Le vieillissement s'accompagne d'une accumulation accrue d'A2E dans la rétine (Bhosale et al., 2009). Sous l'action de la lumière bleue et en présence d'oxygène, l'A2E génère des espèces réactives qui provoquent des dommages aux protéines, aux lipides et à l'ADN, et donc un stress oxydatif important dans les cellules vieillissantes de l'EPR (Sparrow & Cai, 2001). Ces dommages perturbent l'activité lysosomiale des cellules de l'EPR et provoquent une accumulation de déchets, ce qui finit par engendrer, de place en place, la mort des cellules de l'EPR qui est suivie par celle des photorécepteurs auxquels elles étaient associées. Aucun médicament n'existe sur le marché pour le traitement de la DMLA sèche, alors que des médicaments par injection intravitréenne d'anticorps anti-VEGF 303 5 5 8 9 3 (Vascular Endothelial Growth Factor) sont commercialisés permettant de bloquer partiellement la formation de néovaisseaux et offrant ainsi une alternative de traitement de la DMLA humide. Des compléments alimentaires ont été formulés avec des composés antioxydants génériques, à savoir des minéraux et des vitamines aux 5 propriétés antioxydantes, par exemple le zinc, les vitamines A, C, E, avec une efficacité thérapeutique réelle mais limitée. La formule AREDS nutraceutique 1 (en anglais « Age-Related Eye Disease Study », AREDS 2001) est considérée comme la norme de soins aux États-Unis pour le traitement de la DMLA sèche, réduisant le risque de DMLA avancée de 25 % et la perte de vision de 19 % sur cinq ans. 10 De nombreux produits proposent une base de formulation commune : Zinc et vitamines C et E, à laquelle sont ajoutés divers ingrédients : lutéine, resvératrol, acides gras Oméga 3, sans toutefois disposer de données d'efficacité convaincantes sur ces ingrédients additionnels, ni sur les catégories de patients susceptibles de répondre favorablement à ces différentes molécules (Elliot & Williams, 2012). 15 Les caroténoïdes (des molécules exclusivement apportées par l'alimentation), ont été plus particulièrement étudiés, car certains d'entre eux (lutéine, zéaxanthine = des xanthophylles) sont naturellement présents dans la macula (Subczynski et al., 2010), et l'on sait que ces composés possèdent un fort pouvoir antioxydant. C'est donc logiquement que ces composés ont été testés (seuls ou en combinaison) dans 20 la formule AREDS, mais les résultats obtenus ont été limités, la supplémentation ne s'avérant efficace que pour un sous-ensemble de patients carencés en ces composés (Pinazo-Duràn et al., 2014). Ces molécules sont efficaces in vitro pour protéger des cellules de l'EPR (Human D407) contre les effets toxiques du peroxyde d'hydrogène (Pintea et al., 2011). 25 D'autres xanthophylles ont également fait l'objet d'études par supplémentation orale, seules ou en combinaison avec la lutéine et/ou la zéaxanthine (ex. astaxanthine - Parisi et al., 2008). Récemment, des diapocaroténoïdes (= caroténoïdes tronqués aux deux extrémités - IUPAC chemical nomenclature) ont été testés in vitro et in vivo, en particulier la crocétine (= 8,8'-diapocarotene-8,8'-dioate) 30 et ses glycosides (les crocines). Les crocines présentent un effet photoprotecteur in vitro sur des cultures primaires de photorécepteurs de bovins ou de primates (Laabich et al., 2006), et la crocétine protège les cellules neuroganglionnaires contre un stress oxydatif (Yamauchi et al., 2011). Le safran (une épice riche en crocines/crocétine) administré per os s'est avéré actif in vivo sur la qualité de la 3035589 4 rétine (Maccarone et al., 2008; Falsini et al., 2010; Boisti et al., 2014). Toutefois, le safran contenant d'autres molécules susceptibles d'être actives sur la rétine, comme d'autres caroténoïdes ainsi que du safranal (Verma&Middha, 2010 ; FernàndezSànchez et al., 2012), il est difficile de conclure quant à l'effet de la seule crocétine. 