INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
dans laquelle : a, b, c, d, e et f, identiques ou différents, sont 0 ou 1, a+b est supérieur ou égal à 1, et c+d est supérieur ou égal à 1, Ta est choisi parmi les groupes de formules : -(CH2)n-' où n est un nombre entier compris entre 1 et 12, - (CH2)m-CO-NH-, où m est un nombre entier compris entre 1 et 3, -C(CH3)2-, -CH2-C(CH3)2-, ou -CH(R1)-(CH2)p- où p est 0 ou 1 et R1 représente un groupe choisi parmi : -COOH, -CH3, -CH2OH, -CH2-CH(CH3)2, -CO-O-CH3, -Pa-phényl-Pb- où Pa peut être absent ou s'il est présent représente un groupe -CH2- et Pb peut être absent ou s'il est présent représente un groupe-OH, -CH3, un halogène ou un groupe -0-CO-NH-phényl-R2 où R2 peut être absent ou s'il est présent représente un groupe -N02. -Sphényl ou -O-phényl, ou encore RI représente un groupe CH2-imidazole, -CH2-indole ou -CH2- (N-méthyl indole) , Tb représente un système monocyclique comprenant de 5 à 6 atomes, identiques ou différents, choisis parmi le carbone et l'azote, éventuellement substitué, ou encore Tb est choisi parmi les groupes de formules : -CR3-, -CR3-NR4-(CH2)q-' -R3-CR3-NR4-phényl-R5- , dans lesquelles R3 représente un atome d'oxygène ou de soufre, R4 représente un atome d'hydrogène ou un groupe CH3, R5 peut être absent ou s'il est présent représente un groupe -O-phényl ou -S-phényl et q est un nombre entier compris entre 0 et 3, ou encore Tb représente un groupe de formule :
-R6-(CH2)o-, dans laquelle R6 peut être absent et dans ce cas o est un nombre entier compris entre 1 et 3, ou si R6 est présent il représente un atome d'oxygène, un atome de soufre ou un groupe -phényl- et dans ce cas o est un nombre entier compris entre 0 et 3, Tc est choisi parmi les groupes de formules : -R3-CR3-,-NR4-CR3-, -CR3-NR4-, -NR4-CR3-R3-, - R3-CR3-NR4-,-NR4-CR3-NR4, -CR3-pipérazyl-, -NR4-R7- ou - R3-CR3-NR4-R7-, dans lesquelles R3 et R4 ont les mêmes significations que précédemment et R7 représente un atome de soufre, un groupe -SO- ou -S02-, Na est choisi parmi les groupes de formules : -R8-, -(CrH2r)- ou -(CrH2r)-R8-, où r est un nombre entier compris entre 1 et 6, (CrH2r) est un alkyle linéaire ou ramifié, et R8 est choisi parmi un atome d'oxygène, un atome de soufre, un groupe -SO-, -CS- ou - SO2-, Nb est choisi parmi un halogène, un groupe alkyle en C1-C6 linéaire ou ramifié, un système monocyclique, bicyclique ou tricyclique comprenant de 3 à 15 atomes, identiques ou différents, choisis parmi le carbone, l'oxygène, l'azote et le soufre, éventuellement substitué, ou encore Nb représente un groupe de formule : -R3-C(CH3)3, dans laquelle R3 a la même signification que précédemment, Ra est choisi parmi un groupe -CH2-, -SO2NH-, - SO-, -SO2-, -NH- ou encore Ra est choisi parmi les groupes de formules : -R3-,-CR3- ou -R3-CH2-, dans lesquelles R3 a la même signification que précédemment, Rb représente un système monocyclique ou bicyclique comprenant de 5 à 10 atomes, identiques ou différents, choisis parmi le carbone, l'oxygène, l'azote et le soufre, éventuellement substitué, et ses sels pharmaceutiquement acceptables.
Selon la présente invention les systèmes cycliques peuvent être des systèmes cycliques aromatiques ou non aromatiques.
Selon la présente invention les liaisons aux systèmes cycliques peuvent être des liaisons en ortho, para ou méta.
Parmi les agents alcalinisants on peut citer, à titre d'exemple, l'ammoniaque, les carbonates alcalins, les alcanolamines telles que les mono-, di- et triéthanolamines ainsi que leurs dérivés, les hydroxydes de sodium ou de potassium et les composés de formule (XVI) suivante :
dans laquelle W est un reste propylène éventuellement substitué par un groupement hydroxyle ou un radical alkyle en C1-C4 ; R16, R17, R18 et R19, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle en C1-C4 ou hydroxyalkyle en C1-C4.
