INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Les figures 4 et 7, numéros 400 et 700, respectivement, sont des schémas fonctionnels de modes de réalisation préférés d'un dispositif périphérique permettant un fonctionnement efficace dans une diversité d'espace dans un système duplex à répartition dans le temps selon la présente invention. Le dispositif périphérique comprend un émetteur-récepteur de dispositif périphérique (402 ; 702) et une antenne (422 ; 716).
EXEMPLE 1 La solution à traiter était un mélange équimolaire de méthanesulfonamide (MSAM) et de NH4CI à pH 4,4. La solution réceptrice était une solution de chlorure de sodium à 5 girl, ainsi que la solution d'électrolyte.
On a utilisé un électrodialyseur SRTI de type P1 équipé de membranes standard AMV et CMV de Asahi Glass pour une surface de cellule de 0,138 m2 (pour un dispositif à deux compartiments, i m2 de cellule correspond à 1 m2 de membrane cationique + 1 m2 de membrane anionique, soit 2 m2 de membranes).
La densité de courant imposée était de 435 Nom2, sauf en fin d'essai où la conductivité était trop faible; on a alors imposé une tension de 1,5 V par cellule.
Pendant l'électrodialyse, le pH a été maintenu entre 3 et 5 par addition d'HCI 0,1 M de façon à éviter toute formation d'ammoniac susceptible de diffuser et de contaminer le MSAM produit.
L'analyse du MSAM a été faite par chromatographie gazeuse. Le chlorure d'ammonium a été suivi par conductimétrie en cours d'essai et mesuré par chromatographie ionique sur les échantillons prélevés.
La durée de l'essai a été de 0,66 heure. La productivité du dispositif a été de 11,3 kg de solution 1 M en MSAM traitée par heure et par m2, I'énergie consommée étant de 45,1 kWh par tonne de solution 1M de MSAM traitée.
Le tableau 1 ci-après indique le niveau de déminéralisation atteint sur la solution de MSAM après le traitement par électrodialyse.
CONCENTRATION (millimoles/litres) initiale I finale II MSAM 1000 880 NH4CI 1000 1 2,9 Le tableau 2 suivant indique les concentrations en sel et en MSAM au cours de l'essai, ainsi que le bilan massique pour le MSAM.
Compartiment MSAM Compartiment sel (diluat) (concentrat) Concentration en NH4CI (millimoles/litre) -initiale 1000 85,5 - finale 2,9 1070 Concentration en MSAM (millimolesilître) - initiale 1000 0 - finale 880 55 Bilan massique pour le MSAM (en g) - masse initiale 94 0 - masse finale 83,5 7,7 Ces résultats indiquent que le MSAM est bien retenu dans le compartiment diluat, les pertes par diffusion passive s'élevant à environ 8,4 % en poids. Le rendement observé est de 91,6 % en poids.
En fonction du niveau de rendement visé en MSAM, la concentration finale en sel peut être ajustée en arrêtant l'électrodialyse avant épuisement de la solution saline.
La concentration finale en NH4CI est limitée par la conductivité minimale à conserver pour permettre le passage du courant. Pour obtenir des niveaux de déminéralisation plus poussée, on peut compenser la faible conductivité de la solution en plaçant une résine ou un feutre échangeur d'ions dans le compartiment sel de l'élec- trod ialyseu r.
EXEMPLE 2 Pour traiter un mélange équimolaire de MSAM et de NH4CI à pH 4,15, on a opéré comme à l'exemple 1 mais en utilisant des membranes sélectives ASV et CHV de Asahi Glass.
La durée de l'essai a été de 0,7 heure. La productivité du dispositif a été de 10,1 kg de solution 1M en MSAM traitée par heure et par m2, I'énergie consommée étant de 45,8 kWh par tonne de solution 1 M de MSAM traitée.
Le tableau 3 ci-après indique le niveau de déminéralisation atteint sur la solution de MSAM après le traitement d'électrodialyse.
Avantageusement, les dérivés du thiazole, selon la présente invention manifestent une capacité à se lier aux récepteurs CCK-A et à stimuler comme la CCK, la mobilisation du calcium intracellulaire dans une lignée cellulaire exprimant le récepteur recombinant CCK-A humain. Ils s'avèrent être des agonistes des récepteurs CCK-A.
Les composés de la présente invention ont en outre été étudiés in vivo, en évaluant leur capacité à bloquer la vidange gastrique chez la souris.
