INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
On peut d'ailleurs augmenter le nombre d'introductions de découpes sur la machine en augmentant le nombre de mandrins autour de l'axe 6. Une telle machine serait par exemple très efficace pour le montage d'étuis pour l'emballage d'une seule bouteille nécessitant une très haute cadence de montage ; toutefois, le nombre de mandrins que l'on peut prévoir sur une machine à barillet du type qui vient d'être décrit, est limité par l'espace intercalaire entre deux mandrins successifs qui doit au moins permettre le déplacement libre d'un petit panneau 8 depuis une position frontale jusqu'à une position transversale lorsque le mandrin passe de la position 0 à la position 0 correspondant notamment à l'opération de jonctionnement de la caisse ; on comprend bien en effet que l'espace parcouru par le bord libre vertical du petit panneau 8 lorsque le mandrin est en position d'arrêt 0 doit être tel qu'il ne gène pas l'introduction de la découpe 13 sur le mandrin suivant.
Il est bien évident que l'ensemble des mécanismes qui ont été décrits notamment pour procéder au pliage des panneaux ou des rabats, voire pour les différents encollages, n'ont été donné qu'à titre d'exemple non limitatif du procédé selon l'invention, l'Homme du Métier pouvant solutionner au cas par cas le type de presseurs ou d'encolleurs requis dans telle ou telle variante de machine à barillet conforme à l'invention.
La vérification de l'interruption d'une séquence sensible s'effectue consécutivement à la fin de la durée de temporisation. Lorsque le compteur atteint la valeur nulle, une interruption est déclenchée et la valeur actuelle du PC est mise dans la pile, puis le programme se déroute à l'adresse définie dans la partie de la mémoire ROM plus communément appelée "vecteur d'interruption". Le concepteur du programme a pris soin d'initialiser la valeur du vecteur correspondant à l'interruption générée par la fin du comptage avec l'adresse du début de la séquence de code de l'interruption.
Ladite routine est en ROM, et donc non modifiable, ceci pour des raisons de sécurité, elle sera donc toujours exécutée.
Au début de ladite séquence de code de l'interruption, on vérifie que la valeur du PC : Val~PC mémorisée dans la pile (c'est-à-dire l'adresse de l'instruction que le microprocesseur devait exécuter s'il n'y avait pas eu d'interruption) n'est pas une valeur d'adresse de séquence sensible. Si la table TAU SEC n'existe pas ou est vide, le test n'est pas effectué et le programme exécute directement la nouvelle séquence de code. Sinon, le programme de la routine extrait la valeur Val~PC de la pile et recherche dans la table TAB~SEC entre quelles valeurs d'adresse elle se situe.
Si les valeurs sont du type [Adrdeb AdrfinÙ], le programme a été interrompu pendant une séquence sensible, la carte peut renvoyer un message indiquant que sa sécurité est atteinte et peut se bloquer. Si les valeurs sont du type JAdrfini , AdrdebJ+1 t le programme a été interrompu pendant une séquence non sensible, le programme exécute alors la nouvelle séquence de code dont l'adresse de début a été mémorisée lors du traitement du point d'orientation.
D'autres modifications font également partie de l'esprit de l'invention.
Annexe 1 Voici ci-dessous une partie de code exécutable d'un programme principal, ce code est écrit en assembleur MOTOROLA 6805: adr~0 LDX #01 Chargement du pointeur avec numéro du point d'orientation JSR INS~ORT Saut au point d'orientation NOP adr 1 LDX #080H Chargement de la valeur héxa décimale 80 dans le pointeur X.
LDA ,X Chargement de l'accumulateur A avec le contenu de l'adresse 80.
BEQ V~ZERO Branchement si égal zéro à V ZERO, sinon instruction suivante adr 2 LDB #010d Chargement de l'accumulateur B avec la valeur décimale 10 adr~3 MUL multiplication de A par B STA RegH Mémorisation du contenu de H dans l'accumulateur A.
STB Regel Mémorisation du contenu de L dans l'accumulateur B.
JSR Ecrit~Mot V~ZERO JMP Suite Annexe 2 Adri LDB #020d JMP adr~3
TUBE A RAYONS X COMPORTANT UNE SOURCE D'ELECTRONS A MICROPOINTES ET DES MOYENS DE FOCALISATION MAGNE TIQUE DESCRIPTION DOMAINE TECHNIQUE La présente invention concerne un tube à rayons X comportant une source d'électrons à micropointes ( microtips ).
