INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La caméra est de préférence fixée dans le boîtier de façon à ce que son objectif soit dirigé vers l'insert de la glace: c'est tout l'intérêt de la glace à insert décrite plus haut. L'insert est notamment dimensionné en fonction de l'ouverture angulaire de 30 l'objectif de la caméra, de la distance le séparant dudit objectif et de son réglage d'orientation verticale et horizontale. En fonction de ces paramètres, on choisira la dimension d'insert la plus petite possible, aussi bien pour des raisons esthétiques que des raisons optiques (pour limiter la zone de la glace pouvant perturber l'émission du faisceau lumineux du projecteur) ou des raisons de coût (le matériau de l'insert étant nettement plus coûteux que celui du reste de la glace).
L'invention a également pour objet le procédé de fabrication de la glace selon l'invention, qui se caractérise par les étapes suivantes: - on moule la glace de façon à la munir d'un ou plusieurs logements, - on insère dans le ou chaque logement le ou chacun des inserts, par surmoulage, collage et/ou fixation mécanique.
L'invention a également pour objet le véhicule muni d'au moins un tel dispositif d'éclairage/signalisation.
On purifie le produit de la réaction sur colonne de silice, on élue dans un gradient de DMSO (0-50%) dans CH2CI2. On arrive à éliminer l'adipate ainsi qu'une majorité du dimère PCACP.
La SM montre encore des traces de dimère. La masse de produit obtenue est 750mg (la masse attendue pour 100% de rendement est de 1,685g), soit un rendement d'environ 44%.
Caractérisation : 1H-RMN (200MHz ; DMSO / TMS) # (ppm) : 1.42 (tt, 4H, -CH2-(CH2)2CH2- de l'adipate) ; 1. 95 (t, 2H, -CH2-CO-NH-NH2); 2. 04 (t, 2H,-CH2-CO-NH-NH- de l'adipate) ; 2. 46 (t, 2H,-CH2-CO-NH-NH- du caproyl) ; 3. 78 (t, 2H, -CH2-N) ; 4. 12 (si, 2H, -NH-NH2) ; 5. 91 (dd, 2H, 3-H et 4-H du pyrrole) ; 6,67 (dd, 2H, 2-H et 5-H du pyrrole) ; 8. 9 (s, 3H,-NH-NH- et NH-NH2).
Pyrrole Undecanoyl Adipate Hydrazide : PUAH
Dans un ballon, on met à réagir l'ester activé PUNHS IV (5mmol, 1,74g) avec l'adipate dihydrazide (5mmol, 0,87g) dans 50mL de DMSO, durant toute la nuit, à température ambiante. On suit la réaction par CCM dans CHC13 90/ MeOH 10. On
évapore ensuite le DMSO, à la pompe à vide sous agitation et chauffage. On obtient 6,2g de produit brut.
Caractérisation du produit brut en spectrométrie de masse: 3 pics caractéristiques : 175. 1 (M+H)+ soit 174. 1 pour l'adipate ;408.2 (M+H)+ soit 407. 2 pour le PUAH ; 641.2 (M+H)+ soit 640. 2 pour le dimère PUAUP.
On purifie le mélange issu de la réaction sur colonne de silice, on élue dans un gradient de DMSO (de 0 à 20%) dans CH2CI2. On arrive à éliminer l'adipate ainsi qu'une majorité du dimère PCACP.
La SM montre encore des traces de dimère. La masse obtenue de produit est 840mg, soit un rendement d'environ 41%.
Caractérisation : 'H-RMN (200MHz ; DMSO / TMS) # (ppm) : 1.43 (tt, 4H, -CH2-(CH2)2CH2- de l'adipate) ; 1. 94 (t, 2H, -CH2-CO-NH-NH2);2.03 (t, 2H, -CH2-CO-NH-NH- de l'adipate) ; 2. 49 (t, 2H,-CH2-CO-NH-NH- de l'undecanoyl) ; 3. 79 (t, 2H, -CH2-N) ; 4. 12 (si, 2H, -NH-NH2) ; 5. 9 (dd, 2H, 3-H et 4-H du pyrrole) ; (dd, 2H, 2-H et 5-H du pyrrole) ; 8. 9 (s, 3H, -NH-NH- et NH-NH2).
