INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
PROCEDE ET INSTALLATION POUR LA FABRICATION ET LA DISTRIBUTION SELECTIVE DE CHARGES DE MORTIER ETIOU BETON PRET A L'EMPLOI.
L'invention se rattache au secteur technique de la fabrication du mortier et du béton des installations s'y rapportant.
La fabrication industrielle du béton et du mortier dans des centrales à béton est bien connue. Le problème reste néanmoins que l'initiative du choix des compositions des composants, leur quantité reste strictement du fait du fabricant, ce qui ne correspond pas forcément aux besoins réels des utilisateurs, en fonction de la variété des applications. Par ailleurs, les dosages sont préétablis et il n'y a aucune possibilité pour les utilisateurs professionnels ou autres de modifier les compositions.
Un autre problème réside également dans l'obligation des utilisateurs à se rendre durant les heures d'ouverture des fournisseurs pour l'achat des quantités de mortier et béton souhaitées.
Par ailleurs, le développement considérable des activités de bricolage en tous genres par les individus a amené une offre de services toujours plus grande des entreprises spécialisées dans ce domaine. I1 est de plus en plus courant que les gens entreprennent eux-mêmes des activités liées au bâtiment pour la construction, rénovation, entretien des murs, sols, maisons et toutes constructions en général.
Ces personnes ont donc l'obligation d'acheter les différents composants d'un mortier ou d'un béton avec les différents ingrédients et ciments nécessaires et de réaliser personnellement les mélanges appropriés. I1 s'agit de tâches délicates, pénibles et longues. Par ailleurs, il y a toujours une grande irrégularité dans les dosages effectués de manière empirique, de sorte que les quantités et la qualité des produits fabriqués restent aléatoires. I1 en résulte ainsi toutes les conséquences sur la garantie de solidité et la tenue dans le temps des applications de béton et de mortier.
Les centrales à béton connues sont faites pour des entreprises à activités industrielles qui préparent pour leurs propres besoins des compositions données mais qui ne sont pas adaptées aux besoins variés et de faibles importances d'une multitude de bricoleurs ou de petits artisans qui peuvent avoir aussi éventuellement des besoins spécifiques. Par ailleurs, les produits provenant de la centrale à béton sont livrés en mères cubes et il n'y a aucun contrôle par l'acheteur de la quantité réelle livrée.
La démarche inventive du Demandeur a donc été de s'intéresser à cette situation de fait, d'examiner et d'étudier le problème à résoudre pour offrir aux personnes intéressées bricoleurs, artisans, ayant des besoins ponctuels et peu importants, des possibilités de vente de doses de béton et/ou de mortier prêts à l'emploi, dans toutes les circonstances, temps, lieu, dans des conditions techniques et économiques satisfaisantes par rapport aux besoins.
Ainsi, un premier but recherché selon l'invention était de créer un nouveau procédé de fabrication et de distribution du mortier et/ou béton prêts à l'emploi, qui répond à des besoins individuels de particuliers ou bricoleurs ou artisans, pour des quantités peu importantes de produits, cette fabrication étant effectuée dans des conditions de temps très rapides, avec livraison quasi immédiate.
Un autre but recherché selon l'invention était d'offrir, en particulier aux bricoleurs et artisans, dénommés clients dans la suite de la description, un service rapide à la carte en faisant intervenir activement le client lui-même dans le choix et la sélection du produit à obtenir, d'utilisations finales en accédant automatiquement à la répartition, au dosage, et au mouillage idéal en choisissant le mode de conditionnement et le poids souhaité.
