INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Ainsi, la charge siliceuse renforçante #.1 peut par exemple être traitée in situ par un agent de "compatibilisation", de préférence de type HMDZ, en présence du POS (a).
Par traitement in situ de la charge siliceuse, on entend la mise en présence de la charge et de l'agent de compatibilisation avec au moins une portion d'huile silicone polyorganosiloxane (a). De manière particulièrement préférée, cela consiste essentiellement à introduire de l'agent de compatibilisation (AC) en deux temps dans le milieu de préparation : # d'une part, avant et/ou sensiblement simultanément à la mise en présence d'au moins une partie de l'huile silicone mise en #uvre avec au moins une portion de la charge siliceuse utilisée, cette introduction d'AC (portion 1) s'opérant en une ou plusieurs fois et correspondant à une proportion inférieure ou égale à 8%, de préférence à 5% et, plus préférentiellement encore, à 3% en poids sec par rapport à la charge totale ; # et d'autre part (portion 2), après cette mise en présence d'huile silicone/charge.
L'agent de compatibilisation de la portion (1) est ainsi choisi parmi des molécules qui satisfont à au moins deux critères : - présenter une interaction forte avec la silice (liaisons hydrogène) et avec l'huile silicone environnante ; - être elles-mêmes ou leurs produits de dégradation, aisément évacuables du mélange final par chauffage sous vide ou sous courant gazeux.
Les composés de bas poids moléculaire sont donc préférés.
L'agent de la portion (1) pourra être par exemple : - un silazane, de préférence un disilazane, ou leurs mélanges, l'hexaméthyldisilazane (HMDZ) étant préféré et pouvant être associé au divinyltétraméthyldisilazane, - un siloxane hydroxylé di- ou de préférence mono-fonctionnel, - une amine telle que l'ammoniaque ou une alkylamine de bas poids moléculaire comme la diéthylamine, - un acide organique de bas poids moléculaire comme les acides formique ou acétique.
Cet agent de la portion (1) est de préférence mis en #uvre en présence d'eau.
Les agents de compatibilisation de la portion (2) peuvent être choisis parmi les différents silazanes et disilazanes rencontrés ci-dessus, pris seuls ou en mélanges entre eux, de préférence parmi les disilazanes, l'hexaméthyldisilazane associé ou non au divinyltétraméthyldisilazane étant particulièrement préféré.
Le rapport en poids du composé cellulosique non ionique sans chaîne grasse en C 8 - C30 sur le polymère associatif est de préférence compris entre 0,1 et 10, et plus préférentiellement entre 0,5 et 5.
Les bases d'oxydation utilisables dans le cadre de la présente invention sont choisies parmi celles classiquement connues en teinture d'oxydation, et parmi lesquelles on peut notamment citer les ortho- et para-phénylènediamines, les bases doubles, les ortho- et para- aminophénols, les bases hétérocycliques, ainsi que leurs sels d'addition avec un acide.
On peut notamment citer : - (I) les paraphénylènediamines de formule (I) suivante et leurs sels d'addition avec un acide :
dans laquelle : R1 représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle en C1-C4, monohydroxyalkyle en C1-C4, polyhydroxyalkyle en CZ-C4 alcoxy(C1- C4)alkyle(C,-C4), alkyle en C1-C4 substitué par un groupement azoté, phényle ou 4'-aminophényle ; R2 représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle en C1-C4, monohydroxyalkyle en C1-C4 ou polyhydroxyalkyle en C2-C4, alcoxy(C1- C4)alkyle(C1-C4) ou alkyle en C1-C4 substitué par un groupement azoté ; RI et R2 peuvent également former avec l'atome d' azote qui les porte un hétérocycle azoté à 5 ou 6 chaînons éventuellement substitué par un ou plusieurs groupements alkyle, hydroxy ou uréido; R3 représente un atome d'hydrogène, un atome d'halogène tel qu'un atome de chlore, un radical alkyle en C1-C4, sulfo, carboxy, monohydroxyalkyle en C1-C4 ou hydroxyalcoxy en C1-C4, acétylaminoalcoxy en C,-C4, mésylaminoalcoxy en C1-C4 ou carbamoylaminoalcoxy en C1-C4, R4 représente un atome d'hydrogène, d'halogène ou un radical alkyle en C1C4.
