INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Le polypeptide (a) et le polypeptide (b) constitutifs d'un composé superimmunogène composite de l'invention sont dits physiquement liés l'un à l'autre car ils sont dans tous les cas inclus tous les deux dans une même structure physique, molécule ou particule (microparticle ou nanoparticule), au sein de laquelle ils sont peu distants l'un de l'autre. Du fait qu'ils sont physiquement liés l'un à l'autre dans le superimmunogène composite, le polypeptide (a) et le polypeptide (b) sont présentés conjointement aux mêmes cellules immunocompétentes, aussi bien les macrophages que les lymphocytes T ou B.
Par réaction immunitaire cellulaire , on entend une activation : - soit des lymphocytes T auxiliaires (Th) possédant un récepteur reconnaissant spécifiquement le polypeptide (a) ou le polypeptide (b) en association avec un antigène de Classe Il du Complexe majeur d'histocompatibilité (CMH) ; - soit des lymphocytes T cytotoxiques (CTL) possédant un récepteur à l'antigène reconnaissant spécifiquement le polypeptide (a) en association avec un antigène de Classe 1 du MHC, et éventuellement de cellules NK.
La réaction cellulaire pourra se mesurer in vitro chez la souris par la production de chimiokines (le tvttPla et le MlPlp) par les splénocytes et par la prolifération de ces splénocytes activés en présence de ces immunogènes, ou encore par l'augmentation de la production d'IFNy par ces cellules, illustrant l'activité T cytotoxique.
Par réaction immunitaire humorale , on entend la production d'anticorps spécifiquement à l'encontre du polypeptide (a) ou du polypeptide (b) constitutifs du superimmunogène composite.
Par structure antigénique pathogène cellulaire, microbienne ou articulaire , on entend : - soit une cellule cancéreuse exprimant sélectivement un antigène, qui peut être désigné antigène de tumeurs , et qui peut être tuée par une réaction immunitaire cellulaire, et préférentiellement par des cellules cytotoxiques (CTL) reconnaissant spécifiquement l'antigène porté sélectivement par cette cellule cancéreuse, ou qui peut être tuée par des cellules NK activées ; - soit une cellule infectée par un virus exprimant sélectivement un antigène viral, et qui peut être tuée par une réaction immunitaire cellulaire, et préférentiellement par des cellules cytotoxiques (CTL) reconnaissant spécifiquement l'antigène exprimé sélectivement par cette cellule infectée, ou qui peut être tuée par des cellules NK activées ; - soit une particule allergénique comprenant un antigène allergène qui peut être bloqué ou inactivé par un anticorps dirigé spécifiquement contre cet antigène allergène, ledit anticorps étant produit durant une réaction immunitaire humorale. Les particules allergéniques englobent les particules allergéniques vivantes, comme les pollens ou les parasites comme les acariens ou les Leishmania major, et les particules allergéniques inertes, comme les particules de poussière ou les poils de chat..
Les protéines à propriétés immunotoxiques anormalement libérées dans le stroma englobent : - les protéines à propriétés immunosuppressives, comme la protéine Tat de HIV1, la protéine E7 du papillomavirus, l'interféron alpha (IFNa), le TGFpou i'tLIO, ta protéine p53 sous sa forme circulante ou encore la cytokine apoptogène Fas ligand (FasL) ; - les protéines déviant la réaction immunitaire vers une action délétère, telle que le facteur cytokinique IL4 qui stimule la production d'anticorps d'isotype IgE, responsables notamment de la libération d'histamine par les mastocytes, pouvant entraîner une action délétère inflammatoire
forte, voire mortelle pour l'organisme, sous la forme d'un choc anaphylactique.
Les protéines à propriétés angiogéniques sont les protéines induisant la multiplication des cellules endothéliales, comme le facteur cytokinique VEGF. Dans le cas de tumeurs de cellules cancéreuses, la libération des protéines à propriétés angiogéniques, localement, dans le stroma environnant la tumeur, induit une prolifération des cellules endothéliales vasculaires lors d'un événement appelé néoangiogénène qui va permettre une vascularisation de la tumeur nécessaire à sa survie, notamment par l'apport des éléments nutritifs requis pour la viabilité et la multiplication des cellules cancéreuses constitutives de la tumeur.
