INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
associées à la croissance et/ou à la différenciation cellulaire ou bien à des processus d'adaptation à l'environnement. Certaines de ces protéines sont reconnues par des anticorps dirigés contre des 1,3-p-D-glucanases isolées du tabac contaminé par la mosaïque du tabac (Kauffmann et al. (1990) Plant Mol. Biol., 14 (3) : Des activités 1,3-p-D-glucanases ou les gènes codant pour ces protéines sont induit(e)s au cours de la germination, du développement des bourgeons floraux, des fruits (del Campillo E., Lewis L. N. (1992) Plant Physiology 99,1015-1020; Neale et al. (1990) Plant Cell 2,7, 673-684). En particulier, ces réponses se développent dans des tissus en voie de remaniements cataboliques (endosperme, tubes polliniques, zones d'abscission de tiges, de pédoncules..) ou en période de division mitotique (cas des anthères, des stigmas, de tiges). Elles sont sous dépendance hormonale (auxines, cytokinines en général, acide abscissique en particulier), et des molécules comme l'éthylène, contrôlant la maturation des fruits, ou l'acide salicylique, contrôlant la floraison, sont également des inducteurs. Enfin, des enzymes 1,3 ss-D-glucanases ont été répertoriées pour des fonctions d'adaptation de la plante au froid et à des teneurs élevées en ozone (Hincha et al. (1997) Plant physiology 114, 1077-1083).
L'enzyme 1,4-ss-D-glucanase est un marqueur de croissance et/ou de différenciation cellulaire chez les végétaux. Cette enzyme reconnaît comme substrat des chaînes linéaires de glucanes liés en (3 (1,4). Elle peut hydrolyser la cellulose, des glucanes (1,4) (1,6), le xyloglucane. Ainsi, elle intervient dans les remaniements ultrastructuraux des parois des cellules végétales en cours de croissance. Son induction et/ou celle des gènes spécifiques se décèlent au cours des processus impliquant la lyse des parois végétales, rupture des anthères, zones d'abscission de fruits, de fleurs (Hayaschi T., Oshimi C. (1994) Plant Cell Physiology 35 (3), Brummel D. A. et al. (1997) Plant Biol. Mol. 33,1, 97-195).
Elle est contrôlée par l'éthylène, par des hormones comme l'acide abscissique ou l'auxine.
La présente invention découle de la mise en évidence par les inventeurs du fait que les polymères 1,4 ss-D-glucuronanes et les oligosaccharides glycuroniques dérivés de ces derniers, ont des activités d'amplification de l'enzyme 1,3 P-D-glucanase et/ou de l'enzyme 1,4 p-D-glucanase, et, à ce titre, sont désignés composés "éliciteurs", susceptibles d'être utilisés dans le cadre d'applications phytosanitaires ou de fertilisation.
Les polymères 1,4 P-D-glucuronanes ont déjà été décrits dans le brevet français FRB-2 688 222 du 3 mars 1992, dans des domaines d'utilisation totalement différents de ceux susmentionnés de la présente invention, à savoir dans les domaines alimentaire, pharmaceutique en thérapeutique humaine ou vétérinaire, cosmétique ou de l'épuration des eaux, en particulier en tant que moyen gélifiant, épaississant, hydratant, stabilisant, chélatant ou floculant, ainsi que dans la préparation d'oligosaccharides.
La présente invention a pour but de fournir des composés utilisables en tant "qu'éliciteurs" entrant dans la composition de fertilisants (engrais, fertilisants biologiques ou biofertilisants), et de produits phytosanitaires.
Un des buts de la présente invention est de fournir de nouveaux biofertilisants utilisables notamment comme stimulants de la nutrition en complément ou en remplacement de produits commerciaux à base de potasse et de nitrates toxiques pour l'environnement, et/ou comme régulateurs d'une ou plusieurs étapes du développement des plantes.
