INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
11-3-10- Séquences dessinées pour la détection de Legionella spp. : Deux couples d'amorces et sondes associées ont été mis au point pour la détection et la quantification de Legionella spp. : 1er couple: Le premier couple, dessiné à partir de la séquence du gène codant pour l'ARN 16S de L. pneumophila subsp. pascullei (Genbank Accession Number : AF122885), est constitué des amorces Lg189f (SEQ ID N 33), et Lg69r (SEQ ID N 34), et associé à la sonde Lg189TqFT (SEQ ID N 38).
Ces couples d'amorces et sonde associées, dessinés pour la détection et la quantification du genre Legionella spp., ont permis d'obtenir,
avec une sensibilité de 200 copies par réaction, des courbes d'amplification en temps réel spécifique de ce genre sur des extraits d'ADN de L. pneumophila sérogroupes 1 à 14 (14 souches de collection et 9 souches d'origine environnementale), L. anisa, L. birminghamensis, L. bozemanii, L. brumensis, L. cherrii, L. cincinatiensis, L. dumofii, L. feelei, L. gormanii, L. gratiana, L. hackeliae (2 souches), L. jamestowniensis, L. jordanis, L. longbeacheae sérogroupes 1 et 2, L. nagaro, L. oakridgensis, L. parisiensis, L. santicrusis, L. sainthelensi, L. tucsonensis, L. wadsworthii et de 13 souches de Legionella spp. issues de l'environnement (Figure 13).
Ces couples d'amorces et sonde associées ont également permis d'obtenir, avec une sensibilité de 104 copies par réaction, des courbes d'amplification en temps réel spécifiques de ce genre sur des extraits d'ADN de L. israelensis, L. lansingensis, L. micdadei et L. rubriculens.
La taille du produit d'amplification estimée par électrophorèse était conforme à la taille attendue à savoir 189 pb (Figure 16, piste 4).
Seul l' ADN de l'espèce L. erythra n'a pas donné lieu à une amplification. Les ADN issus d'autres micro-organismes susceptibles d'être retrouvés dans l'eau tels que Acanthamoeba polyphaga, Acinetobacter baumanii, Acinetobacter junii, Acinetobacter Iwofii, Aerococcus viridans, Alcaligenes faecalis, Bacillus subtilis, Bulkhoderia cepacia, Campylobacter jejuni, Campylobacter coli, Citrobacter freundii, Clostridium perfringens, Enterobacter cloacae, Enterobacter aerogenes, Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus durans, Klebsiella oxytoca, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas paucimobilis, Pseudomonas putida, Proteus peneri, Shigella dysenteriae, Staphylococcus aureus, Staphylococcus gallinarum, Staphylococcus lugdunensis, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus et Yersinia enterocolitica n'ont pas donné de produit d'amplification. Les ADN issus d'Aeromonas hydrophila, Enterococcus faecium et Stenotrophomonas maltophilia ont généré un faible signal
d'amplification lorsque leur équivalent en ADN génomique dépasse les 105 copies.
2ème couple : Ce deuxième couple, également dessiné à partir de la séquence du gène codant pour l'ARN 16S de L. pneumophila subsp. pascullei (Genbank Accession Number : AF122885), comprend les amorces Lg69f (SEQ ID N 35) et Lg69r 5SEQ ID N 34, idem que pour le 1er couple), est associé à la sonde Lg69TqFT (SEQ ID N 39).
Ces couples d'amorces et sonde associées dessinés pour la détection et la quantification du genre Legionella spp., ont permis d'obtenir, avec une sensibilité de 20 copies d'équivalent génomiques, des courbes d'amplification en temps réel spécifique de ce genre sur des extraits d'ADN de L. pneumophila sérogroupes 1 à 14 (14 souches de collection et 9 souches d'origine environnementale), L. anisa, L. birminghamensis,L. bozemanii, L. brumensis, L. cherrii, L. cincinatiensis, L. dumofii, L. feelei, L. gormanii, L. gratiana, L. hackeliae (2 souches), L. jamestowniensis, L. jordanis, L. longbeacheae sérogroupes 1 et 2, L. micdadei, L. nagaro, L. oakridgensis, L. parisiensis, L. santicrusis, L. sainthelensi, L. tucsonensis, L. wadsworthii et de 13 souches de Legionella spp. issues de l'environnement (Figure 14). Ces couples d'amorces et sonde associées ont également permis d'obtenir, avec une sensibilité de 104 copies par réaction, des courbes d'amplification en temps réel spécifique de ce genre sur des extraits d'ADN de L. erythra, L. israelensis, et L. rubriculens.
