INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
pourtour du flasque fixe 8 et qui recouvre partiellement le flasque mobile 9 pour fermer le boîtier et maintenir les pourtours des deux flasques l'un contre l'autre, - trois grains métalliques 12 pourvus chacun d'une denture extérieure 13 propre à coopérer avec la denture intérieure 10 du flasque mobile 9, ces trois grains 12 étant guidés en coulissement radial dans des rainures de guidage 14 ménagées dans le flasque fixe 8, les directions de coulissement des trois grains 12 étant décalées mutuellement de 120 degrés autour de l'axe X, - une came 15 présentant une ouverture centrale 15a et agissant sur les trois grains 12, cette came 15 étant déplaçable angulairement autour de l'axe X entre, d'une part, une position verrouillée où elle repousse les moyens de blocage constitués par les grains 12 vers une position dans laquelle les dentures extérieures 13 des grains 12 coopèrent avec la denture intérieure 10 du flasque mobile 9 en bloquant ce dernier par rapport au flasque fixe 8, et d'autre part, une position déverrouillée dans laquelle ladite came 5 permet aux grains 12 de reculer vers une position effacée où leurs dentures extérieures 13 sont dégagées de la denture intérieure 10 du flasque mobile 9 pour permettre sa rotation par rapport au flasque fixe 8, et - trois ressorts 16 constitués, par exemple, par des lames enroulées en spirale et qui sollicitent angulairement la came 15 vers sa position angulaire de repos correspondant à sa position de verrouillage qui bloque le flasque mobile 9 par rapport au flasque fixe 8.
Les deux articulations 5 doivent donc être convenablement positionnées angulairement l'une par rapport à l'autre sur le siège du véhicule afin que l'utilisateur, en tournant la poignée 6, débloque simultanément les cames de leur position verrouillée vers leur position déverrouillée.
Ce déblocage simultané des deux articulations, afin d'éviter toute détérioration du mécanisme interne aux articulations, implique que les cames doivent être également parfaitement positionnées l'une par rapport à l'autre.
Préalablement au montage des articulations sur le siège du véhicule, un organe de commande 17,19 est emmanché à force dans l'ouverture centrale 15a de la came 15 de chaque articulation 5 tout en étant indexé angulairement dans une position prédéterminée par rapport au flasque fixe 8 qui comporte lui-même des moyens de repérage angulaire par rapport à l'armature 2a de l'assise 2 du siège.
Comme on peut le voir sur la figure 5, le flasque fixe 8 de chaque articulation comprend une pluralité de plots 18 destinés à être solidarisés, par exemple par soudure, dans des logements de forme complémentaire réalisés sur l'armature 2a de l'assise 2 du siège. Les moyens de repérage angulaire, dans l'exemple considéré, sont constitués par un plot de repère 18a dont la forme extérieure est différente de celle des autres picots. Ce plot de repère 18a peut, par exemple, présenter un épaulement 18b et dans ce cas le logement destiné à la recevoir sur l'armature d'assise 2a aura une forme complémentaire afin d'interdire l'introduction accidentelle des autres plots 18.
Ainsi, lors de l'assemblage sur le siège des articulations préalablement équipées d'un tel arbre de commande, il suffit simplement de disposer les flasques fixes 8 sur l'armature d'assise 2a, et les arbres de commande sont alors automatiquement positionnés angulairement l'un par rapport à l'autre, ce qui évite tout réglage de positionnement ultérieur des articulations.
Comme représenté sur la figure 2, les deux articulations 5 ou plus exactement leur organe de commande 17, sont reliés l'un par rapport à l'autre par une barre de
liaison 7 qui permet, par le biais de l'actionnement de la poignée 6 d'entraîner en rotation les cames desdites articulations 5.
A cet effet, chaque organe de commande 17,19 présente un évidement traversant 171,191 qui s'étend selon l'axe de rotation X et dans lequel la barre de liaison 7 est introduite par translation suivant l'axe de rotation X.
L'organe de commande 17, tel que représenté sur les figures 4 et 6 est, par exemple, pourvu d'un évidement définissant deux logements 171 et 172 ayant des dimensions différentes tandis que l'organe de commande 19 de l'autre articulation comprend un évidement 191 définissant un seul logement de forme identique au logement 171 de l'autre articulation.
