INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Les agents colorants peuvent être choisis parmi les structures conjuguées linéaires ou aromatiques (hétérocycliques ou non). Parmi celles-ci, on peut citer les colorants benzéniques nitrés, les colorants aromatiques, les colorants amino-benzéniques, les colorants azoïques, les colorants anthraquinoniques, les diamines aromatiques, les aminophénols, les phénols et naphtols, les porphyrines, tétraphénylporphyrines, métalloporphyrines, les phtalocyanines, les caroténoïdes, les flavonoïdes, les molécules fluorescentes (fluoresceine, rhodamine, coumarine ...) .
Les agents moussants peuvent être choisis généralement parmi les tensioactifs au caractère moussant, les polymères cationiques et les polymères anioniques aux propriétés moussantes ; ou encore, il peut s' agir d' un agent spécifique tel que celui décrit dans FR-2 751 221 appartenant à l'Oréal.
Caractéristiques du terminal 10 L'application fonctionne donc avec tout type de terminal 10 équipé de la norme radio IEEE 802.11b (par exemple un téléphone UMTS équipé d'une puce WLAN). La bande de fréquences utilisées est située entre 2400 et 2483,5 MHz.
Caractéristiques de la borne 11 La borne 11 présente les caractéristiques techniques suivantes : - la bande de fréquences utilisée est située entre 2400 et 2483,5 MHz ; - la puissance (les valeurs de puissance données ci-dessous sont des valeurs de PIRE puissance isotrope rayonnée qui est égale au produit de la puissance d'émission par le gain de l'antenne à l'émission) de la borne 11 est définie égale à-35 dBm au lieu de la valeur définie dans la norme 802.11b de +20dBm; - la sensibilité de la borne 11 est conforme à sa valeur normalisée (-80 dBm) ; - la borne 11 est équipée d'un module de blindage 12 constitué de cinq plaques métalliques, comme illustré sur la figure 2.
Déroulement de la transaction L'affichage indique : Bonjour - placez votre terminal devant la borne .
Le terminal écoute dans la bande de fréquence 2400-2483,5 MHz.
L'utilisateur 30 qui souhaite entrer au spectacle place son terminal 10 dans la zone de portée 13 de la borne 11. Comme illustré dans une vue du dessus sur la figure 4, l'utilisateur 30 muni de son terminal 10, qu'il tient à la main ou qu'il garde rangé dans sa poche, ou sa sacoche... se trouve dans une file d'attente, matérialisée ici entre deux parois 31 et 32.
Il est suivi d'un utilisateur 30' muni de son terminal 10', qui attend son tour et va venir le remplacer ultérieurement (flèche de déplacement 33).
Le terminal 10 détecte la présence de la borne 11 et lui envoie son identifiant.
Il y a alors affichage : Terminal détecté. Authentification en cours .
La borne 11 communique l'identité du terminal 10 au réseau auquel elle est reliée (base de données de l'opérateur ou du gestionnaire gérant la borne) et demande si le terminal 10 est connu.
Le réseau répond soit : a) Terminal inconnu sur notre réseau .
Il y a émission par la borne d'un signal sonore désagréable , et l'affichage : désolé, mais vous ne disposez pas d'un billet valable pour ce spectacle. Transaction terminée . b) Terminal connu sur notre réseau .
La borne 11 interroge le terminal 10 en lui demandant d'indiquer s'il dispose d'un billet d'entrée pour le spectacle.
Le terminal 10 répond soit : a) Non je ne dispose pas de billet d'entrée .
Il y a alors émission par la borne d'un signal sonore désagréable , et l'affichage : désolé mais vous ne disposez pas d'un billet valable pour ce spectacle. Transaction terminée . b) Oui je dispose d'un billet d'entrée pour le spectacle .
La borne 11 demande au réseau et au terminal 10 d'encaisser le billet en faisant passer son état à consommé ou en faisant décroître d'un certain montant (une unité, un prix...) le crédit d'entrées.
1H-NMR (DMSO-d6) 8 1.67 (s, 4H) ; 3. 11 (s, 2H) ; (m, 2H) ; 3. 55 (m, 2H) ; (s, 2H) ; 6. 95-7.10 (m, 4H) ; 7. 20- 7. 31 (m, 1H) ; (m, 2H) ; 7. 70-7.80 (m, 2H) ; 8. 45 (s, 1H) ESI-MS m/z 407 [M+H]+ Exemple 382 : Préparé à partir du composé 1 et de 4-aminophenylacetic acid selon la méthode 0.