2 Couplage du Bras espaceur-pyrrole au Sucre.
Les groupements pyrrole-bras espaceur sont le PUH, le PCAH et le PUAH synthétisés précédemment. Les sucres utilisés sont les fragments d'héparine ou d'héparine sulfate préparés précédemment. Le HP6 (- 6kDa) et le dp 12 (3kDa). a Réaction de couplage On fixe par cette réaction le bras espaceur par sa fonction hydrazide à la fonction aldéhyde du sucre, le sucre étant en équilibre entre une forme pyranose et une forme ouverte comportant une fonction aldéhyde. Après avoir synthétisé les bras espaceurs pyrrolés, on assemble ceux-ci au sucre pour obtenir la molécule finale, prête pour la copolymérisation.
On opère par une réaction de couplage, en deux étapes. La réaction se fait en 48H à 56 C, dans un mélange DMSO 20/ H20 1. Les étapes du couplage sont les suivantes : d'abord le bras espaceur pyrrole (PUH, PUAH ou PCAH) est couplé au sucre HP6 par une fonction hydrazone, qui s'hydrolyse facilement dans l'eau. C'est pourquoi, on réduit, dans une deuxième étape, cette fonction hydrazone en hydrazide
stable par un traitement par le cyano-borohydrure de sodium. Le principe général du couplage est résumé sur le schéma 2 ci-dessous.
Principe de couplage
Schéma 2 Dans un Eppendorf, on mélange le réactif Pyrrole-bras espaceurHydrazide (50mM dans DMSO, 250uL) au sucre HP6 (20mM dans du tampon acétate 2M pH 4,2 , 12,5 L), on place les échantillons à l'étuve à 56 C durant 48H, après 6-8H de réaction, on ajoute le réducteur cyanoborohydrure de sodium (4M dans EtOH, 25L). A l'issue de la réaction, on enlève les sels par passage sur une colonne PD10 (mini colonne d'exclusion de marque Pharmacia). On effectue ensuite une lecture au spectromètre UVvisible, à la longueur d'onde # = 232nm, pour vérifier la présence du sucre.
2001,276,41527-41542 ou Essentials of Glycobiology. 1st ed. Varki, Ajit; Cummings, Richard ; Esko, Jeffrey ; Hudson ; Gerald ; Jamey, editors. Plainview (NY) : Cold Spring Harbor Laboratory Press; cl 999]. Chimiquement, ces carbohydrates sont des molécules constituées par l'assemblage de blocs monomériques simples. Ces assemblages peuvent être d'origine naturelle, et éventuellement fractionnés, ou d'origine synthétique. Les diverses fonctions des molécules appartenant à la famille des carbohydrates reposent sur la capacité des structures carbohydrates à interagir avec un très grand nombre de molécules. L'analyse des mécanismes de reconnaissance entre les carbohydrates et les autres molécules est un domaine de la recherche en pleine émergence.
Elle devrait notamment permettre d'aboutir à la conception de nouvelles molécules
thérapeutiques et à une meilleure appréciation des risques toxicologiques de certaines molécules. A l'heure actuelle, il existe peu de méthodes systématiques permettant de produire des molécules saccharidiques. De ce fait, la détermination des caractéristiques structurales impliquées dans une interaction entre une molécule et un carbohydrate, ainsi que la caractérisation de l'interaction elle-même supposent d'entreprendre des travaux longs et fastidieux, souvent difficiles.
Il serait donc utile, pour progresser dans la connaissance des mécanismes d'interaction entre des molécules de type saccharidique et leurs ligands, de pouvoir cribler des banques de molécules de type saccharidique vis à vis d'un ligand particulier.
Les méthodes permettant l'étude d'interactions entre des molécules saccharidiques et d'autres molécules, comme par exemple des protéines, sont relativement limitées : Afin d'évaluer une interaction entre un sucre et une protéine, certains auteurs ont proposé l'utilisation de biocapteurs optiques basés sur la résonance plasmonique de surface (SPR), suivant le procédé Biacore [Ben Khalifa et al., Anal. Biochem., 2001, 293 :194- 203] ou sur une modulation d'une onde évanescente (procédé IASYS) [Kamei et al., Anal. Chem. 2001,295, 203-213]. Dans ces deux cas, ces méthodes d'analyse permettent d'obtenir des données fines d'affinité mais ne permettent pas une mise en parallèle des mesures de façon à permettre une analyse plus systématique et comparative des interactions sucres/protéines.