Par cellules cibles selon l'invention, on entend les cellules procaryotes, les cellules de levure et les cellules eucaryotes, notamment les cellules animales, et en particulier les cellules de mammifère, notamment les cellules humaines et/ou cancéreuses. In vivo, les complexes selon l'invention peuvent être administrés au niveau de l'espace interstitiel ou luminal de tissus tels que le poumon, la trachée, la peau, le muscle, le cerveau, le foie, le coeur, la rate, la moelle osseuse, le thymus, la vessie, la lymphe, le sang, le pancreas, l'estomac, le rein, les ovaires, les testicules, le rectum, le système nerveux périphérique ou central, les yeux, les organes lymphoïdes, les cartilages, l'endothélium.
L'expression d'un gêne après transfection à l'intérieur des cellules peut être analysée par des techniques classiques telles que par exemple la détection des ARN messagers par Northern blot ou digestion à la nucléase S1 et/ou la détection de protéines par Western blot immunoprécipitation ou test fonctionnel Ce.
dernier test est particulièrement adapté lorsque le gène code pour un marqueur protéique tel que par exemple la luciférase ou la ss-galactosidase.
L'invention porte aussi sur l'utilisation de complexes tels que décrits précédemment pour la préparation d'un médicament pour le traitement du corps humain ou animal, notamment par thérapie génique. Selon une première possibilité, le médicament peut être administré directement in vivo ou par une approche ex vivo qui consiste à prélever des cellules du patient, à les transfecter in vitro selon l'invention et à les réadministrer audit patient.
L'invention concerne une composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un complexe selon la présente invention.
Selon une variante de l'invention, ladite composition pharmaceutique comprend au moins un adjuvant capable d'améliorer le pouvoir de transfection dudit complexe à l'intérieur d'une cellule cible in vitro, ex vivo ou in vivo. Plus particulièrement ledit adjuvant est choisi parmi le groupe consistant en un agent lysosomotropique tel que par exemple la chloroquine, un composé polaire protique choisi notamment parmi le propylène glycol, le polyéthylène glycol, le glycérol, ltéthanol, la 1-methyl L -2-pyrrolidone ou leurs dérivés, et un composé polaire aprotique notamment choisi parmi le diméthylsulfoxide (DMSO), le diéthylsulfoxide, le di-npropylsulfoxide, le diméthylsulfone, le sulfolane, la diméthylformamide, le diméthylacetamide, la tetraméthylurée, l'acètonitrile ou leurs dérivés.
Selon le mode d'administration choisi il est également possible d'ajouter à la composition de l'invention un support acceptable d'un point de vue pharmaceutique permettant l'administration à l'homme ou à l'animal. L'utilisation~de~ tels supports est décrite dans la lIttérature.
Un complexe ou une composition pharmaceutique selon l'invention peuvent être administrés in vivo notamment sous forme injectable, notamment par voie intramusculaire. On peut également envisager une injection par voie intratrachéale, intranasale, épidermique, intraveineuse, intraartérielle, intratumorale, intrapleurale, intracérébrale par seringue ou tout autre moyen équivalent. Selon un autre mode de réalisation, on peut utiliser des systèmes adaptés au traitement des voies aériennes ou des muqueuses tels que l'inhalation, l'instillation, ou l'aérosolisation, par voie topique, par administration orale ou tout autre moyen parfaitement connu de l'homme de l'art et applicable à la présente invention.
L'administration peut avoir lieu en dose unique ou répétée, une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration et le dosage les mieux appropriés varient en fonction de différents paramètres tels que par exemple l'individu ou la maladie à traiter, ou encore de l'acide nucléique à transférer ou de l'organe/tissus cible.
Enfin, l'invention concerne une cellule transfectée par un complexe ou une composition pharmaceutique tels que définis précédemment, particulièrement une cellule procaryote, une cellule de levure ou eucaryote, notamment une cellule animale, en particulier une cellule de mammifère, et plus particulièrement une cellule cancéreuse.
La présente invention est illustrée par les exemples 1 à 5 suivants, en référence aux figures 1 à 9.
LEGENDES DES FIGURES Figure 1 : Elle représente un schéma de synthèse des polyallylamines (PAM.) glycolilées à 50% (PAM/0.SG).
