INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Le traitement peut être une oxydation ou une nitruration.
limitatif, en faisant référence aux dessins annexés sur lesquels : - la figure 1 (déjà décrite) représente en coupe un dispositif magnétorésistif de l'art connu ; - la figure 2 représente en coupe un dispositif magnétorésistif selon l'invention à vanne de spin simple ; - la figure 3 représente, en vue d'expliquer son fonctionnement, une partie du dispositif magnétorésistif de la figure 2 ; - la figure 4 représente en coupe un autre exemple d'un dispositif magnétorésistif selon l'invention ; - les figures 5A, 5B, 5C représentent encore d'autres exemples de dispositifs magnétorésistifs selon l'invention ; les figures 6 à 8 montrent plusieurs variantes de dispositifs magnétorésistifs selon l'invention à vanne de spin duale ; - la figure 9 représente une tête magnétique de lecture incluant un dispositif magnétorésistif selon l'invention ; - la figure 10 représente une mémoire dont les points mémoire comportent chacun un dispositif magnétorésistif selon l'invention ; les figures 11A à l1C illustrent des réalisations de couches diélectriques discontinues avec des ponts électriquement conducteurs qui les traversent.
Sur ces figures, les divers éléments ne sont pas représentés à l'échelle dans un souci de clarté.
EXPOSÉ DÉTAILLÉ DE MODES DE RÉALISATION PARTICULIERS La figure 2 représente un exemple de dispositif magnétorésistif à vanne de spin selon l'invention dans une configuration de base. Comme nous l'avons vu précédemment une vanne de spin à courant perpendiculaire comporte au moins deux couches magnétiques dont l'orientation relative de leurs directions d'aimantation est susceptible de varier sous l'effet d'un champ magnétique. Au moins l'une des couches magnétiques a une direction d'aimantation libre. Pour simplifier schémas et descriptions, les exemples présentés dans la suite concernent une structure dont l'une des couches magnétiques a sa direction d'aimantation libre et dont l'autre a sa direction d'aimantation fixe. Les deux couches magnétiques auraient pu avoir leurs directions d'aimantation libres et l'adaptation de l'une des structures à l'autre se fait aisément.
Le dispositif de la figure 2 comporte une vanne de spin 1 qui est un empilement de couches avec des couches magnétiques 2,3 parmi lesquelles au moins une couche magnétique 2 dite piégée et au moins une couche magnétique 3 dite libre et au sein de l'empilement 1, au moins une couche diélectrique ou semi-conductrice 4, traversée par des ponts 5 électriquement conducteurs, orientés transversalement au plan des couches magnétiques 2,3. Il est préférable que la couche 4 diélectrique ou semi-conductrice qui est discontinue à cause de la présence des ponts 5, se situe à l'interface entre les deux couches magnétiques 2,3.
L'aimantation de la couche magnétique dite piégée 2 (une seule flèche) a une direction fixe.
L'aimantation de la couche magnétique dite libre 3 (deux flèches opposées) peut s'orienter librement dans un champ magnétique dans lequel elle est plongée et que l'on cherche à détecter dans l'application des têtes magnétiques de lecture. La variation relative d'orientation de la direction d'aimantation des deux couches magnétiques 2,3 conduit à un changement de résistance électrique de la vanne de spin. Le dispositif magnétorésistif comporte de plus des moyens 6a, 6b pour faire circuler un courant électrique dans la vanne de spin, au travers de l'empilement 1, ces moyens pouvant comprendre deux électrodes 6a, 6b qui bornent la vanne de spin 1. Les électrodes 6a, 6b servent aussi de prise de tension pour une mesure de la variation de résistance. Les couches magnétiques 2,3 sont alors conductrices de l'électricité.
Les ponts conducteurs 5 associés à la couche diélectrique ou semi-conductrice 4 ont une fonction de concentration du courant circulant dans l'empilement 1.
