INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
ctg gtg ttt ggc ctc ttt ttg gcg tac gag acg cgc tcc att aaa gtg 2016 Leu Val Phe Gly Leu Phe Leu Ala Tyr Glu Thr Arg Ser Ile Lys Val 660 665 670 aaa cag atc aac gat tcg cgt tat gtg ggc atg agc atc tat aac gtg 2064 Lys Gln Ile Asn Asp Ser Arg Tyr Val Gly Met Ser Ile Tyr Asn Val 675 680 685 gtc gtc ctt tgc ctg ata aca gct ccg gtg ggc atg gtc att gca tcg 2112 Val Val Leu Cys Leu Ile Thr Ala Pro Val Gly Met Val Ile Ala Ser 690 695 700 caa cag gac gcg tcc ttt gcc ttc gtt gct cta gct gtg ata ttc tgt 2160 Gln Gln Asp Ala Ser Phe Ala Phe Val Ala Leu Ala Val Ile Phe Cys 705 710 715 720 tgt ttc cta agc atg ctg ctg ata ttt gtg cca aag gtc att gag gtt 2208 Cys Phe Leu Ser Met Leu Leu Ile Phe Val Pro Lys Val Ile Glu Val 725 730 735 ata cgt cat ccc aag gat aag gcc gaa tcg aaa tac aat ccc gat tca 2256 Ile Arg His Pro Lys Asp Lys Ala Glu Ser Lys Tyr Asn Pro Asp Ser 740 745 750 gcc ata tcg aaa gag gac gaa gaa cgc tat cag aaa ctt gtt ace gaa 2304 Ala Ile Ser Lys Glu Asp Glu Glu Arg Tyr Gln Lys Leu Val Thr Glu 755 760 765 aac gag caa ttg caa cga tta ata aca cag aag gag gaa aag att cga 2352 Asn Glu Gln Leu Gln Arg Leu Ile Thr Gln Lys Glu Glu Lys Ile Arg 770 775 780 gtc ctg cga cag cgt ctg gtg gag cgg ggc gac gcc aag ggc aca gaa 2400 Val Leu Arg Gln Arg Leu Val Glu Arg Gly Asp Ala Lys Gly Thr Glu 785 790 795 800 ctg aat ggt gca aca ggt gtc gcc tcc gcc gcc gtt gca aca act tcg 2448 Leu Asn Gly Ala Thr Gly Val Ala Ser Ala Ala Val Ala Thr Thr Ser 805 810 815 cag ccc gct tcc ctc atc aac tca tca gca cat gcc acg ccc gca gcc 2496 Gln Pro Ala Ser Leu Ile Asn Ser Ser Ala His Ala Thr Pro Ala Ala 820 825 830 aca ctc gca atc aca caa ggt gag tag 2523 Thr Leu Ala Ile Thr Gln Gly Glu 835 840
2 840 PRT Drosophila melanogaster 2 Met Arg Lys Asp Met Thr Ser Asp Gly.Ala Val Thr Phe Trp Ile Phe 1 5 10 15 Leu Leu Cys Leu Ile Ala Ser Pro His Leu Gln Gly Gly Val Ala Gly 20 25 30 Arg Pro Asp Glu Leu His Ile Gly Gly Ile Phe Pro Ile Ala Gly Lys 35 40 45 Gly Gly Trp Gln Gly Gly Gln Ala Cys Met Pro Ala Thr Arg Leu Ala 50 55 60 Leu Asp Asp Val Asn Lys Gln Pro Asn Leu Leu Pro Gly Phe Lys Leu 65 70 75 80 Ile Leu His Ser Asn Asp Ser Glu Cys Glu Pro Gly Leu Gly Ala Ser 85 90 95 Val Met Tyr Asn Leu Leu Tyr Asn Lys Pro Gln Lys Leu Met Leu Leu 100 105 110 Ala Gly Cys Ser Thr Val Cys Thr Thr Val Ala Glu Ala Ala Lys Met 115 120 125 Trp Asn Leu Ile Val Leu Cys Tyr Gly Ala Ser Ser Pro Ala Leu Ser 130 135 140 Asp Arg Lys Arg Phe Pro Thr Leu Phe Arg Thr His Pro Ser Ala Thr 145 150 155 160 Val His Asn Pro Thr Arg Ile Lys Leu Met Lys Lys Phe Gly Trp Ser 165 170 175 Arg Val Ala Ile Leu Gln Gln Ala Glu Glu Val Phe Ile Ser Thr Val 180 185 190 Glu Asp Leu Glu Asn Arg Cys Met Glu Ala Gly Val Glu Ile Val Thr 195 200 205 Arg Gln Ser Phe Leu Ser Asp Pro Thr Asp Ala Val Arg Asn Leu Arg 210 215 220
