INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Optionnellement, l’attache 11 peut présenter une section à la base 20b sensiblement carrée et comprendre des chanfreins latéraux 21 (visibles par exemple sur les figures 1 et 3) perpendiculaire au chanfrein 19 et qui convergent de la base 20b vers le sommet 20 de l’attache. Ces chanfreins latéraux 21 participent également au guidage de la bordure 17 du logement 12, en particulier lorsque la largeur du logement suivant une direction perpendiculaire à la direction de verrouillage est au plus égale à 120% de la largeur suivant cette direction de l’attache 11. Cet ajustement de la largeur du logement 12 par rapport à la largeur de l’attache 11 limite les risques de sortie intempestive de l’attache 11.
L’attache 11 et la gâche 10 sont de préférence réalisées dans des matériaux résistants à l’usure et au frottement, typiquement en acier inoxydable. L’attache 11 peut être réalisée dans le même matériau que la platine inférieure 4, auquel cas elle peut être monolithique avec la platine inférieure 4, ou réalisée dans un matériau distinct de l’attache 11, par exemple pour des questions de coût ou de densité, auquel cas elle peut être rapportée et fixée sur la platine inférieure 4. Par exemple, l’attache 11 peut être fixée à la platine inférieure 4 à l’aide d’une vis 22. Le cas échéant, la tête de la vis peut être fraisée afin de ne pas faire saillie de la face inférieure 6 de la platine inférieure 4.
Dans une deuxième forme de réalisation (non illustrée) qui est équivalente à la première, l’attache 11 est fixée sur la gâche 10 et fait saillie (le cas échéant, à travers le passage traversant 13 formé dans la platine supérieure 5) en direction de la face supérieure 7 de la platine inférieure 4, tandis que le logement 12 est formé et débouche dans la face supérieure 7 de la platine inférieure 4.
Afin de garantir le blocage de l’attache 11 dans le logement 12, la gâche 10 est raccordée à la platine supérieure 5 par l’intermédiaire d’un moyen de rappel 23 configuré pour ramener la gâche 10 vers sa configuration verrouillée. Le moyen de rappel 23 peut notamment comprendre un ressort 23 en traction.
Le ressort 23 peut comprendre une première extrémité fixée sur la platine supérieure 5, de préférence sur la même face que la gâche 10, et une deuxième extrémité fixée sur la gâche 10. Le ressort 23 de rappel est aligné avec la direction de verrouillage X et est positionné sur la platine supérieure 5 de sorte à se trouver à l’opposé de la poignée 16.
La raideur du ressort 23 est en outre choisie de sorte que, en l’absence d’efforts appliqués sur la gâche 10, le ressort 23 amène et maintient la gâche 10 dans sa configuration verrouillée et que, lorsqu’un opérateur applique un effort raisonnable sur la gâche 10, il puisse l’amener sans difficultés dans sa configuration déverrouillée. La raideur du ressort 23 peut par exemple être comprise entre 3 et 3.6 N/mm. De la sorte, lorsqu’un opérateur verrouille le radar 2 sur le trépied 3, il lui suffit de placer le sommet 20a de l’attache 11 face au logement 12 puis de laisser glisser le bord du logement 12 le long du chanfrein 19 de l’attache 11. Sous l’effet du poids du radar 2 auquel peut éventuellement être additionné un léger appui de la part de l’opérateur, le chanfrein 19 applique un effort sur la gâche 10 qui est opposé à l’effort de rappel du ressort 23 et le surpasse, ce qui déplace la gâche 10 vers sa configuration de déverrouillage. Avantageusement, l’opérateur n’a pas besoin de tirer sur la poignée 16 dans le deuxième sens suivant la direction de verrouillage X. Ainsi, l’opérateur peut tenir le radar 2, qui est très lourd et volumineux, avec ses deux mains. Lorsque la bordure 17 vient se loger dans la rainure de blocage 18, le chanfrein 19 n’offre plus de résistance à la gâche 10 : l’effort de rappel appliqué sur la gâche 10 par le ressort 23 a alors pour effet de l’amener automatiquement dans sa configuration verrouillée. Le cas échéant, l’entrée de la bordure 17 dans la rainure de blocage 18 peut générer un effet sonore (cliquètement) confirmant à l’opérateur la mise en prise de l’attache 11 et de la bordure 17. Le ressort 23 assure alors le maintien de la bordure 17 dans la rainure de blocage 18, ce qui limite les risques de sortie intempestive de l’attache 11 du logement 12, même lorsque le radar 2 est penché. Il suffit ensuite à un opérateur de libérer la bordure 17, par exemple en tirant sur la poignée 16 de la gâche 10, pour séparer les platines 4, 5.
