INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
De fait, l’oligonucléotide selon la présente invention se distingue encore des autres oligonucléotides à double structure tige-boucle de l’art antérieur, utiles dans la reconnaissance d’analytes d’intérêt. Dans ces derniers, une entité formant une paire de liaisons avec un analyte d’intérêt se présente obligatoirement sous forme d’une séquence nucléotidique, alors qu’elle peut être de nature glucidique, peptidique, lipidique et/ou nucléotidique dans le cadre de la présente invention.
L’expression « molécule nucléotidique » utilisée dans la présente est équivalente aux termes et expressions suivants : « acide nucléique », « polynucléotide », « séquence nucléotidique », « séquence polynucléotidique » et « séquence oligonucléotidique ». Par « molécule nucléotidique », on entend, dans le cadre de la présente invention, un chromosome ; un gène ; un polynucléotide régulateur ; un ADN, simple-brin ou double-brin, génomique, chromosomique, chloroplastique, plasmidique, mitochondrial, recombinant ou complémentaire ; un ARN total ; un ARN messager ; un ARN ribosomal (ou ribozyme) ; un ARN de transfert ; un micro-ARN ; une séquence faisant office d’aptamère ; un acide nucléique peptidique ; un acide nucléique verrouillé (ou LNA pour « Locked Nucleic Acid ») ; un morpholino ; une portion ou un fragment de ceux-ci.
Dans un second mode de réalisation notamment illustré au point III de la partie expérimentale ci-après, la ou les entités E présentes au niveau de la structure S ou S’ dans l’oligonucléotide selon la présente invention sont aptes à se lier indirectement à un ou des analytes d’intérêt. En d’autres termes, cette ou ces entités E sont indépendantes du ou des analytes d’intérêt à détecter et cette détection nécessite l’utilisation d’un intermédiaire de liaison apte à se lier, d’une part, à l’oligonucléotide selon ce second mode de réalisation de l’invention et, d’autre part, à ou aux analytes d’intérêt. Ce partenaire de liaison correspond à une molécule comprenant une première portion P1 apte à se lier à une entité E présente dans la structure S ou S’ de l’oligonucléotide et une seconde portion P2 apte à se lier à au moins un analyte d’intérêt. La portion P2 de cette molécule correspond à une entité de reconnaissance telle que définie précédemment ou comprend plusieurs entités de reconnaissance telles que définies précédemment, identiques ou différentes. Ainsi, tout ce qui a été décrit ci-dessus pour l’entité ou les entités de reconnaissance s’applique mutatis mutandis à la portion P2. Dans ce partenaire de liaison, la portion P1 et la portion P2 sont couplées l’une à l’autre au moyen d’une liaison covalente. En variante, la portion P1 et la portion P2 peuvent être couplées l’une à l’autre au moyen d’un bras de liaison tel que précédemment défini.
Une entité E de ce second mode de réalisation peut être toute molécule capable de former une paire de liaisons avec la portion P1 du partenaire de liaison, l’entité E et la portion P1 correspondant aux deux partenaires de cette paire de liaisons. Les liaisons mises en œuvre dans la liaison entité-portion P1 sont des liaisons non covalentes et de faible énergie telles que des liaisons hydrogène ou des liaisons de Van der Waals.
La présente invention concerne un complexe non-covalent, formé par un oligonucléotide selon le second mode de réalisation et une molécule comprenant une première portion P1 apte à se lier à ladite au moins une entité E de cet oligonucléotide et une seconde portion P2 apte à se lier à au moins un analyte d’intérêt. En d’autres termes, ce complexe non-covalent est formé par un oligonucléotide à double structure tige-boucle dont la structure S ou S’ comprend au moins une entité E apte à se lier indirectement à au moins un analyte d’intérêt tel que précédemment défini et une molécule comprenant une première portion P1 apte à se lier à cette au moins une entité E présente dans la structure S ou S’ et une seconde portion P2 apte à se lier à au moins un analyte d’intérêt. Un tel complexe peut être désigné par l’expression « complexe de liaison ».
La présente invention concerne également l’utilisation d’un oligonucléotide à double structure tige-boucle tel que précédemment défini ou un complexe de liaison tel que précédemment défini pour détecter et éventuellement quantifier au moins un analyte éventuellement présent dans un échantillon liquide.
