INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Étant donné que la composition selon la présente invention inclut (c) un filtre UV organique lipophile, qui peut être similaire à une huile, la composition selon la présente invention peut se présenter sous la forme d’une émulsion H/E qui peut être un fluide, une pâte ou une crème.
La composition selon la présente invention sous la forme d’une émulsion H/E comprend des phases grasses dispersées telles que des phases huileuses dispersées dans une phase aqueuse continue. Les phases grasses dispersées peuvent prendre la forme de gouttelettes d’huile dans la phase aqueuse.
La phase aqueuse peut être épaissie, car le polymère associatif (b) peut servir d'épaississant. Il est préférable que la composition selon la présente invention soit sous la forme d'une émulsion de type gel H/E.
dans une composition comprenant : au moins une particule de cellulose ; au moins un filtre UV organique lipophile ; et de l’eau,
afin de provoquer une transformation de texture de la composition lorsqu’elle est appliquée sur une substance kératinique telle que la peau, de préférence au début de l’application, et/ou de stabiliser la composition.
Il peut être préférable que la composition utilisée dans l’utilisation ci-dessus selon la présente invention inclue (e) au moins un tensioactif non ionique.
Il peut être préférable que la composition utilisée dans l’utilisation ci-dessus selon la présente invention inclue (f) au moins une huile différente du filtre UV organique lipophile (c).
Il peut être préférable que la composition utilisée dans l’utilisation ci-dessus selon la présente invention inclue (g) au moins une particule inorganique.
Les explications concernant les ingrédients (a) à (e) dans la composition selon la présente invention peuvent s’appliquer à ceux dans l’utilisation ci-dessus selon la présente invention.
EXEMPLES Nous allons décrire la présente invention plus en détail à l'aide d'exemples qui ne doivent cependant pas être interprétés comme limitant la portée de la présente invention.
[Exemples 1-2 et exemples comparatifs 1-2] On a préparé les compositions suivantes, sous la forme d'une émulsion H/E, selon les exemples 1-2 et les exemples comparatifs 1-2 indiqués dans le tableau 1 en mélangeant les ingrédients indiqués dans le tableau 1 comme suit : mélange des ingrédients des lignes A du tableau 1 à 75-80 °C pour former un mélange uniforme de phase A ; ajout de l’ingrédient de la ligne B du tableau 1 au mélange de phase A, puis homogénéisation pour obtenir un mélange uniforme (phases A et B) ; ajout de l’ingrédient, le cas échéant, de la ligne C du tableau 1 au mélange des phases A et B, puis homogénéisation pour obtenir un mélange uniforme (phases A, B et C) ; ajout des ingrédients des lignes D du tableau 1 au mélange des phases A et B, puis homogénéisation pour obtenir un mélange uniforme (phases A, B, C et D) et refroidissement du mélange obtenu à température ambiante (25 °C) ; ajout des ingrédients des lignes E du tableau 1 au mélange des phases A, B, C et D, puis homogénéisation pour obtenir un mélange uniforme (phases A, B, C, D et E) ; ajout de l’ingrédient de la ligne F du tableau 1 au mélange des phases A, B, C, D et E, puis homogénéisation pour obtenir un mélange uniforme (phases A, B, C, D, E et F) ; et ajout de l’ingrédient de la ligne G du tableau 1 au mélange des phases A, B, C, D, E et F, puis homogénéisation pour obtenir un mélange uniforme (phases A, B, C, D, E, F et G) avec un pH de 7,0.
Les valeurs numériques pour les quantités des composants indiqués dans le tableau 1 sont toutes basées sur le « % en poids » en tant que matières premières .