5 Des expérimentations ont également été réalisées avec un autre apocaroténoïde, la bixine (= methylhydrogen 6,6'-diapocarotene-6,6'-dioate) ou certains de ses dérivés, in vitro sur des cellules neuroganglionnaires et in vivo par injections intravitréennes pour contrecarrer les effets d'un stress du réticulum endoplasmique (Tsuruma et al., 2012). Les tests ainsi réalisés évaluent le plus 10 souvent une activité antioxydante et donc protectrice des composés vis-à-vis de divers types cellulaires de la rétine soumis à la présence d'un agent oxydant (ex. le peroxyde d'hydrogène), et ils ne se situent donc pas directement dans le contexte de la DMLA. Un extrait de graines d'Urucum (Bixaorellana) précédemment développé 15 (Bixilia®) a montré un effet photoprotecteur sur la peau humaine exposée aux UV (Veillet et al., 2009) et sur des cellules d'EPR soumises à un stress photooxydant (Fontaine et al., 2011). L'extrait Bixilia® est un extrait naturel d'Urucum qui a été enrichi en Bixine. Bixilia® contient d'autres composés photoprotecteurs de nature phénolique, dont la présence pourrait expliquer l'activité photoprotectrice supérieure 20 de l'extrait brut par rapport à la Bixine seule. Dans le brevet FR 11 54172 (Fontaine et al., 2011), l'effet protecteur des cellules d'EPR de certains des composés de l'extrait Bixilia® est analysé. Les résultats des tests utilisant la Bixine ou Norbixine aux concentrations 0,1 micromolaire (pM), 1 i_iM et 10 i_iM n'ont pas d'activité photoprotectrice et laissent même penser que plus la concentration en Bixine ou 25 Norbixine est grande, moins les cellules d'EPR survivent et donc moins l'effet photoprotecteur est grand. On remarque, entre autres, que des substances telles que la cyanidine et l'acide ellagique à des concentrations de 10 i_iM et 20 i_iM ont un effet photoprotecteur avantageux sur les cellules d'EPR. Une étude approfondie a conduit à identifier les molécules actives présentes 30 dans l'extrait Bixilia® et à préciser leur mécanisme d'action, puis à démontrer leur efficacité in vivo chez la souris et le rat. Cette étude a donné naissance à la présente invention. L'invention prévoit ainsi de trouver un traitement alternatif à ceux déjà existants pour la protection des cellules d'EPR. 3035 589 5 Objet de l'invention Les inventeurs ont découvert que la Norbixine, en particulier sa forme 9'-cis, permettait de diminuer fortement la mort cellulaire provoquée par une illumination avec des rayonnements bleus des cellules de l'EPR prétraitées avec de la N-rétinyl- 5 N-rétinylidène éthanolamine (A2E). Selon un premier aspect, la présente invention vise une composition contenant de la norbixine obtenue par purification à partir d'un extrait de graines de Bixa orellana, pour son utilisation pour la photoprotection des cellules de l'épithélium pigmentaire rétinien (EPR) chez le mammifère. 10 Dans le cadre de l'invention, on entend par « extrait de graines de Bixa orellana » un extrait préparé à partir de la partie externe des graines, c'est-à-dire de la substance cireuse recouvrant les graines de Bixa orellana. Cette substance cireuse est connue pour être riche en bixine et en d'autres caroténoïdes mineurs, ainsi que pour son utilisation comme colorant alimentaire. 15 La Norbixine, biodisponible chez les mammifères après administration orale, est bien mieux absorbée que la Bixine et se retrouve dans en particulier dans la rétine. Dans des modes de réalisation particuliers de l'invention, la composition comporte plus de 90 % en poids de Norbixine. 20 Dans des modes de réalisation particuliers de l'invention, la composition comporte plus de 90 % en poids de Norbixine sous sa forme 9'-cis de formule (I) : CH3 CH3 (I) Dans des modes de réalisation particuliers, la composition comporte au moins un élément choisi parmi le zinc, la vitamine C et la vitamine E. 25 Dans des modes de réalisation particuliers, la composition peut être utilisée sous forme d'un complément alimentaire ou d'un médicament. Par complément alimentaire on entend produit renfermant ladite composition ayant pour objet de compléter l'alimentation en apportant des nutriments bénéfiques pour la santé selon la définition donnée