INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
– une robustesse de la stabilité de l’émulsion au regard de contact avec de l’acide, passage au micro-ondes, par exemple un mélange soumis à une puissance de 750W ou 900W, en particulier pendant 30 secondes, en utilisant 5ml de Néroli 3% ou Citron 6%, ou au congélateur, en particulier à moins 18 degrés Celsius, puis en décongélation, ou lors de dilution avec l’eau, le vinaigre d’alcool ou l’éthanol ;
- au regard des taux d’incorporation atteints en huiles essentielles, il est possible de réaliser des compositions parfumantes naturelles dans l’eau, les compositions étant persistantes et transparentes.
Exemple de formulation cosmétique en mélange unique
La technique conventionnelle pour réaliser des préparations cosmétiques comporte au minimum une phase d’émulsification/stabilisation puis conservation et une phase de texturation post-traitement pour obtenir la galénique cible notamment en termes de stabilité sur le long terme.
Nous avons, dans cette expérience, mélangé en une seule opération l’ensemble des composants nécessaires à la formulation, ici :
Tableau 2 : combinaisons d’amorces et de sondes
Matériels et procédés . Comme matériau d’entrée, un sérotype non défini de GBS issu d’une culture clinique a été utilisé. Il a été extrait de plusieurs réplicats en à l’aide du système MagNA pur 96 (Roche). Après l’extraction, la concentration d’ADN a été déterminée par la mesure DO 260/280. Le PCR a été réalisé sur le système Applied Biosystems (ABI) 7500 FAST Real-Time PCR. Le profil de PCR utilisé était le suivant :
Tableau 3 : profil de PCR
Tous les échantillons ont été testés sans ajout de contrôle interne aux échantillons. Une concentration de l’acide nucléique cible à GBS (1 000 copies/µl dans la PCR) a été utilisée et testée dans quatre réplicats. La concentration des amorces a été fixée à 600 nM et la concentration de la sonde était de 200 nM.
Résultats. Le tableau 4 indique les Ct et le nombre de réactions positives pour les différentes combinaisons d’amorces/de sondes. Le Ct indiqué est le cycle au cours duquel le signal de l’unité fluorescente relative (RFU) dépasse une valeur de seuil de RFU définie.
Pour chaque gène cible, deux combinaisons d’amorces et de sondes ont été choisies pour une évaluation supplémentaire, sur la base de ces données. Pour CFB , les combinaisons 12 et 17 affichaient la valeur la plus basse en combinaison avec la RFU la plus élevée. Pour SIP , les combinaisons 1 et 3 ont été choisies. Ces combinaisons ont été testées sur des concentrations plus faibles d’acides nucléiques cibles à GBS permettant une meilleure discrimination. Les résultats indiqués dans le tableau 5 ont été obtenus en testant 1, 10 et 100 copies/µl dans la PCR.
Les combinaisons 1, 3, 12 et 17 ont également été testées sur 1 et 10 copies/µl avec différentes concentrations d’amorces/de sondes (600/200 nM, 400/150 nM et 300/100 nM). Le tableau 6 indique les résultats obtenus avec ces différentes concentrations.
Conclusion. Sur la base des résultats résumés ci-dessus, les combinaisons d’amorces/de sondes 3 et 17 (pour les gènes cibles SIP et CFB , respectivement) ont été choisies pour une évaluation supplémentaire de la sensibilité et de la spécificité. Ces combinaisons d’amorces ont été capables de détecter cinq (5) copies théoriques par réaction PCR à un Ct de 36 à 37.
Pour la détection du contrôle interne, deux combinaisons d’amorces et de sondes ont été évaluées : l’association SD-PLP/GIC et l’association New-GIC comportant les séquences d’amorces et de sondes, telles qu’indiquées dans le tableau 7. La première étape consistait à vérifier quel ensemble d’oligo donnait les meilleurs résultats lors de l’utilisation de Cy5 comme fluorophore et à quelle concentration. La seconde étape s’est concentrée sur le choix de la concentration comportant le colorant QUASAR705. Sur le système automatisé PANTHER FUSION, le colorant Cy5 émet des signaux faibles et doit être détecté à l’aide d’un colorant QUASAR705. Le signal du Cy5 étant différent du signal généré par le QUASAR705, la concentration des amorces et des sondes a été réévaluée.
