INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Information Type 0 : CAMERA INACTIVE = > 0 CAMERA ACTIVE = > 1 CAMERA GAUCHE 50 = > 2 CAMERA DROITE 50 = > 3 CAMERA HAUT 50 = > 4 CAMERA BAS 5 = > 5 CAMERA ZOOM = > 6 CAMERA ELARGIS = > 7 Type 1 : LAMPE ETEINTE = > 0 LAMPE ALLUMEE = > 1 LAMPE DIM = > 2 LAMPE INTERROGATION = > 3 LAMPE"Variable", ETEINTE = > 5 LAMPE"Variable", niveau 1 (33%) = > 6 LAMPE"Variable", niveau 2 (66%) = > 7 LAMPE"Variable", niveau 3 (100%) = > 8 Type 2 : VOLET FERME = > 16 VOLET OUVERT = > 17 VOLET STOP = > 18 Type 3 : CONVECTEUR CONFORT = > 32 CONVECTEUR ECO = > 33 CONVECTEUR HORS GEL = > 34 CONVECTEUR CONFORT REDUIT = > 35
D'autres avantages et caractéristiques de l'invention sont illustrés dans les exemples qui suivent et qui font référence aux figures suivantes : La figure 1 représenté schématiquement le plasmide pSRT. La région codant pour la transcriptase inverse de pNL4-3xcenv est délétée au moyen d'une digestion par Ba 1 I -SnaBI. La linéarisation du pSRT résultant est accomplie par l'utilisation de Nru I.
traitées soit avec la zidovuidine (AZT, panels A et C) ou la lamivudine (3TC, panels B et D), selon la technique décrite plus loin, dans le paragraphe matériel et méthodes. Pour le patient I, les échantillons ont été testés à 0 (+), 9 (') et 18 (0) mois après le traitement, et, pour le patient 2, à 0 (+) et 27 (*) mois après le traitement.
L'amplification de la région codant pour la transcriptase inverse (RT) est effectuée au moyen des amorces externes MJ3 (5'AGT AGG ACC TAC ACC TGT CA 3') (Séquence SEQ ID No : 5, en annexe) et RT-EXT (5'TTC CCA ATG CAT ATT GTG AG 3') (Séquence SEQ ID No : 6, en annexe) et des amorces internes A35 (5'TTG GTT GCA TAA ATT TTC CCA TTA GTC CTA TT 3') (Séquence SEQ ID No : 7, en annexe) et RT-IN (5'TTC CCA ATG CAT ATT GTG AG 3') (Séquence SEQ ID No : 8, en annexe) avec un cycle initial à 50 C (30 minutes) et à 940C (2 minutes), suivi de 40 cycles à 940C (30 secondes), 550C (30 secondes) et 68 C (90 secondes) et une étape finale d'extension à 98 C durant 10 minutes. Ceci amplifie un produit de 1530 pb qui s'étend au-delà du codon 93 de la région codant de la protéase et au-delà du codon 503 de la région codant de la polymérase (pol).
De nombreuses salles d'examen vasculaire comprennent une salle de commande adjacente à une salle d'examen avec une fenêtre entre les salles, et, éventuellement, un système d'intercommunication pour la communication orale. De façon caractéristique, un technicien reste dans la salle de commande pour actionner certaines commandes, beaucoup d'entre elles reproduisant des commandes dans la salle d'examen. Les commandes dans la salle de commande sont, de façon caractéristique, un sous-jeu de celles dans la salle d'examen. Des commandes qui motorisent des équipements ou mettent des sources de rayons X en service ou hors service
sont disposées uniquement dans la salle d'examen pour des raisons de sécurité et de réglementations. Pour éviter d'atteindre une commande durant un examen, l'opérateur de salle d'examen peut demander à l'opérateur de salle de commande d'effectuer une tâche requise.
Dans un aspect, on propose une salle d'examen médical.
La salle comprend une salle d'examen comportant un microphone et au moins une partie d'un système d'imagerie médicale à l'intérieur de celle-ci. Une zone de sensibilité de microphone est située dans la salle d'examen. La salle peut de plus comprendre une salle de commande adjacente à la salle d'examen et comportant un écran vidéo et des commandes pour le système d'imagerie à l'intérieur de celleci, et une salle d'équipement comportant un processeur, par exemple un ordinateur, à l'intérieur de celle-ci.
