INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Par ailleurs, le socle 2 comporte un plot de centrage 28 s'étendant suivant l'axe 4, en saillie d'une face arrière du socle 2. Ce plot 28 est destiné à pénétrer dans un orifice 30 d'un élément 23 de carrosserie pour assurer le positionnement du feu par rapport à la carrosserie. Le socle 2 comporte un ergot 32 prolongeant vers l'arrière une paroi latérale 6 du socle. Cet ergot flexible 32 est adapté à se fléchir élastiquement en pénétrant dans un orifice 34 de l'élément de carrosserie 21 puis, après détente, à prendre appui sur cet élément. Il assure, en coopération avec le plot 38, la fixation du feu à la carrosserie. Bien entendu, on pourra apporter à l'invention de
ci. Le feu pourra comporter une seule lampe.
d'éclairage ou de signalisation de véhicules automobile, et plus particulièrement le montage
et le démontage des lampes dans ces dispositifs.
De façon classique, un projecteur à boîtier comporte, en général sur la face postérieure de ce boîtier, un capot ou bonnette qui, lorsqu'il est retiré, libère une ouverture du boîtier à travers laquelle la
lampe du projecteur peut être montée ou démontée.
Dans le cas des blocs de feux de signalisation, c'est généralement l'ensemble du porte-lampes du bloc de feux qui est démonté, toujours par l'arrière (par rapport à la direction d'émission de la lumière), pour procéder
au remplacement des lampes.
Dans les deux cas, cela signifie qu'un espace libre doit être laissé sous le capot avant pour les projecteurs ou feux avant, dans le coffre arrière pour les feux arrière - pour pouvoir procéder au démontage voulu et aux manipulations, parfois délicates,
Pour relier les oligodésoxynucléotides Sens, les oligodésoxynucléotides guides suivants ont été utilisés : - Gl= 5' TGTGTTTGAAGGGAATCGAAAGAGAGACACA 3' (SEQ.ID15) - G2= 5' GATTGGGTTTTTGTGTGGCTAAGATGTGTG 3' (SEQ.ID16) - G4= 5' TGTAGATGTGCCACAGAGTGGCATGCGT 3' (SEQ. ID18) Pour réaliser la réaction LCR, 10 pmol des oligodésoxynucléotides sens SI phosphorylé, S2 phosphorylé, S5 phosphorylé et S7 ont été ligaturés en présence de 10 pmol des oligodésoxynucléotides guides Gl, G2 et G4,5 l du tampon ADN ligase Taq 10X (New England Biolabs) et 40 unités d'ADN ligase Taq (New England Biolabs). La réaction de ligation est réalisé dans le thermocycleur GeneAmp PCR System 9700 (Perkin Elmer, Norwalk, USA). Elle est constituée d'un cycle d'1 min à 94 C, et de 8 cycles identiques chacun composé de la succession des étapes suivantes : 1 min à 65 C, 1 min à 57 C, 1 min à 52 C, 1 min à 48 C, 1 min à 43 C, et enfin 10 min à 37 C.
Enfin, l'amplification PCR de l'ADN simple brin obtenu a été réalisé dans un thermocycleur GeneAmp PCR System 9700 en présence de 100 pmol de chacune des amorces oligodéoxynucléotidiques 5' CATGCTGCAGACTAGTGGATT 3', et 5' CGGGGATCCTCTAGGTTTCT 3', 50 nmol de chacun des dNTP, 10 (il de tampon ADN polymérase Vent 10X (New England Biolabs), et 2 unités d'ADN polymérase Vent (New England Biolabs). L'ADN a été dénaturé pendant 5 min à 94 C, soumis à 25 cycles constitués chacun de 30 sec de dénaturation à 95 C, de 30 sec d'hybridation à 56 C, et d'1 min d'élongation à 72 C, puis l'élongation à 72 C a été poursuivie pendant 5 min.
