INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Les compositions de vernis à ongles, dans lesquelles sont incorporés les dérivés de cellulose de l'invention, peuvent comprendre en plus de solvants esters, un ou plusieurs solvants choisis parmi : - les cétones liquides à température ambiante tels que méthyléthylcétone, méthylisobutylcétone, diisobutylcétone, l'isophorone, la cyclohexanone, l'acétone ; - les alcools liquides à température ambiante tels que l'éthanol, l'isopropanol, le diacétone alcool, le 2- butoxyéthanol, le cyclohexanol ; - les glycols liquides à température ambiante tels que l'éthylène glycol, le propylène glycol, le pentylène glycol, le glycérol ; - les éthers de propylène glycol liquides à température ambiante tels que le monométhyléther de propylène glycol, l'acétate de monométhyl éther de propylène glycol, le mono n-butyl éther de dipropylène glycol ; - les esters à chaîne courte (ayant de 3 à 8 atomes de carbone au total) tels que l'acétate d'éthyle,
l'acétate de méthyle, l'acétate de propyle, l'acétate de n-butyle, l'acétate d'isopentyle ; - les éthers liquides à température ambiante tels que le diéthyléther, le diméthyléther ou le dichlorodiéthyléther ; - les alcanes liquides à température ambiante tels que le décane, l'heptane, le dodécane, le cyclohexane ; - les composés cycliques aromatiques liquides à température ambiante tels que le toluène et le xylène ; et leurs mélanges.
La teneur en solvant(s) organique(s) (solvant ester et/ou solvant additionnel) de la composition de vernis à ongles peut aller de 20 à 90%, de préférence de 30 à 80% et mieux encore de 40 à 70% en poids par rapport au poids total de la composition.
La composition à phase organique peut comprendre en outre de l'eau, notamment en une teneur allant de 0,1 à 10% en poids, par rapport au poids total de la composition, de préférence, moins de 2 % d'eau en poids.
La composition peut comprendre également un ou plusieurs additifs choisis parmi les agents filmogènes, les agents plastifiants, les matières colorantes telles que les pigments, les nacres, les paillettes, les agents épaississants autres que les dérivés cellulosiques de l'invention, les agents d'étalement, les agents mouillants, les agents dispersants, les anti-mousses, les conservateurs, les
Ainsi, la composition peut comprendre un polymère filmogène additionnel qui peut être choisi parmi les nitrocelluloses, les esters de cellulose, les polymères radicalaires, les polycondensats et les polymères d'origine naturelle et leurs mélanges.
Le polymère filmogène additionnel peut être choisi notamment dans le groupe formé par les polymères vinyliques, les polyuréthannes, les polyesters, les résines alkydes, les résines époxyesters, les nitrocelluloses, les esters de cellulose, tels que les acétates, les propionates, les butyrates, les isobutyrates, les acétopropionates, les acétobutyrates de cellulose, les résines résultant de la condensation de formaldéhyde avec une arylsulfonamide, et leurs mélanges.
Le polymère filmogène additionnel peut être présent en une teneur allant de 0,1 % à 40 % en poids, par rapport au poids total de la composition, et de préférence allant de 1 % à 35 % en poids.
La composition peut comprendre, en outre, au moins un agent plastifiant. En particulier, on peut citer, seuls ou en mélange, les plastifiants usuels, tels que : - les glycols et leurs dérivés tels que le diéthylène glycol éthyléther, le diéthylène glycol méthyléther, le diéthylène glycol butyléther ou encore le diéthylène glycol hexyléther, l'éthylène glycol
éthyléther, l'éthylène glycol butyléther, l'éthylène glycol hexyléther; - les esters de glycérol, - les dérivés de propylène glycol et en particulier le propylène glycol phényléther, le propylène glycol diacétate, le dipropylène glycol butyléther, le tripropylène glycol butyléther, le propylène glycol méthyléther, le dipropylène glycol éthyléther, le tripropylène glycol méthyléther et le diéthylène glycol méthyléther, le propylène glycol butyléther, - des esters d'acides notamment carboxyliques, tels que des citrates, des phtalates, des adipates, des carbonates, des tartrates, des phosphates, des sébaçates, - des dérivés oxyéthylénés tels que les huiles oxyéthylénées, notamment les huiles végétales telles que l'huile de ricin; - leurs mélanges.
