INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Le mélangeur 31 n’est pas alimenté en dioxygène provenant de la source 30. Le mélangeur 31 est alimenté uniquement avec de l’air qui est aspiré dans l’air ambiant via la deuxième dérivation 6 et qui est acheminé jusqu’à l’entrée du mélangeur 31, dans la portion 40a de la boucle de recyclage 40 qui est en aval de la deuxième dérivation 6. Une combustion classique est ainsi réalisée dans l’installation de combustion 1 au moyen de cet air agissant comme gaz comburant.
Les fumées de combustion FC ne recirculent pas jusqu’au mélangeur 31 (vanne de recyclage V2 fermée) mais sont évacuées dans l’air ambiant en étant poussées par le ventilateur (ou compresseur) 10 dans la première dérivation 5 (vanne d’évacuation V3 ouverte).
Mode de fonctionnement M2 – « oxycombustion avec recyclage » – Figures 3 et 4
Dans ce mode de fonctionnement, la vanne V1 d’alimentation en dioxygène provenant de la source 30 et la vanne de recyclage V2 ont été ouvertes (O) par l’unité de commande 7. La vanne d’évacuation V3 est ouverte (O) (totalement ou partiellement – ) ou est fermée (F) ( ).
Dans l’exemple considéré, chaque organe accumulateur d’énergie mécanique agencé entre les éléments d’entrée 6 et de sortie 8 consiste en un ressort 9 qui est configuré pour aller à l’encontre du pivotement de l’élément d’entrée par rapport à l’élément de sortie. Le ressort 9 peut être courbe. Alternativement, le ressort 9 peut être un ressort droit. Chaque ressort 9 étant relié à l’une de ses extrémités alternativement à l’élément d’entrée 6 et à l’élément de sortie 8.
Le dispositif d’amortissement de torsion 1 comporte un voile annulaire disposé de telle sorte que sa périphérie est au contact, le cas échéant par des voiles intermédiaires des ressorts 9. Le voile peut assurer la transmission du couple entre les ressorts 9 et le limiteur de couple 4. Les ressorts 9 sont accessibles axialement via des fenêtres 64, 84 formées dans les premiers éléments d’entrée et de sortie, et ils sont maintenus radialement par une bordure périphérique de l’élément d’entrée 6 et par le voile annulaire de sorte qu’ils ne peuvent pas s’échapper.
Le limiteur de couple 4 est disposé radialement à l’intérieur de l’organe accumulateur d’énergie mécanique 9.
Tel que visible sur les figures 3 et 4, le limiteur de couple 4 comprend un premier élément métallique 10 et un deuxième élément métallique 11, 12, 13 pressé contre le premier élément métallique 10. Le disque 10 peut être confondu avec le voile qui vient d’être évoqué. Le limiteur de couple 4 comprend en outre un troisième élément métallique 11, 12, 13.
Tel que représenté sur la , le premier élément métallique 10 est un disque, le deuxième élément métallique 11, 12 est l’un parmi un couvercle 14 et un plateau de pression 16 et le troisième élément métallique 11, 12 est l’autre parmi le couvercle 14 et le plateau de pression 16. De manière arbitraire, nous considérerons que le deuxième élément métallique 11 est le plateau de pression 14 et que le troisième élément métallique 12 est le couvercle. En variante il est tout à fait possible que le deuxième élément métallique 12 soit le couvercle 16 et que le troisième élément métallique 11 soit le plateau de pression 14.
Le deuxième élément métallique 11 (plateau de pression 14) et le troisième élément métallique 12 (couvercle 16) sont agencés de manière à être opposés l’un à l’autre avec le premier élément métallique 10 (disque 10) pris en sandwich entre eux.
Le limiteur de couple 4 comprend également au moins un élément élastique 20, configuré pour assurer le positionnement axial des composants du limiteur de couple les uns par rapport aux autres. L’élément élastique peut notamment consister en une rondelle Belleville 20 interposée entre une face interne de la platine 82, associée au moyeu 81, et le plateau de pression 16. Dans l’exemple illustré, l’élément élastique comporte deux rondelles Belleville, sans que cela soit limitatif de l’invention.
