INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Selon un mode de réalisation préférentiel visible dans les figures 2 et 3, ces moyens de maintien 14 se présentent sous forme d’une grille 15 refermant en bordure supérieure 16 une paroi de fond 3 ou latéral 6, 7 en forme de bac 11, 11A, 11B. Cette grille comporte des ouvertures 17 permettant l’écoulement des fluides au travers, en direction du matériau de rétention 13.
Dans un exemple de réalisation, l’oxydation est réalisée dans un solvant comprenant l’hexafluoroisopropanol (HFIP) et au moins un composé choisi parmi les alcools ou l’acétonitrile.
L’emploi de ce solvant permet d’améliorer le rendement de formation de l’anion pentazolate car il facilite la dépolymérisation de l’oxydant, activant ainsi l’oxydation de l’arylpentazole phénolique.
On peut en particulier réaliser l’oxydation dans un solvant comprenant l’hexafluoroisopropanol et du méthanol (MeOH).
On peut plus généralement réaliser l’oxydation dans un solvant perfluoré qui peut être différent du HFIP comme dans le trifluoroéthanol (TFE). D’une manière générale, l’oxydation peut être réalisée dans un mélange d’un alcool, tel que le méthanol (MeOH), et de solvant perfluoré ou d’acétonitrile.
Dans un exemple de réalisation, le groupement B est de formule B1.
Ce type d’oxydant permet de limiter la génération de sels contaminants par rapport à l’emploi du groupement de formule B2, simplifiant davantage encore l’isolation et la purification de l’anion pentazolate obtenu.
Dans ce cas, l’oxydant peut en particulier être l’iodosylbenzène (PhIO) dont la formule est fournie ci-dessous.
Dans un exemple de réalisation, le groupement B est de formule B1 et l’oxydation est réalisée dans un solvant comprenant l’hexafluoroisopropanol et au moins un composé choisi parmi les alcools ou l’acétonitrile.
Cette caractéristique permet avantageusement d’obtenir un rendement de formation de l’anion pentazolate particulièrement élevé par rapport aux rendements des techniques de l’art antérieur, pouvant aller jusqu’à plus de 50%.
En variante, le groupement B est de formule B2 et peut présenter la formule générale ci-dessous.
La chaîne alkyle R qui peut faire partie intégrante des substituants R 1 et R 2 décrite plus haut peut être non substituée.
Selon un exemple, le groupement B est de formule B2 avec R 1 et R 2 identiques et désignant chacun **-OCOMe ou **-OMe, où Me désigne un groupement méthyle.
En particulier, l’oxydant peut être le diacétate d'iodobenzène (PIDA) dont la formule est fournie ci-dessous.
D’autres groupements de formule B2 sont envisageables avec par exemple R 1 et R 2 identiques et désignant chacun **-OCO t Bu, où t Bu désigne un groupement tertiobutyle.
Selon une autre variante, on peut utiliser le réactif de Koser comme oxydant, dont la formule est fournie ci-dessous, avec Ts correspondant au groupement tosyle :
Quelle que soit sa structure, l’oxydant peut être obtenu, par des techniques connues en soi, par exemple à partir de l’halogénure d’aryle correspondant ou d’un dérivé aromatique simple. Les deux équations ci-dessous illustrent, dans le cadre d’un exemple, ces deux voies de synthèse pour la formation de l’oxydant PIDA.
Le solvant de synthèse peut être constitué d’huile hydrocarbonée iii) associée à un solvant additionnel notamment choisi parmi les esters à chaîne aliphatique hydrocarbonée linéaire ou ramifiée, ayant de 3 à 8 atomes de carbone au total tels que l’acétate d’éthyle, l’acétate de méthyle, l'acétate de propyle, l’acétate de n-butyle.
A la fin de l’étape 1, lorsque le solvant de synthèse est un mélange, le solvant additionnel dont les esters à chaîne aliphatique hydrocarbonée tels que définis précédemment est retiré par méthode classique de l’homme du métier tel que la distillation. Les polymères des particules i) se retrouvent dans l’huile hydrocarbonée iii).
