INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La société Peugeot commercialise sous la marque déposée 406 un véhicule qui comprend des portières présentant un panneau extérieur en acier. Ces portières comportent classiquement une poignée extérieure et une poignée intérieure. Une ou les deux poignées sont typiquement reliées par un câble ou par une tringle à une serrure. Ce câble ou cette tringle s'étend parallèlement au panneau intérieur, entre la vitre et le panneau intérieur. Il est fréquent que des portières soient ouvertes par introduction d'un objet soit entre une vitre et un joint du panneau extérieur de la portière, soit au travers du panneau extérieur de la portière. L'objet introduit permet alors d'actionner le câble ou la tringle pour ouvrir la serrure.
Pour éviter qu'un individu actionne la serrure en introduisant un objet à l'intérieur de la portière, il est connu de rapporter un capot plastique clipsé sur le panneau extérieur comme pour les modèles commercialisés sous les marques déposées 406 ou 106 par la société Peugeot.
Le document US-A-6 158 789 décrit une portière munie d'une protection antivol. Cette portière comprend un écran d'étanchéité et un panneau intérieur entre lesquels passe un organe d'actionnement d'une serrure. L'organe d'actionnement passe à travers l'écran d'étanchéité et passe sous un manchon de protection fixé à l'écran d'étanchéité.
Le document US-A-4 628 300 décrit une pièce métallique en forme de L se fixant sur un curseur de vitre. Cette pièce métallique interdit l'accès d'un outil à l'espace entre la vitre et le panneau extérieur de la portière. La forme de la pièce métallique lui permet de ne pas fléchir lors d'une tentative d'introduction d'outil.
Ces portières présentent des inconvénients. En effet, ces portières nécessitent un grand nombre de pièces pour assurer la protection de la serrure. La fabrication de la portière est alors complexe et coûteuse.
Il existe donc un besoin pour une portière apportant une solution à ce problème.
L'invention propose ainsi une portière de véhicule, comprenant un panneau, une serrure, une poignée, un organe d'actionnement reliant la serrure et la poignée, et s'étendant le long du panneau et une saillie réalisée monobloc dans le panneau et surplombant l'organe d'actionnement.
Selon une variante, la saillie est sensiblement perpendiculaire au panneau.
Selon une autre variante, ledit panneau est moulé.
Selon encore une variante, la saillie est surmoulée sur le panneau.
Selon encore une autre variante, la saillie est réalisée par moulage d'un matériau synthétique.
On peut également prévoir une portière comprenant un autre panneau, un premier panneau étant un panneau extérieur et l'autre panneau étant un panneau intérieur.
Selon une variante, la saillie est réalisée monobloc dans le panneau extérieur. Selon une autre variante, le panneau extérieur présente une peau extérieure métallique.
Selon encore une variante, le panneau extérieur est renforcé sur le trajet de l'organe d'actionnement entre les panneaux.
L'invention concerne également un procédé de fabrication d'une portière comprenant une étape de montage d'une serrure et d'une poignée sur une structure de la portière ; de moulage d'un panneau de portière en matériau synthétique, de sorte que le panneau présente une saillie sensiblement perpendiculaire au plan moyen du panneau ; de montage d'un organe d'actionnement de sorte à relier la serrure et la poignée et de sorte à se placer sous la saillie.
EXEMPLE 7 : Synthèse des origines R6K gamma dépourvues de CpG Le fraLe fragment d'ADN Pacl contenant l'origine R6K gamma M2A (SEQ ID No. 12 en Figure 12) a été synthétisé par PCR à partir de l'assemblage des oligonucléotides indiqués en Figure 13.
L'assemblage du fragment R6K gamma M2A a été amplifié avec les amorces RK15 (GCAGGACTGAGGCTTAATTAAACCTTAAAAC ; SEQ ID No. 303) et RK16 (AAGTCTCCAGGTTAATTAAGATCAGCAGTTC ; SEQ ID No. 304), et les fragments après digestion par l'enzyme PacI ont été clonés dans un plasmide (pGTCMVneo) contenant le gène de résistance à la kanamycine et l'origine de réplication pUC bornée par 2 sites PacI. De nombreux transformants de la souche GT97 (qui exprime la protéine pi) ont été analysés et n'ont été retenus que des clones contenant un plasmide à forte copie et conservé après plusieurs sous-cultures en absence de kanamycine. Il a été trouvé après séquençage que le fragment ori de la plupart de ces plasmides pouvait posséder un nombre plus réduit (5-6) de séquences répétées au lieu des 7 de
l'origine naturelle du plasmide R6K. Une de ces nouvelles séquences de l'origine R6K gamma synthétique dépourvue de CpG est présentée en SEQ ID No. 13 en Figure 14.
