La présente invention concerne un procédé de fixation d'une enzyme sur un support solide insoluble dans l'eau. Elle vise également un complexe support-enzyme et un procédé d'utilisation d'un tel complexe. Depuis plusieurs années, on cherche à "insolubiliser" des enzymes ou d'autres agents tels des anti-corps, des anti- gènes ou des acides nucléiques de façon à pouvoir purifier, modifier ou isoler certaines substances avec lesquelles ces "catalyseurs" forment des complexes ou bien favorisent une réaction spécifique. Les tentatives visant à obtenir des associations support- enzymes insolubles s'expliquent par le fait que des enzymes sont utilisées dans de nombreuses réactions et qu'il est, non seulement intéressant, du point de vue économique, de récupérer une enzyme onéreuse mais que, de plus, les pro- duits issus de la réaction ne soient pas souillés. Le choix des supports et les méthodes de fixation ou d'asso- ciation des enzymes ont suscité de nombreux travaux: la littérature scientifique est très abondante et décrit plu- sieurs supports tels la silice, le verre, des polymères synthétiques, des polysaccharides et en particulier la cellulose. La plupart des publications concernant la cellulose visent une cellulose très pure, alors qu'en général la cellulose est associée à des hémi-celluloses et de la lignine. Ainsi, N. WELIKY et H.H. WEETHALL ont publié en 1965 (Immu- nochemistry Pergamon Press Vol. 2 p. 293-322) un article intitulé "The Chemistry and use of cellulose derivatives for the study of biological systems". La cellulose a la réactivité d'un polyalcool et peut être soumise à des réactions d'oxydation, d'estérification, 2 2472015 d'étherification, d'halogénation etc. En particulier, les oxycelluloses sont couplées à des al- cools, des amines ou des protéines en formant des esters ou des amides. On comprend d'ailleurs, eu égard à la nature des réactifs employés pour modifier la cellulose, pourquoi l'on a en général cherché à éliminer la lignine - polymère réticulé dont les nombreux groupes réactifs consomment les corps utilisés pour modifier la cellulose ou bien inhibent les réactions envisagées. Toutefois, le brevet américain 3 841 969 (A.N. EMERY et Col.) décrit une méthode de préparation d'enzymes immobi- lisées par chélation avec un complexe métallique et des substances comportant des fonctions hydroxyles: cellulose microcristalline, cellulose diéthylaminoéthylée, carboxy- méthylcellulose mais aussi sciure de bois, copeaux de bois. Cependant outre la difficulté d'utilisation industrielle des chlorures métalliques tels le tétrachlorure de titane ou le chlorure d'étain, on sait que les chélates ne sont pas stables dans des gammes étendues de pH. D'autre part, le brevet français 2.247.472 (SNPA) décrit une méthode de fixation d'enzymes sur de la cellulose asso- ciée à de la lignine, mais indique, ce qui paraît fort étonnant, que la réaction d'association cellulose-enzyme est favorisée par de la lignine présente à raison de 5 à 25 % en poids, et de préférence 10 à 20 %. Des grains de rafles de céréales dont la dimension varie entre 0,3 et 10 mm sont tout d'abord délignifiés en sur- face puis après lavage, traités avec du chlorure de thio- nyle dans la pyridine, enfin mis en contact avec une solution tamponêe d'enzyme. 