La composition tinctoriale conforme à l'invention peut également renfermer d'autres additifs utilisés classiquement dans les compositions pour la teinture des cheveux , tels que les agents antioxydants, les agents de pénétration, les agents séquestrants, les parfums, les tampons, les agents dispersants, les polymères anioniques, cationiques, non ioniques, amphotères zwittérioniques, ou leurs mélanges, les agents de conditionnement tels que les silicones volatiles ou non volatiles, modifiées ou non modifiées, les agents filmogènes, les corps gras dont les céramides et les alcools gras, les agents conservateurs, les agents opacifiants, les polymères anioniques, cationiques, non-ioniques, amphotères, zwitterioniques et leurs mélanges.
L'invention a aussi pour objet un procédé de teinture directe qui comprend l'application d'une composition tinctoriale contenant un colorant de formule (I) telle que définie précédemment sur les fibres kératiniques humaines. Après un temps de pose, les fibres sont rincées laissant apparaître des fibres colorées.
Un autre objet de l'invention est un dispositif à plusieurs compartiments, ou "kit", et de préférence à deux compartiments, pour la teinture des fibres kératiniques humaines, et plus particulièrement des cheveux, dans lequel un premier compartiment renferme la composition tinctoriale de l'invention et un deuxième compartiment renferme la composition oxydante. Ce dispositif peut être équipé d'un moyen permettant de délivrer sur les cheveux le mélange souhaité, tel que les dispositifs décrits dans le brevet FR-2 586 913 au nom de la demanderesse.
Les exemples suivants de compositions tinctoriales ssont destinés à illustrer l' invention sans présenter un caractère limitatif.
De plus, l'invention concerne une liaison optique bidirectionnelle comprenant : - deux diodes émettrices-réceptrices - la figure 1 est une vue en perspective 15 schématique de la structure d'un laser ruban classique 25 schématique de cet autre VCSEL après l'oxydation de cette couche et a déjà été décrite,
- la figure 7 illustre schématiquement l'application de la présente invention à la formation d'une liaison optique bidirectionnelle. 5 EXPOSÉ DÉTAILLÉ DE MODES DE RÉALISATION PARTICULIERS Conformément à l'invention, la solution du problème posé plus haut consiste, pour un VCSEL du genre de la figure 4, à ajouter une ou plusieurs couches oxydables à celle qui existe déjà (couche 24) .
10 Ces couches sont redondantes pour la fonction de guidage des lignes de courant mais permettent de transformer localement la cavité kx# en cavité (k-1)x#.
Pour passer d'une cavité kx# à une cavité (k-1)x#, on exploite le fait que l'indice optique de 15 AlAs passe de 2,9 à environ 1,6 quand il est oxydé en AlOx (en considérant le cas particulier où la couche 22 de la figure 3 est en Gai-yAlyAs, avec y=l). L'épaisseur réelle de AlAs ne varie quasiment pas mais son épaisseur optique est fortement diminuée.
20 Il suffit d'utiliser une épaisseur totale de AlAs suffisante pour que le changement de longueur optique soit exactement égal à #. Les épaisseurs doivent donc satisfaire les équations suivantes, dans lesquelles on a considér é le cas particulier où la 25 cavité est en Ga1-xAlxAs, avec x=0.
N(AlAs)xD(AlAs)+N(GaAs)xD(GaAs)=kx# (1) N(AlOx)xD(AlAs)+N(GaAs)xD(GaAs)=(k-1)xi (2) Dans ces équations, N(AlAs), (N(AlOx) et N (GaAs) désignent respectivement l'indice optique de
AlAs, l'indice optique de AlOx et l'indice optique de GaAs et D(AlAs) et D(GaAs) désignent respectivement l'épaisseur totale de AlAs et l'épaisseur totale de GaAs.