Deux autres versions de l'origine R6K gamma dans lesquelles le G de chaque CpG présent dans les séquences répétées (élément de 22 bp répété plusieurs fois dans la région de fixation de la protéine pi) a été remplacé par un C pour donner l'origine (R6K gamma M2C) ou un T pour donner l'origine (R6K gamma M2T) ont été synthétisées d'une manière analogue. La fonctionnalité de ces nouvelles origines R6K gamma dans lesquelles le G des CpG des séquences 1 > répétées est remplacé par un C ou par un T, ajouté à l'exemple de l'origine de la Figure 13 où le 1 G est remplacé par un A démontre que les CpGs de ces séquences répétées n'ont pas de rôle dans la fonctionnalité de l'origine.
ZD EXEMPLE 8 : Assemblage de vecteurs plasmidiques entièrement dépourvus de CpG exprimant un gène de résistance chez E. coli En premier lieu une cassette PacI-PacI contenant le promoteur bactérien EM2K, le gène de résistance à la Zéocine Sh ACpG suivi d'un terminateur bactérien sans CpG a été réalisé. Pour cela, des oligonucléotides"linker"contenant la séquence du tenninateur tl de la région intergénique rpsO-pnp d'E. coli ont été hybridés et clonés entre les sites Nhel et Pacl du vecteur pMODl EM2K Sh ACpG : Oligonucléotides"linker" : rpsO-1 (5'- > 3') : CTAGCTGAGTTTCAGAAAAGGGGGCCTGAGTGGCCCCTTTTTTCAACTTAAT SEQ ID No. 305 raps0-2 (5'- > 3') : TAAGTTGAAAAAAGGGGCCACTCAGGCCCCCTTTTCTGAAACTCAG SEQ ID No. 306 Le vecteur recombinant obtenu (pMOD1 EM2K Sh ACpG Term) a été vérifié par séquençage au niveau de la séquence terminatrice qui ne contient pas naturellement de CpG. La cassette EM2KSh ACpG-Term contenue dans ce vecteur a été ensuite amplifiée par PCR pour la borner des deux côtés par des sites Pacl à l'aide des amorces suivantes : PACI-UP (5'- > 3') : ATCGTTAATTAAAACAGTAGTTGACAATTAAACATTGGC SEQ ID No. 307 PACI-DOWN (5'- > 3') : ATCGTTAATTAAGTTGAAAAAAGGGGCC SEQ ID No. 308 Ce fragment amplifié a été ensuite purifié et coupé par PacI puis assemblé au fragment PacI contenant l'origine R6K gamma ACpG décrite dans l'exemple 7. Après transformation de ce
mélange de ligation dans la souche GT97 (qui exprime la protéine pi) et sélection sur milieu Zl > FastMediaZeo, l'analyse des clones recombinants obtenus a révélé deux orientations possibles du fragment PacI-PacI contenant l'origine R6K gamma ACpG. L'orientation retenue dans le pSh ACpG est représentée en Figure 16.
EXEMPLE 9 : Assemblage d'un vecteur plasmidique entièrement dépourvu de CpG exprimant le gène de résistance à la zéocine et le gène de la ss-galactosidase chez E. coli.
Le vecteur pSh ACpG décrit dans l'exemple 8 (Figure 16) a été utilisé pour insérer le gène synthétique LacZ dépourvu de CpG entre les sites EcoRI et Nhel. Pour cela des oligonucléotides "linker", compatibles EcoRI et Ncol, contenant une séquence consensus de site de fixation des ribosomes d'E. coli ont été hybridés et clonés avec le fragment LacZilCpG NcoI-NheI du pMODl LacZACpG entre les sites EcoRI et NheI du vecteur pMOD1 EM2K ShACpG.