par la directive européenne 2002/46/EC. Par 303 5 5 8 9 6 exemple, un complément alimentaire peut être une gélule ou comprimé à avaler ou une poudre ou petite ampoule à mélanger à un aliment et présentant des effets bénéfiques sur les cellules d'EPR. Par médicament on entend produit contenant une dose précise dudit composé 5 ou dudit extrait selon la définition donnée par la directive européenne 65/65/CE à savoir toute substance ou composition présentée comme possédant des propriétés curatives ou préventives à l'égard des maladies humaines ou animales. Par exemple, le médicament contenant le composé aux doses thérapeutiques peut-être administré par voie orale sous forme de gélule ou comprimé ou injecté par voie intra-vitréenne 10 ou tout autre voie permettant de conférer des effets bénéfiques sur la rétine. Dans des modes de réalisation particuliers, la composition comprend un support acceptable pour être ingéré, injecté dans l'oeil, injecté par voie systémique ou injecté dans le sang. Dans des modes de réalisation, la composition est administrée au mammifère, 15 par jour, en quantité comprise entre 0,48 mg/kg de poids corporel et 48 mg/kg de poids corporel, de préférence comprise entre 0,6 mg/kg de poids corporel et 20 mg/kg de poids corporel. Selon d'autres modes de réalisation particuliers de l'invention, la composition est destinée à prévenir les dommages à la rétine susceptibles d'être causés par zo l'exposition aux rayonnements bleus. Par rayonnement bleus, on entend les rayonnements correspondant à la bande bleue du spectre de la lumière visible, de longueur d'onde comprise entre 435 nm et 490 nm. Dans des modes de réalisation particuliers de l'invention, la composition est destinée au traitement de la dégénérescence maculaire liée à l'âge (DMLA) chez le 25 mammifère. Dans d'autres modes de réalisation particuliers, la composition est destinée à traiter la maladie de Stargardt et/ou la rétinite pigmentaire chez le mammifère. La maladie de Stargardt, ou syndrome de Stargardt, est une pathologie héréditaire, associant une baisse d'acuité visuelle bilatérale à une atrophie de la macula, qui 30 reproduit, à un âge précoce, les symptômes de la forme sèche de la DMLA. Brève description des figures 3035589 7 La Figure 1 illustre le pourcentage de cellules d'EPR survivantes en présence de N-rétinyl-N-rétinylidène éthanolamine (A2E) et de l'extrait Bixilia® ou de Bixine (20 i_iM) ou de Norbixine (20 i_iM) après avoir été soumises à une illumination. La Figure 2 illustre l'activité photoprotectrice des extraits successifs des 5 graines d'Urucum (C = cyclohexane; D = dichlorométhane; M = méthanol) sur les cellules de l'EPR mises en présence d'A2E et soumises à une illumination. La Figure 3a illustre les concentrations plasmatiques après ingestion de Bixine (à gauche) ou de Norbixine (à droite) chez la souris C57BI/6. La Figure 3b illustre l'analyse pharmacocinétique de la Norbixine chez la 10 souris C57BI/6. La Figure 4 illustre l'analyse par HPLC-MS/MS de la Norbixine dans les yeux de souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) après injection intrapéritonéale (10 mg/kg). (3 : la Norbixine injectée, 1 et 2 : mono-glucuronides de ce composé). La Figure 5 illustre la cinétique de l'accumulation de l'A2E dans l'oeil de souris 15 double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) en fonction de l'âge, en comparaison avec des souris normales. La Figure 6 illustre les électrorétinogrammes (Ondes A à gauche et Ondes B à droite) de souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) ayant reçu des injections intravitréennes unilatérales de Norbixine (afin d'obtenir une concentration finale dans 20 le vitré de 130 pM), placées pendant 24 h à l'obscurité puis exposées à la lumière bleue (4000 lux, 1 h). Les électrorétinogrammes sont réalisés 7 jours après l'illumination. La Figure 7 illustre le nombre de couches de noyaux de photorécepteurs en fonction de la distance à partir du nerf optique dans les yeux de souris traitées 25 comme