La composition peut comprendre une matière colorante qui peut être choisie parmi les composés pulvérulents et/ou les colorants solubles dans le milieu de la composition. La matière colorante peut être présente en une teneur allant de 0,001 % à 10% en
Les composés pulvérulents peuvent être choisis parmi les pigments et/ou les nacres et/ou les paillettes habituellement utilisés dans les vernis à ongles.
Les étapes suivantes d'extraction et de purification étant comparables en tout point à celles décrites précédemment.
Les rapports molaires en monosaccharides donnés (exprimés par rapport au rhamnose) obtenus pour la fraction exclue de ces différents échantillons sont regroupés dans le Tableau I suivant : TABLEAU
El E2 C7* ML* Galactose 6,50 7,60 2,00 3,80 Mannose 0,92 1,10 2,70 6,20 Glucose 3,20 4,30 3,50 2,70 N-acétyl galactosamine 0,80 0,47 1,00 0,10 N-acétyl glucosamine 0,17 0,10 0,38 0,10 Acide neuraminique 0,08- 0,49Rhamnose 1,00 1,00 0 1,00 * : échantillon comparatifne faisant pas partie de l'Invention.
On peut noter l'absence de rhamnose dans l'échantillon C7 où la souche Bifidobacterium breve CNCM 1-2219 a été remplacée par la souche Bifidobacterium breve CFPL C7. On peut également constater que la répartition des sucres entre les échantillons El et E2 est différente de celle de l'échantillon ML correspondant à la souche Bifidobacterium breve CNCM 1-2219 cultivée sur un milieu lactose non conforme à l'Invention. En particulier, les échantillons El et E2 renferment plus de galactose et de N-acétyl galactosamine que l'échantillon ML et moins de mannose que l'échantillon ML.
2) Analyse de la composition protéique de la partie active La fraction protéique de la partie active représente environ 80 à 85 % en masse de celle-ci.
Le séquençage de la partie protéique de la partie active est réalisé après une étape de protéolyse à l'aide d'une solution de trypsine à 1 % dans un tampon Tris 0,1M à pH 8. 5, comme décrit dans l'article Rosenfeld J. et al., Analytical Biochemistry, 1992,203, 173-179.
Les peptides sont purifiés par HPLC en phase inverse sur une colonne Ultrasphere ODS (octadécylsilane) d'un diamètre de 2 mm et d'une longueur de 200 mm vendue par la société Beckmann. L'élution est effectuée par un gradient linéaire d'acétonitrile dans une solution d'acide trifluoroacétique à 0,1%.
Les peptides isolés sont séquences (selon la méthode décrite dans l'article de Rosenfeld J. et al., précité) sur un appareil de référence Procise 492 vendu par la société Perkin-Elmer.
Les séquences sont ensuite comparées à celles contenues dans les bases de données suivantes : GenBank CDS translation, PDB (Protein Data Bank), SwissProt, PIR (Protein Information Resource), PRF (Protein Research Foundation), en utilisant le programme BLAST 2.2 (Basic Local Alignment Search Tool) de NCBI (National Center for Biotechnology Information).
Cette analyse a permis de montrer que la fraction protéique de la partie active est constituée majoritairement de peptides du milieu laitier (lactoferrine, Beta-lactoglobuline, Serum albumine...), d'une partie qui présente une bonne homologie (60% minimum) avec une séquence de protéine de Bifidobacterium longum (RELGIGTPSFLHNGGQWYIYA (SEQ ID n 1), et d'une partie dont il n'a pas été possible de déterminer d'homologie significative avec des séquences connues et possédant les séquences suivantes : - RVLYNPGQYXYVR (SEQ ID n 2) - EQATANGQVSSGQQSTGGSAAP (SEQ ID n 3) EXEMPLE 3 : ETUDE DE L'ACTIVITE IMMUNOMODULATRICE DE LA FRACTION EXCLUE DU RETENTAT 1) Effet de la fraction exclue sur la flore intestinale des souris L'effet de la fraction exclue (partie active), obtenue selon le procédé décrit ci-dessus à l'exemple 1, sur l'évolution de la flore intestinale des souris a été étudié.