Ainsi, une fois que les deux articulations sont montées sur le siège, il est encore possible d'apporter la barre de liaison 7 par translation de cette dernière suivant l'axe de rotation X.
Tel que représenté sur la figure 6, la barre de liaison 7 est tout d'abord introduite dans l'organe de commande 19 puis elle est translatée vers l'organe de commande 17 jusqu'à ce qu'elle vienne en butée contre l'épaulement interne défini entre les deux logements 171 et 172 de l'organe de commande 17.
La phase organique est alors séchée sur sulfate de magnésium puis filtrée et enfin évaporée sous vide.
Le résidu est alors chromatographié sur gel de silice. Le composé disulfonylé est obtenu avec un rendement supérieur à 85 %.
Exemple 1 On prépare dans cet exemple, le réactif A à savoir le (lS, 2S)-N-acétyl-1, 2bis (trifluorométhanesulfonamido) cyclohexane, à partir de S, 2S)-1, 2bis (trifluorométhane sulfonamido) cyclohexane et de chlorure d'acétyle.
Dans un ballon de 50 mL muni d'un barreau aimanté avec agitation par agitateur magnétique, rigoureusement sec puis placé sous atmosphère d'argon, on charge : - 1 g (2, 64 mmol) de (lys, 2S)-1, 2-bis (trifluorométhane sulfonamido) cyclohexane, - 550 uL (3,96 mmol ; 1,5 éq. ) de triéthylamine, - 188 uL (2,64 mmol ; 1 éq. ) de chlorure d'acétyle, - 20 mL de diéthyléther.
On commence par charger la disulfonamide et le diéthyléther sous atmosphère inerte (argon) puis le mélange réactionnel est refroidi à une température de-20 C à l'aide d'un bain de carboglace dans l'acétone.
On coule la triéthylamine puis l'agent d'acétylation (chlorure d'acide) goutte à goutte, à l'aide d'une seringue de précision.
Le mélange réactionnel est laissé sous agitation à 0 C pendant 3 heures, puis le précipité formé est filtré.
Le composé désiré est obtenu avec un rendement de 85 % et une pureté supérieure à 95 %.
On obtient le réactif A qui répond à ia formuie suivante OU \/ 10 Formule brute : 5 LCF3 6. CH4, N2, S2 6 2 Masse molaire : 7U'IL 1 s"S-CFg 420, 17 g/mol d/\ 9 Aspect : Solide blanc Les analyses sont les suivantes : CCM Rf = 0, 76 (éluant : AcOEt/hexane : 2/8 ; révélateur : vert de bromocrésol) RMN 1H 300 MHz, CDOg ô (ppm) 1, 10-1, 60 (m, 3H, H, yole) ; 1, 70-2, 00 (m, 3H, H, e) ; 2, 05-2, 35 (m, 1 H, Hcvc, e) ; 2, 35-2, 60 (m, 1 H, Hcvc, e) ; 2, 52 (s, 3H, H1) ; 3, 60-4, 05 (m, 1 H, H4) ; 4, 10 à 4, 60 (m, 1 H, Ha) ; 5, 04 (d, 1H, H-H4=10Hz, N-H) RMN 13C 75 MHz, CDC'3 ô (ppm) 24,4 (C6) ; 25,5 (C7) ; 26,8 (C1) ; 29,1 (C5) ; 35,4 (C8) ; 54,5 (C4) ; 66,9(C3); 119,4(q, JC-F=321 Hz, C10); 119,5 (q, JC-F=322Hz, C9); 170,0(C2) IR Transmission, film (Csl) v (cm') : 3296 ; 3221 ; 2948 ; 2868 ; 1737 ; 1716 ; 1456 ; 1385 ; 1233 ; 1200 ; 1131 ; 1070 ; 1016 ; 971 ; 942 ; 918 ; 896 ; 736 ; 627 ; 611 ; 590 ; 532 pf 110 C aD +17, 46 (c = 1, 5 ; CHC ! g) SM IC (NHa) (m/z) : 438 [M+NHJ+ ; 456 [M+2NHJ+ Exemple 2 Dans cet exemple, on prépare le réactif B à savoir le (1S, 2S)-N-acétyl-1,2bis (pentafluorobenzènesulfonamido) cyclohexane, à partir de (lus, 2S)-1, 2- bis (pentafluorobenzène sulfonamido) cyclohexane et de chlorure d'acétyle.
