INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Le dispositif de contrôle 4 de la batterie, à une étape suivante 34, déconnecte électriquement la batterie. Les contacteurs haute tension sont ouverts. Le véhicule est immobilisé. La fonction de décharge de secours est signalée au conducteur via l’IHM. Selon l’invention, le procédé comporte en outre à cette étape 34 l’activation de la fonction de décharge de secours apte à autoriser une décharge de la batterie sous la limite basse LB. Plus précisément, la fonction de secours est apte à commander la connexion électrique de la batterie 3 aux équipements électriques du véhicule lorsque la limite basse LB est atteinte et lorsque l’état de charge de la batterie est inférieur à la limite basse LB. La connexion électrique est commandée uniquement en cas de détection d’une requête de l’utilisateur. En outre, la fonction de secours signale au conducteur que l’inhibition permanente de la recharge est activée en cas d’autorisation de la décharge sous la limite basse LB, selon la variante préférentielle. En outre, la fonction de secours transmet une consultation via l’IHM au conducteur afin d’autoriser la décharge de secours.
A une étape 35, en cas de détection que le conducteur confirme la décharge de secours, via une réponse exprimée par un signal de requête RQ à travers l’IHM, alors l’unité de commande 2 du véhicule autorise le dispositif de contrôle 4 de la batterie à opérer une décharge sous la limite basse LB.
A une étape 36, la fonction de secours reconnecte électriquement la batterie 3 aux équipements électriques du véhicule, à tous les équipements ou seulement à une partie restreinte des équipements de manière à réduire la consommation. La décharge électrique de la batterie 3 est autorisée. Des équipements électriques du véhicule déchargent la batterie sous la limite basse LB. La batterie 3 atteint un état de charge inférieur à la limite basse LB. En particulier, l’autorisation 36 de la décharge de la batterie 3 sous la limite basse LB est active uniquement en cas de détection 35 de la requête RQ de l’utilisateur du véhicule.
En outre, les équipements peuvent être configurés dans un mode dégradé pour réduire la consommation. En outre, le dispositif de contrôle de la batterie inhibe de manière permanente une recharge électrique de la batterie via une fonction spécifique du fait que les cellules électrochimiques sont utilisées dans un domaine électrique susceptible de les altérer lors d’une recharge. L’utilisateur du véhicule devra procéder alors à un remplacement de la batterie. Toutefois, l’inhibition reste optionnelle en cas de décision du constructeur.
En outre, le procédé prévoit que l’énergie utilisée dans le domaine de secours DS puisse être réservée pour des équipements spécifiques du véhicule, tels des moyens de communication de secours, une batterie de tension inférieure (par exemple la batterie 12V) ou un équipement électrique spécifiquement choisi pour remplir la fonction de secours voulue. En variante, le procédé peut comporter en outre, lors de l’étape 36, la déconnexion électrique de consommateurs non essentiels avec la batterie. Afin de préserver l’énergie de secours. En outre, le procédé peut prévoir la connexion électrique seulement de consommateurs jugés essentiels et pouvant fonctionner à une tension atteignant une limite de 1,2V par cellule constituant la batterie.
L’invention permet à un utilisateur du véhicule en situation de péril d’exploiter une réserve d’énergie, normalement non disponible. En prenant une valeur moyenne de 5% de la capacité totale de la batterie, pour une batterie d’environ 100kW.h, le véhicule est en capacité de poursuivre la route pendant 20 km supplémentaire par rapport à l’utilisation nominale, ce qui peut être suffisant pour sortir d'un danger mortel. Cette réserve de secours représente plusieurs kilowattheures. Si l’on retient la valeur de 5kw.h on estime qu’il est possible d’alimenter un chauffage de 250W pendant 15 heures.
Siège de véhicule de transport de passagers et véhicule associé La présente invention concerne un siège de véhicule de transport de passagers comprenant un support mobile entre :
une première position dans laquelle le support définit un dossier pour un passager debout dans le véhicule,
La teneur totale du ou des extraits de levure du genre Saccharomyces , lorsqu’ils sont présents dans la composition mise en œuvre dans le procédé mise en œuvre dans le procédé selon l'invention, va de préférence de 0,001 à 5% en poids, et plus préférentiellement de 0,01 à 1% en poids, mieux de 0,02 à 0,5% en poids par rapport au poids total de la composition.
