Colonización bacteriana de la interfase implante-pilar en implantes de conexión interna sometidos a carga dinámica con pilares personalizados
Autor: Buitrago Osuna, Asterlis
Asesor: Serrano Mendez, Carlos Alberto (Thesis advisor)
Fecha: 2015
Programa: Bogotá - Medicina - Especialidad en Anestesiología y Reanimación
Facultad: Facultad de Medicina

Resumen: La interfase implante pilar es un punto crítico, por su importancia desde el punto de vista biomecánico y biológico. Esta zona, da lugar a la formación de un espacio en cercanía a los tejidos peri implantares, en el cual se presenta colonización de microorganismos (bacteria y hongos), que migran de manera bidireccional a través de ella y que eventualmente pueden generar activación de mecanismos inmunológicos que pueden desencadenar pérdida ósea. Debido a lo anterior surge este trabajo, cuya finalidad es evaluar la colonización bacteriana en la interfase implante-pilar en implantes de conexión interna con pilares personalizados.  Materiales y métodos: Se estudiaron tres grupos cada uno con tres implantes de conexión interna hexagonal, con pilares en titanio prefabricados y personalizados, y pilares en zirconia personalizados, que fueron sometidos a carga dinámica in vitro.  Se realizaron mediciones del tamaño de la interfase implante-pilar mediante microscopia electrónica de barrido (MEB), y se evaluó la filtración de bacterias, utilizando la bacteria E.coli y valorando la filtración de afuera hacia adentro mediante espectrofotometría.  Resultados: se encontró que todos los implantes permitieron la filtración de bacterias, no mostró correlación entre el tamaño de la interfase y la absorbancia.

Colonización bacteriana de la interfase
implante-pilar en implantes de conexión
interna sometidos a carga dinámica con
pilares personalizados.
Asterlis Buitrago Osuna
Universidad Nacional de Colombia
Facultad de Odontología
Bogotá, Colombia
2015Colonización bacteriana de la interfase implante-pilar
en implantes de conexión interna sometidos a carga
dinámica con pilares personalizados.
Asterlis Buitrago Osuna
Trabajo de investigación presentado como requisito parcial para optar al título de:
Especialista en Periodoncia
Director (a):
MS Odontología. Doctora Martha Lucia Sarmiento Delgado
Codirector (a):
MS Ciencias odontológicas. Doctor Carlos Alberto Serrano Mendez
Asesor (a):
Doctora Sandra Consuelo Henao Riveros
Línea de investigación:
Biomecánica
Grupo de investigación:
Biomecánica.
Universidad Nacional de Colombia
Facultad de Odontología
Bogotá, Colombia
2015A mis padres y mi hermana, quienes siempre
manifestaron fe en mí y me alentaron a seguir
adelante en medio de las dificultades de la
vida. A Dios que se manifiesta en mi vida,
dándome fuerzas para hacer lo imposible.Agradecimientos
Agradezco enormemente a la Dra. Martha Lucia Sarmiento Delgado, Directora del
trabajo, quien me apoyó, confió en mí y trabajó conmigo hombro a hombro para entregar
lo mejor, nunca desfalleció y me incentivó a dar más.
A la Dra. Sandra Henao, docente de microbiología Facultad de Medicina y Odontología,
por su tiempo y dedicación.
A la Dra. Lina Suárez Londoño, directora del Posgrado de Periodoncia de la Universidad
Nacional de Colombia, por sus enseñanzas, su esfuerzo por hacernos mejores
profesionales.Resumen y Abstract VII
Resumen
La interfase implante pilar es un punto crítico, por su importancia desde el punto de vista
biomecánico y biológico. Esta zona, da lugar a la formación de un espacio en cercanía a
los tejidos peri implantares, en el cual se presenta colonización de microorganismos
(bacteria y hongos), que migran de manera bidireccional a través de ella y que
eventualmente pueden generar activación de mecanismos inmunológicos que pueden
desencadenar pérdida ósea. Debido a lo anterior surge este trabajo, cuya finalidad es
evaluar la colonización bacteriana en la interfase implante-pilar en implantes de conexión
interna con pilares personalizados.
Materiales y métodos: Se estudiaron tres grupos cada uno con tres implantes de
conexión interna hexagonal, con pilares en titanio prefabricados y personalizados, y
pilares en zirconia personalizados, que fueron sometidos a carga dinámica in vitro.
Se realizaron mediciones del tamaño de la interfase implante-pilar mediante microscopia
electrónica de barrido (MEB), y se evaluó la filtración de bacterias, utilizando la bacteria
E.coli y valorando la filtración de afuera hacia adentro mediante espectrofotometría.
Resultados: se encontró que todos los implantes permitieron la filtración de bacterias,
no mostró correlación entre el tamaño de la interfase y la absorbancia.
Palabras clave: Carga bacteriana, implantes dentales, interfase implante- pilar, titanio,
microbiología, CAD/CAM.Abstract
The implant-abutment interface is a critic point, because of its relevance from the
biomechanical and biologic point of view. This site favores the formation of a gap close to
the peri-implant tissues, where there is a colonization by microorganisms (bacteria and
fungi), that migrate bidirectionally across the gap and eventually induce activation of
immunological mechanisms that can promote bone loss. The aim of this study is,
evaluate the bacterial colonization of implant-abutment interface in implants with internal
hex connection using personalized abutment.
Materials and methods: Three groups were studied, each on with three Implants with
internal hex with prefabricated and personalized titanium abutments and personalized
zirconia abutments. They were placed under in-vitro dynamic loading. The size of the
implant-abutment gap was measured with scanning electron microscopy, and the bacteria
filtration was evaluated using E. coli to measure the filtration outside- inside using
spectrophotometry
Results: the bacterial filtration was found in all of implants evaluated. No positive
correlation was found between the size of the interface and the absorbance.
Keywords: Bacterial load, dental implants, Dental Implant-Abutment Interface, titanium,
microbiology, CAD-CAM.Contenido IX
Contenido
Pág.
