INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
la longueur (L 2 ) dudit boudin à l’état gonflé est supérieure à la longueur (L 1 ) de l’ouverture en forme de fente. Le volume intérieur du caisson servant de logement à l’élément pare-battage à l’état dégonflé s’étend en longueur, dans la direction parallèle à l’axe longitudinal de l’ouverture en forme de fente, sur une longueur (L) inférieure à la longueur (L 2 ) dudit boudin. l’ouverture en forme de fente définit un plan d’ouverture (P) ; le volume intérieur du caisson servant de logement à l’élément pare-battage à l’état dégonflé présente une hauteur (H), qui est mesurée parallèlement à ce plan (P) de l’ouverture en forme de fente et dans la direction perpendiculaire à l’axe longitudinal de l’ouverture en forme de fente et une largeur (d), qui est mesurée perpendiculairement à ce plan (P) de l’ouverture en forme de fente ; ladite hauteur du caisson est supérieure au diamètre dudit boudin à l’état gonflé et ladite largeur du caisson est inférieure au diamètre dudit boudin à l’état gonflé. Une fois dégonflé et rentré dans le caisson, l’élément pare-battage à l’état dégonflé occupe quasiment tout le volume intérieur du caisson. La partie du caisson, qui se trouve en vis-à-vis de l’ouverture en forme de fente, présente à l’intérieur du caisson une face interne courbe concave. L’élément pare-battage comporte une enveloppe souple et imperméable ; ladite enveloppe forme, à l’état dégonflé, une poche qui est logée à l’intérieur du caisson, dont la face externe délimite ladite chambre avec le caisson, et qui est adaptée pour être déployée à l’extérieur du caisson en se retournant, sous l’action d’un air insufflé sous pression dans ladite chambre, de sorte qu’après déploiement et gonflage de ladite enveloppe à l’extérieur du caisson, ladite face externe de la poche dégonflée forme la face interne dudit boudin gonflé. L’élément pare-battage comporte une enveloppe souple et imperméable, qui est fixée au caisson sur le pourtour de l’ouverture en forme de fente, avec une étanchéité sur tout le pourtour de l’ouverture en forme de fente. Il comporte des moyens d’obturation de l’ouverture en forme de fente du caisson, qui sont mobiles entre une position d’obturation dans laquelle l’ouverture est obturée et une position ouverte, dans laquelle l’ouverture en forme de fente est totalement libérée et permet le passage de l’élément pare-battage. Les moyens d’obturation comportent une trappe coulissante. Il comporte des moyens élastiques de rappel, qui se tendent lors du gonflage de l’élément pare-battage et qui exercent sur l’élément pare-battage une force de traction, qui contribue à faire rentrer l’élément pare-battage à l’intérieur du caisson lors du dégonflage de l’élément pare-battage.
L’invention a pour autre objet un procédé d’installation sur un bateau d’au moins un dispositif de protection susvisé, au cours duquel on réalise, une ouverture traversante, en forme de fente horizontale, dans une paroi de la coque du bateau, et on fixe le caisson du dispositif de protection à l’intérieur de la coque, de manière à positionner l’ouverture en forme de fente dudit caisson en vis à vis de ladite ouverture traversante dans la paroi de la coque et à permettre le déploiement de l’élément pare-battage du dispositif de protection, à travers la paroi de la coque et à l’extérieur de la coque.
Dans une variante de mise en œuvre plus particulière, afin d’équiper le bateau avec au moins deux dispositifs de protection susvisés, on réalise dans une paroi de la coque du bateau au moins deux ouvertures traversantes en forme de fentes horizontales, qui sont alignées et espacées l’une de l’autre. Pour chacune de ces ouvertures, on fixe à l’intérieur de la coque le caisson d’un dispositif de protection, de manière à positionner l’ouverture en forme de fente du caisson du dispositif de protection en vis à vis de ladite ouverture traversante correspondante dans la paroi de la coque et à permettre le déploiement de chaque l’élément pare-battage à travers la paroi de la coque et à l’extérieur de la coque.
De préférence, mais non nécessairement l’espacement entre deux ouvertures traversantes dans la paroi de la coque est prévu de telle sorte que les éléments pare-battage sont aptes à être gonflés à l’extérieur de la coque, en étant alignés horizontalement bout à bout, sans espace entre les éléments pare-battage.
