INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La détection des fragments APP-Cter permet la définition d'un indice de transformation pathologique, applicable au tissu humain neuronal (figure 10A: tissu cérébral humain) ou non-neuronal (figure 10B: lymphocytes humains), ainsi qu'aux modèles expérimentaux, animaux (figure 10C: tissu cérébral de souris transgénique APPsw et wt) ou cellulaires, neuronaux (figure 10D: cellules de neuroblastome) ou non-neuronaux (cellules CHO). Cet indice varie de 0 (tissu sain) à 100% (tissu pathologique Alzheimérisé) (figure 10).
Références 1. De Strooper B, Konig G (1999) Alzheimer's disease. A firm base for drug development [news] [comment]. Nature, 402,471-2.
2. Sigurdsson EM, Permanne B, Soto C, Wisniewski T, Frangione B (2000) In vivo reversal of amyloid-beta lesions in rat brain. J Neuropathol Exp Neurol, 59, 11-7.
3. Ancolio K, Dumanchin C, Barelli H, Warter JM, Brice A, Campion D, et al.
(1999) Unusual phenotypic alteration of beta amyloid precursor protein (betaAPP) maturation by a new Val-715 --> Met betaAPP-770 mutation responsible for probable early-onset Alzheimer's disease. Proc Natl Acad Sci U S A, 96, 4119-24.
4. Vaitukaitis J, Robbins JB, Nieschlag E, Ross GT (1971) A method for producing spécifie antisera with small doses of immunogen. J Clin Endocrinol Metab, 33, 988-91.
5. Duff K, Eckman C, Zehr C, Yu X, Prada CM, Perez-tur J, et al. (1996) Increased amyloid-beta42 (43) brains of mice expressing mutant presenilin 1.
Nature, 383,710-3.
6. Hsiao K, Chapman P, Nilsen S, Eckman C, Harigaya Y, Younkin S, et al.
(1996) Corrélative memory deficits, Abeta elevation, and amyloid plaques in transgenic mice. Science, 274, 99-102.
7. Laemmli UK (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227,680-5.
8. Schagger H, von Jagow G (1987) Tricine-sodium dodecyl sulfatepolyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa. Anal Biochem, 166, 368-79.
9. Delacourte A, David JP, Sergeant N, Buee L, Wattez A, Vermersch P, et al.
Les polyéthers polyuréthanes utilisables selon l'invention sont en particulier ceux décrits dans l'article de G. Fonnum, J. Bakke et Fk. Hansen-Colloid Polym. Sci 271,380 389 (1993).
Parmi les polymères à chaîne grasse et de type cationique, on peut les dérivés de cellulose quaternisée qui sont, en particulier, - les celluloses quaternisées modifiées par des groupements comportant au moins une chaîne grasse, tels que les groupes alkyle, arylalkyle, alkylaryle comportant au moins 8 atomes de carbone, ou des mélanges de ceux-ci, - les hydroxyéthylcelluloses quaternisées modifiées par des groupements comportant au moins une chaîne grasse, tels que les groupes alkyle, arylalkyle, alkylaryle comportant au moins 8 atomes de carbone, ou des mélanges de ceux-ci.
Les radicaux alkyle portés par les celluloses ou hydroxyéthylcelluloses quaternisées cidessus comportent de préférence de 8 à 30 atomes de carbone. Les radicaux aryle désignent de préférence les groupements phényle, benzyl, naphtyl ou anthryl.
On peut indiquer comme exemples d'alkylhydroxyéthylcelluloses quaternisées à chaînes grasses en Ce-Cso, les produits QUATRISOFT LM 200, QUATRISOFT LM-X
, ---------------------------------------------------------------------- 529-18-A, QUATRISOFT LM-X 529-18B (alkyle en C12) et QUATRISOFT LM-X 529-8 (alkyle en C, 8) commercialisés par la société AMERCHOL et les produits CRODACEL QM, CRODACEL QL (alkyle en C12) et CRODACEL QS (alkyle en C18) commercialisés par la société CRODA.
Comme exemples de polyacrylates à chaînes latérales aminées, on peut citer les polymères 8781-121B ou 9492-103 proposés par la société NATIONAL STARCH.
