INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Ayant vu les- difficultés du VAL à; LILLEet surtout à l' AEROPORT d ORLY, un calcul des. prix, des? billets? prouvait que.. Ce deux-: lignes?, n' étaient pas économiquement rentables:. Bien plusla ville? de? BORDEAUX étant un port maritime: comme- LONDRES, la. construction de2tunnels;:;de-métrojdanffoune=-ville= où beaucoup de? rues. et de maisons-: datent du XVII-ème siècle., dans-- le: centre? et le? long de la? GARONNE, possèdes problèmes impossibles-' se résoudre; sur- les- deux. traces? "1" et 112rut.
Le périphérique? débuté: en 1961 est d#grande-importance1 et les lignes de: chemin de; fer de.- la: SKCF; présentent Ir 2.Vé.ntef;G" de? pouvoir être. utilisées comme, le? RER en régi'011 parisienne. Peur cela il faut compléter une ligne périphérique, centrale, et réaliser plu- sieurs br2.ncl:.es)vers-" la banlieue- de BORDEAUX.
En 1995 fut présente un tel projet aux'Maire s de: BORDEAUX, des- villes de- la, Communauté, urbaine et à, la # Direction Générale; de? la? SNCF,, prenant comme exemple; le Métro et le: RER à PARIS.
La SNCF à BORDEAUX dispose- de lignes existantes très peu exploitées,et de 8aro s) comme BORDEAUX SAINT-JEAN, TALENCE, MEDOC, MERIGNAC, ORLEANS, faciles à relier entre elles,pour forcer une ligne périphérique , le tronçon entre le s Gares du MEDOC et de ORLEANS représentant 3 300 m de voie double, des caissons préfa- briqus,relativem,ent faciles, à'poser.
Les premiers grands travaux. seraient à la Gare de BORDEA(1 SAINT-JEAN,où un nouveau pont RER et 1,'utilisation du terrain de l' ABATTOIR, seraient l'objet d'un concours d'Architecture international, les BORDELAIS devant choisir, comment urbaniser la ville A partir de, ce, RER Périphérique il est relativement faci- le? de? construire, de nouvelles, stations. RERavec Parkings, vers BLANQUEFORT, AMBARES, CARBON BLANC, CAMBLASNE, CADAUJAC, CESTAS.
BORDEAUX possède depuis 1942,une Base Sous-marine; mal utilisée, avec de nombreuses- cales sèches, dans. lesquelles- il est facile, de~ construire= des caissons.-tunnels en béton armé% et les. amener par flottaison, jusqu'à leur emplacement définitif de: Métro ou de? RER.
L'idée maitresse de= 1 invention est celle, comment agrandir le Centre de? la, ville de: BORDEAUX, sans- détruire--; les vieux, quartiers. historiques. Comment construire- à BORDEAUX un nouveau quar- tier moderne, comme LA DEFENSE à.PARIS ? Le plus. facile., et le- projet les moins coûteux,est celui de. dévier la- GARONNE vers l'EST.) et gagner du terrain constructibledans-un temps relativement court.
Le grand avantage- de; ce quartier nouveau,est celui de? pouvoir construire; une ligne, de? METRO, des, PARKINGS, des bati- ments:: Gratte-ciel, Bureaux et HLM, des autoroute-s) des parcs, et aussi plusieurs, ponts. géants.
Les3 projets d'un tel quartier peuvent être: exposés au Palais.; des Expositions du LAC, afin que les Bordelaises et le Bordelais,puissent choisir les meilleurs projets- d'un quartier, pour 300 000 habitants environ, BORDEAUX pouvant ainsi avoir unepopulation d'un million, dans un futur proche. Le Gouvernement et le Parlement Français, devraient envisager un programme.. de régionalisation de- la. FRANCE, car PARIS est devenu gigantesque- BORDEAUX avait un grand chantier de constructions= navales "FRANCE-GIRONDE ; et un nouveau chantier moderne,,peut faciliter les- travaux de- construction d' immeubles Gratte-ciel. dès le début du projet, et par la, suite, construire, des navires, catamarans.
Le grand avantage de cette innovation,est la création d'un nouveau quartier, au centre de BORDEAUX, dans une zone ancienne industrielle,relativement facile à reconstruire,en dehors de la zone urbaine de BORDEAUX)et facile d'accès, conforme aux souhaits des Ecologistes.