En outre, les différents domaines fonctionnels ci-dessus peuvent être liés directement les uns aux autres, ou séparés par des nucléotides n'affectant pas significativement le caractère régulé du promoteur de l'élément (a). De tels
nucléotides peuvent être des résidus neutres sur le plan fonctionnel, résultant par exemple d'étapes de clonage (extrémités PCR, sites de restriction, etc. ). Ces nucléotides peuvent aussi posséder des propriétés biologiques, permettant de conférer des caractéristiques ou performances améliorées au système de l'invention (amplificateur de gènes de ménage, amplificateur tissus spécifiques, silenceur, intron, site d'épissage, etc. ). A cet égard, dans un mode de réalisation particulier de l'invention, le promoteur inductible comprend en outre une région amplificatrice. Une telle région permet avantageusement d'augmenter les niveaux d'expression de l'acide nucléique d'intérêt. Une telle région amplificatrice (E) est préférentiellement positionnée en 3' du promoteur minimal, entre ce dernier et l'acide nucléique d'intérêt, selon le schéma suivant (5'->3'): PPRE-Pmin-E-AN.
D'autre part, dans les constructions de l'invention, le promoteur minimal et l'élément de réponse à un PPAR peuvent être présents soit dans la même orientation (c'est-à-dire dans le sens de la transcription), soit en orientation inverse (c'est-à-dire que l'élément de réponse à un PPAR est dans l'orientation antisens par rapport à la transcription par le promoteur Pmin). Comme illustré dans les exemples, ces deux modes de réalisation permettent un contrôle efficace de la régulation de l'expression in vitro comme in vivo.
Comme indiqué ci-avant, l'élément (b) des compositions selon l'invention comprend au moins: - un acide nucléique codant un PPAR, - sous contrôle d'un second promoteur transcriptionnel.
Les PPAR appartiennent à la superfamille des récepteurs hormonaux nucléaires, et sont regroupés dans trois groupes distincts, les PPARa, PPAR# (également appelé NUC-1 ou PPARP) et PPARy. L'isolement et la séquence de nombreux PPAR humains ont été décrits dans la littérature (voir notamment Sher T. et coll., Biochemistry, 32 (1993) 5598-5604 ; Mukherjee R. et coll., J. Steroid Biochem. Molec. Biol., 51 (1994) 157-166 ; Fajas L. et coll., J. Biol. Chem., 272 (1997) 18779-18789 ; R. et coll., J. Biol. Chem., 272 (1997) 8071-8076;
Schmidt A. et coll., Mol. Endocrinol. 6 (1992) 1634-1641). Le promotteur du PPARy a en outre été récemment cloné, comme le décrit la demande W099/05161.
Dans un mode préféré de l'invention, l'acide nucléique codant un PPAR code un PPAR humain, en particulier un PPARa ou un PPARy. Les résultats présentés dans les exemples montrent en effet que l'utilisation de ces molécules assure au système de l'invention des niveaux de régulation et d'expression importants, notamment dans les cellules musculaires.
Selon un premier mode de mise en #uvre, il s'agit d'un PPARa ou un PPARy dans sa forme native, c'est-à-dire sans modification de structure primaire par rapport à la molécule naturelle.
Selon un autre mode de réalisation, il s'agit d'un PPAR modifié comprenant plusieurs sites de liaison au ligand.
A cet égard, la présente invention décrit et a également pour objet tout PPAR modifié comprenant plusieurs sites de liaison au ligand. Plus particulièrement, il s'agit d'un PPARa ou un PPARy, encore plus préférentiellement d'un PPARy. De préférence, les PPAR modifiés selon l'invention comprennent de 2 à 5 sites de liaison au ligand, plus préférentiellement de 2 à 4 sites de liaison. Il s'agit plus particulièrement de PPAR comportant 2 à 5 copies des domaines E et F impliqués dans la liaison au ligand. Les protéines PPAR renferment différents domaines : le domaine N-terminal A/B qui contient une région transactivatrice non dépendante du ligand, le domaine C qui est le domaine de liaison à l'ADN (DBD), le domaine D qui est une région charnière, et les domaines E/F qui contiennent une région transactivatrice dépendante du ligand. Les domaines E/F sont également appelés domaine de liaison du ligand (LBD) (voir notamment Schoonjans K. et coll., Biochim. Biophys. Acta, 1302 (1996) 93-109). Les limites des domaines E/F varient d'un PPAR à l'autre. A titre d'exemple, pour l'isoforme PPARy2 humaine utilisée, le domaine E/F s'étend de l'acide aminé 284 à l'acide aminé 505. La présente invention montre maintenant qu'il est possible de construire des PPAR modifiés comprenant plusieurs domaines E et F répétés, et que ces PPAR modifiés sont
fonctionnels et possèdent des propriétés améliorées d'inductibilité par les ligands des PPAR. De telles constructions représentent donc un mode de réalisation et un objet particulier de la présente invention.