Parmi les groupements azotés de la formule (I) ci-dessus, on peut citer notamment les radicaux amino, monoalkyl(C1-C4)amino, dialkyl(C,-C4)amino, trialkyl(C1-C4)amino, monohydroxyalkyl(C1- C4)amino, imidazolinium et ammonium.
Parmi les paraphénylènediamines de formule (I) ci-dessus, on peut plus particulièrement citer la paraphénylènediamine, la
Le couple d'amorces (LmHlyAf ; LmHlyAr) a été décrit par Nogva et al. (2000. Appl. Environ. Microb. 66 : 4266-4271). Les couples d'amorces (Ye86f; Ye86r), (Ec97f; Ec97r), (Se98f; Se98r), (Sa193f; Sa193r), (Bc84f ; Bc84r), (Cp97f ; Cp97r) et (Cju76f ; Cju76r) ont été dessinés aux fins de la présente invention d'après les séquences génomiques respectivement publiées et déposées dans GenBank par Ibrahim et al.
(1997. J. Clin. Microbiol. 35 : 1636-1638 ; N d'accès X65999), Smith et al.
(1992. J. Bacteriol. 174 : 5820-5826 ; N d'accès M84024), Bäumler et al.
(1996. Gene 183 : 207-213 ; N d'accès U62129), Shortle (1983. Gene 22 : 181-189 ; N d'accès V01281), Gilmore étal. (1989. J. Bacteriol. 171 : 744- 753 ; N d'accès M24149), Saint-Joanis et al. (1989. Mol. Gen. Genet. 219 : 453-460 ; N d'accès X17300) et Taylor et al. (1990. Mol. Cell. Probes 4 : 261-271 ; N d'accès U27272). Les couples d'amorces (Lg189f ; Lg69r), (Lg69f ; Lg69r), et (Lpn112f ; Lpn112r) ont été dessinés aux fins de la présente invention d'après les séquences génomiques respectivement déposées dans GenBank sous les numéros AF122885 (pour les deux premiers couples) et Y12705.
Le Tableau I suivant détaille, pour chaque bactérie, les caractéristiques des couples d'amorces et sondes associées, ainsi que des produits d'amplification générés au moyen desdits couples. Dans ce Tableau, les séquences SEQ ID N 17 à 24, dont le nom porte l'extension TqFT , correspondent aux sondes associées aux couples d'amorces pour amplification, lesdites sondes étant par exemple de type TaqManTM (supra).
Il est entendu que toute séquence hybridable en conditions strictes à au moins 80 % avec les séquences des sondes figurant dans le Tableau I, ou toute séquence présentant au moins 80% d'identité avec une telle sonde ou sa séquence réverse complémentaire, et répondant aux critères de spécificité et exclusivité de séquence donnés supra, est susceptible d'être utilisée, dans le cadre de la présente invention, comme sonde.
De même, il est clair que toute séquence nucléotidique présentant au moins 80% d'identité avec une des amorces listées dans le Tableau I ou sa séquence réverse complémentaire, est susceptible d'être utilisée comme amorce pour amplification conformément à l'invention.
