INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Selon une autre possibilité, les nanofils sont obtenus par gravure, selon une approche dite descendante (ou top down). Selon une telle possibilité, on forme, sur le substrat 10, une première couche 13 1 d’un semi-conducteur d’un premier dopage, par exemple dopage n, puis une deuxième couche 13 2 , d’un semi-conducteur d’un autre dopage, par exemple dopage p. Cf. . Les nanofils sont formés par gravure de la première couche 131 et de la deuxième couche 132. Cf. . Une couche d’encapsulation 15 est ensuite formée autour des nanofils, comme précédemment décrit. La couche conductrice 22 est ensuite déposé sur l’extrémité libre des nanofils 30, pour former les électrodes 21c. La couche d’interface 23 est formée sur la couche conductrice 22. Un tel mode de fabrication peut aussi permettre la formation de nanofils comportant une jonction métal – semi-conducteur : la première couche 131 ou la deuxième couche 132 est formée d’un métal, tandis que l’autre couche est formée d’un semi-conducteur.
L’approche descendante permet d’obtenir des nanofils dont la composition est homogène en termes de dimensions et de profil de dopage. Cela est favorable à une intégration dans des dispositifs à grande échelle.
Adressage électrique Comme décrit en lien avec les figures 1A à 1C, chaque nanofil s’étend entre une première extrémité, sur une première surface 11 du substrat 10 et une deuxième extrémité, sur une deuxième surface 21 de la structure multicouche 20. La première surface 11 et la deuxième surface 21 sont conductrices au moins au niveau de chaque intersection avec un nanofil. Ainsi, au niveau de chaque intersection avec un nanofil, la première surface comporte une première électrode 11 c et la deuxième surface comporte une deuxième électrode 21 c . Dans l’exemple représenté sur les figures 1A à 1C, la première surface 11 et la deuxième surface 21 sont formées d’un matériau conducteur. Elles sont conductrices selon toute leur aire.
Les première et deuxième surfaces peuvent être structurées, et comporter différentes électrodes 11 c , 21 c isolées les unes des autres. Sur la , chaque électrode est matérialisée par une ligne en pointillés. Sur la première surface 11, chaque première électrode 11 c décrit une ligne, parallèle à l’axe longitudinal X. Sur la deuxième surface 21, chaque deuxième électrode 21 c décrit une colonne, parallèle à l’axe latéral Y. Chaque nanofil est fonctionnel lorsque les électrodes 11 c , 21 c , entre lesquelles il s’étend, sont polarisées. La structuration des électrodes en lignes / colonnes permet de sélectionner les nanofils fonctionnels, ces derniers s’étendant entre deux électrodes polarisées : selon cet agencement, les nanofils reliés à une ligne et à une colonne polarisées sont fonctionnels. Par nanofil fonctionnel, on entend un nanofil polarisé pour effectuer une détection de photons de fluorescence.
Plusieurs lignes et/ou plusieurs colonnes peuvent être polarisées simultanément ou successivement. Le circuit de détection 40 comporte :
une unité d’adressage 40 X , destinée à polariser tout ou partie des premières électrodes 11 c , parallèles à l’axe X, et une unité d’adressage 40 Y destinée à polariser tout ou partie des deuxièmes électrodes 21 c parallèles à l’axe Y.
Lorsque les nanofils sont répartis en clusters, comme décrit en lien avec la , les nanofils d’un même cluster sont de préférence raccordés à une même électrode, à la fois sur le substrat 10 et sur la structure multicouche 20. Les nanofils d’un même cluster sont ainsi simultanément fonctionnels. Les nanofils non reliés au circuit de détection ne sont pas fonctionnels.
Fonctionnalisation - fluorescence La fonctionnalisation de la surface de fonctionnalisation 25 est assurée par le greffage de sondes biologiques de détection 26 sur la surface de fonctionnalisation 25. Les sondes biologiques de détection 26 sont destinées à capturer sélectivement une biomolécule d’intérêt 3. Selon un mode de réalisation, en multiplexage, différentes sondes biologiques de détection 26, adressant respectivement différentes biomolécules d’intérêt, sont séparées sur la surface de fonctionnalisation 25. En référence avec la , la partie de la surface de fonctionnalisation située en vis-à-vis d’un même cluster 35 peut être fonctionnalisée par une même sonde biologique de détection 26, de façon à adresser une même biomolécule d’intérêt 3. On tire alors profit de la détection potentielle, par plusieurs nanofils adjacents, d’une même biomolécule d’intérêt.
