Obtención de Rellenos Subdérmicos a partir de Ácido Hialurónico y Fibroblastos en Ratas Wistar
Autor: Castro Ayarza, Juan Raúl
Asesor: Narváez Rincón, Paulo César
Fecha: 2012
Programa: Bogotá - Medicina -Fisioterapia
Facultad: Facultad de Medicina

Resumen: Objetivo: Obtener y evaluar un equivalente tisular a partir de fibroblastos autólogos de ratas Wistar combinado con ácido hialurónico para el desarrollo de un relleno subdérmico.  Materiales y Métodos: se obtienen y mantienen fibroblastos humanos in vitro, evaluando su cantidad por conteo en cámara de Neubauer. Se determina la viabilidad y capacidad proliferativa de los fibroblastos humanos a diferentes concentraciones de ácido hialurónico in vitro, mediante evaluación fotográfica y análisis de imágenes. Se implantan rellenos subdérmicos compuestos de ácido hialurónico y fibroblastos, y se evalúa el comportamiento in vivo del material de relleno en el tejido celular subcutáneo de cuatro ratas Wistar, mediante estudio de histopatología.  Resultados: Los fibroblastos humanos se reproducen in vitro en un conteo de 400.000 fibroblastos en 48 horas. Los fibroblastos humanos se reproducen con concentraciones de ácido hialurónico al 2% y al 12%, después de la evaluación a 5 días. Las cuatros ratas Wistar toleran los rellenos subdérmicos de ácido hialurónico y fibroblastos, comparados con el control, sin presencia de efectos adversos  Conclusiones: Los rellenos subdérmicos de ácido hialurónico y fibroblastos, no afectan el comportamiento animal, ni presentan efectos adversos. / Abstract. Title: Obtention of subdermic fillers from fibroblasts and hialuronic acid in Wistar rats.  Objetive: To obtain and evaluate a tissue equivalent combining autologous fibroblasts from Wistar rats and hialuronic acid for the development of facial filler in a pilot study.  Materials and Methods: Human fibroblasts were obtained and cultured in vitro, cell counts and viability were evaluated using Neubauer chamber and followed for five days. The reproduction rate of the human fibroblasts was determined at different concentrations of hialuronic acid in vitro, through photographic evaluation and images analysis. The subdermic fillers compounded of fibroblasts and hialuronic acid, were implanted in the subcutaneous cellular tissue of four Wistar rats. The in vivo was evaluated through histopathology.  Results: .Human fibroblasts duplicated their cell count inside the boxes every 48 hours, at 2 % and 12 % hialuronic acid concentration. The Wistar rats used in this pilot study tolerated the intervention with the subdermic fillers of fibroblasts and hialuronic acid, without any adverse effects, when compared to controls.  Conclusions: The subdermic fillers of fibroblasts and hialuronic acid do not affect the cellular growth nor the scaring process in the animal model skin, neither showed adverse reaction in this pilot study.

Obtención de Rellenos Subdérmicos
a partir de Ácido Hialurónico y
Fibroblastos en Ratas Wistar
Doctor
Juan Raúl Castro Ayarza
Universidad Nacional de Colombia
Facultad de Medicina, Departamento de Medicina Interna
División Especializada en Dermatología
Bogotá, Colombia
2012Obtención de Rellenos Subdérmicos
a partir de Ácido Hialurónico y
Fibroblastos en Ratas Wistar
Doctor
Juan Raúl Castro Ayarza
Trabajo de investigación presentado como requisito parcial para optar al título de:
Especialista en Dermatología
Director:
Docente Asociado, Médico Dermatólogo Universidad Nacional de Colombia
Héctor José Castellanos Lorduy
Codirectora:
Profesora Titular Departamento Ciencias Básicas Facultad de Odontología,
Investigadora Instituto de Biotecnología Universidad Nacional de Colombia
Carmen Alicia Cardozo De Martínez
Línea de Investigación:
Ingeniería de Tejidos
Universidad Nacional de Colombia
Facultad de Medicina, Departamento de Medicina Interna
División Especializada en Dermatología
Bogotá, Colombia
2012III
Prologo
Cada año, al finalizar su periodo de formación
como especialistas en el área médica, los
aspirantes desarrollan un trabajo de grado,
que quizás no tenga un impacto trascendental
en el ámbito académico y científico, pero si
tiene un valor agregado muy importante en la
satisfacción personal de quien lo realiza.
Más allá del requisito, se vuelve un deseo, una
necesidad y un objetivo en el cual cada
estudiante de posgrado invertirá parte de su
espacio, tiempo y conocimiento para finalmente
entregar en un escrito los resultados de su
esfuerzo. Es un logro y una alegría personal
poder ejecutar y dar forma al mismo.
Es por eso que acá entrego entonces algo más
que un estudio de evaluación con un enfoque
determinado hacia el área de la
especialización, entrego mis ideas y más allá
de estas, de las personas que de alguna u otra
forma participaron en su creación. Espero sea
de su agrado.
Juan Raúl Castro AyarzaIV
Agradecimientos
Gina Alexandra Rodríguez – Microbióloga Instituto de Biotecnología
Producción de fibroblastos, conteo de fibroblastos y anestesia de los animales
Mauricio Martínez – Biólogo Instituto de Biotecnología
Conteo de fibroblastos
Jairo E. Marquez – Ingeniero de Sistemas
Análisis de ImágenesResumen y abstract_____________________________________________________________V
Resumen
Objetivo: Obtener y evaluar un equivalente tisular a partir de fibroblastos autólogos de
ratas Wistar combinado con ácido hialurónico para el desarrollo de un relleno
subdérmico.
Materiales y Métodos: se obtienen y mantienen fibroblastos humanos in vitro, evaluando
su cantidad por conteo en cámara de Neubauer. Se determina la viabilidad y capacidad
proliferativa de los fibroblastos humanos a diferentes concentraciones de ácido
hialurónico in vitro, mediante evaluación fotográfica y análisis de imágenes. Se implantan
rellenos subdérmicos compuestos de ácido hialurónico y fibroblastos, y se evalúa el
comportamiento in vivo del material de relleno en el tejido celular subcutáneo de cuatro
ratas Wistar, mediante estudio de histopatología.
Resultados: Los fibroblastos humanos se reproducen in vitro en un conteo de 400.000
fibroblastos en 48 horas. Los fibroblastos humanos se reproducen con concentraciones
de ácido hialurónico al 2% y al 12%, después de la evaluación a 5 días. Las cuatros ratas
Wistar toleran los rellenos subdérmicos de ácido hialurónico y fibroblastos, comparados
con el control, sin presencia de efectos adversos
Conclusiones: Los rellenos subdérmicos de ácido hialurónico y fibroblastos, no afectan el
comportamiento animal, ni presentan efectos adversos.
Palabras Clave: ácido hialurónico, fibroblastos, Ingeniería de tejidos, relleno facial, piel,
envejecimiento.Resumen y abstract_____________________________________________________________VI
Abstract
Title: Obtention of subdermic fillers from fibroblasts and hialuronic acid in Wistar rats.
Objetive: To obtain and evaluate a tissue equivalent combining autologous fibroblasts
from Wistar rats and hialuronic acid for the development of facial filler in a pilot study.
Materials and Methods: Human fibroblasts were obtained and cultured in vitro, cell counts
and viability were evaluated using Neubauer chamber and followed for five days. The
reproduction rate of the human fibroblasts was determined at different concentrations of
hialuronic acid in vitro, through photographic evaluation and images analysis. The
subdermic fillers compounded of fibroblasts and hialuronic acid, were implanted in the
subcutaneous cellular tissue of four Wistar rats. The in vivo was evaluated through
histopathology.
Results: .Human fibroblasts duplicated their cell count inside the boxes every 48 hours, at
2 % and 12 % hialuronic acid concentration. The Wistar rats used in this pilot study
tolerated the intervention with the subdermic fillers of fibroblasts and hialuronic acid,
without any adverse effects, when compared to controls.
Conclusions: The subdermic fillers of fibroblasts and hialuronic acid do not affect the
cellular growth nor the scaring process in the animal model skin, neither showed adverse
reaction in this pilot study.
Keywords: hialuronic acid, fibroblasts, tissue engineering, facial filler, skin, agingContenido____________________________________________________________________VII
Contenido
Pág.