La taille du produit d'amplification estimée par électrophorèse était conforme à la taille attendue à savoir 69 pb (Figure 16, piste 3).
Seul l'ADN de l'espèce L. lansingensis, n'a pas donné lieu à une amplification. Les ADN issus d'autres genres susceptibles d'être retrouvés dans l'eau tels qu'Acanthamoeba polyphaga, Acinetobacter baumanii, Acinetobacter junii, Acinetobacter Iwofii, Aerococcus viridans, Aeromonas hydrophila, Alcaligenes faecalis, Bacillus subtilis, Bulkhoderia cepacia,
Parmi ce type de polymères associatifs anioniques, on utilisera plus particulièrement des polymères formés à partir d'un mélange de monomères comprenant : (i) essentiellement de l'acide acrylique, (ii) un ester de formule (XVII) décrite ci-dessus et dans laquelle R2 désigne H ou CH3, R3 désignant un radical alkyle ayant de 12 à 22 atomes de carbone, et (iii) un agent réticulant, qui est un monomère insaturé polyéthylénique copolymérisable bien connu, comme le phtalate de diallyle, le (méth) acrylate d'allyl, le divinylbenzène, le diméthacrylate de (poly) éthylèneglycol, et le méthylène-bis-acrylamide.
- (III) les terpolymères d'anhydride maléique/a-oléfine en C30C38/ maléate d'alkyle tel que le produit (copolymère anhydride maléique/a-oléfine en C3o-C38/maléate d'isopropyle) vendu sous le nom PERFORMA V 1608 par la société NEWPHASE TECHNOLOGIES.
- (IV) les terpolymères acryliques comprenant :
(a) environ 20% à 70% en poids d'un acide carboxylique à insaturation a,(3-monoéthylénique, (b) environ 20 à 80% en poids d'un monomère à insaturation a,(3-monoéthylénique non-tensio-actif différent de (a), (c) environ 0,5 à 60% en poids d'un mono-uréthane nonionique qui est le produit de réaction d'un tensio-actif monohydrique avec un monoisocyanate à insaturation monoéthylénique, tels que ceux décrits dans la demande de brevet EP-A-0173109 et plus particulièrement celui décrit dans l'exemple 3, à savoir, un terpolymère acide méthacrylique/acrylate de méthyle/diméthyl métaisopropényl benzyl isocyanate d'alcool béhényle éthoxylé (400E) en dispersion aqueuse à 25%.
- (V) les copolymères comportant parmi leurs monomères un acide carboxylique à insaturation a,P-monoéthylénique et un ester d'acide carboxylique à insaturation a,i-monoéthylénique et d'un alcool gras oxyalkyléné.
Préférentiellement ces composés comprennent également comme monomère un ester d'acide carboxylique à insaturation [alpha],ss- monoéthylénique et d'alcool en C1-C4.
Parmi les polymères associatifs de type cationique, on peut citer : -(I) les polyuréthanes associatifs cationiques dont la famille a été décrite par la demanderesse dans la demande de brevet français N 0009609 ; elle peut être représentée par la formule générale (XVIII) suivante : R-X-(P)n-[L-(Y)m]r-L'-(P')p-X'-R' (XVIII) dans laquelle :
R et R', identiques ou différents, représentent un groupement hydrophobe ou un atome d'hydrogène ; X et X', identiques ou différents, représentent un groupement comportant une fonction amine portant ou non un groupement hydrophobe, ou encore le groupement L" ; L, L' et L", identiques ou différents, représentent un groupement dérivé d'un diisocyanate ; P et P', identiques ou différents, représentent un groupement comportant une fonction amine portant ou non un groupement hydrophobe ; Y représente un groupement hydrophile ; r est un nombre entier compris entre 1 et 100, de préférence entre 1 et 50 et en particulier entre 1 et 25, n, m, et p valent chacun indépendamment des autres entre 0 et 1000 ; la molécule contenant au moins une fonction amine protonée ou quaternisée et au moins un groupement hydrophobe.