Deux parties différentes 25 1 25 2 de la surface de fonctionnalisation 25, respectivement disposées en vis-à-vis de deux clusters différents, peuvent être fonctionnalisées par deux sondes biologiques de détection différentes, de façon à adresser deux biomolécules d’intérêt différentes. Une telle configuration convient particulièrement à la détection de différentes séquences de nucléotides cibles. La sonde biologique de détection comporte alors une séquence de nucléotides complémentaire de la séquence de nucléotides cible. Du fait de la sensibilité élevée de chaque nanofil, le nombre de nanofils composant une même grappe peut être relativement faible. Ainsi, la surface, dans le plan P XY , de chaque grappe, est faible, chaque grappe adressant sélectivement une séquence de nucléotides cible différente d’une autre grappe. Il est ainsi possible de disposer un grand nombre de grappes, adressant respectivement différentes séquences de nucléotides cibles, dans un même dispositif compact.
Selon une possibilité, représentée sur la , chaque biomolécule d’intérêt 3 fait l’objet d’un marquage par un marqueur fluorescent 6, comme précédemment décrit. Dans ce cas, l’accumulation de biomolécules d’intérêt 3 capturées au voisinage de la surface de fonctionnalisation 25 engendre une lumière de fluorescence détectable par les nanofils 30 les plus proches. La capture des biomolécules d’intérêt entraîne une augmentation de la lumière de fluorescence, qui est perceptible par le circuit de détection 40. Sur la , la biomolécule d’intérêt 3 est une séquence d’ADN complémentaire d’un brin d’ADN formant la sonde biologique de détection 26. La capture de la biomolécule d’intérêt est obtenue par hybridation du brin complémentaire sur le brin formant la sonde biologique de détection 26.
Selon une autre possibilité, représentée sur les figures 6B et 6C, la sonde biologique de détection 26 est marquée à l’aide d’un marqueur fluorescent 6. Elle est également liée à une structure complémentaire 26’ portant un désactivateur de fluorescence 6’. Le désactivateur de fluorescence est usuellement désigné par le terme « quencher », le terme « quench » signifiant éteindre. En présence d’un désactiveur (cf. ), un transfert d’énergie est effectué entre le fluorophore et le désactivateur. La sonde biologique de détection 26 présente plus d’affinité à l’égard de la biomolécule d’intérêt qu’à l’égard de la structure complémentaire 26’. En l’absence de biomolécule d’intérêt 3, ou d’une quantité suffisante de la biomolécule d’intérêt, dans l’échantillon 2, l’action du quencher induit une émission négligeable d’une fluorescence par la sonde biologique de détection 26. En présence d’une biomolécule d’intérêt 3 adsorbée sur la sonde de détection 26 (cf. ), cette dernière tend à se fixer sur la sonde biologique de détection 26, à la place de la structure complémentaire 26’. La disparition du quencher 6’ entraîne une émission d’une lumière de fluorescence par le marqueur fluorescent 6, traduisant la capture de la biomolécule d’intérêt 3.
Selon une autre possibilité, représentée sur les figures 6D et 6E, chaque sonde de détection biologique 26 est liée à un marqueur fluorescent 6 et la biomolécule d’intérêt 3 est liée à un quencher. En l’absence de biomolécule d’intérêt 3 couplée à la sonde de détection 26, une lumière de fluorescence 8 est émise. Cf. . En présence d’une biomolécule d’intérêt 3 adsorbée sur la sonde de détection 26, le quencher bloque l’émission de la lumière de fluorescence. Ainsi, la capture d’une biomolécule d’intérêt se traduit par une diminution de la lumière de fluorescence. Cf. .
