INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La illustre un mode de réalisation d’un raccord à portée intérieure de vanne de sécurité, tel qu’il pourrait faire partie d’une SSSV (par exemple, la SSSV de la ), conçue et fabriquée selon un autre mode de réalisation de la présente invention ;
La illustre un mode de réalisation d’un insert de vanne de sécurité récupérable, tel qu’il pourrait faire partie d’une SSSV (par exemple, la SSSV de la ), conçue et fabriquée selon un autre mode de réalisation de la présente invention ; et
Les , , , , , , , , , et illustrent un mode de réalisation pour assembler (par exemple, compléter en fond de trou) et faire fonctionner une SSSV selon un ou plusieurs autres modes de réalisation de l’invention, comprenant l’insertion et le verrouillage d’un insert de vanne de sécurité récupérable dans un raccord à portée intérieure de vanne de sécurité.
DESCRIPTION DÉTAILLÉE Dans les dessins et les descriptions qui suivent, des parties identiques sont généralement associées dans toute la description et tous les dessins aux mêmes références numériques, respectivement. Les figures dessinées peuvent être à l’échelle, mais ne le sont pas nécessairement. Certaines caractéristiques de l’invention peuvent être représentées agrandies à l’échelle ou sous une forme quelque peu simplifiée et il est possible que certains détails de certains éléments ne soient pas représentés par souci de clarté et de concision. La présente invention peut être mise en œuvre dans des modes de réalisation de différentes formes. Des modes de réalisation spécifiques sont décrits en détail et sont représentés dans les dessins, étant entendu que la présente invention doit être considérée comme un exemple des principes de l’invention, et n’a pas pour but de limiter l’invention à celle illustrée et décrite ici. L’on doit parfaitement reconnaître que les différents enseignements des modes de réalisation décrits ici peuvent être utilisés séparément ou dans n’importe quelle combinaison appropriée pour produire les résultats souhaités. De plus, toutes les déclarations dans la présente invention indiquant des principes et des aspects de l’invention, ainsi que des exemples spécifiques de celle-ci, sont destinés à englober des équivalents de celle-ci.
1 atgaacaata acTAActggt cgcgaagctg tggaagctgt gcgacaacct gcgcgatggc
Un microbiote modifié obtenu ou obtenable par le procédé mentionné ici, optionnellement le microbiote étant compris par une composition pharmaceutique pour utilisation en tant que médicament pour traiter une maladie ou une affection chez un sujet humain ou animal.
Dans une Sixième Configuration
Une cellule hôte comprenant un acide nucléique qui comprend
(b) une séquence nucléotidique exprimable (NS2) pour produire un produit régulateur (P2) dans la cellule hôte, P2 étant exploitable dans la cellule hôte pour réguler l'expression ou l'activité de P1 ;
(c) NS1 est sous le contrôle d'un premier promoteur (par exemple un promoteur constitutif ou inductible) pour l'expression de P1 ; et
(d) l'expression ou l'activité de P2 dans la cellule hôte est régulable par exposition de la cellule hôte comprenant l’au moins un vecteur à un agent régulateur (R), régulant ainsi l'expression ou l'activité de P1 ;
la cellule hôte étant une cellule bactérienne, archéenne ou fongique.
Dans une Septième Configuration
Dans un premier A spect
Une cellule (optionnellement selon toute autre Configuration), comprenant un acide nucléique, l'acide nucléique comprenant un gène codant pour un produit d'intérêt (P1), le gène comprenant une séquence nucléotidique (NS1) codant pour P1 et une région de régulation 5' de NS1 qui comprend un promoteur (Px) pour contrôler l'expression de NS1, la combinaison de Px et NS1 étant hétérologue à la cellule et Px étant régulable par le xylitol.
Dans un deuxième A spect
Une cellule (optionnellement selon toute autre Configuration), comprenant un acide nucléique, l'acide nucléique comprenant un gène codant pour un produit d'intérêt (P1), le gène comprenant une séquence nucléotidique (NS1) codant pour P1 et une région de régulation 5' de NS1 qui comprend un promoteur (Px) pour contrôler l'expression de NS1, la combinaison de Px et NS1 étant hétérologue à la cellule et Px étant régulable par le xylose.
