INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Une fois la fréquence et la phase de l’oscillateur DCO asservie, le procédé comprend une étape de communication dans laquelle l’objet CE communique avec le lecteur RD.
Un tel procédé permet d’initialiser la fréquence de l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase de l’objet CE lorsqu’un lecteur RD à sondage rapide est détecté. Cette initialisation permet de définir la fréquence de l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL à partir d’une horloge interne CLKXO de l’objet. Ainsi, la boucle à verrouillage de phase PLL est préparée pour que l’objet CE puisse émettre plus rapidement une réponse au lecteur lorsque celui-ci émet une nouvelle requête de réponse pour sonder la présence d’une carte. En effet, lors de la détection du nouveau champ, l’objet CE peut seulement ajuster la phase du signal généré sur celle du champ généré par le lecteur, car la fréquence de signal généré par l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL est déjà celle souhaitée. En particulier, la calibration de fréquence de l’oscillateur peut prendre entre 200 µs (microsecondes) et 300 µs alors que l’ajustement de la phase de l’oscillateur peut prendre simplement entre 10 µset 20 µs. En répondant au lecteur RD dans la période de sondage du lecteur, l’objet peut communiquer avec le lecteur.
Un tel procédé permet donc à l’objet CE de pouvoir communiquer avec un lecteur RD même si le temps d’initialisation de sa boucle à verrouillage de phase PLL est plus long que la période de sondage du lecteur RD.
La figure 3 illustre un premier mode de réalisation d’un système de contrôle de l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL permettant d’asservir l’oscillateur DCO à partir d’une horloge interne lorsque le champ détecté provient d’un lecteur à sondage rapide RD. En particulier, l’objet CE est configuré pour contrôler la fréquence de l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL avec une valeur de contrôle dco_cal. L’oscillateur DCO présente une sortie connectée à une première entrée d’un compteur-diviseur CDIV1. Le compteur-diviseur CDIV1 comporte également une deuxième entrée configurée pour recevoir un signal d’horloge de fréquence Fref. Ce signal d’horloge est généré par une horloge interne de l’objet CE. Le compteur diviseur CDIV1 est configuré pour générer un signal .
L’objet CE est configuré pour mettre en œuvre une machine avec un nombre fini d’états. Cette machine avec un nombre fini d’états permet de définir la valeur de contrôle dco_cal. En particulier, la illustre un procédé pouvant être mis en œuvre par la machine avec un nombre fini d’états pour contrôler l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL. En particulier, le procédé comporte une étape 40 dans laquelle le système de contrôle est en mode de consommation réduite et initialise le contrôle de la calibration de l'oscillateur dco_cal à sa valeur minimale. Le procédé comporte ensuite un test 41 qui permet de démarrer la calibration de la boucle à verrouillage de phase requise à l’étape 22 précédemment décrite.
Le procédé comporte ensuite une étape 42 de mesure de la fréquence en sortie de l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL.
Puis, le procédé comporte un test 43 dans lequel la fréquence mesurée en sortie de l’oscillateur DCO est comparée à la fréquence souhaitée, par exemple de l’ordre de 64*13.56MHz. Si la fréquence mesurée est inférieure à la fréquence souhaitée, alors le procédé comprend une étape 44 dans laquelle la valeur de contrôle est incrémentée de façon à augmenter la fréquence de l’oscillateur DCO. Suite à l’incrémentation, une mesure de la fréquence est de nouveau effectuée afin de vérifier si la fréquence de l’oscillateur a atteint sa valeur.
Si la fréquence de l’oscillateur atteint la fréquence souhaitée, alors la calibration se termine à l’étape 45.
La illustre un deuxième mode de réalisation d’un système de contrôle de l’oscillateur DCO de la boucle à verrouillage de phase PLL permettant d’asservir l’oscillateur DCO à partir d’une horloge interne lorsque le champ détecté provient d’un lecteur à sondage rapide RD.
Le système de contrôle est une boucle à verrouillage de fréquence FLL configurée pour recevoir en entrée une valeur FWW_TYP. Cette valeur FWW_TYP peut notamment être stockée dans un registre. La valeur FWW_TYP est une valeur prédéfinie égale à , où correspond à la fréquence souhaitée pour l’oscillateur, par exemple 64*13,56MHz, correspond à la fréquence de l’horloge interne.