Contenido
1. Generalidades .......................................................................................................... 3
1.1 Justificación ........................................................................................................ 3
1.2 Planteamiento del Problema .............................................................................. 4
1.3 Pregunta de Investigación .................................................................................. 6
1.4 Conceptos Generales ......................................................................................... 6
1.5 Objetivos ............................................................................................................ 6
1.5.1 Objetivo general............................................................................................... 6
1.5.2 Objetivo específico .......................................................................................... 6
1.6 Hipótesis ............................................................................................................ 7
1.6.1 Hipótesis nula. Los pilares prefabricados presentan menor magnitud de la
interfase implante –pilar y filtran menos. .................................................................... 7
1.6.2 Hipótesis alternativa. Los pilares personalizados presentan mayor magnitud
de la interfase y mayor filtración bacteriana................................................................ 7
2. Estado del Conocimiento ........................................................................................ 9
2.1 Partes del Implante .......................................................................................... 10
2.2 Tipos de Conexiones ........................................................................................ 10
2.3 Tipos de Pilares ............................................................................................... 13
2.4 Interfases en los sistemas de implantes ........................................................... 13
2.4.1 La Interfase Implante-Pilar ............................................................................. 14
2.4.2 Colonización por Microorganismos ................................................................ 16
2.5 Espectrofotometría ........................................................................................... 19
2.5.1 Transmitancia y Absorbancia ......................................................................... 19
3. Materiales y Métodos ............................................................................................. 21
3.1 Tipo de Investigación ....................................................................................... 21
3.2 Unidades Experimentales ................................................................................. 22
3.2.1 Fabricación de pilares personalizados ........................................................... 22
3.3 Carga dinámica in vitro ..................................................................................... 23
3.4 Procedimiento para evaluar el tamaño de la interfase implante-pilar ................ 23
3.5 Procedimiento para evaluar la filtración de bacterias en la interfase implante-
pilar. 25
3.5.1 Preparación de la bacteria E. coli .................................................................. 25
3.5.2 Preparación del caldo contaminado ............................................................... 26
3.5.3 Introducción de muestras en el medio contaminado ...................................... 26
3.5.4 Toma de la muestra ....................................................................................... 27
3.5.5 Evaluación de la absorbancia ........................................................................ 284. Resultados ..............................................................................................................30
4.1 Tamaño de la interfase implante-pilar ............................................................... 30
4.2 Absorbancia ...................................................................................................... 32
4.3 Absorbancia versus interfase ............................................................................ 34
5. Discusión .................................................................................................................35
6. Conclusiones y recomendaciones ........................................................................37
6.1 Conclusiones .................................................................................................... 37
6.2 Recomendaciones ............................................................................................ 37
7. Bibliografía ..............................................................................................................45Contenido XI
Lista de figuras
P
Figura 1 Partes del implante dental, Lindhe página 101. ................................................ 10
Figura 2: a conexión externa hexagonal b. conexión externa hexagonal (microscopia
electrónica de barrido) (26), (25). ................................................................................... 11
Figura 3: a) conexión interna hexagonal b) vista transversal (26), Kim et al 2011 citado
por (25) .......................................................................................................................... 48
Figura 4: conexión cónica a) cono Morse b) cónica con tornillo de fijación Urdaneta
and Marincola,16 2007, Nentwig,11 2004). .................................................................. 12
Figura 5: interfases formadas tras la colocación de un implante dental: a) interfase hueso-
implante, b) interfase implante pilar, c) interfase pilar-tornillo de fijación......................... 14
Figura 6: clasificación de la interfase implante pilar (30) ................................................. 15
Figura 7: Espectrofotómetro ........................................................................................... 20
Figura 8: pilares utilizados en el estudio a) Provide® b) Encode® Titanio c) Encode®
Zirconia. ......................................................................................................................... 22
Figura 9: a) Dispositivo de carga cíclica señalando los diferentes componentes: PLC,
FRL, actuador y mandril de fijación del implante. b) Vista ampliada del dispositivo,
señalando el actuador y la celda de control de carga, así como un acercamiento del
pistón del actuador con recubrimiento en zirconia. ......................................................... 23
Figura 10: imágenes de microscopia electrónica de barrido. Interfase implante-pilar
ENCTI7: a) 50x b) 500x c) 3000x ................................................................................... 24
Figura 11: activación de la bacteria E. coli. a) agar Muller b) agar sangre. Nótese las
colonias de color uniforme. ............................................................................................. 25
Figura 12: Caldo BHI contaminado: a) cámara de flujo laminar. b) tubos con medio
contaminado, marcados según la codificación asignada. c) muestra en 25ml de caldo
contaminado con E. coli. d) muestras en incubadora a 37°C. ......................................... 26
Figura 13: toma de la muestra, se introduce en tubo de ensayo con medio estéril. a)
Tornillo de fijación b) micro brush posterior a la toma de la muestra. c) muestras en
cultivo, incubadora a 37°C. ............................................................................................. 27
Figura 14: muestra de elementos protésicos 24 horas después: a) tornillo de fijación
ENCZI12 b) tornillo de fijación muestra PROTI 18. Nótese la diferencia en la turbidez del
medio. C) Muestra de la plataforma PROTI18. ............................................................... 28
Figura 15: Espectrofotómetro: a) colocación del tubo. B) Longitud de onda y absorbancia
....................................................................................................................................... 29Contenido XIII
Lista de tablas
Pág.
Tabla 2-1 Tabla de longitud de onda y absorbancia para medios amarillos. ................... 19
Tabla 3-1. Esquema de metodología utilizada en la investigación ................................. 21
Tabla 4-1. Tamaño de la interfase implante-pilar medido en micras .............................. 30
Tabla 4-2. Tabla ANOVA para Interfase por Tipo de Pilar ............................................. 31
Tabla 4-3. Tabla de valores de absorbancia del medio de bacterias en los componentes
protésicos y grupos control positivo y negativo ............................................................... 33
Lista de Gráficos
Gráfica 4-1. Gráfico de caja y bigotes para interfase por tipo de pilar. ............................ 31
Gráfica 4-2. Gráfico caja y bigotes para interfase por grupos de pilares . ....................... 32
Gráfica 4-3. Gráfica de absorbancia del medio de bacterias en los componentes
protésicos ....................................................................................................................... 33
Gráfica 4-4. Gráfica combinada tamaño de la interfase y absorbancia del medio por tipo
de pilar ........................................................................................................................... 34Contenido XIVIntroducción
Los implantes dentales, se han utilizado por cerca de 45 años con éxito. En el
mercado se ofrecen variedad de materiales y conexiones internas y externas que
buscan mejorar las propiedades físicas y mecánicas de los sistemas de
implantes.
Los sistemas de implantes se componen de un pilar, definido como el
componente atornillado que va sobre el implante dental y que sirve para soportar
y/o retener una prótesis, este puede ser prefabricado o personalizado, de acuerdo
a su método de fabricación y el material en el que es elaborado: titanio, zirconia o
alúmina; y por último, el tornillo de fijación que une el pilar al implante, puede
estar elaborado en materiales como titanio o titanio recubierto en teflon, acero
recubierto en oro.
Existen diferentes configuraciones de conexión, principalmente, internas y
externas. Dentro de la interna se encuentra la hexagonal, octogonal, cónica y
trilobular. La conexión interna hexagonal fue realizada con el fin de lograr mejorar
la distribución de fuerzas y proteger el tornillo de fijación del exceso de carga y el
potencial de micro filtración. Desde la introducción de la conexión interna en cono
Morse, se lograron mejoras en cuanto a la habilidad para resistir fuerzas, micro
movimiento y creación de una “soldadura en frio” producida cuando el ajuste se
genera en valores de torque definidos(1).
Los diferentes componentes del sistema implante pilar dan origen a diferentes
interfases enumeradas a continuación: a) implante-hueso, b) implante-tornillo de
fijación, c) implante-pilar y d) pilar-tornillo de fijación.
Actualmente se encuentran disponibles en el mercado varios sistemas para la
fabricación de pilares personalizado CAD/CAM: el sistema Procera (Nobel
Biocare) cuenta con pilares fabricados en titanio, zirconia y alúmina; Atlantis de
Astra Tech maneja titanio y zirconia, además de revestimientos en oro con el fin
de dar acabados más estéticos, el pilar se diseña con un software CAD y una
fresadora controlada por ordenador a partir de un bloque solido de titanio; el
sistema Encode (ARCHITECH PSR, Biomet 3i), es un sistema limitado a realizar2 Introducción
pilares solo 3i, al igual que el sistema CARES que ofrece fabricación solo para
implantes Straumann, en zirconia y titanio(2).
La interfase entre el implante y el pilar, puede generar un espacio entre los
componentes, además es una zona muy importante dado su comportamiento
biomecánico, influenciado por el material del tornillo de fijación, la precarga y la
presencia de desadaptaciones. El espacio que se genera, puede variar de
tamaño, dependiendo del ajuste de las partes. Por este motivo, diversos
estudios((3), (4), (5)) han evaluado el tamaño de esa interfase y su adaptación,
en función de diferentes variables, como el tipo de conexión del sistema de
implante, el material, la presencia o ausencia de carga dinámica, el método de
fabricación del pilar y el torque en la precarga del tornillo de fijación. Además de
la evaluación biomecánica, es de suma importancia su implicación biológica. La
interfase implante-pilar, ha sido mencionada ampliamente como un factor que
influencia la pérdida ósea peri-implantar, debido a que su configuración espacial,
permite la filtración de fluidos y macromoléculas de forma bidireccional y permite
la creación de un reservorio de microorganismos; a su vez, la posición de la
interfase con respecto a la cresta ósea puede generar invasión del ancho
biológico peri implantar. Las dos condiciones, terminan eventualmente en la
generación de destrucción tisular.