La fixation de polysaccharides différents sur une surface sous forme de spots, de façon à former une matrice, ou puce, qui permet d'étudier l'interaction de ces polysaccharides avec une protéine sur l'ensemble de cette surface a été décrite par différents auteurs. Ces substrats, nommés carbohydrate array ou oligosaccharide array constituent une évolution de la puce à protéines ou de la puce à ADN décrites cidessus. Ils permettent l'analyse parallélisée d'interactions entre des sucres et d'autres composés ou organismes. Plus précisément, la demande de brevet US 20020127599 décrit la fabrication d'une librairie de sucres complexes par une approche combinatoire incluant une étape enzymatique ; Wang et al., (Nature Biotech. 2002,20 : 275-281) et Fukui et al., (Nature Biotech. 2002, 20:1011-1017) décrivent tous deux des puces à sucres dans lesquelles les sucres sont simplement adsorbés sur un substrat de nitrocellulose, aucune réaction chimique n'étant nécessaire pour fabriquer la puce. Dans tous ces cas, la détection des interactions est réalisée par mesure de fluorescence. Une approche se fondant sur le greffage chimique a été développée par Houseman et al., (Chem. Biol. 2002,9 : 443).
Celle-ci consiste en une réaction de Diels et Aider entre un sucre modifié par un bras terminé par un groupe cyclopentadiène et une benzoquinone présente sur une couche autoassemblée déposée sur le substrat. Pour construire la matrice, des gouttelettes de différents sucres activés sont déposées sur le substrat et laissées 2 heures à 37 C afin que la réaction soit complète. Dans cet exemple, la détection est également réalisée par fluorescence. Une autre façon de réaliser des multi-capteurs à sucres a été décrite plus récemment [Smith et al., J. Am. Chem. Soc, 2003,125, 6140-6148] : elle consiste à fixer des sucres sur un substrat d'or portant une couche de thiols auto-assemblés. Les sucres sont préalablement modifiés par un thiol afin de former une liaison di-sulfure. Les temps de couplage entre le sucre modifié et le substrat étant très longs, la réaction est conduite dans des canaux moulés dans du polydiméthylsiloxane (PDMS), ce qui empêche toute évaporation. Les sucres sont donc déposés sous forme de 6 bandes parallèles espacées de lmm les unes des autres. La détection est alors réalisée par un procédé de SPR parallélisé.
Les procédés décrits ci-dessus pour la fabrication des puces à sucres ont plusieurs inconvénients : dans le procédé selon lequel les polysaccharides sont simplement adsorbés sur de la nitrocellulose, la fixation étant non spécifique, il sera difficile, voire impossible, d'immobiliser tous les sucres d'une façon identique surtout ceux dont la taille est petite. Or, pour étudier la relation structure/activité d'un échantillon de molécules, les mesures d'interactions avec des oligosaccharides très courts sont nécessaires. En outre, ce support est incompatible avec les méthodes permettant une détection sans traceur et en temps réel des interactions biologiques, notamment la technique SPR. Il n'est donc pas possible d'obtenir des données cinétiques à partir de cette technique.
Les puces proposées par Houseman et al., ou Smith et al., permettent une fixation spécifique des oligosaccharides sur un substrat d'or bien adapté à une lecture en temps réel et sans traceur. Cependant, dans le premier cas, la fixation du sucre modifié fait intervenir une réaction chimique de couplage sur le substrat qui est très lente (2 heures à 37 C). Il est bien connu, dans le domaine des puces à ADN, que les problèmes liés au séchage des gouttelettes durant l'étape de greffage de la molécule biologique sur le substrat engendrent la formation de spots hétérogènes. Afin d'éviter ces problèmes de séchage, Smith et al., réalisent ces couplages dans des micro-canaux. Les temps de greffage sont là aussi extrêmement longs (12h) et conduisent à la formation, non pas de spots, mais de bandes parallèles. En outre, ces deux procédés supposent l'utilisation d'une couche autoassemblée de thiols dont la stabilité dans le temps est faible. Le procédé décrit par la
société Glycominds (demande de brevet américain US2002/0127599) est peu explicite et produit une réponse en fluorescence.
On a donc cherché à construire des puces à sucre de façon plus rapide et sur des substrats qui soient compatibles à la fois avec une lecture par fluorescence et avec des procédés optiques de type résonance plasmonique de façon à pouvoir réaliser des mesures en temps réel et à pouvoir mesurer la cinétique de l'interaction sucre/ligand.
La solution à ce problème, qui fait l'objet de la présente invention, repose sur le greffage des sucres sur des polymères électropolymérisables.