On choisit donc un solvant de synthèse tel que les monomères du ou des agents stabilisants polymériques ii), et l'amorceur radicalaire iv), y soient solubles, et que les particules de polymère i) obtenues y sont insolubles afin qu'elles y précipitent lors de leur formation.
En particulier, on choisit le solvant de synthèse qui est organique apolaire et volatile de préférence choisi parmi les huiles hydrocarbonées iii) volatiles notamment les alcanes tels que l'heptane, le cyclohexane ou l’isododécane, de préférence l’isododécane.
Lorsque le milieu non aqueux est une huile hydrocarbonée iii) volatile, on peut directement effectuer la polymérisation dans ladite huile qui joue donc également le rôle de solvant de synthèse. Les monomères doivent également y être solubles, ainsi que l'amorceur radicalaire, et le polymère des particules i) obtenu doit y être insoluble.
Les monomères sont de préférence présents dans le solvant de synthèse, avant polymérisation, à raison de 15 % à 45 % en poids. La totalité des monomères peut être présente dans le solvant avant le début de la réaction, ou une partie des monomères peut être ajoutée au fur et à mesure de l'évolution de la réaction de polymérisation.
La polymérisation est préférentiellement effectuée en présence iv) d’un ou plusieurs amorceurs radicalaires qui peut être tout amorceur connu de l’homme de l’art pour la polymérisation radicalaire tels que les amorceurs peroxydiques, azoïques, les couples oxydoréducteurs (rédox), et amorceurs photochimiques.
On peut notamment citer ceux de type : - peroxyde en particulier choisi parmi le tert-Butyl peroxy-2-ethylhexanoate : Trigonox 21S ; 2,5-dimethyl-2,5-di(2-ethylhexanoylperoxy)hexane : Trigonox 141 ; tert-butyl peroxypivalate : Trigonox 25C75 de chez AkzoNobel ; ou - azoïque en particulier choisi parmi AIBN : azobisisobutyronitrile ; V50 : 2,2’-azo-bis(2-amidinopropane) dihydrochlorure.
La polymérisation est de préférence effectuée à une température allant de 70 à 110°C et à pression atmosphérique.
Les particules de polymère i) sont stabilisées en surface, lorsqu'elles se forment lors de la polymérisation, grâce à l'agent stabilisant ii).
La stabilisation peut être effectuée par tout moyen connu, et en particulier par ajout direct de l'agent stabilisant ii), lors de la polymérisation.
L’agent stabilisant ii) est de préférence également présent dans le mélange avant polymérisation des monomères du polymère des particules i). Toutefois, il est également possible de l'ajouter en continu, notamment lorsque l'on ajoute également en continu les monomères des particules i).
On peut utiliser de 2 à 40 % en poids, particulièrement de 3 à 30 % en poids, plus particulièrement de 4 à 25 % en poids du ou des agents stabilisants ii) par rapport au poids total de monomères mis en œuvre (agents stabilisants ii) + particules de polymères i), et de préférence de 4,5 à 20 % en poids.
La dispersion de particules de polymère i) comprend avantageusement de 30 à 65 % en poids de matières sèches, par rapport au poids total de ladite dispersion, et de préférence de 40 à 60 % en poids par rapport au poids total de ladite dispersion.
Selon un mode de réalisation préféré de l’invention la dispersion de l’invention ne comprend pas plus de 3 % en poids de tensioactifs par rapport au poids total de la dispersion, préférentiellement pas plus de 2 % en poids de tensioactifs par rapport au poids total de la dispersion, plus particulièrement pas plus de 1 % en poids de tensioactifs par rapport au poids total de la dispersion, encore plus préférentiellement la composition ne comprend pas plus de 0,5 % en poids de tensioactifs par rapport au poids total de la dispersion, encore mieux le mélange ne comprend pas de tensioactif.
Dans un mode de préparation particulier, on prépare, dans une première étape, le polymère stabilisant statistique ii). Ce polymère stabilisant est soluble dans un solvant organique apolaire de type alcane tel que l’isododécane.
