INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
SEQ ID NO:2 ADNc AChE1 Anophèles gambiae SEQ ID NO: 3 Protéine AChE1 Anophèles gambiae SEQ ID NO: 4 ADNc AChE1 Anophèles gambiae (souche KISUMU) SEQ ID NO: 5 Protéine AChE1 Anopheles gambiae (souche KISUMU) SEQ ID NO: 6 ADNc AChE1 Culex pipiens souche S-LAB (séquence complète) SEQ ID NO: 7 Protéine AChE1 Culex pipiens souche S-LAB (séquence complète) SEQ ID NO: 8 fragment peptidique K AChE1 Culex pipiens SEQ ID NO: 9 fragment peptidique K AChE1 Aedes aegypti SEQ ID NO: 10 fragment peptidique K AChE1 Aedes albopictus SEQ ID N0:11 fragment peptidique K peptidique AChE1 Anophèles darlingi SEQ ID NO: 12 fragment peptidique K AChE1 An. sundaicus SEQ ID NO: 13 fragment peptidique K AChE1 An. minimus SEQ ID NO: 14 fragment peptidique K AChE1 An. moucheti SEQ ID NO: 15 fragment peptidique K AChE1 An. arabiensis SEQ ID NO: 16 fragment peptidique K AChE1 An. funestus SEQ ID NO: 17 fragment peptidique K AChE1 An. pseudopunctipennis SEQ ID NO: 18 fragment peptidique K AChE1 An. sacharovi SEQ ID NO: 19 fragment peptidique K AChE1 An. stephensi SEQ ID NO: 20 fragment peptidique K AChE1 An, albimanus SEQ ID NO: 21 fragment peptidique K AChE1 An. nili SEQ ID NO: 22 gène ace-1 An. gambiae SEQ ID NO: 23 gène ace-1 An. gambiae KISUMU SEQ ID NO: 24 fragment nucléotidique K AChE1 C. pipiens (souche S-LAB) SEQ ID NO: 25 fragment nucléotidique K AChE1 C. pipiens (souche SR) SEQ ID NO: 26 fragment nucléotidique K AChE1 Aedes aegypti SEQ ID NO: 27 fragment nucléotidique K AChE1 Aedes albopictus SEQ ID NO: 28 fragment nucléotidique K AChE1 Anophèles darlingi SEQ ID NO: 29 fragment nucléotidique K AChE1 An. sundaicus SEQ ID NO: 30 fragment nucléotidique K AChE1 An. minimus SEQ ID NO: 31 fragment nucléotidique K AChE1 An. moucheti SEQ ID NO: 32 fragment nucléotidique K AChE1 An. arabiensis SEQ ID NO: 33 fragment nucléotidique K AChE1 An. funestus SEQ ID NO: 34 fragment nucléotidique K AChE1 An. pseudopunctipennis SEQ ID NO: 35 fragment nucléotidique K AChE1 An. sacharovi SEQ ID NO: 36 fragment nucléotidique K AChE1 An. stephensi SEQ ID NO: 37 fragment nucléotidique K AChE1 An. albimanus SEQ ID NO: 38 fragment nucléotidique K AChE1 An. nili SEQ ID NO: 39 amorce PkdirAGSG SEQ ID NO: 40 amorce PkrevAGSG SEQ ID NO: 41 amorce PbdirAGSG SEQ ID NO: 42 amorce PbrevAGSG SEQ ID NO: 43 amorce culex-bdir1
SEQ ID NO: 44 amorce culex-krev1 SEQ ID NO: 45 amorce AG1-Adir SEQ ID NO: 46 amorce AG1-Arev SEQ ID NO: 47 amorce AG1-Bdir SEQ ID NO: 48 amorce AG1-Brev SEQ ID NO: 49 amorce AG1-Cdir SEQ ID NO: 50 amorce AG1-Crev SEQ ID NO: 51 Protéine AChE1 Ciona intestinalis SEQ ID NO: 52 Protéine AChE1 Ciona savignyi SEQ ID NO: 53 Protéine AChE2 Anopheles gambiae SEQ ID NO: 54 Amorce culex-5'dir SEQ ID NO :55 Amorce culex-3'dir SEQ ID NO: 56 ADNc AChE1 C. pipiens souche SR (séquence complète) SEQ ID NO: 57 Protéine AChE1 C. pipiens souche SR (séquence complète) SEQ ID NO: 58 Amorce Ex3dir SEQ ID NO: 59 Amorce Ex3rev SEQ ID NO: 60 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Espro -P*-R**** SEQ ID NO: 61 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Pro-R-Q**-S SEQ ID NO: 62 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche S-LAB-Q-S***** SEQ ID NO: 63 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Padova-P-R SEQ ID NO: 64 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Praias-P-R SEQ ID NO: 65 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Supercar-Q-R SEQ ID NO: 66 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche BrugesA-P-S SEQ ID NO: 67 