INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Il peut également s’agir de réactions chimiques mettant en jeu des catalyseurs hétérogènes en lit mobile, ou le catalyseur solide est introduit dans le réacteur sous forme de slurry et est véhiculer dans les canaux réactifs avec les autres réactifs. Les réactions mettant en jeu ce type de catalyseur hétérogène en lit mobile sont par exemples les réactions d’hydrogénation ou d’oxydation.
Il peut également s’agir de réactions de chimie inorganique comme la synthèse de silice de précipitation, d’oxyde de titane, de carbonate de calcium, ou de phosphates inorganiques.
Le réacteur de l’invention peut également être utilisé pour la synthèse de polymères en émulsion ou en dispersion et permet en général d’atteindre une population monodispersée de particules de polymères.
D’autre exemples non limitatifs d’emplois intéressants du réacteur de la présente invention incluent son utilisation pour effectuer des réactions de cristallisation en continu, en formant une suspension de particules solides microniques de taille bien contrôlée sans risque de colmatage du réacteur, la poudre micronique obtenue pouvant être récupérée par filtration.
De par sa grande modularité et ses avantages, le réacteur de l’invention peut être employé dans de nombreux domaines incluant, de façon non limitative, ceux de la santé, l’agronomie, les peintures, les charges de renforcement, l’électronique, la catalyse ou la cosmétique.
La est une représentation schématique d’un mode de réalisation illustratif d’une pièce monobloc telle que présente dans un réacteur selon l’invention.
La est une représentation schématique partielle de la même pièce qui décrit par le détail un circuit possible de milieu réactionnel au sein de douze canaux, ce qui correspond au mode de réalisation employé dans l’exemple illustratif donné ci-après.
La représente une pièce monobloc comportant un corps 10, généralement formé d’un seul métal ou alliage métallique et comportant une première série de canaux 100, formés de cylindres parallèles entre eux et de section cylindrique (douze sur la Figure), destinés à véhiculer un milieu réactionnel, et une seconde série de canaux 200 (présents au nombre de quatre sur la figure pour ne pas surcharger le schéma, mais la pièce comprend en général davantage de canaux), perpendiculaires aux canaux 100 de la première série, et de section parallélépipédique, destinés à véhiculer un fluide caloporteur. La pièce comporte en outre un gougeon 300, qui permet la solidarisation d’une source ultrasonore au corps 10 par vissage.
La illustre un exemple possible de circuit réalisé à partir des canaux de la pièce monobloc. En référence à ce schéma, une possible connexion des entrées et sorties des canaux 100 présents dans la pièce 10 va maintenant être décrite, qui peut être utilisée pour la mise en réaction de deux réactifs, en faisant se rencontrer un premier flux comprenant le premier réactif (pour l’exemple, le circuit sera présenté en considérant une solution aqueuse de chlorure de baryum) et un second flux comprenant le second réactif (solution aqueuse de sulfate de sodium pour l’exemple). Selon ce mode illustratif, la solution de sulfate de baryum est injectée par l’entrée 110 d’un premier canal où elle est véhiculée jusqu’à la sortie 111 dudit canal. Cette sortie 111 est en contact fluide avec l’entrée 112 d’un second canal (au moyen d’un tube non représenté, qui fait typiquement partie d’un premier capuchon venant coiffer la partie arrière du corps 10 portant notamment les sorties 111 et 112 et plaqué sur celle-ci). La solution de sulfate de baryum est ensuite véhiculée jusqu’à la sortie 113 du canal. Parallèlement, la solution de sulfate de sodium est injectée par l’entrée 120 d’un troisième canal, dont elle sort par la sortie 121, mise en connexion fluide (généralement au moyen d’un tube faisant typiquement partie du capuchon précité) avec l’entrée 122 d’un quatrième canal pour être véhiculée jusqu’à la sortie 123. Les deux sorties 112 et 123 sont mises en connexion fluide avec l’entrée 130 d’un cinquième tube (généralement au moyen d’un tube muni de deux entrées et d’une sortie faisant typiquement partie d’un second capuchon placé en regard du premier capuchon précité et plaqué sur la face avant du corps 10, portant notamment les sorties 