Cellule progéniteur-T isolée, de préférence humaine, présentant un phénotype CD45RA+, CD7+, CD5+, ladite cellule progéniteur-T comprenant une cassette d’expression qui comprend un promoteur exogène induit par la voie Notch choisi parmi le promoteur de l’ IL7RA ou de BCL11B , ledit promoteur étant lié de manière fonctionnelle à une séquence nucléique hétérologue d’intérêt, ladite cellule progéniteur-T isolée n’étant pas obtenue à partir d’une cellule souche embryonnaire humaine. Cellule progéniteur-T isolée selon la revendication 1, ladite cellule présentant un phénotype CD45RA+, CD7+, CD5+, CD1A+. Cellule progéniteur-T isolée selon la revendication 1 ou 2, dans laquelle la séquence nucléique hétérologue d’intérêt code pour un récepteur antigénique chimérique. Population cellulaire isolée enrichie en cellules progéniteurs-T selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, ladite population comprenant de préférence au moins 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, de préférence au moins 90% desdites cellules progéniteurs-T. Composition pharmaceutique comprenant la cellule progéniteur-T selon l’une quelconque des revendications 1 à 3 ou comprenant la population cellulaire selon la revendication 4. Cassette d’expression comprenant la région promotrice de l’ IL7RA liée de manière fonctionnelle à une séquence nucléique hétérologue d’intérêt, dans laquelle la région promotrice de l’ IL7RA comprend ou consiste en une séquence nucléique ayant au moins 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, ou au moins 99% d’identité avec la séquence nucléique SEQ ID NO : 1 ou SEQ ID NO : 2. Cassette d’expression comprenant le promoteur de BCL11B lié de manière fonctionnelle à une séquence nucléique hétérologue d’intérêt, dans laquelle le promoteur de BCL11B comprend ou consiste de préférence en une séquence nucléique ayant au moins 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, ou au moins 99% d’identité avec la séquence nucléique SEQ ID NO : 3. Cassette d’expression selon l’une quelconque des revendications 6 ou 7, dans laquelle la séquence nucléique d’intérêt code pour un récepteur antigénique chimérique. Vecteur comprenant la cassette d’expression selon l’une quelconque des revendications 6 à 8, le vecteur étant de préférence un vecteur viral, de préférence un vecteur rétroviral, et plus préférentiellement un vecteur lentiviral. Procédé de préparation de cellules progéniteurs-T telles que définies dans l’une quelconque des revendications 1 à 5, comprenant les étapes suivantes : a) mise en culture de cellules souches hématopoïétiques CD34+ dans un milieu de culture comprenant un ligand de Notch tel que Delta-like-1 (DLL1) ou Delta-like-4 (DLL4) et des cytokines permettant la différenciation desdites cellules CD34+ en cellules progéniteurs-T présentant un phénotype CD45RA+, CD7+, CD5+, de préférence un phénotype CD45RA+, CD7+, CD5+, CD1A+ ; b) transformation ou transduction des cellules avant, pendant, ou après ladite étape (a) de différenciation, avec un vecteur comprenant une cassette d’expression telle que définie dans les revendications 6 à 8 ; dans lequel les cellules souches hématopoïétiques CD34+ sont de préférence issues de sang de cordon ombilical, de sang périphérique ou de moelle osseuse, plus préférentiellement de sang de cordon ombilical. Cellule progéniteur-T selon les revendications 1 à 3, population cellulaire selon la revendication 4, ou composition pharmaceutique selon la revendication 5, pour son utilisation dans le traitement d’un cancer, d’une maladie infectieuse, d’une maladie génétique, d’une maladie inflammatoire ou d’une maladie immunitaire ou auto-immune chez un patient. Cellule progéniteur-T, population cellulaire, ou composition pharmaceutique pour son utilisation selon la revendication 11, ladite ou lesdites cellules progéniteurs-T étant des cellules autologues ou allogéniques par rapport au patient, lesdites cellules étant de préférence des cellules allogéniques.