3 2472015 Il semble évident que la lignine n'a aucune influence favo- rable sur la réaction permettant d'immobiliser l'enzyme puisqu'il est indispensable de commencer par une étape de délignification superficielle des grains. La présente invention concerne un procédé d'obtention de dérivés enzymatiques dans lesquels l'enzyme est fixée par une liaison covalente sur un support insoluble dans l'eau, caractérisé en ce qu'il comporte les étapes suivantes: a) lavage à l'eau d'un support contenant essentielle- ment de la cellulose et de la lignine. b) oxydation ménagée de la fraction osidique du support. c) condensation d'une diamine sur les groupes aldéhydi- ques du support oxydé. d) stabilisation de la liaison amine-support par réduc- tion. e) activation des groupes aminés par un dialdéhyde. f) couplage de l'enzyme sur le support activé. D'une façon préférentielle l'oxydant de l'étape b) est la périodate de sodium, la diamine est l'éthylènediamine, le réducteur le borohydrure ou le cyanoborohydrure de sodium, le dialdéhyde, le glutaraldéhyde. L'enzyme peut être notamment l'invertase, la lévane saccha- rase, la lactase ou la dextranesucrase. Bien que tout support contenant de la cellulose et de la lignine soit utilisable, des résultats particulièrement intéressants ont été obtenus avec la fraction la plus lignifiée des rafles de céréales, notamment des rafles de 4 2472015! mais. Les rafles de maTs sont constituées 1) d'éléments tendres appelés "Feeds'", contenant en majeure partie de la cellulose et des protéines, destinés à l'alimentation du bétail. 2) d'éléments durs - appelés GRITS - contenant une grande proportion de lignine (supérieure à 25 %), de la cellulose et des xylanes. Ces éléments sont en général broyés et utilisés en raison de leur dureté comme charges ou comme abrasifs. Les particules pseudo-sphériques obtenues ont des dimen- sions pouvant varier entre quelques dizaines de microns et quelques millimètres. L'invention vise également un dérivé enzymatique dans lequel l'enzyme est liée de façon covalente au support, caracté- risé en ce que le support est constitué par la partie des rafles de céréales dont la teneur en lignine est supérieure à 25 %, l'enzyme étant l'invertase, la lévane saccharase, la lactase ou la dextrane. Un autre objet de l'invention, concerne un procédé de trai- tement de jus sucrés à l'aide d'enzymes fixées sur la par- tie des rafles de mais dont la teneur en lignine est supé- rieure à 25 %. En particulier, un jus concentré de saccharose est traité par passage sur un lit de particules de rafles de mais ser- vant de support à l'invertase, en vue de l'obtention d'un sirop inverti. Selon une autre forme de l'invention, un jus de saccharose est traité par passage sur un lit de particules de rafles de mais servant de support à la lévane saccharase: on obtient un jus contenant du polyfructose et du glucose. Les exemples, ci-après, permettront de mieux comprendre l'invention L'invertase est une enzyme qui catalyse l'hydrolyse du saccharose en glucose et fructose, dont on a, selon l'in- vention, réalisé la fixation sur des supports solides inso- lubles dans l'eau, supports contenant à la fois de la cel- lulose et de la lignine. Plus particulièrement on a étudié la fixation de l'invertase sur la partie "dure" des rafles de mais dont la teneur en lionine est supérieure à 25 %. Cette partie "dure" a été broyée de façon à obtenir des particules dont les diamè- trés sont compris entre 170 microns et 280 microns. Leur densité apparente est de 0,4 Kg.1-1 à l'état sec et de 1,8 Kg.l1 à l'état mouillé. Leur surface spécifique est de 1 m2.9g1 L'activité de la préparation enzymatique est déterminée en mettant en contact, pendant 4 minutes à 40'C, 10 ml de solution de saccharose 0,4 M dans du tampon acétate 0,1 M, pH 4,5 avec 0,1 ml de solution d'invertase, (ou de suspen- sion d'invertase immobilisée) dans le même tampon. La réaction est arrêtée en ajoutant 5 ml du milieu à 0,5 ml de solution de soude 2N. La teneur en sucres réducteurs libérés est ensuite déterminée par la méthode du dinitro- salicylate (lecture de l'absorbance à mn). Un étalonnage est effectué à l'aide de solutions équimoléculaires de glucose et de fructose dans le tampon acétate 0,1 M (pH 4,5). Une unité d'activité enzymatique (U) est définie comme étant la quantité d'enzyme qui provoque la libération de 1 g. de sucres réducteurs par minute dans les conditions d'essai. 