INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
(9) Les cyclopolymères d'alkyl diallyl amine ou de dialkyl diallyl ammonium tels que les homopolymères ou copolymères comportant comme constituant principal de la chaîne des motifs répondant aux formules (V) ou (vil) : formules dans lesquelles k et t sont égaux à 0 ou 1, la somme k + t étant égale à 1 ; Rg désigne un atome d'hydrogène ou un radical méthyle ; R7 et R8, indépendamment l'un de l'autre, désignent un groupement alkyle ayant de 1 à 22 atomes de carbone, un groupement hydroxyalkyl dans lequel le groupement alkyle a de préférence 1 à 5 atomes de carbone, un groupement amidoalkyle inférieur (Cl-c4), ou R7 et R8 peuvent désigner conjointement avec l'atome d'azote auquel ils sont rattachés, des groupement hétérocycliques, tels que pipéridinyle ou morpholinyl ; R7 et R8 indépendamment l'un de l'autre désignent de préférence un groupement alkyle ayant de 1 à 4 atomes de
En référence aux figures annexées, et plus particulièrement à la figure 1, le dispositif selon l'invention est monté sur un support (1) sensiblement rectangulaire et découpé en V à l'une de ses extrémités (1').
Un réceptacle (2) pour au moins un rouleau (3) de bande adhésive (4) est monté à l'autre extrémité du support (1). Le réceptacle (2) comporte des montants latéraux (2') pour assurer le maintien en position du rouleau (3) de bande adhésive qui engagé sur une bobine (5) autour d'un axe transversal (6) et pourra être monté sur une base (7) en forme de grille.
Dans la partie médiane du support (1), on prévoit un chevalet (8) comportant deux montants latéraux (8', 8") soudées par la base audit support, et reliés dans leurs parties supérieures respectives par un fer plat (9).
Le chevalet (8) porte le rouleau de bande pendant l'utilisation. Un mécanisme de verrouillage est prévu pour empêcher la bobine porterouleau de sortir de son logement.
Le fer plat (9) est prolongé par une pièce (9') s'étendant perpendiculairement dans le sens de déroulement de la bande.
Une pièce en U (10) est montée à l'avant du chevalet (8), dans le plan parallèle à celui du support (1).
La pièce (10) se prolonge dans sa partie inférieure au niveau des angles formés par sa base et ses bras latéraux, par deux plaquettes parallèles (10', 10") reliées entre elles par un axe (12) recevant un petit rouleau (13) de décollement de l'adhésif.
La distance entre les deux plaquettes (10', 10") d'une part, et l'espace entre l'axe (12) et la base (11) de la pièce en U (10) sont définis de manière à autoriser le passage sans forcement de la bande déroulée.
Un gabarit (14) se présentant sous la forme d'une lame métallique recourbée est montée à l'avant du dispositif.
La largeur du gabarit (14) est inférieure à celle de la bande à dérouler.
Le gabarit (14) est fixé en deux points (A, B) à l'ensemble (8,10) formé par le chevalet et la pièce en U.
Un premier point de soudure (A) est prévu dans la partie supérieure du gabarit (14), en contact avec la partie inférieure de l'extrémité libre du fer plat (9').
Un second point de soudure (B) est prévu dans la partie du gabarit (14) en contact avec la base (11) de la pièce en U (10).
Le gabarit (14) est conformé de manière à conserver une certain jeu. Ainsi, lorsqu'aucune pression n'est exercée sur gabarit (14), son extrémité libre n'est pas en contact avec le support (1).
Pour réaliser un joint tubulaire, on déroule une certaine longueur de bande adhésive (4), le rouleau (3) ayant au préalable été mis en place dans le réceptacle (2) et sur le chevalet (8).
On introduit ensuite l'extrémité de la bande (4) entre les deux montants (8', 8") du chevalet (8), puis au travers de l'espace ménagé entre l'axe (12) et la base (11) de la pièce en U.
