., Mbow, B., Diallo, I., BA, I., Faye, M., Diome, T., Brevault, T., & Sembene, M. (2023). Inventory of the entomofauna associated with the cultivation of sweet corn in Senegal: Report of the fall armyworm *Spodoptera frugiperda*. *Journal of Entomology and Zoology Studies*, 11(3), 19-23.
https://doi.org/10.22271/j.ento.2023.v11.i3a.9194

Negusu, Y. (2005). *Ecology of Noorda blitealis* (walker) (lepidoptera: crambidae) and its management using botanicals in konso special woreda. Addis Ababa University, Biology department.81p.
http://etd.aau.edu.et/handle/123456789/7168

Parrotta, J.A. (2001). *Healing Plants of Peninsular India*. CABI Publishing, Wallingford, UK and New York, NY, USA. 828 p.
https://doi.org/10.1079/9780851995014.0000

Pasternak, D., Keatinge, J.D.H., & Mamoudou, Z. (2017). Moringa research and cultivation in Niger. *Acta Horticulture*, 1158, 171-178. DOI:10.17660/ActaHortic.2017.1158.20

Ratnadass, A., Ousmane-Moussa, Z., Salha, H., Minet, J., & Amadou-Seyfoulaye, A. (2011). *Noorda blitealis* Walker, un ravageur majeur du Moringa au Niger (Lepidoptera, Crambidae). *Bulletin de la Société entomologique de France*, 116 (4), 401-404.
https://agritrop.cirad.fr/562816/1/document_562816.pdf

Sanou, A., Dabire, G., R. A., Nebie, K., Sane, C. A. B., & Diarra, K. (2019). Influence des supports alimentaires sur quelques paramètres biologiques de *Bactrocera dorsalis* (Hendel) et de son parasitoïde *Fopius arisanus* (Sonan) en

Wang, W., He, P., Zhang, Y., Liu, T., Jing X., & Zhang, S. (2020). The Population Growth of *Spodoptera frugiperda* on Six Cash Crop Species

conditions de laboratoire. *International Journal of Biological and Chemical Sciences*, 13(2), 870-881.
https://dx.doi.org/10.4314/ijbcs.v13i2.24

Satti, A. A., Nasr, O. E-H., Fadelmula, A. & Ali, F. E. (2013). New record and preliminary bio-ecological studies of the leaf caterpillar, *Noorda blitealis* Walker (lepidoptera: pyralidae) in Sudan. *International Journal Sciences and Nature*, 4(1), 57-62.
https://www.researchgate.net/publication/271505476

Selvi, C., & Muthukrishnan, N. (2011). Biology of moringa leaf caterpillar *Noorda blitealis* Walk. on different annual moringa accessions. *Journal of Plant Protection and Environment*, 8, 89-92.
https://www.researchgate.net/publication/322524512_Biology_of_moringa_leaf_caterpillar_Noorda_blitealis_Walk_on Different_annual_moringa_accessions/link/5ce93112a6fdccc9ddcd2dd2/download

Shirvani, Z., Minaei, K., Aleosfoor M., & Atashi, H. (2019). Age-Stage, Two Sex-Life Table of *Frankliniella occidentalis* (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae) reared on four greenhouse cucumber cultivars. *Entomofauna* 40/2 *Heft*, 19, 427-441.
https://www.zobodat.at/pdf/ENT_0040_0427-0441.pdf

Slansky, F. (1982). Insect nutrition: an adoptionist's perpective. *Florida Entomologie*, 65, 45-71.
https://doi.org/10.2307/3494145

Soper, A. M., Whitworth, R. J., & McCormack, B. P. (2013). Sorghum seed maturity affects the weight and feeding duration of immature corn earworm, *Helicoverpa zea*, and fall armyworm, *Spodoptera frugiperda*, in the laboratory. *Journal of Insect Science*, 13, 67. Available online: http://www.insectscience.org/13.67

Taye, M. B., Surendra, K. S., Thangavel, S., & Mulugeta, N. (2013). Distribution and damage status of moringa moth (Noorda blitealis Walker) on Moringa stenopetala Baker (Cufod.) in Southern Rift Valley of Ethiopia. *Journal of Agricultural Technology*, 9(4), 963-985.
http://www.ijataatsea.com/pdf/v9_n4_13_July/19_IJAT_2013_9(4)_Thangavel%20Selvaraj-Pest%20management.pdf
and Implications for Its Occurrence and Damage Potential in China. *Insects*, 11, 639.
https://10.3390/insects11090639
Wilmar, D. L. R.-C., Julio, C. R., Leopolodo, C.-L., Alfredo, C., & Edi A. M. (2016). Attraction, Feeding Preference, and Performance of *Spodoptera frugiperda* Larvae (Lepidoptera: Noctuidae) Reared on Two Varieties of Maize. *Environmental Entomology*, *45*(2), 384–389.
http://10.1093/ee/nvy229

Yang, R.Y., Tsou, S.C.S., Lee, T.C., Chang, L.C., Kuo, G., & Lai, P.Y. (2006). *Moringa, a novel plant rich in antioxidants, bioavailable iron and nutrients*. In *Herbs: Challenges in Chemistry and*

Biology, C.T. Ho, M. Wang, and S. Sang, eds., ACS Symposium Series 925 (N.Y.: Oxford University Press). pp 224–239.
http://dx.doi.org/10.1021/bk-2006-0925.ch017

Yiftach, V. (2018). *Moringa oleifera* and *Moringa peregrina*, the "miracle trees", as super-foods from the ancient times of the pharaohs to the 21st century. 21st International Conference on Food & Nutrition. *Journal of Nutrition & Food ciences*, Vol. 8. [10.4172/2155-9600-C5-064](https://www.ajter.com/10.4172/2155-9600-C5-064)

Read online:

<figure><img src="image_11.png" /></figure>

Scan this QR code with your smart phone or mobile device to read online