INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Dans l'exemple représenté sur les figures 4 et 5, on a représenté des panneaux analogues au panneau 1, mais présentant des nervures à section rectangulaire dans lesquelles on vient disposer la base plate d'un clip 10 muni de ses deux ailes élastiques. Celles-ci viennent pénétrer, comme on le voit sur le dessin, dans les deux rainures 9 d'une lambourde 8. La face supérieure de la lambourde 8 a été revêtue initialement d'une couche de polyuréthane 11 de sorte que les panneaux 1 s'appuient sur les lambourdes par l'intermédiaire de cette couche qui se trouve comprimée par le fond des rainures de panneaux.
Dans ce cas les moyens de solidarisation du clip et du panneau peuvent être quelconques, par exemple, les clips peuvent avoir été posés en usine préalablement, par exemple collés ou vissés.
On comprend que le démontage des panneaux d'un tel revêtement est extrêmement facile puisqu'on peut extraire les panneaux en les écartant des lambourdes, par exemple manuellement. Aucun outil spécifique n'est nécessaire, que ce soit pour la pose ou la dépose.
Les panneaux de revêtement peuvent être rigides ou semi-rigides. Ils peuvent avoir un rôle purement fonctionnel de sol, parquets ou dallages ou revêtement de parois ou de plafonds, mais ils peuvent également être réalisés, pour tous ou certains d'entre eux, avec des particularités décoratives, par exemple, placage de bois précieux, poutres de marbres dans de la résine, décoration quelconque ou revêtement textile. Ils peuvent également être rendus anti-dérapants. Leur facilité de pose et de dépose permet, au besoin, de modifier facilement l'aspect décoratif d'un revêtement entier par le remplacement de quelques panneaux.
Ces panneaux sont faciles à entretenir sans produits spéciaux.
De préférence, une fois le revêtement posé et tous les panneaux en place, on peut réaliser un jointement étanche entre les bords respectifs des panneaux adjacents par l'utilisation d'une résine ou autre élément de jointement. Il est ainsi possible de réaliser des revêtements dont la surface ne présente aucune discontinuité et qui se prêtent particulièrement à l'utilisation dans les locaux exigeant un certain niveau d'hygiène. Si l'on laisse un espace suffisant entre deux panneaux adjacents, ce jointement peut comporter, par exemple, des éléments décoratifs propres, par exemple,
des fibres optiques qui sont alimentés en lumière froide pour donner des effets spéciaux sur le sol ou la paroi revêtus grâce à l'invention.
En se référant à la figure 6 on voit une forme de réalisation d'un panneau 1 pourvu à sa base de rainures en queue d'aronde 3 avec des profils polygonaux 12.
Un tel panneau peut être fixé par un clip 13 en matière plastique dont le corps 14 est séparé, par des gorges 15, de deux ailes 16 dont les sommets 17, peuvent pénétrer, avec une certaine élasticité, dans les gorges 12 de queue d'aronde 3. Perpendiculairement aux directions des ailes, le clip 13 présente, sur ses deux bords inférieurs, des nervures 18 susceptibles d'être prises dans des rainures en queue d'aronde 19 de lambourdes 8, selon le montage sur la figure 9.
Sur la figure 8 on a représenté une variante de clip 20 dépourvu des nervures 18, mais muni d'un passage central oblong 21 évasé vers le haut pour permettre la fixation par une vis ou autre organe 22 sur une lambourde ou profilé de support (figure 10).
En se référant à la figure 11, on a représenté des lames de plancher 1 fixées sur un réseau parallèle de lambourdes 8, par des clips 13.
La présente invention concerne une lampe de véhicule qui comporte une
source lumineuse ayant plusieurs diodes photoémissives. Les ampoules classiques à incandescence (par exemple à filaments) ont été utilisées comme source lumineuse dans un certain nombre de lampes de véhicule. Cependant, on a utilisé ces dernières années des lampes de véhicule ayant plusieurs diodes photoémissives comme source lumineuse pour réduire la consommation d'énergie et donner une nouvelle
configuration aux lampes de véhicule.
