INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Une machine à fluide à canal latéral comprend, de façon connue, un stator et un rotor monté en rotation à l’intérieur du stator. Le stator comprend une zone centrale autour de laquelle s’étend un canal latéral destiné à un écoulement du fluide sous l’effet d’une rotation du rotor ou en vue d’une rotation du rotor. En particulier, le canal latéral est formé par une paroi interne du stator et présente un premier rebord et un deuxième rebord entre lesquels s’étend un barrage d’étanchéité.
Une telle machine, notamment dans sa configuration de compresseur ou ventilateur, est de plus en plus utilisée pour des applications industrielles où des débits moyens sont requis avec des taux de compression faibles ou moyens. Par ailleurs, lorsqu’elle est bien isolée acoustiquement, une telle machine peut être très silencieuse, ce qui constitue un critère de sélection majeur dans certains cas. Enfin, contrairement aux autres machines volumétriques, une telle machine permet un contrôle et une opérabilité sur une large plage de fonctionnement avec un minimum de pièces mécaniques mobiles.
Par comparaison avec une roue centrifuge, la machine à fluide à canal latéral présente l’avantage d’être facilement fabriquée avec des formes géométriques relativement simples (constituées principalement d’extrusion d’esquisse 2D). En outre, il est également très simple de concevoir des designs de la machine afin d’atteindre différents objectifs répondant à de divers cahiers des charges.
Il est à noter qu’une machine à fluide à canal latéral peut très être facilement placée en multi-étage sans grande inquiétude par rapport aux phénomènes de pompage. Les étages peuvent être disposés en parallèle pour augmenter le débit, ou en série pour augmenter la pression. L’adaptabilité entre les étages se fait très aisément aussi bien en aéraulique qu’en architecture et mécanique (piping très simple entre les étages).
En dépit des avantages listés ci-dessus, les constructeurs des machines à fluide à canal latéral sont en permanence en quête de solutions techniques capables d’améliorer les performances de ces machines, notamment en ce qui concerne le débit et le taux de compression.
Un but de l’invention est de proposer une telle solution.
A cette fin, la machine selon l'invention, par ailleurs conforme à la définition générique qu’en donne le préambule ci-dessus, est essentiellement caractérisée en ce que le stator comprend un insert qui est disposé dans le canal latéral de sorte à former ou introduire dans le stator une paroi interne déflectrice supplémentaire destinée à être balayée par le fluide en écoulement et à guider le fluide dans le canal latéral.
En prévoyant un insert dans le canal latéral, l’invention permet d’améliorer le débit et le taux de compression de fluide délivré en sortie de la machine.
est une vue en perspective d’un groupe de filtration monté sur une paroi d’un bassin, équipé d’une cellule d’électrolyse selon la ,
est une vue de dessus agrandie de la , montrant les fuites de gaz autour de la cellule d’électrolyse, et
est une vue en coupe axiale du groupe de filtration selon le plan de coupe VII-VII de la , montrant la circulation de l’eau et les fuites de gaz.
En référence aux figures 1 à 4, la cellule d’électrolyse 1 selon l’invention est constituée des éléments principaux suivants : des électrodes 2, un culot de montage 3, et un câble électrique 4 pour relier les électrodes 2 à une source de courant continu (non représentée) via un coffret de pilotage distant (non représenté).
Le culot de montage 3 présente, dans l’exemple représenté, une forme cylindrique d’axe A, sans que cette forme ne soit limitative, l’essentiel étant qu’elle soit complémentaire à celle des moyens de réception prévus dans le groupe de filtration et décrits plus loin. Elle pourrait présenter une forme ovoïde, polygonale, voire quelconque. Le culot de montage 3 comporte une enveloppe 5, un noyau central 6, une collerette d’appui 7 en partie supérieure, et au moins une languette ressort 8 latérale, et par exemple deux languettes ressort 8 latérales, sans que ce nombre ne soit limitatif.