Les fragments d'ADN du milieu réactionnel ont été digérés pendant 45 min à 37 C par 20 unités de BamHI, puis pendant 1 h à 37 C par 20 unités de PstI, et enfin purifiés sur colonne Qiaquick. Ils ont été insérés dans le plasmide pGEM3Z-petE prom digéré pendant 1 h à 37 C par BamHI, puis pendant 1 h à 37 C par PstI, soumis à
1 'électrophorèse sur gel d'agarose 0,8%, purifié sur colonne d'affinité Qiaquic'<, déphosphorylé pendant 1 h à 37 C en présence de 12 l de tarpon 3 10X (New England Biolabs) et de 5000 unités de phcsphatase alcaline d'intestin de veau (CIP, New England Biolabs), et enfin purifié sur colonne d'affinité Qiaquick. Pour réaliser la ligation, 25 ng de plasmide traité comme décrit ci-dessus ont été mis en présence de 100 ng des fragments d'ADN obtenus par PCP, en présence de 1,2 l du tampon ADN ligase T4 10X (New England Biolabs) et 400 unités d'ADN ligase T4 (New England Biolabs) pendant 1 nuit à 18 C. Des bactéries Escherichia coli DH5a, rendues préalablement compétentes, ont été transformées par la moitié du mélange réactionnel de ligation. L'ADN des clones obtenus, sélectionnés sur milieu LB supplémenté en ampicilline (50 mg/1), a été extrait selon la méthode de lyse alcaline et a été analysé par digestions enzymatiques. La séquence promotrice MPrllll de l'un de ces clones a été vérifié par séquençage.
Le fragment de 58 pb contenant les deux motifs as-2 et le motif as-1 a été obtenu en digérant 25 g de plasmide pMRTllll par 40 unités de SpeI pendant 1 h à 37 C, puis par 4 unités de DraIII pendant 1 h à 37 C. Le fragment a été isolé par électrophorèse sur gel d'agarose Nu-Sieve 3 % (FMC, Rockland, USA) et enfin purifié sur colonne d'affinité Qiaquick.
La ligation a été réalisé avec 30 ng de vecteur pMRT1116 NheI/DraIII déphosphorylé et 50 ng du fragment de 58 pb pendant 15 h à 18 C dans un milieu réactionnel de 20 l en présence de 2,0 \il du tampon ADN ligase T4 10X (New England Biolabs) et 800 unités d'enzyme ADN ligase T4 (New England Biolabs). Des bactéries Escherichia coli DH5a, rendues préalablement compétentes, ont été transformées par la moitié du mélange réactionnel de ligation.
L'ADN plasmidique des clones obtenus, sélectionnés sur milieu LB supplémenté en ampicilline (50 mg/1), a été extrait selon la méthode de lyse alcaline, et analysé par digestions enzymatiques et par amplification génique à l'aide des oligodésoxynucléotides 5' CATGCTGCAGACTAGTATCC 3' choisi sur le promoteur et 5'
TTGATTTCACGGGTTGGG 3' choisi sur la séquence uidA. La séquence promotrice MPrll46 (SEQ.ID05) de l'un de ces clones a été vérifié par séquençage.
2. 3. Construction du promoteur MPr1147 : Le promoteur MPr1147 (Fig. IV) a été obtenu en insérant une séquence de 44 pb du promoteur de l'ARN 35S du virus de la mosalque du choux fleur (CaMV) contenant les motifs as-2 et as-1 (Lam, 1989 ; et al., 1989) et des sites de restrictions adjacent aux sites NheI et DraIII de MPrlll7 (SEQ. ID04).
Pour ce faire, le plasmide pMRT1117 a été digéré par 25 unités de NheI pendant 1 h à 37 C puis purifié sur colonne d'affinité Qiaquick. Les extrémités générées ont été rendues bouts-francs par l'action de l'ADN polymérase Pfu (Stratagene, La Jolla, USA) selon les recommandations du fournisseur, puis le plasmide obtenu a été digéré pendant 1 h à 37 C par 4 unités de DraIII. Le plasmide ainsi modifié a été isolé sur gel d'agarose à 0,8 %, purifié sur colonne d'affinité Qiaquick et déphosphorylé pendant 1 h à 37 C en présence de 12 l de tampon 3 10X (New England Biolabs) et de 5000 unités de phosphatase alcaline d'intestin de veau (CIP, New England Biolabs), et enfin purifié à nouveau sur colonne d'affinité Qiaquick.
