INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Le tampon élongation : Le tampon élongation 5X est composé de Tris-HCI pH 9 à 250 mM, de KO à 250 mM, de NACI à 25 mM, de MUGI2 à 10 mM et de glycérol à 40 % 2 ddNTPs : Pour les ddNTPs, un mélange des 4 bases est réalisé en fonction du polymorphisme étudié. Seulement les 2 bases d'intérêts (A/T) composant le polymorphisme de type SNP fonctionnel portent un marquage, soit en Tamra, soit en R110 Le mélange de ddNTPs est composé de : 2, 5 uM de ddCTP non marqué, 2, 5 uM de ddGTP non marqué, 2, 5 uM de ddTTP (1,825 M de ddTTP non marqué et 0,625 M de ddTTP marqué au Tamra), 2, 5 JM de ddATP (1, 825 uM de ddATP non marqué et 0,625 M de ddATP marqué au R110).
Une fois remplie, la plaque est scellée, centrifugée puis placée dans un thermocycleur pour plaque 384 puits (Tetrad de MJ Research) et subit l'incubation suivante : Cycles d'élongation : 1 min. à 93 C, suivi de 35 cycles composés de 2 étapes (10 sec. à 93 C, 30 sec. à 550 C).
Fournisseur Référence Réactif Conc. Vol. par Conc. initiale tube (ul) finale Life Technologie Livré avec Taq Tampon (X) 10 0, 5 1 Life Technologie Livré avec Taq MgSO4 (mM) 50 0,2 2 AP Biotech 27-2035-03 dNTPs (mM) 10 0, 1 0, 2 Sur demande Amorce F (uM) 10 0, 1 0,2 ID SEQ NO 3 Sur demande AmorceR (f. JM) 10 0,1 0,2 ID SEQ ? 4 Life Technologie 11304-029 taq platinium 5U/ l 0,02 0, 1 U/ réaction H2O 5 l 1,98 ADN 2,5 ng/ l 2 5 ng/ réaction Volume total 5 f. 11
Ces réactifs sont distribués dans une plaque PCR noire à 384 puits fournie par ABGene (ref : TF-0384-k). Une fois remplie, la plaque est scellée, centrifugée puis placée dans un thermocycleur pour plaque 384 (Tetrad de MJ Research) et subit l'incubation suivante : Cycles de PCR : 1 min à 940 C, suivi de 36 cycles composés de 3 étapes (15 sec. à 94 C, 30 sec. à 56 C, 1 min. à 68 C).
*Etape 2) La PCR est ensuite purifiée à l'aide de deux enzymes que sont la phosphatase alcaline de crevette (ou Shrimp Alkaline Phosphatase SAP) et l'exonucléase 1 (Exo 1). La première de ces enzymes permet la déphosphorylation des dNTPs non incorporés au cours de la PCR, tandis que la seconde élimine les résidus simple brin d'ADN et donc les amorces non utilisées au cours de la PCR. Cette digestion se fait par addition dans la plaque de PCR d'un mélange réactionnel de 5 ut par échantillon préparé comme décrit dans le tableau suivant :
Fournisseur Référence Réactif Vol. par initiale tube (pi) finale AP Biotech E70092X SAP 1 U/ l 0,5 0,5/ réaction AP Biotech 070073Z Exo l 10 U/ l 0,1 1/ réaction AP Biotech Fourni Tampon 10 0, 5 1 avec SAP SAP (X) H2O Qsp 5 pl 3,9 PCR 5 Pl Vol total 10 l
Une fois remplie, la plaque est scellée, centrifugée puis placée dans un thermocycleur pour plaque 384 puits (Tetrad de MJ Research) et subit l'incubation suivante : Digestion SAP-EXO : 45 min à 37 C, 15min à 800 C.
Etape 3) L'étape d'élongation ou de miniséquençage est ensuite réalisée sur ce produit de PCR digéré, par addition d'un mélange réactionnel de 5 L par échantillon préparé, comme indiqué dans le tableau suivant :
Vol. par Cane.
