Estudio de la viabilidad de la incorporación de bacterias probióticas micro encapsuladas en helados
Autor: Caicedo Cipagauta, Yanina Maricel
Asesor: Holguín Hernández, Martha Stella (Thesis advisor)
Fecha: 2010
Programa: Bogotá - Medicina - Especialidad en Anestesiología y Reanimación
Facultad: Facultad de Medicina

Resumen: Se evaluó la viabilidad durante seis semanas de almacenamiento de cepas de Lactobacillus acidophilus encapsuladas en alginato de calcio e inoculadas en helado de crema. La inoculación se llevó a cabo en dos etapas del proceso de elaboración de helado (antes de la maduración y después de la maduración de la mezcla de helado). El número de células viables de Lactobacillus acidophilus incapsuladas e inoculadas en el helado en el día cero fue de 1x107 ufc/ml para cada ensayo y después de seis semanas de almacenamiento a -11ºC, el número de células viables disminuyó a 9x106 ufc/ml para el ensayo antes de la maduración y 4x106 ufc/ml para el ensayo después de la maduración. Los resultados indican que la inoculación de las bacterias en el punto de proceso antes de la maduración de la mezcla fue la que mejor resultados arrojó para la supervivencia de las bacterias probióticas. / Abstract. Viability was assessed during six weeks of storage of Lactobacillus acidophilus encapsulated in calcium alginate and inoculated into ice cream. The inoculation was carried out in two stages in the process of making ice cream (before maturation and after ripening of the ice cream mixture). The number of viable cells of Lactobacillus acidophilus encapsulated in ice and inoculated on day zero was 1x107 cfu / ml for each test and after six weeks of storage at -11ºC, the number of viable cells decreased to 9x106 cfu / ml for the test before maturation and 4x106 cfu / ml for the test after maturation. The results indicate that inoculation of bacteria at the point of the maturing process before the mixture showed the best results showed the survival of probiotic bacteria.

ESTUDIO DE LA VIABILIDAD DE LA INCORPORACIÓN DE BACTERIAS
PROBIÓTICAS MICRO ENCAPSULADAS EN HELADOS
YANINA MARICEL CAICEDO CIPAGAUTA
Ingeniera Química
UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA
PROGRAMA INTERFACULTADES
ESPECIALIZACIÓN EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA DE ALIMENTOS
BOGOTÁ
2010ESTUDIO DE LA VIABILIDAD DE LA INCORPORACIÓN DE BACTERIAS
PROBIÓTICAS MICRO ENCAPSULADAS EN HELADOS
YANINA MARICEL CAICEDO CIPAGAUTA
Código: 107372
Trabajo final presentado para optar al título de Especialista en Ciencia y
Tecnología de Alimentos
Director
MARTHA STELLA HOLGUÍN HERNÁNDEZ
MSc. Microbiología
UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA
PROGRAMA INTERFACULTADES
ESPECIALIZACIÓN EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA DE ALIMENTOS
BOGOTÁ
2010
2TABLA DE CONTENIDO
1. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................... 5
2. OBJETIVOS .................................................................................................................. 7
1.1. OBJETIVO GENERAL ............................................................................................... 7
1.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS...................................................................................... 7
2. MARCO REFERENCIAL ............................................................................................... 8
2.1. ORGANISMOS PROBIÓTICOS ................................................................................ 8
2.1.1. Mecanismos de acción de los probióticos ........................................................ 10
2.1.2. Los Lactobacillus ............................................................................................. 12
2.2. HELADOS ................................................................................................................. 14
2.3. MICROENCAPSULACIÓN ...................................................................................... 15
2.3.1. Técnica de extrusión o goteo de solución de microorganismos ....................... 16
2.3.2. Técnica de emulsión ........................................................................................ 16
2.3.3. Materiales de encapsulación ............................................................................ 17
3. JUSTIFICACIÓN ......................................................................................................... 19
4. METODOLOGÍA .......................................................................................................... 21
4.1. UBICACIÓN .............................................................................................................. 21
4.2. MATERIAS PRIMAS ................................................................................................ 21
4.2.1. Para microencapsulación ................................................................................. 21
4.2.2. Activación y recuento del microorganismo ....................................................... 22
4.2.3. Elaboración del helado .................................................................................... 22
4.3. MÉTODOS ................................................................................................................ 23
4.3.1. Diseño Experimental ........................................................................................ 23
4.4. ENSAYOS PRELIMINARES .................................................................................... 24
4.4.1. Técnica de encapsulado .................................................................................. 25
4.4.2. Activación del cultivo liofilizado ........................................................................ 26
4.4.3. Cantidad de encapsulados en el helado .......................................................... 26
4.5. ELABORACIÓN DEL PRODUCTO FINAL ............................................................. 26
4.6. MÉTODOS DE EVALUACIÓN FÍSICO-QUÍMICOS Y SENSORIALES ............... 28
4.6.1. Caracterización del encapsulado ..................................................................... 28
4.6.1.1. Peso unitario del encapsulado ................................................................ 28
4.6.1.2. Diámetro unitario de los encapsulados ................................................... 29
4.6.1.3. Densidad del encapsulado ...................................................................... 29
4.6.1.4. Distribución celular .................................................................................. 29
4.6.1.5. Caracterización de la materia prima ........................................................ 30
4.6.2. Caracterización del producto final .................................................................... 30
4.6.2.1. Sobreaumento (Overrun) ........................................................................ 30
4.6.2.2. Distribución de perlas en el helado ......................................................... 31
4.6.3. Seguimiento en línea ....................................................................................... 31
4.6.3.1. Análisis microbiológicos .......................................................................... 32
4.6.4. Evaluación sensorial ........................................................................................ 32
5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................................................... 34
35.1. ENSAYOS PRELIMINARES .................................................................................... 34
5.1.1. TÉCNICA DE ENCAPSULADO ................................................................................. 34
5.1.2. ACTIVACIÓN DEL CULTIVO LIOFILIZADO ................................................................ 35
5.1.2.1. AGUA POTABLE ..................................................................................................... 35
5.1.2.2. BEBIDA DE SOJA ................................................................................................... 36
5.1.2.3. CALDO M.R.S. Y CALDO B.H.I. ............................................................................ 38
5.1.3. CANTIDAD DE ENCAPSULADOS EN EL HELADO ..................................................... 38
5.2. MÉTODOS DE EVALUACIÓN FÍSICO-QUÍMICOS Y SENSORIALES ............... 39
5.2.1. Caracterización del encapsulado ..................................................................... 39
5.2.1.1. Distribución celular .................................................................................. 40
5.2.2. Caracterización de la materia prima ................................................................. 41
5.2.3. Caracterización del producto final .................................................................... 42
5.2.3.1. Sobre aumento (Overrun) ....................................................................... 43
5.2.3.2. Distribución de perlas en el helado ......................................................... 44
5.2.4. Seguimiento en línea ....................................................................................... 44
5.2.4.1. Tiempo de estudio 0-1, etapa de maduración de la mezcla de helado. ... 46
5.2.4.2. Tiempo de estudio 1-2, etapa de batido y endurecido de la mezcla de
helado. 47
5.2.4.3. Tiempo de estudio 2-3, segunda semana de almacenamiento. ............... 48
5.2.4.4. Tiempo de estudio 3-7, almacenamiento. ................................................ 48
5.2.5. Análisis microbiológicos ................................................................................... 48
5.2.5.1. Tiempo de estudio 0-1, etapa de maduración de la mezcla de helado. ... 49
5.2.5.2. Tiempo de estudio 1-2, etapa de batido y endurecido de la mezcla de
helado. 50
5.2.5.3. Tiempo de estudio 2-3, segunda semana de almacenamiento. ............... 50
5.2.5.4. Tiempo de estudio 3-7, almacenamiento. ................................................ 52
5.2.6. Evaluación sensorial ........................................................................................ 52
6. CONCLUSIONES ............................................................................................ 54
7. RECOMENDACIONES .................................................................................... 55
41. INTRODUCCIÓN
Los recientes estilos de vida son los principales responsables de las
enfermedades del ser humano, pues estos han obligado al individuo a adoptar
costumbres sedentarias, a aumentar el consumo de carbohidratos, grasas y
alimentos escasos en fibra.
El desarrollo de productos con varias ventajas nutricionales constituyen una
oportunidad real de contribuir al mejoramiento de la dieta, afectando positivamente
la salud y el bienestar del individuo; de los nuevos productos se destacan aquellos
que han sido modificados o les han sido incorporados nuevos elementos para
ofrecer beneficios superiores a los ofrecidos por los alimentos tradicionales.
Algunos microorganismos no sólo contribuyen al desarrollo de las características
organolépticas, fisicoquímicas y reológicas de los alimentos, sino que generan
beneficios a la salud del consumidor, es por ello que la industria de alimentos ha
enfocado algunas investigaciones a la incorporación de estos microorganismos en
los alimentos. Estos microorganismos son los denominados Probióticos, los cuales
son “microorganismos vivos que, al ser ingeridos en cantidades adecuadas, le
confieren beneficios a la salud del anfitrión” (FAO/WHO 2002), entre los
probióticos más estudiados se destacan las cepas Bifidobacterium longun,
Bifidobacterium lactis, Bifidobacterium infantis, Lactobacillus casei, Lactobacillus
acidophilus, Lactobacillus reuteri, Lactobacillus plantarum y Lactobacillus
delbruecki ssp; y Bulgaricus de los géneros Lactobacillus y Bifidobacterium.
Diferentes alimentos han sido vehículos para la incorporación de los probióticos,
entre los más estudiados se destacan las leches fermentadas, y hoy por hoy, las
investigaciones se sesgan a diferentes productos de la industria de alimentos,
como son los quesos, las carnes, los vegetales, frutas, etc.
5Aprovechando los estudios de los probióticos en lácteos de los últimos años, se
propone como producto vehículo el helado de crema con las especificaciones de
la normatividad colombiana.
Algunas investigaciones de incorporación de probióticos en helados realizadas en
Italia y Chile manifiestan que los microorganismos sobreviven a las condiciones
del proceso, pero la población microbiana desciende significativamente durante la
etapa de almacenamiento del producto.