6 2472015 1 L'activité spécifique de la préparation d'invertase (SIGMA Chem. Co est de 93,3 U/mg d'enzyme. Le procédé de traitement des particules de rafles de mais comporte les étapes suivantes: a) lavage préalable à l'eau distillée pendant 24 heures à 25 C pour éliminer les substances solubles, suivi par un séchage à 60 C. b) oxydation ménagée par mise en contact d'un échan- tillon de 100 mg avec 20 ml de solution de métopé- riodate de sodium dans l'eau distillée à 25 C, dans -l'obscurité. c) amination par réaction des rafles oxydées avec 20 ml de solution de diamine dans le méthanol à 25 C. On a pour cette étape, testé les diamines suivantes: - l'éthylènediamine l'hexaméthylènediamine - l'octaméthylènediamine - le diamino dicyclohexyl méthane - le diamino diphényl méthane. d) réduction par mise en contact à 25 C soit avec 25 ml de solution de borohydrure de sodium, dans du tam- pon carbonate 0,05 M, pH 10,5, ou dans du méthanol, soit par 20 ml de solution de cyanoborohydrure de sodium, dans du tampon phosphate 0,05 M, pH 6,5. e) activation par une solution de glutaraldéhyde dans du tampon pyrophosphate 0,05 M, pH 8,6 à 25 C. f) fixation de l'invertase en solution dans du tampon acetate 0,1 M, pH 4,5, à 4 C. 7 2472015 Chaque étape est suivie de deux lavages des rafles par remise en suspension pendant 15 mn, dans 20 ml du milieu utilisé au cours de l'étape précédente - ne contenant pas l'espèce réactive - puis par trois lavages par remise en suspension dans le milieu utilisé au cours de l'étape sui- vante. Les diverses étapes peuvent être schématisées, dans leur principe, de la façon suivante: oxydation ami nati on CH20H _ 0 _\ H_ 1I --1 oh ami nati on CH20H 000- - Q _ H HI il il O O NaIO4 H2N-R-NH2 > O_ Il II 0 0 O- il Il N N I I R R i I NH2 NH2 _O 0 Il il h D1 NH HN I I I i NH HN NZH ZHN I - 0 HOZH3 W E Il 11 NH HN I 1 1: 1: I! NH HN (3> awjçzua - 0 UOL4eS. LqowwlI Il il NH HN I I a 1 I I NIH HN jZH HN - o 1 -10 HO-HO "n) OH3-ú (ZHla)-Ho zHN ZHN 1 1I u H I I HN HN I I HOAH3,' UO LeA.LV ZHN ZHN Il il -a i II 11 i I HN HN - H0ZH \ -O- aO HOZH3 N3úHBeN no ZHN ZHN i 1 ! a N N i,.. --H H 0 -O- HOZHJ UOLDnpPa -LO'zztz - x SI S 2472015' Après greffage de l'enzyme, le support est lavé par 20 ml de solution de NaCl 1M dans l'eau distillée afin d'élimi- ner l'invertase simplement adsorbée. On procède ensuite la détermination de l'activité retenue sur l'échantillon de rafles. On a bien évidemment cherché à optimiser les différentes étapes: 1) Oxydation a) influence de la concentration du périodate de sodium Les conditions expérimentales choisies sont les suivantes: TABLEAU N 1 On a pu, en faisant varier la concentration en NaIO4, obtenir les résultats présentés dans le tableau N 2. ETAPE OXYDATION AMINATION REDUCTION ACTIVATION FIXATION PRODUIT NaIO4 C2H8N2 NaBH4 glutaraldéhyde Invertase MILIEU H20 CH30H CH30H T.pyrophosphate T. Acetate pH 8,6 4,5 CONCENTRATIONvariable 3M 10gl- 1 1,25 % 0,5g11 DUREE (h) 30 72 4 5 10 2472015 1 TABLEAU N 2 En effectuant la réduction par du cyanoborohydrure de so- dium (concentration 10gl 1, tampon phosphate pH 6,5, durée 2 heures) à la place du borohydrure de sodium, toutes autres conditions égales par ailleurs, on obtient les résultats présentés dans le tableau 3: TABLEAU N 3 On constate donc que, quelle que soit la méthode de réduc- tion utilisée, le greffage optimal de l'enzyme est obtenu au dela d'une concentration de métapériodate de sodium 0,2 M. b) influence de la durée La concentration en métapériodate étant fixée à 0,2 M et toutes les autres conditions expérimentales étant identiques à celles choisies en a) (mis à part le Concentration NaIO4(M) 0 0,05 0,2 0,4 Activité (U/g de rafles) 0 0,28 1,28 1,33 ... Concentration NaIO4(M) 0 0,05 0,2 0,4 Activité (U/g de rafles) 0 0,53 2,20 2,18 milieu réducteur méthanolique remplacé par un tampon phosphate) on obtient les résultats présentés dans le tableau 4: TABLEAU N 4 Le temps optimal d'oxydation retenu est de 30 heures. Il est à remarquer que l'oxydation paraît procéder en deux étapes: - une première étape rapide (0 - 2h) - une seconde étape plus lente (2 - 24h). 