Dans un troisième A spect
Un vecteur d'acide nucléique comprenant un gène tel qu'énoncé dans le premier ou le deuxième Aspect.
Dans le cas où les étapes a) et ii-2) ne sont pas concomitantes, l’étape d’abrasion a) peut être mise en œuvre dans un tambour rotatif, avec ou sans releveurs.
Dans le cas où plusieurs étapes de criblage sont effectuées (e.g. étape ii-2a) et ii-2b)), le procédé peut comprendre plusieurs étapes a) de nettoyage, notamment concomitantes avec chacune des étapes de criblage, ou avant chacune des étapes de criblage.
Afin de faciliter l’étape a), et notamment de faciliter l’abrasion de la matrice cimentaire, des granulats naturels peuvent être ajoutés aux granulats recyclés avant l’étape a).
Les granulats naturels ajoutés peuvent représenter jusqu’à 99,5% en masse, de préférence jusqu’à 95% en masse, et de façon particulièrement préférée jusqu’à 50% en masse, par rapport à la masse totale des granulats mis en œuvre dans l’étape a).
Le procédé peut comprendre en outre au moins une étape b) de lavage des granulats recyclés. Cela permet ainsi de réduire la proportion de résidus de sable et de ciment dans les granulats recyclés.
L’étape b) est de préférence effectuée par lavage avec de l’eau, et de façon particulièrement préférée par aspersion ou pulvérisation d’eau.
L’étape b) peut être effectuée en même temps que (i.e. de manière concomitante avec) l’étape a) de nettoyage ou d’abrasion, et/ou en même temps que l’étape ii-2) de criblage, et/ou entre l’étape a) de nettoyage ou d’abrasion et l’étape de criblage ii-2), et de préférence en même temps que l’étape de criblage ii-2) et éventuellement en même temps que l’étape a) de nettoyage ou d’abrasion.
Cela permet ainsi de favoriser l’entrainement des fines recyclées et leur séparation des granulats recyclés.
Dans le cas où plusieurs étapes de criblage sont effectuées (e.g. étape ii-2a) et ii-2b)), le procédé peut comprendre plusieurs étapes b) de lavage, notamment concomitantes avec chacune des étapes de criblage ii-2) et/ou de nettoyage a), ou entre chacune des étapes de nettoyage a) et de criblage ii-2).
Selon un mode de réalisation préféré de l’invention, les étapes ii-2) et a) sont mises en œuvre en même temps, notamment à l’aide d’un crible rotatif, et de façon particulièrement préférée en voie humide. La voie humide est de préférence mise en œuvre par aspersion ou pulvérisation d’eau (e.g. spray d’eau, qui peut réutiliser l’eau évaporée puis condensée de l’étape i). En d’autres termes, dans ce mode de réalisation de voie humide, les étapes ii-2), a) et b) sont mises en œuvre en même temps, l’étape b) étant effectuée au moins en même temps que l’étape ii-2) et éventuellement en même temps que l’étape a). Cela permet ainsi d’éliminer les fines recyclées adhérentes à la surface des granulats naturels, et ainsi d’éviter leur entrainement dans les granulats naturels de béton recyclé (GNBR).
Les fines recyclées obtenues à l’issue de l’étape ii) peuvent être utilisées directement dans le cru de cimenterie, par exemple pour la fabrication de clinker calcique, moyennant des ajustements de composition (e.g. pour atteindre des modules siliciques ou hydrauliques particuliers) par l’ajout d’autres sources de matériaux utilisés dans le cru. En se substituant à une fraction du calcaire naturel utilisé dans le cru de cimenterie, l’utilisation des fines recyclées en cru de cimenterie contribue à la préservation des ressources naturelles de calcaire, et réduit l’empreinte carbone du clinker en n’émettant pas de CO 2 additionnel lors de l’étape de clinkérisation, par comparaison à l’utilisation (calcination) de calcaire naturel.
L’étape iii) permet la carbonatation en présence de dioxyde de carbone des granulats recyclés obtenus à l’étape ii) précédente, et en particulier la carbonatation en présence de dioxyde de carbone de granulats recyclés ayant une ou plusieurs des granulométries décrites dans l’invention, notamment ayant une ou plusieurs granulométries allant de G m à G M , G 1 et/ou G 2 .
