INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
On comprend bien que dans la configuration assemblée : - à l’une de leurs extrémités, les éléments de blocage 30, 40 sont en butée contre une surface d’extrémité 61A (cf. et ) du fût 61, - tandis qu’à l’autre de leurs extrémités, les éléments de blocage 30, 40 sont susceptibles de venir en butée contre l’étrier d’articulation 50 du bras de levage 5 (cf. ). Il est préférable, bien que non obligatoire, que ce soient les extrémités qui portent les plaques rapportées 38 qui soient disposées en regard de l’étrier d’articulation 50, car alors le risque de glissement de ces extrémités sur l’étrier d’articulation 50 est moindre. On précise qu’en variante, un seul des éléments de blocage 30, 40 pourrait présenter les plaques rapportées 38.
En tout état de cause, de cette manière, le vérin de levage 6 est empêché de se rétracter en dessous d’une extension minimale définie par la longueur des portions allongées 31A, 31B, et le bras de levage 5 est ainsi empêché de revenir vers sa position abaissée représentée sur la . Ainsi, un opérateur peut intervenir sans danger sur une partie de la machine de manutention 1 qui est située sous le bras de levage 5.
On précise qu’en variante, le nombre de tenons 32, 33, 34 et de mortaises 35, 36, 37 peut être différent de trois, du moment que les éléments de blocage 30, 40 peuvent être assemblés l’un à l’autre comme on vient de le décrire.
En outre, en variante, les éléments de blocage 30, 40 peuvent être assemblés de toute autre façon convenable, par exemple à l’aide de vis. L’assemblage décrit ci-dessus au moyen des tenons 32, 33, 34 et des mortaises 35, 36, 37 est toutefois préférable car il est particulièrement aisé à effectuer et ne nécessite pas d’outil.
Dans une variante non représentée, le fût 61 peut être monté articulé sur le bras de levage 5 tandis que le cylindre 62 est monté articulé sur le châssis 2. L’utilisation du dispositif de blocage 20 dans ce cas est identique à celle décrite précédemment.
Les éléments de blocage 30, 40 peuvent être embarqués à bord de la machine de manutention 1 dans un compartiment prévu à cet effet. Par exemple ce compartiment peut être situé dans la cabine de conduite 4 ou situé sur un côté du châssis 2.
Toutefois, il est préférable que les éléments de blocage 30, 40 soient fixés au châssis 2 à un emplacement qui est situé sous le bras de levage 5 et qui est accessible lorsque le bras de levage 5 est levé. En référence maintenant à la et à la , on décrit un exemple de fixation des éléments de blocage 30, 40 selon ce principe.
Comme cela est représenté schématiquement sur la , le châssis 2 peut comporter deux longerons 500. Les longerons 500 s’étendent parallèlement l’un à l’autre. De façon connue en soi et non représentée, le bras de levage 5 est monté pivotant entre les deux longerons 500. L’axe X1 est ainsi perpendiculaire aux longerons 500. De préférence, les longerons 500 s’étendent parallèlement à la direction longitudinale de la machine de manutention 1, de sorte que l’axe X1 est orienté horizontalement et transversalement.
Toujours en référence à la , une plaque de support 510 s’étend entre les deux longerons 500, par exemple perpendiculairement aux deux longerons 500. La plaque de support 510 peut être rapportée aux longerons 500 ou à un autre élément du châssis 2. La plaque de support 510 est située sous le bras de levage 5 lorsque celui-ci est dans sa position abaissée représentée sur la et la . La plaque de support 510 et les longerons 500 délimitent ainsi un espace 800 (cf. ) sous le bras de levage 5, cet espace 800 devenant accessible lorsque le bras de levage 5 est levé.
En référence à la et à la , une plaquette de fixation 600, dont une seule est représentée sur la , est rapportée à chacun des longerons 500 et/ou à la plaque de support 510. La plaquette de fixation 600 porte un trou traversant (non référencé) qui est conformé pour recevoir une vis moletée 80. D’autre part, en référence à la , chacun des éléments de blocage 30, 40 comporte un trou traversant 311, ici pratiqué sur la portion allongée 31A, pour recevoir la vis moletée 80. Ainsi, chacun des éléments de blocage 30, 40 peut être fixé au châssis 2, simplement en positionnant le trou traversant 311 en regard du trou traversant de la plaquette de fixation 600, puis en insérant et en serrant la vis moletée 80.