dans la figure 6. La Figure 8A illustre le protocole expérimental de la création du modèle « rat blue light ». La Figure 8B illustre les résultats des électrorétinogrammes des rats auxquels il a été injecté de la norbixine (100 mg/kg, 4 injections par rat d'une solution à 50 mM 3035589 8 dans du NaCI 9 %., 4 rats/série) en utilisant le PBN (phényl-N-tert-butylnitrone, 50 mg/kg, solution à 20 mg/mL dans du NaCI 9 %.) comme témoin positif. Les électrorétinogrammes sont réalisés 7 jours après le traitement. La Figure 9A illustre le nombre de couches de noyaux de photorécepteurs en 5 fonction de la distance à partir du nerf optique dans les yeux de rats après injections intrapéritonéales d'alpha-phényl-N-tert-butylnitrone (PBN) ou de Norbixine et illumination avec une lumière bleue. Les analyses histologiques sont réalisées 7 jours après le traitement. La Figure 9B illustre l'aire sous chaque courbe de la Figure 9A. 10 La Figure 10 illustre la quantité d'A2E accumulée dans l'oeil de souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) ayant ingéré ou non de la nourriture complémentée en norbixine pendant 3 mois. La Figure 11 illustre les électrorétinogrammes de souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) ayant été nourries ou non avec de la nourriture contenant 0,3 mg/g de 15 norbixine pure pendant 3 mois. La Figure 12 illustre la relation entre l'amplitude de l'électrorétinogramme (onde A) et la quantité d'A2E accumulée dans les yeux des souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-). La Figure 13 illustre les résultats de l'analyse par HPLC en phase inverse de 20 la norbixine purifiée à partir de l'extrait de Bixa orellana (l'identification des isomères a été réalisée selon Scotter et al., 1998 et Polar-Cabrera et al., 2010). Description détaillée d'exemples de réalisation de l'invention A la différence de la plupart des études précédemment publiées, les modèles utilisés dans la présente invention (à la fois in vitro et in vivo) mettent en avant le rôle 25 de la N-rétinyl-N-rétinylidène éthanolamine (A2E) et de sa phototoxicité, et sont à ce titre, plus proches de la pathologie humaine. Les tests utilisés in vitro s'apparentent dans leur principe à ceux utilisés avec d'autres substances naturelles sur une lignée de cellules d'EPR humain (cellules ARPE-19 - Young et al., 2005). Protocoles et Résultats 3035589 9 1- Préparation de la Bixine et de la Norbixine La Bixine pure à 95% en poids est préparée à partir d'un produit commercial (Annatto B) provenant d'une extraction organique des graines d'Urucum et d'une concentration en Bixine supérieure à 85% en poids. La purification est réalisée par 5 recristallisations successives. La Norbixine pure à 95% en poids est obtenue après hydrolyse alcaline de la Bixine purifiée (5% KOH, 60°C, 3 heures). La solutbn obtenue est acidifiée par de l'acide chlorhydrique concentré et la Norbixine est récupérée par centrifugation. Le culot est lavé deux fois par de l'eau pour éliminer les sels, et le culot final est 10 lyophilisé. La pureté des composés est appréciée par spectrophotométrie UV-Vis et HPLC en phase inverse : les composés contiennent essentiellement les isomères 9'- cis (concentration supérieure à 90% en poids, figure 13). 2- Tests in vitro 15 Un test in vitro destiné à étudier l'effet photoprotecteur de diverses substances naturelles sur les cellules de l'EPR mises en présence d'A2E a été utilisé. L'effet photoprotecteur des molécules est évalué dans un modèle cellulaire de phototoxicité induite par traitement par A2E suivi d'une illumination en lumière bleue. Par rayonnements bleus on entend les rayonnements correspondant à la bande bleue du 20 spectre de la lumière visible, soit de longueur d'onde comprise entre 435 et 490 nm. Ce modèle utilise des cultures primaires d'EPR de porc adulte. La survie cellulaire est quantifiée grâce à un test de viabilité cellulaire. On ajoute à -48h les composés à tester (en solution 5 mM dans le DMSO) pour obtenir des concentrations finales de 