L’étape iii) est de préférence effectuée en présence d’un gaz contenant du CO 2 , de préférence comprenant au moins 10% en mole de CO 2 , et de façon particulièrement préférée au moins 15% en mole de CO 2 , par rapport au nombre de moles total de gaz.
Le dioxyde de carbone peut provenir de fumées contenant du CO 2 , par exemple provenir d’un flux de biogaz riche en CO 2 généré par un méthaniseur ou une centrale thermique à biomasse, ou par exemple provenir d’une fumée produite par un émetteur industriel comme une cimenterie ou une centrale thermique ; ou être préparé à partir d’une source de CO 2 . La source de CO 2 peut être préalablement stockée ou non.
b) un ARN qui est exploitable pour guider une nucléase guidée par ARN ou un précurseur d'un tel ARN ; ou
c) une endonucléase de restriction.
Optionnellement, le précurseur est un ARN, pré-ARNc ou ARNtracr.
Dans un exemple, P2 est capable de se lier à un opérateur (O) qui est compris par l'acide nucléique et opérationnellement connecté au premier promoteur (par exemple O est 5' du premier promoteur, par exemple dans une plage de 200 ou 100 kb 5' du promoteur), dans lequel lorsque P2 est lié à O, l'expression de P1 est réduite (par exemple éliminée). Dans un exemple, P2 comprend une nucléase Cas morte (par exemple une dCas9 ou dCas3 ou dCas12 ou dCas13), la dCas étant capable de former un complexe dCas/ARN guide dans la cellule hôte qui reconnaît et se lie à un protoespaceur compris par le noyau nucléique acide pour interrompre l'expression de P1 (par exemple en interrompant la fonction de promoteur du premier promoteur).
Optionnellement, la nucléase guidée est une nucléase Cas, TALEN, une méganucléase ou une nucléase à doigt de zinc, de préférence une nucléase Cas. La nucléase peut couper l'ADN ou l'ARN, de préférence l'ADN.
La nucléase peut être utilisable pour couper l'acide nucléique au niveau d'un motif de séquence prédéterminé (un site cible), optionnellement une séquence de protoespaceur ou un site de restriction. Le protoespaceur peut être un protoespaceur de CRISPR/Cas. Le site de restriction peut être coupé par une endonucléase de restriction ou une quelconque autre nucléase de restriction divulguée ici. L'acide nucléique peut comprendre une pluralité (par exemple au moins 2 ou 3, par exemple 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8 ou 9) desdits motifs. Cela peut être utile pour l'efficacité de la coupe et de la destruction de l'acide nucléique (ou du vecteur comprenant l'acide nucléique).
Par exemple, P1 comprend un site de liaison au VEGF d'aflibercept, par exemple un ou des domaine(s) anti-VEGF FLT1 et/ou KDR.
Par exemple, P1 comprend (ou est) une incrétine, un peptide insuline, un peptide GLP-1 (glucagon-like peptide-1 (GLP-1)), un peptide GIP (de l’anglais « glucose-dependent insulinotropic polypeptide »), une exendine (par exemple exendine-4), une hormone peptidique, une prolactine ou un peptide de prolactine, un ACTH (de l’anglais «AdrenoCorticoTropic Hormone ») ou un peptide d'ACTH, une hormone de croissance ou un peptide d'hormone de croissance, une vasopressine ou un peptide de vasopressine, une ocytocine ou un peptide d'ocytocine, un glucagon ou un peptide de glucagon, une insuline ou un peptide d'insuline, une somatostatine ou un peptide de somatostatine, une cholécystokinine ou un peptide de cholécystokinine, une gastrine ou un peptide de gastrine, une leptine ou un peptide de leptine, un site de liaison à un anticorps (par exemple un scFv ou un Fab) ou un domaine variable de celui-ci, un site de liaison de récepteur de lymphocytes T (TCR, de l’anglais « T Cell Receptor »)(par exemple un scTCR) ou un domaine de celui-ci, un site de liaison de TCR Vα/Vβ ou un domaine variable de celui-ci, un site de liaison de TCR Vγ/Vδ ou un domaine variable de celui-ci, un site de liaison de domaine variable unique d'anticorps, ou un site de liaison de FcAb. Dans un exemple, P1 comprend au moins une copie d'un GLP-1 et au moins une copie d'une autre incrétine (par exemple une Exendine-4). Par exemple, il existe une copie de GLP-1 et une copie de l'autre increting. De préférence, dans les exemples de ce pargraphe, P1 est une protéine sécrétée ou exposée à la surface de la cellule hôte. Optionnellement, toute GLP-1 mentionnée ici est une GLP-1(7-37)-Pro9. Optionnellement, toute incrétine mentionnée ici est une Exendn-4 ou Peptide Y. Optionnellement, tout(e) P1 ou incrétine mentionné(e) ici est du DURAGLUTIDE™.
