INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
chondrodite, le sphène (titanite), la datolite, la gadolinite, l'uranophane, le graphite, la thortveitite, la clinozoïsite, l'épidote, l'orthite, la pumpellyite, la clinoenstatite, la pigeonite, le diopside, l'hédenbergite, l'augite, le spodumène, la jadéite, la natrosidérite, l'augite natrosidérite, la trémolite, l'actinote, la hornblende commune, la glaucophane, la riebeckite, l'arfvedsonite, la pyrophyllite, la brucite, la paragonite, la muscovite, la glauconie, la céladonite, la margarite, la phlogopite, la biotite, la lépidolithe, la zinnwaldite, le stilpnomélane, la beidellite, la montmorillonite, la nontronite, la saponite, la vermiculite, la pennine, la clinochlore, la prochlorite, la chamoisite, la thuringite, l'antigorite, la chrysotile, la cronstedtite, l'halloysite, la palygorskite, la coésite, la sanidine, l'orthoclase, la scolécite, la laumontite, l'heulandite, la stilbite, la phillipsite, l'harmotome, la clinoptilolite, l'évenkite et ainsi de suite.
Comme susdit, une caractéristique préférable du minéral pour parvenir à l'objet de l'invention est que le cristal ait la forme d'un pinacoïde, que le système de cristal soit monoclinique. En outre, sa dureté doit être faible.
Il en résulte que le minéral de phyllosilicates est préférable, pour réunir les conditions mentionnées cidessus, parmi diverses sortes de minéraux bien connus.
- minéral de phyllosilicates - la pyrophyllite {Al2Si4O10(OH)2} - la stéatite {Mg3Si4O10 (OH)2} - le groupe dioctahédrique
1. la paragonite { NaAl2 (Al, Si3) 010 (OH) 2} 2. la muscovite {KAl2 (AlSi3)O10 (OH, F) 2} 3 . la glauconie { (K, Na) (Al, Fe3+*Mg)2(Al,Si)4010(OH)2} 4. la céladonite { K (MgFe) (Fe, Al) Si4O10 (OH) 2} 5. la margarite { CaAl2 (Al2Si2)O10 (OH) 2} 6. le micaschiste 7. la lépidomélane {KFeALSio(OH,F)} - le groupe de la biotite 1. la phlogopite { KMg3 (AlSi3)O10 (F, OH)} 2. la lépidolithe {K(Li,Al)3 (Si,Al)4O10(F,OH)2} 3. la zinnwaldite {KliFe+2Al(Al,Si3)O10(F,OH2} 4 . la stipnomélane { K(Fe+2, Fe+3,A1)10Si22O30(OH)12} - le groupe de la montmorillonite 1. la beidellite { (Na, Ca/2 ) o, o3A12 (Al, Si ) 4010 (OH) 2 . nH20} 2. la montmorillonite {(Na,Ca)0,33 (Al,Mg)2Si4O10 (OH) 2.nH2O} 3. la nontronite { NaO, 33Fe2+3 (Al, Si) 4010 (OH) 2 . nH20} 4. la saponite { (Ca/2,Na) p,33 (Mg. Fe) 3 (Si,Al) 4010 (OH) 2. 4H20} 5. la vermiculite { (Mg, Fe,A1) 3 (Al, Si) 4010 (OH) 2. 4H20} - le groupe de la chlorite 1. la pennine 2. la clinochlore {(Mg,Fe2+)5Al(Si,Al)4O10(OH)8} 3. la prochlorite = la ripidolite [ (Mg,Fe,Al)6(Si,Al)4O10(OH)8} 4. la chamoisite { (Fe2+Mg, Fe3+) 5A1 (Si3Al.)Olo (OH,O) } 5. la thuringite - le groupe kaolinite-serpentine 1. la kaolinite {Al2Si2O5 (OH) 4} 2. l' antigorite { (Mg, Fe) 3Si205 (OH) 4} 3. la chrysotile { Mg3Si205 (OH) 4} 4. l'amésite { (Mg2Al) (AlSi)O5 (OH) 4} 5. la cronstedtite
6. 1 'halloysite { Al2Si2O5(OH)4.2H2O} (Al2Si2O5 (OH)4 par déshydratation 7. la palygorskite = l'attapulgite { (Mg,Al)2Si4O10(OH) .4H20] Conformément au premier aspect de la présente invention, la fibre fonctionnelle est préparée en mélangeant et en synthétisant une sorte ou plusieurs sortes des minéraux de phyllosilicates mentionnés cidessus et une résine chimique sélectionnée dans un groupe comprenant le polyester, le polyamide, le polypropylène, le polyacrylonitrile, la rayonne et la rayonne d'acétate.