La colonización bacteriana de las superficies implantares se produce 30 minutos
después de terminada la cirugía (6), la presencia de la flora presente en el
sistema de implantes, puede ser resultado de: 1) la contaminación durante la
primera o segunda fase quirúrgica y 2) la transmisión de microorganismos desde
el ambiente oral (7); este hecho es muy importante, dado que la presencia de
factores retentivos o conformaciones espaciales que favorezcan dicha
colonización, juegan un papel fundamental en la permanencia de
microorganismos en cercanía a los tejidos peri implantares, y por ende, la
generación de respuesta tisular; es en este punto donde la presencia de una
interfase implante-pilar de mayor o menor tamaño, y en mayor o menor cercanía
a la cresta ósea, cobra importancia a nivel biológico.
Diferentes autores han estudiado la micro filtración bacteriana en la interfase
implante pilar, utilizando diversas variables, como: tipo de pilar (8), tipo de
conexión(9)(7)(10), marca del implante, filtración de forma bi direccional,
utilizando diversos microorganismos, entre ellos bacterias y hongos(9), productos
bacterianos, como la endotoxina, sustancias como rodamina B y toluidina, y se
han realizado en presencia o ausencia de carga dinámica in vitro, y diferentes
valores de torque a la pre carga.Introducción 3
Estos estudios, muestran como la filtración bacteriana tiene un origen
multifactorial. Dado el incremento acelerado en el uso de pilares personalizados
realizados mediante técnicas de CAD/CAM, ofrecidos por las casas comerciales
que producen los implantes y por otras compañías que poseen bibliotecas con la
capacidad de manufacturar los pilares de acuerdo a las características de los
implantes de las diversas casas comerciales, el objetivo de este estudio es
evaluar la filtración bacteriana en la interfase implante-pilar de implantes con
conexión interna en condiciones estáticas y dinámicas, con pilares
personalizados.1. Generalidades
1.1 Justificación
Desde la introducción de los implantes por Branemark en 1969 citado por (11),
hasta hoy, se han realizado diversas modificaciones a éstos y a los pilares en la
búsqueda de la mejor adaptación posible (12) . Esta adaptación es importante,
dadas las condiciones físicas y biológicas que rodean la formación de un espacio
en la interfase implante-pilar, espacio que propicia las condiciones para la
colonización bacteriana, uno de los factores más importantes para la generación
de pérdida ósea peri implantar. En los últimos años, se ha encontrado en el
mercado, el uso de pilares implantares realizados con técnica CAD-CAM,
llamados también, pilares personalizados. Para justificar el uso de estos pilares,
éstos deberían ser capaces de igualar la adaptación de los pilares prefabricados
o mejorarla, por ende, en diversos estudios (13) (14), se ha realizado la
evaluación de las propiedades mecánicas de estos pilares en contraste con los
prefabricados o pilares de stock, y se ha propuesto una diferencia en la
adaptación marginal de los mismos, mostrando mejores resultados en la
generada con pilares prefabricados. Hamilton et al en 2013(14), realizaron un
estudio comparando el ajuste de pilares CAD-CAM con pilares pre fabricados,
este estudio mostró en primera instancia que el tamaño de la brecha en la
interfase implante-pilar varía entre 5-129 μm de acuerdo al tipo de pilar, encontró
que el tamaño del espacio varió significativamente, mostrando los implantes con
pilar CAD-CAM 48,7 μm ± 6,0, el pilar de titanio prefabricado 4 μm ± 1,2, también
se comparó con el pilar en oro synOcta® (Straumann Standard Plus) , el cual
mostro una brecha de 14.2 μm. Adicional a ello, se conoce la colonización
bacteriana de la interfase implante pilar, como uno de los factores principales,
generadores de pérdida ósea peri implantar, que además se ve influenciado por
las dimensiones y la conformación espacial de dicha interfase. Por este motivo,
se han realizado diferentes estudios, con respecto a la filtración bacteriana en la
interfase implante-pilar, bajo condiciones estáticas y dinámicas, y también han
arrojado datos importantes en cuanto a las diferencias encontradas para cada tipo
de conexión interna (15, 3, 16,17,18,19), pero aún se desconoce cómo puede
comportarse dicha filtración de microorganismos comparando la utilización de4 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
pilares personalizados elaborados por la misma casa comercial o por una casa
fabricante diferente.
Dada la importancia clínica de la presencia de bacterias en cercanía a los tejidos
peri implantares y el incremento gradual en el uso de este tipo de pilares, es
importante además de conocer su comportamiento mecánico, cómo el uso de
ellos puede modificar la filtración bacteriana a través de la interfase implante pilar,
comparado con los pilares personalizados elaborados por la misma casa de
implantes, que son hasta el momento los que han mostrado mejores resultados.
1.2 Planteamiento del Problema
Los componentes de implantes de dos piezas forman una interfase que da lugar a
la formación de un espacio entre los mismos(3), la interfase ha sido relacionada
ampliamente con la pérdida ósea peri implantar, en relación con la invasión del
espacio biológico peri implantar(20) y con la susceptibilidad a ser colonizada por
bacterias y por ende desencadenar una respuesta inmune que puede concluir en
la generación de destrucción tisular. La colonización bacteriana se genera dentro
de los 30 minutos después de realizar una cirugía(6), por este motivo, lograr
adaptación y un selle hermético de la interfase ha sido uno de los principales
objetivos, con el fin de disminuir las complicaciones a nivel mecánico y biológico.
Dentro de los factores que contribuyen a generar pérdida ósea se encuentran la
técnica quirúrgica, posición del implante, los micro movimientos, la presencia de
un espacio a nivel de la interfase y la colonización bacteriana(21); debido a la
importancia de este hecho, diferentes estudios se han enfocado en el análisis del
comportamiento de la interfase bajo condiciones estáticas y dinámicas(22,16,18),
a nivel mecánico y biológico, comparando los diferentes tipos de conexiones
existentes y comparando pilares cementados versus atornillados(15).
Volker et al 1997(23), realizaron un estudio con el fin de determinar sí diferentes
interfases pueden impedir la penetración microbiana según sus características,
comparando 13 sistemas de implantes diferentes, donde encontraron que el valor
de la media para la brecha fue de 5μm, como valor más alto 12 μm para Bonefit®
con pilar Octa (Straumann®) y el valor más bajo para Astra (Dentsply®) y Bonefit
con pilar cónico (Straumann®) con 2 μm de distancia, pero independiente de este
valor una de sus grandes conclusiones fue que ninguna interfase protege de la
filtración a pesar de lograr una buen ajuste de las partes. Koutouzis et al,
realizaron una serie de tres estudios consecutivos, el primero en el año 2009 (22),
donde se utilizó un modelo in vitro para conocer el riesgo potencial de invasión5
por microorganismos en la interfase implante-pilar, comparando tres conexiones
internas; concluyó que la conexión en cono morse (Ankilos Dentsply Friadent®)
demostró mínima filtración y que las diferencias entre las conexiones si genera
cambios importantes. Sugirieron el uso de carga dinámica, un año después (18),
realizaron un estudio con esta modificación en el cual encontraron 1 de 14
implantes con cono morse presentó filtración y 12 de 14 cono interno con cuatro
ranuras (Straumann®) la presentaron, concluyendo que diferentes conexiones
afectan el riesgo potencial de filtración bajo carga dinámica y nuevamente la
buena capacidad de selle de cono morse. En agosto del presente año publicaron
un tercer estudio (16), este con el fin de evaluar el efecto de la carga dinámica en
la colonización de microorganismos, donde exponen que la carga dinámica
produce micro movimientos del complejo implante-pilar que introduce un efecto
de bombeo, además, que la conexión de cono morse de 3° sin tornillo de fijación
(Implante de un accesorio, 4.0 x 12 mm-pilar estándar 5.0 mm, Custom Dental
Implants, Norwalk, WI) presenta mínima filtración, y sugieren realizar estudios
evaluando filtración de endotoxinas.