Une famille préférée de polyuréthanes associatifs cationiques est celle correspondant à la formule (XVIII) décrite ci-dessus et dans laquelle : R et R' représentent tous les deux indépendamment un groupement hydrophobe, X, X' représentent chacun un groupe L", n et p valent entre 1 et 1000 et L, L', L", P, P', Y et m ont la signification indiquée cidessus.
Une autre famille préférée de polyuréthanes associatifs cationiques est celle correspondant à la formule (XVIII) ci-dessus dans laquelle :
R et R' représentent tous les deux indépendamment un groupement hydrophobe, X, X' représentent chacun un groupe L", n et p valent 0, et L, L', L", Y et m ont la signification indiquée ci-dessus.
CODIFICATION DES SIGNAUX (exemple) VUE (couleur) ODORAT GOÛT Bleu Menthe Menthe Violet Miel Tabac Vert Rose (fleur) Réglisse Des tests consommateurs sont nécessaires pour optimiser les triplets pour aller à la limite du rejet sans atteindre le dégoût. De même l'extension de ce concept à d'autres pays européens entraînera en fonction des habitudes alimentaires d'autres triplets.
La papaye, Carica papaya, contient de la chymopapaïne protéolytique et de la papaïne, c'est un bon agent désinfiltrant.
- Les fibres solubles (pectines, gommes), vont créer un gel qui va tapisser l'épithélium (la paroi) de l'intestin ce qui va retarder l'absorption des glucides en créant un effet barrière .
BIBLIOGRAPHIE : Lia A, Hallmans G, Sandberg A-S et al: Oat ss-glucan increases bile acid excrétion and a fiber-rich barley fraction increases cholesterol excrétion in ileostomy subjects. Am J Clin Nutr 1995; 62 : 1245-1251 Burley VJ, Blundell JE : Dietary fiber and the pattern of energy
intake. In Kritchevsky D, Bonfield C (eds): Dietary Fiber in Health and Disease. Eagen Press, St Paul, Minnesota, 1995 : 256 Nelson LH, Tucker LA: Diet composition related to body fat in a multivariate study of 203 men. J Am Diet Assoc 1996 ; 96 : 771-777 Poppitt SD, Prentice AM : Energy density and its role in the control of food intake: evidence from metabolic and community studies. Appetite 1996 ; 153-174 Holt SH, Miller JC, Petocz P et al: A satiety index of common foods. Eur J Clin Nutr 1995 ; 675-690 Il faut y rajouter du chrome, des éléments riches en chrome tels que : la levure de bière, Saccharomyces cerevesiae, la spiruline, Spirulina, (toutes deux riches en vitamines B, intervenant dans le catabolisme des graisses et des sucres), le galega, Galega officinalis, ou la cosse de haricot, Phaseolus vulgaris, tous deux riches en chrome et dont les pouvoirs hypoglycémiant et diurétique sont démontrés. D'autres oligoéléments, le zinc, le nickel, le cobalt ont une action reconnue sur le comportement alimentaire.
souches), Clostridium perfringens, Proteus vulgaris, Klebsiella pneumoniae, Enterococcus durans, Pseudomonas stutzeri, Shigella flexneri, Morganella morganii, Hafnia alvei, Providencia rettgeri, Serratia marcescens, Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae (2 souches), Les microorganismes étudiés avec les couples d'amorces et sondes associées spécifiques de Legionella spp. et Legionella pneumophila sont : Acanthamoeba polyphaga, Acinetobacter baumanii, Acinetobacter junii, Acinetobacter Iwofii, Aerococcus viridans, Aeromonas hydrophila, Alcaligenes faecalis, Bacillus subtilis, Bulkhoderia cepacia, Campylobacter jejuni, Campylobacter coli, Citrobacter freundii, Clostridium perfringens, Enterobacter cloacae, Enterobacter aerogenes, Escherichia coli, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus durans, Klebsiella oxytoca, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas paucimobilis, Pseudomonas putida, Proteus peneri, Shigella dysenteriae, Staphylococcus aureus, Staphylococcus gallinarum, Staphylococcus lugdunensis, Stenotrophomonas maltophilia, Streptococcus bovis, Streptococcus equinus, Yersinia enterocolitica, L. pneumophila sérogroupes 1 à 14 (14 souches de collection et 9 souches d'origine environnementale), L. anisa, L. birminghamensis, L. erythra, L. bozemanii, L. brumensis, L. cherrii, L. cincinatiensis, L. dumofii, L. feelei, L. gormanii, L. gratiana, L. hackeliae (2 souches), L. israelensis, L. jamestowniensis, L. jordanis, L. lansingensis, L. longbeacheae sérogroupes 1 et 2, L. micdadei, L. maceachernii, L. nagaro, L. oakridgensis, L. parisiensis, L. rubriculens, L. santicrusis, L. sainthelensi, L. tucsonensis, L. wadsworthii et 13 souches de Legionella spp. issues de l'environnement.