L’invention a également pour autre objet un bateau comportant une paroi de coque dans laquelle est réalisée au moins une ouverture traversante en forme de fente horizontale. Le bateau est équipé d’au moins un dispositif de protection susvisé. Le caisson du dispositif est fixé à l’intérieur de la coque, de manière à positionner l’ouverture en forme de fente du caisson du dispositif de protection en vis à vis de ladite ouverture traversante dans la paroi de la coque et à permettre le déploiement de l’élément pare-battage du dispositif de protection à travers la paroi de la coque et à l’extérieur de la coque.
De manière facultative selon l’invention, le bateau peut également comporter les caractéristiques techniques optionnelles ci-après, prises isolément ou en combinaison :
La paroi de la coque comprend au moins au moins deux ouvertures traversantes en forme de fentes horizontales, qui sont alignées et espacées l’une de l’autre, ledit bateau étant équipé, pour chaque ouverture traversante, d’un dispositif de protection susvisé ; le caisson de chaque dispositif de protection est fixé à l’intérieur de la coque, de manière à positionner l’ouverture en forme de fente du caisson du dispositif de protection en vis à vis de ladite ouverture traversante correspondante dans la paroi de la coque et à permettre le déploiement de chaque l’élément pare-battage, à travers la paroi de la coque et à l’extérieur de la coque. L’espacement entre deux ouvertures traversantes dans la paroi de la coque est prévu de telle sorte que les éléments pare-battage sont aptes à être gonflés à l’extérieur de la coque, en étant alignés horizontalement bout à bout, sans espace entre les éléments pare-battages. La longueur (L 3 ) de l’ouverture traversante dans la paroi de la coque est supérieure ou égale à la longueur (L 1 ) de l’ouverture du caisson. la longueur (L 3 ) de l’ouverture traversante dans la paroi de la coque (2) est inférieure à la longueur (L 2 ) de l’élément pare-battage du dispositif de protection, à l’état gonflé. La largeur (d 3 ) de l’ouverture traversante dans la paroi de la coque est inférieure à la largeur (d 1 ) de l’ouverture du caisson du dispositif de protection.
L'invention sera bien comprise à la lumière de la description détaillée ci-après, faite à titre d'exemple non limitatif et non exhaustif, en lien avec les dessins annexés sur lequel :
Dans certains modes de réalisation, les cellules divulguées sont cultivées dans un milieu nutritif qui est un milieu non défini, c'est-à-dire un milieu de croissance cellulaire qui convient à une culture cellulaire in vitro de cellules ou de tissus dont tous les composants chimiques ne sont pas connus.
Dans certains modes de réalisation, le milieu préconditionné est dépourvu de sérum ou dépourvu de produit animal. Les milieux dépourvus de sérum et dépourvus de produits animaux (parfois appelés milieux dépourvus de protéines) sont disponibles dans le commerce auprès de, entre autres, LifeTechnologies-GibcoBRL, Rockville, Md. ; Sigma-Aldrich, Saint Louis, Mo. ; ou BioWhittaker, Walkersville, Md.). Des exemples de milieux dépourvus de sérum incluent : UltraCULTURE™, UltraDOMA™ et UltraCHO™, de BioWhittaker ; milieu pour hybridomes dépourvu de sérum, milieu dépourvu de sérum CHO et milieu dépourvu de sérum MDCK, de Sigma-Aldrich ; et Keratinocyte-SFM (KSFM), milieu AIM V®, StemPro®-34 SFM, Human Endothelial-SFM, Macrophage-SFM et HepatoZYME-SFM de Life Technologies. Des exemples de milieux dépourvus de protéines incluent : UltraDOMA-PF™ de BioWhittaker ; le milieu pour hybridomes dépourvu de composants animaux, le milieu pour hybridomes dépourvu de sérum et dépourvu de protéines Hybri-Max®, le milieu dépourvu de protéines CHO, le milieu CHO défini chimiquement et le milieu dépourvu de protéines MDCK de Sigma-Aldrich ; et le milieu pour kératinocytes définis de Life Technologies. homme du métier appréciera que l'utilisation de milieux dépourvus de sérum pour la culture de cellules de mammifères est bien établie et est décrite, entre autres, dans Cold Spring Harbor Conferences on Cell Proliferation, Vol. 9, Sato et al, eds. (1982) Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y. ; Barnes et al, Anal. Biochem. 102, 255 (1980) ; catalogue BioWhittaker 1999/2000, pp. 42-51 ; Barnes, Serum-Free Animal Cell Culture, BioTechniques 5(6):534-42 ; et Freshney, Culture of Animal Cells, 3d ed., Wiley-Liss, New York, N.Y., 1994.