Comme la CCK, ces composés bloquent chez la souris la vidange gastrique et se comportent donc in vivo comme des agonistes des récepteurs CCK-A.
De manière surprenante, ils s'avèrent des agonistes plus puissants que les dérivés du thiazole décrits dans la demande de brevet EP-611766. Ces meilleures performances ont été appréciées d'une part in vîtro sur la mobilisation du calcium intracellulaire, et d'autre part, in vivo, via leur administration par la voie intrapéritonéale, par leur capacité à bloquer la vidange gastrique chez la souris.
En Conséquence, la présente invention a pour premier objet des composés de formule (1): dans laquelle : - R1 représente un groupement phényle substitué de formule : - R2 représente un groupement choisi parmi . CH2-R7, . (CH2)2-R7, . S-CH2-R7, . CH2-S-R7, . (C5-C8)alkyle ; - R3 représente : i) un indol-2-yle de formule ou ii) un pyrrolo-pyridyle de formule dans laquelle l'un des. X1, X2, X3, X4.est N, les autres représentent CR14; - R4 représente l'hydrogène ou un groupement méthoxy ; - R5 représente l'hydrogène, ou un groupement méthyle, éthyle, méthoxy, éthoxy ou un halogène ; Re, représente l'hydrogène, un groupement méthyle, éthyle, méthoxy ou un halogène; - ou R5 et R" considérés ensemble, représentent un groupe méthylènedioxy ; à la condition que les substituants R4, R5, R6 ne soient pas simultanément l'hydrogène - R7 représente un groupement (C5-C7)cycloalkyle non substitué ou substitué par un ou deux méthyles - R8 représente un groupe (CHo)nRls ou un groupe: - R9 représente l'hydrogène ou un groupement méthyle - R1(), R11 R12 R13 représentent chacun indépendamment l'un de l'autre l'hydrogène, un groupement méthyle, éthyle, méthoxy, éthexy. méthylthio. tritluorométhyle, amino ou un halogène; - R14 représente l'hydrogène ou un groupement méthoxy; - R15 représente un groupement COOH ou un groupement COOR16 ; - R16 représente un groupement (C1-C4)alkyle - n = 1. 2, 3, 4 ou 5 - m = (), 1; ainsi que leurs sels ou leurs solvates.
Par (C1-C4)alkyle, on entend désigner un groupement alkyle linéaire ou ramifié et plus particulièrement les groupements méthyle, éthyle, isopropyle. isobutyle et tert-butyle.
Par (C5-C8)alkyle, on entend désigner un alkyle linéaire ou ramifié et plus particulièrement les groupements n-pentyle, n-hexyle, n-octyle et 5,5diméthylhexyle.
Par halogène, on entend un atome de chlore, de fluor ou de brome, le chlore étant préféré.
Les sels d'addition de ces composés sont ceux obtenus avec des bases minérales ou organiques : les sels non toxiques pharmaceutiquement acceptables sont préférés mais d'autres sels utilisables pour isoler ou purifier les composés de formule (I) sont aussi un objet de l'invention.
Les sels des composés de formule (I) comprennent les sels avec des bases organiques ou minérales, par exemple les sels des métaux alcalins ou alcalino-terreux, comme les sels de sodium, de potassium, de calcium, les sels de sodium et de potassium étant préférés, ou avec une amine, telle que le trométamol, ou bien les sels d'arginine, de lysine, de N-méthyl-Dglucamine ou de toute amine physiologiquement acceptable.
La présente invention s'étend également aux solvates formés par les composés de formule I avec l'eau ou des acides minéraux ou organiques tels que l'acide chlorhydrique, l'acide bromhydrique, l'acide trifluoroacétique, l'acide sulfurique, l'acide sulfonique, l'acide phosphorique i? acide naphtalène-2-sulfonique, l'acide p-toluènesulfl'nique.
La présente invention a plus particulièrement pour objet des composés de formule (1) dans laquelle R2 représente un groupe choisi parmi (CH2)2-R7 et - S-CHa-R7; avec R1, R3 et R7 étant tels que définis ci-dessus pour (I), ainsi que leurs sels et solvates.
De préférence, R7 représente un cyclopentyle, un cyclohexyle, un 1.4- diméthylcyclohexyle ou un cycloheptyle.
Selon la présente invention, on préfère les composés de formule (I) dans laquelle R2 est un cyclohexyléthylène et les substituants R1 et R3 ont les valeurs définies ci-dessus pour (I), ainsi que leurs sels ou solvates.