Oligonucléotides"linker"utilisés : rbs-l (5'- > 3') : AATTCTGAGGAGAAGCT SEQ ID No. 309 rbs-2 (5'- > 3') : CATGAGCTTCTCCTCAG SEQ ID No. 310 La transformation de ce mélange de ligation dans la souche GT97 (qui exprime la protéine pi) et la sélection sur milieu FastMediaZeo Xgal ont permis l'obtention des clones recombinants contenant le vecteur pSh-LacZACpG (Figures 15 et 17). Ce vecteur co-exprime, sous la dépendance du promoteur bactérien EM2K, en système d'opéron artificiel les gènes ShACpG et LacZACpG.
EXEMPLE 10 : Obtention d'une souche d'E. coli exprimant la protéine mutante pil l 6 et portant une délétion dans le gène dcm.
Le gène pir codant pour la protéine pi indispensable à l'initiation de la réplication de l'origine lt > R6K gamma ainsi que que le gène muté pirl l 6 conduisant à une augmentation du nombre de copies des plasmides R6K gamma ont été introduits sous une forme fonctionnelle dans diverses souches d'E. coli K12 par différents groupes. Des souches de ce type peuvent être obtenues auprès du E. coli Genetic Stock Center (http : //cgsc. biology. yale. edu), et sont aussi commercialement disponibles auprès d'entreprises spécialisées dans la fourniture de matériel biologique pour la
recherche. C'est le cas par exemple des souches pirl (perl 16) et pir2 (pir sauvage) proposées par la société Invitrogen dont les produits peuvent être achetés dans tous les pays européens. La souche GT 97 de lignée K12, de génotype Jlac769 hsdR514 endA7 recAl codBA uidA (flL. pir 116 (disponible auprès de InvivoGen), a été choisie pour sa rusticité, la constance des préparations d'ADN des plasmides R6K gamma et ses niveaux élevés de compétence parmi plusieurs souches K12 pif de génotype distinctif pour quelques gènes. L'introduction d'une délétion dans le gène dcm de la souche GT 97 a été réalisée de la façon suivante : Deux régions d'ADN de 1, 8 kb et 1, 5 kb, bordant respectivement le codon d'initiation ATG (fragment A) et le codon stop TGA (fragment B) du gène dcm ont été amplifiés par PCR. Le fragment A a été amplifié avec le couple d'amorces OLdcmAF 1 (TTTTGCGGCCGCTTGCTGCGCCAGCAACTAATAACG ; SEQ ID No. 311) et OLdcmAR (CCTTGGATCCTGGTAAACACGCACTGTCCGCCAATCGATTC ; SEQ ID No. 312) et le fragment B a été amplifié avec le couple d'amorces OLdcmBF (TTTTGGATCCTCAGCAAGAGGCACAACATG ; SEQ ID No. 313) et OLdcmBR (TTTTCTCGAGAAACGGCAGCTCTGATACTTGCTTC ; SEQ ID No. 314). Les sites de restriction pour les enzymes Not ! (GCGGCCGC) BamHI (GGATCC) et XhoI (CTCGAG) ont été introduits dans les amorces afin d'associer le fragment A et le fragment B entre eux en formant un élément génétique borné par les sites Not ! et Xhol. La région du gène dcm est ainsi reconstituée en créant une délétion qui s'étend de la position +3 après l'ATG à la position-14 avant le TGA. Cet élément génétique a été cloné dans pKO3 (Link A. J., Phillips D. et Church G.
M. (1997) J Bacteriol 179,6228-37), vecteur développé pour le remplacement d'allèle chez Escherichia coli à réplication thermosensible entre les sites Not ! et SalI pour donner le plasmide désigné pK03Adcm. Ce plasmide a été co-transformé dans la souche GT97 avec un plasmide qui exprime la protéine RecA (pFL352). Un transformant contenant les deux plasmides a été cultivé à une température non permissive (42 C) en présence de chloramphénicol pour sélectionner des clones qui ont intégré par recombinaison homologue le pK. 03Adcm dans le chromosome bactérien. Un sous clone résistant au chloramphénicol à 42 C a ensuite été cultivé à 30 C sur un milieu contenant une forte concentration de saccharose (5%) pour contre-sélectionner les souches qui après un deuxième événement de recombinaison homologue ont échangé la région chromosomique du gène dcm avec le fragment homologue cloné dans le plasmide. La délétion introduite dans le clone retenu (GT106) a été vérifié par PCR avec le couple d'amorces OldcmAF
et OldcmBR générant un fragment d'une taille inférieur à celle obtenue avec la souche parentale et par une PCR avec l'amorce OldcmBR et une amorce positionnée à l'extérieur de la région échangée (OldcmCF TTTTGCGGCCGCGTTGCGGTATTACCCTTGTC ; SEQ ID No. 315). z : l Le génotype dcm- de la souche GT106 a été confirmé en introduisant dans celle-ci et dans GT106 un plasmide contenant un site de restriction de l'enzyme SexAI sujet à la méthylation dcm. Le plasmide purifié à partir de GT106 est clivé par SexAI alors qu'il est résistant à l'enzyme quand il est purifié à partir de GT97.