Taille des Désignation des SEQ Gène produits Bactérie amorces et Séquence ID N cible Produit du gène d'amplification sondes (pb) LmHlyAf 5' CCTgCAAgTCCTAAgACgCCA 3' 1 Listeria LmHlyAr 5' CACTgCATCTCCgTggTATAC 3' 2 HlyA Listériolysine O 113 monocytogenes Lmll3TqFT 5' CgATTTCATCCgCgTgTTTCTTTTCg 3' 17 Ye86f 5' CAgTgATgCATTATCgACACC 3' 3 86 Yersinia enterocolitica Ye86r 5' CACTACTgACTTCggCTggT 3' 4 Yst enterotoxine Ye86TqFT 5' CAAgCAAgCTTgTgATCCTCCgC 3' 18 Escherichia coli Ec97f 5' CgACCTgCgTTgCgTAAATATg 3' 5 et/ou Hafnia alvei Ec97r 5' CCTCggAAgAACCAATggTgT 3' 6 GAD glutamate et/ou Shigella spp. Ec97TqFT 5' CCgAAAAATggTCAggCCgTTg 3' 19 décarboxylase 97 et/ou Yersinia ND ND enterocolitica Se98f 5' TggACCACTgATTgCCgCTA 3' 7 Salmonella spp. Se98r 5' gTgATTTCgTCACgCCTTTg 3' 8 IroB glucosyl-transferase 98 Se98TqFT 5' CTTCggTCATACgCCCTggCAC 3' 20 Sal93f 5' ATggACgTggCTTAgCgTAT 3' 9 Staphylococcus Sal93r 5' TgACCTgAATCAgCgTTgTC 3' 10 Nuc nucléase 193 aureus Sal 93TqFT 5' TCgTCAAggCTTggCTAAAgTTgC 3' 21 Bacillus cereus Bc84f 5' gATTggTTCgTAAgAgCAgCTg 3' 11 CerA phospholipase C 84
Bc84r 5' AACgCTTACCTgTCATTggTg 3' 12 Bc84TqFT 5' TgCAgATAAATggCgCgCTgAAg 3' 22 Cp97f 5' CTATCTTggAgAAgCTATgCAC 3' 13 Clostridium Cp97r 5' gTCTCAAACTTAACATgTCCTg 3' 14 PLC toxine alpha ou 97 perfringens Cp97r 5' gTCTCAAACTTAACATgTCCTg PLC phosphohpase C Cp97TqFT 5' CATCCTgCTAATgTTACTgCCgTTg 3' 23 Cju76f 5'CTTgCAAATCgTTCTTTggg3' 15 76 Campylobacter Cju76r 5' TAgCggTACgACTgTCTTgg 3' 16 ND ND jejuni Cju76TqFT 5' TCAAACCCTAACCTCAgCTCCAgC 3' 24 Lg189f 5 ' - GCAGCAAACGCGATAAGTTG -3 ' 33 Legionella spp. Lg69r 5' - CAGTGTTCCCGAAGGCACTA -3' 34 rDNA ARN 16S 189 Lg189TqFT 5'- CCCTTGACATACAGTGGATTTTGCA -3' 38 Lg69f 5 ' - GCAACGCGAAGAACCTTACC -3 ' 35 Legionella spp. Lg69r 5' - CAGTGTTCCCGAAGGCACTA -3' 34 rDNA ARN 16S 69 Lg69TqFT 5'- CATACAGTGGATTTTGCAGAGATGCA -3' 39 Lpnll2f 5' - TCAGAAACGGGTTTGCTACC -3' 36 Legionella Lpnll2r 5' - CTAGTAACGCCCCTTCAGAC -3' 37 icmS IcmS 112 pneumophila Lpnll2TqFT 5'- CCATTGCCAAGAGAGCGGATC -3' 40 ND, non déterminé.
Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé objet de la présente invention, l'étape b) relative aux amplifications multiples, simultanées mais séparées dans l'espace, des séquences nucléotidiques cibles est du type thermo-dépendante, telle la PCR en temps réel. En ce cas, un cycle d'amplification comprend au moins les sous-étapes suivantes : b1) l'étape de dénaturation, au cours de laquelle l'ADN double brin est séparé en deux molécules d'ADN simple brin, est effectuée entre 94 et 95 C, de préférence à environ 94 C, pendant 15 secondes à 1 minute, de préférence pendant 30 secondes ; b2) l'étape d'hybridation, permettant d'apparier aux acides nucléiques simple brin complémentaires, lesquels serviront de matrices dans l'étape suivante, les amorces nucléotidiques spécifiques et, le cas échéant, la sonde associée, est réalisée entre 55 et 62 C, de préférence à environ 60 C, la température de cette étape étant en tous les cas dictée par les séquences des couples d'amorces pour amplification et sondes associées (cf. la définition de la température Tm supra), pendant 15 secondes à 1 minute, de préférence pendant 30 secondes ; et b3) l'étape d'élongation, conduisant à la réplication de la ou des matrices, est mise en oeuvre entre 60 C et 72 C, pendant 15 secondes à 2 minutes, de préférence pendant 30 secondes environ.