L’enveloppe 5 constitue le support de tous les composants et de toutes les fonctionnalités de la cellule d’électrolyse 1, et permet son montage et sa fixation dans le groupe de filtration. Elle est de préférence réalisée dans un matériau polymère thermoplastique, électriquement isolant, tel qu’une résine naturelle, artificielle ou synthétique, ou tout autre matière techniquement équivalente, et est obtenue par moulage, injection, fabrication additive ou similaire.
Le noyau central 6 est réalisé de préférence dans une matière pouvant être surmoulée autour des extrémités 2a correspondantes des électrodes 2 et un câble électrique 4 pour assurer à la fois une liaison mécanique intime de ces pièces entre elles et une isolation électrique entre les électrodes 2. L’extrémité du câble 4 est munie d’un connecteur étanche (non représenté) permettant de connecter et de déconnecter aisément la cellule d’électrolyse 1 du câble 4 la reliant au coffret de pilotage distant (non représenté). Le coffret de pilotage est préférentiellement situé dans un local technique, séparé et éloigné du bassin et du groupe de filtration 30, pour protéger l’électronique de commande de la cellule d’électrolyse 1. Le local technique peut être distant d’au moins 2m à 20m, sans que ces valeurs ne soient limitatives.
Le noyau central 6 peut être rapporté par collage ou directement moulé à l’intérieur de l’enveloppe 5. A cet effet, l’enveloppe 5 peut comporter une cloison intermédiaire 9 pour faciliter la fabrication du noyau en deux parties. Le noyau central 6 peut être réalisé dans un matériau polymère thermodurcissable, électriquement isolant, telle qu’une résine naturelle, artificielle ou synthétique, ou tout autre matière techniquement équivalente. Bien entendu, tout autre moyen de maintien mécanique et d’isolation électrique compatible peut convenir en lieu et place du noyau central 6.
Les languettes ressorts 8 sont de préférence issues de la fabrication de l’enveloppe 5. Dans l’exemple représenté, elles s’étendent parallèlement à l’axe A, sont diamétralement opposées, et démarrent sensiblement après le premier tiers inférieur de la hauteur du culot. Elles comportent chacune un cran d’arrêt 10 orienté vers l’extérieur, pour réaliser un assemblage par clippage dans le groupe de filtration. Ce type d’assemblage a l’avantage d’être rapide, de ne nécessiter aucun outillage, et d’être réversible permettant le montage et le démontage de la cellule d’électrolyse 1 pour faciliter sa maintenance et/ou son remplacement. Bien entendu, tout autre moyen de fixation compatible peut convenir.
La collerette d’appui 7 s’étend perpendiculairement à l’axe A du culot de montage 3, et est saillante radialement de l’enveloppe 3 pour déterminer une position de montage axiale de la cellule dans le groupe de filtration. La collerette d’appui 7 est annulaire et peut présenter une forme circulaire, ovoïde, polygonale, voire quelconque. Dans l’exemple illustré, elle présente une forme circulaire, tronquée par quatre méplats, délimitant un carré. Les méplats peuvent constituer des moyens d’indexage définissant quatre positions de montage angulaires de la cellule d’électrolyse 1 dans l’orifice de réception 31 par rapport à la paroi latérale du couloir d’amenée d’eau 32. La collerette d’appui 7 comporte en outre deux encoches 11 au droit des languettes ressorts 8, de largeur supérieure à celle des languettes pour créer des passages formant des évents d'échappement des gaz 12, destinés à communiquer avec l’eau traversant le groupe de filtration, comme décrit plus loin.
Les électrodes 2, étant fixées au culot de montage 3 par une de leurs extrémités 2a, s’étendent en porte-à-faux depuis ledit culot jusqu’à l’autre de leurs extrémités 2b qui est libre. Dans l’exemple représenté, elles sont constituées de trois plaques 20, 21 formant par exemple deux anodes 20, et une cathode 21 située entre les deux anodes 20 pour créer deux couples « anode-cathode ». Les plaques 20, 21 sont de préférence réalisées en titane et recouvertes de ruthénium, ou en tout autre matériau ou combinaison de matériaux compatible. Elles sont positionnées parallèlement entre elles par leurs plus grandes faces, déterminant ainsi la surface de traitement de la cellule d’électrolyse 1 avec l’eau qui la traverse. Elles sont maintenues à une distance déterminée l’une de l’autre par des entretoises 13. Les entretoises 13 peuvent être constituées de rondelles ou similaires, maintenues entre elles par des organes de fixation 14 traversant les plaques 2a, 2b de part en part, tels que des vis bloquées par des écrous ou tout autre solution équivalente. Les entretoises 13 et les organes de fixation 14 sont réalisés dans des matériaux électriquement isolants, tels que du nylon, de la bakélite ® , ou toute autre matière compatible.
