INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
PATIENT 1 Tube Héparine (UI/ml) FP4 % CD41+ / CD62P+ MFI CD62P % x MFI (UA) Validation technique de la série VS : Ratio d'Activation / Ratio d'Inhibition % Activation Plaquettaire Ac-dépendante (APA) Interprétation de la série TP : Maximum APA / % d'inhibition Conclusion Série Validation Standardisation 1 0 + 65% 5592 3634,80 299,8 Série VS validée 2 0.05 + 66% 5606 3699,96 3 0.5 + 70% 6982 4887,40 4 100 + 48% 1272 610,56 0,88 Série Test Patient 5 TRAP (hep 0) - 76% 8214 6242,64 6 0 (basal) - 10% 163 16,30 0% Série TP positive 7 0 + 47% 1443 678,21 14% 8 0.05 + 54% 2528 1365,12 28% 28% 9 0.5 + 53% 2414 1279,42 26% 10 100 + 27% 377 101,79 2% 94%
Les résultats obtenus pour le marqueur du CD62P du patient 2 sont les suivants :
PATIENT 2 Tube Héparine (UI/ml) FP4 % CD41+ / CD62P+ MFI CD62P % x MFI (UA) Validation technique de la série VS : Ratio d'Activation / Ratio d'Inhibition % Activation Plaquettaire Ac-dépendante (APA) Interprétation de la série TP : Maximum APA / % d'inhibition Conclusion Série Validation Standardisation 1 0 + 15% 201 30,15 13,2 Série VS validée 2 0.05 + 22% 280 61,60 3 0.5 + 33% 404 133,32 4 100 + 8% 165 13,20 0,90 Série Test Patient 5 TRAP (hep 0) - 89% 6487 5773,43 6 0 (basal) - 7% 144 10,08 0% Série TP négative 7 0 + 7% 156 10,92 1% 8 0.05 + 7% 153 10,71 1% 1% 9 0.5 + 6% 149 8,94 -1% 10 100 + 6% 149 8,94 -1% *
b/ Résultats obtenus avec le marqueur Annexine V (AnxV) :
Avec le marquage par l’Annexine V, une stratégie de fenestrage et une expression des résultats similaires à celle présentée pour le protocole CD62P sont appliquées.
Les résultats obtenus pour le marqueur Annexine V du patient 1 sont les suivants :
PATIENT 1 Tube Héparine (UI/ml) FP4 % CD41+ / AnxV+ MFI AnxV % x MFI (UA) Validation technique de la série VS : Ratio d'Activation / Ratio d'Inhibition % Activation Plaquettaire Ac-dépendante (APA) Interprétation de la série TP : Maximum APA / % d'inhibition Conclusion Série Validation Standardisation 1 0 + 31% 537 166,47 95,9 Série VS validée 2 0.05 + 31% 474 146,94 3 0.5 + 35% 567 198,45 4 100 + 12% 247 29,64 0,85 Série Test Patient 5 Ca iono (hep 0) - 99% 38310 37926,90 6 0 (basal) - 3% 69 2,07 0% Série TP positive 7 0 + 37% 722 267,14 135% 8 0.05 + 36% 625 225,00 114% 215% 9 0.5 + 43% 985 423,55 215% 10 100 + 10% 197 19,70 9% 96%
Les résultats obtenus pour le marqueur Annexine V du patient 2 sont les suivants :
PATIENT 2 Tube Héparine (UI/ml) FP4 % CD41+ / AnxV+ MFI AnxV % x MFI (UA) Validation technique de la série VS : Ratio d'Activation / Ratio d'Inhibition % Activation Plaquettaire Ac-dépendante (APA) Interprétation de la série TP : Maximum APA / % d'inhibition Conclusion Série Validation Standardisation 1 0 + 13% 201 26,13 11,3 Série VS validée 2 0.05 + 10% 217 21,70 3 0.5 + 10% 193 19,30 4 100 + 5% 154 7,70 0,65 Série Test Patient 5 Ca iono (hep 0) - 100% 34310 34310,00 6 0 (basal) - 3% 64 1,92 0% Série TP négative 7 0 + 4% 117 4,68 14% 8 0.05 + 4% 147 5,88 20% 20% 9 0.5 + 3% 147 4,41 13% 10 100 + 4% 143 5,72 19% *
La illustre un embrayage 1 d’un véhicule automobile (non représenté) selon un premier mode de réalisation de l’invention. L’embrayage 1 est formé par un plateau interne 2 relié à un double volant amortisseur 3 et par un plateau externe 4 relié à un démarreur (non visible) du véhicule. Le double volant amortisseur 3 est relié à un moteur thermique (non illustré) du véhicule situé sur la partie inférieure de la . L’embrayage 1 comporte également un mécanisme d’encliquetage 5 interposé entre le plateau interne 2 et le plateau externe 4. Le mécanisme d’encliquetage 5 est formé par au moins une lamelle ressort 6 et d’au moins un cliquet 7 comme visible en figures 2A, 3A et 4A. La lamelle ressort 6 est formée d’un matériau en acier, en plastique ou en matériau composite. La lamelle ressort 6 présente une forme convexe, c’est-à-dire avec une forme de section courbe, figure 2. Grâce à cette section courbe on a une force de réaction non-linéaire avec chute soudaine de charge, figures 2b, 3b, 4b. La chute soudaine de charge permet avantageusement un désengagement rapide, sans incertitudes. La lamelle ressort 6 s’étend au repos selon un plan qui est orthogonal à l’axe de rotation (X). La lamelle ressort 6 est positionnée par rapport au plateau interne 2 et au plateau externe 4 tout en s’étendant selon une direction circonférentielle autour d’un axe de rotation X de l’embrayage.