Fournisseur Référence Réactif conc. initiale tube finale Propre Tampon Elongation préparation (X) Life Amorce Miniseq Sur demande ( M) 10 0,5 1 Technologies A ou B ddNTPs2 ( M) 27-2051 0,125 AP Biotech (61,71,81)-01 chaque ddNTPs ( M) Nel 472/5 2,5 0,125 NEN 0,25 2 marqués et Nel 492/5 de chaque de chaque Tamra et Ri 10 0,4 U/ AP BiotechE79000Z 0,125 Thermo-sequenase 3,2 U/ l réaction H2O Qsp 5 l 3,125 PCR digérée 10 l Vol total 15 l
Le tampon élongation : Le tampon élongation 5X est composé de Tris-HCI pH 9 à 250 mM, de KCI à 250 mM, de NaCI à 25 mM, de MgCI2 à 10 mM et de glycérol à 40 %. 2 ddNTPs : Pour les ddNTPs, un mélange des 4 bases est réalisé en fonction du polymorphisme étudié. Seulement les 2 bases d'intérêts (C/G) composant le polymorphisme de type SNP fonctionnel portent un marquage, soit en Tamra, soit en R110. Le mélange de ddNTPs est composé de - 2, 5 pM de ddATP non marqué, - 2, 5 uM de ddTTP non marqué, - 2, 5 uM de ddGTP (1, 875 uM de ddGTP non marqué et 0, 625 uM de ddGTP marqué au Tamra), - 2, 5 uM de ddCTP (1, 875 uM de ddCTP non marqué et 0, 625 uM de ddCTP marqué au R110) Une fois remplie, la plaque est scellée, centrifugée puis placée dans un thermocycleur pour plaque 384 puits (Tetrad de MJ Research) et subit l'incubation suivante : Cycles d'élongation : 1 min. à 93 C, suivi de 35 cycles composés de 2 étapes (10 sec. à 93 C, 30 sec. à 55 C).
Après la dernière étape dans le thermocycleur, la plaque est directement placée sur un lecteur de fluorescence polarisée de type Analyst@ HT de LJL Biosystems Inc.. La plaque est lue à l'aide du logiciel Criterion Host@ en utilisant deux méthodes. La première permet de lire la base marquée en Tamra en utilisant les filtres d'excitation et d'émission spécifiques de ce fluorophore (excitation 550-10 nm, émission 580-10 nm) et la seconde permet de lire la base marquée en R110 en utilisant les filtres d'excitation et d'émission spécifiques de ce fluorophore (excitation 490-10 nm, émission 520- 10 nm). Dans les deux cas, un miroir double dichroïque (RHO/Tamra) est utilisé et les autres paramètres de lecture sont : Z-height : 1,5 mm Attenuator : out Temps d'intégration : 100, 000 usée.
Raw data units : counts/sec Switch polarization : by well Plate settling time : 0 msec PMT setup : Smart Read (+), sensitivity 2 Dynamic polarizer : emission Static polariser : S
Un fichier résultat est alors obtenu contenant les valeurs calculées de mP pour le filtre Tamra et celle pour le filtre RI 10. Ces valeurs de mP sont calculées à partir des valeurs d'intensité obtenues sur le plan parallèle (//) et sur le plan perpendiculaire (. 1) d'après la formule suivante : mP =1000(# - g#)/(# + g#).
Etape 4) et 5) Interprétation de la lecture et détermination des génotypes.
Les valeurs de mP sont reportées sur un graphe à l'aide du logiciel Excel de Microsoft Inc., et/ou du logiciel Allele Caller@ développé par LJL Biosystems Inc., En abscisse est indiquée la valeur de mP de la base marquée au Tamra, en ordonnée est indiquée la valeur de mP de la base marquée au Ri 10. Une forte valeur de mP indique que la base marquée avec ce fluorophore est incorporée et, inversement, une faible valeur de mP révèle l'absence d'incorporation de cette base.
Dans le cas de la figure 11, les réseaux de Bragg Bll, B21, B31 (respectivement B12, B22, B32) sont photo-inscrits dans le coeur 44 (respectivement 46) de la fibre 42 pour obtenir les capteurs Cl, C2 et C3 (seuls les réseaux Bll et B12 étant représentés sur la figure 11). A titre d'exemple, les deux coeurs 44 et 46 ont des dopages différents ou des diamètres différents.
Considérons maintenant diverses solutions pour la séparation spectrale des différents capteurs d'un système conforme à l'invention.
La figure 2 montre que, pour la gamme de mesure considérée, le signal de réflexion d'un réseau ou de "l'intersection" des deux réseaux se déplace spectralement sur une bande large de DA. Les détecteurs de la figure 1, qui fournissent les niveaux de puissance Vl et Wl (l < i < 3), doivent donc mesurer l'évolution de la puissance sur cette bande et ce de manière exclusive pour ne pas intégrer le signal de capteurs adjacents.