De plus, selon le deuxième aspect de la présente invention, la fibre fonctionnelle est préparée en mélangeant et en synthétisant un mélange et les résines chimiques après avoir fait le mélange d'une sorte de minéraux de phyllosilicates et d'une sorte de minéraux fonctionnels dont les cristaux ne sont pas en forme de pinacoïde.
Concernant la figure 2, un procédé de préparation d'une fibre contenant des poudres d'un minéral fonctionnel selon le premier aspect de la présente invention se déroule de la façon suivante.
Premièrement, le minéral fonctionnel dont les cristaux sont en forme de pinacoïde est réduit en poudre (étape 101). Deuxièmement, les poudres du minéral fonctionnel réduit en poudre lors de la première étape
Comme polymère anionique utilisable dans la présente invention, on peut notamment citer des polymères comportant des groupes dérivés d'acides carboxylique, sulfonique ou phosphorique, et
présentant une masse moléculaire en poids comprise entre 500 et 5 000 000.
Les groupements carboxyliques sont apportés par des monomères monoacides ou diacides carboxyliques insaturés tels que ceux répondant à la formule : dans laquelle n est un nombre entier de 0 à 10, A désigne un groupement méthylène, éventuellement relié à l'atome de carbone du groupement insaturé ou au groupement méthylène voisin lorsque n est supérieur à 1, par l'intermédiaire d'un hétéroatome tel que oxygène ou soufre, R, désigne un atome d'hydrogène, un groupement phényle ou benzyle, R, désigne un atome d'hydrogène, un groupement alkyle inférieur ou carboxyle, R, désigne un atome d'hydrogène, un groupement alkyle inférieur, un groupement -CH2-COOH, phényle ou benzyle.
Dans la formule ci-dessus, un groupement alkyle inférieur comporte de préférence de 1 à 4 atomes de carbone et désigne en particulier, les groupements méthyle et éthyle.
Les polymères anioniques à groupements carboxyliques préférés selon l'invention sont : A) les homo- ou copolymères d'acide acrylique ou méthacrylique ou leurs sels, et en particulier les produits vendus sous les dénominations VERSICOL# E ou K par la société ALLIED COLLOID, ULTRAHOLD par la société BASF, les copolymères d'acide acrylique et d'acrylamide vendus sous la forme de leur sel de sodium sous les dénominations RETEN 421,423 ou 425 par la Société HERCULES, les sels de sodium des acides polyhydroxycarboxyliques.
B) Les copolymères des acides acrylique ou méthacrylique avec un monomère monoéthylénique tel que l'éthylène, le styrène, les esters vinyliques, les esters d'acide acrylique ou méthacrylique, éventuellement greffés sur un polyalkylène-glycol tel que le polyéthylène-glycol, et éventuellement réticulés. De tels polymères
sont décrits en particulier dans le brevet français 1 222 944 et la demande allemande n 2 330 956, les copolymères de ce type comportant dans leur chaîne un motif acrylamide éventuellement N-alkylé et/ou hydroxyalkylé tels que décrits notamment dans les demandes de brevets luxembourgeois 75370 et 75371 ou proposés sous la dénomination QUADRAMER par la Société AMERICAN CYANAMID. On peut également citer les copolymères d'acide acrylique et de méthacrylate d'alkyle en C,-C4 et le copolymère d'acide méthacrylique et d'acrylate d'éthyle vendu sous la dénomination LUVIMER MAEX par la société BASF.
