INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Stade E : Acide (7-chloro-6-chlorosulfonyl-2-oxo-1,2-dihydro-3-quinolinyl) phosphonique diéthyl ester Une solution de 13,4 ml d'acide acétique et 2,25 ml d'eau est saturée en SO2 par barbotage de S02 gaz pendant 15 minutes. Parallèlement on prépare à 5 C une solution du composé obtenu au stade D (3,34 g, 10,1 mmol) dans un mélange de 10 ml d'acide acétique glacial et 17 ml d'HCl concentré. A cette solution on ajoute goutte à goutte une solution de nitrite de sodium (767 mg, 11,11 mmol) préalablement dissout dans 5 ml d'eau et on agite la réaction 30 minutes à 5 C. A la solution saturée en S02 on rajoute CuCl2.2H2O (689 mg, 4,04 mmol) et la suspension obtenue est refroidie à 5 C. A cette dernière on rajoute goutte à goutte la solution de diazonium préparée plus haut. Le mélange est agité 1 heure à 5 C puis 3 heures en laissant revenir à température ambiante. La réaction est versée sur de la
glace et le précipité est filtré et rincé avec de l'eau. Après séchage on obtient le produit du titre sous forme de poudre jaune pale.
Point de fusion : 190-200 C Microanalyse élémentaire : C% H% N% S% ci % calculé 37,70 3,41 3,38 7,74 17,12 trouvé 38, 04 3,47 3,40 7,74 17,16
Stade F: Acide 7-chloro-2-oxo-6-[(n-propylamino)sulfonyl]-l,2-dihydro-3- quinolinyl phosphonique diéthyl ester On agite pendant 3 heures une suspension du composé obtenu au stade E (1,26 g, 3,0 mmol) avec la n-propylamine (9,0 mmol) dans 30 ml d'acétonitrile. On évapore à sec puis on reprend le résidu dans HCI 1N et on extrait à l'acétate d'éthyle. Après séchage sur MgS04 et évaporation de la phase organique, on obtient un résidu qui est repris dans l'éther et filtré pour conduire au produit du titre.
Point de fusion : > 300 C Microanalyse élémentaire : C% H% N% S% calculé 43,99 5, 08 6,41 7,34 trouvé 43,99 5, 08 6, 24 7, 07
EXEMPLE 2 : Acide 7-chIoro-2-oxo-6-[(n-propylamino)sulfonyl]-1,2-dihydro-3- quinolinyl phosphonique A une suspension du composé obtenu dans l'Exemple 1 (2,53 mmol) dans 30 ml d'acétonitrile anhydre, on ajoute 25,3 mmol de bromotriméthylsilane. On agite à reflux 1 heure et on évapore à sec. Le résidu est séché sous vide et on le reprend dans du méthanol. On agite pendant 30 minutes la suspension qui devient de plus en plus épaisse.
Après filtration du précipité et rinçage avec un peu de méthanol, on obtient le produit du titre.
Point de fusion : > 300 C Microanalyse élémentaire : C% H% N% S% Cl% calculé 37,86 3,71 7,36 8,42 9,31 trouvé 37, 60 3,83 7, 07 7,78 10, 06 Les Exemples suivants sont obtenus selon des modes opératoires semblables à ceux des Exemples 1 et 2 à partir des substrats appropriés. EXEMPLE 3 : Acide 7-chloro-6-[(di-n-propylamino)sulfonyl]-2-oxo-1,2-dihydro-3- quinolinyl phosphonique diéthyl ester On procède comme dans l'Exemple 1 en remplaçant au stade F la n-propylamine par la dipropylamine.
Point defusion - 172-175 C EXEMPLE 4 : Acide 7-chloro-6-[(di-n-propylamino)sulfonyl]-2-oxo-1,2-dihydro-3- quinolinyl phosphonique On procède comme dans l'Exemple 2 à partir du composé obtenu dans l'Exemple 3.
Point de fusion : > 300 C Microanalyse élémentaire : C% H% N% S% CI% calculé 42, 61 4,77 6, 63 7,58 8,38 trouvé 42,40 4,78 6,48 7,35 8,95
EXEMPLE 5 : Acide 7-chloro-6-[(méthylamino)sulfonyll-2-oxo-1,2-dihydro-3- quinolinyl phosphonique diéthyl ester On procède comme dans l'Exemple 1 en remplaçant au stade F la n-propylamine par la méthylamine.