L'invention s'applique notamment à l'analyse par absorption de rayons X au travers d'objets minces ou de couches minces, par exemple pour faire des observations radiographiques d'objets minces avec une très bonne résolution dans la mesure où la source de rayons X (qui fait partie du tube et qui est le lieu d'où sont émis les rayons X) est extrêmement bien définie c'est-à-dire a des bords francs et/ou une intensité contrôlée sur l'ensemble de la zone d'émission, cette zone d'émission pouvant être de petite taille ou au contraire très étendue.
L'invention permet aussi de radiographier des liquides circulant dans des canalisations enterrées de très petites dimensions et de faible épaisseur.
Elle s'applique en outre au domaine médical et en particulier à la mammographie à partir d'une source ponctuelle de rayons X.
L'invention s'applique aussi à l'analyse par fluorescence X.
Certes les rayons X de faible énergie ont des parcours de courte longueur. On peut néanmoins faire une analyse par fluorescence des éléments légers (Ca, Mg, etc.) grâce aux rayons X mous générés dans un tube conforme à l'invention et ceci avec une grande précision spatiale, dans la mesure où la source de rayons X est extrêmement bien définie.
La qualité des acides nucléiques libérés par l'étape de vortex est vérifiée sur gel d'agarose 0,8%.
10 pl du lysat sont déposés par puits, la migration est réalisée sous voltage constant (150V) et le gel est coloré au bromure d'éthidium (BET) avant observation sous rayonnement ultra-violet.
La quantité d'acides nucléiques libérés par l'étape de vortex est déterminée par détection spécifique selon la technique d'hybridation dite sandwich en utilisant l'appareil Vidas commercialisé par bioMérieux (France). Des sondes oligonucleotidiques de capture et de détection spécifiques des acides nucléiques de S. epidermidis (voir le brevet EP 0632269) ont été choisies.
Les oligonucleotides de capture et de détection ont respectivement pour séquence : 5'-GACCACCTGTCACTCTGTCCC-3' (SEQ ID Nô:1) et 5'GGAAGGGGAAAACTCTATCTC-3' (SEQ ID Nô:2).
La sonde de détection est marquée par couplage avec la phosphatage alcaline (PA). L'hybridation spécifique de ces sondes avec les acides nucléiques libérés dans le lysat est fonction de la quantité d'acides nucléiques présents, mais aussi de leur accessibilité pour les sondes utilisées.
Deux protocoles d'amplification spécifiques des molécules d'ADN et d'ARN de S. epidermidis ont été réalisés à partir des lysats recueillis pour vérifier si les acides nucléiques libérés par vortex peuvent être amplifiés : un protocole PCR pour l'amplification de 1'ADN et un protocole NASBA pour l'amplification de l'ARNrl6S.
Protocole PCR : la technique de PCR suivie est celle décrite par Goodman dans PCR stratégies, Ed : Innis, Gelford et Sninsky Académie press 1995, pp 17-31. Deux amorces d'amplification ont été utilisées, elles présentent les séquences suivantes Amorce 1: 5'-ATCTTGACATCCTCTGACC-3' SEQ ID NO:3 Amorce 2: 5'-TCGACGGCTAGCTCCAAAT-3' SEQ ID NO:4 Les cycles de température suivants ont été utilisés 1 fois 3 minutes 940C 2 minutes 65"C 35 fois 1 minute 720C 1 minute 94"C 2 minutes 65"C 1 fois 5 minutes 720C Protocole NASBA : la technique de NASBA suivie est celle décrite par Van der Vliet et al., J. Gen.
Microbiol. 1993, 139 : 2423. Deux amorces d'amplification ont été utilisées, elles présentent les séquences suivantes Amorce 1: 5' -GGTTTGTCACCGGCAGTCAACTTAGA-3' Amorce 2: 5' -TCGAAGCAACGCGAAGAACCTTACCA-3' 10 pl de lysat ou 5 pl de lysat sont utilisés pour chaque essai PCR et NASBA, respectivement. Les amplicons produits par PCR sont observés sur gel d'agarose 0.8% et quantifiés sur Vidas selon le protocole décrit ci-dessus.