L'information génétique est stockée dans chaque cellule des êtres vivants sous la forme de longues molécules d'acide désoxyribonucléique (ADN) constituant le génome. Il est constitué d'un enchaînement de quatre bases azotées appelées nucléotides qui sont l'adénine, la cytosine, la guanine et la thymine notées respectivement A, C, G et T.
Le postulat de départ concernant les méthodes utilisant l'ADN est qu'il est possible d'identifier un individu par son ADN. En effet, hormis les vrais jumeaux ou les clones, chaque individu est unique au plan génétique du fait du brassage des chromosomes au moment de la reproduction. En combinant toutes les différences possibles sur l'ensemble du génome compte tenu du nombre de bases azotées, il apparaît qu'une infinité de combinaisons sont possibles ce qui rend unique du point de vue génétique chaque individu.
De nombreuses méthodes ont été mises au point pour fabriquer des empreintes génétiques permettant de mettre en évidence cette unicité de chaque individu. Elles peuvent être classées en deux catégories : les méthodes spécifiques et les méthodes universelles.
Les méthodes spécifiques nécessitent des développements techniques importants et différents pour chaque espèce étudiée. L'analyse du polymorphisme des microsatellites ou de SNPs ("Single Nucleotide Polymorphisms") sont des méthodes spécifiques qui
imposent malheureusement des connaissances sur la séquence du génome avant leur mise en oeuvre.
Les méthodes universelles quant à elles ne requièrent que peu de mise au point, et peuvent s'appliquer sans connaissance préalable du génome. Il s'agit des méthodes suivantes : les sondes minisatellites multilocus, les RAPD ( Randomly Amplified Polymorphic DNA ou ADN polymorphe amplifié de manière aléatoire), les ISSR ( Inter-Simple Sequence Repeat ou inter-séquence simple répétée), les AFLP ( Amplified Fragment Length Polymorphism ou polymorphine de longueur de fragments amplifiés) et plus récémment, la méthode DArT ("Diversity Array Technology"ou technologie de réseau de densité).
Dans le texte qui suit, les références entre crochets [] renvoient à la liste de références annexée.
La méthode utilisant les sondes minisatellites multilocus a été décrite initialement par Alec JEFFREYS par exemple dans les documents [1] et [2]. Elle ne nécessite pas d'amplification et comporte les étapes suivantes : (i) extraction d'ADN génomique, (ii) digestion avec une enzyme de restriction, (iii) migration sur gel d'agarose, (iv) hybridation avec une sonde s'hybridant avec des séquences minisatellites multilocus (méthode southern blot ).
Cette approche présente de nombreux inconvénients, notamment elle est difficilement automatisable, elle demande beaucoup de main d'oeuvre et possède de nombreuses limitations, par exemple du fait que ne peuvent être comparés que des profils ayant migrés sur
un même gel. Aujourd'hui cette méthode est de moins en moins utilisée.
La méthode utilisant les RAPD a été développée au début des années 1990 par WILLIAMS et al. et par WELSH et McCLELLAND. Elle est décrite par exemple dans les documents [3] à [8]. Elle consiste à amplifier par réaction de polymérase en chaîne (PCR) de l'ADN génomique en utilisant des amorces arbitraires, généralement très courtes d'environ 10 paires de bases.
Une seule amorce est utilisée dans la réaction d'amplification. Les fragments issus de l'amplification sont ensuite analysés sur gel d'agarose. Cette technique, bien que largement utilisée, nécessite cependant l'emploi de très nombreuses amplifications par échantillons et s'avère être délicate à mettre en oeuvre en raison de problèmes de reproductibilité.
La technique ISSR est décrite par exemple par ZIETKIEWICZ et al., 1994 ; KANETY et al., 1995 dans les documents [9] et [10]. Elle se rapproche des RAPD par le fait qu'elle utilise également des amorces arbitraires, mais ces amorces sont particulières. Elles correspondent à des séquences microsatellites, avec quelques bases additionnelles du côté 3'. Après extraction, l'ADN génomique est amplifié, au moyen d'une amorce ISSR, puis les fragments sont visualisés sur gels de polyacrylamide. Le niveau de polymorphisme n'est pas toujours suffisant au niveau intraspécifique, et l'analyse des gels est parfois complexe.