Par immunité mucosale , on entend l'induction d'une réaction immunitaire humorale aboutissant à la production principalement d'anticorps d'isotype IgA produits par les lymphocytes B localisés au niveau des tissus épithéliaux, appelés anticorps IgA sécrétoires (s-lgA) et d'une réaction immunitaire cellulaire au sein des ganglions drainant les muqueuses (ganglions mésentériques pour les intestins, ganglions iliaques pour le vagin).
Par immunité systémique , on entend l'induction d'une réaction humorale aboutissant à la production principalement d'anticorps d'isotype IgG, qui circulent de manière systémique, notamment par la voie sérique et d'une réaction immunitaire cellulaire au sein des ganglions périphériques ou de la rate..
ANNEXE I ETAPE DE PROGRAMME - VERIFICATION D'INFORMATION DE SYSTEME 1 -- Description Unité Plage ' Information de système P! [ Longueur d'argument 2 ~~ ~ ~ ~ Réponse d' information de p!EVv[v] Id[d] f[f] In[n] 1 ysteme 'Identificateur d'Evolution EV Identifie EVOLUTION Numéro de version de v 1-6 chiffres (peut inclure un point microprogramme décimal !Date de version de d 1-15 caractères identifiant la date microprogramme de création du microprogramme Numéro d'identification f 6 chiffres d'usine |Numéro de synchronisation n 9 chiffres (utilisé par EVWin) Commentaire : Cet ordre peut être émis à n'importe quel moment.
ETAPE DE PROGRAMME - ORDRE DE PULSATION Description Unité Plage :Pulsation de maintien en PH 3 c-t ivi të ' longueur d'argument = 2 ! Réponse Commentaire . Cet ordre peut être émis à n'importe quel moment ETAPE DE PROGRAMME - DEMANDE D'INFORMATION (APPEL DECLENCHE PAR EVOLUTION) Description Unité Plage Demande d' information (appel P? , déclenché par Evolution) Longueur d'argument = 2 ,Réponse p? | ee 1 1 1 BBBnn | c [c] |d|i[i] ,Type de tâche t 0 = alarme 1 = transactions programmées 'Pointeur de transaction BBBnn nombre à 5 chiffres Va Leur de comptage de c 1 - capacité achetée (transaction Direction d 0 = en avant (de la plus ancienne à la plus récente) 1 = en arrière (de la plus récente à la plus ancienne) '110 d'Appel d'Alarme ou FID i[i] 1 - 20 caractères (s'il n'y a pas d'ID d'Appel d'Alarme) 5 Commentaire : Cet ordre est donné en réponse à un appel déclenché par Evolution. Si l'ID d'Appel d'Alarme n'est pas fixé ou si des Appels d'Alarme ne sont pas permis, FID sera retourné.
3. 000 ETAPE DE PROGRAMME - OUVERTURE DE SESSION EN MODE DE PROGRAMMATION
Ouverture de session PO)*[*]PPPPPP~~~~~~~~~~~~~~~~
Nombre de chiffres d'argument > 6 Astérisque(s) * *** (1 astérisque ou plus) Mot de passe pppppp 000000 - 999999 (6 chiffres) Réponse d'ouverture de session p00 ee n [n] L Nom associé au mot de passe n 1-20 caractères ~~~~~~~~~~ Niveau d'ouverture de session L 0 = échec de l'ouverture de session 1 = lecture seulement 2 = maintenance 3 = gestionnaire 4 = vendeur 5 = Sentex Commentaire : Des ouvertures de session se soldant par un échec contiendront "MOT DE PASSE INVALIDE" pour le nom [niveau = observation~seulement] 3.001 ETAPE DE PROGRAMME - REGLAGE D'HORLOGE
Réglage d'horloge p11YYYYMMDDhhmmw
Nombre de chiffres d'argument =11 chiffres Année YYYY 2000-2099 Mois MM 01 - 12 Jour DD 01 - nombre de jours dans ce mois Heure h 00 - 23 Minute m 00 - 59 Jour de la semaine w 1 = DIM 7 = SAM
Réponse p011eelYYYYMMDDhhmmwl [niveau = maintenance]
3. 001.1 ETAPE DE PROGRAMME - VERIFICATION D'HORLOGE
Description Unité Plage Vérification d'horloge P1
Réponse p01\eeIYYYYMMDDhhmmw!
