INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
L’invention prévoit également, dans un autre exemple de mise en œuvre, de fabriquer le boîtier sans la deuxième bouche de sortie d’air, avec à cet emplacement une simple paroi qui définit la zone inactive au sens de l’invention.
Il est ainsi possible de modifier, dans une petite mesure, le moule qui sert à fabriquer le boîtier, la modification permettant, selon le besoin et l’option retenue, de fabriquer des boîtiers avec la deuxième bouche de sortie d’air ou des boitiers sans la deuxième bouche de sortie d’air, avec à la place une simple paroi.
Par exemple, des tiroirs additionnels peuvent être prévus sur le moule pour fabriquer la deuxième bouche de sortie d’air.
Le moule peut être un moule pour l’injection de matière plastique pour fabriquer au moins une partie du boîtier.
Ainsi, pour réaliser la zone inactive, il est possible de prévoir une bouche de sortie d’air et de l’obturer pour la rendre étanche, ou de fabriquer le boîtier avec une paroi pleine à la place de la deuxième bouche de sortie d’air.
L’invention est en outre avantageuse en ce que la zone fonctionnelle optionnelle est adjacente au canal, à savoir cette zone est à proximité immédiate du canal, permettant de concevoir aisément une bouche de sortie d’air, lorsque cela est nécessaire.
En outre, un utilisateur peut renseigner une enseigne via une interface machine 9, par exemple accessible via un téléphone mobile. Cette enseigne est alors collectée par les deuxièmes moyens 8 construits et agencés pour sélectionner une enseigne.
Ces deuxièmes moyens 8 attribuent une période de sélection à cette enseigne sélectionnée, par exemple d’un mois. A l’expiration de cette période de sélection d’un mois, l’utilisateur de la carte de paiement et de fidélité 1 devra une nouvelle fois renseigner une enseigne spécifique via l’interface homme-machine 9.
Une fois sélectionnée, cette enseigne est attachée à la carte de paiement et de fidélité 1 via les troisièmes moyens 10 construits et agencés pour attacher l’enseigne sélectionnée à la carte de paiement et de fidélité 1. A cette fin, les troisièmes moyens 10 sont construits et agencés pour attacher l’enseigne sélectionnée au deuxième dispositif d’identification 4, soit un code-barres dans notre exemple, que comporte la carte de paiement et de fidélité 1.
Lorsque l’utilisateur muni d’une carte de paiement et de fidélité 1 similaire à celle illustrée à la se rend, pendant la période de sélection d’un mois, dans une enseigne correspondant à l’enseigne sélectionnée au moyen des deuxièmes moyens 8 et qu’il insère sa carte de paiement et de fidélité dans le premier lecteur 3, le système de paiement et de fidélité 6 identifie la carte de paiement et de fidélité 1 via les premiers moyens 7 construits et agencés pour identifier un utilisateur de la carte de paiement et de fidélité 1.
A cette fin, les premiers moyens 7 sont construits et agencés pour communiquer avec le premier lecteur 3. Ainsi, lorsque l’utilisateur de la carte de paiement et de fidélité 1 positionne sa carte de paiement et de fidélité 1 dans le premier lecteur 3, celui-ci communique les informations enregistrées dans la carte de paiement et de fidélité 1 aux premiers moyens 7. Les premiers moyens 7 sont alors en mesure d’identifier la carte de paiement et de fidélité 1 et le détenteur de la carte de paiement et de fidélité 1.
Ensuite, lorsque le code-barres est scanné via le deuxième lecteur 5, les quatrièmes moyens 11 construits et agencés pour identifier une utilisation de la carte de paiement et de fidélité 1 dans l’enseigne sélectionnée identifient une utilisation de la carte de paiement et de fidélité 1 dans l’enseigne sélectionnée.
En revanche, si la carte de paiement et de fidélité 1 est utilisée dans une enseigne différente de celle sélectionnée, les quatrièmes moyens 11 transmettent un message informant que l’enseigne dans laquelle est utilisée la carte de paiement et de fidélité 1 ne correspond pas à l’enseigne sélectionnée. Ce message peut être transmis au deuxième lecteur 5 puis affiché par ce dernier. Dans une mise en œuvre différente, ce message peut être transmis au téléphone mobile de l’utilisateur.