La illustre une autre variante de réalisation d’une lamelle ressort 106. Selon cette autre variante, la lamelle ressort 106 présente une forme plate tout en présentant une portion élargie 111 à une extrémité. L’extrémité élargie 111 présente un logement. Une masse 107 est montée fixée sur cette même extrémité élargie 111. En particulier, la masse 107 est placée sur cette extrémité élargie 111 tout en étant guidée à l’intérieur du logement. La masse 107 est fixée à la lamelle ressort 106 par soudage ou par rivetage. (La section de cette lamelle 106 est plate. Ainsi, contrairement à la lamelle ressort 6, la force de réaction de cette lamelle plate 106 est linéaire, sans chute soudaine de charge.
Le produit peut présenter un micronaire compris entre 4 L/min et 9 L/min, notamment entre 5 L/min et 8 L/min et préférentiellement entre 6 L/min et 7,5 L/min. Ainsi, il est possible de minimiser spécifiquement le transfert thermique radiatif du revêtement formé par le produit soufflé tout en limitant l’émission de poussières lors du soufflage du produit de par le taux massique d’additif du produit.
Dans l'ensemble des modes de réalisation de l'invention, le produit présente un taux massique de la totalité du ou des additifs compris entre 0,4 % et 1,2 % inclus, notamment compris entre 0,6 % et 1 % inclus et préférentiellement compris entre 0,7 et 0,9 % inclus. Ainsi, comme décrit précédemment et en combinaison avec la distribution de la population de longueurs de fibre décrite, il est possible de maximiser l’isolement thermique du produit tout en limitant l'émission de poussières lors de l'installation du produit. En effet, les additifs, qui comprennent de manière usuelle des composés organiques, favorisent le transfert thermique au travers du produit et ainsi dégradent les propriétés d’isolement thermique conférées par le produit soufflé.
La est un schéma en blocs représentant une variante du procédé de traitement des eaux usées selon l’invention,
La est un schéma en blocs représentant l’étape de valorisation énergétique du biogaz du traitement des eaux usées selon l’invention.
Description détaillée On a illustré à la un exemple de procédé 1 de traitement d’eau usée selon l’invention. Dans l’exemple considéré, le procédé 1 comporte une étape de décantation primaire 10 de l’eau usée E, délivrant en sortie un effluent primaire 12 et une boue primaire 15 permettant d’extraire une partie des matières solides en suspension de l’eau usée E. L’effluent primaire 12 et la boue primaire 15 obtenus sont ensuite traités séparément comme cela est illustré. L’effluent primaire 12 est traité biologiquement au traitement biologique principal 20 délivrant en sortie un effluent traité 22 et une boue biologique 25. La boue primaire 15 et la boue biologique 25 sont traitées conjointement par un traitement des boues 30 décrit dans la suite.
Le traitement biologique principal 20 permet notamment d’éliminer la pollution azotée et le reste de la pollution carbonée de l’effluent 12. Certains détails du traitement biologique principal 20 sont décrits ci-après et illustrés aux figures 2 à 4.