Dans une variante de réalisation, le moyen de rappel 23 peut comprendre un ressort de compression. Dans cette variante, le ressort 23 est alors placé du côté de la poignée 16 pour pouvoir amener et maintenir la gâche 10 dans sa configuration verrouillée. Le montage d’un ressort 23 en compression risque cependant d’être plus encombrant que le montage d’un ressort 23 en traction compte-tenu de la présence de la poignée 16.
La butée 8 peut comprendre tout moyen permettant de mettre en butée axiale la platine supérieure 5 par rapport à la platine inférieure 4 le long de la direction de verrouillage X.
Dans une forme de réalisation, la butée 8 peut par exemple comprendre une patte 24 s’étendant depuis la platine inférieure 4 qui est configurée pour être insérée dans une ouverture 25 formée dans la platine supérieure 5 et venir en appui contre une paroi 26 délimitant cette ouverture 25. La patte 24 peut par exemple comprendre une plaque s’étendant depuis la face supérieure 7 de la platine inférieure 4 en formant un angle obtus avec à celle-ci. Cette forme de réalisation permet ainsi de réaliser de manière très simple une butée 8, par exemple en pliant la platine inférieure 4 de sorte à obtenir la patte 24 inclinée et en réalisant, par exemple par laser, l’ouverture 25 dans la platine supérieure 5. Le cas échéant, la platine inférieure 4 peut être détourée afin de former des encoches 27 de part et d’autre du pli de la patte 24 et qui s’étendent depuis le pli en direction de la gâche 10. Les encoches 27 permettent alors de limiter les défauts et bavures lors du pliage de la patte 24 et, optionnellement, de venir en prise avec la paroi 26 de la platine supérieure 5. La patte 24 et la platine supérieure 5 sont alors monolithiques, ce qui simplifie la fabrication de l’ensemble de verrouillage 1.
WO 2011/088809
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Milieu de culture adapté aux bactéries de l’espèce Christensenella minuta L’invention concerne un milieu de culture spécifique aux bactéries de l’espèce Christensenella minuta , son procédé de préparation et ses utilisations.
Notre microbiote intestinal ou « flore intestinale » est constitué d’un ensemble de bactéries, virus, parasites et champignons non pathogènes, soit 10 12 à 10 14 micro-organismes présents dans le tube digestif de chaque individu, ce qui représente 2 à 10 fois plus que le nombre de cellules présent dans notre corps. Dès lors, son rôle est de plus en plus étudié ces dernières années. En 2012, un microbiologiste a identifié et cultivé à partir de fèces humaines une nouvelle espèce : Christensenella minuta ( C. minuta ci-après) appartenant aux Clostridiales gram-négatifs. (Morotomi et al ., Description of Christensenella minuta gen. nov., sp. nov., isolated from human faeces, which forms a distinct branch in the order Clostridiales , and proposal of Christensenellaceae fam. nov. , International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2012).
Cette nouvelle espèce bactérienne est dorénavant connue pour son potentiel thérapeutique dans la prévention et/ou le traitement de pathologies liées à la dysbiose intestinale, en particulier l’obésité ou les maladies inflammatoires telles que les maladies inflammatoires de l’intestin, voire de certains cancers. Cette espèce est donc de plus en plus étudiée par la communauté scientifique, y compris en clinique afin de développer un candidat médicament pour prévenir et/ou traiter les patients souffrant de ces pathologies et ainsi, apporter une solution thérapeutique pour ces maladies dites « non transmissibles » (MNT). En effet, l’ensemble des MNT est devenu la première cause de mortalité et de surmortalité dans le monde en 2016 avec près de 71% des décès.
Les bactéries lorsqu’elles ne sont pas présentes chez un hôte, nécessitent un support, en particulier un milieu de culture, leur apportant tous les nutriments nécessaires à leur développement et ainsi permettant leur croissance.
