INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
234. Composition selon l'un quelconque des modes de réalisation 232 ou 233, dans laquelle si ladite composition comprend la seconde combinaison d’oligomères d’amplification, alors ladite composition comprend en outre un oligomère de sonde de détection spécifique à CFB comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon CFB amplifiable par les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à CFB ,
éventuellement dans laquelle les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(b) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 24, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans laquelle les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(d) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 25, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans laquelle les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (I)(a) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 22 ou SEQ ID N O : 23, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans laquelle les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(c) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 23, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci,
éventuellement dans laquelle l’oligomère de sonde de détection Spécifique à CFB comprend en outre un marqueur détectable, dans laquelle le marqueur détectable est un marqueur fluorescent ou chimioluminescent, ou dans laquelle le marqueur détectable est un marqueur fluorescent et l’oligomère de sonde de détection comprend en outre un extincteur non fluorescent.
235. Oligomère de sonde de détection comprenant :
une sonde de détection spécifique à SIP comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon SIP amplifiable par une première combinaison d’oligomères d’amplification qui comprend des premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP capables d’amplifier une région cible d’un acide nucléique cible SIP à streptocoque du groupe B (GBS), les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP comprenant respectivement une première (A) et une seconde (B) séquences d’hybridation cibles spécifiques à SIP choisies dans le groupe constitué de
(B) SEQ ID N O : 8, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci ou
un oligomère de sonde de détection spécifique à CFB comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon SIP amplifiable par une seconde combinaison d’oligomères d’amplification qui comprend des premier et second oligomères d’amplification spécifiques à CFB capables d’amplifier une région cible d’un acide nucléique cible CFB à streptocoque du groupe B (GBS), les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à CFB comprenant respectivement une première (A') et une seconde (B') séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB choisies dans le groupe constitué de
Les séquences sont « suffisamment complémentaires » si elles permettent une hybridation stable de deux séquences d’acides nucléiques, par exemple des hybrides stables de séquences de sonde et de séquences cibles, bien que les séquences n’aient pas besoin d’être complètement complémentaires. C’est-à-dire une séquence « suffisamment complémentaire » qui s’hybride à une autre séquence par liaison hydrogène entre une série de nucléotides complémentaires à l’aide d’un appariement de bases standard ( par exemple , G : C, A : T ou A : U), bien que les deux séquences puissent contenir au moins un résidu (comprenant des positions abasiques) qui ne sont pas complémentaires tant que les séquences entières dans des conditions d’hybridation appropriées pour former un complexe d’hybridation stable. Des séquences suffisamment complémentaires peuvent être d’au moins environ 80 %, d’au moins environ 90 % ou complètement complémentaires dans les séquences qui s’hybrident ensemble. Les conditions d’hybridation appropriées sont bien connues des spécialistes du domaine, peuvent être prédites sur la base de la composition de séquence, ou peuvent être déterminées de manière empirique à l’aide de tests de routine (par exemple, Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2 e édition, §§ 1.90-1.91, 7.37-7.57, 9.47-9.51 et 11.47-11.57, en particulier §§ 9.50-9.51, 11.12-11.13, 11.45-11.47 et 11.55-11.57).
Comme indiqué sur la , optionnellement, la papillote 16 comprend un moyen de scellement 58 disposé le long d’un bord libre de la première et/ou de la deuxième feuille 50, 52. Par exemple, le moyen de scellement 58 est un adhésif ou un système velcro disposé le long dudit bord libre.
Le moyen de scellement 58 évite que des fibres kératiniques de la mèche 12 ne ressortent latéralement de la papillote 16 lorsque la papillote 16 est en configuration fermée d’illumination.
Avantageusement, le moyen de scellement 58 n’est pas permanent et la papillote 16 est propre à passer de la configuration fermée à la configuration ouverte en décollant la première feuille 50 et la deuxième feuille 52.
Le dispositif de contrôle 18 de l’illumination comprend un dispositif de mesure 60 configuré pour mesurer l’énergie lumineuse totale reçue par la zone traitée 19 et un dispositif de sécurité 62 destiné à éviter une surexposition de la première zone traitée 19.
L’énergie lumineuse totale mesurée correspond à la puissance lumineuse reçue multipliée par la durée d’illumination.