Arg Gln Asp Ala Arg Ile Ile Val Gly Leu Phe Tyr Val Val Ala Ala 225 230 235 240 Arg Arg Val Leu Cys Glu Met Tyr Lys Gln Gln Leu Tyr Gly Arg Ala 245 250 255 His Val Trp Phe Phe Ile Gly Trp Tyr.Glu.Asp Asn Trp Tyr Glu Val 260 265 270 Asn Leu Lys Ala Glu Gly Ile Thr Cys Thr Val Glu Gln Met Arg Ile 275 280 285 Ala Ala Glu Gly His Leu Thr Thr Glu Ala Leu Met Trp Asn Gln Asn 290 295 300 Asn Gln Thr Thr Ile Ser Gly Met Thr Ala Glu Glu Phe Arg His Arg 305 310 315 320 Leu Asn Gln Ala Leu Ile Glu Glu Gly Tyr Asp Ile Asn His Asp Arg 325 330 335 Tyr Pro Glu Gly Tyr Gln Glu Ala Pro Leu Ala Tyr Asp Ala Val Trp 340 345 350 Ser Val Ala Leu Ala Phe Asn Lys Thr Met Glu Arg Leu Thr Thr Gly 355 360 365 Lys Lys Ser Leu Arg Asp Phe Thr Tyr Thr Asp Lys Glu Ile Ala Asp 370 375 380 Glu Ile Tyr Ala Ala Met Asn Ser Thr Gln Phe Leu Gly Val Ser Gly 385 390 395 400 Val Val Ala Phe Ser Ser Gln Gly Asp Arg Ile Ala Leu Thr Gln Ile 405 410 415 Glu Gln Met Ile Asp Gly Lys Tyr Glu Lys Leu Gly Tyr Tyr Asp Thr 420 425 430 Gln Leu Asp Asn Leu Ser Trp Leu Asn Thr Glu Gln Trp Ile Gly Gly 435 440 445 Lys Val Pro Gln Asp Arg Thr Ile Val Thr His Val Leu Arg Thr Val 450 455 460 Ser Leu Pro Leu Phe Val Cys Met Cys Thr Ile Ser Ser Cys Gly Ile 465 470 475 480
Phe Val Ala Phe Ala Leu Ile Ile Phe Asn Ile Trp Asn Lys His Arg 485 490 495 Arg Val Ile Gln Ser Ser His Pro Val Cys Asn Thr Ile Met Leu Phe 500 505 510 Gly Val Ile Ile Cys Leu Ile Ser Val. Ile Leu Leu Gly Ile Asp Gly 515 520 525 Arg Phe Val Ser Pro Glu Glu Tyr Pro Lys Ile Cys Gln Ala Arg Ala 530 535 540 Trp Leu Leu Ser Thr Gly Phe Thr Leu Ala Tyr Gly Ala Met Phe Ser 545 550 555 560 Lys Val Trp Arg Val His Arg Phe Thr Thr Lys Ala Lys Thr Asp Pro 565 570 575 Lys Lys Lys Val Glu Pro Trp Lys Leu Tyr Thr Met Val Ser Gly Leu 580 585 590 Leu Ser Ile Asp Leu Val Ile Leu Leu Ser Trp Gln Ile Phe Asp Pro 595 600 605 Leu Gln Arg Tyr Leu Glu Thr Phe Pro Leu Glu Asp Pro Val Ser Thr 610 615 620 Thr Asp Asp Ile Lys Ile Arg Pro Glu Leu Glu His Cys Glu Ser Gln 625 630 635 640 Arg Asn Ser Met Trp Leu Gly Leu Val Tyr Gly Phe Lys Gly Leu Ile 645 650 655 Leu Val Phe Gly Leu Phe Leu Ala Tyr Glu Thr Arg Ser Ile Lys Val 660 665 670 Lys Gln Ile Asn Asp Ser Arg Tyr Val Gly Met Ser Ile Tyr Asn Val 675 680 685 Val Val Leu Cys Leu Ile Thr Ala Pro Val Gly Met Val Ile Ala Ser 690 695 700 Gln Gln Asp Ala Ser Phe Ala Phe Val Ala Leu Ala Val Ile Phe Cys 705 710 715 720 Cys Phe Leu Ser Met Leu Leu Ile Phe Val Pro Lys Val Ile Glu Val 725 730 735