Un exemple typique de PPAR modifié selon l'invention est un PPARy comportant 2 sites de liaison au ligand (c'est-à-dire deux domaines E et F). La séquence protéique complète de PPAR[gamma]2[gamma]2 est représentée sur la séquence SEQ ID NO: 24.
SEQ ID N 24 MGETLGDSPIDPESDSFTDTLSANISQEMTMVDTEMPFWPTNFGISSVDLSVMEDHSHSFDI KPFTTVDFSSISTPHYEDIPFTRTDPWADYKYDLKLQEYQSAIKVEPASPPYYSEKTQLYN KPHEEPSNSLMAIECRVCGDKASGFHYGVHACEGCKGFFRRTIRLKLIYDRCDLNCRIHKKS RNKCQYCRFQKCLAVGMSHNAIRFGRMPQAEKEKLLAEISSDIDQLNPESADLRALAKHLYD SYIKSFPLTKAKARAILTGKTTDKSPFVIYDMNSLMMGEDKIKFKHITPLQEQSKEVAIRIF QGCQFRSVEAVQEITEYAKSIPGFVNLDLNDQVTLLKYGVHEIIYTMLASLMNKDGVLISEG QGFMTREFLKSLRKPFGDFMEPKFEFAVKFNALELDDSDLAIFIAVIILSGDRPGLLNVKPI EDIQDNLLQALELQLKLNHPESSQLFAKLLQKMTDLRQIVTEHVQLLQVIKKTETDMSLHPL LQEIYKDLYAWAILTGKTTDKSPFVIYDMNSLMMGEDKIKFKHITPLQEQSKEVAIRIFQGC QFRSVEAVQEITEYAKSIPGFVNLDLNDQVTLLKYGVHEIIYTMLASLMNKDGVLISEGQGF MTREFLKSLRKPFGDFMEPKFEFAVKFNALELDDSDLAIFIAVIILSGDRPGLLNVKPIEDI QDNLLQALELQLKLNHPESSQLFAKLLQKMTDLRQIVTEHVQLLQVIKKTETDMSLHPLLQE IYKDLY L'invention concerne aussi tout variant de la séquence SEQ ID NO: 24 conservant une activité de type PPAR (la capacité d'activer, en présence d'un ligand de PPAR tel que BRL49653, un promoteur comportant une séquence PPRE). Les variants s'entendent de tout mutant, délétant, et/ou polypeptide comportant un ou plusieurs résidus supplémentaires. Préférentiellement, un variant conservant 80% au moins des résidus de la séquence ID NO: 24.
En outre, l'invention concerne aussi tout acide nucléique codant pour un tel PPAR modifié. Il peut s'agir d'un ADN (notamment un ADNc ou un ADN synthétique ou semi-synthétique) ou d'un ARN. Cet ADN peut être construit selon les méthodes conventionnelles de biologie moléculaire connues de l'homme du métier (synthèse, ligations, criblage de banques, etc.). Il s'agit avantageusement de tout acide nucléique comprenant une séquence codant un polypeptide de séquence SEQ ID NO:24, ou hybridant avec une séquence codant un polypeptide
de SEQ ID NO: 24, et codant un polypeptide à activité de type PPAR. En outre, cet ADN peut comprendre un promoteur et/ou un terminateur transcriptionnel, par exemple.