L' un des avantagea est la création de lignes de METRO et de RER, pour une ville ancienne et historique, avoir des transports en commun à un prix modéré, les Bus servant surtout dans le centre de la vieille ville de BORDEAUX, dans des rues à sens unique.
On utilise comme milieu réducteur : - un mélange azéotropique d'acide formique et de triéthylamine - le [RuCl2(p-cymène)]2 comme complexe métallique et - le (1 S,2S)-N-(3,5-bis(trifluorométhane)benzènesulfonyl) 1,2 cyclohexane diamine : ligand 1, - le (1 S,2S)-N-(3,5-bis-(trifluorométhane)benzènesulfonyl)1,2diphényléthylène diamine : ligand 2, - le (1 S,2S)-N-(pentafluorobenzènesulfonyl 1,2 cyclohexane diamine : ligand 3, - le (1 S,2S)-N-(pentafluorobenzènesulfonyl)) 1,2-diphényléthylène diamine : ligand 4, et - le (1 S,2S)-N-(nonafluorobutanesulfonyl) 1,2 cyclohexane diamine : ligand 5. comme ligands chiraux.
Dans un ballon de 25 ml, muni d'un barreau aimanté avec agitation par un agitateur magnétique, on charge : - 10 mmoles d'acétophénone - 0.05 mmole de [RuCI2(p-cymène)]2 - 0.1 mmole du ligand considéré
- 2 ml d'acide formique - 3 ml de triéthylamine.
On commence par charger le complexe de ruthénium, le ligand et 10 ml d'isopropanol. On établit une atmosphère d'argon puis on chauffe le milieu réactionnel à une température de 80 C pendant 30 min. On évapore le solvant sous pression réduite et on obtient un solide de couleur rouge.
Dans un autre ballon de 25 ml, refroidi par un bain de glace et muni d'un barreau aimanté avec agitation par un agitateur magnétique, on charge 3 ml de triéthylamine, 2 ml d'acide formique et 10 mmoles d'acétophénone. On purge le mélange réactionnel avec de l'argon puis on transfert cette solution dans le ballon contenant le catalyseur.
On laisse le mélange réactionnel à une température ambiante (22 C) sous agitation. La durée de la réaction est mentionnée dans le tableau ci-après.
On dose le produit formé à savoir le (1S)-1-phényléthanol par chromatographie en phase gazeuse.
Les résultats obtenus sont consignés dans le tableau 6 ci-après : Tableau 6
ligand Durée Rendement e.e.
1 94 h 91 % 95% 2 48 h 98 % 97 % 3 96h 57% 91 % 4 25 h 99 % 97 % 5 72 h 99 % 93 % On note que l'ensemble des ligands testés conduit à un e. e. satisfaisant.
EXEMPLE 25 Réduction de la 3',4'-diméthoxyacétophénone.
On utilise le même milieu réducteur que l'exemple 24 dont on reproduit le mode opératoire en utilisant soit le ligand 1, soit le ligand 2.
Les résultats obtenus sont consignés dans le tableau 7 ci-après : Tableau 7
Ligand durée Rendement e.e.
20 h 85 % 91 % ligand 1 de l'exemple 24 8 h 88% 91 % ligand 2 de l'exemple 24 EXEMPLE 26 Réduction du benzoylacétate d'éthyle.
117 24 H pourpre 3 pourpre 4 pourpre 4 48 H pourpre 3,5 pourpre 4 pourpre 4 Serratia marcescens 18 H pourpre 0,5 pourpre 1 pourpre 2 042 24 H pourpre 1 pourpre 2,5 pourpre 2,5 48 H pourpre 1,7 pourpre 3 pourpre 3,5 Proteus vulgaris 18 H - - 087 24 H 48 H Morganella morganii 18 H 060 24 H 48 H Tableau 1 : de la concentration du substrat sur la révélation de l'activité ss-galactosidase de micro-organismes sur milieu gélifié.
Le symbole - signifie, dans ce tableau 1, une absence de coloration. Les souches ainsi testées, n'ayant que des résultats négatifs, font office de contrôle négatif.
