INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Avantageusement, le deuxième contenant étant une cassette, la fermeture de la cassette et la fermeture du premier contenant sont détectées par l’identification et suivi d’objets lors de l’analyse du flux vidéo. Il est ainsi possible de générer un message d’erreur si un nouveau contenant est ouvert avant que le premier contenant ne soit fermé.
Avantageusement, un affichage des objets identifiés lors de l’analyse du flux vidéo est réalisé, la forme des objets identifiés étant représentée par exemple par une fenêtre englobante. L’opérateur peut ainsi vérifier que l’identification des objets correspond aux opérations effectuées. L’opérateur peut, le cas échéant, ajouter des commentaires par commande vocale, ou à l’aide d’un clavier ou d’une souris ou bien encore d’un écran tactile.
Il est proposé, selon un deuxième aspect, un dispositif d’anatomopathologie pour la mise en œuvre d’un procédé tel que présenté ci-dessus, le dispositif comportant une station de travail comprenant une planche à dissection (planche à découper) destinée à supporter un premier contenant pourvu d’un moyen de fermeture et un deuxième contenant, le dispositif comprenant des moyens d’identification et suivi d’objets par analyse d’un flux vidéo, ces moyens étant aptes à détecter l’ouverture du premier contenant, le dispositif comprenant des moyens de détection et lecture d’un identifiant placé sur le premier contenant et d’un l’identifiant placé sur le deuxième contenant, le dispositif comprenant des moyens de génération d’un message d’erreur en cas de discordance entre l’identifiant du premier contenant et l’identifiant du deuxième contenant.
Avantageusement, dans certaines mises en œuvre, la planche à découper comprend une réservation apte à loger un premier ou un deuxième contenant, le premier contenant étant par exemple un flacon, le deuxième contenant étant par exemple une cassette.
Avantageusement, les moyens de détection et lecture comprennent un lecteur de code barre à une dimension ou deux dimensions, par exemple de type code QR ou Data Matrix.
Par Data Matrix on désigne ici un codage de données dans une matrice de cellules, le code se présentant sous la forme d’un symbole carré ou rectangulaire. Un algorithme d’encodage combine les données utiles avec des codes de correction d’erreur. Le format de codage est avantageusement ECC200 (Error Checking and Correcting).
La mise en place de l’identifiant sur les contenants peut être effectuée par collage d’étiquette, transfert thermique, ou bien encore par gravure, notamment gravure laser.
Avantageusement, la station de travail comprend des moyens de pesée. Il est ainsi possible de comparer le poids du tissu biologique, mesuré lors de la biopsie ou de l’exérèse chirurgicale, avec le poids du tissu parvenant au laboratoire d’anatomopathologie. Il est également possible de vérifier que la quantité de formol (ou autre produit de conservation utilisé) est adaptée au prélèvement à analyser.
Avantageusement, la station de travail comprend des moyens de mesure suivant plusieurs axes.
Avantageusement, le dispositif comprend un poste d’inclusion de tissu biologique pour former un bloc, par exemple de paraffine, un poste de découpe du bloc en tranches minces par microtome, les tranches ayant par exemple une épaisseur de l’ordre de 3 à 5 microns, et un poste d’étalement des tranches sur des lames, le dispositif comprenant des moyens d’impression sur le bloc et sur les lames d’un identifiant du tissu biologique.
Dans certaines mises en œuvre, le poste d’inclusion comprend une ou des caméras et une identification et suivi d’objets est effectuée par analyse d’un flux vidéo, pour les opérations effectuées au poste d’inclusion.
Dans certaines mises en œuvre, le poste de découpe en tranches minces par microtome comprend une ou des caméras et une identification et suivi d’objets est effectuée par analyse d’un flux vidéo, pour les opérations effectuées au poste de découpe.
est une vue d’une station de travail de laboratoire de macroscopie, un flacon fermé, une cassette ouverte, une cassette fermée et une pince étant posés sur le plateau de la station de travail;
est une vue analogue à la , après ouverture du flacon, un technicien venant prélever dans le flacon, à l’aide de la pince, un fragment de tissu, par exemple une biopsie;
est une vue analogue à la , le technicien venant placer dans la cassette ouverte le fragment de tissu provenant du flacon;
Le corps 12 est, par exemple, monté de manière fixe sur l’élément de garnissage 10, par exemple sur la planche de bord dans une zone centrale s’étendant entre le siège conducteur et le siège passager. Il est entendu que le corps 12 peut être monté sur un élément de garnissage 10 qui est mobile dans le véhicule, de sorte que le corps 12 est déplaçable avec l’élément de garnissage, tel que, par exemple, un panneau de porte.
