Méthode de détection, de quantification et de discrimination par cytométrie en flux des cellules des levures Brettanomyces spp contenues dans un substrat liquide organique lequel contient des sucres fermentescibles, selon laquelle on prélève un échantillon dudit substrat, éventuellement on le dilue, on ajoute dans ledit substrat éventuellement dilué au moins un premier fluorochrome apte à se lier à l’ADN des cellules mortes et/ou vivantes, on irradie ledit échantillon de manière à obtenir l’émission de fluorescence dudit premier fluorochrome et on irradie ledit échantillon également de manière à obtenir une émission de fluorescence dudit échantillon à 670 nm, on établit un histogramme bi paramétrique donnant pour chaque point l’intensité de la fluorescence due au premier fluorochrome et l’intensité de la fluorescence émise à 670nm, on obtient ainsi au moins un premier nuage de points correspondant à une intensité de fluorescence émise et détectée à 670nm supérieure à celle détectée pour les autres points, on en déduit que les points dudit premier nuage correspondent aux cellules de Brettanomyces spp et on dénombre éventuellement le nombre de cellules de Brettanomyces spp en comptant les points dudit premier nuage. Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que ledit substrat contient en majorité des levures Brettanomyces spp et des levures Sacharomyces spp , en ce que l’on obtient sur ledit histogramme bi paramétrique deux nuages de points, un premier nuage comprenant les points correspondant à une intensité de fluorescence émise à 670nm supérieure à celle des points du deuxième nuage de points, en ce que l’on en déduit que les points dudit premier nuage correspondent aux cellules de Brettanomyces spp et que les points dudit deuxième nuage correspondent aux cellules de Saccharomyces spp et on dénombre éventuellement le nombre de cellules de Brettanomyces spp et/ou de Saccharomyces spp en comptant les points de chacun desdits nuages. Méthode selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce qu’avant de mesurer la fluorescence, on réalise une première discrimination entre les particules et les cellules contenues dans ledit échantillon en mesurant l’intensité de la lumière réfléchie et réfractée et l’intensité de la lumière difractée, on établit un histogramme bi paramétrique donnant pour chaque point correspondant à une particule ou cellule détectée la valeur desdites intensités, on détermine ainsi en fonction des valeurs desdites intensités une première fenêtre qui contient des points affectables à des cellules de levure et éventuellement une deuxième fenêtre qui correspond à des points affectables à des cellules bactériennes, on établit ledit histogramme bi paramétrique donnant l’intensité de la fluorescence due au premier fluorochrome et l’intensité de la fluorescence émise à 670nm pour chaque point situé dans ladite première fenêtre. Méthode selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ledit premier fluorochrome étant apte à se lier à l’ADN des cellules vivantes et à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable, en ce qu’avant toute mesure, on ajoute en outre, audit échantillon éventuellement dilué, un deuxième fluorochrome apte à se lier uniquement à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable , en ce que l’on détermine en outre, une troisième fenêtre qui entoure les points dudit premier nuage, en ce qu’on excite l’échantillon de manière à provoquer l’émission de fluorescence du premier et du deuxième fluorochrome et pour les points situés dans ladite troisième fenêtre, on établit également un histogramme bi paramétrique donnant pour chaque point l’intensité de la fluorescence du premier et celle du deuxième fluorochrome ou l’intensité de la fluorescence par unité de surface d’un des deux fluorochromes et celle due à l’autre fluorochrome et en ce que l’on détermine en outre, deux groupes de points, un premier groupe pour lesquels la fluorescence due au fluorochrome qui se fixe uniquement à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable est supérieure à celle du deuxième groupe et on compte le nombre de points de chacun des groupes, lequel correspond au nombre de cellules de Brettanomyces sppp vivantes pour le deuxième groupe et le nombre de cellules de Brettanomyces spp mortes pour le premier groupe. Méthode selon les revendications 2 et 3, caractérisée en ce que l’on détermine ladite deuxième fenêtre et en ce qu’on excite également ledit échantillon de manière à provoquer l’émission de fluorescence du premier et du deuxième fluorochrome et pour les points situés dans ladite deuxième fenêtre, on établit un histogramme bi paramétrique donnant pour chaque point l’intensité de la fluorescence du premier et celle du deuxième fluorochrome ou l’intensité de la fluorescence par unité de surface d’un des deux fluorochromes et celle due à l’autre fluorochrome et en ce que l’on détermine deux groupes de points, un premier groupe pour lesquels la fluorescence due au fluorochrome qui se fixe uniquement à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable est supérieure à celle du deuxième groupe et on compte le nombre de points de chacun des groupes, lequel correspond au nombre de cellules bactériennes vivantes pour le deuxième groupe et le nombre de cellules bactériennes mortes pour le premier groupe. Méthode selon la revendication 5 ou 6, caractérisée en ce que avant toute mesure, l’on ajoute, en outre, audit échantillon éventuellement dilué un troisième fluorochrome qui n’émet un signal de fluorescence que lorsqu’il qu’il réagit avec une cellule vivante, on excite ledit échantillon de manière à obtenir également l’émission de fluorescence dudit troisième fluorochrome et on établit pour les points de ladite deuxième et/ou troisième fenêtre, un histogramme bi paramétrique donnant pour chaque point l’intensité de la fluorescence due au fluorochrome qui ne se lie qu’à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable et l’intensité de la fluorescence due au troisième fluorochrome, on détermine alors pour chaque fenêtre, trois sous-groupes de points, un premier sous-groupe de points correspondants à une