Les polymères amphotères à chaîne grasse préférés selon l'invention comprennent, ou sont préparés en copolymérisant : 1) au moins un monomère de formule (la) ou (nib) : dans lesquelles, R1 et R2, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou un radical méthyle, R3, R4 et RS, identiques ou différents, représente un radical alkyle linéaire ou ramifié ayant de 1 à 30 atomes de carbone, Z représente un groupe NH ou un atome d'oxygène,
v-n est un nombre entier de 2 à 5, A-est un anion issu d'un acide organique ou minerai, tel qu'un anion méthosulfate ou un halogénure tel que chlorure ou bromure ; 2) au moins un monomère de formule (11) dans laquelle, R6 et R7, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou un radical méthyle ; et 3) au moins un monomère de formule (III) : dans laquelle R6 et R7, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou un radical méthyle, X désigne un atome d'oxygène ou d'azote et R8 désigne un radical alkyle linéaire ou ramifié ayant de 1 à 30 atomes de carbone ; l'un au moins des monomères de formule (Ia), (Ib) ou (III) comportant au moins une chaîne grasse.
Les monomères de formule (la) et (Ib) de la présente invention sont choisis, de préférence, dans le groupe constitué par : -le diméthylaminoéthylméthacrylate, le diméthylaminoéthylacrylate, - le diéthylaminoéthylméthacrylate, le diéthylaminoéthylacrylate, -le diméthylaminopropylméthacrylate, le diméthylaminopropylacrylate, - ie diméthyiaminopropyiméthacryiamide, ie diméthy) aminopropy) acry ! amide, ces monomères étant éventuellement quaternisés, par exemple par un halogénure d'alkyle en Cl-C4 ou un sulfate de dialkyle en Cl-C4.
Les monomères de formule (II) de la présente invention sont choisis, de préférence, dans le groupe constitué par l'acide acrylique, l'acide méthacrylique, l'acide crotonique
r------------------------------------------------et l'acide méthyl-2 crotonique. Plus particulièrement, le monomère de formule (11) est l'acide acrylique.
Les monomères de formule (III) de la présente invention sont choisis, de préférence, dans le groupe constitué par des acrylates ou méthacrylates d'alkyle en C12-C22 et plus particulièrement en Cl 6-Cl8.
La durée de l'essai est fixée à 20 min.
Dma@ : Densité optique spécifique maximale VOF4 : Valeur d'obscurcissement au terme des 4 premières minutes d'essai.
Plancher amortisseur, éléments constitutifs et procédé de montage. La présente invention concerne notamment le domaine des équipements pour la pratique sportive et plus particulièrement là où le besoin se fait sentir pour des planchers qui sont efficaces pour amortir la réception de sauts ou de chutes et améliorer la souplesse de la marche intensive ou de la course. Ce type de plancher peut par exemple être utilisé pour la pratique du judo, du volley ball etc.... Une autre application de ce plancher amortisseur concerne l'aménagement des postes de travail, là où une station debout prolongée est nécessaire. La présente invention met à disposition des modules qui sont assemblables entre eux de manière très simple pour créer une surface de plancher amortisseur en s'affranchissant pour leur construction d'une main d'oeuvre coûteuse.
Les planchers amortisseurs de Part antérieur sont ceux qui comportent un double lambourdage en bois ou des chevrons qui reposent sur des pièces de type patin en caoutchouc, néoprène ou mousse agglomérée, non rebondissants afin de créer une sorte d'échafaudage au sol qui confère la souplesse. Sur cet échafaudage en bois sont ensuite disposés des éléments de plateau qui servent de surface de plancher. Ces éléments de plateau sont fixés par vissage ou clouage. Cette surface peut ensuite être recouverte de parquet, moquette, tatamis selon les besoins.
Ces planchers amortisseurs de l'art antérieur, en raison de leur construction, présentent plusieurs inconvénients. Ils sont d'une part, long à construire, car leur montage nécessite beaucoup de rigueur, de nombreuses opérations de métrage, de découpe des matériaux. A titre indicatif, un plancher de ce type de l'art antérieur d'une surface de 1000m2 nécessite une durée de montage de 15 jours à temps plein pour deux ouvriers qualifiés. La conséquence en est que le coût de revient est élevé. Pour la constniction d'une surface de plancher amortisseur identique selon l'invention, le temps de montage est diminué d'un facteur 10.