1H-NMR (DMSO-d6) 8 1. 68 (s, 4H) ; 2. 90 (s, 2H) ; (m, 4H) ; (m, 2H) ; (s, 2H) ; (s, 2H) ; 6. 50 (d, 2H) ; (d, 2H) ; 7. 80 (m, 1H) ESI-MS m/z 344 [M+H]+ Exemple 383 : Préparé à partir du composé 1 et de 4-(4- aminophenyl) butyric acid selon la méthode 0.
1H-NMR (DMSO-d,) # 1.68-1.70 (m, 6H) ; (m, 2H) ; 2. 40 (m, 2H) ; 3. 00 (s, 2H) ; (m, 2H) ; (m, 2H) ; 4. 68 (s, 2H) ; 4. 80 (s, 2H) ; 6. 50 (d, 2H) ; 6. 80 (d, 2H) ; (t, 1H) ESI-MS m/z 372 [M+H]+ Exemple 384 : Préparé à partir du composé 1 et de 9-fluorenone-2- carboxylic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 417 [M+H]+ Exemple 385 : Préparé à partir du composé 1 et de 3-methylindene-2- carboxylate selon la méthode 0.
1H-NMR (DMSO-d6) 8 1.64 (s, 4H) ; (s, 3H) ; (s, 2H) ; 3. 30 (m, 2H) ; (m, 4H) ; (s, 2H) ; 7. 28-7.48 (m, 4H) ; (t, 1H) ESI-MS m/z 367 [M+H]+ Exemple 386 : Préparé à partir du composé 1 et de 4-(3-methyl-5-oxo-2- pyrazolin-1-yl)benzoic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 411 [M+H]+ Exemple 387 : Préparé à partir du composé 1 et d'alpha-phenyl-o-toluic acid selon la méthode 0.
1H-NMR (DMSO-d,) 8 1.64 (s, 4H) ; 2.95 (s, 2H) ; 3.50 (t, 2H) ; 4. 02-4.40 (m, 4H) ; (s, 2H) ; (m, 9H) ; 8. 35 (t, 1H)
ESI-MS m/z 405 [M+H]+ Exemple 388 : Préparé à partir du composé 1 et de 3-chloro-4- methoxybenzoic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 379 [M+H]+ Exemple 389 : Préparé à partir du composé 1 et de fusaric acid selon la méthode V.
ESI-MS m/z 372 [M+H]+ Exemple 390 : Préparé à partir du composé 1 et de 5-(4-chlorophenyl)-2- furoic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 415 [M+H]+ Exemple 391 : Préparé à partir du composé 1 et de (2-naphthoxy)acetic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 395 [M+H]+ Exemple 392 : Préparé à partir du composé 1 et de 4-benzoylbenzoic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 419 [M+H]+ Exemple 393 : Préparé à partir du composé 1 et de 5-hydroxyindole-2- carboxylic acid selon la méthode 0.
ESI-MS m/z 370 [M+H]+ 4. 69) Composés préparés par la méthode P.
Exemple 394 : Préparé à partir de furfurylamine selon la méthode P.
1H-NMR (DMSO-d6) 8 1.63 (s, 3H) ; 3. 05 (m, 3H) ; 4. 22 (d, 2H) ; 4. 69 (d , 2H) ; 5. 03 (t, 1H) ; 6. 22 (s, 1H) ; 6. 37 (s, 1H) ; 7.56 (s, 1H) ; 8.42 (t, 1H) ; 13.01 (m, 1H)
Le milieu de culture est ensuite ensemencé avec les bifidobactéries à raison de 6 / (v/v) d'un concentré congelé de la souche de Bifidobacterium breve CNCM 1-2219 contenant 5.1010 UFC de bifidobactéries par ml de concentré congelé. La population initiale en bactéries est de 3.108 UFC de bifidobactéries par ml de milieu de culture. Les bifidobactéries sont cultivées en anaérobiose, à une température comprise entre 37 et 40 C. Pendant la culture, le pH du milieu de culture est régulé à 6,5 au moyen d'une solution d'ammoniaque diluée au quart. Le temps de culture est de 15 heures, et la population de Bifidobacteriuz en fin de culture est environ de z UFC par ml de milieu de culture.