La décantation primaire 10 comporte l’ajout de réactifs 105 favorisant la décantation dans un décanteur 100 recevant l’eau usée E. Les réactifs sont des coagulants et/ou des floculants injectés dans l’effluent d’eau usée E. L’ajout de tels réactifs 105 favorise la décantation des matières en suspension dans l’eau usée E. La boue primaire 15 obtenue par cette étape de décantation primaire 10 contient plus de 50%, mieux plus de 70%, des matières en suspension de l’eau usée E. L’effluent primaire 12 obtenu par cette étape de décantation primaire 10 présente une DBO5 réduite de préférence d’au moins 20%, voire d’au moins 35% par rapport à celle de l’eau usée E. La DBO5 est par exemple mesurée selon la norme NFT-90-103, la norme ISO 5815-1, ou équivalent. Les matières en suspension (MES) capturées est par exemple quantifié selon la norme NFT-90-105, ou ISO 11923, ou équivalent.
L’effluent primaire 12 ainsi obtenu présente un rapport carbone/azote déséquilibré, notamment inférieur à 12. La mesure de la teneur massique en carbone de l’effluent primaire 12, représentée par la DCO, s’effectue selon la norme NFT-90101, la norme ISO 15705 ou équivalent. Elle est exprimée en mg O 2 /L. La teneur massique en azote est quantifiée par le NGL (autrement appelé Azote Global), exprimé en mg/L d’azote, somme des teneurs des formes azotées suivantes : azote Kjeldahl (NTK) correspondant à la somme de l’azote ammoniacal (NH 3 /NH 4 + ) et de l’azote organique contenu dans l’eau, mesurées selon la norme NF-EN-25663 ou ISO 5663 ou équivalent, nitrites (NO 2 ), mesurées selon la norme NF EN ISO 10304-1 ou équivalent, et nitrates (NO 3 - ), mesurées selon la norme NF EN ISO 10304-1 ou équivalent.
Le traitement biologique principal 20 s’effectue au sein d’un bassin biologique 200, illustré à la . Le bassin biologique 200 est de préférence tel que décrit dans la demande de brevet US 2017/0096354. Il comporte : - une zone de mélange de l’effluent 210 de l’effluent primaire 12 comportant une ouverture 205 reliée au décanteur par laquelle l’effluent primaire 12 entre, - une première zone 220 de mise en vitesse hydraulique de l’effluent sur laquelle la zone de mélange de l’effluent 210 présente une ouverture 215, - une zone d’aération 230 où a lieu la nitrification et la dénitrification de l’effluent primaire 12, séparée de la première zone de mise en vitesse hydraulique par une paroi 225 à une de ses extrémités, - une première zone de dégazage 235 séparée de la zone d’aération 230 par une paroi 225 à l’autre de l’extrémité de la zone d’aération 230, - une deuxième zone de dégazage 240, ouverte sur première zone de dégazage par une ouverture 237, et - une zone de clarification 250, notamment lamellaire, permettant d’obtenir l’effluent traité 22 récupérable en surface et la boue biologique 25 circulant au fond vers la zone 210.
La partie de la boue biologique circulante 25, riche en bactéries, facilite un traitement biologique de l’effluent 12 par culture libre, c’est-à-dire sans besoin d’ajouter une population bactérienne spécifique ou de média de fixation pour celles-ci. Elle permet également de diminuer la charge carbonée de l’effluent d’entrée, ce qui facilite le traitement et permet le traitement d’un effluent primaire 12 ayant un ratio C/N déséquilibré.
Le traitement biologique principal 20 est de type « boue activée ».
Dans le bassin biologique 200, la liqueur mixte, formé du mélange de l’effluent primaire 12 et de la boue biologique, circule selon les flèches indiquées sur la en passant successivement par la zone d’entrée 210, la première zone de mise en vitesse hydraulique 220, la zone d’aération 230, la première zone de dégazage 235, la deuxième zone de dégazage 240 et la zone de clarification 250 et à nouveau dans la zone d’entrée 210. La circulation de la liqueur mixte dans le bassin biologique est maintenue en permanence dans l’ensemble du bassin 200 notamment grâce à un système insufflant de l’air au liquide dans la zone 220. De préférence, la liqueur mixte circule avec une vitesse telle que la boue biologique est maintenue en suspension dans la liqueur mixte sans précipiter.
Une telle vitesse de circulation permet de maintenir une concentration en polluants faible dans le liquide. En effet, plus la vitesse de circulation est élevée, plus l’effluent primaire 12 est dilué. Ceci améliore également le traitement de l’effluent primaire 12 en augmentant la quantité de microorganisme mélangés à ce dernier.