De préférence, le dispositif de mesure 60 comprend un capteur 64 propre à quantifier l’énergie reçue par la zone traitée associée au rayonnement du système d’illumination 38.
Le capteur 64 est de préférence un photomètre intégrateur d'énergie.
Selon le premier mode de réalisation représenté sur la , le dispositif de mesure 60 est intégré au dispositif d’illumination 14, en particulier au niveau de la première ou de la deuxième branche 30, 32.
Dans l’exemple de la , le capteur 64 est intégré dans la deuxième branche 32 et est configuré pour recevoir directement le rayonnement du système d’illumination 38.
De préférence, le dispositif de mesure 60 comprend en outre un microcontrôleur 66 configuré pour transmettre un signal de dépassement au dispositif de sécurité 62 lorsque l’énergie lumineuse totale mesurée par le capteur 64 atteint et/ou dépasse une valeur seuil.
La valeur seuil correspond à l’énergie lumineuse maximale autorisée pour une zone traitée.
Avantageusement, la valeur seuil est ajustable par l’utilisateur, par exemple depuis un dispositif de réglage (non représenté) disposé sur l’une des branches 30, 32 du dispositif d’illumination 14. La valeur seuil est par exemple ajustable en fonction du type de cheveux ou du traitement choisi (gainage ou décoloration).
Typiquement, la valeur seuil est inférieure à 120 J / cm².
Le dispositif de sécurité 62 est de préférence intégré au dispositif d’illumination 14. Le dispositif de sécurité 62 est configuré pour émettre une consigne de sécurité lorsque l’énergie lumineuse mesurée dépasse une valeur seuil, en particulier lorsqu’il reçoit un signal de dépassement transmis par le dispositif de mesure 60.
Par exemple, la consigne de sécurité comprend l’émission d’un signal d’alerte. Le dispositif de sécurité 62 est configuré pour émettre un signal d’alerte lorsque l’énergie lumineuse totale mesurée dépasse la valeur seuil. Le signal d’alerte comprend par exemple un signal sonore et/ou un signal lumineux.
En variante ou en complément, la consigne de sécurité comprend l’interruption automatique de l’illumination de la zone traitée 19. Le dispositif de sécurité 62 est configuré pour transmettre une consigne d’interruption de l’illumination au système d’illumination 38, en particulier au contrôleur 42 de fonctionnement de la ou de chaque source lumineuse 40.
Il convient de noter que le deuxième longeron 3 comporte une ouverture 20 ménagée en regard du piston perforateur 11. Le conduit d’évacuation 12 du piston perforateur 11 débouche dans le deuxième longeron 3 lorsque le piston perforateur 11 se trouve en position de perforation P2 de la deuxième paroi 18 du carter 6 de protection.
Comme illustré à la , la trappe d’obturation 16 est solidarisée à un flotteur 21 de sorte que lorsque le volume de produit d’extinction présent dans le carter 6 de protection augmente, la trappe d’obturation 16 se déplace d’une position d’obturation P3 à une position d’ouverture P4 du conduit d’évacuation 12 que comporte le piston perforateur 11.
Comme illustré à la , dès lors que la trappe d’obturation 16 se trouve en position d’ouverture P4, le produit d’extinction se dirige dans le conduit d’évacuation 12 pour se diriger vers le deuxième longeron 3.
Le deuxième longeron 3 forme ainsi une conduite d’évacuation du produit d’extinction issu du conduit d’évacuation 12 du piston perforateur 11.
Selon ce mode de réalisation, le canal d’évacuation 10 du produit d’extinction dans lequel est disposé le piston perforateur 11 est disposé le long d’une troisième paroi 22 du carter 6 de protection, la troisième paroi 22 étant disposée en regard de l’arrière du véhicule 4. L’arrière du véhicule 4 est entendu comme le côté où se trouve le coffre 23 du véhicule 4.
Empilement pour une pile à combustible, pile à combustible et véhicule associés La présente invention concerne un empilement pour une pile à combustible, ainsi qu’une pile à combustible et un véhicule associés.