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche BQ-Q-R SEQ ID NO: 68 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche DJI-Q-R SEQ ID NO: 69 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Harare-Q-R SEQ ID NO: 70 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Martinique-Q-R SEQ ID NO: 71 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Barriol-P-R SEQ ID NO: 72 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Bleuet-P-S SEQ ID NO: 73 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche BrugesB-P-S SEQ ID NO: 74 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Heteren-P-S SEQ ID NO: 75 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Ling-Q-S SEQ ID NO: 76 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Mao-Q-S SEQ ID NO: 77 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche TemR-Q-S SEQ ID NO: 78 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Uppsala-T***-S SEQ ID NO: 79 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Trans-Q-S SEQ ID NO: 80 Fragment nucléotidique troisième exon codant souche BEQ-Q-S SEQ ID NO: 81 Fragment nucléotidique troisième exon codant souche BSQ-Q-S SEQ ID NO: 82 Fragment nucléotidique troisième exon codant souche Brazza-Q-S SEQ ID NO: 83 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Bouaké-Q-R SEQ ID NO: 84 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Thai-Q-S SEQ ID NO: 85 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Madurai-Q-S SEQ ID NO: 86 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Recife-Q-R SEQ ID NO: 87 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Brésil Q-S SEQ ID NO: 88 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Moorea Q-S SEQ ID NO: 89 Fragment nucléotidique du troisième exon codant souche Killcare P-S SEQ ID NO: 90 (1) SEQ ID NO: 91 (1) SEQ ID NO: 92 (1) SEQ ID NO: 93 (1)
SEQ ID NO: 94 (1) SEQ ID NO: 95 (1) SEQ ID NO: 96 (1) SEQ ID NO: 97 (1) SEQ ID NO: 98 (1) SEQ ID NO: 99 (1) SEQ ID NO: 100 (1) SEO ID NO: 101 (1) SEQ ID NO: 102 (1) SEQ ID NO: 103 (1) SEQ ID NO: 104 (1) SEQ ID NO: 105 (1) SEQ ID NO: 106 (1) SEQ ID NO: 107 (1) SEQ ID NO: 108 (1) SEQ ID NO: 109 (1) SEQ ID NO: 110 (1) SEQ ID NO: 111 (1) SEQ ID NO: 112 (1) SEQ ID NO: 113 (1) SEQ ID NO: 114 (1) SEQ ID NO: 115 (1) SEQ ID NO: 116 (1) SEQ ID N0:117 (1) SEQ ID N0:118 (1) SEQ ID NO: 119 (1) SEQ ID N0:120 gène ace-1 An. gambiae souche YAO SEQ ID NO: 121 ADNc AChE1 An. gambiae souche YAO (séquence complète) SEQ ID NO: 122 protéine AChE1 An. gambiae souche YAO (séquence complète) SEQ ID NO: 123 amorce Ex3 AG dir SEQ ID NO: 124 amorce Ex3 AG rev SEQ ID NO: 125 ADNc AChE1 An. gambiae souche KISUMU (séquence complète) SEQ ID NO: 126 protéine AChE1 An. gambiae souche KISUMU (séquence complète) SEQ ID NO: 127 gène ace-1 d'An. gambiae (incluant 2 exons 5'non-codants) * P = Culexpipiens pipiens (sous-espèce pipiens) ** Q = Culex pipiens quinquefasciatus (sous espèce quinquefasciatus) *** T = Culex torrentium **** R = résistant ***** S = sensible (1) fragments peptidiques du troisième exon codant correspondants aux fragments nucléotidiques SEQ ID N0:60 à 89 EXEMPLE 1 : et méthodes a) Souches et croisements Cinq souches de C. pipiens ont été utilisées : une souche standard sensible aux insecticides (Georghiou et al., 1966, Bull. Wld. Hlth Org., 35, 691-708), SA1, SA4 et EDIT qui possèdent une seule AChE sensible aux insecticides,