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Le tableau 13 ci-après représente schématiquement les différentes constructions réalisées.
construction promoteur taille primer 5'site primer 3' promoteur L246a DD1-a 3,0 kb 203 (3, 0) pst Gus Xbal L246b DD1-a 1,0 kb 203 (1,0 HindIII Gus Xbal L247a DD1-b 2,5 kb 204 2, 5 Pst ! Gus Xbal L247b DD1-b 1,6 kb 204 (1, 6) Pst) Gus Xba !
amorce 203 (3, 0) ATGCCTGCAGCTACCGCATCGCATTACTGGCTCTG (SEQ DNA13) amorce 203 (1, 0) ATGCAAGCTTTGCATTCACACCCCTAAAG (SEQ ID NO14) amorce 204 (2, 5) ATGCCTGCAGGGGACCTGAGTGAGTTGA (SEQ DNA15) amorce 204 (1, 6) ATGCCTGCAGGAGATGCCAAGAATAAAGGGTAAAG (SEQ DNA16) amorce Gus ATGCTCTAGATTTGTAAGGATGGTTATATTTCTCT (SEQ ID NO17) Adaptateurs utilisés : adaptateur JFB34 TCGACTGCAGCCCA GACGTCGGGTTCGA adaptateur JFB56 CTAGACCCGAATTCGC TGGGCTTAAGCGCCGG Le vecteur L246a a été construit après introduction d'une séquence d'environ 3 kb du promoteur du gène DD1-a après amplification d'un fragment génomique de ce gène à l'aide du couple d'amorces de séquences SEQ ID ? 13 (amorce 203 (3, 0)) et SEQ ID D ? 17 (amorce GUS) puis digestion par les endonucléases de restriction Pstl et Xbal. (Figure 8).
Le vecteur L246b a été obtenu par introduction dans le vecteur L127a5 d'un acide nucléique constituant le produit d'amplification d'un fragment génomique du gène DD1-a à l'aide du couple d'amorces de séquences SEQ ID D N 14 (amorce 203 (1, 0)) et SEQ ID BN 17 (amorce GUS), avant digestion par les endonucléases de restriction HindIII et Xbal. (Figure 9).
Le vecteur L247a a été obtenu par l'introduction dans le vecteur L127a5 d'un acide nucléique constituant le produit d'amplification d'un
fragment génomique du gène DD1-b à l'aide du couple d'amorces de séquences SEQ ID ? 15 (amorce 204 (2, 5)) et SEQ ID ? 17 (amorce GUS) avant digestion par les endonucléases de restriction Pstl et Xbal. (Figure 10).
Le vecteur L247b a été réalisé par l'introduction dans le vecteur L127a5 d'un fragment d'amplification génomique obtenu à l'aide du couple d'amorces SEQ ID ? 16 (amorce 204 (1, 6)) et SEQ ID ? 17 (amorce GUS), avant digestion par les endonucléases de restriction Pst ! et Xbal. (Figure 11).
L'ADN génomique du gène DD1-a de départ utilisé pour amplifier les séquences d'intérêt destinées à être introduites dans les vecteurs L246a et L246b est contenu dans le plasmide L203b23, qui comprend un insert d'ADN génomique de 6 kb cloné avec les enzymes Sali et Xbal dans le vecteur pBCSK+ commercialisé par la Société Stratagene.
Le matériel de départ pour l'amplification des inserts d'ADN d'intérêt du gène DD1-b est le plasmide L204b17 qui comprend 12 kb d'un insert d'ADN génomique cloné avec l'enzyme Xbal dans le vecteur pBCSK+ commercialisé par la Société Stratagene.
Les fragments d'ADN génomique proviennent de clones lambda EMBL3 SP6/T7 d'une banque génomique du génotype HD5xHD7 obtenue après digestion partielle avec l'enzyme Sau3A décrite à l'exemple 1, au paragraphe A. 8 de la section Matériels et Méthodes .
Les références pour le plasmide L127a5 sont les suivantes : - plasmide pBSSK+. commercialisé par la Société Stratagene ; - plasmide pBI101 décrit par JEFFERSON et al., 1987 EXEMPLE 3 : Obtention de plantes transgéniques transformées par un transgène comprenant un polynucléotide d'intérêt placé sous le contrôle d'une séquence régulatrice selon l'invention.