Le système de contrôle est réalisé par une boucle à verrouillage de fréquence FLL contrôlant le même oscillateur DCO que la boucle à verrouillage de phase. La boucle à verrouillage de fréquence FLL comporte un compteur-diviseur CDIV2. Le compteur-diviseur CDIV2 comporte une première entrée connectée à la sortie de l’oscillateur DCO, et une deuxième entrée configurée pour recevoir le signal d’horloge de fréquence de référence Fref généré par l’horloge interne CLKXO. Le compteur diviseur CDIV2 est configuré pour générer un signal . La boucle à verrouillage de fréquence FLL comporte également un comparateur CMP2 présentant une première entrée non inverseuse configurée pour recevoir la valeur FWW_TYP, et une deuxième entrée configurée pour recevoir le signal .La boucle à verrouillage de fréquence FLL comporte également un filtre de boucle FLL_f présentant une entrée connectée à la sortie du comparateur, et une sortie connectée à l’oscillateur DCO.
La illustre la boucle à verrouillage de fréquence du système de contrôle intégrée avec la boucle à verrouillage de phase pour contrôler le même oscillateur DCO. Dans cet exemple, l'oscillateur DCO est configuré pour sortir un signal d'oscillateur de sortie ayant une fréquence égale à N*13,56 MHZ. N est de préférence un nombre entier égal ou supérieur à 1, par exemple égal à 64. N pourrait être également fractionnaire avantageusement en association avec un convertisseur delta sigma pour récupérer la valeur moyenne.
La boucle à verrouillage de phase PLL comprend un filtre de boucle PLL_f, l'oscillateur commandé DCO, et un premier compteur-diviseur CNT1 recevant d'une part le signal de sortie de l’oscillateur et d'autre part le signal d'horloge CLKEX extrait du champ du lecteur.
La sortie du premier compteur-diviseur CDIV1 est rebouclée via un premier comparateur CMP1. Par ailleurs, éventuellement, un additionneur ADD1 permet d'ajouter un déphasage ϕ offset , représentatif du déphasage provoqué par les moyens disposés entre l'antenne ANTC et la boucle à verrouillage de phase PLL.
La boucle à verrouillage de fréquence FLL comprend ici comme décrit précédemment le filtre de boucle FLL_f, l'oscillateur DCO, le compteur-diviseur CDIV2 recevant à une extrémité le signal de sortie de l’oscillateur DCO et à une autre extrémité un signal d'horloge de référence CLKXO à la fréquence de référence Fref délivré par l’horloge interne CLKXO de l’objet CE.
Des exemples d'intermédiaires de teinture primaire incluent les ortho- ou para-aminophénols, les ortho- ou para-phénylènediamines, les bases doubles, les bases hétérocycliques et leurs sels d’addition d’acide.
Les para-phénylènediamines qui peuvent être utilisées comprennent des composés de formule suivante (XIV) et leurs sels d’addition avec un acide : (XIV)
R 8 représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle en C 1 -C 4 , un radical monohydroxy(alkyle en C 1 - 4 ), un radical polyhydroxy(alkyle en C 2 - 4 ), un radical alcoxy(en C 1 -C 4 )alkyle( en C 1 - 4 ), un radical alkyle en C 1 - 4 substitué par un groupe azoté, un radical phényle, ou un radical 4'﻿-aminophényle ;
R 9 représente un atome d’hydrogène, un radical alkyle en C 1 -C 4 , un radical monohydroxyalkyle en C 1 -C 4 , un radical polyhydroxyalkyle en C 2 -C 4 , un radical (C 1 -C 4 )alcoxy(C 1 -C 4 ) alkyle ou un radical en C 1 -C 4 substitué par un groupe azoté ;
R 8 et R 9 peuvent également former, avec l'atome d'azote qui les porte, un hétérocycle azoté à 5 ou 6 chaînons facultativement substitué par un ou plusieurs groupes alkyle, hydroxyle ou uréido ;
R 10 représente un atome d’hydrogène, un atome halogène, tel qu’un atome de chlore, un radical alkyle en C 1 -C 4 , un radical sulfo, un radical carboxyle, un radical monohydroxyalkyle en C 1 -C 4 , un radical hydroxyalcoxy en C 1 -C 4 , un radical acétylaminoalcoxy en C 1 -C 4 , un radical mésylaminoalcoxy en C 1 -C 4 ou des radicaux carbamoylaminoalcoxy en C 1 -C 4 ;
R 11 représente un atome d'hydrogène, un atome d'halogène ou un radical alkyle en C 1 -C 4 .