Lors de la découverte de C. minuta , la communauté scientifique a adapté, modifié des milieux de culture déjà connus des microbiologistes. Or, chaque espèce bactérienne à ses propres besoins et nécessitent donc un milieu de culture spécifique pour maintenir une croissance optimale lors d’une culture bactérienne. D’autant plus lors du développement d’un candidat médicament basé sur le microbiome. En outre, une telle solution thérapeutique nécessite de mettre en place des Bonnes Pratiques de Fabrication (BPF) ou Good Manufacturing Practices, en Anglais (GMP) afin d’assurer la qualité et la sécurité du candidat médicament mais également des procédures de fabrication, des locaux, des équipements et du personnel. Il est donc nécessaire que le milieu de culture utilisé lors du procédé de fabrication des bactéries utilisées comme médicament répondent à ces critères de qualité et soit « GMP ».
Un composé préféré selon l’invention répond à la formule ci-après :
La présente invention concerne également une prodrogue comprenant le composé de formule (I) tel que défini ci-dessus lié par une liaison covalente à une molécule d’albumine ou un de ses fragments ou dérivés.
Au sens de l’invention, le terme « pro-drogue » désigne une molécule apte à véhiculer sous forme inactivée un agent anticancéreux, notamment un composé de la famille des dolastatines, au sein d’un organisme, et de libérer celui-ci dans un organe, un tissu ou des cellules spécifiquement ciblé(e)s, sous l’action d’une β- N -acétylglucosaminidase.
Une telle prodrogue répond notamment à la formule (V) suivante :
A, L et Y étant tels que définis ci-dessus dans la formule (I).
Le motif L' 1 est quant à lui issu de la réaction entre, d'une part, le radical L' comportant un motif susceptible de réagir avec une fonction libre amino, hydroxyle ou thiol et en particulier avec une fonction thiol libre portée par une macromolécule, avantageusement une molécule d'albumine, encore plus avantageusement de l'albumine sérique.
Dans la présente demande, la prodrogue peut être formée in vivo ou in vitro avec une macromolécule, de préférence avec une molécule d'albumine.
Ainsi, une albumine endogène ou exogène, et notamment une sérumalbumine humaine, une albumine recombinante ou encore un fragment d'albumine, peut être envisagée.
Selon un mode de réalisation, la liaison covalente entre une molécule du conjugué, telle que décrite par la présente invention, et une molécule d'albumine endogène, notamment une molécule d'albumine sérique humaine, ou un dérivé de celle-ci, est réalisée in vivo .
Dans un mode de réalisation, une prodrogue selon l'invention comprend au moins une molécule de conjugué selon l'invention de formule (I) liée par une liaison thioéther au soufre de la cystéine en position 34 d'une molécule d'albumine endogène.
Il a en effet été montré qu'une liaison covalente s'établit spontanément in vivo par exemple entre, d'une part, un composé porteur d'un radical capable de réagir avec une fonction thiol et la fonction thiol de la cystéine en position 34 de l’albumine humain (Kratz et al. 2002, J. Med. Chem.).
L’invention concerne également une prodrogue de formule (V) susmentionnée, dans laquelle le groupe -L’ 1 -albumine répond à la formule (VI) suivante :
L’ étant tel que définis plus haut et p étant un nombre entier compris de 1 à 6, de préférence égal à 5.
Selon un autre mode de réalisation particulier, une prodrogue selon l’invention peut être également formée in vitro par au moins une molécule du conjugué liée par une liaison covalente à une molécule d’albumine, une molécule d’albumine recombinante ou un fragment d’une molécule d’albumine ou un de ses dérivés.
Au sens de l’invention il est important que le « fragment d’une molécule d’albumine » désigne un fragment d’une molécule d’albumine présentant une taille suffisante pour garantir une biodisponibilité satisfaisante, une perméabilité vis-à-vis des tissus tumoraux et une imperméabilité vis-à-vis de la barrière endothéliale des tissus sains, de la prodrogue ainsi générée.
Dans ce mode de réalisation particulier, le couplage in vitro entre un conjugué de formule générale (I), par son radical L’, et une molécule d’albumine, une molécule d’albumine recombinante ou un fragment d’une molécule d’albumine peut être réalisé avec une fonction réactive libre et complémentaire présente au niveau de la molécule d’albumine, la molécule d’albumine recombinante ou le fragment d’une molécule d’albumine.
