Determination of viral load and integration status of HPV 16 in normal and LSIL exfoliated cervical cells

L’intégration du génome du  virus papilloma humain (VPH)  a été  reconnu jusqu’`a récemment comme étant un événnement fréquent mais pourtant tardif dans la progression de la maladie du col de l’utérus.  La perspective temporelle vient, pourtant, d’être mise au défi par la détection de formes intégrées de VPH dans les tissus normaux et dans  les lésions prénéoplasiques.   Notre objectif était de déterminer la charge virale de VPH-16 et son état physique dans une série de  220 échantillons provenant de cols uterins normaux et avec des lésions de bas-grade.  La technique quantitative de PCR en temps réel, méthode Taqman, nous a permis de quantifier le nombre de copies des gènes E6, E2, et de la B-globine, permettant ainsi l’évaluation de la charge virale et le ratio de E6/E2 pour chaque spécimen. Le ratio E6/E2 de 1.2 ou plus était suggestif d’intégration. Par la suite, le site d’intégration du VPH dans le génome humain a été déterminé par la téchnique de  RS-PCR.   La charge virale moyenne était de 57.5±324.6 copies d'ADN par cellule et le ratio E6/E2 a évalué neuf échantillons avec des formes d’HPV intégrées.  Ces intégrants ont été amplifiés par RS-PCR, suivi de séquençage, et l’homologie des amplicons a été déterminée par le programme BLAST de NCBI  afin d’identifier les jonctions virales-humaines. On a réussi `a identifier les jonctions humaines-virales pour le contrôle positif, c'est-à-dire les cellules SiHa, pourtant nous n’avons pas detecté d’intégration par la technique de RS-PCR dans les échantillons de cellules cervicales exfoliées provenant de tissus normaux et de lésions de bas-grade.  Le VPH-16 est rarement intégré dans les spécimens de jeunes patientes. Integration of human papillomavirus (HPV) has, until recently, been a frequent but late event in cervical carcinogenesis.  The temporal view has, however, been challenged lately as integrated forms of HPV have been detected even in normal and preneoplastic lesions.    Our objective was to describe HPV 16 load and physical state in a series of 220 normal and low grade cervical samples.  We used quantitative real-time PCR, Taqman method, targeting E6, E2 and B-globin to calculate the HPV 16 load and the E6/E2 ratio in each sample.  An E6/E2 ratio of 1.2 was used as a surrogate marker of integration.  The site of integration was determined by restriction site PCR.  Results show that the average viral load was 57.5±324.6 copies of DNA per cell, while E6/E2 ratio identified 9 samples with integrants.  These integrants underwent amplification by restriction site PCR, followed by sequencing and nucleotide blast to identify the human-viral junctions.  In conclusion, although it was possible to identify viral-host junctions with the integration positive control, that is, the SiHa cell line, the exfoliated cells of normal and low grade cervical lesions were negative for integration site by RS-PCR.  HPV-16 is seldom integrated in specimens from young patients.

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