INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Dans un mode de réalisation, le dispositif acoustique comprend un filtre passe bande configuré pour isoler, dans le signal électrique audio reçu sur le port d’entrée, le signal électrique audio à une fréquence prédéterminée, le signal électrique en sortie du filtre passe bande étant envoyé au haut-parleur, le filtre passe bande étant configuré pour ajuster sa fréquence prédéterminée sur la fréquence instantanée du signal électrique audio reçu sur le port d’entrée et déterminée par le moyen de traitement d’un signal numérique.
Un deuxième aspect de l’invention concerne un dispositif acoustique comprenant : Un port d’entrée destiné à recevoir un signal électrique audio ; Une pluralité de haut-parleurs, chaque haut-parleur de la pluralité de haut-parleurs étant associé à une fréquence de résonance au repos, différente de la fréquence de résonance au repos des autres haut-parleurs et comprenant un moyen de mesure configuré pour mesurer le mouvement du haut-parleur considéré ; Un moyen de traitement d’un signal numérique configuré pour déterminer le contenu fréquentiel du signal électrique audio reçu sur le port d’entrée ; Pour chaque haut-parleur de la pluralité de haut-parleurs, un filtre passe bande configuré pour isoler, dans le signal électrique audio reçu sur le port d’entrée, le signal électrique audio à une fréquence prédéterminée, le signal électrique en sortie du filtre passe bande étant envoyé au haut-parleur considéré.
De plus, dans le dispositif selon un deuxième aspect de l’invention, la fréquence de résonance de chaque haut-parleur de la pluralité de haut-parleurs est ajustable autour de la fréquence de résonance au repos du haut-parleur considéré dans une gamme de fréquences prédéterminée, et le dispositif acoustique comprend, pour chaque haut-parleur de la pluralité de haut-parleurs, un contrôleur associé à un gain, la fréquence de résonance du haut-parleur étant fonction du gain du contrôleur, le contrôleur étant configuré pour asservir à partir de la mesure du mouvement du haut-parleur effectuée par le moyen de mesure associé au haut-parleur considéré, en boucle fermée, la fréquence de résonance du haut-parleur considéré en fonction de la fréquence instantanée du signal reçu sur le port d’entrée ayant l’amplitude la plus élevée dans la gamme de fréquence prédéterminée associée au haut-parleur considéré et déterminée par le moyen de traitement d’un signal numérique, le filtre passe bande étant configuré pour ajuster sa fréquence prédéterminée sur cette même fréquence instantanée.
Grace au dispositif selon le deuxième aspect de l’invention, il est possible de bénéficier des avantages du dispositif selon un premier aspect de l’invention même lorsque le signal électrique audio n’est pas monotone.
Dans un mode de réalisation, les fréquences de résonance au repos des haut-parleurs de la pluralité de haut-parleurs sont réparties en fonction des harmoniques d’un instrument à corde.
Outre les caractéristiques qui viennent d’être évoquées dans les paragraphes précédents, le dispositif acoustique selon un premier ou un deuxième aspect de l’invention peut présenter une ou plusieurs caractéristiques complémentaires parmi les suivantes, considérées individuellement ou selon toutes les combinaisons techniquement possibles.
Dans un mode de réalisation, chaque filtre passe bande est un filtre passe bande numérique dont la fréquence prédéterminée peut être modifiée de manière numérique.
Dans un mode de réalisation, chaque haut-parleur comprend au moins une structure mécanique mobile, ladite structure mécanique mobile comportant au moins un élément mécanique mobile et, pour chacun de ces éléments mécaniques mobiles, une première couche piézoélectrique, ladite première couche étant disposée sur une première partie de l’élément mécanique mobile de sorte à pouvoir actionner ledit élément mécanique mobile, et une deuxième couche piézoélectrique, ladite deuxième couche étant disposée sur une deuxième partie de l’élément mécanique mobile, distincte de la première partie, de sorte à pouvoir convertir l’énergie mécanique associée au mouvement de l’élément mécanique mobile en énergie électrique et ainsi mesurer le déplacement de l’élément mécanique mobile.
Dans un mode de réalisation, la structure mécanique mobile est constituée d’un élément mobile sous la forme d’une membrane en forme de disque, la première couche piézoélectrique et la deuxième couche piézoélectrique étant disposées à la surface de ladite membrane.