Cette dernière souche désignée GT106 présente les mêmes caractéristiques de croissance de la souche parentale GT97 et comme attendue aucune modification négative de la quantité des ADN D des plasmides R6K gamma n'a été observée, seule la qualité des ADN estimée par l'absence de méthylation des cytosines des sites dcm a été améliorée. La souche GT106 sera disponible auprès de la société Invivogen à compter du jour du dépôt de cette demande de brevet.
CIRCUIT D'AIDE À LA COMMUTATION D'UN CONVERTISSEUR À DÉCOUPAGE La présente invention concerne le domaine des conver- tisseurs de puissance dits à découpage. De tels convertisseurs utilisent un élément inductif, associé à un interrupteur de puissance et à une diode de roue libre, pour effectuer une conversion d'énergie et une correction du facteur de puissance, généralement à partir d'une tension d'entrée continue. On connaît des convertisseurs abaisseurs de tension (BUCK), élévateurs de tension (BOOST) et mixtes (abaisseurs-élévateurs).
Dans la composition prête à l'emploi avec agent oxydant, l'agent oxydant est choisi de préférence parmi le peroxyde d'hydrogène, le peroxyde d'urée, les bromates ou ferricyanures de métaux alcalins, les persels tels que les perborates et les persulfates.
L'utilisation du peroxyde d'hydrogène est particulièrement préférée. Cet agent oxydant est avantageusement constitué par une solution d'eau oxygénée dont le titre peut varier, plus particulièrement, d'environ 1 à 40 volumes, et encore plus préférentiellement d'environ 5 à 40.
Le pH de la composition composition sans oxydant ou avec oxydant], est généralement compris entre les valeurs 2 et 12. Il est de préférence compris entre 3 et 11, et plus particulièrement compris entre 7 et 10. IL peut être ajusté à la valeur désirée au moyen d'agents acidifiants ou mole/l), ou de tampons bien connus de l'état de la technique en teinture des fibres kératiniques.
Parmi les agents (H3BO3 on peut citer, à titre d'exemple, l'ammoniaque, les carbonates alcalins, les alcanolamines telles que les mono-, di-et triéthanolamines ainsi que leurs dérivés, les hydroxyalkylamines et les ethylènediamines oxyéthylénées et/ou oxypropylénées, les hydroxydes de sodium ou de potassium et les composés de formule (XIX) suivante : dans laquelle R est un reste propylène éventuellement substitué par un groupement hydroxyle ou un radical alkyle en Ci-C4 ; R38, R39, R40 et R41, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle en Ci-C4 ou mole/l, KC1 en Ci-C4.
Parmi les tampons, on peut citer ceux vendus par la société MERCK sous la marque TITRISOL, tels que que le tampon phosphate (KHPO à 0, 026 mote/ !, NaHPO à 0,041 alcalinisants et le tampon borate alcalinisants à 0,05 hydroxyalkyle à 0,05 mo) e/), NaOH à 0,022 mole/1).
Le procédé de teinture selon l'invention est conduit à température ambiante, et consiste à appliquer la composition de teinture selon l'invention, sans oxydant, ou avec oxydant (réalisée extemporanément au moment de l'emploi), sur les fibres kératiniques sèches ou humides, et à la laisser agir pendant un temps de pause variant de 5 secondes à 60
minutes environ, plus préférentiellement de 10 secondes à 5 minutes environ, et plus particulièrement de 30 secondes à 2 minutes environ, à rincer les fibres, puis éventuellement à les laver au shampooing, puis à les rincer à nouveau, et à les sécher.
On rappelle que le moyen de contrôle de flux de données 105 comprend notamment : le module de contrôle 107 ; l'unité de commutation 108 ; l'unité de mémorisation à double port ou DPRAM 106.
Le signal de contrôle Ctrl5, illustré en regard de la figure 1 se décompose en trois signaux sur la figure 2 : un signal de contrôle 51 ; un signal de contrôle 43 TxFIFOfull[O :2] ; et un signal de contrôle 42 WriteTXFIFO[O :2].
