INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
L’invention s’intéresse tout particulièrement à la production de phloroglucinol dans des levures, et le vecteur utilisé dans l’invention est donc avantageusement approprié et même optimisé pour la transfection de levures. Le vecteur utilisé dans l’invention peut notamment être avantageusement un vecteur plasmidique approprié pour la transfection de levures. Des exemples représentatifs de vecteurs plasmidiques appropriés pour la transfection de levures comprennent, sans limitation, pREP4, pCEP4 (Invitrogen), pCI (Promega), pVAX (Invitrogen) et pgWiz (Gene Therapy System Inc) et YCplac22 (ATCC 87585), ainsi que tout dérivé de ces vecteurs (notamment un dérivé de YCplac22 dans lequel ont été intégrés le couple (promoteur PGK et terminateurs CYC) ainsi que le couple (promoteur TEF1 et terminateur ADH1)), mais tout autre vecteur approprié pour transfection de levures peut être utilisé.
Cellule hôte utilisée La cellule hôte utilisée dans l’invention peut être toute cellule hôte exprimant tout polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries tel que défini ci-dessus. Elle peut notamment être choisie parmi les cellules hôtes comprenant une molécule d’acides nucléiques isolée telle que définie ci-dessus ou un vecteur tel que défini ci-dessus.
Tel que défini ci-dessus, une cellule hôte est une cellule contenant une molécule d’acides nucléiques hétérologue. Dans le cadre de l’invention, la molécule d’acides nucléiques hétérologue correspond à la molécule d’acides nucléiques isolée telle que définie ci-dessus ou au vecteur tel que défini ci-dessus.
La cellule hôte utilisée peut être une cellule procaryote ou une cellule eucaryote. Parmi les cellules procaryotes, elle peut être choisie parmi les bactéries. Parmi les cellules eucaryotes, elle peut être choisie parmi les cellules de levure, les cellules de champignons, les cellules d’algues, les cellules d'insectes, de plantes ou de mammifères non humaines.
La cellule hôte utilisée est de préférence une levure, ladite levure étant en particulier sélectionnée parmi les genres Saccharomyces , Candida, Eremothecium , Dekkera , Pichia ( Hansenula ), Debaryomyces , Lodderomyces , Yarrowia , Zigosaccharomyces , Schizosaccharomyces , Torulaspora , Kluyveromyces , Brettanomycces , Cryptococcus et Malassezia .
De manière encore plus particulière, la levure est sélectionnée parmi les espèces Saccharomyces cerevisiae , Saccharomyces boulardii , Saccharomyces douglasii , Saccharomyces bayanus , Zigosaccharomyces bailii , Schizosaccharomyces pombe, Dekkera brucelensis , Dekkera intermedia , Brettanomycces custersii , Brettanomycces intermedius , Kluyveromyces themotolerens , Torulaspora globosa et Torulaspora glabrata .
Encore plus particulièrement, la levure est du genre Saccharomyces , de préférence de l’espèce Saccharomyces cerevisiae .
La cellule hôte utilisée peut aussi être une bactérie, ladite bactérie étant en particulier sélectionnée parmi les protéobactéries, les bactéries actinomycètes et les bactéries Firmicutes. Parmi les protéobactéries, la cellule hôte peut avantageusement être choisie parmi les genres Escherichia (notamment parmi les souches de l’espèce Escherichia coli , espèce la plus utilisée pour la production de protéines recombinantes) et Pseudomonas . Parmi les bactéries actinomycètes, la cellule hôte peut avantageusement être choisie parmi les genres Streptomyces et Corynebacterium . Parmi les bactéries Firmicutes, cellule hôte peut avantageusement être choisie parmi les genres Bacillus et Lactobacillus .
La cellule hôte utilisée comprend au moins une copie de la molécule d’acides nucléiques isolée telle que définie ci-dessus intégrée dans son génome. Elle peut notamment comprendre une copie unique de la molécule d’acides nucléiques isolée telle que définie ci-dessus intégrée dans son génome.