110, 113, 120 et 123). Une réaction entre le chlorure de baryum et le sulfate de sodium intervient alors, qui conduit à la formation d’un précipité solide de sulfate de baryum. Le flux de milieu réactionnel contient dès lors un solide et il est ensuite véhiculé dans le reste des canaux comme suit : - dans un cinquième canal, de son entée 130 à la sortie 131 ; puis - dans un sixième canal, de son entrée 132, en connexion fluide avec la sortie 131 du cinquième canal, jusqu’à sa sortie 133 ; puis - dans un septième canal, de son entrée 134, en connexion fluide avec la sortie 133 du sixième canal, jusqu’à sa sortie 135 ; puis - dans un huitième canal, de son entrée 136, en connexion fluide avec la sortie 135 du septième, jusqu’à sa sortie 137 ; puis - dans un neuvième canal, de son entrée 138, en connexion fluide avec la sortie 137 du huitième canal, jusqu’à sa sortie 139 ; puis - dans un dixième canal, de son entrée 140, en connexion fluide avec la sortie 139 du neuvième canal, jusqu’à sa sortie 141 ; puis - dans un onzième canal, de son entrée 142, en connexion fluide avec la sortie 141 du dixième canal, jusqu’à sa sortie 143. Le milieu réactionnel final sort de la pièce 10 par cette dernière sortie 143.
On a utilisé dans cet exemple un réacteur comprenant une pièce monobloc parallélipédique de 300 mm x 70 mm x 50 mm correspondant au mode illustré sur les Figures et qui est constituée d’un bloc de métal (inox 316L), traversé par 12 canaux cylindriques pour le mélange réactionnel (30 cm de long, 6 mm de diamètre pour chacun de ces canaux) et par 250 canaux perpendiculaires de section rectangulaire de 2 x 3 mm pour la régulation thermique (au lieu des quatre représentés sur la ). Ce réacteur comprend également des capuchons assurant les connexions fluides des circuits de milieu réactionnel réactifs et de régulation thermique et des brides entourant l’ensemble en assurant l’étanchéité des connections.
Cependant, du fait de la grande longueur du guide (plusieurs centimètres) et de sa finesse (un diamètre compris généralement entre 4 et 8 mm), il existe un risque de défaut d’un point de vue vibratoire : Si le guide vibre au contact du support, cela engendre un risque de bruit parasite, et ce frottement peut même engendrer de la poussière par abrasion, poussière qui finira par être perçue par l’utilisateur. Si le jeu autour du guide est trop important, alors le guide risque de vibrer jusqu’à une amplitude pouvant être perçue par le client en créant un scintillement lumineux.
Même si des moyens de retenues par clippage peuvent être prévus, ceux-ci n’aident qu’à maintenir le guide de lumière frontalement, mais pas dans le sens du risque vibratoire.
Aussi, il serait particulièrement avantageux d’avoir un dispositif de maintien de guide de lumière qui réduise ou supprime les vibrations de ce guide de lumière.
Description de l’invention Pour résoudre un ou plusieurs des inconvénients cités précédemment, selon un premier mode de réalisation, un dispositif de maintien d’un guide de lumière cylindrique d’un projecteur de véhicule automobile comprend un support ayant une rainure adaptée pour recevoir le guide de lumière, et des nervures de maintien du guide de lumière fixées à l’intérieur de la rainure de sorte que le guide de lumière soit fixé dans la rainure sans contact avec celle-ci et qu’au moins une nervure de maintien est déformable.
Ainsi, avantageusement, la nervure de maintien déformable va amortir les vibrations éventuelles du guide de lumière.
Des caractéristiques ou des modes de réalisation particuliers, utilisables seuls ou en combinaison sont : par rapport au guide de lumière fixé dans la rainure, les nervures de maintien sont positionnées de chaque côté du guide de lumière ; en face de chaque nervure de maintien déformable est fixée une nervure de maintien de contre-réaction non déformable  ; une nervure de maintien de contre-réaction non déformable est positionnée du côté opposé à une nervure de maintien déformable et dans un plan décalé par rapport au plan formé par la nervure de maintien déformable ; la nervure de maintien déformable a une forme de poutre en porte-à-faux de la rainure  ; la nervure de maintien déformable est formée dans un plastique élastique  ; et/ou la nervure de maintien déformable comprend un évidement adapté pour clipper le guide de lumière.