11-3-2- Séquences dessinées pour la détection de Listeria monocytogenes : Les couple d'amorces et sonde associée dessinés pour la détection de L. monocytogenes ont permis d'obtenir des courbes d'amplification en
temps réel spécifique de cette espèce, avec une sensibilité de 1 à 10 copies d'équivalents d'ADN génomique par réaction PCR (Figure 1). Aucun produit d'amplification n'a été obtenu avec les autres espèces de Listeria, pas plus qu'avec les bactéries étudiées appartenant à d'autres genres que Listeria. Le produit d'amplification (SEQ. ID n 25 et 26 ci-dessous) a été purifié et sa séquence déterminée sur les deux brins en utilisant les amorces LmHlyAf (SEQ ID n 1) et LmHlyAr (SEQ ID n 2). La séquence SEQ ID n 25 a été obtenue en utilisant l'amorce LmHlyAr (SEQ ID n 2).
SEQ ID n 25 : 5'ATACATTGTTTTTATTGTAATCCAATCCTTGTATATACTTATCGATTT CATGCCGCGTGTTTCTTTTCGATTGGCGTCTTAGGACTTGCAGG 3' SEQ ID n 26 : 5'CGAAAAGAACACGCGGATGAAATCGATAAGTATATACAAGGATT GGATTACAATATAAAACAATGTATTAGTATACCACGGAGATGCAGTG3' 11-3-3- Séquences dessinées pour la détection de Salmonella spp. : Les couple d'amorces et sonde associée dessinés pour l'amplification d'une séquence de Salmonella spp. ont permis d'amplifier un fragment de la taille attendue, et ce, de manière spécifique, avec une sensibilité de 1 à 10 copies d'équivalents d'ADN génomique par réaction PCR (Figure 3). Aucun produit d'amplification n'a été obtenu au cours des
réactions réalisées sur les extraits provenant des autres genres bactériens étudiés. La taille du produit d'amplification estimée par électrophorèse sur gel d'agarose était conforme à la taille attendue, à savoir 98 pb (Figure 4).
11-3-4- Séquences dessinées pour la détection de Escherichia coli : Les couple d'amorces et sonde associée dessinés pour E. coli ont permis d'amplifier un fragment d'ADN de la taille attendue pour les 4 souches d'E. coli étudiées (Figure 5), ainsi que pour Y. enterocolitica, S. flexneri et H. alvei.
SEQ ID n 27 : 5'TGANGTTTANCAGCAAGCTTGTGATCCTCCGTCGCCACCAGCCG AAGTCAGTAGTGATCCAGCCGAAG 3'
11-3-6- Séquences dessinées pour la détection de Bacillus cereus : Les couple d'amorces et sonde associée dessinés pour B. cereus ont permis d'obtenir des courbes d'amplification en temps réel spécifique, avec une sensibilité de 50 copies d'équivalents d'ADN génomique par réaction PCR (Figure 7). La taille du produit d'amplification a été vérifiée par électrophorèse sur gel d'agarose et correspondait effectivement à la taille attendue, à savoir 84 pb (Figure 8). Aucun produit d'amplification n'a été obtenu au cours des réactions effectuées sur les extraits provenant d'autres genres bactériens.