Ile Arg His Pro Lys Asp Lys Ala Glu Ser Lys Tyr Asn Pro Asp Ser 740 745 750 Ala Ile Ser Lys Glu Asp Glu Glu Arg Tyr Gln Lys Leu Val Thr Glu 755 760 765 Asn Glu Gln Leu Gln Arg Leu Ile Thr.Gln Lys Glu Glu Lys Ile Arg 770 775 780 Val Leu Arg Gln Arg Leu Val Glu Arg Gly Asp Ala Lys Gly Thr Glu 785 790 795 800 Leu Asn Gly Ala Thr Gly Val Ala Ser Ala Ala Val Ala Thr Thr Ser 805 810 815 Gln Pro Ala Ser Leu Ile Asn Ser Ser Ala His Ala Thr Pro Ala Ala 820 825 830 Thr Leu Ala Ile Thr Gln Gly Glu 835 840 3 3663 DNA Drosophila melanogaster CDS (1)..(3660) 3 atg ttc cgg cca agt tgg ttt cca ttc gcc agc ctg ctg ttc ctg ctc 48 Met Phe Arg Pro Ser Trp Phe Pro Phe Ala Ser Leu Leu Phe Leu Leu 1 5 10 15 ctt tgg agc acc gcc tgt ggc agg aca gcc aag aga tcg gac gtc tac 96 Leu Trp Ser Thr Ala Cys Gly Arg Thr Ala Lys Arg Ser Asp Val Tyr 20 25 30 ata gcg gga ttc ttc ccg tac ggg gat ggc gtg gaa aac tcc tac acc 144 Ile Ala Gly Phe Phe Pro Tyr Gly Asp Gly Val Glu Asn Ser Tyr Thr 35 40 45 ggt cgg ggc gtt atg ccc agt gta aag ctc gcc ttg ggt cac gtt aat 192 Gly Arg Gly Val Met Pro Ser Val Lys Leu Ala Leu Gly His Val Asn
La figure 11 représente un schéma du vecteur pOS 7001.
La figure 12 représente un schéma du vecteur pOSV010.
La figure 13 représente le fragment contenant un site " cos inséré dans le plasmide pOSV010 au cours de la construction du vecteur pOSV 303.
La figure 14 représente un schéma du vecteur pOSV 303.
La figure 15 représente un schéma du vecteur pE116.
La figure 16 représente un schéma du vecteur pOS 700 R.
La figure 17 représente un schéma du vecteur pOSV 001.
La figure 18 représente le schéma du vecteur pOSV 002.
La figure 19 représente un schéma du vecteur pOSV 014.
La figure 20 représente un schéma du vecteur pBAC 11.
La figure 21 représente un schéma du vecteur pOSV 403.
La figure 22 représente les gels d'électrophorèse d'ADN de la banque après digestion par les enzymes BamHl et Oral des clones positifs de la banque criblée avec les oligonucléotides PKS-I.
La figure 23 illustre la production de puromycine par les recombinants de S. lividans comparée à la production de la souche sauvage S. alboniger.