En variante, les éléments de blocage 30, 40 au châssis 2 dans l’espace 800 peuvent être fixés aux longerons 500 dans l’espace 800 de toute autre façon convenable, par exemple à l’aide de vis. La fixation décrite ci-dessus au moyen de la vis moletée 80 et de la plaquette de fixation 600 est toutefois préférable car elle est particulièrement aisée à effectuer et ne nécessite pas d’outil.
Selon un mode de réalisation, le connecteur peut comprendre au moins une portion cylindrique avec une fente apte à recevoir le circuit imprimé.
L’assemblage du connecteur et du circuit imprimé est ainsi facilité.
Selon un mode de réalisation, l’élément de transition peut comprendre au moins une portion ayant une surface interne de section en cône coupé, les diamètres extrêmes de ladite surface interne dépendant d’une épaisseur du circuit imprimé d’une part et d’une dimension transversale du guide plastique d’autre part.
Un tel mode de réalisation permet de faciliter l’insertion du guide en plastique dans l’ensemble de connexion, et évite les erreurs de manipulation.
Selon un mode de réalisation, le circuit imprimé peut être apte à :
- émettre un signal de transmission depuis la première piste pour une transmission dans le guide en plastique, et recevoir un signal de réception depuis le guide en plastique pour une réception sur la deuxième piste, les signaux de transmission et de réception étant centrés sur une même fréquence ;
- émettre un premier signal de transmission depuis la première piste pour une transmission dans le guide en plastique, et émettre un deuxième signal de transmission depuis la deuxième piste pour une transmission dans le guide en plastique, les premier et deuxième signaux de transmission étant centrés sur une même fréquence ;
- recevoir un premier signal de réception et un deuxième signal de réception depuis le guide en plastique, le premier signal de réception étant reçu sur la première piste et le deuxième signal de réception étant reçu sur la deuxième piste, les premier et deuxième signaux de réception étant centrés sur une même fréquence.
Il est ainsi rendu possible d’utiliser un guide d’ondes en plastique pour transporter des signaux polarisés orthogonalement, ce qui rend possible une communication bidirectionnelle via un seul guide d’ondes, ou de doubler le débit de communications unidirectionnelles.
illustre un ensemble de connexion selon un mode de réalisation;
illustre un connecteur et un élément de transition d’un ensemble de connexion selon un mode de réalisation ;
est une vue tridimensionnelle d’un ensemble de connexion selon un mode de réalisation ;
est une première vue en coupe d’un ensemble de connexion selon un mode de réalisation de l’invention ;
est une deuxième vue en coupe d’un ensemble de connexion selon un mode de réalisation de l’invention
est une vue avant d’une partie mâle d’un connecteur d’un ensemble de connexion selon un mode de réalisation de l’invention ;
Parallèlement, l’effet de l’interférence ARN a été évaluée sur la quantité de protéine par western-blot. Les protéines ont été extraites dans un tampon RIPA (Tris-HCl 50 mM, pH 8, NaCl 150 mM, Nonidet P-40 1 %, désoxycholate de sodium 0,1 %, SDS 0,1 %) complété par de l’orthovanadate de sodium 1 mM et un cocktail inhibiteur de protéase (SIGMA ALDRICH). Les lysats ont été centrifugés pendant 10 min à 14 000 g à 4 °C pour éliminer les débris cellulaires. Les protéines ont été séparées par SDS-PAGE, puis transférées sur une membrane de fluorure de polyvinylidène (EMD-MILLIPORE). La membrane a été bloquée avec 5 % de lait écrémé dans un tampon salin tamponné Tris (TBS) contenant 0,1 % de TWEEN-20, et incubé avec un anticorps anti-GPRC5A (HPA007928, SIGMA ALDRICH) au 1:250 et un anticorps anti-actine (C4, MAB1501, SIGMA ALDRICH) au 1:5000 pendant une nuit à 4 ° C. La membrane a été incubée avec des anticorps secondaires pendant 1 h à température ambiante : anticorps de chèvre anti-lapin-HRP (170-6510, BIO-RAD) ou un anticorps de chèvre anti-souris-HRP (170-6516, BIO-RAD) au 1:10000. La fixation d'anticorps a été détectée par le système de chimiluminescence SUPER SIGNAL WEST PICO PLUS (THERMO FISHER SCIENTIFIC) en utilisant la caméra Fusion Fx (VILBER LOURMAT).