Le fragment PstI/DraIII de 55 pb contenant les 44 pb des motifs as-2 et as-1 du CaMV 35S a été obtenu à partir du plasmide pMRTI110. Le plasmide pMRT1110 qui contient une séquence de 44 pb correspondant au motif as-2 (Lam et Chua, 1989) et au motif as-1 (Lam et al., 1989) du promoteur de l'ARN 35S du virus de la mosaïque du choux fleur (CaMV) en amont du promoteur minimal de la plastocyanine de pois modifié par l'ajout d'une boîte "G", a été obtenu par lb-PCR de la manière suivante. L'ADN simple brin continu a été formé à l'aide des oligodésoxynucléotides Sens suivants : - SI = 5' TTCCCTTCAAACACATACAAATTCAGTAGAGAAGAAACTCATTACTCTTGAGAAA CCTAGAGGATCCCCG 3' (SEQ. ID08) - S2 = 5' CACAAAAACCCAATCCACATCTTTATCATCCATTCTATAAAAAATCACCTTCTGTG TGTCTCTCTTTCGA 3' (SEQ.ID09)
- S5= 5' CTGTGGCACATCTACATTATCTAAATCTAAGCCACGTCGGAGGATAACATATTCT TCCACACATCTTAGCCA 3' (SEQ.ID12) - S6 = 5'CATGCTGCAGACTAGTGGATTGATGTGATATCTCCACTGACGTAAGGGATGACG CATGCCACT 3' (SEQ.ID13) Cent pmol des oligcdésoxynucléotides SI, S2 et S5 ont été phosphorylés en 5' par 15 unités de kinase (Amersham) en présence de 5 l du tampon kinase 10X (Amersham) et 500 pmol d'ATP (Sigma), pendant 30 min à 37 C. Les oligodésoxynucléotides phosphorylés ont été purifiés par extraction par un volume de phénol, puis un volume de phénol : chloroforme : alcool isoamylique (25: 24:1 v/v/v) et enfin un volume de chloroforme : alcool isoamylique (24: 1 v/v), avant d'être précipités par 1/10 volume d'acétate de sodium 3M pH 4,8 et 2,5 volumes d'éthanol absolu à -80 C pendant 20 min puis centrifugés à 16060 g pendant 30 min. Les oligodésoxynucléotides précipités ont été lavés à l'éthanol 70%, séchés, puis remis en suspension dans de l'eau à une concentration de 10 pmol/l.
Pour relier les oligodésoxynucléotides Sens, les oligodésoxynucléotides Guides suivants ont été utilisés : - Gl= 5' TGTGTTTGAAGGGAATCGAAAGAGAGACACA 3' (SEQ.ID15) - G2= 5' GATTGGGTTTTTGTGTGGCTAAGATGTGTG 3' (SEQ.ID16) - G4= 5' TGTAGATGTGCCACAGAGTGGCATGCGT 3' (SEQ.ID18) Pour réaliser la réaction LCR, 10 pmol des oligodésoxynucléotides sens SI phosphorylé, S2 phosphorylé, S5 phosphorylé et S6 ont été ligaturés en présence de 10 pmol des oligodésoxynucléotides guides Gl, G2 et G4,5 l du tampon ADN ligase Taq 10X et 40 unités d'ADN Ligase Taq (New England Biolabs). La réaction de ligation est réalisé dans le thermocycleur GeneAmp PCR System 9700. Elle est constituée d'un cycle d'1 min à 94 C, et de 8 cycles identiques constitués chacun de la succession des étapes suivantes : 1 min à 65 C, 1 min à 57 C, 1 min à 52 C, 1 min à 48 C, 1 min à 43 C, et enfin 10 min à 37 C. Puis, le mélange réactionnel de ligation a été purifié sur colonne Qiaquick selon les recommandations du fournisseur.
Enfin, l'amplification PCR de l'ADN simple brin obtenu a été
réalisé dans un thermocycleur GeneAmp PCR System 9700 en présence de 100 pmol de chacune des amorces oligodécxynucléotidiques 5' CATG'T'AGF,CTAGTGGATT 3', et 5' CGGGGATCCTCTAGGTTTCT 3', de 50 nmcl do chacun des dNTP, de 10 y1 de tampon ALU polymérase Vent 10X (New England Biolabs), et de 2 unités d'ADN polymérase Vent (New England Biolabs). L'ADN a été dénaturé pendant 5 min à 94 C, soumis à 25 cycles constitués chacun de 30 sec de dénaturation à 95 C, de 30 sec d'hybridation à 56 C, et d'1 min d'élongation à 72 C, puis l'élongation à 72 C a été poursuivie pendant 5 min.