Les composés de formule (I) dans laquelle R1 représente un 4-méthyl2,5-diméthoxyphényle ou un 4-chloro-2,5-diméthoxyphényle et les substituants R2 et R3 ont les valeurs définies ci-dessus pour (I) ainsi que leurs sels et solvates sont également des composés préférés ; la valeur R1 = 4-chloro-2,5-diméthoxyphényle étant particulièrement préférée.
Un groupe particulier de composés est constitué par les comp dans laquelle Xl, X2, X3, X4 et R8 sont tels que définis ci-dessus pour (I), ainsi que leurs sels et solvates.
Suivant d'autres caractéristiques avantageuses: - les dents doubles (18; 38; 58) sont de mêmes dimensions, - la lame (10; 30) est allongée pour être montée sur une scie à mouvement de va et vient, - la lame est un disque (50) de scie circulaire, - au moins une dent double sur deux est avoyée autour de son axe médian, de préférence dans un sens opposé d'une dent double à l'autre, de sorte que des pointes de chaque dent
double soient dirigées dans des directions opposées.
- les dents doubles ont les mêmes dimensions, - la lame de scie est allongée pour être montée sur une scie à mouvement de va et vient, - elle est un disque pour scie circulaire, - chaque dent double rejoint la dent double voisine selon un contour concave,
- la lame est une lame en un bimétal ou en un trimétal.
Dessins
Des exemples de réalisation avantageux représen-
tés aux figures seront décrits ci-après plus en détail.
Ainsi: - la figure 1 représente une lame de scie allongée avec une
rangée de dents droites à dents doubles alternativement dé-
voyées et alternativement non dévoyées, de centrage, - la figure 2 est une vue agrandie de la pointe de la lame de scie selon la figure 1, - la figure 3 est une vue de dessus du côté inférieur des dents de la lame de scie selon la figure 1, - la figure 4 représente une lame de scie allongée avec une rangée droite de dents dont les dents doubles sont avoyées en sens inverse autour de leur milieu, - la figure 5 est une vue de dessus des surfaces inférieures des dents de la plaque de la lame de scie selon la figure 4, - la figure 6 est un disque de scie avec une géométrie de dents selon la figure 1, - la figure 7 est une vue de dessus des surfaces inférieures
des dents du disque de scie selon la figure 6.
La vue d'une face plane selon la figure 1 non ré-
férencée d'une lame de scie 10 montre à l'avant une pointe de lame de scie 12, à l'arrière une queue de montage 14, en bas un côté des dents 20 et au-dessus le dos 16 de la lame. Le côté des dents 20 porte des dents doubles 18 vues chacune avec des pointes de dent 17, 19. Chaque seconde dent double
18a n'est pas avoyée et ne vient ainsi pas en saillie latéra-
lement par rapport aux plans des faces de la lame de scie.
La cassette de transformation, qui comprend le promoteur, l'ADNc du NIMl modifié et le terminateur du tml, est libérée du pCGN1761 par digestion par l'enzyme de restriction partielle XbaI et ligaturée dans le site XbaI du pCIB200 déphosphorylé. Les séquences SEQ ID NO:26 et 27 présentent respectivement la séquence codante de l'ADN et la séquence d'acides aminés codés, d'une forme modifiée du gène NIMl ayant une délétion d'acides aminés Cterminale. la présente invention concerne aussi des formes modifiées d'allèles du NIAI, où la séquence codante d'un tel allèle s'hybride dans les conditions suivantes à la séquence codante SEQ ID NO:26 : hybridation dans du BSA à 1 % ; NaPO4 520 mM, pH 7,2 ; laurylsulfate de sodium à 7 % ; EDTA 1 mM ; chlorure de sodium 250 mM à 55"C pendant 18 à 24 heures, et lavage dans 6XSSC pendant 15 minutes (X3), 3XSSC pendant 15 minutes (X1) à 550C. Dans ces formes de réalisation, les allèles du NIM1 qui s'hybrident à la séquence SEQ ID NO:26 dans les conditions ci-dessus sont modifiées de sorte que le produit codé ait une délétion C-terminale qui élimine les résidus de sérine et de thréonine.