Tableau 7 : amorces et sondes de contrôle interne
Le test initial des amorces et des sondes a été effectué sur le système de PCR ABI 7500 FAST Real-Time après el’xtraction de KINGFISHER. Trois concentrations différentes d’amorces/de sondes ont été utilisées : 600/200 nM, 400/150 nM et 300/100 nM. En outre, les oligos IC ont été testés en combinaison avec les oligos SIP en présence d’une cible à GBS (sérotype II et IV : souches obtenues du CHU de Liège). La seconde étape du test de circuit intégré a été réalisée sur le dispositif BioRad CFX-96 qPCR, capable de détecter à la fois le Cy5 et le QUASAR705. Initialement, la combinaison de QUASAR705 a été testée par rapport à la combinaison de Cy5 pour définir la concentration finale des amorces et des sondes.
Les données des tests initiaux ont montré que la combinaison New-GIC produisait des signaux plus élevés que la combinaison SD-PLP/GIC. La combinaison New-GIC (300/100nM) a ensuite été testée en présence d’amorces SIP (600/200nM) et de différents types de GBS (sérotypes II et IV en dilutions 10^6, 10^5, 10^4). Les données provenant de cet essai ont montré qu’il n’y a pas d’impact significatif sur la présence des amorces et des sondes IC sur la détection de GBS. De même, les signaux IC n’étaient pas influencés par la présence d’une concentration plus élevée de GBS. Sur la base des données, la combinaison SIP à 600/200 nM (FAM) a été choisie en combinaison avec la combinaison IC New-GIC à 300/100 nM (Cy5).
La molécule d’intérêt cosmétique pourra être choisie parmi les acides aminés, l’acide salicylique, la bétaïne, la caféine, les peptides utilisés en cosmétologie (par exemple le tripeptide-1, le palmitoyl tripeptide-1, le palmitoyl tetrapeptide-7, le palmitoyl hexapeptide-12, le myristoyl hexapeptide-16, le myristoyl pentapeptide-17, l’hexanoyl dipeptide-3 norleucine acetate, l’azelaoyl bis-dipeptide-10 et leurs mélanges) et leurs mélanges.
Parmi les antibiotiques, on peut citer : les β-lactames telles que les pénicillines (par exemple la pipéracilline), les carbapénèmes (par exemple le méropénèm), les monobactames (par exemple l’aztréonam), les céphalosporines (par exemple la ceftriaxone), les glycopeptides (par exemple la téicoplanine et la vancomycine), les aminoglycosides (par exemple la gentamicine et l’amikacine), les oxazolidinones (par exemple le linézolide) et leurs mélanges.
Parmi les agents antiviraux, on peut citer : l’abacavir, l’acyclovir (aciclovir), l’adefovir, l’amantadine, l’ampligen, l’amprenavir (agenerase), l’umifenovir (arbidol), l’atazanavir, l’atripla (efavirenz/emtricitabine/tenofovir) , le baloxavir marboxil (Xofluza), le biktarvy (Bictegravir/emtricitabine/tenofovir alafenamide), le boceprevir, le bulevirtide, lecidofovir, le cobicistat (Tybost), le combivir (Lamivudine/Zidovudine), le daclatasvir (Daklinza), le darunavir, la delavirdine, le descovy (Emtricitabine/tenofovir alafenamide), la didanosine, le docosanol, le dolutegravir, la doravirine (Pifeltro), l’edoxudine, l’efavirenz, l’elvitegravir, l’emtricitabine, l’enfuvirtide, l’ensitrelvir, l’entecavir, l’etravirine (Intelence), le famciclovir, le fomivirsen, le fosamprenavir, le foscarnet, le ganciclovir (Cytovene), l’ibacitabine, l’ibalizumab (Trogarzo), l’idoxuridine, l’imiquimod, l’inosine pranobex, l’indinavir, la lamivudine, le letermovir (Prevymis), le lopinavir, le loviride, le maraviroc, la methisazone, la moroxydine, le nelfinavir, le nirmatrelvir/ritonavir (Paxlovid),la nevirapine, le nitazoxanide, le norvir, l’oseltamivir (Tamiflu), le penciclovir, le peramivir (Rapivab), le pleconaril, la podophyllotoxin, le raltegravir, le remdesivir, la ribavirin, la rilpivirine (Edurant), la rimantadine, le ritonavir, le saquinavir, le simeprevir (Olysio), le sofosbuvir, la stavudine, la taribavirin (Viramidine), le telaprevir, la telbivudine (Tyzeka), le tenofovir alafenamide, le tenofovir disoproxil, le tipranavir, la trifluridine, le trizivir, la tromantadine, le truvada, l’umifenovir, le valaciclovir (Valtrex), le valganciclovir (Valcyte), le vicriviroc, la vidarabine, la zalcitabine, le zanamivir (Relenza), la zidovudine et leurs mélanges.