P1 peut comprendre un site de liaison à antigène. Un site de liaison mentionné ici peut, par exemple être un site de liaison d'antigène (par exemple cytokine ou facteur de croissance, par exemple VEGF ou EGFR) d'un récepteur (par exemple KDR ou Flt). Un site de liaison mentionné ici peut, par exemple, être un site de liaison d’Eyelea™, d’Avastin™ ou de Lucentis™, par exemple pour une utilisation médicale oculaire ou oncologique chez un humain ou un animal. Lorsque l'antigène est le VEGF, le vecteur ou le procédé peut être destiné au traitement ou à la prévention d'un cancer ou d'une affection oculaire (par exemple DMLA humide ou sèche ou rétinopathie diabétique) ou en tant qu'inhibiteur de néovascularisation chez un sujet humain ou animal.
Par exemple, P1 est un composant de la voie métabolique, par exemple une enzyme ou un réactif dans la voie. Par exemple, P1 est une enzyme intracellulaire dans la cellule cible (c-à-d cellule hôte). Par exemple, P1 est une enzyme sécrétée (par exemple sécrétée par la cellule cible). La voie mentionnée ici peut être dans la cellule cible ou elle peut être à l'extérieur de la cellule cible. Par exemple, la voie est une voie à l'intérieur d'une cellule différente que comprend le microbiote dont la cellule cible est un composant. La cellule différente peut être une cellule porteuse ou elle peut être une cellule endogène du microbiote (c-à-d toute cellule du microbiote à l'exception de la cellule cible ou d’une cellule porteuse). La voie peut comprendre un ou plus élément(s) suivant(s) en tant que produit(s) ou intermédiaire(s) : -
• un acide gras à chaîne courte (AGCC)
• un lipide
• un dérivé d'indole ou de la sérotonine (par exemple la voie étant pour la conversion du tryptophane (Trp) en un ou plus dérivé(s) d'indole ou de la sérotonine)
• une hormones ou incrétine (par exemple GLP-1, ocytocine)
On peut citer à titre d’exemples de polymères synthétiques obtenus à partir de monomères biosourcés ceux choisis dans le groupe constitué par les polyhydroxyalkanoates (PHA), en particulier le polyhydroxybutyrate (PHB) et le poly(hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) (PHBV), le poly(acide lactique) (PLA), le poly(acide glycolique) (PGA), les poly(lactide-co-glycolide) (PLGA), les polymères obtenus par polymérisation de monomères lipidiques, et les polymères thermodurcis obtenus par réaction de monosaccharides, disaccharides, oligosaccharides et/ou alditols avec un acide polycarboxylique et/ou un polyaldéhyde.
Les polymères thermodurcis obtenus par réaction de monosaccharides, disaccharides, oligosaccharides et/ou alditols avec un acide polycarboxylique et/ou un polyaldéhyde sont bien connus dans le domaine des liants pour laines minérales et sont décrits en détail par exemple dans les demandes internationales WO2009/080938, WO2010/029266, WO2013/014399, WO2013/021112 et WO2015/132518 au nom de la Demanderesse.
Comme expliqué en introduction, il est également possible d’utiliser des polymères d’origine pétrochimique pour former la première couche en biopolymère des membranes de la présente invention du moment où ils sont biodégradables au sens de la norme NF EN 13432.