Point de fusion : 261-265 C Microanalyse élémentaire : C% H% N% S% calculé 41,13 4,44 6,85 7,84 trouvé 41,05 4,39 6,83 7,86
EXEMPLE 6 : Acide 7-chloro-6-((méthylamino)sulfonyl]-2-oxo-1,2-dihydro-3- quinolinyl phosphonique On procède comme dans l'Exemple 2 à partir du composé obtenu dans l'Exemple 5.
Point de fusion : > 300 C Microanalyse élémentaire : C% H% N% S% CI % calculé 34, 06 2,86 7,94 9, 09 10,05 trouvé 34, 20 3, 01 7,75 8,98 10,18
Par "fragment biologiquement actif' on entend ci-dessus un polynucléotide ayant une activité promotrice et de préférence une activité promotrice dans les plantes. Les techniques permettant d'établir l'activité promotrice d'un polynucléotide sont bien connues de l'homme du métier. Ces techniques impliquent classiquement l'utilisation d'un vecteur d'expression comprenant dans le sens de la transcription le polynucléotide à tester et un gène rapporteur (voir Sambrook et al., Molecular Cloning : Labratory Manual, 1989).
L'invention concerne aussi une séquence terminatrice du gène SGS2 d'Arabidopsis thaliana. De préférence, la séquence terminatrice du gène SGS2 comprend un polynucléotide dont la séquence est comprise entre la position 4863 et la position 6863 de la SEQ ID NO. 1. Dans un autre mode de réalisation de l'invention, la séquence terminatrice du gène SGS2 comprend un fragment biologiquement actif d'un polynucléotide dont la séquence est comprise entre la position 4863 et la position 6863 de la SEQ ID NO. 1.
L'invention concerne aussi des polynucléotides de l'ADNc de SGS2. De manière préférée, les polynucléotides de la séquence codante d'un gène SGS2 de plante comprennent des polynucléotides de la SEQ ID NO. 2.
L'invention a également pour objet des polynucléotides comprenant un polynucléotide codant pour un polypeptide choisi parmi les polypeptides suivants: a) le polypeptide de la SEQ ID NO.3; b) un polypeptide homologue à un polypeptide de la SEQ ID NO. 3; c) un fragment d'un polypeptide tel que défini en a) ou b).
L'invention s'étend également aux polynucléotides comprenant un polynucléotide choisi parmi les polynucléotides suivants:
a) le polynucléotide de la SEQ ID NO. 1; b) le polynucléotide de la SEQ ID NO. 2 ; c) un polynucléotide homologue à un polynucléotide tel que défini en a) ou b) d) un polynucléotide capable de s'hybrider de manière sélective à un polynucléotide tel que défini en a) ou b); e) un fragment d'un polynucléotide tel que défini en a), b), c) ou d).
Par " fragment " on entend selon l'invention un polynucléotide d'au moins 10, 20, 30, 50,100, 200,300, 400,500 nucléotides contigus de la séquence de référence. De préférence ces fragments conservent la fonction de la séquence de référence.
Par " homologue " on entend selon l'invention un polynucléotide présentant une ou plusieurs modifications de séquence par rapport à la séquence de référence. Ces modifications peuvent être des délétions, des additions ou des substitutions d'un ou plusieurs nucléotides de la séquence de référence. De manière avantageuse, le pourcentage d'homologie sera d'au moins 70 %, 75%, 80%, 85%, 90%, 95% et de préférence d'au moins 98% et plus préférentiellement d'au moins 99% par rapport à la séquence de référence. Les méthodes de mesure et d'identification des homologies entre les séquences d'acides nucléiques sont bien connues de l'homme du métier. On peut employer par exemple les programmes PILEUP ou BLAST (notamment Altschul et al., J.Mol.Evol., 36:290-300, 1993; Altschul et al., J.Mol.Biol., 215 : 403-10, 1990). L'invention concerne donc des polynucléotides comprenant des polynucléotides présentant au moins 70 %, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 98% et de préférence au moins 98% et plus préférentiellement au moins 99% d'homologie avec les polynucléotides SGS2, les polynucléotides de la SEQ ID NO.1ou les polynucléotides de la SEQ ID NO. 2. De préférence l'invention concerne un polynucléotide comprenant un polynucléotide d'au moins 50,100, 200,300, 400,500, 1000 nucléotides présentant au moins 70 %, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 98% et de préférence au moins 98% et plus préférentiellement au moins 99% d'homologie avec les polynucléotides SGS2, les polynucléotides de la SEQ ID NO.1ou les polynucléotides de la SEQ ID NO. 2. De préférence, ces homologues conservent la fonction de la séquence de référence.