La technique AFLP développée par la société KeyGene produit une véritable empreinte génétique. Elle est décrite par exemple par VOS et al., 1995 dans le
document [11] et par AJMONE-MARSAN P. et al., 1998 dans le document [12]. Ici, après extraction, l'ADN est digéré avec deux enzymes de restriction, l'une reconnaissant six paires de bases et coupant peu fréquemment, par exemple ECO RI, et l'autre reconnaissant quatre paires de bases et coupant beaucoup plus fréquemment, par exemple MSE I. En présence de deux adaptateurs spécifiques de ces deux enzymes de restriction, l'étape suivante est la ligation de ces adaptateurs à l'extrémité des fragments de restriction. Ensuite, l'amplification par la méthode PCR se produit en deux étapes : l'amplification présélective, où sont utilisées des amorces ayant une extension d'une paire de base du côté 3', ce qui fait qu'une partie seulement des fragments de restriction avec adaptateurs vont être amplifiés, suivie de l'amplification sélective, où le produit de l'amplification présélective est à nouveau amplifié, mais cette fois-ci avec des amorces possédant une extension de deux paires de bases supplémentaires du côté 3'. Ainsi, le génome est simplifié de manière à n'obtenir qu'une centaine de fragments amplifiés, qui sont ensuite analysés sur gel de polyacrylamide. Cette technique présente l'inconvénient que pour chaque individu analysé, il est nécessaire d'utiliser plusieurs couples d'amorces avec des extensions différentes afin d'obtenir une empreinte génétique fiable.
La méthode DArT, publiée très récemment par JACCOUD et al., 2001 dans le document [13], utilise l'approche "puce à ADN" pour révéler des
RMN 13C (D20), (ppm) : 14, 34 (1C, C-6') ; 71, 28 (1C, C-l') ; 75, 65 (lC, OCH2benzyl) ; 123, 58 (d, J5, -p 186, 0 Hz, 1C, C-5') ; 127, 44 (d, .. p 26, 8 Hz, 1C, C-3') ; 128, 41 (2C, C-ar) ; 128, 87 (2C, C-ar) ; 130, 62 (2C, C-ar) ; 131, 01 (2C, C-ar) ; 133, 84 (1C, C- 4") ; 136, 69 (IC, C-1") ; 137, 14 (1C, C-l) ; 139, 69 (d, J4'-P 5, 8 Hz, 1C, C-4') ; 140, 82 (lC, C-4) ; 143, 43 (lC, C-2') ; 201, 04 (1C, C-carbonyl).
SM FAB < 0 m/z (GT) : 599 [M-HL 553 [M-4NRt+Na+2H] ; 531 [M- 4NH4+3Hr.
- Exemple 33 : (E, E, E) -[ 4- (9' - Triphosphono-2', 6' -diméthyl-nona-2', 6', 8'triényloxyméthyl) -phényl]-phényl-méthanone (25) :
Rdt=17% Rf=0, 22 (4 : 6, ammoniaque 27% : isopropanol) RMN'H (D20), 8 (ppm) : 1, 54 (s, 3H, CH3) ; 1, 73 (s, 3H, CH3) ; 2, 0-2, 20 (m, 4H, H-4'et H-5') ; 3, 69 (s, 2H, H-1') ; 4, 44 (s, 2H, OCH2-benzyl) ; 5, 36 (m, 1H, H-3') ; 5, 74 (dd, J9, -p 19, 6 Hz, Jo. 16, 9 Hz, 1H, H-9') ; 5, 92 (d, h-s'Il, 3 Hz, 1H, H-7') ; 7, 06 (ddd, Js'-p 20, 7 Hz, 1H, H-8') ; 7, 30-751 (m, 4H, H-ar) ; 7, 51-7, 71 (m, 5H, H-ar).