En ce sens, une séparation spectrale est nécessaire sur les deux voies de sortie du système.
La conception de cette séparation spectrale est l'un des points clefs du système objet de l'invention. Du fait de la faible performance requise par le dispositif de séparation, on peut utiliser une détection simple, peu coûteuse et peu volumineuse.
Ce dispositif doit en effet, comme le montre la figure 12, séparer des bandes spectrale assez larges (DA, de l'ordre de 10 nm) espacées les une des
autres d'une distance supérieure à DÀ. On a noté Àl les longueurs d'onde centrales de ces différentes bandes (1i3), l'exemple de la figure 12 étant relatif à trois capteurs.
Dans la suite nous donnons des exemples d'un dispositif de séparation spectrale.
Ce dispositif peut comprendre un élément dispersif angulairement.
Dans l'exemple de la figure 13, cet élément est un prisme 48. Cette figure 13 est relative aux trois capteurs Cl, C2 et C3 de la figure 1 et concerne la lumière provenant de la fibre 2 de cette figure 1 après avoir traversé le circulateur 8 et le coupleur 10. On voit une portion de la fibre optique 50 qui relie ce coupleur 10 au dispositif de séparation spectrale 12.
La fibre 50 est tout d'abord couplée à un collimateur 52 de manière à fournir, à l'entrée du dispositif de séparation spectrale 12, un faisceau optique parallèle 53.
Ce faisceau tombe sur le prisme 48 qui sépare angulairement les trois longueurs d'onde et #3. Les photodétecteurs 141, 142 et 143 de la figure 13 forment l'ensemble de photodétection 14 qui, dans cet exemple, est une barrette 14 de trois détecteurs CCD permettant de recueillir les puissances distribuées dans les trois longueurs d'onde. On a ainsi les signaux Vj. (l < i < 3). Quand les longueurs d'onde de résonance varient, les faisceaux se décalent à l'intérieur de la surface de détection de chacun des éléments de la barrette.
Le même dispositif peut être utilisé pour l'autre voie de sortie du coupleur 10 de la figure 1.
En variante, les dispositifs 12 et 18 de la figure 1 peuvent partager le même prisme 48.
Un réseau de diffraction peut aussi être utilisé à la place du prisme. Le principe est alors le même : on engendre un signal optique collimaté qui est dispersé par ce réseau et mesuré par une barrette CCD.
Un autre exemple de dispositif de séparation spectrale intégré 12 est schématiquement représenté sur la figure 14. Il utilise un diviseur optique 54 et des filtres interférentiels 561, 562 et 563.
Le résultat de cette modélisation est visualisé sur les Figures 1,2, 3,4, 5 et 6.
Exemple 2 : Génotypage des polymorphismes de type SNP c2621g dans une population d'individus Le génotypage de SNPs est basé sur le principe du miniséquençage dont le produit est détecté par une lecture de fluorescence polarisée. La technique consiste en un miniséquençage fluorescent (Technologie FP-TDI ou Fluorescence Polarization Template-direct Dyeterminator Incorporation).
A) Protocole Le miniséquençage est réalisé sur un produit obtenu après amplification par PCR à partir de l'ADN génomique de chaque individu de la
population d'individus d'un fragment de séquence nucléotidique de !'EPO.
Le génotypage requiert donc 5 étapes : 1) Amplification par PCR 2) Purification du produit de PCR par digestion enzymatique 3) Elongation de l'oligonucléotide amorce 4) Lecture 5) Interprétation de la lecture Etape 1) L'amplification PCR de la séquence nucléotidique du gène EPO qui couvre la région génique contenant le polymorphisme de type SNP fonctionnel conforme à l'invention est effectuée pour chaque individu de la population d'individus.
La population d'individus est composée d'ADNs génomiques fournis par l'institut Coriell aux Etats-Unis.
Les 249 individus se répartissent comme suit :
POPULATION DESCRIPTION NOMBRE D'INDIVIDUS 1 Afro Américain 50 2 Amérindien du Sud Ouest 5 3 Sud Américain (Andes) 10 4 Caribéen 10 5 Caucasien 60 6 Chinois 10 7 Grec 8 8 Ibérien 10 9 Italien 10 10 Japonais 10 11 Mexicain 10 12 Moyen-Orient 20 13 Individus du Pacifique 7 14 Jndo-Pakistanais 9 15 Sud Américain 10 16 Asie du Sud 10
L'amplification PCR est réalisée à partir d'amorces que l'homme du métier peut facilement déterminer à l'aide de la séquence nucléotidique ID SEQ NO 1.