Le second promoteur transcriptionnel, contrôlant l'expression de l'acide nucléique codant le PPAR, peut être tout promoteur fort ou faible, ubiquitaire ou sélectif, constitutif ou régulé, fonctionnel dans les cellules mammifères, en particulier dans les cellules humaines. Il peut s'agir d'un promoteur cellulaire domestique (i.e., d'un gène mammifère, en particulier humain), d'un promoteur viral, bactérien, d'insecte, de plante, naturel ou synthétique, simple ou complexe, etc. Des exemples de promoteurs appropriés pour cet élément (b) sont notamment des promoteurs viraux (promoteur immédiat du virus SV40, promoteur immédiat du virus CMV, LTR de rétrovirus, promoteur TK du virus de l'herpès) ou cellulaires (promoteur PGK, albumine, EF1 a, ou de gènes fortement exprimés dans le muscle comme : promoteur du gène de la créatine kinase musculaire (MCK), promoteurs des gènes des différentes isoformes d'actine du muscle squelettique, promoteur du gène de la desmine, promoteur du gène de la vimentine, promoteurs des gènes de chaîne légère ou chaîne lourde de la myosine). Par ailleurs, le promoteur peut être modifié par introduction d'une ou plusieurs régions enhanceur, telle que la région enhanceur de l'intron 2 du gène de la globine béta, enhancer du gène très précoce du virus CMV, enhancer de EF1 a., de région(s) silencer, de régions conférant une spécificité tissulaire (par exemple des régions isolées à partir des promoteurs tissus spécifiques comme : promoteur du gène de la créatine kinase musculaire (MCK), promoteurs des gènes des différentes isoformes d'actine du muscle squelettique, promoteur du gène de la desmine, promoteur du gène de la vimentine, promoteurs des gènes de chaîne légère ou chaîne lourde de la myosine) ou un caractère régulable, ou par délétion de régions non essentielles à l'activité, par exemple. De tels promotteurs peuvent être utilisés pour exprimer le RXR, compris dans l'élément (d).
IV - Méthode à l'exonucléase III (Current Protocols in Molecular Biology, éditeurs: F.M. Ausubel, R.
Brent, R. E Kingston, D D. Moore, J. G. Seidman, J. A. Smith, K. Struhl; published by Wiley Interscience) Le fragment d'ADN d'intérêt de 4,3kb a été recloné dans un vecteur pBluescript Il KS+ au site EcoRI du polylinker. Ensuite le plasmide de ce clone a été isolé et purifié par la méthode de "Qiagen-Midi-Preparation Tip 100( Qiagen) à partir d'une culture de 30 ml.
Pour pouvoir séquencer dans les deux sens, 5 g plasmide ont été doublement digérés par Xhol/Kpnl d'une part et par Spel/Sacl d'autre part, dans un volume de 50 l chaque fois. (100ng de plasmide linéarisé de chaque digestion a été gardé pour une vérification sur gel d'agarose).
Le reste du plasmide linéarisé à chaque digestion a été précipité à l'éthanol 95% (3 volumes) et NaOAc 3M (1/5 volume) pendant une heure dans la glace. Après 20 minutes de centrifugation à 13000 tpm et à +4 C , le plasmide digéré de chaque digestion a été rincé avec l'éthanol à 70%, seché au "speed-vac" pendant 5 minutes et repris dans 50 l de tampon Exolll dilué à 1 x (0.66M Tris/HCI pH=8,0 , 66 mM MgCl2, 50mM DTT, 500ug /ml BSA ; USB, United States Biochemicals).