Le corps 12 comprend par exemple une façade extérieure 20 s’étendant de préférence selon un plan YZ, c’est-à-dire perpendiculaire à la direction longitudinale X.
La façade extérieure 20 est avantageusement tournée vers l’habitacle du véhicule.
Le corps 12 définit, de préférence, un logement 22 de réception de l’élément de support 14.
Le logement 22 est par exemple ménagé dans le corps 12 et s’étend en creux selon la direction longitudinale X de la façade extérieure 20 du corps 12.
L’élément fonctionnel 18 est par exemple un appareil électronique, en particulier destiné à être utilisé par un utilisateur installé sur le siège passager et également par un utilisateur installé sur le siège conducteur.
En particulier, l’élément fonctionnel 18 comprend par exemple un dispositif d’affichage définissant une surface d’affichage. L’élément fonctionnel 18 est par exemple apte à afficher des informations liées à la conduite du véhicule et/ou apte à être utilisé comme dispositif d’affichage multimédia pour visionner du contenu audiovisuel, naviguer sur internet ou comme station de travail. L’élément fonctionnel 18 est par exemple un écran tactile.
L’élément fonctionnel 18 est par exemple fixé à demeure sur l’élément de support 14.
Alternativement, l’élément fonctionnel 18 est fixé de façon réversible sur l’élément de support 14 ; l’élément fonctionnel 18 étant par exemple un appareil nomade, tel qu’une tablette ou un mobile multifonction, connu sous la dénomination en langue anglaise « smartphone ».
Comme illustré sur les figures, l’élément de support 14 est monté sur le corps 12 par l’intermédiaire du dispositif d’actionnement 16. En d’autres termes, l’élément de support 14 est relié au corps 12 uniquement par l’intermédiaire du dispositif d’actionnement 16.
L’élément de support 14 comprend un premier bord 24 et un deuxième bord 26 opposés l’un de l’autre selon une direction transversale Y perpendiculaire à la direction longitudinale X, et correspondant, par exemple dans le cas d’une planche de bord, à la largeur du véhicule.
L’élément de support 14 comprend de préférence une façade extérieure 27, avantageusement tournée vers l’habitacle du véhicule.
La façade extérieure 27 de l’élément de support 14 est par exemple de forme correspondant au contour de l’élément fonctionnel 18, par exemple de forme rectangulaire.
La façade extérieure 27 de l’élément de support 14 est alternativement de dimensions inférieures à celle de l’élément fonctionnel 18, de sorte à être cachée par ledit élément fonctionnel 18.
Après une incubation de la culture de semences d’une nuit, la densité optique (à 600 nm) était de 8,04 lorsque 4 mL de culture ont été transférés vers un fermenteur de production (Ambr ® 250 Modular, Sartorius Stedim) contenant 196 mL de milieu de fermentation APF réduit (3,25 % p/v de peptone de soja de type II, 1,2 % p/v d’extrait de levure, 1,5 % p/v de glucose, pH ajusté à 7,3 à l’aide d’hydroxyde de sodium). La température de fermentation a été contrôlée à 35 ± 0,5 °C. L’agitation est contrôlée à 150 tr/min. L’espace de tête de fermenteur a été recouvert à 50 mL/min de débit de gaz avec N 2 et un pourcentage croissant de CO 2 selon la conception expérimentale (tableau 2). Le pourcentage de N 2 /CO 2 a été contrôlé par l’intermédiaire de contrôleurs de débit massique interne du système modulaire Ambr ® 250. Le pH de fermentation et la croissance cellulaire ont été surveillés par une sonde de pH et un moniteur de réflectance en ligne, respectivement. Les trois phases de la fermentation de production comportent des phases de croissance exponentielle, stationnaire et autolyse. Le temps de fermentation est de 69 heures, qui assure la production d’une autolyse cellulaire, libérant la BoNT/A active dans le milieu de culture.