Les groupes azotés dans la formule ci-dessus (XIV) incluent les radicaux amino, mono(C 1 -C 4 )alkylamino, di(C 1 -C 4 )alkylamino, tri(C 1 -C 4 )alkylamino, monohydroxy(C 1 -C 4 )alkylamino, imidazolinium et ammonium.
Les para-phénylènediamines de formule (XIV) ci-dessus incluent la para-phénylènediamine, la para-toluylenediamine, la 2-chloro-para-phénylènediamine, la 2,3-diméthyl-para-phénylènediamine, la 2,6-diméthyl-para-phénylènediamine, la 2,6-diéthyl-para-phénylènediamine, la 2,5-diméthyl-para-phénylènediamine, la N,N-diméthyl-para-phénylènediamine, la N,N-diéthyl-para-phénylènediamine, la N,N-dipropyl-para-phénylènediamine, la 4-amino-N,N-diéthyl-3-méthylaniline, la N,N-bis(β-hydroxyéthyl)-para-phénylènediamine, la 4-N,N-bis(β-hydroxyéthyl)amino-2-méthylaniline, la 4-N,N-bis(β-hydroxyéthyl)amino-2-chloroaniline, la 2-(β-hydroxyéthyl)-para-phénylènediamine, la 2-fluoro-para-phénylènediamine, la 2-isopropyl-para-phénylènediamine, la N-(β-hydroxypropyl)-para-phénylènediamine, la 2-hydroxyméthyl-para-phénylènediamine, la N,N-diméthyl-3-méthyl-para-phénylènediamine, la N-éthyl-N-(β-hydroxyéthyl)-para-phénylènediamine, la N-(β,γ-dihydroxypropyl)-para-phénylènediamine, la N-(4'-aminophényl)-para-phénylènediamine, la N-phényl-para-phénylènediamine, la 2-(β-hydroxyéthyloxy)-para-phénylènediamine, la 2-(β-acétylaminoéthyloxy)-para-phénylènediamine, la N-(β-méthoxyéthyl)-para-phénylènediamine, la 2-méthyl-1-N-(β-hydroxyéthyl)-para-phénylènediamine et leurs sels d'addition avec un acide.
Dans un mode de réalisation, les paraphénylènediamines de formule (XIV) ci-dessus comprennent la para-phénylènediamine, la para-toluylènediamine, la 2-isopropyl-para-phénylènediamine, la 2-(β-hydroxyéthyl)-para-phénylènediamine, la 2-(β-hydroxyéthyloxy)-para-phénylènediamine, la 2,6-diméthyl-para-phénylènediamine, la 2,6-diéthyl-para-phénylènediamine, la 2,3-diméthyl-para-phénylènediamine, la N,N-bis(β-hydroxyéthyl)-para-phénylènediamine, la 2-chloro-para-phénylènediamine et leurs sels d’addition avec un acide.
Les ortho-phénylènediamines comprennent la N1-(2-hydroxyéthyl)-4-nitro-o-phénylènediamine, la 4-méthyl-o-phénylènediamine et la 4-nitro-o-phénylènediamine et leurs sels d’addition d’acide.
Tel qu’il est utilisé ici, le terme « bases doubles » désigne les composés comprenant au moins deux noyaux aromatiques comportant au moins l'un des groupes amino et hydroxyle.
Les exemples incluent les composés correspondant à la formule (XV) suivante et leurs sels d’addition avec un acide : (XV)
Les résultats sont exprimés en pourcentage moyen comparé au témoin non traité standardisé à 100%. L’analyse statistique a été réalisée versus le témoin non traité après vérification de la normalité de la distribution des valeurs (Shapiro-Wilk test) avec le test t de Student. Le seuil de significativité est de 5%.