Figure 2 : cartographie du plasmide pTG11033.
Figure 3 : Influence de la charge du complexe ADN/polymère cationique substitué sur l'efficacité de la transfection.
L'efficacité de la transfection est traduite par la quantité de luciférase produite (exprimée en RLU/mg de protéine). Les colonnes grisées clair représentent les résultats observés en l'absence d'adjuvant de transfection (chloroquine (Cq)), les colonnes grisées foncé représentent les résultats observés en présence de 100au de chloroquine. PAM/0.5G: polymère polyallylamine glycolilée à 50% ; PAM/0.7G: polymère polyallylamine glycolilée à 70%.
Figure 4 : Influence de la quantité d'ADN sur la transfection. Les colonnes grisées clair représentent les résultats observés sans chloroquine (Cq), les colonnes grisées foncé représentent les résultats observés en présence de 100AM de chloroquine.
permet de renforcer l'illusion précitée.
Par ailleurs, le caractère régulier des motifs de la face extérieure de l'écran intermédiaire confère au feu un aspect de type pierre précieuse à facettes qui est remarquable sur le plan du style, car il s'écarte radicalement des objectifs habituellement recherchés en la matière. On observe à cet égard sur les figures 1 à 3 que chaque jeu de facettes en creux 33, 34 associé à une surface sphérique est délimité latéralement par deux surfaces de dépouille légèrement obliques, qui contribuent également, par les nervures 36 à angles vifs qu'elles définissent deux à deux, à donner l'effet de pierre
précieuse précité.
Bien entendu, de nombreuses variantes peuvent être
apportées à la description qui précède. Selon l'une de ces
variantes, illustrée sur la figure 5, la face intérieure de l'écran 30 est inchangée, tandis qu'à chacune des surfaces individuelles 31 sont associées non plus deux facettes, mais trois facettes, à savoir les facettes inclinées 33, 34 décrites plus haut, qui sont séparées par une facette centrale 37 perpendiculaire à la direction générale d'émission XX. Cette facette centrale 37 est destinée à conserver une quantité de lumière importante dans l'axe du feu, pour satisfaire à certains règlements en matière de photométrie. Dans une seconde variante de réalisation, non illustrée, chaque cellule de l'écran intermédiaire peut comporter sur sa face extérieure quatre facettes, à savoir deux facettes centrales faiblement inclinées par rapport au plan de l'écran, et deux facettes externes respectivement supérieure et inférieure présentant une inclinaison plus prononcée. Cette variante est adaptée notamment à la photométrie
On observera ici que, dans tous les cas, les facettes se raccordent entre elles de préférence avec continuité de premier ordre, c'est-à-dire qu'il n'existe entre elles
aucun décrochement ou gradin.
Selon une autre variante de réalisation, les facettes prévues du côté extérieur de l'écran 30 sont non plus en creux mais en saillie. Cette variante s'applique notamment lorsque l'on souhaite, à l'aide desdites facettes, accroître l'étalement assuré initialement par les surfaces
internes associées 31.
Par exemple, on peut concevoir une surface interne élémentaire 31 pour qu'elle assure un étalement de 10 aussi bien en direction horizontale qu'en direction verticale. On met à profit les facettes pour dans ce cas accroître l'étalement horizontal, par exemple pour qu'il atteigne 20 . Dans ce cas, les facettes doivent être bien entendu parallèles à une droite verticale, en se rejoignant au niveau d'une arête centrale verticale. Dans une une autre variante encore, les surfaces convexes 31 des formes de réalisation précédentes sont remplacées par des surfaces concaves. Il en résulte que le rayonnement qui traverse ces dioptres est non plus
convergent, mais divergent.
Les facettes extérieures associées gardent toutefois le même rôle, à savoir de corriger l'étalement, en direction verticale ou horizontale, donné par la surface
d'entrée 31 associée.