Lorsque la carte de paiement et de fidélité 1 est identifiée dans l’enseigne sélectionnée et qu’un règlement est effectué, les cinquièmes moyens 12 construits et agencés pour attribuer au moins un point de fidélité attribuent par exemple sept points de fidélité pour 100 euros d’achat. Ces cinquièmes moyens 12 additionnent les sommes dépensées lors de chaque passage en caisse de l’enseigne sélectionnée.
Ainsi, si un utilisateur dépense 100 euros lors d’un premier passage, les cinquième moyens 12 attribuent sept points de fidélité. Puis lors d’un deuxième passage en caisse, si un utilisateur dépense seulement 50 euros, puis lors d’un troisième passage en caisse une nouvelle fois 50 euros, les cinquièmes moyens 12 additionnent les 50 euros + 50 euros et attribuent sept points de fidélité supplémentaires. Ces points de fidélité peuvent être transformé en argent utilisable par l’utilisateur. Par exemple, à un point de fidélité correspond 1 euro.
Puis, lorsque la somme des dépenses réalisées auprès de l’enseigne sélectionnée atteint une somme seuil prédéterminée, par exemple 250 euros, au cours d’une période de dépenses prédéterminée, les dépenses ne sont plus comptabilisées jusqu’à l’expiration de cette période de dépenses prédéterminée. Cette étape est exécutée par les cinquièmes moyens 12 qui sont construits et agencés pour stopper de comptabiliser des dépenses réalisées auprès de ladite enseigne sélectionnée lorsque la somme globale des sommes dépensées atteint une somme seuil prédéterminée au cours de la période de dépenses prédéterminée.
Dans une mise en œuvre non limitative, les points attribués sont débloqués et donc utilisables seulement si une somme minimale, par exemple de 100 euros, a été dépensée dans cette enseigne sélectionnée. Cette étape est exécutée par les sixièmes moyens 13 construits et agencés pour débloquer les points attribués lorsque les dépenses réalisées comptabilisées sont supérieures à une plage de dépenses prédéterminée, dans notre cas 100 euros.
Dans une mise en œuvre complémentaire, les points attribués sont débloqués et donc utilisables seulement si les dépenses réalisées comptabilisées sont supérieures à une plage de dépenses prédéterminée au cours d’une période de dépenses prédéterminée, par exemple deux semaines. Cette période de dépenses prédéterminée de deux semaines peut être comptabilisée par les septièmes moyens 14 construits et agencés pour comptabiliser une période de dépenses prédéterminée.
De façon non limitative, des applications particulièrement intéressantes de ce système de paiement et de fidélité 6 concerne les organismes de prestations sociales, les organismes de pensions d’invalidité ou encore de retraites.
Prenons un exemple pour lequel l’organisme de prestations sociales verse mensuellement 500 euros à un utilisateur.
Dans un exemple non limitatif, la somme seuil prédéterminée est de 250 euros, La plage de dépenses prédéterminée est de 50 euros, 3,5 points étant attribués pour ces 50 euros d’achat, A un point correspond 1 euro, et La période de dépenses prédéterminée est de 1 mois.
Dans cet exemple, si l’utilisateur dépense au moins 250 euros dans les magasins de l’enseigne sélectionnée en un mois, il est en mesure de bénéficier de 17,5 points, soit 17, 5 euros, supplémentaires chaque mois.
Fig. 4 Niveau d’expression de l’ARNm de l’ il 8 par des cellules intestinales porcines (lignée IPEC-J2) prétraitées par différents « produits β-glucanes », un β-glucane d’algue (ALG), le Safmannan ® et le Safglucan ® en absence et en présence de la mycotoxine DON (P value *<0,05).
Fig. 5 Analyses histologiques d’explants de jéjunum de porcs (n=7). (A) Images prises par microscope de sections de 5 μm réalisées à partir des blocs de paraffine contenant des explants de jéjunum non-traités, ou traités par la mycotoxine DON seule, par du Safglucan ® seul, ou par le Safglucan ® et la mycotoxine DON. (B) Graphes présentant le score histologique, la morphologie des entérocytes, et la hauteur des villosités intestinales en fonction des traitements des explants de jéjunum de porcs.