Culture de cellules à l'interface air-liquide Les kératinocytes sont cultivés à « l'interface air-liquide » (dans laquelle les cellules cultivées sont exposées à l'air sur une surface et à un milieu nutritif sur une autre surface) par tout moyen connu dans l'art. De préférence, les cellules sont cultivées dans un environnement qui permet un processus et une manipulation aseptiques.
Dans un mode de réalisation, les kératinocytes sont incubés pendant au moins 3 heures. Les kératinocytes peuvent être incubés, par exemple, entre environ 36°C et environ 38°C. Les kératinocytes peuvent également être incubés, par exemple, à environ 4 %-6 % de CO 2 . Les kératinocytes peuvent également être incubés, par exemple, à une humidité d'environ 10 % à environ 100 %, de préférence d'environ 20 % à environ 99 %, de préférence d'environ 30 % à environ 99 %, de préférence d'environ 40 % à environ 99 %, de préférence d'environ 50 % à environ 99 %, de préférence d'environ 60 % à environ 99 %, de préférence d'environ 70 % à environ 99 %, de préférence d'environ 80 % à environ 99 %, de préférence d'environ 85 % à environ 99 %, d'environ 90 % à environ 98 %, d'environ 92 % à environ 97 %, ou d'environ 94 % à environ 96 %.
Dans certains modes de réalisation, les cellules divulguées sont cultivées en culture discontinue.
Dans certains modes de réalisation, le milieu nutritif est conditionné d'une manière permettant la croissance des kératinocytes à grande échelle (donnant un milieu conditionné à grande échelle) en utilisant, par exemple, un appareil pour la culture aseptique à grande échelle à l'interface air-liquide.
Culture de cellules épithéliales différenciées Les kératinocytes peuvent être cultivés à l'aide d'un nombre quelconque de techniques de culture de cellules/tissus, par exemple à l'aide des techniques décrites dans Rosdy M., Terminal epidermal differentiation of human keratinocytes grown in chemically defined medium on inert filter substrates at the air-liquid interface. J. Invest. Dermatology 95(4) 409-414 (oct. 1990). Par exemple, les cultures de kératinocytes peuvent être initiées en utilisant la technique de la couche nourricière 3T3 décrite dans Green H., Kehinde 0., Thomas J., Growth of cultured human epidermal cells into multiple epithelia suitable for grafting. Proc. Nat. Acad. Sci. USA 76:5665 - 5668 (1979) et dans Rheinwald J.G., Green H. : Epidermal growth factor and the multiplication of cultured human epidermal keratinocytes. Nature 265:421-424 (1977).
Dans un mode de réalisation, le substrat inoculé peut être monté, si cela est utile, immédiatement ou après, par exemple, 24 heures d'incubation. Par exemple, le substrat peut être monté en haut de grilles, telles que des grilles en acier inoxydable, puis mis en culture. Le milieu préconditionné peut être déposé sous le substrat afin de nourrir les cellules uniquement par le dessous tout en exposant la surface des cultures à l'atmosphère. Les cultures peuvent ensuite, par exemple, être incubées pendant 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, ou 35 jours, ou tout autre moment entre ces deux dates.
La différenciation en (biologie du développement) désigne le processus normal par lequel une cellule moins spécialisée subit une maturation pour devenir plus distincte dans sa forme et sa fonction. Elle est également appelée différenciation cellulaire. La différenciation n'est pas limitée aux changements de taille, de forme, de polarité, de métabolisme et de réactivité aux signaux des cellules, mais peut inclure tous les changements moléculaires qui permettent à une cellule progénitrice de devenir plus spécialisée et d'acquérir un rôle plus spécifique.
Ainsi, une « cellule épithéliale différenciée » telle qu'elle est utilisée ici désigne un kératinocyte cultivé dans une culture tridimensionnelle qui subit le processus de différenciation par rapport à son kératinocyte prédécesseur qui a été utilisé pour inoculer les cultures cellulaires décrites ici. Dans un mode de réalisation, la cellule épithéliale différenciée est capable de former les connexions de cellule à cellule nécessaires pour qu'une cellule croisse sur une autre cellule pour former un tissu tridimensionnel. Dans un mode de réalisation, la cellule épithéliale différenciée et/ou ses descendants sont capables de former une couche basale, une couche épineuse, une couche granulaire et/ou une couche cornéenne.