On observera ici que, dans le cas les sources secondaires créées sont non plus des sources réelles situées à l'extérieur de l'écran intermédiaire 30, mais des
Le séquençage de l'ADN est réalisé par la méthode de Sanger (1977) en utilisant un séquenceur automatisé sur les matrices d'ADN double brin avec le séquenceur Applied Biosystem 373 A. L'assemblage des données de séquence a été réalisé avec le logiciel SAP (Staden, 1984). Les séquences ont été analysées en utilisant le logiciel GCG (Devereux, 1984).
Les séquences nucléotidiques obtenues ont permis d'établir une séquence nucléotidique de 8159 bp (figure 3) dans laquelle sept ORFs (13-19) ont été identifiées respectivement du nucléotide 43841 au nucléotide 44806, du nucléotide 44809 au nucléotide 46053, du nucléotide 46109 au nucléotide 46819, du nucléotide 46907 au nucléotide 48436, du nucléotide 48436 au nucléotide 49638, du nucléotide 49679 au nucléotide 51145 et du nucléotide 51177 au nucléotide 51755 (numérotés à partir du site BamHI situé à l'extrémité 5' du gène ermE) et correspondant respectivement aux gènes eryBIV, eryBv, erycvl, eryBVI, eryCIV, eryCV et eryBVII, selon Liu et Thorson (1994) dont les caractérisations fonctionnelles n'avaient pas encore été identifiées. Les sept ORFs (13-19) sont dans la même direction, la lecture se faisant à partir de la région 5' du gène eryAI.
Des échantillons de E. coli XL1-blue contenant la région codante des ORFs ci-dessus ont été déposés à la CNCM le 16 juillet 1997 - le plasmide pBK6-12 comprenant la séquence codante pour l'ORF13 et pour une partie de 1'ORF14 sous le numéro I-1898 - le plasmide pNCO28 comprenant la séquence codante pour les ORFs 14 et 15 ainsi que pour une partie des ORFs 13 et 16 sous le numéro I-1901 et - le plasmide pNCO62 comprenant la séquence codante pour les ORFs 17, 18 et 19 ainsi que pour une partie de l'ORFl6 sous le numéro I-1900.
EXEMPLE 12 : construction du plasmide psIV.
L'ORF13 étant translationnellement couplé à l'ORF14 située en aval, une délétion en phase a dû être introduite.
Un plasmide d'intégration, dénommé pBIV et portant cette délétion, a été construit selon le schéma de la figure 9A.
Le plasmide pPSP4 (figure 5B) a d'abord été construit par sous-clonage du fragment PvuII-SpeI (2,7 kb) isolé à partir du plasmide pBK6-12 obtenu à l'exemple 11 et du fragment SpeI-PstI (1,6 kb) isolé à partir du plasmide pNC028 obtenu à l'exemple 11 dans le vecteur pUCl9 préalablement digéré à l'aide des enzymes de restriction SmaI et PstI.
A partir du plasmide pPSP4, le plasmide pl9BIVA a été généré en délétant le fragment BclI-NcoI de 510 pb interne à l'ORF13 et en lui substituant 45 pb venant d'un adaptateur synthétique de 54 pb. Cet adaptateur a été généré par appariement des 2 oligonucléotides complémentaires ayant les séquences suivantes SEQ A 5' AATTGATCAAGGTGAACACGGTCATGCGCAGGATCCTCGAGCGGAACTCCATGGGG 3' et SEQ B 5' CCCCATGGAGTTCCGCTCGAGGATCCTGCGCATGACCGTGTTCACCTTGATCAATT 3' créant un site BclI et un site NcoI encadrant la séquence de 45 pb.