Fig. 6 Niveau d’expression de gènes liés à l’inflammation déterminé à partir d’ARNm isolés d’explants de jéjunum de porcs non-traités, ou traités par la mycotoxine DON seule, par du Safglucan ® seul, ou par le Safglucan ® et la mycotoxine DON (n=5 – 10). (P value *<0,05).
Fig. 7 Images de foie de poulet traité avec la mycotoxine DON (à droite) et non-traités (à gauche).
Fig. 8 Graphes montrant le pourcentage de lésions hépatiques observées chez le poulet aux jours 13 et 28 ( B ) en fonction de la présence ou non de la mycotoxine DON et/ou de Safglucan ® dans le régime alimentaire.
Fig. 9 Graphe présentant la hauteur des villosités intestinales dans du jéjunum de poulets non-traités, ou traités par la mycotoxine DON seule, ou par le Safglucan ® et la mycotoxine DON après 13 jours post traitement.
Fig. 10 Niveaux d’expression des gènes il8 ( A ) et ifn γ ( B ) liés à l’inflammation déterminée à partir d’ARNm de jéjunum de poulets non-traités, ou traités par la mycotoxine DON seule, ou par le Safglucan ® et la mycotoxine DON.
Comme mentionné plus haut, la présente invention concerne des extraits de parois cellulaires de levure Saccharomyces cerevisiae riches en β-glucanes pour utilisation dans la prévention des effets toxiques, en particulier des effets immunotoxiques, de la mycotoxine DON chez un sujet, et dans la prévention des lésions hépatiques et/ou intestinales induites par la mycotoxine DON chez un sujet.
I - Extraits de Parois Cellulaires de Levure Saccharomyces cerevisiae Riches en β -Glucanes
Les β-glucanes d’un extrait selon l’invention sont obtenus à partir d’une levure Saccharomyces cerevisiae , et plus particulièrement à partir d’une souche de levure Saccharomyces cerevisiae . De nombreuses souches de Saccharomyces cerevisiae sont connues dans l’art. Elles sont largement utilisées dans l’industrie agroalimentaire pour leur rôle dans la fabrication de plusieurs aliments, notamment les pains et les boissons fermentées. Tel qu’utilisé ici, le terme “souche de levure” désigne une population relativement homogène de cellules de levure obtenues par culture (ou multiplication) de la souche de départ. Une souche de levure est obtenue à partir d’un clone, un clone étant une population de cellules de levure obtenue à partir d’une seule cellule de levure. La culture d’une souche de levure Saccharomyces cerevisiae peut s’effectuer par n’importe quelle méthode appropriée. Les procédés de culture de levure sont connus dans l’art antérieur, et l’homme du métier sait optimiser les conditions de culture pour chaque souche en fonction de sa nature. Ainsi, une levure Saccharomyces cerevisiae peut être obtenue par multiplication d’une souche dans un milieu de culture approprié, par exemple, comme décrit dans le livre de référence « Yeast Technology », 2 ème édition, 1991, G. Reed et T.W. Nagodawithana, publié par Van Nostrand Reinhold, ISBN 0-442-31892-8.
Les termes “parois cellulaires de levure” et “écorces de levure” sont utilisés ici de façon interchangeable et désignent la fraction insoluble des cellules de levure, c’est-à-dire la paroi et la membrane plasmique de la levure. De façon classique, les parois cellulaires de levure sont obtenus par un procédé comprenant une étape d’autolyse ou d’hydrolyse enzymatique, essentiellement par des protéases, suivie d’une étape de séparation de la fraction soluble et de la fraction insoluble, la fraction insoluble isolée correspondant aux parois cellulaires de levure. La fraction insoluble peut ensuite être séchée. Le procédé d’obtention des parois cellulaires de levure est tel qu’il conserve les polysaccharides de structure de la paroi cellulaire, c’est-à-dire les β-glucanes et les mannanes, ces mannanes étant sous forme de mannoprotéines. Les procédés d’obtention de parois cellulaires de levure sont connus dans l’art (voir par exemple l’ouvrage de référence “Yeast Technology”, 2ème édition, 1991, G. Reed et T.W. Nogodawithana, publié par Van Nostrand Reinhold, New York, ISBN 0-442-31892-8).