La transformation d'une plante dans le but d'obtenir une expression stable du polynucléotide d'intérêt dans la plante transformée est nécessaire pour assurer une modification durable du grain de maïs. Des essais sont réalisés avec une construction de vecteurs L246a, L246b, L247a et L247b décrits à l'exemple 2.
4-1 CANON A PARTICULES La méthode utilisée repose sur l'utilisation d'un canon à particules identique à celui décrit par FINER (1992).
Ce type de cellules compose le cal embryogène (dit de type Il) de maïs. Ces cals sont obtenus à partir d'embryons immatures de génotype Hill selon la méthode et sur les milieux décrits par ARMSTRONG (1994). Des fragments de tels cals d'une surface de 10 à 20 mm2 ont été disposés, 4 h avant bombardement, à raison de 16 fragments par boîte au centre d'une boîte de Pétri contenant un milieu de culture identique au milieu d'initiation, additionné de 0,2M de mannitol + 0,2 M de sorbitol. Les plasmides décrits dans les exemples précédents et portant les gènes à introduire, sont purifiés sur colonne QiagenRen suivant les instructions du fabricant. Ils sont ensuite précipités sur des particules de tungstène (M10) en suivant le protocole décrit par KLEIN (1987). Les particules ainsi enrobées sont projetées vers les cellules cibles à l'aide du canon et selon le protocole décrit par J. FINER (1992). Les boîtes de cals ainsi bombardées sont ensuite scellées à l'aide de Scellofra puis cultivées à l'obscurité à 27 C. Le premier repiquage a lieu 24 h après, puis tous les quinze jours pendant 3 mois sur milieu identique au milieu d'initiation additionné d'un agent sélectif. On obtient après 3 mois ou parfois plus tôt, des cals dont la croissance n'est pas inhibée par l'agent sélectif, habituellement et majoritairement composés de cellules résultant de la division d'une cellule ayant intégré dans son patrimoine génétique une ou
L'invention a donc encore pour objet un polypeptide comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID ? 9 ainsi qu'un polypeptide possédant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID ? 9 ou un fragment ou un variant de celui-ci.
Pour le polypeptide codé par le gène DD1-b, deux polypeptides variants possédant entre eux une identité de 98% en acides aminés ont été identifiés par le demandeur.
En tenant compte des substitutions d'acides aminés permettant de différencier ces deux variants polypeptides codés par le gène DD1-b, il a été possible de définir une famille de polypeptides fortement homologues comprenant des résidus d'acides aminés variants, qui est défini comme le polypeptide de séquence SEQ ID ? 10 du listage de séquences.
Le premier polypeptide variant codé par le gène DD1-b est le polypeptide de séquence SEQ ID ? 11 du listage de séquences.
Le second polypeptide variant codé par le gène DD1-b selon l'invention est le polypeptide de séquence SEQ ID ? 12 du listage de séquences.
Le polypeptide de séquence SEQ ID N 12 a un poids moléculaire apparent de 31357 daltons. Le polypeptide de séquence SEQ 1 D NO 12 possède 18 résidus d'acides aminés fortement basiques (K, R), 27 résidus d'acides aminés fortement acides (DE), 91 acides aminés hydrophobes A, I, L, F, W, V) et 91 acides aminés polaires (N, C, Q, S, T, Y).
Le polypeptide de séquence SEQ ID N 12 a un point isoélectrique calculé de 5,44 et une charge calculée à pH 7,0 de-7, 74.
L'invention est donc également relative à un polypeptide comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID ? 10 ainsi qu'à un
polypeptide possédant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID N 10 ou un fragment ou un variant de celui-ci.
L'invention a encore pour objet un polypeptide comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID ? 11 ainsi qu'un polypeptide possédant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID NO11, ou un fragment ou un variant de celui-ci.
Un autre objet de l'invention consiste en un polypeptide comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID ? 12 ainsi qu'un polypeptide possédant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID NO12, ou un fragment ou un variant de celui-ci.