Dans un mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé pour détecter et éventuellement quantifier au moins un analyte éventuellement présent dans un échantillon liquide, comprenant les étapes suivantes :
De préférence, un renforcement de piste 222 est fourni entre la partie basse de la face de réception 21 et la piste de déplacement 23, dans l’espace entre les parties de rail. On limite ainsi l’endommagement de la piste de déplacement 23 au cours du temps.
Le côté intérieur de la face de réception 21 comprend une pluralité de rails alignés, semblables au rail 22 de la . Chaque photobioréacteur reçu dans la superstructure 2 est ainsi déplaçable en translation, indépendamment des autres photobioréacteurs.
Optionnellement, le côté extérieur de la face de réception 21 (face au sol) comprend un guide de fourche 284. Le guide de fourche 284 est prévu pour permettre l’engagement d’une fourche de chariot élévateur, facilitant la manutention de la superstructure 2.
Face supérieure de fermeture
De retour à la , la superstructure 2 comporte de préférence une face de fermeture 24 du côté supérieur de la superstructure 2. La face de fermeture 24 est solidaire des cadres 20 d’extrémité, et est éventuellement solidaire des cadres intermédiaires 29, lorsque ces derniers sont présents. La face de fermeture 24 est de préférence plane, alignée avec la face de réception 21 et parallèle au sol.
De préférence, la hauteur disponible entre la face de fermeture 24 et la face de réception 21 est sensiblement égale ou légèrement supérieure à la hauteur L2 du photobioréacteur 3. Un photobioréacteur 3 peut s’intercaler entre ces deux faces.
De préférence, au moins une poutre de renforcement supérieur 28 est disposée au-dessus de la face de fermeture 24, du côté supérieur des cadres 20 d’extrémité. La poutre de renforcement supérieur 28 est parallèle à la direction d’empilement A. Ici, deux poutres de renforcement supérieur 28 sont fournies.
De façon avantageuse, le côté intérieur de la face de fermeture 24 (côté en regard de la face de réception 21) comprend au moins un guide de couvercle 240. Chaque guide de couvercle 240 s’étend parallèlement à la direction de glissement B. La superstructure 2 compte préférentiellement autant de guides de couvercle 240 que de pistes de déplacement 23.
Le guide de couvercle 240 est prévu pour guider le couvercle 34 le long de la face de fermeture 24, au cours d’un déplacement du photobioréacteur 3.
Dans le présent exemple, le guide de couvercle 240 comprend deux surfaces latérales de guide, s’étendant verticalement vers le bas à partir de la face de fermeture 24. Les deux surfaces latérales se terminent par des crochets orientés vers l’intérieur.
Le couvercle 34 du photobioréacteur 3 présente un espace creux traversant, parallèle à la direction de glissement B, permettant l’insertion du guide de couvercle 240. Dans la position rétractée du photobioréacteur 3 (à l’intérieur du volume interne de la superstructure 2), toute la longueur du guide de couvercle 240 est insérée dans cet espace creux. Au cours du déplacement en translation du photobioréacteur 3 le long de la piste de déplacement 23, le couvercle 34 glisse et est maintenu latéralement en position par le guide de couvercle 240.
La superstructure 2 de support décrite ci-avant présente de nombreux avantages.
La superstructure 2 permet le rangement d’un grand nombre de photobioréacteurs 3 dans un volume réduit. Le caractère très compact de la superstructure 2 réduit le besoin en sondes et en tuyauterie. De plus, l’emprise au sol de la superstructure 2 demeure très modérée. La superstructure 2 présente une forme standardisée et simple, et il est donc aisé de disposer plusieurs superstructures 2 groupées dans une même zone, en série les unes à la suite des autres et/ou en parallèle. On optimise ainsi l'occupation de l'espace au sol sur le site de production de biomasse microalgale.
De plus, les pistes de déplacement 23 disposées en parallèle à l’intérieur de la superstructure 2 permettent une extraction facile d’un photobioréacteur donné, par simple traction hors du volume interne de la superstructure 2. Chaque photobioréacteur 3 est extractible indépendamment des autres photobioréacteurs, et peut ensuite être replacé facilement dans sa position initiale.