5 L'équation (1) décrit la longueur optique de la cavité avant l'oxydation et l'équation (2) décrit la longueur optique de la même cavité après cette oxydation. En retranchant membre à membre (2) de (1), on obtient : 10 N(AlAs)-N(AlOx))xD(AlAs)=, (2a) On en déduit l'épaisseur de AlAs à transformer en oxyde AlOx : D(AlAs)= N(AlAs) - N(AlOx) ( 3 ) En portant la valeur de D(AlAs) donnée par 15 (3) dans (1), on obtient: N(AIAs) x#+N(GaAs)xD(GaAs)=kx# ( 4 ) N(AIAs) -N(AlOx) On en déduit l'épaisseur de GaAs à utiliser pour le reste de la cavité : D(GaAs)=1/x(k - N(AlAs)/@)x# (5) D(GaAs)= N(GaAs) x( - N(AIAs) - N(AIOx))x 20 avec la condition importante : k>N(AlAs)/@ et k entier naturel (6) N(AIAs) - N(AlOx) Le processus d'oxydation peut provoquer une très légère variation de l'épaisseur de la couche de 25 AlAs. Dans ce cas, on peut introduire un coefficient correctif C dans l'équation (2) en remplaçant D(AlAs) par CxD (AlAs) .
l'inégalité et les équations précédentes au cas où l'on utiliserait d'autres semiconducteurs et d'autres oxydes, en particulier au cas où la cavité 12 et la couche 22 seraient respectivement en Ga1-x-AlxAs et en 5 Gai-yAlyAs, avec y supérieur à x, de préférence supérieur à 10x (et x#0,y#1).
Illustrons ce qui précède par un exemple.
Les valeurs numériques des indices optiques que l'on utilise dans cet exemple sont des valeurs 10 approchées. Il est bien entendu que l'on peut calculer des valeurs plus précises pour le système GaAlAs. En particulier, les références [5] et [6] fournissent des modèles numériques très précis.
Dans cet exemple, les valeurs moyennes des 15 indices optiques à 850 nm sont les suivantes : N(AlAs)=2,9 N(GaAs)=3,5 N (AlOx)=1,6 Avec ces valeurs, les équations (1) à (5) 20 et l'inégalité (6) conduisent à k>2,23 avec k entier, c'est-à-dire à k>3.
On est donc obligé de réaliser une cavité 3x# au minimum pour cet ensemble d'indices optiques.
Dans ce cas, l'équation (3) permet de calculer 25 l'épaisseur de AlAs à utiliser (653,8nm) et l'une des deux équations (1) et (2) donne l'épaisseur de GaAs (186,8nm) qui est nécessaire pour achever la cavité.
Le tableau I suivant résume les valeurs numériques pour des cavités 3x#, 4x# et 5x#
On peut répartir l'épaisseur de AlAs en plusieurs couches et disposer ces couches d'un seul 5 côté des puits quantiques ou de part et d'autre de ces puits.
Les molécules ou cellules sont typiquement fixées sur des emplacements respectifs d'un support solide revêtu d'un polymère et disposées de sorte que chacun des emplacements soit de la sorte associé à une molécule/cellule qui présente une spécificité par rapport aux molécules/cellules des autres emplacements.
Lorsque le réseau comprend des molécules biologiques telles que des acides nucléiques ou des peptides, on parle de bio-puce.
Plus précisément, lorsque le réseau est constitué de désoxyribonucléotides, on parle de puce à ADN ou de puce à oligonucléotides.
Le support solide est choisi parmi les supports solides en verre, en plastique, en Nylon, en Kevlar#, en silicone, en silicium, ou encore en polyoses ou poly(hétéro-oses), tel que la cellulose.
De préférence il s'agit du verre. Ce support pourra être de forme quelconque (lame plane, microbilles, ...) mais selon un mode préféré le support est un plan, et il s'agit d'une lame plane en verre.
Lorsque la puce est mise en contact avec un échantillon dans des conditions appropriées, certains composants de l'échantillon peuvent réagir sélectivement avec (et en particulier se lier à) une ou plusieurs molécules/cellules de la puce.
Et ces composants contiennent des marqueurs (typiquement des teintures ou molécules fluorescentes - que l'on nomme généralement fluorophores ) qui permettent de détecter la présence des composants après mise en contact de l'échantillon avec la puce. Cette détection
nécessite dans le cas de fluorophores l'excitation de la puce avec une lumière de longueur d'onde contrôlée Molécule recouvre ici les molécules chimiques, et les molécules biologiques.
Pour les applications biologiques, les molécules biologiques sont de préférence des acides nucléiques, de manière plus préférée des oligonucléotides simple brin.
Pour des applications chimiques, il peut s'agir de ligands chimiques de molécules biologiques.
Par acide nucléique, sonde nucléique, séquence nucléique ou séquence d'acide nucléique, polynucléotide, oligonucléotide, séquence de polynucléotide, séquence nucléotidique, séquences oligonucléotidiques , termes qui seront employés indifféremment dans la présente description, on entend désigner un enchaînement précis de nucléotides, modifiés ou non, permettant de définir un fragment ou une région d'un acide nucléique, comportant ou non des nucléotides non naturels, et pouvant correspondre aussi bien à un ADN double brin, un ADN simple brin, un PNA (pour Peptid Nucleic Acid ) ou LNA ( pour Locked Nucleic Acid ) que des produits de transcription desdits ADNs tels que l'ARN.