Les amplicons produits après NASBA sont détectés et quantifiés sur microplaque par hybridation avec une sonde de capture et une sonde de détection spécifique de S. epidermidis, selon la méthode décrite par P. Cros et al., Lancet 1992, 240 : 870. La sonde de détection est couplée à la peroxidase de Raifort (HRP). Les deux sondes présentent les séquences suivantes Sonde de capture: 5'-GATAGAGTTTTCCCCTTC-3' (SEQ ID NO: 7) Sonde de détection: 5'-GACATCCTCTGACCCCTC-3' (SEQ ID NO: 8) Exemple 1 : Influence du diamètre des billes et du coefficient a sur l'efficacité de la lyse par vortex a- Influence du diamètre des billes.
Le protocole de lyse a été réalisé comme décrit ci-dessus à partir d'une suspension initiale de Staphylococcus epidennidis (5.1ou cellules/300 pl) en présence de 90 pl de différents mélanges de billes caractérisées par des diamètres différents, pendant 2 minutes par essai. Les diamètres testés sont compris entre 1 et 500 pm; les mélanges testés sont les suivants A : microbilles de verre de diamètre compris entre 1 et 500 pm, B : microbilles de verre de diamètre compris entre 50 et 100 pm, C : microbilles de verre de diamètre compris entre 90 et 150 pm, D : mélange homogène de billes de diamètre 100 pm, E : mélange homogène de billes de zirconium de diamètre 100 pm F : mélange homogène de billes de zirconium de diamètre 500 pm G : mélange (50/50 v/v) de billes de zirconium de diamètre 100 et 500 pm, Comme l'indique la figure 1, la lyse cellulaire obtenue est la plus efficace en présence de billes de diamètre compris entre 90 et 150 pm, et de préférence égal à 100 pm. Les mesures de densité optique à 550nm des échantillons recueillis après 2 minutes de vortex dans ces conditions indiquent que le pourcentage de lyse de S. epidermidis est compris entre 60 et 70% avec ce diamètre de billes. Seule des différences négligeables de pourcentage de lyse sont observées en fonction de la nature des billes (verre ou zirconium) de même diamètre.
Par contre l'utilisation de billes de diamètre inférieur ou supérieur à 90 jusqu'à 150 pm, telles les mélanges de billes de diamètre 1 à 50 pm, 50 à 100 pm, 100 à 500 pm, ou le mélange homogène de billes de diamètre 500 pm entraine une diminution du pourcentage de lyse. L'analyse sur gel d'agarose 0,88 des acides nucléiques libérés dans les lysats, présentée dans la figure 2, montre que les molécules d'ADN et d'ARNr sont bien conservées puisque leur profil de migration sur gel d'agarose 0,8% est le même que celui des molécules d'ADN et ARNr bactériens purifiés et commercialisés. Les acides nucléiques relargués ont également le même profil de migration quel que soit le diamètre des billes utilisées pour la lyse cellulaire. Les acides nucléiques libérés sont également détectables par analyse Vidas dont le protocole est décrit ci-dessus. Toujours d'après la figure 2, la quantité d'acides nucléiques libérés dans les lysats mesurée par analyse Vidas reflète le pourcentage de lyse obtenu. En parallèle, il a été démontré que 1'ADN ou lARNr 16S de chaque lysat peut être amplifié par protocole PCR ou NASBA spécifiques de S. epidermidis, qui sont décrits dans la partie protocole test general ci-dessus. b- Influence du coefficient a - tube Eppendorf Le protocole de lyse a été réalisé en présence de billes de diamètre 100 pm, pendant 2 minutes. Des tubes Eppendorfs identiques ont été utilisés pour tous les essais. Le volume de la suspension bactérienne a été fixé à 300 pl /tube pour chaque essai, et le volume de billes a varié entre 1 et 300 pl/tube. Soit Vb, le volume apparent des billes et Ve, le volume de l'échantillon liquide tel que Vb < Ve avec Ve = a.Vb avec a étant un nombre réel positif différent de 0. Le coefficient a a varié de 1 à 300. Après l'étape de vortex, les échantillons recueillis sont analysés par mesure de densité optique à 550 nm, les acides nucléiques libérés dans le lysat sont observés sur gel d'agarose 0,8% et quantifiés par analyse Vidas.
La figure 3 indique que la lyse de S. epidermidis est efficace pour des valeurs du coefficient a comprises entre 1,4 et 10 : le pourcentage de lyse est compris entre 30 et 70%. Pour des valeurs de a 10, le volume de billes est faible et la probabilité de rencontre et de choc mécanique entre billes et cellules est réduite. De préférence la lyse cellulaire est plus efficace pour des valeurs de a comprises entre 1,4 et 3,3 : le pourcentage de lyse étant compris entre 40 et 70%. L'analyse sur gel d'agarose 0,8% du lysat montre que les profils de migration des acides nucléiques libérés ne sont pas modifiés, quelles que soient les valeurs de a. La quantité d'acides nucléiques mesurée par analyse Vidas est directement corrélée au pourcentage de lyse.
