INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
L’article « Speaker Anonymization for Personal Information Protection Using Voice conversion Techniques », Proceedings of Access 2020, Digital Object Identiﬁer, Vol.8 2020, pages 198637-198645, IEEE, US, In-Chul Yoo et al., divulgue la conversion de la voix pour assurer l’anonymisation d’un locuteur avec pour objectif de conserver le contenu linguistique de la parole donnée tout en supprimant les données biométriques de la voix du locuteur original. La méthode proposée modifie les vecteurs d'identité conventionnels du locuteur en vecteurs d'identité du locuteur anonymisés en utilisant diverses méthodes.
L’article intitulé « Speaker Anonymization Using X-vector and Neural Waveform Models », Proceedings of 10th ISCA Speech Synthesis Workshop, 20-22 Septembre 2019, Vienne, Autriche, pages 155-160, Fuming Fan et al. propose une approche d'anonymisation de locuteur pour dissimuler l'identité du locuteur tout en maintenant une haute qualité de parole anonyme, qui est basée sur l'idée d'extraire les caractéristiques linguistiques et d'identité du locuteur d'un énoncé, puis de les utiliser avec des modèles neuronaux acoustiques et de forme d'onde pour synthétiser la parole anonyme. L'identité originale du locuteur, sous la forme du timbre, est supprimée et remplacée par celle d'une pseudo-identité anonyme. L'approche exploite les représentations de pointe des locuteurs sous forme de vecteurs X. Ces représentations sont utilisées pour dériver des discours anonymes. Celles-ci sont utilisées pour dériver des pseudo-identités de locuteurs anonymes par la combinaison de plusieurs vecteurs X de locuteurs aléatoires.
Les auteurs de l’article qui s’intitule « Exploring the Importance of FO Trajectories for Speaker Anonymization using x-vectors and Neural Waveform Models », International Audio Laboratories, Erlangen, 2021, Workshop on Machine Learning in Speech and Language Processing (MLSLP), 6 Septembre 2021, ISCA, DE, pages 1-6, UE Gaznepoglu et al., considérant la présence d'informations personnelles dans les différentes composantes de la fréquence fondamentale F0 de la voix d’un locuteur et la disponibilité de diverses approches pour modifier la composante F0, proposent une exploration de leur potentiel dans le contexte de l'anonymisation de la voix. Ils suggèrent que le fait de décomposer la composante F0, de modifier les caractéristiques liées au locuteur, de perturber éventuellement avec du bruit pendant le processus, puis de resynthétiser, pourrait augmenter la performance d'anonymisation et/ou améliorer l'intelligibilité. Il est mentionné que les approches proposées jusqu'à présent, comme le décalage et la mise à l'échelle, dépendent toutes de l'identité de la personne à protéger.
L’article « Speaker anonymization using the McAdams coefﬁcients » dans la revue COMPUTER SCIENCE, AUDIO AND SPEECH PROCESSING, Cornell University, US, September 2021, pages 1-5, Patino J et al., évoque la réversibilité de l’anonymisation. Les auteurs y présentent leur travail visant à explorer plus en profondeur le potentiel des techniques de traitement du signal bien connues comme solution au problème de l'anonymisation, par opposition à d’autres solutions plus complexes et plus exigeantes qui requièrent des données d’entraînement. Ils suggèrent d’optimiser une solution d’origine basée sur les coefficients de McAdams pour modifier l’enveloppe spectrale (i.e., le timbre) de signaux de parole. Ils ont cherché à conﬁrmer que différentes valeurs du coefficient de McAdams α (alpha), qui modifient le timbre de la voix, peuvent produire différentes pseudo-voix pour un même locuteur. Il en résulte une approche stochastique de l'anonymisation dans laquelle le coefficient de McAdams est échantillonné dans une plage de distribution uniforme, c'est-à-dire α ∈ U(αmin,αmax). Cependant, dans les applications proposées, l’article se contente d’enseigner que le coefficient α peut être changé aléatoirement d’un locuteur (« speaker », en anglais) à l’autre, en indiquant qu’un tiers mal intentionné aurait alors besoin de connaître le coefficient exact de McAdams utilisé pour rendre anonyme la parole de n'importe quel locuteur en particulier, afin d'inverser la transformation.
Il demeure donc le besoin d’une technique de masquage de la voix d’un locuteur qui ne puisse pas être facilement contournée.