Le couvercle 14 du limiteur de couple comporte une portion d’accueil radial 22, perpendiculaire à l’axe X de rotation et disposée axialement en regard du disque 10, une portion de fixation 24 plaquée contre la face interne de la platine 82 de l’élément de sortie 8, et une portion de renvoi 26 qui relie axialement la portion d’accueil 22 à la portion de fixation 24, de sorte que la portion d’accueil radial s’étend à distance de la platine 82 de l’élément de sortie 8 pour définir un logement pour le disque 10, le plateau de pression 16 et les rondelles Belleville 20.
Le limiteur de couple est délimité axialement par le couvercle 14 à une extrémité axiale et par la platine 82 à l’autre extrémité axiale et le couvercle 14 est disposé entre d’une part cette platine 82 formant partie de l’élément de sortie 8 et d’autre part l’élément d’entrée 6. De la sorte, le limiteur de couple 4 est selon l’invention interne au dispositif, c’est-à-dire intégré dans l’encombrement axial délimité par l’élément d’entrée et l’élément de sortie. Le limiteur de couple est situé dans la chaîne de transmission au plus près de la boîte de vitesse ce qui permet de limiter l’inertie en aval du limiteur de couple et donc de limiter l’arrivée de surcouple dans les composants de la chaîne de transmissions situés entre ledit limiteur de couple et les roues du véhicule. Cette architecture permet en outre d’obtenir un dispositif compact et particulièrement adapté pour les chaînes de transmission des moteurs hybrides.
Tel que cela est notamment plus visible sur la , les composants du limiteur de couple 4, autres que le couvercle 14, sont agencés entre ce couvercle 14 et la platine 82 de telle sorte que sont disposés axialement successivement la portion d’accueil radial 22 du couvercle 14, le disque 10, le plateau de pression 16 et les rondelles Belleville 20.
Le plateau de pression 16, rotatif autour de l’axe X, est apte à se déplacer axialement, notamment sous l’effet d’une contrainte exercée par les rondelles Belleville 20, pour se rapprocher de la portion d’accueil radial 22 du couvercle 14 et enserrer le disque 10.
Le plateau de pression 16 comporte au moins une languette de guidage 17 formant saillie radiale sur son pourtour interne et qui est dimensionnée pour être reçue dans une encoche formée dans la portion de renvoi 26 du couvercle 14. La coopération de la languette de guidage 17 et de l’encoche permet d’une part un positionnement angulaire correct de ces deux composants solides du limiteur de couple l’un par rapport à l’autre et une bonne transmission du couple de rotation le cas échéant, et permet d’autre part un guidage axial du plateau de pression 16 sous l’effet de la contrainte exercée par les rondelles Belleville 20.
Tel qu’évoqué précédemment, une ou plusieurs rondelles Belleville 20 sont interposées axialement entre la platine 82 associée au moyeu 81 de l’élément de sortie 8 et le plateau de pression 16. Plus particulièrement, une rondelle Belleville 20 est ici en appui sur la face du plateau de pression 16 opposée à la face de ce plateau de pression 16 qui fait face au disque 10. Cette rondelle Belleville 20 permet de maintenir en appui le plateau de pression 16 contre le disque et la portion d’accueil radial 22 du couvercle contre ce même disque. Plus particulièrement, chaque rondelle Belleville 20 est précontrainte de manière à exercer en permanence une pression axiale prédéterminée sur le plateau de pression 16 permettant le pincement du disque 10 entre ce plateau de pression 16 et le couvercle 14, du fait de la fixation du couvercle 14 sur la platine 82 associée au moyeu 81.
En est représenté un limiteur de couple 4 selon un deuxième mode de réalisation similaire au limiteur de couple de la à la différence qu’il ne comprend pas de plateau de pression 16. Ainsi, l’élément élastique 20 appuie directement sur le disque 10 sans pièce intermédiaire.
Dans cet exemple, le premier élément métallique 10 est un disque, le deuxième élément métallique 11, 13 est l’un parmi le couvercle 14 et l’élément élastique 20 et le troisième élément métallique 11, 13 est l’autre parmi le couvercle 14 et l’élément élastique 20.
