INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
dans lesquelles : - T et T' représentent un groupe divalent, - R1et R2 représentent : . un groupe (i) alkyle, acyle, aryle, alcéne ou alcyne, ou . un cycle (ii) carboné, saturé ou non, éventuellement aromatique, ou . un hétérocycle (iii), saturé ou non, ces groupes et cycles (i), (ii) et (iii) pouvant être substitués par des groupes alkyles, phényles substitués, des groupes aromatiques substitués ou des groupes : oxo, alkoxycarbonyle ou aryloxycarbonyle (-COOR'), carboxy (-COOH), acyloxy (-02CR'), carbamoyle (-CONR'2), cyano (-CN), alkylcarbonyle, alkylarylcarbonyle, arylcarbonyle, arylalkylcarbonyle, isocyanate, phtalimido, maleïmido, succinimido, amidino, guanidimo, hydroxy (-OH), amino (-NR'2), halogène, allyle, époxy, alkoxy (-OR'), S-alkyle, S-aryle, silyle, des groupes présentant un caractère hydrophile ou ionique tels que les sels alcalins d'acides carboxyliques, les sels alcalins d'acide sulfonique, les chaînes polyoxyde d'alkylène (POE, POP), les substituants cationiques (sels d'ammonium quaternaires), R' représentant un groupe alkyle ou aryle, . une chaîne polymère, - p représente un entier compris entre 2 et 200, ' au moins un monomère M1 choisi parmi les monomères éthyléniquement insaturés 1,1 disubstitués polymérisables par voie radicalaire, 2. puis, on met en contact le polymère issu de la polymérisation de l'étape 1 avec : # au moins une source de radicaux libres, et # un ou des monomères M2 éthyléniquement insaturés, la proportion en monomères éthyléniquement insaturés 1,1 disubstitués polymérisables par voie radicalaire étant d'au plus 90 % en poids par rapport à la totalité des monomères M2, de préférence d'au plus 50 %.
Le procédé selon l'invention consiste donc à réaliser : - une première polymérisation par mise en contact d'une source de radicaux libres, d'au moins un monomère M1 et d'un composé de formule (1), (II) ou (III), de préférence de formule (1), de manière à former la chaîne principale, puis - une deuxième polymérisation par mise en contact de cette chaîne principale, d'une source de radicaux libres et d'au moins un monomère M2 pour former les greffons.
Analyse pour C50H52O12S (877.02) : calculée C :68.47 H :5.976 trouvée C :68.36 5) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(2-0-(3-0-(2-0- acétyl-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-2-0-acétyl- 4,6-0-benzylidène-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a- D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranoside (27) .
158 mg (180 mol, 1 éq) du composé 26,186 mg (1 éq) du composé 24 et 500 mg de tamis moléculaire sont mis en solution dans 5 mL de dichlorométhane anhydre et sont maintenus sous atmosphère d'argon. Après 30 mn d'agitation, la solution est refroidie à -20 C et 81 mg (2 éq) de N-iodosuccinimide ainsi que 4 (iL (0. 3 éq) d'acide trifluorométhanesulfonique sont additionnés au milieu.