La Figure 24 illustre Alignement de PKSs du sol avec les sites actifs conservés d'autres PKSs. Les références pour chaque peptide sont indiquées. Les domaines béta-kétoacyl synthase ont été alignés en utilisant le programme PILEUP de GCG (Wisconsin Package Version 9.1, Genetics Computer Group, Madison, Wisc).
La Figure 25 illustre la construction d'un cosmide intégratif conjugatif.
La Figure 26 illustre la construction d'un BAC intégratif conjugatif.
Department of Biochemistry, Baylor College of Medicine, Houston, TX 77030. Proc Natl Acad Sci U S A 1991 Mar 1;88(5):1731-5 # Engelen, B., K. Meinken, F. Von Wintzingerode, H. Heuer, H.-P.
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Le fait d'ensemencer des sols avec des cellules végétatives de Bacillus anthracis a fourni des taux de récupération similaires à ceux obtenus pour Streptomyces.
De plus, les taux de récupération d'ADN à partir du sol n 5 ont augmenté après traitement par l'ARN également pour cet inoculum.
Exemple 2: Construction d'une banque d'ADN de faible poids moléculaire (<10 kb) à partir d'un sol contaminé par du lindane : clonage et expression du gène linA Cet exemple décrit la construction d'une librairie d'ADN du sol dans E. coli. Il permet de démontrer le clonage et l'expression de gènes de petite taille issus d'une microflore non cultivable .
Le lindane est un pesticide organochloré, récalcitrant à la dégradation et persistant dans l'environnement. En aérobie, sa biodégradation est catalysée par une déhydrochlorinase, codée par le
gène linA, permettant de transformer le lindane en 1,2,4-trichlorobenzène.
Le gène linA n'a été identifié que parmi deux souches isolées du sol : Sphingomonas paucimobilis, isolé au Japon (Seeno et Wada 1989, Imai et al 1991, Nagata et al 1993) et Rhodanobacter lindaniclasticus isolé en France (Thomas et al 1996, Nalin et al 1999).
Pourtant le potentiel de dégradation du lindane, mis en évidence par dosage des ions chlorures libérés et amplification par PCR du gène linA à partir de sols ayant été en contact ou non avec du lindane, semble être répandu plus largement dans l'environnement (BiesiekierskaGalguen, 1997).
1. Extraction directe d'ADN de sol Les sols secs sont broyé pendant 10 minutes dans un broyeur à force centrifuge Restch équipé 6 billes de tungstène. 10 grammes de sol broyé sont mis en suspension dans 50 ml de tampon TENP pH 9 (Tris 50 mM, EDTA 20 mM, NaCI 100 mM, polyvinylpolypirrolidone 1% w/v), et homogénéisés au vortex pendant 10 min.
Après centrifugation de 5 minutes, 4000 g à 4 C, le surnageant est précipité à l'acétate de sodium (3M, pH 5. 2) et à l'isopropanol, pour être repris dans du tampon TE stérile (Tris 10 mM, EDTA 1 mM, pH 8.0).
L'ADN extrait est ensuite purifié sur colonne de tamisage moléculaire S400 (Pharmacia) et sur colonne échangeuse d'ions Elutip d (Schleicher et Schuell), selon les instructions des fabricants, puis conservé dans du TE.
2. Construction de la banque d'ADN extrait du sol dans le vecteur pBluescript SK- Le vecteur pBluescript SK- et l'ADN extrait du sol sont chacuns digérés par les enzymes Hindlll et BamHI (Roche), à raison de 10 unités d'enzymes pour 1 g d'ADN (incubation 2 heures à 37 C). Les ADN sont
ensuite ligués par action de la T4 DNA ligase (Roche), une nuit à 15 C, à raison d'une unité d'enzyme pour 300 ng d'ADN (environ 200 ng d'ADN insert et 100 ng de vecteur digéré). Les cellules d'Escherichia coli électrocompétentes, ElectroMAX DH10B TM (Gibco BRL) sont transformées par le mélange de ligation (2 NI) par électroporation (25 F, 200 et 500 #, 2,5 kV) (Biorad Gene Pulser).