Avantageusement, l'étape b) du procédé objet de l'invention comprend, outre les sous-étapes b1) à b3) susvisées, une sous-étape préliminaire bO) d'activation de la Taq polymérase à une température de 94 C environ, pendant 3 à 15 minutes, de préférence pendant 3 à 5 minutes. Cette étape bO) est facultative, mais devient requise si la Taq polymérase utilisée est une enzyme dite Hot start , telle la PlatinumTM Taq DNA Polymerase (InvitrogenTM Life Technologies, Invitrogen, Cergy Pontoise, France).
De manière générale, les sous-étapes b1) à b3) supra subissent au moins 40 cycles d'amplification.
La présente invention a en outre pour objets des couples d'amorces pour amplification utiles à la mise en oeuvre du procédé décrit ci-dessus pour la détection de séquences d'acides nucléiques spécifiques et exclusives de bactéries contenues dans un mélange complexe.
Lesdits couples d'amorces permettent l'amplification de fragments d'acides nucléiques spécifiques et exclusifs de Y. enterocolitica, E. coli et/ou H. alvei et/ou Shigella spp. et/ou Y. enterocolitica, Salmonella spp., S. aureus, B. cereus, C. perfringens, C. jejuni, Legionella spp. et L. pneumophila et sont constitués par des séquences choisies parmi les amorces suivantes : - Ye86f (SEQ ID N 3) et Ye86r (SEQ ID N 4) pour Y. enterocolitica ; - Ec97f (SEQ ID N 5) et Ec97r (SEQ ID N 6) pour E. coli et/ou H. alvei et/ou Shigella spp. et/ou Y. enterocolitica ; - Se98f (SEQ ID N 7) et Se98r (SEQ ID N 8) pour Salmonella spp. ; - Sa193f (SEQ ID N 9) et Sa193r (SEQ ID N 10) pour S. aureus ; - Bc84f (SEQ ID N 11) et Bc84r (SEQ ID N 12) pour B. cereus ; - Cp97f (SEQ ID N 13) et Cp97r (SEQ ID N 14) pour C. perfringens ; - Cju76f (SEQ ID N 15) et Cju76r (SEQ ID N 16) pour C. jejuni ; et - Lg189f (SEQ ID N 33) et Lg69r (SEQ ID N 34) pour Legionella spp. ; - Lg69f (SEQ ID N 35) et Lg69r (SEQ ID N 34) pour Legionella spp. ; et - Lpn112f (SEQ ID N 36) et Lpn112r (SEQ ID N 37) pour Legionella pneumophila.
Comme indiqué précédemment, l'on considère en outre que toute séquence présentant au moins 80 % d'identité avec l'une des séquences nucléotidiques sus-visées, ou avec sa séquence réverse complémentaire, constitue une amorce spécifique et exclusive convenant à une utilisation dans le cadre d'un procédé de détection des espèces bactériennes simple, rapide et fiable, et en particulier dans le cadre du procédé objet de l'invention.
Que le procédé soit un procédé par voie sèche ou un procédé par voie humide, c'est l'utilisation dans le procédé de l'invention des composés du bore, précurseurs borés spécifiques ci-dessus qui leur confère leur structure spécifique et leurs propriétés avantageuses.
L'invention concerne, en outre, des matériaux actifs d'électrode, en particulier d'électrode positive contenant un ou plusieurs composés, tels que décrits plus haut.