La zone d’aération 230 comporte un système d’aération 232 illustré sur la . Ce dernier s’étend dans le fond du bassin biologique 200 et comporte des diffuseurs d’air 236 longitudinaux, régulièrement espacés, formant dans la zone d’aération 230 un tapis d’aération 236 en fond de bassin. Un tel système permet de maintenir une oxygénation du liquide sensiblement uniforme dans toute la zone d’aération 230.
Les diffuseurs 236 sont configurés pour former des colonnes de bulles 237 de tailles sensiblement identiques, tel qu’illustré à la .
La concentration d’oxygène dissous (DO) moyen obtenu dans la zone d’aération est compris entre 0,2 et 0,4 mg/L. Ce faible taux d’oxygénation présente plusieurs avantages détaillés dans la suite, notamment la bonne croissance des bactéries.
La nitrification, et dénitrification de l’effluent primaire 12 s’effectuent au sein de la zone d’aération 230.
Le demi-cadre 32 est disposé sur un premier côté de la membrane CCM 25, dans l’exemple au-dessus de la membrane à la , alors que le demi-cadre 34 est disposé sur un deuxième côté de la membrane CCM 25, dans l’exemple au-dessous de la membrane à la . Ceci a pour effet d’immobiliser la membrane 22, c’est-à-dire en pratique la membrane CCM 25, en la pinçant entre les demi-cadres 32 et 34, au sein du cadre 30.
Avantageusement, l’épaisseur de chacun des demi-cadres 32 et 34 est comprise entre 0,020 et 0,030 mm, de préférence, de l’ordre de 0,025 mm.
Le cadre permet de rigidifier la membrane CCM 25 et de la maintenir en position au sein de l’empilement 60.
En pratique, les demi-cadres 32 et 34 sont collés l’un contre l’autre au niveau du plan d’appui π30, au moyen d’une colle.
On note S32 la surface du demi-cadre 32 tourné vers le demi-cadre 34. On note S34 la surface du demi-cadre 34 tourné vers le demi-cadre 32. En configuration montée du cadre 30 autour de la membrane 22, les surfaces S32 et S34 sont en contact l’une contre l’autre, alignées sur le plan π30 et collées l’une à l’autre au moyen de la colle.
Dans cette configuration, le plan médian π22 de la membrane 22 est également aligné sur le plan π30.
La colle utilisée pour assembler les demi-cadres 32 et 34 est de préférence une colle thermo-activable à base de polymère thermoplastique, par exemple une colle à base de copolymère EVA, telle que la colle commercialisée sous la référence AP12 par la société Addev Materials.
Avantageusement, l’épaisseur de la colle déposée sur la surface S32 ou S34 de chacun des cadres est comprise entre 0,01 à 0,02 mm, de préférence, de l’ordre de 0,013 mm.
Avantageusement, le cadre 30 définit des ouvertures 36 destinées à former des galeries de circulation et de distribution/collecte de fluide au sein de l’empilement 6, lorsque plusieurs cadres sont juxtaposés au sein de l’empilement 60, selon une direction perpendiculaire à leurs plans médians π30.
En variante, notamment dans le cas d’une pile à combustible dite avec « manifolds externes », le cadre est dépourvu d’ouvertures du type des ouvertures 36.
On note A30 un axe perpendiculaire au plan π30 et passant par le centre géométrique du cadre 30. L’axe A30 est perpendiculaire à la membrane de base 22, ainsi qu’à la membrane CCM 25, donc à leur plan médian π22.
Les ouvertures 36 sont constituées en alignant, selon des directions parallèles à l’axe A30, des ouvertures individuelles 36 2 et 36 4 formées respectivement dans les demi-cadres 32 et 34.
Au sein de l’empilement 6, les axes A30 des différents cadres 30 sont confondus et les cadres 30 sont orientés autour de cet axe de façon à ce que les ouvertures 36 constituent ensemble des galeries de circulation et de distribution/collecte de fluide, notamment d’hydrogène, d’air ou de fluide caloporteur, au sein de l’empilement 60.
La plaque bipolaire 4 est équipée d’ouvertures 46 de même géométrie que les ouvertures 36 et qui participent également à la définition de ces galeries.
La géométrie des ouvertures 36 aux figures 1, d’une part, et 2 et 3, d’autre part, est différente, compte-tenu du caractère schématique de ces figures. En pratique, cette géométrie résulte d’un choix de conception du cadre 30 et de la plaque bipolaire 4.
A partir des solutions aqueuses disponibles de compositions c1, c2, c3, et c4, de la composition finale cible cfc, et des compositions chimiques des solutions d’addition a1, a2, a3, a4, et a5, il est possible de mettre en œuvre l’étape de calcul E7.
