REVENDICATIONS 1. Tissu biologique reconstitué, comprenant des cellules nerveuses et des cellules cibles séparées par une barrière physique comprenant une membrane traitée par une matrice biologique. 2. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 1, dans lequel la barrière physique empêche tout contact physique entre les corps cellulaires mais permet le passage des prolongements nerveux. 3. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 1 ou 2, dans lequel les cellules cibles sont innervées par les prolongements nerveux des cellules nerveuses. 4. Tissu biologique reconstitué selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la membrane est composée de tout matériau biocompatible, solide, rigide ou semi-rigide, plan ou non, éventuellement biodégradable, assurant une séparation physique des populations cellulaires. 5. Tissu biologique reconstitué selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la membrane biocompatible est en nylon, en soie, en fibres, en métal, en polymère, en polycarbonate ou en tout autre matériel poreux compatible avec la culture de cellules. 6. Tissu biologique reconstitué selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la matrice biologique contient du collagène. 7. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 6, caractérisé en ce que le collagène est un collagène de type 1 ou tout autre type de collagène sur lequel des cellules cibles ou un organe cible et des neurones se développent. 8. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 6 ou 7, caractérisé en ce que la matrice biologique comprend en outre différentes molécules de la matrice extra-cellulaire et/ou une lame basale reconstituée et/ou des cellules exerçant un rôle trophique sur les cellules cibles ou l'organe cible et/ou les neurones et/ou des cellules exerçant un rôle trophique sur les prolongements nerveux. 9. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 8, caractérisé en ce que les molécules de la matrice extra-cellulaire sont de la laminine et/ou de la fibronectine et/ou de la ténacine et/ou tout autre type de molécules permettant une bonne adhésion et/ou survie des cellules cibles ou de l'organe cible et des neurones au sein du tissu. 10. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que la lame basale reconstituée comprend toute substance issue de la tumeur EHS et/ou tout produit issu de cette tumeur. 11. Tissu biologique reconstitué selon l'une des revendications 8 à 10, caractérisé en ce que les cellules exerçant un rôle trophique sur les cellules cibles ou l'organe cible et/ou les neurones sont des cellules fibroblastiques et/ou des cellules astrocytaires. 12. Tissu biologique reconstitué selon l'une des revendications 8 à 11, caractérisé en ce que les cellules exerçant un rôle trophique sur les prolongements nerveux sont des cellules de Schwann et/ou des oligodendrocytes. 13. Tissu biologique reconstitué selon l'une des revendications 7 à 12, caractérisé en ce que les cellules cibles sont des cellules que les neurones peuvent innerver. 14. Tissu biologique reconstitué selon la revendication 13, caractérisé en ce que les cellules cibles sont des cellules humaines ou animales, progénitrices ou différenciées, des mélanocytes, des cellules musculaires lisses ou striées, des adipocytes, des cellules nerveuses. 15. Tissu biologique reconstitué selon l'une des revendications 7 à 12, caractérisé en ce que l'organe cible est une structure tissulaire organisée pouvant être innervée. 16. Tissu biologique reconstitué selon l'une des revendications 7 à 15, caractérisé en ce que les neurones sont des cellules du système nerveux central ou du système nerveux périphérique ou du système nerveux sympathique qui innervent des cellules cibles ou des organes cibles. 17. Chambre pour la culture d'un tissu biologique reconstitué selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle comporte 2 compartiments séparés entre eux par une membrane imprégnée d'une matrice biologique. 18. Chambre de culture selon la revendication 17, caractérisée en ce que le diamètre ou la largeur intérieur des compartiments est de 5 à 20 mm, et préférentiellement de 8 à 12 mm, leur diamètre ou largeur extérieur de 10 à 22 mm et préférentiellement de 14 à 16 mm, et leur hauteur est inférieure à 20 mm, de préférence inférieure ou égale à 15 mm, encore plus préférentiellement inférieure ou égale à 10 mm et idéalement de 4 mm chacun. 19. Chambre de culture selon la revendication 17 ou 18, caractérisée en ce que les compartiments sont en polystyrène, en polyméthacrylate ou en toute autre matière compatible avec la culture cellulaire, notamment en plastique ou verre. 