Resumen……………………………………………………………………………………….V
Lista de gráfica……………………………………………………………………………...VIII
Introducción……………………………………………………………………………………1
Objetivos………………………………………………………………………………………..6
1. Marco Teórico……………………………………………………………………………….8
2. Materiales y Métodos………………………………………………………………………16
2.1. Fase 1: Obtención de Fibroblastos y crecimiento in vitro en diferentes
concentraciones de Ácido Hialurónico……………………………………………….16
2.2. Fase 2: Implantación en Ratas Wistar del material de ácido hialurónico y
fibroblastos de Rata Wistar……………………………………………………………20
3. Resultados…………………………………………………………………………………...23
3.1. Fase 1: Obtención de Fibroblastos y crecimiento in vitro en diferentes
concentraciones de Ácido Hialurónico………………………………………………..23
3.2. Fase 2: Implantación en Ratas Wistar del material de ácido hialurónico y
fibroblastos de Rata Wistar……………………………………………………………28
4. Discusión…………………………………………………………………………………….32
5. Conclusiones………………………………………………………………………………..38
6. Bibliografía…………………………………………………………………………………..39Contenido____________________________________________________________________VIII
Lista de gráficas
Gráfica 1-1: Presencia en la cara de los volúmenes que se modifican con el enveje-
cimiento……………………………………………………………………..……………………9
Gráfica 2-1: Inyección del material de relleno y fibroblastos…………..…………………21
Gráfica 3-1: Conteo en cámara de Neubauer…………………………………………..…23
Gráfica 3-2: Fotografías comparativas de los pozos de cultivo………………………….24
Gráfica 3-3: Análisis de imágenes de pozos de cultivo ………………………………….26
Gráfica 3-4: Inyección del material de relleno en la zona cervical de los animales……28
Gráfica 3-5: Toma de las muestras de los animales de 1 a 5………..………………….29
Gráfica 3-6: Placas de histopatología de la zona cervical tomada en biopsia del
animal 1………………………………………………………………………………….……..31
Gráfica 3-7: Placas de histopatología de la zona cervical tomada en biopsia del
animal 2………………………………………………………………………………………...31Contenido____________________________________________________________________IXIntroducción____________________________________________________________________1
Introducción
El envejecimiento era visto en las culturas antiguas como un reflejo de sabiduría, por el
contrario, en la era moderna con el afianzamiento del pensamiento de la cultura
occidental, el hecho de envejecer ha tenido cambios en su conceptualización y en el
imaginario social, bajo una mirada en la que se le relaciona con el deterioro físico o la
incapacidad, razón por la cual hay un deseo de postergar el proceso o por lo menos en la
atenuar sus manifestaciones, entre ellas las relacionadas con los cambios en la piel.
Teniendo en cuenta lo anterior, surge la importancia de analizar por qué la medicina
ofrece y busca nuevas alternativas para disminuir los signos de este proceso fisiológico.
(1)
Aunque el envejecimiento es un proceso simultáneo en todos los órganos, en la piel este
proceso se hace más notorio y su apariencia principalmente en el rostro es, al parecer, la
que mayor importancia tiene en el comportamiento social. (2) La piel constituye para
muchos el mayor órgano social en la interacción humana puesto que, es a través de ella
que se percibe, se siente y se aprecian a las otras personas. La función de la piel como
creadora de identidad personal o colectiva ha tenido gran importancia en todas las
culturas, vincula los adelantos de la medicina con sus implicaciones y trasegar social.
El interés de la piel como órgano autónomo es en realidad bastante reciente. “Los
primeros libros de dermatología aparecieron en el siglo XVIII y, más que estudiar la piel
en sí, surgieron para explicar las marcas de nacimiento”. Con ellos empezó la teoría hoy
popular de que las manchas al nacer eran el resultado de los sustos o antojos de la
madre durante el embarazo. La importancia que tuvo, fue en torno a las marcas
cicatriciales que se generaban de otras enfermedades. (3)Introducción____________________________________________________________________2
La Dermatología Estética precisamente se formula para dar respuesta a éstos retos por
lo que abre un gran campo de investigación que adicionalmente ha constituido una
importante fuente de recursos, ante la demanda por los pacientes que desean atenuar
los signos del envejecimiento. (4,1)
El proceso de envejecimiento a nivel facial, ocurre por cambios en la estructura de la piel
que afectan la epidermis, la dermis, el tejido celular subcutáneo, la estructura ósea, la
musculatura y las conducciones nerviosas que se van deteriorando, además de otras
entidades patológicas que pueden aumentar la apariencia de vejez. (5)
Se puede definir el envejecimiento como una pérdida progresiva de la capacidad
homeostática del organismo, manifestada en una reducción de sus funciones y un
aumento de la vulnerabilidad a las enfermedades. (5)
Existen diversas teorías que tratan de explicar las causas del envejecimiento, entre ellas,
el envejecimiento cronológico y el envejecimiento inducido; dentro de este último
participan elementos como el sol y diferentes tipos de radiaciones, lo que se conoce
como fotoenvejecimiento y otros como los radicales libres. (6) Estos generan en la piel
cambios estructurales tales como la disminución del colágeno que se presenta con las
arrugas, la pérdida de la regeneración celular y la aparición de cambios pigmentarios. (7)
Es por esto que la industria farmacéutica ha generado varios productos para tratar en
cada uno de los elementos de la piel que se van deteriorando, para mejorar su función.
Es así como se utiliza la aplicación de toxinas que afectan la placa neuromotora (Botox,
Dysport) para disminuir las rítides de movimiento, (8) también la inyección a nivel
subdérmico de materiales que aumentan el volumen perdido por la dermis y el tejido
celular subcutáneo (ácido hialurónico, colágeno), (9) se utiliza energía en tratamientos de
laser o en la luz pulsada intensa, para mejorar el aspecto de la epidermis y renovar
elementos propios de la dermis. (10) La terapia fotodinámica, mecanismos moleculares
con análogos retinoides que tiene acciones antiproliferativas ante los cambios deIntroducción____________________________________________________________________3
celulares que empeoran la apariencia de la piel, no solo desde un punto de vista médico
sino estético. (11,12)
El uso de los rellenos subdérmicos se remonta tres décadas atrás con la búsqueda de
materiales que pudieran reemplazar la estructura anatómica de la piel, y dado que el
elemento principal de la dermis es el colágeno, fue esta proteína [aislada por primera vez
en 1957] la primera candidata en la nueva metodología. Sin embargo no fue sino hasta la
década de los setenta, cuando se utilizó con el fin de manejar rítides de forma estética.
(9)
La producción en gran escala del colágeno utilizó en sus orígenes fuentes bovinas que
progresivamente cayeron en desuso por las posibles reacciones adversas y el rechazo
potencial entre especies. Luego se usó colágeno de origen humano proveniente de
donantes cadavéricos, que tenía como principal problema el riesgo biológico, a pesar de
encontrarse bajo todas las condiciones de esterilidad. Se empezó a utilizar entonces,
colágeno de origen autólogo; es decir, del mismo paciente. El método consistía en tomar
una muestra de piel, la cual requería un proceso de 6 a 8 semanas de cultivo y un área
de piel donante muy extensa, por lo que se hacía un procedimiento poco práctico y de
difícil aplicación en el ámbito clínico, debido a la dificultad técnica y el tiempo necesario.
A pesar de los esfuerzos para superar estos inconvenientes, como pruebas de alergia
para evitar reacciones adversas y la estandarización de técnicas para su obtención y
aplicación, el uso de colágeno como material de relleno se descontinuó debido la
aparición de otros materiales con mejor perfil de bioseguridad tales como el ácido
hialurónico, el ácido poli-l-láctico, polimetacrilatos o la hidroxilapatita de Calcio. (9)
El ácido hialurónico, fue aislado en 1934 del humor vítreo de una vaca, (13) y es ahora
en la dermatología cosmética uno de los rellenos subdérmicos más utilizados, debido a
su efecto inmediato de volumen al momento de su aplicación y un perfil alto de
bioseguridad con muy pocos efectos adversos reportados. Es el más utilizado en el
momento, con cerca de 750.000 pacientes tratadas cada año en Estados Unidos. (14)
Desafortunadamente sus costos son elevados y su efectos es temporal que puede oscilarIntroducción____________________________________________________________________4
entre 6 meses a un año, (13) por lo cual aún se buscan alternativas que permitan mejorar
sus características y disminuir su efecto deletéreo.