- tube Falcon Une même étude a été réalisée en remplaçant les tubes Eppendorf par des tubes Falcon en polypropylène (Vc = 6ml). La figure 4 indique que la lyse de S. epidermidis est efficace pour des valeurs du coefficient a comprises entre 1,4 et 10 : le pourcentage de lyse est supérieur à 20%. De préférence, la lyse cellulaire est plus efficace pour des valeurs de a comprises entre 1,4 et 3,3 : le pourcentage de lyse est compris entre 65 et 85%.
-forme disque On a utilisé une carte de dimensions 1 = L = 8,5cm et h = 0.4 cm. Un ou plusieurs trous, définis comme des puits, sont réalisés de hauteur constante et égale à la hauteur de la carte (soit 0.4 cm) et de diamètre constant.
Ces puits sont recouverts d'un film de chaque côté, et chaque puits est rempli d'un mélange de billes de diàmètre 100 pm de volume apparent Vb, de 10 billes de fer de diamètre 2 mm et d'une suspension cellulaire de volume Ve.
La carte ainsi définie est maintenue sur le vortex.
La taille du spot électronique sur l'anode est également de l'ordre de 1 pm2 ou même inférieure avec des champs magnétiques plus intenses.
On engendre ainsi des rayons X (ayant la référence X sur les figures 1 à 4) à partir d'un microfoyer F1 dont la taille est de l'ordre de 1 um2.
Comme on le voit sur la figure 1, l'enceinte 2 est fermée par une fenêtre en béryllium 14.
Les rayons X quittent l'anode 10, traversent la fenêtre 14 qui est transparente aux rayons X et qui assure également l'étanchéité de 1' enceinte.
Ces rayons X sont alors disponibles pour l'utilisation souhaitée.
Les rayons X engendrés dans l'anode 10, qui se propagent à l'intérieur de celle-ci (vers l'arrière), ne sont pas utilisés.
On précise que la source à micropointe 4 doit être située à une distance convenable de l'anode 10 afin que - les retours d'ions positifs (qui se propagent dans le sens des potentiels décroissants) n'endommagent pas la source ou cathode 4 et - cette cathode ne fasse pas écran ou ombrage aux rayons X émis.
De préférence, afin d'éviter les retours d'ions, une grille intermédiaire 17, qui a une grande transparence vis-à-vis des électrons émis par la micropointe 6, est disposée entre la source 4 et l'anode 10, à proximité de la source 4, sur le trajet du faisceau d'électrons, à quelques millimètres de la source 4.
Cette grille 17 est par exemple réalisée en un matériau conducteur et ajourée à 90% pour laisser passer les électrons.
Par ailleurs, cette grille 17 est portée (par des moyens non représentés) à un potentiel supérieur à celui de la grille d'extraction 16. Il peut être soit très inférieur à celui de l'anode, par exemple de l'ordre de 200 V à 500 V ou alors, si la grille est extrêmement transparente aux électrons, légèrement supérieur à celui de l'anode afin d'empêcher les ions positifs produits sur l'anode par l'impact électronique de remonter jusqu'à la cathode.
Un deuxième exemple du tube à rayons X de la présente invention est schématiquement représenté sur la figure 2.
Le tube à rayons X de la figure 2 est semblable à celui de la figure 1 excepté que, dans le cas de la figure 2, la source d'électrons 4 comprend plusieurs micropointes 6 qui sont formées sur le substrat 8 et dont les axes Z sont sensiblement parallèles.
L'anode 10 est encore placée en regard de ces micropointes.
L'aimant ou les bobines de Helmotz 12 sont encore prévus pour créer le champ magnétique B homogène dans le volume compris entre la source 4 et l'anode 10, ce volume étant délimité par les traits mixtes t que l'on voit sur la figure 2.
Ce champ magnétique est sensiblement parallèle aux axes Z des micropointes.
Le champ magnétique B focalise les électrons émis par ces micropointes de sorte que la trajectoire moyenne des électrons est sensiblement parallèle à ce champ magnétique B dans le volume délimité par les traits mixtes t.
Volume du milieu de culture : 25 ml.
Température : 20 à 22 C.
Lumière : 24 h obscurité.