On obtient avec un rendement de 82 %, le réactif B qui répond à la formule suivante :
y/=s Formute brute : q 1F5 Formule brute : 6 \J CH,, FN, 0, S2 2 Masse molaire : 'r\ 616, 23 g/mol 0 0 Aspect : Solide blanc Les analyses sont les suivantes : CCM Rf = 0, 47 (éluant : AcOEt/hexane : 2/8 ; révélateur : vert de bromocrésol) RMN'H 300 MHz, CDOg ô (ppm) 1, 05-1, 46 (m, 3H, H ycle) ; 1, 50-1, 85 (m, 3H, Hcyc, e) ; 1, 85-2, 15 (m, 1H, H,,) ; 2, 20-2, 61 (m, 1H, HJ ; 2, 41 (s, 3H, H1) ; 3, 75-4, 10 (m, 1 H, 1 H, Hcvcle) ; 2, 20-2, 61 (m, 1 H, Hr H4) ; 4, 15-4, 35 (m, 1 H, Ha) ; 4, 90-5, 40 (m, 1 H, N-H) RMN 13C 75 MHz, CDC13 ô (ppm) 24, 4 (C7) ; 25, 6 (C6) ; 26, 6 (C1) ; 29, 5 (C5) ; 35, 1 (C8) ; 53, 2 (C4) ; 65, 2 (C3) ; 116, 8 (m, CAr) ; 136, 5 (m, CAr) ; 139, 9 (m, CAr) ; 142, 8 (m, CAr) ; 146, 2 (m, CAr) ; 170, 5 (C2) IR Transmission, film (Csl) v (cm') : 3287 ; 2943 ; 1716 ; 1645 ; 1523 ; 1500 ; 1372 ; 1302 ; 1226 ; 1174 ; 1103 ; 993 ; 731 ; 608 ; 578 Pf 73-74 C SM IC (NHg) (m/z) : 634 [M+NHJ---------------------------Exemple 3 Dans cet exemple, on prépare le réactif C à savoir le (lus, 28) -N-acétyl-1, 2bis (p-trifluorométhylbenzènesulfonamido) cyclohexane à partir de (lus, 2S)-1, 2bis (p-trifluorométhylbenzènesulfonamido) cyclohexane et de chlorure d'acétyle.
On obtient avec un rendement de 84 %, le réactif C qui répond à la formule suivante :
oo 9 10 0 9 10 Formule brute : C. HF. N. OA L JL. U 67u."l U~, 2 1 73N'/\ Masse molaire : QS/ 572, 37 g/mol 0 0 Aspect : Solide blanc Les analyses sontles sulvantes CCM Rf = 0,25 (éluant : AcOEt/hexane : 2/8 ; révélateur : vert de bromocrésol) RMN H 300 MHz, CDCl3 # (ppm) 1,15-1,35 (m, 3H, Hcycle); 1,40-1, 58 (m, 1 H, HCYcle) ; 1,60-1, 82 (m, 2H, Hcvc, ; 1,95-2, 10 (m, 1 H, Hcvcle) ; 2,05 (s, 3H, H1) ; 2, 15-2,35 (m, 1 H, Hcyc, ; 3,75-3, 95 (m, 1 H, H4); 3,96-4,16 (m, 1H, H3); 4,87 (d, H, JN-H- H4=9,03Hz, N-H); 7,82 (dd, 4H, JH9-H9=26,2Hz, JH9-H10=8,1Hz, H9); 7,80- 8,10 (m, 4H, H10) RMN C 75 MHz, CDCl3 ô (ppm) 24,5 (C7) ; 25,7 (C6) ; 26,6 (C1) ; 29,3 (C5) ; 36,1 (C8) ; 53, 1 (C4) ; 64,4 (C3) ; 124,6 (q, JC-F=270Hz, C11) ; 125,1 (q, JC-F=272Hz, C12) ; 126,1 (CAr) ; 126,9 (CAr) ; 127,8 (CAr) 170,2 (C2) IR Transmission, film (Csl) v (cm-1): 3366 ; 3155 ; 2942 ; 2863 ; 1794 ; 1705 ; 1609 ; 1467 ; 1360 ; 1323 ; 1233 ; 1171 ; 144 ; 1064 ; 909 ; 735 ; 651 ; 617 Pf 158-160 C aD + 18, 610 (c = 0, 63 ; CHC) s) SM IC (NHg) (m/z) : 590 [M+NHJ'----------------------------- Exemple 4 Dans cet exemple, on prépare le réactif D à savoir le (lS, 28) -N-propionyl- 1,2-bis (trifluorométhanesulfonamido) cyclohexane, à partir de (lus, 2S)-1, 2bis (trifluorométhane sulfonamido) cyclohexane et de chlorure de propionyle.