Après 30 mn d'agitation, le tout est neutralisé par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium et flitré sur un lit de célite. La phase organique est alors lavée par une solution de thiosulfate de sodium, par une solution aqueuse de NaCl, séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous pression réduite. Le brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=5/1) et 236 mg (Rdt=72%) du produit 27 sont ainsi isolés sous la forme d'une huile incolore.[[alpha]]D +29 (c 0. 85, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : 8 7.38-7.25m(, 50H, arom.),5.66 (s, 1H, by), 5.56 (dd, 1H, J 2-1=1.5Hz et J 2- 3=3Hz, H-2D), 5. 44 (dd, 1H, J 2-1=1.3Hz et J 2-3=3.5Hz, H- 2C), 5. 32 (se, 1H, H-1D), 5. 2 (se, 1H, H-1B), 5. 04 (se, 1H, H-1C), 4.94 (se, 1H, H-1A), 4.88 (d, 1H, J gem=10.6Hz,
CHPh), 4. 88 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4. 87 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=11.2Hz, CHPh), 4. 72 (s, 2H, CH2Ph), 4. 67 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.67 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 61 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4. 6 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 6 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 58 (s, 2H, CH2Ph), 4. 57 (d, 1H, J gem=11.2Hz, CHPh), 4. 53 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4.52 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4.33 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4. 43 (dd, 1H, J 3-2=3.5Hz et J 3-4=9.3Hz, H-3C), 4. 21 (dd, 1H, J 6b-6a=10.4Hz et J 6b- 5=4.5Hz, H-6Cb), 4. 14-4.12 (m, 1H, H-2B), 4. 09 (t, 1H, J 4- 3=J 4-5=9.3Hz, H-4C), 4. 07-4.04 (m, 1H, H-5C), 4. 03 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.9Hz, H-4D), 4.01-4 (m, 1H, H-2A), 3.98-3.96 (m, 1H, H-3B), 3. 93 (dd, 1H, J 3-2=3Hz et J 3-4=9.9Hz, H- 3D) , 3.88-3.85 (m, 1H, H-5D), 3. 71 (s, 3H, -C:0-OCH3), 3.62-3.59 (m, 1H, H-6Da), 3.6-3.56 (m, 1H, -O-CH-CH2-), 3. 25 (dt, 1H, J gem=9. 4Hz et J CH-CH2=6.6Hz, -O-CH-CH2-), 2. 34 (t, 2H, J CH2-CH2=7.5Hz, -CH2-C02CH3), 2. 14 et 2.13 (2s, 6H, 2 0-C:0-CH3), 1. 7-1.62, 1. 54-1.47 et 1. 35-1.25 (m, 12H, -CH2-).
13C R. M.N. (100 MHz) : # 174. 3 (-C:O-OCH3), 170. 1 et 169. 5 (2 -O-C:O-CH3), 138. 6, 138. 55, 138. 3*2, 138. 29*2, 138. 23, 138. 2, 137. 98, 137 (10 C arom. ), 128.7- 125. 9 (50 CH arom. ), 101.2 (by), 100. 6 (C-1B, lJcH=171.3Hz), 99.8 (C-1C, 1 J"CH=172 . 2Hz ) , 98.8 (C-1D, IJcH=174Hz), 98.6 (C-1A, lJcH=170.5Hz), 79.3 (C-3B), 78.9 (C-4C), 77.7 (C-3D), 75.56 (C-2A), 75.4 (C-2B), 75.13 (CH2Ph) , 75. 06 (CH2Ph) , 74. 87 (CH2Ph) , 73.9 (C-4D) , 73.24 (CH2Ph), 73. 22 (CH2Ph), 73. 2 (CH2Ph), 72. 17 (CH2Ph), 72. 09 (CH2Ph), 72 (C-5D), 71. 7 (CH2Ph), 71. 4 (C-2C), 70. 8 (C-3C), 68. 05 (C-2D), 68. 4 (C-6C), 67. 63 (-O-CH2-), 51.4(-C:O-
OCH3), 34 (-CH2-COOCH3), 29. 4, 29. 2, 29. 1, 29,26, 24. 9 (CH2-), 21 et 20. 8 (2 -0-C:0-CH3).
Spectre de masse : m/z 1836.5 (M+NH4) +.
Analyse pour C108122O25 (1820.026) : calculée C :71.27 H:6.75 trouvée C :71.08 H:6.946) 8-carboxyloctyl 2-0-(2-0-(3-0-(a-D- mannopyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-aD-mannopyranoside III.
Etape 1 : saponification 200 mg (110 mol, 1 éq) du précurseur 27 sont dissous dans 10 mL d'un mélange tétrahydrofurane/solution d'hydroxyde de sodium (0.1N) (1/1). Après une nuit à reflux, l'ensemble est acidifié et extrait trois fois par du dichlorométhane. La phase organique est alors séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous vide. Le produit brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=1.5/1) et 155 mg (Rdt=82%) du composé sont ainsi isolés sous la forme d'une huile incolore.
8-carboxyloctyl 2-0-(2-0-(3-0-(3,4,6-tri-0- benzyl-a-D-mannopyranosyl)-4,6-0-benzylidène-a-Dmannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-
3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranoside [a]o +33.3 (c 0.52, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.5-7.25m( 50H, arom. ),5.6 (s, 1H, by), 5. 21 (d, 1H, J 1-2=1.3Hz, H-1B), 5. 16 (d, 1H, J 1-2=1.45Hz, H-1D), 5. 12 (d, 1H, J 1-2=1.lHz, H-1C), 4.97 (d, 1H, J 1-2=1.2Hz, H-1A), 4.42-4.41 (m, 1H, H-2C), 4. 18-4.17 (m, 1H, H-2B), 4. 08 (m, 1H, H-2D), 4 (dd, 1H, J 2-1=1.2Hz et J 2-3=3.lHz, H-2A), 3. 6 (dt, 1H, J gem=9. 5Hz et J CH-CH2=6.5Hz, -0-CH-CH2-), 3. 27 (dt, 1H, J gem=9.5Hz et J CH-CH2=6.5Hz, -0-CH-CH2-), 2. 35 (t, 2H, J CH2-CH2=7. 5Hz, -CH2-C02H), 1. 7-1.6, 1. 54-1.47 et 1.35-1.25 (m, 12H, -CH2-). Absence des trois pics correspondant aux méthyles des esters.