11-3-7- Séquences dessinées pour la détection de Clostridium perfringens : Les couple d'amorces et sonde associée dessinés pour C. perfringens ont permis d'obtenir, de manière spécifique à cette espèce, des courbes d'amplification en temps réel, avec une sensibilité de 1 à 10 copies d'équivalents d'ADN génomique par réaction de PCR (Figure 10). Aucun produit d'amplification n'a été obtenu lors des réactions réalisées sur les extraits provenant des genres bactériens étudiés autres que Clostridium. Le produit d'amplification a été purifié. Sa séquence, SEQ ID n 28, a été déterminée en utilisant l'amorce Cp97f (SEQ ID n 13). Les nucléotides soulignés dans la séquence SEQ ID n 28 ci-dessous, situés entre les positions 59 et 78, représentent l'amorce Cp97r (SEQ ID n 14). La séquence SEQ ID n 28 ci-dessous était identique à la séquence cible recherchée.
SEQ ID n 28 : 5'TATTTTGGAGTAATAGATACTCCATATCATCCTGCTAATGTTACTG CCGTTGATAGCGCAGGACATGTTAAGTTTGAG 3' 11-3-8- Séquences dessinées pour la détection de Campylobacter jejuni :
Les couple d'amorces et sonde associée dessinés pour C. jejuni ont permis d'obtenir des courbes d'amplification en temps réel de manière spécifique à cette espèce, avec une sensibilité de 1 à 10 copies d'équivalents d'ADN génomique par réaction PCR (Figure 11). Le produit d'amplification a été purifié et sa séquence déterminée sur les deux brins.
La séquence SEQ ID n 29 suivante : 5' ATTCAGCCAAACCCTAACCTCAGCTCCAGCCCAAGACAGTCGACCGCTA 3', a été obtenue à l'aide de l'amorce Cju76f (SEQ ID n 15). Les bases soulignées, situées entre les positions 31 et 49 de la séquence ci-dessus, représentent la séquence complémentaire de l'amorce Cju76r (SEQ ID n 16).
* Parmi les paraphénylénediamines, on peut citer à titre d'exemple, la paraphénylènediamine, la paratoluylènediamine, la 2-chloro paraphénylènediamine, la 2,3-diméthyl paraphénylènediamine, la 2,6-diméthyl paraphénylènediamine, la 2,6-
diéthyl paraphénylènediamine, la 2,5-diméthyl paraphénylènediamine, la N,N-diméthyl paraphénylènediamine, la N,N-diéthyl paraphénylènediamine, la N,N-dipropyl paraphénylènediamine, la 4-amino N,N-diéthyl 3-méthyl aniline, la N,N-bis-((3-hydroxyéthyl) paraphénylènediamine, la 4-N,N-bis-(|3-hydroxyéthyl)amino 2-méthyl aniline, la 4-N,N-bis-(p-hydroxyéthyl)amino 2-chloro aniline, la 2-ss-hydroxyéthyl paraphénylènediamine, la 2-fluoro paraphénylènediamine, la 2-isopropyl paraphénylènediamine, la N-(P-hydroxypropyl) paraphénylènediamine, la 2-hydroxyméthyl paraphénylènediamine, la N,N-diméthyl 3-méthyl paraphénylènediamine, la N,N-(éthyl, (3-hydroxyéthyl) paraphénylènediamine, la N-(ss,[gamma]-dihydroxypropyl) paraphénylènediamine, la N- (4'-aminophényl) paraphénylènediamine, la N-phényl paraphénylènediamine, la 2--hydroxyéthyloxy paraphénylènediamine, la 2-P-acétylaminoéthyloxy paraphénylènediamine, la N-(p-méthoxyéthyl) paraphénylène-diamine, la 4-aminophénylpyrrolidine, la 2-thiényl paraphénylènediamine, le 2- ss hydroxyéthylamino 5-amino toluène, la 3-hydroxy 1-(4'aminophényl) pyrrolidine et leurs sels d'addition avec un acide.
Parmi les paraphénylènediamines citées ci-dessus, la paraphénylènediamine, la paratoluylènediamine, la 2-isopropyl paraphénylènediamine, la 2-P-hydroxyéthyl paraphénylènediamine, la 2-(3-hydroxyéthyloxy paraphénylène-diamine, la 2,6-diméthyl paraphénylènediamine, la 2,6-diéthyl paraphénylènediamine, la 2,3-diméthyl paraphénylènediamine, la N,N-bis-(P-hydroxyéthyl) paraphénylènediamine, la 2-chloro paraphénylènediamine, la 2--acétylaminoéthyloxy paraphénylènediamine, et leurs sels d'addition avec un acide sont particulièrement préférées.