Dans un mode de réalisation, la première couche forme un premier anneau et la deuxième couche forme un deuxième anneau entourant le premier anneau.
Dans un mode de réalisation, la structure mécanique mobile comprend une surface rigide configurée pour pouvoir effectuer un mouvement de translation perpendiculaire à sa surface, le ou les éléments mécaniques mobiles de la structure mécanique mobile étant configurés pour actionner la surface rigide selon ledit mouvement.
Les huiles non ou peu volatiles peuvent être des huiles hydrocarbonées notamment d’origine végétale, des huiles d’origine synthétique ou minérale, des huiles siliconées, des huiles fluorées, ou leurs mélanges.
Huile apolaire Selon un premier mode de réalisation, ladite huile non ou peu volatile peut être une huile apolaire, de préférence hydrocarbonée.
Par « huile apolaire » au sens de la présente invention, on entend une huile dont le paramètre de solubilité à 25 °C, δa, est égal à 0 (J/cm 3 ) ½ .
La définition et le calcul des paramètres de solubilité dans l’espace de solubilité tridimensionnel de Hansen sont décrits dans l’article de C. M. Hansen : « The three dimensionnal solubility parameters », J. Paint Technol., 39, 105 (1967).
De façon préférée, l’huile hydrocarbonée apolaire non volatile peut être choisie parmi les hydrocarbures linéaires ou ramifiés, d’origine minérale ou synthétique tels que :
- le squalane,
- l’huile de naphtalène,
- les polybutylènes, tels que l’INDOPOL H-100 (de masse molaire ou Mw égal à 965 g/mol), l’INDOPOL H-300 (Mw égal à 1340 g/mol), l’INDOPOL H-1500 (Mw égal à 2160 g/mol) commercialisés ou fabriqués par la société AMOCO,
- les polyisobutylènes hydrogénés, tels que le Parléam ® commercialisé par la société NIPPON OIL FATS CORPORATION, le PANALANE H-300 E commercialisé ou fabriqué par la société AMOCO (Mw égal à 1340 g/mol), le VISEAL 20000 commercialisé ou fabriqué par la société SYNTEAL (Mw égal à 6000 g/mol), le REWOPAL PIB 1000 commercialisé ou fabriqué par la société WITCO (Mw égal à 1000 g/mol),
- les copolymères décène/butène, les copolymères polybutène/polyisobutène notamment l’Indopol L-14,
- les polydécènes et les polydécènes hydrogénés, tels que le PURESYN 10 (Mw égal à 723 g/mol), le PURESYN 150 (Mw égal à 9200 g/mol) commercialisés ou fabriqués par la société MOBIL CHEMICALS,
A. Effet d’un extrait d’algue du genre Ulva (perméat) sur la viabilité cellulaire de macrophages Raw 264,7 en culture :
Les cellules sont cultivées dans un milieu Dulbecco’s ModifiedEagle Medium (DMEM) (PAN Biotech, Dutscher) supplémenté par 10% (v/v) de sérum de veau fœtal (PAN Biotech, Dutscher) et 1% (v/v) d’une solution antibiotique (10,000 U/ml de pénicilline, 10 mg/ml de streptomycine) (PAN Biotech, Dutscher). Ce milieu, ci-après dénommé « milieu complet », est stérilisé par filtration sur 0,22 μm. Les cellules sont cultivées dans un incubateur à température contrôlée de 37°C, avec 5% de CO 2 , sous atmosphère humide, dans des flasques ventilées de 75 cm 2 (BD Biosciences), et entretenues par arrachage mécanique avec scrapeur (Sarstedt). Le milieu de culture est renouvelé tous les 2 ou 3 jours. Toutes les manipulations sont effectuées sous un poste de sécurité microbiologique de classe 2. Pour les expériences, les cellules sont utilisées entre les 11 ème et 16 ème passages.