13C R. M.N. (100 MHz) : # 178. 5 (-C02H), 102. 3 (C-1C), 101. 7 (by), 100. 9 (C-lB), 99. 8 (C-lD), 98. 5 (C-lA), 75. 7 (C-2A), 74. 8 (C-2B), 69. 65 (C-2C), 68. 5 (C-2D), 67. 6 (-O-CH2-), 33. 8 (-CH2-COOH), 29. 3, 29,28.9, 28. 7, 25. 9, 24. 5 (-CH2-), 21 et 20. 8 (2 -0-C:O-CH3).
Spectre de masse : m/z 1738. 9 (M+NH4)+.
Analyse pour C103H116O23 (1722.059) : calculée C :71.84 H :6.789 trouvée C :71.73 Etape 2 Pour le protocole expérimental, voir l'étape 3 du composé I (R=connecteur).
100 mg (58 pmol) du composé précédent donne 40 mg (Rdt=83%) du composé III sous la forme d'une poudre blanche amorphe après lyophilisation.
1H-R.M.N. (400MHz, D20) : 85.25 (d, 1H, J 1- 2=1.2Hz, H-1B), 5. 1 (d, 1H, J 1-2=1.3Hz, H-1D), 5. 05 (d, 1H, J 1-2=0.8Hz, H-1A), 4. 99 (d, 1H, J i-2=1.4Hz, H-1C), 4.19 (dd, 1H, J 2-1=1.42Hz et J 2-3=3Hz, H-2C), 4. 07 (dd, 1H, J2-1=1.2Hz et J 2-3=3.1Hz, H-2B), 4. 03 (dd, 1H, J 2-
Les cartographies élémentaires pastilles d'oxydes mixtes Pu02/U02 sont réalisées moyen d'un dispositif conforme à l'invention, ce dispositif étant adapté à la manipulation de radioéléments.
L'objectif de focalisation 12 la platine de micro-déplacement 4 sont alors placés dans une enceinte de confinement, par exemple une boîte à gants.
La figure 2 est une vue schématique d'un dispositif permettant la réalisation de cartographies élémentaires de pastilles mixtes Pu02/U02.
On y retrouve les composants précédemment decrits en faisant référence à la figure 1. En outre, le dispositif représenté sur cette figure 2 comprend - une première enceinte de confinement 40 dans laquelle sont introduites les pastilles que l'on veut analyser, et - une deuxième enceinte de confinement 42 reliée à la première enceinte 40 par un sas 44 permet de faire passer, de l'enceinte 40 à l'enceinte 42, une pastille que l'on veut analyser.
La deuxième enceinte 42 contient l'objectif de focalisation 12 et la platine de micro déplacement 4. Chaque pastille est replacée dans l'enceinte 40 après avoir été mesurée avec le dispositif. On voit aussi, sur la figure 2, des canalisations 46 et 48 reliant le laser 6 et la caméra 32 à la deuxième enceinte 42.
La canalisation 46 contient le diaphragme 8 l'optique 10 et la canalisation 48 contient le miroir 26 et la lentille 36.
Une paroi étanche de confinement 50, s appuyant sur le pourtour de l'objectif 12, isole l'intérieur de l'enceinte 42 de ces canalisations 46 et 48, tout en laissant passer le faisceau laser comme on le voit sur la figure 2.
L'invention n'est pas limitée au controle de pastilles de combustible MOX. Elle s'applique à l'analyse élémentaire de tout échantillon ou objet dont on veut connaître les éléments constitutifs jusqu'à résolutions de taille d'impact de 1 um.
A titre purement indicatif et nullement limitatif - l'ouverture du diaphragme est circulaire et a diamètre de 250 um, - l'optique 10 a une distance focale de 1000 mm, - l'objectif de microscope 12 a une ouverture numérique voisine de 250 et son grandissement est déterminé en fonction du diamètre recherché pour les points d'impact.