Les figures 7A et 7B schématisent une structure préférentielle de sonde de détection biologique 26. Un telle structure est usuellement désignée balise moléculaire, ou « molecular beacon ». Ce type de sonde est destiné à une capture d’une séquence monobrin de nucléotides. Sur la , la sonde de détection 26 comporte deux bras complémentaires 26 a , 26 b s’étendant parallèlement l’une à l’autre, à partir d’une boucle 26 0 . Un marqueur fluorescent est greffé par liaison covalente à l’extrémité d’un bras 26 a tandis qu’un quencher est greffé par liaison covalente à l’extrémité sur le bras complémentaire 26 b . La boucle 26 0 est constituée d’une séquence complémentaire de la biomolécule d’intérêt 3. En l’absence de biomolécule d’intérêt 3, la sonde de détection reste fermée, en forme d’épingle à cheveux. La présence du quencher 6’ évite ou limite l’émission d’une lumière de fluorescence par le marqueur fluorescent 6. L’adsorption d’une biomolécule d’intérêt 3 au niveau de la boucle 26 0 entraîne une ouverture de la balise moléculaire, comme représenté sur la . L’éloignement du marqueur fluorescent 6 vis-à-vis quencher 6’ empêche le transfert d’énergie conduisant à l’extinction de l’émission fluorescente. Ainsi, la lumière de fluorescence émise par le marqueur fluorescent 6 est émise et peut être détectée par un nanofil. Avec ce type de sonde de détection, la capture d’une biomolécule d’intérêt se traduit par une augmentation de la lumière de fluorescence.
Selon un mode particulier, la teneur totale en alcanes linéaires ou ramifiés en C8-C19 dans la composition de l’invention sera d’au moins 30% en poids par rapport au poids total de la composition. En particulier, elle ira notamment de 40 à 80% en poids, en particulier de 50 à 70% en poids par rapport au poids total de la composition.
La phase grasse de la composition de l’invention est structurée par une ou plusieurs cires végétales, choisies dans le groupe constitué par la cire de carnauba, la cire de tournesol, et leur mélange. En effet, la Demanderesse a mis en évidence que le choix de ces cires permettait d’obtenir une composition pâteuse ou solide selon l’invention, avec de bonnes propriétés de tenue et de confort. La composition pourra comprendre en outre des cires additionnelles, distinctes des cires de tournesol et carnauba, pour des propriétés additionnelles de texture et sensorialité (glissant). L’homme du métier veillera néanmoins à les choisir en fonction de leur nature (dureté) et en des teneurs telles qu’elles n’impactent pas les propriétés de tenue et de confort apportées par les cires de tournesol et de carnauba.
Cires d’origine végétale selon l’invention Par « cire », au sens de la présente invention, on entend désigner un composé solide à 25 °C qui présente un changement d’état solide/liquide réversible et une température de fusion supérieure ou égale à 40°C, de préférence supérieure à 60°C.
Comme l’illustrent les exemples, la Demanderesse a montré, au sein des cires naturelles végétales, que les cires de tournesol et/ou de carnauba, en mélange avec le polymère silicone-polyuréthane, permettaient d’obtenir les propriétés de dureté attendues (pour que le produit final ne se casse pas ou ne se délite pas à l’application), et de compatibilité avec le polymère silicone polyuréthane (solubilité à chaud).
Ainsi, la composition de l’invention comprend au moins une cire choisie dans le groupe constituée par : la cire de carnauba et la cire de tournesol.
Des exemples non limitatifs de références commerciales de cire de tournesol et de cire de carnauba sont notamment cités dans le tableau 1 suivant :
Cire d’origine végétale Référence commerciale Point de fusion Cire de carnauba CARNAUBA WAX T-1 INA TRADING 78-83 Cire de carnauba KAHLWAX 6607L MB 74-80 Cire de tournesol SUNFLOWER WAX (KOSTER) 73-78 Cire de tournesol SUNFLOWER WAX (YOKOSEKI) 74-80
Le point de fusion est généralement indiqué dans les caractéristiques données par le fournisseur pour chaque cire. Il peut également être mesuré à l'aide d'un calorimètre à balayage différentiel (DSC), par exemple le calorimètre vendu sous la dénomination "DSC Q2000" par la société TA Instruments.