Le terme « cellules épithéliales partiellement différenciées », tel qu’utilisé ici, désigne une culture de kératinocytes cultivés en 3 dimensions dont l'épaisseur des couches de cellules vivantes est inférieure à environ 70 µm.
Le terme « cellules épithéliales complètement différenciées », tel qu’utilisé ici, désigne une culture de kératinocytes cultivés en 3 dimensions avec une épaisseur de couches de cellules vivantes supérieure à environ 70 µm et la présence d'une couche granulaire.
Le terme « épiderme reconstruit », tel qu’utilisé ici, désigne un épiderme multicouche cultivé en trois dimensions. Dans un mode de réalisation, un épiderme humain reconstruit peut être formé au cours de la troisième semaine de culture cellulaire. Par exemple, les kératinocytes humains normaux peuvent former un épiderme humain reconstruit tridimensionnel tel que décrit ici, comme le modèle SkinEthicTM produit par EPISKIN S.A. (www.episkin.com).
Dans un mode de réalisation, les couches de cellules épithéliales différenciées ou l'épiderme reconstruit peuvent comprendre une couche basale, une couche épineuse, une couche granulaire et une couche cornée clairement visibles.
Dans un mode de réalisation, les couches de cellules épithéliales différenciées ou l'épiderme reconstruit ont une épaisseur de couches de cellules vivantes d'au moins environ 2 µm, d'au moins environ 3 µm, d'au moins environ 4 µm, d'au moins environ 5 µm, d'au moins environ 6 µm, d'au moins environ 7 µm, d'au moins environ 8 µm, d'au moins environ 9 µm, d'au moins environ 10 µm, d'au moins environ 11 µm, au moins environ 12 µm, au moins environ 13 µm, au moins environ 14 µm, au moins environ 15 µm, au moins environ 16 µm, au moins environ 17 µm, au moins environ 18 µm, au moins environ 19 µm, au moins environ 20 µm, au moins environ 21 µm, au moins environ 22 µm, au moins environ 23 µm, au moins environ 24 µm, au moins environ 25 µm, au moins environ 26 µm, au moins environ 27 µm, au moins environ 28 µm, au moins environ 29 µm, au moins environ 30 µm, au moins environ 31 µm, au moins environ 32 µm, au moins environ 33 µm, au moins environ 34 µm, au moins environ 35 µm, au moins environ 36 µm, au moins environ 37 µm, au moins environ 38 µm, au moins environ 39 µm, au moins environ 40 µm, au moins environ 41 µm, au moins environ 42 µm, au moins environ 43 µm, au moins environ 44 µm, au moins environ 45 µm, au moins environ 46 µm, au moins environ 47 µm, au moins environ 48 µm, au moins environ 49 µm, au moins environ 50 µm, au moins environ 51 µm, au moins environ 52 µm, au moins environ 53 µm, au moins environ 54 µm, au moins environ 55 µm, au moins environ 56 µm, au moins environ 57 µm, au moins environ 58 µm, au moins environ 59 µm, au moins environ 60 µm, au moins environ 61 µm, au moins environ 62 µm, au moins environ 63 µm, au moins environ 64 µm, au moins environ 65 µm, au moins environ 66 µm, au moins environ 67 µm, au moins environ 68 µm, au moins environ 69 µm, au moins environ 70 µm, au moins environ 71 µm, au moins environ 72 µm, au moins environ 73 µm, au moins environ 74 µm, au moins environ 75 µm, au moins environ 76 µm, au moins environ 77 µm, au moins environ 78 µm, au moins environ 79 µm, au moins environ 80 µm, au moins environ 81 µm, au moins environ 82 µm, au moins environ 83 µm, au moins environ 84 µm, au moins environ 85 µm, au moins environ 86 µm, au moins environ 87 µm, au moins environ 88 µm, au moins environ 89 µm, au moins environ 90 µm, au moins environ 91 µm, au moins environ 92 µm, au moins environ 93 µm, au moins environ 94 µm, au moins environ 95 µm, au moins environ 96 µm, au moins environ 97 µm, au moins environ 98 µm, au moins environ 99 µm, au moins environ 100 µm, au moins environ 101 µm, au moins environ 102 µm, au moins environ 103 µm, au moins environ 104 µm, au moins environ 105 µm, au moins environ 106 µm, au moins environ 107 µm, au moins environ 108 µm, au moins environ 109 µm, au moins environ 110 µm, au moins environ 111 µm, au moins environ 112 µm, au moins environ 113 µm, au moins environ 114 µm, au moins environ 115 µm, au moins environ 116 µm, au moins environ 117 µm, au moins environ 118 µm, au moins environ 119 µm, ou au moins environ 120 µm.