1 à 20 i_iM) puis à -19h de l'A2E (concentration finale 30 25 i_iM) et on irradie les cellules (temps Oh). On mesure 24h après la survie des cellules. L'acquisition des images ainsi que leur traitement sont réalisés à l'aide d'un microscope à fluorescence piloté par le logiciel Metamorph et d'un programme de quantification dédié. Les expériences sont réalisées sur des microplaques de 96 puits en quadruplicate et l'expérience est reproduite au minimum quatre fois. Les 30 résultats sont exprimés sous forme d'un ratio représentant le nombre de cellules vivantes dans les puits traités par les molécules à tester, divisé par le nombre de cellules vivantes dans les puits contrôles (traités par le milieu de dilution sans A2E). 3035589 10 Ce test a permis précédemment de mettre en évidence la très bonne activité photoprotectrice d'un extrait éthanolique de graines d'Annatto (Bixilia® - voir Fontaine et al., 2011). Dans le travail précédent, si l'activité de l'extrait d'Annatto avait été démontrée, la nature de la (ou des) substance(s) photoprotectrice(s) n'avait 5 pas été identifiée, et le composant principal de cet extrait (la bixine) s'était avéré inefficace aux concentrations de 0,1 11M, 1 i_iM et 1011M. Un travail complémentaire a donc été entrepris afin d'identifier le (ou les) composé(s) actif(s). a. La Bixine est responsable d'une grande partie de l'activité 10 photoprotectrice de Bixilia® La Figure 1 montre que la Bixine et la Norbixine (20 i_iM) protègent efficacement les cellules de l'EPR contre la phototoxicité induite en présence d'A2E par rapport au contrôle avec A2E. Un extrait brut de graines d'Urucum dilué pour apporter 20 i_iM de bixine possède une activité photoprotectrice élevée. L'utilisation 15 de bixine très pure et à la concentration de 20 i_iM a permis de montrer que ce composant possédait en fait une activité photoprotectrice importante (Figure 1) et que celle-ci expliquait une part importante de l'activité de l'extrait Bixilia® dilué de façon à apporter la même quantité de bixine. Une activité comparable a également été trouvée pour la Norbixine, qui représente le métabolite circulant majeur de la 20 Bixine (Lévy et al., 1997). Ces résultats sont en accord avec l'activité photoprotectrice de ces mêmes composés, précédemment démontrée pour la photoprotection de la peau humaine (Veillet et al., 2009). b. Bixilie contient d'autres composés photoprotecteurs 25 Bixilia® contient d'autres composés photoprotecteurs de nature phénolique, dont la présence pourrait expliquer l'activité supérieure de l'extrait brut par rapport à la bixine seule (pour une même concentration en bixine). Une extraction séquentielle de l'enveloppe des graines d'Urucum a été réalisée avec successivement du cyclohexane, du dichlorométhane et du méthanol (1 L de chaque / 100 g de graines). 30 Après extraction au cyclohexane on obtient une fraction avec une concentration en Bixine de 0,65 11M, après extraction au dichlorométhane on obtient une fraction qui possède une concentration en Bixine de 1485 11M, et après extraction au méthanol une fraction qui possède une concentration en Bixine de 4511M. 3 0 3 5 5 8 9 11 On reproduit alors le test in vitro précédent. Selon la Figure 2 la fraction dichlorométhane, qui contient 97 % de la Bixine, est très active, mais on note également que l'extrait méthanolique riche en composés phénoliques possède une activité significative (C = cyclohexane; D = 5 dichlorométhane; M = méthanol). 