Pour créer les délétions de chaque côté, 25 l ( 2,5ug ) de chaque digestion ont été préincubés à 37 C pendant 2 minutes, 0,8 l de Exolll
(100u/pl; USB), soit 150unités Exolll par picomole d'extremités 3', ont été ajoutés et reincubés à 37 C. Toutes les minutes, 3 l (300ng) d'ADN ont été prélévés et placés immédiatement dans la carboglace (=8 prélèvements totaux). Puis 3 l d'eau ont été ajoutés à chaque prélèvement , incubés pendant 10 minutes à 70 C pour inactiver l'enzyme Exolll. Tous les échantillons ont été placés dans la glace. Après addition de 15 l de tampon de nucléase S1 (300mM Na acétate pH 4,6 ,10mM Zn acétate, 50% v/v glycérol) et de 4 l (4 unités) de nucléase S1 (Gibco BRL) , ces échantillons ont été incubés pendant 20 minutes à température ambiante. La réaction de la nucléase S1 a été arrêtée en ajoutant 5 l de tampon "stop" (0,3M Tris/HCI pH 8,0 , 0.05M EDTA) à chaque échantillon . Des fractions aliquotes de 8 l ont été prélévées pour une vérification sur gel d'agarose.
Le volume restant (22 l) de chaque échantillon a été incubé pendant 20 minutes à 37 C après avoir ajouté 2 unités de fragment de Klenow et 1 l de dNTP's à 0,25mM.
Enfin les molécules délétées ont été recircularisées en ajoutant 1 l (1 unité) de T4DNA ligase (USB), 3 l de tampon 10x (660mM Tris/HCI pH=7,6, 66mM MgCl2, 100mM DTT, 660pm ATP) et 2 l d'eau à chaque échantillon. Les ligations ont été faites dans un volume total de 30 l et incubées à 16 C pendant la nuit.
Puis un tiers du volume (10 l) des produits issus de chaque ligation a été utilisé pour transformer 100 l de cellules compétentes E.coli DH5a par la méthode au Chlorure de Calcium ( Current Protocols in Molecular Biology, éditeurs : F.M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, D.D. Moore, J.G. Seidman, J. A. Smith, K. Struhl,; published by Wiley Interscience ) . Les cellules transformées de E. coli DH5a ont été sélectionnées sur LB-agar contenant de la carbénicilline à 100mg/l, 40 mg/l de XGal et 8 mg/l d'IPTG.
V - Extraction des ARN totaux (Heim U., Weber H., Bâumlein H., Wobus U., 1993. A sucrosesynthase gene of Vicia faba L.: expression pattern in developing seeds in relation to starch synthesis and metabolic regulation. Planta 191 : 3494-501) Les tissus frais congelés (plantule -2g et racine #1g) ont été écrasés dans l'azote liquide à l'aide d'un mortier et un pilon. Puis 500 l de tampon d'extraction (1 M Tris/HCI pH 7,4 , 1% SDS , 5mM EDTA) pour 200mg tissu ont été ajoutés goutte à goutte, puis le même volume de phenol/chloroforme/isoamylalcohol, tout en continuant le broyage jusqu'a obtenir une poudre lisse. Après décongélation, chaque solution a été transferée dans un tube et centrifugée pendant 5 minutes à +4 C .
Chaque phase aqueuse a été réextraite deux fois avec le même volume de phénol/chloroforme/isoamylalcohol et précipitée à l'éthanol (3 volumes) / NaOAC ( 1/10 volume) pendant une heure à -80 C. Après centrifugation pendant 30 minutes à +4 C, chaque culot a été séché brièvement et dissous dans de l'eau+DEPC . Une deuxième centrifugation pendant 10 minutes à +4 C a été faite et chaque surnageant a été mélangé avec le même volume de LiCI à 4M pour une précipitation des acides ribonucléiques dans la glace à +4 C pendant la nuit.
Ensuite chaque solution a été centrifugée pendant 15 minutes et les culots d'ARN ont été lavés deux fois dans LiCI 2M et une fois dans de l'éthanol à 70% . Apès un séchage au "speed-vac , chaque culot d'ARN a été dissous dans de l'eau+DEPC et la concentration d'ARN a été verifiée par spectrophotométrie.