Les biopolymères biodégradables peuvent être choisis avantageusement dans le groupe constitué des polyesters aliphatiques homopolymères tels que la poly(caprolactone) (PCL) et le poly(butylène succinate) (PBS), des copolyesters aliphatiques tels que et le poly(butylène succinate-co-adipate), des copolyesters aromatiques tels que le poly(butylène adipate-co-téréphtalate) (PBAT) et des polyesteramides.
Tous les biopolymères constituant la première couche en biopolymère présentent un coefficient de perméabilité P 1 , déterminé à 23 °C dans des conditions sèches (environ 25 % d’humidité relative moyenne), supérieur ou égal à 300 Barrers, de préférence compris entre 300 et 50 000 Barrers, en particulier compris entre 400 et 30 000 Barrers, et idéalement entre 500 et 20 000 Barrers.
Ce coefficient de perméabilité est déterminé de la manière suivante : Cinq échantillons d’une même membrane d’épaisseur (E) sont scellés au moyen d’un produit de jointement au-dessus de coupelles d’essai contenant un dessicant (poudre de CaCl 2 imposant une humidité relative dans la coupelle d’environ 1 %). Un gabarit est disposé sur la surface des films préalablement à l’application du produit de jointement, afin de créer une zone d’échange, libre de tout produit de jointement et d’une aire définie (A). Différents produits de jointement peuvent être utilisés. Le produit de jointement est par exemple un mélange de 60 % de cire microcristalline et de 40 % de paraffine cristalline raffinée.
Les coupelles ainsi réalisées sont placées dans une chambre d’essai régulée en température (23 °C) et en humidité relative (50 %), également appelée enceinte climatique.
Du fait de la différence de pression partielle de vapeur (dP) régnant à l’intérieur des coupelles d’essai et dans la chambre, de la vapeur d’eau migre à travers la zone d’échange des membranes. Des pesées périodiques des coupelles sont effectuées afin de déterminer les débits de transmission de vapeur d’eau (Q) en régime stationnaire, puis, par calcul, le coefficient de perméabilité à la vapeur d’eau des films considérés, exprimé en Barrer. La moyenne des perméabilités mesurées sur les différents assemblages est alors calculée et correspond au coefficient de perméabilité P 1 susmentionné.
La première couche hydrophile de la membrane pare-vapeur de la présente invention est couverte sur une seule de ses deux faces d’une couche continue d’un polymère organique plus hydrophobe et moins perméable à la vapeur d’eau que la première couche en biopolymère. Le terme « continu » signifie ici que la deuxième couche couvre totalement ladite face de la première couche en biopolymère de manière à ce que cette face ne soit pas en contact avec l’atmosphère. Bien entendu, l’autre face de la première couche en biopolymère, non couverte par la deuxième couche, est en contact avec l’atmosphère environnante.
Le coefficient de perméabilité P 2 de la deuxième couche en polymère organique synthétique est au plus égal à 250 Barrers, de préférence compris entre 0,05 et 100 Barrers, en particulier entre 1,0 et 20 Barrers. Le coefficient de perméabilité est déterminé de la même manière que le coefficient P 1 .
Le polymère organique constituant la deuxième couche est choisi avantageusement dans le groupe constitué de polypropylène, polyéthylène, poly(éthylène-co-propylène), homopolymères et copolymères de monomères vinyliques choisis parmi le chlorure de vinyle, chlorure de vinylidène, fluorure de vinyle, fluorure de vinylidène, tétrafluoroéthylène et acrylonitrile.
Une membrane pare-vapeur avec une première couche constituée de cellulose, en particulier de cellulose régénérée, et d’une deuxième couche constituée de polyéthylène, de polypropylène, d’un copolymère éthylène-propylène ou de poly(chlorure de vinylidène), de préférence de poly(chlorure de vinylidène), est un mode de réalisation particulièrement préféré de la membrane pare-vapeur utilisée dans le procédé de la présente invention.
La partie active de la membrane pare-vapeur utilisée dans le procédé de la présente invention a avantageusement une épaisseur comprise entre 5,0 µm et 240 µm, de préférence entre 10 µm et 120 µm, en particulier entre 15 et 80 µm, ces valeurs correspondant à la partie active (bicouche) de la membrane mais n’englobent pas une éventuelle structure de renfort et/ou de protection.