L'ordinateur est couplé, par exemple par l'intermédiaire d'un équipement de traitement et d'affichage vidéo, au microphone et à l'écran vidéo, et à des commandes pour le système d'imagerie.
Dans un autre aspect, on propose un sous-système de commande activé par la voix pour un système d'imagerie mé- dicale. Le sous-système de commande comprend un microphone audio configuré pour être positionné de façon à recevoir une entrée audio depuis un opérateur, un amplificateur audio pour recevoir des signaux audio générés par le microphone, et un processeur de signal audio couplé à l'amplificateur pour traiter des signaux audio amplifiés venant de l'amplificateur. Le traitement comprend une reconnaissance de mots.
Dans encore un autre aspect, on propose un système d'examen par rayons X. Le système d'examen par rayons X comprend une source de rayons X, un détecteur positionné de façon à recevoir des rayons X émis à partir de la source de rayons X, et une table de patient positionnée de telle sorte que la source de rayons X émette des rayons X
vers un patient sur celle-ci. Le système comprend de plus un écran vidéo pour afficher des images lorsqu'on réalise un examen, et un système de commande activé par la voix couplé à la source de rayons X, au détecteur, et à l'écran vidéo. Le système de commande comprend un microphone audio configuré de façon à être positionné pour recevoir une entrée audio depuis un opérateur, et un processeur de signal audio couplé au microphone pour traiter des signaux audio amplifiés venant de l'amplificateur. Le traitement comprend une reconnaissance de mots. Le système de commande est couplé à des commandes pour au moins l'un parmi la source de rayons X, le détecteur et l'écran, de façon à exécuter des ordres reçus par le système de commande.
La présente invention sera mieux comprise à la lecture de la description détaillée suivante, faite en référence aux dessins joints, dans lesquels : la figure 1 est une illustration schématique d'un système d'imagerie par rayons X.
La figure 2 est une illustration schématique d'une salle d'équipement, d'une salle d'examen et d'une salle de commande pour effectuer une imagerie par rayons X.
Une interface d'utilisateur activée par la voix pour commander un équipement d'imagerie de diagnostic est décrite ici. Au lieu de naviguer sur une série de boutons, de commutateurs et de manettes, un opérateur peut prononcer un ordre désigné pour une opération souhaitée. De plus, l'opérateur peut obtenir un retour à partir du système par l'intermédiaire d'une parole générée par ordinateur. Par exemple, l'opérateur peut demander les précédents paramètres d'exposition aux rayons X (kV, mAs), et le système communique alors ces nombres, par l'intermédiaire d'un signal audio, à l'opérateur, sans que l'opérateur ait à consulter l'affichage local de ces nombres.
Bien que l'interface soit décrite ici dans le contexte d'un système à rayons X, l'interface n'est pas limitée à
la mise en en oeuvre dans les systèmes à rayons X, et elle peut être utilisée dans de nombreuses modalités d'imagerie différentes. Par exemple, l'interface peut être utilisée en association avec la tomographie informatisée, la résonance magnétique, la tomographie à émission de positons, les ultrasons, et d'autres modalités d'imagerie.
L'interface, dans un exemple de réalisation, est basée sur l'activation par la voix pour commander des fonctions non liées à la sécurité d'un équipement d'imagerie de diagnostic. Les opérations commandées par activation vocale comprennent la lecture de séquences d'imagerie, la préparation du système d'imagerie pour une séquence d'imagerie nouvelle ou différente, l'analyse d'images acquises, et la sélection d'éléments de menu à partir d'un écran de commande.