Lorsque la cellule hôte utilisée est une cellule de levure (notamment du genre Saccharomyces , de préférence de l’espèce Saccharomyces cerevisiae ), la ou les copies de la molécule d’acides nucléiques peut être intégrée à différents loci, préférentiellement au locus URA3, au locus JLP1, au locus LEU2, ou au locus TRP1 du génome de ladite cellule de levure. Lorsque la cellule hôte est une cellule de levure et que plusieurs copies de la molécule d’acides nucléiques sont intégrées, les différentes copies peuvent être intégrées au même locus, ou encore à différents loci, préférentiellement à l’une quelconque des combinaisons des loci URA3, JLP1, LEU2, et/ou TRP1.
Avantageusement, les codons utilisés dans la molécule d’acides nucléiques codant pour le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries comprise dans la cellule hôte ou dans le vecteur compris dans la cellule hôte ont été adaptés pour une expression optimale dans la cellule hôte sélectionnée. Comme expliqué précédemment, la production d’une séquence d’acides aminés d’intérêt, une expression optimale peut être obtenue lorsque les codons choisis pour coder la séquence d’acides aminés sont ceux utilisés de manière préférentielle par l’organisme d’origine de la cellule hôte. Quel que soit le type de cellule hôte, la personne du métier saura trouver quels codons sont à privilégier dans la littérature ou en utilisant un logiciel d’optimisation des codons. Les exemples de logiciels d’optimisation des codons mentionnés ci-dessus pour la levure peuvent également être utilisés pour d’autres type de cellules hôte. Les levures, et notamment celles du genre Saccharomyces , de préférence de l’espèce Saccharomyces cerevisiae , étant tout particulièrement préférées comme cellules hôtes, les codons utilisés dans la molécule d’acides nucléiques codant pour le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries comprise dans la cellule hôte ou dans le vecteur compris dans la cellule hôte ont avantageusement été adaptés pour une expression optimale dans les levures, et notamment dans les levures du genre Saccharomyces , de préférence de l’espèce Saccharomyces cerevisiae .
Pour l’utilisation selon l’invention, les cellules hôtes peuvent être cultivées dans des bioréacteurs aérobie ou anaérobie, à petite et grande échelle, dans des flacons ou des boites de Petri. La culture peut être effectuée à une température, un pH, un milieu de culture et une teneur en oxygène appropriés pour une cellule hôte donnée. Pour les levures, et plus particulièrement pour Saccharomyces cerevisiae , la culture est avantageusement effectuée par n'importe quelle méthode appropriée. Les procédés de culture d'une souche Saccharomyces cerevisiae sont connus dans l'art, et l'homme du métier sait optimiser les conditions de culture pour chaque souche en fonction de sa nature. Des procédés classiques sont notamment décrits dans l'ouvrage de référence "Yeast Technology", 2ème Edition, 1991, Reed and Nagodawithana, publié par Van Nostrand Reinhold (ISBN 0-442-31892-8). Notamment, la culture d'une souche de levure, en particulier de l’espèce Saccharomyces cerevisiae, peut généralement être réalisée à une température comprise entre 20 et 37°C, dans un milieu liquide riche (par exemple le milieu YPD accessible auprès de VWR) ou synthétique (défini pour répondre précisément aux besoins de la souche), en culture aérobie ou anaérobie.
Utilisation Le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries, la molécule d’acides nucléiques codant pour celui-ci, le vecteur comprenant une molécule d’acides nucléiques codant pour celui-ci ou la cellule hôte exprimant celui-ci, chacun étant tel que défini ci-dessus, est utilisé pour produire du phloroglucinol, quelle que soit la méthode de production utilisée.
Selon la méthode, la personne du métier saura choisir le plus approprié entre le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries, la molécule d’acides nucléiques codant pour celui-ci, le vecteur comprenant une molécule d’acides nucléiques codant pour celui-ci ou la cellule hôte exprimant celui-ci, chacun étant tel que défini ci-dessus.