et SR qui est homozygote pour une AChE insensible aux insecticides (Berticat et al., Genet. Res., 2002,79, 41-47). Les souches possédant une AChE sensible et insensible sont dénommées respectivement S et R. b) Nomenclature des gènes ace et numérotation des séquencesd'acides aminés ace-1 représente le locus codant pour une AChE cholinergique responsable de la résistance aux organophosphorés et/ou aux carbamates chez C. pipiens (AChEl), précédemment dénommé Ace.l (Raymond et al., Genetica, 2001, 112/113, 287-296). ace-2 représente le second locus ace, qui n'est pas impliqué dans la résistance aux insecticides chez C. pipiens (précédemment dénommé Ace.2), dont la fonction est inconnue chez C. pipiens. L'unique gène ace présent dans Drosophila melanogaster, qui est homologue à ace-2, est donc dénommé de même.
Dans les analyses qui suivent, les positions des résidus d'acides aminés sont indiquées en référence à la séquence de l'AChE du poisson torpille [Torpedo californica; GENBANK P04058], selon la nomenclature recommandée par Massoulié et al., 1992, In Multidisciplinary approaches to cholinesterase functions, eds, Schafferman, A. & Velan, B. (Plenum Press New York), p 285-288]. c) Analyse de la transmission du gène ace-1 Les femelles étant indiquées en premier, des croisements FI (S X R) et des croisements en retour (FIX S-LAB et S-LAB X FI) ont été obtenus par croisement en masse d'adultes. Quelques larves issues des croisements en retour ont été traitées avec une dose de carbamate (propoxur, 4mg/L) qui tue 100 % des larves sensibles. La liaison entre ace-1 et la résistance au propoxur a été étudiée par RFLP chez les larves survivantes, à partir d'un produit PCR de 320 pb permettant d'identifier les allèles S et R. Les expériences ont été réalisées de façon indépendante, avec S = SA1, S = SA4 et S = EDIT. d) Analyse des séquences et assemblage des gènes Toutes les analyses de séquences ont été effectuées à partir des séquences brutes d'Anophèles gambiae disponibles sur le serveur INFOBIOGEN (http://www.infobiogen.fr) et des outils disponibles sur le site (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/blast). Les séquences génomiques codant une AChE ont été identifiées à l'aide des logiciels TBLASTN et BLAST (Altschul et al., J.
Biol. Mol., 1990,215, 403-410). Les séquences génomiques identifiées ont été assem-
blées à l'aide du logiciel ABI Prism Auto-Assembler (v2.1, PERKIN ELMER). Les séquences ont été vérifiées et corrigées à l'aide du logiciel Ensembl Trace Server (http: // trace.ensembl.org/). Deux concaténations de respectivement 5195 et 6975 paires de bases, codant respectivement pour AChEl et AChE2 ont été assemblées à partir de respectivement 64 et 74 séquences indépendantes (redondance moyenne de 10,5 et 6,5). Les exons et les séquences protéiques ont été identifiés à l'aide d'une combinaison entre les logiciels FGENESH (http://www.sanger.uk) et BLASTX (http://www.ncbi.nlm.nih.gov). Les séquences génomiques d'AChE d'ascidies ont été assemblées à partir de séquences brutes déposées dans les bases de données du NCBI (Ciona savignyi) et du Doe Joint Institute (Ciona intestinalis, http ://www. j gi .doe. gov/prosrams/ciona/ciona mainae.html). Les recherches dans les bases de données de Drosophila ont été effectuées à l'aide de Flybase (http://www.fruitfly.org/). e) Comparaisons de séquences Les séquences des protéines AChEl et AChE2 d'Anopheles gambiae déduites des séquences génomiques et les séquences peptidiques déduites de fragments PCR de C. pipiens et A. aegypti ont été alignées avec celles des AChE connues, à l'aide du logiciel ClustalW, en utilisant une matrice BLOSUM et des paramètres par défaut (Thompson et al., N. A.R., 1994,22, 4673-4680).