Malgré les avantages des diodes photoémissives, un
problème se pose car plusieurs diodes photoémissives utili-
Par élastomères isopréniques qui sont mis en #uvre pour les compositions de caoutchouc, on entend plus précisément : (1) les polyisoprènes de synthèse obtenus par homopolymérisation de l'isoprène ou méthyl-2 butadiène-1,3 ; (2) les polyisoprènes de synthèse obtenus par copolymérisation de l'isoprène avec un ou plusieurs monomères insaturés éthyléniquement choisis parmi : - (2.1) les monomères diènes conjuguées, autres que l'isoprène, ayant de 4 à 22 atomes de carbone, comme par exemple :le butadiène-1,3, le diméthyl-2,3 butadiène-1,3, le chloro-2 butadiène-1,3 (ou chloroprène), le phényl-1 butadiène-1,3, le pentadiène-1,3, l'hexadiène-2,4 ; - (2.2) les monomères vinyles aromatiques ayant de 8 à 20 atomes de carbone, comme par exemple : le styrène, l'ortho-, méta- ou paraméthylstyrène, le mélange commercial "vinyl-toluène", le paratertiobutylstyrène, les méthoxystyrènes, les chlorostyrènes, le vinylmésitylène, le divinylbenzène, le vinylnaphtalène ; - (2.3) les monomères nitriles vinyliques ayant de 3 à 12 atomes de carbone, comme par exemple l'acrylonitrile, le méthacrylonitrile ; .
- (2.4) les monomères esters acryliques dérivés de l'acide acrylique ou de l'acide méthacrylique avec des alcanols ayant de 1 à 12 atomes de carbone, comme par exemple l'acrylate de méthyle, l'acrylate d'éthyle, l'acrylate de propyle, l'acrylate de n-butyle, l'acrylate d'isobutyle, l'acrylate d'éthyl-2 hexyle, le méthacrylate de méthyle, le méthacrylate d'éthyle, le méthacrylate de n-butyle, le méthacrylate d'isobutyle ;
- (2.5) un mélange de plusieurs des monomères précités (2.1) à (2. 4) entre eux ; les polyisoprènes copolymères contenant entre 99#% et 20 % en poids d'unités isopréniques et entre 1 % et 80 % en poids d'unités diéniques, vinyles aromatiques, nitriles vinyliques et/ou esters acryliques, et consistant par exemple dans le poly(isoprène-butadiène), le poly(isoprène-styrène) et le poly(isoprène-butadiènestyrène) ; (3) le caoutchouc naturel ; (4) les copolymères obtenus par copolymérisation d'isobutène et d'isoprène (caoutchouc butyle), ainsi que les versions halogénées, en particulier chlorées ou bromée, de ces copolymères ; (5) un mélange de plusieurs des élastomères précités (1) à (4) entre eux ; (6) un mélange contenant une quantité majoritaire (allant de 51 % à 99,5 % et, de préférence, de 70 % à 99 % en poids) d'élastomère précité (1) ou (3) et une quantité minoritaire (allant de 49 % à 0,5 % et, de préférence, de 30 % à 1 % en poids) d'un ou plusieurs élastomères diéniques autres qu'isopréniques.
Par élastomère diénique autre qu'isoprénique, on entend de manière connue en soi : les homopolymères obtenus par polymérisation d'un des monomères diènes conjugués définis ci-avant au point (2.1), comme par exemple le polybutadiène et le polychloroprène ; les copolymères obtenus par copolymérisation d'au moins deux des diènes conjugués précités (2.1) entre eux ou par copolymérisation d'un ou plusieurs des diènes conjugués précités (2.1) avec un ou plusieurs monomères insaturés précités (2. 2), (2. 3) et/ou (2.4), comme par exemple le poly(butadiène-styrène) et le poly(butadièneacrylonitrile).
A tire préférenctiel, on fait appel à un ou plusieurs élastomères isopréniques choisis parmi : (1) les polyisoprènes de synthèse homopolymères ; (2) les polyisoprènes de synthèse copolymères consistant dans le poly(isoprène-butadiène), le poly(isoprène- styrène) et le poly(isoprène-butadiène-styrène) ; (3) le caoutchouc naturel ; (4) le caoutcouc butyle ; (5) un mélange des élastomères précités (1) à (4) entre eux ; (6) un mélange contenant une quantité majoritaire d'élastomère précité (1) ou (3) et une quantité minoritaire d'élastomère diénique autre qu'isoprénique consistant dans le polybutadiène, le polychloroprène, le poly(butadiène-styrène) et le poly(butadiène- acrylonitrile).