Le test a été réalisé sur des souris mâles C3H qui sont des souris de deuxième génération d'une lignée d'animaux axéniques, auxquelles est implantée une flore intestinale humaine adulte (provenant du CDTA, Centre de Distribution, Typage & Archivage animal, CNRS, Orléans, France).
Les souris sont maintenues dans des isolateurs pour éviter toute modification de leur nouvelle flore intestinale. A leur réception, les souris sont âgées de 8-10 semaines. Un temps d'adaptation d'au moins 2 semaines est laissé aux souris après réception pour supprimer tout stress dû au transport et pour qu'elles s'acclimatent à leur nouvel environnement.
Pendant toute cette durée d'adaptation et jusqu'au début de l'expérience, ces souris disposent d'eau stérile comme boisson.
Pendant toute la durée de l'expérience, la nourriture utilisée comme base alimentaire est un régime standard de granulés R03 vendus par la société UAR stérilisés par irradiation, contenant 25 % de protéines, 49,8 % de glucides, 5 % de lipides et 4 % de cellulose.
Pendant les 21 jours d'essai, l'eau des biberons est remplacée par les différents produits à tester c'est-à-dire la fraction filtrée, et la fraction exclue, à raison de 6 ml par jour et par souris. Un changement quotidien des biberons est réalisé afin d'éviter toute modification de la composition des produits à tester par prolifération bactérienne. Les selles sont récoltées pour l'analyse avant le traitement (TO), puis au 7ème,au 15ème et au 21 ème jour durant l'administration du produit (T7, T15 et T21).
Chaque produit est testé sur un lot d'au moins 6 souris et on suit l'évolution des bactéries Bifidobacterium et Bacteroides fragilis dans la flore intestinale des souris.
La référence 26a désigne une région de partie de bord périphérique de la première couche de résine 26 et la référence 26b désigne une région en forme de barre disposée au centre dans la direction verticale de la première couche de résine 26.
La seconde couche de résine 24 est stratifiée sur toute la région de la première couche de résine 26 afin qu'une partie stratifiée 23 soit constituée. En outre, un gradin cylindrique 24s qui s'étend transversalement est placé à la face arrière d'une région 24a de la seconde couche de résine 25 24 pour former une couche unique dans laquelle la première couche de résine 26 et la seconde couche de résine 24 ne sont pas stratifiées.
Dans la partie stratifiée 23 qui comprend la première couche de résine 26 et la seconde couche de résine 24, la 30 première couche de résine 26 ayant la couleur noire à la face arrière est vue à travers la seconde couche de résine 24 qui est transparente du côté de la surface lorsque la lampe ne fonctionne pas. Comme l'indique la figure 1 en conséquence, deux régions 24a supérieure et inférieure de 35 partie d'émission de lumière formées par la couche unique de la seconde couche de résine 24 qui est transparente et qui sont allongées transversalement sont observées avec un rebord noir dû à la partie stratifiée 23 formée par la région 26a de partie de bord périphérique placée à la partie de bord périphérique de la glace et par la région en forme de barre 26b placée au centre en direction verticale.
D'autre part, lorsque la lampe est en fonctionnement, 5 la lumière ne peut pas être transmise par la première couche de résine 26 de couleur noire à la face arrière de la glace 20. Pour cette raison, les régions 24a d'émission de lumière qui sont transparentes transmettent de la lumière rouge du côté du boîtier S de lampe et émettent donc de la lumière de 10 couleur rouge qui est la couleur fonctionnelle.