Lors de l’étape d’hydrocraquage b) du procédé de l’invention, la conversion par passe en produits ayant des points d’ébullition inférieurs à 220°C, de préférence inférieurs à 180°C, et de manière alternative, inférieurs à 150°C, est supérieure à 10% en poids, de manière encore plus préférée comprises entre 15 et 75% en poids, de manière très préférée entre 25 et 60%. La conversion par passe est ici calculée par rapport à la charge entrant dans l’étape a).
Conformément à l’invention, l’étape b) d’hydrocraquage opère en présence d’au moins un premier catalyseur d’hydrocraquage, c’est-à-dire qu'il est également possible d'utiliser des enchainements de 2 ou plusieurs catalyseurs d'hydrocraquage. De préférence, le premier catalyseur d’hydrocraquage est choisi parmi les catalyseurs classiques d’hydrocraquage connus de l‘Homme du métier.
Les premiers catalyseurs d’hydrocraquage utilisés dans les procédés d’hydrocraquage sont tous du type bifonctionnel associant une fonction acide à une fonction hydrogénante. La fonction acide est apportée par des supports de grandes surfaces (150 à 800 m 2 .g -1 généralement) présentant une acidité superficielle, telles que les alumines halogénées (chlorées ou fluorées notamment), les combinaisons d'oxydes de bore et d'aluminium, les silice-alumines amorphes et/ou les zéolithes. La fonction hydrogénante est apportée soit par un ou plusieurs métaux du groupe VIII de la classification périodique des éléments, soit par une association d'au moins un métal du groupe VIB de la classification périodique et au moins un métal du groupe VIII.
De préférence, le premier catalyseur d'hydrocraquage comprend une fonction hydrogénante composé d'au moins un métal du groupe VIB et au moins un métal du groupe VIII de la classification périodique, pris seuls ou en mélange, ledit catalyseur étant un catalyseur phase sulfure.
Le ou les métaux du groupe VIB sont choisis parmi le chrome, le molybdène et le tungstène, seul ou en mélange et de préférence choisi parmi le molybdène et le tungstène. De préférence, la teneur en métal du groupe VIB dans le ou les catalyseurs d'hydrocraquage est avantageusement comprise entre 5 et 35% en poids et de préférence entre 10 et 30% en poids, de manière très préférée entre 15 et 22% en poids, les pourcentages étant exprimés en pourcentage en poids d’oxydes.
Le ou les métaux du groupe VIII sont choisis parmi le fer, le cobalt, le nickel, le ruthénium, le rhodium, le palladium et le platine, et de préférence parmi le cobalt ou le nickel. De préférence, la teneur en métal du groupe VIII dans le ou les catalyseurs d’hydrocraquage est avantageusement comprise entre 0,5 et 15,0% poids et de préférence entre 2,0 et 10,0% en poids, de manière très préférée entre 2,5 et 6,0% en poids, les pourcentages étant exprimés en pourcentage en poids d’oxydes.
Le ou les premiers catalyseurs peuvent également éventuellement au moins un élément promoteur déposé sur le catalyseur choisi dans le groupe formé par le phosphore, le bore et le silicium, éventuellement au moins un élément du groupe VIIA (chlore, fluor préférés), éventuellement au moins un élément du groupe VIIB (manganèse préféré), et éventuellement au moins un élément du groupe VB (niobium préféré).
De préférence, le ou les premiers catalyseurs d’hydrocraquage comprennent une fonction acide choisie parmi l’alumine, la silice alumine et les zéolithes, de préférence choisies parmi les zéolithes Y et de préférence choisi parmi la silice alumine et les zéolithes.
Dans un mode de réalisation préféré, l’étape b) est un hydrocraquage en lit fixe.
Etape c) de séparation gaz/liquide Le procédé selon la présente invention comprend une étape c) de séparation gaz/liquide de l’effluent issu de l’étape b) pour produire un effluent liquide et un effluent gazeux comprenant au moins de l’hydrogène.
L’étape de séparation gaz/liquide peut être réalisée dans n’importe quel séparateur gaz/liquide connu de l’homme du métier tel que : un ballon séparateur horizontal ou vertical, etc., cette liste n’étant pas exhaustive.