Avec l'interface d'utilisateur activée par la voix, un opérateur prononce un ordre ou une séquence d'ordres approprié. Par conséquent, les mains de l'opérateur sont libres d'effectuer des procédures d'intervention ou d'autres tâches liées à la procédure d'imagerie. De plus, les demandes faites au technicien de salle de commande et la quantité de communications entre la salle d'examen et la salle de commande sont réduites par rapport aux méthodologies d'interface d'utilisateur traditionnelles décrites ci-dessus. De plus, l'exemple de système décrit ci-dessous ne nécessite pas"d'apprentissage"pour reconnaître les ordres venant d'un opérateur particulier. Le terme d'apprentissage désigne un processus grâce auquel un processeur adapte le traitement pour reconnaître des motifs vocaux d'un opérateur particulier et adapte les motifs pour cet opérateur à des ordres particuliers. L'apprentissage peut demander du temps et être fastidieux, et le fait d'éviter le besoin d'un apprentissage améliore la facilité d'utilisation du système.
Bien que les fonctions non liées à la sécurité soient
3) Purification des molécules HLA-DP4 Les molécules HLA-DP4 sont purifiées à partir de différentes lignées humaines de lymphocytes B transformées par le virus Epstein Barr (EBV) homozygotes pour DP, par immunoaffinité au moyen d'anticorps monoclonaux spéci- 1 fiques de toutes les molécules DP. L'origine des lignées et les allèles qui les caractérisent sont indiqués dans le Tableau IV.
Lignées Spécificité Allèle Allèle référence DP DPA1 DPB1 HOM2 DP4 DPA1*0103 DPB1*0401 * BOLETH DP4 DPA1*0103 DPB1*0401 * PITOUT DP4 DPA1*0103 DPB1*0401 SOUTHWOOD et al., précité HHKB DP4 DPA1*0103 DPB1*0401 DAVENPORTH et al, P. N.A.S., 1995,92, 6567.
SHU DP4 DPA1*0103 DPB1*0402 * MLF DP4 DPA1*0103 DPB 1*0402 * BM92 DP4 DPA1*0103 DPB 1 *0402 *
*l'origine des lignées est décrite sur le site internet de la Collection européenne de Culture Cellulaire e e (http ://fuseiv. co. uk/camr/.) La purification des molécules HLA-DP4 est effectuée à partir d'un culot de ces cellules humaines transformées par EBV, selon un protocole dérivé de ceux utilisés pour les molécules HLA-DR (GORGA et al., J BioI. Chem., 1987, 262, 16087 ; TEXIER et al., précité).
D'une manière plus précise, 5 à 6. 109 cellules sont lysées à une concentration d'environ 108 cellules/ml en tampon de lyse (Tris 0, 01 M, NaCI 0, 15 M, NaN3 0, 02%, pH 7, NP40 1%, aprotinine 10 ng/ml, EDTA 5 mM, PMSF 10 M) dans la glace pendant 30 minutes. Le milieu de lyse est débarrassé des gros débris celluIn laires par centrifugation à 1100 g pendant 10 minutes à 4 C. Le surnageant est ensuite 1 : 1 C > ultracentrifugé à 100 000 g à 40C pendant 1 heure. La suite de la purification se c déroule en chambre froide à 4 C. Le lysat est passé successivement sur une colonne de Sépharose 4B (10 ml de gel préparés en PBS 1 x), une colonne de Protéine A Sépharose 4B (5 ml de gel préparés en PBS lx) puis sur la colonne d'affinité anti-DP.
Les colonnes sont ensuite rincées par 250 ml de tampon de lyse. La colonne Sépharose 4B est jetée. La colonne Protéine A Sépharose 4B est rincée avec 25 ml de tampon TBS lx (Tris 0, 01 M, NaCI 0, 15 M, NaN3 0, 02%, pH 7) ; 50 ml de tampon (glycine, 0, 1 M ; NaCI 0, 5M, pH 2, 5) et 200 ml de tampon PBS lx, avant d'être stockée à 4 C. La colonne anti-DP est rincée avec 250 ml de tampon TBS contenant 1 mM de dodécyl maltoside (DM). Elle est ensuite éluée individuellement avec le tampon d'élution (TCOj 100 mM, NaCI 500 mM, NaN3 0, 02%, DM 1, 1 mM, pH 11, 5) en 15 fractions de 3 ml. L'éluat est immédiatement neutralisé avec 10% de
tampon (Tris-HCI 2 M, pH 6, 8), puis dialysé extensivement à 4 C contre du tampon PBS lx contenant 1 mM de DM.