Par " séquence capable de s'hybrider de manière sélective ", on entend selon l'invention les séquences qui s'hybrident avec la séquence de référence à un niveau supérieur au bruit de fond de manière significative. Le niveau du signal généré par l'interaction entre la séquence capable de s'hybrider de manière sélective et les séquences de référence est généralement 10 fois, de préférence 100 fois plus intense que celui de l'interaction des autres séquences d'ADN générant le bruit de fond. Les conditions d'hybridation stringentes permettant une hybridation sélective sont bien connues de l'homme du métier. En général la température d'hybridation et de lavage est inférieure d'au moins 5 C au Tm de la séquence de référence à un pH donné et pour une force ionique donnée. Typiquement la température d'hybridation est d'au moins 30 C pour un polynucléotide de 15 à 50 nucléotides et d'au moins 60 C pour un polynucléotide de plus
de 50 nucléotides. A titre d'exemple, l'hybridation est réalisée dans le tampon suivant : SSC, 50 mM Tris-HCl (pH 7. 5), 1 mM EDTA, 0. 02% PVP, 0. 02% Ficoll, 0. 02% BSA, 500 ug/ml denatured salmon sperm DNA. Les lavages sont par exemple réalisés successivement à faible stringence dans un tampon 2X SSC, 0,1 %SDS, à moyenne stringence dans un tampon 0,5X SSC, 01%SDS et à forte stringence dans un tampon 0,1X SSC, 0,1%SDS. L'hybridation peut bien entendu être effectuée selon d'autres méthodes usuelles bien connues de l'homme du métier (voir notamment Sambrook et al., Molecular Cloning : A Labratory Manual, 1989). L'invention concerne donc des polynucléotides comprenant un polynucléotide capable de s'hybrider de manière sélective avec le polynucléotide de la SEQ ID NO.1 ou le polynucléotide de la SEQ ID NO. 2. De préférence, l'invention concerne un polynucléotide comprenant un polynucléotide d'au moins 50,100, 200,300, 400,500, 1000 nucléotides capable de s'hybrider de manière sélective avec le polynucléotide de la SEQ ID NO.lou le polynucléotide de la SEQ ID NO. 2. Préférentiellement, ces polynucléotides s'hybridant de manière sélective à un polynucléotide de référence conservent la fonction de la séquence de référence.
La présente invention a également pour objet des polynucléotides antisens permettant l'inhibition de l'expression d'un gène SGS2 de plante. Les polynucléotides antisens s'hybrident spécifiquement à l'ARNm d'un gène SGS2 de plante interférant ainsi avec l'expression de ce gène. Les techniques d'inhibition de l'expression d'une protéine par un polynucléotide antisens sont bien connues de l'homme du métier et largement décrites dans la littérature notamment par Judelson et al. (Gene, 133 :63-69,1993) ainsi que par Prokish et al. (Mol.Gen.Genet. 256:104-114, 1997).
Les polynucléotides antisens de la présente invention s'hybrident à l'ARNm d'un gène SGS2 de plante sur toute sa longueur ou seulement à une partie de l'ARNm d'un gène SGS2 de plante. Les polynucléotides antisens de la présente invention peuvent être parfaitement complémentaires à l'ARNm d'un gène SGS2 de plante ou suffisamment homologues pour permettre l'appariement et l'inhibition de l'expression d'un gène SGS2 de plante.
La présente invention a donc également pour objet des polynucléotides comprenant un polynucléotide antisens d'un gène SGS2 de plante et préférentiellement un polynucléotide antisens de la séquence codante du gène SGS2 de la SEQ ID NO. 2.