20. Procédé de préparation d'une chambre de culture selon l'une quelconque des revendications17 à 19, comprenant les étapes suivantes : a) stériliser la chambre de culture, b) mélanger, à 0 C, une solution de collagène de type 1 dans de l'acide acétique avec une solution physiologique concentrée et avec une solution de soude dans des proportions permettant d'obtenir une matrice de collagène ayant un pH et une concentration osmotique physiologique, c) éventuellement, mélanger à 0 C la solution obtenue à l'étape b), avant qu'elle ne gélifie, avec de l'extrait de tumeur EHS de souris dans des proportions de 1/2 à 1/5, d) couler la solution obtenue en b) ou c) dans les chambres de culture stérilisée, et, gélifier le mélange à 37 C pendant 1 heure, e) éventuellement, couler une deuxième couche du mélange obtenu en b) ou c) sur la première couche de collagène gélifié obtenu en d) lorsque cette dernière est polymérisée. éventuellement, couler une deuxième couche du mélange obtenu en b) ou c) dans le compartiment opposé à la première couche de collagène gélifié. 21. Procédé de préparation d'une chambre de culture selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, comprenant les étapes suivantes : a) stériliser la chambre de culture, b) préparer la matrice par polymérisation du collagène à la concentration désirée, dans une solution contenant 8/10 de collagène dans de l'acide acétique 0,1%, 1/10 de milieu DMEM 10 fois concentré et 1/10 de NaOH 0, 1N, c) éventuellement, additionner le collagène obtenu à l'étape b) avec 1/2 à 1/5 de lame basale reconstituée, d) couler entre 10 et 200 ut de la solution obtenue en c) dans une chambre de culture stérilisée de 0,6 à 1,2 cm2, et, éventuellement e) couler une deuxième couche de la solution obtenue en c) sur la première couche obtenue en d) lorsque cette dernière est polymérisée. f) couler une deuxième couche de la solution obtenue en b) ou c) dans le compartiment opposé à la première couche. 22. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué dans une chambre de culture selon l'une des revendications 17 à 19, comprenant les étapes suivantes : a) ensemencer le premier type cellulaire du tissu à reconstituer dans le premier compartiment de la chambre de culture, b) après un délai nécessaire pour permettre l'adhésion de cellules à la membrane et, le cas échéant, l'organisation cellulaire caractéristique du tissu, ensemencer le deuxième type cellulaire dans le deuxième compartiment de cette chambre, et c) maintenir les cellules en culture pendant un délai suffisant pour permettre l'organisation cellulaire caractéristique du tissu et l'innervation de cellules cibles par les cellules nerveuses, de préférence de 5 à 30 jours. 23. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué selon la revendication 22, dans lequel le premier type cellulaire ensemencé correspond à la population de cellules cibles. 24. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué dans une chambre de culture selon la revendication 22, dans lequel les deux types cellulaires sont ensemencés à une densité cellulaire fonction du type cellulaire et adaptée à la surface des compartiments, de préférence comprise entre 50000 et 500000 cellules par cm2. 25. Procédé de préparation d'un épiderme reconstitué dans une chambre de culture selon l'une des revendications 17 à 19, comprenant les étapes suivantes : a) ensemencer une population de cellules comprenant des kératinocytes à la densité cellulaire adaptée à la surface de la chambre de culture, dans le premier compartiment de celle-ci, b) placer les cellules dans une étuve à 37 C environ contenant 2 à 10% de C02 dans une atmosphère saturée en eau, pendant 24 heures environ, c) retourner la chambre et ensemencer les neurones sensitifs à la densité cellulaire adaptée à la surface de cette chambre, dans le deuxième compartiment de celle-ci, d) placer la chambre dans une étuve à 37 C environ contenant 2 à 10% de C02 dans une atmosphère saturée en eau, e) au deuxième jour de culture des kératinocytes environ, retourner la chambre une deuxième fois et éliminer le milieu de culture côté kératinocytes, et maintenir les cellules en culture pendant 13 à 17 jours environ, à l'interface air-liquide, dans une étuve à 37 C environ, 2 à 10% de CO2 dans une atmosphère saturée en eau. 26. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué dans une chambre de culture, selon la revendication 25, caractérisé en ce que les kératinocytes sont ensemencés à une densité de 200000 à 600000 cellules par cm2 et en ce que les neurones sont ensemencés à une densité comprise entre 50000 et 300000 cellules par cm2. 27. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué dans une chambre de culture selon l'une des revendications 17 à 19, comprenant les étapes suivantes : a) ensemencer les cellules du tissu à reconstituer et leur milieu de culture à la densité cellulaire adaptée à la surface de la chambre de culture dans le premier compartiment de celle-ci, b) placer les cellules dans une étuve à 37 C environ contenant 2 à 10 % de CO2 dans une atmosphère saturée en eau, jusqu'à confluence et fusion des cellules, c) retourner la chambre et ensemencer les neurones à la densité cellulaire adaptée à la surface de cette chambre, dans le deuxième compartiment de celle-ci, d) placer la chambre dans une étuve à 37 C environ contenant 2 à 10 % de C02 dans une atmosphère saturée en eau, pendant 24 heures environ, e) immerger de milieu de culture le compartiment correspondant aux neurones, f) maintenir les cellules en culture, dans une étuve à 37 C environ, contenant 2 à 10 % de C02 dans une atmosphère saturée en eau, pendant environ 3 semaines en renouvelant le milieu environ tous les 3 jours. 28. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué dans une chambre de culture, selon la revendication 27, caractérisé en ce que les cellules du tissu à reconstituer sont des cellules satellites musculaires de mammifères et en ce que le tissu à reconstituer est un tissu musculaire. 29. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué dans une chambre de culture, selon la revendication 27, caractérisé en ce que la densité cellulaire des cellules satellites musculaires est de 30000 à 150000 par cm2 et en ce que celle des neurones sensitifs correspond à 1 à 5 explants de moelle épinière. 30. Procédé de préparation d'un tissu reconstitué selon l'une des revendications 22 à 29, caractérisé en ce que l'activité électrique des neurones est stimulée par l'adjonction de KCI au milieu de culture ou de toute autre molécule modifiant l'activité électrique, après le cinquième jour de maintien des cellules en culture et d'une manière préférée après trois semaines de culture dans le cas d'un modèle nerf-muscle ou après le dixième jour ou de manière préférée après le douzième jour dans le cas d'un modèle épiderme-neurones sensitifs. 31. Procédé d'étude de l'effet d'un composé test sur un tissu reconstitué selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par la mise en contact des cellules cibles du tissu avec le composé test et le dosage, par des techniques ELISA, de la libération de neuropeptides, par exemple le CGRP et/ou la substance P et/ou de neurotransmetteurs et/ou de cytokines et/ou de facteurs de croissance, dans le surnageant de culture de l'un ou l'autre des compartiments de la chambre de culture. 32. Procédé d'étude de l'effet d'un composé test sur un tissu reconstitué selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par la mise en contact des cellules cibles du tissu avec le composé test et le marquage des neurones en immunofluorescence ou en immunocytochimie avec des anticorps marquant les neurones et/ou les prolongements neuritiques et/ou des sécrétions. 33. Procédé d'étude des tissus reconstitués selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par le marquage en immunofluorescence ou en immunocytochimie des cellules à l'aide d'anticorps spécifiques desdites cellules. 34. Procédé d'étude des tissus reconstitués selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par le marquage en immunofluorescence ou en immunocytochimie de la matrice de collagène avec des anticorps spécifiques du collagène ou des autres constituants de la matrice biologique. 35. Procédé d'étude des tissus reconstitués selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par l'analyse des contacts cellulaires entre les neurones et les cellules cibles en microscopie confocale ou électronique. 36. Procédé d'étude des tissus reconstitués selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par le traitement desdits tissus par un ou plusieurs composés test de façon à caractériser les réactions cellulaires à l'égard de ce ou ces composés test ainsi qu'à l'égard du ou des autres types cellulaires. 37. Procédé d'étude des tissus reconstitués selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par le traitement desdits tissus par un ou plusieurs composés test de façon à permettre l'analyse des transcrits des différents types cellulaires. 38. Procédé d'étude des tissus reconstitués selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par le traitement desdits tissus par un ou plusieurs composés test de façon à permettre l'analyse de l'activité électrique, l'étude des canaux ioniques impliqués dans les échanges et/ou celle des récepteurs, par des techniques électrophysiologiques ou par des techniques de patch-clamp. 39. kit caractérisé en ce qu'il contient plusieurs chambres de culture selon l'une des revendications 17 à 19 et une ou plusieurs boîtes, tubes ou plaques dont les puits ont une dimension suffisante pour accueillir les chambres de culture.