Le milieu peut être complété par tout ingrédient nécessaire à la culture des cellules/tissus kératinocytaires décrits. Les ingrédients du milieu préconditionné incluent, sans s'y limiter, les acides aminés (D et/ou L) tels que glutamine, alanine, arginine, asparagine, cystéine, acide glutamique, glycine, histidine, isoleucine, leucine, lysine, méthionine, phénylalanine, proline, sérine, thréonine, tryptophane, tyrosine et valine et leurs dérivés ; des sous-groupes solubles dans l'acide tels que thiamine, acide ascorbique, composés ferriques, composés ferreux, purines, glutathion et phosphates de sodium monobasiques.
Des ingrédients supplémentaires incluent les sucres, désoxyribose, ribose, nucléosides, vitamines solubles dans l'eau, riboflavine, sels, oligo-éléments, lipides, les sels d'acétate, sels de phosphate, HEPES, rouge de phénol, sels de pyruvate et tampons.
D'autres ingrédients envisagés incluent les vitamines liposolubles (y compris A, D, E et K), stéroïdes et leurs dérivés, cholestérol, acides gras et lipides, Tween 80, 2-mercaptoéthanol-pyrimidines ainsi qu'une variété de suppléments incluant le sérum (fœtal, de cheval, de veau, etc.), protéines (insuline, transferrine, facteurs de croissance, hormones, etc.), antibiotiques (gentamicine, pénicilline, streptomycine, amphotéricine B, etc.), ultrafiltrat d'œuf entier et facteurs de fixation (fibronectines, vitronectines, collagènes, laminines, ténascines, etc.)
Dans certains modes de réalisation, la croissance et l'activité des cellules en culture peuvent être affectées par une variété de facteurs de croissance tels que insuline, hormone de croissance, somatomédines, facteurs de stimulation des colonies, érythropoïétine, facteur de croissance épidermique, facteur érythropoïétique hépatique (hépatopoïétine) et facteur de croissance des cellules hépatiques. D'autres facteurs qui régulent la prolifération et/ou la différenciation incluent les prostaglandines, interleukines et chalones d'origine naturelle.
En outre, du sérum, tel que le sérum bovin, qui est une solution complexe d'albumines, de globulines, de facteurs de croissance et d'inhibiteurs de croissance, peut être ajouté si on le souhaite. Le sérum peut être criblé pour être exempt de pathogènes, ou obtenu aux États-Unis et non de pays où le bétail indigène est porteur d'agents transmissibles pour éviter la présence de pathogènes. L'ajout d'hormones dans le milieu peut être souhaité ou non.
D'autres ingrédients peuvent être choisis par l’homme du métier selon leurs besoins particuliers.
Bien sûr, le milieu peut ou non avoir besoin d'être complété par des facteurs de croissance puisque les cultures cellulaires décrites dans cette demande peuvent déjà excréter de tels facteurs de croissance et autres produits dans le milieu.
Dans un mode de réalisation, le milieu conditionné peut être remplacé par un milieu pré-conditionné tous les 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34 ou 35 jours pendant la culture cellulaire (à partir du jour où les kératinocytes sont ensemencés), ou à tout moment intermédiaire.
Substrat tridimensionnel Dans certains modes de réalisation, la culture cellulaire tridimensionnelle comprend un substrat sur lequel les cellules peuvent croître et/ou adhérer. Un « substrat », une « ossature », un « vecteur » ou un « échafaudage » tridimensionnel, tel qu’utilisé ici, désigne un matériau tridimensionnel composé de n'importe quelle substance et/ou de n'importe quelle forme tridimensionnelle qui (a) permet aux cellules de s'y fixer (ou peut être modifié pour permettre aux cellules de s'y fixer) ; et (b) permet aux cellules de se développer en plus d'une couche. Comme divulgué ici, ce substrat est inoculé avec des kératinocytes pour former le tissu tridimensionnel vivant.
Dans un mode de réalisation, la structure du substrat peut être un substrat de croissance poreux, tel qu'une maille, une éponge, une membrane, un film, un filtre ou un hydrogel.