RMN-"P (D20), 5 (ppm) :-21, 0 (dd, Jss-a 23, 1 Hz, J-, 19, 4 Hz, 1 P, P-P),-7, 5 (d, P-y) ; 9, 0 (d, P-a).
RMN I3C (D2O), 8 (ppm) : 13, 62 (lC, C-10') ; 16, 76 (1C, C-ll') ; 25, 91 (1C, C- 4') ; 39, 24 (lC, C-5') ; 70, 41 (1C, C-1') ; 76, 46 (1C, OCH2-benzyl) ; 120, 53 (d, J9'-P 192. 5 Hz, 1C, C-9') ; 124, 74 (d, Jy'-p 26, 3 Hz, 1C, C-7') ; 128, 08 (2C, C-ar) ; 128, 82 (2C, C-ar) ; 130, 34 (2C, C-ar) ; 130, 74 (2C, C-ar) ; 129, 61 (lC, C-3') ; 132, 14 (lC, C-4") ;
133, 66 (1C, C-2') ; 136, 32 (1C, C-r) ; 136, 99 (1C, C-5') ; 140, 88 (d, '-p 5, 8 Hz, 1C, C-8') ; 143, 79 (1C, C-4) ; 147,03 (1C, C-6') ; 199,56 (1C, C-carbonyl).
SM FAB < 0 m/z (GT) : 599 [M-4NH4+3H]-.
Les aldéhydes 26 et 27 ont été préparés selon la méthode d'oxydation avec le bichromate de pyridinium décrite précédemment.
- Exemple 34 : 3-Méthylbut-2-énal (26) : Rdt=95% Rt=0, 8 (95 : 5, éther de pétrole : éther éthylique) RMN'H (CDCt3), 8 (ppm) : 1, 96 (d, JA-2 1, 3 Hz, 3H, H-5) ; 2, 15 (d, J4-2 1, 3 Hz, 3H, H-4) ; 5, 86 (d, Zut 8, 2 Hz, 1H, H-2) ; 9, 93 (d, 1H, H-l). - Exemple 35 : 3, 7-Diméthylocta-2, 6-diènal (27) :
Rdt=99% Rt=0, 46 (8 : 2, éther de pétrole : éther éthylique) RMN IH (CDCh), 8 (ppm) : 1,6 (s, 3H, CH3) ; 1,68 (s, 3H, CH3) ; 2,16 (s, 3H, CH3) ; 2,0-2, 28 (m, 4H, H-4 et H-5) ; 4, 93-5, 15 (m, 1H, H-6) ; 5,88 (d, J2-1 8,0 Hz, lH, H-2) ; 9,99 (d, 1H, H-1).
RMN 13C (CDCb), 5 (ppm) : 17,50 (lC, C-10), 22,10-22, 19 (2C, C-8 et C-9), 22,98 (lC, C-5), 40,78 (lC, C-4), 122,96 (lC, C-6), 128,69 (lC, C-2), 132,01 (lC, C- 7), 165,89 (lC, C-3), 192,45 (lC, C-l).
Les esters phosphoniques ci-dessous ont été préparés selon la méthode de Horner-Wadsworth-Emmons décrite précédemment.
- Exemple 36 : (E)-4-Méthyl-1, 3-pentadiénylphosphonate de diéthyle (28) : Rdt=85% Rf=0, 46 (éther éthylique) RMN'H (CDCt3), 8 (ppm) : 1, 31 (t, Jg. y 7, 1 Hz, 6H, H-8) ; 1, 85 (6H, H-5 et H- 6) ; 3, 95-4, 15 (q, 4H, H-7) ; 5, 51 (dd, Jl-2 16, 6 Hz, JI-p 20, 2 Hz, 1H, H-1) ; 5, 94 (d, J3-2 10, 9 Hz, 1H, H-3) ; 7, 35 (ddd, J2-p 21, 0 Hz, IH, H-2).