Un premier aspect de l’invention proposée concerne un procédé de masquage de la voix d’un locuteur pour protéger son identité et/ou sa vie privée par altération intentionnelle de la hauteur et du timbre de la voix, comprenant : - un découpage d’un signal audio correspondant à un enregistrement original de la voix du locuteur en une série de segments audios successifs de durée constante déterminée, et la formation d’une série de couples de segments audios comprenant chacun un primat et un duplicata d’un segment audio de ladite série de segments audios ; ainsi que, pour chaque couple de segments audios : - une altération ascendante, en fonction d’au moins un premier paramètre de masquage, appliquée au primat du segment audio et ayant pour effet d’élever une partie déterminée du contenu fréquentiel dudit primat du segment audio ; - une altération descendante, en fonction d’au moins un second paramètre de masquage, appliquée au duplicata du segment audio et ayant pour effet d’abaisser une partie déterminée du contenu fréquentiel dudit duplicata du segment audio ; ainsi que, - une combinaison du primat du segment audio altéré et du duplicata du segment audio altéré, pour former un unique segment audio altéré résultant, le procédé comprenant en outre, d’un couple de segments audios à l’autre dans la série des couples de segments audios : - une variation du premier paramètre de masquage et ; - une variation du second paramètre de masquage, lesdites variations dudit premier et dudit second paramètres de masquage étant fluctuantes aléatoirement d’un couple de segments à l’autre dans la série des couples de segments audios, et le procédé comprenant en outre : - la recomposition du signal audio masqué à partir de la série des segments audios altérés.
Grâce à ce procédé, la voix est masquée en permettant de répondre à l’exigence de protection du ou des locuteurs, puisque le procédé peut aisément être mis en œuvre dans le tout premier équipement entrant en jeu dans la chaîne d’acquisition et de traitement audio. En même temps, le procédé permet d’avoir un rendu final qui reste intelligible, c’est-à-dire qui n’est ni une voix de « Mickey Mouse »™ ni une voix de « Dark Vador »™ du fait des deux altérations appliquées à chaque segment audio qui produisent des modifications dans le contenu fréquentiel qui sont en sens contraire l’une de l’autre. En effet, on applique un effet ascendant (vers les tonalités aigües) pour l’une et un effet descendant (vers les tonalités graves) pour l’autre des deux altérations, en sorte que ces deux effets se combinent du point de vue du contenu fréquentiel du segment audio considéré. Le segment audio masqué qui en résulte, possède un contenu fréquentiel qui reste relativement globalement plus proche sur la dynamique spectrale, de celui du segment audio d’origine, en dépit du masquage de la voix qui est obtenu.
Avantageusement, les altérations de fréquence sont bridées, l’une étant toujours ascendante alors que l’autre est toujours descendante. Dès lors, le logiciel ou le dispositif adapté pour implémenter la solution ne peut pas lui-même faire l’opération inverse.
Selon le procédé, deux portions du spectre du signal audio sont simultanément altérées par rapport à l’enregistrement original de la voix du locuteur. Il peut s’agir, par exemple (mais pas obligatoirement), à la fois de la hauteur et du timbre de la voix qui sont modifiés. Ceci est un premier élément favorable à l’irréversibilité du procédé, car un tiers malveillant souhaitant revenir à la voix d’origine devra jouer sur ces deux caractéristiques de la voix en combinaison, ce qui lui complique la tâche par rapport à un masquage par décalage de pitch seul.
Selon un autre avantage, la variabilité des altérations n’est pas stationnaire. Elle varie dans le temps. Ainsi il peut y avoir plusieurs variations sur une seconde de traitement.
Finalement, les modes de mises en œuvre proposés procurent un masquage de la voix qui est irréversible en audio, c’est-à-dire par un traitement audio inverse.