Année YYYY 2000-2099 Mois MM 01 - 12 Jour DD 01 - 31 ,Heure h 00 - 23 1 Minute m 00 - 59 [jour de la semaine w 1 = DIM 7 = SAM [niveau = observation~seulement] 3. 002 ETAPE DE PROGRAMME - FIXATION DE ZONE DE TEMPS
Riz-- Description Unité Plage
appuyer sur le frein et l'afficheur 76 clignote pendant une durée prédéterminée au tableau de bord pour lui indiquer qu'il a fait une mauvaise manipulation. Le changement de rapport ne sera pas effectué par le calculateur 6.
Le moyen 75 de décollage du véhicule comporte aussi un opérateur 81 dont les bornes d'entrée reçoivent les informations précitées de situation de conduite, particulièrement les informations indiquées dans les variables d'état RapportEngagé et Evit, et qui exécute la fonction suivante : Si (RapportEngagé == "R") ET (Evit == EvitO) Alors TesterEtatFrein() ; Quand le test effectué par cet opérateur 81 est positif, une borne de sortie de l'opérateur 81 est activée et est présentée à une borne d'entrée B du second opérateur 79 qui exécute la fonction de test de freinage TesterEtatfrein() déjà décrite cidessus. Il en résulte que, dans le cas où le test effectué par l'opérateur 81 est positif, c'est l'appui sur le frein qui exécute la demande de changement de rapport. Selon le résultat du test TesterEtatFrein() effectué par le second opérateur 80, les mêmes opérations ChangerRapport() et AlarmeB() sont effectuées par le moyen de décollage et les mêmes affichages sont effectuées par le contrôleur 16 de tableau de bord sur l'afficheur 76. On note cependant que le second opérateur 80 tient simplement compte pour son résultat négatif, de l'opérateur 79,81 ou 82 qui a présenté seul une requête d'activation sur ses entrées A, B ou C.
Le moyen 75 de décollage du véhicule comporte aussi un opérateur 82 dont les bornes d'entrée reçoivent les informations précitées de situation de conduite, particulièrement les informations indiquées dans les variables d'état RapportEngagé et Evit, et qui exécute la fonction suivante : Si (RapportEngagé == "N") ET (Evit < Evit1 ) Alors TesterEtatFrein() ;
Quand le test effectué par cet opérateur 82 est positif, une borne de sortie de l'opérateur 82 est activée et est présentée à une borne d'entrée C du second opérateur 79 qui exécute la fonction de test de freinage TesterEtatfreinQ déjà décrite cidessus. Il en résulte que, dans le cas où le test effectué par l'opérateur 82 est positif, c'est l'appui sur le frein qui exécute la demande de changement de rapport. Les mêmes fonctions sont réalisées que celles effectuées en relation avec l'opérateur 79 ou l'opérateur 81 déjà décrits. On notera seulement que le moyen de décollage 70 teste ici la vitesse du véhicule Evit par rapport à une valeur de vitesse Evit1 qui est définie comme une vitesse de man#uvre.
Le moyen de décollage 70 comporte ensuite un module 83 qui est activé quand le sélecteur de mode est sur la position "Auto", c'est-à-dire quand le véhicule est en mode de transmission automatique et que la variable d'état Cmode vaut CmodeAuto lue sur le registre 30. Le module 83 comporte un premier organe de test 84 qui lit la variable d'état RapportEngagé et la variable d'état Evit lue sur le registre 35.
Le premier organe de test 84 comporte un opérateur qui exécute la fonction de test suivante : Si ( RapportEngagé == "N") ET ( Evit > Evit1)) Alors TestEtatFrein (); qui est semblable aux tests des opérateurs 79,81 et 82. Une borne de sortie du premier organe de test 84 est connectée à une entrée convenable d'un second organe de test qui reçoit aussi la valeur en cours de la variable d'état Cfrein et qui exécute la même fonction que celle du second opérateur 80 du module de décollage 75. De ce fait, sans qu'il soit nécessaire de décrire plus avant la structure du second organe de test 85 du module 83, une première borne de sortie de ce second organe 85 exécute une fonction ChangerRapportQ qui est exécutée vers le calculateur 6
comme précédemment, ou bien une seconde borne de sortie D de ce même second organe de test 85 exécute une fonction notée AlarmeX() (avec X = D) à destination du contrôleur de tableau de bord 16 et de l'afficheur 76 ainsi qu'il a déjaà été décrit.