Les résultats ont montré que, consécutivement à la transfection avec le siARN GPRC5A ou la transduction par le shARN GPRC5A, l’expression du gène GPRC5A est diminué de l’ordre de 70% dans les différentes souches cellulaires [Fig 3a et 3e]. Dans des conditions similaires, une diminution franche de la quantité de protéine GPRC5A est observable dans les kératinocytes primaires et dans la lignée N/TERT-1 [Fig 3b et 3f].
En vue de déterminer l’impact de cette inactivation sur les kératinocytes, la prolifération de ces derniers a été déterminée suite à l’inactivation du gène GPRC5A. Dans le détail, le taux de prolifération cellulaire des kératinocytes transfectés avec le siNT ou le siGPRC5A ou transduis avec le lentivirus shCTR ou shGPRC5A a été mesuré à l'aide du kit de test d'ADNdb QUANT-IT™ PICOGREEN™ (THERMO FISHER SCIENTIFIC). Pour celà, 10 4 cellules ont été ensemencées dans des micro-plaques 96 puits et la concentration d'ADN a été évaluée à 1, 2 et 3 jours après l'ensemencement conformément aux instructions du fabricant.
Les résultats ont montré que l’inactivation du gène GPRC5A n’a pas d’impact sur la prolifération des kératinocytes [Fig 3c et 3g].
La détermination de la capacité d’adhérence des kératinocytes primaires a également été déterminée suite à l’inactivation du gène GPRC5A.
Dans le détail, le test d'adhérence a été réalisé selon la méthode au Percoll (GOOWIN & PAULI, J Immunol Methods 1995). Des plaques à 96 puits ont été recouvertes soit de 100 µg/ml de collagène de type I (THERMO FISHER SCIENTIFIC) soit d'albumine de sérum bovin (BSA) à 1% dans une solution saline tamponnée au phosphate (PBS) (témoin négatif). Les cellules ont été détachées avec 10 mM d'EDTA pendant 10 min à 37°C et lavées deux fois avec du milieu sans sérum. Ensuite, 2,5x10 4 cellules/puits ont été remises en suspension dans un milieu sans sérum et étalées en 5 réplicas pour chaque condition. Les cellules ont été fixées pendant 5, 10, 30, 60, 120 et 240 min à 37 °C, puis les cellules non fixées ont été éliminées avec une solution de Percoll contenant 0,57 mM de NaCl. Les cellules restantes ont été fixées avec une solution de Percoll contenant 5 % p/v de glutaraldéhyde pendant 15 min à température ambiante. Les cellules ont été colorées avec du cristal violet à 0,1 % p/v pendant 30 min à température ambiante, puis les plaques ont été lavées à l'eau du robinet. Les plaques ont été séchées à l'air et le cristal violet a ensuite été extrait en utilisant du SDS à 2 % dans de l'eau distillée pendant 30 minutes sur un agitateur. L'absorbance à 570 nm a été mesurée par spectrophotométrie sur TECAN INFINITE M1000. L'absorbance de fond (des puits blancs) a été soustraite de tous les puits de test. Le dosage a été réalisé en 5 réplicas techniques et 3 réplicas biologiques.
Les résultats montrent que l’inactivation du gène GPRC5A induit une adhérence significativement plus importante des kératinocytes primaires [Fig 3d] et des cellules N/TERT-1 [Fig 3h] dès 5 minutes.
A la lueur de ces résultats en termes d’adhérence, la capacité de migration des kératinocytes a été déterminée suite à l’inactivation du gène GPRC5A.
Dans le détail, dans une plaque à 6 puits, les cellules (2x10 4 cellules/puits) ont été ensemencées dans un insert en silicone à 2 puits (IBIDI) pendant 30 heures. Après confluence, l'insert de culture a été retiré lentement. Après lavage au PBS, les cellules ont été cultivées avec le KGM2 complet. Les cellules ont ensuite été autorisées à migrer dans l'espace (500 µm) et imagées en contracte de phase au microscope inversé (NIKON TI-E) aux temps 12h, 14h, 16h, 18h, 20h et 22h pour les cellules primaires, et aux temps 3h, 6h, 8h, 10h et 12h pour les cellules N/TERT-1. La quantification de la migration cellulaire a été réalisée en mesurant les zones non couvertes à l'aide du logiciel Image J. Chaque expérience a été répétée 3 réplicas techniques et 3 réplicas biologiques.