De plus, ce type de plancher de l'art antérieur une fois assemblé n'a pas pour vocation d'être transporté car 1 est adapté à un lieu en particulier et son mode d'assemblage rend son déplacement très fastidieux et méticuleux. Le simple fait de démonter ce type de plancher est susceptible de provoquer des dégâts sur la structure et ne peut être réalisé qu'à l'identique avec grand soin. II est donc impensable dans la pratique de déplacer ce type d'équipement pour délocaliser une manifestation sportive par exemple.
Enfin, du fait de leur conception, ce type de plancher amortisseur de Part antérieur ne répond pas à des courbes d'amortissement précises, et a pour inconvénient d'entretenir les vibrations qui leur sont communiquées. II a été démontré que ces vibrations étaient la cause de microtraumatismes au niveau de la colonne vertébrale notamment chez des personnes qui subissent ces vibrations, par exemple les entraîneurs des équipes de judo, volley ball.. Malgré ces inconvénients importants connus depuis de nombreuses années, il semble cependant que les personnes concernées par les problèmes liés à ces planchers de l'art antérieur se soient accommodées de la situation.
La présente invention se propose de résoudre tous ces inconvénients de l'art antérieur en mettant à disposition un nouveau plancher amortisseur et son système d'assemblage qui permet un montage et un démontage rapide et à la portée de tous sans qualification particulière. Ce plancher amortisseur s'adapte facilement dans tous lieux quelconques qui possèdent un sol plane, et grâce à sa conception, ce plancher amortisseur permet d'éviter le problème des microtraumatismes dûs au problème des vibrations entretenues.
Le système selon l'invention et son procédé de montage vont apparaître de manière plus claire à la lumière de la description détaillée de l'invention et des planches des dessins qui sont annexées. Les figures ne représentent qu'un mode de réalisation possible mais néanmoins préféré de l'invention et n'entendent absolument pas constituer une limitation de l'invention bornée dans la revendication principale.
La figure 1A représente un exemple d'élément modulaire de base pour la construction d'un plancher amortisseur selon l'invention et qui est vu en perspective du côté de la face inférieure.
La figure 1 B représente un exemple d'élément modulaire de base mais vu par sa face supérieure.
La figure 2A représente une vue latérale agrandie d'un exemple de plot amortisseur qui est enchâssé dans le moyen qui permet son maintien au plateau.
La figure 2B représente une vue en perspective d'un plot amortisseur identique à celui de la figure 2A et qui est enchâssé dans le moyen qui permet sa liaison au plateau.
La figure 3 représente une vue en coupe d'un plot amortisseur identique à celui qui est montré à la figure 2 et qui est enchâssé dans son moyen de maintien au plateau.
La figure 4 est une vue inférieure d'un plancher amortisseur comprenant 4 modules de base reliés entre eux par l'intermédiaire de plaque de liaisons. La figure 5A est une vue partielle en coupe transversale au niveau de la jointure de deux panneaux modulaires.
La figure 5B est une vue latérale d'une plaque pour la liaison de deux panneaux modulaires entre eux.
L'invention concerne également une méthode d'analyse pour déterminer la susceptibilité d'un virus VIH à un composé inhibiteur ciblant les corécepteurs du VIH-1, consistant à effectuer l'amplification de l'étape (b) avec la paire d'amorces SEQ ID No : 19 et SEQ ID No : 20 suivie d'une deuxième amplification avec la paire d'amorces SEQ ID No : 21 et SEQ ID No : 22, à ajouter ou non ledit composé inhibiteur ciblant les corécepteurs du VIH-1, éventuellement à des concentrations différentes, durant la culture de l'étape (d), à effectuer l'infection de l'étape (f) avec les particules virales obtenues à l'étape (e) sur deux hôtes cellulaires distincts et à comparer à l'étape (g) l'expression du gène marqueur par chacun des deux hôtes cellulaires distincts.
