INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
1. Sélection du promoteur La sélection du promoteur utilisé dans les cassettes d'expression va déterminer la séquence d'expression spatiale et temporelle du transgène dans la plante transgénique. Des promoteurs sélectionnés vont exprimer des transgènes dans des cellules végétales spécifiques (telles que les cellules épidermiques des feuilles, les cellules du mésophylle, les cellules du cortex radiculaire) ou dans des tissus ou organes spécifiques (par exemple racines, feuilles ou fleurs), et la sélection va traduire la localisation souhaitée de l'accumulation du produit génique NIMl ou du produit génique NIMl modifié. Ou bien encore, le promoteur sélectionné peut entraîner l'expression du gène sous un promoteur photo-induit, ou un autre promoteur à régulation provisoire. a. Expression constitutive, le promoteur 35S du CaMV La synthèse du plasmide pCGN1761 est décrite dans la demande de brevet publiée EP 0 392 225 (Exemple 23), qui est incorporée ici à titre de référence. Le pCGN1761 contient le promoteur 35S "double" et le terminateur de transcription tml, avec un site EcoRI unique entre le promoteur et le terminateur, et possède un squelette de type pUC. On synthétise un dérivé du pCGN1761, qui possède un lieur multisite modifié, lequel comprend les sites NotI et XhoI en plus du site EcoRI existant. Ce dérivé est appelé pCGN1761ENX. Le pCGN1761ENX peut être utilisé pour cloner des séquences d'ADNc ou des séquences géniques (y compris des séquences ORF microbiennes) à l'intérieur de son lieur multisite, pour permettre leur expression sous le contrôle du promoteur 35S dans les plantes transgéniques. La totalité de la cassette promoteur 35S-séquence génique-terminateur tml d'un tel produit de synthèse peut être excisée par les sites HindIII, SphI, SalI et XbaI, situés dans la direction 5' par rapport au promoteur, et les sites XbaI, BamHI et BglI situés dans la direction 3' par rapport au terminateur, pour permettre le transfert vers des vecteurs de transformation tels ceux qui sont décrits ci-dessus. En outre, le fragment promoteur 35S double peut être éliminé par excision en position 5' à l'aide de HindIII, SphI, SalI, XbalI ou Psti, et par une excision en 3' avec l'un quelconque des sites de restriction du lieur multisite (EcoRi, NotI ou XhoI) pour remplacement par un autre promoteur. b. Modification du pCGN1761ENX par optimisation du site d'initiation de la traduction Pour l'un quelconque des produits de synthèse décrits dans l'invention, on peut apporter des modifications autour des sites de clonage en introduisant des séquences qui peuvent renforcer la traduction. Cette façon de faire est particulièrement intéressante quand on souhaite une surexpression.
Le pCGN1761ENX est clivé avec SphI, traité par l'ADN-polymérase de T4 et religaturé, puis on détruit le site SphI situé dans la direction 5' par rapport au promoteur 35S double. On obtient ainsi le vecteur pCGN1761ENX/Sph-. Le pCGN1761ENX/Sph- est clivé avec EcoRi, et ligaturé sur un adaptateur moléculaire annelé de la séquence 5 ' -AATTCTAAAGCATGCCGATCGG-3 '/5 AATTCCGATCGGCATGCTTTA-3' (SEQ ID NO:12 et 13). On obtient ainsi le vecteur pCGNSENX, qui comporte la séquence d'initiation de traduction végétale quasi-optimisée TAAA C, adjacente à l'ATG, qui lui-même fait partie d'un site SphaI, lequel convient au clonage de gènes hétérologues au niveau de leur méthionine de départ. En aval du site SphI, on conserve les sites EcoRi, NotI et Chou.
On synthétise un autre vecteur, qui utilise un site NcoI au niveau de l'ATG de départ. Ce vecteur, appelé pCGN1761NENX, est obtenu par insertion d'un adaptateur moléculaire annelé de la séquence 5' AATTCCGATCGCCATGGTTTA-3' (SEQ ID NO:14 et 15) au niveau du site EcoRI du pCGN1761ENX. Ainsi, ce vecteur comprend la totalité de la séquence quasi-optimisée TAAACC adjacente à l'ATG de départ qui se trouve à l'intérieur du site NcoI. Les sites en aval sont EcoRi, NotI et XhoI.