VI - Test GUS (Jefferson R. A., 1987. Assaying chimeric genes in plants: the gus gene fusion system. Plant Mol. Biol. Rep. 5 :
- Par histochimie Quinze jours après la germination des transformants d'Arabidopsis, l'activité GUS est téstée grâce à l'acide X-glucuronique (X-Glu, Biosynth G. Staad, Suisse) comme décrit par Jefferson et al., modifié par l'utilisation de 100 mM KH2PO4, 0. 4 mM de catalyseur K3Fe (CN)6 0. 4 mM K4Fe(CN)6.
Aucun bruit de fond n'a été observé dans les tissus des plantes non transformées.
- Par fluorimétrie Les échantillons de plantes (racines ou feuilles) sont broyés en tube EppendorfTM avec 200 l de tampon d'extraction ( 50mM NaP04, 10 mM dithiothreitol, 10 mM EDTA, pH7) et une pincée de sable de Fontainebleau.
On a fabriqué un SR-P avec de tels matériaux II-VI et l'on a étudié la dynamique de la photoluminescente d'un tel SR-P, en vue de mettre en évidence le décalage de bande interdite en fonction de l'injection de porteurs de charge.
Le SR-P est épitaxié sur un substrat Cdo,88Zno,i2Te (211) et comprend un motif composé d'une couche en Cd0,91Mg0,09Te et d'une couche en Cdo,88Zno,22Te, ayant chacune 10 nm d'épaisseur, ce motif étant répété une centaine de fois. Le champ induit par les contraintes est de l'ordre d'une centaine de kV/cm dans cet exemple.
Les documents cités dans la présente description sont les suivants : [1]J.Talghader et J. S. Smith, Appl. Phys. Lett. 66,335 (1995)
[2] M. Larson et J. S. Harris Jr. , Appl. Phys. Lett. 68, 891 (1996) [3] N.K. Dutta, W.S. Hobson, J. Lopata et G. Zydzik, Appl. Phys. Lett. 70,1219 (1997) [4] F. Faure, D. Le Guen, J. C. Simon et B. Landousies, Electron. Lett. 22,795 (1986) [5]S. Murata et I. Mito, Optical and Quantum Electronics 22, (1990), pages 1 à 15 [6] F. Bernardini, V. Fiorentini, D. Vanderbilt, Phys.
Rev. B56 (1997), R1024 [7]D.A.B. Miller et al., Phys. Rev. B32,1043 (1985) [8]R. H. Yan, R. J. Simes et L.A. Coldren, IEEE J.
Quantum Electron. 25,2272 (1989) [9]D.L. Smith et C. Mailhiot, Rev. Mod. Phys. 62,173 (1990) [10] E. Anastassakis, Phys. Rev. B 46,4744 (1992) [11] G.H. Dolher, Opt. and Quant. Electr. 22, S121 (1990) [12] P. Michler, T. Lilienkamp, W. Ebeling, J.
Gutoswtki, M. Behringer, M. Fehrer et D. Hommel, Appl. Phys. Lett. 72,3320 (1998) [13] Guido Mula, N. T. Pelekanos, P. Gentile, N. Magnea et J. L. Pautrat, Appl. Phys. Lett. 70,856 (1997) [14] D.I. Babic, K. Streubel, R.P. Mirin, N. M.
Margarlit, J. E. Bowers, E. L. Hu, D.E. Mars, L. Yang et K. Carey, IEEE Photonics Technol. Lett. 7, 1225 (1995) [15] Jacques I. Pankove, Optical Processes in Semiconductors, Dover Publications Inc., New York 1971 [16] J. Appl. Phys. 84,3696 (1998)
[17] J. Appl. Phys. 69,827 (1991) [18] Phys. Rev. B 6,1301 (1972) [19] J. Appl. Phys. 80 846 (1996) [20] K.W. Gossen, E. A. Caridi, T.Y. Chang, J. B. Stark, D. A.B. Miller et R. A. Morgan, Appl. Phys. Lett. 56, 715 (1990).
