INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Selon une autre caractéristique possible, le premier patin 11 et le deuxième patin 12 peuvent être reliés transversalement à une traverse arrière 2. Par exemple, une première branche descendante 2a et une deuxième branche descendante 2b de cette traverse arrière 2 peuvent être fixées respectivement au premier patin 11 et au deuxième patin 12 par des moyens de fixation 3 usuels. Ces moyens de fixation 3 peuvent comprendre des manchons par exemple.
La traverse arrière 2 peut être continue. Une portion sommitale arrière 2c est alors agencée entre la première branche descendante 2a et la deuxième branche descendante 2b de la traverse arrière 2. La portion sommitale arrière 2c de la traverse arrière 2 peut alors être fixée à la structure du giravion 100 via au moins un moyen de fixation 6 usuel.
Alternativement, la traverse arrière 2 peut être discontinue et alors dépourvue de la portion sommitale arrière 2c. Chaque branche descendante 2a,2b peut alors être attachée à la structure via au moins un moyen de fixation usuel.
Le premier patin 11 et le deuxième patin 12 peuvent être reliés transversalement à une traverse avant 4. La traverse avant 4 possède une première branche descendante 4a pouvant être fixée au premier patin 11 par une pièce de jonction 5 usuelle, par exemple de type manchon. De plus, la traverse avant 4 possède une deuxième branche descendante 4b pouvant être fixée au deuxième patin 12 par une pièce de jonction 5 usuelle, par exemple de type manchon.
La traverse avant 4 peut être discontinue ou continue en comprenant une portion sommitale avant 4c agencée entre les première et deuxième branches descendantes 4a, 4b voire peut être fixée à la structure du giravion 100 via au moins un moyen de fixation 6 usuel.
Le premier patin 11, le deuxième patin 12, la traverse avant 4 et la traverse arrière 2 peuvent comprendre chacune un unique tube ou plusieurs tubes assemblés les uns aux autres.
Selon un autre aspect, la traverse avant 4 peut être fixée à chaque patin 11,12 sensiblement entre l’extrémité avant de chaque patin 11,12 et la traverse arrière 2, ou peut s’étendre entre les deux portions avant précitées selon l’exemple illustré avec des pointillés.
Selon une autre caractéristique, la première partie longitudinale d’appui 111 et la deuxième partie longitudinale d’appui 121 sont respectivement prolongées selon le sens arrière 401, 402 associé par une première patinette 41 et une deuxième patinette 42. Chaque patinette 41,42 s’étend longitudinalement d’une extrémité proximale du côté d’une partie longitudinale d’appui 111,121 jusqu’à une extrémité libre.
Les figures 2 à 4 illustrent des vues d’une patinette pouvant être indifféremment la première patinette 41 ou la deuxième patinette 42.
En référence à la , lorsque le train d’atterrissage 1 repose sur un sol 200, chaque patinette 41, 42 comprend une face inférieure 46, 47 en vis-à-vis du sol 200, voire en contact avec le sol 200. Chaque face inférieure 46, 47 est courbée longitudinalement et transversalement vers le sol 200, chaque face inférieure 46, 47 ayant une forme doublement convexe vue du sol 200.
Dès lors, la première patinette 41 comprendre une première face inférieure 46 en vis-à-vis du sol 200. La première face inférieure 46 est en outre courbée selon deux directions différentes et non parallèles, voire orthogonales.
Ainsi, la première face inférieure 46 peut être courbée longitudinalement. Dès lors, la première face inférieure 46 présente une section longitudinale dite « première section longitudinale 51 » incurvée dans un plan longitudinal vertical dit « premier plan longitudinal vertical P3 », ce premier plan longitudinal vertical P3 passant par la première partie longitudinale d’appui 111 et étant orthogonal au plan de sustentation P2.
Eventuellement et en s’éloignant de la première partie longitudinale d’appui 111, la première patinette 41 est courbée afin de se rapprocher du sol 200 jusqu’à un point bas dit « premier point bas 56 » puis remonte pour s’éloigner du plan de sustentation P2. Le premier point bas 53 peut être situé sous le plan de sustentation P2.
De même, la deuxième face inférieure 47 peut être courbée longitudinalement. Dès lors, la deuxième face inférieure 47 présente une section longitudinale dite « deuxième section longitudinale 52 » incurvée dans un plan longitudinal vertical dit « deuxième plan longitudinal vertical P4 », ce deuxième plan longitudinal vertical P4 passant par la deuxième partie longitudinale d’appui 121 et étant orthogonal au plan de sustentation P2.