Le nombre de plaques 20, 21, formant les électrodes 2, n’est pas limité à trois. Il peut être égal à deux pour former au moins un couple « anode-cathode », ou égal à N, N pouvant être un nombre pair ou impaire, l’essentiel étant qu’elles soient positionnées l’une par rapport à l’autre pour former un ou plusieurs couples « cathode- anode ». Le nombre de plaques 20, 21, et la dimension de chacune des plaques sont des variables qui sont déterminées en fonction du volume d’eau à traiter.
Le culot de montage 3 comporte en outre un, deux ou plus de conduits traversants 15, disposés entre l’enveloppe 5 et le noyau central 6 ou au travers du noyau central 6. Ces conduits traversants 15 sont prévus pour recevoir un accessoire de contrôle et/ou de traitement de l’eau du bassin, tel qu’un indicateur de colmatage, un correcteur de pH, ou autre. A titre d’exemple, un indicateur de colmatage peut comporter un tube 16 pourvu d’un capteur de pression 17, emboité dans un des conduits traversants 15, sur le côté du culot extérieur, opposé aux électrodes 2. Le correcteur de pH (non représenté) peut comporter un tube permettant l’injection d’un produit adéquat tel que de l’acide chlorhydrique. Ces conduits traversants 15 assurent la communication de l’eau en circulation dans le groupe de filtration avec les accessoires portés par la cellule d’électrolyse 1.
En référence à présent aux figures 5 à 7, la cellule d’électrolyse 1 selon l’invention est montée directement dans un groupe de filtration 30, et plus particulièrement dans un orifice de réception 31 prévu à cet effet. De manière préférentielle, l’orifice de réception 31 est aménagé dans un couloir d’amenée d’eau 32, pour communiquer avec une colonne d’aspiration 33. De cette manière, les électrodes 2 de la cellule d’électrolyse 1 s’étendent à l’intérieur de la colonne d’aspiration 33 et sont immergées dans l’eau traversant le groupe de filtration 30. Le culot de montage 3 est quant à lui solidarisé à l’orifice de réception 31. Il repose dans le fond du couloir d’amenée d’eau 32 par sa collerette d’appui 7, et est verrouillé en position montée par les deux crans d’arrêt 10 en butée sous la paroi de l’orifice de réception 31. Dans cette position, la cellule d’électrolyse 1 est accessible. Il suffit de retirer un couvercle (non représenté) qui ferme la partie supérieure du groupe de filtration 30, et de rapprocher avec deux doigts les deux languettes ressorts 8 pour dégager les crans d’arrêt 10 libérant la cellule d’électrolyse 1 de l’orifice de réception 31. De même, des accessoires peuvent être ajoutés sur le culot de montage 3 au droit des conduits traversants 10, également accessibles et amovibles facilement.
Le groupe de filtration 30 peut être un équipement neuf équipé de ladite cellule d’électrolyse 1, ou un équipement existant, modifiable via une légère intervention pour créer ledit orifice de réception 31. Le groupe de filtration 30 tel qu’illustré est connu et ne sera décrit que succinctement. Il est assemblé à l’arrière d’une paroi 34 d’un bassin (non représenté). On appelle « bassin » tout contenant d’eau à destination ludique, récréative, bien-être, thérapeutique, comme une piscine, un bain à remous, un bassin de plongeon, ou similaire, sans que ces exemples ne soient limitatifs.
En d’autres termes, le module de détection 32 n’attribue et ne détecte que des changements d’états discrets bien que l’entrée modale puisse évoluer de manière continue.
Des exemples plus précis de détection pour des entrées modales vont maintenant être décrites.