De préférence, l’étape c) de séparation gaz/liquide est mise en œuvre dans un séparateur haute température et haute pression opérant à une température comprise entre 50 et 450°C, préférentiellement entre 100 et 400°C, encore plus préférentiellement entre 200 et 300°C, et une pression correspondant à la pression de sortie de l’étape b) diminuée des pertes de charges.
Dans un mode de réalisation, l’effluent gazeux comprenant au moins de l’hydrogène issu de l'étape c) est envoyé dans une étape de compression avant son recyclage dans au moins l’étape a) d’hydrotraitement et/ou b) d'hydrocraquage première étape.
Cette étape de compression est nécessaire pour permettre le recyclage du gaz en amont c’est-à-dire dans l’étape a) d’hydrotraitement et/ou b) d'hydrocraquage première étape, donc à pression plus élevée.
Le recyclage du gaz peut également être effectué vers l’étape f) d’hydrocraquage seconde étape.
L’effluent gazeux comprenant au moins de l’hydrogène peut avantageusement être mélangé avec de l’hydrogène d’appoint avant ou après son introduction dans l’étape de compression, de préférence via un compresseur d’hydrogène d’appoint ou de « make up » selon la terminologie anglo-saxonne.
Mesure de la viscosité : La viscosité des compositions peut être mesurée à l’aide d’un Rhéomètre (Rhéomat RM200).
On effectue la mesure à l’aide d’un élément immergé (mobile ou corps de mesure) tournant à une vitesse choisie et constante. La mesure est effectuée avec un ensemble produit à analyser - godet - corps de mesure à une température de consigne donnée, régulée par exemple à l’aide d’un bain thermostatique.
60 ml de la composition à tester est introduit dans le godet en évitant l’introduction d’air et en versant le long de la paroi.
Le mobile utilisé pour faire les mesures est choisi selon la viscosité du produit à analyser :
- M1 : lotion ;
- M2 : lait fluide ;
- M3 : crème, lait épais ; et/ou
EXEMPLE 3 : Production d’une protéine d'intérêt à partir d’un plasmide mobilisable dans la souche 'bactérie de production' (souche receveuse) b52
Des cellules receveuses transconjugantes (cellules b52 contenant le plasmide p1364) ont été produites comme décrit dans l'Exemple 2. Les transconjugants, contenant la construction exprimant la sfGFP avec une matrice CRISPR autociblante, le plasmide conjugatif p1364, a été cultivé dans un milieu LB à et OD600 de 1. Une souche b52 exempte de plasmide a été cultivée au même niveau pour être utilisée comme témoin négatif/d’autofluorescence. Chaque culture a été transférée sur une plaque de microtitrage et mesurée dans un lecteur de plaque Synergy™ H1. La production de la sfGFP a été quantifiée en utilisant et une longueur d'onde d'excitation de 485 nm et une longueur d'onde d'émission de 510 nm.
Les résultats sont illustrés en . La fluorescence de la GFP a été déterminée dans des cellules b52 hébergeant le plasmide p1364 et dans des cellules témoins b52 dépourvues du plasmide à OD = 0,7. La fluorescence de la GFP a été environ cinq fois supérieure à la fluorescence de fond de la souche témoin b52, montrant une expression fiable de la sfGFP
EXEMPLE 4 : Retrait du plasmide conjugatif de la souche réc e ptrice b52
Des cellules transconjugantes b52 (de l'Exemple 2) portant le plasmide p1364 ont été cultivées avec une sélection pour p1364 (kanamycine) pendant 2 h et ensuite lavées dans du LB pour retirer les antibiotiques résiduels.
La culture remise en suspension a ensuite été divisée en deux portions de 1 ml et des inducteurs (1 % d'arabinose, 10 mM de rhamnose) ont été ajoutés à l'un des tubes pour induire le mécanisme de Cas autociblante. Juste après l'induction, les cellules de chacune des cultures ont été étalées sur des plaques LB (sans ajout d’inducteur, instant 0). Par la suite, des échantillons issus de chaque tube (induit et non induit) ont été étalés sur des plaques LB à des instants : 1h et 24h après induction. Toutes les plaques ont été incubées pendant une nuit, après quoi la proportion de cellules exprimant la sfGFP a été déterminée par comptage de colonies dans un transilluminateur à lumière bleue (365 nm, transilluminateur à UV de paillasse, VWR®).