De préférence, la molécule d’intérêt thérapeutique ou cosmétique est choisie dans le groupe constitué des vitamines telles que l’acide ascorbique, des peptides anti-microbiens tels que les temporines, des agents antiviraux et des antibiotiques.
Procédé de préparation des particules selon l’invention
L’invention concerne également un procédé de préparation des particules telles que définies ci-dessus, comprenant le mélange : d’au moins un composé de formule Chem. (I) tel que défini ci-dessus ; d’au moins une cyclodextrine, de préférence l’ α-cyclodextrine ; et éventuellement d’une molécule d’intérêt thérapeutique ou cosmétique telle que définie ci-dessus.
Dans un mode de réalisation préféré, le composé de formule Chem. (I) et la cyclodextrine sont introduits dans un rapport molaire composé de formule Chem. (I):cyclodextrine allant de 1:1 à 1:20, de préférence de 1:2 à 1:15, préférentiellement de 1:5 à 1:10.
Le mélange d’au moins un composé de formule Chem. (I), d’au moins une cyclodextrine, et éventuellement d’une molécule d’intérêt thérapeutique ou cosmétique peut être réalisé dans l’eau et/ou un solvant miscible à l’eau, de préférence dans un solvant protique polaire tel que l’eau, l’éthanol ou un mélange de ceux-ci, de préférence l’eau.
Ledit mélange peut être réalisé à température ambiante, c’est-à-dire sans étape de chauffage ou de refroidissement. Il peut être également envisagé de réaliser ce mélange à une autre température, par exemple à une température allant de 0 °C à 70 °C.
Il peut également être réalisé pendant une durée de 48 heures à 96 heures, de préférence sous agitation.
Le procédé de préparation des particules selon l’invention est donc très simple puisqu’il peut être mis en œuvre par une seule étape, par simple mélange des constituants des particules. En outre, il peut être réalisé dans un solvant non toxique tel que l’eau.
Les particules ainsi préparées peuvent être utilisées telles quelles, c’est-à-dire en suspension dans le milieu de réaction tel que l’eau, ou être récupérées ou séchées avant utilisation, par exemple par lyophilisation.
Composition cosmétique ou pharmaceutique La présente invention concerne également une composition cosmétique ou pharmaceutique comprenant des particules telles que définies précédemment et au moins un excipient cosmétiquement ou pharmaceutiquement acceptable. De préférence, la composition selon l’invention est sous une forme adaptée à une application topique.
Les formes galéniques utilisées pour une application topique sont notamment les lotions, les laits, les émulsions, les sérums, les baumes, les masques, les crèmes, les dispersions, les gels, les mousses, les shampooings, les après-shampooings, et les sprays.
Les compositions selon l’invention pourront contenir des agents tensioactifs, des agents complexants, des conservateurs, des antioxydants, des agents stabilisants, des émulsifiants, des épaississants, des gélifiants, des humectants, des émollients, des oligo-éléments, des parfums, des colorants, des filtres UV et des mélanges de ceux-ci.
Un mélange éthylène glycol / méthanol a été déshydrogéné en une étape selon la réaction suivante :
Le mélange éthylène glycol / méthanol est préchauffé à la température de la réaction et injecté dans un réacteur rempli de catalyseur. Cette réaction est en effet globalement endothermique (ΔrH°gaz = 21 kJ/mol H2 ) et nécessite donc un apport de chaleur afin de maintenir les conditions opératoires nécessaires à la réaction. Cet apport de chaleur peut être réalisé soit par un chauffage électrique du réacteur (élément chauffant, four …), soit par la circulation d’un fluide thermisé qui échange sa chaleur avec le réacteur (huile, vapeur …). La réaction peut aussi être réalisée dans une cascade de réacteurs adiabatiques dans lesquels le chauffage du milieu réactionnel n’a lieu qu’entre les différents réacteurs.
Des conditions opératoires sont explicitées dans le tableau ci-dessous : Catalyseur Pression (bar) Température (°C) Au–Pb/Al 2 O 3 1 90 Au/ZnO Au/Al 2 O 3 30 100 CuZnOAl 2 O 3 1-50 150-250
A la sortie du réacteur, les liquides produits sont séparés de l’hydrogène par une séparation gaz/liquide.