Dans le domaine des piles à combustible, il est connu de chercher à rendre le flux de gaz réactif et/ou de fluide de refroidissement uniforme, tout en optimisant la quantité de réactifs consommés, afin que les cellules de la pile à combustible fonctionnent de manière uniforme et optimale. A cette fin, CN107968210A décrit l’utilisation de plaques cathodique et anodique formant des plaques bipolaires et des assemblages membrane-électrodes avec des orifices d’alimentation et d’évacuation des fluides qui forment des galeries d’alimentation et d’évacuation des fluides. Les plaques anodique et cathodique et les assemblages membrane-électrodes comprennent des orifices d’alimentation et d’évacuation de gaz réactifs et de fluide réfrigérant disposés de part et d’autre des plaques anodiques, cathodiques et des assemblages membrane-électrode, ces orifices étant asymétriques par rapport au centre des plaques séparatrices et des assemblages membrane électrode respectivement.
Toutefois, ces dispositions imposent la géométrie des orifices des plaques bipolaires, autrement dit la forme de ces orifices, ainsi que l’orientation des plaques bipolaires les unes par rapport aux autres. En effet, les plaques bipolaires doivent toutes être orientées dans le même sens pour pouvoir définir des galeries d’alimentation et d’évacuation dont la section est optimisée.
Le but de l’invention est de résoudre les inconvénients de l’art antérieur en proposant un nouvel empilement pour une pile à combustible permettant d’optimiser le flux de fluide sans imposer de géométrie des orifices des plaques bipolaires ou d’orientation particulière des plaques bipolaires.
A cet effet, l’invention a pour objet un empilement, pour une pile à combustible. L’empilement comprend une plaque séparatrice, s’étendant parallèlement à un plan médian, le plan médian étant perpendiculaire à une direction d’empilement, la plaque séparatrice comprenant une zone périphérique qui comprend une paire d’orifices de plaque, la paire d’orifices de plaque comprenant un orifice d’alimentation de plaque et un orifice d’évacuation de plaque, un même fluide fonctionnel circulant à travers l’orifice d’alimentation de plaque et l’orifice d’évacuation de plaque, et un champ de circulation, entouré par la zone périphérique. L’empilement comprend également un assemblage membrane-électrode, s’étendant parallèlement au plan médian, superposé à la plaque séparatrice et comprenant une partie centrale en regard du champ de circulation selon la direction d’empilement, et une partie périphérique, entourant la partie centrale, en regard de la zone périphérique suivant la direction d’empilement, la partie périphérique comprenant une paire d’orifices de l’assemblage, la paire d’orifices de l’assemblage comprenant un orifice d’alimentation de l’assemblage et un orifice d’évacuation de l’assemblage, les orifices d’alimentation de l’assemblage et d’évacuation de l’assemblage étant respectivement superposés aux orifices d’alimentation et d’évacuation de plaque, le même fluide fonctionnel circulant à travers l’orifice d’alimentation de l’assemblage et l’orifice d’évacuation de l’assemblage, chaque orifice d’assemblage et de plaque délimitant une section, parallèlement au plan médian, les orifices d’alimentation superposés formant partie d’une galerie d’alimentation parallèle à la direction d’empilement, afin que le même fluide fonctionnel circulant dans la galerie d’alimentation alimente le champ de circulation, les orifices d’évacuation superposés formant partie d’une galerie d’évacuation, parallèle à la direction d’empilement, afin que le même fluide fonctionnel ayant été admis dans le champ de circulation depuis la galerie d’alimentation soit évacué par la galerie d’évacuation. En outre, dans l’empilement la paire d’orifice de plaque est symétrique par rotation de 180 degrés d’angle autour d’un axe central de plaque parallèle à la direction d’empilement et passant par le centre de plaque, et une aire de la section de l’orifice d’alimentation de l’assemblage est inférieure à une aire de la section de l’orifice d’évacuation de l’assemblage, le même fluide fonctionnel circulant à travers l’orifice d’alimentation de l’assemblage et l’orifice d’évacuation de l’assemblage.
