INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La présente invention vise également une boîte de transmission de puissance comportant un dispositif mécanique tel que précédemment décrit. La boîte de transmission de puissance comporte un carter dans lequel est agencé le dispositif mécanique et au fond duquel est situé un liquide de lubrification. La deuxième liaison mécanique est positionnée au-dessus du liquide de lubrification lorsque la boîte de transmission de puissance se trouve à une position de référence.
En effet, aucun mouvement relatif n’étant présent entre les premières dents et les dents de liaison ainsi qu’entre les deuxièmes dents et les dents de liaison, aucune lubrification de la deuxième liaison mécanique n’est nécessaire. De plus, le faible encombrement axial de la deuxième liaison mécanique évite, malgré une longueur minimale significative de l’arbre intermédiaire nécessaire pour permettre une mesure précise du couple transmis, que cette deuxième liaison mécanique soit situé en dessous du niveau de liquide de lubrification, et donc au moins partiellement dans le liquide de lubrification, évitant de plus le phénomène de barbotage de la deuxième liaison mécanique dans le liquide de lubrification.
La position de référence est par exemple une position horizontale de la boîte de transmission de puissance dans un repère terrestre, par exemple lorsqu’un véhicule comportant cette boîte de transmission de puissance est arrêté sur un sol horizontal.
La présente invention vise enfin un aéronef comportant une boîte de transmission de puissance telle que précédemment décrite, la boîte de transmission de puissance étant agencée entre au moins un moteur et au moins un rotor de l’aéronef.
Un tel aéronef est par exemple un aéronef à voilure tournante comportant un ou plusieurs moteurs et un ou plusieurs rotors, tels qu’un rotor de sustentation et un rotor auxiliaire anticouple ainsi qu’une boîte de transmission de puissance permettant au ou aux moteurs d’entraîner en rotation le ou les rotors.
la , un aéronef selon l’invention, la , une vue en coupe d’un dispositif mécanique selon l’invention, la , une vue en perspective d’un arbre intermédiaire du dispositif mécanique selon la , la , une vue en perspective d’un pignon de sortie du dispositif mécanique selon la , la , une vue en perspective d’un anneau d’entraînement du dispositif mécanique selon la , la , une vue en coupe de la deuxième liaison mécanique du dispositif mécanique selon la , la , une vue en perspective d’une variante de l’anneau d’entraînement, et la , une vue en coupe d’une boîte de transmission de puissance selon l’invention.
La représente un aéronef 100 à voilure tournante de type giravion. Cet aéronef 100 peut comporter une cellule 101, un rotor principal 105 participant au moins partiellement à la sustentation de l’aéronef 100 et éventuellement un rotor auxiliaire 106 agencé à l’extrémité d’une poutre de queue 102 ainsi qu’une boîte de transmission de puissance 10. La boîte de transmission de puissance 10 est entraînée en rotation par une installation motrice 110 munie d’au moins un moteur 111,112 et entraîne en rotation le rotor principal 105 ainsi qu’éventuellement le rotor auxiliaire 106 permettant ainsi de transmettre une puissance mécanique du ou des moteurs 111,112 au rotor principal 105 ainsi qu’éventuellement au rotor auxiliaire 106.
Par exemple et dans ce cadre, la boîte de transmission de puissance 10 comporte d’une part, au moins un arbre d’entrée 11 relié à l’installation motrice 110 et d’autre part, un mat 12 relié au rotor principal 105. Un arbre de sortie (non représenté) de la boîte de transmission de puissance 10 peut aussi être relié au rotor auxiliaire 106.
L'invention concerne également un bactériophage ou phagémide ou plasmide produit par le procédé ci-dessus dans la souche de production.
Chaque MTase décrite ici peut être une MTase de type 1, de type II ou de type III. Dans un exemple, au moins une MTase de Type I est utilisée.
Une MTase peut être fournie en cis et/ou trans.
Lorsque plusieurs MTases sont fournies, celles-ci peuvent être fournies en cis (par ex. sur le plasmide conjugatif ou le phage ou le phagémide qui est apporté à une cellule cible), ou en trans (par ex. par un plasmide non conjugatif corésident dans une cellule souche de production ou cellule support), ou les deux.
Dans un aspect, la MTase est une MTase Eco0015, (une MTase de Type I) qui méthyle au sein de la séquence de reconnaissance CCANNNNNNNCTTC.