2) Oxydation a) influence de la nature de la diamine La durée d'oxydation par du périodate de sodium 0,2 M étant fixée à 30 heures, les autres conditions expe- rimentales étant celles choisies en 1 a) on obtient les résultats présentés dans le tableau 5: TABLEAU N 5 Durée d'oxydation (h) 0 2 5 8,75 13 24 48 Activité (U/g de rafles) 0 0,42 0,55 0,77 0,97 1,49 1,53 Diamine C2H8N2 C6H16N2 C8H20N2 C13H26N2 3O Activité (U/g de rafles) 1,28 0,61 0,43 0,40 i 12 2472015 I Les activités enzymatiques les plus élevées sont donc ob- tenues lorsqu'on utilise l'éthylenediamine (C2H8N2). b) influence de la concentration de l'éthylènediamine Les conditions expérimentales étant celles de l'exem- ple 1) a) (mis à part la durée de l'oxydation rame- nee à 13 h. et le milieu réducteur méthanolique rem- placé par un tampon carbonate) on obtient les résultats présentés dans le tableau 6: TABLEAU No 6 On notera qu'une activité catalytique importante est obtenue avec une concentration relativement faible de diamine (0,05M) On considère cependant que la concentration optimale est 3 M. c) influence de la duree Les conditions expérimentales sont les suivantes: ! Concentration de la diamine (M) 0 0,05 0,5 1 5 7,5 Activité (U/g de rafles)0 0,50 0,72 0,97 1, 24 1,23 TABLEAU N 7 Les résultats sont donnés dans le Tableau N 8: 2472015 1 TABLEAU N 8 Une durée de 72 heures a donc été retenue pour l'étape d'amination. 3) Réduction a) influence de la nature et de la concentration de l'agent de réduction. Les conditions expérimentales sont les suivantes: ETAPE OXYDATION lAMINATION REDUCTION ACTIVATION FIXATION PRODUIT | aIO4 |C2H8N2 NaBH3CN Glutaraldéhyde Invertase MILIEU H20 CH30H T. phos. T.pyrophosphate T. Acetate pH 6,5 8,6 4,5 CONCENTRATION 0,2 M 3 M 0l1O1i 1, 25 % 0,5 g11 DUREE (h) 30 variable 2 5 10 Durée d'amination (h) 0 17 24 48 72 79 Activité (U/g de rafles) 0 0,98 1,21 1,84 2,20 2,12 2472015 J1 TABLEAU N 9 Les résultats sont donnés dans le tableau 10: Agent de réduction Concentration de l'agent de réduction (gl 1) 0 10 20 NaBH4 (tampon carbonate 0,05 M) pH 10,5 1,11 1,29 1,28 NaBH3CN (tampon phosphate 0,05 M) pH 6,5 1,11 2,20 2,25 TABLEAU N 10 le cyanoborohydrure s'avère donc être l'agent de réduction le plus efficace. ETAPE OXYDATION AMINATION REDUCTION ACTIVATION FIXATION PRODUIT NaYA ION PRODUITNaI C2H8N2 variable Glutaraldéhyde!Invertase NI4 iC2H8N i____bl MILIEU H20 CH30H variable T. pyrophosphateT. Acetate i pH _8,6 4,5 CONCENTRATION 0,2 M 3 M variable 1,25 % 0,5g-1 DUREE (h) 30 72 2 5 10 2472015 b) influence de la durée de réaction Les conditions expérimentales sont les suivantes: | I'! ETAPE OXYDATION AMINATION REDUCTION ACTIVATION FIXATION i PRODUIT NaIO4 C2H8N2 NaBH3CN Glutaraldéhyde Invertase MILIEU H20 CH30H T.phosphate T.pyrophos. T.Acétate pH 6,5 8,6 4,5 3 M 10 g1-1 1,25 % 0,5g111 CONCENTRATION 0,2 M 3 M 10 gl 1,25 O,5g1 i DUREE (h) 30 72 variable 5 10 TABLEAU N 11 Les résultats sont donnés dans le tableau 12: I Temps de réduction (h)0 2 4 Activité (U/g de rafles) 1,11 2,20 2,15 TABLEAU N 12 4) Activation a) influence de la concentration du glutaraldéhyde et de la durée. Les conditions expérimentales sont identiques à celles de l'essai 3 b). 16 247201 5 Les résultats, exprimés en U/g de rafles, sont donnés dans le tableau N 13. Temps d'activation Concentration du glutaraldéhyde (%, V/V) (h) 0 0,5 1, 25 5 10 0 - - 1,34 - - 0,5 - - 1,42 - - 3 - - 1,70 - - 1,34 2,26 2,33 2,30 2,32 il - - 2,34 - - *TABLEAU N 13 La concentration optimale est donc heures. de 1,25 % et la durée de ) Fixation de -l'invertase a) influence de la concentration de l'invertase et de la durée de fixation. Les conditions expérimentales sont identiques à celles de l'essai 3 b). Les résultats sont donnés dans le tableau 14. 