Un arbre phylogénétique a été construit en utilisant l'algorithme du plus proche voisin (neighbour-joining algorithm) de la version DDBJ de Clustal W (http://hypernig.nig.ac.jp/homology/ex clustalw-e. shtml). L'analyse de type Bootstrap (1000 comptages et 111 valeurs d'entrée) a été utilisée pour évaluer les degrés de confiance pour la topologie de l'arbre. La construction des arbres a été réalisée à l'aide du logiciel Treeview (vl.6.6). f) Numéros d'accession Les numéros des séquences (numéros d'accession dans les bases de données ou les numéros d'identification dans la liste de séquences) ayant servi à l'analyse génétique sont les suivants.
- Craniata : Homo sapiens : NP~00046 ; Bos taurus : P23795 ; Felix catus: 06763 ; Oryctolagus cuniculus : Q29499 ; Rattus norvégiens : P36136 ; Mus musculus : P21836 ; Gallus gallus : CAC37792 ; Danio reno : Q9DDE3 ; Electropho-
rus electricus : 6730113 ; Torpedo marmorata : P07692 ; Torpedo californica: P04058 ; Bungarus fasciatus : Q92035 ; Myxine glutinosa : Q92081.
28N 1524-1553 GAAWYELTPAETTVRLRAYMNTPGLPVAQD 30 SEQ ID NO: 24 29N 1552-1583 QDHLEFWEGVFTGLTHIDAHFLSQTKQSGENL 32 SEQ ID NO: 25 * les résidus alanine correspondant à la substitution d'un résidu cysteme de la séquence de la poiyproteine au VHO sont indiqués en gras. b) deuxième série de peptides Tous les peptides de la première série se liant à au moins 6 molécules HLA II et certains peptides se liant à au moins 5 molécules HLA II ont été découpés en peptides de 15acides aminés afin d'identifier plus précisément les zones d'interaction (peptides 8N. 9N, ION, 15N, 16N, 18N, 19N, 23N. 27N, 28N, 29N, 1 C, 2C et 5C). Seul le peptide 26 n'a pas été étudié en raison de la difficulté à le synthétiser. Le peptide 6C qui est très chevauchant avec le peptide 5C et qui en combinaison avec ce dernier se lie à 6 molécules HLA II a également été étudié.
La séquence de l'ensemble de ces peptides est présentée dans le Tableau IV et la figure 1.