L'invention concerne également toute MTase qui méthyle au sein de la séquence de reconnaissance CCANNNNNNNCTTC
Dans un aspect, la MTase est une MTase EcoK1, (de type I) qui méthyle au sein de la séquence de reconnaissance AACNNNNNNGTGC
L'invention concerne également toute MTase qui méthyle au sein de la séquence AACNNNNNNGTGC
D'autres méthylases qui peuvent être codées sur le phage, le plasmide conjugatif ou la souche de production comprennent M. EcoA1, M. EcoAO831, M.EcoMII, M.EcoMIII, M1 M2 Eco31I, M.Eco1167.
L'invention concerne également toute MTase qui méthyle au sein d’une séquence suivante. Ces séquences sont, par exemple, associées à la MTase comme répertorié ci-dessous : M.EcoAI G A GNNNNNNNG T CA M.EcoAO83I GGANNNNNNNNATGC M.EcoMII RT A CNNNNG T G M.EcoMIII AAAGNNNNGTT M1 M2 Eco31I GG T C TC M.Eco1167 YTC A NNNNNNGTTY M.EcoRII C C WGG
En particulier, nous avons identifié la prévalence de ces sites comme suit : Identifiant REBASE Séquence de reconnaissance* Type Prévalence dans les isolats d'E. coli** EcoMII RT A CNNNNG T G I 147 EcoAI G A GNNNNNNNG T CA I 48 EcoKI A A CNNNNNNG T GC I 38 EcoAO83I GGANNNNNNNNATGC I 34 EcoMIII AA A GNNNNG T T I 157 Eco0015 CCANNNNNNNCTTC I 55 Eco1167 YTCANNNNNNGTTY I 29 M1.Eco31I GG T CTC II 177
* séquence de reconnaissance avec A méthylé en gras et T correspondant à l’A méthylé sur le brin complémentaire souligné (en l’absence d’indication : les bases méthylées n'ont pas été déterminées)
** prévalence dans une collection de 932 isolats cliniques d'E. coli au total
Les systèmes RM les plus répandus trouvés dans la séquence génomique des isolats cliniques d'E. coli ont reçu un identifiant basé sur une identité minimale de 99,5 % des acides aminés avec les séquences décrites dans REBASE (http://rebase.neb.com/rebase/rebase.html)
Dans tout aspect, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase provenant d'une souche ou d'une espèce bactérienne pathogène.
Dans tout aspect, la méthyltransférase peut être une méthyltransférase provenant d'une bactérie associée à une corrosion bactérienne ou à un encrassement biologique.
Optionnellement, les Cas, protéines Cascade, ARNg et ARNc sont des Cas, protéines Cascade, ARNg et ARNc d’ E. coli K12 (MG1655), respectivement. Optionnellement, le vecteur est dépourvu de séquences nucléotidiques codant pour les protéines Cas1 et Cas2.
Dans des modes de réalisation, par l'action de P2 (par exemple les composants (a) et/ou (b)) dans les cellules porteuses, la croissance ou la prolifération des cellules porteuses est réduite (par exemple d'au moins 40, 50, 60, 70, 80, ou 90 % par rapport à une croissance en l'absence de P2).
Par exemple, les cellules porteuses peuvent être comprises par un médicament pour le traitement ou la prévention d'une maladie ou d'une affection chez un humain ou un animal ; un agent promoteur de croissance destiné à être administré à des animaux pour favoriser leur croissance ; la mise à mort de bactéries zoonotiques chez les animaux ; pour administration au bétail en tant que pesticide ; un pesticide à appliquer sur des plantes ; ou un engrais à végétaux.
Un avantage peut être que les cellules porteuses peuvent être utilisées en tant que cellules productrices dans lesquelles des vecteurs de l'invention peuvent être répliqués (par exemple avant (par exemple in vitro ) et/ou après l'administration au sujet).
Ex emples de plasmides
Un procédé de distribution d'un vecteur peut être par conjugaison bactérienne, un processus naturel par lequel une bactérie donneuse (bactérie porteuse) transfère de l'ADN plasmidique d'elle-même à une bactérie réceptrice (bactérie cible). Les bactéries donneuses élaborent une structure de surface, le pilus qui peut être considéré comme une seringue ou une paille pour boire à travers laquelle l'ADN est distribué. Le pilus donneur se lie à la surface d'un receveur réceptif et cet événement déclenche le processus de transfert d'ADN. Les plasmides conviennent pour ce procédé conjugatif, où le plasmide comprend de l'ADN codant pour l'agent de l'invention.
