Des exemples de principes actifs pharmaceutiques qui peuvent être présents dans une composition selon l'invention incluent, sans limitation, des anti-inflammatoires, des antibiotiques, des agents antipyrétiques, des agents antipruritiques et/ou antihistaminiques, des vitamines, etc. A moins qu'ils ne soient définis d'une autre manière, tous les termes techniques et scientifiques utilisés ici ont la même signification que celle couramment comprise par un spécialiste ordinaire du domaine auquel appartient cette invention. De même, toutes les publications, demandes de brevet, tous les brevets et toutes autres références mentionnés ici sont incorporés par référence. 17 Les exemples suivants et les figures sont présentés pour illustrer certains modes de réalisation des procédures décrites ci-dessus et ne doivent en aucun cas être considérés comme une limite à la portée de l'invention. Exemples Les exemples suivants décrivent certains modes de réalisation de la présente invention. Cependant, il est entendu que les exemples ne sont présentés qu'à titre illustratif seulement et ne limitent en aucun cas la portée de l'invention. Matériel et Méthodes 1. Obtention des plantes de Ludwigia peploides Les plantes ont été prélevées d'un herbier de Ludwigia peploides se trouvant dans un bras mort de la Basse Durance à proximité de la ville de Pertuis dans le Vaucluse (France). Trois prélèvements ont été effectués, mi-juin, mi-juillet et mi-août, par arrachage manuel ou section au niveau de la tige de la plante, sans dispersion dans l'écosystème de morceaux de plante. Les plantes ont ensuite immédiatement été transportées dans des glacières étanches. Les différentes parties des plantes (racines, tiges, feuilles et fleurs) ont été séparées et mises à sécher à l'obscurité, à l'abri de la poussière, et à température ambiante. Une fois sèche, la biomasse a été broyée et réduite en poudre fine, à l'aide d'un broyeur de laboratoire (Labortechnik IKA®). Les poudres des différentes parties de la plante ont été stockées à 4°C, dans des récipients en verre, à l'abri de la lumière et de l'humidité. 2. Préparation d'extraits de Ludwigia peploides Pour chaque type d'organe (racines, tiges, feuilles et fleurs), 10 mL de DMSO ont été ajoutés à 2 g de poudre végétale, le tout étant pilé dans un mortier en verre ou en céramique et le mélange obtenu agité vigoureusement au Vortex® pendant 10 minutes. Une centrifugation à 15000 rpm a ensuite été effectuée pendant 30 minutes à 20°C. Le surnageant (c'est-à-dire l'extrait) a été recueilli et conservé à 4°C à l'abri de la lumière. 18 . Souches bactériennes Les 14 souches bactériennes utilisées ont été fournies par le laboratoire d'Ecologie microbienne de l'IMEP et sont présentées dans le tableau ci-dessous. Tableau 1. Souches bactériennes utilisées. Bactérie Nom de la Gram+ Notes souche ou Gram- Escherichia coli IP 105242 Gram - bactérie du tube digestif des mammifères IP 6221 IP 6224 Enterobacter aerogenes CIP 60.86 Gram- bactérie commensale du tube digestif et responsable d'infection urinaire et d'infections nosocomiales Enterococcus faecalis IUP U1 Gram+ bactérie commensale du tube digestif, responsable d'infections nosocomiales, multirésistante aux antibiotiques communément utilisés, notamment les pénicillines semi-synthétiques Klebsiella oxytoca LMD7265 col Gram- bactérie responsable d'infections urinaires, pulmonaires et de septicémie, résistante aux pénicillines bl Lactobacillus lactis IUT Gram+ bactérie utilisée dans les productions de produits laitiers Providencia rettgeri CIP 69.24 Gram- bactérie responsable des gastro-entérites humaines et du choléra des poulets Pseudomonas aeruginosa IP100720 Gram- pathogène opportuniste nosocomial, responsable d'infections pulmonaires, urinaires, des brûlures et plaies, sensible aux carboxipénicillines mais résistant à toutes les autres pénicillines Pseudomonas putida IP521917 Gram- bactérie utilisée pour la biorestauration des sols contaminés par des hydrocarbures comme les composés issus du naphtalène Listeria grayi Gram+ bactérie responsable d'infection d'origine alimentaire, peut atteindre le système nerveux central et foetoplacentaire Salmonella typhymurium Gram- agent infectieux du tube digestif Staphylococcus aureus Gram+ Fait partie de la flore cutanée, responsable d'infections nosocomiales, d'infections cutanées et de maladies mortelles telles que l'endocardite, la pneumonie et la méningite, résistant à de nombreux antibiotiques Bacillus megaterium Gram+ bactérie du sol, produit la pénicillineamydase pour la production de la pénicilline 19 . Tests d'activité antibactérienne L'activité antibactérienne de chaque extrait a été testée sur milieu gélosé selon la méthode de diffusion des disques, la méthode des antibiogrammes (Janssen et al., Pharmaceutische Weekblad (Scientific Edition), 1987, 9: 193-197; Bayero et al., J. Pure Appl. Sci., 2008, 2: 149-153; Loubaki et al., Science et Médecine, Revue, CAME-Série A, 1999, 01:67). Le milieu utilisé est celui de Mueller Hinton Agar, qui est non-sélectif et adéquat pour tester la sensibilité aux antibiotiques. Ensemencement par inondation. Les suspensions bactériennes ont été obtenues par mise en suspension de colonies isolées des souches, dans de l'eau distillée stérile. L'absorbance de chaque suspension bactérienne a été ajustée à une densité optique (DO) égale à 0,5 à 450 nm. Des dilutions ont ensuite été réalisées pour chaque souche bactérienne afin d'obtenir un tapis microbien adéquat pour l'étude : les suspensions des souches S. typhymurium, S. aureus, K oxytoca, L. grayi, L. lactis, E. aerogenes, et E. faecalis ont été diluées au 1/100, les suspensions des 3 souches E. coli, et les souches P. rettgeri, P. aeruginosa, P. putida, et B. megaterium ont été diluées au 1/1000. Les boîtes ont été ensemencées par inondation. 