Enfin, il est possible d’empiler plusieurs superstructures les unes au-dessus des autres, comme représenté sur la annexée illustrant un ensemble de deux superstructures 2 et 2’ superposées, en cours de manutention. Il est donc possible d’étendre l’installation de production de biomasse non seulement au sol, mais aussi verticalement.
Attaches pour l’empilement de plusieurs structures de support
RMN 1 H (300 MHz, Chloroforme- d ): δ 8.04 (dd, J = 8.2, 1.3 Hz, 2H), 7.85 (dd, J = 7.4, 1.5 Hz, 2H), 7.66 (td, J = 7.4, 1.3 Hz, 2H), 7.46 (ddd, J = 8.2, 7.4, 1.5 Hz, 2H), 6.87 (s, 2H), 6.19 (dd, J = 10.9, 2.4 Hz, 2H), 3.21 (dt, J = 13.9, 2.4 Hz, 1H), 2.51 (s, 6H), 2.29 (s, 3H), 1.83 (dt, J = 13.9, 10.9 Hz, 1H).
RMN 11 B (96 MHz, Chloroforme d ): δ 30.6 (bs).
RMN 13 C (75 MHz, Chloroforme- d ): δ 147.5 (2 C q ), 140.2 (2 C q ), 138.7 (C q ), 137.5 (2 C q ), 134.0 (2 CH ar ), 128.8 (2 CH ar ), 127.7 (2 CH ar ), 127.5 (2 CH ar ), 125.0 (2 CH ar ), 70.8 (2 CH), 42.5 (CH 2 ), 22.7 (2 CH 3 ), 21.4 (CH 3 ).
HRMS (ESI): calculée pour C 24 H 23 BN 2 O 6 Na [M + Na]: 468.15777 ; trouvée : 468.15825
Point fusion = [160.2 – 164]°C.
Le spectre d’absorption UV-Visble ( 250 à 700 nm) du composé (4) est représenté en
4,5-bis(2-nitrophényl)-2-( p -tolyl)-1,3,2-dioxaborolane ( 5 ):
Dans un flacon en verre, ont été introduits du 1,2-bis(2-nitrophényl)-1,2-éthanediol (182.8 mg, 0.6 mmol) et 3 mL d’éther distillé Et 2 O. Après dissolution complète, de l’acide p -tolylboronique (68.8 mg, 0.5 mmol) et du Na 2 SO 4 (142.4 mg, 1 mmol) ont été ajoutés. La suspension résultante obtenue a été mélangée sous agitation pendant 40h à température ambiante (20-25°C), puis filtrée et le gâteau de filtration a été extrait avec EtOAc (4 × 5 mL). Le produit brut a été purifié par chromatographie sur colonne deux fois (Cyclohexane/EtOAc : 75/25 ; 85/15) afin d’obtenir un solide jaune clair (Rendement: 58%, dr: 95/5)
R f : 0.52 (Ether de pétrole / Acétate d’éthyle: 7/3)
RMN 1 H (300 MHz, Chloroforme- d , δ ): 7.93 (d, J = 7.7 Hz, 2H syn+anti), 7.77 (d, J = 8.0 Hz, 2H syn+anti), 7.48 (d, J = 7.4 Hz, 2H syn+anti), 7.43 – 7.20 (m, 6H syn + anti), 6.84 (s, 2H syn), 6.17 (s, CH anti), 2.47 (s, 3H syn+anti)
RMN 11 B (96 MHz Chloroforme- d , δ ): 32.1 (bs)
RMN 13 C (75 MHz, Chloroforme- d , δ ): 147.7 (2 C q ), 142.9 (2 C q ), 135.5 (2 CH ar ), 133.0 (C q ), 132.8 (2 CH ar ), 129.2 (2 CH ar ), 129.1 (2 CH ar ), 129.0 (2 CH ar ), 124.6 (2 CH ar ), 79.0 (2 CH), 22.0 (CH 3 )
Les pics des carbones du second diastéréoisomère sont trop faibles pour être attribués/observés.
trans -2-mésityl-4,5-bis(2-nitrophényl)-1,3,2-dioxaborolane ( 6 ):
Un orifice (83) fait partie d’un canal d’apport (5) et correspond à une ouverture dans l’une des faces latérales (A) du corps solide (2) par le biais dudit canal d’apport (5).
un ou plusieurs orifices (84) permettant l’entrée de ou des flux de matière dans la au moins une cavité secondaire (2’).