Dans de tels matériaux actifs d'électrode, en particulier d'électrode positive, les composés selon l'invention peuvent éventuellement être associés à un ou plusieurs autres composés actifs (c'est-à-dire autres que les composés de l'invention), tels que les composés classiques, comme LiCo02, LiNi02, les oxydes de manganèse, en particulier, de structure spinelle Lil+xMn2-XO4 (avec 0 < x < 0,33), par exemple LiMn204, les composés de la famille isotype de l'olivine, tels que Li1-xFePO4, par exemple LiFeP04, les composés de la structure du Nasicon, les matériaux d'insertion du lithium du type orthosilicate décrits dans le document US-A-6 085 015, et les matériaux décrits dans le document EP-A2-1 195 825.
L'invention concerne, en outre, une électrode positive comprenant le matériau actif, tel qu'il est décrit plus haut.
Outre le matériau actif d'électrode proprement dit, une électrode positive selon l'invention comprend généralement un matériau conducteur électronique, qui est, de préférence, du carbone sous une forme quelconque, tel que le noir de carbone, le noir d'acétylène, le graphite ou le coke.
L'électrode positive comprend, en outre, un liant polymère.
Ledit liant polymère est choisi généralement parmi les polymères fluorés, les élastomères et les composés cellulosiques.
Le polymère fluoré peut être choisi, par exemple, parmi les polymères et copolymères du fluorure de vinylidène et les polymères et copolymères du tétrafluoroéthylène.
L'électrode positive comprend généralement de 75 à 95 % en poids de matériau actif, de 2 à 15 % en poids de matériau conducteur et de 3 à 10 % en poids de liant polymère.
Pour préparer l'électrode positive, on mélange le matériau actif d'électrode, le matériau conducteur et le liant polymère dissout dans un solvant, tel que l'acétone ou la N-méthyl pyrrolidone.
On applique le mélange, par exemple par enduction sur un substrat en un matériau conducteur, par exemple en aluminium, généralement sous la forme d'une feuille, et on sèche le substrat sur lequel a été appliqué le mélange par chauffage, éventuellement sous vide.
L'invention est relative, en outre, à un accumulateur, tel qu'un accumulateur au lithium, comprenant ladite électrode positive.
Un tel accumulateur comprend généralement, outre ladite électrode positive, une électrode négative, un séparateur et un électrolyte. L'électrode négative peut être réalisée par un matériau choisi généralement parmi le lithium métallique, les alliages de lithium, un titanate de lithium.
Le séparateur est généralement réalisé en un polymère microporeux, choisi, par exemple, parmi les polyoléfines.
Enfin, l'électrolyte comprend un solvant et un sel conducteur ; le solvant est généralement choisi parmi le carbonate d'éthylène, le carbonate de propylène, le carbonate de diméthyle, le carbonate de diéthyle, le carbonate d'éthyle et de méthyle, la y-butyrolactone, le sulfolane, les éthers de dialkyle (en CI-4) d'éthylène glycol ou de polyéthylène glycol, par exemple de diéthylène glycol, triéthylène glycol, tétraéthylène glycol, et leurs mélanges.
Un solvant préféré est un mélange de carbonate d'éthylène et de carbonate de diméthyle.
