INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La méthode L’invention a enfin pour objet une méthode de réduction des dépôts de sédiments dans une composition de carburant marin liquide dont la teneur en soufre est inférieure ou égale à 0,50% en masse, par rapport à la masse totale de la composition, consistant à ajouter à ladite composition une résine alkylphénol-aldéhyde modifiée (2) telle que définie ci-avant.
EXEMPLES Exemple 1: S ynthèse d’une résine alkylphénol-aldéhyde modifiée
Étape 1 : Dans une première étape, une résine de condensation alkylphénol-aldéhyde a été préparée par condensation de para-nonylphénol et de formaldéhyde (par exemple selon le mode opératoire décrit dans EP857776). Cette résine présente une viscosité à 50°C comprise entre 1800 et 4800 mPa.s (viscosité mesurée à 50°C à l'aide d'un rhéomètre dynamique avec une vitesse de cisaillement de 10 s -1 sur la résine diluée avec 30% en masse de solvant aromatique (Solvesso 150 ®)).
Etape 2 : Dans une seconde étape, la résine alkylphénol-aldéhyde issue de la première étape a été modifiée par réaction de Mannich par ajout de 2 équivalents molaires de formaldéhyde et 2 équivalents molaires de dipropylènetriamine de suif, connue sous la dénomination N-(Tallowalkyl)dipropylènetriamine et commercialisée par exemple sous la dénomination Trinoram S®, par rapport à la résine alkylphénol- aldéhyde issue de la première étape.
Les caractéristiques de la résine obtenue à l’issue de l’étape 2 sont répertoriées dans le tableau 1 ci-dessous :
Exemple 2: Test de stabilité au stockage sur une composition de carburant marin de type VLSFO
Les essais ont été réalisés sur une composition de carburant marin de type VLSFO (de l’anglais « Very Low Sulfur Fuel Oil »), constituée à 70% en masse de résidu viscoréduit, auquel ont été ajoutées des bases dites fluxantes constituées d’une coupe de type gazole lourd et d’un distillat moyen. Cette composition de référence dénommée C0 présente les caractéristiques suivantes : -Teneur en soufre (ASTM D2622) : 0,492 % en masse ; - Densité à 15°C (ISO 12185) = 953,5 kg/m 3 ; - Viscosité à 50°C (ISO 3104) : 2 /s ; - Teneur en asphaltènes : 5.1% en masse.
La résine alkylphénol-aldéhyde modifiée décrite dans l’exemple 1 a été incorporée à des teneurs de 500 ppm en masse et de 1000 ppm en masse à la composition C0 de manière à obtenir les compositions respectives C1 (500 ppm de matière active de résine) et C2 (1000 ppm de matière active de résine).
La stabilité au stockage des trois compositions C0, C1 et C2 a été évaluée, immédiatement après préparation des compositions (c’est-à-dire à T=0) et après de 11 semaines de stockage à température ambiante (25°C) à l’abri de la lumière (à T=11 semaines).
La stabilité a été évaluée conformément aux méthodes de vieillissement décrites dans la norme ISO 10307-2, suivies de la filtration décrite dans la norme ISO 10307-1. Les deux méthodes de vieillissement utilisées sont résumées comme suit : - la méthode de mesure des sédiments totaux potentiels (dénommés TSP), selon la norme ISO 10307-2A : la composition subit un vieillissement thermique à 100°C pendant une durée de 24h avant d’être filtrée ; - la méthode de mesure des sédiments totaux accélérés (dénommés TSA), selon la norme ISO 10307-2B : la composition est mélangée avec du n-hexadécane (solvant dans lequel les asphaltènes sont insolubles et qui peut provoquer leur précipitation) à raison de 1ml pour 10g, puis subit un vieillissement thermique à 100°C pendant une durée de 1h avant d’être filtrée.