Les monosaccharides La composition mise en œuvre dans le procédé selon l’invention peut éventuellement comprendre en outre un ou plusieurs monosaccharides.
La teneur totale du ou des monosaccharides, lorsqu’ils sont présents dans la composition mise en œuvre dans le procédé de l’invention, va de préférence de 0,01% à 20% en poids, plus préférentiellement de 0,05% à 10% en poids, et mieux encore de 0,1% à 5% en poids, par rapport au poids total de la composition.
Exemples 1. Exemple 1 : Les compositions A-D selon l’invention ont été préparées à partir des ingrédients dont les teneurs sont indiquées dans les tableaux ci-dessous (% en poids de matière active sauf indication contraire) :
(i) Les agents antioxydants La composition selon la présente invention comprend un ou plusieurs agents antioxydants.
Solution 8: Tampon HEPES à 0.010 M , pH 7 , 4
La solution de tampon contient 2.383 g HEPES (Sigma Aldrich) dans 1000 mL d’eau ultra-pure, le pH a été ajusté avec de la soude.
Protocoles expérimentaux :
Protocol e 1: High Pressure Liquid Chromatography (HPLC)
L’éluant utilisé est le tampon acétate (solution 7), 10 µL d’échantillon sont injectés et élués à un débit de 0,8 mL/min. La colonne utilisée est une colonne SEC Polysep GFC-P 4000 et la détection est réalisée avec un détecteur UV aux longueurs d’onde 250 nm and 295 nm.
Protocol e 2: High Pressure Liquid Chromatography – Mass Spectroscopy (HPLC-MS)
L’éluant utilisé est le tampon acétate (solution 7 préparée avec des produits certifiés MS-Grade), le volume d’injection est de 10 µL et le débit est fixé à 0,4 mL/min. La colonne utilisée est une colonne SEC Polysep GFC-P 4000, l’HPLC est couplée à un spectromètre de masse (ICP-MS) pour la détection des isotopes recherchés.
Protocol e 3: Expérience d’ultrafiltration à l’aide de tubes Vivaspin
Différents tubes de centrifugation Vivaspin ont été utilisés : Vivaspin 20 mL avec une membrane de seuil de coupure de 30 kDa ou Vivaspin 6 mL avec une membrane de seuil de coupure de 30 kDa ou de 10 kDa. Tout le matériel a été préalablement nettoyé avec une solution d’EDTA à 21 mM puis deux fois à l’eau ultra-pure (18,2 MΩ) pour éliminer toute trace de contamination métallique. La centrifugation a été réalisée à une vitesse de 4000 rpm pendant 10 min. Après chaque cycle de centrifugation, le liquide qui avait passé à travers la membrane a été collecté pour chaque échantillon, cette partie est appelé le sous-nageant, et les tubes de centrifugation ont été à nouveau remplis avec la solution initiale. Cela a été reproduit jusqu’à l’utilisation de la totalité de la solution initiale. Idéalement, au moins 1 mL de surnageant reste au-dessus de la membrane et est analysé par ICP-MS pour déterminer le facteur de concentration exact de l’expérience.
Les échantillons de la solution initiale avant centrifugation, du sous-nageant et surnageant à la fin de l’expérience ont été analysés par ICP-MS. Les échantillons ont été dilués au moins par 10 avec une solution d’acide nitrique à 1%. Un standard interne (Indium) a été ajouté à chaque échantillon pour atteindre une concentration finale en indium de 2 ppb. Les analyses ont été effectuées en mode KED (Kinetic Energy Discrimination) avec un flux d’hélium dans la chambre. Les isotopes détectés sont les suivants : 208 Pb, 206 Pb, 111 Cd, 112 Cd, 114 Cd, 63 Cu, 65 Cu, 27 Al.