Description Condition* Fermentation à 25 % de CO 2 25 % de CO 2 avec 75 % N 2 en recouvrement d’espace de tête Fermentation à 50 % de CO 2 50 % de CO 2 avec 50 % N 2 en recouvrement d’espace de tête Fermentation à 75 % de CO 2 75 % de CO 2 avec 25 % N 2 en recouvrement d’espace de tête Fermentation à 100 % de CO 2 100 % de CO 2 en recouvrement d’espace de tête
* Le milieu de fermentation réduit avec 100 % N 2 avant l’inoculation de fermenteur. Lors de l’inoculation du fermenteur avec la culture de semences, le recouvrement de l’espace de tête a été modifié pour inclure le pourcentage de CO 2 approprié répertorié dans ce tableau.
La phase de récolte a fait appel à la centrifugation suivie de 0,2 µm de filtration pour éliminer les débris cellulaires du bouillon de culture, qui contenait un complexe BoNT/A et d’autres protéines de cellule hôte. Les débris cellulaires ont été préalablement éliminés par centrifugation à 10 000 rcf pendant 30 minutes. Le surnageant clarifié a ensuite subi une filtration de 0,2 µm dans une armoire de sécurité biologique pour assurer que tout organisme de C. botulinum de type A et des débris cellulaires restants ont été éliminés. L’élimination complète de l’organisme a été confirmée (par placage d’une partie du filtrat de 0,2 µm sur des plaques d’agar sanguin Columbia réduites et incubation en conditions anaérobies pendant un temps suffisant pour vérifier l’absence de C. botulinum de type A viable) et le matériau de récolte clarifié a été stocké à 4 °C jusqu’au début de l’étage en aval.
B. Fermentations à basse température ou de choc à froid de souche Hall de C. botulinum de type A
Des fermentations d’une souche Hall de Clostridium botulinum de type A ont été réalisées en milieu exempt de produit d’origine animale (APF) dans différentes conditions de température (comme décrit dans le tableau 3) pour examiner l’effet sur des attributs de complexe de neurotoxine botulique de type A (BoNT/A) produit. L’étage amont comportait l’utilisation d’un milieu de culture de semences dans une bouteille en verre de 150 mL (avec un barreau magnétique d’agitation) contenant 50 mL de milieu APF (3,25 % p/v de peptone de soja de type II, 1,2 % p/v d’extrait de levure, 1,5 % p/v de glucose, pH ajusté à 7,3 à l’aide d’hydroxyde de sodium). Le milieu de culture de semences a été réduit pour éliminer l’oxygène (dans une chambre anaérobie de Bon Whitley Scientific A55) pendant un minimum de 48 heures avant utilisation. Le milieu de culture de semences a été inoculé avec 50 µL d’une WCB de C. botulinum de type A décongelée. La culture de semences a été incubée à 35 ± 1 °C avec une agitation de 150 tr/min dans la chambre anaérobie.
Après une incubation de la culture de semences d’une nuit, 4 mL de culture (OD 600 nm 4,81 ± 0,35) ont été transférés vers un fermenteur de production (Ambr ® 250 Modular, Sartorius Stedim) contenant 196 mL de milieu de fermentation APF réduit (3,25 % p/v de peptone de soja de type II, 1,2 % p/v d’extrait de levure, 1,5 % p/v de glucose, pH ajusté à 7,3 à l’aide d’hydroxyde de sodium). La température pour chaque fermentation a été contrôlée selon le tableau 3. Des réglages de température pour des fermentations de choc à froid ont été démarrés à la phase stationnaire précoce de la croissance cellulaire. Une durée de choc à froid de 5 heures a été mise en œuvre sur la base du temps attendu pour obtenir un changement de profil d’expression. L’agitation a été contrôlée à 150 tr/min et l’espace de tête de fermenteur a été recouvert avec N 2 à 50 mL/min pour maintenir un environnement anaérobie. Le pH de fermentation et la croissance cellulaire ont été surveillés par une sonde de pH et un moniteur de réflectance en ligne, respectivement. Les échantillons hors ligne ont été prélevés pour mesurer la densité cellulaire (OD 600 ) à la fin de la fermentation. Les trois phases de la fermentation de production comportent des phases de croissance exponentielle, stationnaire et autolyse. Les temps de fermentation ont été variés de 72 h à 160 h (Tableau 3) pour assurer une lyse cellulaire, qui a libéré le complexe de BoNT/A actif dans le milieu de culture.