Un certain nombre de différents matériaux peuvent être utilisés pour former le substrat, incluant, sans s’y limiter : des matériaux non biodégradables, par exemple, nylon (polyamides), dacron (polyesters), polystyrène, polypropylène, polyéthylène, polyacrylates, polyoléfine, composés polyvinylique (par exemple, polychlorure de vinyle), (PVC), polytétrafluoréthylène (PTFE ; téflon), polysulfone, silicone thermanox (TPX), nitrocellulose, éthylène acétate de vinyle, coton ; et matériaux biodégradables, par exemple, acide polyglycolique (PGA), collagène, éponges de collagène, sutures de boyau de chat, cellulose, gélatine, dextrane, polyalcanoates, etc. L'un quelconque de ces matériaux peut être tissé, tressé, tricoté, etc., en une maille, par exemple, pour former le substrat tridimensionnel.
Dans certains modes de réalisation, le substrat peut être un film de résine ionomère qui est optiquement transparent et non toxique pour les cellules. Des résines non ionomères convenables telles que, à titre d'exemple uniquement, les polycarbonates, polystyrènes ou polymères polyfluorés, peuvent être utilisées. Dans certains modes de réalisation, des films de polycarbonate tels que des films comprenant une surface de 0,33 cm 2 (Nucell, Nucleopore, et Transwell, Costar, France) sont utilisés.
[0054] Dans certains modes de réalisation, le substrat est un film ou une membrane perméable aux gaz et imperméable aux liquides. L'épaisseur de la membrane perméable aux gaz dépendra des caractéristiques résultantes souhaitées qui peuvent inclure, sans s'y limiter, intégrité structurelle, degré de perméabilité aux gaz et vitesse de transfert des gaz. La membrane perméable aux gaz peut être constituée d'une ou plusieurs membranes connues dans l'art.
[0055] Dans un mode de réalisation préféré, les cellules divulguées sont mises à croître en couches multiples sur un substrat tridimensionnel, formant des cellules épithéliales différenciées.
Gluten de mais (c) commercialisé par la société thaïlandaise Portoh animal feed Co. Ltd.
Le Prémix (d) est commercialisé par la société thaïlandaise Atlantic pharmaceutical Co. Ltd, sa composition est présentée dans le tableau 3.
Vitamines Quantité/kg d’aliment Minéraux Quantité/kg d’aliment A 4000000 UI D-pantothenate de calcium 2.0 mg D 400000UI acétate de magnesium 11.2 mg E 1.3 g acétate de sodium 75 mg K 0.9 g Gluconate de calcium 290 mg C 300 mg Chlorure de sodium 150 mg B1 2.5 g Citrate de sodium 275 mg B2 2.5 g acétate de calcium 75 mg B6 0.5 g Chlorure de potassium 112.5 mg B12 5.0 mg Nicotinamide 5.0 mg Acide folique 0.5 mg
Le tableau 4 présente les valeurs nutritionnelles des compositions.
Matières premières FAA 0 Compar. FAA 0,125 FAA 0,25 FAA 0,375 FAA 0,50 Humidité % 8.20 8.30 8.30 8.60 8.60 Matières minérales % 9.70 9.33 8.96 8.85 8.81 Lipides % 4.20 4.20 4.40 4.20 4.20 Protéines % 31.30 31.90 32.00 32.00 31.90 Fibres % 2.79 2.57 2.57 2.82 2.62
Le tableau 5 présente les teneurs en acides aminés totaux des compositions alimentaires en g/ kg de composition, en matière brute.