RMN P (CDCb), ≈(ppm) : 19,4.
RMN 13C(CDCl3), # (ppm) : 16,71-16, 77 (2C, C-8), 16,24 (1C, C-6), 26,74 (d, Js-p 1, 2 Hz, 1C, C-5), 61,86-61, 92 (2C, C-7), 111,97 (d, JI-p 192, 0 Hz, 1C, C-1), 125,17 (d, J3-p 26,34 Hz, 1C, C-3), 145,66 (d, J2-p 6, 6 Hz, 1C, C-2), 145,67 (lC, C-4).
- les composés du nickel comme les carboxylates (notamment l'acétate), carbonate, bicarbonate, borate, bromure, chlorure, citrate, thiocyanate, cyanure, formiate, hydroxyde, hydrophosphite, phosphite, phosphate et dérivés, iodure, nitrate, sulfate, sulfite, aryl-et alkyl-suifonates.
Les composés organiques comportant au moins une double liaison éthylénique plus particulièrement mis en oeuvre dans le présent procédé sont les dioléfines comme le butadiène, l'isoprène, l'hexadiène-1, 5, le cyclooctadiène-1, 5, les nitriles aliphatiques à insaturation éthylénique, particulièrement les pentènenitriles linéaires comme le pentène- 3-nitrile, le pentène-4-nitrile, les monooléfines comme le styrène, le méthylstyrène, le vinylnaphtalène, le cyclohexène, le méthylcyclohexène ainsi que les mélanges de plusieurs de ces composés.
Les pentènenitriles notamment peuvent contenir des quantités, généralement minoritaires, d'autres composés, comme le méthyl-2-butène-3-nitrile, le méthyl-2-butène- 2-nitrile, le pentène-2-nitrile, le valéronitrile, l'adiponitrile, le méthyl-2-glutaronitrile, l'éthyl- 2-succinonitrile ou le butadiène, provenant par exemple de la réaction antérieure d'hydrocyanation du butadiène en nitriles insaturés.
En effet, lors de l'hydrocyanation du butadiène, il se forme avec les pentènenitriles linéaires des quantités non négligeables de méthyl-2-butène-3-nitrile et de méthyl-2- butène-2-nitrile.
Le système catalytique utilisé pour l'hydrocyanation selon le procédé de l'invention peut être préparé avant son introduction dans la zone de réaction, par exemple par addition à la phosphine conforme à l'invention seule ou dissoute dans un solvant, la quantité appropriée de composé du métal de transition choisi et éventuellement du réducteur. Il est également possible de préparer le système catalytique"in situ"par simple addition de la phosphine et du composé du métal de transition dans le milieu réactionnel d'hydrocyanation avant ou après l'addition du composé à hydrocyaner.
La quantité de composé du nickel ou d'un autre métal de transition utilisée est choisie pour obtenir une concentration en mole de métal de transition par mole de composés organiques à hydrocyaner ou isomériser comprise entre 10-4 et 1, et de
préférence entre 0,005 et 0,5 mole de nickel ou de l'autre métal de transition mis en oeuvre.
La quantité de ligands organiques de l'invention utilisée pour former le catalyseur est choisie de telle sorte que le nombre de moles de ce composé rapporté à 1 mole de métal de transition soit de 0,5 à 50 et de préférence de 2 à 10.
Ce solvant peut également être partiellement miscible avec les composés à hydrocyaner, notamment quand le milieu réactionnel est à une température inférieure à la température de réaction. Ainsi, on peut, à de telles températures, obtenir un système biphasique. Dans le cas où le système catalytique est soluble dans ledit solvant, son extraction du milieu réactionnel en est facilitée. De tels solvants partiellement miscibles ou non miscibles peuvent être l'eau ou des sels organiques fondus à caractère ionique.