Comme représenté sur la figure 3, la partie stratifiée 23 obtenue par stratification de la première couche de résine 26 et de la seconde couche de résine 24 dans la glace 20 est réalisée avec une configuration telle que la seconde 15 couche de résine 24 est en saillie vers la première couche de résine 26 et une surface 25 formant la limite entre les première et seconde couches 26 et 24 de résine est décalée vers la première couche 26 de résine d'une valeur prédéterminée 5 comme indiqué par la référence 24b. La glace 20 20 est formée par exécution de la mise en forme postérieure sur la seconde couche de résine 24 qui est transparente par rapport à la première couche de résine 26 de couleur noire, qui est soumise à la mise en forme préalable. Ainsi, on obtient une structure de glace dichroïque moulée dans 25 laquelle la première résine 26 de couleur noire ne se mélange pas à la seconde couche de résine 24 qui est transparente et qui doit subir la mise en forme postérieure.
Comme représenté sur la figure 4, pour la formation de la glace 20, la première couche de résine 26 de couleur 30 sombre destinée à former un produit primaire moulé d'épaisseur prédéterminée est formée par un moule métallique de moulage primaire (non représenté). Ensuite, le produit primaire moulé (la première couche de résine 26) est retiré du moule métallique pour le moulage primaire et est inséré 35 dans un moule métallique 40 de moulage secondaire (moules métalliques supérieur et inférieur 42 et 44).
Une cavité C comprenant une première partie Cl de cavité pour le moulage de la partie stratifiée qui est formée sur le moule métallique inférieur 44 et une seconde partie de cavité C2 destinée au moulage de la seconde couche de résine formée sur le moule métallique supérieur 42 est disposée dans le moule métallique 40 pour un moulage secon5 daire (avec les moules métalliques supérieur et inférieur 42 et 44). Une surface 26f du produit moulé primaire (première couche de résine 26) insérée dans la partie CI de cavité de moulage de la partie stratifiée est mise en position reculée d'une distance prédéterminée 8 par rapport à une surface 10 arrière moulée 44a de la seconde couche de résine 24 qui s'étend de manière presque rectiligne le long d'une ligne de séparation PL dans la partie de cavité Cl (position décalée de la distance prédéterminée >).
Ensuite, le moule métallique 40 (42, 44) est serré et 15 la seconde résine 24 est injectée dans la cavité C (plus précisément C2) du moule métallique 40 (42, 44) par un jet de coulée direct 46 formé dans le moule métallique supérieur 42. La seconde résine 24 injectée dans la cavité C (plus précisément C2) s'écoule radialement dans cette cavité C2 20 depuis l'emplacement du jet de coulée 46 et remplit toute la cavité C (plus précisément C2).
A ce moment et comme indiqué sur la figure 5, la surface 26f du produit primaire moulé inséré auparavant (la première couche de résine 26) est au contact de la seconde 25 résine 24 qui s'écoule à l'état fondu avec une température élevée, si bien qu'une partie est fondue. La première résine fondue 26 est attirée par le courant (voir la flèche BI de la figure 5) de la seconde résine 24 (voir la flèche B2 de la figure 5).
Cependant, une partie 44b de gradin disposée dans la partie CI de cavité correspondant à la partie en saillie 24b de la seconde couche de résine 24 vers le côté de la première couche de résine 26 dont la partie stratifiée 23 (partie de gradin correspondant à l'amplitude de décalage 8 35 de la surface 25 de limite entre les première et seconde couches de résine 26 et 24) forme un barrage arrêtant l'écoulement de la première résine fondue 26 dans la seconde résine 24. En conséquence, la première résine fondue 26 ne se mélange pas à la seconde résine 24 mais reste dans la partie C2 de cavité pour le moulage de la partie stratifiée.
En conséquence, dans la glace 20 de surface avant, la première résine 26 de couleur noire ne se mélange pas dans 5 la région 24a d'émission de lumière et laisse la région à une seule couche de seconde couche 24 de résine qui est transparente du côté de la surface (voir figure 3).