Les Fig. 3A-3B illustrent la présence plus importante de fibres de collagène organisées dans la matrice extracellulaire du derme. On observe une intensité du signal SHG beaucoup plus importante sur Fig. 3B mettant en évidence une plus grande densité de fibres de collagène dans la matrice extracellulaire lorsque le peptide selon l’invention a été présent. L’analyse du volume occupé par le signal SHG montre également une augmentation de la quantité de ces fibres dans la matrice extracellulaire de +68% en présence du peptide selon l’invention par rapport au témoin non traité.
Exemple 4 : Evaluation des propriétés du peptide selon l’invention sur la flexibilité du derme
Un modèle de peau reconstruite en 3D (Mimeskin) a été utilisé pour évaluer la performance du peptide selon l’invention obtenu par fermentation d’une levure recombinante comme décrit dans l’exemple 1.C). 2x10 6 fibroblastes ont été ensemencés sur un support dermique de culture contenant un mélange de collagène, glycosaminoglycanes (GAG) et chitosan (Mimedisc) et cultivés en immersion à 37°C avec 5% de CO 2 pendant 57 jours pour la phase de construction du derme, puis 10 6 kératinocytes ont été ensemencés et cultivés pendant 7 jours pour la phase de prolifération des kératinocytes. Ensuite, les modèles ont été placés à l’interface air-liquide pour la phase de différentiation des kératinocytes, et la culture a été poursuivie pendant 14 jours. Les cultures ont été traités ou non (témoin non traité) avec le peptide selon l’invention en solution aqueuse à la dose de 0,8 μg/mL ou 3 μg/mL à partir du jour 2 et tous les 2 jours sauf lorsque les cellules ont été ensemencées. Chaque condition a été réalisée en n =4 (4 réplicats). Sur chaque condition et chaque réplicat, 3 coupes histologiques ont été réalisées à l’aide d’un cryostat, et des mesures du module élastique ont été réalisées par microscopie de force atomique (Atomic Force Microscopy, AFM) sur le derme avec une sonde conique de 0,5 N/m. Les résultats sont exprimés en valeur moyenne sur les différentes cryosections. Le module élastique (ou module de Young) est la quantité qui mesure la résistance d’un matériau à la déformation élastique lorsqu’une force lui est appliquée. Plus le module élastique du matériau est élevé, plus il est rigide. Inversement, plus il est bas, plus le matériau est flexible. Le test t de Student a été effectué et a montré des résultats significativement différents du résultat mesuré avec le modèle non traité (p<0,001) pour les deux doses testées. Les valeurs du module de Young en absence (non traité) ou en présente de peptide selon l’invention sont rassemblés dans le tableau 1 ci-dessous.
Conditions Moyenne (en Pascal) Non traité 15,1 KPa Peptide 0,8 µg/ml 7,7 KPa Peptide à 3 µg/ml 3,4 KPa
Les résultats montrent une amélioration de la flexibilité du derme.
Exemple 5 : Evaluation des propriétés du peptide selon l’invention sur la fibuline-5 et sur la MFAP4
Les fibres élastiques matures et fonctionnelles dans la MEC nécessitent l’assemblage de diverses glycoprotéines dont la fibuline-5 et la MFAP4 (Microfibril Associated Protein 4). Un essai sur culture de fibroblastes dermiques humains a été utilisé pour évaluer la performance du peptide selon l’invention obtenu par synthèse comme décrit dans l’exemple 1.B) sur la synthèse de ces glycoprotéines.
Des fibroblastes dermiques humains ont été ensemencés à 5x10 4 cellules/cm² et cultivés avec un milieu défini (FGM) en immersion à 37°C avec 5% de CO 2 jusqu’à confluence. Lorsque la confluence a été atteinte, les cellules ont été incubées pendant 48h en présence ou absence (témoin non traité) du peptide selon l’invention (exemple 1.B) en solution aqueuse à la dose de 0,1 μg/mL et 1 μg/mL. Ensuite, les cellules ont été récupérée et lysées pour mesurer le taux de fibuline-5 dans le lysat. Le milieu de culture a été récupéré pour y mesurer le taux de MFAP4. La concentration dans les échantillons a été déterminée par un test BCA afin d’ajuster le dépôt de chaque échantillon à la même concentration en protéines pour l’analyse en western blot. La fibuline-5 et la MFAP4 ont été analysées par électrophorèse capillaire après incubation avec un anticorps primaire, immunomarquage avec un anticorps secondaire at mesure de la chimiluminescence. Chaque condition a été réalisée en n =4 à 6 (4 à 6 réplicats). Les résultats sont exprimés en pourcentage moyen comparé au témoin non traité standardisé à 100%. L’analyse statistique a été réalisée versus le témoin non traité après vérification de la normalité de la distribution des valeurs (Shapiro-Wilk test) avec le test One Way ANOVA (méthode de Dunnett). Le seuil de significativité est de 5%.