La complexité d’installation et de maintenance d’un système de surveillance selon l’invention est faible notamment par rapport à des systèmes immergés puisqu’il peut être placé au-dessus des bassins.
Dans un mode de réalisation particulier maintenant considéré, dont le fonctionnement est représenté en , le système de surveillance de la comprend en outre un bloc 11 de capture d’images du spectre visible, appelé ci-après imageur 11 visible, adapté pour enregistrer les rayonnements et restituer des images des rayonnements reçus notamment dans la bande du spectre visible, typiquement entre 380 et 780 nm, ou dans un sous-ensemble de ce spectre visible.
Dans un mode de réalisation, les optiques des imageurs 10 et 11 ont le même angle de vue pour couvrir des zones équivalentes, et couvrir l’ensemble de la zone aquatique que l’on souhaite surveiller. Avantageusement, le système 1 de surveillance du bassin est placé au-dessus de celui-ci afin de limiter les effets de reflet pour l’acquisition par l’imageur 11 visible.
Dans ce mode de réalisation mettant en œuvre deux imageurs 10 et 11, les résolutions de chacun des imageurs pourront être très différentes. Afin de minimiser le coût du système global, on peut en effet prévoir un imageur 11 visible présentant une grande résolution (notamment pour permettre un tracking de bonne qualité des personnes présentes dans la zone aquatique) et se contenter d’un imageur SWIR 10 de plus faible résolution et de moindre coût. En effet, il n’est pas nécessaire d’avoir une image SWIR très résolue pour faire de la détection d’une personne partiellement immergée ; on peut donc réduire le coût du système global en utilisant un capteur SWIR de faible résolution. On peut également prévoir que les imageurs 10 et 11 aient des champs de vision différents ; l’imageur SWIR peut par exemple avoir un champ de vision limité au bassin, et l’imageur visible un champ plus large, notamment pour dénombrer les personnes aux abords du bassin.
Dans un mode de réalisation, le dispositif de surveillance 12 commande l’imageur SWIR 10 et l’imageur visible 11 pour que chacun des deux imageurs 10, 11 prenne une image du bassin 2 toutes les T secondes. Et toutes les T secondes, les étapes suivantes sont mises en œuvre par le système de surveillance 1 au cycle Tswir1 :
Le procédé 200 de surveillance associé est représenté en . A l’étape 201, une image « visible » du bassin 2 est capturée par l’imageur du domaine visible 11 et est fournie au dispositif de surveillance 12 (optionnellement une image SWIR de référence est en outre fournie au dispositif de surveillance 12, afin qu’il détecte le contour du bassin d’eau, en détectant les limites de la zone noire dans l’image SWIR).
A l’étape 202, le dispositif de surveillance 12 effectue un traitement algorithmique de cette image visible pour déterminer le nombre de personnes n s sortant du bassin sur cette image, par exemple en les identifiant sur le contour du bassin 2 et en identifiant si le devant de leur corps est tourné vers le bassin 2 ou l’extérieur du bassin (les contours du bassin sont optionnellement identifiés à l’aide de l’image SWIR fournie à l’étape 201).
A l’étape 203 qui, suivant les modes de réalisations, s’effectue parallèlement à l’étape 202 ou s’effectue avant ou après l’étape 202, le dispositif de surveillance 12 effectue un traitement algorithmique de cette image visible pour déterminer le nombre de personnes n e entrant dans le bassin 2 sur cette image (là encore les contours du bassin sont optionnellement identifiés à l’aide de l’image SWIR fournie à l’étape 201).
Dans une étape 204, le dispositif de surveillance 12 actualise la valeur d’un compteur comptant le nombre N1 de personnes dans le bassin 2 en ajoutant à la valeur courante du compteur le nombre n e et en retranchant le nombre n s .
Par ailleurs, par exemple en parallèle des étapes 201 à 204, les étapes 301 et 302 sont mises en œuvre au cycle Tswir1.
Dans l’étape 301, une image SWIR du bassin 2 est capturée par l’imageur SWIR 10 et est fournie au dispositif de surveillance 12.
Dans l’étape 302, comme vu précédemment en référence à l’étape 101, le dispositif de surveillance 12 détermine, par traitement d’images algorithmique, le nombre N2 de personnes figurant sur ladite image SWIR fournie par l’imageur SWIR 10 (N2 est le nombre de personnes non complètement immergées).
Dans un mode de réalisation, la valeur déterminée N2 est ensuite optionnellement remplacée par une « moyenne glissante » de N2, calculée par moyennage de la valeur N2 déterminée sur plusieurs images SWIR, les dernières obtenues (par exemple pendant la dernière seconde), au cours des étapes 302 des derniers cycles (pour filtrer les petites submersions inhérentes aux activités aquatiques.