Les résultats obtenus à T=0, exprimés en termes de teneurs en sédiments conformément aux normes ISO 10307, sont détaillés dans le tableau 2 ci-dessous :
C0 référence C1 invention C2 invention TSP (teneur en % en masse) 0,15% 0,07% 0,02% TSA (teneur en % en masse) 0,27% 0,09% 0,05%
Les résultats obtenus à T=11 semaines, exprimés en termes de teneurs en sédiments conformément aux normes ISO 10307, sont détaillés dans le tableau 3 ci-dessous :
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’altPEP isolé tel que décrit précédemment, dans lequel ladite protéine est impliquée dans au moins un phénotype de plante choisi parmi : la taille, la forme, la surface, le volume, la masse et le nombre de feuilles ; la taille, la forme, la surface, le volume, la masse et le nombre de fleurs ; la taille de la tige (ou de la hampe florale) ; la biomasse racinaire ; le nombre, la longueur et le niveau de ramification des racines ; la précocité de la germination ; la précocité du bourgeonnement ; la précocité de l’induction florale (ou transition florale) ; la vigueur germinative et la durée de phase juvénile ; la durée de la floraison ; la résistance à un stress biotique ; la résistance à un stress abiotique ; et le nombre de cellules.
Dans l’invention, un altPEP peut être fusionné ou lié à une ou plusieurs molécules facilitant l’entrée de l’altPEP dans la cellule. Parmi ces molécules, on peut notamment citer des peptides et l’acide palmitique. Parmi ces molécules, on peut notamment citer des peptides pénétrants (Numata, K., et al. Library screening of cell-penetrating peptide for BY-2 cells, leaves of Arabidopsis, tobacco, tomato, poplar, and rice callus . Sci Rep 8, 10966 (2018).) et l’acide palmitique. Par « peptide pénétrant » (ci-après CPP), on entend des peptides de petite taille pénétrant les bicouches lipidiques cellulaires ou déstabilisent les membranes cellulaires. Les CPP peuvent être classés en trois groupes : cationiques, amphipathiques et hydrophobes. En particulier : les CPP cationiques contiennent de nombreux acides aminés chargés positivement, tels que la lysine (Lys) et l'arginine (Arg) ; Les CPP amphipathiques sont généralement composés d'une séquence alternée d'acides aminés polaires et non polaires ; et Les CPP hydrophobes se composent d'acides aminés non polaires avec des charges nettes relativement faibles.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’altPEP isolé tel que décrit précédemment, ledit altPEP isolé étant fusionné à un peptide facilitant son entrée dans la cellule végétale. En particulier, l’invention concerne l’altPEP tel que décrit précédemment, ledit altPEP étant fusionné à un peptide pénétrant.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’altPEP isolé tel que décrit précédemment, ledit altPEP isolé étant fusionné à l’extrémité N-terminale ou à l’extrémité C-terminale avec ledit peptide facilitant son entrée dans la cellule végétale. En particulier, l’invention concerne l’altPEP tel que décrit précédemment, ledit altPEP étant fusionné à l’extrémité N-terminale ou à l’extrémité C-terminale avec ledit peptide pénétrant.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’altPEP isolé tel que décrit précédemment, ledit altPEP isolé étant fusionné avec : le peptide TAT (SEQ ID NO : 380) ; la pénétratine ; un peptide polyhistidine (notamment un peptide d’au moins 4 résidus histidine) ; ou un peptide polyarginine (notamment un peptide de 4 résidus arginine).
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’altPEP isolé tel que décrit précédemment, ledit altPEP isolé étant lié à une ou plusieurs molécules d’acide palmitique.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’altPEP isolé tel que décrit précédemment, ledit altPEP isolé étant lié à l’extrémité N-terminale ou à l’extrémité C-terminale à une ou plusieurs molécules d’acide palmitique.
Sur ce point, il convient de noter que la quantité de l’altPEP nécessaire pour moduler l’accumulation d’une protéine peut varier selon que l’altPEP soit ou non modifié avec l’une des molécules facilitant sa pénétration cellulaire.