Pour l'appariement, les deux oligonucléotides ont été mis à une concentration finale 1,8 pM dans le tampon d'hybridation NaCl 50 mM, Tris, Hcl 20 mM pH 7,4, MgC12,6H20 2 mM, chauffés pendant 5 mn à 100"C puis refroidis lentement à température ambiante. Après digestion avec les enzymes de restriction NcoI et BclI, une ligature a été effectuée dans le plasmide pPSP4 dont le fragment BclI-NcoI de 510 pb avait préalablement été éliminé. A partir du plasmide pl9BIVA ainsi généré, le fragment SacI-EcoRI (2,2 kb) portant l'ORF13 modifiée a été sous-cloné dans le plasmide pUWL218 préalablement digéré avec les enzymes de restriction SacI et EcoRI. Le plasmide d'intégration pBIV ainsi obtenu (figure 9B) a été ensuite transféré dans la souche E. coli DH5aMRC, puis utilisé pour transformer Sac. erythraea.
EXEMPLE 13 : construction d'une souche Sac. erythraea eryBIV (BIV87).
Une souche dans laquelle le gène eryBIV porte une délétion interne telle que celle introduite dans le plasmide pBIV obtenu à l'exemple 12 a été préparée par transformation des protoplastes de Sac. erythraea avec le plasmide pBIVA.
* La préparation des protoplastes, le processus d'intégration et la sélection des mutants ayant le phénotype ery ont été réalisés comme à l'exemple 3.
De plus, la présence de la délétion attendue dans le chromosome (délétion de 510 bp du nucléotide 43872 au nucléotide 44382 de la séquence de la figure 3) et son remplacement par la séquence synthétique de 45 pb a été confirmée par analyse génomique par Southern blot ainsi que par PCR selon les conditions décrites à l'exemple 3.
Par hybridation Southern sur l'ADN génomique digéré par l'enzyme de restriction XhoI, en utilisant comme sonde l'oligonucléotide B4-R ayant la séquence suivante B4-R 5' AACTCGGTGGAGTCGATGTCGTCGCTGCGGAA 3' correspondant au brin complémentaire de la région d'ADN située de la position 44687 à la position 44718 de la séquence de la figure 3, une bande de 5,4 kb à partir de la souche sauvage et une bande de 2,7 kb à partir du mutant BIV87 ont été détectées. Les résultats montrés à la figure 15 indiquent la présence d'un site XhoI supplémentaire à une distance de 2,7 kb en amont du site XhoI situé à la position 47114 de la séquence de la figure 3 confirmant ainsi l'incorporation de l'adaptateur dans le chromosome de mutant, telle qu'attendue par l'incorporation de l'adaptateur synthétique ci-dessus utilisé pour générer le plasmide pBIV.
L'amplification par PCR a été effectuée en utilisant l'oligonucléotide ayant la séquence suivante B4-S 5' CAATATAGGAAGGATCAAGAGGTTGAC 3' correspondant à la région d'ADN située de la position 43652 à la position 43678 de la séquence de la figure 3 et l'oligonucléotide B4-R ayant la séquence indiquée ci-dessus, permettant d'encadrer par amplification PCR la région portant la délétion interne à 1'ORF13. L'analyse par amplification par PCR a permis de détecter une bande d'environ 1 kb dans la souche sauvage et une bande d'environ 500 pb dans le mutant BIV87 de façon identique au signal obtenu avec le plasmide pBIV87 (figure 16).
L'ensemble des résultats d'analyse par Southern et par PCR confirme la présence de la délétion de 510 pb et de l'adaptateur synthétique au niveau du chromosome du mutant.
RMN-1H (DMSO): 0,85 (t, 3H); 1,85 (q, 2H); 3,()7 (d, 1H); 3,47 (d, 1H); 5,25 (s, 2H); 5,39 (d, 1H); 5,51 (d, 1H); 6,()5 (s, 1H); 7,39 (s, 1H); 7,89 (d, 1H); 8,19 (d, 1H); 8,29 (s, 1H); 8,67 (s, 1H).