Les résultats sont présentés dans la et montrent que les kératinocytes primaires dont le gène GPRC5A a été réprimé présentent un retard de migration significatif dès 12h [Fig 4a], et dès 6h pour les cellules N/TERT-1 [Fig 4b].
Au vu de ces résultats, la caractérisation d’épidermes reconstruits, comprenant des kératinocytes immortalisés N/TERT-1 dont le gène GPRC5A a été réprimé de façon stable (shGPRC5A), a été effectuée.
Des fibroblastes (2,5x10 4 ) ont été ensemencés sous la membrane en polycarbonate d'un insert de culture cellulaire de porosité 0,4 µm (NUNC, THERMO FISHER SCIENTIFIC). Après 4 heures, les inserts ont été retournés et placés dans des plaques 24 puits, et les fibroblastes ont été cultivés pendant 2 jours dans du DMEM/F12 (1/1) additionné de 10 % de sérum bovin fœtal (Fetal Clone II ; HYCLONE, THERMO FISHER SCIENTIFIC) et 1 % de pénicilline/streptomycine (SIGMA ALDRICH). 2,5x10 5 cellules N/TERT-1 shARN contrôle (shCTR) ou shARN GPRC5A (shGPRC5A) ont été ensemencés sur le dessus de la membrane et cultivés pendant 3 jours dans du DMEM/F12 (1/1) additionné de 5 % de sérum bovin fœtal (FETAL CLONE II ; HYCLONE), 0,2 ng/ml d'EGF (THERMO FISHER SCIENTIFIC), 0,4 µg/ml d'hydrocortisone (SIGMA ALDRICH), 5 µg/ml d'insuline (SIGMA ALDRICH), 8 ng/ml de toxine du choléra (SIGMA ALDRICH), 2x10 -11 M de tri-iodothyronine (SIGMA ALDRICH), 24 µg/ml d'adénine (SIGMA ALDRICH) et 1 % de pénicilline/streptomycine. Pour induire la stratification et la différenciation, les kératinocytes ont été placés à l'interface air/liquide et cultivés pendant 2 jours avec le même milieu, sauf que l'EGF et l'adénine ont été omis et la concentration finale de chlorure de calcium a été ajustée à 2 mM et 50 µg /ml de vitamine C. Les cellules ont ensuite été cultivées pendant 14 jours supplémentaires dans le même milieu, sauf que le sérum bovin fœtal a été réduit à 1 %. Pendant la phase d'émersion, le milieu de culture a été changé tous les jours.
Pour les expériences d’histologie et d’immunofluorescence, les échantillons ont été fixés dans une solution de paraformaldéhyde à 4 %, pendant 24h à 4°C. Les échantillons ont ensuite été déshydratés et inclus dans de la paraffine et coupés au microtome en sections de 5 µm d’épaisseur. Après déparaffinage et réhydratation, les coupes ont été colorées avec des solutions d'hématoxyline et d'éosine pour l'histologie de routine ou perméabilisées par 0, 1% de triton X100 pendant 10 min, puis bouillies dans un tampon citrate 10 nM pH 6 pour la récupération de l'antigène. Les coupes ont été bloquées par 5 % de sérum d'albumine bovine et incubées avec les anticorps primaires suivants pendant une nuit à 4°C : lapin anti-GPRC5A (HPA007928, SIGMA ALDRICH, 1:250) ; souris anti-E-cadhérine (ab1416, ABCAM, 1:1000); lapin anti-cytokératine 10 (ab76318, ABCAM, 1:500); et lapin anti-involucrine (ab53112, ABCAM, 1:500). Les anticorps secondaires étaient : chèvre alexa-488 et alexa-546 anti-souris ou anti-lapin (THERMO FISHER SCIENTIFIC). Une contre-coloration nucléaire au DAPI (4',6-diamino-2-phénylindole) (SIGMA ALDRICH) a été réalisée. Les coupes ont ensuite été montées dans une solution PROLONG™ GOLD ANTIFADE MOUNTANT (THERMO FISHER SCIENTIFIC). L'acquisition des images a été réalisée à l'aide d'un microscope à fluorescence NIKON TI-E.