Un fragment d'un polypeptide selon l'invention, comprendra au moins 10,15, 20,25, 30,40, 50,60, 70,80, 90,100, 150,200 ou 250 acides aminés consécutifs d'un polypeptide de séquences SEQ ID N 9 à 12.
Fait également partie de l'invention un polypeptide comprenant 10, 15,20, 25,30, 40,50, 60,70, 80,90, 100,150, 200 ou 250 acides aminés consécutifs d'un polypeptide de séquences SEQ ID N 9 à 12.
L'invention est également relative à un polypeptide comprenant une séquence en acides aminés ayant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence d'un polypeptide de séquences SEQ ID ? 9 à 12.
Avantageusement, fait aussi partie de l'invention un polypeptide ayant au moins 85%, 90%, 95%, 98% ou 99% d'identité en acides aminés avec la séquence d'un polypeptide de séquences SEQ D ? 9 à 12, ou un fragment peptidique de ce dernier.
Quand on utilise un composé du fer, les mêmes réducteurs conviennent.
Dans le cas du palladium, les réducteurs peuvent être, en outre, des éléments du milieu réactionnel (phosphine, solvant, oléfine).
Les composés organiques comportant au moins une double liaison éthylénique plus particulièrement mis en oeuvre dans le présent procédé sont les dioléfines comme le butadiène, l'isoprène,l'hexadiène-1, 5, le cyclooctadiène-1, 5, les nitriles aliphatiques à insaturation éthylénique, particulièrement les pentène-nitriles linéaires comme le pentène-3-nitrile, le pentène-4-nitrile, les monooléfines comme le styrène, le méthylstyrène, le vinyl-naphtalène, le cyclohexène, le méthyl-cyclohexène ainsi que les mélanges de plusieurs de ces composés.
Les pentène-nitriles notamment peuvent contenir des quantités, généralement minoritaires, d'autres composés, comme le méthyl-2-butène-3-nitrile, le méthyl-2-butène- 2-nitrile, le pentène-2-nitrile, le valéronitrile, l'adiponitrile, le méthyl-2-gl utaro nitrile, l'éthyl- 2-succinonitrile ou le butadiène, provenant par exemple de la réaction antérieure d'hydrocyanation du butadiène en nitriles insaturés.
En effet, lors de l'hydrocyanation du butadiène, il se forme avec les pentène- nitriles linéaires des quantités non négligeables de méthyl-2-butène-3-nitrile et de méthyl- 2-butène-2-nitrile.
Le système catalytique utilisé pour l'hydrocyanation selon le procédé de l'invention peut être préparé avant son introduction dans la zone de réaction, par exemple par addition à la phosphine de formule (1) ou (tut) seule ou dissoute dans un solvant, la quantité appropriée de composé du métal de transition choisi et éventuellement du réducteur. Il est également possible de préparer le système catalytique"in situ"par simple addition de la phosphine et du composé du métal de transition dans le milieu réactionnel d'hydrocyanation avant ou après l'addition du composé à hydrocyaner.
La quantité de composé du nickel ou d'un autre métal de transition utilisée est choisie pour obtenir une concentration en mole de métal de transition par mole de composés organiques à hydrocyaner ou isomériser comprise entre 10-4 et 1, et de préférence entre 0, 005 et 0, 5 mole de nickel ou de l'autre métal de transition mis en oeuvre.
La quantité de phosphine de formule (1) ou (II) utilisée pour former le catalyseur est choisie de telle sorte que le nombre de moles de ce composé rapporté à 1 mole de métal de transition soit de 0, 5 à 500 et de préférence de 2 à 100.
Bien que la réaction soit conduite généralement sans solvant, il peut être avantageux de rajouter un solvant organique inerte. Le solvant peut être un solvant du catalyseur qui est miscible à la phase comprenant le composé à hydrocyaner à la température d'hydrocyanation. A titre d'exemples de tels solvants, on peut citer les hydrocarbures aromatiques, aliphatiques ou cycloaliphatiques.
La réaction d'hydrocyanation est généralement réalisée à une température de 10 C à 200oC et de préférence de 30 C à 120oC. Elle peut être réalisée en milieu monophasique.