En la última década se ha intentado además del uso de materiales de rellenos, la
introducción de células como partes de los injertos, para contrarrestar los signos del
envejecimiento, por lo cual se han evaluado células propias de la dermis. (13)
La ingeniería de tejidos es una rama de la bioingeniería que tiene el objetivo de
desarrollar condiciones de cultivo para generar líneas celulares con la capacidad de
mimetizar las funciones biológicas, hacia 1975 se iniciaron los experimentos en piel con
la producción de cultivos epidérmicos que se trataron de trasplantar en pacientes con
quemaduras. (15) Dichos cultivos utilizaron como sustrato celular a los fibroblastos, cuya
expansión in vitro es menos dispendiosa en comparación a otras líneas celulares como la
de los queratinocitos, por lo que posteriormente se consideró el uso de fibroblastos como
sustituto celular no sólo a nivel epidérmico sino en la regeneración de la dermis. (16,17)
Es por esto que surge la idea de generar un relleno subdérmico, que no sólo tenga un
componente de relleno físico como es el ácido hialurónico, sino que asociado a un
componente celular como los fibroblastos, puede mejorar su perfil, aumentando los
efectos y el tiempo del relleno. (18) Esta combinación se encuentra aún en fase
experimental, por lo que no ha sido probada en seres humanos.
Antes de poder aplicar rellenos subdérmicos de ácido hialurónico asociados a
fibroblastos en los seres humanos para evaluar su efectividad clínica, se debe pasar por
un proceso de experimentación in vitro donde se realice la expansión de los fibroblastos,
y se evalúe su asociación al ácido hialurónico. Una vez se obtenga un perfil de seguridad
adecuado en dichos cultivos, se continúa con la fase de experimentación en modelos
animales teniendo en cuenta los protocolos de experimentación con animales. (18)Introducción____________________________________________________________________5
El resultado de la fase de experimentación en modelos animales sobre la evaluación de
fibroblastos combinados con ácido hialurónico, podría permitir en un futuro el inicio de la
utilización de esta técnica para el desarrollo de un relleno subdérmico que pueda ser
implementado en seres humanos, evaluando así su bioseguridad y la calidad de los
resultados clínicos.
La importancia del presente trabajo radica en ser la fase inicial de un proyecto que
permitirá el desarrollo pionero de rellenos subdérmicos con compuestos celulares en
nuestro país.Objetivos_______________________________________________________________________6
Objetivos
Objetivo Principal
Obtener y evaluar un equivalente tisular a partir de fibroblastos autólogos de ratas Wistar
combinado con ácido hialurónico para el desarrollo de un relleno subdérmico.
Objetivos Específicos
1. Obtener y mantener fibroblastos humanos en medio de cultivo.
2. Determinar la viabilidad y capacidad proliferativa de los fibroblastos humanos a
diferentes concentraciones de ácido hialurónico in vitro.
3. Formular una técnica para la implantación del compuesto de ácido hialurónico y
fibroblastos, que permita su inyección subdérmica.
4. Evaluar el comportamiento in vivo del material de relleno en el tejido celular
subcutáneo de las ratas Wistar.Objetivos_______________________________________________________________________7
5. Generar protocolos para iniciar trabajos en seres humanos que permita implementar
la misma técnica utilizada en el cultivo de fibroblastos y ácido hialurónico para generar
rellenos subdérmicos.Marco Referencial______________________________________________________________8
1. Marco Referencial
La sociedad moderna ha convertido el aspecto estético en uno de los pilares
fundamentales para lograr la aceptación social. Esto ha sido ampliamente utilizado por la
industria a distintos niveles, para lo cual se ha destinado una inversión de recursos
científicos y económicos para ofrecer nuevos productos que puedan cubrir la creciente
demanda en el tratamiento para atenuación de los signos del envejecimiento, buscando
reemplazar los elementos de la piel que se van perdiendo con el tiempo. (13,19,20)
El proceso de envejecimiento a nivel celular se traduce en la pérdida de la capacidad
proliferativa de los diferentes tipos de células [melanocitos, queratinocitos, fibroblastos]
que conforman los tejidos y en la disminución de la capacidad de respuesta ante los
mecanismos de señalización celular como los factores de crecimiento, lo cual conlleva no
solamente a una menor densidad celular sino a una matriz extracelular de baja calidad.
(1)
Los fibroblastos son las células encargadas de la producción de los elementos de la
matriz extracelular tales como el colágeno, la elastina, el ácido hialurónico, entre otras;
con el proceso de envejecimiento, las células pierdan su función y la capacidad de
mantenimiento de los elementos de la matriz extracelular por lo que las propiedades
elásticas y de sostén de la piel se pierden. (1,21)
Sin embargo, el proceso de envejecimiento no sólo produce cambios en la piel, sino que
está asociado además, una pérdida de volumen del tejido óseo, aumento de la tensión
tejido muscular, aparición de atrofia e hipotrofia en ciertas zonas del tejido celular
subcutáneo, adelgazamiento de la dermis y de la epidermis, cambios pigmentarios y
vasculares, que viene a generar el aspecto de vejez. Gráfica 1.Marco Referencial______________________________________________________________9
a. zonas de Atrofia b. zonas de hipertrofia
GRÁFICA 1-1. Presencia en la cara de los volúmenes que se modifican con el
envejecimiento. (Realizado Dr. Juan Raúl Castro-Ayarza)
Como se mencionó anteriormente, se han desarrollado diferentes opciones para el
tratamiento del envejecimiento de la piel, como la aplicación de neurotoxinas que afectan
la placa neuromotora (Botox, Dysport) disminuyendo los efectos de la tensión muscular
prolongada en la apariencia del envejecimiento, (8) la aplicación de rellenos subdérmicos
con base en diferentes tipos de materiales como colágeno, ácido hialurónico,
polimetacrilatos, cristales de calcio y otros materiales, con el objetivo de reemplazar el
volumen perdido en las zonas de atrofia, (9,19) el uso de energía para generar
modificación de los cambios del grosor de la epidermis y dermis, frente a los cambios
pigmentarios o vasculares mediante tratamientos de Laser, luz pulsada intensa o terapia
fotodinámica. Otras opciones como fármacos que actúan a través de mecanismos
moleculares tipo análogos retinoides, favoreciendo la regeneración y en recambio de los
elementos de la epidermis y de la dermis perdidos con el tiempo. (11,12)
Sin embargo, estos tratamientos resultan ser insuficientes, requieren múltiples sesiones,
o exigen una administración permanente del tratamiento debido que la piel retoma las
características del daño acumulado, con pérdida del volumen, reaparición de las rítides y
surcos. (22)Marco Referencial______________________________________________________________10
La medicina no ha sido indiferente a este cambio y sus nuevos objetivos están
encaminados hacia el desarrollo de procedimientos que garanticen devolver las
condiciones perdidas a los elementos estructurales de la piel. Dentro de los
procedimientos reportados y publicitados en los medios de comunicación (incluyendo
internet) están: el uso tópico de colágeno xenogénico y la inserción de colágeno
mediante procedimientos quirúrgicos, inyección de plasma sanguíneo, aplicación de
plasma sanguíneo autólogo, inserción mediante cirugía de productos re-absorbibles
como ácido poliláctico, el copolímero ácido poli-glicólico-poliláctico, ácido hialurónico,
entre otros la inyección de toxina colérica para el estiramiento de los músculos, inyección
de hormonas. (23) De manera general se puede afirmar que todos estos procedimientos
se usan diariamente en los tratamientos faciales en Colombia y en el mundo.