4) Test de liaison HLA-DP4-peptide Le test de liaison des peptides aux molécules HLA-DP4 est un test en compétition avec une révélation immuno-enzymatique, dérivé de celui mis au point pour des molécules HLA-DR (HLA-DR1 : MARSHALL et al., précité, HLA-DRI, - DR2,-DR3,-DR4,-DR7,-DRU et-DR13 : Brevet FR 99 0879 et TEXIER et al., précité). Il est effectué en plaques 96 puits, ce qui permet d'étudier de nombreux échantillons dans la même expérience. Brièvement, les molécules HLA-DP4 purifiées sont incubées avec un peptide biotinylé qui sert de traceur et différentes concentrations du peptide à tester. Le peptide biotinylé est un peptide ligand de DP4, il s'agit d'un peptide reconnu par des lymphocytes T CD4+ spécifiques de DP4 tel que ceux précisés dans le Tableau III ci-dessus ou d'un nouveau peptide isolé à l'aide du présent test de liaison à DP4. Parmi ces peptides, on peut citer par exemple le peptide UNKI ou le peptide IL3 127-146. L'incubation se fait dans un tampon, dont le pH peut varier. Il est généralement de 5, l'incubation dure généralement 24h. Après l'incubation, les échantillons sont neutralisés, puis 100 ul de chaque échantillon est transféré sur une plaque ELISA préalablement sensibilisée par un anticorps anti-DP, tel que B7/21. Les complexes molécules HLA-DP/peptides biotinylés fixés au fond de la plaque par l'intermédiaire de l'anticorps sont révélés au moyen de streptavidine phosphatase et d'un substrat fluorescent. L'activité de chaque peptide est caractérisée par la concentration qui inhibe 50 % de la liaison du peptide biotinylé (IC50).
EXEMPLE 2 : DETERMINATION DES PARAMETRES DU TEST DE LIAISON 1) Peptide traceur a) Matériel et méthodes La liaison de peptides aux deux molécules DP4 (DP401 codé par l'allèle DP Al *0 1 03/DPB 1 *0401 et DP402 codé par l'allèle DPA1*0103/DPB1*0402) a été analysée en ELISA par le test direct de liaison suivant : Les molécules HLA-DP4 purifiées selon le protocole décrit à l'exemple 1 sont diluées 10 fois en tampon phosphate 10 mM (dilution 1/10). Elles sont ensuite incubées avec différentes concentrations d'un peptide biotinylé (10-6M,
10-7M et 10-8M) dans du tampon phosphate 10 mM, NACI 150 mM, DM 1 mM, citrate 10 mM, thimérosal 0, 00 3%, pH 5, dans des plaques 96 puits en polypropylène, pendant 24 h à 37 C. Des échantillons sans molécules DP4 sont utilisés comme témoin. A la fin de l'incubation, les échantillons sont neutralisés avec 50 jj. I de tampon Tris-HCI 450 mM2 pH 7, 5, thimérosal 0, 003 %, BSA 0, 3 %, DM 1 mM. Ils sont ensuite transférés sur des plaques ELISA maxisorp 96 puits sur lesquelles les anticorps anti-DP ont été préalablement adsorbés. Très exactement, 10) g/ml d'anticorps 1 : 1 anti-DP ont été incubés une nuit à 4 C (100 utl/puits) puis les plaques ont été saturées avec le tampon Tris-HCI 100 mM, pH 7, 5, BSA 0, 3 %, thimérosal 0, 003 % pendant une nuit à 4 C. L'incubation des échantillons sur ces plaques est réalisée pendant deux heures à température ambiante, comme la suite du test puis des lavages extensifs sont effectués entre chaque étape en tampon Tris-HCI 0, 1 M pH, 7, 5, Tween-20 0, 05%. Le peptide biotinylé lié aux molécules HLA-DP est détecté par l'ajout de 100 u. I/puits du conjugué streptavidine-phosphatase