Avant cette manipulation, les deux sites NcoI du vecteur pCGN1761ENX (sur les positions amont du promoteur 35S en position 5') sont cependant détruits par utilisation de techniques analogues à celles qui sont décrites ci-dessus pour SphI, ou encore par utilisation d'une amplification PCR "intérieur-extérieur". Innes et al., PRC Protocols A guide to methods and applications, Academic Press, New York, (1990). Cette manipulation peut faire l'objet d'une évaluation des éventuels effets gênants possibles sur l'expression, par insertion d'un ADNc végétal quelconque ou d'une séquence génique reporter dans le site de clonage après une analyse de routine par expression dans les végétaux. c. Expression sous un promoteur pouvant subir une régulation chimique/par un micro-organisme pathogène Le promoteur 35S double du pCGN1761ENX peut être remplacé par un autre promoteur quelconque, qui conduise à des niveaux d'expression suffisamment élevés. A titre d'exemple, un promoteur PR-1 chimiquement régulé, qui est décrit dans le brevet US N" 5 614 395, lequel est incorporé ici à titre de référence dans sa totalité, peut rem placer le promoteur 35S double. Le promoteur de choix est de préférence excisé à partir de sa source par des enzymes de restriction, mais il peut aussi être amplifié par amplification PCR à l'aide d'amorces qui portent les sites de restriction terminaux appropriés. S'il fallait effectuer une amplification PCR, il faudrait reséquencer le promoteur pour contrôler les erreurs d'amplification après le clonage du promoteur amplifié dans le vecteur cible. Le promoteur PR-la du tabac, pouvant être régulé par voie chimique ou par un micro-organisme pathogène, est séparé par clivage du plasmide pCIB1004 (voir le brevet EP 0 332 104, Exemple 21, pour la synthèse, ce document étant incorporé ici à titre de référence), et on le transfère dans le plasmide pCGN1761ENX (Uknes et al., 1992). Le pCIB1004 est clivé à l'aide de Nicol, et le dépassement de l'extrémité 3' que l'on obtient du fragment linéarisé est rendu franc par traitement avec l'ADNpolymérase de T4. Ce fragment est ensuite clivé à l'aide de HindIII, et le fragment obtenu, contenant le promoteur PR-la, est purifié sur gel et cloné dans le pCGN1761ENX, dont on a enlevé le promoteur 35S double. Cette opération est réalisée par clivage avec XhoI, et réalisation d'une extrémité franche avec la polymérase de T4, puis on clive à l'aide de HindIII et on isole le fragment plus grand contenant le terminateur du vecteur, dans lequel est cloné le fragment du promoteur pCIB1004. On obtient un dérivé pCGN1761ENX, avec le promoteur PR-la et le terminateur tml, et un lieur polysite intermédiaire comportant des sites uniques EcoRI et NotI. Des gènes NIMl sélectionnés peuvent être insérés dans ce vecteur, et les produits de fusion (c'est-à-dire promoteur-gène-terminateur) peuvent être ensuite transférés à un vecteur de transformation sélectionné quelconque, notamment ceux qui sont décrits dans la présente demande.
12:506-509 (1993)). e. Expression constitutive, le promoteur ubiquitine L'ubiquitine est un autre produit génique dont on sait qu'il s'accumule dans de nombreux types cellulaires, et son promoteur a été cloné à partir de plusieurs espè-ces pour utilisation dans des plantes transgéniques (par exemple le tournesol - Binet et al., Plant Science 79:8794 (1991) et le maïs - Christensen et al. Plant Molec.