La masse exacte a été déterminée pour tous les dérivés par leur infusion sur des spectromètres de masse ESI haute résolution au CBM/ICOA FR2708, à l'Université d'Orléans et au Centre d'Analyse Organique de l'IC2MP à l'Université de Poitiers.
La RP-HPLC analytique a été réalisée sur un système Dionex Ultimate 3000 équipé d'un détecteur UV/Visible à longueur d'onde variable avec une colonne chromatographique en phase inverse MACHEREY-NAGEL NUCLEOSHELL® (150/4,6, RP18, 5 µm) à 30°C et 1 mL.min- 1 . La méthode 1 a utilisé un gradient linéaire composé de A (0,2 % de TFA dans l'eau) et de B (CH 3 CN) commençant par 20 % de B et atteignant 100 % de B en 30 min. Tous les chromatogrammes ont été enregistrés à 254 nm.
La LC-MS analytique a été réalisée sur un appareil Shimadzu LCMS-2020. Une colonne chromatographique en phase inverse MACHEREY-NAGEL NUCLEOSHELL® (150/4,6, RP18, 5 pm) à 40°C a été utilisée pour la séparation chromatographique à un débit de 1 ml.min- 1 . L'effluent de la colonne a été introduit dans la source d'ionisation électrospray (ESI) du spectromètre de masse. Les analyses ont été effectuées en mode ion positif et négatif. La tension d'électrospray a été fixée à 4,5 kV. Les températures du capillaire et du réchauffeur étaient de 250°C et 400°C respectivement. Les débits de gaz de séchage (azote) et de gaz de nébulisation (azote) ont été fixés respectivement à 15 L.min- 1 et 1,5 L.min- 1 . L'analyse des données a été réalisée avec le logiciel LabSolutions. Les expériences LC/MS ont été réalisées en utilisant un gradient linéaire composé de A (0,1 % d'acide formique dans l'eau) et B (0,1 % d'acide formique dans CH 3 CN) commençant avec 20 % de B et atteignant 100 % de B en 15 min (Méthode 2 ).
Modes opératoires
La N -acétylglucosamine (3,0 g, 13,5 mmol, 1 équiv.) a été solubilisée dans du chlorure d'acétyle (13,5 ml, 190 mmol, 14 équiv.) et la solution a été agitée pendant 72 heures à température ambiante. Après achèvement, la solution a été hydrolysée par addition d'eau glacée (150 ml), agitée pendant 5 minutes et du CH 2 Cl 2 (60 ml) a été ajouté. La phase organique a été séparée, lavée avec du NaHCO 3 saturé (2 x 60 ml) et de la saumure (60 ml). Les phases organiques combinées ont été séchées sur MgSO 4 , filtrées et concentrées sous vide. Le résidu brut a été purifié par chromatographie sur une colonne de gel de silice (EP/AcOEt 50/50 à 0/100 en 20 minutes) pour donner le composé 83 (3,0 g, 61 %) sous la forme d'un solide blanc.
R f : 0,37 (EP/AcOEt 40/60)
MNR 1 H (400 MHz, CDCl 3 , 298K): δ ppm = 6.19 (d, J = 3.7 Hz, 1H, H1a), 5.77 (d, J = 9.0 Hz, 1H, HNH), 5.32 (dd, J = 14.6, 5.5 Hz, 1H), 5.22 (t, J = 9.7 Hz, 1H), 4.53 (ddd, J = 10.6, 8.8, 3.8 Hz, 1H, H2a), 4.37 - 4,23 (m, 2H), 4.14 (dd, J = 13.1, 2.7 Hz, 1H), 2.11 (s, 3H), 2.06 (s, 3H), 2.06 (s, 3H), 1.99 (s, 3H).