Es por ello que para el desarrollo de este trabajo se propone proteger físicamente
al microorganismo con alginato de sodio utilizando técnicas de encapsulación
62. OBJETIVOS
1.1. OBJETIVO GENERAL
Evaluar la influencia de la encapsulación en la viabilidad del Lactobacillus
acidophilus en helado.
1.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS
• Implementar la encapsulación de cultivos probióticos en la elaboración de
helado.
• Evaluar el comportamiento del probiótico durante el periodo de
almacenamiento.
• Analizar las características sensoriales del producto final.
72. MARCO REFERENCIAL
2.1. ORGANISMOS PROBIÓTICOS
El intestino es el elemento más relevante para la actividad del sistema inmune y
los mecanismos de protección inespecífica, ya que es en él, precisamente, donde
son más activos los diferentes microorganismos pertenecientes a la flora
gastrointestinal.
Cuando nacemos, el tracto gastrointestinal es estéril pero poco después se instala
de forma permanente un complejo conjunto de aproximadamente 400 tipos
diferentes de microorganismos que trabajan en armonía para el mantenimiento de
la salud (entre estos microorganismos se encuentran los denominados
probióticos), pero factores como el estrés, los malos hábitos alimentarios, el abuso
de antibióticos y la edad, son los causantes de la disminución de la población de
estos microorganismos en el intestino.
Teniendo en cuenta que estos microorganismos benefician la salud del huésped,
es necesario mantener la población de los probióticos alta (>1x106ufc; FAO/WHO,
2001) en el intestino, esto se puede lograr mediante la introducción en nuestra
dieta de alimentos probióticos y prebióticos (para estimular el crecimiento y la
permanencia de los mismos).
En la actualidad se conocen varios beneficios de los probióticos y se considera
una herramienta para la prolongación de la salud humana.
Para que un microorganismo sea considerado como probiótico debe cumplir con
unas características mínimas, (Ivonne-Figueroa, co. 2006).por ejemplo:
8• Ser habitante normal del tracto gastrointestinal.
• No ser patógeno, ni tóxico.
• Tener un tiempo corto de reproducción.
• Ser viable en los vehículos o formulaciones de administración y resistentes
a los procesos de fabricación.
• Ser estables al contacto con la bilis, ácido, enzimas y oxígeno.
• Tener habilidad para adherirse a la mucosa intestinal.
• Mostrar potencial de colonización en el tracto gastrointestinal humano.
• Producir sustancias antimicrobianas.
• Actuar como modulador de algunas respuestas inmunitarias y/o tener
capacidad de influir en algunos procesos metabólicos. (Cañedo, Arana
Celina, 2008)
La relación dosis-efecto de los probióticos tanto terapéuticas como preventivas,
son muy variables y aún muy estudiadas. Además, el número de microorganismos
que alcanzan a colonizar el intestino depende de diversos factores (como la
formulación del probiótico, la coadministración con algunos alimentos o
determinadas características del individuo (edad, estado de salud o enfermedad,
pH gástrico, motilidad intestinal, microflora previa, etc)). La dosis mínima necesaria
para conseguir un efecto terapéutico se estima en 1x106-1x109 unidades
formadoras de colonias (ufc) (Lee & Salminen, 1995).
Los microorganismos probióticos han sido clasificados de manera amplia en
Lactobacillus y Bifidobacterium y algunas bacterias con características probióticas
semejantes.
Algunos microorganismos considerados como probióticos se exponen en la tabla
1.
9Tabla 1. Microorganismos considerados como probióticos.
Cocos Gram
Lactobacilos Bifidobacterias Levaduras
positivos
Lactococcus lactis
L. acidophilus Streptococcus
L. casei salivarius B. bifidum
L. reuteri Enterococcus B. adolescentis
Saccharomyces
L. brevis faecium B. animalis
boulardii
L. curvatus Streptococcus B. longum
L. fermentum intermedius B. thermophilum
L. plantarum Streptococcus
diacetylactis
Fuente: Montijo y Col., 2008
2.1.1. Mecanismos de acción de los probióticos
Una parte fundamental de la funcionalidad de las bacterias probióticas es
estimular su supervivencia y permanencia prolongada en el tracto gastrointestinal.
Existen varios mecanismos de acción, como los que se presentan en la tabla 2:
10Tabla 2. Ventajas y mecanismo de acción de los probióticos.
VENTAJA MECANISMO DE ACCIÓN REFERENCIA
La intolerancia a la lactosa es un problema que
padece entre el 50 y el 70% de la población
mundial en distinto grado. Este problema es debido
a la ingestión de productos que contienen lactosa
(principalmente leche no fermentada) y los bajos
niveles de galactosidasa intestinal.
Disminución en los La lactosa es una sustancia osmóticamente muy
síntomas de activa y su presencia en la luz intestinal ocasiona la
Shah, N.P., R.N.
intolerancia a la salida de fluidos e iones de la mucosa intestinal al
Fedorak and P.J.
lactosa, reduciendo la exterior hasta alcanzar el equilibrio osmótico,
Jelen. (1992). Food
concentración de la ocasionando una diarrea profusa.
consistency effects
misma en leche
of quarg in lactose
fermentada por La ingestión de probióticos de forma continuada,
malabsortion. Int.
actividad de la lactasa bien liofilizados o como yogur, han permitido
Dairy J. 2:257-269.
bacteriana durante la reducir considerablemente la mala absorción de la
fermentación. lactosa. Este efecto parece deberse al aporte de
galactosidasa exógena proporcionada por
Streptococcus thermofilus y Lactobacillus
bulgaricus del yogur.
El tránsito intestinal se ralentiza permitiendo una
mejor hidrólisis de la lactosa y la posterior
adsorción de sus componentes.
Moore, W.E. and
L.H. Moore. (1995).
Efecto Estos microorganismos son capaces de eliminar la Intestinal floras of
inmunopromotor y mayoría de metabolitos desfavorables y las populations that
propiedades enzimas precarcinogénicas en el colón; por lo tanto have a high risk of
antitumorales. ayudarían a prevenir el cáncer de colón. colon cancer. Appl.
Environ. Microbiol.
61:3202-3207.
Ivonne-Figueroa, co.
(2006). El Beneficio
Las bacterias probióticas pueden incrementar la
de los probióticos.
resistencia contra los patógenos intestinales
Departamento de
Mejora la resistencia mediante mecanismos antimicrobianos. Estos
Biotecnología,
contra los incluyen la colonización competitiva, la producción
Universidad
microorganismos de ácidos orgánicos, como los ácidos láctico y
Autónoma
patógenos acético, bacteriocinas y otros metabolitos primarios
Metropolitana,
como el peróxido de hidrógeno y el dióxido de
Iztapalapa. Alfa
carbono
Editores Técnicos.
11McFarland, L.V.
(1999).
Biotherepeutic
agents for
Clostridium difficile-
La microbiota intestinal ejerce un papel importante
Mejora el efecto associated disease,
en el efecto barrera de la mucosa intestinal frente a
protector ante p. 159-193. In G. W.
infecciones. Sus mecanismos de acción son muy
infecciones y Elmer, L.
variados: modifican los niveles de adhesión celular,
estimulación del McFarland, and C
producen sustancias antimicrobianas, estimulan los
sistema inmune. Surawicz (ed.),
órganos linfoides asociados al tracto intestinal.
Biotherapeutic
agents and
infectious diseases.
Humana Press Inc.,
Totowa, N.J.
El mecanismo podría ser debido a que los ácidos
FAO y OMS. (2006).
grasos de cadena corta pueden alterar la síntesis
Probióticos en los
de colesterol. Además, las bacterias pueden
alimentos.
conjugar ácidos grasos biliares y facilitar su
Propiedades
Disminuye la eliminación a través de las heces. La disminución
saludables y
concentración de enterohepática de ácidos biliares hace
nutricionales y
colesterol en sangre. imprescindible que el hígado retire colesterol de la
directrices para la
circulación para poder sintetizar más sales biliares.
evaluación. Estudio
Sin embargo, los estudios que han demostrado
FAO alimentación y
estos efectos de disminución del colesterol han
nutrición 85: 6-11.
utilizado dosis de yogur «irreales» (> 2 litros al día).
FAO y OMS. (2006).
Probióticos en los
Los probióticos producen ácidos que estimulan el
alimentos.
peristaltismo intestinal y reducen el tiempo de
Propiedades
tránsito de las heces. Así se consigue el alivio del
Mejoran el tránsito saludables y
estreñimiento, del síndrome del colón irritable y de
intestinal. nutricionales y
las diarreas (incluso las producidas por
directrices para la
antibióticos), entre otras dolencias
evaluación. Estudio
gastrointestinales.
FAO alimentación y
nutrición 85: 6-11.
Fuente: La autora, 2010.
2.1.2. Los Lactobacillus
Son bacterias acido lácteas y se ubican en la familia Lactobacillaceae, son
bacterias gram-positivas, son microorganismos anaerobios y estrictamente
fermentativos. Los carbohidratos les resultan indispensables para su buen
12desarrollo, pues los fermentan para dar lugar al ácido láctico (a veces con ácidos
volátiles), alcohol y dióxido de carbono como subproductos.
Estos microorganismos no desarrollan olores típicos al crecer en medios comunes,
pero contribuyen a modificar el sabor de alimentos fermentados, produciendo
compuestos volátiles como diacetilo y sus derivados hasta sulfuro de hidrógeno
(H S) y aminas en el queso.
2
Los Lactobacillus crecen bien en medios ligeramente ácidos, con pH inicial de 6,4
– 4,5 y con un óptimo de desarrollo entre 5,5 y 6,2. Su crecimiento cesa cuando el
pH alcanza valores desde 3,6 hasta 4,0 en dependencia de especies y cepas, y
disminuye notablemente en medios neutros o ligeramente alcalinos.
Los Lactobacillus son capaces de disminuir el pH del sustrato donde se
encuentran por debajo del valor 4,0 mediante la formación de ácido láctico. De
esta forma evitan, o al menos disminuyen considerablemente, el crecimiento de
casi todos los otros microorganismos competidores, exceptuando el de otras
bacterias lácticas y el de las levaduras. (Luz Samaniego y Maryla Sosa, 2000).