La présente invention concerne les systèmes de multiplexage de longueurs d'onde et, plus particulièrement, une configuration améliorée de réseau de guides d'ondes destinée à un dispositif à réseau de phase (ou "phasar") optique intégre (ou "planaire").
Un dispositif à réseau de phase ("phased array"), qui dans la suite la description sera généralement désigné par le terme de "phasar" selon une thermi- nologie utilisée par l'homme du métier, est encore connu comme étant composant multiplexeur et/ou démultiplexeur du type à spectrographe à réseau de guides d'ondes.
La transmission simultanée de plusieurs signaux optiques correspondant à des longueurs d'onde ou des canaux différents le long d'un unique trajet ce que l'on appelle le multiplexage de longueurs d'onde. Cette technique est importante pour les systèmes utilisant des fibres, du fait qu'elle agit sur la configuration, les performances et le coût du système. Un avantage majeur de cette technique est la possibilité qu'elle offre d'accroître la capacité du système en augmentant le nombre de canaux pouvant être transportés par chaque fibre. Grâce à la possibilité d'augmenter la capacité, il est possible de moderniser des systèmes existants plutôt que de les remplacer.
Dans les systèmes de multiplexage de longueurs d'onde, chaque canal fonctionne à une longueur d'onde différente. Les longueurs d'onde respectivement différentes sont combinées sur un unique trajet par un multiplexeur et sont séparées les unes des autres par un démultiplexeur. Les multiplexeurs et les démultiplexeurs prennent normalement la forme d'un élément dispersif tel qu'un réseau de diffraction, un prisme ou un hologramme. Lorsqu'on utilise un réseau ("grating"), on effectue le démultiplexage en transmettant le signal multiplexé dans le réseau, lequel sépare les unes des autres les longueurs d'onde respectives et diffracte chacune dans une direction légèrement différente. Le multiplexage s'effectue par utilisation du même dispositif en sens inverse.
Au fur et à mesure de l'évolution de la technique du multiplexage de longueurs d'onde, la nécessité s'est fait de plus en plus sentir de composants photoniques plus complexes, tels que des filtres à aplatissement du gain, des atténuateurs variables, et des multiplexeurs à ajout/suppression de longueurs d'onde. Une manière efficace de mettre sous boîtier de tels composants est d'utiliser un dispositif photonique planaire. Les dispositifs photoniques planaires ont été choisis en raison de la possibilité qu'ils offrent de mettre en oeuvre de nombreuses fonctions optiques sur une plaquette commune. En outre, on peut ajouter à la plaquette des dispositifs actifs afin de créer des boîtiers hybrides délivrant un nombre des fonctions (par exemple commutation, atténuation, contrôle, multiplexage et démultiplexage, etc.) nécessaires pour les reseaux optiques dans boîtiers très compacts.
Lorsqu'on combine de nombreux éléments différents sur une même plaquette, le bruit ou la diaphonie résultant de chaque élément interfère parfois avec les autres éléments. Ceci diminue dans une mesure importante les performances système considéré dans son ensemble. La diaphonie est à considérer façon particulièrement cruciale dans les phasars associés à des applications multiplexage de longueurs d'onde à forte densité, dans lesquelles des nombres plus en plus importants de signaux ayant des longueurs d'onde différentes se déplacent dans le réseau. Chaque longueur d'onde doit être acheminée correctement au détecteur correct ou à la fibre correcte, et ne doit pas interférer avec les autres longueurs d'onde.
D'autres exigences sont apparues de manière de plus en plus serieuse pour les phasars au cours des dix dernières années. En plus d'une moindre diaphonie, phasars doivent posséder de meilleures pertes d'insertion, fonctionner avec un plus grand nombre de canaux et avoir un écartement spectral plus dense. spécifications ont entraîné le développement de dispositifs plus en plus grands. Puisque la diaphonie dépend de la longueur parcourue dans les phasars, ces dispositifs plus grands sont plus sensibles à la diaphonie. En cas de non-uniformité de gravure, d'indice de réfraction ou de couche de cceur dans la plaquette, l'erreur de phase accumulée le long de chaque guide d'ondes de réseau augmente sérieusement avec la longueur.
La réalisation des couches minces biologiques pour former l'échantillon de mesure selon le procédé de la présente invention peut par exemple comporter deux étapes : 1) fonctionnalisation du substrat, et 2) greffage des oligonucléotides.