Les amorces sont les suivantes : ID SEQ No 3 et ID SEQ ? 4.
Ces séquences nucléotidiques permettent d'amplifier un fragment d'une longueur de 626 nucléotides, du nucléotide 2192 au nucléotide 2817 dans la séquence nucléotidique ID SEQ NO 1.
Le volume réactionnel est de 5 ut par échantillon comme décrit dans le tableau suivant :
I1 a été montré que Uncaria Tomentosa possède une activité anti inflammatoire. Cette propriété serait principalement due aux glycosides d'acide quinovique présents dans l'écorce de cette liane. Un extrait aqueux des écorces de Cat's Claw permet d'inhiber la toxicité cellulaire induite par le peroxynitrite en le dégradant. Elle inhibe l'expression de la nitrique oxyde synthase inductible
(NOSi) faisant inhiber l' activation de NF-KB ce qui atténue la production de NO.
I1 a été mis en évidence que cette activité anti-inflammatoire serait due à la 3s combinaison de tous les glycosides présents dans la liane (Sandoval-Chacon M. et al, "Antiinflammatory actions of Cat's claw: the role of NF-KB" publié dans
Uncaria Tomentosa du type alcaloides pentacycliques oxindoles (POA) augmente le taux de phagocytose par les granulocytes. De plus elle augmente la prolifération des lymphocytes humains B et T via les cellules endothéliales. Les POA induisent le s cellul es endothéli ale s in vitro pour libérer dans le surn age ant un facteur qui régule la prolifération des lymphocytes. Uncaria Tomentosa inhibe la prolifération des lymphoblastes et des lignées de cellules lymphoblastoides. Ces alcaloides agissent comme un régulateur des réponses immunes humaines (Wurm Martin, et al, "Pentacyclic Oxindole Alkaloids form Uncaria Tomentosa induce hymna endothelial cells to release a lymphocyte-proliferation-regulating factor"
Les glycosides de l'acide quinovique et des stéroïdes présents dans Uncaria Tomentosa posséderaient une activité antivirale contre le Virus Vesiculaire Stomatitis à des valeurs de concentrations minimales inhibitrices de -60 mg/ml. Une activité anti-leucémique a été montrée par les POA qui inhibent la croissance des cellules leucémiques HL60 et U937 (Keplinger Klaus, et al, "Uncaria Tomentosa (Willd.j DC- Ethnomedicinal use and new pharmacological, toxicological an bonatnical results" publié dans Journal of
2s Ethnopharmacology, 64, 23-34, (1999)).
Uncaria Tomentosa stimulerait aussi la production d' interleukines IL 1 et IL6 par les macrophages. Elle posséderait donc une action immunostimulante (Lemaire I. et al, " Stimulation of interleukin-1 and -6 production in alveolar macrophages by the neotropical liana, Uncaria Tomentosa (una de gato) publié
b) Activité anti-lipoprotéine lipase de Uncaria Tomentosa: bl-a) Préparation d'un extrait hvdroalcoolique de la liane du Pérou Uncaria Tomentosa A partir de l'écorce et/ou des racines de la plante entière de la liane du s Pérou Uncaria Tomentosa disponible dans le commerce, on prépare un extrait alcoolique de la manière suivante: On broie 50 grammes de l'écorce ou 30 grammes de la plante entière, très fnement. Rajouter à ce broyat 500 ml d'une solution aqueuse éthanolique à 70% 0 d'éthanol vol/vol. Chauffer à 65 C et porter à reflux pendant 2 heures. Ensuite, l'alcool est évaporé puis le précipité restant dans la solution aqueuse est éliminé par c entrifugati on. Le surnage ant obtenu peut 8tre utilisé tel quel ou de préférence être lyophilisé et constitue l'extrait sec de liane utilisé selon l'invention selon le
bl-b) Préparation d'un extrait aoueux de la liane du Pérou Uncaria Tomentosa. L'extraction est réalisée telle que décrite dans le paragraphe bl-a mais en présence d'eau sans nécessité de chauffage, par exemple à une température
valeurs opposées-Iref +Iref, est continuellement intégré dans un intégrateur INT au cours d'une durée d'intégration Tc.