Quand le module 83 est activé par le mode automatique, un organe de test 86 est aussi en fonction qui teste les variables d'état RapportEngagé, Evit de vitesse du véhicule, et Clevier d'état de commande du levier impulsionnel de changement de vitesses. Le module 86 comporte un opérateur qui exécute la fonction suivante : Si (RapportEngagé EstDans {"2", "3", "4", "5"}) ET ((Clevier == Clevier+) OU (Clevier == Clevier-)) ) Alors ChangerRapportQ; ChangerMode(); Sinon Si (RapportEngagé == "1 ") ET ((Clevier == Clevier+) OU (Clevier == Clevier-)) ET (Evit > Evit1 ) ) Alors ChangerRapport(); dans laquelle "EstDans" teste si le rapport de boîte est sur les rapports de "2" à "5", et les fonctions exécutées si le test est positif sont : - ChangerRapport() identique à la fonction ChangerRapport() déjà décrite précédemment est exécutée sur la borne de sortie "E" de l'organe de test 86 ; - ChangerMode(), une fonction qui, la variable d'état Cmode étant égale à CmodeAuto, la place à la valeur CmodeManuel en forçant le sélecteur de mode 29, et est exécutée sur la
borne de sortie "F" de l'organe de test 86..
Quand le mode de transmission "Manuel" (ou semiautomatique ou impulsionnel) est actif, seul l'appui sur le sélecteur de mode 22 permet de revenir en mode de transmission automatique.
Enfin le moyen de test de changement de rapport 70 comporte un organe de test de changement de mode de transmission 87.
La sélection du mode d'adhérence en faible adhérence est réalisée quand la variable d'état descriptive de ce mode, Cadher, prend la valeur constante CadherO. L'organe de test de changement de mode de transmission 87 lit donc le registre d'état de mode d'adhérence 33 et, quand on se trouve en mode automatique autorise n'est possible qu'en mode de transmission automatique. L'organe 87 comporte donc un opérateur qui exécute à sa sortie la fonction ChangerMode() décrite ci-dessus à destination du sélecteur de mode de transmission 29. Par conséquent, tout appui sur le sélecteur de mode d'adhérence 31 en mode de transmission manuel (Cmode == CmodeManuel) entraîne une entrée en mode automatique (Cmode == CmodeAuto) et l'application des stratégies relatives à ce mode particulier.
Toute action sur le levier de commande impulsionnelle 22 en même temps qu' une man#uvre du sélecteur de mode de transmission 28 est prioritaire, l'appui sur le sélecteur de mode 28 n'étant pas pris en compte.
Toute demande de changement de rapport vers la position neutre (RapportEngagé = "N") nécessite un appui sur le frein, à l'arrêt comme en roulage (Cfrein == Cfreini) Selon la vitesse du véhicule, la demande de changement de rapport au neutre N entraînera ou non une sortie du mode automatique.
Toute demande de changement de rapport vers la position
marche arrière R nécessite un appui sur le frein (Cfrein == Cfrein1) et que la vitesse du véhicule soit suffisamment faible (Evit < Evit1) pour éviter tout craquement de boîte.
Préparation Concentration Germe pathogène Agrégant Résultats plaquettaire bactéries/ml 590 Staph. epidermidis PC 6 néant 6, OE+07 605 492 Staph.epidermidis PC 6 ADP 10 M 4,7E+07 441
Les résultats obtenus, représentés sur le Tableau 3 ci-dessus montrent que 74 % de bactéries sont récupérées après l'étape d'agrégation Exemple 5 : Agrégation des plaquettes en présence d'un anticorps CD9.
Il est connu que l'anticorps CD9 induit l'activation des plaquettes et par conséquent leur agrégation.
La concentration initiale de l'anticorps CD9 issu du clone SN4 156-020 d'Ancel, est de 100 g/ml.
Le procédé d'agrégation sélective mis en oeuvre avec cet anticorps CD9 comporte les étapes suivantes : Sur 400 gl de concentré plaquettaire on ajoute 50 gl de tampon PBS et 50 Ml d'anticorps CD9, - Les tubes sont agités manuellement durant 5 minutes à température ambiante - On y ajoute 500 gl de tampon PBS, - On effectue une filtration sur un filtre de porosité 5 Mm
- On effectue des dilutions en série de 1/20 et 1/10 et 1/10, - On filtre 100 gl de l'échantillon sur une membrane CB04, - On effectue un marquage estérasique, - On effectue la détection.