L'expérience a montré que la hauteur 8 de la partie en saillie 24b de la seconde couche 24 de résine vers la 10 première couche 26 de résine dans la partie stratifiée 23 dans laquelle les première et seconde couches 26 et 24 de résine sont stratifiées (décalage de la surface 25 formant la limite entre les première et seconde couches 26 et 24 de résine du côté de la première couche 26) est avantageusement 15 d'environ 0,2 à 0,8 mm.
Alors que l'ensemble de la seconde couche de résine 24 de la partie stratifiée 23 est en saillie uniformément vers la première couche de résine 26 dans cet exemple, le mélange à une partie de la première résine 26 fondue lors du moulage 20 secondaire dans la seconde couche de résine 24 est essentiellement créé à l'endroit o la seconde résine 24 soumise à la mise en forme postérieure s'écoule, et passe d'un élément à deux couches (partie stratifiée) à une couche unique.
En conséquence, il est aussi possible d'utiliser une struc25 ture dans laquelle la partie en saillie est formée uniquement à l'emplacement auquel la seconde résine 24 s'écoule et est déplacée de la partie stratifiée vers la région à une seule couche.
En outre, d'autres exemples non limitatifs de réalisa30 tion de l'invention peuvent être obtenues. Par exemple, à titre non limitatif, il est possible d'utiliser une structure dans laquelle la partie en saillie 24b est formée uniquement dans la seconde couche de résine 24 de la partie stratifiée 23 qui s'étend transversalement sur une partie 35 centrale en direction verticale d'une glace 20A de surface avant, vue depuis l'avant comme indiqué sur la figure 6.
Dans une variante, dans un troisième mode de réalisation considéré à titre non limitatif, la partie en saillie 24b est formée uniquement du côté de la seconde couche de résine 24 dans la partie stratifiée 23 qui s'étend transversalement sur une partie centrale dans la direction verticale de la glace 20B vue depuis l'avant et dans laquelle la 5 seconde résine 24 injectée pendant le moulage secondaire s'écoule depuis la partie stratifiée 23 vers la couche unique (position du côté d'écoulement de la seconde résine injectée 24 depuis la partie stratifiée 23 vers la couche unique).
anti-carcinogène (protectrice), sous forme liquide, de poudre, de pâte ou d'émulsion, seule ou en combinaison avec d'autres substances.
Pour l'utilisation dermo-pharmaceutique, les extraits et/ou triterpènes issus du genre Psophocarpus selon la présente invention peuvent être formulés sous forme galénique : pâte, émulsion, pulvérisateur en quantité comprise entre 0,01 et 25% en poids.
Pour les préparations de ces compositions, les extraits et/ou triterpènes issus du genre Psophocarpus sont mélangés à des excipients.
Pour l'utilisation pharmaceutique, les extraits et/ou triterpènes issus du genre Psophocarpus selon la présente invention peuvent être employés pour la fabrication de médicaments destinés au traitement de certaines inflammations, démangeaisons, irritations, rougeurs chroniques, irritations et démangeaisons persistantes ainsi que des affections liées à l'inflammation de la peau, du tissu cartilogineux et de la maladie de Crohn. Ils peuvent également être employés, sous forme de crème,... afin de lutter contre les perturbations inflammatoires articulaires causées par la polyarthrite et autres affections inflammatoires du cartilage. Ces extraits peuvent également être appliqués comme protecteur contre les pathologies carcinogènes, affectant les dérégulations cellulaires type mélanome et autres cancers ainsi que le traitement des différentes agressions virales.
La synthèse et l'hémisynthèse de ces dérivés triterpéniques peuvent permettent d'augmenter les qualités biophysico-chimiques de tels composés afin de les rendre plus perméables aux différentes barrières biologiques de l'organisme. C'est le cas par exemple du passage de la barrière hémato-encéphalique dans le cas de revendications des propriétés de protection du système nerveux central. Toutes formulations cosmétiques intégrant de telles substances sont revendiquées pour les mêmes propriétés.