Une idée à la base de l’invention est de prévoir que la plaque séparatrice soit symétrique par rapport au centre de plaque, au moins pour sa paire d’orifices de plaque, et que l’assemblage membrane-électrode soit asymétrique par rapport à un axe central de MEA, parallèle à la direction d’empilement et passant par le centre de MEA, au moins pour sa paire d’orifices de l’assemblage correspondant au même fluide fonctionnel. Pour chaque paire d’orifice de l’assemblage associée à un fluide fonctionnel donné, l’orifice d’alimentation est d’aire inférieure à l’aire de l’orifice d’évacuation, et les orifices d’alimentation et d’évacuation de chaque paire d’orifices de l’assemblage sont diamétralement opposés l’un par rapport à l’autre, ainsi l’assemblage membrane-électrode est asymétrique par rapport à un axe central de MEA parallèle à la direction d’empilement et passant par un centre de l’assemblage. La galerie d’alimentation formée en partie par chaque orifice d’alimentation de l’assemblage a donc une section inférieure à la galerie d’évacuation formée par chaque orifice d’évacuation de l’assemblage. Le flux de fluide est donc optimisé, et cela, indépendamment de la géométrie des orifices de plaque, ou de l’orientation des plaques séparatrices les unes par rapport aux autres.
Ces dispositions sont particulièrement avantageuses dans un cas où plusieurs plaques séparatrices et plusieurs assemblages membrane-électrodes sont prévus dans l’empilement, en ce que l’on peut par exemple prévoir que toutes les plaques séparatrices sont identiques et disposées de façon alternée, en étant dans une position qui est d’une plaque séparatrice à la suivante, pivotée de 180 degrés d’angle par rapport à un axe central parallèle à la direction d’empilement A11 et passant par leur centre de plaque respectif, et que tous les assemblages membrane-électrodes sont identiques et disposés selon la même orientation les uns par rapport aux autres. La fabrication de l’empilement est alors facilitée, sans préjudice à l’optimisation des flux de fluide fonctionnels dans les galeries d’alimentation et d’évacuation.
Suivant des aspects avantageux de l’invention, l’empilement comprend une ou plusieurs des caractéristiques suivantes, prises isolément ou suivant toutes les combinaisons techniquement possibles :
- L’aire de la section de l’orifice d’alimentation de l’assemblage est inférieure à l’aire de la section de l’orifice d’évacuation de l’assemblage d’un facteur compris entre 5% et 50%, de préférence entre 8% et 33%.
- Chaque orifice de l’assemblage est délimité par un bord périphérique respectif, formé par la partie périphérique,
- le bord périphérique de l’orifice d’alimentation de l’assemblage comprend une portion superposée et une portion en débord,
217. Formulation séchée selon l'un quelconque des modes de réalisation 212 à 216, comprenant en outre au moins un oligomère d’amplification.
218. Formulation séchée selon l'un quelconque des modes de réalisation 212 à 217, comprenant en outre un tensioactif.
219. Formulation séchée selon le mode de réalisation 218, dans laquelle le tensioactif est un tensioactif non linéaire.
220. Formulation séchée selon le mode de réalisation 218, dans laquelle le tensioactif est choisi dans le groupe constitué par
221. Formulation sèche selon l'un quelconque des modes de réalisation 212 à 220, la formulation étant une formulation lyophilisée.
222. Mélange réactionnel destiné à l’amplification de l’acide nucléique à streptocoque du groupe B (GBS), le mélange réactionnel comprenant une formulation aqueuse selon l'un quelconque des modes de réalisation 190 à 195.
223. Mélange réactionnel destiné à l’amplification de l’acide nucléique à streptocoque du groupe B (GBS), le mélange réactionnel étant reconstitué à l’aide de l’eau ou d’un tampon organique à partir d’une formulation séchée selon l'un quelconque des modes de réalisation 196 à 202.
224. Mélange réactionnel selon le mode de réalisation 223, dans lequel le mélange réactionnel contient un sel inorganique.
225. Mélange réactionnel selon le mode de réalisation 224, dans lequel le sel inorganique est choisi dans le groupe constitué par le magnésium, le potassium et le sodium.
226. Mélange réactionnel selon le mode de réalisation 224 ou 225, dans lequel la concentration du sel inorganique est inférieure ou égale à 4 mM.
227. Mélange réactionnel destiné à la détection de l’acide nucléique à streptocoque du groupe B (GBS), le mélange réactionnel comprenant une formulation aqueuse selon l'un quelconque des modes de réalisation 203 à 211.
228. Mélange réactionnel destiné à la détection de l’acide nucléique à streptocoque du groupe B (GBS), le mélange réactionnel étant reconstitué à l’aide de l’eau ou d’un tampon organique à partir d’une formulation séchée selon l'un quelconque des modes de réalisation 212 à 221.
