INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Plus particulièrement dans la cinquième étape, la concordance est vérifiée lorsque le premier élément de preuve x est égal au produit modulo n de la puissance du deuxième élément de preuve Y dont l'exposant est le troisième nombre entier e et de la puissance du quatrième nombre entier v compris dans ladite clé publique dont l'exposant est ledit nombre commun c.
Plus particulièrement encore et différemment lorsque le dialogue comprend une émission de message M par la première entité, la concordance est vérifiée dans la cinquième étape lorsque le premier élément de preuve est égal à une fonction du message numérique M auquel est attaché le premier élément de preuve et du produit modulo n de la puissance du deuxième élément de preuve Y dont l'exposant est le troisième nombre entier e et de la puissance du quatrième nombre entier v compris dans ladite clé publique dont l'exposant est ledit nombre commun c.
Particulièrement encore et différemment lorsque le procédé cryptographique est utilisé pour une signature de message M, la deuxième étape est exécutée par la première entité qui génère au moins un nombre commun en fonction du premier élément de preuve et du message numérique M auquel est attaché ledit nombre commun.
Plus particulièrement dans la cinquième étape, la concordance est vérifiée lorsque le nombre commun est égal à une fonction du message numérique M et du produit modulo n de la puissance du deuxième élément de preuve Y dont l'exposant est le troisième nombre entier e et de la puissance du quatrième nombre entier v compris dans ladite clé publique dont l'exposant est ledit nombre commun c.
L'invention a aussi pour objet un dispositif prouveur, un dispositif vérificateur et un dispositif intermédiaire, adaptés pour mettre en oeuvre le procédé cryptographique.
Considérant un dispositif prouveur muni d'une clé privée gardée secrète et protégé contre toute intrusion, pour générer une preuve dont une vérification à l'aide d'une clé publique associée à ladite clé privée permet de garantir que le dispositif prouveur est à l'origine de ladite preuve, le dispositif prouveur est remarquable en ce qu'il comprend : - des moyens de calcul agencés pour générer un premier élément de preuve à partir d'un premier nombre aléatoire gardé secret dans le dispositif prouveur, et pour générer une image de ladite clé privée en combinant au moins un premier nombre entier de clé privée avec le premier nombre aléatoire et au moins l'un de plusieurs nombres dits communs associés au premier élément de preuve, de sorte qu'il est possible de générer un deuxième élément de preuve en appliquant à ladite image de clé privée, un traitement numérique ouvert permettant de vérifier une concordance du premier élément de preuve avec le deuxième élément de preuve en appliquant une première partie de ladite clé publique au deuxième élément de preuve et au moins une deuxième partie de ladite clé publique à au moins l'un des dits nombres communs,
- des moyens de communication agencés pour émettre au moins ledit premier élément de preuve.
Avantageusement dans le dispositif prouveur : - les moyens de calcul sont d'une part agencés pour générer le premier nombre aléatoire r très supérieur à tout premier nombre entier s compris dans la clé privée gardée secrète, et pour générer le premier élément de preuve en élevant à une puissance modulo n un premier nombre entier G compris ou non dans ladite clé publique avec pour exposant le premier nombre aléatoire r, - les moyens de calcul sont d'autre part agencés pour générer l'image y de ladite clé privée par combinaison linéaire du premier nombre aléatoire r et d'au moins un premier nombre entier s de clé privée, combinaison linéaire dont au moins un coefficient multiplicatif est le ou l'un des dits nombres communs.
Différentes adaptations du dispositif prouveur sont préférées selon la version de procédé à mettre en oeuvre Par exemple, les moyens de communication sont aussi agencés pour recevoir le ou les dits nombres communs après avoir émis le premier élément de preuve.
De préférence, les moyens de communication sont agencés pour émettre l'image de clé privée.
Optionnellement, les moyens de calcul sont agencés pour générer le deuxième élément de preuve.