Un orifice (84) fait partie d’un canal d’apport (5) et correspond à une ouverture dans l’une des faces latérales extérieures (H’’’) de ladite au moins une cavité secondaire (2’) par le biais dudit canal d’apport (5).
un ou plusieurs orifices (85) permettant la sortie de, ou des flux de matière d’une au moins une cavité secondaire (2’).
Un orifice (85) fait partie d’un canal d’approvisionnement (8) et correspond à une ouverture dans l’une des surfaces apicale ou basale (H’) de ladite au moins une cavité secondaire (2’) par le biais dudit canal d’approvisionnement (8).
un ou plusieurs orifices (86) permettant l’entrée de ou des flux de matière dans le logement apical (3) ou le logement basal (4), depuis une cavité secondaire (2’).
Un orifice (86) fait partie d’un canal d’approvisionnement (8) et correspond à une ouverture dans l’une des surfaces apicale ou basale (G) de la partie (1’) du corps solide, par le biais dudit canal d’approvisionnement (8).
Les orifices (81) et (83) sont notamment reliés à des moyens de transport des flux de matière et des flux d’électrolyte et sont notamment des tubes ou des tuyaux. Ces moyens de transport sont reliés de façon étanche et avantageusement réversible au corps solide (1) par des moyens de fixation.
Les orifices (81) et (83) peuvent optionnellement, mais pas nécessairement, être équipés de protubérances, afin, entre autres, de faciliter la reliaison lesdits moyens de transport au corps solide.
Lors de l’utilisation de la cellule d’électrolyse selon la présente invention, les deux flux d’électrolyte, apportés par les deux canaux d’admission (6) et (7), se rencontrent, frontalement, dans la cavité centrale (2). La collision des deux flux provoque alors un changement de direction des desdits deux flux.
Une partie du premier flux se dirige vers l’anode, tandis que l’autre partie se dirige vers la cathode. De même, une partie du deuxième flux se dirige vers l’anode, tandis que l’autre partie se dirige vers la cathode. Les deux parties se dirigeant vers l’anode peuvent, au moins partiellement se mélanger entre elles, tout comme les deux parties se dirigeant vers la cathode. Le principe générale de ces phénomène a été étudié par Štigler et al (The Fluid Flow in the T-Junction. The Comparison of the Numerical Modeling and Piv Measurement, Procedia Engineering 39 ( 2012 ) p. 19-27).
Cette séparation des deux flux (appelé « Split » en anglais), accompagnée d’un changement de direction, permet au flux d’électrolyte d’atteindre les électrodes selon une direction substantiellement perpendiculaire aux électrodes. Ce qui facilite la traversée desdits flux à travers les électrodes poreuses.
Le débit des flux vers l’extérieur de la cellule, par les électrodes poreuses, empêche les produits d’électrolyse de migrer dans la cavité centrale, lesdits produits d’électrolyse étant « entrainés » vers l’extérieur de la cellule pour être récupérés. Le flux récupéré depuis la cathode est appelé le « catholyte », et le flux récupéré depuis l’anode est appelé « anolyte ».
Par « catholyte » on entend le flux d’électrolyte après sa traversée de la cathode depuis l’intérieur du corps solide (1) vers l’extérieur de la cellule d’électrolyse. Il est entendu que le catholyte comprend de l’électrolyte, des produits de réaction, et éventuellement les réactifs et matières en excès, n’ayant pas subi de réaction.
Par « anolyte » on entend le flux d’électrolyte après sa traversée de l’anode depuis l’intérieur du corps solide (1) vers l’extérieur de la cellule d’électrolyse. Il est entendu que l’anolyte comprend de l’électrolyte, des produits de réaction, et éventuellement les réactifs et matières en excès.
Les Inventeurs ont trouvé de façon inattendue que la cellule d’électrolyse selon la présente invention, dont la structure est telle qu’elle engendre la création d’un « split » de l’électrolyte, et permet un apport de matière/réactif séparément de l’électrolyte, permet d’éviter le mélange des produits formés à la cathode avec les produits formés à l’anode, malgré l’absence de membrane, tout en assurant la conductivité électrique de la cellule.