Dans le cas d’une modalité acoustique 30A générant une entrée modale audio, les états discrets possibles associés comprennent des états correspondant respectivement à des éléments de langage propres à être interprétés dans les sons utilisateurs détectés et identifiés de l’entrée modale audio.
Les éléments de langage correspondent de préférence à une intention de l’utilisateur ou un élément désigné par l’utilisateur.
Pour chacun de ces états discrets possibles, le critère de détection associé correspond ainsi au moins à la reconnaissance d’au moins un élément de langage interprété dans les sons utilisateurs détectés et identifiés de l’entrée modale audio.
Pour ce faire, le module de détection 32 est par exemple configuré pour mettre en œuvre un traitement de compréhension du langage naturel NLU (de l’anglais : « Natural Language Understanding »). Un tel traitement est par exemple propre à déterminer au moins un élément de langage interprété correspondant à une intention de l’utilisateur ou un élément désigné par l’utilisateur, à partir des sons utilisateurs détectés et identifiés de l’entrée modale audio.
Le module de détection 32 attribue l’état discret en cours correspondant à ou aux élément(s) de langage interprété(s) dans l’entrée modale audio.
Les données caractéristiques de chaque état discret possible sont alors par exemple représentatives du ou des élément(s) de langage interprété(s).
Les données caractéristiques incluent par exemple alors un élément matériel ou virtuel désigné vocalement par l’utilisateur ou, comme détaillé par la suite, une requête vocale de l’utilisateur.
Les états discrets possibles associés à l’entrée modale audio comprennent aussi de préférence au moins un état correspondant à une absence de sons utilisateur ou une absence d’interprétation.
Ainsi, lorsque le dispositif d’analyse audio 42 ne détecte plus de sons utilisateur ou que le traitement de compréhension du langage naturel NLU n’interprète plus d’élément(s) de langage, le module de détection 32 détecte aussi un changement d’état car l’entrée modale audio varie, et le module de détection 32 attribue un état discret en cours correspondant à une absence de sons utilisateurs ou une absence d’interprétation.
Les données caractéristiques de cet état discret en cours sont alors par exemple représentatives d’une absence de sons utilisateurs ou d’une absence d’interprétation.
Dans le cas d’une modalité tactile 30C comprenant un clavier ou un bouton poussoir générant une entrée modale tactile, les états discrets possibles associés comprennent des états correspondant respectivement à l’actionnement de chaque touche du clavier ou l’actionnement du bouton poussoir.
Pour chacun de ces états discrets possibles, le critère de détection associé correspond ainsi au moins à l’actionnement de la touche ou du bouton poussoir associé.
Ainsi, le module de détection 32 détecte un changement d’état discret de l’entrée modale tactile à chaque actionnement du clavier ou du bouton poussoir. Le module de détection 32 attribue l’état discret en cours correspondant à la touche ou au bouton poussoir actionné(e) à l’entrée modale tactile.
Les données caractéristiques de cet état discret en cours sont alors par exemple représentatives dudit actionnement.
A. Production de l’extrait
Cette méthode correspond à une adaptation du procédé d’extraction et de fractionnement décrit dans le brevet FR2998894B1 de la société Seprosys, permettant de purifier des fractions protéique et polysaccharidique issues de macroalgues marines vertes.
Le procédé comprend la succession des étapes suivantes : a) Lavage des algues à traiter b) Broyage des algues lavées c) Diffusion à l’eau des algues lavées dans un volume d’eau réduit d) Filtration des pulpes récupérées après l’étape c) puis pressage des pulpes de façon à obtenir un jus de pressage d’une part et des pulpes de pressage d’autre part e) Microfiltration du jus de pressage obtenu à l’étape d) de façon à obtenir un rétentat d’une part et un perméat d’autre part f) Ultrafiltration du perméat de microfiltration obtenu à l’étape e) de façon à obtenir un rétentat d’une part et un perméat d’autre part g) Osmose inverse du perméat d’ultrafiltration obtenu à l’étape f) h) Lyophilisation du perméat d’ultrafiltration osmosé obtenu à l’étape g).