Pour ce faire, 25 l de rétentat sont injectés à un débit de 0,6 ml par minute sur colonne de gel Superdex 200 vendu par la société Amersham Biosciences et présentant un seuil d'exclusion de 600 kDa, couplée à un détecteur UV à barrette de diodes (200-300 nm). L'intégration du signal est réalisée à l'aide du logiciel KromaSystem 2000 vendu par la société Kontron Instruments. Deux fractions sont ainsi séparées : une fraction exclue du gel est éluée après 12,5 minutes à partir de l'injection et une fraction filtrée est éluée de 16 à 32 minutes à partir de l'injection.
Les figures 2 et 3 représentent les chromatogrammes obtenus après analyse d'un rétentat issu d'une culture réalisée comme décrite précédemment et d'un rétentat issu d'une culture réalisée dans les mêmes conditions mais avec une souche différente de bifidobactéries (B. brève CFPL C7).
La figure 2 représente l'absorbance (en millivolts) en fonction du temps écoulé (en minutes) depuis l'injection sur la colonne des rétentats correspondants aux deux cultures réalisées respectivement avec la souche B. breve CNCM 1-2219 et avec la souche B. breve CFPL C7. Ces résultats montrent que, contrairement au rétentat de la culture réalisée avec la souche de B. brève CNCM I- 2219, le chromatogramme du rétentat de la culture réalisée avec la souche de B. breve CFPL C7 ne présente aucun pic correspondant à la fraction exclue et à la fraction filtrée du rétentat. En revanche, la figure 3 qui représente un agrandissement de la figure 2, montrent qu'il est nécessaire d'agrandir considérablement l'échelle d'absorbance de la figure 2 pour faire apparaître la fraction exclue et la fraction filtrée du rétentat correspondant à la culture réalisée avec la souche B. breve CFPL C7. Ces résultats démontrent ainsi que la souche B. breve CFPL C7 ne présente pas le potentiel de production de principes actifs que représente la souche B. brève CNCM 1-2219.
2) Préparation de la fraction exclue du rétentat Le rétentat concentré,préalablement repris dans un tampon TrisNaCl pH 8, est soumis à une chromatographie préparative. La séparation est réalisée par chromatographie sur colonne de gel Superdex 200 vendue par la société Amersham Biosciences de 50 mm de diamètre et 100 cm de hauteur, alimentée à un débit de 5 ml par minute et présentant un seuil d'exclusion de 600 kDa. Les fractions sont collectées par 10 ml et leur absorbance est mesurée à 280 nanomètres.
EXEMPLE 2: ANALYSE DE LA COMPOSITION GLUCIDIQUE ET PROTEIQUE DE LA PARTIE ACTIVE (FRACTION EXCLUE) PREPAREE A PARTIR D'UNE CULTURE DE BIFIDOBACTERIUM 1) Analyse de la composition glucidique de la partie active La poudre lyophilisée de fraction exclue telle que préparée ci-dessus à l'exemple 1 (10 mg) est reprise par de l'hydrazine anhydre pure (200-300 microlitres). Le mélange est incubé une nuit à 1 10 C, séché sous flux d'azote et repris dans 1 ml d'eau. La solution est ensuite fractionnée par perméation de gel sur colonne Fractogel TSK, vendue sous la référence HW40 par la société Merck.et l'élution est réalisée en eau. La présence de sucres dans les différentes fractions recueillies est recherchée par la méthode à l'orcinol et par chromatographie sur couche mince. Les résultats obtenus (non représentés) montrent que la majorité des sucres est dans la fraction non retenue sur le gel (>10 kDa) et migre peu après chromatographie sur couche mince. La partie glucidique de la fraction exclue constitue donc un polysaccharide de masse molaire supérieure à 10 kDa. La partie glucidique de la fraction exclue représente environ 15à 20 % en masse de celle-ci.
Deux échantillons de la fraction exclue (Echantillons ] et 2 CNCM 1-2219 : respectivement El et E2), provenant de deux essais différents réalisés selon l'exemple 1, sont analysés.