L'invention concerne également une méthode d'analyse pour déterminer l'infectivité ou la capacité réplicative d'un virus VIH consistant à comparer à l'étape (g) l'expression du gène marqueur par le second hôte cellulaire infecté avec les particules virales obtenues en appliquant les étapes (a) à (f) à un échantillon biologique d'un patient, et l'expression du gène marqueur par le même second hôte cellulaire infecté avec des particules virales de référence obtenues en
appliquant les étapes (a) à (f) à un échantillon contenant un virus de référence.
Avantageusement les particules virales de référence issues d'un virus de référence sont des particules virales obtenues par l'application des étapes (a) à (f) à un échantillon biologique du même patient à un stade préalable du traitement thérapeutique ou avant celui-ci.
L'invention concerne également une méthode d'analyse pour déterminer la virulence d'un virus VIH consistant à effectuer l'amplification de l'étape (b) soit avec la paire d'amorces SEQ ID No : 13, SEQ ID No : 14 suivie d'une deuxième amplification avec la paire d'amorces SEQ ID No : 15 SEQ ID No : 16, soit avec la paire d'amorces SEQ ID No : 17 SEQ ID No : 18 suivie d'une deuxième amplification avec la paire d'amorces SEQ ID No : 18, SEQ ID No : 16, et à mesurer, lors de l'infection de l'étape (f), l'effect cytopathogène produit sur le second hôte cellulaire.
Avantageusement l'effet cytopathogène produit lors de l'infection de l'étape (f) sur le second hôte cellulaire est mesuré au moyen des techniques de cytotoxicité telles que la mesure de l'induction de syncytia, de l'induction de l'apoptose ou par cytométrie de flux.
L'invention concerne également une méthode d'analyse pour déterminer la susceptibilité d'un virus VIH à l'hydroxyurée, consistant à ajouter ou non de l'hydroxyurée, éventuellement à des concentrations
différentes, soit durant l'étape (e) de culture soit au deuxième hôte cellulaire, avant l'infection de celui-ci à l'étape (f) et à effectuer à l'étape (g) la comparaison de l'expression du gène marqueur avec et sans hydroxyurée.
De manière préférentielle, la durée de l'étape de culture (e) selon la méthode de l'invention est comprise entre 12 et 72 heures, tout préférentiellement elle est comprise entre 24 et 48 heures.
L'invention a également pour objet un kit pour la mise en oeuvre d'une méthode d'analyse d'une caractéristique phénotypique des virus VIH présents dans un échantillon biologique d'un patient caractérisé en ce qu'il comprend : i) une paire d'amorces encadrant une séquence d'acide nucléique du génome viral susceptible de porter au moins une mutation, ii) un vecteur comprenant les parties d'un génome d'un virus VIH nécessaires à la réplication virale à l'exception du segment amplifié avec les amorces définies en (i) et du gène codant pour la protéine d'enveloppe, iii) un second vecteur comprenant un gène codant pour une protéine d'enveloppe, iv) un premier hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH, v) un second hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH et comportant un gène marqueur activable uniquement à la suite de l'infection virale, vi) les produits et réactifs nécessaires pour réaliser l'amplification par PCR,
vii) les produits et réactifs permettant la détection du marqueur exprimé.
Avantageusement, le kit selon l'invention comprend : i) les paires d'amorces de séquences : - SEQ ID No : 1 et SEQ ID No : 2 - SEQ ID No : 3 et SEQ ID No : 4 ii) un vecteur retroviral délété de la région du cadre de lecture pol codant pour la protéase du VIH-1 s'étendant des résidus 1505 à 2565 inclus, délété de la région d'enveloppe et comportant un site unique de restriction MluI, iii) un virus pseudotypé avec un gène codant pour une protéine d'enveloppe. iv) un premier hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH, v) un second hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH et comportant un gène marqueur activable uniquement à la suite de l'infection virale, vi) les produits et réactifs nécessaires pour réaliser l'amplification par PCR, vii) les produits et réactifs permettant la détection du marqueur exprimé.
Avantageusement le kit selon l'invention comprend : i) les paires d'amorces de séquences : - SEQ ID No : 5 et SEQ ID No : 7 - SEQ ID No : 6 et SEQ ID No : 8 ii) un vecteur retroviral délété de la région du cadre de lecture pol codant pour la transcriptase
inverse du VIH-1, s'étendant des résidus 2618 à 2872 inclus, et comportant un site unique de restriction MluI, iii) un virus pseudotypé par un gène codant pour une protéine d'enveloppe, iv) un premier hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH, v) un second hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH et comportant un gène marqueur activable uniquement à la suite de l'infection virale, vi) les produits et réactifs nécessaires pour réaliser l'amplification par PCR, vii) les produits et réactifs permettant la détection du marqueur exprimé.