Un extrait de parois cellulaires de levure Saccharomyces cerevisiae riche en β-glucanes selon l’invention fait référence à une fraction qui a été extraite (ou isolée) à partir des parois cellulaires et qui contient en majorité des β-glucanes. Les β-glucanes provenant de la paroi des cellules de levure sont appelés “β-glucanes pariétaux”. Ce sont essentiellement des polymères de glucose dont les unités glucose de la chaîne principale sont reliées par des liaisons β-1,3 et dont les ramifications sont reliées par des liaisons β-1,6. Les β-glucanes de levure sont insolubles et présentent une viscosité faible. L’homme du métier sait comment extraire les β-glucanes de la paroi des cellules de levure. Une méthode commune comprend des extractions successives à chaud avec une base et avec un acide (comme l’acide acétique), suivies par des lavages aqueux pour éliminer tout composé soluble des parois cellulaires, et la récupération du matériel insoluble constitué des β-glucanes pariétaux.
Un extrait de parois cellulaires de levure Saccharomyces cerevisiae riche en β-glucanes selon la présente invention comprend une quantité totale supérieure ou égale à 50% en poids de β-glucanes sous forme d’un mélange de β-1,3-glucanes et β-1,6-glucanes. Tel qu’utilisé ici, le terme “quantité totale supérieure ou égale à 50% en poids de β-glucanes” signifie que les β-glucanes représentent au moins la moitié du poids de l’extrait selon l’invention. Ainsi, la quantité totale en β-glucanes présents dans un extrait selon l’invention peut représenter entre 50% et 90% du poids de l’extrait, par exemple entre 50% et 80%, ou entre 50% et 70%, ou encore entre 50 et 60%, du poids de l’extrait. Dans certains modes de réalisation particuliers, la quantité totale en β-glucanes présents dans un extrait selon l’invention représentent entre 50% et 60%, par exemple, environ 51%, environ 52%, environ 53%, environ 54%, environ 55%, environ 56%, environ 57%, environ 58%, ou environ 59% du poids de l’extrait.
Un extrait de parois cellulaires de levure Saccharomyces cerevisiae riche en β-glucanes selon la présente invention contient également des mannanes en une quantité totale inférieure à 5% en poids. Les mannanes provenant de la paroi de cellules de levure sont appelés “mannanes pariétaux”. Ce sont des polysaccharides de levure constitués majoritairement de mannose et plus précisément des copolymères d’oses neutres ou acides (à 5 ou 6 atomes de carbone), liés entre eux par des liaisons glycosidiques et liés à des protéines. Dans les mannanes de parois cellulaires de Saccharomyces cerevisiae , le mannose y est présent sous forme d’un squelette de résidus mannose (50 ou plus) liés en α-(1,6), ramifié par de courtes chaînes de mannose lié en α-(1,2) et en α-(1,3). L’homme du métier sait comment extraire les mannanes de la paroi de cellules de levure. Une méthode commune comprend une digestion enzymatique des parois de levure avec une préparation de β-glucanases (par exemple la préparation industrielle GLUCANEX TM ), suivie par la séparation de l’hydrolysat par centrifugation, et une purification par ultrafiltration. Une autre méthode est basée sur une extraction chimique effectuée à chaud.
Tel qu’utilisé ici, le terme “quantité totale inférieure à 5% en poids de mannanes” signifie que les mannanes représentent au plus 5% du poids de l’extrait selon l’invention. Ainsi, la quantité totale en mannanes présents dans un extrait selon l’invention peut représenter entre 0,5% et 5% du poids de l’extrait. Dans certains modes de réalisation particuliers, la quantité totale en mannanes présents dans un extrait selon l’invention représentent entre 1% et 5%, par exemple, environ 1%, environ 2%, environ 3%, environ 4%, ou environ 5% du poids de l’extrait.