Par sonde, sonde oligonucléotidique ou oligonucléotide , on entendra désigner ici l'oligonucléotide fonctionnalisé ou non qui sera déposé (ou spotté ) et fixé par liaison covalente directement ou indirectement au support solide via un composé espaceur au niveau d'un emplacement.
L'oligonucléotide ainsi déposé est capable de se lier à un acide nucléique cible de séquences complémentaires (c'est-à-dire un oligonucléotide ou polynucléotide complémentaire) présent dans l'échantillon, par un ou plusieurs types de liaisons chimiques,
habituellement à travers un appariement de base complémentaire en formant des liaisons hydrogène.
De préférence, lesdites sondes sont des ADNs ou ARNs monobrins, de préférence des ADNs, dont la taille est comprise entre 10 et 7 000 bases (b), de préférence entre 10 et 1 000 b, entre 10 et 500 b, entre 10 et 250 b, entre 10 et 100 b, entre 10 et 50 b, ou entre 10 et 35 b.
Les sondes oligonucléotidiques déposées peuvent être synthétisées chimiquement, purifiées à partir de l'échantillon biologique ou plus généralement produites par les technologies de l'ADN recombinant à partir de polynucléotides naturels et/ou purifiés.
d'oxyde d'éthylène et de propylène, les condensats d'oxyde d'éthylène et de propylène sur des alcools gras, les amides gras polyéthoxylés ayant, de préférence, de 2 à 30 moles d'oxyde d'éthylène ; les amides gras polyglycérolés comportant en moyenne de 1 à 5 et, plus spécialement, de 1,5 à 4, groupes glycérol ; les esters d'acide gras du sorbitan oxyéthylénés comportant de 2 à 30 moles d'oxyde d'éthylène ; les esters d'acides gras du sucrose, les esters d'acides gras du polyéthylèneglycol ; alkylpolyglycosides ; les dérivés de N-alkyl glucamine et les oxydes d'amines tels que les oxydes d' alkyl (C10-C14) amines ou les oxydes de N-acylaminopropylmorpholine.
On peut également citer les alkyl (C8- C20) bétaïnes, les sulfobétaïnes, les alkyl (C8-C20) amidoalkyl (C1-C6) bétaïnes et les alkyl (C8-C20) amidoalkyl (C1C6)sulfobétaïnes.
société Rhodia Chimie sous la dénomination commerciale Miranol#, qui sont décrits dans US 2,528,378 et US 2,781,354 et qui sont classés dans le Dictionnaire CTFA, Sème édition, 1993, sous les désignations anglosaxonnes "disodium cocoamphodiacetate", "disodium lauroamphodiacetate", "disodium caprylamphodiacetate", "disodium capryloamphodiacetate", "disodium cocoamphodipropionate", "disodium lauroamphodipropionate", "disodium caprylamphodipropionate", "disodium capryloamphodipropionate", "lauroamphodiproponic acid" et "cocoamphodipropionic acid".
Les agents épaississants pouvant être incorporés dans les compositions de l'invention peuvent être d'origine minérale ou organique. Parmi ceux-ci, on peut citer les polymères épaississants d'origine naturelle telles que les gommes (gomme de xanthane, gomme de caroube, gomme de guar), les polymères épaississants d'origine synthétique (tels que l'hydroxyéthylcellulose, les polyacides acryliques).
Parmi ces polymères synthétiques, on citera tout
particulièrement les polymères associatifs comprenant une chaîne grasse tel que les polymères associatifs de type acrylique ou polyuréthane.
Le pH de la composition de teinture conforme à l'invention est généralement compris entre 3 et 12 environ, de préférence entre 5 et 11 et encore plus préférentiellement entre 6 et 10.
Ce pH peut être ajusté à la valeur souhaitée grâce à l'ajout à la composition d'agents acidifiants ou alcalinisants utilisés généralement en teinture des fibres kératiniques ou bien encore à l'aide de systèmes tampons classiques.
