In diagnostic labs, the assay is used to determine the susceptibility of bacteria isolated from a patient's infection to clinically approved antibiotics.
Dalam laboratorium diagnostik, uji ini digunakan untuk menentukan kerentanan bakteri yang diisolasi dari infeksi pasien terhadap antibiotik yang disetujui secara klinis.
This allows physicians to prescribe the most appropriate antibiotic treatment.
Hal ini memungkinkan dokter untuk meresepkan pengobatan antibiotik yang paling tepat.
In drug discovery labs, especially bioprospecting labs, the assay is used to screen biological material (e.g. plant extracts, bacterial fermentation broths) and drug candidates for antibacterial activity.
Dalam laboratorium penemuan obat (terutama laboratorium bioprospeksi) uji ini digunakan untuk menyaring bahan biologis (misalnya ekstrak tumbuhan, kaldu fermentasi bakteri) dan kandidat obat untuk aktivitas antibakteri.
When bioprospecting, the assay can be performed with paired strains of bacteria to achieve dereplication and provisionally identify antibacterial mechanism of action.
Dalam bioprospeksi, pengujian dapat dilakukan dengan galur bakteri berpasangan untuk mencapai dereplikasi dan mengidentifikasi sementara mekanisme kerja antibakteri.
In diagnostic laboratories, the test is performed by inoculating the surface of an agar plate with bacteria isolated from a patient's infection.
Di laboratorium diagnostik, uji ini dilakukan dengan menginokulasi permukaan pelat agar dengan bakteri yang diisolasi dari infeksi pasien.
If an antibiotic stops the bacteria from growing or kills the bacteria, there will be an area around the disk where the bacteria have not grown enough to be visible.
Jika antibiotik menghentikan pertumbuhan bakteri atau membunuh bakteri, akan ada area di sekitar cakram tempat bakteri belum cukup tumbuh untuk terlihat.
The susceptibility of the bacterial isolate to each antibiotic can then be semi-quantified by comparing the size of these zones of inhibition to databases of information on known antibiotic-susceptible, moderately susceptible and resistant bacteria.
Kerentanan isolat bakteri terhadap setiap antibiotik kemudian dapat dikuantifikasi secara semi-kuantifikasi dengan membandingkan ukuran zona penghambatan ini dengan pangkalan data informasi tentang bakteri yang diketahui rentan terhadap antibiotik, cukup rentan, dan resisten.
In this way, it is possible to identify the most appropriate antibiotic for treating a patient's infection.
Dengan cara ini, dimungkinkan untuk mengidentifikasi antibiotik yang paling tepat untuk mengobati infeksi pasien.
In drug discovery labs, the disk diffusion test is performed slightly differently than in diagnostic labs.
Di laboratorium penemuan obat, uji difusi cakram dilakukan sedikit berbeda dibandingkan di laboratorium diagnostik.
Zone of inhibition sizes cannot be used as a semi-quantitative measure of antibacterial potency because different extracts contain molecules with different diffusion characteristics (different molecular sizes, hydrophilicities etc.).
Ukuran zona hambatan tidak dapat digunakan sebagai ukuran semi-kuantitatif potensi antibakteri karena ekstrak yang berbeda mengandung molekul dengan karakteristik difusi yang berbeda (ukuran molekul, hidrofilisitas, dll.
This is achieved by testing each extract against paired strains of bacteria (e.g. streptomycin-susceptible and -resistant strains to identify streptomycin-containing extracts).
Ini dicapai dengan menguji setiap ekstrak terhadap galur bakteri yang berpasangan (misalnya galur yang rentan dan resisten terhadap streptomisin untuk mengidentifikasi ekstrak yang mengandung streptomisin).