3- Biodisponibilité de la Bixine et de la Norbixine Des études de la biodisponibilité de la Bixine et de la Norbixine ont été réalisées chez des souris C57BI/6. Les composés ont été administrés par voie orale 10 (50 mg/kg). Des prélèvements sanguins ont été effectués après 0,25, 0,5, 1, 3, 6, 8 et 24 h et analysés par HPLC-DAD (UV 460 nm)-MS/MS. Le tableau 1 et la Figure 3a dévoilent que la Bixine ingérée est rapidement transformée en Norbixine et que les deux composés circulent à des concentrations comparables, on ne les détecte plus après 8 heures. On note par ailleurs que la Norbixine ingérée est nettement plus 15 biodisponible que la Bixine. Tableau 1 : Ingestion de bixine (50 mg/kg) Ingestion de norbixine (50 mg/kg) Tmax (h) Cmax AUC 0-24h Tmax (h) Cmax AUC (ng/m L) (ng.h/mL) (ng/m L) (ng.h/mL) Bixine 0,5 833 1666 Norbixine 0,5 12400 41609 Norbixine 0,5 649 1343 La comparaison des analyses plasmatiques (figure 3b) après injection 20 intrapéritonéale (5 mg/kg) et administration orale (50 mg/kg) montre que la biodisponibilité de la Norbixine est de 55%. La présence de Norbixine dans les yeux a été recherchée chez des souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) 3 heures après injection intrapéritonéale de Norbixine (10 mg/kg). Les yeux de 6 animaux ont été disséqués et les échantillons ont été 25 extraits avec de l'acétonitrile, poolés puis analysés par HPLC-MS/MS (Figure 4), ce qui a permis de détecter spécifiquement la présence de la Norbixine dans l'EPR et la rétine (Tableau 2). 303 5 5 8 9 12 Tableau 2 : Echantillon Norbixine (ng/organe) EPR 5,15 Rétine 2,40 Cristallin < LOQ Humeur vitrée < LOQ Total 7,55 Selon la Figure 4, on note que, dans le plasma, mais aussi dans les yeux, la 5 Norbixine est également présente sous forme conjuguée : le composé initial donne en effet deux mono-glucuronides qui sont élués avant le composé original et présentent une fragmentation similaire, sans doute due à la décomposition des glucuronides dans la source du spectromètre de masse. La glucuronidation avait également été décrite dans le cas de la crocétine (Asai et al., 2005). 10 On peut également observer une isomérisation cis-trans de la Norbixine, dont l'importance varie selon la durée des expérimentations. C'est un phénomène classique chez les composés (poly)-insaturés, qui correspond à des isomérisations cis-trans d'une ou plusieurs doubles liaisons et a été observé chez l'homme dans le cas de la norbixine par Lévy et al. (1997). Le composé ici utilisé est purifié à partir de 15 composés commerciaux (Annatto B) ; il contient très majoritairement la forme 9-cis et de très petites quantités de la forme all-trans et d'autres formes cis ou di-cis (figure 13). 4- Activité photoprotectrice par injection intravitréenne chez la souris 20 Un modèle de souris génétiquement modifiée développé par Maeda et al. (2008) a été utilisé pour tester l'activité photoprotectrice de la Norbixine. Dans ce modèle de souris, deux gènes impliqués dans le cycle du pigment visuel (ABCA4 et RDH8) sont inactivés, ce qui se traduit par une accumulation précoce d'A2E dans les yeux (Figure 5). Ce modèle animal s'apparente de ce fait à la pathologie humaine, 25 avec bien sûr ses limites, liées aux différences de l'organisation des yeux entre rongeurs et primates. Des souris âgées de 7 semaines ont donc été utilisées pour réaliser des injections intravitréennes unilatérales de Norbixine (afin d'obtenir une concentration 3035589 13 finale dans le vitré de 130 pM). Après 24 h à l'obscurité, les souris ont été soumises à une exposition à la lumière bleue (4000 lux, 1 h). Les électrorétinogrammes réalisés 7 jours plus tard ont montré un effet protecteur de la Norbixine, dont la présence a permis de maintenir une activité électrique significative comme exposé 5 par la Figure 6. Une étude histologique de l'épaisseur de la couche de noyaux externes met en évidence l'effet protecteur de la Norbixine sur les photorécepteurs (figure 7). Il faut noter que la Norbixine a pratiquement été éliminée 24 h après l'injection intravitréenne et n'est donc que très faiblement présente dans les yeux au moment Io de l'illumination. 