- Composés possédant un atome de phosphore : trempage dans une solution de bleu de molybdène puis rinçage à l'eau.
Les chromatographies sur colonne de gel de silice ont été effectuées avec de la silice Carlo Erba (silica gel 60 A, granulométrie : 35-70 u. m).
Tous les solvants utilisés ont été distillés et rendus anhydres avant usage selon les procédures décrites par D. D. Perrin et W. L. F. Amarego,"Purification of laboratory chemicals", Pergamon Press, 3rd Edition, London, 1988. Les Rift du proton ont été enregistrés à température ambiante sur un appareil Bruker AC 250 (à une fréquence de 250 MHz), ou Bruker DPX 400 (à une fréquence de 400 MHz). Les déplacement chimiques ë sont exprimés en ppm par rapport au tétraméthylsilane pris comme référence externe. L'appareil est étalonné en fonction du signal du CHC13 fixé à 7,24 ppm, de l'acétone fixé à 2,2 ppm ou de l'eau fixé à 4,79 ppm. La multiplicité des signaux est indiquée par un ou plusieurs lettres minuscules : s (singulet), d (doublet), t (triplet), q (quadruplet), m (massif ou multiplet).
Les spectres RMN du carbone 13 (découplé par rapport au proton) ont été enregistrés à température ambiante sur un appareil Bruker DPX 400 (à une fréquence de 100 MHz). Les déplacements chimiques (0) sont exprimés en ppm par rapport au tétraméthylsilane pris comme référence interne.
Les spectres RMN du phosphore 31 (découplé par rapport au proton) ont été enregistrés à température ambiante sur un appareil Bruker DPX 200 (à une CD fréquence de 81, 0 MHz). Les déplacements chimiques (8) sont exprimés en ppm par rapport à l'acide phosphorique à 85% pris comme référence externe.
Les spectres de masse ont été enregistrés sur un appareil Jeol JMS- DX300 par la méthode d'ionisation FAB positif ou négatif. Deux matrices ont été
utilisées : G/T (glycérol-thioglycérol 1/1 v/v) ou bien NOBA (alcool 3- nitrobenzylique).
- Exemple 1 : Méthode générale d'oxydation des alcools allyliques par le dichromate de pyridinium : A une solution de dichromate de pyridinium (25 mmol, 1,25 éq) dans 30 ml de N, N-diméthylformamide, on ajoute l'alcool (20 mmol, 1 éq), à-30 C et sous atmosphère d'azote. Au bout de 4 heures, on laisse la température du milieu remonter à 25 C, on ajoute 100 ml d'eau, on extrait la phase organique trois fois à l'éther éthylique. Les phases éthérées sont rassemblées, lavées une fois à l'acide chlorhydrique 1 N (100 ml), deux fois à l'eau, séchées sur Na2S04 et concentrées.
L'huile résiduelle obtenue est purifiée par chromatographie sur gel de silice (éther de pétrole : éther éthylique) pour donner des huiles incolores.
- Exemple 2 : (E, E)-3, 7, 11-Triméthyldodéca-2, 6, 10-triénal (1) : Rdt=71 % Rt=0, 8 (8 : 2, éther de pétrole : éther éthylique) RMN'H (CDCt3), (ppm) : 1, 53 (s, 3H, CH3) ; 1, 54 (s, 3H, CH3) ; 1. 62 (s, 3H, H- 14) ; 1, 92 (m, 2H, H-9) ; 1, 97 (m, 2H, H-5) ; 2, 1 (s, 2H, H-8) ; 2, 15 (m. 5H, H-4 et H- 15) ; 4, 99 (m, 1H, H-10) ; 5, 01 (m, 1H, H-6) ; 5, 82 (d. J2-1 9 Hz, 1H, H-2) ; 9, 92 (d. 1H, H-1).