Phase Ingrédient Ex. 1 Ex. 2 Ex. comp. 1 Ex. comp. 2 A Glycérine 5 5 5 5 Propanediol 2,5 2,5 2,5 2,5 Caprylyl Glycol 0,3 0,3 0,3 0,3 Phénoxyéthanol 0,6 0,6 0,6 0,6 Hydroxyacétophénone 0,5 0,5 0,5 0,5 Disuccinate d'éthylènediamine trisodique 0,1 0,1 0,1 0,1 (d) Eau qsp 100 qsp 100 qsp 100 qsp 100 (e) Polyglycéryl-2 Oléate 0,24 0,24 0,24 0,24 (e) Polyglycéryl-4 Caprate 0,57 0,57 0,57 0,57 B (a) Cellulose 2,75 2,75 - 2,75 C Silice 4 - 4 4 D (c) Bis-éthylhexyloxyphénol méthoxyphényl triazine 3 3 3 3 (c) Ethylhexyl triazone 4,5 4,5 4,5 4,5 (c) Butyl méthoxydibenzoylméthane 2 2 2 2 (c) Drométrizole trisiloxane 5 5 5 5 (c) Diéthylamino hydroxybenzoyl hexyl benzoate 1 1 1 1 (f) Myristate d'isopropyle 5 5 5 5 (f) Sébacate de diisopropyle 5 5 5 5 (f) Alcane en C15-19 3 3 3 3 (f) Carbonate de dicaprylyle 8 8 8 8 (f) Sarcosinate d'isopropyl lauroyle 4 4 4 4 E (b) Copolymère d’acrylates/méthacrylate de béhéneth-25 (30 % en poids AM dans l’eau (70 % en poids)) 0,8 0,8 0,8 - Ammonium polyacryloyldiméthyl taurate 0,15 0,15 0,15 0,15 F Éthanol 3 3 3 3 G Hydroxyde de sodium qs pH7 qs pH7 qs pH7 qs pH7 (suite) (suite) Viscosité (mPa.s) 51589 43747 19925 8548 Transformation de texture Très bonne Très bonne Mauvaise Très mauvaise Sensation non collante Très bonne Bonne Mauvaise Très bonne Sensation non huileuse/non grasse Très bonne Bonne Mauvaise Très bonne Aspect non brillant de la peau Très bon Bon Mauvais Très bon Stabilité Très bonne Très bonne Mauvaise Très mauvaise
Les propriétés de l’ingrédient (a) (cellulose) du tableau 1 sont indiquées dans le tableau 2.
Poudre Forme Taille moyenne (μm) PM huile (ml/100 g) PM eau (ml/100 g) Cellulose (Cellulobeads USF, Daito Kasei) Sphère 4,0 296,0 400,8
Taille moyenne : Taille de particule primaire moyenne-en nombre
PM huile : Point de mouillage pour l'huile
PM eau : Point de mouillage pour l’eau
(Point de mouillage pour l'huile)
Comme déjà indiqué, si le spectre est considéré, à l’issue de l’étape de classification, comme ne contenant pas de polymère, le procédé 100 comprend une étape d’identification de la ou des bactéries présentes dans l’échantillon, s’il y en a. Cette étape comprend notamment une comparaison du spectre à des spectres appartenant à une banque de spectres référencés, chaque spectre référencé étant celui d’une bactérie donnée.
Si le spectre est considéré, à l’issue de l’étape de classification, comme contenant un ou des polymères, le procédé 100 comprend éventuellement une étape d’indication, par exemple par alerte visuelle et/ sonore, que le signal comprend au moins un polymère. Cette étape d’indication de contamination peut induire un arrêt du procédé 100, et on n’effectue pas d’identification de bactéries.
Selon une autre variante, le procédé 100 selon la présente invention comprend éventuellement une étape 106, notée SUPP, de suppression du signal émis par les polymères.
Ainsi, pour un spectre donné, lorsque l’étape de classification a considéré que des polymères sont présents, le procédé 100 permet d’éliminer les pics des polymères de façon à isoler le signal émis par des protéines des bactéries.
L’étape de suppression est précédée d’une étape 107 de modélisation MODEL du signal émis par les polymères.
Au cours de cette étape, on isole un motif de pics de polymères.
On commence par découper le signal en fenêtres successives de la taille d’une période, pour isoler un motif de polymère par fenêtre (avec un décalage potentiel). De préférence, on utilise la période Ti(HD), du fait, d’une part, qu’elle est généralement plus précise, et, d’autre part, elle permet également d’obtenir un multiple de la période, et donc d’isoler un ou plusieurs motifs de polymères.
Au contraire la période Ti(LSP) est un sous multiple de la période, et son utilisation pourrait amener à n’isoler qu’une partie de motif par fenêtre.