Exemple 31 : Production de formes modifiées de NIM1 Chimère de délétion N-terminale/C-terminale On produit une forme du NIM1 à délétion N-terminale et C-terminale en utilisant un site de restriction KpnI unique sur la position 819 (SEQ ID NO:21). La forme de délétion N-terminale (Exemple 3) subit une digestion par les endonucléases de restriction EcoRI/KpnI, et le fragment de 415 pb correspondant au site N-terminal modifié est récupéré par électrophorèse sur gel. De même, la forme de délétion C-terminale (Exemple 4) est soumise à une digestion par les endonucléases de restriction EcoRI/ KpnI, et le fragment de 790 pb correspondant au site Cterminal modifié est récupéré par électrophorèse sur gel.
Les fragments sont ligaturés à 150C, digérés avec EcoRI pour éliminer les concatémères EcoRi, et on les clone dans le site EcoRI du pCGN1761 déphosphorylé. La forme de délétion N/C-terminale du NIM1 entre dans le cadre de la régulation de transcription du promoteur 35S double. De même, on produit une forme chimère du MIMI, qui est constituée des sites de phosphorylation putatifs mutagénisés S55/S59 (Exemple 2) fusionnés à la délétion C-terminale (Exemple 4). Le produit de synthèse est produit commue décrit ci-dessus. Les produits de synthèse sont séquencés pour vérifier la fidélité du codon d'initiation et du codon d'arrêt et pour confirmer qu'aucune mutation n'a eu lieu pendant le clonage. Les différentes cassettes de transformation, comprenant le promoteur 35S, la chimère NIMl et le terminateur tml, sont libérées du pCGN1761 par digestion partielle par l'enzyme de restriction XbaI et ligaturées dans le site XbaI du pCIB200 déphosphorylé.
Les séquences SEQ ID NO:28 et 29 présentent respectivement la séquence codante de 1'ADN et la séquence d'acides aminés codés, d'une forme modifiée du gène NIMi comportant des délétions d'acides aminés tant N-terminales que C-terminales.
La présente invention concerne aussi des formes modifiées d'allèles du NIMl, où la séquence codante d'un tel allèle s'hybride dans les conditions suivantes à la séquence codante SEQ ID NO:28 : hybridation dans du BSA à 1 % ; NaPO4 520 mM, pH 7,2 ; laurylsulfate de sodium à 7 % ; EDTA 1 mM ; chlorure de sodium 250 mM à 550C pendant 18 à 24 heures, et lavage dans 6XSSC pendant 15 minutes (X3), 3XSSC pendant 15 minutes (X1) à 55"C. Dans ces formes de réalisation, les allèles du NIMl qui s'hybrident à la séquence SEQ ID NO:28 dans les conditions ci-dessus sont modifiés de façon que le produit codé possède tant une délétion N-terminale, qui élimine les résidus de lysine pouvant servir de sites potentiels d'ubiquitinisation en plus des sérines sur les positions d'acides aminés correspondant aux positions 55 et 59 du produit génique de type sauvage, qu'une délétion C-terminale, qui élimine les résidus de sérine et de thréonine.
Exemple 32 : Production de formes modifiées du NIM1 Domaines ankyrine Le NiMi présente une homologie avec les motifs ankyrine approximativement au niveau des acides aminés 103262. Par utilisation de la méthode de Ho et al. (1989), la séquence d'ADN codant les domaines ankyrine putatifs (SEQ ID NO:2 : 3093-3951) est amplifiée par PCR (conditions : 94"C, 3 minutes : 35X (940C 30 secondes : 62"C 30 secondes : 72"C 2 minutes) : 720C 10 minutes) à partir de l'ADNc du NiMi (SEQ ID NO:21 : 349-1128) par utilisation des amorces suivantes : 5'ggaattcaA GACTCCAACAACACCGCCGC-3' (SEQ ID NO:38) et 5' ggaattcTCAACCTTCCAAAGTTGCTTCTGATG-3' (SEQ ID NO:39). Le produit obtenu est digéré par l'endonucléase de restriction EcoRi, puis épissé dans le site EcoRI du pCGN1761 déphosphorylé dans les conditions de la régulation de transcription du promoteur 35S double. Le produit de synthèse est séquencé pour vérifier la présence du codon d'initiation synthétique (ATG), d'un codon d'arrêt dans le cadre (TGA), et pour confirmer qu'aucune autre mutation n'a eu lieu pendant amplification PCR. La cassette de transformation, qui comprend le promoteur 35S, les domaines ankyrine et le terminateur tml est libérée du pCGN1761 par digestion partielle par l'enzyme de restriction XbaI et ligaturée dans le site XbaI du pCIB200 déphosphorylé. Les séquences SEQ ID NO:30 et 31 présentent respectivement la séquence codante de l'ADN et la séquence d'acides aminés codée du domaine ankyrine du NIAI.