17 2472015 2472015 1 Temps de fixation (h) Concentration de l'invertase (gl- 1 0,05 0,1 0,5 1 2 5 0,39 1,01 2,36 3,30 3,52 3,56 24 - - - 3,82 - - - - - 4,08 - - TABLEAU N 14 La concentration optimale de l'invertase est donc de 2gl- 1 et la durée optimale de fixation est de 30 heures. Le tableau 15 regroupe les conditions optimales de fixation de l'invertase sur les rafles de mais. ETAPE OXYDATION AMINATION REDUCTION ACTIVATION FIXATION PRODUIT NaIO4 C2H8N2 NaBH3CN Glutaraldéhyde Invertase MILIEU H20 CH30H T. phosphate T.pyrophos. T. Acétate pH 6,5 8,6 4,5 CONCENTRATION 0,2 M 3 M 10g91-1 1,25 % 2g9-1 DUREE (h) 30 72 2 5 30 j TABLEAU N 15 On a testé d'autres méthodes d'immobilisation de l'invertase sur les rafles de mals: 18 2472015 1 - absorption - absorption suivie d'une réticulation par le gl utaral déhyde - fixation directe sur les rafles oxydées - greffage des diamines aromatiques activées par diazotation. - oxydation des aldéhydes en acides, suivie d'une activation selon la méthode à l'azoture. Aucune de ces méthodes n'a donné de résultats comparables à ceux obtenus par le procédé selon l'invention. On a en particulier mis en application la méthode décrite dans le brevet français 2 247 472, Deux supports ont été utilisés: 1) échantillon de rafles entières, broyées méca- niquement et tamisées afin de ne conserver que la fraction de diamètre de particules compris entre 100 et 200 microns. 2) échantillon de "GRITS" d'un diamètre compris entre 170 et 280 microns. L'immobilisation de l'invertase a été réalisée par mise en contact de 100 mg de support activé avec 20 ml de solution d'invertase (SIGMA Chem. Co I 5875) à 2gl-1 dans du tampon acétate 0,1 M, pH 4,5, pendant 30 heures sous agitation rotative à 40C. Après élimination exhaustive de l'enzyme non fixée, par lavage des supports à l'aide de tampon acétate 0,1 Ml, pH 4,5, l'activité retenue a été déterminée en mesurant la quantité de sucres réducteurs (glucose et fructose) libérés par action de l'enzyme sur une solution de saccharose 0, 4 M à 400C. 2472015; Les résultats sont donnés dans le tableau N 16: Méthode d'immobilisation Support Activité enzymatique 0,049 Rafles entières 0055 0,0505 Brevet FR 2 247 472 GRITS,36 0,015 2,12 Rafles entières 2,10 2,10 Selon la présente inven- tion.GRITS 3,10 2,94 TABLEAU N 16 Les activités enzymatiques obtenues avec des supports trai- tés selon l'invention sont de 40 à 80 fois supérieures à celles obtenues avec les mêmes supports traités selon le brevet français 2 247 472. On a testé également les possibilités d'utilisation en con- tinu de l'invertase immobilisée sur rafles de mais, dans un réacteur à lit fixe de 10 ml de volume, garni de 1,9 g de rafles portant l'enzyme. Ce réacteur, placé dans une enceinte thermostatée à 40 C, est alimenté en continu à l'aide de so- lutions de saccharose de concentration variable dans du tampon acétate 0,1 M, pH 4,5. Les résultats sont donnés dans le tableau N 17. 1 0 2472015! Concentration initiale Débit d'alimentation (i.h 1) de saccharose 0,15 0, 40 0,68 0,82 0,97 1,05 1,2 0,1 M (34,2 gi -) 100% 100% 100% 100% 100% 100% 100% 1 M (342 gl1) 97% 96% 80% 73% 62% 57% 53% TABLEAU N 17 On atteint donc des productivités horaires maximales qui sont - pour une concentration initiale de saccha- rose 0,1 M: 22 9 de saccharose hydrolysé par heure et par g de rafles. - pour une concentration initiale de saccharose 1 M: 117 9 de saccharose hydrolysé par heure et par g de rafles. En vue d'étudier la transposition à l'échelle industrielle du procédé d'hydrolyse en continu de jus de saccharose, on a réalisé