RMN 13C (CDCt3), (ppm) : 16,48 (IC, C-15) ; 18,04-18, 12 (2C, C-13 et C-14) ; 26, 08 (1C, C-12) ; 26, 13-27, 02 (2C, C-5 et C-9) ; 40, 05-41, 04 (2C, C-4 et C-8) ; 122, 51-124, 52 (2C, C-6 et C-10) ; 127, 84 (lC, C-2) : 131. 93 (lC, C-ll) ; 136, 99 (lC, C-7) ; 164, 39 (lC, C-3) ; 191, 29 (IC, C-1).
SM FAB > 0 m/z (NOBA) : 221 [M+H]+.
- Exemple 3 : Méthode générale de phosphonation des aldéhydes : réaction de Horner-Wadsworth-Emmons : A l'hydrure de sodium (10,06 mmol, 1 éq) en suspension dans 20 ml de benzène est ajouté le méthylènediphosphonate de tétraéthyle (10,06 mmol, 1 éq). L'agitation magnétique est maintenue pendant 15 min, à température ambiante, sous atmosphère ZID d'azote. On dissous l'aldéhyde (10,06 mmol, 1 éq) dans 10 ml de benzène et on l'additionne goutte à goutte au mélange réactionnel.
Au bout de deux heures de réaction, le mélange est repris avec du dichlorométhane (100 ml), lavé une fois à l'eau, deux fois à la soude 0, 1 N puis avec une solution saturée de chlorure de sodium. Après décantation, la phase organique est séchée sur Na2SO4 et concentrée. L'huile résiduelle obtenu est chromatographiée sur gel de silice (éther éthylique).
Exemple 4 : (E, E, E)-4, 8, 12-Triméthylhexadéca-1, 3,7, ll- tétraènylphosphonate de diéthyle (2) : Rdt=60% Rt=0,8 (éther éthylique) RMN'H (CDCb), (ppm) : 1, 2 (t, Jus 7 7, 1 Hz, 6H, H-18) ; 1, 53 (s, 6H, H-13 et H-16) ; 1, 62 (s, 3H, H-15) ; 1, 82 (s, 3H, H-14) ; 1, 93 (m, 4H, H-9 et H-lO) ; 2, 1 (s, 4H, H-5 et H-6) ; 4, 02 (q, 4H. H-17) ; 4, 05 (m, 2H, H-7 et H-l1) ; 5, 48 (dd, JI-2 16, 6 Hz, J-p 20, 2 Hz, 1H, H-l) ; 5, 9 (d, J3-2 11, 2 Hz, 1H, H-3) ; 7, 3 (ddd, J2-p 21, 0 Hz, IH, H-2).
RMN 3Ip (CDCb), (ppm) : 21, 1.
Il est aussi avantageux que le dispositif comporte des moyens pour enficher une portion de tube Tn sur l'un des deux manchons 25,26 lorsqu'il se trouve en dehors du logement 4 quand l'autre est situé dans le logement et des moyens pour saisir et enlever une portion de tube formée Tn enfichée sur un manchon 25,26 lorsque ce dernier est sorti du logement 4 par passage de l'embase 21 de sa première position P1 à sa seconde position P2- Ces derniers moyens sont connus en eux-mêmes. Ils n'ont donc pas été illustrés et ne seront pas plus amplement décrits ici, dans l'unique souci de simplifier la présente description.
Dans une réalisation préférée, l'angle a est égal à 90 degrés, comme illustré sur les figures 1 et 2.
La valeur de l'angle ss mentionné ci-dessus est, quant à elle, déterminée de façon que, dans la seconde position Ps de l'embase 21, l'un des deux manchons 25,26 associés à la tête 24, quand il se situe sur un axe parallèle au deuxième
axe 23, puisse être en dehors de l'espace défini entre les deux mâchoires 2,3 lorsque le logement 4 est ouvert, Mo.