De este modo diferentes variables físicas y biológicas han sido estudiadas y han
arrojado datos importantes para la toma de decisiones clínicas. Es conocido que
cada implante según su manufactura, trae consigo un pilar prefabricado. En los
últimos años se ha popularizado la utilización de pilares personalizados o
individualizados, realizados mediante técnicas de CAD-CAM y que han sido
llamados en el medio europeo como pilares no originales cuando son fabricados
por casas comerciales diferentes a quien produce el implante, a partir de este
hecho, se han realizado diferentes estudios(13)(14) con el fin de evaluar la
compatibilidad de componentes elaborados por diferentes fábricas, encontrando
una diferencia con respecto a los pilares prefabricados, mostrando los últimos,
mayor adaptación marginal (13), pero hasta el momento, no se ha evaluado si, la
filtración bacteriana se comporta diferente de acuerdo a la casa fabricante,
entendiendo los pilares originales, como aquellos elaborados por la misma casa
fabricante del implante y como no-originales, aquellos elaborados por una casa
fabricante que presta el servicio a todas o algunas marcas de implantes. Dado
que en Colombia los implantes más utilizados son aquellos con conexión interna
hexagonal, el objetivo de este estudio es comparar la filtración bacteriana a través
de la interfase implante pilar, en condiciones estáticas y dinámicas, al utilizar
pilares personalizados elaborados por dos diferentes casas comerciales.6 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
1.3 Pregunta de Investigación
¿Cuáles son las diferencias en términos de filtración bacteriana en la interfase
implante-pilar con conexión interna al comparar pilares personalizados en
presencia de carga dinámica?
1.4 Conceptos Generales
1.4.1 Pilar: Componente atornillado que va sobre el implante dental y sirve para
soportar y/o retener una prótesis.
1.4.2 Tornillo de fijación: Aditamento (tornillo) que une el pilar al implante.
1.4.3 Interfase implante/pilar: zona de unión entre el implante y el elemento
protésico
1.4.4 CAD/CAM: Diseño asistido por computadora-manufactura asistida por
computadora.
1.4.5 Espectrofotometría: técnica analítica que permite determinar la
concentración de un compuesto en solución.
1.4.6 Absorbancia: cantidad de luz absorbida por un objeto o medio de cultivo.
1.5 Objetivos
1.5.1 Objetivo general
Comparar la filtración bacteriana en la interfase de implantes de conexión interna
con pilares personalizados, en presencia de carga dinámica in vitro.
1.5.2 Objetivo específico
 Evaluar la filtración bacteriana a través de la interfase de implantes
conexión interna con pilar personalizado, en un modelo dinámico in vitro.7
1.6 Hipótesis
1.6.1 Hipótesis nula. Los pilares prefabricados presentan menor magnitud
de la interfase implante –pilar y filtran menos.
1.6.2 Hipótesis alternativa. Los pilares personalizados presentan mayor
magnitud de la interfase y mayor filtración bacteriana2. Estado del Conocimiento
La sustitución de los dientes perdidos por análogos de las raíces integradas a los
tejidos, se constituye hoy como uno de los mayores avances clínicos en el área
de la odontología. Los implantes dentales, han sido utilizados con éxito por cerca
de 45 años, alrededor del mundo, basados en el principio de la oseointegración,
definida como una conexión directa estructural y funcional entre el hueso vivo,
ordenado y la superficie de un implante sometido a carga funcional (Branemark
Per-Ingvar). Por lo tanto, lograr la oseointegración, depende de las capacidades
de cicatrización, reparación y remodelado de los tejidos.
Por otra parte, el establecimiento de los criterios de éxito en implantes, lleva a
encontrar que el logro de la oseointegración, no constituye por sí misma un
tratamiento exitoso, contrario a ello, se han desarrollado diferentes retos a nivel
mecánico y estético, que han llevado al perfeccionamiento en la elaboración de
los implantes y por ende también de los procedimientos clínicos.(24)
Para lograr el mantenimiento de la salud y la estética de los tejidos peri
implantares, es necesaria una integración de tejidos blandos y duros;
anatómicamente los tejidos blandos peri implantares se dividen en: epitelio oral
queratinizado, que se continúa con el epitelio de unión, y el tejido conectivo, rico
en fibras colágenas. El tejido blando anteriormente descrito, depende en su parte
subyacente de un andamio de tejido duro, el hueso subyacente, el cual se
encuentra en permanente remodelación, en condiciones de normalidad. Este
equilibrio puede verse afectado, y tornarse en perdida ósea peri implantar,
influenciada por múltiples factores, dentro de los cuales encontramos: la técnica
quirúrgica, la calidad del tejido blando peri implantar o la presencia o ausencia de
tejido queratinizado (aunque este ítem ha sido ampliamente controvertido),
posición del implante, la presencia de una interfase implante-pilar, presencia de
microorganismos, el tipo de implante. (24)
Luego de lograr oseointegración, la conexión protésica elegida, será la
responsable de estabilizar el elemento protésico. La longevidad del implante y el10 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
tratamiento rehabilitador, se verá directamente afectado, por la estabilidad
lograda a este nivel.(25)
Una de las desventajas encontradas al utilizar materiales como el titanio en la
elaboración elementos trans mucosos, es el color que se transluce a través del
tejido blando. La introducción de pilares cerámicos (zirconia), han mejorado este
aspecto estético, que presenta gran relevancia, sobre todo en el sector anterior.
Además de la variedad de materiales, se ha logrado establecer la importancia del
diseño de la interfase implante pilar, desde el punto de vista biológico y mecánico.
(24)
2.1 Partes del Implante
El cuerpo del implante se compone del módulo crestal, cuerpo y ápice.
Figura 1 Partes del implante dental, Lindhe página 101.
El módulo de la cresta, es la porción diseñada para contener el componente
protésico, en sistemas de implantes de dos piezas. La plataforma del implante es
aquella sobre la cual descansa el pilar y cuya función es resistir cargas axiales,
además en ella se encuentra un elemento anti rotacional que puede encontrarse
sobre ella (conexión externa), o en el interior del cuerpo del implante (conexión
interna).
2.2 Tipos de Conexiones
La conexión externa hexagonal ha demostrado tener ventajas como su
mecanismo anti rotacional, recuperabilidad, y compatibilidad entre diferentes
sistemas (25), sin embargo, también ha demostrado tener grandes desventajas
como la presencia de micro movimientos, debido a la baja altura del hexágono,11
aflojamiento o fractura del tornillo de fijación, una baja resistencia a la rotación y
movimientos laterales y un mayor espacio en la interfase implante-pilar, que
puede conducir a la presencia de pérdida ósea.(25) Estudios clínicos han
mostrado que un 30.7% a 49% de los tornillos de fijación se pierden en los
implantes de conexión externa.(25)
Figura 2: a. conexión externa hexagonal b. conexión externa hexagonal (microscopia electrónica
de barrido) (26), (25).