Dans un deuxième mode de réalisation, un projecteur pour véhicule automobile comprend un dispositif comme décrit ci-dessus.
Dans un mode de réalisation particulier, le projecteur comprend en outre une glace opaline ou avec des motifs floutant en face du guide de lumière lorsqu’il est fixé dans le dispositif de maintien.
Dans un troisième mode de réalisation, un véhicule automobile comprend un projecteur comme décrit ci-dessus.
Brève description des figures L’invention sera mieux comprise à la lecture de la description qui suit, faite uniquement à titre d’exemple, et en référence aux figures en annexe dans lesquelles : représente une vue en perspective d’une partie d’un dispositif de maintien selon un mode de réalisation ; représente une vue de face d’un tronçon du dispositif de la , sans guide de lumière ; représente une vue en perspective du tronçon de la  ; représente une vue selon le plan A-A du dispositif de la  ; représente une vue selon le plan B-B du dispositif de la  ; représente une vue selon le plan C-C du dispositif de la  ; représente une vue selon le plan A-A d’un projecteur comprenant le dispositif de la  ; et représente une vue selon le plan A-A d’une variante du dispositif de la .
La représente une vue en perspective d’une partie d’un dispositif de maintien 1 d’un guide de lumière 3. Le dispositif de maintien 1 comprend une rainure 5 dans laquelle est fixé le guide de lumière 3 à l’aide de nervures de maintien 7, 9. Les nervures de maintien 7, 9 sont de part et d’autre du guide de lumière 3.
La est une vue de face d’un tronçon du dispositif de maintien 1 sans le guide de lumière 3 dans lequel sont définis trois plans de coupe A-A, B-B et C-C.
La est une vue en perspective du tronçon illustré en . La nervure 7 comprend une poutre 31 fixée à une extrémité 33 sur le fond de la rainure 5. Un évidement 35 est formé dans la rainure 5 autour de la poutre 31. La forme en poutre fixée à une extrémité, l’évidement ainsi que le choix d’une matière élastique permet à la nervure 7 une déformation de la nervure dans un plan perpendiculaire à la rainure 5, soit, ici, dans un plan sensiblement vertical. La poutre 31 est par exemple formée dans une matière plastique de type acrylonitrile butadiène styrène (ABS), polycarbonate ou polybutylène téréphtalate (PBT).
Le milieu de culture a été renouvelé à moitié (1ml par puits) à J1 et complètement à J4 (2ml par puits).
Le jour 4, des disques de papier (9 mm de diamètre) imbibés de 30 µl d'une solution de LSS 5% (dans de l'eau distillée stérile) ont été appliqués topiquement sur les explants.
Les disques de LSS ont été retirés après 24 heures de contact avec la peau.
A J5, à la fin du contact avec le LSS, les explants sont collectés, fixés, déshydratés et inclus en paraffine.
Des sections de 5 µm d’épaisseur sont réalisées à l’aide d’un microtome.
L'immunomarquage du NGF a été réalisé sur des coupes déparaffinées et réhydratées avec un anticorps monoclonal anti-NGF dilué dans du PBS-BSA 0,3% et incubé pendant une nuit à température ambiante en utilisant un système d'amplification Vectastain Kit Vector système amplificateur avidine/biotine, et révélé par le VIP, un substrat de la peroxydase (laboratoires Vector, réf. SK-4600).
L'immunomarquage a été réalisé manuellement et a été évalué par observation microscopique.
Pour chaque lot d'explants, le pourcentage de la région d'intérêt couverte par la coloration due à l’immunomarquage du NGF (pourcentage de surface colorée) est déterminé par analyse d'image selon la méthode décrite par Bio-EC utilisant le logiciel Cell^D.
Le tableau 7 ci-dessous résume les effets significatifs de l’extrait aqueux de Prunus domestica sur l’expression du NGF dans des explants stressés par le LSS.
Pour les statistiques, les valeurs de 0,001<p<0,01 sont considérées comme très significatives (**), (test t de Student par rapport au contrôle stressé LSS, non traité).