alcaline (45 minutes) dilué au 1/2000 dans le tampon Tris 10mM pH 7, NaCI 0, 15 M ; Tween 20 0, 05 %, BSA 0, 2 %, thimérosal 0, 003 %, puis par l'ajout de 200 u. I/puits du substrat MUP 100 uM en tampon NaHC03 0, 05 M pH 9, 8, MgCl2 1 mM. L'émission de fluorescence par le produit de la réaction enzymatique est mesurée à 450 nm après excitation à 365 nm et le rapport des valeurs obtenues avec ou dans DP4 est déterminé (RF = valeur de fluorescence en présence de DP4/valeur de fluorescence en l'absence de DP4). b) Résultats La liaison à la molécule DP401 de peptides dérivés des peptides ligands de DP4 précédemment décrits (Tableau III), a été testée : - peptide bUL21 283-302 (RELWWVFYAGDRALEEPHAE ; SEQ ID NO : 18) - pepti - peptide bIL3 127-146 (SEQ ID NO : 13) - peptide bMAG 245-258 (LLTQHFVQENYLEY ; SEQ ID NO : 19) - peptide bMT 451-466 (SEQ ID NO : 6) - peptide bNS-p2 (SEQ ID NO : 4) - peptide bTT 947-963 (FNNFTVSFWLRVPKVSA ; SEQ ID NO : 20) - peptide bUNKI (SEQ ID NO : 14) Deux peptides spécifiques respectivement de DR1 et de DR7 ont été utilisés comme témoin de la spécificité de liaison à DP4 :
- peptide bHA 306-318 (PKYVKQNTLKLAT ; SEQ ID NO : 21) décrit par HILL et al., 1. immunol., 1994,152, 2890, et - peptide bYKL (AAYAAAKAAALAA ; SEQ ID NO : 22) décrit par MARSHALL et al., précité.
Les résultats sont illustrés par le Tableau V.
Tableau V : Sélection des traceurs par un test direct de liaison à HLA-DP4
RF = valeur de fluorescence en présence de DP4/valeur de fluorescence en l'absence de DP4 peptide 10-6 M 10-7 M 10-8 M bUL21 283-302 8,3 13,3 10,1 bIL3 127-146 10 20 17,3 bMAG 245-258 1, 5 6, 7 5, 4 bMT 451-466 5, 5 4 2 bNS-p2 1 4, 2 7, 8 bTT 947-963 1 1, 7 3, 6 2, 7 bUNKI21, 6 21, 7 20 bHA 306-318 4,9 4,7 2,7 bYKL 4, 83 2 3
Les résultats montrent que : - les peptides bUNK1, bIL3 127-146 ont une forte capacité de liaison à DP4, - les peptides bTT 947-963 et bMT 451-466 ont une faible capacité de liaison et - les peptides bNS-p2, bUL21 283-302 et bMAG 245-258 ont une capacité de liaison intermédiaire.
On peut également citer parmi les colorants directs azoïques, les colorants suivants, décrits dans le COLOUR INDEX INTERNATIONAL 3'édition : - Disperse Red 17 ; Acid Yellow 9 ; Acid Black 1 ; Basic Red 22 ; Basic Red 76 ; Basic Yellow 57 ; Basic Brown 16 ; Acid Yellow 36 ; Acid Orange 7 ; Acid Red 33 ; Acid Red 35 ; Basic Brown 17 ; Acid Yellow 23 ; Acid Orange 24 ; Disperse Black 9.
On peut aussi citer : le 1- (4'-aminodiphénylazo)-2-méthyl-4- [bis- (P-hydroxyéthyl) amino]-benzène et l'acide 4-hydroxy-3- (2-méthoxyphénylazo)-1-naphtalène sulfonique.
Parmi les colorants directs quinoniques on peut citer les colorants suivants : - Disperse Red 15 ; Solvent Violet 13 ; Acid Violet 43 ; Disperse Violet 1 ; Disperse Violet 4 ; Disperse Blue 1 ; Disperse Violet 8 ; Disperse Blue 3 ; Disperse Red 11 ; Acid Blue 62 ; Disperse Blue 7 ; Basic Blue 22 ; Disperse Violet 15 ; Basic Blue 99, ainsi que les composés suivants : -1-N-méthylmorpholiniumpropylamino-4-hydroxy-anthraquinone -1-aminopropylamino-4-méthylamino-anthraquinone - 1-aminopropylaminoanthraquinone -5-p-hydroxyéthyl-1, 4-diamino-anthraquinone -2-aminoéthylaminoanthraquinone -1, 4-bis- (P, y-dihydroxypropylamino)-anthraquinone.