L'anticorps CD9 a été utilisé en présence des plaquettes à une concentration finale de 10 g/ml.
La figure 2 en annexe illustre l'agrégation des plaquettes obtenue en présence d'anticorps CD9.
Afin d'évaluer la concentration optimale de l'anticorps CD9 nécessaire pour l'agrégation plaquettaire, une courbe dose-réponse a été établie.
Méthode : - sural de concentré plaquettaire placés dans des tubes on ajoute différentes dilutions d'anticorps, avec des concentrations finales allant de 0 à 20 g/ml en anticorps CD9.
- Les tubes sont agités manuellement durant 5 minutes à température ambiante - On y ajoute 500 Ml de tampon PBS, - On effectue une filtration sur un filtre de porosité 5 Mm On effectue des dilutions en série : 4 dilutions 1/10 - On filtre 100 l de l'échantillon sur une membrane CB04 - On effectue un marquage estérasique, - On effectue la détection
Les figures 3 et 4 montrent respectivement les résultats du dénombrement des plaquettes agrégées en présence de doses croissantes d'anticorps CD9 et la courbe dose-réponse ainsi obtenue.
Le dénombrement des plaquettes résiduelles est effectué avec l'Analyseur.
L'agrégation est dose-dépendante. Pour augmenter l'effet d'agrégation, la concentration en CD9 a été augmentée autant que possible. Cependant un compromis a été établi pour la détection des bactéries, et l'on a déterminé que la concentration plaquettaire peut être réduite de 1 à 2 Log en utilisant une concentration d'environ 10 g/ml d'anticorps CD9.
Exemple 6 : Agrégation plaquettaire avec l'anticorps CD9 en présence de bactéries.
Méthode : Une cryobille de Staph epidermidis est introduite dans un tube de bouillon tryptone soja et incubée à 370C durant 18-24 heures.
A. 11. Séquençage Le séquençage a été réalisé par la société Genome Express à Grenoble (France). Les logiciels Sequencher 3. 1. 1 (Gene Codes Corporation) et DNAstar (Laser Gene) ont permis d'analyser et d'assembler les séquences obtenues.
B. RESULTATS B. 1. Clonage des séquences flanquant l'insertion de mutator dans emb*-8516
a) Clonage d'une séquence flanquante Comme décrit dans Heckel et al. (1999), un produit AIMS de 107 pb a été obtenu avec les amorces Mu16 (SEQ ID N'8) et adapMsel (SEQ ID NO 9). Ce "produit AIMS" (voir figure 4) contient 70 pb de la séquence flanquante entre les deux amorces, qui ne montre pas d'homologie significative avec les séquences référencées dans les bases de données. b) Allongement de la séquence flanquante Pour allonger cette séquence flanquante la technique du"genomic walk" (Devic et al., 1997) a été employée sur l'ADN génomique du génotype A188. Avec les amorces "nested" GW4 (SEO ID N012) et GW4b (SEQ ID N013) et coupure par Sspl, un produit de 244 pb a été obtenu (clone L223a, Fig. 4), qui contenait 153 pb supplémentaires de la séquence flanquante.
Pour caractériser la séquence de l'autre côté de l'insertion, on a utilisé la technique de "genomic walk" avec les amorces "nested" GW3 (SEQ ID No 10) et GW3b (SEQ ID ? 11) avec coupure par Sspl. Le produit de 1532 pb (clone L223c, Fig. 4) contenait 1463 pb de séquence flanquante supplémentaire. c) Homologie de la séquence flanquante dans les bases de données Contrairement aux séquences "produit AIMS" et du clone L223a, la séquence du clone L223c montrait une homologie dans les bases de donnée avec un EST du maïs. Deux séquences du même ADNc se trouvent dans Genebank : une séquence à partir du bout 5'dans l'accession A1001298, et une séquence à partir du bout 3'dans l'accession A1374506.
Cet EST porte le nom Isum2 sans explication de cet acronyme. L'homologie était forte mais restreinte à une petite partie de L223c.
Une réaction PCR a été effectuée sur de l'ADN génomique avec les amorces Isum2b (SEQ ID N 18) et Isum2e (SEQ ID N 20), qui sont localisées de part et d'autres de l'intron présumé. Le produit d'amplification a été cloné et séquencé. La séquence de ce clone L157a (fig. 4) a montré
que la séquence présente dans le produit AIMS, dans L223a et dans une partie de L223c correspondait à un intron d'lsum2.