FAA 0 FAA 0. 1 25 FAA 0. 2 5 FAA 0. 3 75 FAA 0 . 5 0 FAA 1 .00 Acide aspartique 24,4 24,5 24,5 24,6 24,7 25,1 Thréonine 13,3 13,4 13,5 13,5 13,6 13,8 Sérine 17,1 17,2 17,4 17,6 17,7 18,4 Acide glutamique 50,1 50,2 50,4 50,5 50,6 51,2 Glycine 23,1 23,2 23,3 23,4 23,5 24,0 Alanine 16,2 16,3 16,4 16,4 16,5 16,7 Valine 16,1 16,2 16,3 16,4 16,5 16,9 Cystine 4,8 4,8 4,9 4,9 4,9 5,0 Méthionine 7,0 7,0 7,1 7,1 7,1 7,1 Isoleucine 13,6 13,7 13,8 13,8 13,9 14,1 Leucine 28,2 28,3 28,4 28,5 28,6 29,0 Tyrosine 9,7 9,7 9,7 9,7 9,7 9,7 Phénylalanine 14,1 14,2 14,3 14,3 14,4 14,6 Lysine 20,1 20,1 20,1 20,2 20,2 20,3 Histidine 6,6 6,6 6,6 6,6 6,6 6,6 Arginine 22,1 22,2 22,3 22,4 22,4 22,8 Proline 25,9 26,0 26,2 26,3 26,5 27,1 Tryptophan 3,9 3,9 3,9 3,9 3,9 3,9
Exemple 3 – Etude sur les poissons d’élevage
a. Matériel et méthode
L’étude a porté sur 450 poissons en bonne santé. Les poissons utilisés étaient des carpes du nil (Nile Tilapia) présentant un poids moyen initial individuel de 4,76 g + 0,05 g.
Pendant les deux semaines précédant le début des expériences, les poissons ont été acclimatés aux conditions de laboratoires, ils ont été répartis de manière aléatoire dans 15 cages flottantes de dimension 2.0x1.5x1.5 m3, placées dans un reservoir en ciment présentant les dimensions suivantes 7x10x1.5 m3 avec une densité de 30 poissons par cage.
Les poissons ont été nourris avec un produit commercial comprenant 32% de protéines et 4% de graisses selon une quantité journalière correspondant à 5% de leur poids.
Les compositions alimentaires FAA 0 ; FAA 0,125 ; FAA 0,25 ; FAA 0,375 et FAA 0,50 utilisées ont été formulées.
Les paramètres de la qualité de l’eau ont été mesurés et étaient conformes à l’élevage des poissons : le taux d'oxygène dissous était de 9,61+0,7 mg/L, la température de 27,2+0,70 °C, le pH de 8,37+0,3, l'alcalinité de 215,33+0,03 mg/L et l'azote ammoniacal inférieur à 0,02 mg/L).
b. Prélèvement de sang et tissus
Afin d'évaluer la capacité fonctionnelle de plusieurs organes, tels que le foie et les reins, des poissons nourris avec les compositions alimentaires selon l’invention, le profil biochimique du sang desdits poissons a été analysé. A la fin de l'essai d'alimentation, tous les poissons ont été mis à jeun pendant 24 heures après la dernière alimentation, des échantillons de sang ont été prélevés dans la veine caudale des poissons après anesthésie (5% de 2-phénoxyéthanol) à l'aide de seringues stériles. Les échantillons de sang ont été prélevés sur douze poissons par traitement et ont été centrifugés pour obtenir du sérum. Les échantillons de sérum ont été conservés à -20 °C jusqu'à leur utilisation dans les tests biochimiques et immunitaires.
Le terme « catalyseur » désigne, dans la présente invention, un matériau promouvant la réaction chimique des fluides de réactifs.
Le terme « électrode » désigne, dans la présente invention, un élément constitué de matériau électriquement conducteur inséré dans la cellule DBD et connecté au réseau haute tension qui permet de relier les cellules DBD entre elles vers la source du générateur haute tension.
Le terme « matériau de maintien du catalyseur » désigne, dans la présente invention, un élément constitué de matériau diélectrique inséré dans la cellule DBD qui permet de contenir le catalyseur dans la zone de décharge du plasma tout en laissant circuler le fluide réactif à travers lui-même.
Les cellules DBD amovibles
La illustre schématiquement une cellule DBD amovible C qui permet de mettre en œuvre une conversion chimique via un procédé de plasma-catalyse par DBD avec un seul élément diélectrique. Cette cellule comprend un élément conducteur 1 comprenant un connecteur haute tension 3 permettant la connexion de la cellule vers le réseau haute tension du réacteur, un support conducteur 4 permettant de relier et de maintenir le connecteur haute tension 3 à une électrode génératrice de plasma 5.
L’élément conducteur 1 matérialise la direction axiale de la cellule DBD.
L’électrode génératrice de plasma 5, dont le diamètre est plus important que le support conducteur 4, permet de concentrer les décharges DBD dans la zone située le long de cette électrode 5.