Parmi les agents alcalinisants, on peut citer, à titre d'exemple, l'ammoniaque, les carbonates alcalins, les alcanolamines telles que les mono-, diet triéthanolamines ainsi que leurs dérivés, les hydroxydes de sodium ou de potassium et les composés de formule (III) suivante : R7 R9 N-W-N R8 R10 (III) dans laquelle W est un reste propylène éventuellement substitué par un groupement hydroxyle ou un radical
alkyle en C1-C4 ; R7, R8, Rg et R10, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle en C1-C4 ou hydroxyalkyle en C1-C4.
EXEMPLE I-VI 200 g de Bergenia emeiensis lavé et séché sont ajoutés dans 1,2 1 d'éthanol à 10 %, séchés pendant 5 heures dans un extracteur équipé d'un condenseur de réfrigération, filtrés sur une étoffe filtrante à 300 mesh, puis laissés au repos à une température de 5 à 10 C pendant 7 à 10 jours pour mûrir et filtrés sur un papier filtre Wattman N 5. Ensuite, le filtrat est séché dans un évaporateur rotatif sous vide à 65 C. Ainsi, 110,2 g de poudre séchée d'extrait de Bergenia emeiensis sont obtenus (Extrait 23).
EXEMPLE I-VII Les mêmes procédés que ceux des exemples I à VI ci-dessus sont employés pour produire des extraits de Bergenia emeiensis du présent exemple à l'exception des concentrations en éthanol utilisées. Le poids sec de chaque extrait produit par les procédés est indiqué dans le tableau II, où les extraits sont représentés par les extraits 24 à 32.
Extrait Solvant d'extraction Poids sec (g) Extrait 24 Ethanol à 20 % 104,5 Extrait 25 Ethanol à 30 % 106,9 Extrait 26 Ethanol à 40 % 108,2 Extrait 27 Ethanol à 50 % 116,3 Extrait 28 Ethanol à 60 % 121,5 Extrait 29 Ethanol à 70 % 125,3 Extrait 30 Ethanol à 80 % 124,9 Extrait 31 Ethanol à 90 % 126,5 Extrait 32 Ethanol à 100 % 128,2 EXEMPLE EXPERIMENTAL I . Effet inhibiteur d'extraits de Bergenia emeiensis sur l'activité de l'élastase L'effet inhibiteur des extraits de Bergenia emeiensis préparés selon l'exemple I (extraits 1 à 32) sur l'activité de l'élastase est testé comme suit : 20 ul de solution de substrat (par rapport à une solution standard de Succ-Ala-Ala-Ala-p-nitro-anilide de substrat d'élastase 8,8 mM (Sigma, USA) ) sont ajoutés à 60 1 de tampon (tris 0,267 M réglé à pH 8,0 avec HCl 0,267 M), et ensuite 100 1 des extraits 1 à 32 sont ajoutés sélectivement dans ceux-ci et 20 1 de solution enzymatique (10 ug/ml d'étalon d'élastase pancréatique de porc (Sigma, USA) ) sont ajoutés pour réagir à 25 C pendant 15 minutes. Après cela, l'absorbant s'est mesuré à 410 nm. Le groupe témoin contient de l'eau distillée au lieu d'extraits de Bergenia emeiensis. Le taux d'inhibition vis-à-vis de l'activité de l'élastase des extraits de Bergenia emeiensis est calculé par l'équation I.
Equation I Taux d'inhibition vis-à-vis de l'activité de l'élastase (%) = {(absorbance du groupe de test - absorbance du groupe témoin)/absorbance du groupe témoin} X 100 EXEMPLE EXPERIMENTAL II : Effet inhibiteur des extraits de Bergenia emeiensis sur l'activité de la collagénase L'effet inhibiteur des extraits de Bergenia emeiensis préparés selon l'exemple I (extraits 1 à 32) sur l'activité de la collagénase est testé comme suit :
25 mg de collagène bovin (Sigma, USA) sont ajoutés à 5 ml de TES 0,05 M et mis en culture à 37 C pendant 15 minutes. Ensuite, de la collagénase (Sigma, USA) et les extraits de Bergenia emeiensis des extraits 1 à 32 sont ajoutés, 100 ug/ml respectivement, pour réagir à 37 C pendant 5 heures (mis au repos avec une agitation occasionnelle). Après cela, 0,2 ml de la solution réactionnelle est ajouté à 1 ml de ninhydrine à 4 % dans le méthylcellosolve suivi par un mélange de citrate de sodium 0,2 M et de chlorure d'étain 0,71 mM (pH 5,0) pour être ensuite chauffé pendant 20 minutes. 5 ml de n-propanol sont ajoutés à celle-ci et elle est laissée au repos pendant 15 minutes. Après cela, l'absorbance est mesurée à 600 nm. Le taux d'inhibition des extraits de Bergenia emeiensis vis-à-vis de l'activité de la collagénase est calculé par l'équation II.