B. 2. Isolement d'un deuxième allèle a) Criblage d'une collection de mutants d'insertion par génétique inverse ( machine à gène ).
Une population de 25000 plantes fortement mutagénisées avec le transposon mutator a été criblée par PCR pour une insertion dans Isum2.
Les plantes ont été plantées dans 10 blocs de 50 x 50 plantes. Des pools d'ADNs des 500 lignes et 500 colonnes ont été analysés par PCR pour la présence d'une amplification avec l'amorce OMuA (SEQ ID NO 24 dans mutator) en combinaison avec une amorce dans un exon d'lsum2. Les quatre amorces Isum2b (SEQ ID N 18), Isum2c (SEQ ID N 19), Isum2k (SEQ ID N021) et 8516g (SEQ ID N023) spécifiques d'Isum2 ont été testées.
Des résultats positifs ont été obtenus avec les amorces Isum2b et Isum2k. Les plantes en question ont été identifiées et l'amplification a été confirmée sur ADN de plante individuelle. Puis leur descendance a été analysée pour distinguer des insertions somatiques (absentes dans les gamètes) des insertions germinatives (présentes dans les gamètes). De toutes les insertions seulement une a été retrouvée dans la génération suivante. Le séquençage des produits d'amplification PCR a montré qu'il s'agissait d'une insertion dans l'intron 1 d'lsum2A à 3 pb en amont de l'exon 2, retrouvée dans une plante désignée G2422.
Les grains de cette plante G2422 ont été analysés pour la présence du phénotype grains dépourvus de germe . La présence de nombreuses mutations"parasites"dans ce matériel fortement mutagénisé a rendu difficile l'évaluation d'une partie des grains. Des grains avec un phénotype grain dépourvu de germe ont été détectés. b) Manque de complémentation entre les deux allèles mutés de isum2A.
Pour prouver que le phénotype grain dépourvu de germe du mutant emb*-8516 décrit par Heckel et al. (1999) était aussi causé par
l'insertion de mutator dans le gène Isum2A, une complémentation entre le mutant emb*-8516 et la descendance de la plante G2422 avec une insertion de mutator dans le même gène Isum2A a été entreprise.
16 plantes hétérozygotes +/emb*-8516 ont été pollinisées par 6 plantes hétérozygotes +/emb*-2422. Dans aucun cas, la mutation emb*- 8516 n'a été complémentée. Ceci montre que les plantes G2422 portent une mutation dans le même gène qui cause le phénotype emb du mutant emb*-8516. Comme les deux ont une insertion de mutator dans le gène Isum2A, il est avéré que cette mutation du gène isum2A provoque le phénotype grain dépourvu de germe .
B. 3. Le gène Isum2A a) Séquences génomiques d7sum2 Pour le gène Isum2A une première séquence génomique a été obtenue par criblage d'une banque génomique de plantes du génotype HD5 x HD7 et une seconde séquence génomique a été obtenue par PCR sur des plantes du génotype A188. Les clones utilisés pour le séquençage sont présentés dans la Fig. 4.
De façon à garantir une bonne protection de la totalité des lames de contact tout en maintenant une grande
rigidité du contact l'invention propose un contact électrique femelle découpé plié monobloc comportant longitudinalement une zone arrière de raccordement à un conducteur électrique, une cage de protection comportant un plancher deux parois latérales, et, sur l'avant, une terminaison de contact avec un contact mâle complémentaire, la terminaison de contact comprenant au moins une lame de contact élastique munie d'une partie terminale dirigée vers l'avant du contact, les parois latérales étant attenantes au plancher et repliées selon un axe longitudinal, contact pour lequel ladite lame de contact élastique est réalisée à partir d'une lamelle reliée à l'arrière d'une paroi latérale de la cage et s'étend vers l'arrière avant pliage.
Avantageusement la lame est constituée à partir d'une lamelle découpée en biais par rapport au plancher.
Le contact peut comporter un volet de maintien de la partie terminale de la lame en pré-contrainte ce volet étant replié depuis l'avant d'une paroi latérale de la cage.
Avantageusement au moins une des parois latérales est prolongée par un flanc destiné à former un plafond par pliage selon des axes longitudinaux la cage ayant ainsi quatre côtés.
Préférablement le contact comporte deux lames de contact élastiques en vis à vis.