La mayoría de las cepas de Lactobacillus son principalmente aerotolerantes; su
crecimiento óptimo se alcanza bajo condiciones microaerofílicas o anaeróbicas y
se conoce que un incremento en la concentración de CO (de aproximadamente
2
5% o hasta el 10%; Luz Samaniego y Maryla Sosa, 2000) puede estimular el
crecimiento, sobre todo en el caso del crecimiento superficial sobre medios
sólidos.
La mayor parte de los Lactobacillus son mesófilos (30-40ºC), con un límite superior
de 40ºC. Aunque su rango de temperaturas para el crecimiento oscila entre 2ºC y
53ºC, algunos crecen por debajo de 15ºC y hay cepas que crecen por debajo de
135ºC. Otros crecen a temperaturas bajas, cercanas al punto de congelación (por
ejemplo, los que habitan en carnes y pescados congelados).
Los miembros de este género transforman la glucosa y las hexosas aldehídicas
similares en ácido láctico por homofermentación o bien, en otros productos finales
adicionales como ácido acético, etanol, dióxido de carbono, ácido fórmico y ácido
succínico por heterofermentación.
Los Lactobacillus son sensibles ante la mayoría de los antibióticos activos contra
las bacterias Gram positivas.
La resistencia a la bilis es también una propiedad importante a tener en cuenta
para la colonización del intestino por los Lactobacillus y actualmente se
encuentran estudios principalmente en el caso de Lactobacillus acidophilus, como
los realizados por V. Chandramouli, K. Kailasapathy, P. Peiris y M. Jones. (2004).
2.2. HELADOS
Con la denominación genérica de helados, se entienden los productos obtenidos
por mezclas líquidas a bajas temperaturas constituidas fundamentalmente, por
leche, derivados lácteos, agua y otros ingredientes, con el agregado de los
aditivos autorizados. El producto final presentará una textura y grado de
plasticidad característicos que deben mantenerse hasta el momento de ser
consumidos. (Di Bartolo, Eduardo. 2005)
De acuerdo a las características y/o los ingredientes empleados en la elaboración
del helado, este se puede clasificar en: (Di Bartolo, Eduardo. 2005)
14• Helados de agua o sorbetes: esta denominación corresponde a los
productos en los que el componente básico es el agua. Deben responder a
exigencias como, extracto seco, min: 20,0% p/p, materia grasa de leche,
máx: 1,5 % p/p.
• Helados de leche: corresponde a los productos que han sido elaborados a
base de leche. Deben responder a exigencias como, sólidos no grasos de
leche, min: 6,0 % p/p. materia grasa de leche, min: 1,5 % p/p.
• Helados de crema: esta denominación corresponde a los productos que
han sido elaborados a base de leche y han sido adicionados de crema de
leche y/o mantequilla o grasa hidrogenada. Deben responder a exigencias
como, sólidos no grasos de leche, min: 6,0 % p/p. Materia grasa de leche,
min: 6,0 % p/p.
2.3. MICROENCAPSULACIÓN
La microencapsulación es el proceso en el que los microorganismos son
introducidos en una matriz o sistema de pared, con el objetivo de impedir su
pérdida y protegerlos de la reacción con otros compuestos presentes en el
alimento.
Las técnicas de encapsulación aplicadas a probióticos para uso en productos
lácteos o en la producción de biomasa, se pueden clasificar en dos grupos
dependiendo del método utilizado para formar las perlas.
152.3.1. Técnica de extrusión o goteo de solución de microorganismos
Es la técnica más antigua y común para elaborar cápsulas a base de
hidrocoloides. Esta consiste en preparar una solución hidrocoloidal, adicionar los
microorganismos a esta y hacerla pasar por una aguja de jeringa (a nivel
laboratorio) o tubos de extrusión (para planta piloto), para formar gotas, estas se
dejaran caer en caída libre a una solución endurecedora (como el cloruro de
calcio). El tamaño y la forma de la perla dependen del diámetro de la boquilla y la
distancia de adición. Este método es el más popular debido a su facilidad,
simplicidad, bajo costo y condiciones discretas de formulación.
El material de soporte usado para la técnica de extrusión es el alginato, debido a
las propiedades funcionales que este posee, como la fortaleza en su composición
que contribuye a la formación del gel.
2.3.2. Técnica de emulsión
En esta técnica, un pequeño volumen de suspensión hidrocoloidal con
microorganismos (fase discontinua) se adiciona a un gran volumen de aceite
vegetal (fase continua). La mezcla se homogeniza para formar una emulsión de
agua en aceite utilizando un emulsificante. Una vez la emulsión se forma, esta se
puede insolubilizar para formar cápsulas de gel en la fase aceitosa. El tamaño de
la perla es controlado por la velocidad de agitación. Esta técnica ha sido usada
para encapsular bacterias acido lácticas, como se reportó en el trabajo de A.
Homayouni, co. (2008).
16El aceite vegetal, es usado en esta técnica como fase continua. En algunos casos
se adicionan emulsificantes para mejorar la emulsión, porque el emulsificante
disminuye la tensión superficial y se refleja en el tamaño de las esferas. (Wunwisa
Krasaekoopt, Bhesh Bhandari, Hilton Deeth. 2003)
2.3.3. Materiales de encapsulación
Existe una amplia variedad de materiales para cobertura que pueden ser usados
para encapsular ingredientes alimentarios, donde se incluyen aceites
hidrogenados, ceras, maltodextrinas, almidones y gomas que proporcionan una
encapsulación uniforme. En general existen tres categorías: grasas, proteínas y
polímeros.
• Grasas
La cera de carnauba, el alcohol estearílico y el ácido esteárico son grasas que
funden a una determinada temperatura y son erosionables por la acción de las
lipasas que existen en la cavidad gástrica.
• Proteínas
La gelatina fue el primer material utilizado en la microencapsulación, y es, en la
actualidad, un material con un importante potencial. La albúmina y el colágeno
también se han empleado en la obtención de micropartículas.
• Polímeros
Debido a su gran versatilidad, la familia de los polímeros es la más utilizada en
la microencapsulación de sustancias. Dentro de ella están los polímeros
naturales, los semisintéticos y los sintéticos. Los polímeros naturales
principalmente son de naturaleza polisacaridica, de origen animal y vegetal; se
17destacan el alginato, la dextrana, la goma arábiga y la quitosana. (Saez Vivian,
Hernández José Ramón, Peniche Carlos. 2007)
183. JUSTIFICACIÓN
Los microorganismos probióticos se requieren en los alimentos para aportar a la
dieta humana, por sus grandes beneficios, es por eso que hoy por hoy se
encuentran varios estudios de la incorporación de estos en los alimentos.
Teniendo en cuenta las experiencias que otros investigadores han desarrollado
durante años en la inclusión de esta forma de vida en productos lácteos, surge la
necesidad de incorporar los probióticos en helados, pues es un alimento que no
tiene un mercado sesgado, y puede ser consumido por niños, adolescentes,
adultos y ancianos; el consumo de este alimento no es muy alto en la población
colombiana (1 kg a 2,3 kg / persona / anual; Revista Dinero. 2006), pero, se ha
encontrado que este es un buen vehículo para incluir los probióticos en la dieta.
Además, el helado tiene un pH cercano a siete lo que lo hace un poseedor de un
ambiente adecuado para el microorganismo.
Se eligió como microorganismo probiótico el género de Lactobacillus
acidophilus, debido a que es la familia más estudiada, y se encuentra información
en cuanto a las variables de crecimiento, es resistente a bajas temperaturas y en
pequeña proporción al estrés generado mecánicamente.
Se ha determinado que los microorganismos probióticos tienen baja viabilidad en
postres lácteos congelados, debido a la etapa de congelación y a la intoxicación
por oxígeno (A. Homayouni, co, 2008), ya que para este tipo de productos se
necesita la incorporación de aire para obtener la masa deseada en el helado, sin
embargo el exceso de oxígeno afecta el crecimiento de los microorganismos
microaerofílicos y los anaeróbicos.
19La encapsulación de las células bacterianas, se ha visto como una de las
herramientas de protección contra el ambiente hostil al que puede ser sometidos
los probióticos durante la elaboración, almacenamiento y consumo del producto
lácteo. (K. Kailasapathy; K. Sultana. 2003).
204. METODOLOGÍA
4.1. UBICACIÓN
La experimentación se llevó a cabo en la planta de lácteos y en los laboratorios de
microbiología y análisis fisicoquímico del Instituto de Ciencia y Tecnología de
Alimentos (ICTA) de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá.
4.2. MATERIAS PRIMAS
A continuación se presentan las diferentes materias primas utilizadas según la
fase del proceso, Adjuntando las fichas técnicas de todos los materiales en el
anexo 1.
4.2.1. Para microencapsulación
En la encapsulación de los probióticos se utilizaron las siguientes materias primas:
• Alginato de Sodio
Para llevar a cabo la encapsulación de las bacterias probióticas se utilizó
Alginato de sodio grado USP, distribuido por Disproalquímicos.
21• Cloruro de calcio
Se utilizó cloruro de calcio calidad USP distribuido por el Centro Agro
Lechero.
4.2.2. Activación y recuento del microorganismo
• Cultivo láctico
Se empleó un cultivo láctico mesófilo, liofilizado, de fermentación lenta,
serie LYO 40, marca Danisco Cultor, conformado por Lactobacillus
acidophilus.
• Caldo BHI (Brain Heart Infusión)
Medio nutritivo de activación de los microorganismos probióticos, referencia
CM 0225, marca OXOID.
• Agar M.R.S. (de Man, rogosa, sharpe)
Marca OXOID y referencia CM0361.
4.2.3. Elaboración del helado
Se utilizaron las siguientes materias primas:
• Leche entera de vaca
Proveniente de la facultad de veterinaria de la Universidad Nacional de
Colombia, sede Bogotá, con un contenido de grasa del 5,1% p/p.
22• Grasa animal
Se utilizó crema de leche con un contenido de grasa del 32% p/p.