C) les copolymères dérivés d'acide crotonique tels que ceux comportant dans leur chaîne des motifs acétate ou propionate de vinyle, et éventuellement d'autres monomères tels que les ester allylique ou méthallylique, éther vinylique ou ester vinylique d'un acide carboxylique saturé, linéaire ou ramifié, à longue chaîne hydrocarbonée, tels que ceux comportant au moins 5 atomes de carbone, ces polymères pouvant éventuellement être greffés et réticulés, ou encore un ester vinylique, allylique ou méthallylique d'un acide carboxylique a ou (3-cyclique. De tels polymères sont décrits entre autres dans les brevets français numéros 1 222 944,1 580 545, 2 265 782,2 265 781,1 564 110 et 2 439 798. Des produits commerciaux entrant dans cette classe sont les résines 28-29-30, 26-13-14 et 28-13-10 vendues par la société NATIONAL STARCH.
D) Les polymères dérivés d'acides ou d'anhydrides maléique, fumarique, itaconique avec des esters vinyliques, des éthers vinyliques, des halogénures vinyliques, des dérivés phénylvinyliques, l'acide acrylique et ses esters ; ces polymères peuvent être estérifiés.
De tels polymères sont décrits en particulier dans les brevets US 2 047 398,2 723 248,2 102 113, le brevet GB 839 805, et notamment ceux vendus sous les dénominations GANTREZ AN ou ES par la société ISP.
Des polymères entrant également dans cette classe sont les copolymères d'anhydrides maléique, citraconique, itaconique et d'un ester allylique ou méthallylique comportant éventuellement un
groupement acrylamide, méthacrylamide, une a-oléfine, des esters acryliques ou méthacryliques, des acides acryliques ou méthacryliques ou la vinylpyrrolidone dans leur chaîne, les fonctions anhydrides sont monoestérifiées ou monoamidifiées. Ces polymères sont par exemple décrits dans les brevets français 2 350 384 et 2 357 241 de la demanderesse.
E) Les polyacrylamides comportant des groupements carboxylates.
Les polymères comprenant les groupements sulfoniques sont des polymères comportant des motifs vinylsulfonique, styrènesulfonique, naphtalène-sulfonique ou acrylamido-alkylsulfonique.
Ces polymères peuvent être notamment choisis parmi : - les sels de l'acide polyvinylsulfonique ayant une masse moléculaire comprise entre environ 1 000 et 100 000 ainsi que les copolymères avec un comonomère insaturé tel que les acides acrylique ou méthacrylique, et leurs esters, ainsi que l'acrylamide ou ses dérivés, les éthers vinyliques et la vinylpyrrolidone ; - les sels de l'acide polystyrène-sulfonique, les sels de sodium, ayant une masse moléculaire d'environ 500 000 et d'environ 100 000 vendus respectivement sous les dénominations Flexan 500 et Flexan# 130 par National Starch. Ces composés sont décrits dans le brevet FR 2198719 ; - les sels d'acides polyacrylamide-sulfoniques tels que ceux mentionnés dans le brevet US 4 128 631, et plus particulièrement l'acide polyacrylamidoéthylpropane-sulfonique vendu sous la dénomination COSMEDIA POLYMER HSP 1180 par Henkel.