Fonctionnalisation du substrat Le support choisi est en silice. Les oligonucléotides ne pouvant pas établir de liaison covalente avec ce type de matériau, ce dernier est fonctionnalisé. La fonctionnalisation du support a pour objet de modifier la surface du substrat afin d'y introduire des groupements réactifs qui permettront le greffage des oligonucléotides.
Cette étape requiert, par exemple, un premier traitement du support par exemple par un mélange sulfochromique puis une silanisation. Le traitement par le mélange sulfochromique peut être réalisé au moyen d'une solution saturée d'oxyde de chrome dans de l'acide sulfurique à 95%. Il a pour objectif d'éliminer les contaminants organiques présents sur le support et de générer des groupements silanols. La silanisation
est ensuite réalisée par les techniques classiques de silanisation, par exemple par incubation du support dans une solution de toluène, aminopropyldiméthylethoxysilane (AMPMES) 1%. Durant cette étape, les silanes réagissent avec les groupements silanols générés au cours du traitement par le mélange sulfochromique. Il en résulte la formation d'une couche de silane porteuse de groupements amine sur lesquels il est possible de greffer des oligonucléotides.
Greffage des oligonucléotides Les oligonucléotides, qui constituent les molécules de capture, sont greffés sur le support soit directement, soit par l'intermédiaire d'une molécule d'avidine.
Dans ce dernier cas, une molécule d'avidine est préalablement greffée sur le silane par l'intermédiaire d'un agent de couplage, le phénylène-diisothiocyanate (PDC). L'avidine présente une forte affinité pour une petite molécule : la biotine. Elle peut donc reconnaître et fixer très fortement un oligonucléotide porteur d'une biotine. Le support est donc incubé dans une solution de diméthylformamide/pyridine 10% PDC 0,2%. Après lavage et séchage du support, l'avidine est déposée sous forme de gouttes de quelques millimètres de diamètre sur le support. Au même endroit est déposé l'oligonucléotide porteur d'une biotine.
Exemple 3 : Utilisation des supports fonctionnalisés Cette étape consiste à effectuer l'hybridation d'acides nucléiques ou de fragments de ceux-ci, qui constituent les molécules cibles présente dans la solution à tester. Elle consiste essentiellement en deux étapes : 1) hybridation des acides nucléiques (dans l'expérience décrite, un oligonucléotide complémentaire), et 2) lavage des acides nucléiques non hybridés.
Bien entendu préalablement à ces étapes et dans le cas particulier des acides nucléiques, il peut y avoir nécessité à effectuer d'autres étapes préparatoires pour obtenir la solution à tester. Ces étapes peuvent être des étapes d'extraction, d'amplification et de clivage.
Extraction Cette extraction est réalisée de manière tout à fait classique. En fait, on peut utiliser n'importe quelle technique d'extraction d'ADN, permettant d'obtenir du matériel susceptible d'être ultérieurement amplifié par un procédé d'amplification. Ces techniques de lyse des cellules, avec extraction puis purification des acides nucléiques sont habituellement celles recommandées pour des analyses génétiques, ou techniques rapides utilisant des produits commerciaux, tels que QIAmp Blood Kit (Marque déposée) de QIAGEN S.A.
Amplification Ainsi, il peut être judicieux d'augmenter le nombre de molécules cibles en amplifiant le signal. De très nombreuses techniques d'amplification existent.
L'état de la technique décrit des méthodes permettant d'amplifier des séquences nucléotidiques utilisant des amorces spécifiques de ces séquences à amplifier. Ainsi on peut amplifier un fragment d'acide nucléique d'intérêt au sein d'une préparation d'acides nucléiques. De nombreuses techniques utilisent des oligonucléotides complémentaires de la séquence cible servant d'amorces pour l'élongation par une polymérase.
Pour l'amplification des ADN, il existe la PCR (Polymerase Chain Reaction), telle que décrite dans les brevets US-A-4,683,195, US-A-4,683,202 et US-A- 4,800,159, la LCR (Ligase Chain Reaction), exposée par exemple dans la demande de brevet EP-A-0.201.184, ou la RCR (Repair Chain Reaction), décrite dans la demande de brevet WO-A-90/01069.
Pour l'amplification des ARN, plusieurs techniques ont aussi été décrites dans différents documents. Ces techniques sont les suivantes : 3SR (Self Sustained Sequence Replication) avec la demande de brevet WO-A-90/06995, NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) avec la demande de brevet WO-A-91/02818, SPSR (Single Primer Sequence Replication) avec le brevet US-A-5,194,370, et TMA (Transcription Mediated Amplification) avec le brevet US-A-5,399,491.