A une solution de phénol 55 (cf. WO2011/145068)(169 mg, 0,82 mmol, 1,5 équiv.) solubilisé dans un mélange de CH 2 Cl 2 (2 mL) et de NaHCO 3 aqueux (1 M, 1,4 mL) a été ajouté de l'iodure de tétrabutylammonium (176 mg, 0,54 mmol, 1 équiv.). Le mélange a été agité à température ambiante pendant 15 minutes. Ensuite, une solution du composé 83 (200 mg, 0,54 mmol, 1 équiv.) dans du CH 2 Cl 2 (1 mL) a été ajoutée et le mélange a été agité jusqu'à consommation totale du composé chloré 83 . Après 5h30, la phase organique a été séparée, lavée avec de l'eau (5 ml), de la saumure (5 ml), séchée sur MgSO 4 , filtrée et concentrée sous vide. Le résidu brut a été purifié par chromatographie sur une colonne de gel de silice (EP/AcOEt 100/0 à 0/100 en 20 minutes) pour donner le composé 84 sous la forme d’un mélange de 2 diastéréoisomères (200 mg, solide blanc, 68 %).
R f : 0,31 (CH 2 Cl 2 /MeOH 95/5)
RMN 1 H (500 MHz, CDCl 3 , 298K): δ ppm = 7.85 (2d, J = 2.1 Hz, 1H, H 3b ), 7.62 – 7.43 (m, 1H, H 5b ), 7.36 (d, J = 8.6 Hz, 1H, H 6b ), 5.77 (d, J = 8.2 Hz, 1H, H NH ), 5.59 (dd, J = 10.4, 9.1 Hz, 1H, H 3a ), 5.50 (dd, J = 8.2, 1.1 Hz, 1H, H 1a ), 5.13 (t, J = 9.5 Hz, 1H, H 4a ), 4.97 – 4.84 (m, 1H, H b ), 4.34 – 4.15 (m, 2H, H 6a ), 3.97 – 3.81 (m, 2H, H 2a and H 5a ), 2.73 – 2.57 (m, 2H, H c ), 2.11 (t, J = 2.6 Hz, 1H, H d ), 2.09 (s, 3H, H acetate ), 2.06 (s, 3H, H acetate ), 2.05 (s, 3H, H acetate ), 1.99 (s, 3H, H acetamide ).
RMN 13 C (126 MHz, CDCl 3 , 298K): δ ppm = 171.28, 170.71, 170.61, 169.63, 148.86, 138.91, 131.29, 122.65, 121.20, 121.14, 99.71, 79.53, 77.41, 77.16, 76.91, 72.37, 72.20, 71.28, 70.83, 68.59, 62.04, 55.48, 29.62, 23.50, 20.91, 20.85, 20.81.
HRMS (ESI): [M+Na] + calculé pour C 24 H 28 N 2 NaO 12 : 559.1534 trouvé 559.1521.
A une solution de phénol 84 (200 mg, 0,37 mmol, 1 équiv.) solubilisé dans du CH 2 Cl 2 (4 ml) a été ajouté du chloroformiate de 4-nitrophényle (150 mg, 0,75 mmol, 2 équiv.) à température ambiante. Le mélange a été refroidi à 0°C et de la pyridine (75,2 µl, 0,93 mmol, 2,5 équiv.) a été ajoutée. Le mélange a été agité à 0°C pendant 20 minutes et laissé se réchauffer à température ambiante pendant 3 heures. Après achèvement, le mélange a été hydrolyse avec du NaHCO 3 saturé (4 ml) et agité pendant 5 minutes. Ensuite, la phase organique a été séparée et la phase aqueuse a été extraite avec du CH 2 Cl 2 (4 ml). Les phases organiques combinées ont été lavées avec de la saumure (5 ml), séchées sur MgSO 4 , filtrées et concentrées sous vide. Le résidu brut a été purifié par chromatographie sur une colonne de gel de silice (CH 2 Cl 2 /MeOH 100/0 à 95/5 en 30 minutes) pour donner le composé 85 sous la forme d’un mélange de 2 diastéréoisomères (188 mg, solide blanc, 72 %).
R f : 0,17 (CH 2 Cl 2 /MeOH 98/2)
RMN 1 H (500 MHz, CDCl 3 , 298K): δ ppm = 8.28 (d, J = 9.2 Hz, 2H, H 3c ), 7.91 (t, J = 2.2 Hz, 1H, H 3b ), 7.62 (dt, J = 8.6, 2.1 Hz, 1H, H 5b ), 7.43 – 7.30 (m, 3H, H 6b and H 2c ), 5.91 – 5.72 (m, 2H, H b and H NH ), 5.72 – 5.54 (m, 2H, H 3a and H 1a ), 5.13 (t, J = 9.5 Hz, 1H, H 4a ), 4.35 – 4.17 (m, 2H, H 6a ), 3.99 – 3.88 (m, 1H, H 5a ), 3.88 – 3.79 (m, 1H, H 2a ), 3.01 – 2.78 (m, 2H, H c ), 2.12 – 2.08 (m, 4H, H d and H acetate ), 2.07 (s, 3H, H acetate ), 2.05 (s, 3H, H acetate ), 1.98 (s, 3H, H acetamide ).