Para mejorar el desarrollo de los rellenos subdérmicos como sustitutos tisulares, es
importante entender la fisiología del tejido al cual va estar dirigido. La inflamación es un
proceso inevitable ante la presencia de cualquier elemento ajeno al tejido pero el objetivo
es que los materiales utilizados sean biocompatibles y que el proceso inflamatorio no sea
inmediato y en lo posible de baja intensidad, con el objetivo de prolongar la vida media
del relleno, y entender a su vez cómo es este proceso después de inyectado el relleno
subdérmico. (24)
La aparición de los neutrófilos actúan inicialmente en la respuesta inflamatoria innata
ante la aparición de cuerpo extraño, sin embargo, como su vida no es prolongada,
usualmente ante cuerpos extraños de difícil degradación el macrófago adopta una
dominancia en este proceso, en el proceso de reconocimiento del mismo. (25) Se asume
un mecanismo de fagocitosis compuesto por tres pasos: el primer paso es el
reconocimiento y unión al elemento extraño, mediado por liberación de opsoninas con
complemento C3b y la por FE del la Inmunoglobulina G. Es segundo paso de inmersión,
vacuoliza la partícula mediante la prolongación de pseudópodos. Y un tercer paso de
muerte y degradación con la aparición de lisozimas, colagenasas y hialuronidasas y
oxidación con iones superóxido y producción de peróxido de hidrógeno, con el fin de
producir el procesamiento final del relleno. (25)Marco Referencial______________________________________________________________11
No se comprende bien el proceso que suscita la fagocitosis, pero es claro que a medida
que el tamaño de la partícula es mayor, la fagocitosis es más difícil. En los humanos es
raro que un macrófago pueda hacerlo con partículas mayores de 5μm, que usualmente
requieren la aparición de agregaciones en células gigantes. (25,26)
No sólo el tamaño de la partícula tiene que ver con el proceso de la fagocitosis sino un
elemento al cual no se le ha prestado la suficiente atención: la forma del elemento a
fagocitar, ya que se ha reportado que las formas esféricas parecen ser resistentes al
reconocimiento por los macrófagos. Entre tanto, la carga de la partícula no ha
demostrado ser determinante y la capacidad hidrofílica de una partícula indicaba ser más
resistente a la fagocitosis; sin embargo, un mecanismo contrario mediante la adherencia
de anticuerpos parece contrarrestar esta característica hidrofílica resistente para
transformarla en hidrofóbica y susceptible de ser fagocitada. (13) La forma, tamaño de la
partícula, la capacidad de asociación o la termoestabilidad puede determinar la viabilidad
del producto. (25)
Cuando los macrófagos no son capaces de fagocitar se produce la formación de
granulomas, esto es, la asociación de múltiples macrófagos que intentan aislar los
elementos extraños al tejido y los cuales no ha podido eliminar. Durante la formación de
un granuloma, los macrófagos cambian su morfología y adoptan una similar a las células
epiteliales, por lo que se les conoce como células epitelioides. (26) Es clave reconocer
que los granulomas pueden tener elementos adicionales como la presencia de una capa
de recubrimiento de fibroblastos, que al parecer evitan la reactivación del proceso
inflamatorio; sin embrago, en muchas ocasiones, ante elementos desencadenantes
desconocidos se reactiva la cascada inflamatoria. (25)
Es importante reconocer las interacciones entre el producto implantado y el tejido
huésped. Una forma de hacerlo es observar la neo colagenogénesis, proceso que es
favorecido por aditivos tales como el ácido hialurónico, la hidroxiapatita de calcio, el ácido
poli L – láctico y el polimetilmetacrilato, según ha sido reportado. (27)Marco Referencial______________________________________________________________12
Las reacciones de inmunogenicidad siempre se han cuestionado, debido a la elevación
de las inmunoglobulinas que ocurre en las pruebas que se han realizado para la
aplicación de elementos extraños e incluso autólogos, desde la primeras pruebas que se
hicieron para la producción de agentes hemostáticos que mostraban esta situación. La
aparición de reactividad cutánea, en razón de la inyección de un material extraño, era
independiente de esa aparición de anticuerpos, e incluso se asocio a la aparición de
dermatomiositis, como una enfermedad de una característica propiamente autoinmune.
Se han evaluada reacciones granulomatosas y posibles reacciones inflamatorias
secundarias a la presencia de biofilms que puedan exacerbarlo, sin embargo en este
momento no es claro que elementos pueden ser los desencadenantes de estas
reacciones de inmunogenicidad. (23) Con el uso de diferentes rellenos subdérmicos
existentes en el mercado, las complicaciones más frecuentes que se pueden observar en
todos los implantes subdérmicos son eritema, enrojecimiento, edema, formación de
nódulos, dolor, necrosis, infección, formación de nódulos, granulomas, cicatrización. (23)
Entonces comprender el comportamiento de los diferentes materiales para la realización
de rellenos subdérmicos, conociendo las características estructurales y moleculares, con
respecto a las reacciones inmunes que podrían presentar, permite entender su utilidad y
posibilidad de utilización. (25)
Uno de los materiales de relleno subdérmico más utilizado, es el ácido hialurónico, una
molécula aislada en 1934 del humor vítreo de una vaca, (13) y corresponde al 0.02%
del peso corporal total en el ser humano. Producido por los fibroblastos en fragmentos de
un peso molecular de 20KDa, es un glicosaminoglicano que se encuentra naturalmente
en la dermis, puede asociarse a los fibroblastos e inducir en ellos la síntesis de fibras de
colágeno, componente esencial de la matriz extracelular que circunde el tejido y que
permita mantener el efecto de volumen. (14,25) El ácido hialurónico se deposita en
diferentes tejidos mesodérmicos, con mayor importancia a nivel dérmico y articular; de
esta manera, se han desarrollado métodos clínicos en zonas articulares y de piel
mediante la aplicación de rellenos subdérmicos; métodos con 25 años de historia, pero
que han tenido su advenimiento en la última década. (13)Marco Referencial______________________________________________________________13
La hidroxiapatita es otro material utilizado en el desarrollo de rellenos subdérmicos, en
ellos, se utilizan partículas de tamaños que oscilan entre los 20 y los 45 micrómetros, ya
que partículas por debajo de los 15 micrómetros se degradan. La hidroxiapatita tiene
propiedades físicas tales como la viscosidad y un alto número de enlaces cruzados que
favorecen el aumento del volumen como material de relleno. (28)
A pesar de las diversas fuentes de colágeno [animal, homólogo, autólogo], los rellenos
subdérmicos basados en este material han venido cayendo en desuso por su elevada
inmunogenicidad, situación que aumentaba los costos de los tratamientos en pro de
disminuir los efectos adversos y los protocolos por mejorar la seguridad biológica de los
materiales. (9)
Otro material utilizado ha sido el ácido poliláctico, empleado desde hace 30 años
aproximadamente en los tratamientos de rejuvenecimiento facial dadas sus
características de mantener efecto prolongados hasta por 3 años; sin embargo, existe el
riesgo de desarrollar granulomas o pápulas subcutáneas, lo que lo hace poco popular
ante el advenimiento de mejores tecnologías. (27) El mismo riesgo de favorecer la
formación de granulomas se discute con el uso de polimetil-metacrilato (PMMA) y
siliconas (Polimetilsiloxano), situación bastante difícil de predecir y tratar. (23,29)
La necesidad de generar un tratamiento que mantenga los resultados por mayor tiempo
ha traído la idea de generar nuevos sustitutos donde las reacciones adversas sean
menores, por lo que los trasplantes de tipo autólogo son una mejor opción. (13,30)
Con base en esta hipótesis, se generó la idea de inyectar fibroblastos autólogos, los
cuales favorecerían la producción de colágeno, la integración al tejido circundante y la
estabilidad de las características de la matriz extracelular y la recuperación del volumen
del tejido. (29)Marco Referencial______________________________________________________________14
Los primeros experimentos con fibroblastos humanos, se realizaron en Washington en
1998, donde un grupo de investigadores evaluó el uso de fibroblastos humanos
autólogos, los cuales se utilizaron en un implante previamente producido a partir de
colágeno, con resultados que no fueron corroborados con histopatología y sin encontrar
clara diferencia clínica. (30) El uso de fibroblastos como elemento único del relleno
subdérmico se evaluó en defectos como depresiones y rítides con resultados cosméticos
aceptables. En estos estudios se hicieron análisis histológicos, los cuales demostraron un
aumento de la densidad celular en aquellos lugares donde se habían inyectado los
fibroblastos; (32) por otro lado, se ha demostrado mediante marcadores citométricos la
persistencia de los fibroblastos en el lugar del trasplante. (33)
En el año 2007 Weiss y colaboradores publicaron un estudio que incluía 151 pacientes
tratados con el implante de fibroblastos versus placebo en zonas de depresiones y
cicatrices, consiguiendo una mejoría estética significativa con el implante celular. (34)
El trasplante autólogo de fibroblastos carece de la capacidad de generar cambios
estructurales inmediatos en el tejido huésped, surge como alternativa innovadora, la
asociación en un mismo constructo de los elementos celulares y aditivos como el ácido
hialurónico. (35) Al parecer, el ácido hialurónico podría favorecer la síntesis de colágeno
por parte de los fibroblastos y ayudar a mantener el efecto de volumen requerido en las
zonas de defecto por más tiempo.