Equation II Taux d'inhibition vis-à-vis de l'activité de la collagénase (%) = {(absorbance du groupe de test - absorbance du groupe témoin)/absorbance du groupe témoin} X 100 Les résultats des exemples expérimentaux I et I sont indiqués dans le tableau 3.
Extrait Taux d'inhibition vis-à- Taux d'inhibition vis-àvis de l'activité de vis de l'activité de la l'élastase (%) collagénase (%) Extrait 1 60,5 67, 5 Extrait 2 61,3 65,3 Extrait 3 60,5 66,5 Extrait 4 61,3 69,3 Extrait 5 62,5 67,9 Extrait 6 63,4 69,6 Extrait 7 66,9 67,9 Extrait 8 68, 5 68, 6 Extrait 9 75,2 76,2 Extrait 10 77,2 79,8 Extrait 11 76,2 75,2 Extrait 12 77,6 76,6 Extrait 13 78,6 75,6 Extrait 14 78,9 76, 9 Extrait 15 73,5 66,5 Extrait 16 72,3 65,3
Tableau III - suite Extrait 17 66,5 59,3 Extrait 18 75,4 67,3 Extrait 19 73,6 68,2 Extrait 20 73,5 69,3 Extrait 21 72,5 67,5 Extrait 22 78,5 68,5 Extrait 23 75,8 67,8 Extrait 24 75,3 64,3 Extrait 25 74,5 66,5 Extrait 26 73,5 68,5 Extrait 27 75,8 67,3 Extrait 28 76,5 66,5 Extrait 29 78,5 68,6 Extrait 30 76,9 67,9 Extrait 31 75,5 66,5 Extrait 32 76,5 67,5
Comme indiqué dans le tableau III, les taux d'inhibition vis-à-vis de l'activité de l'élastase des extraits de Bergenia emeiensis conformes à la présente invention se sont révélés être très élevés, atteignant environ 60 à 80 %, et il se trouve que l'extrait 14 est le plus élevé, 78,9 %. De plus, les taux d'inhibition vis-à-vis de l'activité de la collagénase des extraits de Bergenia emeiensis conformes à la présente invention se sont également révélés être très élevés, atteignant environ 60 à 80 %, et il se trouve que l' extrait 10 est le plus élevé, 79,8 %. Ces données montrent l'excellent effet des extraits de Bergenia emeiensis de la présente invention sur l'inhibition de l'activité de l'élastase et de la collagénase.
EXEMPLES DE FORMULATIONS Les formulations de la présente invention peuvent être réalisées sous une forme d'adoucissant de la peau (lotion cutanée), de lotion astringente, d'émulsion nutritive (lotion sous forme de lait), de crème nutritive, de crème de massage, d'essence, de masque anti-rides sans limiter les formulations applicables à celles-ci.
FORMULATION I . Lotion cutanée (adoucissant de la peau) Un exemple de lotion cutanée contenant un extrait de Bergenia emeiensis conforme à la présente invention est formulé selon le tableau IV : Tableau IV
Composants Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 5,0 Glycérine 5,0 1,3-butylglycol 3,0 PEG 150 1,0 Alantoïne 0,1 DL-panténol 0,3 EDTA-2Na 0,02 Benzophénone 9 0,04 Hyaluronate de sodium 5,0 Ethanol 10,0 Octyldodéces-16 0,2 Polysorbate 20 0,2 Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée Complément Total 100 FORMULATION II : Lotion astringente Un exemple de la lotion astringente contenant un extrait de Bergenia emeiensis de la présente invention est formulé selon le tableau V : Tableau V
Composants Proportion (% en poids) Extrait de Bergenia emeiensis 5,0 Glycérine 2,0 1,3-butylglycol 2,0 Alantoïne 0,2 DL-panténol 0,2 EDTA-2Na 0,02 Benzophénone 9 0,04 Hyaluronate de sodium 3,0 Ethanol 15,0 Polysorbate 20 0,3
Tableau V - suite Extrait d'hamamélis 2,0 Acide citrique Faible proportion Antiseptique, parfum, colorant Faible proportion Eau distillée ~~~~~ Complément Total 100 FORMULATION III : Emulsion nutritive (Lotion sous forme de lait) Un exemple de l'émulsion nutritive contenant un extrait de Bergenia emeiensis de la présente invention est formulé ci-dessous selon le tableau VI : Tableau VI