Procédé de culture d’un archaea méthanogène dans un bioréacteur en atmosphère aérobie, de préférence à l’air ambiant, comprenant la mise en culture de l’archaea méthanogène dans un milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène, ledit milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprenant : - un sel de sélénite à une concentration allant de 0,001 mg/L à 0,1 mg/L, - un sel de tungstate à une concentration allant de 0,001 mg/L à 0,1 mg/L, - un sel de nickel à une concentration de 0,01 à 0,1 mg/L, - du méthanol à une concentration d'au moins 0,015 g/L, - de l’acétate de sodium (Na-acétate) à une concentration allant de 1 g/L à 2 g/L - du formate de sodium (Na-formate) à une concentration allant de 1 g/L à 3 g/L, et - du sulfure de sodium (Na 2 S) à une concentration allant de 0,1 à 0,3 g/L. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel l’ archaea méthanogène est choisie parmi Methanobrevibacter, Methanosphaera, Methanomassiliicoccus, Methanobacterium, Methanococcus et Methanosaeta, de préférence choisie parmi Methanobrevibacter smithii, Methanobrevibacter oralis, Methanosphaera stadtmanae, Methanomassiliicoccus luminyensis, Methanobacterium beijingense et Methanosaeta concilii , de préférence encore Methanobrevibacter smithii . Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel (i) le sel de sélénite est à une concentration allant de 0,01 mg/L à 0,03 mg/L, par exemple de 0,015 mg/L ; et/ou (ii) le sel de tungstate est à une concentration allant de 0,01 mg/L à 0,03 mg/L, par exemple de 0,02 mg/L ; et/ou (iii) le sel de nickel est à une concentration allant de 0,05 mg/L à 0,08 mg/L, par exemple de 0,07 mg/L ; et/ou (iv) le méthanol est à une concentration allant de 0,015 g/L à 35 g/L, de préférence allant de 0,5 g/L à 10 g/L, de préférence allant de 1 g/L à 5 g/L, de préférence allant de 1 g/L à 3 g/L, par exemple de 1,28 g/L. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel l’acétate de sodium est à une concentration de 1 g/L ; et/ou le formate de sodium est à une concentration de 2 g/L Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel (i) le sel de sélénite est Na 2 SeO 3 , de préférence sous forme d’hydrate Na 2 SeO 3 .5H 2 O ; et/ou (ii) le sel de tungstate est Na 2 WO 4 , de préférence sous forme d’hydrate Na 2 WO 4 .2H 2 O ; et/ou (iii) le sel de nickel est NiCl 2 , de préférence sous forme d'hydrate NiCl 2 .6H 2 O. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le bioréacteur est placé à une température permettant à l’archaea méthanogène de se multiplier, par exemple à une température allant de 20°C à 40°C, de préférence à 37°C. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le bioréacteur n’est pas supplémenté en dihydrogène (H 2 ) et/ou en dioxyde de carbone (CO 2 ). Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend en outre une bactérie anaérobie apte à produire du dihydrogène, par exemple une bactérie de la famille des Actinobacteria et/ou une bactérie de la famille des Bacteroides , de préférence une bactérie choisie parmi Escherichia coli, Christensenella minuta, Proteus mirabilis, Bacteroides thetaiotaomicron, Klebsiella pneumoniae, Klebsiella koseri, Enterococcus cloacae, Clostridium butyricum, Moganella morganii, Clostridium perfringens et Enteroccocus aerogenes . Procédé de culture selon l’une des revendications 1 à 7, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène ne comprend pas de bactérie anaérobie apte à produire du dihydrogène. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend: - une ou plusieurs sources de carbone, de préférence une ou plusieurs sources de carbone choisie parmi un extrait de levure et un Tryptone de caséine - une ou plusieurs sources de phosphore, de préférence un ou plusieurs sels de phosphate ; - une ou plusieurs sources d'azote, de préférence un ou plusieurs sels d'ammonium ; et - des oligoéléments, de préférence des sels choisis parmi des sels de Ni, Fe, W, K, Mg, Na, Se, Mo, Mn, Cu, Zn, B, Co et/ou Ca. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend un ou plusieurs composés antioxydant, de préférence un ou plusieurs composés choisis parmi l’acide ascorbique, le glutathion (γ-L-Glutamyl-L-cysteinylglycine) et l’acide urique. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend un ou plusieurs sucres, de préférence du glucose. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend un ou plusieurs tampons, de préférence un ou plusieurs tampons choisis parmi K 2 HPO 4 et NaHCO 3 . Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le pH va de pH 7 à pH 7.5. Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend: NiCl 2 x 6H 2 O 0,05 mg/L à 0,08 mg/L FeSO 4 x 7H 2 O 0,1 mg/L à 0,03 mg/L MgSO 4 x 7H 2 O 0,05 g/L à 0,2 g/L K 2 HPO 4 0,2 g/L à 0,7 g/L KH 2 PO 4 0,2 g/L à 0,7 g/L KCl 0,01 g/L à 0,1 g/L CaCl 2 0,01 g/L à 0,1 g/L NaCl 1 g/L à 2 g/L NH 4 Cl 0,5 g/L à 2 g/L Na-Acétate 1 g/L à 2 g/L Extrait de levure 1 g/L à 10 g/L Glucose 1 g/L à 10 g/L Tryptone de caseine 1 g/L à 10 g/L Acide ascorbique 0,5 g/L à 2 g/L Glutathion 0,01 g/L à 0,5 g/L Acide urique 0,1 g/L à 1 g/L Solution d’oligoéléments de Widdel 1 mL/L à 5 mL/L Solution d’oligoéléments de Balch 5 mL/L à 20 mL/L Na-Format 1 g/L à 3 g/L, par exemple de 1,5 g/L à 2,5 g/L Sel de sélénite 0,01 mg/L à 0,03 mg/L Sel de tungstate 0,01 mg/L à 0,03 mg/L Na 2 S 0,1 à 0,3 g/L NaHCO 3 0,1 à 0,5 g/L Méthanol 0,015 g/L à 35 g/L Procédé de culture selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le milieu de culture apte à cultiver l’archaea méthanogène comprend: NiCl 2 x 6H 2 O 0,07 mg/L FeSO 4 x 7H 2 O 0,2 mg/L MgSO 4 x 7H 2 O 0,1 g/L K 2 HPO 4 0,5 g/L KH 2 PO 4 0,5 g/L KCl 0,05 g/L CaCl 2 0,05 g/L NaCl 1,5 g/L NH 4 Cl 1 g/L Na-Acétate 1 g/L Extrait de levure 5 g/L Glucose 5 g/L Tryptone de caseine 5 g/L Acide ascorbique 1 g/L Glutathion 0,1 g/L Acide urique 0,5 g/L Solution d’oligoéléments de Widdel 2 mL/L Solution d’oligoéléments de Balch 10 mL/L Na-Format 2 g/L Sel de sélénite 0,015 mg/L Sel de tungstate 0,02 mg/L Na 2 S 0,25 g/L NaHCO 3 0,25 g/L Méthanol 1,28 g/L Procédé de production de méthane comprenant les étapes de : mettre en œuvre du procédé de culture selon l’une quelconque des revendications 1 à 16 à une température permettant à l’archaea méthanogène de se multiplier ; et récupérer le méthane produit à l’étape a). Milieu de culture stérilisé apte à cultiver une archaea méthanogène dans un procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 16 comprenant : - un sel de sélénite à une concentration allant de 0,001 mg/L à 0,1 mg/L, - un sel de tungstate à une concentration allant de 0,001 mg/L à 0,1 mg/L, - un sel de nickel à une concentration de 0,01 à 0,1 mg/L, - du méthanol à une concentration d'au moins 0,015 g/L, - de l’acétate de sodium (Na-acétate) à une concentration allant de 1 g/L à 2 g/L, - du formate de sodium (Na-formate) à une concentration allant de 1 g/L à 3 g/L, et - du sulfure de sodium (Na 2 S) à une concentration allant de 0,1 à 0,3 g/L.