A titre de comparaison, les mêmes analyses ont été réalisées sur un échantillon où la souche Bifidobaclerium breve CNCM 1-2219 a été remplacée par la souche Bifidobacterium breve CFPL C7 (Echantillon C7) cultivée dans les mêmes conditions, ainsi que sur un échantillon où la souche Bifidobacterium breve CNCM I- 2219 a été cultivée sur un milieu lactose non conforme à l'Invention (Echantillon milieu lactose : ML) de composition suivante : - 60 g/1 de lactose, - 2 g/1 d'extrait de levure, - 0,3 g/1 de chlorhydrate de cystéine.
polyalkylène-polyamine bis-primaire, mono ou bis-secondaire et représente de préférence : a) dans les proportions de 60 à 100 % en moles, le groupe où x=2 et p=2 ou 3, ou bien x=3 et p=2 ce groupe dérivant de la diéthylènetriamine, de la triéthylène-tétraamine ou de la dipropylène-triamine ; b) dans les proportions de 0 à 40 % en moles, le groupe (III) ci-dessus, dans lequel x=2 et p=l et qui dérive de l'éthylènediamine, ou le groupe dérivant de la pipérazine c) dans les proportions de 0 à 20 % e.n moles, le groupe-NH- (CHz) 6-NH- dérivant de l'hexaméthylènediamine, ces polyaminoamines étant réticulées par addition d'un agent réticulant bifonctionnel choisi parmi les épihalohydrines, les diépoxydes, les dianhydrides, les dérivés bis insaturés, au moyen de 0,025 à 0,35 mole d'agent réticulant par groupement amine du polyaminoamide et alcoylés par action d'acide acrylique, d'acide chloracétique ou d'une alcane-sultone ou de leurs sels.
(4) les polymères comportant des motifs zwittérioniques de formule : dans laquelle R11 désigne un groupement insaturé polymérisable tel qu'un groupement acrylate', méthacrylate, acrylamide ou méthacrylamide, y et z représentent chacun un nombre entier de 1 à 3, R12 et R13 représentent un atome d'hydrogène, un groupement méthyle, éthyle ou propyle, R14 et Ri5 représentent un atome d'hydrogène ou un groupe alkyle de telle façon que la somme des atomes de carbone dans R14 et R15 ne dépasse pas 10.
(5) les polymères dérivés du chitosane comportant des motifs monomères répondant aux formules suivantes: le motif (V) étant présent dans des proportions comprises entre 0 et 30 %, le motif (VI) dans des proportions comprises entre 5 et 50% et le motif (VII) dans des proportions comprises entre 30 et 90%, étant entendu que dans ce motif F, Ri6 représente un groupe de formule: dans laquelle si q=0, R17, R18 et R19, identiques ou différents, représentent chacun un atome d'hydrogène,
dans laquelle R20 représente un atome d'hydrogène, un groupe CH30, CH3CH20, phényle, R21 désigne l'hydrogène ou un groupe alkyle inférieur tel que méthyle, éthyle, R22 désigne l'hydrogène ou un groupe alkyle inférieur tel que méthyle, éthyle, R23 désigne un groupe alkyle inférieur tel que méthyle, éthyle ou un groupe répondant à la formule: -R24-N (R22) 2, R24 représentant un groupement -CH2-CH2-, -CH2-CH2-CH2-, -CHz-CH(CH3) R22 ayant les significations mentionnées ci-dessus, ainsi que les homologues supérieurs de ces groupes et contenant jusqu'à 6 atomes de carbone.
(8) Des polymères amphotères du type -D-X1-D-X1- choisis parmi: a) les polymères obtenus par action de l'acide chloracétique ou le chloracétate de sodium sur les composés comportant au moins un motif de formule: -D-X1-D-X1-D- (X) où D désigne un groupe et Xi désigne le symbole E ou E', E ou E', identiques ou différents, désignent un groupe bivalent qui est un groupe alkylène à chaîne droite ou ramifiée comportant jusqu'à 7 atomes de carbone dans la chaîne principale non substituée ou substituée par des groupements hydroxyle, et pouvant comporter en outre des atomes d'oxygène, d'azote, de soufre, 1 à 3 cycles aromatiques et/ou hétérocycliques ; les atomes d'oxygène, d'azote et de soufre étant présents sous
(9) Les copolymères alkyl(C1-C5)vinyléther/anhydride maléique modifié partiellement par semiamidification avec une N,N-dialkylaminoalkylamine telle que la N,N-diméthylaminopropyl-amine ou par semiestérification avec une N,N-dialcanolamine Ces
Les polymères anioniques généralement utilisés dans la présente invention sont des polymères
comportant des groupes dérivés d'acides carboxylique, sulfonique ou phosphorique, et présentant une masse moléculaire en poids comprise entre 500 et 5 000 000.