Notamment, le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries tel que décrit ci-dessus peut être utilisé directement pour produire du phloroglucinol in vitro, à condition de le mettre en contact avec du malonyl-CoA. En effet, les phloroglucinol synthases réalisent la condensation de trois molécules de malonyl-CoA pour former une molécule de phloroglucinol selon le schéma réactionnel Réaction I précédemment décrit.
(β) la purification du polypeptide à partir des cellules hôtes et/ou du surnageant récupérées à l’étape (α).
L’étape optionnelle (α) de récupération des cellules hôtes exprimant ledit polypeptide et/ou du surnageant comprenant le polypeptide peut être réalisée par toute technique appropriée connue de la personne du métier. Les cellules et le surnageant peuvent notamment être séparés par décantation ou centrifugation.
L’étape optionnelle (β) de purification du polypeptide à partir des cellules hôtes et/ou du surnageant récupérées à l’étape (α) peut être réalisée par toute technique appropriée connue de la personne du métier. Lorsque le polypeptide est purifié à partir du surnageant, toute technique de purification de protéine en phase liquide peut être utilisée, comme par exemple les différents types de chromatographie (filtration sur gel, échange d’ions, par interaction hydrophobe, par affinité lorsque la protéine comprend une étiquette d’affinité, chromatographie liquide haute performance « HPLC »). Lorsque le polypeptide est purifié à partir des cellules ou des cellules et du surnageant, la purification comprend en outre une ou plusieurs étape(s) préalable(s) de lyse des cellules et éventuellement d’élimination des débris cellulaire, avant l’utilisation d’une technique de purification en phase liquide.
Méthodes pour produire du phloroglucinol Comme expliqué dans la sous-section « Utilisation » de la section visant l’utilisation selon l’invention, différentes méthodes de production de phloroglucinol peuvent être mises en œuvre selon qu’elles reposent sur le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries, la molécule d’acides nucléiques codant pour celui-ci, le vecteur comprenant une molécule d’acides nucléiques codant pour celui-ci ou la cellule hôte exprimant celui-ci, chacun étant tel que défini ci-dessus.
Notamment, la molécule d’acides nucléiques codant pour le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries tel que décrit ci-dessus et le vecteur comprenant une molécule d’acides nucléiques codant pour ce polypeptide peuvent être utilisés pour transfecter une cellule hôte, qui peut ensuite être utilisée soit pour produire le polypeptide (qui peut alors produire du phloroglucinol in vitro) soit pour produire directement du phloroglucinol lorsqu’elle est cultivée en présence d’un substrat approprié.
Ainsi, selon un mode de réalisation M1, la méthode de production de phloroglucinol utilise une cellule hôte exprimant le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries tel que défini ci-dessus (par exemple une cellule hôte selon l’invention), qui est cultivée en présence d’un substrat appropriée pour produire du phloroglucinol. Ce mode de réalisation peut être subdivisé en deux sous-modes de réalisation, selon que la méthode comprend (mode de réalisation M1A) ou non (mode de réalisation M1B) une étape préalable d’obtention des cellules hôtes.
Dans le mode de réalisation M1A, l’invention concerne une méthode pour produire du phloroglucinol qui comprend, est essentiellement constituée, ou est constituée des étapes suivantes :
(i1) l’introduction d’une molécule d’acides nucléiques ou d’un vecteur comprenant une molécule d’acides nucléiques tels que décrits ci-dessus (molécule d’acides nucléiques ou vecteur utilisés dans l’invention ou selon l’invention) dans une cellule hôte appropriée conforme à la description qui précède ;
(ii1) la mise en contact des cellules hôtes obtenues à l’étape (i1) avec un substrat approprié ;
(iii1) la culture in vitro de la cellule hôte de l’étape (ii1) dans des conditions permettant l’expression de la molécule d’acides nucléiques contenue dans ladite cellule hôte, de manière à produire du phloroglucinol ;
(iv1) optionnellement la récupération du milieu de culture comprenant le phloroglucinol, obtenu après l’étape (iii1) ; et
(v1) optionnellement, la purification du phloroglucinol à partir du milieu de culture de l’étape (iv1).