1 kg d’algues sèches est trempé dans 30 l d’eau brute pendant 10 min à température ambiante. Les algues sont ensuite essorées et pressées à l’aide d’un cône en tissu afin de retirer le plus d’eau possible. Les algues lavées sont alors broyées dans 5 l d’eau déminéralisée à 65°C, à l’aide d’un broyeur à couteau, jusqu’à l’obtention de particules de moins de 2 mm de diamètre. Les 5 l de broyat sont transférés dans une cuve thermostatée à 80°C contenant 10 l d’eau déminéralisée à température. L’extraction est réalisée sous agitation constante à l’aide d’un agitateur à pales, à une vitesse de rotation de 10 tours/min pendant 2 h. L’extrait aqueux est ensuite filtré au moyen d’un tamis vibrant présentant un seuil de coupure de 50 µm (toile inox, NEGOFILTRE), afin d’éliminer les résidus d’algues. Les pulpes d’algues sont quant à elles soutirées de la cuve puis pressées à l’aide d’un pressoir (60 hl/h), afin d’extraire le plus de jus possible. Le jus issu du pressoir est alors associé à l’extrait aqueux initial filtré et environ 15 l de jus total d’extraction sont récupérés puis filtrés via une unité de microfiltration de type filtre à plaques équipée de deux filtres de 1,2 µm puis 0,8 µm (3M, 40*40, taille de pores 15 HN et 50 HN). Environ 15 l de perméat sont récupérés, puis filtrés à nouveau via une unité d’ultrafiltration équipée d’une membrane de type Kerasep KBW 15 kDa (Novasep Process). La filtration est réalisée à 80°C, 5 bars et à un débit de circulation de 450 l/h, soit une vitesse de circulation de 5 m/s. La filtration est poursuivie jusqu’à obtenir un rétentat d’environ 4 Bx, qui est alors soutiré de l’unité. Le perméat est quant à lui récupéré puis osmosé sur une unité d’osmose inverse équipée d’une membrane de type SW 30 HR (Dow), permettant de concentrer la fraction. L’osmose inverse est réalisée à 30°C, entre 20 et 30 bars et à un débit de circulation de 120 l/h, soit une vitesse de circulation de 1,3 m/s. L’osmose inverse est poursuivie jusqu’à obtenir un rétentat d’environ 13 Bx, qui est alors soutiré de l’unité, puis lyophilisé. Cette fraction obtenue de type perméat d’ultrafiltration osmosé sera ci-après dénommée extrait d’algue du genre Ulva de type perméat ou « fraction P ».
B. Caractérisation de l’extrait
a) Solubilité
Plusieurs solvants différents sont utilisés pour évaluer la solubilité de l’extrait d’algue du genre Ulva de type perméat (fraction P) : eau, acétonitrile (ACN), méthanol, éthanol, acétone, hexane, mélange eau/ACN (1:1, v/v), et mélange méthanol/acétone (1:1, v/v). Différentes quantités massiques d’extrait solide sont mélangées sous vortex avec les différents solvants puis l’absorbance de la solution ou suspension obtenue est mesurée à 600 nm au moyen d’un spectrophotomètre microplaque FLUOstar Omega (BMG LABTECH). Après soustraction du blanc obtenu à partir de chaque solvant pur, la solution est considérée limpide et l’extrait soluble si l’absorbance obtenue est inférieure à 0,02.
La fraction P est soluble uniquement dans l’eau et le mélange eau/ACN (1:1, v/v) (Tableau 1), sa solubilité étant maximale dans l’eau (1 g/l), et minimale dans le mélange eau/ACN (1:1, v/v).
Solvant Solubilité de la fraction P (mg/ml) Eau 1 Eau/ACN (1:1, v/v) 0,33
Tableau 1 : Solubilité de la fraction P dans l’eau et le mélange eau/acétonitrile (1:1, v/v).
b) Caractérisation biochimique
Deux solvants, eau et mélange eau/ACN (1:1, v/v), sont utilisés pour préparer deux solutions de fraction P à 20 mg/ml. Celles-ci sont ensuite centrifugées à 15000 rpm durant 2 min puis filtrées sur 0,22 µm afin d’obtenir une solution finale contenant uniquement les composés solubles. En raison de l’influence de la couleur de ces deux solutions sur la mesure d’absorbance, celles-ci sont ensuite diluées au 1/18 au moyen du même solvant, avant analyse.