Préférentiellement, les polynucléotides antisens de la présente invention sont dérivés d'un polynucléotide de la SEQ ID NO. 2. Selon un premier mode de réalisation, les polynucléotides antisens de la présente invention comprennent le polynucléotide de la SEQ ID No. 2. Selon un deuxième mode de réalisation, les polynucléotides antisens de la présente invention comprennent un fragment d'au moins 100 nucléotides, de préférence d'au moins 500 nucléotides et préférentiellement d'au moins 1000 nucléotides de la SEQ ID NO.2. De préférence, les polynucléotides antisens de la présente invention comprennent un fragment d'au moins 100 nucléotides dont la séquence est comprise entre la position 333 et la position 576 de la SEQ ID NO.2. Préférentiellement, les polynucléotides antisens de la présente invention comprennent un fragment d'au moins 100 nucléotides, de préférence
d'au moins 500 nucléotides et préférentiellement d'au moins 1000 nucléotides dont la séquence est comprise entre la position 859 et la position 3591 de la SEQ ID NO.2. Selon un troisième mode de réalisation, les polynucléotides antisens de la présente invention comprennent un polynucléotide présentant au moins 85%, 90%, 95% et de préférence au moins 98% et plus préférentiellement au moins 99% d'homologie avec un polynucléotide de la SEQ ID NO. 2. Selon un autre mode de réalisation les polynucléotides antisens de la présente invention comprennent un polynucléotide présentant au moins 85%, 90%, 95% et de préférence au moins 98% et plus préférentiellement au moins 99% d'homologie avec un fragment d'au moins 100 nucléotides, de préférence d'au moins 500 nucléotides et préférentiellement d'au moins 1000 nucléotides de la SEQ ID NO.2.
De préférence, les polynucléotides antisens de la présente invention inhibent spécifiquement l'expression d'un gène SGS2 chez les plantes.
Si au contraire, toutes les contraintes sont satisfaites, alors le module indicateur envoie à l'étape (15) pour chaque autre attribut de l'équation une requête d'interrogation avec pour valeurs d'index celles du n-uplet précédemment trouvé.
Si l'agent SNMP retourne un résultat sans erreur pour toutes les instances d'attributs demandées, alors le module indicateur, soit remplace à l'étape (16) le n-uplet d'instance d'index dans la table N 1, si cette instance correspond à la première trouvée, soit ajoute à l'étape (16) une ligne dans la table N 1 en conservant la même adresse et le même index de modèle, et en renseignant la colonne valeur des instances avec la nouvelle valeur trouvée pour le n-uplet d'index. Ensuite, le module indicateur demande la valeur suivante de l'attribut fédérateur.
Si l'une des instances d'attributs demandées n'existe pas le module indicateur demande la valeur suivante de l'attribut fédérateur sans mémoriser la valeur du n-uplet d'index correspondant.
Ensuite, l'ensemble de la procédure se répète jusqu'à ce que l'agent réponde à la requête Getnext de demande de la valeur suivante de l'attribut fédérateur par une instance d'un autre attribut ou par une erreur. Cela signifie alors que toutes les instances de l'attribut fédérateur ont été trouvées et que la recherche des instances des index est terminée.
Ainsi, lors de l'évaluation ultérieure de l'équation le module indicateur récupère les instances des index mémorisées dans la table N 1, puis interroge les agents SNMP avec comme paramètre les attributs indexés avec les instances trouvées dans la table N 1. Si aucune instance d'index valide n'est mémorisée dans la table N 1, alors la dernière ligne de la table contenant une valeur d'une instance d'index est marquée d'un drapeau (en anglais : Flag)
indiquant au module indicateur que cette instance d'index n'est pas valide, de sorte que le calcul de l'équation correspondante n'est pas réalisé.
A titre d'exemple, si l'équation à évaluer est l'équation d'index 1 de la table N 2, le module indicateur demande dans un premier temps la valeur suivante de l'attribut IflnErrors. Si l'agent retourne une valeur pour IflnErrors. 1 alors, le module indicateur interroge l'agent SNMP pour connaître les instances des attributs ifOutErrors.l, iflnPacketsl et ifOutPackets.l. Si toutes ces instances existent, l'instance 11=1 est mémorisée dans la table N 1, puis la valeur suivante de l'attribut IfInErrors est demandée. Si l'une de ces instances n'existe pas, la valeur suivante de l'attribut IflnErrors est demandée.
La procédure se répète alors jusqu'à ce que l'agent réponde à la requête de demande de l'instance IfInErrors par une valeur erronée, par exemple, correspondant à un autre attribut. Dans notre exemple, le module indicateur a trouvé en tous trois instances pour l'index 11 qui sont 1, 3 et 7.
Pour suivre l'évolution du domaine supervisé, par le sous administrateur selon l'invention, une étape de mise à jour des instances est réalisée, par exemple, périodiquement. Ainsi, selon l'invention, l'évolution du sous domaine, et en particulier l'évolution des équipements eux-mêmes est prise en compte dynamiquement par le module indicateur.