Description expérimentale Condition de fermentation de production* Temps de fermentation de production (heures) Fermentation de témoin de référence 35 °C pendant toute la durée de fermentation 72 Choc à froid à 20 °C 35 °C de 0 à 12 h ; température réglée à 20 °C à 12 h ; culture à 20 °C jusqu’à 17 h, puis température réglée à 35 °C à 17 h ; culture à 35 °C jusqu’à 72 heures 72 Choc à froid à 15 °C 35 °C de 0 à 12 h ; température réglée à 15 °C à 12 h ; culture à 15 °C jusqu’à 17 h, puis température réglée à 35 °C à 17 h ; culture à 35 °C jusqu’à 72 heures. 72 Fermentation à 25 °C 25 °C pendant toute la durée de fermentation 160
* Le système Ambr® 250 modulaire peut contrôler la température à ± 0,5 °C.
La phase de récolte du complexe BoNT/E a fait appel à la centrifugation suivie de 0,2 µm de filtration pour éliminer les débris cellulaires du bouillon de culture, qui contenait un complexe BoNT/A et d’autres protéines de cellule hôte. Les débris cellulaires ont été préalablement éliminés par centrifugation à 10 000 rcf pendant 30 minutes. Le surnageant clarifié a ensuite subi une filtration de 0,2 µm dans une armoire de sécurité biologique pour assurer que tout organisme de C. botulinum de type A et des débris cellulaires restants ont été éliminés. L’élimination complète de l’organisme a été confirmée (par placage d’une partie du filtrat de 0,2 µm sur des plaques d’agar sanguin Columbia réduites et incubation en conditions anaérobies pendant un temps suffisant pour vérifier l’absence de C. botulinum de type A viable) et le matériau de récolte clarifié a été stocké à 4 °C jusqu’au début de l’étage en aval.
2. Étapes en aval
Les étapes en aval comportaient une concentration et un échange tampon à l’aide d’une filtration à flux tangentiel (TFF), suivi d’une capture de la neurotoxine botulique sur une colonne d’échange d’anions, élution de la colonne et séparation ultérieure des impuretés par polissage sur une colonne d’échange de cations.
Un système de filtration à flux tangentiel a été utilisé pour concentrer (par ultrafiltration-UF) et diafiltrer le matériau de récolte de fermentation clarifié en tampon phosphate de sodium 50 mM, pH 6,5. Des cassettes Repligen TangenX ® SIUS-PD avec une membrane de coupure de poids moléculaire 100 kDa ont été utilisées pour les étapes de concentration et de diafiltration. L’étape UF/DF a concentré le matériau de récolte clarifié 3 à 4 fois puis diafiltré à l’aide d’un tampon de phosphate de sodium 50 mM, pH 6,5.
Des caractéristiques du procédé d’ultrafiltration/diafiltration (UF/DF) utilisées sont les suivantes. L’unité UF/DF et membrane Repligen 100 kDa avec une zone de membrane de 0,02 m 2 a initialement été balayée avec un minimum de 0,2 L d’eau pour injection (WFI) pour éliminer la solution de stockage membranaire. Ensuite, le système membrane et UF/DF a été équilibré avec environ 0,2 L de tampon phosphate de sodium 50 mM, pH 6,5. Après équilibrage membranaire, le matériau de récolte de fermentation clarifié a été chargé sur la cassette de filtration à flux tangentiel TangenX ® et concentré 3 à 4 fois à une plage de pression transmembranaire de 5 à 6 psig (jauge de livres par pouce carré) et débit réglé à 75 mL/min. Après l’étape de concentration, le regroupement de rétentat a été diafiltré contre un minimum de 5 volumes de diafiltration du tampon de phosphate de sodium 50 mM, pH 6,5 à une plage de pression transmembranaire de 5 à 8 psig et débit réglé à 75 mL/min. Après achèvement de la diafiltration, la pression a été libérée de la ligne de rétentat et la sortie de perméat a été fermée. Le matériau UF/DF a été ensuite remis en circulation pendant au moins 5 minutes et le système a été ensuite purgé suivi d’un rinçage avec du tampon phosphate de sodium à 50 mM, pH 6,5 lorsque le matériau UF/DF a été récupéré dans un récipient séparé.