Parmi les polymères amphiphiles cationiques selon l'invention, on peut aussi citer les terpolymères acryliques tels que décrits dans la demande de brevet EP- 1090 623 et qui sont constitués de : - de 5 à 80% en poids, préférentiellement de 15 à 70% en poids et plus préférentiellement de 40 à 70% en poids, d'un monomère acrylate (a), choisi parmi un acrylate d'alkyle en C1-C6 et un méthacrylate d'alkyle en C1-C6 ; - de 5 à 80% en poids, préférentiellement de 10 à 70% en poids et plus préférentiellement de 20 à 60% en poids, d'un monomère (b), choisi parmi un composé vinylique héterocyclique contenant au moins un atome d'azote ou de soufre, un (méth) acrylamide, un (méth) acrylate de mono- ou di-(Ci- C4)alkylamino(C1-C4)alkyle et un mono ou di- (C1-C4)alkylamino(C1- C4)alkyl (méth) acrylamide; - de 0,1 à 30% en poids, préférentiellement de 0,1 à 10% en poids d'un monomère (c), choisi parmi (i)un uréthane produit par réaction entre un isocyanate insaturé monoéthylénique et un tensioactif non ionique à terminaison C1-C4 alkoxy; (ii) un copolymère à blocs de 1,2-butylène oxyde et de 1,2-éthylène oxyde; (iii) un monomère tensioactif insaturé éthylénique copolymérisable obtenu par condensation d'un tensioactif non-ionique avec un acide carboxylique insaturé a,(3-éthylénique ou son anhydride ; un monomère tensioactif
choisi parmi les produits de réaction de type urée d'un monoisocyanate insaturé monoéthylénique avec un tensioactif non-ionique présentant une fonction amine; (v) un éther de (méth)allyle de formule CH2= CR1CH2OAmBnApR2 dans lequel Ri désigne un atome d'hydrogène ou un groupe méthyle, A désigne un groupement propylèneoxy ou butylèneoxy, B désigne l'éthylèneoxy, n est égal à zéro ou désigne un nombre entier inférieur ou égal à 200 et préférentiellement inférieur à 100, m et p désignent zéro ou un nombre entier inférieur à n et R2 est un groupe hydrophobe d'au moins 8 atomes de carbone et préférentiellement en C8C30; et (vi) un monomère non-ionique de type uréthane produit par réaction d'un tensioactif non ionique monohydrique avec un isocyanate insaturé monoéthylénique ; les pourcentages en poids de monomères étant basés sur le poids total des monomères constituant le terpolymère.
Comme exemples de monomères (b) préférés, il faut citer le méthacrylate de N,N-diméthylaminoéthyle (DMAEMA), l'acrylate de N,N- diéthylaminoéthyle, le méthacrylate de N, N-diéthylaminoéthyle, l'acrylate de N-t-butylaminoéthyle, le méthacrylate de N-t-butylaminoéthyle, le N,N- diméthylaminopropyl-acrylamide, le N,N-diméthylaminopropyle- méthacrylamide, le N,N-diéthylaminopropyl-acrylamide et le N,N- diéthylaminopropyl-méthacrylamide. Le méthacrylate de N,N- diméthylaminoéthyle est tout particulièrement préféré.
Les monomères (c) préférés sont les monomères tensio-actifs insaturés éthyléniques copolymérisables obtenus par condensation d'un tensioactif non-ionique avec un acide carboxylique insaturé [alpha],ss-
éthylénique ou son anhydride, de préférence les acides mono ou dicarboxyliques en C3-C4 ou leurs anhydrides et plus particulièrement l'acide acrylique, l'acide méthacrylique, l'acide crotonique, l'acide maléique, l'anhydride maléique et tout particulièrement l'acide itaconique et l'anhydride itaconique.
Parmi ces terpolymères, on préfère utiliser en particulier le polymère "STRUCTURE PLUS" vendu par la Société NATIONAL STARCH, qui est constitué d'acrylates, d'amino (méth)acrylates d'itaconate d'alkyle en
C10-C30 polyoxyéthyléné à 20 moles d'oxyde d'éthylène sous forme de dispersion aqueuse à 20% de Matière Active.
Des monomères de réticulation peuvent notamment être des divinylbenzènes, des trivinyl-benzènes, le 1,2,4-trivinylcyclohexène, le 1,5- hexadiène, le 1,5,9-décatriène, le 1,9-décadiène, le 1,5-heptadiène, des di- allyl phthalates, de l'éthylène glycol diméthacrylate, des polyéthylène glycol diméthacrylates, des penta- et tétra-acrylates, des triallyl pentaérythritols, des octa-allyl saccharoses, des cycloparaffines, des cyclooléfines et du N-méthylène-bis-acrylamide.