Cette étape de mise à jour consiste, d'une part à vérifier que les instances des n-uplets d'index valides et mémorisées dans la table N 1 sont toujours valides, et d'autre part à vérifier s'il n'existe pas d'autre instance d'index. L'étape de vérification de l'existence de nouvelles instances d'index est réalisée par le module indicateur qui envoie à l'étape (200, fig. 2) une requête d'interrogation pour demander la première instance de l'attribut fédérateur de l'équation. Dès que l'agent SNMP interrogé retourne une instance de l'attribut fédérateur, le module indicateur extrait la valeur des index trouvés et les compare à l'étape (201) avec les instances des n-uplets d'index mémorisés dans la table N 1. Si les instances trouvées correspondent à un n-uplet déjà mémorisé, le module indicateur envoie à l'étape (202) pour chaque autre attribut de l'équation une requête d'interrogation avec pour valeurs d'index celles du n-uplet trouvé. Si l'agent SNMP retourne un résultat sans erreur pour
toutes les instances d'attributs demandées, le module indicateur vérifie à l'étape (203), s'il y en a, si les contraintes sur les index sont respectées. Si les contraintes sont respectées le module indicateur marque à l'étape (207) la ligne par un drapeau (en anglais : Flag) indiquant que cette instance d'index a été trouvée. Après cette opération à l'étape (207) de marquage, si, lors de l'envoi à l'étape (202) de la requête d'interrogation ayant pour valeurs d'index celles du n-uplet précédemment trouvé, l'une des instance n'est pas retournée, l'instance suivante de l'attribut fédérateur est demandée à l'étape (200). Si les contraintes sur les index ne sont pas respectées l'étape 207 est ignorée et l'instance suivante de l'attribut fédérateur est demandée.
Si lors de la comparaison le module indicateur ne retrouve pas, dans la table N 1, le n-uplet d'index retourné par l'agent SNMP, le module indicateur vérifie à l'étape (203), s'il y en a, si les contraintes sur les index sont respectées. Si ces contraintes sont respectées, le module indicateur envoie à l'étape (204) pour chaque autre attribut de l'équation une requête d'interrogation avec pour valeurs d'index celles du n-uplet précédemment trouvé. Si l'une des contraintes n'est pas satisfaite, la valeur du n-uplet est ignorée et la valeur suivante de l'attribut fédérateur est demandée à l'étape (200).
Si l'agent SNMP retourne un résultat sans erreur pour toutes les instances d'attributs demandées, le module indicateur ajoute alors, à l'étape (205), une ligne à la table N 1 dans laquelle la nouvelle instance du n-uplet d'index est mémorisée. Puis le module indicateur marque à l'étape (206) cette nouvelle ligne avec un drapeau avant de demander à l'étape (200) l'instance suivante de l'attribut fédérateur. Si lors de l'envoi à l'étape (204) de la requête d'interrogation avec pour valeurs d'index celles du n-uplet précédemment trouvé l'une des instances n'est pas retournée le n-uplet d'index est ignoré L'ensemble de la procédure décrite précédemment se répète jusqu'à ce que l'agent réponde à la requête Getnext de demande de la valeur suivante de l'attribut fédérateur par une instance d'un autre attribut ou par une erreur.
Cela signifie alors que toutes les instances de l'attribut fédérateur ont été trouvées.
Le module indicateur vérifie ensuite la validité des n-uplet d'instances d'index de la table N 1. Pour ce faire, le module indicateur compte à l'étape (210), dans un premier temps le nombre de n-uplet trouvés dans la table N 1 pour une adresse IP et une équation déterminées, initialise à l'étape (210) un premier compteur avec le nombre de lignes trouvées et initialise à l'étape (210) un deuxième compteur à zéro. Ensuite, dans une étape de vérification à l'étape (211), le module indicateur vérifie, pour chaque ligne comprenant l'adresse IP et l'équation déterminée, si un drapeau est présent. Si pour la ligne courante un drapeau est présent, le premier compteur est décrémenté (212) de 1. Une étape de test (213) permet de vérifier la valeur du premier compteur. Si ce premier compteur est égal à zéro alors la procédure se termine, sinon la ligne suivante est traitée.