Tableau IV : Séquences de la deuxième série de peptides
nom Séquence numéro
8N 1007-1037 GRE1LLGPADCMVSKGWRLL.APtTAYA TR SEQ ID NO: 7 8 1007-1021 -GREILLGPADGMVSK SEQ ID'O: 26 SN 101 I-1025 LLGPADGMVSKGWRL SEQ ID NO: 27
8N 1015-1029 ADGMVSKGWRLLAPI SEQ ID NO : 288N 1019-1033 VSKGWRLLAPITAYA SEQ ID NO : 298N 1020-1034 SKGWRLLAPITAYAQ SEQ ID NO: 30
8N 1024-1037 RLLAPITAYAQQTR SEQ ID NO: 31
15N 1174-1195 GHAVGIFRAAVCTR~GVAKAVDF SEQ ID NO: 14
15N 1174-1188 GHAVGIFRAAVCTRG SEQ ID NO : 32
15N 1178-1192 GIFR.4AVCTRGV.4KA SEQ ID NO: 33 15N 1181-1195 RAAVCTRGVAKAVDF SEQ ID NO: 34 28N 1524-1553 GAAWYELTPAETTVRLRAYMNTPGLPVAQD SEQ ID NO: 24 28N 1524-1538 GAAWYELTPAETTVR SEQ 1DN0:35
28N 1528-1542 YELTPAETTVRLRAY SEQ ID NO: 36 28N 1529-1543 ELTPAETTVRLRAYM SEQ ID NO: 37 28N 1534-1548 ETTVRLRAYMNTPGL SEQ ID NO: 38 28N 1538-1552 RLRAYMNTPGLPVAQ SEQ ID NO: 39 28N 1540-1553 RAYMNTPGLPVAQD SEQ ID NO: 40
18- 1246-1275 AQGYKVLVLNPSVAATLGFGAYIV1SKAHGID SEQ ID NO: 17
18N 1246-1260 AQGYKVLVLNPSVAA SEQ ID NO: 41 18N 1250-1264 KVLVLNPSVAATLGF SEQ ID NO: 42 18N 1255-1269 NPSVAATLGFGAYMS SEQ ID NO : 43
18N 1261-1275 TLGFGAYMSKAHGiD~~~~~~~~~~~~~~~SEQ ID NO: 44
1C 19-47 PQDVKFPGGGQIVGGVYLLPRRGPRLGVR SEQ ID NO : 2C 31-57 VGGVYLLPRRGPRLGVRATRKTSERSQ SEQ ID NO : 21C 19-33 PQDVKFPGGGQIVGG SEQ ID NO : 45 IC 27-41 GGGQIVGGVYLLPRRG SEQ ID NO : 46 2C 31-45 GGVYLLPRRGPRLGV SEQ ID NO : 2C 43-57 RLGVRATRKTSERSQ SEQ ID NO: 48
5C 127-149 T.4GFADLMGYIPLVG.4PLGGA.4R SEQ ID NO: 5 6C 148-173 ARALAHGVRVLEDGVNYATGNLPGAS SEQ ID NO: 6 5C 127-141 TAGFADLMGYtPLVG SEQ ID NO: 49
De préférence, le procédé de décoloration selon l'invention consiste à mélanger immédiatement avant emploi une pâte anhydre telle que décrite selon la présente invention avec une composition aqueuse de peroxyde d'hydrogène telle que décrite selon
la présente invention, à appliquer la composition de décoloration prête à l'emploi ainsi obtenue sur la zone des fibres kératiniques humaines (sèches ou humides) à décolorer, et à la laisser agir pendant un temps de pause suffisant pour obtenir la décoloration recherchée, variant de préférence, de 1 à 60 minutes environ, et plus préférentiellement de 10 à 45 minutes environ, à éliminer le mélange décolorant par rinçage à l'eau, suivi d'un lavage avec un shampooing, puis éventuellement d'un séchage.
La présente invention a aussi pour objet un dispositif à plusieurs compartiments, ou "kit", pour la décoloration des fibres kératiniques humaines et plus particulièrement des cheveux, caractérisé par le fait qu'il comporte au moins deux compartiments dont l'un contient une pâte anhydre telle que décrite ci-dessus, et l'autre une composition aqueuse de peroxyde d'hydrogène .
EXEMPLES DE PATES ANHYDRES DE DECOLORATION : On a préparé les 5 pâtes anhydres 1 à 5 suivantes pour la décoloration des cheveux (quantités exprimées en grammes de Matière Active) :
Exemples 1 2 Persulfate de Potassium.......................................... 30 35,8 Persulfate de Sodium............................................. 6 6 Disilicate de Sodium.......................................... 21,6 15 Chlorure d'ammonium............................................. 4,2 2,2 Métasilicate de sodium.......................................... 3 Sulfate d'ammonium .............................................. 2 EDTA (séquestrant)............................................... 0,2 0,2 Polymère amphiphile non-ionique à chaîne grasse: Ser-ad FX 1100 vendu par la Société Servo Delden...... 2 Polymère amphiphile anionique à chaîne grasse: copolymère réticulé d'acide acrylique et de méthacrylate d'alkyle en C10-30, (Carbopol ETD 2020 vendu par la Société Goodrich) 0,5 Polymère épaississant hydrosoluble: Primogel vendu par Avebe.................................. 2
Polymère épaississant hydrosoluble: 1 0,5 Gomme de guar non ionique non modifiée (Guargel D/15 vendu par la société Goodrich)........................