RMN-C13 (DMSO): 8,40 ; 36,46 ; 42,47 ; 50,70; 61,42 ; 73,31; 100,00 ; 122,96 127,31; 127,42; 128,87 ; 131,11; 132,12; 144,34; 146,53 ; 153,38 ; 155,88; 159,20; 172,()4.
IR (KBr) : 1()69 ;1483 ; 1606 ; 1741.
Préparation 16 : 9-chloro-5-éthyl- 10-fluoro-4,5-dihydro-5-hydroxy- lH- oxepino [3',4':6,7]indolizino[1,2-b]quinoléine- 3,15(4H,13H)-dione Ce composé est obtenu à partir de la 4-chloro-3-fluoroaniline selon la méthode illustrée par les étapes 4.i., 4.j. et 4.k. de la préparation 4. Solide jaune. p.f. > 250 C RMN-1H (DMSO): 0,85 (t, 3H); 1,85 (q, 2H); 3,07 (d, 1H); 3,45 (d. 1H); 5,25 (s, 2H); 5,39 (d, 1H); 5,51 (d, 1H); 6,()5 (s, 1H); 7,40 (s, 1H); 8,21) (d, 1H); 8,40 (d, 1H); 8,68 (s, 1H).
RMN-C13 (DMSO): 8,38 ; 36,47 ; 42,58 ; 50,71; 61,4(); 73,26 ; 99,99 ; 113,59 123,09; 124,28; 127,74; 130,64; 131,31; 144,13; 145,08; 153,57; 154,13; 155,84 ; 156,61; 159,14 ; 172,()().
IR (KBr): 1488; 1583; 1655; 1743.
Préparation 17: 5,12-diéthyl-9-fluoro-4,5-dihydro-5-hydroxy 10-méthoxy-1H-oxepino[3',4':6,7]indolizino[1,2-b] quinoléine-3,15(4H,13H)-dione 17. a. 5-fluoro-4-méthoxy-2-propionylaniline (Ce produit est obtenu selon Sugasawa T; Toyoda T; Adachi M; Sasakura K, J. Am.
Chem. Soc., 100 (1978), p4842-4852). A une solution de 3-fluoro-4-méthoxy-aniline (20 g, 142 mmol) dans du dichlorométhane anhydre (200 ml), sous atmosphère d'argon et à 0 C, est ajouté goutte à goutte du trichlorure de bore (1M dans l'heptane, 156 ml, 156 mmol). La suspension rose ainsi obtenue est maintenue sous agitation 5 min puis sont ajoutés goutte à goutte du propionitrile (33 ml, 420 mmol) suivi de chlorure d'aluminium (20,8 g, 156 mmol) par petites portions. Le milieu réactionel est chauffé au reflux pendant 3 h, refroidi à 0 C, hydrolysé en ajoutant avec précaution de l'acide chlorhydrique 2N (10() ml), puis porté au reflux 45 min. Après refroidissement à () C, on obtient un précipité qui est filtré, lavé au dichloromethane, puis repris dans de l'eau (300 ml). La phase aqueuse est basifiée jusqu'à pH alcalin, extraite au dichlorométhane puis à l'acétate d'éthyle. La phase organique est séchée (MgSO4) puis évaporée pour donner un produit brut qui est purifié par chromatographie sur colonne (SiO2, AcOEt/Hpt: 1/99 à 20/8()). On obtient 15,3 g d'un solide jaune.
RMN-IH (CDC13) : 1,20 (t, 3H); 2,92 (q, 2H); 3,83 (s, 3H); 6,2 (s, 2H); 6,40 (d, 2H); 7,32 (d, 2H).
IR (KBr) : 857 ; 1148 ; 1240; 1561; 1583; 1662.