Dado que lo que se pretende evaluar es una nueva técnica de tratamiento médico, antes
de poder ser implementada en los seres humanos, debe garantizarse la seguridad del
procedimiento, por lo que es necesario seguir un protocolo de investigación aprobado por
un comité de ética que permita la evaluación in vitro en primera instancia del
comportamiento de las células que se pretenden trasplantar. (36)
Estudios previos en modelos animales evalúan injertos de colágeno asociados a ácido
hialurónico en heridas en dorso de ratas con el objetivo de mejorar el proceso deMarco Referencial______________________________________________________________15
cicatrización, con resultados que muestran interés en la aceleración del proceso. (35)
También se ha evaluado en ratones el uso fibroblastos humanos y placenta con
evaluación histológica, mostrando resultados promisorios del uso de las células con
evaluación histológica. (37) Esto permite evaluar el uso de celulas como los fibroblastos
en la reposición de elementos perdido o dañados en la piel. Solakoglu y colaboradores,
no reportaron ningún tipo de complicaciones en el manejo de rellenos subdérmicos de
fibroblastos asociados a ácido hialurónico implantados en ratas. (35)
La búsqueda de nuevos materiales y técnicas de rellenos subdérmicos, tiene como
objetivo aumentar la duración de los efectos en el paciente una vez sea utilizado, debido
a que actualmente las opciones terapéuticas que existen oscilan en una permanencia de
los efectos entre 6 meses a un año. (21) A este objetivo se dedicara la viabilidad del
material que se obtenga para el relleno subcutáneo, aumentando la vida media del
material una vez sea implantado.Materiales y Métodos____________________________________________________________16
2. Materiales y Métodos
2.1. Fase 1: Obtención de Fibroblastos y crecimiento in
vitro en diferentes concentraciones de Ácido Hialurónico
Los fibroblastos fueron aislados a partir de una muestra humana proveniente de la
donación del tejido dérmico de una persona sistémicamente sana, sin patologías
sistémicas ni patología cutánea, bajo consentimiento informado del paciente donador.
Esta se obtiene bajo anestesia local en la institución médica correspondiente.
El tejido se transporta en un tubo que contiene con medio de cultivo DMEM,
suplementado con suero Fetal Bovino al 10%, 100 U/ml de penicilina, 100ug/ml de
estreptomicina y 0,25 ug/ml de anfotericina B. Es llevado en las primeras 6 horas
posteriores a la toma de la muestra para el laboratorio donde es procesado.
Una vez en el área de cultivos celulares del laboratorio de Biomiméticos de la
Universidad Nacional de Colombia en la cabina de flujo laminar se retira el tubo y se pasa
el tejido transportado a una caja de Petri para realizar lavado en una solución de Hanks
suplementada con antibiótico y antimicótico (100 U/ml de penicilina, 100ug/ml de
estreptomicina, 0,25 ųg/ml de anfotericina B). Este procedimiento se realiza 3 veces.
Se retira el tejido celular subcutáneo y se secciona el tejido para el cultivo en pequeños
pedazos de 1mm, los cuales serán cultivados como explantes. Estos fragmentos de piel
se siembran sobre placas de seis pozos de 25mm2 y se cubren con 2 ml medio deMateriales y Métodos____________________________________________________________17
cultivo (DMEM) suplementado con 10 % de suero fetal bovino y solución de antibiótico
antimicótico al 1 %
Los cultivos son mantenidos hasta obtener el número de células suficientes para el
ensayo, se obtienen dos frascos T 25 pase 1 confluentes. Se someten a disgregación
celular con Tripsina EDTA al 0.5% durante aproximadamente 5 minutos la acción de la
enzima se inactiva con medio suplementado con suero. Esta solución se lleva a
centrifugar a 2500 rpm por 10 minutos. Una vez se obtiene un precipitado de células se
resuspenden en 1ml de medio de cultivo se hace conteo en cámara de Neubauer y los
cálculos para sembrar 400.000 células por pozo en placa de 6 pozos.
Las células son sembradas en medio DMEM suplementado con suero fetal bovino al 10
% y solución de antibióticos al 1 % a este medio se le adiciona acido hialurónico (Teosyal
MR) en concentración final del 12 % y 2 % respectivamente. Como control se siembra el
mismo número de células en el medio de cultivo sin acido hialurónico. La viabilidad
celular será evaluada mediante la evaluación visual con ayuda de fotografías que se
analizaran con ayuda del software analizador de imágenes y, mediante tinción con
colorante vital azul de tripán a las 48 horas de cultivo. Los pozos quedaron distribuidos
de la siguiente manera:
-Pozo 1 y 2 Medio de cultivo más ácido hialurónico en gel al 2 %.
-Pozo 3 y 4 Medio de cultivo más ácido hialurónico en gel al 12 %.
-Pozo 5 y 6 Medio de cultivo fibroblastos
Las placas de cultivo fueron incubadas a 37 0 C en atmósfera de CO2 al 5 % durante 48
horas.Materiales y Métodos____________________________________________________________18
Una vez completadas las 48 se retira la placa de cultivo y se observa cada uno de los
pozos, se toman imágenes fotográficas de los cultivos esto se hace mediante la
observación del pozo a través del microscopio de luz invertida, donde el observador
determina de forma cualitativa la cantidad de fibroblastos que cubren la superficie. Una
vez terminada la fase de observación se procede a hacer el ensayo de viabilidad para
este las células fueron lavadas disociadas con tripsina EDTA y resuspendidas en medio
DMEM suplementado. Se toman 10 microlitros de esta solución y se mezclan con 10
microlitros de tripán azul para hacer una dilución de células en volúmenes iguales. Se
sirve la dilución células/colorante en la cámara de Neubauer, para la observación al
microscopio de luz invertida, bajo el objetivo de 10x, se enfoca el cuadrante central de la
cámara y se cuentan las células que no tomaron coloración azul observadas en los 4
cuadrantes externos. Estas células se consideran como vivas y se observan de
morfología redonda y refringente por el contrario las células consideradas como muertas
son las que incorporan el colorante tripán azul debido a que su membrana se ha hecho
permeable y se observan teñidas de azul.
Se promedia el resultado de los cuatro cuadrantes el resultado se multiplica por dos que
fue la dilución entre tripan y la solución celular este valor a su vez se multiplica por
10.000, que es un valor constante y corresponde al volumen y número de cuadrantes
dado por la cámara de Neubauer. El valor obtenido corresponde al número de células
vivas por mililitro.
Los resultados del análisis grafico obtenido a partir de las fotografías se realizan con el
programa Matlab 2011b. Las imágenes dadas se transforman a escalas de grises y se
aplica una mascas de negativo. Luego se aplican algoritmos de procesamiento de
imágenes como la segmentación, umbralización y filtrado, con miras a reducir el grado de
ruido (imperfecciones asociadas e inherentes a cada fotografía y a problemas de enfoque
y nitidez entre otros factores) y efectuar el conteo de células.
Para la detección de los bordes de las células debido a su estructura geométrica, se
determinan las regiones con los objetos (células) a estudiar, considerando los bordes y elMateriales y Métodos____________________________________________________________19
umbral fijo. Se prueban los algoritmos de Canny y de Sobel, con el fin de determinar cuál
de ellos era el más apropiado para el análisis según la calidad de las imágenes a
estudiar. De acuerdo a este se determina los falsos positivos registrados, como
elementos adicionales que se encuentran en las muestras juntos con las células, debido
a la resolución de las imágenes en la parte del procesamiento.