On sait incorporer des molécules d'ADN directement lors de la synthèse d'un polymère conducteur comme le polypyrrole tout en gardant une bonne activité biologique [Shimidzu, Reactive polymers 1987, 6 :221-227 ou Wang et al.,. Anal. Chim.
Acta 1999,402: 7-12]. De la même façon, des protéines peuvent être incorporées passivement dans des films de polymères conducteurs et garder une bonne activité [Umana et al., Anal. Chem ; 1986, 58:2979-2983 ou Hammerle et al., Sens. Actuat., 1992 , B6 :106-112]. Les procédés d'incorporation d'enzymes sont très utilisés dans le domaine des biocapteurs à glucose par exemple (immobilisation de la glucose oxydase).
Conformément à cet enseignement de l'art antérieur, nous avons donc essayé d'incorporer un oligosaccharide chargé (fragment d'héparane sulfate) dans une matrice de polymère (polypyrrole) puis de réaliser une reconnaissance spécifique grâce à une protéine adéquate et aucune réactivité n'a été détectée.
Des polymères électropolymérisables greffés par des acides (poly) nucléiques sont déjà utilisés dans le domaine des puces à ADN et permettent le greffage ou la synthèse de brins d'ADN sur des surfaces solides. De tels polymères ont montré une bonne efficacité pour la préparation de supports de criblage de ligands d'acides polynucléiques (Livache et al.,. Nucleic Acids Res.1994, 22:2915-2921 ;W094/22889).
On observe, dans le même temps, que la profondeur de la tranchée est restée identique, à la précision de la mesure, ce qui assure d'un dépôt conforme, même au fond de la tranchée.
Exemple n 11 : Obtention d'un film organique conforme sur une gravure à 3 m par électro-greffage d'un film de P4VP.
Cet exemple, qui complète l'exemple n 10, permet d'illustrer la conformité qui peut être obtenue grâce à des films de polymères électro-greffés selon le procédé de la présente invention.
Une lame de TiN comparable, tant du point de vue de la composition que de la topologie de gravure, à celle de l'exemple précédent est utilisée dans le présent exemple. La largeur de gravure est toutefois de 3 m, ce qui indique des tranchées de 3 m de large et espacées de 3 m (la profondeur étant toujours égale à 400 nm) (Figure 18) .
La lame est traitée selon un protocole d'électro-greffage comparable à celui de l'exemple n 7, où l'on a rajouté de la divinyl benzène (DVB) à 10% en poids, et utilisé 20 balayages jusqu'à un potentiel d'arrêt de - 3,2 V/(Ag+/Ag). La lame ainsi traitée est examinée avec un AFM, selon le même mode que dans l'exemple n 10.
On observe (Figure 18) que la largeur des tranchées est passée de 3050 15 nm à 2780 15 nm, soit une épaisseur de film sur chaque paroi de l'ordre de 135 15 nm. Dans le même temps, on constate que la profondeur de la tranchée reste la même, à la précision de la mesure, ce qui prouve qu'on a bien réalisé un revêtement conforme grâce au film électro-greffé.
Des images AFM (respectivement en module et en phase) de zones plus larges de la surface ainsi
traitée, on montré que le résultat est obtenu de façon reproductible sur de grandes échelles.
Exemple n 12 . Obtention d'un film organique conforme sur une gravure à 1 m par électro-greffage d'un film de P4VP.
Le même mode opératoire que celui de l'exemple n 11 est appliqué ici sur une gravure à 1 m, avec formation d'un film de P4VP conforme. On n'utilise que 15 balayages voltammétriques dans une solution sans DVB.
Les profils obtenus sont présentés à la Figure 19 annexée. On observe que le profil obtenu a une forme en V , caractéristique des profils obtenus lorsque la gravure est de taille comparable à l'échancrure de la pointe du microscope AFM utilisé pour la mesure : ceci conduit à une image où la forme effective du profil est convoluée par la géométrie de la pointe, qui est inconnue. Ceci permet néanmoins d'affirmer que la profondeur apparemment mesurée sur les profils avec film de P4VP est une borne inférieure.
Malgré cela, on mesure une profondeur après électro-greffage qui est de 420 15 nm, c'est-à-dire la même que celle avant électro-greffage. Les variations sur la largeur de la tranchée montrent la formation d'un film de 252 15 nm, conforme à la topologie du substrat, même à grande échelle sur la surface.