Les signaux de contrôle 51, TxFIFOfull[0:2] 42 et WriteTXFIFO[0 :2J 43 permettent au moyen de contrôle 120 de la FIFO de gérer le transfert des paquets de données entre l'unité de commutation 108 et l'interface 104 de liaison série, à travers les bus de données 44 et 41.
Le signal Ctrl4, illustré en regard de la figure 1, entre l'unité de commutation 108 et le module de contrôle 107, se décompose en au moins quatre signaux sur la figure 2 : deux signaux de contrôle 53 et 54 ; un signal de contrôle IntRxTxEOP[1 :0] 45a ; un signal de données IntRx~TX[31 :0] 45b.
Le signal 45b est un bus de données reliant les éléments 106,107 et 108. Le module de contrôle lit les en-têtes paquets à partir de ce bus 45b.
Les signaux de contrôle 53,54 et 45a permettent la gestion de transfert de données IntRx~TX[31 :0] 45b entre la mémoire double port 106 et l'unité de commutation 108.
Le bus de données 45b est représenté sur la figure 1 par le bus de données 113.
La figure 3 représente un schéma électronique du module de commutation 108 de la figure 1.
Les moyens chargés de la réception et de l'émission des données en provenance de ou vers l'interface 104 comprennent notamment : - un moyen 18 de modification d'en-tête ; - un moyen 19 d'analyse d'en-tête en réception ; - deux mémoires volatiles 15 et 16 de réception agencées en FIFO ; et - un moyen 17 de contrôle des FIFOs de réception 15 et 16.
Les moyens chargés de la réception des données en provenance de la mémoire DPRAM 106 comprennent notamment : - quatre FIFOs d'entrée 9, 10, 11et 12 ; - un moyen 130 de contrôle des FIFOs d'entrée ; - un multiplexeur 50 ; - un moyen 13 d'analyse d'en-tête de transmission.
Les moyens chargés de l'émission des données vers la mémoire DPRAM 106 comprennent notamment : - trois mémoires d'assemblage 22, 23 ou 24 ; - trois FIFOs de sortie 25, 26 et 27 ; - un moyen de contrôle 84 des FIFOs de sortie ; et - un multiplexeur 28.
Le gène de l'EPO humain sauvage est représenté par la séquence nucléotidique ID SEQ NO1 qui comporte 3398 nucléotides.
La séquence nucléotidique codante de la protéine immature commence au nucléotide 615 (codon start) et finit au nucléotide 2763 (codon stop), dans la séquence nucléotidique du gène EPO humain sauvage de référence.
Ce gène comporte 5 exons qui sont positionnés de la façon suivante sur la séquence nucléotidique ID SEQ NO1 : Exon 1 : du nucléotide 397 au nucléotide 627 (comprend le codon d'initiation au nucléotide 615).
Exon 2 : du nucléotide 1194 au nucléotide 1339.
Exon 3 : du nucléotide 1596 au nucléotide 1682. Exon 4 : du nucléotide 2294 au nucléotide 2473.
Exon 5 : du nucléotide 2608 au nucléotide 3327 (comprend le codon stop se terminant au nucléotide 2763).
La demanderesse a découvert 3 polymorphismes de type SNP fonctionnel dans la séquence nucléotidique ID SEQ NO1 du gène sauvage de référence de l'EPO.
Ces 3 polymorphismes de type SNP fonctionnels sont présentés ci-dessous : 1) Le nucléotide guanine (g) en position 1644 de la séquence nucléotidique ID SEQ NO1 du gène sauvage de référence EPO est muté en adénine (a).
Ce polymorphisme de type SNP est appelé ci-après g1644a.
2) Le nucléotide guanine (g) en position 2357 de la séquence nucléotidique ID SEQ N 1 du gène sauvage de référence EPO est muté en en adénine (a).
Ce polymorphisme de type SNP est appelé ci-après g2357a.
3) Le nucléotide cytosine (c) en position 2621 de la séquence nucléotidique ID SEQ N 1 du gène sauvage de référence EPO est muté en en guanine (g).
Ce polymorphisme de type SNP est appelé ci-après c2621g.