Parmi les bis-phénylalkylènediamines, on peut citer à titre d'exemple, le N,N'-bis-(P-hydroxyéthyl) N,N'-bis-(4'-aminophényl) 1,3-diamino propanol, la N,N'-bis-((3-hydroxyéthyl) N,N'-bis-(4'- aminophényl) éthylènediamine, la N,N'-bis-(4-aminophényl)
tétraméthylènediamine, la N,N'-bis-(|3-hydroxyéthyl) N,N'-bis-(4- aminophényl) tétraméthylènediamine, la N,N'-bis-(4-méthylaminophényl) tétraméthylènediamine, la N,N'-bis-(éthyl) N,N'-bis-(4'amino, 3'-méthylphényl) éthylènediamine, le 1,8-bis-(2,5-diamino phénoxy) -3,6-dioxaoctane, et leurs sels d'addition.
Parmi les para-aminophénols, on peut citer à titre d'exemple, le para-aminophénol, le 4-amino 3-méthyl phénol, le 4-amino 3-fluoro phénol, le 4-amino-3-chlorophénol, le 4-amino 3-hydroxyméthyl phénol, le 4-amino 2-méthyl phénol, le 4-amino 2-hydroxyméthyl phénol, le 4amino 2-méthoxyméthyl phénol, le 4-amino 2-aminométhyl phénol, le 4amino 2-(P-hydroxyéthyl aminométhyl) phénol, le 4-amino 2-fluoro phénol, et leurs sels d'addition avec un acide.
Parmi les ortho-aminophénols, on peut citer à titre d'exemple, le 2-amino phénol, le 2-amino 5-méthyl phénol, le 2-amino 6-méthyl phénol, le 5-acétamido 2-amino phénol, et leurs sels d'addition.
Parmi les dérivés pyridiniques, on peut citer les composés décrits par exemple dans les brevets GB 1 026 978 et GB 1 153 196, comme la 2,5-diamino pyridine, la 2-(4-méthoxyphényl)amino 3-amino pyridine, la 3,4-diamino pyridine, et leurs sels d'addition.
D'autres bases d'oxydation pyridiniques utiles dans la présente invention sont les bases d'oxydation 3-amino pyrazolo-[1,5-a]pyridines ou leurs sels d'addition décrits par exemple dans la demande de brevet FR 2801308. A titre d'exemple, on peut citer la pyrazolo[1,5- a]pyridin-3-ylamine ; la 2-acétylamino pyrazolo-[l,5-a] pyridin-3ylamine ; la 2-morpholin-4-yl-pyrazolo[l,5-a]pyridin-3-ylamine ; l'acide 3-amino-pyrazolo[1,5-a]pyridin-2-carboxylique ; la 2-méthoxy-
pyrazolo[l,5-a]pyridine-3-ylamino ; le (3-amino-pyrazolo[l,5- a]pyridine-7-yl)-méthanol ; le 2-(3-amino-pyrazolo[1,5-a]pyridine-5- yl)-éthanol ; le 2-(3-amino-pyrazolo[1,5-a]pyridine-7-yl)-éthanol ; le (3-amino-pyrazolo[l,5-a]pyridine-2-yl)-méthanol ; la 3,6-diamino- pyrazolo[1,5-a]pyridine ; la 3,4-diamino-pyrazolo[1,5-a]pyridine ; la pyrazolo[l,5-a]pyridine-3,7-diamine la 7-morpholin-4-yl- pyrazolo[1,5-a]pyridin-3-ylamine ; la pyrazolo[1,5-a]pyridine-3,5- diamine ; la 5-morpholin-4-yl-pyrazolo[1,5-a]pyridin-3-ylamine ; le 2- [(3-amino-pyrazolo[l,5-a]pyridin-5-yl)-(2-hydroxyéthyl)-amino]- éthanol le 2-[(3-amino-pyrazolo[1,5-a]pyridin-7-yl)-(2- hydroxyéthyl)-amino]-éthanol ; la 3-amino-pyrazolo[1,5-a]pyridine-5- ol ; 3-amino-pyrazolo[l,5-a]pyridine-4-ol ; la 3-amino-pyrazolo[1,5- a]pyridine-6-ol ; la 3-amino-pyrazolo[I,5-a]pyridine-7-ol ; ainsi que leurs sels d'addition.