les expériences suivantes Deux réacteurs ont été utilisés - réacteur A: Volume total 100 ml. quantité de rafles: 44,1 g - réacteur B: Volume total 1 litre quantité de rafles: environ 400g. Une préparation commerciale d'invertase (SIGMA Chem. Co.) a été immobilisée sur des rafles de mais dont le dia- mètre moyen était de 0,81 mm. Les résultats obtenus pour 21 247201 5 i les 2 réacteurs successivement préparés sont regroupés dans le tableau N' 18: Activité (a) Rendement de l'immobile (b) I (U) I%I Réacteur A 0,32 3 IRéacteur B 0,84 I 16 I Conditions optimales (c) 1,10 19 TABLEAU No 18 (a) l'activité est exprimée en g de sucres réducteurs libérés par mm et par g de support dans les conditions d'essai. (b) le rendement de l'immobilisation est exprimé comme le rapport de l'activité par mg d'enzyme immobilisée à l'activité par mg d'enzyme libre. (c) les conditions optimales d'immobilisation ont été déterminées pré- cédemment, au niveau d'échantillons de 100 mg de rafles. On notera que le problème de l'extrapolation de l'immobili- sation de l'invertase de l'échelle d'échantillons de sup- ports de 100 mg à l'échelle de quantité de rafles allant jusqu'à 1 kg. a étérésolu puisque les résultats obtenus pour le réacteur B sont voisins de ceux obtenus dans les condi- tions optimales. Le tableau No 19 regroupe les résultats concernant la pro- duction de glucose et fructose (exprimés en g de sucres réducteurs produit par heure et par g de rafles). La productivité maximale a été déterminée respectivement 1 0 22 2472015 pour un taux de conversion de 90 % et de 100 % du saccharose initial. Productivité maximale (g/h x g de support) 1 i Volume I Concentration Temprature 90 % de à 100 % de i r saccharose conversion conversion r6acteurI achrs ! - - |i 1 M, (342g/1) 40 3,55 2,32 l. t. 2,90 2,10 0,1 1 2 M 50 4,10 2,40 (684 g/l) 5,30 3,30 5,00 2,50 1 M 40 9,65 5,25 6,50 4,90 1 1l 2 M 50 11,00 6,50 7,90 6,50 Solution 70 50 5,40 1,90 BRIX (Akg/l) TABLEAU N 19 L'extrapolation des résultats du réacteur de 100 ml à celui de 1 litre est sensiblement linéaire, les productivités ma- ximales étant dans le même rapport que les activités enzyma- tiques par g de support (0,32 U et 0,84 U respectivement). 23 2472015:; L'invertase immobilisée s'avère extrêmement efficace puis- que à partir des résultats obtenus avec le réacteur de 1 litre pour une solution à 68,4 % de saccharose, on obtient, à 5O'C, une productivité de 11 g de sucres réducteurs par jour pour le réacteur de 1 litre de volume (le taux de con- version étant de 90 %). La stabilité du catalyseur est très bonne car aucune dimi- nution notable d'activité n'a pu être notée après 20 jours de fonctionnement continu (avec séjour à 400C, 50'C, 550C, et 60%C) pour le réacteur de 1 litre. Le traitement d'un sirop de refonte de sucre pur ou de sirop industriel provenant de la betterave ou de la canne à sucre, titrant environ 70 Brix à une température comprise entre et 600C, s'est avéré positif. Toutefois la productivité maximale est alors 2 fois plus fai- ble que pour une solution à environ 70 % de saccharose. Il est néanmoins possible d'envisager l'hydrolyse continue de solutions aussi concentrées de saccharose, moyennant un préchauffage du sirop destiné à en abaisser la viscosité. Il est important de souligner que les dérivés enzymatiques obtenus selon l'invention permettent de traiter en continu des jus très concentrés de saccharose sans pour autant voir leur activité diminuer. On comprend aisément l'avantage-considérable que l'on en tire sur le plan industriel; volume réduit des installa- tions, économies d'énergie, durée de vie du support enzy- matique. 