Clivage Le clivage peut également être judicieux car le produit des amplifications peut être constitué d'acides nucléiques de grandes tailles. Ainsi, lorsque l'on hybride de tels acides nucléiques cibles sur des molécules de capture, les duplex formés après hybridation avec les acides nucléiques cibles sont peu stables. C'est également le cas lorsque les polynucléotides sont utilisés en tant que sondes de détection. Les raisons peuvent être dues à la gêne stérique ou au manque de spécificité entre la molécule de capture, qui a été synthétisé, et sa molécule cible qui n'est pas forcément de même taille. Il va donc y avoir une perte quantitative et qualitative du signal.
La gêne stérique peut être le fait, non seulement, de la longueur de l'acide nucléique, mais également de l'existence ou de la conservation de structures secondaires. Le clivage permet de détruire ces structures et ainsi d'optimiser l'hybridation. Cette gêne stérique joue un rôle particulièrement important dans le cas de l'hybridation sur des surfaces contenant des sondes de capture à forte densité, par exemple les puces à ADN mises au point par la société Affymetrix ("Accessing Genetic Information with High-Density DNA arrays", M. Shee et al., Science, 274,610-614. "Lightgenerated oligonucleotide arrays for rapide DNA séquence analysis", A. Caviani Pease et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 1994,91, 5022-5026). Dans cette technologie, les sondes de capture sont généralement de tailles réduites, autour de vingt nucléotides.
La résine 39 dispensée par les buses 36 vient noyer les nappes 8 et l'intervalle compris entre celles-ci sauf les chambres 41 définies à l'intérieur des enveloppes 28. Comme le produit a été imprégné au défilé juste après l'opération d'aiguilletage et d'introduction du constituant complémentaire, le produit 16 peut être soumis à l'opération de prise de la résine également au défilé. passe à cet effet entre deux plaques de formage 42, éventuellement chauffantes, dont la distance mutuelle est calculée pour comprimer le produit et lui donner une configuration interne semblable à celle représentée à la figure 6. Des rouleaux extracteurs 43 sont prévu en aval des plaques 42. Ensuite, une tronçonneuse 44 débite l'article 16 en panneaux individuels 46 qui sont par exemple reçus sur un dispositif d'empilage qui n'est que suggéré. La résine 39 peut être choisie parmi les mêmes variétés que celles évoquées plus haut.
A la partie droite de la figure 16, le couloir 23 est réalisé d'une manière semblable à celle decrite pour exemples précédents, entre deux motifs successifs de lamelles 4. Le couloir 23a situé juste à côté est réalisé de manière semblable.
Par contre, les autres couloirs sont définis la face interieure de lamelles tubulaires de sections carrées rectangulaires 47 dont deux faces opposées contribuent à définir les faces de guidage 8 et deux autres faces opposées délimitent certains des intervalles destinés aux aiguilles. Dans ce mode de réalisation, la table à lamelles est plus coûteuse à réaliser mais les nappes sont mieux guidées et soutenues à l'encontre des efforts à l'aiguilletage.
Il avantageux que les buses 36 soient des composants de relativement faible valeur pouvant être remplacés indépendamment de la table 2 en particulier, le cas échéant, des lamelles tubulaires 36a de table 2 dans laquelle ils s'étendent.
Il est possible d'équiper une machine à mouvement vertical comme celle des figures 1 et 12 avec une injection de résine telle que décrite en référence aux figures 14 à 17. L'avance verticale descendante est une solution avantageuse pour l'insertion du constituant intercalaire notamment lorsque celui-ci est composé des billes 28 ou composants similaires insérés en vrac.
I1 est possible d'introduire dans certain couloirs moins un second constituant intercalaire, en particulier des fibres de renforcement, notamment organiques ou inorganiques, telles que des fibres de verre, ou animales ou végétales, telles que des fibres lin, à la place de certaines des enveloppes ou conjointement avec des enveloppes dans un même couloir. Ceci est particulièrement avantageux si le produit ensuite imprégné comme il a été dit.
La matière susceptible de faire prise peut être ' 'ectée sous forme de poudre, par exemple un plâtre, un ciment, ou peut être un élastomère.
A la place de l'aiguilletage, on peut faire appel étape de couture ou de soudure.