Si pour une ligne il n'y a pas de drapeau, le deuxième compteur est incrémenté à l'étape (214) de 1 puis comparé à l'étape (214) avec le nombre de ligne précédemment déterminé. S'il y a égalité, la ligne n'est pas supprimée puisqu'il s'agit en fait de la dernière ligne pour cette adresse et cette équation.
Le radical amino peut-être substitué par un ou deux radicaux alkyle choisis parmi les radicaux alkyle tels que définis ci-dessus pour former un radical alkylamino ou dialkylamino tels que définis ci-dessus.
Par radical alkylamino on entend de préférence les radicaux dans lesquels l'alkyle comprend au plus 4 atomes de carbone. On peut citer les radicaux méthylamino, éthylamino, propylamino ou butyl (linéaire ou ramifié) amino.
De même, par radical dialkylamino on entend de préférence les radicaux dans lesquels l'alkyle comprend au plus 4 atomes de carbone. On peut citer par exemple les radicaux diméthylamino, diéthylamino, méthyléthylamino.
Par radical hydroxyle estérifié, éthérifié ou protégé, on entend respectivement les radicaux -O-CO-a1, a2-O-a3 ou -O-gp, formés à partir d'un radical hydroxyle, selon les méthodes usuelles connues de l'homme du métier et dans lesquels gp représente un groupement protecteur et a1, a2 et a3 représentent notamment un radical alkyle, akényle, alkynyle, aryle ou arylalkyle, ayant au plus 12 atomes de carbone et éventuellement substitués ainsi qu'il est défini ci-dessus notamment pour R3.
Des exemples de groupement protecteur gp, ainsi que la formation du radical hydroxyle protégé, sont donnés notamment dans le livre usuel de l'homme du métier : Protective Groups in Organic Synthesis, Theodoa W. Greene, Harvard University ; imprimé en 1981 par Wiley-Interscience Publishers, John Wiley & Sons.
Le groupement de protection du radical hydroxyle que peut représenter gp, peut être choisi dans la liste ci-dessous : Par exemple formyle, acétyle, chloroacétyle, bromoacétyle,
dichloroacétyle, trichloroacétyle, trifluoroacétyle, méthoxyacétyle, phénoxyacétyle, benzoyle, benzoylformyle, p-nitrobenzoyle. On peut citer également les groupements éthoxycarbonyle, méthoxycarbonyle, propoxycarbonyle, ssssss-trichloroéthoxycarbonyle, benzyloxycarbonyle, tertbutoxycarbonyle, 1-cyclo propyléthoxycarbonyle, tétrahydropyrannyle, tétrahydrothiopyrannyle, méthoxytétrahydropyrannyle, trityle, benzyle, 4-méthoxybenzyle, benzhydryle, trichloroéthyle, 1-méthyl 1-méthoxyéthyle, phtaloyle, propionyle, butyryle, isobuty-ryle, valéryle, isovaléryle, oxalyle, succinyle et pivaloyle, phénylacétyle, phénylpropionyle, mésyle, chlorobenzoyle, para-nitrobenzoyle, para-tert-butylbenzoyle, caprylyle, acryloyle, méthylcarbamoyle, phénylcarbamoyle, naphtylcarbamoyle.
Le groupement protecteur gp peut notamment représenter le radical 2-hexahydropyrannyle ou encore un dérivé du silicium tel que triméthylsilyle.
Les sels d'addition avec les acides minéraux ou organiques des produits de formule (P-Y) peuvent être, par exemple, les sels formés avec les acides chlorhydrique, bromhydrique, iodhydrique, nitrique, sulfurique, phosphorique, propionique, acétique, formique, benzoïque, maléique, fumarique, succinique, tartrique, citrique, oxalique, glyoxylique, aspartique, ascorbique, les acides alcoylmonosulfoniques tels que par exemple l'acide méthanesulfonique, l'acide éthanesulfonique, l'acide propanesulfonique, les acides alcoyldisulfoniques tels que par exemple l'acide méthanedisulfonique, l'acide alpha, bêta-éthanedisulfonique, les acides arylmonosulfonique tels que l'acide benzènesulfonique et les acides aryldisulfoniques.
Lorsque les produits de formule (P-Y) telle que définie ci-dessus comportent un radical amino salifiable par un acide il est bien entendu que ces sels d'acides font également partie de l'invention.
On peut citer plus particulièrement les sels formés avec les acides chlorhydrique ou méthanesulfonique par exemple.
La présente invention a particulièrement pour objet les produits de formule (P-Y) tels que définis ci-dessus