Humidité non contrôlée.
Agitation: plateau agitant rotateur 95 tours par minute.
RESULTATS: 1] L'INFLUENCE DE LA CO-CULTURE SUR LA CROISSANCE DES CALS NON EMBRYOGENES: Après 21 jours, la production de biomasse des cals non embryogènes témoins (cultivés dans le système avec le support d'immobilisation de polyuréthanne sans tissus embryogènes immobilisés) est de 1,2 fois à 1,8 fois plus grande que la biomasse produite par les cals non embryogènes en co-culture. Après la fin du premier cycle de culture (42 jours), les différences sont encore plus grandes : le poids frais gagné par le témoin est de 1,7 fois à 2,3 fois supérieur à celui atteint par les cals non embryogènes en coculture.
En d'autres termes, la culture en présence de tissus embryogènes limite le développement des cals non embryogènes.
En 3 semaines, les cals non embryogènes co-cultivés peuvent remplir toute la cavité de la chambre de culture et ce qui permet leur division en 3 parties. Les cals non embryogènes paraissent alors plus friables que sur milieu solide.
Après 6 semaines, des amas de grandes cellules transparentes peuvent être observés. Ils forment des glomérules plus dures que l'ensemble des cals, qui contiennent également des zones nécrotiques.
2] OBSERVATION DES PREMIERS TISSUS EMBRYOGENES APRES 3 MOIS DE CO-CULTURE: Aucun tissu embryogène n'a été observé pour les différents témoins testés. Dès lors, seuls les résultats concernant les co-cultures sont présentés dans le tableau 7.
Après trois mois de culture, la formation des premiers tissus embryogènes est visible.
Pour les deux conditions testées, au moins un cal par conteneur a initié des tissus embryogènes. Ce phénomène est reproductible.
Tableau 8 : Initiation de tissus embryogènes à partir de cals non embryogènes issus d'un génotype (Q40).
Nombre de Nombre de Nombre de ESM induit/ nombre REPETITION Milieu MillicellTM MillicellTM MillicellTM de MillicellTM au départ en final avec ESM au départ #/1 3 6 3 3/3(100%) R1 #/1 3 5 2 2/3(67%) #/1 18 35 7 7/18(38%) R2 #/1 9 12 2 2/9(22%) #/1 18 42 9 9/18(50%) R3 #/1 9 21 4 4/9(44%) 3] OBTENTION D'EMBRYONS COTYLEDONAIRES A PARTIR DES DIFFERENTES SOUS-LIGNEES INITIEES PAR CO-CULTURE: A titre d'exemple, les 4 tissus embryogènes obtenus à partir du clone Q40 sont aptes à former des embryons cotylédonaires de bonne qualité. Comme il a été mentionné précédemment, les rendements sont très variables d'une lignée à une autre.
Tableau : Taux de multiplication et rendements en embryons cotylédonaires par gramme de matière fraîche des différentes sous-lignées régénérées par co-culture à partir du génotype Q40. Deux lignées par condition d'induction (CIN et CIP) ont été testées.
Milieu Lignée Taux de Embryons d'induction multiplication cotylédonaires/g matière fraîche CIN 1 2,4 50 2 2,2 44 1 5,2 42 2 4,8 172 Le pourcentage de germination des embryons est de l'ordre de 80% pour l'ensemble des lignées et plusieurs centaines de plantes de ce clone Q40 sont actuellement en croissance en pépinière.
Essai ne10: Charge contenant un mélange de DMDS (75 % du soufre) et de TDM (25 % du soufre) dans l'hexadécane.
Essai n 11 . Charge contenant un mélange de DMDS (50 % du soufre) et de TDM (50 % du soufre) dans lthexadécane.
Essai ne12: Charge contenant uniquement du TDM dilué dans l'hexadé- cane.
- Conditions de présulfuration : Après son chargement dans le réacteur de présulfuration "in-situ" décrit précédemment, le cataly seur est séché à 1300C sous courant d'azote pendant 16 heures, à pression atmosphérique. Le réacteur est ensuite mis en pression à 15 bars d'hydrogène, et à la température de 1300C on injecte l'hydrogène avec un débit de 30 I/h mesuré à pression atmosphéri que ainsi que la charge liquide avec un débit de 300 ml/h pendant la première demi-heure, puis avec un débit de 150 ml/h. Après un premier palier de une heure à 1300C, une première montée en température à 45"C/h est effectuée jusqu'à 220"C avec un palier de une heure à 220"C, puis une montée en température à 40"C/h jusqu'à 300"C est suivie d'un palier final de 2 heures à 300 C. Ces opérations de sulfuration sont effectuées à la pression de 15 bars.