Une courbe de calibration entre 0,02 et 10 ppb de cadmium et 0,1 et 50 ppb de plomb a été réalisée. Cette calibration permet une conversion fiable du nombre de coups par secondes en concentration (ppb) pour chaque échantillon à l’aide du logiciel.
Le principe d’une ultrafiltration Vivaspin est présentée en .
Exemple 1: Chélation de Pb 2+ et Cd 2+ avec MexCD1 et Peg@DOTAGA
Les échantillons ont été créés en utilisant la solution 8. A partir d’un mélange de métaux à 10 ppm de Pb 2+ et Cd 2+ dans 5% HNO 3 acheté chez SCP Science ainsi que les solutions 1 et 2 de polymères, six échantillons par polymère ont été créés et analysés par HPLC-MS suivant le protocole 2. La composition des échantillons est donnée dans le tableau 1.
Echantillon Polymère Concentration en métaux (ppb) 1 0,1 g/L MexCD1 0 2 0,1 3 0,5 4 1 5 5 6 10 7 0,1 g/L Peg@DOTAGA 0 8 0,1 9 0,5 10 1 11 5 12 10
La montre que le plomb et le cadmium sont captés par le produit polymère fonctionnalisé, MEXCD1 ou Peg@DOTAGA, dans le domaine de concentration du ppb.
On peut encore définir un critère sur la complexité des calculs unitaires effectués par le réseau, et/ou leur nombre.
Différentes architectures de réseaux de neurones répondent aux critères qui viennent d’être décrits.
On utilise par exemple un réseau de neurones présentant une architecture comportant au moins une couche convolutionnelle et une couche dense, aussi appelée « fully connected ».
On a représenté à la un exemple d’une telle architecture pour une matrice 2 de dimensions 8x8 pixels. Le réseau de neurones 30 comporte une première couche 302 convolutionnelle de 64 filtres utilisant des noyaux de taille 3x3, avec une activation 304 de type Relu. Cette couche est suivie par une couche d’aplatissement Flatten 306 qui transforme la sortie de la convolution en un vecteur 1D. On applique enfin une couche 308 dense de 64 neurones (8x8) et on utilise une couche de reformage Reshape 310 pour revenir en 2D (8x8).
Une telle architecture présente l’avantage d’effectuer uniquement des calculs relativement simples, et de fait rapides à exécuter et facilement portables au sein d’une unité de calcul légère de type microcontrôleur. Cependant, un nombre de paramètres important doit être mémorisé, de l’ordre de plus de 150,000, ce qui nécessite une quantité relativement élevée de mémoire statique, de type ROM, Flash ou EEPROM par exemple.
On peut encore utiliser un réseau de neurones présentant une architecture combinant des couches convolutionnelles puis déconvolutionnelles, notamment une architecture dite « fully convolutional » comportant uniquement des couches convolutionnelles/déconvolutionnelles.
Dans l’exemple illustré à la pour la matrice de pixels 8x8 précitée, on utilise deux couches convolutionnelles 320 et 324 avec des activations 322 et 326 de type Relu ayant successivement 16 et 32 filtres de noyaux 4x4, suivies par deux couches 328 et 332 de type « Conv2DTranspose » avec des activations 330 et 334 de type Relu ayant successivement 32 et 16 filtres de 4x4. Une couche 336 « Conv2D » est ajoutée à la sortie avec un seul filtre de taille 1x1 et l’on utilise une couche Reshape 338 pour mettre en forme 8x8 la sortie IP_COR.
Une telle architecture réclame une puissance de calcul plus élevée que la précédente du fait de la succession des procédés de convolution et de déconvolution, mais présente l’avantage d’un nombre de paramètres à mémoriser réduit, par exemple moins de 25.000 paramètres.
D’autres architectures sont possibles, par exemple des architectures de type feed-forward ou bouclé , et la paramétrisation de l’architecture choisie peut varier. Par exemple, le réseau de neurones comporte un nombre de couches cachées ou un nombre de neurones par couche différent de celui qui vient d’être décrit.
La sélection de l’architecture se fait de préférence une seule fois pour un type ou une conception de matrice 2 donnée.