Dans un troisième aspect, l’invention ci-dessus a pour objet un acide nucléique codant un altPEP tel que décrit précédemment. Selon ce même aspect, l’invention a également pour objet un acide nucléique de 3 n nucléotides, lequel acide nucléique correspond à un fragment d’une séquence d’acides nucléiques naturellement traduite sur un ARNm dans une cellule végétale laquelle correspond au cadre ouvert de lecture d’une protéine codée par ledit ARNm.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’acide nucléique tel que décrit précédemment, ledit fragment comprenant : un codon initiateur codant une méthionine initiatrice ; et un codon STOP choisie parmi les codons : UAG, UGA et UAA,
et ledit fragment étant choisi dans un cadre ouvert de lecture décalé d’un ou deux nucléotides par rapport à celui codant ladite protéine.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne l’acide nucléique tel que décrit précédemment, dans lequel la traduction du fragment de l’ARNm est opérée dans un cadre de lecture différent du cadre ouvert de lecture de la séquence d’acides nucléiques naturellement traduite dans ladite cellule végétale. En particulier, l’invention concerne l’acide nucléique tel que décrit précédemment, dans lequel la traduction du fragment de l’ARNm est opérée dans un cadre de lecture décalé d’un nucléotide en 3’ (ou de deux nucléotides en 5’) par rapport au cadre ouvert de lecture de la séquence d’acides nucléiques naturellement traduite dans ladite cellule végétale. En particulier, l’invention concerne également l’acide nucléique tel que décrit précédemment, dans lequel la traduction du fragment de l’ARNm est opérée dans un cadre de lecture décalé de deux nucléotides en 3’ (ou d’un nucléotide en 5’) par rapport au cadre ouvert de lecture de la séquence d’acides nucléiques naturellement traduite dans ladite cellule végétale. Autrement dit, l’invention concerne l’acide nucléique tel que décrit précédemment, dans lequel la traduction du fragment de l’ARNm est opérée dans un cadre de lecture décalé d’un (ou deux nucléotides en 5’) ou deux nucléotides en 3’ (ou d’un nucléotide en 5’) par rapport au codon d’initiation du cadre ouvert de lecture de la séquence d’acides nucléiques naturellement traduite dans ladite cellule végétale.
En particulier, l’invention concerne l’acide nucléique tel que décrit précédemment, où n est compris : de 4 à 70 ; de 4 à 41 ; de 5 à 40 ; de 7 à 20 ; ou de 8 à 15.
Dans un autre aspect, l’invention ci-dessus concerne une composition comprenant un altPEP tel que décrit ci-dessus en tant que substance active.
Dans un autre mode de réalisation, l’invention ci-dessus concerne une composition comprenant un altPEP en tant que substance active, ledit altPEP : ayant une taille comprise de 4 à 70 acides aminés, en particulier de 4 à 41 acides aminés, dont la séquence d’acides aminés correspond à la traduction via le code génétique d’un fragment d’une séquence d’acides nucléiques naturellement traduite sur un ARNm dans une cellule végétale laquelle correspond au cadre ouvert de lecture d’une protéine codée par ledit ARNm ; et étant capable de moduler l’accumulation de ladite protéine dans la cellule végétale et n’étant pas capable de moduler l’accumulation de l’ARNm codant ladite protéine.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne la composition telle que décrite précédemment, dans laquelle ledit fragment comprend : un codon initiateur codant une méthionine initiatrice ; et un codon STOP choisie parmi les codons : UAG, UGA et UAA,
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne la plante transgénique telle que définie précédemment, dans laquelle la séquence codant ledit altPEP est plus courte que la séquence de l’ARNm codant ladite protéine.
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne la plante transgénique telle que décrite précédemment, ladite plante appartenant à une espèce végétale choisie parmi : Alopecurus myosuroides, Amaranthus hypochondriacus, Amaranthus palmeri, Amaranthus tuberculatus, Arabidopsis halleri, Arabidopsis lyrata, Arabidopsis lyrata, Arabidopsis thaliana, Barbarea vulgaris, Boechera stricta, Brachypodium distachyon, Brassica napus (colza) , Brassica oleracea, Brassica rapa (colza) , Camelina sativa, Capsella grandiflora, Capsella rubella, Carica papaya, Eutrema salsugineum, Glycine max (soja) , Gossypium raimondii, Gossypium spp. (coton) , Hordeum vulgare (orge) , Lollium spp., Lotus japonicus (lotier) , Medicago sativa (luzerne), Medicago truncatula (luzerne) , Nicotiana benthamiana (tabac) , Oryza sativa (riz) , Pisum sativum (pois), Raphanus sativus, Solanum lycopersicum (tomate) , Solanum melongena (aubergine) , Solanum tuberosum (pomme de terre) , Thellungiella halophila, Theobroma cacao, Triticum spp. (blé) , Vitis vinifera (vigne) et Zea mays (maïs).