L'invention concerne également une méthode d'analyse pour déterminer la susceptibilité d'un virus VIH à un composé inhibiteur de la transcriptase inverse, consistant à ajouter ou non ledit composé inhibiteur de la transcriptase inverse, éventuellement à des concentrations différentes, au deuxième hôte cellulaire, préalablement à l'infection de celui-ci par les particules virales obtenues à l'étape (e), et comprenant à l'étape (g) la comparaison de l'expression du gène
marqueur avec et sans composé inhibiteur de la transcriptase inverse Selon un troisième mode de mise en oeuvre particulier de la méthode d'analyse de l'invention, l'amplification par PCR de l'étape (b) est réalisée avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour l'intégrase, et le vecteur de l'étape (c) est un vecteur retroviral délété de tout ou partie du gène codant pour l'intégrase.
Avantageusement, l'amplification de l'étape (b) selon la méthode d'analyse de l'invention avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour l'intégrase est effectuée avec la paire d'amorces ayant une taille comprise entre 10 et 50 oligonucléotides, comprenant les séquences : INT B± 5'GTTACTAATAGAGGAAGACAAA3' (SEQ ID No : 9) et INT B- 5'TTTTGGTGTTATTAATGCT3' (SEQ ID No : 10), ou encore des séquences analogues de celles-ci portant des mutations d'un ou plusieurs nucléotides qui ne modifient pas de manière essentielle leur capacité à hybrider la région du gène de l'intégrase portant au moins une mutation, suivie d'une deuxième étape d'amplification, avec la paire d'amorces : INT V+ 5'CACCCTAACTGACACAACAA3' (SEQ ID No : 11) et INT V-5'AAGGCCTTTCTTATAGCAGA3' (SEQ ID No : 12), ou encore des séquences analogues de celles-ci portant des mutations d'un ou plusieurs nucléotides qui ne modifient pas de manière essentielle leur capacité à hybrider la région du gène de l'intégrase portant au moins une mutation
Tout préférentiellement, l'amplification de l'étape (b) selon la méthode d'analyse de l'invention avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour l'intégrase est effectuée avec la paire d'amorces : INT B±5'GTTACTAATAGAGGAAGACAAA3' (SEQ ID No : 9) et INT B-5'TTTTGGTGTTATTAATGCT3' (SEQ ID No : 10), suivie d'une deuxième étape d'amplification, avec la paire d'amorces : INT V+ 5'CACCCTAACTGACACAACAA3' (SEQ ID No : 11) et INT V-5'AAGGCCTTTCTTATAGCAGA3' (SEQ ID No : 12), pour obtenir un fragment d'ADN de 1460 paires de bases s'étendant des résidus 3950 à 5410 inclus et le vecteur de l'étape (c) est un vecteur retroviral délété de toute la région du cadre de lecture pol codant pour l'intégrase du VIH-1 s'étendant des résidus 4228 à 5093 inclus et de la région codant pour l'enveloppe virale entre les positions 6343 et 7611 incluses.