Dans l’étape 303, le dispositif de surveillance 12 compare le nombre N2 (selon les modes de réalisation, moyenné ou non) déterminé à l’étape 302 avec le nombre N1 actualisée à l’étape 204.
Dans une étape 304, si N2 a été déterminé comme strictement inférieur à N1 lors de l’étape de comparaison 303, alors :
– si au cycle précédent, N1 avait été déterminé égal à N2 lors de l’étape de comparaison, alors le dispositif de surveillance arme un chronomètre (le chronomètre mesure les secondes, ou encore le nombre de cycles) ;
Dans un mode de réalisation, la solution de soude ou la potasse utilisée à l’étape b) est concentrée à 10 % (p/v) en poids sec de soude ou de potasse par rapport au poids total de la solution de soude ou de potasse.
Dans un mode de réalisation, au moins une des étapes b), d) et/ou, e) est réalisée à chaud.
Dans un mode de réalisation, l’ensemble des étapes b), d) et e) sont réalisées à chaud.
Au sens de la présente invention, on entend par étape de procédé réalisée « à chaud » toute étape réalisée à une température supérieure à 90°C
Dans un mode de réalisation, l’étape b), est réalisée à une température supérieure ou égale à 100°C.
Dans un mode de réalisation, l’étape b) est réalisée à une température supérieure à température d’environ 120°C.
Dans un mode de réalisation, l’étape c), est réalisée à une température supérieure ou égale à 100°C.
Dans un mode de réalisation, l’étape c) est réalisée à une température supérieure à température d’environ 120°C.
Dans un mode de réalisation, l’étape e), est réalisée à une température supérieure ou égale à 100°C.
Dans un mode de réalisation, l’étape e) est réalisée à une température supérieure à température d’environ 120°C.
Dans un mode de réalisation, les étapes b), c), d) et d) sont réalisées à une température supérieure ou égale à 100°C.
Dans un mode de réalisation, les étapes b), c), d) et d) sont réalisées à une température supérieure à température d’environ 120°C.
La réalisation des étapes de procédé à chaud permet d’abaisser la viscosité du milieu réactionnel, de réaliser la saponification des acides gras et des glycérides de façon quasi totale et dans un temps relativement court par rapport à une réaction qui serait réalisée à moins de 90°C. De même, une température élevée évite la cristallisation de l’extrait selon l’invention ce qui aurait pour conséquence outre une altération du rendement, le bouchage de l’installation, jusqu’à l’impossibilité de vidanger le réacteur afin de récupérer l’extrait selon l’invention.
La demanderesse de manière particulièrement surprenante et inattendue a réussi à abaisser de manière significative la teneur relative en alcools triterpéniques et en stérols et/ou méthyl stérols de l’extrait de beurre de karité selon l’invention en mettant en œuvre l’étape c) à chaud.
De manière générale, l’emplacement 3 et le bloc absorbant 7 sont en communication fluidique.
Et, selon l’invention, le dispositif d’analyse rapide 1 comprend un capuchon 8 délimitant un volume interne 8’ apte à envelopper le bloc absorbant 7.
Le boîtier 2 et le capuchon 8 coopèrent ensemble par le biais de moyens d’assemblage 9 autorisant une manœuvre du capuchon 8 entre deux positions :
- une première position dans laquelle le capuchon 8 est écarté par rapport au bloc absorbant 7, utile notamment pour recueillir l’échantillon biologique ( ), et
- une seconde position, dans laquelle le bloc absorbant 7 est logé (avantageusement sans être comprimé) dans le volume interne 8’ du capuchon 8 (figures 1 et 3).
Et le capuchon 8 comporte au moins un orifice traversant 81 qui débouche au sein du volume interne 8’ et qui est adapté à l’introduction d’un réactif liquide dans le volume interne 8’ du capuchon 8 dans la seconde position précitée.
Généralité Par « détection », on entend ainsi avantageusement la détermination qualitative (avantageusement la présence ou l'absence), voire quantitative, d’un ou plusieurs analytes dans un échantillon biologique.
Par « analyte », on entend toute entité chimique, biochimique, ou biologique, que l'on souhaite détecter dans un échantillon biologique.
Cette entité chimique consiste avantageusement en une entité issue du monde vivant, de préférence du monde végétal ou du monde animal, de préférence encore présent chez l’être humain.