*Biol. 12:619-632 (1989)). Le promoteur de l'ubiquitine du maïs a été développé dans des systèmes monocotylédones transgéniques, et sa séquence et ses vecteurs, synthétisés pour transformation de monocotylédones, sont décrits dans le brevet EP 0 342 926 (au nom de Lubrizol), qui est incorporé ici à titre de référence. Taylor et al. (Plant Cell Rep. 12:491-495 (1993)) décri-vent un vecteur (pAHC25) qui comprend le promoteur de l'ubiquitine du maïs et un premier intron, ainsi que sa grande activité dans les suspensions de cellules de nom-breuses monocotylédones après introduction par bombarde-ment de microprojectiles. Le promoteur ubiquitine con-vient à l'expression des gènes de la cellulase dans les plantes transgéniques, notamment les monocotylédones. Les vecteurs appropriés sont des dérivés du pAHC25 ou l'un quelconque des vecteurs de transformation décrits dans la présente demande, modifiés par l'introduction de séquences appropriées promoteurs et/ou introns de l'ubiquitine. f. Expression spécifique des racines Un autre modèle d'expression du gène NIM1 de la présente invention est l'expression radiculaire. Un promoteur radiculaire approprié est décrit par de Framond (FEBS 290 : 103-106 (1991)), et aussi dans le brevet publié EP 0 452 269 (au nom de Ciba-Geigy), qui est incorporé ici à titre de référence. Ce promoteur est transféré sur un vecteur approprié tel que le pCGN1761ENX pour insertion d'un gène de la cellulase, puis transfert de la totalité de la cassette promoteur-gène-terminateur sur un vecteur de transformation présentant un intérêt. g. Promoteurs inductibles par une lésion Des promoteurs inductibles par une lésion peuvent aussi convenir à l'expression des gènes NIMl selon l'invention. De nombreux promoteurs de ce type ont été décrits (par exemple Xu et al., Plant Molec. Biol. 22 573-588 (1993), Logemann et al., Plant Cell 1 : 151-158 s(1989), Rohrmeier & Lehle, Plant Molec. Biol. 22 : 783792 (1993), Firek & al., Plant Molec. Biol. 22 : 129-142 (1993), Warner & al., Plant J. 3 : 191-201 (1993)), et tous conviennent à une utilisation dans le cadre de la présente invention. Logemann & al. décrivent les séquences 5'-amont du gène wunI de la dicotylédone pomme de terre. Xu et al. montrent qu'un promoteur inductible par une lésion, provenant de la dicotylédone pomme de terre (pin2) est actif dans la monocotylédone riz. En outre, Rohrmeier & Lehle décrivent le clonage de l'ADNc du WipI du maïs, qui subit une induction par une lésion, et qui peut être utilisé pour isoler le promoteur apparenté par utilisation de techniques classiques. De même, Firek et al., et Warner et al., ont décrit un gène induit par une lésion, provenant de la monocotylédone Asparagus officinalis, et qui est exprimé au niveau des sites locaux de lésion et d'invasion par un micro-organisme pathogène.
Par utilisation des techniques de clonage de départ bien connues, ces promoteurs peuvent être transférés dans des vecteurs appropriés, fusionnés au gène NIMl de l'invention, et utilisés pour exprimer ces gènes sur les sites de lésion des végétaux. h. Expression médullo-préféréntielle La demande de brevet WO 93/07278 (au nom de Ciba Geigy), qui est incorporée ici à titre de référence, décrit l'isolement du gène trpA du maïs, qui présente une expression préférentielle dans les cellules médullaires.
Cette référence présente la séquence du gène et le promoteur allant jusqu'à -1726 pb à partir du début de la transcription. Par utilisation de techniques classiques de biologie moléculaire, ce promoteur, ou des parties de ce promoteur, peut être transféré sur un vecteur tel que le pCGN1761, où il peut remplacer le promoteur 35S et être utilisé pour entraîner l'expression d'un gène étranger d'une manière médullo-préférentielle. En fait, les fragments contenant le promoteur médullo-préférentielle, ou des parties de ce dernier, peuvent être transférés sur un vecteur quelconque et modifiés pour être utilisés dans les plantes transgéniques. i. Expression spécifique de feuille Un gène du maïs codant la phosphoénol-carboxylate (PEPC) a été décrit par Hudspeth & Grula (Plant Molec Biol 12 : 579-589 (1989)). Par utilisation de techniques classiques de biologie moléculaire, le promoteur de ce gène peut être utilisé pour entraîner l'expression d'un gène quelconque d'une manière spécifique de feuille dans des plantes transgéniques. j. Expression avec ciblage du chloroplaste Chen & Jagendorf (J. Biol. Chem. 268 : 2323-2367 (1993)) ont décrit l'utilisation réussie d'un peptide de transit de chloroplaste pour importation d'un transgène hétérologue. Ce peptide tel qu'utilisé est le peptide de transit provenant du gène rbcS du Nicotiana plumbaginifolia (Poulsen & al., Mol. Gen. Genet. 205 : 193-200 (1986)). En utilisant les enzymes de restriction DraI et SphI au prorata de Tsp509I et de SphI, la séquence d'ADN codant ce peptide de transit peut être excisé du plasmide prbcS-8B et manipulé pour utilisation avec l'un quelconque des produits de synthèse décrits ci-dessus. Le fragment DraI-SphI s'étend depuis -58, par rapport à l'ATG du rbsS d'initiation, jusqu'à et y compris le premier acide aminé (et aussi une méthionine) du peptide mature immédiatement après le site de clivage d'importation, tandis que le fragment Tsp509I-SphI s'étend depuis la position 8 par rapport à l'ATG du rbcS d'initiation jusqu'à et y compris le premier acide du peptide mature.