Les résultats sont représentés en et montrent la proportion de cellules positives à la GFP au fil du temps pour les cultures induites et non induites. L'induction du système CRIPSR et de la matrice correspondante sur p1364 permettent un curage rapide du plasmide autociblant. Le système permet > 70 % de curage du plasmide en 1 h et > 95 % du plasmide purgés en 24 h.
Pour valider que la perte de la sfGFP a bien été due à la perte de plasmide, une PCR spécifique au squelette plasmidique a été réalisée sur 14 colonies sélectionnées au hasard à partir de la plaque de l’instant 24h. Voir l'image de gel résultant en .
EXEMPLE 5 : Tuer la souche donneuse par CRISPR
Une construction de plasmide conjugatif a été faite qui pourrait être introduite dans des cellules hôtes pour produire des cellules donneuses. Le plasmide sera un vecteur pour un gène d'intérêt (par exemple GFP dans les exemples ci-dessus) et une CRISPR/matrice autociblante pour cibler le plasmide dans des cellules receveuses après qu'il ait été transféré par conjugaison des cellules donneuses aux receveuses.
Le plasmide a été modifié de manière à ce que, lors de l'induction du système CRISPR/cas avec de l'arabinose, le plasmide soit capable de cibler le génome des cellules hôtes. Le plasmide a été fabriqué en utilisant le plasmide RP4 comme point de départ. La Cascade Cas3 d' E. coli de Type I-E inductible par l'arabinose suivie d'une matrice CRISPR pour produire un ARN guide ciblant le gène chromosomique lptA d' E. coli a été intégrée dans le plasmide RP4 par recombinaison.
Le système Cas et la matrice avec le promoteur arabinose ont été amplifiés en même temps qu’un gène de résistance à la spectinomycine et araC à partir d'un vecteur de clonage les contenant.
Le produit du PCR ont été flanqués de bras d'homologie qui permettaient l'insertion de la cassette CRISPR/cas-araC-Spectinomycine dans le gène de la tétracycline de RP4.
Une recombinaison a été effectuée. Brèivement, les cellules JKE201 avec un allèle mutant lptA, non ciblé par la matrice, qui contenaient le plasmide de recombinaison apSIM5 ont été cultivées jusqu'à une OD de 0,5 dans du LB additionné de DAP et de chloramphénicol. Ensuite, le système lambda RED a été induit à 42 °C pendant 15 minutes et la culture a été placée sur de la glace pour préparer les cellules à la transformation par lavage dans de l'eau MiliQ froide. Des cellules ont été transformées avec le produit du PCR à 18 kv et récupérées pendant 12 h avant d'être étalées sur des plaques sélectives contenant du DAP et de la spectinomycine. Les clones recombinants résultants ont été confirmés par PCR.
Un clone positif ainsi que JKE201 avec le plasmide RP4 de type sauvage (témoin négatif sans CRISPR/Cas) a été cultivé dans du LB liquide avec de la spectinomycine pendant 4 heures. Des cellules MG1655 de type sauvage ont été cultivées jusqu'à la même OD et mélangées avec les JKE201/RP4::Cas et JKE201/RP4 pour permettre le transfert et l'amplification du plasmide dans cette souche. Les mélanges ont été remis en suspension dans du LB sans DAP pour retirer la souche donneuse JKE201 initiale. La population résultante de MG1655 (cellules donneuses de plasmide nouvellement formées) contenant le plasmide a maintenant été étalée sur des plaques LB avec et sans arabinose (arabinose pour l'induction CRISPR/cas) pour activer l'autociblage et la mise à mort des cellules donneuses en coupant la cible lptA comprise par dle chromosome donneur. La population contenant le plasmide RP4 de type sauvage a été étalée sur le même milieu comme témoin. Après une nuit d'incubation, les cellules survivantes ont été dénombrées et présentées en .