Les groupements carboxyliques sont apportés par des monomères monoacides ou diacides carboxyliques insaturés tels que ceux répondant à la formule : dans laquelle n est un nombre entier de 0 à 10, A désigne un groupement méthylène, éventuellement relié à l'atome de carbone du groupement insaturé ou au groupement méthylène voisin lorsque n est supérieur à 1, par l'intermédiaire d'un hétéroatome tel que oxygène ou soufre, R4 désigne un atome d'hydrogène, un groupement phényle ou benzyle, R5 désigne un atome d'hydrogène, un groupement alkyle inférieur ou carboxyle, R6 désigne un atome d'hydrogène, un groupement alkyle inférieur, un groupement -CH2-COOH, phényle ou benzyle.
Les polymères anioniques à groupements carboxyliques préférés selon l'invention sont : A) les homo- ou copolymères d'acide acrylique ou méthacrylique ou leurs sels, et en particulier les produits vendus sous les dénominations
VERSICOL# E ou K par la société ALLIED COLLOID, ULTRAHOLD# par la société BASF Les copolymères d'acide acrylique et d'acrylamide vendus sous la forme de leur sel de sodium sous les dénominations RETEN# 421,423 ou 425 par la Société HERCULES, les sels de sodium des acides polyhydroxycarboxyliques.
B) Les copolymères des acides acrylique ou méthacrylique avec un monomère monoéthylénique tel que l'éthylène, le styrène, les esters vinyliques, les esters d'acide acrylique ou méthacrylique, éventuellement greffés sur un polyalkylène-glycol tel que le polyéthylène-glycol, et éventuellement réticulés. De tels polymères sont décrits en particulier dans le brevet français 1 222 944 et la demande allemande n 2 330 956, les copolymères de ce type comportant dans leur chaîne un motif acrylamide éventuellement N-alkylé et/ou hydroxyalkylé tels que décrits notamment dans les demandes de brevets luxembourgeois 75370 et 75371 ou proposés sous la dénomination QUADRAMER# par la Société AMERICAN CYANAMID. On peut également citer les copolymères d'acide acrylique et de méthacrylate d'alkyle en C1-C4 et le copolymère d'acide méthacrylique et d'acrylate d'éthyle vendu sous la dénomination LUVIMER MAEX par la société BASF.
C) les copolymères dérivés d'acide crotonique tels que ceux comportant dans leur chaîne des motifs acétate ou propionate de vinyle, et éventuellement d'autres monomères tels que les ester allylique ou méthallylique, éther vinylique ou ester vinylique d'un acide carboxylique saturé, linéaire ou
ramifié, à longue chaîne hydrocarbonée, tels que ceux comportant au moins 5 atomes de carbone, ces polymères pouvant éventuellement être greffés et réticulés, ou encore un ester vinylique, allylique ou méthallylique d'un acide carboxylique a ou -cyclique. De tels polymères sont décrits entre autres dans les brevets français numéros 1 222 944,1 580 545,2 265 782,2 265 781,1 564 110 et 2 439 798. Des produits commerciaux entrant dans cette classe sont les résines 28-29-30, 26-13-14 et 28-13-10 vendues par la société NATIONAL STARCH.
D) Les polymères dérivés d'acides ou d'anhydrides maléique, fumarique, itaconique avec des esters vinyliques, des éthers vinyliques, des halogénures vinyliques, des dérivés phénylvinyliques, l'acide acrylique et ses esters ; ces polymères peuvent être estérifiés. De tels polymères sont décrits en particulier dans les brevets US 2 047 398,2 723 248,2 102 113, le brevet GB 839 805, et notamment ceux vendus sous les dénominations GANTREZ AN ou ES par la société ISP.
Des polymères entrant également dans cette classe sont les copolymères d'anhydrides maléique, citraconique, itaconique et d'un ester allylique ou méthallylique comportant éventuellement un groupement acrylamide, méthacrylamide, une a-oléfine, des esters acryliques ou méthacryliques, des acides acryliques ou méthacryliques ou la vinylpyrrolidone dans leur chaîne, les fonctions anhydrides sont monoestérifiées ou monoamidifiées. Ces polymères sont par exemple décrits
dans les brevets français 2 350 384 et 2 357 241 de la demanderesse.