intensité de fluorescence due au troisième fluorochrome supérieure à celle des autres sous-groupes, ce premier sous-groupe de points représentant les cellules de Brettanomyces spp /cellules bactériennes vivantes et actives, un deuxième sous-groupe de points correspondant à une intensité de fluorescence due au troisième fluorochrome inférieure à celle du premier sous-groupe et couplée avec une intensité de fluorescence due au premier/deuxième fluorochrome inférieure à celle du troisième sous-groupe, les points de ce deuxième sous-groupe correspondent aux cellules de Brettanomyces spp /cellules bactériennes à l’état latent et un troisième sous-groupe de points correspondant à une intensité de fluorescence due au premier/deuxième fluorochrome supérieure à celle du premier et du deuxième sous-groupe, ces points correspondent aux cellules de Brettanomyces spp /cellules bactériennes mortes. Méthode selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ledit premier et ledit deuxième fluorochrome sont différents et choisis parmi les fluorochromes aptes à se lier à l’ADN des cellules et présentant une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence égale ou supérieure à 599nm et égale ou inférieure à 657nm, une longueur d’onde d’émission en fluorescence maximale égale ou supérieure à 619nm et égale ou inférieure à 678nm et un rendement quantique égal ou supérieur à 0,16 et égal ou inférieur à 0,39 et leurs mélanges, en particulier les fluorochromes apte à se lier à l’ADN des cellules et présentant une longueur d’onde d’absorption en fluorescence maximale de 652 nm, une longueur d’onde d’émission en fluorescence maximale de 676 nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,27 et les fluorochromes aptes à se lier à l’ADN et présentant une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence de 657nm, une longueur d’onde d’émission maximale en fluorescence de 673nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,17, les fluorochromes aptes à se lier uniquement à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable et qui présentent une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence de 547nm, une longueur d’onde d’émission maximale en fluorescence de 570nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,9 et leur mélanges et en ce que lorsque ledit premier fluorochrome est choisi parmi les fluorochromes aptes à se lier à l’ADN et présentant une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence de 657nm, une longueur d’onde d’émission maximale en fluorescence de 673nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,17 et les fluorochromes apte à se lier à l’ADN des cellules et présentant une longueur d’onde d’absorption en fluorescence maximale de 652 nm, une longueur d’onde d’émission en fluorescence maximale de 676 nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,27, le deuxième fluorochrome est choisi parmi les fluorochromes aptes à se lier uniquement à l’ADN des cellules dont la paroi est perméable et qui présentent une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence de 547nm et une longueur d’onde d’émission maximale en fluorescence de 570nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,9 et en ce que ledit troisième fluorochrome est choisi parmi le diacétate de 5-carboxyfluoresceine, le diacétate de 6-carboxyfluoresceine, les mélanges de diacétate de 5-carboxyfluoresceine et de diacétate de 6-carboxyfluoresceine et le diacétate fluorescéine 5,6 carboxylate de succinimidyl de formule générale suivante : [Formule 3] Méthode selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ledit substrat est choisi parmi le vin pétillant ou non, le vin rouge, le vin blanc, le vin rosé, le cidre, la bière, le saké, les jus de fruits, notamment de raisin ou de pomme, le kéfir d’eau, le kéfir de jus de fruit, le kéfir de lait, le lait, la tequila, le whisky, la vodka, les moûts notamment de raisin, les vins en cours de première ou de deuxième fermentation, les vins finis, pétillants ou non et les vinaigres. Méthode selon l’une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu’elle permet de détecter quantifier et discriminer au moins une espèce de levure Brettanomyces spp choisie parmi les espèces suivantes B. anomalus , B. bruxellensis , B. custersianus , B. nanus , B. dekkera bruxellensis et B. naardenensis d’au moins une autres espèce de levure et notamment d’au moins une espèce de Saccharomyces spp choisie parmi les espèces suivantes : Saccharomyces bailii Linder, Saccharomyces carlsbergensis , Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces delbrueckii , Saccharomyces exiguus , Saccharomyces fermentati , Saccharomyces florentinus , Saccharomyces fragilis , Saccharomyces fructuum , Saccharomyces heterogenicus , Saccharomyces oleaginosus , Saccharomyces rosei , Saccharomyces steineri , Saccharomyces boulardii , Saccharomyces kefir , Saccharomyces kluyveri et en particulier Saccharomyces cerevisiae. Mélange fluorochromique contenant ou constitué d’un solvant et d’un premier fluorochrome choisi parmi les fluorochromes aptes à se lier à l’ADN et présentant une longueur d’onde d’absorption en fluorescence maximale de 652 nm et une longueur d’onde d’émission en fluorescence maximale de 676 nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,27, les fluorochromes aptes à se lier à l’ADN et présentant une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence de 657nm et une longueur d’onde d’émission maximale en fluorescence de 673nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,17 et leur mélanges, un deuxième fluorochrome choisi parmi les fluorochromes présentant une longueur d’onde d’absorption maximale en fluorescence de 547nm et une longueur d’onde d’émission maximale en fluorescence de 570nm et un rendement quantique de fluorescence sur l’ADN de 0,9 et un troisième fluorochrome ledit troisième fluorochrome est choisi parmi le diacétate de 5-carboxyfluoresceine, le diacétate de 6-carboxyfluoresceine, les mélanges de diacétate de 5-carboxyfluoresceine et de diacétate de 6-carboxyfluoresceine et le diacétate fluorescéine 5,6 carboxylate de succinimidyl de formule générale suivante : [Formule 4]