Dans le mode de réalisation M1B, l’invention concerne une méthode pour produire du phloroglucinol, qui comprend, est essentiellement constituée, ou est constituée des étapes suivantes :
(ii1) la mise en contact d’une cellule hôte non humaine exprimant le polypeptide choisi parmi les polykétide synthases de type III de cyanobactéries tel que défini ci-dessus (par exemple une cellule hôte selon l’invention), avec un substrat approprié ;
Pour ranger les articles, alors que le système est en mode installation, il suffit de scanner le tag du produit, puis le tag d’une des lattes de la surface de stockage sur laquelle on souhaite le stocker. Alors, à partir de ce tag T26, le système va rechercher la première latte ayant un séparateur sur sa gauche, puis sur sa droite et il va attribuer le code produit à toutes les lignes de la table centrale 124 comprises entre ces deux séparateurs.
Ce principe de séparateurs avec reconnaissance par le système est, selon l’invention, ce qui permet de rendre tout espace de stockage 12 compartimentale en lattes ou surfaces 78.
Avantageusement, lorsque la table articles 128 est incomplète ou si l’article n’existe pas, l’invention permet de la compléter en matière de « désignation », « code article » et « poids unitaire ».
Dans l’étape de réception d’informations de poids, l’unité de calcul 20 reçoit les informations de poids de toutes les jauges de contraintes 54 d’une interface de mesures donnée et de présence du séparateur 14 des éléments de détection de séparateur reliés à cette même interface. L’unité de calcul 20 va alors ranger ces informations dans la table centrale 124 aux bons endroits grâce à la référence unique de chaque interface de mesures, de chaque jauge de contrainte et de chaque séparateur. Pour mémoire cette référence unique est constituée de l’adresse MAC de l’interface de mesure unique dans le monde, de l’identifiant du microcontrôleur CAN 2.0A unique sur chaque rang de rail, et du numéro de la jauge 54 qui lui est connectée.
Ensuite, l’unité de calcul 20 effectue la détermination de poids total de chaque produit en fonction de la présence du séparateur 14.
Ensuite, l’unité de calcul 20 va réaliser l’opération Poids total / poids unitaire et ainsi déterminer le nombre de produits physiquement stockés sur chaque sous-surface SA et SB. Le nombre d’articles est stocké dans la colonne « nombre final ».
Un autre exemple de table centrale 124 est donné dans le tableau 7.
Rayon Module Mac address étage Ligne Section Id µC requete Id µC Data Numéro jauge Séparateur Poids (g) Numéro latte Code article A AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x500 0x400 1 0 300 ABC21 DC2 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0x900 0x800 1 1 250 ABC21 DC2 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xd00 0xc00 1 1 200 ABC21 DC2 B AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x700 0x600 2 1 250 ABC22 DC2 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0xb00 0xa00 2 1 200 ABC22 DC2 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xf00 0xe00 2 1 300 ABC22 DC2 C AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x500 0x400 3 0 200 ABC23 12345 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0x900 0x800 3 1 700 ABC23 12345 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xd00 0xc00 3 1 850 ABC23 12345 D AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x700 0x600 4 1 300 ABC24 12345 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0xb00 0xa00 4 1 480 ABC24 12345 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xf00 0xe00 4 1 480 ABC24 12345 E AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x500 0x400 5 1 200 ABC25 12345 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0x900 0x800 5 1 560 ABC25 12345 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xd00 0xc00 5 1 730 ABC25 12345 F AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x700 0x600 6 0 200 ABC26 KB15 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0xb00 0xa00 6 1 300 ABC26 KB15 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xf00 0xe00 6 1 300 ABC26 KB15 G AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x500 0x400 7 1 150 ABC27 KB15 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 2 3 0x900 0x800 7 1 350 ABC27 KB15 AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 3 3 0xd00 0xc00 7 1 300 ABC27 KB15
Cette table centrale 124 est associée au module de stockage de la . Pour simplifier seules les surfaces A à G sont listées.