La composition de mélange cm1 de la solution de mélange, pour un volume Vm1 (connu), est alors décrite par l’équation suivante, qui se décline pour chaque paramètre utile de chaque composition (par exemple THCa, THMg, TAC, Sodium, Chlorures, Sulfates). On obtient donc dans ce cas, 6 équations correspondant à 6 paramètres utiles différents : ci.Vm1 = V1.c1i + V2.c2i + V3.c3i + V4.c4i + Va1.a1i + Va2.a2i + Va3.a3i + Va4.a4i + Va5.a5i.
L’indice i dans la formule précédente fait référence aux 6 paramètres utiles décrits dans cet exemple (THCa, THMg, TAC, CNa, CCl, CS).
On a Vm1=V1+V2+V3+V4+Va1+Va2+Va3+Va4+Va5, où V1, V2, V3, et V4 correspondent aux volumes à mélanger de solutions aqueuses de compositions c1, c2, c3, et c4 et Va1, Va2, Va3, Va4, et Va5 correspondent aux volumes à mélanger des solutions d’additions de composition a1, a2, a3, a4, a5.
Dans le cas de ce premier exemple, les paramètres suivants Vm1 et c1i, c2i, c3i, c4i, a1i, a2i, a3i, a4i, a5i sont connus : - Vm1 correspond au volume d’eau de refroidissement à fabriquer. Il est également possible d’utiliser des débits en divisant les volumes par une unité de temps. Ce paramètre est défini par une valeur unique. Pour cet exemple, on a besoin de 24m 3 de solution d’eau de refroidissement. Cette valeur en débit est 2.4m 3 /h si le temps caractéristique est 10h (intervalle de temps entre chaque coulée par exemple). - c1i, c2i, c3i, c4i, a1i, a2i, a3i, a4i, a5i : correspondent respectivement aux paramètres utiles des solutions aqueuses disponibles (3, 5, 7, 9), et des solutions d’addition de sels 13 et correcteurs de pH 15 disponibles. Des étapes d’analyse complémentaires peuvent éventuellement être mises en œuvre pour contrôler chaque paramètre utile.
Selon une variante non limitative, un coefficient de pondération γi peut être utilisé pour prioriser un des paramètres utiles. Dans cet exemple, par exemple une importance plus grande est donnée à la concentration en magnésium THMg par rapport à la concentration en sodium CNa ou à la concentration en ions sulfates CS. Les coefficients de pondération γi suivants sont donc choisis, permettant d’obtenir la composition de mélange cm1 suivante (tableau 4) :
THCa (°f) THMg (°f) TAC (°f) CNa (mg/L) CCl (mg/L) CS (mg/L) c1 34.3 6.9 38.0 60 80 49 γi 100 2000 50 2 200 1 cfc 35.7 14.3 14.7 46 100 300 cm1 35.7 14.3 14.7 46 100 300
Dans le cadre de cet exemple et des pondérations choisies, il est possible d’obtenir une solution de mélange ayant une composition de mélange cm1 égale à la composition finale cible cfc. Une telle solution n’est cependant pas toujours mathématiquement obtenue compte tenu des éléments disponibles lors du procédé de préparation.
L’étape de calcul E7 comprend donc ensuite la détermination des volumes à mélanger. Dans cet exemple, les inconnues sont les 9 volumes des solutions à mélanger (V1, V2, V3, V4, Va1, Va2, Va3, Va4, Va5). L’unité de calcul 30 utilise alors un solveur qui permet de minimiser la somme des écarts suivante : Σ i=1=>6 γ i .[(V1.c1 i + V2.c2 i + V3.c3 i + V4.c4 i + Va1.a1 i + Va2.a2 i + Va3.a3 i + Va4.a4 i + Va5.a5 i ) – Vm1.cm1 i ] 2
Afin d’obtenir des solutions mathématiques qui ont un sens physique, des conditions aux limites souhaitées sont ajoutées (i.e. toutes les valeurs sont positives, les volumes ne peuvent pas être supérieurs à la capacité des réservoirs 33, 35, 37, 39) de façon à obtenir les volumes de chaque solution à ajouter, ainsi que la composition de mélange cm1 de la solution de mélange.