En outre, lorsque la valeur de l'angle a est égale à 900 comme mentionné auparavant, il est très avantageux que, dans le cas de l'utilisation du dispositif dans un milieu où règne une force de gravitation, les premier et deuxième axes 6, 23 soient horizontaux et situés dans un plan vertical, le premier axe 6 étant en outre situé au-dessus du deuxième axe 23.
Avantageusement, dans ce cas, lorsque l'embase 21 est dans sa première position P1, l'axe du manchon sur lequel est enfichée une portion de tube Tn à former est vertical et ce manchon est situé au-dessus du plan horizontal contenant le premier axe 6.
Ainsi, lorsque l'un des manchons est dans le logement 4, l'autre est dans une position verticale, ce qui facilite l'enfilage d'une portion de tube Tn sur ce dernier en utilisant la gravitation.
De préférence, le dispositif comporte aussi des moyens 50 pour maintenir une portion de tube Tn sur un manchon 25,26 après qu'elle ait été enfichée sur celui-ci. Ces moyens 50, illustrés schématiquement sur les figures, peuvent par exemple être constitués par des cliquets à ressort ou analogues qui exercent sur ces portions de tube des forces suffisantes pour les maintenir sur les manchons quand ces derniers sont en mouvement, tout en permettant de retirer les portions de tube sous l'action simplement d'une force de traction légèrement supérieure à celles exercées par ces cliquets.
Le dispositif décrit ci-dessus fonctionne et s'utilise de la façon suivante Il est supposé que, dans une position initiale comme illustré sur les figures 1 et 2, le manchon 25 est situé dans le logement 4 et porte une portion de tube Tn à former. Dans ces conditions, l'embase 21 est dans sa position P1 et l'axe 30 du manchon 26 est vertical.
Pendant que la portion de tube Tn est formée dans le logement 4 entre les mâchoires 2,3, via les moyens 10 comme par exemple des moyens d'hydroformage, une nouvelle portion de tube Tin+1 non formée est enfichée sur le manchon 26 au moyen par exemple de pinces de robot ou analogues.
Quand le formage de la portion de tube Tn est terminé, par les moyens de commande 5, les mâchoires 2,3 passent de leur position de fermeture du logement Mf à leur position d'ouverture Mo.
A cet instant, l'embase 21 est commandée en rotation autour de l'axe 23 et passe de sa position P1 à sa position P2, figure 2. Dans ce mouvement, le manchon 25 portant la portion de tube Tn formée sort du logement 4. Quand l'embase est arrivée dans sa seconde position P2, la portion de tube Tn formée est enlevée du manchon 25 au moyen de pinces de robot ou analogues.
Ensuite, l'embase étant toujours dans sa seconde position P2, la tête 24 est animée d'un mouvement de rotation autour de l'axe 33, d'un angle de 1800. Dans ce mouvement, le manchon 26 portant la portion de tube T n+1 à former prend la place du manchon 25 libéré de la portion de tube Tn formée et ce manchon 25 prend la place du manchon 26.
Dès que l'inversion des deux manchons est effectuée, l'embase 21 repasse de sa seconde position Ps à sa première position P1. Dans ce mouvement, le manchon 26 portant la nouvelle portion de tube Tin+1 à former se positionne entre les mâchoires 2,3, et le manchon 25 se positionne verticalement. Puis, simultanément, d'une part les mâchoires 2,3 passent de leur position d'ouverture du logement Mo à leur position de fermeture Mf, le formage de la portion de tube Tin+1 par les moyens de formage 10 est commandé, et d'autre part une nouvelle portion de tube Tn+2 est amenée et enfichée sur le manchon 25.
Les opérations décrites ci-dessus peuvent ainsi se reproduire successivement et simultanément autant de fois qu'il est nécessaire de réaliser le formage de portions de tube.
A la description du fonctionnement du dispositif faite ci-dessus, on constate que le temps de production de tubes formés est nettement diminué, sensiblement de moitié, par rapport au temps de production avec les dispositifs de l'art antérieur rappelés dans le préambule, atteignant ainsi les buts visés par la présente invention.