A titre plus préférentiel, on fait appel à un ou plusieurs élastomères isopréniques choisis parmi : (1) les polyisoprènes de synthèse homopolymères ; (3) le caoutchouc naturel ; (5) un mélange des élastomères précités (1) et (3) ; (6) un mélange contenant une quantité majoritaire d'élastomère précité (1) ou (3) et une quantité minoritaire
d'élastomère diénique autre qu'isoprénique consistant dans le polybutadiène et le poly(butadiène-styrène).
L'état physique sous lequel se présente la charge blanche renforçante est indifférent, c'est-à-dire que ladite charge peut se. présenter sous forme de poudre, de micro perles, de granulés ou de billes.
De manière préférentielle, la charge blanche renforçante consiste dans la silice, l'alumine ou un mélange de ces deux espèces.
A titre de silice susceptible d'être mise en oeuvre conviennent toutes les silices précipitées ou pyrogénées connues de l'homme de l'art présentant une surface spécifique BET # à 450 m2/g. On préfère les silices de précipitation, celles-ci pouvant être classiques ou hautement dispersibles.
A titre plus préférentiel, conviennent bien les silices de précipitation ayant : - une surface spécifique CTAB allant de 100 à 240 m 2/g, de préférence de 100 à 180 m2/g, - une surface spécifique BET allant de 100 à 250 m2/g, de préférence de 100 à 190 m2/g, - une prise d'huile DOP inférieure à 300ml/100 g, de préférence allant de 200 à 295 ml/100 g, - un rapport spécifique BET/surface spécifique CTAB allant de 1,0 à 1,6.
La surface spécifique CTAB est déterminée selon la méthode NFT 45007 de novembre 1987. La surface spécifique BET est déterminée selon la méthode de BRUNAUER,
AAAA. AT. T. QAA....... GGA. CAA. C. A. C. A...... ATACCAGA. TA...... A. AGT. TAA. AAA....... AAAG. T. AT. T. TT . T. Ç. GCC. AAG....... GAA. AGC. TCA. G...... GA. AGG. G T. TA....... T. GTJ. TAA. AGA....... AÇ. ACA. GTC. TC . T. CTG. TG. T. GA < ;...... AT. T. ACTAT < ?. A...... CT. Ç. AG. ATGÇ. T...... G. GAG. GAA. GAT....... T. C. TAA. Ç. ( : A. G . Ç. Ç. A. ç. cT. çAT. GÇ T*QSso Ç. Ç. AAçGTAX çTG*ççcT GCÇ S. AAÇC ÇTGTÇA G. GCA. M. T. GAT....... TGG. TGA. TT. T. T...... TC. C. AAGGTAÇ..... G. TGç. GC. T. GCC....... AAÇ. CGT AçXçxc. ççQç AAGXTççAçÇ GTçTçATTçA GAAçTxTxAT GT$ATxGAxT . G. GGA. AA < 7ACC..... AA. G. ATC. TGAA...... G. T. ATG. T A. A (=...... ( ;. Ç. AGAAA. QAG....... T. T. GQT. GC A. QTG. TCG. GGG...... AAG. TTC. ç. AG. G...... GTC. TG. ATT. GA...... G. AAG. TT. T. TAT....... G. T. Q. AT. 7 ; GA. TT G. TQGCTA, TC < ?--.... ATA. TOAGTA. T...... CA. GGGAGGAC...... ACAT. Ç. QA. GGG...... AG. Ç. CT. TAA, AÇ . T. TATATA. GTC....... AGGAAGAAC. T...... G. T. TTAACTTC...... T. TTCTGAAGA....... AGCCçAT < ?. QT -Ç. Ç Ç. T. TT. Q. QA. Ç...... Ç ;) ATAATCAT....... ÇgT-Ç. T. T. Ç. Ç. AC....... TG. TGA. AT. T. C. T -Ç. Ç. T. Ç. AÇ ? A. Ç. 4%. 9............ 4%-TqT. Ç. Ç. Ç. Ç. QT.............