Parmi les colorants directs triarylméthaniques, on peut citer les composés suivants : - Basic Green 1 ; Acid blue 9 ; Basic Violet 3 ; Basic Violet 14 ; Basic Blue 7 ; Acid Violet 49 ; Basic Blue 26 ; Acid Blue 7.
Parmi les colorants directs indoaminiques, on peut citer les composés suivants : - 2-ss-hydroxyéthylamino-5-[bis- (-4'-hydroxyéthyl) -amino ]-anilino-1, 4-benzoquinone ; - 2-p-hydroxyéthylamino-5- (2'-méthoxy-4'-amino)-anilino-1, 4-benzoquinone ; - 3-N (2'-chloro-4'-hydroxy)-phényl-acétylamino-6-méthoxy-1, 4-benzoquinone imine ; - 3-N (3'-chloro-4'-méthylamino)-phényl-uréido-6-méthyl-1, 4-benzoquinone imine ; - 3- [4'-N- (éthy !, carbamytméthyt)-arnino]-phényt-uréido-6-méthyt-1, 4-benzo-quinone imine.
Parmi les colorants directs que l'on préfère utiliser en teinture éclaircissante, on peut citer les colorants méthiniques cationiques décrits ci-dessus, et plus particulièrement encore des colorants cationiques tels que ceux décrits dans la demande de brevet européen de la demanderesse ?-1025834 qui, en milieu oxydant, génèrent des nuances très chromatiques.
Lesdits colorants directs cationiques utilisés de préférence en teinture directe éclaircissante ou non éclaircissante sont notamment choisis parmi ceux de formule (1) suivante, et ceux de formules (lI) a, (Il) b, (1I1) a, (tII) b, et (IV) à (VII), suivantes et leurs formes mésomères : (i) colorants de formules (1), (Il) a, (11) b, (hot) a, (Ill) b :
formules (1), (H) a, (lI) b, (lui) a, (III) b dans lesquelles : Ri représente un atome d'hydrogène ou un radical amino ; R2 représente un atome d'hydrogène ou un groupement nitro ;
R3 représente un atome d'hydrogène, un groupement nitro ou un radical alcoxy en Cr C4 ; R4 représente un radical alkyle en C1-C4 ; Rs représente un atome d'hydrogène ou un groupement paratrialkylC1-C4 ammoniophényle ; Re représente un atome de brome ou un groupement NHparatrialkyleC1-C4 ammoniophényle ; x- représente un anion de préférence choisi parmi le chlorure, le méthyl sulfate et l'acétate ; (ii) colorants de formules (IV), (V), (VI), (VI'), (VII) a) les composés de formule (IV) suivante : dans laquelle : Z et D représentent, identiques ou différents, un atome d'azote ou le radical-CH-, R7 et Rs, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ; un radical alkyle en C1-C4 pouvant être substitué par un radical -CN, -OH ou -NH2 ou forment avec un atome de carbone du cycle benzénique un hétérocycle éventuellement oxygéné ou azoté, pouvant être substitué par un ou plusieurs radicaux alkyle en C1-C4 ; un radical 4'-aminophényle, Rg et R'g, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou d'halogène choisi parmi le chlore, le brome, l'iode et le fluor, un radical cyano, alkyl en C1-C4 alcoxy en Ci-C4 ou acétyloxy, X'représente un anion de préférence choisi parmi le chlorure, le méthyl sulfate et l'acétate, A représente un groupement choisi par les structures A1 à A19 suivantes :
dans laquelle :
Riz représente un atome d'hydrogène ou un radical alkyle en Ci-C4, Ris représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle pouvant être substitué par un radical-CN ou par un groupement amino, un radical 4'-aminophényle ou forme avec R12 un hétérocycle éventuellement oxygéné et/ou azoté pouvant être substitué par un radical alkyle en C1-C4, R14 et R15, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un atome d'halogène tel que le brome, le chlore, l'iode ou le fluor, un radical alkyle en Ci-C4 ou alcoxy en C1-C4, un radical-CN, X - représente un anion de préférence choisi parmi le chlorure, le méthyl sulfate et l'acétate, B représente un groupement choisi par les structures 81 à B6 suivantes : dans lesquelles R16 représente un radical alkyle en C1-C4, R17 et R18, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou un radical alkyle en Ci-C4 ; c) les composés de formules (VI) et (VI') suivantes :
La sensibilité de la méthode est de 0,006 UI/ml.