P2 peut être exprimable dans la cellule hôte pour la formation d'une nucléase qui est exploitable dans la cellule hôte pour couper l'acide nucléique. De préférence, l'acide nucléique coupé est dégradé (optionnellement le vecteur comprenant l'acide nucléique est dégradé), régulant ainsi à la baisse l'expression de P1 dans la cellule hôte. De préférence, l'acide nucléique coupé est dégradé, régulant ainsi à la baisse l'expression de P1 dans le microbiote. P2 elle-même peut être la nucléase ou un composant de celle-ci (le composant se combinant avec un ou plus autre(s) composant(s) dans la cellule hôte pour former la nucléase, tel qu'une nucléase guidée par ARN). Des exemples de nucléases convenant sont une endonucléase guidée par ARN ou une endonucléase de restriction. Par exemple, la nucléase est une nucléase de restriction sélectionnée parmi AatII, AbaSI, Acc65I, AccI, AciI, AclI, AcuI, AfeI, AflII, AflIII, AgeI, AhdI, AleI, AluI, AlwI, AlwNI, ApaI, ApaLI, ApoI, AscI, AseI, AsiSI, AvaI, AvaII, AvrII, BaeGI, BaeI, BamHI, BanI, BanII, BbsI, BbvCI, BbvI, BccI, BceAI, BcgI, BciVI, BclI, BfaI, BglI, BglII, BlpI, BmgBI, BmrI, BmtI, BpmI, BpuEI, Bpu10I, BsaAI, BsaBI, BsaHI, BsaI, BsaJI, BsaWI, BsaXI, BseRI, BseYI, BsgI, BsiEI, BsiHKAI, BsiWI, BslI, BsmAI, BsmBI, BsmFI, BsmI, BspCNI, BspEI, BspHI, Bsp1286I, BspMI, BsrBI, BsrDI, BsrFI, BsrGI, BsrI, BssHII, BssSI, BstAPI, BstBI, BstEII, BstNI, BstUI, BstXI, BstYI, BstZ17I, Bsu36I, BtgI, BtgZI, BtsCI, BtsIMutI, BtsI, Cac8I, ClaI, CspCI, CviAII, CviKI-1, CviQI, DdeI, DpnI, DraI, DraIII, DrdI, EaeI, EagI, EarI, EciI, Eco53kI, EcoNI, EcoO109I, EcoP15I, EcoRI, EcoRV, Esp3I, FatI, FauI, Fnu4HI, FokI, FseI, FspEI, FspI, HaeII, HaeIII, HgaI, HhaI, HincII, HindIII, HinfI, HinP1I, HpaI, HphI, HpyAV, HpyCH4III, HpyCH4IV, HpyCH4V, Hpy99I, Hpy188I, Hpy166II, Hpy188III, I-CeuI, I-SceI, KasI, KpnI, LpnPI, MboI, MboII, MfeI, MluCI, MluI, MlyI, MmeI, MnlI, MscI, MseI, MslI, MspA1I, MspI, MspJI, MwoI, NaeI, NarI, Nb.BbvCI, Nb.BsmI, Nb.BsrDI, Nb.BssSI, Nb.BtsI, NciI, NcoI, NdeI, NgoMIV, NheI, NlaIII, NlaIV, NmeAIII, NotI, NruI, NsiI, NspI, Nt.AlwI, Nt.BbvCI, Nt.BsmAI, Nt.BspQI, Nt.BstNBI, Nt.CviPII, PacI, PaqCI, PciI, PflMI, PI-PspI, PI-SceI, PleI, PluTI, PmeI, PmlI, PpuMI, PshAI, PsiI, PspGI, PspOMI, PspXI, PstI, PvuI, PvuII, RsaI, RsrII, SacI, SacII, SalI, SapI, Sau96I, SbfI, ScaI, ScrFI, SexAI, SfaNI, SfcI, SfiI, SfoI, SgrAI, SmaI, SmlI, SnaBI, SpeI, SphI, SrfI, SspI, StuI, StyD4I, StyI, SwaI, TaqI, TfiI, TseI, Tsp45I, TspRI, Tth111I PflFI, XbaI, XcmI, XhoI, XhoI PaeR7I, XmaI, XmaI TspMI, XmnI et ZraI.
Dans un exemple, P2 comprend une nucléase guidée qui est programmable dans la cellule hôte pour guider la nucléase jusqu’à une séquence nucléotidique cible comprise par l'acide nucléique, la nucléase étant capable de couper la séquence cible, la séquence d'acide nucléique étant dégradée et l'expression de P1 étant inhibée à partir de l'acide nucléique.