D'après ce tableau 1, il est possible de remarquer que les intensités obtenues avec le Alizarine-2-p-D-galactoside dès 0,03 g/1 sont quasiment équivalentes à celles observées avec le 6-Chloro-3-indolyl-p-D-galactoside, dont la concentration est environ sept fois supérieure. La concentration en Alizarine-2-p-D-galactoside permettant d'obtenir des intensités de coloration intéressantes est comprise entre 0,03 g/1 et 0,08 g/1 préférentiellement 0,05 g/1.
Les substrats à base d'Alizarine sont donc plus sensibles que les substrats à base d' Indoxyl.
Exemple 2 : de l'activité fl-galactosidase de micro-organismes sur milieu gélifié - Utilisation du Alizarine-2-g-D-galactoside.
Un milieu gélifié comprenant du Alizarine-2--D-galactoside est préparé comme suit : 46,37 g d'agar Columbia sont additionnés à 1 litre d'eau distillée avec 50 mg de Alizarine-2-i-D-galactoside, 500 mg de Citrate de Fer Ammoniacal et 30 mg d'Isopropyl--D-thiogalactoside pour faciliter l'induction de l'activité P-galactosidase. L'agar est stérilisé par autoclavage à 116 C pendant 10 min. Le milieu est refroidi lentement à 55 C avant d'être réparti dans des boîtes de Pétri de 20 ml. Ce milieu est comparé à un milieu solide préparé de la même façon et contenant 46,37 g d'agar Columbia avec 80 mg de 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl--D-galactoside et 30 mg d'Isopropyl-p-D-thiogalactoside.
Trois cent soixante-sept souches (367) différentes ont été collectées à partir d'échantillons cliniques et environnementaux et identifiés par la galerie API (marque déposée) 20E (BioMérieux, France) comme méthode de référence. Les souches sont cultivées sur un milieu Columbia agar à 37 C pendant 24 heures puis un inoculum d'environ 108 organismes/ml (équivalent à un standard McFarland de 0,5) est réalisé pour chaque souche. En utilisant un inoculateur Denley, 1 microlitre de chaque suspension est inoculée sur une boite de chacun des milieux : le milieu contenant du Alizarine-2-p-D-galactoside préparé ci-dessus et le milieu contenant le 5-Bromo-4- chloro-3-indolyl-p-D-galactoside. Toutes les boîtes sont incubées à 37 C pendant 18 heures.
Après incubation, les colonies formées sont examinées visuellement. Sur le milieu contenant le Alizarine-2-(3-D-galactoside les colonies présentant une activité P-galactosidase sont de couleur Pourpre et sur le milieu contenant le 5-Bromo-4-chloro- 3-indolyl-p-D-galactoside, elles sont de couleur Turquoise. Toute souche présentant une de ces deux couleurs est considérée comme positive pour l'activité P-galactosidase avec le substrat correspondant. Les résultats sont présentés dans le tableau 2 ci-après.
Nombre de souches 5-Bromo-4-chloro- Espèces testées pour Alizarine-2-p- 3-indolyl -2-pl'espèce D-galactoside D-galactoside Acinetobacter spp. 53 0 0 Aeromonas caviae 7 86 86 Aeromonas hydrophila 3 100 100 Citrobacter diversus 9 89 89 Citrobacter freundii 16 100 100 Enterobacter aerogenes 9 100 100 Enterobacter agglomerans 1 100 100 Enterobacter cloacae 21 100 100 Escherichia coli 41 95 95 Escherichia hermannii 1 100 100 Hafnia alvei 10 80 80 Klebsiella oxytoca 13 100 100 Klebsiella ozaenae 3 100 67 Klebsiella pneumoniae 19 100 100 Morganella morganii 12 0 0 Proteus mirabilis 16 0 0 Proteus penneri 1 0 0 Proteus vulgaris 4 0 0 Providencia alcalifaciens 3 0 0 Providencia rettgeri 3 0 0 Providencia stuartii 10 0 0 Salmonella spp. 64 0 0 Serratia odorifera 1 100 100 Serratia spp. 14 86 79 Shigella boydii 1 0 0
Shigella dysenteriae 2 Shigella dysenteriae 2 0 0 Shigella sonnei 10 100 100 Shigella sonnei 100 Vibrio cholerae 100 100 Yersinia enterocolitica 14 64 29 Yersinia pseudotuberculosis 3 67 0 Tableau 2 : de l'activité ss-galactosidase de micro-organismes sur milieu gélifié contenant du Alizarine-2-i-D-galactoside Les chiffres présents dans les colonnes associées à l'Alizarine-2-p-D-galactosidc et 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-p-D-galactoside correspondent aux pourcentages de souches positives. La grande majorité des souches, c'est-à-dire 96,5 %, a une réactivité identique, soit positive soit négative, pour les deux substrats. Huit souches n'hydrolysent que le Alizarine-2-i-D-galactoside. Or ces huit souches ont une activité p-galactosidase du fait de la détection d'une fluorescence en présence du substrat 4-Méthylumbelliféryl-(3-D-galactoside. Ce tableau montre donc une bonne efficacité du substrat comme indicateur de l'activité p-galactosidase avec une sensibilité supérieure à celle observée avec le substrat de référence le 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl- -ss-D-galactoside. Ces substrats sont donc très sensibles et utilisables à faible concentration.