On note que la précision de la période est très importante pour ne pas induire un décalage le long de l’axe m/z ; les fenêtres ne seraient alors plus centrées sur un motif de polymère.
Une fois déterminée la meilleure fenêtre ( ), on la recopie sur l’ensemble du spectre ( ) et on applique une gaussienne au spectre recopié ( ).
On obtient alors un signal théorique des polymères, qu’il faut alors soustraire au signal global pour l’éliminer.
Ainsi, le procédé 100 selon la présente invention assure une classification fiable et rapides de spectres, permettant de distinguer les spectres contaminés par des polymères et les spectres sans polymères.
Il est également possible grâce au procédé 100 d’isoler le signal émis par les bactéries, en éliminant celui des polymères.
Comme il ressort déjà de la description qui précède, l’invention présente de nombreux avantages, parmi lesquels : a/ la méthode est purement numérique, elle est donc très peu couteuse en temps et en argent comparativement à une méthode biologique ou chimique, b/ en fonction de l’usage : la méthode de détection peut servir en contrôle qualité, ou servir d’étape préliminaire avant l’étape de suppression des pics de polymères, c/ l’invention peut être directement utilisée pour déterminer quel polymère est présent dans un échantillon de spectrométrie de masse, elle peut donc être appliquée à d’autres thématiques que l’identification de bactéries.
Procédé et dispositif de détermination d’un niveau de charge d’une batterie alimentant en énergie électrique un dispositif d’occultation d’une ouverture d’une pièce d’un bâtiment ou d’une protection solaire La présente invention concerne le domaine des systèmes d’occultation d’une ouverture d’une pièce d’un bâtiment ou de protection solaire alimentés par une batterie.
ETAT DE LA TECHNIQUE ANTERIEURE Un dispositif d’occultation ou de protection solaire est mis en mouvement grâce à un moteur et un contrôleur du moteur. Le moteur et le contrôleur nécessitent d’être alimentés électriquement pour effectuer une telle mise en mouvement. L’alimentation électrique du moteur et du contrôleur grâce à des énergies renouvelables se développe. Par exemple, le moteur et le contrôleur peuvent être alimentés par une batterie chargée par des éléments photovoltaïques.
La température de l’au moins un système senseur est telle qu’il n’y a pas formation de cristaux de glace et/ou que le nanopore d’aérolysine ne se dénature pas. Dans certaines instances, placer le système senseur à température basse, par exemple inférieure à 15°C, voire inférieure à 10°C présente l’avantage de ralentir les événements et donc de permettre de caractériser plus aisément des composantes du signal électrique associé au passage d’un biomarqueur peptidique. Inversement, placer le au moins système senseur à une température élevée, par exemple une température supérieure à 40°C, supérieure à 45 °C, voire supérieure à 55 °C, peut permettre de dénaturer au moins en partie le biomarqueur peptidique et ainsi de faciliter son passage au travers du nanopore d’aérolysine. Ainsi, l’au moins un système senseur, dans la méthode de l’invention, est à une température de 5 °C à 55 °C.
Dans le système senseur utilisé dans la méthode de l’invention, la membrane dans laquelle est inséré le nanopore d’aérolysine est :
- soit de nature lipidique, constituée, par exemple, de diphytanoylphosphatidylcholine, 1,2-dilauroyl-sn-glycero-3-phosphocholine DLPC ; 1,2-dipalmitoleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine DDPPC ; 1,2-dieicosenoyl-sn-glycero-3-phosphocholine DEPC ou leur mélange,
- soit de nature polymérique, à base de polymères diblock (poly(1,2-butadiène)-b-poly(éthylène oxide) ou triblock PDMS-PMOXA-PDMS qui présente l’avantage de contrôler plus facilement le nombre de nanopores formés dans le système, mais également présentant une meilleure stabilité qu’une membrane lipidique dans le temps et soumise à des différences de potentiel électrique élevées (> 200 mV).