De préférence, le mur ou la paroi de la pièce ou le mur du bâtiment dont il s’agit d’améliorer l’étanchéité à l’air sont isolés, c’est-à-dire recouverts, par un matériau isolant thermique et la membrane pare-vapeur est fixée sur le matériau isolant thermique ou incorporée dans le matériau isolant thermique. Dans un mode de réalisation du procédé d’amélioration de l’étanchéité à l’air d’un bâtiment ou d’une pièce d’un bâtiment, on applique par conséquent la membrane pare-vapeur de la présente invention en une position interne par rapport au matériau d’isolation thermique, de préférence en contact direct avec celui-ci. La fixation peut se faire par n’importe quel moyen approprié n’entamant pas significativement l’étanchéité à l’air de la membrane. Elle peut se faire par exemple par collage, agrafage ou au moyen d’un système de fixation mécanique par crochets et boucles textiles (en anglais hook and loop fastener ) de type scratch/Velcro ® .
Dans un autre mode de réalisation du procédé de la présente invention, la membrane pare-vapeur est intégrée dans le matériau isolant et fixée au mur de la pièce ou du bâtiment en même temps que celui-ci. La membrane est alors orientée parallèlement aux deux surfaces principales du matériau d’isolation et est située de préférence plus proche de la surface principale tournée vers l’intérieur de la pièce ou du bâtiment que de la surface principale tournée vers le mur.
Le matériau isolant thermique peut être n’importe quel matériau isolant perméable à la vapeur d’eau et englobe notamment les mousses et les matériaux à base de fibres. Il est de préférence en fibres minérales (laine minérale) ou en fibres organiques naturelles (fibres lignocellulosiques, ouate de cellulose, laine animale), synthétiques (fibres de polyester) ou artificiels. Il est de préférence en laine minérale.
Les deux fragments d'ADN gBlock et l'ADN de squelette linéarisé ont été fusionnés à l'aide du kit In-Fusion® HD Cloning de Takara Bio conformément aux instructions du fabricant. Des cellules bSNP2522 chimiquement compétentes ont été transformées avec l'ADN provenant du mélange réactionnel In-Fusion®. Des cellules transformées ont été dispersées sur des plaques de gélose LB+Tet 10 et laissées incuber pendant une nuit. Les plasmides ont été purifiés à partir de colonies individuelles à l'aide du kit QIAprep Spin Miniprep de Qiagen conformément aux instructions du fabricant et ensuite vérifiés par séquençage Sanger. Le clone positif a été enregistré en tant que plasmide pSNP1939. La liste complète des plasmides utilisés dans cette étude se trouve dans le Tableau 7, Annexe C .
Test d'expression GFP pour la caractérisation du promoteur inductible par le xylitol
Préparation de souches modèles
Les plasmides rapporteurs de la GFP construits (pSNP1902 et pSNP1903), le plasmide contenant le transporteur ABC du xylitol (pSNP1939) ainsi que les plasmides témoins (voir Tableau 7, Annexe C ) ont été transformés individuellement ou en combinaison dans les souches modèles E. coli MG1655 (bSNP230) et un isolat probiotique d’ E. coli (bSNP463) par électroporation. Les cellules transformées ont été dispersées sur des plaques de gélose LB+Spc 100 -, LB+Tet 10 - ou LB+Spc 100 +Tet 10 selon que les cellules ont été transformées avec le plasmide rapporteur de la GFP, le plasmide transporteur ABC du xylitol, ou les deux, respectivement. Les plaques ont été laissées à incuber pendant une nuit. Trois colonies de chaque souche ont été prélevées et utilisées comme triplicats biologiques dans le test d'expression gfp sur 24 heures qui a suivi.
Test d'expression gfp sur 24 heures
Des colonies triplicats ont été inoculées dans 5 ml de milieu LB ou 5 ml de bouillon de milieu minimal M9 (recette trouvée à l' Annexe D ) additionnés de Tet (10 μg ml-1) et/ou de Spc (100 μg ml-1) et laissées à incuber pendant la nuit (~16 heures) à 37°C et 250 tr/min. Les cultures auraient atteint des densités optiques (OD600) de 0,8±0,3 en milieu minimal M9 et de 1,4±0,2 en milieu LB.