Après une heure d'incubation dans le milieu LB, les cellules transformées sont diluées de façon à obtenir environ 100 colonies par boîte puis sont étalées sur milieu LB (10 g/l Tryptone, 5 g/l extrait de levure, 5 g/ NaCI) additionné d'Ampiciline (100 mg/l), de y-HCH (500 mg/l), de X-gal 60 mg/l (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-a-D-galactoside), et d'IPTG 40 mg/l (isopropylthio-ss-D-galactoside), et incubées une nuit à 37 C. Le y- hexachlorocyclohexane (Merck-Schuchardt) étant insoluble dans l'eau, une solution à 50 g/l est préparée dans du DMSO (dimethyl sulfoxyde) (Sigma).
Une banque de 10 000 clones a ainsi été obtenue.
3.Clonage et expression du gène linA Le criblage de la banque s'effectue par visualisation d'un halo de dégradation du lindane autour de la colonie (le lindane précipitant dans les milieux de culture). Sur 10 000 clones criblés, 35 présentaient ainsi une activité de dégradation du lindane. La présence du gène linA chez ces clones a pu être confirmée par PCR grâce à des amorces spécifiques, décrites par Thomas et al (1996). Des digestions réalisées sur les inserts ainsi que sur les produits d'amplification ont montré des profils identiques entre tous les clones criblés et le témoin de référence, R. lindaniclasticus. Les clones portant le gène linA présentaient également un insert de même taille (environ 4 kb).
Il ainsi pu être démontré que l'ADN du sol pouvait être cloné et exprimé chez un hôte hétérologue : E. coli, et que des gènes issus d'une microflore difficilement cultivable pouvaient être exprimés. Des banques réalisées à partir de digestion partielle d'ADN extrait du sol par des enzymes de restriction telles que Sau3AI sont donc aussi envisageables.
2. RESULTATS ET DISCUSSION 2. 1 Extraction et lyse de la fraction bactérienne du sol.
La séparation des cellules microbiennes des particules du sol, préalablement à l'extraction de l'ADN, est une alternative présentant de nombreux avantages par rapport aux méthodes d'extraction directe de l'ADN dans le sol. En effet, l'extraction de la fraction microbienne limite la contamination de l'extrait d'ADN par de l'ADN extracellulaire présent
librement dans le sol ou par de l'ADN d'origine eucaryote. Mais surtout, l'ADN extrait de la fraction microbienne du sol présente des fragments de plus longue taille et une meilleure intégrité que l'ADN extrait par lyse directe JACOBSON et RASMUSSEN (1992). De plus, la séparation des particules de sol permet d'éviter une contamination de l'extrait d'ADN par des composés humiques et phénoliques, composés pouvant, par la suite, nuire gravement aux efficacités de clonage.
Une des étapes déterminantes pour l'extraction des cellules du sol est la dispersion de l'échantillon de sol afin de dissocier les cellules adhérant à la surface ou à l'intérieur des agrégats de particules de sol.
Trois cycles de broyage successifs d'une minute chacun permettent d'obtenir une meilleure efficacité d'extraction des cellules ainsi qu'une plus grande quantité d'ADN récupéré, par rapport à un unique cycle de broyage d'une minute 30.
Le tableau 5 rapporte les efficacités d'extraction obtenues après centrifugation sur gradient de Nycodenz , sur la microflore totale viable (dénombrée par microscopie après coloration à l'acridine orange), sur la microflore totale cultivable (dénombrée sur milieu solide Trypticase-Soja 10%), et sur la microflore d'actinomycètes cultivables sur milieu HV agar (après incubation à 40 C dans une solution d'extrait de levure 6%-SDS 0,05% afin de provoquer la germination des sprores). D'autre part, l'ADN extrait a été quantifié soit après une lyse des cellules en milieu liquide (sans purification sur gradient de chlorure de césium) soit après une lyse des cellules incluses dans un bloc d'agarose (après digestion de l'agarose par une b-agarase).