Avantageusement le kit selon l'invention comprend : i) les paires d'amorces de séquences : - SEQ ID No : 9 et SEQ ID No : 10 - SEQ ID No : 11 et SEQ ID No : 12 ii) un vecteur retroviral délété de toute la région du cadre de lecture pol codant pour l'intégrase du VIH-1 s'étendant des résidus 4228 à 5093 inclus et de la région codant pour l'enveloppe virale entre les positions 6343 et 7611 incluses, iii) un virus pseudotypé par un gène codant pour une protéine d'enveloppe, iv) un premier hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH, v) un second hôte cellulaire susceptible d'être infecté par un virus VIH et comportant un gène marqueur activable uniquement à la suite de l'infection virale,
vi) les produits et réactifs nécessaires pour réaliser l'amplification par PCR, vii) les produits et réactifs permettant la détection du marqueur exprimé.
cellules a été repris dans un tampon Tris-HCl lOmM pH 6,8 puis passé aux ultrasons. Avant utilisation, l'échantillon est complété avec 1 volume de tampon de lyse correspondant à l'expérience (1-D ou 2-D) 2X. Dans le cas d'une analyse 1-D, l'échantillon est porté 10 min à 100 C.
Echantillons de globules blancs humains Préparation des globules blancs humains : millilitres de sang sont collectés dans des tubes EDTA (tétra-acétate d'éthylène diamine). On procède à une centrifugation à 4500 rpm (rotation par minute) pendant 15 minutes. Le plasma est éliminé. Le tube est rempli au deux tiers d'une solution de lyse des globules rouges (solution de lyse : NH4C03 0,91 mM et NH4Cl 0,132 mM). On agite délicatement le tube et il est placé au bain-marie réfrigéré à 5 C. On procède à une centrifugation à 4000 rpm pendant 15 minutes et le surnageant est éliminé. Le culot de globules blancs est rincé deux fois avec la solution de lyse suivant la même méthodologie. Le culot est ensuite égoutté et, il est soit utilisé dans les 24 heures, soit congelé à -20 C pour son transport ou son utilisation ultérieure.
Le culot de globules blancs est repris dans un tampon Tris-HCl lOmM pH 6,8 puis passé aux ultrasons. Avant utilisation, l'échantillon est complété avec 1 volume de tampon de lyse 2X correspondant à l'expérience (1-D ou 2-D). Dans le cas d'une analyse 1-D, l'échantillon est porté 10 min à 100 C.
Techniques Electrophorétiques Electrophorèse 1-D Les expériences ont été réalisés à l'aide du système d'électrophorèse Protean IIXi Cell (Biorad) selon les instructions du fabricant.
Les électrophorèses 1-D ont été réalisées selon les protocoles décrits par Laemmli (7) pour la fabrication du gel et dans les conditions de migrations décrits par Schàgger et Von Jagow (8). Le gel de concentration contient 4% d'acrylamide et le gel de séparation utilisé contient 16,5% d'acrylamide. La migration se fait en tampon Tris-Tricine. Le programme de migration utilisé est le suivant : 1h à 30V constant puis 16h à 45mA .
On a chargé une quantité équivalente de protéine dans chaque puit (environ 100 g/puit).
Electrophorèse 2-D 1ère dimension La première dimension ou focalisation est réalisée à l'aide des bandelettes de gels pré-coulés nommées IPG-Strip couvrant un gradient de pH 3-10, selon les instructions du constructeur. Le matériel utilisé pour l'isoélectrofocalisation est le système IEF Protean Cell (Biorad) .
Une quantité de 250 g de protéines est complétée avec du tampon de réhydratation IX (7M urée, 2M thiourée, 4% triton X100; 0,5% CHAPS ; % (p/v) de Pharmalytes pH 3-10; lOmM DTT ; 0,01% orange G) pour avoir 400 l à déposer. Les 400 l d'échantillons sont déposés sur les bandelettes placées dans l'appareil. On laisse réhydrater passivement 1 h puis activement lOh à 50V/bandelette puis on lance le programme selon les instructions du fabricant. Après la focalisation, les bandelettes sont utilisées ou conservées à - 80 C.