Con respecto a las conexiones internas (hexagonal, triangular, octogonal y
cónica), mostraron mejor adaptación entre los conectores como resultado de la
interposición entre el pilar protésico y el implante.(25) La conexión interna
hexagonal, ha demostrado presentar ventajas como una conexión fácil del pilar,
adecuado para la colocación en una etapa del implante, alta estabilidad y
capacidad anti rotacional, adecuado para la restauración de un solo diente, alta
resistencia a las fuerzas rotacionales y mejor distribución de fuerzas. Dentro de
las desventajas se encuentra una pared lateral más delgada en la zona de la
conexión, y dificulta de ajustar las divergencias en ángulos entre los
accesorios.(27)12 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
Figura 3: a) conexión interna hexagonal b) vista transversal (26), Kim et al
2011 citado por (25)
La conexión interna cónica, se basa en el principio de “cono en un cono”, provee
una unión intima entre el implante y el pilar, condición que mejora la estabilidad
mecánica. Este tipo de conexión fue desarrollado por Stephen Ambrose Morse en
1864, y se introdujo en implantologÍa en 1985 por Thomas D. Driskell en Estados
Unidos. La fijación y estabilidad del pilar, no dependen directamente del tornillo de
fijación, son otorgados por la fricción entre el implante y el pilar.(28)
Para que una conexión sea considerada como Morse, la suma de los ángulos
internos de los componentes debe ser menor a 3.014° de divergencia, además no
utilizan tornillo de fijación. Los implante cuyos ángulos son mayores a 3.014°, se
consideran cónicos, y utilizan un tornillo de fijación, para dar retención.(25)
Figura 4: conexión cónica a) cono Morse b) cónica con tornillo de fijación citado por (25)13
Los sistemas de conexión cónica y cono Morse, han demostrado favorecer el
posicionamiento de los pilares, proporcionar una mejor distribución de
fuerzas.(25)
2.3 Tipos de Pilares
El pilar protésico es la porción encargada de retener el componente protésico. Es
aquel que genera retención a una prótesis removible o fija. Puede clasificarse de
acuerdo al método con el cual sujeta el elemento protésico: atornillado o
cementado. Además puede subdividirse en rectos o angulados, de acuerdo a la
relación que guarden con el eje axial del implante.
De acuerdo al tipo de elaboración en: pilares pre fabricados en serie en titanio o
zirconia, pilares calcinables o parcialmente calcinables y pilares personalizados.
De acuerdo a la técnica de fabricación, los pilares personalizados pueden ser 1)
fundidos convencionalmente, 2) elaborados a partir de refuerzo con fibra de
carbono/grafito polimetacrilato, 3) en titanio utilizando láser y 4) mediante técnicas
CAD/CAM, en materiales como titanio, alúmina y zirconia.(2)
Los pilares elaborados mediante técnica CAD (diseño asistido por
computadora)/CAM (manufactura asistida por computadora), presentan ventajas
importantes como: un material de elaboración homogéneo y de latas propiedades
mecánicas, dado que proviene de un bloque sólido; las imprecisiones se ven
minimizadas, pues no requiere fundición de cera y pasos que podría aumentar el
costo del procedimiento, por otro lado, esta tecnología ha logrado mejorar el perfil
de emergencia de las restauraciones y ha logrado generar angulaciones con el fin
de corregir posiciones desfavorables de los implantes. (2)
2.4 Interfases en los sistemas de implantes
La colocación del completo implante-pilar, genera la formación de diferentes interfases,
dentro de las cuales encontramos:
 Interfase hueso-implante
 Interfase implante-pilar
 Interfase implante-tornillo de fijación
 Interfase implante-pilar14 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
Pilar
e
t Hueso
n
a
l
p
m
I
T ornillo
Figura 5: interfases formadas tras la colocación de un implante dental: a) interfase hueso-implante, b)
interfase implante pilar, c) interfase pilar-tornillo de fijación.
2.4.1 La Interfase Implante-Pilar
Los sistemas de implantes de dos fases presentan una cavidad que se genera en
la unión del implante con el pilar, este espacio puede actuar como un reservorio
de microorganismos que pueden eventualmente generar una reacción
inflamatoria de los tejidos peri implantares y por ende puede conducir a
destrucción tisular, además de la importancia de este espacio en sí, desde el
punto de vista biomecánico, se han evidenciado problemas como el micro
movimiento y aflojamiento del tornillo de fijación.
El desajuste entre las partes y la falta de ajuste pasivo puede conducir a fractura
de componentes protésicos, tornillo de fijación o del implante. Funcionalmente el
desajuste puede causar sobrecarga al pilar, y una distribución de fuerzas no axial.
El espacio generado por el mismo desajuste, puede conducir al acúmulo de
microorganismos que causan respuesta inflamatoria en los tejidos peri
implantares.
Los tres principales factores identificados como posible causa de formación de
micro espacios son: la carga oclusal durante movimientos fisiológicos, tolerancia
de manufactura y micro movimiento en la conexión implante-pilar. (29)
Se han establecido diferentes técnicas para realizar la medición de la interfase
implante-pilar, dentro de las cuales se encuentran: técnicas de visión directa,
medición de una sección transversal, mediante impresión y el uso de un
explorador con exámen visual. Las técnicas de visión directa presentan como15
ventaja, no ser destructivas, por lo tanto permite observar cambios bajo diferentes
condiciones, pero en ocasiones se tornan subjetivas, dada la presencia de
extremos redondeados que no permiten repetibilidad de la toma de las medidas.
La visión en sección transversa, permite repetir las medidas y mayor precisión,
pero, no permite seguimiento de la muestra en tiempos y condiciones diferentes
(30).
Kano et al en 2007 (30), propone un sistema de clasificación basado en el
microespacio vertical y horizontal que se genera en la interfase implante-pilar, de
la siguiente manera:
Figura 6: clasificación de la interfase implante pilar (30)
La desadaptación vertical (A), se define como el espacio vertical medido desde el
punto cero en una línea a través del punto más externo del implante, sin tener en
cuenta el externo redondo y la misma zona del pilar.
La desadaptación horizontal (B), es la diferencia horizontal desde el punto cero,
hasta el contorno exterior del pilar. Si el pilar es más ancho que el implante hay
un sobre contorno horizontal (B > 0); si el pilar es más estrecho que el implante,
hay un infra contorno (B <0).
TIPO I: no hay espacio horizontal o vertical medible. Esta clase, se considera la ideal.
TIPO II: solo se encuentra una desadaptación horizontal. B > 0 o B <0.
TIPO III: solo se encuentra una desadaptación vertical. A > 0.
TIPO IV: se observa desadaptación tanto horizontal como vertical.16 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
La medición del tamaño de la interfase y la inter relación entre dicho espacio y la
proporción de bacterias que logran colonizarlo, ha sido ampliamente estudiada,
debido a su relevancia clínica.
2.4.2 Colonización por Microorganismos
La colonización bacteriana de la superficie del implante, sucede 30 minutos
después de terminada la cirugía, la contaminación puede ser resultado de 1) la
contaminación durante la primera o segunda fase quirúrgica y 2) la transmisión de
microorganismos desde el ambiente oral (7). La acumulación de microorganismos
y sus productos en cercanía a la cresta ósea, genera una respuesta tisular que
puede eventualmente inducir mecanismos de reabsorción ósea, generando así
peri implantitis, y en última instancia, falla del implante. En este sentido, el tamaño
de la brecha en la interfase, cobra una vital importancia, pues el tamaño de la
misma se presentará como un ambiente propicio para el acúmulo de
microorganismos.
Además de ello, la correlación entre los aspectos biomecánicos y los aspectos
biológicos, se hace evidente. Ricomini et al en 2010 (31), realizaron un estudio in
vitro, cuyo objetivo fue evaluar la perdida de la pre carga y la penetración
bacteriana a través de la interfase implante-pilar en implantes de conexión
interna cónica y conexión externa hexagonal, en condiciones de termo ciclado y
fatiga mecánica, encontrando que todos los sistemas presentan perdida de torque
posterior a ser sometidos a estas condiciones; con respecto a colonización
bacteriana, se encontró que el tonillo del pilar en la conexión externa, no se
encontraba contaminado, mientras que en todas las conexiones cónicas se
detectaron bacterias en el tornillo del pilar. Prudente et al en 2012 (32), realizaron
un estudio in vitro dividido en dos fases, la fase inicial consistió en comparar
diferentes concentraciones de bacteria y la segunda fase en comparar la micro
filtración bacteriana, en función del torque aplicado al pilar; encontrando que la
mejor concentración para realizar los ensayos in vitro es de 0.5Μl, para no caer
en un sobre flujo de bacterias que pueda ocasionar un falso positivo, además de
ello, no encontraron una relación significativa entre los valores de torque y la
concentración de bacterias.