Gomme de xanthane (Keltrol BT vendu par la société 1 1 Nutrasweet Kelco................................................
Tensio-actif anionique: Cétostéaryl sulfate de Sodium.................................. 4 2 Tensio-actif anionique: Lauryl sulfate de sodium 2 Stéarate de sodium............................................... 2 Stéarate de magnésium......................................... 2 Oxyde de titane..................................................... 1 1 Liquide inerte organique selon l'invention : Huile minérale...................................................... 1 1 Liquide inerte organique selon l'invention : Palmitate d'isopropyle vendu sous la dénomination Isopropyl Palmitate par la société Cognis................... 25 23,3 Silice pyrogénée à caractère hydrophile, (Aerosil# 300 vendu par la société Degussa Hûls)...... 1 0,5 Exemples 3 4 5 Persulfate de Potassium.......................................... 30 35,8 35,8 Persulfate de Sodium............................................. 6 6 6 Disilicate de Sodium.......................................... 21,6 15 15 Chlorure d'ammonium............................................. 4,2 4,2 2,2 Métasilicate de sodium.......................................... 3 3 Sulfate d'ammonium.............................................. 2 EDTA (séquestrant)............................................... 0,2 0,2 0,2 Polymère amphiphile non-ionique à chaîne grasse: Ser-ad FX 1100 vendu par la Société Servo Delden...... 2 2 Polymère amphiphile anionique à chaîne grasse: copolymère réticulé d'acide acrylique et de méthacrylate d'alkyle en C10-30, (Carbopol ETD 2020 vendu par la Société Goodrich) 0,5
Polymère épaississant hydrosoluble: Primogel vendu par Avebe.................................. 2 2 Polymère épaississant hydrosoluble: 1 0,5 Gomme de guar non ionique non modifiée (Guargel D/15 vendu par la société Goodrich)........................
Tensio-actif anionique: Cétostéaryl sulfate de Sodium.................................. 4 2 Tensio-actif anionique: Lauryl sulfate de sodium 4 2 Stéarate de sodium............................................... 2 Stéarate de magnésium......................................... 2 2 Oxyde de titane..................................................... 1 1 Liquide inerte organique selon l'invention : Huile minérale...................................................... 1 1 Liquide inerte organique selon l'invention : Palmitate d'isopropyle vendu sous la dénominaton Isopropyl Palmitate par la société Cognis................... 25 23,3 23,3 Silice pyrogénée à caractère hydrophobe, (Aerosil# R972 vendu par la société Degussa Hûls)... 0,5 0,3 0,3 Les pâtes 1 à 5 ci-dessus, qui sont dépourvues de cires, se sont révélées stables dans le temps sur le plan physico-chimique.
En outre, par mélange avec une composition aqueuse de peroxyde d'hydrogène à 9%, elles ont conduit à des décolorations puissantes et homogènes en ne laissant pas les cheveux rêches.
(2) Les polymères comportant des motifs dérivant : a) d'au moins un monomère choisi parmi les acrylamides ou les méthacrylamides substitués sur l'azote par un radical alkyle, b) d'au moins un comonomère acide contenant un ou plusieurs groupements carboxyliques réactifs, et c) d'au moins un comonomère basique tel que des esters à substituants amine primaire, secondaire, tertiaire et quaternaire des acides
acrylique et méthacrylique et le produit de quaternisation du méthacrylate de diméthylaminoéthyle avec le sulfate de diméthyle ou diéthyle.