La tension de sortie de l'intégrateur est continuellement comparée à une référence de comparaison, ici par exemple une tension nulle, dans un comparateur analogique CMP. Le signal de sortie CMPO du comparateur est alors échantillonné dans une bascule B6 ("flipflop") au rythme d'un signal d'horloge CLK. La sortie de la bascule B6 fournit donc périodiquement, par exemple toutes les 30,5us les résultats des comparaisons successives au cours de la durée d'intégration, des résultats successifs correspondant de l'intégration avec la tension de référence.
Un commutateur, par exemple un multiplexeur MUX1 sélectionne alors successivement l'une ou l'autre des deux valeurs opposées-Iref, +Iref, du courant de référence en fonction des résultats successifs des comparaisons.
On va alors comptabiliser sur ladite durée d'intégration Tc (par exemple environ 250ms), le nombre de fois où l'une des deux valeurs opposées a été sélectionnée, par exemple le nombre de fois où la valeur +Iref a été sélectionnée. Cette comptabilisation va s'effectuer dans le bloc numérique BNM et le résultat de cette comptabilisation est représentatif de la quantité de charge qui a traversé la résistance pendant ladite durée d'intégration.
En effet, à la fin de chaque période du signal d'horloge, la tension de sortie Vc de l'intégrateur est comparée à la tension de référence, ici 0 volt. Si la tension Vc est positive, alors pour la période suivante, c'est la valeur +Iref qui est sélectionnée. Dans le cas contraire, c'est la valeur-Iref qui est sélectionnée.
La boucle tend alors à maintenir la tension Vc proche de la valeur de référence, c'est-à-dire proche de 0 volt. A cet égard, il est nécessaire que la valeur absolue du courant de référence soit supérieure à la valeur absolue du courant lin. La limite supérieure du courant Iref sera déterminée par l'homme du métier compte tenu des caractéristiques de l'intégrateur, et notamment de la valeur du condensateur qui fait partie de cet intégrateur.
Comme on le verra plus en détails ci-après, un compteur CPT2 s'incrémente de 1 à chaque fois que la valeur Iref est sélectionnée, et ne s'incrémente pas lorsque la valeur-Iref est sélectionnée. Après N périodes du signal d'horloge CLK, définissant la durée d'intégration, on note d la valeur du compteur CPT2.
Et, si l'on note D, la différence d-N/2, alors on montre que D est proportionnel à l'intégrale du courant lin sur la durée d'intégration, et par conséquent proportionnel à l'intégrale du courant ayant traversé la résistance de mesure RM. D fournit donc une image de la quantité de charge ayant traversé ladite résistance RM.
La figure 3 illustre plus en détails une réalisation différentielle du bloc analogique BAN.
Plus précisément, le bloc BAN comporte une interface d'entrée comportant ici deux bornes BPS et BMS respectivement connectées aux deux bornes de la résistance de mesure RM. L'interface d'entrée comporte par ailleurs deux résistances Rs. L'interface d'entrée délivre donc le courant lin qui est représentatif du courant traversant la résistance de mesure RM.
Le bloc analogique BAN comporte par ailleurs une interface de référence comportant une première borne connectée à la tension de référence Vref, et une deuxième borne connectée à la masse. Cette interface de référence comporte par ailleurs une résistance Rr délivrant le courant Iref.
Le multiplexeur MUX1 des moyens de sélection est ici connecté entre les deux bornes de l'interface de référence et est par conséquent capable d'inverser la connexion de ces deux bornes de façon à délivrer sélectivement les deux valeurs opposées du courant de référence, à savoir les valeurs +Iref et-Iref.
Le gain est fixé par le rapport des résistances Rs/Rr. Il est égal à Vref/ # Vinmaxl où Vinmax désigne la tension maximale aux bornes de la résistance de mesure.
Le rapport Rs/Rr doit être choisi de telle sorte que # Iref # > # Iin I. A titre d'exemple, on choisit un rapport Rr/Rs égal à 20, avec Rr égale à 4MQ et Rs égale à 200kQ.
Les bornes de sortie respectives des interfaces d'entrée et de référence sont reliées ensemble de telle sorte que le courant global Ig est égal à la somme du courant lin et du courant Iref.
L'intégrateur INT est formé ici d'un amplificateur opérationnel OPA contre-réactionné par un condensateur C. L'amplificateur opérationnel OPA possède une entrée de référence pour recevoir une tension de référence qui permet de fixer la tension de mode commun.