Dans un mode de réalisation, l’invention concerne la plante transgénique telle que décrite précédemment, dans laquelle l’expression dudit altPEP est placée sous le contrôle d’un promoteur fort, de préférence un promoteur fort constitutif tel que le promoteur 35S.
A tout égard, il convient de noter que les différents aspects de l’invention No. 2, tout comme les différents modes de réalisation de celle-ci sont interdépendants. Ces derniers peuvent donc être combinés entre eux pour obtenir des aspects et/ou des modes de réalisation préférés de l’invention No. 2 non explicitement décrits. Ceci est également valable pour l’ensemble des définitions fourni dans la présente description, lequel s’applique à tous les aspects de l’invention No. 2 et ses modes de réalisation.
En outre, les inventions No. 1 et No. 2 sont illustrées, sans toutefois s’y limiter, par les Figures et Exemples suivants.
La est une représentation schématique illustrant les premières étapes du procédé de préparation et de détermination d’un cPEP. En particulier sont illustrés les étapes permettant de déterminer au sein d’un ARNm d’une protéine l’une des séquences d’acides nucléiques à partir de laquelle le peptide à tester ( i.e. le cPEP potentiel) est identifié.
Les séquences : SEQ ID NOs : 375 à 379 sont uniquement fournies à titre d’exemple.
Identification et caractérisation des altPEPs ( a ) Représentation schématique d'un gène codant portant des altORFs produisant des altPEPs. ( b ) Distribution du classement des ORFs des altPEPs détectés par MS. ( c ) Fréquence des altPEPs détectés par MS par plages de longueur. ( d ) Longueur de la racine principale des plantules d' A. thaliana traitées avec 100 µM de peptide pendant 4 jours. ( e , f ) Quantification de l'expression de DCL1 par RT-qPCR ( e ) et par Western blot en utilisant des anticorps anti-DCL1 ( f ) dans des feuilles de A. thaliana traitées pendant 5 jours avec 100 µM de peptide. ( g , h ) Quantification de COI1, AP2, CPK3 ( g ) et EIN2 ( h ) par Western blot en utilisant des anticorps spécifiques dans des feuilles de A. thaliana traitées pendant 5 jours avec 100 µM de peptide.
Les résultats sont représentatifs de quatre expériences indépendantes. Les chiffres indiquent la moyenne et le SEM. Les témoins sont le peptide non pertinent et l'eau. Les barres d'erreur représentent les SEM, les astérisques indiquent une différence significative entre la condition de test et le contrôle selon le test t de Student (d) ou le test de Wilcoxon (e-h) (n = 100 (d), n = 4 (e-h) ; p < 0,05).
( a ) Distribution des altPEP détectés par MS en fonction du nombre d'espèces de Brassicaceae dans lesquelles des homologues (plus de 80) ont été trouvés. ( b ) Distribution des altPEPs détectés par MS en fonction de leur cadre d'encodage. ( c ) Alignement des homologues d'AtDCL1alt18 (SEQ ID NO : 224) dans différentes espèces de Brassicaceae . ( d , e ) Conservation du premier altPEP de AP2 ( d ) et EIN2 ( e ) dans différentes espèces de Brassicaceae . ( f ) Activité de refAUG de EIN2 comparée à l'activité de altAUG1 réalisée avec le système de transcription/translation in vitro .
At : Arabidopsis thaliana , Al : Arabidopsis lyrata , Bn : Brassica napus , Bo : Brassica oleracea , Br : Brassica rapa , Bs : Boechera stricta , Cg : Capsella grandiflora , Cr : Capsella rubella , Cs : Camelina sativa , Es : Eutrema salsugineum , Rs : Raphanus sativus , Th : Thellungiella halophila .