Préférentiellement, un extrait de parois cellulaires de levure Saccharomyces cerevisiae riche en β-glucanes selon la présente invention comprend des β-glucanes et des mannanes, où les β-glucanes sont présents sous forme d’un mélange de β-1,3-glucanes et β-1,6-glucanes en une quantité totale supérieure ou égale à 50% en poids ; et les mannanes sont présents en une quantité totale telle que le rapport β-glucanes/mannanes est compris entre 12 et 40 (poids/poids). En particulier le rapport β-glucanes/mannanes dans un extrait selon l’invention peut être compris entre 15 et 30 (poids/poids), et plus particulièrement entre 18 et 22 (poids/poids).
Dilution D1 1 ml de Karaté Zéon CS dans 200 ml d’eau [5.0 ml/l]
Dilution D2 1 ml de D1 + 99 ml d’eau [0.05 ml/l]
Chaque unité expérimentale est composée de 8 brins d’escourgeon au sein d’un même pot. La veille de l’application des produits, chaque pot a été infesté avec une quarantaine de pucerons. Les pots ont été isolés individuellement à l’aide d’un manchon en plexiglas muni d’ouvertures grillagées pour permettre l’aération.
Peu avant la pulvérisation, les pucerons ont été comptés dans chaque pot. Ensuite, le temps de la pulvérisation, le manchon a été retiré et les plantes sont traitées. Les manchons ont ensuite été replacés sur chaque pot. 48h après la pulvérisation, les pucerons ont été à nouveau comptés. Chaque traitement comporte 5 répétitions.
Application des substances testées La pulvérisation a été réalisée à l’aide d’un aérographe (Harder & Steenbeck), connecté à un compresseur pour amener la pression de pulvérisation à 2 bars pour les contrôles positifs et négatifs et 4 bars pour la graisse d’insecte (celle-ci étant plus visqueuse). Les traitements ont été pulvérisés de gauche à droite et de droite à gauche (en zigzag), en démarrant du coin supérieur gauche d’un cadrant de 1 m² et en finissant dans le coin inférieur droit. La pulvérisation suit les 9 lignes placées à intervalles réguliers, horizontalement et verticalement sur le cadran, formant des carrés de 10 cm² pour assurer une pulvérisation homogène. Les 5 pots appartenant au même traitement étaient placés au centre du cadran. Le contrôle eau a été pulvérisé en premier, ensuite la graisse d’insecte et enfin, le contrôle toxique. L’appareil a été rincé entre chaque traitement avec du méthanol, suivi par de l’eau. Afin de permettre la pulvérisation de la graisse (solide à température ambiante), celle-ci ainsi que l’aérographe étaient maintenus à une température d’environ 45°C à l’aide d’une plaque chauffante juste avant la pulvérisation.
Observations biologiques L’efficacité du produit a été évaluée en comparant le taux d’accroissement de la population de pucerons (effectif après 48h/effectif initial) et en le corrigeant avec celui du contrôle, en utilisant la formule d’Abbot (Abott, 1925):
où DRc= réduction du taux d’accroissement de la population pour le produit, IRo= taux d’accroissement de la population observé pour le produit, IRt = Taux d’accroissement de la population observé pour le contrôle.
Analyses des données et traitements statistiques Les données ont été analysées avec le logiciel R, version 4.1.2. Le taux d’accroissement de population a été analysé au moyen de GLM. Les moyennes des taux d’accroissement de population ont été comparées grâce au test de Dunnett.
- chaque aimant peut présenter une face externe dirigée vers l’extérieur du corps et la polarité des faces externes d’aimants adjacents peut être inversée, pour permettre un détrompage lors du positionnement de la partie amovible en regard de la base ;
- le corps peut comprendre un anneau en matériau ferromagnétique s’étendant dans un plan perpendiculaire à la direction d’insertion et disposé à proximité immédiate desdits au moins deux aimants, afin d’améliorer le magnétisme des aimants ;
- le logement peut être pourvu de bornes de contact électrique destinées à coopérer avec des bornes correspondantes de la partie amovible lorsque l’embout est dans la deuxième position angulaire de fixation, permettant ainsi une alimentation électrique d’un accessoire.
L’invention a également pour objet un système de fixation comprenant une partie amovible selon l’invention et une base selon l’invention.