De tels solvants sont utilisés notamment quand le ligand organique comprend des radicaux anioniques le rendant soluble dans les milieux ioniques. Ces radicaux sont par exemple des groupements sulfonates, carbonates, carboxylates, phosphates, ammonium, guanidinium, imidazolium, substituant les radicaux aromatiques du ligand.
La réaction d'hydrocyanation est généralement réalisée à une température de 10 C à 2000C et de préférence de 30 C à 120 C. Elle est avantageusement réalisée en milieu monophasique, à la température de réaction.
Description détaillée des modes de réalisation préférés Un premier mode de réalisation préféré de la présente invention va maintenant être décrit en faisant référence aux figures 1A à 3.
En faisant maintenant référence à la figure lA, un diagramme illustre une vue en coupe longitudinale d'un compresseur de type à piston à cylindrée fixe à double tête selon le premier mode de réalisation préféré de la présente invention. L'avant et l'arrière du compresseur correspondent, respectivement, au côté gauche et au côté droit du dessin. Un boîtier du compresseur comporte une paire de blocs cylindres avant et arrière 11,12, un boîtier avant 13 et un boîtier arrière 14. Le bloc cylindre avant 11 est raccordé au bloc cylindre arrière 12. Le boîtier avant 13 est raccordé au bloc cylindre avant 11. Le boîtier arrière 14 est raccordé au bloc cylindre arrière 12. Une chambre de refoulement ou une pression de pression de refoulement 131 est définie dans le boîtier avant 13.
Une chambre de refoulement ou une région de pression de refoulement 141 et une chambre d'aspiration ou une région de pression d'aspiration 142 sont définies dans le boîtier arrière 14.
Une plaque à passage de soupape 15, une plaque porte-soupape 16 et une plaque de retenue 17 sont intercalées entre le bloc cylindre avant 11 et le boîtier avant 13. Une plaque à
passage de soupape 18, une plaque porte-soupape 19 et une plaque de retenue 20 sont intercalées entre le bloc cylindre arrière 12 et le boîtier arrière 14. Des orifices de refoulement 151 et 181 sont respectivement formés dans les plaques à passage de soupape 15 et 18. Des soupapes de refoulement 161 et 191 sont respectivement formées dans les plaques porte-soupapes 16 et 19 pour ouvrir et fermer les orifices de refoulement 151 et 181, respectivement. Les retenues 171 et 201 sont respectivement formées dans les plaques de retenue 17 et 20 pour réguler les degrés d'ouverture respectifs des soupapes de refoulement 161 et 191.
Un arbre rotatif 21 est supporté, pour tourner, par les blocs cylindres avant et arrière 11, 12, et est inséré dans les trous d'arbres 111 et 121 qui s'étendent à travers les blocs cylindres avant et arrière 11, 12. Plus particulièrement, l'arbre rotatif 21 est directement supporté par les blocs cylindres avant et arrière 11, 12, à travers les trous d'arbre 111 et 121, respectifs. Une garniture d'étanchéité d'arbre 22 est intercalée entre le boîtier avant 13 et l'arbre rotatif 21. Un plateau oscillant ou une came 23 est fixé(e) sur l'arbre rotatif 21 et est situé(e) dans une chambre de bielle ou une chambre de came 24, qui est définie entre les blocs cylindres avant et arrière 11,12. Un palier de butée 25 est intercalé entre une surface d'extrémité arrière du bloc cylindre 11 et une portion proximale annulaire 231 du disque oscillant 23. Un palier de butée 26 est intercalé entre une surface d'extrémité avant du bloc cylindre 12 et la portion proximale annulaire 231 du disque oscillant 23. Les paliers de butée 25 et 26 prennent en sandwich le disque oscillant 23 pour réguler une position de l'arbre rotatif, dans une direction d'un axe 213 de l'arbre rotatif 21.