Dans la méthode de l’invention, la fréquence d’acquisition varie de 100 kHz à 1 Mhz, de préférence de 250 kHz et 400 Khz. La fréquence d’acquisition peut notamment être ajustée en fonction de la taille du biomarqueur ; en effet plus les peptides sont de petite taille plus la détection adéquate des événements nécessite une fréquence d’acquisition importante. Avantageusement, un filtre de Bessel est utilisé. Le filtre de Bessel utilisé sera lui aussi ajusté en fonction de la taille des biomarqueurs (il peut avoir pour valeur une fréquence variant de 1 kHz à 100 kHz). Ce filtre Bessel permet de diminuer le bruit sans modifier l’information contenue dans le signal électrique.
Dans la méthode de l’invention, les analytes (biomarqueurs peptidiques) sont directement ajoutés dans le compartiment cis de la membrane de l’au moins un système censeur. Un tel système senseur est illustré à la . Ledit au moins un biomarqueur peptidique ajouté en cis peut être compris dans le liquide biologique sans traitement de ce dernier visant à faciliter la détection dudit au moins un biomarqueur. Ledit liquide biologique peut également avoir été soumis à un traitement préalable visant à faciliter la détection de l’au moins un biomarqueur tel que, par exemple, une filtration, un fractionnement, une précipitation, l’ajout de réactif visant à rajouter au moins un groupement sur au moins un des acides aminés dudit biomarqueur. Ce traitement préalable peut par exemple viser à modifier la charge de l’au moins un biomarqueur peptidique de manière à faciliter sa translocation du côté cis au côté trans de la membrane du système senseur à l’application de la différence de potentiel. Cela est avantageux dans les cas où l’au moins un biomarqueur peptidique que l’on souhaite caractériser et/ou détecter présente une charge neutre ou insuffisante. Ce traitement peut également comprendre un traitement enzymatique visant à produire des peptides à partir d’une protéine biomarqueur de grande taille, dans le but de détecter et caractériser au moins un de ces peptides par le système senseur de l’invention. Ce traitement peut également comprendre l’utilisation de conditions suffisamment dénaturantes de manière à dissocier des complexes impliquant les biomarqueurs peptidiques dont on souhaite détecter la présence, et/ou déplier au moins en partie des structures secondaires ou tertiaires.
Le liquide biologique peut être compris dans le groupe comprenant le sang, le plasma, le sérum, le liquide céphalorachidien, du lavage bronchoalvéolaire, la salive, le liquide synovial, le liquide amniotique, de l’urine, un lysat cellulaire, un milieu de culture de cellules eucaryotes ou bactériennes.
Comme le montre la , la méthode de l’invention permet l’identification de biomarqueurs peptidiques dans un liquide biologique tel que le sérum, qui est un liquide biologique complexe sans traitement préalable. Ainsi, cela peut éviter une perte en sensibilité, en raison de la perte de biomarqueurs du fait de ces traitements, et contribue également à la rapidité de mise en œuvre de la méthode.
A la , on a utilisé le FPA et le FPA-P dans un système senseur selon la méthode de l’invention. La représentation pour chaque événement du ΔI norm en fonction de la durée de blocage permet d’identifier une signature spécifique pour FPA et FPA-P. La méthode de l’invention permet de mettre au jour deux signaux pour FPA-P, FPA-P1 et FPA-P2. Sans vouloir être lié par une quelconque théorie, on pense que ces deux signaux correspondent à deux confirmations différentes du peptide FPA-P, induite par la phosphorylation du peptide. Comme illustré dans le panneau de droite de la , la méthode permet d’identifier la présence de FPA, et FPA-P dans un mélange. Ainsi la méthode selon l’invention permet de distinguer jusqu’à une unique modification post traductionnelle d’un biomarqueur peptidique, telle que par exemple, une phosphorylation. En outre, la distinction de plusieurs conformations pour une même espèce permet d’inférer un gain en sensibilité et spécificité pour ladite méthode. En effet une telle information additionnelle augmente la probabilité de la détection et l’identification correcte du biomarqueur peptidique. La représentation de ΔI norm en fonction du nombre d’événements permet d’aboutir, en ce qui concerne FPA, à la détermination d’un taux de blocage moyen de 0,64±0,01, 0,70±0,01 pour FPA-P1 et 0,61±0,01 pour FPA-P2.