Le matériau récupéré (rétentat UF/DF) de l’étape UF/DF a ensuite été chargé sur une colonne de chromatographie d’échange d’anions garnie de résine POROS ® 50HQ. La colonne présente un diamètre intérieur de 1,13 cm et une hauteur de colonne d’environ 5 cm. La totalité de la chromatographie sur colonne d’échange d’anions a été réalisée à température ambiante, et le flux était dans la direction descendante. Le complexe de neurotoxine botulinum de type A a été élué de la colonne d’échange d’anions en utilisant un changement d’étape de pH où les impuretés plus chargées négativement telles que les acides nucléiques (par exemple, les ADN et les ARN) et d’autres protéines de cellules hôtes restent liées à la colonne d’échange d’anions.
Les caractéristiques de l’étape d’échange d’anions étaient : utilisation de la colonne POROS ® 50HQ équilibrée avec un tampon phosphate de sodium 50 mM, pH 6,5 (au moins 5 volumes de colonne). Ensuite le rétentat UF/DF a été chargé à 120 cm/heure sur la colonne d’échange d’anions POROS ® 50HQ, suivi d’un lavage avec au moins environ 10 volumes de colonnes de phosphate de sodium 50 mM, pH 6,5 à 120 cm/heure, suivi d’une élution avec 50 mM d’acétate de sodium, pH 4,5 à 120 cm/heure. La fraction de pic a été recueillie, lorsque l’absorbance à 280 nm (A280) a augmenté à au moins environ 0,05 AU et à travers le maximum de pic à égale ou inférieure à environ 0,03 AU sur le bord de fuite, dans un récipient avec 5 mL d’acétate de sodium à 50 mM, pH 4,8. Ce regroupement d’élution a été stocké à environ 2 °C à environ 8 °C jusqu’à 48 heures.
la est vue de dessus du système de la ;
la est une vue en perspective de dessus du système des Figures 2 et 3 dans lequel la paroi transversale aval et la paroi périphérique externe du dispositif de raccord ont été omises ;
la est une vue en coupe du système des Figures 2 à 4 selon un plan de coupe V-V sensiblement perpendiculaire à la fibre neutre de la conduite principale ;
la est une représentation schématique simplifiée d’une vue en coupe du système des Figures 2 à 5 selon un plan de coupe similaire au plan de coupe V-V ;
la est une représentation schématique simplifiée d’une vue en coupe d’un système de mélange de fluides selon un deuxième mode de réalisation selon un plan de coupe similaire au plan de coupe V-V.
En référence aux Figures 1 à 7, on décrit un aéronef 10 selon l’invention.
En référence à la , l’aéronef 10 comprend une première source 12 d’un premier fluide, une deuxième source 14 d’un deuxième fluide, un système 20 de mélange de fluides pour mélanger le premier fluide et le deuxième fluide et au moins un volume de réception 16 d’un fluide résultant formé à partir du mélange du premier fluide et du deuxième fluide dans le système de mélange 20.
Selon l’exemple particulier des Figures 1 à 7, le fluide est de l’air. En particulier, le premier fluide, le deuxième fluide et le fluide résultant sont de l’air.
Notamment, le premier fluide présente une première température, le deuxième fluide présente une deuxième température différente de la première température et le fluide résultant présente une troisième température dont la valeur est située entre les première et deuxième températures. Le fluide résultant est notamment obtenu par mélange du premier fluide et du deuxième fluide.
Par exemple, la première température est comprise entre 1°C et 30°C. Par exemple, la deuxième température est comprise entre 150°C et 200°C. Par exemple, la troisième température est comprise entre 5°C et 80°C.