Par rapport au témoin non traité, les taux de fibuline-5 et de MFAP4 ont été augmentés respectivement de +22% et de +38% à la dose de 0,1 µg/ml du peptide. Le peptide selon l’invention permet donc d’augmenter la teneur en fibuline-5 et de MFAP4 synthétisé par les fibroblastes et donc de contribuer à l’organisation des microfibrilles élastiques.
Exemple 6. Evaluation des propriétés du peptide selon l’invention sur la densité du derme
Une population de 28 femmes âgées de 45 à 65 ans avec une peau de type I, II ou III selon l’échelle de Fitzpatrick s’est appliquée en hémi-visage une crème sous forme d’émulsion comprenant une concentration finale en poids du peptide selon l’exemple 1.C) de 0,1% (p/p) par rapport au poids total de la formulation (Formulation exemple 7.c), ou sans ledit peptide remplacé par de l’eau (placebo), à raison de 2 applications par jour et ce, pendant 2 mois. L’évaluation de la densité totale du derme a été réalisée sur les joues à l’aide d’un appareil appelé DUB Skin Scanner qui utilise le principe de l’échogénicité des ultrasons pour mesurer la densité de réseau de fibres de la matrice extracellulaire du derme. L’efficacité de la composition contenant le peptide selon l’exemple 1.C) a été comparée avec celle de l’émulsion dite placébo.
Les mesures de la densité totale du derme ont été réalisées au début de l’étude (D0) après un mois d’application (D28) et enfin après 2 mois d’application (D56). L’efficacité du peptide sur la densité totale du derme a été déterminée en comparant le % de variation après 28 et 56 jours d’application par rapport à D0 de la formulation contenant le peptide selon l’exemple 1.C) avec celui de la formule placébo. Les valeurs ont été exprimées en moyenne sur les volontaires analysés. L’analyse statistique a été réalisée après vérification de la normalité de la distribution des valeurs (Shapiro-Wilk test) avec le test t de Student. Le seuil de significativité est de 5% (p<0,05).
Après 28 et 56 jours, la densité totale du derme avec la formulation contenant le peptide selon l’exemple 1.C) a été augmentée de 4,9% (p>0,05) et de 12,9% (p<0,05) respectivement. Le peptide selon l’invention permet donc d’augmenter la densité du réseau de fibres dans la MEC.
Exemple 7 : Exemples de formulation Les proportions sont exprimées en % en poids total et les noms en majuscules correspondent aux noms INCI des ingrédients.
7.a)
- les phases B à G sont mélangées à 60°C, puis la phase H est ajoutée à une température < 40°C : on obtient alors la phase aqueuse, et
- les phases grasse et aqueuse sont mélangées grâce à un émulseur jusqu’à obtenir un mélange homogène.