Avantageusement, l'amplification de l'étape (b) avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour la protéine d'enveloppe est effectuée avec une paire d'amorces ayant une taille comprise entre 10 et 50 oligonucléotides, comprenant soit les séquences : FIN-A : 5'TCAAATATTACAGGGCTGCT3' (SEQ ID No : 13) et FIN-B : 5'TAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 14), soit les séquences FuA : 5'AAGCAATGTATGCCCCTCCCAT3' (SEQ ID No : 23) et FuB : 5'GGTGGTAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 24) ou constitués par des fragments de celles-ci ou encore par des séquences analogues de celles-ci portant des mutations d'un ou plusieurs nucléotides qui ne modifient pas de manière essentielle leur capacité à hybrider la région du gène de l'enveloppe portant au moins une mutation suivie d'une deuxième étape d'amplification, effectuée avec une paire d'amorces ayant
une taille comprise entre 10 et 50 oligonucléotides, comprenant soit les séquences : FIN-C : 5'CTATTAACAAGAGATGGTGG3' (SEQ ID No : 15) et FIN-D : 5'TCCACCTTCTTCTTCGATT3' (SEQ ID No : 16), soit les séquences FuC : 5'ATATGAGGGACAATTGGAGAAGTGA3' (SEQ ID No : 25), utilisée en combinaison avec un mélange de deux séquences suivantes : Fut 1 5'TCTGTCTCTCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 26) et FuD2 : 5'TCTGTCTTGCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 27) ou constitués par des fragments de celles-ci, ou encore par des séquences analogues de celles-ci portant des mutations d'un ou plusieurs nucléotides qui ne modifient pas de manière essentielle leur capacité à hybrider la région du gène de l'enveloppe portant au moins une mutation Tout préférentiellement, l'amplification de l'étape (b) avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour la protéine d'enveloppe est effectuée avec une paire d'amorces : FIN-A : 5'TCAAATATTACAGGGCTGCT3' (SEQ ID No : 13) et FIN-B : 5'TAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 14) suivie d'une deuxième étape d'amplification, effectuée avec la paire d'amorces : FIN-C : 5'CTATTAACAAGAGATGGTGG3' (SEQ ID No : 15) et FIN-D : 5'TCCACCTTCTTCTTCGATT3' (SEQ ID No : 16), pour obtenir un segment d'ADN de 965 paires de bases s'étendant des résidus 7553 à 8517 inclus et le vecteur de l'étape (c) est un vecteur retroviral délété de toute la région codant pour la portion extracellulaire
de la sous-unité gp41 de l'enveloppe du VIH-1, s'étendant des résidus 7745 à 8263 inclus, et comporte un site de restriction unique Mull.
Tout préférentiellement, la méthode d'analyse selon l'invention permet l'amplification de séquences de la région d'enveloppe de virus VIH quel que soit leur sous-type et en particulier des virus des sous-types A, B, C, D et E), en utilisant pour l'amplification de l'étape (b) avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour la protéine d'enveloppe est effectuée avec une paire d'amorces : FuA : 5'AAGCAATGTATGCCCCTCCCAT3' (SEQ ID No : 23) et FuB : 5'GGTGGTAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 24) suivie d'une deuxième étape d'amplification, effectuée avec l'amorce : FuC : 5'ATATGAGGGACAATTGGAGAAGTGA3' (SEQ ID No : 25) et un mélange des amorces suivantes : FuD1 : 5'TCTGTCTCTCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 26) FuD2 : 5'TCTGTCTTGCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 27), ledit mélange étant préférentiellement effectué dans un rapport compris entre (10% : 90%) et (90% : 10%) et tout préférentiellement entre (60% : 40%) et (40% : 60%), pour obtenir un segment d'ADN de 805 paires de bases s'étendant des résidus 7635 à 8440 inclus et le vecteur de l'étape (c) est un vecteur retroviral délété de toute la région codant pour la portion extracellulaire
Avantageusement, l'amplification de l'étape (b) avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour la protéine d'enveloppe est effectuée avec une paire d'amorces ayant une taille comprise entre 10 et 50 oligonucléotides, comprenant les séquences : NEU-A : 5'TAGAAAGAGCAGAAGACAGTGGCAATG3' (SEQ ID No : 17) et FIN-B : 5'TAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 14) ou FuB : 5'GGTGGTAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 24) ou constitués par des fragments de celles-ci, ou encore par des séquences analogues de celles-ci portant des mutations d'un ou plusieurs nucléotides qui ne modifient pas de manière essentielle leur capacité à hybrider la région du gène de l'enveloppe portant au moins une mutation, suivie d'une deuxième étape d'amplification, avec la paire d'amorces ayant une taille comprise entre 10 et 50 oligonucléotides, comprenant les séquences : NEU-C : 5'GTGGGTCACAGTCTATTATGGGG3' (SEQ ID No : 18) et FIN-D : 5'TCCACCTTCTTCTTCGATT3' (SEQ ID No : 16) ou un mélange des séquences suivantes : FuD1 : 5'TCTGTCTCTCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 26) et FuD2 : 5'TCTGTCTTGCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 27), ou constitués par des fragments de celles-ci, ou encore par des séquences analogues de celles-ci portant des mutations d'un ou plusieurs nucléotides qui ne modifient pas de manière essentielle leur capacité à hybrider la région du gène de l'enveloppe portant au moins une mutation.