Diferentes autores han realizado estudios comparando la filtración bacteriana en
diversos sistemas de implantes, con diferentes tipos de conexiones, en
condiciones estáticas y dinámicas, con diferentes tipos de pilares protésico, con17
diferentes tipos de microorganismos como bacterias y hongos, e incluso con
endotoxina y sustancias como rodamina b. la filtración, puede ser evaluada en
dos sentidos: desde fuera de implante hacia la parte interna, y en dirección
contraria.
Jansen et al en 1997(3), realizaron mediciones del ajuste marginal en la interfase
implante-pilar en condiciones estáticas, de trece sistemas diferentes mediante
microscopia electrónica de barrido, y determinaron la filtración bacteriana desde
la parte interna, hacia el exterior; encontrando que la brecha marginal fue menor a
10μm para todos los sistemas pre fabricados, el pilar Octa modificado presentó un
espacio de 12μm y la media de todos los valores fue de 5μm. Ninguno de los
sistemas evaluados impidió la fuga bacteriana.
Callan et al en 2005(33), realizaron identificación de bacterias mediante sondas
de ADN, de muestras tomadas en 32 pacientes que se encontraban rehabilitados
sobre implantes, encontrando que la colonización bacteriana en la parte interna
del implante se genera durante los primeros 25 días posterior a la segunda fase
quirúrgica y colocación del pilar de cicatrización.
Fürst et al 2007 realizaron un estudio (6) con el fin de evaluar la colonización
temprana en implantes de titanio después de la colocación y durante las primeras
12 semanas posteriores a la cirugía, encontrando que la microbiota se establece
inmediatamente tras la colocación del implante; Callan et al en 2005 realizaron un
estudio (33) de identificación bacteriana a través de sondas de ADN, pudiendo
observar en la segunda fase quirúrgica, la colonización de las partes internas del
implante en los 25 días siguientes a la colocación del pilar de cicatrización.
Jansen et al 1997 (3), realizaron mediciones del ajuste marginal en la interfase
implante-pilar de trece sistemas diferentes mediante microscopía electrónica de
barrido, y determinaron la filtración bacteriana a través de la misma desde su
parte interna hacia el exterior; la media para la brecha marginal fue menor de 10
μm para todos los sistemas prefabricados, solo el pilar Octa modificado presentó
un espacio máximo de 12μm y la media para todos los valores fue de 5μm. Astra
Tech (Dentsply®) y Bonefit (Straumann®) con pilar cónico y Octa presentaron una
medición entre 1-2 μm y para el sistema Ankylos (Dentsply Friadent®) fue de 4
μm; respecto a los hallazgos a nivel microbiológico reportan presencia de
filtración bacteriana desde el primer día del ensayo en todos los sistemas y como
conclusión general, ninguno de los sistemas impidió la fuga bacteriana (3).
Hamilton et al 2013 realizaron un estudio (14) con el fin de comparar el ajuste de
componentes verticales y horizontales en pilares prefabricados vs realizados con
manufactura CAD/CAM, encontrando que los pilares con oro synOcta (Straumann18 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
Standard Plus®) presentaron una media para la brecha en la interfase de 1.86μm
con respecto a los pilares Nobel Procera CAD/CAM titanio, con un valor de
P=0.002, los pilares Nobel Esthetic presentaron una media para la brecha de 0.33
μm con un valor de P=0.059 comparado con el pilar Nobel Procera CAD/CAM
titanio, para los demás grupos no se encontró diferencia significativa. Con
respecto a las discrepancias verticales, en general pudo observarse diferencia
significativa con un valor de P=0.026, de manera específica en el sistema de
implantes Straumann Standard Plus, el pilar CAD/CAM presentó una brecha con
una media de 48.7μm, presentado una diferencia de 34.4μm con respecto al pilar
en oro synOcta (Straumann Standard Plus®) donde se observó una media para la
brecha de 14.2 μm y al pilar en titanio synOcta (Straumann Standard Plus®) con
un valor de 4.0 μm; este estudio concluye que se puede encontrar espacios
mayores entre los componentes internos de los pilares en CAD/CAM, que en los
prefabricados, se pueden encontrar diferencias en los diseños y esto puede
afectar el ajuste de los componentes internos con las conexiones, estas
diferencias generadas en el ajuste traen consecuencias en la estabilidad, a nivel
técnico y biológico.
Koutouzis et al realizaron tres estudios consecutivos, en relación a la filtración
bacteriana en la interfase implante-pilar. Los dos primeros ((22)(18)), tenían como
objetivo evaluar el riesgo potencial de invasión por microorganismos en la
interfase implante-pilar, utilizando diferentes conexiones, en condiciones estáticas
y dinámicas. Los resultados de estos estudios mostraron que la conexión en cono
morse (Ankilos Dentsply Friadent®) mostró mínima filtración y que diferentes
conexiones afectan el riesgo potencial de filtración bajo carga dinámica.
Posteriormente en agosto de 2014 se realizó un tercer estudio (16), cuyo objetivo
fue evaluar el efecto de la carga dinámica en la colonización de la interfase
implante-pilar por microorganismos, utilizando la conexión Cono Morse; se obtuvo
como conclusiones que la carga dinámica tiene un efecto en la filtración
bacteriana, dado que, los implantes que se mantuvieron en condiciones estáticas,
presentaron menor filtración, 1 de 20 no cargados presentaron filtración y 4 de 20
cargados la presentaron.
En los últimos años, se ha incrementado el uso de pilares personalizados,
elaborados mediante técnicas de CAD/CAM. Estos pilares se encuentran
disponibles en el mercado, elaborados por la misma casa comercial que fabrica
los implantes y se han llamado en otros medios como originales; ó elaborados por
casas comerciales que poseen la capacidad de fabricar pilares personalizados
para todos los sistemas de implantes y que son llamados, no originales o
compatibles. Un estudio como el publicado por Berberi et al (34) en julio del
presente año, evalúan la filtración mediante el uso de rodamina B, utilizando19
pilares originales y compatibles con implantes OsseoSpeed™. Este estudio
encontró en porcentajes de filtración, que el grupo que utilizó pilar original
TiDesign™ presentó un 1.48% de filtración, y los grupos que utilizaron pilares
“compatibles o no originales”: Natea™ presentó un 27.92%, Dual™ 10.59% y el
pilar Implanet™ presentó un 66,71%, además llegó a la conclusión que los
implantes con pilares compatibles no presentan un ajuste perfecto de las partes
internas, lo cual incrementa la posibilidad de filtración.
2.5 Espectrofotometría
La espectrofotometría es una técnica analítica que permite determinar la
concentración de un compuesto en solución. Es capaz de identificar y cuantificar
biomoléculas en solución y muestras biológicas.
Su fundamento se debe a la capacidad de las moléculas para absorber
radiaciones, entre ellas, las que se encuentran dentro del espectro UV-visible. En
espectrofotometría de absorbancia, se utilizan regiones del espectro ultra violeta
(UV-195-400nm) y el visible (400-780nm).
Tabla 2-1 Tabla de longitud de onda y absorbancia para medios amarillos.
2.5.1 Tramitancia y Absorbancia
La tramitancia de una sustancia es la relación entre la cantidad de luz transmitida
que llega al detector una vez que ha atravesado la muestra y la cantidad de luz
que incidió sobre ella.
La absorbancia indica la cantidad de luz absorbida. Esta cantidad de luz
absorbida dependerá de la distancia que atraviesa la luz a través de la solución
del cromóforo y la concentración del mismo.20 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
Figura 7: Espectrofotómetro3. Materiales y Métodos
3.1 Tipo de Investigación
Esta es una investigación de tipo experimental in vitro. Se utilizaron como
muestra, implantes de conexión interna hexagonal, con pilares elaborados en
titanio y zirconia. Los pilares se encontraban cargados previamente, esta carga se
realizó en un dispositivo de carga dinámica estandarizado según la norma
ISO/FDIS 14801:2007.
Revisión bibliográfica
Implantes sometidos a
Materiales
carga dinámica.
Medición del tamaño de la
METODOLOGIA interfase- Microscopia Obtención de datos
electronica de barrido.