Les résultats montrent que plus de 14% de la microflore tellurique totale est récupéré par cette méthode (soit 2 108 cellules par gramme de sol), et que la microflore totale cultivable ne représente qu'à peine 2% de la population microbienne totale.
D'autre part, la quantité d'ADN extrait des cellules est de 330 ng par gramme de sol sec. En estimant le contenu d'ADN par cellule microbienne du sol entre 1. 6 et 2. 4 fg, et compte tenu de la quantité de cellules extraites (2 108 cellules par gramme de sol), on peut estimer que la quasi-totalité des cellules ont été lysées et qu'ainsi la lyse n'apporte pas d'important biais à cette approche.
Les électrophorèses en champs pulsés ont montré que l'ADN du sol extrait après gradient de Nycodenz et de CsCI pouvait atteindre une taille de 150 kb et que la lyse en bloc d'agarose permettait d'extraire des fragments supérieurs à 600kb.
Ces résultats confirment l'intérêt de cette approche indépendante de la culture pour la construction de banques d'ADN de l'environnement, en se présentant comme une alternative aux méthodes directes d'extraction d'ADN.
2. 2 Caractérisation moléculaire de l'ADN extrait du sol.
Le but de la caractérisation moléculaire de l'ADN extrait du sol est d'obtenir des profils représentant les proportions des différents taxons bactériens présents dans l'extrait d'ADN. Il s'agissait également de connaître les biais d'extraction induits par la séparation préalable de la réaction cellulaire du sol, en comparaison avec une méthode d'extraction directe faute de visualisation directe de la diversité microbienne présente dans les sols. En effet, peu d'informations ont été rassemblées sur l'extraction des cellules sur gradient de Nycodenz en fonction de leur structure morphologique (diamètre des cellules, formes filamenteuses ou sporulées).
Les méthodes jusqu'ici en place étaient basées sur des: - hybridations quantitatives utilisant des sondes oligonucléotidiques spécifiques à différents groupes bactériens, appliqués directement d'ADN extrait de l'environnement Malheureusement, cette approche n'est pas très sensible et ne permet pas de détecter des genres ou des groupes taxonomiques présents en faible abondance AMANN (1995).
- PCR quantitatives telles que la MPN-PCR (Most Probable Number) SYKES et al. (1992) ou la PCR quantitative par compétition DIVIACCO et al. (1993). Les inconvénients respectifs de chacune de ces approches sont (i) la lourdeur d'utilisation du fait de la multiplication des dilutions et des répétitions qui rend la technique inappropriée pour un grand nombre d'échantillons ou de couples d'amorces, et (ii) la nécessité de construire un compétiteur spécifique à l'ADN cible et n'induisant pas de biais dans la compétition.
La méthode mise en place selon la présente invention consiste à amplifier universellement un fragment de 700 pb à l'intérieur de la séquence d'ADNr 16S, à hybrider cet amplifiat avec une sonde oligonucléotidique de spécificité variable (au niveau du règne, de l'ordre, de la sous classe ou du genre) et à comparer l'intensité d'hybridation de l'échantillon par rapport à une gamme étalon externe. L'amplification préalable à l'hybridation permet de quantifier des genres ou des espèces de micro-organismes peu abondants. De plus, l'amplification par des amorces universelles permet, lors de l'hybridation, d'utiliser une large série de sondes oligonucléotidiques. Elle permet de comparer entre eux différents modes de lyse (extraction directe ou indirecte) sur des groupes taxonomiques bien définis.
Les résultats sont rassemblés dans le tableau 6.