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Ce clone peut être conservé à -80 oC sous forme de culture saturée additionnée de glycérol (concentration finale 25%) ou"stock glycérol". Cette souche sera utilisée pour toutes les étapes de production ultérieures.
2-Production et purification de la protéine recombinante MBP-Cdc25C NB : sauf indication contraire, tous tes réactifs chimiques proviennent de SIGMA-ALDRICH. 2. 1-Culture bactérienne et induction d'expression de la protéine de fusion 50 ml de milieu LB + ampicilline 100 g/ml (LB amp. ) sont inoculés avec 100 sil de stock glycérol du clone JM109/pMAL-Cdc25C et cultivés 14 à 16 heures à 37 oC sous agitation (180 à 220 rpm). Cette pré-culture est ensuite diluée cinquante fois (20 ml par litre de milieu) dans un milieu LB amp. + 2 g/1 de glucose et cultivée à 37 oC/180 rpm pour atteindre une densité optique à 600 nm comprise entre 0,55 et 0,60. La synthèse de la protéine de fusion est alors induite par ajout IPTG (0,3 mM) à 37 oC pendant 3 heuresLes bactéries sont récoltées par centrifugation, lavées une fois dans 40 ml de PBS froid par litre de culture, et le culot bactérien est ensuite congelé dans l'azote liquide et conservé à-80 OC.
L'induction est analysée immédiatement par dépôt de 2,5. 107 cellules, prélevées avant et après induction, sur gel de polyacrylamide dénaturant et coloration des protéines au bleu de Coomassie (Figure 1, lignes 1 et 2 respectivement). 2. 2-Lyse et extraction. Un culot bactérien correspondant à 1 litre de culture induite est décongelé dans la glace, re-suspendu dans 35 ml de tampon de lyse (20 mM Tris-cl pH 7,4, 250 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM DTT, 10 g/ml lysozyme, 1 gg/ml leupeptine, 2 gg/ml aprotinine, 1 mM PMSF) et incubé 45 min dans la glace. La suspension bactérienne est ensuite soniquée (4 cycles de 1 min en mode discontinu 50%, alternés avec 1 min de pause), puis centrifugée pendant 35 min. à 110 000 g. Le surnageant ou extrait soluble est conservé pour la purification de la protéine MBP-Cdc25C (Figure 1, ligne 3). 2. 3-Purification par affinité sur résine d'amylose-agarose. Pour un extrait soluble correspondant à 1 litre de culture bactérienne induite, 2 ml de résine d'amylose-agarose (New England Biolabs #800-21) sont déposés sur une colonne chromatographique HR 5/10 (Pharmacia) et lavés par 20 ml (10 volumes) de tampon de colonne (20 mM Tris-HCl pH 7,4 ; 250 mM NaCl ; 1 mM EDTA ; 1 mM DTT ;
1 gg/ml leupeptine ; 2 (ig/ml aprotinine). L'extrait soluble est passé sur la colonne d'affinité à un débit de 0,15 ml/min ; l'éluat (c'est-à-dire la fraction non retenue sur l'amylose-agarose) est récolté pour analyse (Figure 1, ligne 4). La colonne est lavée par 20 ml (10 volumes) de tampon de colonne. Un échantillon de la matrice d'affinité après passage de l'extrait soluble peut être éventuellement analysé (Figure 1, ligne 5).
L élution de la protéine de la matrice d'affinité est effectuée avec un tampon maltose (20 mM Tris-HCl pH 7,4 ; 250 mM NaCl ; 1 mM EDTA ; 1 mM DIT ; 10 mM maltose). 20 fractions d'élution de 0,5 ml sont recueillies. Pour chaque fraction, la concentration protéique totale est évaluée par un essai de type Bradford et la fraction est analysée par dépôt sur gel de polyacrylamide dénaturant et coloration au bleu de Coomassie (Figure 1, ligne 6). Les fractions dans lesquelles la protéine de fusion MBP-Cdc25C complète représente au moins 90 % des protéines totales sont rassemblées pour former un lot dont l'activité est ensuite testée. Les lots sont conservés à -80oc.