Ainsi, ces fragments peuvent être convenablement insérés dans le lieur multisite d'une cassette d'expression quelconque choisie qui produit une fusion de transcription avec la séquence de tête non traduite du promoteur choisi (par exemple 35S, PR-1A, actine, ubiquitine, etc.), tout en permettant l'insertion d'un gène NIMl en fusion correcte en aval du peptide de transit. Des produits de synthèse de ce type sont habituels dans la technique. Par exemple, alors que l'extrémité du DraI est déjà franche, le site 5' Tsp509I peut être rendu franc par traitement par la polymérase de T4, ou encore il peut être ligaturé sur un lieur ou une séquence d'adaptation pour faciliter sa fusion au promoteur choisi. Le site 3' SphI peut être maintenu en l'état, ou encore il peut être ligaturé à la séquence adaptateur ou lieur pour faciliter son insertion dans le vecteur choisi de façon à mettre à disposition des sites de restriction appropriés pour l'insertion ultérieure d'un gène NIMl sélectionné. Idéalement, 1'ATG du site SphI est maintenu et comprend le premier ATG du gène NIMl sélectionné. Chen & Jagendorf mettent à disposition des séquences consensus pour le clivage idéal permettant l'importation des chloroplastes, et, dans chaque cas, on préfère une méthionine sur la première position de la protéine mature. Sur les positions ultérieures, il y a une variation plus grande, et l'acide aminé peut ne pas présenté un caractère aussi critique. Dans tous les cas, les produits de synthèse par fusion peuvent faire l'objet d'une évaluation de leur efficacité de l'importation in vitro par utilisation des méthodes décrites par Bartlett & al. (dans : Edelmann et al. (Eds), Methods in Chloroplast Molecular Biology, Elsevier, pages 1081-1091 (1982)), et Wasmann et al.
(Mol. Gen. Genet. 205 : 446-453 (1986)). Habituellement, l'approche la meilleure pourra consister à produire des fusions en utilisant le gène NIM1 sélectionné ou une forme modifiée du gène NIM1 sans aucune modification au niveau du site amino-terminal, et seulement pour incorporer des modifications quand il est manifeste que ces fusions ne correspondent pas à une importation de chloroplaste avec un rendement élevé, auquel cas des modifications peuvent être apportées selon la littérature établie (Chen & Jagendorf ; Wasmann et al. ; Ko & Ko, J. Biol.
Chem. 267 : 13910-13916 (1992)).
On synthétise un vecteur préféré en transférant le fragment codant le peptide de transit DraI-SphI provenant du prbcS-8B dans le vecteur de clonage pCGN1761ENX/Sph-.
l'encrassement des glissières.
Ce rail de support est rigidement fixé & l'aide de vis, non représentées, à un épaulement 21 des moyens de
guidage transversal 13, visible sur la figure 4.
Ces derniers, également appelés moyens de déboîtement 13, ont une partie rigidement fixée aux moyens d'ancrage 12 d'une part, et d'autre part une autre partie
fixée à la poutre de suspension 17.
Les moyens de guidage transversal 13 comprennent deux coulisseaux 22 guidés par rapport aux moyens d'ancrage
12 d'une part.
D'autre part, les coulisseaux 22 sont ici fixés à la poutre de suspension 17, afin de les rendre solidaires
en déplacement transversal.
Dans certaines réalisations, une articulation, par exemple avec un axe longitudinal, est agencée entre la
poutre 17 et chaque coulisseau 22.
Les coulisseaux 22 comprennent chacun sur les figures une barre cylindrique solidaire de la poutre 17 transversalement et montée coulissante dans le logement de guidage de la barre, solidaire d'une platine 18. Ils
forment un guidage linéaire, rectiligne et transversal.