Parmi les dérivés pyrimidiniques, on peut citer les composés décrits par exemple dans les brevets DE 2359399 ; 88-169571 ; JP05- 63124 ; EP 0770375 ou demande de brevet WO 96/15765 comme la 2,4,5,6-tétra-aminopyrimidine, la 4-hydroxy 2,5,6-triaminopyrimidine, la 2-hydroxy 4,5,6-triaminopyrimidine, la 2,4-dihydroxy 5,6diaminopyrimidine, la 2,5,6-triaminopyrimidine et leurs sels d'addition et leurs formes tautomères, lorsqu'il existe un équilibre tautomérique.
Parmi les dérivés pyrazoliques, on peut citer les composés décrits dans les brevets DE 3843892, DE 4133957 et demandes de brevet WO 94/08969, WO 94/08970, FR-A-2 733 749 et DE 195 43 988 comme le 4,5-diamino 1-méthyl pyrazole, le 4,5-diamino l-(P-hydroxyéthyl) pyrazole, le 3,4-diamino pyrazole, le 4,5-diamino 1-(4'-chlorobenzyl) pyrazole, le 4,5-diamino 1,3-diméthyl pyrazole, le 4,5-diamino 3-méthyl 1-phényl pyrazole, le 4,5-diamino 1-méthyl 3-phényl pyrazole, le 4- amino 1,3-diméthyl 5-hydrazino pyrazole, le 1-benzyl 4,5-diamino 3-
méthyl pyrazole, le 4,5-diamino 3-tert-butyl 1-méthyl pyrazole, le 4,5diamino 1-tert-butyl 3-méthyl pyrazole, le 4,5-diamino l-(P-hydroxyéthyl) 3-méthyl pyrazole, le 4,5-diamino 1-éthyl 3-méthyl pyrazole, le 4,5-diamino 1-éthyl 3- (4'-méthoxyphényl) pyrazole,le 4,5- diamino 1-éthyl 3-hydroxyméthyl pyrazole, le 4,5-diamino 3hydroxyméthyl 1-méthyl pyrazole, le 4,5-diamino 3-hydroxyméthyl 1isopropyl pyrazole, le 4,5-diamino 3-méthyl 1-isopropyl pyrazole, le 4- amino 5- (2'-aminoéthyl)amino pyrazole, le 3,,4,5-triamino pyrazole, le 1-méthyl 3,4,5-triamino pyrazole, le 3,5-diamino 1-méthyl 4-méthylamino pyrazole, le 3,5-diamino 4-((3-hydroxyéthyl)amino 1-méthyl pyrazole, et leurs sels d'addition.
La ou les bases d'oxydation additionnelles présentes dans la composition de l'invention sont en général présentes en quantité comprise allant de 0,001 à 20 % en poids environ du poids total de la composition tinctoriale, de préférence allant de 0,005 à 6 %.
La composition selon l'invention contient de préférence un ou plusieurs coupleurs additionnels conventionnellement utilisés pour la teinture de fibres kératiniques. Parmi ces coupleurs, on peut notamment citer les métaphénylènediamines, les métadiphénols, les coupleurs naphtaléniques, les coupleurs hétérocycliques ainsi que leur sels d'addition.
Pour faciliter cette découpe et éviter l'effilochage, on enduit les contours tracés sur le tissu, d'un élastomère silicone réticulant rapidement à froid (CAF). Donc à l'aide d'un pistolet on dépose des petites quantités de CAF que l'on étale à l'aide d'une spatule le long des contours. Une fois le CAF sec, le découpage sera plus facile.
* Préparation du mélange : 10 g de partie B pour 100 g de partie A. Il faut -20 g de mélange pour préparer 3 essais. On ajoute 1 goutte de bleu de méthylène pour faciliter la superposition des 2 faces enduites.
b- Application Par mode sérigraphique, on dépose 2 bandes de 10 cm sur 5 du mélange, parallèlement et à une distance de - 2 cm. Le morceau de textile est pesé avant et après enduction pour connaître la quantité déposée.