Lorsque le peptide traceur est radiomarqué ou couplé à un fluorochrome, notamment à l'europium, les complexes HLA-DP4/peptide traceur sont détectés (signal obtenu) de manière directe par la mesure de la radioactivité ou de la fluorescence émise par lesdits complexes.
Lorsque le peptide traceur est biotinylé, les complexes HLADP4/peptide traceur sont détectés (signal obtenu) de manière indirecte à l'aide de streptavidine conjuguée, par exemple par une révélation immunoenzymatique à l'aide de streptavidine conjuguée à une enzyme telle que la phosphatase alcaline et d'un substrat de la phosphatase alcaline tel que le 4-méthyl-umbelliféryl-phosphate (MUP).
Selon un autre mode de mise en oeuvre avantageux dudit procédé, le peptide traceur est utilisé à une concentration < 200 nM, de préférence inférieure à 20 nM ; de manière encore plus préférée, le traceur est utilisé à la concentration de 10 nM.
Selon encore un autre mode de mise en oeuvre avantageux dudit procédé, ladite HLA-DP4 de l'étape i) est choisie dans le groupe constitué par les molécules codées par les allèles DPA 1 * 103/DPB 1 *0401 et DPA1 *103/DPB 1 *0402.
Le procédé selon l'invention permet avantageusement de sélectionner n'importe quel ligand d'HLA-DP4 ; il s'agit aussi bien de molécules minérales ou organiques comme les peptides et les pseudopeptides.
Selon un autre mode de mise en oeuvre avantageux dudit procédé, lesdites molécules à tester représentent une banque de peptides chevauchants recouvrant la séquence d'un antigène.
La présente invention a également pour objet des ligands d'HLADP4 susceptibles d'être obtenus par le procédé de sélection tel que défini ci-dessus, correspondant ou constitués par des molécules minérales ou organiques, naturelles ou synthétiques, présentant une activité de liaison à HLA-DP4 inférieure à 1000 nM.
L'activité de liaison à HLA-DP4 d'une molécule ligand, telle que définie ci-dessus, correspond à la concentration de ladite molécule ligand qui inhibe 50 % de la liaison à HLA-DP4 d'un peptide traceur marqué, dans un test en compétition comme le procédé de sélection de ligands d'HLA-DP4 défini ci-dessus.
Parmi ces molécules ligand, on peut citer notamment les peptides et les peptides modifiés tels que les glycopeptides, les lipopeptides, les peptides comprenant des acides aminés D, des liaisons pseudo-peptidiques (pseudo-peptides) ou des modifications des extrémités C-ou N-terminales pseudopeptides.
La partie lipidique du lipopeptide ligand est notamment obtenue par addition d'un motif lipidique sur une fonction a-aminée desdits peptides ou sur une fonction réactive de la chaîne latérale d'un acide aminé de la partie peptidique ; elle peut comprendre une ou plusieurs chaînes, dérivées d'acides gras en C4-C20, éventuellement ramifiées ou insaturées (acide palmitique, acide oléique, acide linoléique, acide linolénique, acide 2-amino hexadécanoïque, pimélautide, trimétauxide) ou dérivées d'un stéroïde. Le procédé de préparation de tels lipopeptides est notamment décrit dans les Demandes internationales WO 99/40113 ou WO 99/51630. La partie lipi- dique préférée est notamment représentée par un groupe N'-acétyl-lysine N8 (palmitoyl), également dénommé Ac-K (Pam).