2 mL de suspension bactérienne ont été nécessaires pour recouvrir la surface de chacune des boîtes. Le surplus a été récupéré par aspiration. Après ensemencement, les boîtes ont été incubées pendant 15 minutes à 37°C pour une fixation rapide des bactéries sur le milieu gélosé. Application des disques. Les disques utilisés sont des disques stériles de papier filtre Whatman, de 9 mm de diamètre. Dans chaque boîte, deux disques imprégnés de 30 iaL d'extrait et un disque témoin imprégné de 30 iaL de DMSO ont été soigneusement déposés sur la gélose, à l'aide d'une pince stérile. Les boîtes ont été incubées à 37°C pendant 24 heures. L'apparition d'un halo autour des disques traduit l'inhibition de la croissance bactérienne. Le diamètre des halos est (mesuré en millimètres) est proportionnel à l'activité antimicrobienne. Comparaison de l'activité antibactérienne des extraits de Ludwigia 30 peploides avec l'activité antibactérienne d'une Pénicilline. L'antibiotique qui a 20 été utilisé est l'oxacilline Bristopene, une pénicilline de type M, résistante aux pénicillinases (enzymes bactériennes inactivant la pénicilline). L'oxacilline inhibe l'une des enzymes permettant la synthèse du peptidoglycane qui est nécessaire à la production de la paroi bactérienne. Elle est utilisée, par voie injectable, dans le traitement des infections à staphylocoques. Les tests de comparaison ont été menés comme suit. Une souche Gram+ (Staphylococcus aureus) et une souche Gram- (E. Coli 1052) ont été choisies pour mener ces tests. Une gamme de 10 concentrations allant de la solution initiale de 200 mg/m1 jusqu'à une concentration de 0,25 mg/m1 a été réalisée : 200 pL de la solution mère ont été dilués dans 200 !IL d'eau physiologique, pour obtenir une solution de concentration 100 mg/ml. En procédant de la même manière, chaque solution a été obtenue par dilution au demi de la solution précédente jusqu'à obtenir la solution de 0,25 mg/ml. Les 10 concentrations ont été testées sur les deux souches en utilisant le principe de diffusion des disques, décrit plus haut. La comparaison des deux effets a été faite par simple comparaison des diamètres d'inhibition obtenus. 5. Tests statistiques L'analyse de variance ANOVA (ANalysis Of VAriance en anglais), qui est un test statistique permettant de vérifier la significativité des variabilités des résultats obtenus, a été utilisée pour déterminer la significativité des différences entre les effets des extraits des plantes des mois de juin, juillet et août. Ces tests ont été réalisés à l'aide du logiciel R (logiciel d'analyses de données). Légendes des Figures Figure 1 est un graphe montrant la variabilité des effets, sur différentes souches bactériennes, des extraits de racines des Ludwigia peploides en fonction du mois de prélèvement des plantes (juin, juillet ou août). Les degrés de signification sont indiqués comme suit : `***' = 0,001; `"' = 0,01; = 0,05 ; `.' = 0,1, à a=5% de risque). 21 Figure 2 est un graphe montrant la variabilité des effets, sur différentes souches bactériennes, des extraits de tiges des Ludwigia peploides en fonction du mois de prélèvement des plantes (juin, juillet ou août). Les degrés de signification sont indiqués comme suit : `***' = 0,001; `"' = 0,01; = 0,05 ; = 0,1, à a=5% de risque). Figure 3 est un graphe montrant la variabilité des effets, sur différentes souches bactériennes, des extraits de feuilles des Ludwigia peploides en fonction du mois de prélèvement des plantes (juin, juillet ou août). Les degrés de signification sont indiqués comme suit : `***' = 0,001; `"' = 0,01; `*' = 0,05 ; `.' = 0,1, à a=5% de risque). Figure 4 est un graphe montrant la variabilité des effets, sur différentes souches bactériennes, des extraits de fleurs des Ludwigia peploides en fonction du mois de prélèvement des plantes (juin, juillet ou août). Les degrés de signification sont indiqués comme suit : `***' = 0,001; `"' = 0,01; = 0,05 ; = 0,1, à a=5% de risque). Résultats 1. Activité antibactérienne des extraits de Ludwigia peploides Les activités antibactériennes sont exprimées en moyenne de diamètre, en mm, des zones d'inhibition, calculées à partir de 3 diamètres déterminés pour chaque halo, soit 6 diamètres au total. Pour chaque souche, 12 antibiogrammes ont été réalisés au total (pour tester les quatre extraits correspondant aux racines, tiges, feuilles et fleurs pour chacun des 3 mois de prélèvement de plantes : juin, juillet et août).