Lors de la fabrication d’un nouvel exemplaire de cette matrice, on génère la base de données BD MES avec cette matrice et le réseau de neurones présentant l’architecture présélectionnée est entraîné puis validé suivant le procédé de calibration décrit ci-dessus.
Lors de l’utilisation du capteur, chaque image de pression I P_MES mesurée par la matrice est injectée dans le réseau de neurones 30 ainsi entraîné pour être corrigée en une image I P_COR .
Cette correction peut être faite directement au niveau de l’électronique de gestion de la matrice 2 si celle-ci le permet, ou être déportée sur un terminal qui reçoit les images I P_MES transmises par la matrice.
Par exemple, la détection des pressions exercées sur la matrice 2 n’est pas nécessairement obtenue par mesure résistive. Elle peut se faire par mesure capacitive, en remplaçant par exemple le matériau conducteur par un matériau à constante diélectrique élevée, et en soumettant par exemple les électrodes de mesure à des tensions alternatives, ou selon toute autre méthode adaptée à mesurer une capacité.
Le capteur peut en outre être agencé pour mesurer d’autres quantités en plus de la pression et/ou la température. Une couche piézo-électrique peut être ajoutée afin de mesurer d’éventuelles vibrations ou accélérations.
Il est préférable que le polymère cationique soit choisi dans le groupe consistant en Polyquaternium-24, Polyquaternium-67 et leurs mélanges. Le polyquaternium-67 est le plus préférable.
D’un autre point de vue, les dérivés de cellulose cationiques pourraient également être choisis parmi un (des) éther(s) de cellulose cationique(s), comprenant de 4 000 à 10 000 motifs anhydroglucose, lesdits motifs anhydroglucose étant substitués par au moins :
(i) un substituant de formule
[R 4 R 5 R 6 R 9 N + ](X 2 - )
R 4 et R 5 représentent, indépendamment l’un de l’autre, un groupe méthyle ou éthyle,
R 6 représente un groupe alkyle en C 8 -C 24 linéaire ou ramifié ou un groupe aralkyle dans lequel la partie alkyle linéaire ou ramifiée est en C 8 -C 24 ,
R 9 représente un groupe divalent qui permet la fixation au groupe anhydroglucose et qui est choisi parmi -(B) q -CH 2 -CHOH-CH 2 - et -CH 2 CH 2 -,
q représentant 0 ou 1,
B désignant le groupe divalent -(CH 2 CH 2 O) n’ -,
n’ étant un nombre entier allant de 1 à 100,
X 2 - représente un anion ; et
(ii) un substituant de formule
[R 1 R 2 R 3 R 8 N + ](X 1 - )
R 1 , R 2 et R 3 représentent, indépendamment les uns des autres, un groupe méthyle ou éthyle,
Selon un mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé de préparation tel que défini ci-dessus, comprenant en outre, après l’étape D de tamisage, une étape E de sédimentation, pour obtenir un polymère à empreintes moléculaires sédimenté, ayant notamment une granulométrie comprise de 25 à 40 µm.
L’étape E de sédimentation permet d’éliminer les particules « fines », i.e. ayant une granulométrie inférieure à 25 µm, si elles n’ont pas été complétement éliminées lors de l’étape D de tamisage. Ces particules fines restent en suspension est peuvent être éliminées par décantation.
L’étape E de sédimentation est effectuée dans un milieu dans lequel le polymère n’est pas soluble, comme par exemple des mélanges aqueux d’alcools tels que le méthanol ou l’éthanol, notamment dans un ratio alcool/eau d’environ 80/20 v/v.
L’étape E de sédimentation peut être effectuée avant ou après l’étape B d’élimination du chlordécol.