La présente invention concerne aussi des formes modifiées d'allèles du NIMl, où la séquence codante d'un tel allèle s'hybride dans les conditions suivantes à la séquence codante SEQ ID NO:30 : hybridation dans du BSA à 1 % ; NaPO4 520 mM, pH 7,2 ; laurylsulfate de sodium à 7 % ; EDTA 1 mM ; chlorure de sodium 250 mM à 550C pendant 18 à 24 heures, et lavage dans 6XSSC pendant 15 minutes (X3), 3XSSC pendant 15 minutes (X1) à 55"C. Dans ces formes de réalisation, les allèles du NiMi qui s'hybrident à la séquence SEQ ID NO:30 dans les conditions ci-dessus sont modifiées de sorte que le produit codé soit essentiellement constitué des domaines ankyrine du produit génique de type sauvage.
Exemple 33 : Synthèse de gènes chimères Pour augmenter la probabilité d'une expression spatiale et temporelle appropriée de formes modifiées du NIMl, on utilise le fragment HindIII/BamHI de 4407 pb (SEQ ID NO:2, bases 1249-5655), et/ou un fragment EcoRV/ BamHI de 5655 pb (SEQ ID NO:2 : bases 1-5655) contenant le promoteur et le gène NIMl, pour créer les formes modifiées du NIMl dans les Exemples 28 à 32 ci-dessus. Bien que les étapes de synthèse puissent différer, les concepts sont comparables aux exemples décrits ci-dessus dans l'invention. Une forte surexpression des formes modifiées peut être potentiellement létale. Ainsi, les formes modifiées du gène NIMl décrites dans les Exemples 28 à 32 peuvent être placées dans le cadre de la régulation de promoteurs autres que le promoteur NIMl endogène, y compris mais sans limitation le promoteur nos ou la petite sous-unité du promoteur Rubisco. De même, les formes NIMl modifiées peuvent être exprimées au titre de la régulation du promoteur de réponse aux micro-organismes pathogènes PR-1 (brevet US N" 5 614 395). Cette expression permet une forte expression des formes modifiées NIMl, uniquement en présence d'une attaque par des micro-organismes pathogènes, ou dans d'autres conditions d'activation de la SAR. En outre, la résistance aux maladies peut être manifeste dans les transformants qui expriment des formes modifiées du NIMl dans le cadre d'une régulation du promoteur PR-1 après traitement par des concentrations d'activateurs de la SAR (à savoir BTH ou INA) qui normalement n'activent pas la SAR, en activant ainsi une boucle de rétroaction (Weymann et al.
(1995) Plant Cell 7 : 2013-2022).
Exemple 34 : Transformation de formes modifiées du NIMl dans Arabidopsis thaliana Les produits de synthèse obtenus dans les Exemples 28 à 33 sont envoyés dans Arabidopsis thaliana par électroporation dans la souche GV3101. Ces produits de synthèse sont utilisés pour transformer les écotypes Col-O et Ws-O d'Arabidopsis par infiltration sous vide (Mindrinos et al., Cell 78, 1089-1099 (1994)) ou par des techniques classiques de transformation des racines. Les semences provenant de ces plants sont récoltées, et on les laisse germer sur des plaques de gélose avec de la kanamycine (ou un autre antibiotique approprié) en tant qu'agent de sélection. D'autres plantules, qui sont transformées avec de 1'ADN cosmidique, peuvent détoxifier l'agent de sélection et survivre. Les plantes de semis qui survivent à la sélection sont transférées au sol et font l'objet d'un essai du phénotype CIM (immunité constitutive). Les plants font l'objet d'une évaluation des différences phénotypiques observables par rapport aux plants de type sauvage.
Exemple 35 : évaluation du phénotype CIM dans des plantes transformées par des formes modifiées du NIM1 On récolte une feuille de chaque transformant primaire, on isole l'ARN (Verwoerd et al., 1989, Nuc Acid Res, 2362), et on la soumet à un essai pour déterminer l'expression PR-1 constitutive par une analyse par transfert d'ARN (Uknes et al., 1992). Chaque transformant fait l'objet d'une évaluation de sa réponse en résistance amé- liorée aux maladies, indicatives d'une analyse de l'expression constitutive de la SAR (Uknes et al., 1992).