Ces polymorphismes de type SNP fonctionnel ont été identifiés par la demanderesse au moyen du procédé de détermination décrit dans sa demande de brevet FR 00 22894, intitulée"Procédé de détermination d'un ou plusieurs polymorphisme (s) fonctionnel (s) dans la séquence nucléotidique d'un gène"candidat"fonctionnel présélectionné et ses applications"et déposée le 6 décembre 2000, citée ici à titre de référence.
Le procédé décrit dans cette demande de brevet permet l'identification d'un (ou plusieurs) polymorphisme (s) de type SNP fonctionnel (s) préexistant (s) dans au moins un individu constitutif d'une population aléatoire d'individus.
Dans le cadre de la présente invention, un fragment de la
L'invention concerne plus particulièrement un circuit d'aide à la commutation de l'interrupteur de puissance d'un convertisseur à découpage.
La figure 1 représente le schéma simplifié d'un convertisseur élévateur 1 classique. Un tel convertisseur comporte une inductance LO en série avec une diode de roue libre DL entre deux bornes positives d'entrée 2 et de sortie 3 du convertisseur, la cathode de la diode DL étant reliée à la borne 3. Un interrupteur de puissance K relie le point milieu 4 de cette association en série à une borne 5 d'application d'un potentiel négatif ou de référence (généralement, la masse) commun à l'entrée et à la sortie du convertisseur. Une source 6 de tension continue d'alimentation fournit une tension VE entre les bornes 2 et 5. Côté sortie, un condensateur de stockage CO relie généralement les
bornes 3 et 5 et délivre une tension Vs à une charge Q. La charge Q a été représentée en figure 1 par un pointillé intégrant le condensateur CO qui peut, ou non, faire partie de la charge.
L'interrupteur K est commandé par un circuit 7 (CARL), par exemple, en modulation de largeur d'impulsions (PWM).
Le fonctionnement parfaitement connu d'un convertisseur élévateur est brièvement rappelé ci-après. Quand l'interrupteur K est fermé, de l'énergie est emmagasinée dans l'inductance LO et la charge Q est alimentée par l'énergie stockée dans le condensateur CO. Quand l'interrupteur K est ouvert, l'inductance LO restitue 11 énergie emmagasinée au condensateur CO par l'intermédiaire de la diode de roue libre DL.
La figure 2 représente le schéma électrique simplifié d'un convertisseur abaisseur 1'. On y retrouve les mêmes constituants qu'en figure 1. Toutefois, c'est ici l'interrupteur K qui est connecté en série avec l'inductance LO entre les bornes positives d'entrée 2 et de sortie 3. La diode de roue libre DL relie, à la masse, le point milieu 4'entre l'interrupteur K et l'inductance LO, sa cathode étant reliée au point 4'. L'interrupteur K peut également être prévu entre la borne négative de la source 6 et l'anode de la diode DL.
Le principe de fonctionnement est le même. De l'énergie est emmagasinée dans l'inductance LO pendant les périodes de fermeture de l'interrupteur K. Pendant les périodes où l'interrupteur K est ouvert, cette énergie est restituée au condensateur CO, la diode de roue libre DL servant à reboucler le circuit.
Un problème auquel on est confronté avec des convertisseurs à découpage, également appelés à commutation dure, qui se caractérisent par le fait que le courant et la tension se croi- sent à chaque commutation, est lié à la fermeture de l'interrupteur.
En effet, à chaque fermeture de l'interrupteur K, la diode de roue libre DL doit se bloquer. Or, lors du blocage d'une diode, en particulier à jonction PN, on se trouve confronté à un phénomène de charges recouvrées.
Ce phénomène est illustré par les figures 3A à 3C qui représentent, en relation avec le circuit de la figure 1, un exemple d'allure du courant IDL dans la diode de roue libre, de la tension de sortie Es, ei du courant IT dans l'interrupteur K.
On suppose initialement l'interrupteur K ouvert. Par conséquent, un courant l circule dans la diode DL. Ce courant correspond à l'énergie restituée par l'inductance LO. Côté tension de sortie, celle-ci est à un niveau VO. Côté interrupteur K, le courant IT qui le traverse est nul.
On suppose qu'à un instant tl, le circuit de commande 7 provoque la fermeture de l'interrupteur K. Pendant la commutation, le courant IL dans l'inductance, qui correspond à la somme des courants IDL et IT est une constante. Par conséquent, le courant qui, pendant la commutation, croît dans l'interrupteur se traduit par une décroissance avec pente inverse du courant dans la diode DL.