However, the method has been developed, refined and standardized by many scientists and scientific organizations over the years including George F. Reddish, Norman Heatley, James G. Vincent, Alfred W. Bauer, William M.M. Kirby, John C. Sherris, Hans Martin Ericsson, the World Health Organization, the Clinical and Laboratory Standards Institute, the Swedish Reference Group for Antibiotics, the Deutsches Institut für Normung, the British Society for Antimicrobial Chemotherapy and others.
Namun, metode ini telah dikembangkan, disempurnakan, dan distandarisasi oleh banyak ilmuwan dan organisasi ilmiah selama bertahun-tahun termasuk George F. Reddish, Norman Heatley, James G. Vincent, Alfred W. Bauer, William M.M. Kirby, John C. Sherris, Hans Martin Ericsson, Organisasi Kesehatan Dunia, Institut Standar Klinis dan Laboratorium, Kelompok Referensi Swedia untuk Antibiotik, Deutsches Institut für Normung, Masyarakat Britania Raya untuk Kemoterapi Antimikroba, dan lainnya.
If the antibiotic or extract is effective against bacteria at a certain concentration, no colonies will grow where the concentration in the agar is greater than or equal to the effective concentration.
Jika antibiotik atau ekstrak efektif melawan bakteri pada konsentrasi tertentu, tidak akan ada koloni yang tumbuh di tempat yang konsentrasinya dalam agar lebih besar atau sama dengan konsentrasi efektif.
In general, larger zones of inhibition correlate with lower minimum inhibitory concentrations (MICs) of antibiotic or extract for that bacterial strain.
Secara umum, zona penghambatan yang lebih besar berkorelasi dengan konsentrasi hambat minimum (MIC) antibiotik atau ekstrak yang lebih rendah untuk galur bakteri tersebut.
An exception to this is when molecules of the antibiotic or extract are large or hydrophobic because these diffuse through the agar slowly.
Pengecualian untuk hal ini adalah ketika molekul antibiotik atau ekstrak berukuran besar atau hidrofobik karena molekul-molekul ini berdifusi melalui agar secara perlahan.
All aspects of the Kirby–Bauer procedure are standardized to ensure consistent and accurate results.
Semua aspek prosedur Kirby–Bauer distandarisasi untuk memastikan hasil yang konsisten dan akurat.
Because of this, a laboratory must adhere to these standards.
Oleh karena itu, laboratorium harus mematuhi standar ini.
The media used in Kirby–Bauer testing must be Mueller–Hinton agar at only 4 mm deep, poured into either 100 mm or 150 mm Petri dishes.
Media yang digunakan dalam uji Kirby–Bauer harus berupa agar Mueller–Hinton dengan kedalaman hanya 4 mm, dituangkan ke dalam cawan Petri berukuran 100 mm atau 150 mm.
In the case of Gram negative bacteria, excess liquid is removed from the swab by gently pressing or rotating it against the inside of the tube.
Untuk bakteri Gram-negatif, cairan berlebih dikeluarkan dari kapas usap dengan menekan atau memutarnya secara perlahan ke bagian dalam tabung.
This must be done within 15 minutes of inoculation.
Ini harus dilakukan dalam waktu 15 menit setelah inokulasi.
Plates must be incubated within 15 minutes of applying antibiotic disks.
Cawan harus diinkubasi dalam waktu 15 menit setelah penggunaan cakram antibiotik.
The following table shows media requirements of commonly tested microorganisms:
Tabel berikut menunjukkan kebutuhan media mikroorganisme yang umum diuji: Untuk memastikan keakuratan hasil uji, metode kontrol kualitas harus digunakan.
In order to monitor the performance of the test, special bacterial strains are used as positive or negative control.
Untuk memantau kinerja uji, galur bakteri khusus digunakan sebagai kontrol positif atau negatif.
Additionally, specific media are used to test certain antibiotics.
Selain itu, media spesifik digunakan untuk menguji antibiotik tertentu.
These are plotted as linear dimensions or squares of distances as a function of the natural logarithm of antibiotic concentration in the disks.