229. Mélange réactionnel selon le mode de réalisation 228, dans lequel le mélange réactionnel contient un sel inorganique.
174. Procédé selon le mode de réalisation 173, dans lequel le marqueur détectable est un marqueur fluorescent ou chimioluminescent.
175. Procédé selon le mode de réalisation 173, dans lequel le marqueur détectable est un marqueur fluorescent et l’oligomère de sonde de détection comprend en outre un extincteur non fluorescent.
176. Procédé selon l'un quelconque des modes de réalisation 168 à 172, dans lequel l’étape de détection est réalisée en temps réel.
177. Procédé selon l'un quelconque des modes de réalisation 168 à 176, dans lequel la réaction d’amplification d’acide nucléique in vitro est une réaction d’amplification PCR.
178. Procédé selon le mode de réalisation 175, dans lequel la réaction d’amplification d’acide nucléique in vitro est une réaction d’amplification PCR en temps réel.
179. Procédé selon l'un quelconque des modes de réalisation 168 à 178, comprenant en outre la mise en contact de l’échantillon avec une seconde combinaison d’oligomères d’amplification comprenant des premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP destinés à amplifier une région cible d’un acide nucléique cible SIP à GBS,
dans lequel, à l’étape d’amplification, tout acide nucléique cible SIP à GBS, s’il est présent dans l’échantillon, est utilisé comme matrice pour générer un amplicon correspondant à la région cible SIP, et dans lequel l’étape de détection comprend la détection de la présence ou de l’absence de l’amplicon correspondant à la région cible SIP .
180. Procédé selon l'un quelconque des modes de réalisation 113 à 179, le procédé déterminant la présence ou l’absence d’un des sérotypes à GBS Ia, Ib, Ic, II, III, IV, V, VI, VII., VIII et IX.
181. Procédé selon le mode de réalisation 181, le procédé déterminant en outre la présence ou l’absence d’une souche non hémolytique de GBS.
182. Oligomère de sonde de détection comprenant :
une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon SIP amplifiable par une première combinaison d’oligomères d’amplification qui comprend des premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP capables d’amplifier une région cible d’un acide nucléique cible SIP à streptocoque du groupe B (GBS), les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP comprenant respectivement une première (A) et une seconde (B) séquences d’hybridation cibles spécifiques à SIP choisies dans le groupe constitué de
183. Oligomère de sonde de détection comprenant :
Tableau 1 : exemples de séquences d’hybridation cibles d’oligomères d’amplification sens et antisens pour l’amplification de régions cibles de GBS SIP ou CFB 1 La désignation Sens/Antisense de ces séquences est donnée à titre d’exemple uniquement. Cette désignation ne limite pas nécessairement une séquence de la désignation qui l’accompagne.
Dans certains modes de réalisation, la présente invention fournit un procédé destiné à déterminer la présence ou l’absence de streptocoque de groupe B (GBS) dans un échantillon à l’aide d’une combinaison d’oligomères telle que décrite dans la présente invention. Un tel procédé comprend généralement (1) la mise en contact de l’échantillon avec au moins deux oligomères d’amplification pour amplifier une région cible d’acides nucléiques SIP ou CFB à GBS correspondant à un acide nucléique cible SIP ou CFB , où les au moins deux oligomères d’amplification sont tels que décrits ci-dessus ; (2) la réalisation d’une réaction d’amplification d’acides nucléiques in vitro , où tout acide nucléique cible SBS ou CFB à GBS présent dans l’échantillon est utilisé comme matrice pour générer un produit d’amplification ; et (3) la détection de la présence ou de l’absence du produit d’amplification, déterminant ainsi la présence ou l’absence de GBS dans l’échantillon. Un procédé de détection selon la présente invention comprend en outre typiquement l’étape d’obtention de l’échantillon à mettre en contact avec les au moins deux oligomères d’amplification. Dans certains modes de réalisation, « obtenir » un échantillon à utiliser aux étapes (1) à (3) comprend, par exemple, la réception de l’échantillon dans une installation de test ou dans un autre lieu où une ou plusieurs étapes du procédé sont réalisées, et/ou la récupération de l’échantillon à partir d’un emplacement ( par exemple , à partir d’un stockage ou d’un autre dépôt) dans une installation où une ou plusieurs étapes du procédé sont réalisées.