STRUCTURE POUR ARTICLES DE VÊTEMENT, SPÉCIALEMENT LINGERIE Cette invention consiste en une structure pour articles de vêtement, spécialement lingerie, tel qu'un soutien-gorge, une culotte ou un maillot de bain, comprenant au moins deux couches de tissu, une intérieure et une extérieure, ayant des éléments élastiques et d'autres raides et ayant des transparences ou des semi- transparences, qui confèrent une adaptabilité du produit à la partie à laquelle il est appliqué.
ANTÉCÉDENTS DU SECTEUR On connaît déjà divers articles de vêtement, spécialement lingerie, prévoyant divers systèmes qui améliorent l'élasticité de la lingerie ou de maillots de bains sur la base de deux couches de tissus.
Ainsi, le modèle d'utilité espagnol n 1029709 est caractérisé en ce que deux couches ont été agencées dans leurs bonnets, l'intérieure étant cousue en forme de triangle et l'extérieure est composée de trois pièces cousues en cône.
Le modèle d'utilité espagnol n 1015764 prévoit un soutien-gorge pour soutenir le buste de sorte qu'une bande large surgit des bonnets, sous forme de bretelle double pour permettre, à la hauteur de l'épaule, d'introduire des épaulettes entre les deux bandes.
Le modèle d'utilité espagnol n 1028959 comprend un soutien-gorge ayant deux tissus, dont la ligne d'union traverse le bonnet dans la position diamétrale au système d'union, en incorporant également un tissu intérieur de renforcement.
COURTE DESCRIPTION DU BREVET DONT LE DÉPÔT EST DEMANDÉ La présente invention est le résultat de la combinaison de l'élasticité d'un tissu nécessaire à son adaptabilité et de sa raideur pour éviter la flaccidité des parties du corps humain qu'il couvre.
Le brevet en question est caractérisé en ce qu'il incorpore deux tissus et en ce qu'il a deux jeux de bretelles par épaule ou deux jeux de galon par taille, dans lesquels la bretelle/galon intérieur est élastique et l'extérieur a une configuration plus raide.
Elle incorpore un tissu double, intérieur et extérieur, ayant des caractéristiques identiques d'élasticité et d'adaptabilité à celles auparavant évoquées pour le soutien-gorge, afin de laisser croire que l'on porte deux combinaisons alors qu'en fait on n'en porte qu'une.
Tel qu'il a été décrit dans la cas du soutien-gorge, les bretelles extérieures (4') sont plus larges que les intérieures (3'), avec une surface (10') intermédiaire de matériau transparent ou semi-transparent permettant, dans le cas où la bretelle intérieure (3') se placerait sous l'extérieure (4') comme c'est le cas dans le dessin de la combinaison, de faire l'effet d "'une seule bretelle" et ne pas laisser voir l'existence de deux bretelles indépendantes.
Par ailleurs, il existe un point d'union, comme c'est le cas pour le soutien-gorge en question, entre le tissu extérieur (2') et le tissu intérieur (l') dans la zone du périmètre du cercle (6') du soutien-gorge de la combinaison et dans une bretelle arrière (qui n'a pas été représentée dans les dessins).
D'autre part, dans la combinaison, contrairement au soutien-gorge, il existe deux périmètres où la couche intérieure (l') n'est pas jointe à l'extérieure (2'), la première est une zone supérieure (12), près du cou, et la deuxième est une inférieure (10) qui entoure les cuisses.
Pour la combinaison, on a prévu deux tissus dans les bandes de cintrage latéral (8').
Il existe également la possibilité d'incorporer des imprimés (5') à la couche intérieure (l') de la combinaison.
La figure 3 montre une culotte, constituée à partir du même concept d'invention montré pour le soutien-gorge et la combinaison expliqué auparavant.
Cette culotte est également fabriquée, au moins en partie, avec deux tissus, un tissu intérieur (1") et un extérieur (2"), le premier étant, par exemple, du tulle ayant des caractéristiques plus raides que le deuxième, car il rend la culotte plus consistante, en pouvant incorporer également des imprimés (5").
La culotte incorpore un deuxième tissu, le tissu extérieur (2") également fabriqué, par exemple, en tulle transparent ou semi-transparent et ayant des caractéristiques d'élasticité.