Les acrylamides ou méthacrylamides N-substitués plus particulièrement préférés selon l'invention sont les groupements dont les radicaux alkyle contiennent de 2 à 6 atomes de carbone et plus particulièrement le N- éthylacrylamide, le N-tertiobutyl-acrylamide, ainsi que les méthacrylamides correspondants.
(3) Les polyaminoamides réticulés et alcoylés partiellement ou totalement dérivant de polyaminoamides de formule générale : dans laquelle R19 représente un radical divalent dérivé d'un acide dicarboxylique saturé, d'un acide aliphatique mono ou dicarboxylique à double liaison éthylénique, d'un ester d'un alcanol inférieur ayant 1 à 6 atomes de carbone de ces acides ou d'un radical dérivant de l'addition de l'un quelconque desdits acides avec une amine bis primaire ou bis
secondaire, et Z désigne un radical d'une polyalkylène-polyamine bisprimaire, mono ou bis-secondaire et de préférence représente : a) dans les proportions de 60 à 100 moles %, le radical où x=2 et p=2 ou 3, ou bien x=3 et p=2 ce radical dérivant de la diéthylène triamine, de la triéthylène tétraamine ou de la dipropylène triamine ; b) dans les proportions de 0 à 40 moles % le radical (XI) ci-dessus, dans lequel x=2 et p=l et qui dérive de l'éthylènediamine, ou le radical dérivant de la pipérazine : c) dans les proportions de 0 à 20 moles % le radical -NH-(CH2)6NH- dérivant de l'hexaméthylènediamine, ces polyaminoamines étant réticulées par addition d'un agent réticulant bifonctionnel choisi parmi les épihalohydrines, les diépoxydes, les dianhydrides, les dérivés bis insaturés, au moyen de 0,025 à 0,35 mole d'agent réticulant par groupement amine du polyaminoamide et alcoylés par action d'acide acrylique, d'acide chloracétique ou d'une alcane sultone ou de leurs sels.
Les acides carboxyliques saturés sont choisis de préférence parmi les acides ayant 6 à 10 atomes de carbone tels que l'acide adipique, triméthyl- 2,2,4-adipique et triméthyl-2,4,4-adipique, téréphtalique, les acides à double liaison éthylénique comme par exemple les acides acrylique, méthacrylique, itaconique.
(5) les polymères dérivés du chitosane décrits notamment dans les brevets français N -2137684 ou US-3879376, comportant des motifs monomères répondant aux formules (XIII), (XIV), (XV) suivantes réunies dans leur chaîne:
le motif (XIII) étant présent dans des proportions comprises entre 0 et 30%, le motif (XIV) dans des proportions comprises entre 5 et 50% et le motif (XV) dans des proportions comprises entre 30 et 90%, étant entendu que dans ce motif (XV), R25 représente un radical de formule : dans laquelle q désigne zéro ou 1 ; si q=0, R26, R27 et R28, identiques ou différents, représentent chacun un atome d'hydrogène, un reste méthyle, hydroxyle, acétoxy ou amino, un reste monoalcoylamine ou un reste dialcoylamine éventuellement interrompus par un ou plusieurs atomes d'azote et/ou éventuellement substitués par un ou plusieurs groupes amine, hydroxyle, carboxyle, alcoylthio, sulfonique, un reste alcoylthio dont le groupe alcoyle porte un reste amino, l'un au moins des radicaux R26, R27 et R28 étant dans ce cas un atome d'hydrogène ; ou si q=l, R26, R27 et R28 représentent chacun un atome d'hydrogène, ainsi que les sels formés par ces composés avec des bases ou des acides.
Des polymères de ce type plus particulièrement préférés comportent de 0 à 20% en poids de motifs (XIII), de 40 à 50% en poids de motifs (XIV), et
(iii) Tensioactif (s) non ionique(s) :
Les agents tensioactifs non-ioniques sont, eux aussi, des composés bien connus en soi (voir notamment à cet égard "Handbook of Surfactants" par M.R.