Une pluralité d'alésages cylindriques avant 27 (un seul alésage cylindrique avant 27 est représenté sur le dessin) est formée dans le bloc cylindre avant 11. De même, une pluralité d'alésages cylindriques arrière 28 (un seul alésage cylindrique arrière 28 est représenté sur le dessin) est formée dans le bloc cylindre arrière 12. Les têtes avant et arrière d'un piston à double tête 29 sont respectivement situées dans la paire d'alésages cylindriques 27,28. Le piston à double tête 29 s'engage sur le disque oscillant 23, par l'intermédiaire d'une paire de patins. Le disque oscillant 23 tourne en une seule pièce avec l'arbre rotatif 21 et transmet la puissance du disque oscillant 23 au piston à double tête 29, par l'intermédiaire des patins 30, de telle sorte que le piston à double tête 29 fait un mouvement de va et vient dans la paire d'alésages cylindriques 27,28. Des chambres de compression 271 et 281 sont définies dans les alésages cylindriques respectifs 27 et 28.
Des portions d'étanchéité 112 et 122 sont respectivement fournies au niveau des surfaces de la circonférence intérieure des trous d'arbres 111 et 121. Les portions d'étanchéité 112 et 122 sont plus petites en diamètre que le reste des surfaces de la circonférence intérieure des trous d'arbre 111 et 121. En d'autres termes, l'arbre rotatif 21 est directement supporté par les blocs cylindres 11 et 12, par l'intermédiaire des portions d'étanchéité 112 et 122 respectives. Un passage d'alimentation 211 est formé dans l'arbre rotatif 21. Le passage d'alimentation 211 s'étend jusqu'à l'extrémité arrière de l'arbre rotatif 21 et communique avec la chambre d'aspiration 142 dans le boîtier arrière 14. Des passages d'introduction 31 et 32 sont formés dans l'arbre rotatif 21 de façon à communiquer
avec la chambre d'aspiration 142, par l'intermédiaire du passage d'alimentation 211.
Un passage d'aspiration 33 est formé dans le bloc cylindre avant 11 de façon à raccorder entre eux l'alésage cylindrique 27 et le trou d'arbre 111. Un orifice d'admission 331 du passage d'aspiration 33 s'ouvre sur la portion d'étanchéité 112. De même, un passage d'aspiration 34 est formé dans le bloc cylindre arrière 12, de façon à raccorder entre eux l'alésage cylindrique 28 et le trou d'arbre 121. Un orifice d'admission 341 du passage d'aspiration 34 s'ouvre sur la portion d'étanchéité 122. Au moment où l'arbre rotatif 21 tourne, un orifice de sortie 311 du passage d'introduction 31 communique, par intermittence, avec l'orifice d'admission 331 du passage d'aspiration 33. De même, au moment où l'arbre rotatif 21 tourne, un orifice de sortie 321 du passage d'introduction 32 communique, par intermittence, avec l'orifice d'admission 341 du passage d'aspiration 34.
Lorsque l'alésage cylindrique avant 27 se trouve dans un cycle d'aspiration, c'est-à-dire lorsque le piston à double tête 29 se déplace du côté gauche au côté droit de la figure 1A, l'orifice de sortie 311 communique avec l'orifice d'admission 331 du passage d'aspiration 33. Il en résulte que le réfrigérant dans le passage d'alimentation 211 est introduit dans la chambre de compression 271 par l'intermédiaire du passage d'introduction 31 et du passage d'aspiration 33. Lorsque l'alésage cylindrique avant 27 se trouve dans un cycle de refoulement, c'est-à-dire lorsque le piston à double tête 29 se déplace du côté droit au côté gauche de la figure 1A, l'orifice de sortie 311 n'est plus raccordé à l'orifice d'admission 331 du passage d'aspiration 33. Il en résulte que le réfrigérant dans la
chambre de compression 271 est refoulé vers la chambre de refoulement 131, par l'intermédiaire de l'orifice de refoulement 151, en poussant la soupape de refoulement 161.
Le réfrigérant refoulé dans la chambre de refoulement 131 s'écoule vers un circuit de réfrigérant extérieur, qui n'est pas représenté sur le dessin.