On désigne généralement par "polymères amphotères", des polymères qui comportent des motifs K et M répartis statistiquement dans la chaîne polymère, où K désigne un motif dérivant d'un monomère comportant au moins un atome d'azote basique et M désigne un motif dérivant d'un monomère acide comportant un ou plusieurs groupements carboxyliques ou
(4%) et d'eau (81%); l'ACULYN 44 est un polycondensat de polyéthylèneglycol à 150 ou 180 moles d'oxyde d'éthylène, d'alcool décylique et de méthylène bis (4-cyclohexylisocyanate) à 35% en poids dans un mélange de propylèneglycol (39%) et d'eau (26%)].
Les polymères associatifs de type cationique utilisés dans la présente invention sont choisis de préférence parmi les dérivés de cellulose quaternisée, les polyacrylates à groupements latéraux aminés non cycliques, les polyuréthanes cationiques, les polyvinyllactames cationiques et le terpolymère acrylique dont la constitution est donnée ci-après.
On peut indiquer comme exemples d'alkylhydroxyéthyl-celluloses quaternisées à chaînes grasses en C8-C30, les hydroxyéthylcelluloses quaternisées modifiées par un groupement alkyle en C12 ou C18 tels que les produits QUATRISOFT LM 200, QUATRISOFT LM-X 529-18-A, QUATRISOFT LM-X 529-18B (alkyle en C12) et QUATRISOFT LM-X 529-8 (alkyle en C18) commercialisés par la société AMERCHOL et les produits CRODACEL QM, CRODACEL QL (alkyle en C12) et CRODACEL QS (alkyle en C18) commercialisés par la société CRODA.
Dans le cas d'un composant décrit complètement en langage de type HDL (figure 3a), la partie de type HLL est réduite à une instance qui permet de signaler sa présence dans la Configuration au cours de la simulation et qui fournit les chemins d'accès aux ressources de type HDL du composant.
Pour les composants décrits en langage de type HLL (figure 3c), c'est la partie de type HDL qui est réduite au strict minimum, et qui est limitée à la description des signaux et registres d'interface.
Tous les niveaux intermédiaires entre ces deux extrémités sont possibles et naturellement exploités dans le contexte de processus de développement des circuits ASIC.
Typiquement, au cours d'un développement, on commence par un modèle de type HLL avec une interface de type HDL minimale et, ensuite, on passe à des modèles de type HDL de plus en plus complets écrits par les concepteurs et on termine par les modèles du niveau portes logiques synthétisés automatiquement à partir de modèles de type HDL.
Les modèles mixtes sont souvent utilisés parce qu'ils permettent une simulation précise et efficace en dédiant le langage de haut niveau (HLL) aux modélisations complexes pour lesquelles le langage de type HLL offre une description compacte et rapide à l'exécution. Néanmoins, même pour les modèles écrits majoritairement en langage de type HLL, la partie de type HDL peut être non triviale pour des raisons de pertes de performances dues aux changements de contexte de simulation entre, respectivement, les parties de type HDL et de type HLL. Un exemple typique est une interface dont les signaux changent, même sans activité réelle de transfert de données. Dans ce cas, il est préférable de traiter les signaux dans la partie
de type HDL du modèle, et de passer à la partie de type HLL quand les données sont présentes sur l'interface.
L'interface d'un composant est l'ensemble de tous les signaux présents à sa périphérie. Pour les composants décrits uniquement en langage de type HDL, cela correspond à l'interface externe de la définition de ce composant en langage de type HDL (par ex. VERILOG ou VHDL). Pour les composants définis de manière mixte en langage de types HLL et HDL, l'interface d'un composant est la somme des signaux de tous les modules de type HDL utilisés à la périphérie de ce composant.
La figure 4 décrit la structure générique des modèles élémentaires constituant la majorité des composants. Cette structure s'applique typiquement, mais pas uniquement, au cas du circuit ASIC en développement, des adaptateurs d'interface, blocs intermédiaires, blocs système.