• Estabilizante/emulsificante
Se empleó un producto comercial que combina estabilizante y emulsificante
de referencia SE448 marca CREMODAN.
4.3. MÉTODOS
Para el desarrollo experimental se determinó inicialmente el método ha utilizar, por
medio de ensayos preliminares; a continuación se escogió el alginato de sodio
como material de soporte, debido al ambiente gentil que provee al material
encapsulante, al bajo costo, simplicidad y compatibilidad con los microorganismo.
Se realizaron dos mezclas de helado con diferentes concentraciones de grasa
permitidas por la legislación colombiana.
4.3.1. Diseño Experimental
La experimentación se realizó siguiendo un diseño factorial de 2 x 1
completamente aleatorio (ver tabla 3.), por duplicado, donde el primer factor
corresponde al punto de adición de los probióticos encapsulados en el proceso de
elaboración del helado y el segundo factor se refiere al porcentaje de grasa en el
helado. Se establecieron dos puntos diferentes de adición de los probióticos
encapsulados, los cuales fueron antes de la maduración y después de la
23maduración de la mezcla de helado ya preparada. Se fijó el porcentaje de grasa
en el helado con un valor de 8% p/p.
Tabla 3. Matriz de tratamientos
Contenido de grasa
Forma de adición de los probióticos encapsulados
en el helado
2
1
Antes de la maduración de la mezcla
1
de helado
8% p/p
Después de la maduración de la
2
mezcla de helado
Fuente: La autora, 2010
Además se tuvo en cuenta un ensayo de control negativo, el cual no contenía
probióticos en capsulados.
4.4. ENSAYOS PRELIMINARES
Para lograr el cumplimiento de los objetivos se planearon ensayos preliminares
para determinar la técnica de encapsulación con la cual se lograra un tamaño de
perla a nivel “micro”.
Otro de los ensayos realizados fue la determinación del medio de activación del
cultivo liofilizado y que finalmente correspondería al fluido de suspensión de los
microorganismos para la posterior inmovilización.
Finalmente se ensayó el porcentaje de perlas en el helado.
244.4.1. Técnica de encapsulado
Para determinar la técnica de encapsulación más adecuada, con la cual se
obtuviera un tamaño de perla de dimensiones micro (menores a 1mm de
diámetro), se propusieron dos metodologías (ver figura 1) halladas en
investigaciones previas de otros autores, como Wunwisa Krasaekoopt, 2003. Los
ensayos se realizaron con la técnica de emulsión y la técnica de extrusión o
entrampamiento. Las metodologías seguidas fueron las siguientes:
Figura 1. Metodologías de encapsulamiento
Fuente: Adaptado de Wunwisa Krasaekoopt, 2003.
254.4.2. Activación del cultivo liofilizado
El microorganismo utilizado se obtuvo de una presentación liofilizada para lo que
se necesitó estudiar el medio adecuado de activación que no influyera en la
técnica de encapsulación y no aportara sabores indeseados al producto final.
Los medios de activación fueron: Agua potable, bebida de soja, caldo MRS y caldo
BHI.
La activación del microorganismo se realizó en las condiciones óptimas del
microorganismo, es decir a una temperatura entre 32-37ºC, medio aeróbico, pH
6,4 por un tiempo mínimo de 4h, siguiendo el protocolo recomendado por Danisco.
4.4.3. Cantidad de encapsulados en el helado
Para determinar la cantidad de encapsulados en el helado se basó en la
normatividad colombiana para este tipo de producto lácteo, (NTC 1239:2002), la
cual dice que en la fabricación se permiten los agregados alimenticios destinados
a conferir textura al producto final y que cuando se presente en combinación con
otros ingredientes alimenticios, el helado debe ser el componente principal en un
cantidad mínima del 50% en volumen.
4.5. ELABORACIÓN DEL PRODUCTO FINAL
Ya definidos los parámetros de los ensayos preliminares se realizó el producto
final, helado con probióticos encapsulados. Se elaboró una mezcla de 12kg, que
26se dividió en tres grupos iguales (A, B y C) y se adicionaron los encapsulados en
dos tiempos diferentes para A y B (antes de la maduración y después de la
maduración de la mezcla de helado, respectivamente) y el grupo C correspondió al
control.
En la figura 2 se presenta el diagrama de flujo del desarrollo del trabajo
experimental.
Figura 2. Elaboración de helado con encapsulados de probióticos
Fuente: La autora, 2010
274.6. MÉTODOS DE EVALUACIÓN FÍSICO-QUÍMICOS Y SENSORIALES
Se determinaron propiedades de los encapsulados y del helado final, por medio de
diferentes fases de caracterización.
4.6.1. Caracterización del encapsulado
La determinación de las propiedades básicas de las perlas como son: peso,
diámetro, densidad unitaria del encapsulado y distribución celular se realizaron
teniendo en cuenta criterios estadísticos básicos, como son promedios y
desviaciones estándar.
Para todas las mediciones se descartaron los datos que estuvieron alejados dos
desviaciones estándar del promedio.
4.6.1.1. Peso unitario del encapsulado
Se pesaron tres grupos diferentes de 50 esferas en una balanza analítica, el valor
resultante de cada grupo se dividió por 50 para obtener el peso promedio de cada
esfera; a continuación se tomaron los tres pesos y se promedió finalmente.
284.6.1.2. Diámetro unitario de los encapsulados
Se determinó el diámetro promedio de un encapsulado, empleando para esto un
calibrador o nonio, midiendo el diámetro de 10 perlas escogidas al azar. A
continuación se calculó el volumen unitario, con base en la geometría y el
diámetro del encapsulado.
4.6.1.3. Densidad del encapsulado
La medida de la densidad de los encapsulados se obtuvo tomando un volumen
dado de agua, 70 ml, en una probeta previamente pesada y se adicionó una masa
conocida de perlas, 2,5 g. La diferencia entre el peso y el volumen final e inicial de
agua permitieron el cálculo de la densidad.
4.6.1.4. Distribución celular
Con el objeto de establecer cualitativamente la distribución de las bacterias
probióticas en la perla, las muestras de los encapsulados se analizaron mediante
microscopía electrónica de barrido (SEM) utilizando el método de bajo vacío (~1,3
mbar) en el microscopio electrónico de barrido Quanta 200 FEI, ubicado en el
laboratorio de equipos robustos del centro de equipos Interfacultades, CEIF,
edificio de Geociencias de la Universidad Nacional de Colombia, sede Bogotá. .
294.6.1.5. Caracterización de la materia prima
La caracterización fisicoquímica de las materias primas (leche y crema de leche),
se basó en el análisis de grasa por el método Gerber (AOAC. 989.09.2000), con el
fin de conocer los parámetros necesarios para obtener la formulación del helado.
4.6.2. Caracterización del producto final
Al helado inoculado con los encapsulados se le realizaron los análisis
fisicoquímicos mostrados en la tabla 4.
Tabla 4.Análisis físico-químicos del helado
ANÁLISIS MÉTODO
Humedad Gravimetrico
Potencial de Hidrógeno (pH) Potenciometro (AOAC. 981.12.2005)
Acidez titulable Titulación con NaOH (AOAC. 942.15.2005)
Grasa Gerber (AOAC. 989.09.2000)
4.6.2.1. Sobreaumento (Overrun)
Esta propiedad del helado se determinó con la mezcla control y consistió en pesar
una unidad en volumen de mezcla de helado y luego del proceso de batido pesar
la misma unidad en volumen, el porcentaje de sobreaumento se calculó de la
siguiente forma:
304.6.2.2. Distribución de perlas en el helado
Para determinar el número de perlas finalmente distribuidas en el producto, se
pesó una cantidad inicial de helado, se dejó derretir y se filtraron los encapsulados
procediendo a un lavado y conteo del número de esferas. La diferencia del número
de encapsulados hallados por la masa de helado inicial arrojó un valor de
distribución de estas en el producto final.
4.6.3. Seguimiento en línea
Para los tres tratamientos A, B y C se realizó un seguimiento en línea midiendo la
presencia de ácido láctico por medio de la técnica de acidez titulable (AOAC.
942.15.2005), además se determinó el pH de cada muestra.
La determinación de ácido láctico se realizó por titulación con NaOH en el
laboratorio de fisicoquímica perteneciente al ICTA en la Universidad Nacional de
Colombia.
El pH se determinó utilizando un potenciómetro digital marca ORION modelo
420A, con electrodo de pH ubicado en el laboratorio de microbiología del ICTA.
314.6.3.1. Análisis microbiológicos
Para el análisis en línea también se realizaron conteos microbiológicos de las
bacterias probióticas inoculadas.
Este análisis se llevó a cabo en las etapas críticas en la elaboración del producto,
es decir, se realizó el conteo de bacterias probióticas al final de la etapa de
maduración de la mezcla y al final de la etapa de batido y endurecimiento, luego
de ello se realizaron los conteos microbiológicos al final de cada semana de
almacenamiento.
Las siembras se realizaron por triplicado.
El análisis microbiológico consistió en la siembra en placa y en profundidad de las
muestras. Se realizaron diluciones de las muestras de helado en agua peptonada,
posteriormente se adicionó a cada caja de petri un mililitro de cada dilución,
finalmente se dispensó agar MRS fundido, se homogenizó y se incubó a 32-37ºC
en aerobiosis durante un periodo de 48-72h, al cabo de las cuales se efectuó el
conteo de las colonias formadas.
4.6.4. Evaluación sensorial
Se aplicó una prueba afectiva con el producto que contenía el mayor número de
células viables probióticas después de tres semanas de almacenamiento.
32Se diseñó y utilizó un formato (ver anexo 2) para la prueba donde se manejó una
escala hedónica de tres puntos (me gusta, indiferente y no me gusta), donde se
describieron los cinco atributos del helado estudiados (apariencia, color, aroma,
sabor y textura).
335. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
5.1. ENSAYOS PRELIMINARES
A continuación se presentan los resultados obtenidos de los ensayos preliminares
como fueron: técnica de encapsulado, activación del cultivo liofilizado y cantidad
de encapsulados en el helado.