2ème dimension Avant utilisation, les bandelettes sont équilibrées pendant 30 minutes dans un tampon pour 1-D (50 mM Tris pH 6,8 ; 10 % (v/v) de glycérol ; 2 % (v/v) de ssmercaptoéthanol ; 2 % (p/v) de SDS ; 0. 05% (p/v) bleu de bromophénol) puis déposées sur le haut d'un gel de séparation pour 1-D de 16,5% acrylamide. On recouvre la bandelette avec une solution d'agarose 1% (p/v). La suite est identique à une simple électrophorèse 1-D.
Transfert sur membrane et Immunoempreinte Transfert Le transfert a été effectué en utilisant le système de transfert semi-sec Pharmacia LKB multiphor en suivant les instructions du fabricant (Amersham-Pharmacia Biotech). Les protéines ont été transférées à 0,8
mA/cm2 sur une membrane de nitrocellulose Hybond ECL (PharmaciaAmersham).
Immunoempreinte La membrane est incubée 60 min. dans du tampon (Tris 15 mM pH 8,0 ; NaCl 150 mM ; % (v/v) de Tween-20) contenant 5% (p/v) de lait écrémé puis lavée avec le même tampon exempt de lait contenant 0,1% de Tween-20 au lieu de 0,5%.
La membrane est incubée, 2h à température ambiante ou 1 nuit à 4 C, avec l'anticorps APP-Cter-C17 dilué au 1/2000ème (v/v) final dans un tampon d'incubation (15 mM Tris pH 8,0,150 mM NaCl, 0,1% (v/v) de Tween-20 et 3 % (p/v) de lait écrémé).
La membrane est lavée 3 fois pendant 10 minutes dans le tampon d'incubation exempt de lait.
La membrane est ensuite incubée, lh à température ambiante, avec une immunoglobuline de chèvre anti-lapin couplée à la peroxydase de raifort, à une dilution finale de 1/4000ème (v/v) dans du tampon d'incubation exempt de lait.
La membrane est lavée 3 fois pendant 10 minutes dans du tampon d'incubation exempt de lait et les polypeptides immunoréactifs sont révélés à l'aide du kit de chimiluminescence ECL# (Pharmacia-Amersham Biotech) selon les instructions du fabricant.
L'inhibition de la prolifération des cellules T est mesurée à l'aide d'un test de prolifération cellulaire (Lachgar A., Bernard J., Bizzini B., Astgen A., Le Coq H., Fouchard M., Chams V., Feldman M., Richardson M., Rappaport J., Burny A. & J. F. Zagury . Repair of the in vitro HIV-1-induced immunosuppression and blockade of the generation of functional suppressive CD8 cells by anti-alpha interferon and anti-Tat antibodies. Biomed & Pharmacother. (1996) 50:13-18).
L'activation de la production d'IFNa, par les macrophages est mesurée selon le protocole décrit dans l'expérimentation A1. Les macrophages activés sont cultivés en présence de doses croissantes (0-1 g/ml) de la protéine recombinante TGF(3 active et d'une protéine contrôle, la protéine recombinante p24, dans du milieu sans sérum pendant 24 heures.
Résultats : Inhibition de la prolifération cellulaire par le TGFss : La prolifération cellulaire est exprimée en % de prolifération cellulaire ((cpm contrôle/cpm échantillon) x 100) à trois concentrations (30,10 et 3 ng/ml) de TGF(3 et de protéine p24. Le contrôle correspond à une concentration de protéine recombinante utilisée égale à 0. Les résultats sont présentés dans la figure 1 : Ces résultats montrent que la prolifération cellulaire est diminuée de manière dose dépendante par le TGFss actif, alors qu'elle ne l'est pas par la p24.
Activation par le TGFss de la surproduction d'IFNa, par les macrophages.
Le titre d'IFNa dans les surnageants correspond à l'inverse de la plus forte dilution des surnageants induisant 50 % de protection contre l'effet cytopathique du VSV. Les résultats sont présentés dans le tableau suivant :