Dans ces conditions, pour une tension Vcc de l'ordre de 5V, une tension VT de 0,7 V et une tension VTNAT de 0,4 V, la tension V2 imposée par le circuit de polarisation 41 permet de réduire d'environ 74% la tension différentielle de grille relativement à la valeur qu'elle présenterait en l'absence du circuit 41, et de diminuer dans les même
proportions le courant de saturation ISAT . comme cela ressort des calculs suivants (24) V3 = VTNAT+VT = N (Vcc-VT) Soit : (25) N = (VTNAT+VT) / (VCC-VT) Soit : (26) N = 0,26 Il apparaîtra clairement à l'homme de l'art que la présente invention est susceptible de diverses variantes de réalisation et applications. Par exemple, la présente invention s'applique également lorsque la résistance de polarisation du drain du transistor TOUT est une résistance agencée dans l'étage de sortie 10 au lieu d'être la résistance RBUS, la tension de polarisation du drain étant alors la tension Vcc au lieu de la tension V1 (bien qu'en pratique V1 et Vcc soient généralement identiques).
Par ailleurs, bien que le circuit de polarisation 41 soit représenté connecté à la grille du transistor TOUT sur la figure 3, il est également possible de placer ce circuit en un autre point de l' étage de sortie. Par exemple, la porte inverseuse 11 pourrait être alimentée par une tension régulée plus faible de la tension Vcc et délivrer à l'état haut une tension de grille VGS répondant à la relation 21 ci-dessus.
Enfin, bien que le problème technique ayant conduit à la réalisation de la présente invention concerne les bus de type I2C, il est clair que la présente invention n'est pas limitée à une telle application et peut concerner
toute autre ligne de transmission de données de type capacitif.
La figure 5 illustre une application de la présente invention aux mémoires programmables et effaçables électriquement, ou mémoires EEPROM, disposant d'une sortie série pour bus I2C. La mémoire EEPROM 50 représentée très schématiquement sur la figure 5 comprend un plan mémoire 51 composé de cellules mémoires 52 agencées en lignes et en colonnes, un décodeur de ligne 53, un décodeur de colonne 54 et un circuit de lecture 55 connecté au décodeur de colonne. Le circuit de lecture 55 comprend des amplificateurs de lecture SA ("sense amplifiers") pour délivrer des mots binaires Wi,j lus dans le plan mémoire 51, ici des octets. Les mots binaires Wi,j sont appliqués à un registre 56 à sortie série et chargement parallèle. La sortie série du registre 56 est envoyée sur une borne de sortie 57 de la mémoire 50 par l'intermédiaire d'un étage de sortie 40 conforme à celui qui vient d'être décrit.
La présente invention se rapporte à un procède et un dispositif d'apprentissage automatique d'adresses dans réseau de télécommunications, et à des systèmes les mettant en oeuvre.
L'invention appartient au domaine de l'interconnexion de réseaux sans fil avec des réseaux filaires.
Plus précisément, l'invention est ici décrite dans application à l'apprentissage de l'adresse MAC ("Medium Access ControP') pour un point d'accès sans fil et un adaptateur de terminal sans fil.
La norme européenne EN 301 649, 1999, DECT ("Digital Enhanced Cordless Telecommunications", communication sans fil numérique avancée) décrit l'utilisation de la technologie radio DECT pour l'interconnexion avec des équipements ou des réseaux de type Ethernet (norme IEEE 802.3).
On connaît par le document US-A-5 339 316 un système de réseau local sans fil qui comprend - un réseau local filaire et - au moins un réseau local sans fil coopérant avec le réseau filaire à travers un point d'accès qui a une fonction passerelle.
Lorsqu'une station source, située dans le réseau sans fil, transmet un paquet de données au réseau filaire, le point d'accès sauvegarde l'adresse source du paquet. Cette sauvegarde de l'adresse source est faite pour chaque paquet reçu d'un terminal sans fil par le point d'accès.
II peut être utile de faire l'apprentissage de l'adresse source sur chaque paquet dans le cas où il y a une grande mobilité dans le réseau sans fil - nouveaux terminaux se joignant au réseau sans fil, - terminaux se déplaçant d'une cellule du réseau sans fil vers autre, - etc.
Toutefois, dans un système où les équipements du réseau sans sont peu mobiles, comme c'est le cas par exemple pour des copieurs numériques, la fréquence à laquelle les équipements sont susceptibles d'être changés est très faible. Donc dans cette situation, le fait de lire l'adresse source sur chaque paquet constitue un inconvénient.