Dans un mode de réalisation, une culture d'environ 1 à 2 couches de cellules vivantes est formée à peu près au troisième jour de la culture cellulaire. Dans un autre mode de réalisation, une culture d'environ 3 à 4 couches de cellules vivantes est formée à peu près au sixième jour de la culture cellulaire. Dans un autre mode de réalisation, une culture d'environ 6 à 7 couches de cellules vivantes est formée à peu près au 10 e jour de la culture cellulaire. Dans un autre mode de réalisation, une culture d'environ 9 à 10 couches de cellules vivantes est formée à peu près au 17 e jour de la culture cellulaire. Dans un mode de réalisation, les kératinocytes différenciés sont capables de former 20 à 25 couches de cellules.
Les cellules épithéliales différenciées s'approchent des conditions physiologiques que l’on trouve in vivo à un degré plus élevé que ce qui a été décrit précédemment avec les systèmes de culture de tissus monocouches bidimensionnels. Par exemple, la présente des modes de réalisation dans lesquels des coupes verticales colorées montrent que l'architecture des cellules épithéliales différenciées est similaire à celle de l'épiderme humain normal in vivo. Dans un mode de réalisation, le modèle de différenciation caractéristique de l'épiderme peut être reproduit par les cellules épithéliales différenciées : un stratum germinativum, un stratum spinosum, un stratum granulosum, par exemple, contenant de nombreux granules de kératohyaline, et un stratum corneum anucléé, par exemple, formant plus de 10 couches de cellules compactes. Ainsi, la culture cellulaire tridimensionnelle divulguée favorise la maturation, la différenciation et la ségrégation des cellules en culture in vitro pour former des composants de l'épiderme adulte analogues aux homologues que l’on trouve in vivo. Les cellules épithéliales différenciées divulguées produisent de nombreux facteurs de croissance et d'autres protéines qui sont sécrétés dans le milieu aux concentrations divulguées ici.
La représente une troisième vue de perspective de côté d’un mode de réalisation du dispositif antivol selon l’invention, dans sa configuration de libération.
La représente une quatrième vue de perspective de côté d’un mode de réalisation du dispositif antivol selon l’invention, dans sa configuration de blocage.
La représente une deuxième vue de perspective de côté d’un mode de réalisation du dispositif antivol selon l’invention, dans sa configuration de blocage.
La représente une deuxième vue de face de derrière d’un mode de réalisation du dispositif antivol selon l’invention, dans sa configuration de libération.
Ainsi, l’invention concerne un dispositif de stationnement antivol pour cycle.
On entend par « stationnement », l’action d’immobiliser un cycle au même endroit pour un certain temps.
Par ailleurs, on entend par « cycle » un appareil de locomotion qui comprend au moins deux roues, que l’on peut mouvoir par l’action des pieds soit sur le sol, soit sur des pédales (p. ex. une bicyclette, un tricycle, un tandem), ou par un moteur (p. ex. un cyclomoteur, un vélomoteur).
Dans l’invention, le cycle comprend un cadre de cycle.
On entend par « cadre de cycle », un assemblage rigide de pièces qui forment une armature du cycle et qui assure la liaison entre les principaux éléments du cycle.
Par exemple, dans une bicyclette, comme illustré sur la , le cadre de cycle d’un cycle 200 est généralement constitué de deux triangles, dits « triangle avant » et « triangle arrière ». Dans cet exemple, le triangle avant lie le pédalier avec la fourche et la selle. Tandis que le triangle arrière relie le pédalier et la selle à la roue arrière.