Dans un exemple, la nucléase est exploitable pour couper un site cible que comprend l'acide nucléique du vecteur, le site cible étant
(i) compris par NS1 ;
(ii) pas compris par NS1 ;
(iii) compris par NS2 ;
(iv) pas compris par NS2 ;
(v) compris par une séquence nucléotidique du vecteur qui code pour un système CRISPR/cas ou un composant de celui-ci (le composant étant par exemple une séquence nucléotidique qui code pour une Cas, ou le composant codant pour un ARNcr ou un ARN guide ;
(vi) non compris par une séquence nucléotidique du vecteur qui code pour un système CRISPR/cas ou un composant de celui-ci (le composant étant par exemple une séquence nucléotidique qui code pour une Cas, ou le composant codant pour un ARNcr ou un ARN guide ;
(vii) compris par une séquence nucléotidique qui code pour une endonucléase de restriction ;
(viii) non compris par une séquence nucléotidique qui code pour une endonucléase de restriction ;
(ix) compris par le premier promoteur ; ou
(x) compris par le deuxième promoteur.
Un système CRISPR/cas comprend au moins une Cas (par exemple Cas3 (optionnellement aussi Cascade Cas, par exemple CasA-E), Cas9, Cas12 ou Cas13) et un ARN guide apparenté qui est capable de former un complexe Cas/ARN guide pour reconnaître et se lier à une séquence de protoespaceur. Dans les exemples ci-dessus, le protoespaceur est compris par le site cible. L'ARN guide peut être un ARN simple guide.
P2 peut comprendre
a) une nucléase guidée par ARN ;
La boîte de transmission de puissance 10 peut comporter un ou plusieurs étages de démultiplication munis par exemple d’engrenages, de pignons et/ou de roues dentées. La boîte de transmission de puissance 10 peut aussi comporter un dispositif mécanique 1 agencé par exemple entre deux étages de démultiplication. Une vue en coupe de ce dispositif mécanique 1 est représentée sur la .
Le dispositif mécanique 1 peut alternativement être agencé dans tout système mécanique, muni de pignons et/ou de roues dentées et équipant par exemple un véhicule ou une machine.
Le dispositif mécanique 1 comporte un pignon d’entrée 2 et un pignon de sortie 3 mobiles en rotation autour d’un axe de rotation AX. L’axe de rotation AX est situé dans le plan de coupe de la vue représentée sur la . Le pignon d’entrée 2 comporte des dents 21 qui peuvent par exemple être reliées via une roue dentée ou un dispositif de démultiplication à un système d’entraînement. Le pignon de sortie 3 comporte des dents 31 qui peuvent être reliées via une roue dentée ou un dispositif de démultiplication à un système récepteur.
Selon l’exemple représenté sur les figures, le pignon d’entrée 2 peut être relié via deux roues dentées aux deux arbres d’entrée 11 et, par suite, aux deux moteurs 111,112 de l’installation motrice 110 alors que le pignon de sortie 3 peut être relié via un dispositif de démultiplication au mât 12 et, par suite, au rotor 105,106.
Alternativement, le pignon d’entrée 2 et le pignon de sortie 3 peuvent être inversés, Le pignon de sortie 3 peut alors être relié au moins à un arbre d’entrée 11 puis à un système d’entraînement alors que le pignon d’entrée 2 peut être relié à un mât 12 puis à un système récepteur.
Le dispositif mécanique 1 comporte également un arbre intermédiaire 4 s’étendant longitudinalement le long de l’axe de rotation AX, d’une première extrémité proximale 41 jusqu’à une première extrémité distale 42. L’arbre intermédiaire 4 s’étend au moins partiellement à l’intérieur du pignon d’entrée 2 et du pignon de sortie 3, en étant coaxial avec le pignon d’entrée 2 et avec le pignon de sortie 3, autour de l’axe de rotation AX.
Le dispositif mécanique 1 comporte des dispositifs de guidage en rotation 15, tels que des roulements à billes ou à rouleaux par exemple. De tels dispositifs de guidage en rotation 15 sont par exemple agencés entre le pignon d’entrée 2 et l’arbre intermédiaire 4, entre le pignon d’entrée 2 et le pignon de sortie 3, entre un bâti (non représenté par souci de clarté de la ) du dispositif mécanique 1 et le pignon d’entrée 2, et entre ce bâti et le pignon de sortie 3. Les pistes de ces dispositifs de guidage en rotation 15 peuvent être intégrées à ces composants 2, 3, 4 du dispositif mécanique 1 ou bien être rapportées, ces dispositifs de guidage en rotation 15 comportant alors par exemple une bague intérieure et ou une bague extérieure.
Le dispositif mécanique 1 comporte aussi une première liaison mécanique 5, une deuxième liaison mécanique 6 et un couplemètre 7.