17. b. 4-éthyl-7-fluoro-2-hydroxy-6-méthoxy-3-quinoléinecarboxylate d 'éthyle A une solution de 5-fluoro-4-méthoxy-2-propionylaniline (15,3 g, 77,5 mmol) et de triéthylamine (13,9 ml, 1OO mmol) dans de l'acétonitrile anhydre (110 ml), sous argon et à 0 C, est ajoutée goutte à goutte une solution de chlorure d'éthylmalonyle (12,9 ml, 1(N) mmol) dans de l'acétonitrile anhydre (3() ml). On laisse le milieu réactionel revenir à température ambiante, on canule goutte à goutte et sous argon une solution d'éthylate de sodium (obtenue par 1,8 g, 78 mmol, de sodium dans 80 ml d'éthanol), puis on laisse sous agitation 12 h à température ambiante. On verse le mélange réactionnel dans de l'eau glacée (100 ml) et on agite deux heures, puis on filtre le précipité qui est lavé à l'eau, à l'éthanol et à l'éther. On obticnt 19,4 g d'un solide blanc.
RMN-1H (DMSO) : 1,25 (m, 6H); 2,78 (q, 2H); 3,92 (s, 3H); 4,30 (q, 2H); 7,15 (d, 2H); 7,40 (d, 2H); 11,93 (s, 1H).
IR (KBr) : 786; 1083 ; 141(); 1521; 1644; 1725.
17.c. 2-chloro-4-éthyl-7-fluoro-6-méthoxy-3-quinoléinecarboxylate d'éthyle On porte au reflux pendant 6 h une suspension de 4-éthyl-7-fluoro-2-hydroxy6-méthoxy-3-quinoléinecarboxylate d'éthyle (19,4 g, 0,066 mol) dans du chlorure de phosphoryle (243 ml). On distille le chlorure de phosphoryle. On transvase Ic mélange réactionnel dans de l'eau glacée. On reprend au dichlorométhane pour solubiliser. On lave la phase organique à l'eau, puis avec une solution saturée de chlorure de sodium. On sèche la phase organique sur sulfate de magnésium et on évapore le solvant. On suspend le résidu dans de l'éther et filtre du produit de départ non converti (4 g). On évapore le filtrat et purifie le résidu par chromatographie sur colonne (SiO2, AcOEt/Hpt: 5/95 à 20/80). On obtient 10,9 g d'un solide blanc.
RMN-1H (DMSO): 1,30 (t, 3H); 1,39 (t, 3H); 3,08 (q, 2H); 4,09 (s, 3H); 4,49 (q, 2H); 7,64 (d, 2H); 7,86 (d, 2H).
IR (KBr) : 865; 1016; 1082; 1190; 1224; 1253 ; 1272; 15()8; 1571; 1732.
pant un véhicule automobile.
Selon un autre développement avantageux de l'invention, on dispose un écran de feu coloré devant la sur- face de sortie de lumière du système de guide de lumière. La couleur de l'unité de feux, coupée, selon la direction de vue, est définie essentiellement par la superposition de la première couleur des zones du véhicules derrière les optiques de découplage et de la seconde couleur de l'écran du feu. A l'état de service, la couleur de l'unité de feux est définie
par la seconde couleur de l'écran du feu.
Un mode de réalisation préférentiel de l'invention sera décrit ci-après de manière plus détaillée à
l'aide du dessin annexé dans lequel la figure montre une uni-
té de feux selon la présente invention.
La figure montre une unité de feux selon l'invention pour équiper un véhicule automobile; cette unité porte globalement la référence 1. L'unité de feux 1 comprend une source lumineuse 2 et un réflecteur 3 pour regrouper les rayons émis par la source lumineuse 2. Le faisceau de rayons lumineux est couplé dans l'extrémité d'entrée de lumière 4 d'un système de guide de lumière 5. Le système de guide de
lumière 5 est disposé essentiellement en travers de la direc-
tion d'éclairage B; il comporte des moyens 6 pour découpler
le faisceau de rayons lumineux de la surface de sortie de lu-
mière 7 du système de guide de lumière 5.
A l'opposé de la direction d'éclairage B, c'est-
à-dire dans la direction de vue BL, les zones 8, qui se trou-