L’effet de l’extrait d’algue du genre Ulva de type perméat (fraction P) sur la viabilité cellulaire est déterminé via la conversion enzymatique du MTT (bromure de 3-(4,5-diméthylthiazol-2-yl)-2,5-diphényltétrazolium) (Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983 Dec 16;65(1–2):55–63). Ce test repose sur la réduction du sel de tétrazolium par la succinate déshydrogènase mitochondriale en cristaux de Formazan. Les cellules sont ensemencées dans des microplaques 96 puits stériles (BD Biosciences), à une concentration de 5x10 4 cellules/ml dans un volume de 100 µl de milieu complet. Après 24 h d’incubation, le milieu complet est remplacé par 100 µl de milieu complet contenant la fraction P à différentes concentrations (comprises entre 0,01 et 500 µg/ml), ou de la dexaméthasone à 1 µM (composé médicamenteux anti-inflammatoire, utilisé comme témoin positif. Un témoin négatif contenant uniquement du milieu complet est également utilisé. Après 24 h d’exposition, 25 µl d’une solution de MTT à 5 mg/ml dans le PBS sont ajoutés dans chaque puits, lesquels sont alors incubés pendant 4 h dans l’étuve de culture. Le milieu est ensuite retiré puis 200 µl de DMSO (diméthyl-sulfoxide) sont ajoutés dans chaque puits afin de solubiliser les cristaux de Formazan formés. Après 10 min d’incubation à température ambiante, l’absorbance à 550 nm est mesurée à l’aide d’un lecteur de microplaque Fluostar Omega (BMG LABTECH).
La viabilité cellulaire est déterminée selon la formule suivante :
La figure 1A montre l’impact de la fraction P sur la viabilité des macrophages Raw 264,7, comparée aux conditions contrôles, après 24h d’exposition. La figure 1B montre la même expérience en présence de lipopolysaccharide (LPS) de salmonelle à 1 µg/ml (LPS O111, référence L2630, Merck), après 6 h de pré-incubation avec la fraction P à différentes concentrations. Dans les deux cas, l’effet d’un anti-inflammatoire de référence utilisé en tant que témoin positif, la dexaméthasone (1 µM), est également comparé. Les résultats obtenus démontrent que ni la fraction P, quelle que soit sa concentration, ni la dexaméthasone à 1 µM ne présentent d’effet significatif sur la viabilité cellulaire des macrophages Raw 264,7, qu’ils soient cultivés en présence de LPS ou non.
B. Effet d’un extrait d’algue du genre Ulva (perméat) sur la sécrétion d’oxyde nitrique (NO) par des macrophages Raw 264,7 en culture, en conditions basales ou pro-inflammatoires
L’oxyde nitrique (NO) est un médiateur central du processus inflammatoire, qui régule l'activite, la croissance et la mort de nombreux types de cellules immunitaires et inflammatoires (Grisham MB, Jourd’Heuil D, Wink DA. Nitric oxide. I. Physiological chemistry of nitric oxide and its metabolites:implications in inflammation. Am J Physiol. 1999 Feb;276(2):G315-321, Lee M, Rey K, Besler K, Wang C, Choy J. Immunobiology of Nitric Oxide and Regulation of Inducible Nitric Oxide Synthase. Results Probl Cell Differ. 2017;62:181–207). Le dosage du NO peut être réalisé à partir des surnageants de culture des macrophages RAW 264.7 selon le protocole décrit par Li et Shah (Li S, Shah NP. Characterization, Anti-Inflammatory and Antiproliferative Activities of Natural and Sulfonated Exo-Polysaccharides from Streptococcus thermophilus ASCC 1275. Journal of Food Science. 2016;81(5):M1167–76), qui implique la réaction du réactif de Griess avec le NO, donnant lieu à la formation d’un chromophore stable absorbant à 540 nm.
Les cellules et les conditions de culture sont les mêmes que celles décrites dans l’exemple 2, partie A. Les cellules sont ensemencées dans des microplaques 96 puits stériles (BD Biosciences), à raison de 1,5.10 6 cellules/ml, dans du milieu DMEM complet. Après 24 h d’incubation, le milieu initial est remplacé par 100 µl de milieu complet contenant la fraction P à différentes concentrations (comprises entre 0,01 et 100 µg/ml), ou de la dexaméthasone à 1 µM (composé anti-inflammatoire de référence utilisé comme témoin positif), avant à nouveau 6 h d’incubation. Un témoin négatif contenant uniquement du milieu complet est également réalisé. Pour évaluer les effets anti-inflammatoires de l’extrait d’algue du genre Ulva de type perméat (fraction P), la même expérience est menée en parallèle, cette fois avec 6 h de prétraitement en présence de perméat à diverses concentrations, ou de dexaméthasone à 1 µM, suivi d’une incubation en présence de lipopolysaccharide (LPS) de salmonelle à 1 µg/ml (LPS O111, référence L2630, Merck) durant 18 h.