Los falsos negativos registrados son células se encuentran agrupadas en las imágenes,
que el programa detecta como una sola célula dichos grupos. Para minimizar estos
errores, se toma como referente el tamaño estándar de las células, se reduce hasta un
mínimo el ruido, y con ello poder obtener una data con un grado de error aceptable.Materiales y Métodos____________________________________________________________20
2.2. Fase 2: Implantación en Ratas Wistar del material de
ácido hialurónico y fibroblastos de Rata Wistar.
Para obtener los fibroblastos de rata se toma una biopsia cutánea de Rata Wistar, y se
siembra de acuerdo a los protocolos para cultivo de células adoptados por el descrito en
la fase 1, de este documento.
Para la implantación del relleno se utilizaron cuatro Hembras de Rata Wistar SPF de 250
gramos de peso promedio, como agente anestésico se utilizo Isofluorano, se realizó
inducción en cámara anestésica al 4% y mantenimiento en anestesia general al 2% una
vez verificada la profundidad anestésica. Se realiza afeitado de la piel de la zona cervical
posterior y se procede a realizar marcación del área receptora y fotografía previa a la
aplicación del relleno, se limpió la zona con solución de yodopovidona.
Se inyecta subdérmico ácido hialurónico (Teosyal MR) en concentración 15mg/ml,
produciendo una masa en la zona cervical de cuatro animales en diferentes volúmenes.
La aplicación de las células se hará en 3 líneas imaginarias que atraviesen la zona
receptora previamente inyectada por ácido hialurónico.
Se realizo la inyección del relleno subdérmico en 4 animales, en la zona cervical donde
se aplicó a diferentes volúmenes y concentraciones el ácido hialurónico y posteriormente
se le inyecto el número de células determinado por el conteo. Se hace control fotográfico
y delineación de la masa que se provoca por la inyección del material en el animal.
Los animales se identificaron marcando un número en la cola con marcador indeleble y
se distribuyeron en el ensayo de la siguiente maneraMateriales y Métodos____________________________________________________________21
ANIMAL 1. Aplicación de ácido hialurónico 15mg/ml hasta completar 0.8cc.
ANIMAL 2. Aplicación de ácido hialurónico 15mg/ml hasta completar 0.8cc + 1 millón de
fibroblastos en 0.4cc de solución salina.
ANIMAL 3. Aplicación de ácido hialurónico 15mg/ml hasta completar 0.8cc + 2 millones
de fibroblastos en 0.8cc de solución salina.
ANIMAL 4. Aplicación de 2 millones de fibroblastos en 0.8cc de solución salina, sin acido
hialurónico.
1a. Aplicación del ácido hialurónico 1b. Inyección de los fibroblastos en el
relleno
GRAFICA 2.1. Inyección del material de relleno y fibroblastos.Materiales y Métodos____________________________________________________________22
Se realiza fotografía de la zona receptora de la rata en zona cervical, posterior a la
aplicación del relleno subdérmico de ácido hialurónico y medición del volumen inyectado.
Una vez terminada la intervención se espero a la recuperación anestésica de los
animales se les suministro agua y alimento ad líbitum y se ubicaron en cajas individuales
con una manta térmica debajo de cada caja, previo al inicio del ensayo y bajo anestesia
general se les administro meloxic ® como agente analgésico de acción prolongada. Los
animales fueron observados y mantenidos de acuerdo a los procedimientos establecidos
dentro del programa de cuidado veterinario de la sala de animales del laboratorio de
Biomimeticos de la Universidad Nacional de Colombia que se acoge a las guías
establecidas en por el consejo Canadiense de protección de los animales en el manual
sobre el uso y cuidado de los animales de experimentación
Después de 10 semanas de realizado colocado el relleno se procede a la toma de las
biopsias. Los animales fueron sacrificados de debido a que cumplían su ciclo vital en la
sala de animales. Se realizó sacrificio de cada Rata en cámara de CO . Se procede a
2
realizar afeitado de la zona cervical donde previamente se realizó el implante y se toman
fotografías de la zona. Se toma biopsia de la zona cervical y se envía en formaldehido al
15% para estudio de Histopatología.
En conjunto con dos patólogos se procede a describir la histopatología de cada una de
las muestras, el proceso de adaptación de los fibroblastos y el ácido hialurónico a tejidos
homólogos. Los patólogos son externos al proyecto de investigación y desconocen las
concentraciones en que se inyecto el rellenoResultados____________________________________________________________________23
3. Resultados
3.1. Fase 1: Obtención de Fibroblastos y crecimiento in
vitro en diferentes concentraciones de Ácido Hialurónico
Se realizó el cultivo de fibroblastos humanos en T25 [hay que mencionar la casa
comercial] los cuales permiten un crecimiento de hasta 5 X 106 células. Se verificó la
viabilidad celular mediante el conteo en cámara de Neubauer.
GRÁFICA 3.1. Conteo en cámara de Neubauer. Se observa en azul las células no viables
(flecha verde) y como pequeños círculos transparentes, las células viables en el cultivo
(flecha violeta).Resultados____________________________________________________________________24
Se encontró una confluencia similar en todos los pozos examinados, con una duplicación
de densidad celular respeto a la inicial. Se registra estos datos al día 5 de cultivo y se
realiza nuevo cultivo de fibroblastos a partir de fibroblastos humanos con dos pases.
-Pozo 1 y 2 [Medio de cultivo con ácido hialurónico en gel al 2%:] confluencia celular
del 70% se observa adherencia celular y morfología característica de fibroblasto. En la
superficie se observa poco cantidad de células muertas.
-Pozo 3 y 4 [Medio de cultivo con ácido hialurónico en gel al 12%:] se observa una
confluencia celular del 60% de células adheridas a la superficie de cultivo con morfología
de fibroblasto. Se observa una población de células no adheridas a la placa en mayor
cantidad, principalmente en el pozo 3, asumiendo estas células como muertas.
-Pozo 5 y 6 [Medio de cultivo con fibroblastos se observa una confluencia celular del 80
% de células adheridas en la superficie de cultivo. Se observa una menor cantidad de
células no adheridas a la placa de cultivo.
Pozo 1 Pozo 2Resultados____________________________________________________________________25
Pozo 3 Pozo 4
Pozo 5 Pozo 6
GRÁFICA 3.2. Fotografías comparativas de los pozos de cultivo.
Mediante el análisis de imágenes, se determina la presencia de células en el campo
visual mediante un conteo de células comparativo para correlacionar los datos
entregados en el análisis, con la observación que se tuvo al microscopio de luz invertidaResultados____________________________________________________________________26
Pozo 1 = objetos 1345 y área del objeto 295.
Pozo 2 = objetos 1482 y área del objeto 203.
Pozo 3 = objetos 316 y área del objeto 149.
Pozo 4 = objetos 1770 y área del objeto 98.Resultados____________________________________________________________________27
Pozo 5 = objetos 1553 y área del objeto 228.
Pozo 6 = objetos 1199 y área del objeto 425.
GRÁFICA 3.3. Análisis de imágenes de pozos de cultivo. Se compara los pozos de
cultivo de fibroblastos con diferentes concentraciones de ácido hialurónico. Pozo 1 y 2,
acido hialurónico 2 %, pozo 3 y 4 ácido hialurónico 12 %, Pozo 5 y 6 sin ácido
hialurónico.
El análisis de imágenes por computador nos muestra el número de objetos encontrados y
el área del objeto [ans], donde uno es la cantidad de células por pozo y el otro el tamaño
estimado de cada objeto. Se encontró una cantidad promedio de objetos por pozo de
1277 objetos (314-1770); sin embargo, el pozo 3 tuvo un conteo significativamente menor
respecto a los demás pozos. No obstante, el pozo 4 que se sembró con los mismos
elementos que el pozo 3 si siguió un comportamiento similar al del resto del grupo. No se
encontraron diferencias significativas en los cultivos sembrado con 2% ó 12% de
concentración de ácido hialurónico ni en aquellos que no tenían aditivo.Resultados____________________________________________________________________28
El análisis visual de los pozos permitió identificar que la adhesión celular en los pozos
con ácido hialurónico a la concentración más alta era menor; sin embargo, hubo buena
adherencia de los fibroblastos a la superficie del pozo.