La première liaison mécanique 5 solidarise au moins en rotation autour de l’axe de rotation AX le pignon d’entrée 2 avec l’arbre intermédiaire 4, de préférence à proximité de la première extrémité proximale 41. La première liaison mécanique 5 d’entraînement en rotation peut être une liaison permanente de sorte que le pignon d’entrée 2 et le pignon de sortie 3 sont en permanence reliés au moins en rotation l’un à l’autre. La première liaison mécanique 5 peut comporter dans ce cas des cannelures ou bien une ou plusieurs clavettes ou encore une ou plusieurs goupilles par exemple. La première liaison mécanique 5 peut aussi être une liaison de type encastrement à zéro degré de liberté.
Alternativement, la première liaison mécanique 5 d’entraînement en rotation peut être une liaison débrayable. Par exemple, la première liaison mécanique 5 peut comporter une roue libre 55, une partie interne de la roue libre 55 étant reliée à l’arbre intermédiaire 4 et une partie externe de la roue libre 55 étant reliée au pignon d’entrée 2. La roue libre 55 autorise ainsi par exemple uniquement un entraînement du pignon de sortie 4 par le pignon d’entrée 2 selon un sens de rotation autour de l’axe de rotation AX.
La deuxième liaison mécanique 6 permet de solidariser en rotation autour de l’axe de rotation AX l’arbre intermédiaire 4 et le pignon de sortie 3 à l’aide d’un anneau d’entraînement 60. Des vues individuelles en perspective de l’arbre intermédiaire 4, du pignon de sortie 3 et de l’anneau d’entraînement 60 sont représentées respectivement sur les figures 3, 4 et 5.
L’arbre intermédiaire 4 comporte des premières dents 45 agencées à la première extrémité distale 42 et un alésage débouchant sur la première extrémité distale 42. Cet alésage comporte une surface cylindrique intérieure 47 taraudée. Les premières dents 45 s’étendent d’un pied de dent vers un sommet de dent parallèlement à l’axe de rotation AX.
Le pignon de sortie 3 comporte une extrémité proximale 33 et une extrémité distale 32 ainsi que des deuxièmes dents 35 agencées à l’extrémité distale 32 et une surface extérieure 37 filetée et située à proximité des deuxièmes dents 35, voire étant adjacente aux deuxièmes dents 35. Les deuxièmes dents 35 s’étendent d’un pied de dent vers un sommet de dent parallèlement à l’axe de rotation AX.
L’anneau d’entraînement 60 comporte des dents de liaison 65 séparées par des espaces interdents 653 radiaux et un orifice cylindrique 62. Les dents de liaisons 65 s’étendent d’un pied de dent vers un sommet de dent parallèlement à l’axe de rotation AX
Les premières dents 45 coopèrent ainsi avec les dents de liaison 65 afin de lier en rotation l’arbre intermédiaire 4 et l’anneau d’entraînement 60. Chaque première dent 45 occupe un espace interdent 653 radial, en étant en contact avec les dents de liaison 65 dans cet espace interdent 653. Les premières dents 45 et les dents de liaison 65 s’engrènent ainsi entre elles axialement, parallèlement à l’axe de rotation AX.
Les deuxièmes dents 35 coopèrent avec les dents de liaison 65, les deuxièmes dents 35 étant positionnées autour des premières dents 45 au regard de l’axe de rotation AX, afin de lier en rotation le pignon de sortie 3 et l’anneau d’entraînement 60. Chaque deuxième dent 35 occupe un espace interdent 653 radial, en étant en contact avec les dents de liaison 65 dans cet espace interdent 653. Les deuxièmes dents 35 et les dents de liaison 65 s’engrènent ainsi entre elles axialement, parallèlement à l’axe de rotation AX.
841 tttgttcacc cgaccagcaa caaacagttg tgctttatgc agcatattat cgaaacgctg
1561 gaagaagcat ttggtggggt gaaggaatga gtgctgggaa attgccggag gggtgggaac
• Methanothermobacter wolfei (Methanobacterium wolfei)
• Methanothrix sochngenii
Optionnellement, les cellules cibles ne sont pas pathogènes pour le sujet, par exemple lorsque le procédé est un procédé non médical. Dans un exemple, le procédé est un procédé cosmétique.