RMN 13 C (126 MHz, CDCl 3 , 298K): δ ppm = 171.35, 171.31, 170.66, 170.52, 169.61, 155.27, 151.62, 149.92, 145.70, 141.44, 141.30, 133.46, 133.41, 132.46, 132.26, 125.52, 123.76, 123.57, 121.85, 121.83, 120.79, 120.65, 99.31, 99.18, 72.61, 72.41, 71.02, 70.98, 68.54, 61.99, 60.56, 55.69, 55.62, 26.37, 23.50, 21.22, 20.89, 20.83, 20.80, 14.33.
En référence à la , il va maintenant être présenté le procédé de diagnostic d’une sonde 30 pour véhicule 1 automobile, mis en œuvre par le calculateur 40 tel que présenté précédemment.
Le procédé est mis en œuvre suite au montage d’une nouvelle sonde 30 dans le véhicule 1. Il peut notamment s’agir du montage d’une sonde 30 dans un véhicule 1 avant sortie d’usine ou au changement de ladite sonde 30 suite à la détection d’un dysfonctionnement sur la précédente sonde montée dans le véhicule 1. De préférence, le procédé est mis en œuvre lorsque le véhicule est stationné, dans un garage par exemple.
Le procédé comprend tout d’abord une étape de détection E0 de défauts de fonctionnement de la sonde 30. Pour cela, le calculateur 40 reçoit la valeur du courant de pompage alimentant la cellule de pompage et détermine la valeur du niveau de richesse, à partir de la valeur du courant de pompage reçue. Le calculateur 40 reçoit également la tension entre les bornes de mesure de tension de la sonde 30, et plus précisément de la cellule de référence de la sonde 30, et détermine également la valeur du niveau de richesse, à partir de la tension reçue. Le calculateur 40 détecte un défaut de mesure lorsque la différence entre les valeurs de niveau de richesse déterminées ci-dessus est supérieure à un seuil maximal prédéfini ou inférieure à un seuil minimal prédéfini.
Le procédé comprend également une étape de réception E1 périodique par le calculateur 40 de la valeur de la température dans le système de dépollution 20, mesurée par le dispositif de mesure de température 21. Le calculateur 40 compare ensuite chaque valeur de température reçue au seuil prédéterminé de température.
Lorsque la température dans le système de dépollution 20 est supérieure au seuil prédéterminé de température, le procédé comprend une première phase P1 de commande du nettoyage de la sonde 30, lors de laquelle le calculateur 40 commande le fonctionnement du moteur thermique 10 en faisant varier périodiquement la consigne en niveau de richesse, émise au moteur thermique 10, de la valeur minimale à la valeur maximale et inversement.
Par exemple, la consigne en niveau de richesse passe de la valeur minimale à la valeur maximale et inversement toute les secondes. Autrement dit, la consigne de niveau de richesse est définie à sa valeur minimale pendant 1 seconde puis à sa valeur maximale pendant 1 seconde et inversement.
Suite à la première phase P1, le procédé comprend une deuxième phase P2 de commande du fonctionnement du moteur thermique 10.
Ainsi, la deuxième phase P2 comprend une sous-étape de commande E21 du fonctionnement du moteur thermique 10 en augmentant en continu la consigne en niveau de richesse d’une valeur minimale à une valeur maximale. Autrement dit, le calculateur 40 émet une suite de consignes en niveau de richesse au moteur thermique 10, pour lesquelles la valeur du niveau de richesse augmente régulièrement.
Pour chaque consigne en niveau de richesse reçue, le moteur thermique 10 adapte son fonctionnement de sorte à respecter la consigne en niveau de richesse.
La deuxième phase P2 comprend également une sous-étape de mesure E22 périodique du paramètre par la sonde 30 simultanément à la sous-étape de commande E21. De plus, chaque valeur mesurée par la sonde 30 est envoyée au calculateur 40.