Les résultats de coloration histologique ont montré deux caractéristiques des épidermes reconstruits à partir des cellules N/TERT-1 shGPRC5A, des zones d’épaisseur moindre que les épidermes contrôles (shCTR), et des zones faisant apparaitre un décollement des couches suprabasales [Fig 4c]. Ces défauts histologiques sont associés à un défaut de différenciation caractérisé par une baisse d’expression et de localisation de l’E-cadhérine, de la cytokératine 10 et de l’involucrine. Ces résultats démontrent l’implication de GPRC5A dans la morphogenèse de l’épiderme.
2) Translocation au noyau de la partie C-terminale de GPRC5A
Des kératinocytes primaires en phase proliférative ont été rincés 3 fois avec du PBS, puis détachés par action de trypsine/EDTA (THERMO FISHER SCIENTIFIC) afin d’obtenir une suspension cellulaire. Une partie des cellules en suspension a été fixée par ajout de paraformaldéhyde 4% pendant 20 minutes, et les cellules non-fixées ont été ensemencées dans des boîtes 12-puits à une densité de 2x10 4 cellules/puits. Aux temps 30 min, 60 min, 24h, à confluence et 5 jours post confluence, les cellules ont été fixée en paraformaldéhyde 4% pendant 20 minutes. Après 3 lavages en PBS, les cellules ont été perméabilisées par ajout de triton X100 à 0,1% puis saturées par une solution de de BSA 5% dans du PBS pendant 1h. L’immunomarquage des régions N-terminale et C-terminale a été réalisé respectivement par incubation des anticorps anti-GPRC5A HPA007928 (SIGMA ALDRICH, 1:250) et PA5-28738 (THERMO FISHER SCIENTIFIC, 1:250) sur la nuit à 4°C. L’anticorps secondaires était un anticorps de chèvre anti-lapin couplé à l’alexa-546 (THERMO FISHER SCIENTIFIC). La localisation dans le nucléole a été mise en évidence par immunofluorescence directe de la nucléoline par un anticorps murin couplé à l’alexa-488 (ab154028, ABCAM, 1:1000). Une contre-coloration nucléaire au DAPI a été réalisée. Les coupes ont ensuite été montées dans une solution PROLONG™ GOLD ANTIFADE MOUNTANT (THERMO FISHER SCIENTIFIC). L'acquisition des images a été réalisée à l'aide d'un microscope à fluorescence Nikon Ti-E ou un microscope confocal ZEISS LSM800.
Il est par ailleurs possible d’analyser le paramètre représentatif du moulage afin de contrôler les paramètres du procédé du moulage en commandant par exemple l’injection du matériau injecté ou la température du moule.
Dans un mode de réalisation, le dispositif de contrôle optique comprend un bloc de prise de vues et un faisceau de fibres optiques reliant la tête opto-mécanique et le bloc de prise de vues.
De préférence, le bloc de prise de vues comprend un capteur optique permettant l’acquisition du paramètre représentatif du moulage, une source de lumière et un élément optique passif, et le faisceau de fibres optiques comprend une pluralité de fibres optiques destinées à transporter de la lumière depuis le bloc de prise de vues vers la tête opto-mécanique de manière à éclairer le volume interne du moule, et depuis la tête opto-mécanique vers le bloc de prise de vues.
Par exemple, l’élément optique passif comprend un filtre optique permettant au capteur optique de recevoir le paramètre représentatif du moulage dans une gamme spectrale d’intérêt.
Dans un autre mode de réalisation, la tête opto-mécanique comprend une surface lisse destinée à être positionnée pour prolonger une paroi du moule au niveau de l’ouverture et à être en contact avec l’objet durant son moulage de manière à ne pas marquer l’objet lors de son moulage.
Avantageusement, la tête opto-mécanique comprend une lentille optique et un hublot, le hublot comprenant un matériau transparent et étanche de sorte que le volume interne du moule est isolé de la tête opto-mécanique et que la lentille optique est protégée lors du moulage de l’objet.
Dans un autre mode de réalisation, la tête opto-mécanique comprend un matériau de conductivité thermique sensiblement similaire à la conductivité thermique des parois du moule de manière à garantir l’homogénéité thermique du moule, et comprend un joint dont le coefficient d’expansion thermique permet de garantir l’étanchéité du moule lors du moulage.