Dans la table centrale 124 du tableau 7, l’unité de calcul 20 additionne les valeurs de poids de chaque jauge de contrainte 54 depuis une première valeur de séparateur I14 égale à 0 jusqu’à la suivante exclue. Ensuite l’unité de calcul 20 se positionne sur le code article de la table articles 128 correspondant à la somme qu’il vient de réaliser, puis va ranger cette somme dans la table articles 128 du tableau 6 dans la colonne « poids total ». Le poids unitaire Ux a été préalablement enregistré dans la table articles 128 pour chaque produit Px dans la colonne « Poids unitaire du produit » lors de l’étape de paramétrage. Lors de l’étape de détermination de quantité de produits, une quantité de produit Qx est associée à chaque nom de produit Nx, la quantité de produit Qx étant obtenue en divisant le poids total de produits Wx par le poids unitaire du produit Ux. La quantité de produit Qx obtenue est enregistrée dans la colonne « Nombre final ».
Le tableau 8 montre un autre exemple de table centrale 124 pour des tringles.
Tringle Rayon Module Mac address étage Ligne Section Id µC requete Id µC Data Numéro jauge Séparateur Poids (g) Numéro latte Code article H AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x500 0x400 1 0 300 DEF21 PDT1 A I AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x900 0x800 1 0 270 DEF22 PDT1 B J AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0xd00 0xc00 1 0 1000 DEF23 PDT2 A K AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0x700 0x600 2 0 1250 DEF24 PDT2 B L AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0xb00 0xa00 2 0 500 DEF25 PDT2 C M AC 3 5E:FF:56:A2:FF:15 4 1 3 0xf00 0xe00 2 0 1200 DEF26 PDT3
Le tableau 9 montre un exemple de table articles 128 associée à la table centrale 124 du tableau 8.
Désignation Poids unitaire Poids total Nombre initial Nombre final Nombre réceptionnés Code article Préalerte alerte Piles AA 30 300 10 10 0 PDT1 A 3 1 Piles AA 30 270 9 9 0 PDT1 B 3 1 Tire bouchon 250 1000 4 4 0 PDT2 A 2 1 Tire bouchon 250 1250 5 5 0 PDT2 B 2 1 Tire bouchon 250 500 2 2 0 PDT2 C 2 1 Couteau à huitres 400 1200 3 3 0 PDT 3 6 3
Les tableaux 8 et 9 montrent une manière alternative de gérer les tringles dans les tables. Dans la table centrale 124 du tableau 8, chaque valeur de séparateur est toujours égale à 0 comme si chaque tringle était munie d’un séparateur. Selon le même procédé que précédemment, l’unité de calcul n’aura pas à faire d’addition mais ira ranger la valeur du poids total dans la table articles 128 sur la bonne référence d’article. Si l’on souhaite stocker le même produit Pn sur plusieurs tringles 106, lors du paramétrage ou d’un réagencement, l’unité de calcul 20 ajoutera une lettre à son code article aussi bien dans la table centrale 124 que dans la table articles 128. Pour connaitre la quantité totale de ce même article stocké sur plusieurs tringles 106, l’unité de calcul 20 les additionnera lors de la transmission au système d’information client. Cette association se fera grâce à la désignation identique dans la table articles 128. En reprenant l’exemple de la , on constate que les tringles H, I ont le même produit « PDT1 » et les tringles J, K, L le même produit « PDT2 » alors que la tringle M est seule à stocker le produit « PDT3 ». Par ailleurs, chaque tringle 106 reçoit un tag unique. La valeur du tag est stockée dans la table centrale 124 dans la colonne « numéro latte ».