Selon un autre mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé de préparation tel que défini ci-dessus, comprenant en outre :
après l’étape A de polymérisation, une étape B d’élimination du chlordécol du polymère à empreintes moléculaires, notamment par lavage, pour obtenir ledit polymère dépourvu de chlordécol, ladite étape B d’élimination étant notamment effectuée avec du méthanol,
et optionnellement,
entre l’étape A de polymérisation, et l’étape B d’élimination du chlordécol, une étape C de broyage, pour obtenir un polymère à empreintes moléculaires broyé,
et optionnellement
après l’étape C de broyage, une étape D de tamisage, pour obtenir un polymère à empreintes moléculaires tamisé, ayant notamment une granulométrie comprise de 25 à 40 µm,
après l’étape D de tamisage, une étape E de sédimentation, pour obtenir un polymère à empreintes moléculaires sédimenté, ayant notamment une granulométrie comprise de 25 à 40 µm, ladite étape E de sédimentation étant notamment effectuée avec un mélange méthanol/eau, en particulier dans un ratio 80/20 v/v.
Selon un autre mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé de préparation tel que défini ci-dessus, dans lequel le monomère est le 4-vinylpyridine, et le porogène est de l’acétonitrile.
Selon un autre mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé de préparation tel que défini ci-dessus, dans lequel le monomère est le 2-vinylpyridine, et le porogène est du dichlorométhane.
Selon un autre mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé de préparation tel que défini ci-dessus, dans lequel l’initiateur de polymérisation utilisé dans l’étape A de polymérisation est du AIBN.
Selon un autre mode de réalisation particulier, la présente invention concerne un procédé de préparation tel que défini ci-dessus, dans lequel l’agent de réticulation utilisé dans l’étape A de polymérisation est l’EGDMA.
Cependant, la réalisation de plusieurs mesures simultanément est limitée par la capacité de séparer les signaux issus des différentes sondes mélangées dans le même test, ce qui constitue un inconvénient majeur. En effet, il faut que des sondes ciblant des séquences distinctes présentent des longueurs d’onde d’émission pouvant être séparées les unes des autres pour pouvoir les utiliser lors d’une même mesure.
En effet, quelle que soit la variante retenue (balise moléculaire ou essai d’activité nucléase 5’ ou autre), il n’est pas possible d’utiliser plus d’une sonde par canal de fluorescence. Les thermocycleurs en temps réel disponibles sur le marché mesurent un niveau de fluorescence pour chaque canal à un moment unique de chaque cycle de la réaction d’amplification. Par conséquent, si deux sondes émettant dans le même canal de fluorescence sont mélangées, il n’est pas possible de distinguer leur contribution respective à la production du signal de fluorescence.
Ainsi, un thermocycleur en temps réel capable de mesurer 4 canaux de fluorescence ne peut détecter et discriminer la fluorescence émise que par 4 sondes maximum et les réactions d’amplification réalisées avec cet appareil ne peuvent pas détecter plus de 4 séquences cibles par réaction.
Plusieurs procédés ont été proposés pour contourner cette limitation :
- discrimination par le découplage de l’excitation et de l’émission : dans ce procédé, des sondes émettant dans le même canal de fluorescence peuvent être mélangées à condition qu’elles puissent être excitées de manière distincte. Certains fluorophores peuvent en effet être excités à des longueurs d’onde éloignées les unes des autres, mais émettre dans la même bande de longueur d’onde. C’est notamment le cas des fluorophores qui émettent avec un large décalage Stokes. Ainsi, la société Cepheid a récemment amélioré son appareil GeneXpert (marque déposée) en étendant le nombre de fluorophores détectés de 6 à 10 (voir l’article de Chakravorty et al. « Detection of Isoniazid-, Fluoroquinolone-, Amikacin-, and Kanamycin-Resistant Tuberculosis in an Automated, Multiplexed 10-Color Assay Suitable for Point-of-Care Use », 2017, Journal of Clinical Microbiology, 55, 183, publié à l’adresse https://doi.org/10.1128/JCM.01771-16). Dans la bande d’émission orange par exemple, 3 fluorophores peuvent ainsi être discriminés (CF9, excitable dans le bleu, CF8, excitable dans le vert, CF4, excitable dans le jaune). Ce procédé nécessite un module optique permettant d’analyser la composition spectrale du signal émis : l’excitation dans le vert produit des signaux émis par les fluorophores CF3, C8 et CF10 dans le jaune, l’orange et l’infrarouge respectivement. Il présente de plus l’inconvénient des procédés utilisant plusieurs bandes de fluorescence, à savoir la contamination optique d’une bande, ou canal, dans une bande adjacente. Ces contaminations optiques (également appelées “ crosstalks ”) peuvent perturber l’analyse des résultats dans les bandes adjacentes et être source de résultats erronés, du type faux positifs par exemple.