5.1.1. Técnica de encapsulado
Las técnicas ensayadas fueron la de emulsión y la de extrusión,
La técnica de emulsión presentó resultados desfavorables, sin embargo hubo
formación de perla esférica pequeña, con un tamaño aproximado de 1mm, estás
presentaron aglomeración en el fondo del recipiente colector y no fue posible
separarlas.
En cuanto a la técnica de extrusión, esta fue la más adecuada presentando la
formación de una perla esférica, maciza, fuerte con un tamaño aproximado de 2-
3mm y la reacción fue inmediata, al finalizar la técnica las perlas se encontraban
separadas unas de otras y nadaban en la solución remanente de cloruro de calcio.
Finalmente las perlas se almacenaron, para ello se dividieron en dos grupos, el
primero se filtró con la ayuda de un papel de fibra de vidrio (Schleicher & Schuell
Microscience 595/ papel de filtro Ǿ 110mm, referencia No 10311610) y el segundo
grupo se mantuvo en la solución remanente de cloruro de calcio; estos dos grupos
se almacenaron a 4ºC por 12 horas, al finalizar el tiempo se observó que para el
34primer grupo de perlas presentaba una solución remanente y además las perlas
habían perdido su forma esférica, debido a la deshidratación por frío, la estructura
sufrió daño debido a la rápida formación de cristales de hielo generando la ruptura
del gel y la permeabilidad del liquido de la matriz; para el segundo grupo se
observó una maduración de la perla, es decir, un fortalecimiento de su estructura
ya que al tocarla era firme y al cortarla en dos partes presentaba una estructura
esponjosa.
Por lo tanto la técnica elegida para el desarrollo del proyecto fue la técnica de
extrusión con un almacenamiento en solución de cloruro de calcio remanente por
un tiempo de 12 h.
5.1.2. Activación del cultivo liofilizado
Los resultados hallados para los cuatro medios de activación, fueron los
siguientes:
5.1.2.1. Agua potable
Se determinó la cantidad de microorganismos según la dosis recomendada por el
fabricante, (Danisco) para obtener un recuento de 1x106 ufc/g, luego se adicionó
4,4 mg en 25 ml de agua potable a una temperatura ambiente de 20ºC (± 1), esto
se realizó para crear una suspensión de microorganismos en estado pasivo, es
decir, sólo realizar una dilución de una cantidad conocida de microorganismos sin
activar. Esta suspensión se mezcló con la solución de alginato de sodio a una
relación de 1:1 y se procedió a encapsular según la metodología establecida.
35Al finalizar el tiempo de maduración del encapsulado se observaron pequeñas
acumulaciones blancas alrededor de las perlas traslúcidas, se le realizó una
tinción de gram a la perla y a la sustancia acumulada, los resultados arrojaron que
en la perla se encontraba una cantidad mínima de bacilos (1 en lámina) y en la
masa blanca una cantidad considerable de estos microorganismos (7 en lámina),
lo que indicó que no era adecuado manejar los microorganismos de esta manera
(liofilizados), por que ellos necesitan un tiempo prudente para hidratarse, como se
observó en la evidencia de la masa blanca sobrenadante; posterior al contacto con
el agua, las bacterias probióticas se activaron metabólicamente pero no hallaron
alimento en el medio, comenzando un descenso en la población; por lo cual se
descartó este procedimiento para el manejo del liofilizado.
5.1.2.2. Bebida de Soja
Se tomó 4,4 mg de liofilizado y se inoculó en 25 ml de bebida de soja previamente
esterilizada, con un pH de 6,05, incubando en estufa a una temperatura de 37ºC
por un periodo de 12 h. Finalizado el tiempo de activación, se procedió a
encapsular la bebida con probióticos, pero se encontró que al primer contacto con
el alginato este presentó gelificación, y el pH de la bebida se encontró en 3,5
promedio. La gelificación se presentó debido a que el alginato de sodio a pH
menores de 4 se ve afectado por efectos de despolimerización (ver anexo 1)
El ensayo se repitió y se midió el pH por un periodo de cuatro horas, tiempo
estimado para que las bacterias se activen y comiencen la fase exponencial, el
resultado se presenta en la gráfica no 1.
36Gráfica 1. Comportamiento del pH en la bebida de soja.
Comportamiento de pH en bebida de Soja con probióticos
6,9
6,85
6,8
6,75
6,7
Serie1 Hp
6,65
6,6
6,55
6,5
6,45
0 50 100 150 200 250
Tiempo (min)
Fuente: La autora, 2010.
Finalizado el tiempo de incubación se realizó un recuento por placa de la bebida
de soja, arrojando una población de 25 x 107 ufc/ml, y se procedió a la elaboración
de los encapsulados, dejando en maduración por un tiempo de 12 h, al cabo de
este se percibió un aroma ácido en las perlas y un color más oscuro, de lo que se
infiere que las bacterias se activaron metabólicamente estando atrapadas en el gel
(Cuenca Quicazan, 2005).
Este efecto puede tener secuelas en el producto final (helado con encapsulados)
ya que las perlas y las bacterias probióticas estarán en contacto con nutrientes
suficientes para continuar con su metabolismo normal, aportando atributos
especiales en el aroma, color y sabor del helado. Por estos motivos esta técnica
se rechazó, porque no se deseaba que las bacterias se encontraran activas en el
producto y continuaran creciendo.
375.1.2.3. Caldo M.R.S. y Caldo B.H.I.
En otro ensayo se hicieron crecer las bacterias liofilizadas en dos medios
selectivos como fueron caldo MRS y BHI. Para 5 ml de cada caldo se inoculó 0,5g
del cultivo liofilizado, finalmente se incubaron a las condiciones propias del mismo.
Luego de finalizado el tiempo de incubación se observó que para el caldo MRS se
obtuvo un recuento de 16 x 106 ufc/ml y que para el cultivo sembrado en caldo BHI
se obtuvo un recuento de 10 x 108 ufc/ml, lo que indicó que para este tipo de
microorganismos, Lactobacillus acidophilus, el mejor medio es el BHI.
5.1.3. Cantidad de encapsulados en el helado
Una de las variables que influyen en la determinación de la cantidad final de
encapsulados en el producto final corresponde a la cantidad de microorganismos
encapsulados por gramo de perlas.
Para fijar esta variable se realizó el siguiente procedimiento. Se obtuvo una
suspensión (en caldo BHI) de microorganismos con una carga inicial de 12x108
ufc/ml, de ella se tomó 5ml y se mezcló con 5ml de solución de alginato de sodio
al 3% p/p, esta se dejó gotear y se obtuvieron encapsulados con un recuento de
54x107 ufc/g.
Se realizó el cálculo teórico para determinar la cantidad de encapsulados
necesarios para que cada gramo de helado tuviera un recuento final de 50x106
ufc, dando como resultado que para 100g de helado se necesitaban 5g de
encapsulados.
38Se realizó una prueba preliminar con una cantidad inoculada de encapsulados al
5%, observándose una distribución homogénea en toda la masa del helado.
También se realizó un recuento de las bacterias probióticas en la mezcla de
helado inoculado y se obtuvo un valor de 10x106 ufc/g de mezcla, lo que quiere
decir que hubo una pérdida de 0,4 unidades logarítmicas, esto puede deberse a
las condiciones de maduración de los encapsulados, ya que luego de formados
estuvieron en un tiempo prolongado bajo refrigeración y en un medio salino donde
algunas de las bacterias sufrieron deshidratación.
5.2. MÉTODOS DE EVALUACIÓN FÍSICO-QUÍMICOS Y SENSORIALES
5.2.1. Caracterización del encapsulado
Se determinaron propiedades como el peso unitario, el diámetro y la densidad del
encapsulado. El resumen de los valores obtenidos se presenta en la tabla 5.
Tabla No. 5 Características del encapsulado
Geometría Esférica
Peso unitario (mg) 11,53
Diámetro (mm) 3,0
Densidad (g/ml) 0,82
Volumen (mm3) 13,74
395.2.1.1. Distribución celular
Se realizaron dos observaciones mediante la técnica de Microscopia Electrónica
de Barrido (SEM) de la superficie de dos muestras del encapsulado (ver figura 3 y
4).
Figura 3. Microfotografía de la superficie del encapsulado con aumento de 20 µm.
Fuente: Laboratorio de equipos robustos del centro de equipos Interfacultades, CEIF, 2009.
En la figura 3 se observan cristales de cloruro de sodio (cubos claros) y
protuberancias en la superficie que se puede deducir como bacterias en el interior
recubiertas por alginato, también se observa en la superficie trazas de material
orgánico.
40Figura 4. Microfotografía de la superficie del encapsulado con aumento de 50 µm.
Fuente: Laboratorio de equipos robustos del centro de equipos Interfacultades, CEIF, 2009.
En la figura 4 hay un avistamiento más cercano del encapsulado, donde las
protuberancias son más pronunciadas, posiblemente formadas debido a la técnica
de vacío.
No se observan bacterias en la superficie de la perla, probablemente por la
deshidratación como resultado del vacío a la que se sometió la placa para
observarla al microscopio. Estos resultados indicaron que la preparación de los
encapsulados (alto vacío) para la visualización por microscopia electrónica no fue
la adecuada para este caso.
5.2.2. Caracterización de la materia prima
A la leche y la crema de leche se le realizaron análisis de grasa en el laboratorio
de la planta de lácteos del ICTA en la Universidad Nacional de Colombia, los
resultados se presentan en la tabla 6:
41Tabla 6. Caracterización de la leche y crema de leche
MATERIA PRIMA GRASA (% p/p)
Leche 5,1
Crema de leche 32
Fuente: La autora, 2010
Teniendo en cuenta que se deseaba un helado al 8% p/p en grasa, se tuvieron en
cuenta la normatividad colombiana y los resultados arrojados del análisis de grasa;
el balance de materia permitió el cálculo de los ingredientes necesarios para la
elaboración de cada mezcla de 12 kg de helado, estos se registran en la tabla 7.