Selon l'invention, les polymères anioniques sont de préférence choisis parmi les copolymères d'acide acrylique tels que le terpolymère acide acrylique/acrylate d'éthyle/N-tertiobutylacrylamide vendu sous la dénomination ULTRAHOLD STRONG par la société BASF, les copolymères dérivés d'acide crotonique tels que les terpolymères acétate de vinyle/tertio-butylbenzoate de vinyle/acide crotonique et les terpolymères acide crotonique/acétate de vinyle/néododécanoate de vinyle vendus sous la dénomination Résine 28-29-30 par la société
Un élément de bridage 18 complète le montage dans cette partie du dispositif. Cet élément 18 comporte une partie centrale 18a (Figures 3 et 4) généralement en forme de plaque circulaire, présentant une ouverture circulaire centrale 18b. En position de montage, un axe 19 traverse successivement la joue 12a, la joue 16a, la plaque circulaire 18a, la joue 16b et la joue 12b, à travers respectivement le trou oblong 13a, l'ouverture circulaire 17a, l'ouverture circulaire 18b, l'ouverture circulaire 17b et le trou oblong 13b. L'axe 19 est maintenu en place de façon connue par des organes d'arrêt respectivement 20a et 20b.
La partie centrale 18a de l'élément de bridage 18 porte, dans sa partie tournée vers le fond 16c de l'organe 16 en forme de fourche, une partie allongée 18c, disposée verticalement, faisant saillie à la fois au-dessus et au-dessous de l'organe 16 en forme de fourche.
La partie supérieure saillante de la partie 18c est recourbée en direction de la gauche sur la Figure 2, afin de former un crochet 18d.
Dans la position de bridage représentée sur les Figures 1 à 4, le crochet 18d coopère avec une butée 21 portée par l'intermédiaire d'une plaque de fixation 22 par le longeron 23.
La partie inférieure saillante 18e de la partie 18c vient, dans la position représentée sur les Figures 1 à 4, en butée contre un arrêt 24 fixé, par exemple par soudure, sur la platine-support 5 solidaire du châssis 3.
Les ouvertures 14 des joues 12a, 12b sont traversées par l'axe 25 d'une came 26 disposée parallèlement aux deux joues 12a et 12b, entre celles-ci, et susceptible de basculer entre une première position telle que
représentée sur la Figure 2 (ou 5) où elle est en butée contre un élément 27 monté entre les deux joues 12a, 12b perpendiculairement à celles-ci, et situé à la hauteur de l'axe 25, vers la droite si l'on regarde la Figure 2, et une seconde position, telle que représentée sur la Figure 6.
L'axe 25 porte un bras 28 qui traverse un passage ménagé dans la came 26 vers l'extérieur du dispositif et qui fait saillie vers l'extérieur en étant recourbé vers le haut à son extrémité, constituant ainsi un organe d'accrochage de la chaîne de suspension 29a du capteur 29 associé.
Ce capteur 29 est représenté plus complètement sur la Figure 5. C'est un élément connu en soi formé d'un corps central 29b qui comporte dans la région d'extrémité voisine de la chaîne d'accrochage 29a, la partie technique fonctionnelle 29C du capteur, et qui est introduit par son autre extrémité dans un tube-support 30 portant extérieurement deux flasques 31a, 31b de fixation du capteur sur le longeron 23. La partie d'extrémité du capteur 29 introduite dans le tube-support 30 porte latéralement une goupille 32 pénétrant dans des orifices correspondants du tube-support 30 et du capteur 29. Sur la Figure 5, on a également représenté le câble 33 de transport des données de mesure, qui est relié à une boîte de jonction commune pour les câbles des quatre capteurs.
Avec un véhicule ainsi équipé de ses quatre capteurs montés chacun dans un module de mise en suspension tel qu'il vient d'être décrit, une pesée s'effectue de la façon suivante : Les modules MA sont montés dans les positions telles que représentées sur la Figure 1, les capteurs 29 étant symbolisés par une croix pour montrer leurs positions respectives. Lorsque l'on veut peser, il faut mettre en suspension les longerons de carrosserie 23 à partir de leur position bridée de la Figure 2. On appuie alors sur une touche de commande, avantageusement située près du conducteur, qui va mettre les vérins 15 en poussée à partir de la position bridée précitée. A ce moment, la partie 16 en forme de fourche se déplace sur la droite si l'on regarde
la Figure 2, entraînant avec elle l'élément de bridage 18 dont la partie 18d était en appui de blocage contre la butée 21 solidaire du longeron 23. L'ensemble constitué par les parties 16 et 18 se déplace de façon guidée par l'axe 19 qui se déplace en translation dans les trous oblongs 13a, 13b.