La quantité totale de moles des solutés dans le mélange (i.e. n 0 ) est d’environ 5x10 - 4 moles. Le pH du mélange est d’environ 7,4 (tampon phosphate : PBS).
Une séquence de 3 rangs de partages – telle qu’illustrée sur la – est appliquée au mélange en utilisant du n -octanol hydraté pour le partage du mélange aqueux et celui des phases aqueuses issues des partages de rangs 1 et 2 (i.e. les phases φ11, φ21 et φ23), et une solution aqueuse comprenant du tampon PBS de pH 7 dans de l’eau distillée pour le partage des phases organiques issues des partages de rangs 1 et 2 (i.e. les phases φ12, φ22 et φ24). Le rapport V org /V aq utilisé est de l’ordre de 1/4.
La concentration de chaque soluté dans les phases issues des partages de rangs 1, 2 et 3 (i.e. les phases φ11 à φ38) est suivie par spectroscopie UV-visible mais uniquement dans le but de contrôler le bon déroulement de l’expérimentation.
Comme le montre la partie gauche de la , qui montre les coefficients de partage, exprimés en log D, tels que vérifiés expérimentalement à chacun des rangs de partages et pour chacun des solutés, la théophylline et le benzimidazole se partagent entre phases aqueuses et phases organiques de manière suffisamment homogène pour que leur concentration puisse être mesurée dans toutes les phases (à l’exception du benzimidazole dans la phase φ31). Par contre, de par son caractère hydrophile, l’acide benzoïque est extrait en quasi-totalité dans les phases aqueuses : φ11 puis φ21 et φ31. La mesure de son coefficient de partage n’est donc possible qu’à partir de la séparation de ces trois dernières phases. Les coefficients de partage mesurés individuellement pour les trois composés sont proches des valeurs théoriques indiquées en pointillés, attestant du bon déroulement des expériences successives.
Les résultats obtenus en appliquant le traitement mathématique décrit au point 4 ci-avant sont illustrés dans le tableau ci-après ainsi que sur la partie droite de la .
Dans ce tableau, sont présentés : - les log D des solutés tels que vérifiés expérimentalement, notés log D expérimentaux, - le nombre de moles de chacun des solutés dans le mélange de départ tel que vérifié expérimentalement, noté n mélange , - les log D utilisés pour définir les vecteurs théoriques, notés log D cibles, et - le nombre de moles obtenu pour chaque soluté noté, n résultat , et obtenu par ajustement de la quantité totale des trois solutés mesurée dans chaque phase.
Dans la partie droite de la , les résultats sont exprimés en pourcentages en termes de quantité de matière d’un soluté (nX) rapportée à la quantité totale de matière des solutés dans le mélange (n tot ), notés P(X)%, en fonction du coefficient de partage, exprimé en log D.
Le traitement mathématique utilise uniquement la valeur de la quantité totale (en moles) des solutés dans les phases du dernier rang de partages, qui est rapportée à la quantité totale de ces solutés dans le mélange de départ.
Différents ajustements paramétriques sont testés avec un nombre variable de vecteurs théoriques (3 ou 5) ou des valeurs de log D différentes. Dans chaque cas, les données obtenues par le traitement mathématique (indiquées par des signes) sont relativement proches des valeurs attendues pour ce mélange connu (indiquées par des ronds).
Ce type de résultats a été reproduit avec différents rapports de quantités entre les solutés, différentes gammes de concentrations, d’autres solutés, et différents types de grandeur X ( 14 C, COT, etc.), ce qui démontre une faisabilité générale pour le procédé de l’invention.
6 . É va luation du degré de pureté d’un bisphénol A marqué par du 14 C et caractérisation d ’une impureté :
On se réfère à présent à la qui illustre un exemple de mise en œuvre du procédé de l’invention pour l’évaluation du degré de pureté d’une substance de synthèse et la caractérisation de la quantité et de la lipophilie d’une impureté que comprend cette substance, qui est l’une des applications potentielles de ce procédé.
Cet exemple a été réalisé avec une source commerciale de bisphénol A (BPA) marqué au 14 C, plus simplement dénommé ci-après 14 C-BPA.
La grandeur X est donc l’activité en 14 C que l’on mesure par scintillation liquide.