Ukuran zona di-plot sebagai dimensi linier atau kuadrat jarak sebagai fungsi logaritma natural konsentrasi antibiotik dalam cakram.
The MIC is determined from the zero intercept of a linear regression fit through the data.
MIC ditentukan dari titik nol intersep regresi linier yang sesuai dengan data.
It allows to shorten the time of incubation to 16-20 hours.
Metode ini memungkinkan untuk mempersingkat waktu inkubasi menjadi 16-20 jam.
Test scores are read after 4, 6, 8 and 16-20 hours.
Skor uji dibaca setelah 4, 6, 8, dan 16-20 jam.
Validated quality control strains include: E. coli ATCC 25922, P. aeruginosa ATCC 27853, S. aureus ATCC 29213, E. faecalis ATCC 29212, S. pneumoniae ATCC 49619.
Galur kendali mutu yang tervalidasi meliputi: E. coli ATCC 25922, P. aeruginosa ATCC 27853, S. aureus ATCC 29213, E. faecalis ATCC 29212, S. pneumoniae ATCC 49619.
RAST allows for rapid determination of possible antibiotic resistance in tested cultures.
RAST memungkinkan penentuan cepat kemungkinan resistensi antibiotik dalam kultur yang diuji.
It allows to check for ESBL and/or carbapenemase producing E. coli and K. pneumoniae, using cefotaxime/ceftazidime (after 4 hours) and meropenem (after 6 hours) respectively.
RAST memungkinkan pemeriksaan E. coli dan K. pneumoniae penghasil ESBL dan/atau karbapenemase, masing-masing menggunakan sefotaksim/seftazidim (setelah 4 jam) dan meropenem (setelah 6 jam).
However, these results are not quantitative and should be used only for screening in routine medical tests.
Namun, hasil ini tidak kuantitatif dan hanya boleh digunakan untuk skrining dalam tes medis rutin.
In clinical trials, RAST method led to significant improvements in predicting efficacy of antibiotic therapy.
Dalam uji klinis, metode RAST menghasilkan peningkatan signifikan dalam memprediksi efikasi terapi antibiotik.
Disks containing antibiotics are placed on an uninoculated Mueller-Hinton agar plate and incubated for 2 hours.
Cakram berisi antibiotik ditempatkan pada cawan agar Mueller-Hinton yang belum diinokulasi dan diinkubasi selama 2 jam.
Then, they are removed and the bacterial suspension previously prepared using broth microdilution is applied and another disk with a different antibiotic is placed precisely in the same place as the previous one.
Kemudian, cakram tersebut dikeluarkan dan suspensi bakteri yang sebelumnya disiapkan menggunakan mikrodilusi kaldu diaplikasikan dan cakram lain dengan antibiotik yang berbeda ditempatkan tepat di tempat yang sama dengan cakram sebelumnya.
After incubation for 16-20 hours results are correlated with the first antibiotic's MIC values.
Setelah inkubasi selama 16-20 jam, hasilnya dikorelasikan dengan nilai MIC antibiotik pertama.
Comparing to classical disk-based methods, bioautography utilises thin-layer chromatography to separate constituents of the tested mixture.
Dibandingkan dengan metode berbasis cakram klasik, bioautografi menggunakan kromatografi lapis tipis untuk memisahkan komponen-komponen dari campuran yang diuji.
Then, the sample is incubated and zones of inhibitions are measured.
Kemudian, sampel diinkubasi dan zona penghambatan diukur.
To visualise zones of inhibitions in direct bioautography, reagents that detect dehydrogenase activity are used (e.g., tetrazolium salts, which are converted by microbial dehydrogenases into chromogenic formazans).
Untuk memvisualisasikan zona penghambatan dalam bioautografi langsung, reagen yang mendeteksi aktivitas dehidrogenase digunakan (misalnya garam tetrazolium, yang diubah oleh dehidrogenase mikroba menjadi formazan kromogenik).