La méthode de l’invention est ainsi suffisamment puissante pour permettre la détection de modifications post traductionnelles uniques et/ou des conformations différentes d’un même biomarqueur peptidique. Ces performances sont confirmées par les données présentées à la , où l’on voit que l’analyse du signal électrique d’un mélange de FPA, FPA-P, FPA-3 et FPA-6, permet d’identifier la présence de ces espèces sans ambigüité dans ce mélange. Le panneau supérieur de la montre les signatures spécifiques de ces biomarqueurs peptidiques telles que déterminées par la représentation du taux de blocage en fonction de la durée de blocage du nanopore. Le panneau inférieur de la montre la détermination du taux de blocage moyen pour chacune des espèces déduites en fonction du nombre d’événements. Un taux de blocage moyen de 0,64±0,01, 0,70±0,01 pour FPA-P1, de 0,62±0,01 pour FPA-P2, de 0,56±0,01 pour FPA-3 et de 0,44±0,01 pour FPA-6. La méthode selon l’invention permet donc de discriminer des peptides se différenciant par des clivages en N-terminal, une confirmation et/ou une modification post traductionnelle, en mélange, en utilisant par exemple le ΔI norm ou le ΔI norm moyen tels que définis ci-dessus.
La montre la détermination pour chacune des espèces FPA, FPA-3, FPA-6 et FPA-P, qu’il est possible de déterminer un temps d’occupation moyen pour chacune de celles-ci, qui leur est spécifique, malgré la similitude de ces peptides. Comme illustré, celui-ci est obtenu en reportant le temps de blocage de chaque événement en fonction du nombre d’événements et en estimant ainsi le temps d’occupation moyen par l’ajustement à une distribution gaussienne. Des temps d’occupation moyens de 5,74±0.22 ms pour FPA, de 0,62±0,04 ms pour FPA-P1, de 4,41±0.33 ms pour FPA-P2, de 2,50±0,12 ms pour FPA-3, et de 0,95±0.04 ms pour FPA-6 sont ainsi déterminés.
Ainsi, il est déterminé que le signal électrique peut être utilisé pour déterminer des caractéristiques telles que : le temps d’occupation moyen, médian, minimum et/ou maximum, le taux de blocage moyen, minimum, médian et/ou maximum de l’au moins un nanopore d’aérolysine du système senseur, la forme du signal électrique qui, étant spécifique des biomarqueurs peptidiques, peut être utilisée pour les différencier quand bien même ces différences consistent seulement en une unique modification post traductionnelle ou des clivage N-terminaux. le nombre d’événements qui permettent de déterminer la concentration du biomarqueur peptidique identifié, ou la déviation standard du signal mesuré lors du passage dudit biomarqueur peptidique.
Ces données du signal électrique, étant spécifiques des biomarqueurs peptidiques, peuvent être utilisées pour les différencier quand bien même ces différences consistent seulement en une unique modification post traductionnelle ou des clivages N-terminaux. Ces données permettent également de différencier des conformations différentes d’un même biomarqueur peptidique.
Dans un mode de réalisation particulier, les biomarqueurs peptidiques de la méthode selon l’invention sont identifiés et caractérisés par l’analyse couplée d’au moins deux paramètres du signal électrique tels que ceux décrits ci-dessus, cela permet d’augmenter la résolution de la méthode et d’améliorer la discrimination et l’identification des biomarqueurs peptidiques.
Dans un mode de réalisation particulier, les biomarqueurs peptidiques de la méthode selon l’invention sont identifiés et caractérisés par l’analyse couplée d’au moins deux paramètres du signal électrique sélectionnés parmi : le temps d’occupation moyen, médian, minimum et/ou maximum, le taux de blocage moyen, minimum, médian et/ou maximum de l’au moins un nanopore d’aérolysine du système senseur, la forme du signal électrique qui, étant spécifique des biomarqueurs peptidiques, peut être utilisée pour les différencier quand bien même ces différences consistent seulement en une unique modification post traductionnelle ou des clivage N-terminaux. le nombre d’événements qui permettent de déterminer la concentration du biomarqueur peptidique identifié, ou la déviation standard du signal mesuré lors du passage dudit biomarqueur peptidique.