Dans un exemple de cette mise en œuvre particulière, la plaque présente une section rectangulaire.
Toutefois, selon les besoins, on pourra envisager d’autres formes du deuxième élément de maintien 160, et ce, sans nécessiter de modifications substantielles de l’invention.
En pratique, le deuxième élément de maintien 160 est couplé à un bras longitudinal 120 de la paire de bras longitudinaux 120.
Dans l’exemple illustré sur les figures 1 à 9, le deuxième élément de maintien 160 est couplé au bras longitudinal 120 de la paire de bras longitudinaux 120 auquel le premier élément de maintien 140 est couplé.
Toutefois, selon les besoins, on pourra envisager de coupler le deuxième élément de maintien 160 au bras longitudinal 120 opposé au bras longitudinal auquel le premier élément de maintien 140 est couplé, et ce, sans nécessiter de modifications substantielles de l’invention.
Par ailleurs, dans la configuration de blocage, le deuxième élément de maintien 160 est agencé de manière à former un deuxième cadre de maintien qui entoure tout ou partie d’une selle de cycle qui est couplée au cadre de cycle.
En pratique, le deuxième cadre de maintien est défini par le premier élément de maintien 140, le deuxième élément de maintien 160 et la paire de bras longitudinaux 120.
Avec un tel agencement du deuxième élément de maintien 160, le deuxième cadre de maintien empêche le retrait de la selle de cycle.
Dans l’exemple illustré sur les figures 1 et 2, dans la configuration de blocage, le deuxième cadre de maintien se trouve au-dessus de la selle de cycle.
Ainsi, la position du deuxième élément de maintien 160 interdit un déplacement de la selle de cycle dans la direction verticale, car la selle de cycle se trouve en dessous du deuxième élément de maintien 160. Par conséquent, si l’on déplace la selle de cycle dans la direction verticale, celle-ci viendrait buter contre le dessous du deuxième élément de maintien 160.
En outre, dans la configuration de libération, le deuxième élément de maintien 160 est agencé de manière à défaire le deuxième cadre de maintien pour qu’il n’entoure plus la selle du cycle.
Avec un tel agencement du deuxième élément de maintien 160, le deuxième cadre de maintien, qui est défait, autorise le retrait de la selle de cycle.
Dans une première mise en œuvre particulière du deuxième mode de réalisation de l’invention, le dispositif de stationnement antivol 100 comprend, en outre, un boitier 170.
En pratique, le boitier 170 présente au moins une ouverture qui est formée dans une paroi du boitier 170.
Dans l’exemple illustré sur les figures 1 à 8, une ouverture 171 partielle est formée dans une paroi 172 du dessus du boitier 170.
Toutefois, selon les besoins, on pourra envisager de former deux ou plusieurs ouvertures 171 sur une ou plusieurs parois 172 du boitier 170, et ce, sans nécessiter de modifications substantielles de l’invention.
Selon un mode de réalisation, le bloc isolant d’extrémité ou le bloc isolant secondaire d’extrémité est réalisé sous la forme d’une boite comprenant une plaque de fond, une plaque de couvercle parallèle à la plaque de fond et des plaques d’entretoises porteuses maintenant la plaque de couvercle à distance de la plaque de fond, la boite étant remplie de garniture isolante, par exemple de la perlite, des silices pyrogénées, des aérogels de silice ou de la laine de verre ou de roche.
Selon un mode de réalisation, la boite isolante d’angle est réalisée sous la forme d’une boite comprenant une plaque de fond, une plaque de couvercle parallèle à la plaque de fond et des plaques d’entretoises porteuses maintenant la plaque de couvercle à distance de la plaque de fond, la boite étant remplie de garniture isolante, par exemple de la perlite, des silices pyrogénées, des aérogels de silice ou de la laine de verre.
Selon un mode de réalisation, la barrière thermiquement isolante comporte un panneau isolant adjacent au bloc isolant d’extrémité, le panneau isolant comportant successivement selon la direction d’épaisseur au moins une couche de mousse isolante et au moins une plaque rigide. Par exemple, le panneau isolant comporte une couche de mousse isolante intercalée entre une plaque de fond et une plaque de couvercle.