Par exemple, la première source 12 du premier fluide est le groupe motopropulseur de l’aéronef 10. La première source 12 est configurée pour fournir le premier fluide au système de mélange 20. Par exemple, le premier fluide est de l’air provenant d’une première portion d’au moins une turbine de l’aéronef 10, l’air provenant de cette première portion étant refroidit avant d’atteindre le système de mélange.
Par exemple, la deuxième source 14 du deuxième fluide est le groupe motopropulseur de l’aéronef 10. La deuxième source 14 est configurée pour fournir le deuxième fluide au système de mélange 20. Dans cet exemple, le deuxième fluide a une température supérieure à celle du premier fluide. Par exemple, le deuxième fluide est de l’air provenant d’une deuxième portion de l’au moins une turbine de l’aéronef 10, la deuxième portion étant distincte de la première portion.
Par exemple, l’au moins un volume de réception 16 est le fuselage de l’aéronef 10. L’au moins un volume de réception 16 est configuré pour recevoir le fluide résultant depuis le système de mélange 20. Notamment, l’au moins un volume de réception 16 est une cabine, un cockpit ou une soute de l’aéronef 10.
Le système de mélange 20 est configuré pour distribuer le fluide résultant dans l’au moins un volume de réception 16.
Le système de mélange 20 comprend une conduite principale 30, une conduite auxiliaire 50 et un dispositif de raccord 70 connectant fluidiquement la conduite principale 30 et la conduite auxiliaire 50.
Avantageusement, le système de mélange 20 comprend en outre des équipements (non-illustrée), notamment des vannes, configurés respectivement pour :
Cette bande 40 peut être pourvue d’œillets de fixation 41 à ses extrémités, lesquels s’engagent sur des ergots respectifs 22 prévus sur l’obturateur 20. La bande 40 tire sur l’obturateur 20 pour le rappeler en position de fermeture.
Un organe de rappel élastique similaire (non représenté) peut s’accrocher sur les ergots 202 prévus sur le deuxième obturateur (visibles sur la vue de gauche de la ), pour rappeler celui-ci vers la position d’obturation.
Le corps 10 présente à l’arrière un cadre 50, illustré à la , sur lequel se raccordent deux ailes 51, qui s’étendent verticalement, sensiblement dans le prolongement des parois latérales 12, et un porte étiquette 53, qui s’étend horizontalement plus haut que la paroi supérieure 16. Le porte étiquette peut présenter une nervure en forme de T en section, pour la fixation d’une étiquette électronique.
Le mécanisme distributeur 3 peut être assemblé avec la boîte 2 en engageant les ailes 51 sur les rabats latéraux 110, après avoir engagé la languette de retenue 54 derrière la paroi frontale 102.
La goulotte 11 peut présenter, à l’arrière, une pente épousant sensiblement celle du fond 104. Lors de l’assemblage du mécanisme distributeur 3 et de la boîte 2, les décrochements formés à l’arrière des ailes 51 viennent se loger en arrière du bord distal 115 des rabats 110, et peuvent ainsi s’opposer à un recul du mécanisme distributeur 3 en venant en appui contre le bord distal 115 des rabats 110.
Le mécanisme distributeur 3 comporte une semelle 130 qui présente, comme illustré sur la , une gorge 132 agencée pour s’engager une plaque 153 d’un support 150 tel qu’illustré à la , afin d’assurer un verrouillage en position du mécanisme distributeur 3.
Ce dispositif de pompage n’est pas couvert par la demande de brevet et pourrait faire l’objet d’une demande divisionnaire.
Avantageusement, le dispositif d’actionnement 16 comprend également une deuxième crémaillère 54 de blocage coopérant avec la roue dentée 30 et comprenant un premier crochet ou dent de blocage 56 et un deuxième crochet ou dent de blocage 58.
En particulier, comme cela est visible sur la , la rotation de la roue dentée 30 entraine la translation transversale de la deuxième crémaillère 54 de blocage dans le sens opposé à la translation transversale de la première crémaillère 36.
Plus précisément, comme cela est visible sur la , la rotation de la roue dentée 30 dans le premier sens entraine la translation transversale de la deuxième crémaillère de blocage 54 dans le deuxième sens jusqu’à une première position finale.