Tabla 7. Cantidad de ingredientes utilizados en la elaboración del helado
INGREDIENTES CANTIDAD (kg)
Leche líquida entera 9,1
Leche en polvo 0,8
Crema de leche 1,107
Sacarosa 1,763
Estabilizante 0,06
TOTAL 12,83*
*Teniendo en cuenta un 7% de pérdida en el proceso, debido a evaporación.
Fuente: La autora, 2010
5.2.3. Caracterización del producto final
En la tabla 8 se presentan las propiedades físico-químicas del helado obtenido.
Tabla 8. Caracterización del helado final
ANÁLISIS RESULTADOS
Humedad (% p/p) 35
pH* 6,42
Acidez titulable (%ácido láctico) 0,20
Grasa (%p/p) 8
42Sobre aumento (% Aire incorporado) 63,2
*Medida luego de envasado el producto.
Fuente: La autora, 2010
Los resultados de la tabla 8, muestran que el valor del pH del helado se encuentra
en el rango ácido, probablemente por la degradación de la lactosa y posterior
producción de ácido láctico, corroborado con la acidez titulable, reacción que pudo
presentarse debido a la posible presencia de microorganismos provenientes del
ambiente.
5.2.3.1. Sobre aumento (Overrun)
La cantidad de aire incorporado en el helado dio como resultado un valor de
63,2% (ver tabla 8), es decir que por cada 100g de helado 63,2g corresponde a
aire y 32,8g de mezcla.
Este valor generalmente lo presentan los helados de crema (60-70 %), ((Di
Bartolo, Eduardo. 2005) debido a que gracias a la grasa contenida en la mezcla y
luego del proceso de homogenización los glóbulos grasos son finamente divididos
aumentando la superficie de los mismos y los espacios interglobulares que luego
son ocupados por el aire en el proceso de aireación.
El hecho de obtener este valor de sobre aumento en el helado proporciona al
producto características de calidad organolépticas únicas, donde finalmente el
consumidor percibirá una textura suave, un producto con cuerpo y buena
palatabilidad.
435.2.3.2. Distribución de perlas en el helado
Teniendo en cuenta el producto final, se tomaron tres muestras de helado con un
peso inicial de aproximadamente 20g cada una, se le realizó el procedimiento
descrito en el numeral 3.6.3.3 y se contaron las perlas, finalmente se obtuvo que
para cada gramo de helado se encuentra distribuido 3 encapsulados.
5.2.4. Seguimiento en línea
Para los tratamientos de estudio, A (inoculación de encapsulados antes de la
etapa de maduración de la mezcla de helado), B (inoculación de encapsulados
después de la etapa de maduración de la mezcla de helado) y C (mezcla control)
se le realizó un seguimiento en línea de seis semanas, los análisis para este
periodo de tiempo correspondieron a la medida de ácido láctico y pH.
La especificación de los tiempos de estudio se presenta la tabla 9.
Tabla 9. Descripción de los tiempos de estudio
TIEMPOS DE ESTUDIO
0 Antes de la etapa de maduración de la mezcla de helado.
1 Después de la etapa de maduración de la mezcla de helado.
2 Después del proceso de batido y endurecido del helado.
3 Semana 2 de almacenamiento.
4 Semana 3 de almacenamiento.
5 Semana 4 de almacenamiento.
6 Semana 5 de almacenamiento.
7 Semana 6 de almacenamiento.
Fuente: La autora, 2010.
44Los resultados del seguimiento de pH y ácido láctico se presentan en las gráficas
2 y 3.
Se realizó un análisis por cada etapa estudiada y por cada ensayo, para observar
el comportamiento del pH y de la acidez titulable.
Gráfica 2. Comportamiento del pH en el helado durante las etapas de estudio
Comportamiento del pH
6,70
6,60
6,50
6,40
6,30 R2 = 2E-05
Hp
6,20
6,10
6,00
A (antes de la maduración)
B (después de la maduración)
5,90 C (control)
Lineal (A (antes de la maduración))
5,80
0 1 2 3 4 5 6 7
Tiempos de estudio
Fuente: La autora, 2010
45Gráfica 3. Comportamiento de la acidez en el helado durante las etapas de estudio
Seguimiento de acidez
0,30
0,28
0,26
0,24
0,22 ocitcál
0,20 odicÁ
0,18 %
0,16
0,14
A (antes de maduración)
B (después de maduración)
0,12 C (control)
0,10
0 1 2 3 4 5 6 7
Tiempo de estudio
Fuente: La autora, 2010
5.2.4.1. Tiempo de estudio 0-1, etapa de maduración de la mezcla
de helado.
Para el ensayo A (inoculación de encapsulados antes de comenzar la etapa de
maduración), el pH de la mezcla aumentó probablemente por la presencia de
iones de caseína y fosfatos presentes en la leche y crema de leche.
Para el ensayo B (inoculación de encapsulados después de terminada la etapa de
maduración), se observó un aumento del pH, esto debido los fenómenos
presentes en esta etapa, donde la solidificación de la grasa, la hidratación de las
proteínas y el reacomodamiento de los glóbulos grasos influyeron en el incremento
de esta propiedad, debido a que moléculas como la caseína u otros aniones se
46reacomodan bajando de esta manera la acidez de la mezcla. Este cambio de pH
se corroboró al medir la acidez titulable.
Para el ensayo C (mezcla control), el valor del pH no varía, aunque la etapa de
maduración de la mezcla ocurrió en las mismas condiciones que la del ensayo B y
a ninguna de las dos se le adicionó microorganismos probióticos, no se observó
ningún comportamiento en el ensayo C, debido a que los fenómenos de la etapa
de maduración no se presentaron a la misma velocidad y la acidez para este
ensayo fue constante.
5.2.4.2. Tiempo de estudio 1-2, etapa de batido y endurecido de la
mezcla de helado.
Para este tiempo de estudio se observó que el pH para el ensayo A, cae
drásticamente a un valor cercano a 5,9, debido a la producción de ácido láctico en
la mezcla, gracias a la activación metabólica de los microorganismos probióticos.
Para el ensayo B se observó incremento en el pH y en la acidez, estas dos
mediciones difieren en su correspondencia, pero lo que se esperaba realmente era
que el pH disminuyera, y la medida de acidez aumentara, ya que debido al
proceso de overrun y el congelamiento, se presenta una concentración de material
y por lo tanto la acidez debería aumentar.
Para el ensayo C, tanto el pH como la acidez no presentaron ninguna variación
significativa en su valor inicial.
475.2.4.3. Tiempo de estudio 2-3, segunda semana de
almacenamiento.
En esta etapa de estudio, se observó que existió un aumento en el pH para el
ensayo A, y un periodo de estabilidad, donde los probióticos encapsulados
tuvieron oportunidad de adaptarse al medio y activarse nuevamente, por lo tanto,
lo que se esperaba era un incremento en la acidez y una disminución del pH (lo
que discrepa del resultado en la gráfica 2), sin embargo, en la gráfica 3 se aprecia
un aumento considerable de la acidez, lo que corrobora la posible activación
metabólica de los microorganismos.
Para los ensayos B y C se observó que el valor del pH disminuyó, posiblemente
por el proceso de congelación, donde las moléculas tienden a concentrarse más
por la congelación del agua existente en la matriz inicial que por otros factores
como era el crecimiento de bacterias o cambios fisicoquímicos.
5.2.4.4. Tiempo de estudio 3-7, almacenamiento.
Para los periodos comprendidos del 3-7, se observó que el pH y la acidez fueron
constantes.
5.2.5. Análisis microbiológicos
Los resultados de las siembras realizadas se enseñan en la gráfica 4,
48Gráfica 4. Comportamiento de la población de Lactobacillus acidophilus en el
helado durante el tiempo de estudio
Seguimiento del recuento de bacterias probióticas
8,00
7,50
R2 = 0,3064
7,00
A (antes de maduración) )g/cfu(
6,50 R2 = 0,0003 B (después de maduración)
Lineal (A (antes de maduración)) goL
Lineal (B (después de maduración))
6,00
5,50
5,00
0 1 2 3 4 5 6 7
Tiempo de estudio
Fuente: La autora, 2010
A continuación se encuentra el análisis de cada tiempo de estudio según la gráfica
4.
5.2.5.1. Tiempo de estudio 0-1, etapa de maduración de la mezcla
de helado.
Se aprecia que para el ensayo A, la carga microbiana aumentó 0,6 unidades Log,
probablemente porque los probióticos contenidos en la pared de la perla
estuvieron expuestos a un medio nutritivo como lo es la mezcla de helado y un
49tiempo adecuado para su activación metabólica, lo que estimuló el crecimiento de
las bacterias.
5.2.5.2. Tiempo de estudio 1-2, etapa de batido y endurecido de la
mezcla de helado.
Se observó una disminución en el número de microorganismos así: para el ensayo
A: 0,42 unidades Log y para B: 0,82 unidades Log, resultados probables por el
estrés mecánico, la incorporación de oxígeno y el choque térmico del proceso que
afectan directamente la supervivencia de las bacterias probióticas.
La mayor capacidad de supervivencia de las bacterias para el ensayo A, se debe a
la mejor adaptación de estos microorganismos al medio, ya que previamente
tuvieron un mayor tiempo para la adaptación a las condiciones de la mezcla.
5.2.5.3. Tiempo de estudio 2-3, segunda semana de
almacenamiento.
Para la etapa de estudio se observó un crecimiento de las bacterias así: para A:
0,21 unidades Log y B: 0,77 unidades Log, luego de haber pasado por la etapa de
batido y endurecimiento del helado. Algunas perlas sufrieron erosiones en la pared
superficial y en la estructura misma, debido a la acción de las aspas y la formación
de cristales que rompieron la estructura y liberaron microorganismos al medio, en
el tiempo de almacenamiento las bacterias se adaptaron, se activaron y crecieron.
50Para entender mejor el comportamiento del producto en esta etapa, se retoma un
modelo del encapsulado descrito por A. Laca, 2000,(ver figura 5), donde es
preciso analizar las diferentes interacciones que existen en el sistema.
Figura 5. Modelo esquemático de los microorganismos en la perla.