Le transfert d'ADN par conjugaison ne peut avoir lieu qu'avec un « receveur sensible », mais ne se produit généralement pas avec un receveur porteur d'un type similaire de plasmide. Parce que la conjugaison se fait via un pont pilus, il est possible que ce pont ne s’attache non pas à un receveur mais à la bactérie donneuse. Cela pourrait entraîner un cycle futile de transfert de l'ADN plasmidique sur lui-même. Les plasmides codent donc naturellement pour des facteurs d'incompatibilité. L'une est une protéine matricée en surface qui empêche le pilus de se lier à la bactérie présentant cette protéine de surface telle qu'elle-même ou toute autre bactérie portant le même plasmide. De plus, les plasmides codent naturellement pour un autre système d'incompatibilité qui régule étroitement le nombre de copies du plasmide à l'intérieur d'une bactérie. Ainsi, si un événement de conjugaison parvient à échapper à l'exclusion de surface et commence à transférer l'ADN par conjugaison, le receveur empêchera ce plasmide de s'établir car il maintient déjà le nombre de copies courant et n'acceptera pas et maintenir une autre copie supplémentaire indésirable.
Dans un exemple de l'invention, le plasmide est un membre d'un groupe d'incompatibilité plasmidique, la cellule cible ne comprenant pas de plasmide dudit groupe. Optionnellement, le plasmide de l'invention est un membre du groupe d'incompatibilité P (c-à-d que le plasmide est un plasmide incP). Par exemple, parmi les Enterobacteriaceae , voici une liste non exclusive de plasmides potentiels qui pourraient être utilisés pour la distribution : IncFI, IncFII, IncFIll, IncFIV, IncFV, IncM, Inc9, InclO, Incl, IncA, IncB, IncC, IncH, IncIa, InclIc, IncI2, IncIy, IncJ, IncL, IncN, Inc2e, IncO, IncP, IncS, IncT et/ou IncW . Ainsi, optionnellement, la cellule cible est une cellule d'Enterobacteriaceae et le vecteur de l'invention est un plasmide, le plasmide étant sélectionné parmi un IncFI, IncFII, IncFIll, IncFIV, IncFV, IncM, Inc9, InclO, Incl, IncA, IncB, IncC, IncH, IncIa, InclIc, IncI1, IncI2, IncIy, IncJ, IncL, IncN, Inc2e, IncO, IncP, IncS, IncT et IncW .
De préférence, le sujet est un humain ou un animal et le plasmide est un plasmide IncI , par exemple un plasmide IncI1 ou IncI2 .
Dans un exemple, la cellule porteuse de l'invention comprend deux ou plus plasmides, chaque plasmide comprenant un ADN qui code pour un P1 et P2 respectif (P1/P2 peuvent être le même dans les cellules ou les cellules peuvent comprendre différents P1 et/ou P2). Optionnellement, un premier desdits plasmides est un membre d'un premier groupe d'incompatibilité, la cellule cible ne comprenant pas de plasmide dudit premier groupe, et un deuxième desdits plasmides est un membre d'un deuxième groupe d'incompatibilité, la cellule cible ne comprenant pas de plasmide dudit deuxième groupe. Par exemple, une cellule porteuse peut comprendre un plasmide incP codant pour P1 et P2 (par exemple un système CRISPR-Cas ou un composant de celui-ci (par exemple codant pour un premier ARNcr ou ARN guide qui cible une première séquence de protoespaceur du vecteur)) et la cellule porteuse comprenant en outre un plasmide incF1 (par exemple codant pour P1 et P2 (par exemple un système anti-cellule porteuse CRISPR-Cas ou un composant de celui-ci (par exemple codant pour un deuxième ARNcr ou ARN guide qui cible une séquence de protoespaceur du génome de la cellule porteuse)). Les protoespaceurs peuvent comprendre différentes séquences nucléotidiques. Optionnellement, la cellule porteuse comprend un groupe de plasmides comprenant 2, 3, 4, 5, 6 ou plus types différents de plasmides, chaque plasmide étant capable d'être transféré conjugativement jusque dans une cellule cible, les plasmides codant pour différents produits P1 et/ou P2. Par exemple, les plasmides codent pour différents ARNc ou ARNg qui ciblent différents protoespaceurs compriss par le vecteur, la cellule porteuse et/ou le génome de la cellule cible. Par exemple, le groupe de plasmides comprend jusqu'à n types différents de plasmides, les plasmides étant membres de jusqu'à n groupes d'incompatibilité différents, par exemple des groupes sélectionnés parmi IncFI, IncFII, IncFIll, IncFIV, IncFV, IncM, Inc9, InclO, Incl, IncA, IncB, IncC, IncH, IncIa, InclIc, IncI2, IncIy, IncJ, IncL, IncN, Inc2e, IncO, IncP, IncS, IncT et IncW . Par exemple, n=2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 ou 10.