Exemple 3 : de différents sels de métaux sur la coloration de la partie marqueur.
Dans le milieu, base Columbia (46,37 g/1) et Alizarine-2-p-D-glucoside (50 mg/1), ont été ajoutés à la concentration de 50 mg/1 soit du Chlorure de Manganèse, soit du Citrate de Fer Ammoniacal, soit du Chlorure d'Etain, soit du Sulfate d'Aluminium. Un milieu témoin sans sel de métaux a aussi été étudié. Ces différents milieux ont été répartis après passage à autoclave en boîtes de Pétri à raison de 20 ml de milieu par boîte. Des micro-organismes issus de la collection de la demanderesse ont été
ensemencés sur chacun des milieux par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland. Les boîtes ont été incubées à 37 C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau 3 ci-dessous. Il convient de noter que les valeurs d'intensité sont données arbitrairement, elles n'ont pour but que de permettre de comparer les intensités d'une souches à l'autre. Ceci est également vrai pour les exemples qui suivent. De même, les souches testées issues de la collection de la demanderesse, comportent un numéro interne à cette collection. Cette numérotation interne est également utilisée dans certains des exemples qui seront exposés par la suite.
Temps Témoin Chlorure de Manganèse Citrate de Fer Souches d'incubation Couleur Intensité Couleur Intensité Couleur Intensité Listeria monocytogenes 24 H pourpre 2 pourpre 2,7 pourpre 4 023 48 H pourpre 2 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria monocytogenes 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 079 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria monocytogenes 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 081 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria ivanovii 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 018 48 H pourpre 2,3 pourpre 2. 7 pourpre 4 Listeria ivanovii 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 020 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria ivanovii 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 032 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 Listeria innocua 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 036 48 H pourpre 2,7 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria innocua 24 H pourpre 2 pourpre 2,3 pourpre 4 029 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 Listeria innocua 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 077 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 Listeria seeligen 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 011 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria welshimeri 24 H pourpre 2,3 pourpre 2,3 pourpre 4 023 48 H pourpre 2,3 pourpre 2,7 pourpre 4 Listeria grayi 24 H pourpre 2 pourpre 2 pourpre 4 078 48 H pourpre 2,3 pourpre 2 pourpre 4
Temps Chlorure d'Etain Sulfate d'Aluminium Souches d'incubation Couleur Intensité Couleur Intensité Listeria monocytogenes 24 H orange 3 rouge 4 023 48 H orange 4 rouge 4 Listeria monocytogenes 24 H orange 3 5 rouge 4 079 48 H orange 4 rouge 4 Listeria monocytogenes 24 H orange 3 rouge 4 081 48 H orange 4 rouge 4 Listeria ivanovii 24 H orange 3 rouge 4 018 48 H orange 4 rouge 4 Listeria ivanovii 24 H orange 3 rouge 4 020 48 H orange 4 rouge 4 Listeria ivanovii 24 H orange 3 rouge 4 032 48 H orange 4 rouge 4 Listeria innocua 24 H orange 3 rouge 4 036 48 H orange 4 rouge 4 Listeria innocua 24 H orange 3 rouge 4 029 48 H orange 4 rouge 4 Listeria innocua 24 H orange 3 rouge 4 077 48 H orange 4 rouge 4 Listeria seeligeri 24 H orange 3 rouge 4 011 48 H orange 4 rouge 4 Listeria welshimen 24 H orange 3 rouge 4 023 48 H orange 4 rouge 4 Listeria grayi 24 H orange 3 rouge 4 078 48 H orange 4 rouge 4 Tableau 3 : de différents sels de métaux sur la coloration de la partie marqueur Suivant le sel de métal testé la couleur obtenue après hydrolyse du substrat est différente. Il est aussi possible d'observer une coloration même en absence de sels de métaux (milieu témoin). Cependant l'intensité de la coloration obtenue est inférieure à celle observée, par exemple avec le sel de Fer, sel qui ne modifie pas la couleur.