- discrimination par la méthode de la courbe de fusion : il est connu de distinguer des sondes partageant la même plage d’émission de fluorescence en distinguant les sondes par leur température de fusion. Pour cela, on réalise une courbe de fusion après avoir initié la formation du duplex entre la séquence d’intérêt et la (ou les) sonde(s) oligonucléotidique(s), en augmentant progressivement et de façon monotone la température T de la solution, tout en enregistrant le signal de fluorescence F. Le maximum de la courbe –dF/dT indique la température de fusion Tf du duplex. Cette température de fusion permet de s’assurer que le duplex formé est un homoduplex, voire un hétéroduplex si cette température est inférieure à la température connue de l’homoduplex, voire même d’identifier, dans ce cas, la ou les mutations à l’origine de l’hétéroduplex lorsque les séquences mutantes possibles sont répertoriées dans une liste limitative et que leurs températures de fusion respectives avec la sonde sont préalablement connues de façon biunivoque.
En ce qui concerne la méthode de la courbe de fusion, certains des procédés de détection de séquences d’intérêt décrits plus haut sont incompatibles avec les conditions nécessaires pour mesurer la température de fusion.
C’est en particulier le cas des procédés suivants :
- amplification avec une polymérase ayant une activité exonucléase 5’->3’ : c’est le cas le plus fréquent, comme avec le procédé de l’essai par l’activité nucléase 5’, les polymérases non mutées ayant en général une telle activité. Il en résulte une hydrolyse de l’extrémité 5’ des sondes lorsque celle-ci n’est pas bloquée, et les molécules de sonde hydrolysée ne sont plus utilisables pour réaliser la courbe de fusion.
- amplification asymétrique : dans le cas général des amplifications exponentielles dépendantes d’amorces comme la PCR, l’amplification est dite symétrique et ces amorces sont en concentration stœchiométrique, ce qui a pour conséquence que l’amplification engendre autant de brins d’ADN sens qu’anti-sens. Par construction, l’un de ces brins partage la même séquence, ou une séquence très proche, de celle de la sonde, de sorte que ce brin peut rentrer en compétition avec la sonde pour s’hybrider à la séquence cible, et supprimer le signal émis par cette sonde. Pour contourner cette difficulté, on peut réaliser une amplification asymétrique en modifiant le rapport des concentrations des amorces afin de favoriser la formation du brin d’ADN complémentaire de la sonde, mais l’amplification cesse alors rapidement d’être exponentielle lorsque l’amorce en faible quantité a été consommée pour devenir seulement linéaire, ce qui rallonge la durée du test et/ou diminue sa sensibilité,
- amplification multiplexe avec une amorce universelle : on utilise ici des amorces contenant une région conservée unique dans leur région 5’. Cela permet de diminuer avantageusement et efficacement l’occurrence des dimères d’amorces (Brownie et al « The elimination of primer-dimer accumulation in PCR », Nucleic acids Res. 1997 Nucleic Acids Res. 1997 Aug 15;25(16):3235-41. doi: 10.1093/nar/25.16.3235, publié à l’adresse https://doi.org/10.1093/nar/25.16.3235.) et d’amplifier exponentiellement un grand nombre de séquences d’intérêt avec un seul couple d’amorce. En revanche, il est évidemment impossible de réaliser une amplification asymétrique, puisque l’amorce utilisée amplifie chacun des brins sens et anti-sens de la séquence d’intérêt.
Dans le cas où la sonde n’est pas hydrolysée, son hybridation peut être supprimée ou considérablement diminuée par la présence du brin complémentaire formé pendant la réaction d’amplification symétrique. Cette diminution du signal peut résulter d’au moins deux mécanismes :
- la compétition lors de l’hybridation avec ce brin complémentaire, qui, même en concentration inférieure à celle de la sonde, peut s’hybrider en premier et de façon préférentielle,