On prépare des suspensions de conidies à 5-10.104 spores/ ml, provenant de 2 isolats compatibles de P. parasitica, Emwa et Noco (c'est-à-dire que ces souches fongiques provoquent une maladie sur les plants de type sauvage, respectivement Ws-0 et Col-O), et les transformants reçoivent une pulvérisation de l'isolat approprié, en fonction de l'écotype du transformant. Les plants inoculés sont incubés en présence d'une forte humidité pendant 7 jours.
Les plants font l'objet d'une notation de la maladie le 7ème jour, et une feuille unique est récoltée pour analyse par transfert d'ARN, qui utilise une sonde qui fournit un moyen permettant de mesurer l'infection fongique.
Les transformants qui présentent un phénotype CIM sont menés à la génération T1, et les plants homozygotes sont identifiés. Les transformants sont soumis à une bactérie d'essai de résistance aux maladies, tels que décrits ci-dessous. L'infection fongique par Noco et Emwa est répétée, et les feuilles sont colorées au bleu de lactophénol pour identifier la présence d'hyphes fongiques, comme décrit dans Dietrich et al. (1994). Les transformants sont infectés par la bactérie pathogène Pseudomonas syringae DC 3000 pour évaluer le spectre de résistance, qui est mis en évidence comme décrit dans Uknes et al. (1993). Les plants non infectés font l'objet d'une évaluation du SA libre et du SA conjugué au glucose, et les feuilles sont colorées au bleu de lactophénol pour évaluer la présence des lésions microscopiques.
Les plants résistant subissent un croisement sexué avec des mutants SAR tels que NahG (brevet US N" 5 614 395) et indri, pour établir la relation épistatique du phénotype de la résistance avec d'autres mutants, et évaluer comment ces mutants dominant-négatifs du NIMl peuvent influer sur la boucle de rétroaction dépendant du SA.
Exemple 36 : Isolement d'homologues du NIMl En utilisant en tant que sonde l'ADNc du NIMl (SEQ ID NO:21), des homologues du NIMl d'Arabidopsis sont identifiés par criblage de génothèques ou de banques d'ADNc provenant de différentes cultures, par exemple, mais sans limitation, celles qui sont mentionnées par ailleurs dans l'Exemple 11. Parmi les techniques classiques permettant d'y arriver, on peut citer le criblage par hybridation de banques d'ADN sur plaque (plages ou colonies ; voir par exemple Sambrook et al., Molecular Cloning, eds, Cold Spring Harbor Laboratory Press.
On porte l'agitation à 150 révolutions par minute.
Après solubilisation totale du polybutadiène, on introduit à température ambiante 0,1488 g (soit 9,5.10-4 mole) de 2,2,6,6tétraméthyl-l -piperidinyloxy (communément appelé TEMPO) et 0,1848 g (soit 7,9.10-4 mole) de 0-0-tertiobutyl-0-isopropyl-monoperoxy-carbonate commercialisé par la société LUPEROX sous la marque TBIC-M75. Le mélange est ensuite porté à 1200C en 30 minutes, puis est maintenu à cette température jusqu'à l'obtention d'un taux de solide de 60 %, toujours sous agitation. Le contenu du réacteur est alors transféré dans une étuve à la pression atmosphérique et à l'air ambiant pour poursuivre la polymérisation, tout d'abord 3 heures à 1500C, puis 2 heures à 1800C. Les propriétés de la composition obtenue sont indiquées dans le tableau 1. L'essentiel des particules de caoutchouc, c'est-à-dire plus de 80 % d'entre elles, apparaissent sous la forme de salamis.
EXEMPLE 3 Dans le même réacteur que celui de l'exemple 1, on introduit à température ambiante 168 g d'éthylbenzène et 42 g de polybutadiène HX 527. On porte l'agitation à 150 révolutions par minute. Après solubilisation totale du polybutadiène, on introduit 9,5.10~4 moles de Tempo et 7,9.10-4 mole du peroxyde TBIC-M75, et l'on porte le réacteur à 1200C pendant 2 heures sous une agitation de 50 révolutions par minute.
On ajoute alors 490 g de styrène et l'on maintient la température à 1200C jusqu'à l'obtention d'un taux de solide de 60 % sous une agitation de 150 révolutions par minute. La polymérisation est poursuivie en étuve comme pour les exemples précédents. Les propriétés de la composition obtenue sont indiquées dans le tableau 1. L'essentiel des particules de caoutchouc, c'est-à-dire plus de 95 % d'entre elles apparaissent sous la forme de capsules.