La cassette d'expression MPrll46 / uidA-IV2 / nos term a été clonée au site HindIII modifié du plasmide binaire pGA492 en suivant le même protocole que pour le plasmide pMRT1152, excepté que la cassette d'expression a été isolée à partir du plasmide pMRT1146. Le clone résultant a été appelé pMRT1171.
3. 3. Obtention du plasmide binaire pMRT1172.
La cassette d'expression MPrll47 / uidA-IV2 / nos term a été clonée au niveau du site HindIII modifié du plasmide binaire pGA492 en suivant le même protocole que pour le plasmide pMRT1152, excepté que la cassette d'expression a été isolée à partir du plasmide pMRT1147. Le clone résultant a été appelé pMRT1172.
3. 4. Obtention du plasmide binaire pMRT1182.
Les fragments promoteur MPrl092 et séquence uidA-IV2 / nos term ont été insérés dans le plasmide binaire pGA492 préparé comme décrit ci-dessus. Les deux fragments ont été préparés de la manière suivante : - CaMV D35S prom a été isolé en digérant 10 g du plasmide pJIT163 par 40 unités de KpnI pendant 1 h à 37 C. Les extrémités de ce plasmide linéarisé ont été rendues bouts-francs à l'aide de 6 unités de l'ADN polymérase T4 (New England Biolabs) pendant 30 min à 37 C selon les recommandations du fabriquant. Le plasmide ainsi modifié a été purifié sur colonne d'affinité Qiaquick, puis
redigéré par 80 unités de HindIII pendant 1 h à 37 C. Le fragment de 743pb correspondant au promoteur a été séparé sur gel d'agarose à 0,8 %, puis purifié sur colonne d'affinité Qiaquick.
- La cassette "uidA-172/nos term" a été obtenue en digérant 4 g du plasmide pMPT1092 par 40 unités de HindIII et d'EcoRI pendant 1 h. Le fragment de 2,2 kb correspondant à la séquence uidA-IV2/nos term a été séparé sur gel d'agarose à 0,8 %, puis purifié sur colonne d'affinité Qiaquick.
La ligation entre les trois fragments a été réalisé en mélangeant 100 ng de plasmide binaire, 50 ng de fragment promoteur et 50 ng du fragment correspondant à la séquence "uidA-IV2/nos term" dans un volume réactionnel de 20 (il, en présence de 2 [il du tampon ADN ligase T4 10X (New England Biolabs) et 400 unités d'enzyme ADN ligase T4 (New England Biolabs). L'incubation a été réalisé dans un thermocycleur en soumettant le mélange de ligation à 198 cycles constitués chacun de 30 sec d'incubation à 30 C, et de 30 sec d'incubation à 10 C. Des bactéries Escherichia coli DH5a, rendues préalablement compétentes, ont été transformées par la moitié du milieu réactionnel de ligation. L'ADN plasmidique des clones obtenus, sélectionnés sur milieu LB supplémenté en tétracycline (12 mg/1), a été extrait selon la méthode de lyse alcaline et analysé par digestions enzymatiques et amplification génique à l'aide des oligodésoxynucléotides 5' ATATGAGACTCTAATTGGATACCGAGGGG 3' choisi sur l'ADN de transfert du plasmide binaire et 5' TTGATTTCACGGGTTGGG 3' choisi sur la cassette d'expression au niveau de la séquence uidA. L'un des clones retenu a été dénommé pMRT1182.
Les plasmides pMRT1152, pMRT1171, pMRT1172 et pMRT1182 ont été transférés dans la souche d'Agrobacterium tumefaciens LBA4404 selon la technique décrite par Holsters et al. (1978). L'ADN plasmidique des clones obtenus, sélectionnés sur milieu LB supplémenté en Rifampicine (50 mg/1) et en Tétracycline (5 mg/1), a été extrait selon la méthode de lyse alcaline, modifiée en ajoutant du lysozyme (25 mg/ml) dans le tampon de resuspension des cellules. L'ADN plasmidique obtenu a été analysé par digestions
enzymatiques et par amplification génique à l'aide des oligodésoxynucléotides 5' ATATGAGACTCTAATTGGATACCGAGGGG 3' choisi sur le plasmide et 5' TTGATTTCACGGGTTGGG 3' choisi sur la cassette d'expression. Les clones d'agrobactéries obtenus ont été utilisés en transformation génétique végétale.