La fixation de la partie amovible sur la base est notamment réalisée de la manière suivante : l’embout est inséré à l’intérieur de la base suivant la direction d’insertion en étant positionné par rapport à la base selon la première position angulaire d’insertion/extraction par coopération des éléments de guidage, l’attraction des aimants favorisant l’insertion de l’embout dans la base, par exemple jusqu’à ce que les corps de la base et de la partie amovible soient en contact et/ou jusqu’à ce que les éléments de guidage ne coopèrent plus. Lorsque les éléments de guidage ne coopèrent plus, la rotation de l’embout par rapport à la base est à nouveau possible et la composante tangentielle de la force d’attraction des aimants provoque la rotation de l’embout jusqu’à la deuxième position angulaire de fixation.
L’invention concerne également un véhicule automobile comprenant au moins une base d’un système de fixation selon l’invention, ladite base étant intégrée à un panneau d’habillage du véhicule choisi parmi un panneau de garniture et la planche de bord du véhicule. Ce panneau de garniture peut faire partie de l’habitacle ou du coffre du véhicule.
Avantageusement, la paroi externe de la base peut affleurer une paroi du panneau d’habillage.
La représente une vue éclatée d’une base d’un système de fixation selon un mode de réalisation de l’invention.
La représente une vue éclatée d’une partie amovible d’un système de fixation selon un mode de réalisation de l’invention.
La représente une vue en perspective d’une partie amovible d’un système de fixation selon un mode de réalisation de l’invention.
Les et représentent schématiquement en coupe une base et une partie amovible d’un système de fixation selon l’invention avant et après fixation respectivement.
Les et représentent partiellement vue de dessus la base et la partie amovible d’un système de fixation selon l’invention juste avant et juste après respectivement l’insertion de l’embout dans le logement.
La représente partiellement vue de côté la base et la partie amovible d’un système de fixation selon l’invention juste après l’insertion de l’embout dans le logement.
Les et sont des représentations partielles en perspective de la base et de la partie amovible d’un système de fixation selon l’invention.
Les et sont des vues suivant la direction d’insertion d’une base et d’une partie amovible d’un système de fixation selon l’invention.
Les cellules endothéliales ont été ensemencées sur 28 filtres Transwell Polycarbonate (porosité 0,4 µm et diamètre 12 mm), et cultivées en milieu de différenciation. La mesure de toxicité (étude A) ou de perméabilité (étude B) des nanocorps et conjugués a été réalisée en milieu HBSS Ca/Mg supplémenté par 0,1 % BSA. Les volumes de transfert ont été respectivement de 280 et 1200 µl pour le compartiment luminal donneur et le compartiment basolatéral accepteur. Les nanocorps et conjugués ont été dilués dans le même tampon HBSS Ca/Mg – 0,1 % BSA. Le transfert a été initié en ajoutant les nanocorps ou conjugués dans le compartiment supérieur et en transférant le filtre dans un puits contenant HBSS Ca/Mg – 0,1 % BSA. L’intégrité des monocouches contrôles ou exposés aux nanocorps ou conjugués (étude A) a été évaluée par la mesure de la perméabilité au saccharose au travers d’une analyse cinétique sur 2 heures (comparable au temps utilisé pour estimer la perméabilité des nanocorps et conjugués). Les milieux luminaux et abluminaux collectés pour l’étude B ont été analysés par test ELISA. Les groupes sont les suivants :
Etude Toxicité des nanocorps et conjugués Perméabilité des nanocorps et conjugués Groupes/nbre de fibres Prélèvement luminal vol/temps 50 µl/120 min 20 µl/8 min 250 µl/120 min Prélèvement abluminal vol/temps 900 µl/15, 30, 45, 60, 90, 120 min 250 µl/60 min vol total/120 min
Pour l’étude B, le milieu prélevé à 60 min en basolatéral a été remplacé par le même volume de milieu frais.
Résultats de l’étude A :
La perméabilité au sucrose des cellules endothéliales reflétant l’intégrité des jonctions serrées n’a pas été modifiée en présence des nanocorps et conjugués ( ). Les courbes de clairance moyennées pour les 4 filtres ont été linéaires pour les quatre groupes de filtres ( ).