Tout préférentiellement, l'amplification de l'étape (b) avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour la protéine d'enveloppe est effectuée avec une paire d'amorces : NEU-A : 5'TAGAAAGAGCAGAAGACAGTGGCAATG3' (SEQ ID No : 17) et FIN-B : 5'TAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 14), suivie d'une deuxième étape d'amplification, avec la paire d'amorces : NEU-C : 5'GTGGGTCACAGTCTATTATGGGG3' (SEQ ID No : 18) et FIN-D : 5'TCCACCTTCTTCTTCGATT3' (SEQ ID No : 16), pour obtenir un fragment d'ADN de 2320 paires de bases s'étendant des résidus 6197 à 8517 inclus et le vecteur de l'étape (c) est un vecteur retroviral délété de toute la région codant pour la majorité de la sous-unité gpl20 et de la portion extracellulaire de la gp41 de l'enveloppe du VIH-1, s'étendant des résidus 6480 à 8263 inclus, et comporte un site de restriction unique Mull.
Tout préférentiellement, l'amplification de l'étape (b) avec une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique susceptible de porter au moins une mutation dans le gène codant pour la protéine d'enveloppe est effectuée avec une paire d'amorces : NEU-A : 5'TAGAAAGAGCAGAAGACAGTGGCAATG3' (SEQ ID No : 17) et FuB : 5'GGTGGTAGCTGAAGAGGCACAGG3' (SEQ ID No : 24), suivie d'une deuxième étape d'amplification, avec les amorces :
NEU-C : 5'GTGGGTCACAGTCTATTATGGGG3' (SEQ ID No : 18) et un mélange des amorces suivantes FuDl : 5'TCTGTCTCTCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 26) et FuD2 : 5'TCTGTCTTGCTCTCCACCTTCTTCTT3' (SEQ ID No : 27), ledit mélange étant préférentiellement effectué dans un rapport compris entre (10% : 90%) et (90% : 10%) et tout préférentiellement entre (60% : 40%) et (40% : 60%), pour obtenir un fragment d'ADN de 2118 paires de bases s'étendant des résidus 6322 à 8440 inclus et le vecteur de l'étape (c) est un vecteur retroviral délété de toute la région codant pour la majorité de la sousunité gpl20 et de la portion extracellulaire de la gp41 de l'enveloppe du VIH-1, s'étendant des résidus 6480 à 8263 inclus, et comporte un site de restriction unique Mull.
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Dans le contexte de la présente demande, le terme modulation désigne soit une stimulation, soit une inhibition de l'activité XA. La stimulation peut être obtenue par l'utilisation de composés mimant l'activité de XA ou stimulant la quantité ou l'efficacité de XA. L'inhibition peut être partielle (e. g., une réduction de l'activité).
Elle peut être obtenue en diminuant la quantité de XA présente ou en inhibant la capacité de XA à produire un effet biologique, ou en bloquant ou inhibant l'effet biologique induit par XA.