5- Activité photoprotectrice par injection systémique (intrapéritonéale) chez le rat Le modèle "rat blue light" consiste à soumettre les animaux à une lumière 15 bleue intense pendant 6 heures afin de provoquer des dommages oculaires que l'on apprécie 7 jours plus tard par la réalisation d'électrorétinogrammes puis par des analyses histologiques. On utilise un composé antioxydant, le PBN (phényl-N-tertbutylnitrone) comme témoin positif (Ranchon et al., 2001; Tomita et al., 2005). Les composés dont on cherche à déterminer l'activité photoprotectrice sont injectés (par 20 voie intrapéritonéale) avant et pendant la phase d'illumination. Celle-ci est réalisée avec des tubes néon Philips blue (4,2 mW/cm2) pendant 6 heures. Le protocole expérimental est présenté en Figure 8A. Trois séries d'expérimentations ont été réalisées avec la Norbixine (100 mg/kg, 4 injections par rat d'une solution à 50 mM dans du NaCI 9 %., 4 rats/série) en 25 utilisant le PBN (phényl-N-tert-butylnitrone, 50 mg/kg, solution à 20 mg/mL dans du NaCI 9 %.) comme témoin positif. L'analyse des électrorétinogrammes (ondes A et B) est présentée en Figure 8B. Ce test a permis de mettre en évidence une efficacité significative de la Norbixine, qui est proche de celle du PBN. Les données histologiques 30 correspondantes (figure 9A et 9B) confirment l'action photoprotectrice de la Norbixine sur la survie des photorécepteurs. 6- Activité photoprotectrice par administration orale chronique chez la souris 3035589 14 Un aliment contenant 0,3 mg/g de Norbixine pure a été préparé et donné à des souris double KO (ABCA4-/-, RDH8-/-) pendant une période de 3 mois. Les animaux ayant reçu la nourriture supplémentée avec de la Norbixine montrent une réduction de l'accumulation d'A2E dans les yeux (figure 10) : la 5 différence entre les deux groupes est très significative (p = 0.0109). La nourriture complémentée en Norbixine présente également un effet positif sur l'amplitude de l'électrorétinogramme (ERG) (figure 11). Ces analyses ont également montré qu'il existe une relation inverse entre la quantité d'A2E accumulée dans les yeux et l'amplitude de l'ERG (figure 12), ce qui 10 confirme le rôle de l'accumulation d'A2E dans le développement de la pathologie (Wu et al., 2014), et l'intérêt de molécules dont l'administration réduit l'accumulation de l'A2E dans les yeux. Cependant, on n'observe pas d'accumulation significative de Norbixine dans les yeux au cours de ce traitement chronique, ce qui amène à conclure que, à la 15 différence des xanthophylles, cette molécule serait dégradée. La non-accumulation de cette substance active peut être considérée comme un avantage, car l'accumulation de certains caroténoïdes (ex. canthaxanthine) est susceptible de conduire à la formation de dépôts au sein des cellules de l'EPR (Goralczyk et al., 1997). Elle est également indicatrice d'une action modificatrice de l'activité des 20 cellules de l'EPR plutôt que d'un rôle de filtre ou d'antioxydant, comme postulé pour la lutéine et la zéaxanthine. Ce résultat rejoint celui noté lors des injections intravitréennes (à savoir la disparition de la Norbixine au moment de l'illumination). La dose journalière permettant de ralentir significativement la dégénérescence rétinienne chez la souris après administration orale est de 48 mg/kg de poids 25 corporel. La transposition à l'homme conduit à proposer une dose journalière active de 4,8 mg/kg. On sait par ailleurs que la dose journalière admissible ou DJA (en anglais : Acceptable Daily Intake ou ADI) de la Norbixine est au maximum de 0,6 mg/kg/jour de poids corporel (JECFA/67/FC). Cette valeur a été établie sur la base d'une dose sans effet ou DES (en anglais : No Observable Adverse Effect Level ou 30 NOAEL) chez le rat de 69 mg/kg/jour de poids corporel, équivalent à une dose journalière sans effet chez l'homme de 11 mg/kg, sachant qu'aucune toxicité n'a été observée jusqu'à 20 mg/kg/jour (Hagiwara et al., 2003). La posologie proposée est comprise entre 0,48 mg/kg/jour et 48 mg/kg/jour, idéalement entre 0,6 mg/kg/jour et 20 mg/kg/jour. 303 5 5 8 9 15 Références AREDS Report No. 8. 2001. A randomized, placebo-controlled, clinical trial of highdose supplementation with vitamins C and E, beta carotene, and zinc for age-related 5 macular degeneration and vision loss. Arch Ophthalmol, 119: 1417-1436. Asai A, Nakano T, Takahashi M, Nagao A. 2005. 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