Exemple n 13 . Obtention d'un film organique conforme sur une gravure à 300 nm par électro-greffage d'un film de P4VP.
Cet exemple illustre l'obtention d'un film de P4VP conforme, remplis de précurseurs métalliques, sur une gravure de 300 nm (c'est à dire comportant des tranchées de 300 nm de large et espacées de 300 nm, la profondeur étant toujours de 400 nm). Il montre donc les potentialités de l'invention sur des surfaces présentant de forts ratios d'aspect. Il montre également les potentialités de l'électro-greffage comme mode de réalisation pour travailler à des échelles compatibles avec les finesses de gravure actuelles et à venir dans le domaine de la micro-électronique.
Les lames de TiN sont comparables à celles utilisées précédemment. Le mode opératoire d'électrogreffage est du même type que celui utilisé pour l'exemple n 7 (avec seulement 10 balayages voltammétriques). Les films de P4VP obtenus sont remplis avec des ions cuivriques selon le même mode opératoire que celui utilisé dans les exemples 8 et 9.
La réduction des précurseurs n'est volontairement pas effectuée, de manière à obtenir des films remplis de sulfate de cuivre, en tant que précurseur du matériau métallique, donc isolants. Ceci permet de faciliter la mise en évidence de la formation de la couche par microscopie électronique à balayage (MEB), tel qu'illustré sur les Figures 20 et 21 annexées sur la tranche de la lame qui a été cassée de façon à ce que le bord de fracture croise la direction des tranchées.
Ce schéma est globalisé sur la figure 7.
On décrit le couplage magnétique des aimants avec les griffes par un ensemble de perméances ##+1 ou 2 et ##-1 ou 2 variables avec la position et qui intègrent la perméance d'entrefer et la perméance interne d'aimant.
On admettra que l'on peut rendre compte de ces variations par:
Dans ces conditions, le couple électromagnétique d'une galette au niveau de l'entrefer 1 s'écrit: et au niveau de l'entrefer 2 : avec Aalb: perméance mutuelle entre aimants al et bobine b, etc.
Les termes affectés du coefficient correspondent aux composantes réluctantes.
On va maintenant évaluer chacun des termes de ces expressions des couples.
Remarque préliminaire: les aimants étant "éteints" (court-circuit), les groupes de perméances entrefer-aimants repérés par un cerclage sur la figure 7 ont respectivement une valeur équivalente de:
c'est-à-dire une valeur constante. Evaluation des couples réluctants en dAalal . dAa2a2 . dAbb et dabb da2 ' dal ' dal da2 Il en résulte de la remarque préliminaire que: => ces couples réluctants sont nuls sur chaque galette Evaluation des couples réluctants en dAalalet dAa2a2 dal da2 Le calcul de Aalal conduit à une formulation du type: A a 1 a 1 = - A a 1 a 1 max . OS 2 (pl.a 1 ) + este avec :
Sur une galette, il existe donc un couple réluctant associé aux aimants dans l'entrefer 1 :
Ce couple sur une galette est pulsant à 2 fois la fréquence synchrone de l'entrefer 1; il est proportionnel au nombre de pôles pi; les fuites tendent à l'atténuer.
Sa composition polyphasée sur l'ensemble des galettes donne cependant une résultante nulle ; pour le cas particulier où n=2 qui s'apparente en fait au monophasé, avec deux bobinages en opposition de phase).
De même, il existe dans l'entrefer 2 au niveau de chaque galette un couple réluctant pulsant associé aux aimants 2; il est proportionnel au nombre de pôles p2 et
les fuites tendent à l'atténuer. A nouveau, la résultante polyphasée en est nulle sauf pour le cas n=2.