Selon un mode particulier et préféré, la composition de l’invention comprendra au moins une cire de tournesol.
Selon un autre mode, la composition de l’invention comprendra au moins une cire de carnauba.
La présence de plusieurs cires de dureté différentes (point de fusion), permettra d’optimiser les propriétés de dureté, texture et glissant de la composition.
Ainsi, avantageusement, elle pourra comprendre une cire de tournesol et une cire de carnauba.
De préférence, la teneur totale en cires de tournesol et de carnauba est supérieure ou égale à 5% en poids par rapport au poids total de la composition.
Ainsi, la teneur totale en cire(s) de tournesol et de carnauba sélectionnées selon l’invention ira notamment de 5 à 25% en poids, en particulier de 10 à 20%, en poids par rapport au poids total de la composition.
De préférence, selon que la composition de l’invention est pâteuse ou solide et conditionnée dans un pot (ou une coupelle), ou un stick, l’homme du métier ajustera les teneurs de chaque cire, en fonction des plages de point de fusion indiqués dans le tableau 1 ci-dessus.
Corps gras pâteux et cires additionnelles (optionnelles)
La membrane d’étanchéité primaire 13 comporte une nappe continue de virures 15 métalliques à bord relevés qui sont par exemple de même nature que les virures 15 de la membrane d’étanchéité secondaire 11. Les virures 15 de la membrane d’étanchéité primaire 13 sont soudées par leurs bords relevés 17 sur des supports de soudure parallèles qui sont fixés dans des rainures ménagées sur la surface des blocs isolants primaires 18 en contact avec la membrane d’étanchéité primaire 13.
Les membranes d’étanchéité secondaire 11 et primaire 13 sont fixées à la structure porteuse 2 au niveau notamment de l’angle formé entre la paroi de plafond 4 et la paroi de cofferdam arrière 5 à l’aide d’un anneau de raccordement 55 selon la technique connue. L’anneau de raccordement 55 est donc fixé d’une part à la structure porteuse 2 et d’autre part aux membranes d’étanchéité 11, 13 afin de permettre le transfert des efforts entre les membranes d’étanchéité 11, 13 et la structure porteuse 2.
Afin d’assurer une continuité de l’étanchéité et de l’isolation, la cuve 71 comporte un couvercle 19 disposé dans l’ouverture de chargement/déchargement 7. Le couvercle 19 comporte une paroi d’étanchéité métallique 20 et une structure d’isolation thermique 21 située entre la paroi d’étanchéité métallique 20 et la paroi porteuse supérieure 8. Le couvercle 19 est fixé à la paroi porteuse supérieure 8. La paroi d’étanchéité métallique 20 réalise la continuité de l’étanchéité avec la membrane d’étanchéité primaire 13 de la paroi de plafond 4 tandis que la structure d’isolation thermique 21 réalise la continuité de l’isolation.
La structure d’isolation thermique 21 peut comporter un ou plusieurs blocs isolants de couvercle, réalisé par exemple sous forme de caisson comportant une plaque de fond, une plaque de couvercle et des voiles porteurs s’étendant, dans la direction d’épaisseur, entre la plaque de fond et la plaque de couvercle et délimitant une pluralité de compartiments remplis d’une garniture isolante, telle qu’une mousse isolante rigide. Le bloc isolant de couvercle comporte des trous de passage (non représentés) permettant le passage des conduites de chargement/déchargement.
La paroi d’étanchéité 20 du couvercle 19 comporte une pluralité de plaques planes métalliques 23 soudées les unes aux autres. La paroi d’étanchéité 20 comporte de plus une pluralité d’orifices de couvercle (non représentés) destinés à être traversés par les conduites de chargement/déchargement. L’installation de stockage 1 comporte de plus une bande de liaison métallique 24 permettant de relier de manière étanche la paroi d’étanchéité 20 du couvercle et la membrane d’étanchéité primaire 13 de la paroi de plafond 4, comme visible sur les figures 4 à 7. La bande de liaison métallique est ainsi soudée à l’aide de soudures 26 à la fois à la paroi d’étanchéité 20 du couvercle 19 et à la membrane d’étanchéité primaire 13 de la paroi de plafond 4. La bande de liaison métallique 24 sera décrite en détail par la suite en relation avec ces figures.