Ceci peut permettre d'adapter la couleur et son intensité en fonction des besoins (association avec d'autres substrats enzymatiques, indicateurs de pH).
Ils montrent des profils similaires entre les deux méthodes d'extraction (directe et indirecte). Ainsi, il apparaît que l'extraction préalable de la fraction microbienne tellurique n'introduit pas de réels biais parmi les taxons testés. La seule différence significative entre les deux approches d'extraction semblerait être la plus grande abondance de séquences d'ADNr appartenant aux y protéobactéries dans l'extrait par la méthode d'extraction indirecte.
De plus, un effet significatif de l'incubation de l'échantillon de sol dans une solution d'extrait de levure est observé sur les populations sporulées du sol (Gram+, bas pourcentage de GC et Actinomycètes).
Cette étape provoque la germination des spores, et permet d'une part certainement une meilleure récupération de ce type de cellules et d'autre part une plus grande efficacité de la lyse sur des cellules en germination.
Cette approche permet une analyse semi-quantitative, ciblée sur les principaux taxons définis à partir de micro-organismes cultivés et habituellement retrouvés dans les sols. Seuls des outils moléculaires permettent d'estimer l'importance des différents taxons, les méthodes de mise en culture étant trop restrictives et dépendantes de la spécificité du milieu utilisé.
Les résultats montrent qu'une grande part de la population microbienne n'est pas représentée dans les groupes phylogénétiques décrits, mettant ainsi en évidence l'existence de nouveaux groupes
composés de micro-organismes non cultivés jusqu'à présent, ou non cultivables.
Ainsi, de nouvelles sondes peuvent être définies à partir de séquences déterminées à partir d'ADN extrait du sol (nouveaux phylums composés de micro-organismes non cultivés, LUDWIG et al. (1997) afin d'obtenir une image plus exacte de la composition de l'extrait d'ADN.
Exemple 4 : - CONSTRUCTION DU COSMIDE POS 7001 Caractéristiques de POS 7001: Réplicatif chez E. coli Intégratif chez Streptomyces Sélectionnable chez E. coli AmpR, HygroR et Streptomyces HygroR Les propriétés du cosmide permettent d'insérer de grands fragments d'ADN entre 30 et 40kb.
Il comprend 1 - Le promoteur inductible tipA de Streptomyces lividans 2 - Le système d'intégration spécifique de l'élément pSAM2 3 - Le gène de résistance à l'hygromycine 4- le cosmide pWED1, dérivé de pWED15 1) - Le promoteur inductible du gène tip A de S. lividans Le gène tipA code une protéine de 19 KD dont la transcription est induite par l'antibiotique thiostrepton ou nosiheptide. Le promoteur de tipA est bien régulé: induction en phase exponentielle et en phase stationnaire (200X) Murakami T, Holt TG, Thompson CJ. J. Bacteriol 1989 ; 171 : 1459-66 2) - Le gène de résistance à l'hygromycine - Hygromycine : produit par S. hygroscopicus - Le gène de résistance code une phosphotransfèrase (hph) - Le gène utilisé provient d'une cassette construite par Blondelet et al dans laquelle le gène hyg est sous contrôle de son propre promoteur
et du promoteur plac inductible par l'IPTG Blondelet-Rouault et al ; .
Gene 1997 ;190 :315-7 3) - Le système d'intégration site-spécifique L'élément pSAM2 s'intègre dans le chromosome par un mécanisme d'intégration site-spécifique. La recombinaison a lieu entre deux séquences identiques de 58 pb présentes sur le plasmide (attp) et sur le chromosome (attB).
Le gène int, situé à proximité du site attP, est impliqué dans l'intégration site-spécifique de pSAM2, et son produit présente des similitudes avec les intégrases des bactériophages tempérés d'entérobactéries. Il a été démontré qu'un fragment de pSAM2 ne contenant que le site d'attachement attP ainsi que le gène int était capable de s'intégrer de la même manière que l'élément entier. Voir brevet français n 88 06638 du 18/05/1988, ainsi que Raynal A et al. Mol Microbiol 1998 28 :333-42).