Fuente: A. Laca, 2000
Según A. Laca, para el encapsulado se presenta una capa estacionaria en la
superficie, a través de la cual se realizan tareas de transporte necesarias como
difusión de los nutrientes del medio y de los microorganismos hacia el interior y el
exterior, también el escape celular debido a factores externos, se reporta la
probabilidad de un hinchamiento de la cápsula y la posibilidad de que se
presenten defectos geométricos, es decir, que el encapsulado no sea exactamente
esférico.
515.2.5.4. Tiempo de estudio 3-7, almacenamiento.
En el periodo de almacenamiento se observa que la población bacteriana
comienza su descenso lentamente, sin embargo luego de seis semanas de
almacenamiento el helado aun conserva propiedades de alimento funcional (carga
de probióticos mínimo 1x106 ufc/g). Esta tendencia, se debe posiblemente a
factores como el frío, el cual retarda la acción metabólica de las células vivas,
haciendo que estás entren en un estado de latencia; además la lenta congelación
a la cual el helado es sometido, genera cristales de hielo que afectan directamente
la membrana celular de los microorganismos, haciendo que estos mueran, por lo
menos los que no se encuentran protegidos por el alginato.
Otro de los factores que influyen en la disminución de la población bacteriana es la
falta de alimento para el probiotico, ya que al estar protegido por la matriz de
alginato y estar contenido en un alimento sólido como el helado, los nutrientes no
se difunden por los poros del encapsulado.
5.2.6. Evaluación sensorial
Se realizó una prueba afectiva con consumidores, donde participaron 51 personas
que habitualmente consumen helado. Las muestras de helado fueron las del
tratamiento A (inoculación de encapsulados antes de la etapa de maduración de la
mezcla de helado), ya que estas fueron las que mejores resultados arrojaron en el
seguimiento en línea del recuento de bacterias probióticas en el helado.
Los resultados obtenidos se visualizan en la gráfica 5.
52Gráfica 5. Aceptabilidad del helado con probióticos encapsulados.
Evaluación Sensorial
100
90
80
70
60 )%(
dadilibatpecA
50 Serie1
40
30
20
10
0
APARIENCIA COLOR AROMA SABOR TEXTURA
Atributos Evaluados
Fuente: La autora, 2010
Los resultados muestran que todos los atributos obtuvieron valores superiores al
cincuenta por ciento de aceptabilidad, lo que indica que el producto es aceptado
por los consumidores, aun cuando la textura era granulosa debido a la presencia
de los encapsulados.
Los atributos con menos aceptación como fueron color y aroma se relacionan más
con una costumbre comercial, donde el alimento presenta un aroma descriptible y
colores más atractivos.
536. CONCLUSIONES
• Se evalúo la influencia de la encapsulación en la viabilidad del Lactobacillus
acidophilus en un helado de crema sin sabor específico y se encontró que
para seis semanas de almacenamiento las bacterias probióticas sobreviven
a las condiciones y se mantienen en un valor aceptable.
• La técnica de extrusión o goteo fue la que mejor resultados arrojó en el
proceso de encapsulación de probióticos.
• Se evaluaron dos puntos de inoculación de los encapsulados en helado y
se encontró que la mejor etapa de inoculación de los probióticos
encapsulados fue antes de la maduración.
• Se encontró aceptabilidad del producto por parte del consumidor tal que se
pueden iniciar estudios de comercialización.
• Se confirmó que un producto lácteo como el helado puede servir como
vehículo para llevar microorganismos probióticos al ser humano.
547. RECOMENDACIONES
• Es necesario activar las bacterias para un manejo fácil y un conocimiento
real de la población inicial de los microorganismos que se inoculan al
producto.
• Teniendo en cuenta los resultados obtenidos, se puede considerar la
posibilidad de comercializar el producto con varias presentaciones. Estas
presentaciones podrían llevar color y aroma, partiendo de la preparación de
los encapsulados como serían “gomitas”.
• Por otra parte, la comercialización del producto debe ir acompañada de
campañas de educación acerca de los probióticos
con el objetivo de alentar a los consumidores hacia un consumo constante
de este tipo de alimentos.
55BIBLIOGRAFÍA
• A. Laca, L.A. García, M. Díaz. (2000). Analysis and description of the
evolution of alginate inmobilised cells systems. Journal of Biotechnology 80:
203-215.
• Ada Lydia de las Cagigas. Prebióticos y probióticos, una relación
beneficiosa. Ediciones Mirasierra. Madrid. 2003.
• Becerra Español, Liliana Carolina. Obtención de helado de soya bajo en
grasa saborizado con arazá. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá.
2008.
• Cañedo, Arana Celina. Los probióticos en las infecciones. (v.1/2008) Guía
ABE. Infecciones en pediatría Laganés, Madrid. 2008.
• Corrales Alejandro, Henderson Marjorie, Morales Ileana. Sobrevivencia de
microorganismos probióticos en helado batido Lactobacillus acidophilus y
Bifidobacterium lactis en helado batido. Revista chilena de nutrición.
Santiago de Chile. 2007
• Cuenca Quicazan, Martha María. Evaluación de la fermentación láctica de
una mezcla de bebida de soya y leche de vaca utilizando células
inmovilizadas. Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 2005.
• Dalla Lasta, María Silvia. Página en internet:
www.monografias.com/trabajos12/alginato/alginato.shtml
56• Di Bartolo, Eduardo. Guía para la elaboración de helados. Secretaría de
Agricultura, ganadería, pesca y alimentos. 2005
• FAO/WHO Experts´ Report. (2001). Health and nutritional properties of
probiotics in food including powder milk with live lactic acid bacteria.
• FAO y OMS. (2006). Probióticos en los alimentos. Propiedades saludables
y nutricionales y directrices para la evaluación. Estudio FAO alimentación y
nutrición 85: 6-11.
• G. Cruz, Adriano. E. C. Antunes, Adriane. O. P. Sousa, Ana lucía. A. F.
Faria, José, M. I. Saad, Susana. (2009). Ice – cream as a probiotic food
carrier. Food Research International 42.
• Homayouni, A. Azizi, M.R. Ehsani, M.S. Yarmand, S.H. Razavi. Effect of
microencapsulation and resistant Storch on the probiotic survival and
sensory properties of synbiotic ice cream. Food Chemistry. Iran. 2008
• Ivonne-Figueroa, co. (2006). El Beneficio de los probióticos. Departamento
de Biotecnología, Universidad Autónoma Metropolitana, Iztapalapa. Alfa
Editores Técnicos.
• I.N. Haynes and M.J. Playne. Survival of probiótico cultures in low-fat ice-
cream. Australian Journal of Dairy Technology; Apr 2002; 57,1;
ABI/INFORM Trade & Industry pg 10.
• J. Yáñez F. co. Aplicaciones biotecnológicas de la microencapsulación.
Departamento de biotecnología y bioingeniería del Cinvestav. Avance y
perspectiva vol. 21. 2002.
57•
K. Kailasapathy; K. Sultana. Survival and (beta)-D-galactosidase activity of
encapsulated and free Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium lactis
in ice-cream. Australian Journal of Dairy Technology. 2003.
• Lee, Y. K. & Salminen, S. The coming of age of probiotics. Trends in food
Science & Technology, 6, 241 – 244. 1995.
• Marquina, Domingo y Santos Antonio. Probióticos, prebióticos y salud. Dpto
de microbiología III, Universidad Complutense, Madrid.
• McFarland, L.V. (1999). Biotherepeutic agents for Clostridium difficile-
associated disease, p. 159-193. In G. W. Elmer, L. McFarland, and C
Surawicz (ed.), Biotherapeutic agents and infectious diseases. Humana
Press Inc., Totowa, N.J.
• Montijo, E.; Bacarreza, D.; Díaz, S.; Cervantes, R.; Mata, N.; Zárate, F.;
García, M.; López, L.; Ramírez, J. (2008). Utilidad de los probióticos en
pediatría: revisión. Revista de enfermedades infecciosas en Pediatría, 22
(85), 24-31.
• Moore, W.E. and L.H. Moore. (1995). Intestinal floras of populations that
have a high risk of colon cancer. Appl. Environ. Microbiol. 61:3202-3207.
• Norma Técnica Colombiana 1239 de 2002 Helados y mezclas para helados
• P. Capela, T.K.C. Hay, N.P. Shah. Effect of homogenisation on bead size
and survival of encapsulated probiotic bacteria. Food Research International
40. Australia. 2007
58• Revista Dinero. Edición 250.Abril 2006
• Saez Vivian, Hernández José Ramón, Peniche Carlos. Las microesferas
como sistemas de liberación controlada de péptidos y proteínas.
Departamento de desarrollo de formulaciones, centro de ingeniería genética
y biotecnología. Cuba. 2007.
• Shah, N.P., R.N. Fedorak and P.J. Jelen. (1992). Food consistency effects
of quarg in lactose malabsortion. Int. Dairy J. 2:257-269.
• S. Mandal, A.K. Puniya, K. Singh. Effect of alginate concentrations on
survival of microencapsulated Lactobacillus casei NCDC-298. International
Dairy Journal 16 (2006).
• T.T. Sheu, R.T. Marshall, and H. Heymann. Improve survival of culture
bacteria in frozen desserts by microentrapment. Food science and human
nutrition. Columbia. 1993.
• Vargas Edgar Mauricio, Gómez Clara Juliana, Parra Mónica Ellana, Romero
María Alexandra. Producción de microorganismos probióticos como aditivo
para alimentos concentrados para ganado vacuno (segunda parte). Revista
de ingeniería # 20 facultad de ingeniería universidad de los andes. 2002
• V. Chandramouli, K Kailasapathy, P. Peiris, M. Jones. An improve method
of microencapsulation and its evaluation to protect Lactobacillus spp. In
simulated gastric conditions. Journal of Microbiological Methods 56. 2004
59• W.K. Ding and N.P. Shah. Acid, bile, and heat tolerance of free and
microcapsulated probiotic bacteria. Journal of Food science. Institute of food
technologists. 2007.
• Wunwisa Krasaekoopt, Bhesh Bhandari, Hilton Deeth. (2003). Evaluation of
encapsulation techniques of probiotics for yoghurt. International Dairy
Journal. Australia.