La réaction peut ainsi être réalisée dans un seul réacteur. La réaction peut également être réalisée en deux étapes, selon le schéma suivant :
Exemple 2 : Génération de dihydrogène à l’aide d’autres compositions selon l’invention
La réaction de déshydrogénation peut également s’opérer en remplaçant le méthanol par un ou plusieurs autres alcools parmi les choix suivants : éthanol, propanol (n- propanol ou iso-propanol), butanol (n-butanol, iso-butanol ou tert-butanol) ou pentanol (n-pentanol, iso-pentanol ou tert-pentanol).
La réaction peut alors être représentée par le schéma suivant :
La densité massique obtenue pour chaque mélange est consignée dans le tableau ci-dessous : Nature de l’alcool R 1 -OH Nature de l’alcool R 2 -OH Densité massique mélange LOHC (wt%) Méthanol R 1 =CH3 Méthanol R 2 =CH3 6,41 Méthanol R 1 =CH3 Ethanol R 2 =C2H5 5,77 Méthanol R 1 =CH3 Propanol R 2 =C3H7 5,24 Ethanol R 1 =C2H5 Ethanol R 2 =C2H5 5,24 Méthanol R 1 =CH3 Butanol R 2 =C4H9 4,81 Ethanol R 1 =C2H5 Propanol R 2 =C3H7 4,81 Méthanol R 1 =CH3 Pentanol R 2 =C5H11 4,44 Propanol R 1 =C3H7 Propanol R 2 =C3H7 4,44
Exemple 3 : Génération de dihydrogène à l’aide de compositions selon l’invention comprenant en outre un autre diol
La composition selon l’invention peut en outre contenir 1,3-propanediol, et/ou 1,4-butanediol. Les réactions de déshydrogénation/hydrogénation sont alors comme suit :
Exemple 4 : Stockage de l’hydrogène selon l’invention
L’hydrogène est stocké par hydrogénation du vecteur pauvre en hydrogène, par exemple le diméthyloxalate).
Le vecteur pauvre en hydrogène est préchauffé à la température de la réaction, mélangé à l’hydrogène et injecté dans un réacteur rempli de catalyseur (par exemple un réacteur à lit fixe). Les conditions opératoires du réacteur et la nature du catalyseur diffèrent selon les exemples et sont explicitées dans le tableau ci-dessous. A la sortie du réacteur, les liquides produits sont séparés de l’hydrogène non réagi par une séparation gaz/liquide. Vecteur déshydrogéné Vecteur hydrogéné Catalyseur Pression (bar) Température (°C) WLHSV (g DMO /(g cata *h)) dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/SiO 2 25 200 1-5 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/SiO 2 25 190 0.5-4 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/SBA-15 CuAu/SBA-15 30 180 0.6 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/Al 2 O 3 Cu/ZrO 2 Cu/SiO 2 30 190-270 0.3 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol CuNi/SiO2 30 215 0.55 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/SiO 2 CuZnOAl 2 O 3 25 190-200 1-3 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol CuZnOAl 2 O 3 30 220 0.1-0.8 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/SiO 2 25 190 0.66 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu/SiO 2 1-30 200-250 dimethyloxalate Ethylene glycol + 2 methanol Cu-Cu 2 O-Zn/SiO2 Cu-Cu 2 O-ZnO/SiO 2 Cu-Cu 2 O-Fe 2 O 3 /SiO 2 Cu-Cu 2 O/Al 2 O 3 1-100 100-260 0.05-10 diethyloxalate Ethylene glycol + 2 ethanol CuZnO/SiO 2 20 200 0.8
Cette hydrogénation est exothermique (ΔrH° gaz = -21 kJ/mol H2 ) et est donc favorisée par l’utilisation de réacteurs isothermes, limitant les inhomogénéités de température. Toutefois, on peut également imaginer la réaction dans une cascade de réacteurs adiabatiques. Par ailleurs, l’énergie dégagée par la réaction sous forme de chaleur peut être utilisée pour préchauffer les réactifs ou fournir de la chaleur à une autre unité du procédé (production d’H 2 , purification …).
COMPOSITION VACCINALE ANTI-NGF Domaine de l’invention La présente invention concerne des peptides ou des polypeptides utiles pour éliciter une réponse immunitaire dirigée contre le facteur de croissance des nerfs ( Nerve Growth Factor , NGF).