Suivant la figure 1, le système de réglage selon l'invention comprend un montant 1 sur lequel est assemblé un support 2 constitué par une plaque triangulaire Tonne d'équerre qui sera décrite plus en détail ci après. Tel qu'illustré sur la figure 1, deux montants 1 peuvent être assemblés parallèlement un élément porteur ou support vertical (non représenté) tel qu'un mur, deux supports 2 étant ensuite utilisés pour permettre le montage d'une tablette ou plateau 3 horizontalement. Bien entendu, plusieurs supports peuvent être assemblés sur un même montant pour permettre le montage de différentes tablettes.
En référence aux figures 2 et 3, chaque montant 1 comprend deux profilés 4, 5 présentant chacun une première rainure 4a, 5a s'étendant d'une extrémité à l'autre et permettant l'assemblage d'une crémaillère 6 de forme parallélépipédique munie de crans entre les deux profilés. Les profilés et la crémaillère sont par exemple en bois et sont assemblés de manière fixe par exemple par collage et/ou au moyen de vis, de telle sorte que les deux profilés 4, 5 soient espacés l'un de l'autre d'une distance déterminée d en formant une gorge 7 longitudinale vers laquelle sont orientés crans de la crémaillère. Les crans sont constitués des renfoncements 8 triangulaires comprenant une paroi inclinée et une paroi horizontale 8b orientée vers le haut lorsque le montant est fixé sur le mur, les crans étant régulièrement espacés les uns des autres définissant un ensemble de surfaces planes verticales 9. Les profilés 4, comprennent en outre une seconde rainure 10 longitudinale s'étendant également d'une extrémité à l'autre des profilés. Ces secondes rainures 1 débouchent sur la gorge 7 formée par l'assemblage des profilés avec la crémaillère et sont disposées en vis-à-vis l'une de l'autre.
profilés possèdent au moins une rainure transversale 1 s'étendant de seconde rainure 10 longitudinale à la face principale des profilés est destinée à être orientée vers l'extérieur parallèlement au mur lorsque le montant est assemblé audit mur. Le montant peut assemblé directement sur le mur, par exemple au moyen de vis traversant la crémaillère et/ou les profilés. Cet assemblage peut également être effectué l'intermédiaire de pattes fixées à la fois au mur et montant, exemple à ses extrémités, en prenant appui sur les faces principales des profilés. Le bord de la crémaillère muni des crans les bords des profilés munis des rainures longitudinales constituent respectivement le fond et les parois longitudinales de la gorge 7.
Suivant les figures 4 et 5, le support en forme d'équerre constitué d'une plaque triangulaire présentant deux bords perpendiculaires, un premier bord supérieur 12 dit porteur, sur lequel tablette précitée viendra en appui, et un deuxième bord vertical 13 d'assemblage, l'arête formée par ces deux bords étant tronquée pour former un chanfrein 14. Une pièce d'assemblage 15 comprend une plaquette 16 munie d'une protubérance 17. La plaquette 16 est encastrée dans un évidement 14a pratiqué dans le chanfrein 14 et est fixée celui-ci au moyen d'une vis 18 passant par un perçage 16a de ladite plaquette. Un pion cylindrique 19 est inséré dans un perçage (visible la figure 4) qui traverse de part en part la protubérance. L'axe du pion est disposé perpendiculairement aux surfaces principales 2a de la plaque et ses extrémités sont en saillie par rapport aux dites surfaces. La longueur pion est sensiblement égale ou inférieure à la distance séparant fond des rainures transversales des profilés d'un montant. pion peut être monté sur la protubérance de manière fixe ou mobile. bord vertical 13 comprend une partie saillante triangulaire 20 dont la forme complémentaire de celle des renfoncements 8 de la crémaillère définis précédemment. La partie saillante présente une surface inclinée 21 et une surface droite 22 orientée vers le bas, à l'opposé du chanfrein supérieur 14, perpendiculaire au bord d'assemblage 13. Dans le présent mode réalisation, le bord vertical 13 et bord inférieur sont reliés par un chanfrein inférieur, formant un angle droit avec le bord vertical et venant dans le prolongement de la surface droite 22 de la partie saillante 20. L'épaisseur de la plaque est inférieure ou sensiblement égale à la distance d entre les profilés, correspondant à la largeur de gorge 7.