La séquence de cette protéine de fusion MBP-Cdc25C correspond à la séquence SEQ. ID no 1 représentée ci-dessous : ATGAAAATCG AAGAAGGTAA ACTGGTAATC TGGATTAACG GCGATAAAGG CTATAACGGT CTCGCTGAAG TCGGTAAGAA ATTCGAGAAA GATACCGGAA TTAAAGTCAC CGTTGAGCAT CCGGATAAAC TGGAAGAGAA ATTCCCACAG GTTGCGGCAA CTGGCGATGG CCCTGACATT ATCTTCTGGG CACACGACCG CTTTGGTGGC TACGCTCAAT CTGGCCTGTT GGCTGAAATC ACCCCGGACA AAGCCTTCCA GGACAAGCTG TA TCCGTTTA CCTGGGATGC CGTACGTTAC AACGGCAAGC TGATTGCTTA CCCGATCGCT GTTGAAGCGT TATCGCTGAT TTATAACAAA GATCTGCTGC CGAACCCGCC AAAAACCTGG GAAGAGATCC CGGCGCTGGA TAAAGAACTG AAAGCGAAAG GTAAGAGCGC GCTGATGTTC AACCTGCAAG AACCGTACTT CACCTGGCCG CTGATTGCTG CTGACGGGGG TTATGCGTTC AAGTATGAAA ACGGCAAGTA CGACATTAAA GACGTGGGCG TGGATAACGC TGGCGCGAAA GCGGGTCTGA CCTTCCTGGT TGACCTGATT AAAAACAAAC ACATGAATGC AGACACCGAT TACTCCATCG CAGAAGCTGC CTTTAATAAA GGCGAAACAG CGATGACCAT CAACGGCCCG TGGGCATGGT CCAACATCGA CACCAGCAAA GTGAATTATG GTGTAACGGT ACTGCCGACC TTCAAGGGTC AACCATCCAA ACCGTTCGTT GGCGTGCTGA GCGCAGGTAT TAACGCCGCC AGTCCGAACA AAGAGCTGGC AAAAGAGTTC CTCGAAAACT ATCTGCTGAC TGATGAAGGT CTGGAAGCGG TTAATAAAGA CAAACCGCTG GGTGCCGTAG CGCTGAAGTC TTACGAGGAA GAGTTGGCGA AAGATCCACG TATTGCCGCC ACCATGGAAA ACGCCCAGAA AGGTGAAATC ATGCCGAACA TCCCGCAGAT GTCCGCTTTC TGGTATGCCG TGCGTACTGC GGTGATCAAC GCCGCCAGCG GTCGTCAGAC TGTCGATGAA GCCCTGAAAG ACGCGCAGAC TAATTCGAGC TCGAACAACA ACAACAATAA CAATAACAAC AACCTCGGGA TCGAGGGAAGG ATTTCAGAAT TCGGATCCTC . T.CTCATCCAC.... AAGAGAGGAA.... GGAAGÇTCTG... GCTÇAGGACÇ..... CAGTTTTAGG.... TCTAATCAAA T... , A T
GGAAAATGTT AAACCTGCTC CTGGAGAGAG CTAGAACTCC... AGTGGGÇAAA..... TTTCTTGGTG... ATTCTGÇ. AAA.... CCTAAGCATT.... TTGTCTGGAG GAACCÇCAAA ATGTTGCCTC GATCTTTCGA ATCTTAÇCAG TGGGGAGATA ACTGCCACTC ................