• Y. Sanz. Co. Contribución de la microbiota y del género “Bifidobacterium” a
los mecanismos de defensa del huesped frente a patógenos
gastrointestinales. Instituto Agroquímica y tecnología de alimentos.
Valencia. 2006.
60ANEXO 1
INFORMACIÓN DE LAS MATERIAS PRIMAS
ALGINATO DE SODIO (DALLA L, María S)
Los alginatos son polímeros naturales que hacen parte de la pared celular de las
algas cafés (Phaeophycoeae) y son usados en diversas industrias; en la de
alimentos se emplea como agente gelificante y viscosante, formador de películas
para la protección de alimentos y estabilizador de espumas. En la industria
farmacéutica este polímero se usa como agente desintegrador, gel absorbente,
agente de suspensión, entre otros y en la agricultura como agente de retención de
agua.
Los alginatos disponibles en el mercado se comercializan, en su mayoría, en
forma de sales hidrosolubles, libres de celulosa, blanqueadas y purificadas, entre
las que se incluyen las siguientes: Ácido algínico, Alginato de sodio, Alginato de
potasio, Alginato de amonio, Alginato de calcio y Alginato de propilenglicol.
También se producen compuestos combinados, tales como:
• Alginato de amonio-calcio
• Alginato de sodio-calcio
Algunos de estos compuestos, principalmente el ácido algínico y sus sales de
sodio, calcio y potasio, se ofrecen en tres calidades diferentes, determinadas por
los procesos de purificación y blanqueado que sufren los productos durante su
manufactura. Dichas calidades corresponden a:
61• Calidad alimentaria: productos completamente libres de celulosa, de
coloración blanca o ligeramente amarilla.
• Calidad farmacéutica: productos blancos, totalmente libres de celulosa.
• Calidad técnica: productos usualmente libres de celulosa (puede contener
cierta proporción); color variable desde blanco a amarillo o marrón. Estos
son empleados principalmente por la industria textil, de pinturas, papeles
calco, maderas aglomeradas, etc.
Estabilidad: Alginatos sólidos
El grado de polimerización (GP) de un alginato es una medida del peso molecular
promedio de sus moléculas y corresponde al número de unidades de ácidos
urónicos en la cadena polimérica. La viscosidad de las soluciones de alginato se
relaciona directamente con el grado de polimerización y el peso molecular;
mientras que la pérdida de viscosidad de las mismas (que se produce
comúnmente durante el almacenaje) es una medida de la extensión de un proceso
de depolimerización del alginato.
Comercialmente se producen alginatos (principalmente alginato de sodio) de baja,
media y alta viscosidad (esto se refiere a la viscosidad de sus soluciones acuosas
al 1%), que presentan pequeñas diferencias en cuanto a estabilidad: con ciertas
excepciones, la regla general es que los compuestos con un elevado grado de
polimerización son menos estables que aquellos con un GP bajo.
El ácido algínico es el menos estable de los productos, más aún aquellos
materiales con alto grado de polimerización en los cuales las largas cadenas
pueden degradarse en unidades menores en unos pocos meses a temperatura
ambiente. Sin embargo, los compuestos de cadenas más cortas resultan estables.
A pesar de las diferencias mencionadas en cuanto a estabilidad, todo compuesto
algínico comercial deberá almacenarse en un lugar fresco a temperaturas de 25ºC
o menores, pues la elevación de la misma puede causar una significante
62depolimerización que afecta las propiedades comercialmente útiles como la
viscosidad y la fuerza de los geles.
Estabilidad: Soluciones de alginato
Las sales de cationes monovalentes [Na+, K+, NH +, (CH OH) NH+] del ácido
4 2 3
algínico y su éster de propilenglicol son solubles en agua; no así el ácido algínico y
la sal cálcica. Las soluciones neutras de alginatos de baja a media viscosidad
pueden ser mantenidas a 25°C por varios años sin apreciable pérdida de
viscosidad y además con muy baja susceptibilidad al ataque microbiano.
Como ya se mencionó, las soluciones de alginatos altamente polimerizados son
poco estables aún a temperatura ambiente y tienen tendencia a sufrir
depolimerización a medida que se incrementa la temperatura.
En cuanto a la compatibilidad con otros compuestos, como las soluciones de
alginatos contienen un polisacárido anión, pueden dar productos insolubles al
mezclarse con ciertos cationes. Tales soluciones resultan incompatibles con la
mayoría de los cationes di y trivalentes, con las sales de amonio cuaternarias
usadas generalmente como bactericidas, con ácidos lo suficientemente fuertes
como para producir la precipitación del ácido algínico y con álcalis fuertes, los
cuales producen una ruptura gradual de las cadenas polisacáridas.
Factores físicos:
La solubilización de los compuestos de alginato se ve afectada tanto por el tamaño
como por la forma de las partículas. Usualmente se prefiere un material basto o
grosero cuyas partículas resultan más fáciles de dispersar y suspender, aunque
tienen una baja velocidad de hidratación. Las partículas finas se disolverán más
rápidamente, pero existe mayor riesgo de que se aglomeren; éste efecto puede
disminuirse diluyendo el alginato en presencia de otro polvo, por ejemplo azúcar .
La cantidad de alginato que se disolverá en agua está limitada por la naturaleza
física de las soluciones, más que por la solubilidad del compuesto en sí. Al
incrementarse la concentración de alginato, la solución pasa de un estado de
63líquido viscoso a una pasta espesa, punto en el cual se vuelve muy difícil de
dispersar el alginato remanente.
Factores químicos:
La solubilización de estos productos en agua resulta dificultosa si se realiza en
presencia de compuestos que compiten con las moléculas de alginato por el agua
necesaria para su hidratación. Así, la presencia de azúcares, almidón o proteínas
en el agua reducirá la proporción de hidratación y se requerirán mayores tiempos
de mezcla. Las sales de cationes monovalentes (como el NaCl) tienen un efecto
similar a concentraciones cercanas al 0.5%. Lo mejor es agregar todas estas
sustancias después de que el alginato fue hidratado y disuelto.
La presencia de pequeñas cantidades de cationes polivalentes inhibe la
hidratación de los alginatos y proporciones elevadas de los mismos causan su
precipitación. El alginato sódico resulta de difícil disolución en aguas duras y leche
debido a que ambas contienen iones calcio; éstos deben ser primero secuestrados
con un agente complejante tal como hexametafosfato de sodio o ácido
etilenediamino tetraacetico (EDTA).
Sus especificaciones son:
Especificación Valor
Pérdidas por secado Máximo 15%
Ash a 600°C 18.0 a 27.0%
pH (solución al 1%) 5.5 a 7.5
Tamaño de partícula 100 mm ± 2%
Viscosidad (solución 1%, 20°C) 350 a 450 mPa*s
Nutricionales (para 100 g)
Energía 0 Kcal
Fibra 67 g
64Sodio 10 g
* Proteína, grasa y carbohidratos no aplican
CLORURO DE CALCIO
Propiedades químicas
Fórmula química CaCl2
Presentación Gránulos blancos inodoros
Pureza 94-97% en peso
Densidad 55 lb/pie3
pH 7.0 a 10.0 en solución acuosa diluida
CULTIVO LÁCTICO
Nombre:
HOWARU Dophilus LYO 40 DCU – HOWARU Premium Probiotics
Descripción:
Cultivo probiotico liofilizado para aplicaciones en bebidas y productos lácteos.
Instrucciones de uso:
Desinfecte la zona de apertura con etanol al 70% antes de abrir el empaque. Corte
el empaque para abrirlo y adiciones el cultivo a la leche de proceso teniendo en
cuenta condiciones asépticas.
Vida útil / Almacenamiento:
18 meses desde la fecha de producción a una temperatura menor o igual a -18ºC
y 6 meses después de la fecha de abierto conservándose a una temperatura de
4ºC.
65CALDO BHI (Brain Heart Infusion)
Uso:
El medio de Infusión Cerebro Corazón es utilizado para el cultivo de
microorganismos fastidiosos como estreptococos, neumococos y meningococos.
Este medio también es conocido como BHI por sus siglas en inglés.
Explicación:
El medio de Infusión Cerebro Corazón es una modificación de las formulaciones
desarrolladas por Rosenow y Hayden en las que se adicionó infusión de cerebro
de ternera y difosfato de sodio.
El medio de Infusión Cerebro Corazón está especificado en varios procedimientos
estándares para la industria alimenticia y el análisis de aguas. También es
recomendado por la NCCLS para preparar el inóculo para las pruebas de
susceptibilidad antimicrobiana.
En este medio la infusión de carne de corazón y de cerebro de ternera así como la
peptona proveen la fuente de carbono, nitrógeno sulfuro y vitaminas. La dextrosa
actúa como fuente de energía. El cloruro de sodio mantiene el balance osmótico
del medio. El fosfato disódico actúa como buffer.
Fórmula:
Infusión de Cerebro de Ternera 200.0
Cloruro de Sodio 5.0
Infusión de Corazón de Res 250.0
Fosfato Disódico 2.5
Peptona de Gelatina 10.0
Dextrosa 2.0
pH 7.4 ± 0.2
66Almacenamiento:
2-30°C.
Caducidad:
5 años en frasco cerrado.
Presentación:
Frasco con 450 g
Caja con 20 sobres para un litro
Medio preparado en caja con 10 Tubos
67ANEXO 2
FORMATO DE EVALUCIÓN SENSORIAL
UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA
PROGRAMA INTERFACULTADES
ESPECIALIZACIÓN EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA DE ALIMENTOS
Evaluación con consumidores
Fecha: ______________________________S__exo: F
1-14 15-20 21-30
Edad:
31-40 41-50 >50
Con qué frecuencia consume helado?
Diario Semanal Mensual
Casi nunca
MUESTRA # _____________
ATRIBUTO CALIFICACIÓN
APARIENCIA me gusta indiferente no me gusta
COLOR me gusta indiferente no me gusta
AROMA me gusta indiferente no me gusta
SABOR me gusta indiferente no me gusta
TEXTURA me gusta indiferente no me gusta
OBSERVACIONES
MUCHAS GRACIAS POR SU COLABORACIÓN
68