Le système est ainsi débridé.
Peu avant la fin de course de la tige de piston 15b, la partie 18a joue le rôle de pièce de poussée en venant mettre en mouvement la came 26, provoquant la rotation de celle-ci jusqu'à sa position représentée sur la Figure 6 qui correspond à la fin de course. L'axe 19 est alors en appui contre les extrémités des trous oblongs 13a, 13b se trouvant à droite si l'on regarde la Figure 5. La came 26 a alors terminé sa course et son crochet 28 a levé le capteur 29 en levant sa chaîne 29a.
Les longerons 23 et les éléments qu'ils portent se trouvent donc en suspension de pesage par les chaînes 29a des capteurs 29 (carrosserie, plate-forme, benne, etc.).
Les quatre capteurs 29 émettent les données de pesage, puis les vérins sont commandés pour le recul des tiges 15b, ramenant ainsi les cames 26 dans leur position initiale jusqu'à ce que les longerons 23 reposent à nouveau sur le châssis 3, le recul de tiges 15b se poursuivant jusqu'à la position de bridage de la Figure 1 où le crochet 18d est à nouveau en butée de blocage, la partie inférieure saillante 18e de l'élément de bridage 18 étant, quant à elle, en butée contre l'arrêt 24. Par ailleurs, on peut avantageusement prévoir des moyens de centrage des longerons de carrosserie lorsque ceux-ci redescendent vers le châssis 3. Par exemple, ces moyens pourront être constitués d'éléments à profil conique s'évasant vers l'extérieur à la base des longerons. Les butées 27 servent à limiter le jeu des cames 26 en position de roulage.
Conformément au mode de réalisation qui vient d'être décrit, le capteur 29 est disposé avec sa ligne longitudinale moyenne parallèle à l'axe de poussée.
minor ; de Persea americana ; Catharenthus roseus ; Musa sp. ; deMalus pumila ; de Gingko biloba ; de Monotropa hypopithys (sucepin), d'Aesculus sp ; d'Acer pseudoplatanus ; de Prunus persica et de Pistacia palaestina.
Parmi les laccases d'origine fongique, éventuellement obtenues par biotechnologie, utilisables selon l'invention, on peut citer la ou les laccases issues de Polyporus versicolor, de Rhizoctonia praticola et de Rhus vernicifera telles que décrites par exemples dans les demandes de brevet FR-A-2 112 549 et EP-A-504005 ; les laccases décrites dans les demandes de brevet W095/07988, W095/33836, W095/33837, W096/00290, W097/19998 et W097/19999, dont le contenu fait partie intégrante de la présente description comme par exemple la ou les laccases issues de Scytalidium, de Polyporus pinsitus, de Myceliophtora thermophila, de Rhizoctonia solani, de Pyricularia orizae, et leurs variantes. On peut également citer la ou les laccases issues de Trametes versicolor, de Fomes fomentarius, de Chaetomium thermophile, de Neurospora crassa, de Coriolus versicolor, de Botrytis cinerea, de Rigidoporus lignosus, de Phellinus noxius, de Pleurotus ostreatus, d'Aspergillus nidulans, de Podospora anserina, d'Agancus bisporus, de Ganoderma lucidum, de Glomerella cingulata, de Lactarius piperatus, de Russula delica, d'Heterobasidion annosum, de Thelephora terrestris, de Cladosporium cladosporioides, de Cerrena unicolor, de Coriolus hirsutus, de Ceriporiopsis subvermispora, de Coprinus cinereus, de Panaeolus papilionaceus, de Panaeolus sphinctrinus, de Schizophyllum commune, de Dichomitius squalens, et de leurs variantes.