Le procédé de l'invention peut être mis en oeuvre de manière continue ou discontinue.
Le cyanure d'hydrogène mis en oeuvre peut être préparé à partir des cyanures métalliques, notamment le cyanure de sodium, ou des cyanhydrines, comme la cyanhydrine de l'acétone ou par tout autre procédé de synthèse connu.
Le cyanure d'hydrogène est introduit dans le réacteur sous forme gazeuse ou sous forme liquide. Il peut également être préalablement dissous dans un solvant organique.
Dans le cadre d'une mise en oeuvre discontinue, on peut en pratique charger dans un réacteur, préalablement purgé à l'aide d'un gaz inerte (tel qu'azote, argon), soit une solution contenant la totalité ou une partie des divers constituants tels que la furylphosphine, le composé de métal de transition, les éventuels réducteur et solvant, soit séparément lesdits constituants. Généralement le réacteur est alors porté à la température choisie, puis le composé à hydrocyaner est introduit. Le cyanure d'hydrogène est alors lui-même introduit, de préférence de manière continue et régulière.
Quand la réaction (dont on peut suivre l'évolution par dosage de prélèvements) est terminée, le mélange réactionnel est soutiré après refroidissement et les produits de la réaction sont isolés, par exemple, par distillation.
Un perfectionnement au procédé d'hydrocyanation de composés à insaturation éthylénique selon la présente invention concerne notamment l'hydrocyanation desdits composés nitriles à insaturation éthylénique, par réaction avec le cyanure d'hydrogène et consiste à utiliser un système catalytique conforme à la présente invention avec un cocatalyseur consistant en au moins un acide de Lewis.
Parmi les paraphénylènediamines de formule (1) ci-dessus, on peut plus particulièrement citer la paraphénylènediamine, la paratoluylènediamine, la 2-chloro- paraphénylènediamine, la 2, 3-diméthyl-paraphénylènediamine, la 2, 6-diméthylparaphénylènediamine, la 2, 6-diéthyl-paraphénylènediamine, la 2, 5-diméthylparaphénylènediamine, la N, N-diméthyl-paraphénylènediamine, la N, N-diéthyl- paraphénylènediamine, la N, N-dipropyl-paraphénylènediamine, la 4-amino-N, N-diéthyl-3méthyl-aniline, la N, N-bis-(ss-hydroxyéthyl)-paraphénylènediamine, la 4-N, N-bis-(ss- hydroxyéthyl) amino-2-méthyl-aniline, la 4-N, N-bis- (ss-hydroxyéthyl)-amino 2-chloro-aniline, la 2-p-hydroxyéthyl-paraphénylènediamine, la 2-fluoro-paraphénylènediamine, la 2-isopropyl-paraphénylènediamine, la N- (P-hydroxypropyl)-paraphénylènediamine, la 2-hydroxyméthyl-paraphénylènediamine, la N, N-diméthyl-3-méthylparaphénylènediamine, la N, N- (éthyl, p-hydroxyéthyl)-paraphénylènediamine, la N- (j3, yd ! hydroxypropy))-paraphény ! ènediamine, ! a N- (4'-am ! nophényi)-paraphény ! énediamine,) a N-phényl-paraphénylènediamine, la 2-ss-hydroxyéthyloxy-paraphénylènediamine, la 2-ssacétylaminoéthyloxy-paraphénylènediamine, la N- (ss-méthoxyéthyl) -
paraphénylènediamine, 2-méthyl-1-N-ss-hydroxyéthyl-paraphénylènediamine, et leurs sels d'addition avec un acide.
Parmi les paraphénylènediamines de formule (1) ci-dessus, on préfère tout particulièrement la paraphénylènediamine, la paratoluylènediamine, la 2-isopropylparaphénylènediamine, la 2-ss-hydroxyéthyl-paraphénylènediamine, la 2-ss-hydroxyéthyloxy-paraphénylènediamine, la 2, 6-diméthyl-paraphénylène-diamine, la 2, 6-diéthyl-paraphénylènediamine, la 2, 3-diméthyl-paraphénylènediamine, la N, N-bis- (p- hydroxyéthyl)-paraphénylènediamine, la 2-chloro-paraphénylènediamine, et leurs sels d'addition avec un acide.