L’ensemble des analyses est réalisé sous forme de triplicatas.
Teneurs en protéines
La teneur en protéines est évaluée au moyen de trois protocoles biochimiques, issus respectivement des méthodes de Lowry (Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951 Nov;193(1):265–75), Smith (Smith PK, Krohn RI, Hermanson GT, Mallia AK, Gartner FH, Provenzano MD, et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 1985 Oct;150(1):76–85) et Kjeldahl (Kirk PL. Kjeldahl Method for Total Nitrogen. Anal Chem. 1950 Feb 15;22(2):354–8).
- Méthode de Lowry :
La montre une vanne 15b pour une enceinte 13 qui est de préférence scellée (en variante, ce pourrait être l’enceinte 11 ou 16). La vanne comprend un premier passage 120 et un deuxième passage 130 pour un fluide entrant ou sortant de l'enceinte Le premier passage de la vanne comprend un organe, par exemple un piston, de fermeture 152. Le deuxième passage comprend une membrane 160. La membrane est perméable au fluide susmentionné.
La vanne est ainsi adaptée pour être positionnée dans une ouverture d'évacuation ou dans un conduit d'évacuation d'une enceinte telle que l’enceinte 11, 13, ou 16, par exemple apte à recevoir un bloc-batterie. Une telle ouverture d'évacuation ou conduit d'évacuation procurent de manière générale un chemin de passage pour un fluide passant entre un intérieur 130 et un extérieur 140 de l'enceinte. De manière générale l'enceinte peut être scellée en dehors de ladite ouverture : ladite ouverture est alors le seul chemin d'échange pour un fluide entre l'intérieur et l'extérieur de l'enceinte.
Une fois la vanne positionnée dans l'ouverture d'évacuation, le premier passage 120 et le deuxième passage 130 présentent un chemin pour le fluide entrant ou sortant de l'enceinte. Le fluide peut ainsi entrer ou sortir de l'enceinte par le premier ou par le deuxième passage de la vanne. La montre le fluide passant par le premier passage 160 et le fluide passant par le deuxième passage 150.
Avantageusement, la membrane 160 empêche uniquement des particules, par exemple de la poussière, d'entrer depuis l'extérieur 140 dans l’intérieur 130 de l'enceinte, ce qui pourrait nuire au contenu de la dite enceinte, par exemple endommager une batterie. De préférence la membrane dispose d'une perméabilité à l'air sous une différence de pression de ∆p 70 mbar comprise entre 1 et 500 L.h -1 .cm - ². Autrement dit, la membrane peut disposer d'une perméabilité à l'air sous une différence de pression : Pour une différence de pression de ∆p 70 mbar, la membrane laisse passer entre 1 et 500 litres (L) d'air par heure (h) et par cm² de surface de la membrane. Autrement dit, une membrane d'une surface ou taille d'un cm² laisse passer entre 1 et 500 litres d'air à travers de la membrane dans le cas où une pression de 70 mbar est appliquée à travers de la membrane. Par exemple, ladite perméabilité peut être déterminée selon une des méthodes définies par les normes ISO 5636-3, ISO 5636-4 ou ISO 5636-5.
Le premier passage comprend un organe 152, par exemple un piston, de fermeture. Cet organe peut bouger entre une position d'ouverture et une position de fermeture. Dans la position d'ouverture il ouvre le premier passage, et le fluide peut passer par le premier passage et par le deuxième passage entre l'intérieur et l'extérieur de l'enceinte. La montre cet organe dans sa position d'ouverture et le fluide passant par le premier passage 160 ouvert par cet organe, ici un piston.
La montre la même vanne déjà montré dans la , mais l’organe 152 étant en position de fermeture. Le fluide peut toujours passer par le deuxième passage, à travers de la membrane perméable. Le premier passage est fermé par l’organe 152, qui arrête le fluide.