Evaluation des couples d'interaction entre aimants des deux entrefers (termes en dAala2 et dAala2 ) dal da2 Le calcul de Aala2 sur la galette i conduit à: avec, lorsque les perméances de fuite peuvent être négligées:
Les perméances de fuite conduisent en pratique à une réduction de ce terme, la formulation complète étant:
Ainsi, le couple lié à l'interaction entre groupes d'aimants 1 et 2 est sur l'entrefer 1 de la galette i de: soit encore:
Composants Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 5,0 Stéarate de glycéryle 1,5 Alcool stéarylique 1,5 Lanoline 1, 5 Polysorbate 60 1,3 Stéarate de sorbitane 0,5 Huile végétale hydrogénée 1,0 Huile minérale 5,0 Squalane 3, 0 Trioctanoïne 2,0 Diméthicone 0,8 Acétate de tocophérol 0,5 Polymère carboxyvinylique 0,12 Glycérine 5,0 1,3-butylglycol 3,0 Hyaluronate de sodium 5,0 Tri-éthanolamine 0,12 Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée ~~~ Complément ~~~~ Total 100 FORMULATION IV : Crème nutritive Un exemple de crème nutritive contenant un extrait de Bergenia emeiensis de la présente invention est formulé selon le tableau VII :
Composants Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 6,0 Monostéarate de glycérol lypophile 2,0 Alcool cétéarylique 2,2 Acide stéarique 1,5 Cire 1,0 Polysorbate 60 1,5 Stéarate de sorbitane 0,6 Huile végétale hydrogénée 1,0 Squalane 3,0 Huile minérale 5,0 Trioctanoïne 5,0 Diméthicone 1,0 Silicate de magnésium et de sodium 0,1 Glycérine 5,0 Bétaïne 3,0 Tri-éthanolamine 1,0 Hyaluronate de sodium 4,0 Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée ~~~ ~~~ Complément ~~~~ Total 100 FORMULATION V : Crème de massage Un exemple de crème de massage contenant un extrait de Bergenia emeiensis de la présente invention est formulé selon le tableau VIII : Tableau VIII
Composants Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 6,0 Monostéarate de glycérol lypophile 1,5 Alcool stéarylique 1,5 Acide stéarique 1,0 Polysorbate 60 1,5 Stéarate de sorbitane 0,6 Isostéarate d'isostéaryle 5,0 Squalane 5,0 Huile minérale 35,0 Diméthicone 0,5
Tableau VIII - suite Hydroxyéthylcellulose 0,12 Glycérine 6,0 Tri-éthanolamine 0,7 Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée Complément Total 100 FORMULATION VI : Essence Un exemple d'essence contenant un extrait de Bergenia emeiensis de la présente invention est formulé selon le tableau IX : Tableau IX
Composants Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 5,0 Glycérine 10,0 Bétaïne 5,0 PEG 1500 2,0 Alantoïne 0,1 DL-panténol 0,3 EDTA-2Na 0,02 Benzophénone 9 0,04 Hydroxyéthylcellulose 0,1 Hyaluronate de sodium 8,0 Polymère carboxyvinylique 0,2 Thriéthanolamine 0,18 Octyldodécanol 0,3 Octyldodéces-16 0,4 Ethanol 6,0 Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée Complément Total 100 FORMULATION VII : Masque anti-rides Un exemple de masque anti-rides contenant un extrait de Bergenia emeiensis de la présente invention est formulé selon le tableau X :
Composants ~~~ Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 3,0 Alcool polyvinylique 15,0 Gomme de cellulose 0,15 Glycérine 3,0 PEG 1500 2,0 Cyclodextrine 0,15 DL-panténol 0,4 Allantoïne 0,1 Glycyrrhizinate de monoammonium 0,3 Nicotinamide 0,5 Ethanol 6,0 Huile de ricin hydrogénée PEG 40 0,3 Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée ~~~~ ~~~~~~~ Complément ~~~~ Total 100 EXEMPLE EXPERIMENTAL 3 : Efficacité des compositions cosmétiques de la présente invention sur la correction des rides de la peau L'efficacité de correction des rides de la peau des compositions cosmétiques de la présente invention est évaluée par des applications pratiques. La crème nutritive contenant 6 % d'extrait de Bergenia emeiensis décrite dans la formulation IV est employée, et l'extrait de Bergenia emeiensis est remplacé par la même proportion d'eau distillée pour le témoin dans cet essai.
Tout d'abord, 20 femmes âgées de 30 à 40 ans réparties au hasard en deux groupes reçoivent l'application de la crème nutritive de la formulation IV ou de sa crème témoin.
L'application autour des yeux dure 2 mois avec deux applications par jour matin et soir. L'efficacité de la correction des rides de la peau est évaluée par observation comparé à des groupes témoins. Les résultats sont résumés dans le tableau XI suivant : Tableau XI
Efficace Moyennement Inefficace Efficacité efficace (%) Formulation IV 14 3 3 85,0 Témoin 3 4 10 35,0
Comme indiqué dans le tableau XI, la formulation IV conforme à la présente invention présente un effet de correction significativement amélioré des rides de la peau comparé à sa formulation témoin. En outre, il n'y a pas d'affection de la peau chez aucune personne ayant subi le test.