AGCTTAÇÇ. A. Ç TTÇ < GCAGAÇ.,,, CTTGATG. AA. A... CTGGTCAÇ, ÇT.. GG8TTCTTCA GGAÇTT.. ÇAGG AAGTGCA AGCTGGGA AAGTGÇ. A. T. TT.... AGC. TGGGATG... AA. TCATGA. CC... AGCACCTAAT.... GAAATGTAGC.... Ç AGCACAGC A. Ç GTTCATCTGC.... AAATAAAGAA.... AATGA. ÇAATG... GAAAÇ. TTGGT.... GGACAGTGAA.... ATGAAATATT TGGGCAGTCC.... CATTACTACT.... GTTCC. AAA AGGCAGAAGA... GATTTCAGAT.... GAA. TTAATGG.... AGT TGAGCAGAAG.... TGGCCTATAT.... CG. C. TC. ÇCCGT... CGATGCCAGA.... GAACTTGAAC.... AGGCCAAGAC TGAAGÇAGGT.... GGAAAAATTC... AGGACAAÇA.... CAATACÇAGA.... TAAAGTTAAA.... AAAAAGTATT . T. T. TçT-G-GçcAw AGGxGcTç AGGmTo ATÇ-TT*sTAAAh G88-G-8CA-GTCtos TÇTÇTGTÇsTÇ A TCTCTGTGTG ACCCAGAAAC AGTGGCTGCC TTACTGTCGG GGAAGTTCCA GGGTCTGATT GAGAAGTTTT AlTÇAT. WA.. ACATTAÇTAT.... CAÇTCAGATG.... CTGGAGGAAG..... ATTÇTAAÇ. A..... GGGGCACCTG.... ATTGGTGATT .... TÇAGGAAGAA . T ! rÇ7PA AÇ. Ç. ÇAGAAAC.... AGTGGCTGÇC.... TT. AÇTGTC'GG... GGAAGTTCCA,.... GGGTCTGATT.... GAGAAGTTTT ATGTCATTG. A... TTGT. ÇGCTAT.... C. ÇATATGAGT.... ATCTGGGAGG.... ACACATCCAG.... GGAGC. ÇTTAA . A TTATATA. G.... TCAGGAAGAA... CTG. TTTAACT.... TÇ. TTTCTGAA.... 6AAGC CCATC.... GTCCCTTTGG AÇACCCAGAA.... GAGAA. T. AATC... ATCGTGTTÇC..... AÇ. TGTGAATT.... CTCCTCAGA. G.... AGGGGCCCCÇ GAATGTGC. Ç. G... CTGTCTGCGT.... GAAGAGGAÇA.... GGTÇ. TCTGAA.... CCAGTATCCT.... GCATTGTACT AÇ. Ç. ÇAGAGCT... ATATATÇ. ÇTT.... AAAGGC . T. Ç. T. G.. TGAACÇ... AÇAGAGÇ < AÇ TGCCÇTATGÇ ATC. ATCAGGA CC ACAAGA-CT *GAÇTTÇÇ < GA.
AQQ... ÇiAT. Ç) TAAC ATTCCAGCCA CT ( ; GCTGCTA ACAILTAG-A TT. ÇTGGTG. AA.... GGAC. ATG. AGC.... C. ÇA. TG. ATAAC ATTCCAGCCA CTGGCTGCTA ACATCTAGA (les sites XBAI sont soulignés par une simple ligne continue, L'ORE de Cdc25C est souligné en pointillé et la séquence en italique correspond à la protéine liant le maltose (MBP)) 3-Détermination de l'activité de la protéine de fusion MBP-Cdc25C.
L'activité phosphatase de la protéine MBP-Cdc25C est évaluée par un essai de déphosphorylation du phosphate de 3-0-méthyltluorescéine (OMFP) avec détermination de l'absorbance à 477 nm (DO 477 nm) du produit de la réaction (OMF).
La protéine MBP-Cdc25C, conservée dans le tampon d'élution (le même que celui décrit au paragraphe 2. 3), est diluée à la concentration de 20 M dans le tampon de réaction
1. 5 Plasmide pLucAntisens (plasmide luciferase antisens dans pCOR) Le plasmide pXL3031 a été digérée par Hindlll et traité par le fragment de Klenow afin de rendre les extrémités franches. Après précipitation à l'éthanol, le fragment a été digéré par Xbal à 37 C pendant 2 heures. Après purification sur gel d'agarose 0.8%, le fragment de environ 1. 6 kb contenant le gène luciférase a été extrait à l'aide du kit Jetsorb. Le fragment Xbal de 1.6Kb du gène de la luciférase a été ensuite cloné, en orientation antisens par rapport au promoteur CMV, dans le plasmide pXL3296 préalablement digéré par Xhol, et traité par le fragment de Klenow en présence de déoxynucléotides triphosphates à 37 C pendant 30 minutes afin de rendre l'extrémité franche, pour obtenir le plasmide pLucAntisens. Une représentation schématique de ce plasmide est présentée à la figure 1 E.
EXEMPLE 2: Construction de plasmides portant le promoteur répressible par la tétracycline (TrRS)