Cette électrode génératrice de plasma 5 peut comprendre des poils métalliques à la manière d’une brosse ou d’un goupillon. De manière alternative, elle peut se présenter sous la forme d’un ressort métallique ou d’un cylindre métallique.
L’élément conducteur 1 est placé à l’intérieur d’un élément en matériau diélectrique 7 de forme tubulaire, contre la paroi intérieure duquel l’électrode génératrice de plasma 5 prend appui, et qui va permettre de réaliser la DBD. Cet élément diélectrique 7 peut être constitué par exemple en verre, en céramique ou en alumine.
De manière alternative et sans doute préférée, on peut prévoir que le matériau diélectrique soit moulé sur l’ensemble de l’élément conducteur 1 et de l’électrode génératrice de plasma 5, comme pour une bougie de moteur thermique, et que ce matériau diélectrique remplisse tous les espaces vides, de manière à éviter l’apparition de phénomènes de plasma parasites.
L’élément conducteur 1 est maintenu entre un bouchon supérieur 9 et un bouchon inférieur 11. Le bouchon supérieur 9 est constitué d’un matériau diélectrique isolant tel que du verre ou de la céramique et permet de maintenir et centrer l’élément conducteur 1 (dont le connecteur haute tension 3). Le bouchon inférieur 11 est constitué d’un matériau tel qu’un métal ou alliage métallique, ou une céramique. Dans le cas d’un alliage métallique, plus facile à usiner qu’une céramique, de l’inox 316L pourra être utilisé.
Le bouchon supérieur 9 est fixé à un support métallique supérieur 13, lui-même fixé à un tube électriquement et thermiquement conducteur 15, définissant la paroi extérieure cylindrique de la cellule DBD amovible, réalisé de préférence en métal ou alliage métallique.
Le bouchon supérieur 9 permet de faire circuler le fluide de réactifs à travers un ou plusieurs canaux percés 17 ou autre structure poreuse permettant la circulation du fluide de réactifs. Le bouchon supérieur 9 permet également de contenir la fraction supérieure 19 d’un matériau de maintien du catalyseur 21, disposée dans la partie supérieure du tube 15.
Le bouchon inférieur 11 permet de faire circuler le fluide de réactifs à travers un ou plusieurs canaux percés 23 ou autre structure poreuse permettant la circulation du fluide de réactifs. Le bouchon inférieur 11 permet également de contenir la fraction inférieure 25 d’un matériau de maintien du catalyseur 21, disposée dans la partie inférieure du tube 15.
La fraction supérieure 19 du matériau de maintien du catalyseur 21 et la fraction inférieure 25 du matériau de maintien du catalyseur 21 permettent de maintenir le catalyseur 21 dans la zone de décharge du plasma par DBD, en vis-à-vis de l’électrode génératrice de plasma 5.
La cartouche 202 est, lorsque mise en place dans la station 200, couplée mécaniquement à un actionneur d’entrainement 600 (figures 6, 8 et 10), via son coupleur mécanique 506 et un coupleur mécanique complémentaire 602 de la station 200, pour être entrainé en rotation autour de l’axe A. La cartouche 202 peut alors être sélectivement positionnée pour aligner une bandelette de test face à l’injecteur, référencé 604 ou l’analyseur, référencé 606. L’usage de la cartouche 202 permet d’avoir un équipage mobile simple avec un seul axe de rotation. En outre, cette configuration réduit les contraintes liées au positionnement et l’agencement de l’injecteur 604 et de l’analyseur 606 dans le dispositif d’analyse 100.
L’actionneur d’entrainement 600 peut être déporté par rapport à l’axe A et un train d’engrenages 608 (pouvant aussi faire office de réducteur) permet d’entrainer le coupleur mécanique complémentaire 602. Le coupleur mécanique 602 complémentaire de la station 200 se trouve sur l’axe de rotation A.
L’actionneur d’entrainement 600 peut entrainer la cartouche 202 selon la direction horaire ou antihoraire. La cartouche peut alors rapidement atteindre la position désirée, suivant la trajectoire la plus courte. Ainsi, on réduit encore les contraintes liées au positionnement et l’agencement de l’injecteur 604 et de l’analyseur 100.
L’actionneur d’entrainement 600 est par exemple un moteur d’entrainement, comme un moteur pas-à-pas ou un moteur à courant continu. Alternativement, l’actionneur d’entrainement 600 peut impliquer un système hydraulique ou autre. Circuit fluidique