Le kit « Griess Reagent Kit for Nitrite Determination » (G-7921, Invitrogen™, Thermo Fischer Scientific), est utilisé afin de doser la concentration en NO dans les surnageants de culture cellulaire, selon le protocole donné par le fournisseur. 150 µl de surnageant cellulaire sont prélevés pour être dosés à l’aide d’un volume équivalent de réactif de Griess. Après incubation à température ambiante pendant 30 min, l’absorbance est mesurée à 540 nm à l’aide d’un lecteur de microplaque Fluostar Omega (BMG LABTECH).
La montre l’effet de la fraction P sur la sécrétion de NO dans le milieu de culture en conditions basales (A) ou inflammatoires (B). Une augmentation de la sécrétion de NO par rapport aux conditions contrôles est observée en présence de LPS (contrôle positif), ainsi que pour les deux concentrations les plus importantes en fraction P (10 et 100 µg/ml) (figure 2A).
Au contraire, la fraction P induit une diminution très significative de la production de NO en présence de LPS (figure 2B), la concentration de NO dans le surnageant de culture étant divisée par deux à la concentration de 1 µg/ml et par environ 1,5 aux concentrations de 0,01 et 0,1 g/ml, par rapport aux conditions contrôles inflammatoires impliquant le LPS seul. Ces résultats indiquent que la fraction P est très fortement anti-inflammatoire car elle induit une réduction de la sécrétion de NO proche de celle induite par la dexaméthasone, à très faible concentration.
C. Effet d’un extrait d’algue du genre Ulva (perméat) sur l’expression de protéines clés impliquées dans les voies de signalisation liées à l’inflammation provoquée par le LPS, par des macrophages Raw 264,7 en culture
L’évaluation de la modulation par l’extrait d’algue du genre Ulva de type perméat (fraction P) de voies de signalisation protéiques impliquées dans l’inflammation, vient compléter et préciser celle de la sécrétion d’oxyde nitrique par les macrophages Raw 264,7 en culture. Celle-ci est réalisée par analyse Western Blot de biomarqueurs protéiques impliqués dans le processus inflammatoire : NLRP-3 et iNOS. NLRP-3, aussi dénommé inflammasome, appartient à une classe de complexes protéiques cytoplasmiques (NLRP) qui modulent l’activation des médiateurs inflammatoires. NLRP-3 joue un rôle pivot parmi la classe des NLRP, et est activé après stimulation par des facteurs microbiens et non microbiens tels que des toxines bactériennes, des micro-particules ou des LPS. Il promeut l’expression, la maturation et la sécrétion d’une multitude de cytokines pro-inflammatoires (Wang Z, Zhang S, Xiao Y, Zhang W, Wu S, Qin T, et al. NLRP3 Inflammasome and Inflammatory Diseases. Oxid Med Cell Longev. 2020 Feb 17;2020:4063562). L’oxyde nitrique synthase inductible (iNOS) catalyse la synthèse de l’oxyde nitrique (NO), qui est un médiateur cle de l’inflammation. Le LPS, l’interféron gamma (IFN-γ), le TNF-α et l'IL-1β peuvent induire l'expression de l’iNOS. (Lee M, Rey K, Besler K, Wang C, Choy J. Immunobiology of Nitric Oxide and Regulation of Inducible Nitric Oxide Synthase. Results Probl Cell Differ. 2017;62:181–207).