Dans l'exemple, optionnellement le sujet ou l'animal est un animal d'élevage, tel qu'une vache, un mouton, une chèvre ou un poulet (de préférence une vache). Optionnellement, par exemple lorsque le sujet est un animal (par exemple un animal d'élevage ou un animal sauvage), les cellules cibles sont des cellules bactériennes zoonotiques, telles que des cellules d'une espèce sélectionnée parmi Bacillus anthracis, Mycobacterium bovis (l'animal étant par exemple une vache), Campylobacter spp (l'animal étant par exemple une volaille), Mycobacterium marinum (l'animal étant par exemple un poisson), E. coli producteur de shigatoxines (l'animal étant par exemple un ruminant), Listeria spp (l'animal étant par exemple une vache ou un mouton), Chlamydia abortus (l'animal étant par exemple un mouton), Coxiella burnetii (l'animal étant par exemple une vache, un mouton ou une chèvre), Salmonella spp (l'animal étant par exemple une volaille), Streptococcus suis (l'animal étant par exemple un porc) et Corynebacterium (par exemple C ulcerans) (l'animal étant par exemple une vache).
Dans un exemple, une pluralité de cellules porteuses telles que décrites ici (par exemple des cellules porteuses de n'importe quelle configuration, aspect, exemple ou mode de réalisation décrit ici) est administrée au sujet, les cellules porteuses comprenant l'acide nucléique codant pour P1.
Dans un exemple, chaque animal est un poulet. Dans un exemple, chaque animal est une vache (par exemple un boeuf ou une vache laitière).
Optionnellement, le procédé modifie des cellules cibles dans le tractus gastro-intestinal du sujet humain ou animal ; optionnellement, le procédé modifie des cellules cibles dans le jéjunum, l'iléon, le côlon, le foie, la rate ou le caecum du sujet ; l'animal étant optionnellement un oiseau et le procédé modifiant des cellules cibles dans le caecum de l'oiseau. Dans un exemple, le procédé est mis en oeuvre sur un groupe (optionnellement un groupe d’oiseau ou un troupeau) d'animaux, certains ou tous les animaux comprenant des cellules cibles.
Optionnellement, le plasmide comprend une origine de transfert RP4 (oriT). Le plasmide peut être n'importe quel type de plasmide divulgué ici.
P2 peut être n'importe quel agent antibactérien divulgué ici ou un composant de celui-ci, de préférence une nucléase guidée qui est programmée pour couper une ou plusieurs séquences cibles dans des cellules cibles. Une nucléase appropriée peut être une TALEN, une méganucléase, une nucléase à doigt de zinc ou une nucléase Cas. Par exemple, l'agent comprend un ou plus composant(s) (par exemple une nucléase Cas et/ou un ARN guide ou un ARNcr) d'un système CRISPR/Cas qui est utilisable dans une cellule cible pour couper une séquence de protoespaceur comprise par la cellule cible (par exemple compris par le vecteur, de sorte que le vecteur coupé est dégradé dans la cellule cible). Par exemple, le système est exploitable pour couper au moins 2 ou 3 séquences de protoespaceurs différentes que comprend le vecteur de l'invention. Optionnellement, P2 est utilisable pour couper une pluralité de séquences différentes de protoespaceurs comprises par le vecteur (et optionnellement utilisable en outre pour couper le génome de la cellule porteuse, par exemple une séquence de protoespaceur chromosomique ou épisomique de la cellule porteuse, la coupe de celui-ci étant létale pour la cellule porteuse - comme expliqué ailleurs ici, cela est utile pour réduire ou retirer des cellules porteuses du sujet ou du microbiote lorsque cela est souhaité, tel qu’après qu'un niveau souhaité d'expression de P1 dans des cellules cibles ait été obtenu). Optionnellement, l'agent comprend un ou plus composant(s) d'un système CRISPR/Cas qui est utilisable pour couper au moins 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 ou 10 séquences de protoespaceur différentes comprises par le vecteur et/ou génome de la cellule porteuse (par exemple compris par le chromosome de la cellule porteuse).
Dans un mode de réalisation, P2
(a) comprend une nucléase guidée qui est capable dans une cellule cible de reconnaître et de couper une séquence de protoespaceur comprise par le vecteur ; et/ou
(b) code pour un ARN guide ou un ARNcr d'un système CRISPR/Cas qui fonctionne avec une nucléase Cas dans une cellule cible pour couper une séquence de protoespaceur comprise par le vecteur ;
la nucléase étant capable de couper le vecteur dans la cellule cible et le vecteur étant dégradé dans la cellule cible.