- (Il) Selon l'invention, on entend par bases doubles, les composés comportant au moins deux noyaux aromatiques sur lesquels sont portés des groupements amino et/ou hydroxyle.
Parmi les bases doubles utilisables à titre de bases d'oxydation dans les compositions tinctoriales conformes à l'invention, on peut notamment citer les composés répondant à la formule (11) suivante, et leurs sels d'addition avec un acide : dans laquelle : - Zi et Z2, identiques ou différents, représentent un radical hydroxyle ou -NH2 pouvant être substitué par un radical alkyle en C1-C4 ou par un bras de liaison Y ; le bras de liaison Y représente une chaîne alkylène comportant de 1 à 14 atomes de carbone, linéaire ou ramifiée pouvant être interrompue ou terminée par un ou plusieurs groupements azotés et/ou par un ou plusieurs hétéroatomes tels que des atomes d'oxygène, de soufre ou d'azote, et éventuellement substituée par un ou plusieurs radicaux hydroxyle ou alcoxy en Ci-Ce ; -R5 et R6 représentent un atome d'hydrogène ou d'halogène, un radical alkyle en C1-C4, monohydroxyalkyle en C1-C4, polyhydroxyalkyle en C2-C4, aminoalkyle en C1-C4 ou un bras de liaison Y ;
- R7, R8, Rg, Rio, Ru et R12, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un bras de liaison Y ou un radical alkyle en C1-C4 ; étant entendu que les composés de formule (II) ne comportent qu'un seul bras de liaison Y par molécule.
Parmi les groupements azotés de la formule (II) ci-dessus, on peut citer notamment les radicaux amino, monoalkyl (Ci-C4) amino, dialkyl (Ci-C4) amino, trialkyl (Ci-C4) amino, monohydroxyalkyl(C1-C4) amino, imidazolinium et ammonium.
Parmi les bases doubles de formules (II) ci-dessus, on peut plus particulièrement citer le N, N'-bis- (ss-hydroxyéthyl) -N, N'-bis- (4'-aminophényl) -1, 3-diamino-propanol. la N, N'-bis- (phydroxyéthy !)-N, N'-b ! s- (4'-am ! nophény !)-éthy ! ènediamine, ! a N, N'-bis- (4-aminophényl)tétraméthylènediamine, la N, N'-bis- ( > hydroxyéthyl)-N, N'-bis- (4-aminophényl)tétraméthylènediamine, la N, N'-bis- (4-méthyl-aminophényl)-tétraméthylènediamine, la N, N'-bis-(éthyl)-N,N'-bis-(4'-amino-3'-méthylphényl)-éthylènediamine, le 1, 8-bis- (2, 5- diaminophénoxy)-3, 5-dioxaoctane, et leurs sels d'addition avec un acide.
Parmi ces bases doubles de formule (II), le N, N'-bis-(ss-hydroxyéthyl)-N,N'-bis- (4'-aminophényl)-1, 3-diamino-propanol, le 1, 8-bis- (2, 5-diaminophénoxy)-3, 5-dioxaoctane ou l'un de leurs sels d'addition avec un acide sont particulièrement préférés.
- (III) les para-aminophénols répondant à la formule (ici) suivante, et leurs sels d'addition avec un acide : dans laquelle : Ru représente un atome d'hydrogène, un atome d'halogène tel que le fluor, un radical alkyle en Cl-C4, monohydroxyalkyle en C1-C4, alcoxy (Cl-C4) alkyle(C1-C4) ou aminoalkyle en C1-C4, ou hydroxyalkyl (C1-C4) aminoalkyle en C1-C4.
R14 représente un atome d'hydrogène ou un atome d'halogène tel que le fluor, un radical alkyle en Ci-C4, monohydroxyalkyle en Ci-C4, polyhydroxyalkyle en C2-C4, aminoalkyl en C1-C4, cyanoalkyle en C1-C4 ou alcoxy (C1-C4) alkyle (Ci-C4).