Les trois échantillons récupérés après leurs sulfurations respectives ont été traités sous argon au sohxlet par de l'isooctane au reflux et séchés ensuite à 1200C sous courant d'argon.
V. 2 Tests d'activités en HDS du thiophéne des catalyseurs présulfurés Après leur sulfuration "in-situ", les trois échantillons (N"10 ; N011 ; N"12) ont été soumis au protocole opératoire du test de référence (partie I) pour la mesure d'activité HDS: - broyages et tamisages à 0,2-0,5 mm sous argon - chargement dans le réacteur expérimental d'une quantité de cataly seur déterminée pour obtenir un même taux de transformation du thiophène que dans le cas du test de référence (sulfuration à l'H2S du catalyseur Co-Mo/alumine KF 742-1.3 Q); - traitement des catalyseurs par le mélange H2S-H2 à 15 % de H2S selon le protocole du test de référence (partie l); - test HDS du thiophéne selon le protocole du test de référence (partie 1).
Les résultats obtenus dans les tests d'activité HDS pour chacun des trois échantillons de catalyseur (N"10; N"11 ; N"12) sont présentés dans le tableau cidessous sous forme de vitesses de conversion du thiophène exprimées en kg/heure de thiophène transformé par kg de catalyseur. Ces valeurs sont traduites en activités relatives massiques (RWA) sur la base d'une RWA = 100 attribuée au test de référence (partie 1).
Pour l'échantillon référence (DMDS) il s'agit de l'échantillon de catalyseur présulfuré au DMDS (partie III).
Présulfuration "in-situ'1 HDS du thiophène Echantillon DMDS (% du S) TDM (% du S) Vitesse RWA catalyseur kg/h.kg.cata Référence (DMDS) 100 0 5,88 131,3 N010 75 25 ~ 6,32 141,0 N"11 50 50 6,20 138,3 N 12 0 100 6,52 145,6 VI. TESTS DU CATALYSEUR Co-MolALUMINE PRESULFURE "EX-SITU" PAR DES POLYSULFURES RSnR Ces essais ont pour but de tester le catalyseur Co-Mo/alumine KF 742-1.3 Q présulfuré par des polysulfures de type RSnR selon la technique dite "ex-situ" qui consiste à imprégner le catalyseur avec ces polysulfures et de l'activer thermiquement en atmosphère inerte, puis de terminer sa sulfuration sous hydrogène.
L'étape de présulfuration "ex-situ" a été effectuée selon le protocole qui a été mis en oeuvre dans la partie Il : imprégnation du catalyseur par une solution de polysulfure suivie de l'élimination du solvant et activation thermique dans un réacteur tubulaire en atmosphère d'azote.
La sulfuration finale sous hydrogène et enfin le test HDS du thiophène ont été réalisés comme précédemment suivant le protocole opératoire du test de référence avec son appareillage (description dans la partie 1).
Vl. 1 Présulfuration "ex-situ" du catalyseur Co-Mo/alumine par des polysulfu- res RSnR Pour ces essais, on a utilisé les polysulfures suivants - le di-tertiododécylpentasulfure de formule générale: C12H25-S5-C12H25 (commercialisé par ELF ATOCHEM sous le nom TPS 32); - le di-tertiononylpentasulfure de formule générale C9H19-S5-C9H19 (commercialisé par ELF ATOCHEM sous le nom TPS 37 ou TNPS); - le di-n-octylpolysulfure, synthétisé au laboratoire à partir de n-octyl mercaptan et de soufre par un procédé décrit dans le brevet EP 337 837; ce polysulfure de formule générale: n-C8H1 7-Sn-n-C8H 17 est dénommé NOPS.
L'analyse de ces polysulfures donne
Produit Nom Teneur en soufre S S (% poids) Di-tertiododécylpentasulfure TPS 32 31,3 Di-tertiononylpentasulfure ~ TPS 37 36,7 Di-n-octylpolysulfure NOPS 39,4 Vu. 1.1 IMPREGNATION DES POLYSULFURES RSnR AU CATALYSEUR L'incorporation au catalyseur de la quantité de soufre nécessaire à sa sulfuration, au départ sous forme de polysulfure, est réalisée par l'imprégnation de solutions de polysulfures dans un solvant.