On choisira plus préférentiellement les laccases d'origine fongique, éventuellement obtenues par biotechnologie.
L'activité enzymatique des laccases utilisées conformément à l'invention et ayant la syringaldazine parmi leurs substrats peut être définie à partir de l'oxydation de la syringaldazine en condition aérobie. L'unité Lacu correspond à la quantité d'enzyme catalysant la conversion de 1 mmole de syringaldazine par minute à un pH de 5,5 et à une température de 30 C. L'unité U correspond à la quantité d'enzyme produisant un delta d'absorbance de 0,001 par minute, à une longueur d'onde de 530 nm, en utilisant la syringaldazine comme substrat, à 30 C et à un
pH de 6,5. L'activité enzymatique des laccases utilisées selon l'invention peut aussi être définie à partir de l'oxydation de la paraphénylènediamine. L'unité ulac correspond à la quantité d'enzyme produisant un delta d'absorbance de 0,001 par minute, à une longueur d'onde de 496,5 nm, en utilisant la paraphénylènediamine comme substrat (64 mM), à 30 C et à un pH de 5.
De manière générale, la ou les oxydo-réductases à 4 électrons conformes à l'invention représentent de préférence de 0,01 à 20 % en poids environ du poids total de la composition tinctoriale prête à l'emploi, et encore plus préférentiellement de 0,1 à 5 % en poids environ de ce poids De manière particulière, et lorsqu'une ou plusieurs laccases sont utilisées, la quantité de laccase(s) présente dans la composition tinctoriale prête à l'emploi conforme à l'invention variera en fonction de la nature de la ou des laccases utilisées. De façon préférentielle, la quantité de laccase(s) est comprise entre 0,5 et 2000 Lacu environ (soit entre 10000 et 40.106 unités U environ ou soit entre 20 et 20. 106 unités ulac) pour 100 g de composition tinctoriale prête à l'emploi.
La ou les peroxydases utilisées dans la composition tinctoriale prête à l'emploi conforme à l'invention, peuvent notamment être choisies parmi les enzymes appartenant à la sous-classe 1. 11.1 décrite dans l'ouvrage Enzyme Nomenclature, Academic Press Inc., 1984. Certaines d'entre elles nécessitent la présence d'un donneur pour fonctionner. C'est le cas, en particulier des NADH peroxydases (1.11.1) [donneur = NADH], des acides gras peroxydases (1.11.1.3) [donneur = acide gras, par exemple palmitate] , des NADPH peroxydases (1. 11.1.2), [donneur = NADPH], des cytochrome-c peroxydases (1. 11.1 5) [donneur = ferrocytochrome c], des iodures peroxydases (1. 11.1.8) [donneur = iodure], des chlorures peroxydases (1. 11.10) [donneur = chlorure], des L. ascorbates peroxydases (1.11.1.11) [donneur = L. ascorbate], des glutathion peroxydases (1.11.1.9) [donneur = glutathion].
D'autres peroxydases fonctionnent sans donneur; il en est ainsi des catalases (1.11.1.6) et des peroxydases simplex (1. 11.1.7).
Ainsi, les peroxydases peuvent par exemple être issues de la pomme, de l'abricot, de l'orge, du radis noir, de la betterave, du chou, de la carotte, du maïs, du coton, de l'ail, du raisin, de la menthe, de la rhubarbe, du soja, de l'épinard, du copnn, du lait de bovin, des microorganismes du type Acetobacter peroxidans, Staphylococcus faecalis, Arthromyces ramosus.
La composition tinctoriale prête à l'emploi conforme à l'invention renferme de préférence au moins un précurseur de colorant d'oxydation ou base d'oxydation.
Au moment de l'emploi, reprendre le lyophilisat du flacon B par un faible volume ( 0,5 ml) de la solution du flacon A. Transférer le contenu du flacon B ainsi dissous dans le flacon A. Homogénéiser. Cette opération dilue donc au dixième la concentration initiale des constituants du flacon B.