Ainsi, par exemple, le produit dont le code est « PDT1 A » et « PDT1 B » reçoit la même désignation « piles AA » ce qui permet à l’unité de calcul 20 d’additionner les quantités de produits « piles AA » de la table articles 128 afin d’envoyer la somme au système d’information client.
Un des inconvénients du frittage flash est de chauffer à des températures relativement élevées. Cela limite par conséquent l’utilisation de matériaux métastables à température et pression ambiantes pour la production de pièces mécaniques. Par exemple, le diamant est stable à température et pression ambiantes mais retourne sous forme graphite quand il est chauffé à plus de 800°C sous atmosphère oxygénée et à plus de 1700°C sous atmosphère inerte ou sous vide.
Au début du 21 ème siècle, la technologie du frittage flash a été améliorée en comprimant les poudres à des pressions supérieures à plusieurs centaines de MPa. L’ajout d’une telle pression au frittage flash permet non seulement de fritter des matériaux métastables à pression ambiante mais aussi d’abaisser la température nécessaire pour le frittage de poudres, entre 500 et 1000°C en fonction du matériau, et ainsi de réduire d’avantage la croissance des grains lors du frittage. Des pièces mécaniques avec des tailles de grains inférieures à 100nm ont ainsi pu être obtenues en une dizaine de minutes. Il est aussi possible de fritter des poudres de diamant nanométriques à 5 GPa et 1500°C pour obtenir des pièces mécaniques de diamant polycristallin avec des grains de 10 à 100 nm.
Un des principaux inconvénients du frittage flash à haute pression est l’impossibilité de réaliser des formes complexes pendant le frittage. En effet, les dispositifs utilisés actuellement pour atteindre des pressions supérieures au GPa contraignent fortement la forme du moule de frittage.
Pour produire des pièces céramique de diamant de synthèse, d’autres technologies, autres que le frittage flash à haute pression de poudre de diamant, existent.
Parmi ces technologies, on peut citer la technologie Haute Pression, Haute Température, connue sous l’acronyme HPHT (« High Pressure High Temperature », dans la littérature anglo-saxonne). Cette technologie consiste à placer un échantillon de carbone, par exemple du graphite, dans une enceinte et à le soumettre à une température élevée, de l’ordre de 1500°C, et à une pression élevée, de l’ordre de 15 GPa. L’ajout d’un catalyseur à l’échantillon, par exemple un métal de transition comme le nickel ou le cobalt, permet d’abaisser la température à 1000°C et la pression à 6 GPa. La technologie HPHT permet, similairement à la technologie de frittage flash sous pression, de fritter des pastilles de diamant, mais en partant d’une poudre de graphite en lieu et place d’une poudre de diamant. Dans ce cas, la poudre de graphite est comprimée à plus de 7GPa et chauffée à plus de 2000°C. La poudre subit alors successivement les étapes de changement d’état et de frittage pour former une pastille de diamant.
Une autre technologie consiste à réaliser un dépôt chimique en phase vapeur, connue sous l’acronyme CVD (« Chemical Vapor Deposition », dans la littérature anglo-saxonne). Un échantillon en diamant est placé dans une enceinte sous vide.
Un gaz, avec hydrogène, est introduit dans l’enceinte. L’ensemble est ensuite ionisé à l’aide d’une décharge microondes, créant un plasma. Les espèces issues du plasma s’adsorbent petit à petit sur le substrat et forment l’objet.
Pour ces deux premières technologies, les principaux inconvénients sont : la difficulté, voire l’impossibilité, à contrôler finement la localisation spatiale où les conditions sont réunies pour permettre la formation du diamant ; la limitation de la direction de croissance du diamant : pour la technologie HPHT, les directions sont imposées par le schéma de compression ; pour la technologie CVD, la direction est perpendiculaire au substrat.
Une autre technologie, qui permet de produire uniquement de la poudre de diamant de synthèse, repose sur le principe de la compression dynamique pour réaliser la conversion du graphite en diamant.