Dans le cadre de cet exemple particulier, un volume Vm1 de 24 m3 de la solution de mélange peut être obtenue par le mélange des volumes suivants : - V1 (solution d’eau industrielle 3) = 9.28m 3 - V2 (solution d’eau traitée sur échangeur d’ions cationiques 5) = 9.10m 3 - V3 (solution d’eau déminéralisée 7) = 2.64m 3 - V4 (solution aqueuse contenant des ions Mg2+ et Ca2+ 9) = 2.98m 3
Et avec les additifs suivants : - Va1 (solution MgSO4 à 10%) = 21.7L - Va2 (solution CaCl2 à 10%) = 13.3L - Va3, Va4 et Va5 ne sont pas utilisés (=0).
La phase de mélange P3 comprend alors uniquement une première étape de mélange E8 par le mélange dans une unité de mélange 31 des volumes calculés correspondant aux différentes solutions. Par exemple, la première étape de mélange E8 des solutions aqueuses peut être réalisé dans l’ordre suivant : V1, V2, V3, V4, par l’intermédiaire d’un agitateur magnétique, puis par l’ajout des volumes de solutions d’addition Va1 et Va2 en maintenant le brassage.
Le procédé de préparation peut ensuite comprendre l’étape de contrôle E9 dans laquelle un contrôle de la composition de mélange cm1 obtenue est réalisé. Ce contrôle comprend : - la mesure du taux hydrotimétrique TH et du taux alcalimétrique complet TAC à l’aide d’un analyseur de TH et de TAC à indicateur coloré - la mesure du pH par une sonde de pH.
Selon le résultat de l’étape de contrôle E9, le pH peut ensuite être corrigé par l’ajout de l’eau de javel pour obtenir une quantité de chlore libre souhaitée pour que la composition de mélange cm1 tende vers la composition finale cible cfc.
Exemple 2 : Dans ce deuxième exemple, Le tableau 5 ci-dessous décrit la composition de la solution d’eau industrielle pouvant par exemple correspondre à la première composition c1, et décrit également la composition finale cible cfc. Ces deux compositions sont obtenues lors de la première étape d’analyse E1, et de la deuxième étape d’analyse E2. En particulier dans la mise en œuvre du procédé de préparation de cet exemple, le but est d’obtenir une eau de refroidissement 1 pour laquelle les paramètres utiles « taux hydrotimétrique et taux alcalimétrique complet TAC » sont inférieurs aux paramètres utiles correspondant de la composition finale cible cfc.
Comme indiqué ci-dessus, un tel anticorps est utilisé dans le procédé selon l’invention en tant que contrôle interne de qualité positif, ce qui permet une expression standardisée des résultats en tenant compte de l’activation plaquettaire mesurée avec cet anticorps.
Composition et préparation de la série Test Patient (TP, étape 2)
La série Test Patient (TP) comprend 5 mélanges dont 2 supplémentaires par rapport à la série Validation/Standardisation : le mélange Ago et le mélange Basal.
Les mélanges 2a, 2b (éventuellement 2b’ et 2b’’) et 2c sont similaires aux mélanges 1a, 1b (éventuellement 1b’ et 1b’’) et 1c respectivement (i.e. mêmes quantités, mêmes ingrédients et mêmes volumes). Les 5 mélanges de la série Test Patient (TP) ne comprennent toutefois pas l’ajout d’anticorps monoclonal dirigé spécifiquement contre le FP4 modifié par un polyanion, ou l’un de ses fragments.
La série Test Patient permet d’évaluer la capacité des anticorps anti-FP4 modifié par un polyanion présents dans le sang du patient à induire (i) l’activation des plaquettes en l’absence d’héparine et/ou en présence de faibles concentrations d’héparine, et (ii) leur inactivation en présence de fortes concentrations d’héparine.
La présence d’un activateur plaquettaire ou agoniste fort dans le mélange Ago a pour but d’activer l’ensemble de la population plaquettaire, et constitue un contrôle d’activation plaquettaire non spécifique permettant de définir le seuil de positivité du marqueur de l’activation des plaquettes.
L’agoniste fort est connu dans l’état de la technique. Parmi les différents agonistes forts, on peut notamment citer les TRAP (thrombin receptor activator peptides, avec 6 ou 14 acides aminés), le calcium ionophore A23187 (formule chimique ci-après), l’acide arachidonique, l’adénosine diphosphate (ADP), ou bien la thrombine et ses dérivés. De préférence, deux types d’agonistes forts sont utilisés selon le marquage final de l’activation plaquettaire : de préférence, l’agoniste fort est choisi parmi les TRAP (thrombin receptor activator peptides, avec 6 ou 14 acides aminés) ou le calcium ionophore A23187, dont la formule chimique est indiquée ci-dessous :