Evaluación de filtración
bacteriana de afuera hacia Obtención de datos
adentro del implante.
Análisis de resultados
Tabla 3-1. Esquema de metodología utilizada en la investigación22 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
3.2 Unidades Experimentales
Se utilizaron 9 implantes de titanio de conexión interna (grado IV, 4 x 11.5mm,
Osseotite Tapered Certain , 3i Biomet). Se ensamblaron con pilares maquinados
® ®
personalizados en titanio y zirconia, y pilares prefabricados en titanio.
3.2.1 Fabricación de pilares personalizados
Se fabricaron tres pilares personalizados idénticos en zirconia y titanio con
tecnología CAD/CAM, tomando como referencia la configuración de los pilares Zi-
Real® de altura 7mm y diámetro 5mm con un hombro de 4mm.
Figura 8: pilares utilizados en el estudio a) Provide® b) Encode® Titanio c) Encode® Zirconia. Tesis
de maestria (35)
Pilares en zirconia:
 Personalizado CAD-CAM Encode®, conexión cerámica.
Pilares en titanio:
 Prefabricado Provide® conexión metálica
 Personalizado CAD-CAM Encode®, conexión metálica.23
3.3 Carga dinámica in vitro
Figura 9: a) Dispositivo de carga cíclica señalando los diferentes componentes: PLC, FRL, actuador y mandril
de fijación del implante. b) Vista ampliada del dispositivo, señalando el actuador y la celda de control de
carga, así como un acercamiento del pistón del actuador con recubrimiento en zirconia. Tomado de tesis de
maestría (35)
3.4 Procedimiento para evaluar el tamaño de la interfase
implante-pilar
 Se realizó lavado y secado de las muestras, con el fin de evitar la
observación de cuerpos extraños.24 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
 Se ensamblaron los pilares a los implantes, empleando un torque de
20Ncm.
 Se fijaron los implantes en una placa de acetato, por cada grupo, con el fin
de mantenerlos estables en el momento de observar al microscopio.
 Se tomaron tres fotografías por cada muestra, magnificaciones de 50x,
500x y 3000 x.
 Se realiza la medición de la interfase implante-pilar, mediante el analizador
de imágenes ImageJ.
Figura 10: imágenes de microscopia electrónica de barrido. Interfase implante-pilar a diferentes
magnificaciones25
3.5 Procedimiento para evaluar la filtración de bacterias
en la interfase implante-pilar.
 Se realiza lavado y secado de las muestras. Se coloca en jabón enzimático
por 10 minutos, se lava con cepillo y agua. Se seca y empaca cada uno en
una bolsa de polipropileno.
 Se lleva a la central de esterilización de la Facultad de Odontología de la
Universidad Nacional de Colombia.
3.5.1 Preparación de la bacteria E. coli
 Se utilizó bacteria E.coli ATCC.
 Se eleva su temperatura al medio ambiente
 Se realiza siembra en agar sangre, MacConkey y agar Muller, se introduce en
incubadora a 37°C, por 24 horas.
Figura 11: activación de la bacteria E. coli. a) agar Muller b) agar sangre. Nótese las colonias de color
uniforme.
 Se extraen los cultivos, se observa crecimiento positivo, sin contaminación
por hongos u otros microorganismos.26 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
3.5.2 Preparación del caldo contaminado
 Se toma con asa redonda colonias del agar Muller y se inoculan en medio
BHI (infusión cerebro corazón preparado en el laboratorio de medios
(microbiología) de la Facultad de Medicina de la Universidad Nacional de
Colombia).
 Se obtiene una concentración de 0.5 de la escala de MacFarland (1x108
unidades formadoras de colonia).
 Se vierte medio contaminado en 9 tubos plásticos transparentes, cada uno
con 25ml de medio contaminado.
Figura 12: Caldo BHI contaminado: a) cámara de flujo laminar. b) tubos con medio contaminado,
marcados según la codificación asignada. c) muestra en 25ml de caldo contaminado con E. coli. d)
muestras en incubadora a 37°C.
3.5.3 Introducción de muestras en el medio contaminado
 Todo el procedimiento se realiza en la cámara de flujo laminar, con el fin
de evitar contaminación con otros microorganismos.
 Se destapa cada implante, el operador utiliza guantes estériles y todos los
elementos se encuentran estériles.
 Se realiza sellado de la chimenea de los implantes introduciendo algodón
estéril y resina System, se polimeriza 20 segundos.27
 Se introducen los implantes en los tubos marcados y se llevan a incubar
por 24 horas a 37°C.
 Control positivo: análogo estéril introducido en un medio contaminado con
bacterias. Se puso a incubar.
 Control negativo: un tubo con medio estéril, se pudo a incubar.
3.5.4 Toma de la muestra
 se desensamblaron los pilares, mediante un torcómetro estéril, y se realizó
la toma de la muestra de la siguiente forma:
1- muestra 1: tornillo de fijación colocado en un medio BHI estéril.
2- Muestra 2: con un microbrush, se toma muestra de la plataforma del
implante.
3- Toma de muestra del análogo con microbrush.
 Se realizaron movimientos de agitación y se pusieron los tubos a incubar
por 24 horas a 37°C.
Figura 13: toma de la muestra, se introduce en tubo de ensayo con medio estéril. a) Tornillo de
fijación b) micro brush posterior a la toma de la muestra. c) muestras en cultivo, incubadora a 37°C.28 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
 Se realiza el retiro del tornillo de fijación y el brush del medio.
 Se realiza agitación del medio y se lleva al espectrofotómetro para leer la
absorbancia del medio.
Figura 14: muestra de elementos protésicos 24 horas después: a) tornillo de fijación ENCZI12 b)
tornillo de fijación muestra PROTI 18. Nótese la diferencia en la turbidez del medio. C) Muestra de la
plataforma PROTI18.
3.5.5 Evaluación de la absorbancia
 Previamente se estandarizó la toma de la absorbancia para medios amarillos,
mediante la utilización de un medio estéril como blanco y una longitud de onda de
500nm.
 Se utiliza el medio estéril como blanco para cada ensayo
 Se introduce el tubo en el espectrofotómetro (Génesis 20) y se obtiene el dato de
la absorbancia por cada muestra.29
Figura 15: Espectrofotómetro: a) colocación del tubo. B) Longitud de onda y absorbancia.4. Resultados
T
4.1 amaño de la interfase implante-pilar
 Se tomaron 8 medidas de la interfase y se determinó el promedio para dar
la medida definitiva.(30)
 La siguiente Tabla 4-1 ilustra el promedio de los valores de la interfase
implante-pilar.
VALOR EN
MUESTRA μm
ENC TI 1 2,698
ENC TI 2 20,837
ENC TI 3 7,736
PRO TI 1 2,324
PRO TI 2 4,221
PRO TI 3 4,496
ENC ZI 1 8,936
ENC ZI 2 15,831
ENC ZI 3 4,343
Tabla 4-1. Tamaño de la interfase implante-pilar medido en micras
Se realizó el test ANOVA para comparar el tamaño de la interfase implante-pilar,
donde se encontró que el valor de P= 0.00, rechaza la hipótesis nula, señalando
que la medida de la interfase implante pilar es diferente para todos los implantes
y para todos los grupos. Los valores se señalan en la Tabla 4-2 y Figura 4-1.31
Fuente Suma de Cuadrados Gl Cuadrado Medio Razón-F Valor-P
Entre grupos 658,144 2 329,072 11,51 0,0000
Intra grupos 1971,91 69 28,5785
Total (Corr.) 2630,06 71
Tabla 4-2. Tabla ANOVA para Interfase por Tipo de Pilar
Gráfica 4-1. Gráfico de caja y bigotes para interfase por tipo de pilar.32 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
Gráfico Caja y Bigotes
Encode Titanio
R
A
L
IP
E Encode Zirconia
D
O
P
IT
PROVIDE
0 4 8 12 16 20 24
INTERFASE µm
Gráfica 4-2. Gráfico caja y bigotes para interfase por grupos de pilares.