La barrière thermiquement isolante primaire 12 de la paroi de plafond 4 et la structure d’isolation thermique 21 du couvercle 19 comportent un ensemble de support formé d’une pluralité de plaques de support 27 et de plaques de couvercle 22 des blocs isolants primaires 18, 39. L’ensemble de support permet de supporter la membrane d’étanchéité primaire 13 de la paroi de plafond 4, la paroi d’étanchéité 20 du couvercle 19 et la bande de liaison métallique 24.
Les plaques de support 27 sont ainsi situées au droit de la paroi d’étanchéité 20 du couvercle 19 et au droit de la bande de liaison métallique 24 afin de jouer le même rôle de support que la plaque de couvercle 22 des blocs isolants primaires 18, 39 pour la membrane d’étanchéité primaire 13.
La membrane d’étanchéité primaire 13 est susceptible de transmettre à la bande de liaison métallique 24 des efforts de compression et de traction liés au travail de la membrane d’étanchéité primaire 13. Ces efforts sont particulièrement importants au niveau du bord d’extrémité longitudinale avant 25 de l’ouverture de chargement/déchargement 7, qui est le bord de l’ouverture de chargement/déchargement 7 situé entre le couvercle 19 et la paroi de cofferdam avant 6 dans la direction longitudinale L. En effet, du fait du placement du couvercle 19 proche de la paroi de cofferdam arrière 5, la dimension longitudinale de la membrane d’étanchéité primaire 13 entre le couvercle 19 et la paroi de cofferdam avant 6 est bien plus importante que la dimension longitudinale de la membrane d’étanchéité primaire 13 entre le couvercle 19 et la paroi de cofferdam arrière ce qui entraine des efforts plus importants au niveau du bord d’extrémité longitudinale avant 25 lors de la déformation de la coque ou de la contraction thermique. De plus, ces efforts sur le bord d’extrémité longitudinale avant 25 sont particulièrement importants du fait de l’orientation de la membrane d’étanchéité primaire 13. En effet, la membrane d’étanchéité primaire 13 est orientée de sorte que la portion centrale plane 16 des virures 15 s’étende dans la direction longitudinale L du navire 70. Ainsi, aucune zone permettant d’absorber les efforts de traction et de compression n’est prévue dans cette direction.
Ces efforts de compression et de traction peuvent être ainsi amenés à faire travailler de manière cyclique les soudures 26. De plus, lors de ces cycles, la bande de liaison métallique 24 peut être amenée à flamber sollicitant ainsi les soudures 26 en flexion. Afin de soulager les soudures 26, il est prévu de déplacer l’éventuel flambage à distance des soudures 26.
Les figures 3 à 5 illustrent la paroi de plafond 4 au niveau du bord d’extrémité longitudinale avant 25 de l’ouverture de chargement/déchargement 7 à différentes étapes de l’assemblage de la bande de liaison métallique 24 selon un premier mode de réalisation. En effet, la illustre plus spécifiquement la paroi de plafond 4 avant l’assemblage de la bande de liaison métallique 24. La présente la paroi de plafond 4 après soudure de la bande de liaison métallique 24 et fixation de celle-ci à l’aide de points de fixation. Enfin la illustre la paroi de plafond 4 après le recouvrement des points de fixation.
L’installation de stockage 1 comporte une pluralité de supports de fixation secondaires 28 métalliques juxtaposés dans la direction transversale T le long du bord d’extrémité longitudinale avant 25 de l’ouverture de chargement/déchargement 7. Ainsi, la pluralité de supports de fixation secondaires 28 s’étend parallèlement à la bande de liaison métallique 24.