Selon un mode de réalisation avantageux dudit peptide ligand d'HLA-DP4 tel que défini ci-dessus, sa séquence peptidique répond à la formule générale (1) Z [XtX2X3X4X3X6X7XgX9Z2, dans laquelle : - Zl et Z2, identiques ou différents, sont nuls ou représentent chacun un peptide de 1 à 100 acides aminés tels que définis ci-dessus, de préférence de 1 à 30 acides aminés ; de manière encore plus préférée, de 1 à 10 acides aminés, - X6 représente un acide aminé aromatique ou hydrophobe,
- au moins XI ou X9 représentent un acide aminé aromatique ou hydrophobe, et - X2, X3, X4, Xs, X7 et X8 représentent chacun un acide aminé naturel ou synthétique, à condition que ledit peptide ligand d'HLA-DP4 de formule générale (1) ne corresponde à aucune des séquences SEQ ID NO : 1 à 17.
Selon un mode de réalisation avantageux dudit peptide ligand, Xl et c X9 sont choisis dans le groupe constitué par F, Y, W, L, A, V et I et X6 est choisi dans le groupe constitué par F, W, Y, L et V.
Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide ligand, il se lie spécifiquement à DPB1*0401 (activité de liaison à DPB1*0401 au moins deux fois supérieure à l'activité de liaison à DPB 1 *0402) et X9 représente A, et/ou XI est différent de A, et/ou X4 est différent de K ou de R.
Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide ligand, il se lie spécifiquement à DPB 1 *0402 (activité de liaison à DPB 1 *0402 au moins deux fois supérieure à l'activité de liaison à DPB 1*0401) et Xl représente A, et/ou X4 représente K ou R, et/ou X9 est différent de Y.
Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide ligand, Z) et Z2 sont choisis dans le groupe constitué par : - les séquences de l'antigène qui sont adjacentes à l'épitope CD4+ c restreint à HLA-DP4 tel que défini ci-dessus, et/ou - un ou plusieurs épitopes T CD8+, et/ou - des épitopes CD4+ multiples, tels que le peptide 830-846 de la toxine tétanique TT (O'SULLIVAN et al., J Immunol., 1991,147, 2663-2669), le peptide 307-319 de l'hémagglutinine HA du virus de la grippe (O'SULLIVAN et al, précité), l'épitope Pan DR (PADRE), (ALEXANDER et al., DEL GUERCIO et al., FRANKE et al, précités) et des peptides issus des antigènes de Plasmodium falciparum tels que le peptide CS. T3 (SINIGAGLIA et al., Nature, 1988,336, 778-780) et les peptides CSP, SSP2, LSA-1 et EXP-1 (DOOLAN et al., J Immunol., 2000,165, 1123-1137) et/ou
- les produits ANTARON V220@ ou GANEX V220@ (copolymère vinylpyrrolidone/ eicosène) vendu par la société I. S. P.
- (4) les--copolymères de méthacrylates ou d'acrylates d'alkyles en Ci-Ce et de monomères amphiphiles comportant au moins une chaîne grasse tels que par exemple le copolymère acrylate de méthyle/acrylate de stéaryle oxyéthyléné vendu par la société GOLDSCHMIDT sous la dénomination ANTIL 208@.
- (5) les copolymères de méthacrylates ou d'acrylates hydrophiles et de monomères hydrophobes comportant au moins une chaîne grasse tels que par exemple le copolymère méthacrylate de polyéthylèneglycol/méthacrylate de lauryle - (6) les polyuréthanes polyéthers comportant dans leur chaîne, à la fois des séquences hydrophiles de nature le plus souvent polyoxyéthylénée et des séquences hydrophobes qui peuvent être des enchaînements aliphatiques seuls et/ou des enchaînements cycloaliphatiques et/ou aromatiques.
- (7) les polymères à squelette aminoplaste éther possédant au moins une chaîne grasse, tels que les composés PURE THIX (E) proposés par la société SUD-CHEMIE.
Les polyéthers polyuréthanes peuvent être multiséquencés en particulier sous forme de tribloc. Les séquences hydrophobes peuvent être à chaque extrémité de la chaîne (par exemple : copolymère tribloc à séquence- centrale hydrophile) ou réparties à la fois aux extrémités et dans la chaîne (copolymère multiséquencé par exemple). Ces mêmes polymères peuvent être également en greffons ou en étoile.