4.2 Absorbancia
 La muestra del implante ENC Ti 8, no pudo ser tomada, debido a la imposibilidad
de desatornillar el pilar.
 La muestra del tornillo de fijación del implante Pro Ti 17 fue eliminada.
 La Tabla 4-3, muestra las diferentes absorbancias arrojadas por el
espectrofotómetro, en cada una de las muestras analizadas.
 Se observó que la absorbancia en términos generales, fue mayo en la muestra
tomada de la plataforma del implante con respecto al tornillo de fijación.
 Se presentaron algunos datos atípicos, como es el caso de la muestra PRO
2,quien presentó una absorbancia similar al control negativo.
MUESTRA TORNILLO PLATAFORMA CONTROLES
CONTROL
NEGATIVO 0,005
CONTROL
POSITIVO 1.167
ENCTi1 0,894 0,885
ENCTi2 NO NO
ENCTi3 0,943 0,933
ENCZr1 0,895 0,91333
ENCZr2 0,924 0,93
ENCZr3 0,926 0,965
PRO1 NO 0,917
PRO2 0,005 O,892
PRO3 0,892 0,931
Tabla 4-3. Tabla de valores de absorbancia del medio de bacterias en los componentes protésicos y
grupos control positivo y negativo
Absorbancia del medio de bacterias en
componentes protésicos
PRO3
PRO2
PRO1
ENCZr3
r
a
liP
ENCZr2
e
d
ENCZr1
o
p
iT ENCTi3
ENCTi2
ENCTi1
Control
0,000 0,500 1,000 1,500
Control - Control + Plataforma Tornillo
Nivel de Absorbancia
Gráfica 4-3. Gráfica de absorbancia del medio de bacterias en los componentes protésicos34 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
4.3 Absorbancia versus interfase
Gráfico combinado interfase-
absorbancia
Interfase µm Absorbancia
25,0 1
20,0 0,8
15,0 0,6
10,0 0,4
5,0 0,2
0,0 0
EncTi1 EncTi 2 EncTi3 EncZr1 EncZr2 EncZr3 Prov1 Prov2 Prov3
Gráfica 4-4. Gráfica combinada tamaño de la interfase y absorbancia del medio por tipo de pilar5. Discusión
La interfase implante-pilar es una zona susceptible a cambios dimensionales;
características como el material del pilar, la pre carga y el tipo de pilar (prefabricado,
personalizado), se presentan como elementos relevantes en la disposición de la misma.
Realizando una comparación con los diferentes estudios consultados, encontramos que,
la metodología utilizada es similar, aunque a pesar de ello, no es totalmente comparable,
debido a algunas diferencias en los procedimientos y técnicas utilizadas en microbiología.
Sin embargo, pudimos observar que, fue satisfactoria y obtuvimos algunos resultados
interesantes.
En el Anexo 1, se encontrará un cuadro comparativo de los diferentes artículos con las
diferentes metodologías utilizadas.
La micro filtración bacteriana puede ser evaluada de forma bidireccional, en su gran
mayoría, los estudios de este tipo se han realizado desde dentro del implante hacia el
medio externo (10,8, 36, 37, 23), por ende no pueden ser comparados con nuestra
investigación.
Estudios como (9, 38, 22, 18, 16, 7), evalúan la filtración bacteriana desde el medio
externo hacia dentro del implante, hallazgos similares fueron encontrados con el presente
estudio. Observamos que todos los implantes, presentaron filtración, independiente de su
magnitud, esto de acuerdo con Baggi et al en 2013 (9), quien estudió diez diferentes tipos
de implante y evaluó la micro filtración bacteriana, encontrando que ninguno de ellos tuvo
la capacidad de generar un sellado efectivo a nivel marginal. Sato et al en 2011 (38),
evaluaron la filtración de microorganismos de forma bidireccional, en implantes de
conexión externa e interna, encontrando que las dos conexiones permiten el paso de
bacterias tanto desde como hacia la parte interna del implante.
Estudios como Tesmer et al en 2009(22), indican que las diferencias en el diseño de las
implantes afecta el riesgo potencial de colonización de la interfase; nuestro estudio se
realizó utilizando solo un tipo de implante, y la variable fue el material y tipo de
elaboración del pilar, desde este punto de vista, se sugiere realizar estudios que evalúen
más variables que influencien la tasa de filtración a este nivel.36 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
Con respecto al tamaño de la interfase implante-pilar, encontramos diferencias en el
tamaño de todas las muestras analizadas, además de ello, pudimos observar que,
algunos de los pilares, presentaban desadaptación tanto vertical como horizontal (30),
este hecho es importante a la hora de realizar la medición de las interfases. Por otro lado,
a pesar de que las fotografías fueron tomadas en el mismo momento, por el mismo
operador y en el mismo microscopio, algunas de ellas no eran 100% claras y fue difícil
evaluar el tamaño de la interfase, en algunos casos la diferencia de tamaño fue atípica, lo
cual puede generar errores en el análisis.
La evaluación del tamaño de la interfase, se realizó de acuerdo a Kano et al en 2007
(30),quien realiza una clasificación de la desadaptación en la interfase implante-pilar y
sugiere realizar la toma de las medidas en 8 localizaciones.
La textura de superficie con el parámetro Sdr % de la zirconia es de 77,210 % de
acuerdo a los resultados reportados en la tesis de maestría (35). Dicha rugosidad es
mayor que la del titanio (1,7%), lo que llevaría a pensar que las bacterias se podrían
adherir más a estas superficies que presentan mayor rugosidad y capacidad de
retención. En este estudio, utilizamos pilares maquinados en zirconia, pero la toma de la
muestra se realizó en el tornillo de fijación y la plataforma del implante, por ende, es
posible, que la mayor cantidad de bacterias se encontrara en la superficie del pilar,
teniendo en cuenta las características del material.
Se sugiere entonces, realizar toma de muestras de los pilares y evaluar la adherencia
bacteriana sobre diferentes superficies sometidas a estudios de rugosidad.6. Conclusiones y recomendaciones
6.1 Conclusiones
Dentro de las limitaciones de este estudio se pueden establecer las siguientes
conclusiones
 Hay diferencias estadísticamente significativas en el tamaño de la
interfase implante-pilar de todos los sistemas analizados.
 Los valores de absorbancia tuvieron un comportamiento similar entre los
grupos, menor que el grupo control positivo de 1,16.
 Todos los sistemas de implantes filtraron independiente del tipo de pilar
utilizado.
 No se encontró una correlación significativa entre el tamaño de la interfase
implante-pilar y la absorbancia.
 La metodología utilizada en la cuantificación de la filtración fue
satisfactoria.
6.2 Recomendaciones
 Para próximos estudios se debe tener en cuenta las tolerancias de maquinado de
los diferentes sistemas de CAD/CAM controlando las condiciones de fabricación.
 Se encontraron falencias metodológicas para la cuantificación del tamaño de la
interfase, por lo que se recomienda una muestra de mayor tamaño y cuantificar la
desadaptación tanto vertical como horizontal.38 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar
 A pesar de que la metodología utilizada en la evaluación de la filtración en la
interfase fue satisfactoria, es necesario indagar en nuevas técnicas para lograr
cuantificar de una manera más confiable la concentración de bacterias. El uso
de microscopia de fluorescencia y confocal, .con la ayuda de fluorocromos podría
ser una buena opción para obtener datos más cercanos a la realidad.
 Se sugiere realizar estudios de mayor magnitud, que evalúen diferentes variables
como el torque de precarga, rugosidad se superficie, tipo de implante, tipo de
conexión, tipo de pilar, tipo de fabricación del pilar y tolerancias de maquinado.A. ANEXO: Tabla comparativa de
metodologías aplicadas en estudios de
colonización bacteriana en la interfase
implante-pilar40 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar4142 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar4344 Colonización bacteriana en la interfase implante-pilar7. Bibliografía
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