La méthode Western Blot est un procédé d’analyse semi-quantitative d’expression des protéines présentes dans les cellules. Les cellules et les conditions de culture sont les mêmes que celles décrites dans l’exemple 2, partie A. Les cellules Raw 264,7 sont ensemencées dans des microplaques 6 puits stériles (BD Biosciences), à 1x10 6 cellules/ml, dans 1 ml de milieu DMEM complet. Après 24 h d’incubation, le milieu initial est remplacé par 1 ml de milieu complet contenant la fraction P à différentes concentrations ou de la dexaméthasone à 1 µM (composé anti-inflammatoire de référence utilisé comme témoin positif), avant à nouveau 6 h d’incubation. Un témoin négatif contenant uniquement du milieu complet est également réalisé. Le LPS à 1 µg/ml est alors ajouté dans tous les puits, excepté celui correspondant aux conditions contrôles, puis l’incubation est poursuivie pendant 18 h. Le surnageant cellulaire est éliminé puis un lysat cellulaire est préparé dans le tampon de lyse (RIPA, Thermo Fisher Scientific) supplémenté avec un inhibiteur de phosphatase (Cell Signaling). Le lysat cellulaire est centrifugé durant 5 min à 10000 g, à 4°C. La concentration protéique dans le surnageant est ensuite obtenue par application de la méthode de Smith, à l’acide bicinchoninique (BCA), selon le protocole donné dans l’exemple 1. Une quantité équivalente de protéines pour chaque échantillon (25 µg) est mélangée avec du tampon de charge (Bio-Rad) et du β-mercaptoethanol (Merck) de manière à atteindre un volume final de 50 µl. Les échantillons sont alors chauffés à 95 °C pendant 5 min puis 10 µl sont déposés, après retour après température ambiante, dans des gels à différentes concentrations de polyacrylamide en fonction du poids moléculaire de la protéine étudiée. Des marqueurs de taille sont également ajoutés dans le gel (Seeblue® plus 2, Thermo Fisher Scientific). La migration est effectuée à 150 V pendant 45 min dans un tampon de migration. Les protéines sont ensuite transférées du gel à une membrane de nitrocellulose (Bio-Rad), à 100 V pendant 7 min dans un tampon de transfert grâce au procédé de transfert semi-liquide (Bio-Rad). La membrane est ensuite bloquée pendant 1h30 à température ambiante, à l’aide d’une solution de blocage contenant 5% d’albumine de sérum bovin (ASB) dans du TBS-Tween 20 (Merck). La membrane est incubée en présence de l’anticorps primaire, durant une nuit à 4°C, puis en présence de l’anticorps secondaire couplé à la peroxydase de raifort, durant 1h30 à température ambiante (15).
Dénomination de l’anticorps Dilution Fournisseur NLRP3 (D4D8T) Rabbit mAb 1/500 Cell Signaling iNOS Rabbit Polyclonal antibody 1/1000 Proteintech β-Actin (13E5) Rabbit mAb 1/1000 Cell Signaling HRP secondary IgG antibody 1/10000 Thermo Fisher Scientific
Tableau 3 : Anticorps primaires et secondaire utilisés pour l’analyse Western Blot des voies de signalisation impliquées dans l’inflammation induite par le LPS.
La et la sont des vues, respectivement de dessus et en coupe selon le plan AA de la , schématiques et partielles, d’un exemple d’un commutateur 100 à base d’un matériau à changement de phase selon un mode de réalisation.
Dans l’exemple représenté, le commutateur 100 est formé dans et sur un substrat 101, par exemple une plaquette ou un morceau de plaquette en un matériau semiconducteur, par exemple le silicium.
De façon optionnelle, le substrat 101 est revêtu, sur l’une de ses faces (sa face supérieure, dans l’orientation de la ), d’une couche électriquement isolante 103. À titre d’exemple, la couche isolante 103 est en dioxyde de silicium et présente une épaisseur de l’ordre de 500 nm.
Dans l’exemple représenté, le commutateur 100 comporte cinq électrodes 105 coplanaires situées sur et en contact avec la face de la couche isolante 103 opposée au substrat 101. Les deux électrodes 105 les plus distantes l’une de l’autre (appelées électrodes radiofréquence), situées respectivement aux extrémités gauche et droite du commutateur 100, dans l’orientation des figures 1A et 1B, sont par exemple des électrodes de conduction destinées à être connectées à un circuit de communication radiofréquence (non détaillé). Dans cet exemple, les trois autres électrodes 105, interposées latéralement entre les deux électrodes 105 de conduction, sont par exemple des électrodes intermédiaires destinées à n’être reliées ou connectées à aucun autre élément conducteur et sont par exemple chacune à un potentiel flottant.