Control non stressé, non traité Stressé avec le LSS, non traité Stressé LSS + Traité Extrait à 3% Moyenne % de la surface marquée 26,4 50,4 5,7** Ecart-type 6 6,7 6,9
Le LSS, un irritant cutané, a induit une importante inflammation neurogène, en stimulant significativement l’expression du NGF de 91%.
L’extrait aqueux de Prunus domestica appliqué en topique sur des explants de peau humaine a significativement diminué cette expression du NGF (-89%) induite par le LSS, démontrant un effet protecteur de celui-ci vis-à-vis de l’irritant cutané.
Exemple 7 : Protection contre l’inflammation neurogène induite par le relargage de cgrp, suite à l’activation par la capsaïcine du récepteur trvp1
Analyse du relargage du CGRP par des neurones, stimulés par la capsaïcine, un agoniste du récepteur TRPV1, activateur des nerfs sensoriels et inducteur de l’inflammation neurogène
Les effets de l’extrait aqueux de Prunus domestica présenté dans l’exemple 2 ont été évalués sur le relargage du CGRP induit par la capsaïcine, à l’aide d’un modèle in vitro de co-culture de neurones sensoriels et de kératinocytes.
Les neurones sensoriels humains sont dérivés de cellules hiPS (cellules souches pluripotentes induites humaines) obtenues par transfection de fibroblastes humains.
Les cellules sont placées dans des plaques 96 puits recouvertes d'une fine couche de Matrigel® dans un milieu de différenciation. Les cellules sont incubées à 37°C et 5% de CO2 pendant 6 jours et le milieu de culture est changé tous les 2 jours.
Après 14 jours de culture, les kératinocytes sont ajoutés au-dessus des neurones sensoriels. La co-culture sera maintenue à 37°C et 5% CO2 dans un milieu de culture approprié. Le milieu de culture sera changé tous les 2 à 3 jours.
Au 17ème jour de culture, le milieu est retiré et du milieu frais est ajouté. Les conditions suivantes ont été appliquées : - Milieu témoin, - Milieu témoin + l’extrait aqueux de Prunus domestica présenté dans l’exemple 2 à 0,1%,
Après 24 heures d'incubation, le milieu sera retiré et du milieu frais sera ajouté.
Les conditions suivantes sont réalisées : - Milieu témoin,- Milieu témoin + capsaïcine 10µM - Milieu témoin + l’extrait aqueux de Prunus domestica présenté dans l’exemple 2+ capsaïcine 10µM.
Après 30 minutes d'incubation des composés, les surnageants sont prélevés et conservés à -80°C.
Les quantités de CGRP libérées sont dosées par ELISA dans les surnageants recueillis 30 minutes après le traitement à la capsaïcine. Les résultats sont comparés au contrôle capsaïcine.
Le tableau 8 ci-dessous résume les effets significatifs de l’extrait aqueux de Prunus domestica sur le relargage du CGRP induit par la capsaïcine dans une co-culture de neurones sensoriels / kératinocytes.
Pour les statistiques, les valeurs de p <0,001 sont très hautement significatives (***) (test t de Student par rapport au contrôle stimulé, non traité).
Dosage du CGRP dans les surnageants de culture Contrôle non stimulé, non traité Stimulé par la capsaïcine, non traité Stimulé par la capsaïcine + Traité Extrait à 0,1% Quantité de CGRP en pg/mL 1,56 2,04 1,60*** Ecart-type 0,04 0,07 0,02
La capsaïcine a activé le relargage du CGRP (+31%), démontrant une stimulation du récepteur TRPV1, médiateur de la réponse inflammatoire neurogène.
L’extrait aqueux de Prunus domestica prévient ce relargage induit par la capsaïcine (-22%) démontrant ainsi ses propriétés de protection contre l’inflammation neurogène et apaisantes afin de diminuer l’hypersensibilité des fibres nerveuses et les inconforts cutanés.
Exemple 8 : Protection contre l’inflammation induite par un stress de l’exposome : les polluants atmosphériques
Analyse au niveau protéique de l’expression et/ou relargage de l’IL-8, une cytokine pro-inflammatoire, en situation de stress induit par des polluants atmosphériques
Les effets de l’extrait aqueux de Prunus domestica présenté dans l’exemple 2 ont été évalués sur l’expression et le relargage de la cytokine pro-inflammatoire IL-8, par des kératinocytes en cultures stressés par des polluants atmosphériques.