L'utilisation de tels extraits peut s'étendre également à la nutraceutique puisqu'à l'origine il s'agit d'une plante alimentaire, que l'on utiliserait pour ses propriétés antiinflammatoires.
EXEMPLES Exl : Réalisation des tests anti-inflammatoires : de l'activité de la phospholipase A2 en présence d'un extrait total de Psophocarpus tetragonolobus.
La phospholipase A2 pancréatique bovine a été utilisée. L'activité phospholipase A2 a été évaluée par méthode titrimétrique selon la procédure Sigma. En bref, 10 ml d'une solution de lécithine 2% est maintenue à pH = 8 par addition d'une solution 10 mM NaOH jusqu'à stabilisation du pH (variation maximale de 0,01 unité de pH/mn). A cette solution est ajouté 200 l de phospholipase A2 (2,5 unités/ml) et 400 l d'une solution contenant soit le blanc (solvant de l'extrait), soit l'extrait total ou enrichi.
L'extrait total a été réalisé comme suit : Les racines séchées de Psophocarpus tetragonolobus ont été broyées puis un extrait 10% méthanol a été réalisé. L'extrait enrichi a été réalisé dans les conditions citées précédemment.
L'effet inhibiteur est évalué en mesurant la quantité de NaOH ajoutée à la solution et nécessaire pour maintenir le pH à 8. Le pourcentage d'inhibition est calculé de la manière suivante : % INHIBITION = [(A - B) /A] x 100 où A = [NaOH] ajoutée dans l'échantillon blanc et B = [NaOH] ajoutée dans l'échantillon contenant l'extrait.
Volume d'extrait ajouté Inhibition de la PLA2 (%) dans la solution enzymatique Extrait total de Extrait enrichi de finale Psophocarpus Psophocarpus tetragonolobus tetragonolobus 400 /il 100 100 200 /il 80 100 50 /il 40 90
Ex2 : Réalisation des tests anti-inflammatoires : de l'activité immunosuppressive.
L'extrait a été réalisé par macération, dans l'alcool bouillant pendant 1 heure, de 10 g de plante broyée dans 200 ml d'éthanol. Une concentration à 20 ml a ensuite été réalisée.
Le procédé comprend en outre : - l'étape de générer, à partir du flux de données primaire, grâce à des troisièmes moyens de traitement informatique, un flux de données secondaire, spécifiquement adapté aux caractéristiques du fichier-maquette. Les troisièmes moyens de traitement informatique se présentant notamment sous la forme d'un module logiciel de type XSLT.
Le procédé comprend en outre : - l'étape de générer, grâce à des quatrièmes moyens de traitement informatique, les documents finaux en fusionnant le flux de données secondaire avec le fichier-maquette. Les documents finaux ainsi obtenus se présentant notamment sous la forme de fichiers au format XSL-FO ou XML/OpenOffice. Les documents finaux ainsi obtenus pouvant être ensuite convertis dans d'autres formats du type PDF ou RTF et imprimés grâce à des moyens d'impression.
Architecture et principe La solution selon l'invention est basée essentiellement sur l'enchaînement des quatre points suivants : 1. il est a priori ardu et même probablement impossible de concevoir un logiciel, simple à maîtriser pour l'utilisateur, qui puisse générer des documents d'après une maquette et une base de données, sans rien connaître de la maquette ni des données au moment de la conception de ce logiciel ;
2. il par contre assez aisé de concevoir un tel logiciel dès lors que la maquette et le flux de données sont connus ; 3. il est possible, mais moins facile, connaissant la maquette, de concevoir un logiciel capable de générer automatiquement le logiciel mentionné au point 2.
4. il est également possible, connaissant la maquette et la forme que doivent revêtir les données, de concevoir un logiciel capable de générer automatiquement le flux de données mentionné au point 2.
La solution proposée concerne donc la mise en #uvre des points 2, 3, et 4. La figure 1 montre l'architecture synthétique du générateur, et comment il s'intègre dans l'ensemble de la chaîne de production.
Les points innovants, par rapport à l'état de l'art, résident dans l'application des points 3 et 4.