Les résultats illustrés en démontrent qu'une contre-sélection robuste d'une souche avec une ou plus cible(s) d'intérêt peut être effectuée lors de l'induction du CRISPR/cas. Le plasmide conjugatif ayant subi une modification présenté ici a été capable de discriminer entre deux souches étroitement liées dans une culture mixte, ce qui suggère qu'il sera utile pour le retrait précis de la souche donneuse dans un contexte de microbiome, comme in vivo chez un sujet humain ou animal. Avec des cibles supplémentaires ajoutées à la matrice, plusieurs cibles peuvent être touchées simultanément. Une approche multi-cible est la mise en œuvre idéale d'une stratégie de bioconfinement étroit, combinant essentiellement les deux approches de ciblage du génome de la cellule donneuse et du plasmide présentées ici, qui permettra le retrait complet du produit (voie) d'intérêt du microbiome d'une manière contrôlable.
De préférence le(s)dit(s) acide(s) se trouve(nt) sous une forme acide dans la composition.
Plus particulièrement, la teneur en acide phytique et/ou acétique, exprimée en matière active, varie de 0,1 à 6%, plus de particulièrement de 0,2 à 5 % en poids % en poids, par rapport au poids total de la composition
EAU ET SOLVANTS HYDROSOLUBLES La composition peut éventuellement comprendre de l’eau. Il peut s’agir d’une eau déminéralisée, ou encore d’une eau florale telle que l'eau de bleuet et/ou une eau minérale telle que l'eau de VITTEL, l'eau de LUCAS ou l'eau de LA ROCHE POSAY et/ou d’une eau thermale.
MATIERE COLORANTE La composition selon l’invention peut éventuellement comprendre au moins une matière colorante, synthétique, naturelle ou d’origine naturelle.
1861 aagaaatatc atttattcca atgccactca tatcaactaa atttgatggc tcgcatgaat
1921 ttgaaataaa aaaatggaaa gatgttaaaa aaggttatac acactttgct aatggtgata
1981 tcgctattgc aaaaataaca ccttgctttg aaaatagtaa agcagctatt ttttctggct
2041 taaaaaacgg cattggtgtt ggaacaacag aattacatgt tgcacgccct tttagcgata
2101 taattaatcg aaaatatctt cttttaaact ttaaatcacc taattttctt aagtctggtg
2161 aatcacaaat gactggttct gctggtcaga aacgtgttcc aaggtttttt tttgaaaata
2221 atcctattcc cttccctcca ttgcaagaac aagagcgcat tattattagg tttactcaat
2281 taatgtctct ctgcgaccaa ctggaacagc aatccctaac cagtctggac gcacatcagc
2341 aactggttga aaccctgttg ggaacactta cagacagcca aaacgtcgag gaactggctg
2401 aaaactgggc gcgtattagc gagcatttcg acacactatt taccactgaa gccagcgtgg
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2521 cgaatgacga acccgcctct gaactgctca aacgtattgc gcagaaaaaa gcgcaattgg
2581 tgaaagaagg gaaaataaaa aaacaaaaac cgttgccgcc aattagtgat gaggaaaaac
2641 cgtttgaact gccggaaggg tgggagtggt gtcgattggg ttctatttat aattttttaa
2701 atggatatgc ctttaaaagt gagtggttta cctctgtcgg tttacgttta ttgcggaatg
2761 ctaacattgc tcatggagtt accaattgga aagatgttgt acatatacca aatgacatga
La méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre les systèmes RM de type I, de type II ou de type III, et optionnellement de multiples systèmes, tels que le type I et le type II, le type I et le type III ou le type II et III, ou tous les trois.
La méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM présent dans l'une quelconque des bactéries Staphylococcus, Streptococcus, Pseudomonas, Salmonella, Listeria, E coli, Desulfovibrio ou Clostridium . Par exemple, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM trouvé dans E coli . Par exemple, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM trouvé dans C difficile . Par exemple, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM trouvé dans K pneumoniae . Par exemple, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM trouvé dans P aeruginosa . Par exemple, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM trouvé dans S typhimurium . Par exemple, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase qui protège contre un système RM trouvé dans H pylori .
La MTase peut être toute MTAse qui protège contre un système RM trouvé dans une espèce bactérienne divulguée dans le Tableau 1 de WO 2017/211753 A1, laquelle liste est spécifiquement incorporée ici par référence.
La MTase peut être une MTase d' Enterobacteriaceae telles que E. coli, Salmonella, Yersinia pestis, Klebsiella, Shigella, Proteus, Enterobacter, Serratia et Citrobacter .