Les résultats obtenus sont représentés sur le Tableau 3 ci-dessous.
Jours de récolte 3 4 5 6 7 10 11 14 Cellules foie, boîte : Anti-Xa 2,1 1, 8 5, 7 4,0 2,4 2, 2 - 0,0 Ante-lia Ratio anti-Xa/anti-lla Cellules foie transfectées, boîte : Anti-Xa 44 11,5 11,7 12, 3 11,4 13, 0 11,6 12, 9 Anti-lla Ratio anti-Xa/anti-Ha Cellules foie, flacon Anti-Xa 0, 7 Anti-lla 1,4 Ratio anti-Xa/anti-tla 0, 6---Cellules foie transfectées, flacon Anti-Xa-3, 1--Anti-lia-14--Ratio anti-Xa/anti-lla - 0,2
L'activité anti-Xa ou anti-IIa de l'héparine obtenue à partir de mastocytes en culture a été comparée à l'activité anti-Xa ou anti-IIa, respectivement, de l'héparine obtenue à partir de mucus porcin ou de l'héparine standard.
Les résultats sont illustrés dans le Tableau 4 ci-dessous.
Anti-Xa Anti-lla Xa/lla (Ul/mg) (Ul/mg) (Ul/mg) Héparine de mastocytes18 à 3, 1 14 à 30, 2à1 Héparine de mucus80811 Héparine standard 180 180 Caractérisation de la liaison à l'ATIII La liaison spécifique entre l'héparine et l'ATIII est mise en évidence par un retard de migration par des techniques d'électrophorèse comme décrit dans LEE et LANDER (Proc. Natl. Acad. Sci., 88,2768-72, 1991).
L'électrophorèse est réalisée sur gel d'agarose à 0,8% dans une solution à pH 3 (acide acétique/hydroxyde de lithium).
A 100 jj. l d'échantillon à tester, on ajoute 100 p. l de solution de concentration croissantes de 584 à 183 g/ml d'ATIII (origine humaine ; BIOGENIC).
Des dépôts de 100 l d'échantillon sont faits. La migration est de 30 minutes à 100 volts.
Les gels sont fixés par une solution de bromure d'hexadécyltriméthyl ammonium (CETAVLON-SIGMA) à 0,1%.
La révélation est effectuée par l'Azure A (0,08% dans l'eau).
Les gels sont scannés et interprétés avec le logiciel QUANTITY ONE (BIO-RAD).
Les résultats sont exprimés en % d'héparine liée à l'ATIII.
Les résultats obtenus dans le cas d'une culture en flacon de cellules de foie transfectées sont illustrés par la Figure 7.
Céramique Céramique Céramique Céramique Céramique Echelle A 8 C D E 0,5 9,1 0,2 12,2 0 90
Tableau 3 Le tableau 4 ci dessous reprend un des essais précédents et le compare à notre procédé en utilisant le même cosmétique. Il est complété par des tests relatifs à des armatures coulées en titane pur grade 4 et en alliage de titane TA6V et TA6Nb7 montrant son efficacité quel que soit le substrat. Il est illustré par l'histogramme figure 4.
Céramique A Céram A Céramique Céramique sur Ti Gr 2 sur grade A sur grade A sur sur TA6N67+IN standard 2+INV 4+INV TA6V+INV V 0,5 73,2 85,8 74 66,1
Tableau 4 La Figure 5 (Figures 5 a, b, c, d) montre des faciès d'armature après application de l'essai de flexion 9693.
Il s'agit de deux éprouvettes différentes