Parmi les analytes détectés par le système et le procédé selon la présente invention, on citera notamment les protéines, les peptides, les anticorps, les hormones, les stéroïdes, les antigènes dérivés d'agents infectieux ou de cellules tumorales, les agents infectieux tels que les bactéries, les virus ou les parasites, les acides nucléiques (ADN ou ARN), les composés thérapeutiques, les drogues ou encore les antibiotiques.
Par « agent infectieux », on entend de préférence :
- les virus, notamment les virus responsables de pneumopathies, avantageusement les Coronaviridae, de préférence encore Orthocoronavirinae ou coronavirus,
- les parasites, par exemple les parasites du genre Plasmodium .
Par « coronavirus », on englobe le SARS-CoV, le MERS-CoV ou le SARS-CoV-2.
Par « échantillon biologique », on entend avantageusement tout échantillon prélevé sur un individu (humain ou animal notamment) et dans lequel l’analyte est recherché.
Cet échantillon biologique peut notamment être tout fluide biologique ou corporel, et de préférence un échantillon biologique salivaire ou prélèvement salivaire (la salive est un liquide biologique sécrété par les glandes salivaires, à l'intérieur de la bouche).
Dans un mode de réalisation particulier, l’ARNm cible peut être au moins l’un choisi parmi les ARNm des sous-unités neuronales α1 à α10 du récepteur nicotinique et les ARNm des sous-unités neuronales β1 à β10 du récepteur nicotinique.
Dans un mode de réalisation à titre d’exemple, l’ARNm cible peut être choisi dans le groupe consistant en les ARNm du groupe de sous-unités neuronales α du récepteur nicotinique de Acyrthosiphon pisum , à savoir les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α1 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 1, n° accession : XM_008182407.3), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α2 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 2, n° accession : XM_008182417.3), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α3 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 3, n° accession : XM_008187942.3), les ARNm codant pour les isoformes de la sous-unité neuronale α4 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 4, n° accession : XM_029490651.1 ; SEQ ID NO :5, n° accession : XM_029490650.1), les ARNm codant pour les isoformes de la sous-unité neuronale α6 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 6, n° accession : XM_016809607.2 ; SEQ ID NO : 7, n° accession : XM_016809606.2), les ARNm codant pour les isoformes de la sous-unité neuronale α7 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 8, n° accession : XM_001945189.5 ; SEQ ID NO : 9, n° accession : XM_029490468.1 ; SEQ ID NO : 10, n° accession : XM_008187756.3 ; SEQ ID NO : 11, n° accession : XM_016806826.2 ; SEQ ID NO : 12, n° accession : XM_029490467.1 ; SEQ ID NO : 13, n° accession : XM_016806827.2), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α8 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 14, n° accession : XM_001949983.5), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α9 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 15, n° accession : XM_016807628.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α10 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 16, n° accession : XM_016807463.2), et leurs isoformes.
Dans un autre mode de réalisation à titre d’exemple, l’ARNm cible peut être choisi dans le groupe consistant en les ARNm du groupe de sous-unités neuronales β du récepteur nicotinique de Acyrthosiphon pisum , à savoir les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β1 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 17, n° accession : XM_029487953.1) et les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β2 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 18, n° accession : XM_001945029.5), et leurs isoformes.
Dans un mode de réalisation à titre d’exemple, l’ARNm cible peut être choisi dans le groupe consistant en les ARNm du groupe de sous-unités neuronales α du récepteur nicotinique de Periplaneta americana , à savoir les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α1 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 19, n° accession : KP725463.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α2 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 20, n° accession : KP725464.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α3 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 21, n° accession : KR021292.1), les ARNm codant pour les isoformes de la sous-unité neuronale α4 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 22, n° accession : JN390946.1; SEQ ID NO : 23, n° accession : JN390945.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α5 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 24, n° accession : GFCQ01005211.1), les ARNm codant pour les isoformes de la sous-unité neuronale α6 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 25, n° accession : JF731243.1; SEQ ID NO : 26, n° accession : JX466887.1; SEQ ID NO : 27, n° accession : JX466888.1; SEQ ID NO : 28, n° accession : JX466889.1; SEQ ID NO : 29, n° accession : JX466890.1), les ARNm codant pour les isoformes de la sous-unité neuronale α7 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 30, n° accession : MW201211.1; SEQ ID NO : 31, n° accession : JF731242.1; SEQ ID NO : 32, n° accession : MK790056.1; SEQ ID NO : 33, n° accession : JX466891.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α8 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 34, n° accession : MW201212.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale α9 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 35, n° accession : MW201214.1), et leurs isoformes.