Les kératinocytes ont été ensemencés dans une plaque 96 puits et cultivés pendant 24 heures dans un milieu de culture.
Le milieu a ensuite été remplacé par un milieu de culture contenant ou non (contrôle intoxiqué) l’extrait aqueux de Prunus domestica présenté dans l’exemple 2 à 1% et les cellules ont été intoxiquées par la poussière urbaine 1649b (Urban dust NIST® SRM® 1649b) à 0,5 mg/ml, contenant les polluants atmosphériques.
En parallèle, une condition de contrôle non intoxiqué a été réalisée. Les cellules ont ensuite été incubées pendant 72 heures.
Toutes les conditions expérimentales ont été réalisées en n=3, à l'exception de la condition témoin stimulée réalisée en n=6.
A la fin de l'incubation, les surnageants de culture ont été collectés pour quantifier la libération d'IL-8.
Le relargage de l’IL-8 a été quantifié par ELISA (Ref : DY208) en suivant les instructions du fournisseur R&D system.
Le tableau 9 ci-dessous résume les effets significatifs de l’extrait aqueux de Prunus domestica sur le relargage de l’IL-8 par des kératinocytes stressés par des polluants atmosphériques.
Pour les statistiques, les valeurs de p <0,001 sont très hautement significatives (***) (test t de Student par rapport au contrôle stressé avec la poussière urbaine).
Dosage de IL-8 dans les surnageants de culture Contrôle non stressé, non traité Stressé avec la poussière urbaine, non traité Stressé + traité Extrait à 1% Quantité d’IL-8 en pg/ml 87 486 210*** Ecart type 15 24 29
Les polluants de la poussière urbaine (Urban dust NIST® SRM® 1649b) ont fortement augmenté l'expression et/ou la libération de l’IL-8 (+459%), démontrant une induction de la réponse inflammatoire.
L’extrait aqueux de Prunus domestica prévient l'expression et/ou la libération de l’IL-8 induite par les polluants (-57%) démontrant ainsi ses propriétés anti-inflammatoires et anti-pollution.
- le milieu réactionnel de réticulation comprend en outre des ions citrates en une quantité suffisante pour atteindre une concentration en ions citrates d’au moins 0,1 mM dans l’hydrogel, le ratio molaire [ions citrates présents dans le milieu réactionnel] / [ions zinc présents dans le milieu réactionnel] allant de 1 à 20 ; ou
- l’étape (1) comprend en outre, avant la mise en contact du polysaccharide réticulé avec la solution physiologique saline, de préférence tamponnée, une étape d’addition d’ions citrates en une quantité suffisante pour atteindre une concentration en ions citrate d’au moins 0,1 mM dans l’hydrogel, le ratio molaire [ions citrates ajoutés] / [ions zinc présents dans le milieu réactionnel] allant de 1 à 20 ; ou
- la solution physiologique saline, de préférence tamponnée, comprend en outre des ions citrates en une quantité suffisante pour atteindre une concentration en ions citrates d’au moins 0,1 mM dans l’hydrogel, le ratio molaire [ions citrates présents dans la solution physiologique saline, de préférence tamponnée] / [ions zinc présents dans le milieu réactionnel] allant de 1 à 20.
(a1) préparer un milieu réactionnel de réticulation comprenant un ou plusieurs polysaccharide(s), un ou plusieurs agent(s) réticulant, un solvant, des ions zinc en une quantité permettant la préparation d’un hydrogel comprenant au plus 20 mM d’ions zinc et éventuellement des ions citrates en une quantité suffisante pour atteindre une concentration en ions citrates d’au moins 0,1 mM dans l’hydrogel ; et
Les étapes (0), (a1) et (a2) du procédé selon la méthode 2 sont telles que décrites précédemment dans la section « Le polysaccharide réticulé et/ou non réticulé », à la différence que le milieu réactionnel de réticulation comprend en outre des ions zinc et éventuellement des ions citrates. Lorsque les ions citrates ne sont pas présents dans le milieu réactionnel de réticulation, ils sont ajoutés avant l’étape de mise en contact du polysaccharide réticulé avec la solution physiologique saline, de préférence tamponnée ou dans la solution physiologique saline, de préférence tamponnée. Le polysaccharide est tel que décrit dans la section « Le polysaccharide réticulé et/ou non réticulé ».