Phase Ingrédient (INCI) CC1* (% p/p) (comparative) A DIMETHICONE 0,5 Acide stéarique 2 GLYCERYL STEARATE (and) PEG-100 STEARATE (Arlacel 165 de Croda) 1,5 POTASSIUM CETYL PHOSPHATE (Amphisol K de Givaudan) 1 ETHYLHEXYL TRIAZONE 1,5 CETYL ALCOOL 0,7 DROMETRIZOLE TRISILOXANE 2 BUTYL METHOXYDIBENZOYLMETHANE 1,5 OCTOCRYLENE 1,5 ETHYLHEXYL SALICYLATE 4,5 HYDROXYACETOPHENONE 0,5 TRIETHANOLAMINE 0,4 TOCOPHEROL 0,25 B Eau 3,4 GLYCERINE 9,15 PROPYLENE GLYCOL 4 TRISODIUM ETHYLENEDIAMINE DISUCCINATE 0,3 CAPRYLYL GLYCOL 0,3 TEREPHTHALYLIDENE DICAMPHOR SULFONIC ACID 12 TRIETHANOLAMINE 2,08 C Eau Qsp 100 D DIMETHICONE 5 CARBOMER 0.6 AMMONIUM POLYACRYLOYLDIMETHYL TAURATE (Hostacerin AMPS®) 0,4 E Eau 4 TROMETHAMINE 1,248 PHENYLBENZIMIDAZOLE SULFONIC ACID 2 F SILICA (and) TITANIUM DIOXIDE 6 KAOLIN 0,1 G LEONTOPODIUM ALPINUM CALLUS CULTURE EXTRACT 0,1 LEONTOPODIUM ALPINUM FLOWER/LEAF EXTRACT 0,5 H Ethanol 7
Exemple 2 : Préparation des compositions comparatives C C2*, CC 3 * et C C 4 *
On mélange les ingrédients suivants au Speedmixer à 3000 tr/min pendant 5 minutes pour obtenir les différentes compositions comparatives :
Ingrédient (INCI) CC2* (% p/p) (comparative) CC3* (% p/p) (comparative) CC4* (% p/p) (comparative) Composition CC1* de l’exemple 1 86,1 86,1 86,1 Eau Qsp 100 Qsp 100 Qsp 100 Isododécane - 6 6 Diisopropyl adipate - - 1,9
Exemple 3 : Préparation des compositions selon l’invention C5 et C6
Les compositions de l’invention C5 et C6 sont préparées par mélange des ingrédients suivants au Speedmixer à 3000 tr/min pendant 5 minutes :
Ingrédient (INCI) C5 (% p/p) (invention) C6 (% p/p) (invention) Composition CC1* de l’exemple 1 86,1 86,1 Eau Qsp 100 - Dispersion huileuse de particules de polymères d’acrylate de méthyle et de méthacrylate de stéaryle stabilisées par un agent stabilisant à groupe alkyle en C9-C22 12 12 Diisopropyl adipate - Qsp 100
Procédé de synthèse général :
Les deux filtres de boucle PLL_f et FLL_f sont ici des filtres qui ont une structure classique (intégrant typiquement des filtres stabilisateurs) et, afin d'éviter au maximum tout problème de stabilité, de préférence conçus de telle sorte que la fréquence de coupure de la boucle FLL soit supérieure à la fréquence de coupure de la boucle PLL. Ainsi les réponses temporelles des deux boucles PLL et FLL sont pilotées par la boucle PLL.
La sortie du compteur CDIV2 est rebouclée sur l'entrée du filtre de boucle FLL_f via et un comparateur CMP2.
Dans le cas présent, alors que la sortie du premier compteur CDIV1 délivre le déphasage entre le signal de sortie de l’oscillateur et le signal d’horloge CLEX extrait du champ du lecteur, une des bascules du compteur CDIV1 permet de délivrer le signal d'horloge DVCLK dont la fréquence est divisée par N, par exemple ici 64, par rapport à la fréquence du signal DCOS de manière à obtenir la fréquence de 13,56 MHz à ladite tolérance près.
Un commutateur est en outre placé entre le filtre de boucle PLL_f et le comparateur CMP2. Le commutateur comporte une première entrée ‘0’ configurée pour être connectée à la sortie du filtre de boucle PLL_f, et une deuxième entrée ‘1’ configurée pour recevoir la valeur FWW_TYP. Le commutateur comporte également une entrée configurée pour recevoir le signal de sélection start_on_dfll. Le commutateur présente une sortie connectée à l’entrée de la boucle à verrouillage de fréquence. Le signal en sortie du commutateur correspond ainsi à la valeur en sortie du filtre de boucle PLL_f lorsque la valeur du signal de sélection start_on_dfll est égale à 0 et à la valeur FWW_TYP lorsque la valeur du signal de sélection start_on_dfll est égale à 1.
Le commutateur est configuré pour permettre un fonctionnement uniquement de la boucle à verrouillage de fréquence en l’absence de champ du lecteur (la valeur du signal de sélection est alors égale à 1).
Le commutateur est configuré pour permettre un fonctionnement de la boucle à verrouillage de phase lorsque le nouveau champ magnétique de sondage du lecteur est détecté.