Comme le montre la , la mesure de l’activité en 14 C à l’issue d’un unique partage (N = 1) de la source commerciale de 14 C-BPA, réalisé avec de l’eau distillée et du n- octanol, fournit un log D, noté log D EXP (source 14 C-BPA), sensiblement égal à 2,1 (trait plein) et, donc, très différent du log D que présente théoriquement le BPA, noté log D TH É OR (BPA) et qui est de 3,32 (trait pointillé).
Malgré une pureté élevée de la source commerciale (≈ 99%), une différence significative est mesurée vis-à-vis de la lipophilie théorique du BPA du fait de la présence d’une impureté aux propriétés très différentes de celles du BPA : log D (impureté) << log D (BPA).
Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne l’utilisation d’un catalyseur Pd-X/CeO 2 , comprenant du palladium sur un support en dioxyde de cérium, dans lequel le catalyseur possède une aire de surface comprise de 50 à 250 m 2 /g, notamment de 100 à 200 m 2 /g, dans la mise en œuvre d’un procédé de préparation sélectif d’oxalates ou d’oxamides, à partir de monoxyde de carbone, d’un oxydant et d’un alcool ou d’une amine respectivement.
Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne l’utilisation d’un catalyseur Pd-X/CeO 2 , comprenant du palladium sur un support en dioxyde de cérium, dans lequel le catalyseur possède une aire de surface comprise de 50 à 250 m 2 /g, notamment de 100 à 200 m 2 /g, dans la mise en œuvre d’un procédé de préparation sélectif d’oxalates ou d’oxamides, à partir de monoxyde de carbone, d’un oxydant et d’un alcool ou d’une amine respectivement, en présence d’un promoteur.
Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne l’utilisation d’un catalyseur Pd-X/CeO 2 , comprenant du palladium sur un support en dioxyde de cérium, dans lequel le catalyseur possède une aire de surface comprise de 50 à 250 m 2 /g, notamment de 100 à 200 m 2 /g, dans la mise en œuvre d’un procédé de préparation sélectif d’oxalates ou d’oxamides, à partir de monoxyde de carbone, d’un oxydant et d’un alcool ou d’une amine respectivement, à une pression de 0,1 à 15 MPa.
Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne l’utilisation d’un catalyseur Pd-X/CeO 2 , comprenant du palladium sur un support en dioxyde de cérium, dans lequel le catalyseur possède une aire de surface comprise de 50 à 250 m 2 /g, notamment de 100 à 200 m 2 /g, dans la mise en œuvre d’un procédé de préparation sélectif d’oxalates ou d’oxamides, à partir de monoxyde de carbone, d’un oxydant et d’un alcool ou d’une amine respectivement, en présence d’un promoteur et à une pression de 0,1 à 15 MPa.
Selon un mode de réalisation particulier l’invention concerne l’utilisation telle que définie ci-dessus dans laquelle l’oxydant est choisi parmi : l’oxygène moléculaire (O 2 ), une dione en particulier la 1,4-benzoquinone, la 1,4-dicloro-2-butène et CuCl 2 .
Avantageusement, l’invention concerne l’utilisation telle que définie ci-dessus dans laquelle l’oxygène moléculaire (O 2 ) est utilisé comme oxydant.
Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne l’utilisation d’un catalyseur Pd-X/CeO 2 , comprenant du palladium sur un support en dioxyde de cérium, dans lequel le catalyseur possède une aire de surface comprise de 50 à 250 m 2 /g, notamment de 100 à 200 m 2 /g, dans la mise en œuvre d’un procédé de préparation sélectif d’oxalates ou d’oxamides, à partir de monoxyde de carbone, d’oxygène moléculaire et d’un alcool ou d’une amine respectivement.
Les bilames sont donc configurés pour présenter une position de repos à la température de référence et une position d’effort lorsqu’un écart de température apparait avec la température de référence. Les bilames des deux dispositifs de tension sont de préférences identiques, avec une orientation différente pour chaque dispositif de tension ce qui permet d’obtenir deux forces de traction opposée compensant la dilatation du câble principal.
Le rayon r de courbure est égal à l’inverse de la courbure et permet de calculer la flèche f de chaque bilame selon la formule suivante :
Avec l la demi-longueur du bilame, c’est-à-dire la moitié de la longueur totale du bilame. La flèche de chaque bilame permet de connaître le déplacement relatif que peut compenser le bilame à une température donnée.