Quantification par qRT PCR de l'expression de différents gènes en réponse à 100 µM de différents peptides
( a ) Traitement des plantes avec le peptide AtCOI1alt1 ; ( b ) Traitement des plantes avec le peptide AtAP2alt1 ; ( c ) Traitement des plantes avec le peptide AtEIN2alt1 ( d ) Traitement des plantes avec le peptide AtCPK3alt1.
Les barres d'erreur représentent les SEM.
Le premier module de détermination 702 est configuré pour déterminer, sur la base de la quantité de cycles restants, une valeur économique de la batterie d’alimentation cible.
Le deuxième module de détermination 703 est configuré pour déterminer, sur la base d’une valeur d’utilisation initiale de la batterie d’alimentation cible et d’une distance historique parcourue par le véhicule électrique en utilisant la batterie d’alimentation cible, une valeur d’utilisation résiduelle de la batterie d’alimentation cible.
Le module d’évaluation 704 est configuré pour évaluer, sur la base de la valeur économique et de la valeur d’utilisation résiduelle, la batterie d’alimentation cible pour le recyclage afin de déterminer si la batterie d’alimentation cible répond à une condition de recyclage.
Dans un mode de réalisation spécifique, le premier module de détermination 702 est configuré pour obtenir la valeur économique de la batterie d’alimentation cible sur la base de la quantité de cycles restants par un modèle pour l’accès à des valeurs de batterie qui est pré-entraîné.
Dans un mode de réalisation spécifique, le premier module de détermination 702 est configuré pour : acquérir un ensemble de données de recyclage de batterie comprenant des échantillons de données de recyclage de batterie, où chacun des échantillons de données de recyclage de batterie comprend la quantité de cycles restants d’une batterie d’alimentation recyclée historique et la valeur économique de la batterie d’alimentation recyclée historique ; sélectionner les échantillons de données de recyclage de batterie d’une quantité prédéfinie de manière aléatoire à partir de l’ensemble de données de recyclage de batterie en tant qu’ensemble d’échantillons d’entraînement ; et entraîner un modèle en utilisant l’ensemble d’échantillons d’entraînement pour obtenir le modèle pour l’accès à des valeurs de batterie.
Dans un mode de réalisation spécifique, le premier module de détermination 702 est configuré pour : déterminer les échantillons de données de recyclage de batterie, qui font partie de l’ensemble de données de recyclage de batterie et ne sont pas dans l’ensemble d’échantillons d’entraînement, en tant qu’ensemble d’échantillons de test ; tester le modèle pour l’accès à des valeurs de batterie en utilisant l’ensemble d’échantillons de test pour obtenir une erreur d’identification du modèle pour l’accès à des valeurs de batterie ; dans le cas où l’erreur d’identification est inférieure ou égale à un seuil d’erreur prédéfini, déterminer que l’entraînement sur le modèle pour l’accès à des valeurs de batterie est achevé ; et dans le cas où l’erreur d’identification est supérieure au seuil d’erreur prédéfini, ajouter un nouvel échantillon de données de recyclage de batterie dans l’ensemble d’échantillons d’entraînement et ensuite ré-entraîner le modèle pour l’accès à des valeurs de batterie en utilisant l’ensemble d’échantillons d’entraînement, jusqu’à ce que l’erreur d’identification du modèle ré-entraîné pour l’accès à des valeurs de batterie soit inférieure ou égale au seuil d’erreur prédéfini.
Dans un mode de réalisation spécifique, le module d’évaluation 704 est configuré, dans le cas où la valeur d’utilisation résiduelle est supérieure ou égale à la valeur économique, pour déterminer que la batterie d’alimentation cible ne répond pas à la condition de recyclage, et délivrer en sortie une première invite qui indique le maintien de l’utilisation de la batterie d’alimentation cible.
Dans un mode de réalisation spécifique, le module d’évaluation 704 est configuré, dans le cas où la valeur d’utilisation résiduelle est inférieure à la valeur économique, pour déterminer que la batterie d’alimentation cible répond à la condition de recyclage, et délivrer en sortie une deuxième invite qui indique que la batterie d’alimentation cible doit être recyclée.