Fabrication du flacon A Dans le cas de l'addition d'insuline, il convient de préciser qu'à l'état cristallin, les molécules d'insuline sont unies entre elles par des forces intermoléculaires qui ne se rompent qu'en milieu acide. Pour être mise en solution aqueuse, l'insuline doit donc être dissoute à pH 3 (HCI 0,1 N). Le pH de la solution est ensuite amené à 7,5 (NaOH O,1N); cette opération doit être effectuée le plus rapidement possible, afin d'éviter des altérations de la molécule. Un léger précipité peut apparaître à pH5 ; se redissout ensuite.
Préparer une solution à 100 U/ml. Ajouter la solution d'insuline au milieu Upgraded B9, dans les proportions de 1,25 ml pour 1 L, respectivement. Répartir en flacons de 10 ml qui seront fermés. Conserver la solution à +4 C. Le bulletin analytique de l'insuline, comportant, entre autres, l'activité et, éventuellement, les tests de sécurité, doit être joint ; celui-ci doit être communiqué par le fournisseur de l'insuline.
Fabrication du flacon B Une solution aqueuse préparée extemporanément contenant l'hémisuccinate d'hydrocortisone et les facteurs de croissance est répartie dans des flacons de 1ml, de telle façon que chaque flacon contienne 3,5 g d'hémisuccinate d'hydrocortisone, 500 ng d'EGF, 250 ng de TGFa, 500 ng d'HGF, 50 ng de GM-CSF, 50 ng de GDF-9, 10 g de NAD/NADH et 10 g de NADP/NADPH. Les flacons sont immédiatement lyophilisés. Conserver le lyophilisat à + 4 C.
Conditions de fabrication Toutes les opérations sont effectuées avec des matières premières stériles et en milieu stérile.
B) PREPARATION D'UN MILIEU DE CULTURE POUR LES APPLICATIONS SUSMENTIONNEES SELON LA FORMULE N 2 IGF-1 et IGF-2 sont ajoutés à la solution initiale contenant les autres constituants du flacon B, pour obtenir 5 et 10 ng par flacon, respectivement, puis l'ensemble est lyophilisé.
Les conditions de fabrication et de conservation sont les mêmes que celles du milieu préparé selon la formule n 1.
C) PREPARATION D'UN MILIEU CONTENANT DE L'HYDROCORTISONE ET DES FACTEURS DE CROISSANCE Dans une première étape, un lot expérimental de milieu contenant le glucocorticoïde et des facteurs de croissance a été préparé. Ce milieu de culture était constitué de milieu Upgraded B9 complété seulement par de l'insuline humaine, de l'hémisuccinate d'hydrocortisone, de l'EGF, du TGFa, et de l'IGF-1 humains.
Pour compléter un flacon de 10 ml de milieu Upgraded B9, appelé flacon A, nous avons utilisé : - 12,5 l d'une solution aqueuse d'insuline humaine à 100 U/ml. Cette solution était présentée sous la forme d'un flacon de 10 ml, appelé ici flacon B. Les tests de sécurité (virus et prions) avaient été préalablement effectués.
- un flacon de lyophilisat d'une capacité de 1,2 ml, appelé ici flacon C, contenant l'hémisuccinate d'hydrocortisone (3,5 g) et les facteurs de croissance et de différenciation humains recombinants EGF (500 ng), TGFa (250 ng), et IGF-1 (5ng).
Pour la préparation de ce flacon, l'hémisuccinate d'hydrocortisone (1,4 mg), l'EGF (200 g), le TGFa (100 g), et l'IGF-1 (2g) ont été dissous dans 400 ml d'une solution aqueuse d'albumine humaine sécurisée (1 g/L). Cette solution a été passée sur filtre de 0,2 m, puis répartie dans 393 flacons de 5 ml, à raison de lml par flacon. Ces derniers ont été lyophilisés. Toutes ces opérations ont été effectuées en milieu stérile.