A une extrémité transversale extérieure du dispositif 11, chaque barre de coulisseau est pourvue d'un épaulement 21 tel qu'évoqué plus haut pour la
solidarisation de la poutre 17.
La figure 3 montre que les moyens de guidage transversal 13 comprennent en outre un système de
Pour ce qui a trait aux composés à base d'étain, on peut notamment se reporter à l'ouvrage "PLASTICS ADDITIVES HANDBOOK de GACHTERIMULLER (1985) pages 204-210 ou dans ENCYCLOPEDIA OF PVC de Leonard I. NASS (1976) pages 313-325.
Ce sont plus particulièrement des carboxylates de mono- ou di-alkylétain et des mercaptides de mono- ou di-alkylétain.
Parmi ces composés les plus couramment utilisés sont les dérivés de di-nméthylétain, de di-n-butylétain ou de di-n-octylétain tels que par exemple le dilaurate de dibutylétain,le maléate de dibutylétain, le laurate-maléate de dibutylétain, le bis(maléate de mono-C4-C8-alkyle) de dibutylétain, le bis(lauryl-mercaptide) de dibutylétain, le S-S' (mercatoacétate d'isooctyle) dibutylétain, le frmercapto propionate de dibutylétain, le maléate de di-n-octylétain polymère, le bis-S-S'(mercaptoacétate d'isooctyle)di-noctylétain, le 5-mercapto-propionate de di-n-octylétain. Les dérivés monoalkylés des composés cités ci-dessus sont aussi convenables.
Comme capteur d'acide chlorhydrique de type minéral, on peut aussi citer les sulfates, et/ou les carbonates, d'aluminium et/ou de magnésium, du type hydrotalcite notamment. II est rappelé que les composés du type hydrotalcite correspondent à la formule suivante : Mgl-xAlx(OH)2A"x/n . mH2O, dans laquelle x est compris entre 0 exclu et 0,5, An- représente un anion tel que le carbonate notamment, n varie de 1 à 3 et m est positif.
On peut aussi utiliser des composés essentiellement amorphes de formule (MgO)y, Au203, (C02)x, (H20)z, dans laquelle x, y et z vérifient les inéquations suivantes : 0 < x S 0,7 ; 0 < y c y c 1,7 et z 2 3. Ces composés sont notamment décrits dans la demande de brevet EP 509 864. Par ailleurs, les composés appelés catoites de formule Ca3A12(OH)12 ou encore Cal2(SiO)4(OH)12 conviennent en tant que composés capteur d'acide chlorhydrique de type minéral.
Les formulations à base de polymères halogénés peuvent aussi comprendre du dioxyde de titane.
De préférence, le dioxyde de titane est sous le forme rutile.
Généralement, la granulométrie du dioxyde de titane entrant dans les compositions stabilisantes selon l'invention, est comprise entre 0,1 et 0,5 clam.
Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, on utilise du dioxyde de titane sous forme rutile ayant subi un traitement de surface, de préférence minéral.
Parmi les dioxydes de titane convenant particulièrement bien à la mise en oeuvre de la présente invention, on peut citer sans intention de s'y limiter, les dioxydes de titane Rhoditane RL18, Rhoditane RL90, commercialisés par Rhône-Poulenc, les dioxydes de titane KRONOS 2081@ et 2220@ commercialisés par Kronos.
Les formulations à base de polymères halogénés peuvent comprendre de même d'autres pigments blancs ou colorés. Parmi les pigments colorés, on peut citer notamment le sulfure de cérium.
II est à noter que la quantité de pigment introduite dans la formulation varie dans de larges limites et dépend notamment du pouvoir colorant du pigment et de la coloration finale souhaitée. Cependant, à titre d'exemple, la quantité de pigment peut varier de 0,1 à 20 g pour 100 g de polymère halogéné, de préférence de 0,5 à 15 g par rapport à la même référence.
La formulation peut en outre comprendre au moins un polyol comprenant 2 à 32 atomes de carbone et présentant deux à neuf groupements hydroxyles.
Parmi ces composés on peut mentionner les diols en C3-C30 tels que b propylène glycol, le butanediol, l'hexanediol, le dodécanediol, le néopentylglycol, les polyols tels que le triméthylolpropane, le pentaérythritol, le dipentaérythritol, le tripentaérythritol, le xylitol, le mannitol, le sorbitol, la glycérine, les mélanges d'oligomères de la glycérine présentant un degré de polymérisation de 2 à 10.