Les polymères comprenant les groupements sulfoniques sont des polymères comportant des motifs vinylsulfonique, styrène-sulfonique, naphtalènesulfonique ou acrylamido-alkylsulfonique.
Ces polymères peuvent être notamment choisis parmi : # les sels de l'acide polyvinylsulfonique ayant une masse moléculaire comprise entre environ 1 000 et 100 000 ainsi que les copolymères avec un comonomère insaturé tel que les acides acrylique ou méthacrylique, et leurs esters, ainsi que l'acrylamide ou ses dérivés, les éthers vinyliques est la vinylpyrrolidone ; # les sels de l'acide polystyrène-sulfonique, les sels de sodium, ayant une masse moléculaire d'environ 500 000 et d'environ 100 000 vendus respectivement sous les dénominations Flexan 500 et Flexan 130 par National Starch. Ces composés sont décrits dans le brevet FR 2198719 ; # les sels d'acides polyacrylamide-sulfoniques tels que ceux mentionnés dans le brevet US 4 128 631, et plus particulièrement l'acide polyacrylamidoéthylpropane-sulfonique vendu sous la dénomination COSMEDIA POLYMER# HSP 1180 par Henkel.
(exemple 18) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -CF3 (en position 4), Ra est absent et Rb est absent (exemple 19) (exemple 19) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -COCH3 (en position 3), Ra est absent et Rb est absent (exemple 20) (exemple 20) Jy Dy 1 N,, M -1'y 1 v H (exemple 20) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -O-CO-NH-, Na représente un groupe CH2-, Nb représente un groupe -phényl, Ra est absent et Rb est absent (exemple 21) (exemple 21)
Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un atome de chlore (en position 4), Ra est absent et Rb est absent (exemple 22) (exemple 22) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -CH3 (en position 3), Ra est absent et Rb est absent (exemple 23) è," . z-1 0 (exemple 23) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -O-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -CH3 (en position 2), Ra est absent et Rb est absent (exemple 24) (exemple 24) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -CF3 (en position 2), Ra est absent et Rb est absent (exemple 25)
J- in "\ H \ (exemple 25) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -O-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -C2H5 (en position 4), Ra est absent et Rb est absent (exemple 2 (D ) b ) N\ v ^ O- /\ N' # ,4, ,o ,l, (exemple 26) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl-, Ra est absent et Rb représente un groupe -phényl (en position para) (exemple 27) jf, 1J:D 0 (exemple 27) Ta représente un groupe - (CH2)2-, Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -CF3 (en position 3), Ra est absent et Rb est absent (exemple 28) (exemple 28)
Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -O-CO-NH-, Na représente un groupe - CH(CH3)-, Nb représente un groupe -phényl, Ra est absent et Rb est absent (exemple 29) O (exemple 29) Ta représente un groupe - (CH2)2-, Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe-S- CH3 (en position 3), Ra est absent et Rb est absent (exemple 30) 0 (exemple 30) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -cyclohexyl, Ra est absent et Rb est absent (exemple 31) (exemple 31) Ta représente un groupe -(CH2)2-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na représente un groupe CH2-,Nb représente un groupe -1,3-benzodioxole, Ra est absent et Rb est absent (exemple 32)
(exemple 32) Ta représente un groupe -(CH2)3-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl-, Ra repésente un atome d'oxygène (en position para) et Rb représente un groupe phényl (exemple 33) (exemple 33) Ta représente un groupe -(CH2)3-' Tb est absent, Tc représente un groupe -0-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe - CH(CH3)2 (en position 4), Ra est absent et Rb est absent (exemple 34) 71 N 11 N \ O @ (exemple 34) Ta représente un groupe -(CH2)3-' Tb est absent, Tc représente un groupe -O-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un groupe -CF3 (en position 4), Ra est absent et Rb est absent (exemple 35) 35) N N \ NI F (exemple 35) Ta représente un groupe -(CH2)3-' Tb est absent, Tc représente un groupe -O-CO-NH-, Na est absent, Nb représente un groupe -phényl- substitué par un atome de