Avantageusement, le système de moulage comprend un module de traitement destiné à analyser le paramètre représentatif du moulage de sorte que le dispositif de contrôle optique utilise l’analyse afin de transmettre une valeur de consigne pour chaque paramètre du procédé pendant le moulage.
De préférence, le système de moulage comprend un module de détection de pigments thermosensibles de manière à mesurer la température de l’objet durant le moulage.
L’invention a également pour objet un procédé de contrôle optique d’un objet durant son moulage mis en œuvre au moyen d’un système de moulage tel que défini précédemment, le procédé comprenant les étapes suivantes :
Acquisition d’un paramètre représentatif du moulage au moyen du dispositif de contrôle optique ; Analyse du paramètre représentatif du moulage ; et Transmission d’une valeur de consigne pour chaque paramètre du procédé prenant en compte l’analyse.
Dans un mode de réalisation, le dispositif de contrôle optique comprend plusieurs têtes opto-mécaniques insérées dans des ouvertures respectives pratiquées dans les parois du moule, ces têtes opto-mécaniques étant chacune reliées à un faisceau de fibres optiques, chaque faisceau de fibres optiques étant connecté à un bloc de prise de vues de sorte à acquérir un paramètre représentatif du moulage depuis chaque tête opto-mécanique et ainsi cartographier le volume interne en observant l’évolution des paramètres représentatifs du moulage.
illustre schématiquement un système de moulage d’un objet selon l’invention ;
illustre schématiquement un mode de réalisation d’un bloc de prise de vues d’un système de moulage selon l’invention ;
illustre schématiquement un premier mode de réalisation d’une tête opto-mécanique d’un système de moulage selon l’invention ;
À l’étage de séparation 20, le mélange appauvri en eau 19 est séparé en une fraction 60 d’hydrocarbures en C1-C2 récupérée en tête du dééthaniseur, en une fraction 142 d’hydrocarbures en C3 à C5 récupérée à un étage intermédiaire du dééthaniseur et en une fraction 144 d’hydrocarbures en C6+ récupérée en pied du dééthaniseur.
La fraction 142 d’hydrocarbures en C3 à C5 est envoyée dans sa totalité vers l’étage d’oligomérisation 22A pour produire un produit 146 du réacteur d’oligomérisation.
La fraction 60 d’hydrocarbures en C1-C2 et la fraction 144 d’hydrocarbures en C6+ sont amenés à l’étage d’alkylation 22B pour produire un produit 152 du réacteur d’alkylation dans les conditions opératoires définies plus haut.
Le produit 152 du réacteur d’alkylation est alors mélangé avec le produit 146 du réacteur d’oligomérisation.
Les produits 146, 152 sont alors introduits à l’étage de séparation supplémentaire 122 pour être séparés en la fraction 126 d’hydrocarbures en C7- et la fraction 128 d’hydrocarbures en C8+, décrites plus haut.
Au moins une partie 150 de la fraction 126 d’hydrocarbures en C7- est recyclée dans l’étage d’oligomérisation 22A, une autre partie étant éventuellement récupérée sous forme d’essence.
La fraction 128 forme le courant d’hydrocarbures à hydrogéner 24.
Une septième installation 160 destinée à la mise en œuvre d’un septième procédé selon l’invention est décrite sur la .
Le septième procédé selon l’invention diffère du sixième procédé mis en œuvre dans l’installation 150 en ce qu’à l’étage de séparation additionnelle 122, le produit 146 du réacteur d’oligomérisation et le produit 152 du réacteur d’alkylation sont séparés en la fraction 126 d’hydrocarbures en C7-, prise en tête de colonne, en une fraction 162 d’hydrocarbures en C8 à C16, prise à un étage intermédiaire de la colonne et en une fraction 164 d’hydrocarbures en C17+, prise en pied de colonne.
Comme décrit précédemment, au moins une partie 150 de la fraction 126 d’hydrocarbures en C7- est recyclée dans l’étage d’oligomérisation 22A.
La fraction 162 d’hydrocarbures en C8 à C16 est introduite à l’étage d’hydrogénation 26 pour être hydrogénée.
La fraction 164 d’hydrocarbures en C17+ est recyclée au moins partiellement à l’étage de conversion 12.
Ainsi, les hydrocarbures lourds présents dans la fraction d’hydrocarbures en C17+ sont re-craqués à l’étage de conversion 12. Ceci augmente la quantité de fraction carburéacteur 34 produite.