3.2. Fase 2: Evaluación de resultados de inyección de los
rellenos subdérmico y resultados e histopatología
Posterior a la inyección de los rellenos subdérmicos, se midieron las masas obtenidas
bajo evaluación fotográfica. Gráfica 3.4
Animal #1 se obtuvo una masa de 22 x 17mm de diámetro.
Animal #2 se obtuvo una masa de 19 x 20mm de diámetro.
Animal #3 se obtuvo una masa de 23 x 22mm de diámetro.
Animal #4 se obtuvo una masa de 24 x 23mm de diámetro.
ANIMAL 1 ANIMAL 2Resultados____________________________________________________________________29
ANIMAL 3 ANIMAL 4
GRÁFICA 3.4. Inyección del material de relleno en la zona cervical de los animales.
De acuerdo a la lectura, se designaron los animales una numeración para la toma de las
muestras. Acorde a esto se observo lo siguiente.
GRÁFICA 3.5. Toma de las muestras de los animales de 1 a 5.Resultados____________________________________________________________________30
Previo a la realización del a biopsia, se toma una fotografía de la zona del implante,
mostrando que en el momento de la aplicación no se encontraba ningún efecto de
volumen.
Muestra #1, relleno de ácido hialurónico 15mg/ml. Epidermis sin cambios, se observan
fibras de colágeno organizadas a nivel de la dermis. El tejido celular subcutáneo muestra
adipocitos organizados y una zona central con fibrosis septal leve. Grafica 3.6.
Muestra #2, relleno de ácido hialurónico 15mg/ml y trasplante 1 x 106 fibroblastos.
Epidermis normal, se observan fibras de colágeno organizadas a nivel de la dermis. Se
observa una zona con proceso inflamatorio linfohistocitario localizado en el fondo del
tejido celular subcutáneo y presencia de fibras colágenas inmaduras y fibroblastos en
proceso de división. Gráfica 3.7.
Muestra #3, relleno de ácido hialurónico 15mg/ml y trasplante de 1 x 106 fibroblastos. La
epidermis es de aspecto normal. Hay fibras colágeno organizadas en la dermis y sus
anexos.
Muestras # 4, trasplante de 1 x 106 fibroblastos y la muestra 5, correspondiente al control
de piel normal, se encontraron cambios correspondientes a piel sin cambios epidérmicos,
dérmicos o en tejido celular subcutáneo.
En ninguna de las muestras examinadas se encontró formación de granulomas a cuerpo
extraño, presencia de elementos que sugirieran infecciones por micobacterias o por
hongos subdérmicos. Tampoco se observaron reacciones inflamatorias crónicas, ni
estados de necrosis o vasculitis en la zona de inyección del material.Resultados____________________________________________________________________31
Lámina 1. Fibrosis en tejido celular subcutáneo - 2x panorámica. Correspondiente al
animal #1
GRÁFICA 3.6. Placas de histopatología de la zona cervical tomada en biopsia del animal
1.
Lámina 2. Zona de inflamación con tejido colágeno inmaduro y células de apariencia
fusiforme tipo fibroblastos en formación. Correspondiente al animal #2
GRÁFICA 3.7. Placas de histopatología de la zona cervical tomada en biopsia del animal
2.Discusión____________________________________________________________________32
4. Discusión
Uno de los objetivos de la medicina ha sido el de generar tratamientos que permitan
recuperar las condiciones perdidas de los diferentes tejidos como el de la piel, en cuyo
caso se han utilizado componentes como el colágeno y de manera innovadora el ácido
hialurónico con el fin de desarrollar rellenos subdérmicos, los cuales que ya han sido
probados en más de 750000 personas por año en los Estados Unidos (14,25,38)
Diferentes estudios han demostrado que el ácido hialurónico se deposita en zonas de los
tejidos donde no hay compactación de las fibras de colágeno, como por ejemplo en la
dermis espongiótica y en la hipodermis. (39) La acción del ácido hialurónico no sólo
produce un efecto de llenado espacial en los tejidos sino que también actúa como
comunicador celular, favoreciendo el transporte de nutrientes y la interacción de los
movimientos celulares. Además de esto, este compuesto tiene propiedades
antiangiogénicas y moduladoras de la respuesta inflamatoria e inclusive con efectos de
inmunosupresión en algunos casos, (14) participa en el proceso de cicatrización al
parecer a través de un mecanismo de señalización dependiente de la interacción de la
heparina con el factor de crecimiento epidérmico. (40,41)
El hecho de tener el ácido hialurónico la misma estructura y la misma unidad monomérica
en diferentes especies, (13) ha permitido su fácil producción industrial, existiendo como
medio de producción el ácido hialurónico de origen animal como el de cresta de gallo y
de origen bacteriano como el del Streptococcus equi, con menos endotoxinas, (20) los
cuales no han mostrado diferencias grandes en su aplicación clínica. (24) La importancia
clínica de esto es que no se han visto diferencias en los resultados de tratamiento de los
pacientes implantados con ácido hialurónico de distinta fuente.Discusión____________________________________________________________________33
En la producción de rellenos subdérmicos, el ácido hialurónico se puede fabricar en su
estructura mediante la ubicación de dos tipos de relación espacial: cruzadas o no
cruzadas. El cruzamiento de las moléculas se puede hacer con diferentes estabilizadores
como el 1,4-butanediol biglicidal y p-fenilene bisetil carbodi-imida, lo cual brinda mayor
solidez al compuesto, (25) disminuye su absorción y aumenta la dureza y la viscosidad.
(2) No obstante estos arreglos químicos, la vida media del ácido hialurónico después de
su aplicación oscila entre 6 meses y un año. (23)
Dado este tiempo tan corto de sobrevida de los rellenos subdérmicos fabricados con
elementos propios de la matriz extracelular como el ácido hialurónico, se han planteado
nuevas estrategias como el uso de compuestos combinados con fibroblastos humanos,
esto con el objetivo de aumentar el tiempo de duración del implante. (23) En 1998 se
evaluó por primera vez el uso de trasplante con fibroblastos autólogos asociados a
implantes de colágeno; sin embargo, dicho estudio no definió si existía mejoría clínica o
cosmética significativa o si bien se prolongaba por más tiempo el efecto del relleno. (30)
Más adelante Watson y colaboradores publicaron un estudio donde se utilizaron
fibroblastos como elemento único del implante para el tratamiento de depresiones y
rítides, con resultados cosméticos aceptables. En este trabajo se hizo un análisis
histológico y se encontró aumento de la densidad celular. Sin embargo, cabe aclarar que
esta investigación no comparó los elementos de su implante con otros tratamientos o
placebo. (32) Otros estudios han utilizado marcadores citométricos para garantizar la
ubicación de los fibroblastos tiempo después de realizado el implante para así corroborar
la permanencia de éstos. (33) No obstante los diferentes estudios realizados a la fecha,
la evidencia respecto al uso de fibroblastos en los rellenos subdérmicos no es muy fuerte
y no se ha corroborado claramente su eficacia frente a otros compuestos utilizados. (42)
Tal vez uno de los factores que no ha sido evaluado adecuadamente es el relacionado
con la celularidad, es decir con la cantidad de células implantadas dentro del mismo
proceso pues no es lo mismo colocar mil células que un millón. La diferencia está
fundamentalmente en su capacidad de generar más elementos de la matriz extracelular
recuperando así parte de la dinámica perdida como consecuencia del envejecimiento.
Aunque desde el punto de vista de la proliferación las mil células pueden evidenciar una
gran actividad in vitro, no así in vivo donde deben competir con las condiciones de suDiscusión____________________________________________________________________34
medio que no son igual que el medio in vitro, por ello considero que la celularidad es un
factor que debería considerarse aquí.