Les ions zinc sont présents dans le milieu réactionnel en une quantité permettant de ne pas excéder une concentration en ions zinc dans l’hydrogel de 20mM, ou de 7 mM ou de 5 mM ou de 3,5 mM ou de 2 mM ou de 1,6mM, ou de 1,15 mM, ou de 0,8 mM. Les ions zinc sont typiquement présents dans le milieu réactionnel en une quantité permettant d’atteindre une concentration en ions zinc dans l’hydrogel variant de 0,10 à 20mM ou de 0,10 à 7 mM ou de 0,10 à 5 mM ou de 0,10 à 3,5 mM ou de 0,10 à 2 mM ou de 0,10 à 1,6mM, ou de 0,10 à 1,15 mM ou de 0,10 à 0,8 mM. Dans certains modes de réalisation, les ions zinc sont présents dans le milieu réactionnel en une quantité permettant d’atteindre une concentration en ions zinc dans l’hydrogel variant de 0,10 à 1,6 mM, de manière plus préférée de 0,10 à 1,15 mM, de manière encore plus préférée de 0,1 à 0,8 mM, préférentiellement de 0,3 à 0,8 mM.
Lorsque les ions citrates sont présents dans le milieu réactionnel, ils sont présents en une quantité permettant d’atteindre une concentration en ions citrates dans l’hydrogel d’au moins 0,1 mM et généralement d’au plus 20 mM ou 15 mM. De préférence, ils sont présents en une quantité permettant d’atteindre une concentration en ions citrates dans l’hydrogel variant de 0,1 à 15 mM ou de 0,3 à 15 mM ou de 0,5 à 15 mM ou de 1 à 10 mM ou de 1,5 à 10 mM ou de 2 à 10 mM ou de 3 à 10 mM ou de 3 à 8 mM ou encore de 5 à 8 mM.
Lorsque les ions citrates ne sont pas présents dans le milieu réactionnel, ils sont ajoutés avant la mise en contact avec la solution physiologique saline, de préférence tamponnée, ou dans la solution physiologique saline, de préférence tamponnée, en une quantité suffisante pour atteindre les concentrations indiquées ci-dessus.
Le ratio molaire [ions citrates présents dans le milieu réactionnel] / [ions zinc présents dans le milieu réactionnel] ou [ions citrates ajoutés]/[ions zinc présents dans le milieu réactionnel] ou [ions citrates présents dans la solution physiologique saline, de préférence tamponnée] / [ions zinc présents dans le milieu réactionnel] varie de 1 à 20, de préférence de 5 à 20 ou de 5 à 15 ou de 6 à 15 ou de 6 à 10.
Les ions zinc présents dans le milieu réactionnel peuvent résulter de l’addition de sels de zinc au milieu réactionnel tels que le sulfate de zinc, chlorure de zinc, le gluconate de zinc, préférentiellement le chlorure de zinc.
Les ions citrates présents dans le milieu réactionnel peuvent résulter de l’addition d’acide citrique, sous forme de poudre ou sous forme d’une solution aqueuse au milieu réactionnel.
Lorsque les ions citrates ne sont pas présents dans le milieu réactionnel, ils sont ajoutés avant l’étape de mise en contact avec la solution physiologique saline, de préférence tamponnée, ou dans la solution physiologique saline, de préférence tamponnée. Ils peuvent être ajoutés sous forme d’une solution. La solution peut être préparée par addition d’acide citrique dans de l’eau ou dans une solution physiologique saline, de préférence tamponnée, par exemple une solution saline, de préférence tamponnée comprenant des sels de phosphate ou de carbonate ou de sulfate ou leurs mélanges. Dans d’autres modes de réalisation, la solution physiologique saline, de préférence tamponnée ajoutée lors de la préparation de l’hydrogel comprend des ions citrates.
A l’issue de l’étape (0) ou (a2), le polysaccharide réticulé se présente typiquement sous forme d’un gel comprenant des ions zinc, et éventuellement des ions citrates. Ce gel est généralement directement engagé dans la suite du procédé de l’invention (étape (1)).