24 2472015 1 REVENDICATIONS 1 - Procédé d'obtention de dérivés enzymatiques dans les- quels l'enzyme est fixée par une liaison covalente sur un support insoluble dans l'eau, caractérisé en ce qu'il comporte les étapes suivantes: a) lavage à l'eau d'un support contenant essen- tiellement de la cellulose et de la lignine. b) oxydation ménagée de la fraction osidique du support. c) condensation d'une diamine sur les groupes aldéhydiques du support oxydé. d) stabilisation de la liaison amine-support par réduction. e) activation des groupes aminés par un dialdéhyde. f) couplage de l'enzyme sur le support activé. 2 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'oxydant est le périodate de sodium, la diamine, l'éthylènediamine, le réducteur le cyanoborohydrure de sodium, le dialdéhyde le glutaraldéhyde. 3 - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'enzyme est l'invertase. 4 - Procédé selon les revendications 2 et 3, caractérisé 2 5 2472015 3 en ce que: a) le support est lavé à l'eau. b) l'oxydation est réalisée en milieu aqueux par du périodate de sodium en concentration 0,2 M pendant 30 heures. c) l'amination est conduite en milieu méthanol avec de l'éthylénediamine 3 M pendant 72 heures. d) la réduction est faite à pH 6,5 en milieu tampon phosphate pendant 2 heures à l'aide de cyanobo- rohydrure dont la concentration est de 10gl-1. e) l'activation des groupes aminés est réalisée à l'aide de glutaraldéhyde à une concentration de 1,25 % en milieu tampon pyrophosphate 0,05 M pendant 5 heures. f) on met le support activé en contact avec une solution d'invertase à 2 gl -1 dans un tampon acétate 0,1 M pendant 30 heures. Les étapes a), b), c), d), e), étant conduites à 25 C et l'étape f) à 4 C. - Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'enzyme est la lévane saccharase, la lactase ou la dextrane saccharase. 6 - Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le support contenant essentiel- lement de la cellulose et de la lignine est constitué 26 2472015 par la partie des rafles de mais dont la teneur en lignine est supérieure à 25 %. 7 - Dérivé enzymatique dont l'enzyme est fixée de façon covalente sur un support insoluble dans l'eau, carac- térisé en ce que le support contient essentiellement de la cellulose et de la lignine. 8 - Dérivé enzymatique selon la revendication 7, caracté- risé en ce que le support est constitué par la partie des rafles de mais dont la teneur en lignine est supérieure à 25 %. 9 - Dérivé enzymatique selon la revendication 8, caracté- risé en ce que les rafles de mais sont sous la forme de particules pseudosphériques de diamètres compris entre 170 et 280 microns, de densité apparente à -1 -1 l'état sec de 0,4 Kg.l, à l'état humide de 1,3 Kg.1 qui présentent une surface spécifique de 1 m2g 1 et qui comportent des pores ayant une dimension d'environ o 3000 A. - Dérivé enzymatique selon les revendications 8 et 9, caractérisé en ce que l'enzyme est l'invertase. 11 - Dérivé enzymatique selon les revendications 8 et 9, caractérisé en ce que l'enzyme est la lévane saccha- rase, la lactase ou la dextrane saccharase. 12 - Procédé de traitement de jus sucré, caractérisé en ce que l'on fait passer le jus sur un lit de particules 27 2472015 contenant essentiellement de la lignine et de la cel- lulose sur lesquelles est fixée de façon covalente une enzyme. 13 - Procédé de traitement de jus sucré selon la revendi- cation 12, caractérisé en ce que les particules sont constituées de rafles de mais sur lesquelles est fixée de façon covalente une enzyme, et en ce que leur teneur en lignine est supérieure à 25 %. 14 - Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que le jus sucré contient essentiellement du saccha- rose. - Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'enzyme est l'invertase. 16 - Procédé selon les revendications 13 à 15, caractérisé en ce que le jus sucré titre environ 70 Brix. 17 - Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que la température du jus sucré est maintenue entre et 60'C.