Dans un mode de réalisation spécifique, le module d’évaluation 704 est configuré pour transmettre un avertissement, qui suggère de vérifier une condition d’utilisation de la batterie d’alimentation cible, à un utilisateur en réponse à la surveillance du fait qu’un changement de la valeur économique dans une période de temps prédéfinie est supérieur à un seuil prédéfini.
La est un diagramme schématique d’un dispositif de surveillance selon un mode de réalisation de la présente divulgation. Le dispositif de surveillance peut être un dispositif ayant une fonction de calcul et de traitement.
Le dispositif de surveillance comprend un processeur 801 et un support de stockage 802. Le processeur 801 et le support de stockage 802 sont reliés via un bus.
Le support de stockage 802 est configuré pour stocker un programme. Le processeur 801 invoque le programme stocké dans le support de stockage 802 pour mettre en œuvre les modes de réalisation de procédé précédents. Une mise en œuvre spécifique et des effets techniques qui sont similaires ne sont pas répétés dans le présent document.
Un support de stockage est en outre fourni selon un mode de réalisation de la présente divulgation. Le support de stockage comprend un programme, et le programme, lorsqu’il est exécuté par un processeur, met en œuvre les modes de réalisation de procédé précédents. Dans le présent document, les appareils et les procédés selon les modes de réalisation peuvent être mis en œuvre d’autres manières. Par exemple, les modes de réalisation d’appareil décrits ci-dessus sont uniquement illustratifs. Par exemple, la division des unités est simplement basée sur des fonctions logiques. En pratique, il peut exister d’autres modes de division. Par exemple, de multiples unités ou composants peuvent être combiné(e)s ou intégré(e)s dans un autre système, ou certaines fonctionnalités peuvent être ignorées ou non mises en œuvre. De plus, le couplage mutuel, le couplage direct ou la connexion de communication, comme représenté(e) ou discuté(e), peut être mis(e) en œuvre via certaines interfaces, un couplage indirect entre des appareils ou des unités, ou une connexion de communication entre des appareils ou des unités, et peut être mécanique ou sous une autre forme.
Les unités décrites comme des composants séparés peuvent ou non être physiquement séparées, et les composants représentés comme des unités peuvent ou non être des unités physiques, c’est-à-dire qu’ils peuvent être situés en un seul endroit ou peuvent être répartis entre de multiples unités de réseau. Une partie ou la totalité des unités peuvent être sélectionnées selon un besoin réel pour atteindre un objectif de solutions dans les modes de réalisation.
De plus, toutes les unités fonctionnelles dans chaque mode de réalisation de la présente divulgation peuvent être intégrées dans une unité de traitement. En variante, chaque unité peut être physiquement séparée, ou deux unités ou plus peuvent être intégrées en une seule unité. Les unités intégrées susmentionnées peuvent être mises en œuvre dans un matériel, ou sous forme d’unités fonctionnelles matérielles plus des unités fonctionnelles logicielles.
Les unités intégrées susmentionnées mises en œuvre sous forme d’unités fonctionnelles logicielles peuvent être stockées dans un support de stockage. Les unités fonctionnelles logicielles ci-dessus stockées dans un support de stockage peuvent comprendre plusieurs instructions pour permettre à un dispositif informatique (qui peut être un ordinateur personnel, un serveur, ou un dispositif de réseau, etc.) ou à un processeur de mettre en œuvre une partie des étapes dans le procédé comme décrit dans divers modes de réalisation de la présente divulgation. Le support de stockage inclut divers supports qui peuvent stocker des codes de programme, tels qu’une clé USB, un dispositif de stockage portable, une Mémoire Morte (ROM), une Mémoire Vive (RAM), un disque magnétique ou un disque optique ou autre analogue.
Selon un exemple, l’empreinte au sol du four s’étend dans deux directions perpendiculaires et dans lequel les éléments unitaires sont alignés selon la direction la plus courte.
Selon un exemple, les éléments unitaires de deux lignes contiguës ne sont pas alignés.
Selon un exemple, les éléments unitaires ont des dimensions identiques.