4) - Construction du cosmide pOS7001 Etape 1/ Le promoteur TipA a été isolé du plasmide pPM927 (Smokvina et al. Gene 1990 ; 94 :53-9 ) sur un fragment Hindlll-BamHl de 700 paires de bases et cloné dans le vecteur pUC18 (Yannish-Perron et al., 1985) digéré par Hindlll/BamHI Etape 2/ Ce fragment Hindlll-BamHl a ultérieurement été transféré de pUC18 à pUC19 (Yannish-Perron et al., 1985).
Etape 3/ Un insert BamHI-BamHI de 1500 paires de bases portant le gène int et le site attP de pSAM2 a été isolé du plasmide pOSint1, représenté à la Figure 8, (Raynal A et al. Mol Microbiol 1998 28 :333-42) et cloné au site BamHl du vecteur précédent (pUC19/TipA), dans l'orientation permettant de mettre le gène int sous contrôle du promoteur TipA.
Etape 4/ Le site BamHl situé en 5' du gène int a été supprimé par digestion partielle BamHl puis traitement par l'enzyme Klenow. Un
fragment Hindlll-BamHl portant TipA-int-attP a ainsi été isolé de pUC19 et transféré dans pBR322 Hindlll/BamHI.
base inférieure (37) a été munie d'un ou deux orifices (373) pour permettre entrée d'air et une vidange de la bouteille.
Le corps (2) et le tube central (3) ont une épaisseur moyenne de 1 mm. Dans le cas de modalité représentée aux figures 3)a & 3b, la membrane flexible (40) a une épaisseur de 0,3 mm.
Les tests réalisés, à la fois par de professionnels et des consommateurs, avec les capsules munies de verseurs selon l'invention ont permis de montrer que les capsules avec verseur selon l'invention répondent bien aux différents problèmes posés.
LISTE DES REPERES VERSEUR anti-goutte ...................................... 1 CORPS ........................................................ 2 AILETTES ................................................ 20 REBORD .................................................. 21 NERVURE ................................................ 22 PIECE DE BLOCAGE ................................. 23) NERVURE de liaison avec le corps (2) ............. 23) 0 PATTE D'ARRET ...................................... 24 RAINURE de liaison avec la pièce (23) ............. 25 TUBE central ................................................. 3 ELEMENT AJOURE .................................... 0 POSITION HAUTE ................................. 1 POSITION BASSE .................................. 32 EXTREMITE SUPERIEURE .......................... 33 TUBE COAXIAL ......................................... 34 TUBE INTERIEUR ....................................... ') 5 EXTREMITE ......................................... 3150 TUBE EXTERIEUR ...................................... ') 6 EXTREMITE ......................................... 360 BASE INFERIEURE commune ......................... 37 PORTION D'ARC ............................... 370 COMPLEMENT D'ARC ......................... 371 EVIDEMENT ...................................... 372 ORIFICE ............................................. 373 ESPACE ANNULAIRE ............................ 374 OUVERTURE OBLIQUE ........................ 375 RAINURE ........................................... Î8 ELEMENT MOBILE ............... , ..................... 39 MOYEN DE LIAISON ...................................... 4 MEMBRANE FLEXIBLE ............................. 40
ELEMENT ELASTIQUE .............................. 41 RESSORT .......................................... 410 COULISSEMENT ....................................... 42 CAPSULE de bouchage ..................................... 5 INSERT PLASTIQUE ................................ 50 LEVRE CENTRALE /élément d'étanchéité ..500 LEVRE PERIPHERIQUE d'étanchéité ....... 501 LEVRE PERIPHERIQUE de fixation ......... 502 JOINT D'ETANCHEITE ............................ 51 GORGE ............................................... 52 RECIPIENT .................................................... 6 GOULOT .................................................. 60 BUVANT ................................................. 61 AXE DU GOULOT ..................................... 62
EMBALLAGE DISTRIBUTEUR A APPLICATEUR ROTATIF DOMAINE DE L'INVENTION L'invention concerne le domaine des emballages distributeurs à applicateur rotatif, souvent désignés par l'appellation stick roll-on , servant à appliquer sur la peau un produit cosmétique à consistance typiquement fluide ou crémeuse, par exemple un déodorant.