Par exemple, la cellule porteuse comprend (i) un premier vecteur (par exemple plasmide) qui code pour un P2 qui est un premier type de système CRISPR/Cas qui cible un premier protoespaceur compris par le vecteur, ou code pour un composant dudit système ; et (ii) un deuxième vecteur (par exemple un plasmide) qui code pour un P2 qui est un deuxième type de système CRISPR/Cas qui cible un deuxième protoespaceur compris par le vecteur ou le génome de la cellule porteuse (par exemple une séquence chromosomique de la cellule porteuse), ou code pour un composant dudit système, les premier et deuxième types étant différents. Par exemple, le premier type est un système de Type I et le deuxième type est un système de Type II (par exemple le premier vecteur code pour une Cas3, Cascade et un ARNcr ou un ARN guide qui fonctionne avec les Cas3 et Cascade dans la cellule cible pour modifier le premier protoespaceur ; et le deuxième vecteur code pour une Cas9 et un ARNcr ou ARN guide qui est utilisable avec la Cas9 dans la cellule cible pour modifier le deuxième protoespaceur). Dans une alternative, les Cas3 et Cascade sont codés par des gènes d’une cellule cible endogène, le premier vecteur codant pour l'ARNcr ou l'ARN guide qui est utilisable avec les Cas3 et Cascade endogènes dans la cellule cible pour modifier le premier protoespaceur. Dans une alternative, la Cas9 est codée par un gène d’une cellule cible endogène, le deuxième vecteur codant pour l'ARNcr ou l'ARN guide qui est utilisable avec la Cas9 endogène dans la cellule cible pour modifier le deuxième protoespaceur. Optionnellement, les Cas3 et Cascade sont codées par des gènes endogènes de la cellule cible et la Cas9 est codé par le deuxième vecteur.
Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur (par exemple un plasmide) codant pour un système CRISPR/Cas de Type I (ou un composant de celui-ci, par exemple une Cas3 ou un ARNcr ou un ARNg) et un deuxième vecteur (par exemple un plasmide) codant pour un système CRISPR/Cas de Type III (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type I (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type IV (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type I (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type I (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type VI (ou un composant de celui-ci).
Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type II (ou un composant de celui-ci, par exemple une Cas9 ou un ARNcr ou un ARNg) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type III (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type II (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type IV (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type II (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type II (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type VI (ou un composant de celui-ci).
Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci, par exemple une Cas12a ou un ARNcr) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type III (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type IV (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation un premier vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci) et un deuxième vecteur codant pour un système CRISPR/Cas de Type VI (ou un composant de celui-ci).
Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation des premier et deuxième vecteurs (par exemple des plasmides), codant chacun pour un système CRISPR/Cas de Type I (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation des premier et deuxième vecteurs, codant chacun pour un système CRISPR/Cas de Type II (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation des premier et deuxième vecteurs, codant chacun pour un système CRISPR/Cas de Type III (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation des premier et deuxième vecteurs, codant chacun pour un système CRISPR/Cas de Type IV (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation des premier et deuxième vecteurs, codant chacun pour un système CRISPR/Cas de Type V (ou un composant de celui-ci). Au lieu d'un système de Type I et de Type II, l'invention propose alternativement dans un mode de réalisation des premier et deuxième vecteurs, codant chacun pour un système CRISPR/Cas de Type VI (ou un composant de celui-ci).