Chaque support de fixation secondaire 28 présente une assise secondaire 29 s’étendant dans la direction longitudinale L qui est soudée à un pied secondaire 30, le pied secondaire 30 étant ancré à la paroi porteuse supérieure 8 par exemple par soudage. Le pied secondaire 30 est dans le mode de réalisation illustré en figures 3 à 6, réalisé sous la forme de poutre à section en H (forme de section dans la direction d’épaisseur). D’autres formes de section peuvent également être utilisées à condition d’offrir un moment d’inertie suffisant dans la direction longitudinale L.
La barrière thermiquement isolante secondaire 10 comporte des blocs isolants secondaires d’extrémité 34. Chaque bloc isolant secondaire d’extrémité 34 est intercalé entre deux supports secondaires 28 adjacents dans la direction transversale T. La barrière thermiquement isolante secondaire 10 comporte également des poutres d’arrêt 41 s’étendant dans la direction transversale T et positionnées sur la surface supérieure des blocs isolant secondaires d’extrémité 34 et au voisinage d’assises secondaires 29 de deux supports secondaires 28 adjacents. Chaque poutre d’arrêt 41 est maintenue en position à l’aide d’un ou plusieurs dispositifs de butée 42 fixés à une ou plusieurs assises secondaires 29, comme visible en . Une plaque de fixation secondaire métallique 35 est fixée à la poutre d’arrêt 41, par exemple par vissage ou rivetage.
La membrane d’étanchéité secondaire 11 comporte une rangée de virures 15 dans la direction transversale T interrompues par le bord d’extrémité longitudinale avant 25 de l’ouverture 7. Ces virures 15 interrompues par l’ouverture 7 sont soudées à la plaque de fixation secondaire métallique 35.
La membrane d’étanchéité secondaire 11 comprend également une cornière de raccordement secondaire métallique 36 s’étendant dans la direction transversale T. La cornière de raccordement secondaire 36 comporte une première aile secondaire 37 et une deuxième aile secondaire 38 reliée à la première aile secondaire 37 et formant un angle avec celle-ci. La première aile secondaire 37 est soudée à la plaque de fixation secondaire métallique 35. La deuxième aile secondaire 38 est soudée à la paroi porteuse supérieure 8 via un plat d’ancrage 40 et est située entre le couvercle 19 et les supports secondaires 28. L’assemblage des virures 15 interrompues par l’ouverture 7, des plaques de fixation secondaires 35, et des cornières de raccordement secondaires 36 permettent d’assurer un arrêt de la membrane d’étanchéité secondaire 11 au niveau du bord d’extrémité longitudinale avant 25 tout en conservant la continuité de l’étanchéité, notamment par rapport au couvercle 19.
Outre de l’eau, la composition selon ce mode de réalisation peut éventuellement comprendre un ou plusieurs solvants organiques.
A titre d’exemples de solvants organiques utilisables selon l’invention, on peut notamment citer l’éthanol, le propanol, le butanol, l’isopropanol, l’isobutanol, le propylène glycol, le dipropylène glycol, l’isoprène glycol, le butylène glycol, le pentylène glycol, l’hexylène glycol, le glycérol, le sorbitol, l’alcool benzylique, le phénoxyéthanol et leurs mélanges.
Le pH de la composition selon la présente invention varie de préférence de 3 à 9, et plus préférentiellement de 4 à 8.
La composition selon la présente invention peut éventuellement comprendre en outre un ou plusieurs composés additionnels, différents des ingrédients de l’invention et parmi lesquels on peut citer les corps gras, les tensioactifs cationiques, anioniques, non-ioniques, amphotères ou zwittérioniques, les polymères cationiques, anioniques, non-ioniques, amphotères ou leurs mélanges, les agents antipelliculaires, les agents antiséborrhéïques, les agents antichute et/ou repousse des cheveux, les vitamines et pro-vitamines dont le panthénol, les filtres solaires, les agents séquestrants, les agents plastifiants, les agents solubilisants, les agents acidifiants, les agents épaississants minéraux ou organiques, notamment les agents épaississants polymériques, les agents anti-oxydants, les hydroxyacides, les parfums, les agents conservateurs, les céramides et leurs mélanges.