*Les polyéthers polyuréthanes non-ioniques à chaîne grasse peuvent être des copolymères triblocs dont la séquence hydrophile est une chaîne polyoxyéthylénée comportant de 50 à 1000 groupements oxyéthylénés. Les polyéthers polyuréthanes non- ioniques comportent une liaison uréthanne entre les séquences hydrophiles, d'où l'origine du nom.
A titre d'exemples de polyéthers polyuréthanes non-ioniques à chaîne grasse utilisables dans l'invention, on peut aussi utiliser aussi le Rhéolate 205@ à fonction urée vendu par la société RHEOX ou encore les Rhéolates (D 208, 204 ou 212, ainsi que l'Acrysol RM 184@.
On peut également citer le produit ELFACOS T210@ à chaîne alkyle en C12-14 et le produit ELFACOS T212@ à chaîne alkyle en Cis de chez AKZO.
On peut aussi utiliser des solutions ou dispersions de ces polymères notamment dans l'eau ou en milieu hydroalcoolique. A titre d'exemple, de tels polymères on peut citer, le Rhéolate@ 255, le Rhéolate@ 278 et le Rhéolate@ 244 vendus par la société RHEOX. On peut aussi utiliser le produit DW 1206F et le DW 1206J proposés par la société ROHM & HAAS.
De tels polyéther polyuréthanes sont vendus notamment par la société ROHM & HAAS sous les appellations Aculyn z et Aculyn 44@ [I'ACULYN 46@ est un polycondensat de polyéthylène glycol à 150 ou 180 moles d'oxyde d'éthylène, d'alcool stéarylique et de méthylène bis (4-cyclohexyl-isocyanate) (SMDI), à 15% en poids dans une matrice de maltodextrine (4%) et d'eau (81%) ; l'ACULYN 44@ est un polycondensat de polyéthylèneglycol à 150 ou 180 moles d'oxyde d'éthylène, d'alcool décylique et de méthylène bis (4-cyclohexylisocyanate) (SMDI), à 35% en poids dans un mélange de propylèneglycol (39%) et d'eau (26%)].
Les polymères cationiques ainsi que les polymères amphotères peuvent représenter environ de 0, 01 % à 10 % en poids, de préférence de 0,05 % à 5 % en poids, et encore plus préférentiellement de 0,1 % à 3 % en poids, du poids total de la composition.
Code d'installation (seulement f 0-5 chiffres (le nombre réel de pour des rubriques de carte/ chiffres est limité à la limite émetteur) supérieure pour le format de carte spécifique) Code c 1-16 chiffres (le nombre réel de chiffres est limité à la longueur maximale pour le format de carte/émetteur spécifique) ~~~~~~~~~~~~~~~
Réponse p37 I ee e c [c] o v [v] ou p37IeeleITlf[f] ic[c1 jo)v[v] )
Option d'utilisation limitée o 0 = pas d'utilisation limitée active active ~~~~~~~ 1 = utilisation limitée par date 2 = utilisation limitée par durée, effective immédiatement 3 = utilisation limitée par durée, effective à la première ~~~~~~~~~~~utilisation 4 = utilisation limitée par nombre d'utilisations
~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ 5 = code de dirigeant actif
Valeur d'utilisation limitée v 0 = pas d'utilisation limitée active d[d] : voir l'Etape de Programme P39.1 n[n] . voir l'Etape de Programme P40.1 d [d] voir l'Etape de Pro-
~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ gramme P41.1
C[C] : voir l'Etape de Programme 42.1 [niveau = observation~seulement] 3.038 ETAPE DE PROGRAMME - SUPPRESSION D'UTILISATION LIMITEE
Suppression d'utilisation P38 e c [c] ou
limitée P381elTif[flic[c]