(II) la seconde combinaison d’oligomères d’amplification comprend des premier et second oligomères d’amplification spécifiques à CFB capables d’amplifier une région cible d’un acide nucléique cible CFB à GBS, où les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à CFB comprennent, respectivement, des première (A) et seconde (B) séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB choisies parmi
Dans certains modes de réalisation d’un kit comme ci-dessus, où le kit comprend la première combinaison d’oligomères d’amplification, le kit comprend en outre un oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon SIP amplifiable par les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP . Dans certains de ces modes de réalisation, les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à SIP sont les séquences d’hybridation cibles de (I)(a) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP est SEQ ID N O : 9, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci. Dans d’autres modes de réalisation, les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à SIP sont les séquences d’hybridation cibles de (I)(b) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP est SEQ ID N O : 11, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci. Dans certaines variantes, l’oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprend en outre un marqueur détectable tel que, par exemple, un marqueur fluorescent ou chimioluminescent. Dans certains modes de réalisation comprenant un oligomère de sonde marqué de manière détectable, le marqueur détectable est un marqueur fluorescent et l’oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprend en outre un extincteur non fluorescent.
Dans certains modes de réalisation d’un kit comme ci-dessus, où les séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(a), la première séquence d’hybridation cible spécifique à CFB de (II)(a) comprend au moins la séquence de SEQ ID N O : 28, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci. Dans certains de ces modes de réalisation, la première séquence d’hybridation cible spécifique à CFB de (II)(a) est présente dans la séquence de SEQ ID N O : 27, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci ; dans certaines de ces variations, la première séquence d’hybridation cible spécifique à CFB de (II)(a) est SEQ ID N O : 12 ou SEQ ID N O : 14, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci. Dans d’autres modes de réalisation, où les séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(a), la première séquence d’hybridation cible spécifique à CFB de (II)(a) est SEQ ID N O : 18, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci. Les première (A') et seconde (B') séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB de (II)(a) particulièrement appropriées comprennent (A') SEQ ID N O : 12, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, et (B') SEQ ID N O : 13, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci ;
(b) (A') SEQ ID N O : 16, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, e
dans laquelle l’oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprend en outre un marqueur détectable, éventuellement dans laquelle le marqueur détectable est un marqueur fluorescent ou chimioluminescent, et/ou dans laquelle l’oligomère de sonde de détection Spécifique à CFB comprend en outre un marqueur détectable, éventuellement dans laquelle le marqueur détectable est un marqueur fluorescent ou chimioluminescent.
237. Kit destiné à déterminer la présence ou l’absence de streptocoques de groupe B (GBS) dans un échantillon, ledit kit comprenant :
une première combinaison d’oligomères d’amplification et/ou une seconde combinaison d’oligomères d’amplification selun l'un quelconque des modes de réalisation 232 à 234.
238. Kit selon le mode de réalisation 237, dans lequel si le kit comprend la première combinaison d’oligomères d’amplification, alors ledit kit comprend en outre un oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon SIP amplifiable par les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP ,
239. Kit selon l'un quelconque des modes de réalisation 237 et 238, dans lequel si le kit comprend la seconde combinaison d’oligomères d’amplification, alors ledit kit comprend en outre un oligomère de sonde de détection spécifique à CFB comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon CFB amplifiable par les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à CFB ,
éventuellement dans lequel les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(b) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 24, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans lequel les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(d) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 25, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans lequel les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (I)(a) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 22 ou SEQ ID N O : 23, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans lequel les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à CFB sont les séquences d’hybridation cibles de (II)(c) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à CFB est SEQ ID N O : 23, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci,
233. Composition selon le mode de réalisation 232, dans laquelle, si ladite composition comprend la première combinaison d’oligomères d’amplification, alors ladite composition comprend en outre un oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprenant une séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP qui a une longueur d’environ 15 à environ 35 nucléotides et qui est configurée pour s’hybrider à une séquence cible présente dans un amplicon SIP amplifiable par les premier et second oligomères d’amplification spécifiques à SIP ,
éventuellement dans laquelle les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à SIP sont les séquences d’hybridation cibles de (I)(a) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP est SEQ ID N O : 9, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci, ou dans laquelle les première et seconde séquences d’hybridation cibles spécifiques à SIP sont les séquences d’hybridation cibles de (I)(b) et la séquence d’hybridation cible de sonde de détection spécifique à SIP est SEQ ID N O : 11, ou un équivalent d’ARN ou une chimère d’ADN/ARN de celui-ci
éventuellement dans laquelle l’oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprend en outre un marqueur détectable, dans laquelle le marqueur détectable est un marqueur fluorescent ou chimioluminescent, ou dans laquelle le marqueur détectable est un marqueur fluorescent et l’oligomère de sonde de détection spécifique à SIP comprend en outre un extincteur non fluorescent.