Dans un autre mode de réalisation à titre d’exemple, l’ARNm cible peut être choisi dans le groupe consistant en les ARNm du groupe de sous-unités neuronales β du récepteur nicotinique de Periplaneta americana , à savoir les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β1 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 36, n° accession : MW201213.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β2 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 37, n° accession : GFCQ01032711.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β3 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 38, n° accession : GFCQ01027461.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β4 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 39, n° accession : GAWS02039241.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β5 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 40, n° accession : GFCQ01009686.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β6 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 41, n° accession : GFCQ01010089.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β7 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 42, n° accession : GFCQ01012153.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β8 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 43, n° accession : GFCQ01034959.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β9 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 44, n° accession : GBJC01015771.1), les ARNm codant pour la sous-unité neuronale β10 du récepteur nicotinique (SEQ ID NO : 45, n° accession : GFCQ01027794.1), et leurs isoformes.
A cet effet, l’ARN double brin ou oligonucléotide antisens simple brin peut être administré par un mode d’administration topique, par pulvérisation, par vaporisation, par l’intermédiaire de nanoparticules de type nanoparticules lipidiques, chitosane, liposomes, niosomes, dendrimères cationiques, de lipoplexes, par voie alimentaire, par piégeage dans une boîte appât, par irrigation des cultures.
Dans un mode de réalisation, l’insecte nuisible peut être au moins l’un choisi parmi les insectes phytophages, les insectes saprophages et détritiphages, les insectes prédateurs, les insectes parasites et les insectes commensaux, les insectes hématophages, en particulier parmi les insectes phytophages, plus particulièrement Helicoverpa armigera , Bemisia tabaci , Plutella xylostella , Tribolium castaneum , Myzus persicae , Spodoptera frugiperda , Aphis gossypii , Nilaparvata lugens , Spodoptera exigua , Ceratitis capitata , Cydia pomonella , Acyrthosiphon pisum , Diaphorina citri ou Thrips tabaci .
En particulier, l’insecte nuisible est Acyrthosiphon pisum .
Le puceron est l’une des espèces d’insectes ravageurs les plus destructrices de culture à ce jour. Il existe environ 5000 espèces de pucerons dans le monde dont 100 sont des ravageurs ayant un impact économique significatif par la destruction de cultures. Les dégâts causés par ces insectes sont dus, d’une part, à une descendance importante par puceron qui peut se reproduire par parthénogénèse et, d’autre part, au fait que ces insectes sont des piqueurs-suceurs qui se nourrissent de la sève des plantes causant de possibles retards de croissance, des décolorations ou encore des déformations des plantes, et qui peuvent transmettre des virus. Plus précisément, le puceron du pois A. pisum colonise de nombreuses légumineuses cultivées, lesquelles représentent environ 13% des surfaces cultivées dans le monde. Ce puceron est responsable de centaines de millions de dollars de pertes tous les ans.
Dans un autre mode de réalisation particulier, l’insecte nuisible est Periplaneta americana.
Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, l’ARN double brin ou oligonucléotide antisens peut être administré en alimentant au moins un insecte avec un organisme transgénique exprimant l’ARN double brin ou l’oligonucléotide antisens.
A cet effet, l’organisme transgénique peut être une plante transgénique.
Des exemples de plante transgénique comprennent des légumineuses, comme le pois, le haricot, le pois chiche, la lentille, la fève, la féverole, le soja, la luzerne, le lupin, le sainfoin, le lotier, les trèfles ou la vesce, des céréales, comme le blé, le maïs, le sorgho, le seigle, l’orge, l’avoine ou le riz, mais également des plants de fruits et de légumes.
L’invention concerne également une composition insecticide pour insectes nuisibles, la composition comprenant un ARN double brin ou un oligonucléotide antisens et au moins l’un parmi un agent de transfection et un solvant, dans laquelle ledit ARN double brin ou oligonucléotide antisens comprend une séquence nucléotidique qui est au moins à 90% identique avec au moins une partie de la séquence d’un ARNm cible, l’ARNm cible étant choisi dans le groupe comprenant les séquences codantes des gènes du groupe de sous-unités neuronales α du récepteur nicotinique, des gènes du groupe de sous-unités neuronales β du récepteur nicotinique, et de leurs isoformes, les séquences nucléotidiques des gènes codant pour les protéines et molécules auxiliaires du récepteur nicotinique, et leurs isoformes, ou pour une protéine de l’interactome du récepteur nicotinique.
La composition de l’invention est destinée à être administrée par un mode d’administration topique, par pulvérisation, par vaporisation, par l’intermédiaire de nanoparticules de type nanoparticules lipidiques, chitosane, liposomes, niosomes, dendrimères cationiques, de lipoplexes, par voie alimentaire, par piégeage dans une boîte appât, par irrigation des cultures.