Une autre famille de polyols pouvant être convenablement mise en oeuvre, est constituée par les alcools polyvinyliques partiellement acétylés.
On peut de même utiliser des composés hydroxylés comprenant des groupements isocyanurates, seuls ou en combinaison avec les polyols précités, tels que par exemple le tris (2-hydroxyéthyl) isocyanurate.
Dans les figures les colonnettes 86 sont en deux parties et comportent chacune un rivet traversant une douille engagée dans un orifice élargi 87 du diaphragme 8. L'appui secondaire 84 consiste en une couronne roulée, interposée entre la tête de chaque rivet et l'extrémité en regard de la douille comme décrit dans le document US 4,195,719 précité auquel on se reportera pour plus de précisions.
Ce document montre par ailleurs d'autres formes de réalisation envisageables pour monter l'appui secondaire 84 sur le couvercle 8.
En variante cet appui secondaire peut être porté par des pattes issues par découpe et pliage du fond 90 du couvercle 9, lesdites pattes traversent chacune un orifice élargi 87 et sont rabattues radialement vers l'extérieur à leur extrémité libre, pour formation d'un coude de calage pour une couronne de forme tronconique dont l'arête externe est arrondie pour formation de l'appui secondaire 84.
Dans tous les cas des moyens d'assemblage sont prévus pour montage basculant du diaphragme 8 sur le couvercle 9. Ces moyens comportent l'appui primaire 85, L'appui secondaire 84 et les colonnettes 86 rivetées sur le fond 90 ou les pattes précitées.
Des premiers moyens de liaison en rotation 72 sont prévus pour lier en rotation le plateau de pression 7 au couvercle 9 avec possibilité de déplacement axial.
Ces moyens consistent ici en des languettes élastiques 72 réparties en plusieurs jeux dont le nombre dépend des applications. Une ou plusieurs languettes superposées peuvent être prévues pour chaque jeu.
Ces languettes 72 sont ici d'orientation tangentielle et sont fixées à l'une de leurs extrémités chacune par un rivet 73 à une patte 75 allongée circonférentiellement que présente le plateau de pression 7, en saillie radiale vers l'extérieur, à sa périphérie externe.
A leur autre extrémité les languettes 72 sont fixées par rivetage en 74 au couvercle 9. Plus précisément le rivet 74 est prolongé pour former une colonnette dont la tête forme une butée propre à coopérer avec une saillie circonférentielle 76 que présente la patte 75 à l'une de ses extrémités circonférentielles.
Le fond 90 du couvercle 9 est prolongé à sa périphérie externe par une jupe cylindrique 92 d'orientation axiale. Cette jupe 92 est localement échancrée et est prolongée à son extrémité libre par un rebord transversal 93,94 dirigé radialement vers l'extérieur.
C'est par l'intermédiaire de ce rebord 93,94 que le couvercle 9, est suivant une caractéristique, fixé à sa périphérie externe sur le plateau support 1 par l'intermédiaire de moyens de fixation 77 avec interposition d'une couronne de fermeture 6 entre le rebord 93,94 et la périphérie externe du plateau 1. Le couvercle 9 entoure ici le diaphragme 8 et le plateau de pression 7.
Les moyens de fixation consistent ici en une pluralité de vis 77 dont la tête prend appui sur une plage radiale 93 de fixation du rebord 93,94 et traverse ladite plage et la couronne 6 pour venir se visser dans le plateau de support 1. Des pions de centrage 78 portés par le plateau de support 1 sont prévus pour centrer le rebord 93,94 et la couronne 6. Les pions 78 traversent donc des trous en coïncidence axiale ménagés dans la couronne 6 et les plages 93.
Ici le rebord 93,94 comporte (figure 3) deux séries de plages 93,94 décalées axialement. Les plages 93 précitées servent à la fixation du couvercle 9 sur le plateau de support 1, tandis que les plages 94, plus proches axialement du fond 90, servent à la fixation des languettes 72 à l'aide des colonnettes 74.
Comme visible à la figure 3 deux plages 93 consécutives sont reliées entre elles par une plage 94 pour définir une première échancrure 79 permettant le passage d'une patte 75 du plateau de pression.