Les électrodes 105 sont par exemple en un matériau conducteur, par exemple un métal, par exemple le cuivre ou l’aluminium, ou en un alliage métallique. Chaque électrode 105 peut présenter une structure monocouche ou une structure multicouche comprenant par exemple, depuis la face supérieure de la couche isolante 103, une couche en titane présentant une épaisseur de l’ordre de 10 nm, une couche en un alliage de cuivre et d’aluminium présentant une épaisseur de l’ordre de 440 nm, une autre couche en titane présentant une épaisseur de l’ordre de 10 nm et une couche en nitrure de titane présentant une épaisseur de l’ordre de 100 nm. À titre d’exemple, chaque électrode 105 présente, en vue de dessus, une forme sensiblement rectangulaire.
Dans l’exemple illustré en figures 1A et 1B, une autre couche électriquement isolante 107 revêt des parties de la face supérieure de la couche isolante 103 non revêtues par les électrodes 105. Le matériau de la couche isolante 107 revêt les faces latérales des électrodes 105 et comble les espaces libres s’étendant latéralement entre les électrodes 105. La couche 107 isole électriquement les électrodes 105 entre elles. Dans l’exemple représenté, la couche isolante 107 affleure la face supérieure des électrodes 105. À titre d’exemple, la couche isolante 107 est en le même matériau que la couche isolante 103, par exemple en dioxyde de silicium.
Dans l’exemple représenté, le commutateur 100 comporte en outre quatre régions 109 en un matériau à changement de phase. Dans l’exemple illustré, les régions 109 en ledit matériau à changement de phase sont disjointes et relient chacune deux électrodes 105 adjacentes du commutateur 100. Plus précisément, dans l’exemple représenté, une première région 109 relie une première électrode 105 (par exemple l’électrode 105 de conduction de gauche, dans l’orientation des figures 1A et 1B) à une deuxième électrode 105 adjacente à la première électrode 105 (l’électrode 105 intermédiaire la plus proche de la première électrode 105, dans cet exemple), et une deuxième région 109, différente de la première région 109, relie la deuxième électrode 105 à une troisième électrode 105 adjacente à la deuxième électrode 105 (l’électrode 105 intermédiaire la plus proche de la deuxième électrode 105, dans cet exemple). En outre, dans cet exemple, une troisième région 109, différente des première et deuxième régions 109, relie la troisième électrode 105 à une quatrième électrode 105 adjacente à la troisième électrode 105 (l’électrode 105 intermédiaire la plus proche de la troisième électrode 105, dans cet exemple), et une quatrième région 109, différente des première, deuxième et troisième régions 109, relie la quatrième électrode 105 à une cinquième électrode 105 adjacente à la quatrième électrode 105 (l’électrode 105 de conduction de droite, dans cet exemple). Chaque région 109 en matériau à changement de phase revêt la face supérieure d’une partie de la couche 107 s’étendant latéralement entre les deux électrodes 105 adjacentes qu’elle relie, et se prolonge sur et en contact avec une partie de la face supérieure de chacune desdites électrodes 105. Chaque région 109 en matériau à changement de phase présente par exemple, en vue de dessus, une forme sensiblement rectangulaire.
Dans l’exemple illustré, les régions 109 en matériau à changement de phase du commutateur 100 présentent, en vue de dessus, des aires sensiblement identiques, aux dispersions de fabrication près. À titre d’exemple, chaque région 109 en matériau à changement de phase présente une longueur de l’ordre d’un ou plusieurs micromètres, par exemple égale à environ 1 µm, la longueur de chaque région 109 correspondant à une dimension latérale de ladite région 109 mesurée le long de la direction de conduction du commutateur 100. Dans l’exemple représenté, les régions 109 en matériau à changement de phase présentent en outre une même largeur, par exemple de l’ordre de plusieurs micromètres ou plusieurs dizaines de micromètres, la largeur de chaque région 109 correspondant à une dimension latérale de ladite région 109 mesurée le long d’une direction orthogonale à la direction de conduction du commutateur 100 (le long d’une direction orthogonale au plan de coupe de la ). Chaque région 109 en matériau à changement de phase présente par exemple une épaisseur comprise entre 100 et 300 nm.