Optionnellement, les plasmides sont des membres de groupes d'incompatibilité différents, par exemple des groupes sélectionnés parmi IncFI, IncFII, IncFIll, IncFIV, IncFV, IncM, Inc9, InclO, Incl, IncA, IncB, IncC, IncH, IncIa, InclIc, IncI1, IncI2, IncIy, IncJ, IncL, IncN, IncI2, IncO, IncP, IncS, IncT et IncW . Dans un exemple ici, la cellule cible est une cellule d' Enterobacteriaceae .
La présente invention offre une solution à une telle étanchéification en proposant un demi-boitier pour un moteur électrique comprenant un ensemble rotor/stator à flux axial, le demi-boitier présentant une forme annulaire centrée autour d’un axe et comprenant au moins une première paroi et une deuxième paroi s’étendant axialement autour de l’axe, au moins une troisième paroi s’étendant radialement autour de l’axe et joignant la première paroi à la deuxième paroi, et au moins une membrane s’étendant radialement autour de l’axe, la première paroi, la deuxième paroi, la troisième paroi et la membrane délimitant une zone de réception configurée pour recevoir au moins partiellement un stator de l’ensemble rotor/stator, la première paroi et la deuxième paroi comprenant chacune une première face orientée vers la zone de réception, la membrane comprenant au moins un anneau axial en regard d’au moins une première face de la première paroi ou de la deuxième paroi, caractérisé en ce que le demi-boitier comprend au moins un dispositif d’étanchéité assurant une étanchéité entre la membrane et la première face de la première paroi ou de la deuxième paroi.
Un tel demi-boitier permet ainsi de contenir au moins un bobinage du stator et la membrane vient se refermer sur ledit bobinage afin de former un bain pour un fluide de refroidissement sans que celui-ci puisse fuir et perturber le fonctionnement du rotor. Le dispositif d’étanchéité empêche le fluide de refroidissement de s’écouler entre la membrane et les parois.
La première paroi et la deuxième paroi s’étendent circonférentiellement autour de l’axe et présentent préférentiellement une forme circulaire. Une dimension de la section circulaire de la première paroi est supérieure à une dimension circulaire de la deuxième paroi, définissant ainsi les dimensions axiales de la forme annulaire du demi-boitier. Ces dimensions axiales sont telles que le rotor et le stator puissent être contenus dans le demi-boitier ou dans le boitier. La troisième paroi vient fermer partiellement une extrémité axiale de la première paroi et de la deuxième paroi à l’exception de l’ouverture centrée autour de l’axe évoquée précédemment. La première paroi, la deuxième paroi et la troisième paroi définissent ainsi partiellement la zone de réception qui est alors délimitée par la dimension radiale de la deuxième paroi et par la dimension axiale de la première paroi. La membrane vient refermer la zone de réception et s’étend principalement de manière parallèle à la troisième paroi.
La première face de la première paroi et de la deuxième paroi correspond à la face orientée vers la zone de réception. C’est donc au niveau de cette première face que le dispositif d’étanchéité interagit. L’anneau axial de la membrane s’étend donc principalement en regard de l’une de ces premières faces. L’anneau axial s’étend principalement de manière axiale, ce qui permet d’avoir davantage de surface en regard de la première face de la première paroi ou de la deuxième paroi et ainsi de garantir un agencement du dispositif d’étanchéité assurant une étanchéité optimale.
Avantageusement, la membrane comprend deux anneaux axiaux, chacun étant en regard d’une première face parmi celles de la première paroi et de la deuxième paroi, garantissant ainsi l’étanchéité au niveau des deux parois axiales. Le dispositif d’étanchéité vient ainsi rendre étanche un interstice entre la membrane et la première paroi et/ou entre la membrane et la deuxième paroi. Le fluide de refroidissement est ainsi maintenu dans la zone de réception et ne vient pas interagir avec le rotor.
Avantageusement, la membrane est composée d’une matière étanche la moins épaisse possible. En effet, les entrefers, c’est-à-dire les dimensions axiales entre le rotor et les bobinages du stator, doivent être d’une dimension la plus faible possible. L’épaisseur de la membrane est donc limitée par ces entrefers de manière à éviter un contact avec le rotor. De plus la membrane doit résister à la pression exercée par le fluide de refroidissement qui est d’environ 2 bars. La membrane peut par exemple être en fibre de verre tissé. Le fluide de refroidissement peut quant à lui être par exemple de l’huile.