Dans un mode de réalisation particulier, les biomarqueurs peptidiques de la méthode selon l’invention sont identifiés et caractérisés par l’analyse couplée : du temps d’occupation moyen, médian, minimum et/ou maximum, avec le taux de blocage moyen, minimum médian et/ou maximum, ou du temps d’occupation moyen, médian, minimum et/ou maximum, avec la forme du signal électrique, ou du temps d’occupation moyen, médian, minimum et/ou maximum, avec la déviation standard du signal électrique, ou du taux de blocage moyen, minimum, médian et/ou maximum, avec la déviation standard du signal électrique, ou du taux de blocage moyen, minimum, médian et/ou maximum, avec la forme du signal électrique.
Dans un mode de réalisation encore plus particulier de la méthode selon l’invention, analyser le signal électrique généré comprend : déterminer le taux de blocage moyen, et déterminer le temps de blocage moyen tel que décrit ci-dessus.
Ainsi, ces données peuvent être utilisées dans des représentations bi dimensionnelles telles qu’illustrées à la qui montrent que chaque population d’événements, et donc chaque biomarqueur peptidique peut clairement être caractérisé et identifié au sein d’un mélange de biomarqueurs peptidiques.
La illustre la mise en œuvre de la méthode de l’invention pour la bradykinine. La bradykinine et la des-arginine 9 bradykinine sont caractérisées chacune par deux conformations détectées par le système senseur de la méthode selon l’invention. Des taux de blocage de 0,47 et 0,75 sont déterminés pour la bradykinine (formes BK1 et BK2), et des taux de blocage de 0,69 et de 0,32 pour la des-arginine 9 bradykinine (forme DAB1 et DAB2). De la même manière, des temps d’occupation correspondant à chacune des espèces sont déterminés (non montré). La représentation bi dimensionnelle de la confirme que les biomarqueurs peptidiques sont efficacement identifiés et discriminés par une analyse couplée de deux paramètres du signal électrique, en l’occurrence ici le temps de blocage et le taux de blocage.
La confirme la caractérisation dans un sérum humain de la présence de des-arginine 9 bradykinine, par l’identification de deux conformations caractérisées par un taux de blocage moyen de 0,32±0,004 et de 0,72±0,002 un taux de blocage. Cela est cohérent avec les taux de blocage déterminés pour les peptides purifiés ( ).
Dans la méthode selon l’invention la durée d’enregistrement des événements est au moins d’une minute. Plus la durée d’enregistrement est longue et plus la probabilité de détecter un biomarqueur faiblement représenté dans le liquide biologique est importante ; la sensibilité et la spécificité de la méthode s’en trouvent également améliorées. Ainsi la durée d’enregistrement des événements est au moins de 2, 3, 4, 5, 10, 20, 30, 45, 60, 90, voire au moins 120 min.
Également, la méthode de détection d’au moins un biomarqueur peptidique dans un liquide biologique selon l’invention peut comprendre l’utilisation de plusieurs systèmes senseurs indépendants, démultipliant ainsi la probabilité de détection d’un biomarqueur peptidique faiblement représenté dans le liquide biologique.
Alternativement, une membrane comprenant plusieurs nanopores peut être utilisée. Ainsi dans ce mode de réalisation un système senseur comprend plusieurs nanopores.
Egalement, plus la différence de potentiel appliquée est importante, plus la sensibilité de la méthode est importante. Ainsi la différence de potentiel appliquée est inférieure ou égale, en valeur absolue, à 300 mV, inférieure ou égale à 200 mV, inférieure ou égale à 200 mV, inférieure ou égale à 150 mV, inférieure ou égale à 100 mV, ou encore inférieure ou égale à 50 mV. De manière évidente, lorsque l’au moins un biomarqueur peptidique recherché est chargé négativement, la différence de potentiel appliquée est positive, et inversement lorsque l’au moins un biomarqueur peptidique recherché est chargé positivement, la différence de potentiel appliquée est négative.
Dans la méthode selon l’invention, le ratio du volume de l’électrolyte sur le volume du liquide biologique dans le compartiment cis est supérieur à 10, supérieur à 50, supérieur à 75, supérieur à 100, supérieur à 500, voire supérieur à 1000.