Con el fin de obtener mejores resultados, se inició el desarrollo de rellenos subdérmicos,
que tuvieran el componente estructural del ácido hialurónico y la acción celular de los
fibroblastos. (31) Los primeros estudios que se realizaron en animales demostraron un
buen nivel de seguridad dada la ausencia de efectos adversos y aunque se pudo
determinar la neoformación de colágeno tipo I, no se pudo evaluar si habían fibroblastos
viables dentro de los implantes. (31) Posteriormente se hicieron estudios que incluían
relleno subdérmico con ácido hialurónico e implante de fibroblastos pero en mayor
densidad que en experimentos anteriores [30 X 106 células]. El análisis histológico de
estos experimentos en animales reveló cambios en la migración vascular y en la
generación de tejido colágeno; de igual manera que en estudios anteriores, no se
reportaron efectos adversos. (35) Teniendo en cuenta que no se conoce si las células
implantadas son viables o no y si permanecían en el tejido receptor, se hicieron estudios
en modelos múridos con inyección de fibroblastos a los cuales se les hizo seguimiento
mediante Reacción de cadena de polimerasa. (18) Mientras que, el seguimiento de la
reorganización del ácido hialurónico después de los implantes se realiza mediante
estudios de iontoforesis. (43) Si bien los diferentes estudios no han reportado efectos
adversos al procedimiento, los diferentes análisis histológicos demuestran que tras el
implante ocurre una respuesta inflamatoria por parte del tejido huésped en las primeras 4
semanas y un proceso de degradación ocho meses después. (14)
Los estudios sugieren que la presencia de ácido hialurónico disminuye la adhesión de los
fibroblastos en cultivo. (44) Más aún, se ha evaluado que altas concentraciones de ácido
hialurónico parecen cambiar las características morfológicas de los fibroblastos,
haciéndolos más delgados y permitiendo con ello generar uniones a distancia. (44) Un
efecto deletéreo es que este compuesto parece afectar la secreción de colágeno por
parte de las células, (45) lo cual puede alterar los mecanismos de remodelación en la
piel. (18,39,46)Discusión____________________________________________________________________35
En este estudio se comprobó que los fibroblastos cultivados con ácido hialurónico a la
concentración más alta se desprendían de la superficie de los pozos de cultivo
evidenciándose así una pérdida parcial de la viabilidad celular; sin embargo, dado que un
porcentaje importante de fibroblastos permanecían adheridos, se puede especular que
dichas células serían capaces de llegar a continuar proliferando a pesar del retraso en el
tiempo de división celular que produce el ácido hialurónico. Es deseable entonces hacer
mas ensayos para analizar el comportamiento de los fibroblastos a mas tiempo de
exposición al acido hialurónico en altas concentraciones.
Contrario a lo anterior, otros investigadores han reportado que el ácido hialurónico tiene
acciones sobre el ciclo celular, disminuyendo la apoptosis en fibroblastos de ratón. (44) In
vivo esta característica se ha utilizado para estimular la producción de colágeno en
células con una sobrevida mayor; sin embargo, el mecanismo por el cual ocurre no es
claro, (45) ya que se desconoce si el efecto en el ciclo celular depende de la
concentración de ácido hialurónico o de las condiciones del espacio extracelular.
Dilucidar este mecanismo, podría ser útil para optimizar los resultados de los implantes lo
que implica la realización de ensayos y su evaluación en citometría de flujo.
La asociación de ácido hialurónico y fibroblastos en implantes subdérmicos en modelos
murinos en estudios previos no presentó ningún efecto adverso clínico de reacción
cutánea, ni en la histología con ausencia de granulomas, reacciones a cuerpo extraño,
vasculitis o necrosis. (31) En estudios que se hicieron seguimiento escanográfico y de
PCR de las células del tejido implantado no mostró diferencias en los resultados de los
implantes para la presencia de efectos clínicos respecto a los controles. (18) El análisis
histológico en otros rellenos subdérmicos de ácido hialurónico y fibroblastos no
evidenció zonas de necrosis o granulomas. (35) En nuestro estudio en ratas Wistar, los
resultados histológicos fueron similares. No se tuvo ninguna reacción a cuerpo extraño,
granulomas, presencia de infecciones, vasculitis o necrosis. La aplicación en los
animales fue segura, sin la presencia de efectos adversos no esperados. El
comportamiento de los animales fue totalmente normal, no hubo manifestaciones de
dolor, diestrés o incomodidad; los animales mantuvieron una actitud alerta permanente,
se recrearon y acicalaron dentro de los parámetros de normalidad etológica la evaluaciónDiscusión____________________________________________________________________36
histológica y clínica nos lleva a la normalidad. Este estudio evalúa la seguridad de la
combinación de fibroblastos y ácido hialurónico que mediante esta técnica es segura en
los animales independientemente de la concentración de fibroblastos. Este es un aporte
importante para la seguridad posterior del trabajo clínico, de ésta manera se está dando
cumplimiento a un requerimiento establecido en las Pautas Éticas Internacionales para
investigación en seres humanos y por el otro lado se está evidenciando el
comportamiento del relleno en un organismo completo lo que implica que hay mayor
información para mayor seguridad en los procedimientos en humanos. Aunque es claro
que este tipo de ensayos son de evaluación crónica, es decir son ensayos de corta
duración; no tan corta como las pruebas agudas pero igual no nos dan información sobre
efectos tardíos.
A pesar de que no se encontraron efectos adversos, éstos pueden ocurrir de manera
retardada, al parecer por un mecanismo en el que participan los receptores CD44
presentes en los monocitos – macrófagos, los cuales al activarse desencadena la
síntesis de la enzima hialuronidasa, la cual hidroliza el ácido hialurónico facilitando el
proceso de fagocitosis; sin embargo, al morir los macrófagos liberan la sustancia la cual
puede causar los efectos adversos. (24)
Respecto al uso de ácido hialurónico, se ha visto con poca frecuencia la presencia de
granulomas o infecciones por micobacterias, (14) muy posiblemente gracias a los
adecuados procesos de esterilidad que se llevan a cabo durante la preparación del
producto. (49) Por el contrario, se encuentra con mayor frecuencia, pero con menor
relevancia clínica, la aparición de un eritema retardado en el 8% de los pacientes. Las
reacciones de hipersensibilidad asociadas a su inyección se describen en menos de 1 en
5000 pacientes tratados, tanto así que, los efectos adversos mayores como granulomas,
angioedema reactivo y procesos inflamatorios crónicos suelen reportarse como casos
aislados. (14,23,50)
La implementación de protocolos con rellenos subdérmicos que incluyan células
autólogas y aditivos como ácido hialurónico en seres humanos requiere disminuir elDiscusión____________________________________________________________________37
tiempo de cultivo necesario para obtener la cantidad necesaria de fibroblastos para los
implantes en los pacientes por lo que en esos casos es importante incluir el uso de
biorreactores que aceleran los procesos de proliferación celular dando mejores
condiciones al cultivo además totalmente controlables.
Dado que los cultivos celulares tienen la susceptibilidad de contaminarse, una vez se
obtenga el número de células necesarias para el implante, se debe contar con
dispositivos diseñados para el almacenamiento y el transporte de las células que
preserve el ambiente estéril antes del implante en los pacientes. (49) Además de valorar
los fibroblastos en condiciones diferentes para su asociación con ácido hialurónico (51).
Se necesitan más estudios para evaluar la posibilidad de iniciar protocolos de
experimentación con seres humanos en los cuales se realice estos implantes. Este es un
estudio piloto en el cual se pudieron definir una serie de condiciones que garantizan la
posible continuidad del trabajo. Sería deseable que un nuevo residente continúe con éste
proceso, realizando los ensayos y pruebas sugeridas.Conclusiones__________________________________________________________________38
5. Conclusiones
1. Los fibroblastos cultivados in vitro en altas concentraciones de ácido hialurónico
mantienen una buena viabilidad a pesar de que se observa una disminución en la
adhesión de algunas; sin embargo, este no parece afectar la proliferación celular. Esto
tiene importancia para comprender los efectos biológicos que podría tener in vivo al
realizar el implante. Si los fibroblastos son viables asociado al ácido hialurónico in vitro,
posiblemente in vivo, los fibroblastos implantados sean igualmente viables en esta
implante, lo cual no siempre es extrapolable.
2. El estudio demostró una seguridad confiable en la aplicación del implante subdérmico
en el modelo animal, dado que no se observaron efectos adversos como granulomas a
cuerpo extraño, reacciones inflamatorias crónicas o infecciones; por lo que, es posible
manejar el mismo protocolo de aplicación en seres humanos.
3. Es necesario diseñar nuevos estudios experimentales para la aplicación de este
implante subdérmico donde se evalúen variables diferentes a los efectos adversos,
como el aumento en la perdurabilidad del implante, la posibilidad de generar un sistema
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