4. Mesure et comparaison des niveaux d'expression des différentes promoteurs par la méthode d'expression transitoire.
4. 1. Culture in vitro du tabac, préparation des feuilles.
Les expériences d'expression transitoire ont été réalisées sur des feuilles de tabac (Nicotiana tabacum L. ) du cultivar PBD6 âgées de 6 semaines. Des graines matures de tabac cv. PBD6 ont été stérilisées pendant 10 min dans une solution d'hypochlorite de calcium saturée (70 g/1), puis rincées trois fois pendant 5 min dans l'eau déionisée stérile. Les graines stériles ont été déposées sur milieu MS20 (Murashige et Skoog, 1962) et incubées pendant 6 semaines en chambre de culture (température constante de 24 C, photopériode 16 h nuit/ 8 h jour, intensité lumineuse de 200 jimol photons.m-2.sec-l) .
Afin d'éviter l'éclatement des cellules du mésophylle foliaire lors de la transformation, les 2 feuilles principales des plantes de tabac PBD6 âgées de 6 semaines ont été excisées de la plante 24 h avant transformation par biolistique, et déposées, face ad-ligneuse vers le haut, sur milieu BY3 de plasmolyse douce (Sels MS 4,4 g/1, myoinositol 100 mg/1, thiamine 1 mg/1, KH2PO4 200 mg/1, Saccharose 30 g/1, Sorbitol 45,5 g/1, 2,4 D 1 mg/1, pH 5,8).
4. 2. Enrobage des particules d'or par l'ADN des constructions chimériques.
La transformation par biolistique nécessite le dépôt préalable de l'ADN sur des billes d'or sphériques de 0,6 m de diamètre stérilisées 10 min dans l'éthanol absolu (99,98 %, à moins de 0,02 % d'eau), lavées quatre fois dans l'eau déionisée stérile, et enfin conservées pendant 4 semaines maximum à -20 C dans une solution de glycérol à 50%.
Les interférences par l'effet de réinjection ont été exploitées largement en télémétrie optique, la mesure de distances, et la vélocimétrie par l'effet Doppler. Un modèle simplifié est basé sur l'interférence entre une onde lumineuse se propageant à l'intérieur de la cavité laser et une onde rétroréfléchie dans la cavité. Ce modèle ne prend pas en compte les effets de l'élargissement (ou de rétrécissement) de la largeur spectrale du laser et permettent seulement de valider le principe de la technique de mesure.
Un modèle plus sophistiqué du phénomène de la réinjection considère que l'ensemble composé par la cavité laser et le réflecteur extérieur se comporte comme une triple cavité Fabry-Pérot. Ce modèle relie la modulation d'intensité à une modification de la densité de porteurs dans la cavité laser et l'assimile à un effet de modulation spectrale. Cette approche a permis la réalisation de plusieurs dispositifs de télémétrie.
L'effet de réinjection est utilisé pour mesurer les vibrations d'un microlevier intégré au système de détection d'un microscope à effet tunnel (STM), commercialisé par la société américaine Digital Instruments (Nanoscope II). Dans cette configuration un microlevier est monté sur un bimorphe et disposé à une distance de plusieurs micromètres de la face de sortie de la diode laser. La lumière émise par la diode laser est rétroréfléchie dans la cavité laser et modulée par la vibration du microlevier. La modulation d'intensité résultante est mesurée par un détecteur intégré à l'arrière de la cavité laser. Grâce à cette technique des amplitudes de vibrations dans la gamme de 10 nanomètres ont été mesurées avec une résolution spatiale de 800 angstrôms.
Différents types de microscopes confocaux basés sur l'effet de rétroinjection optique existent déjà. Un premier microscope confocal à balayage, basé sur l'effet de rétroinjection optique, est destiné à la profilomètrie de surfaces, et atteint des rugosités dans la gamme de 3 nm à 3um avec une résolution spatiale de 200 nm. Son architecture très simple comprend une cavité Fabry-Pérot avec un détecteur à l'arrière, et un système optique focalisant le faisceau lumineux sur l'échantillon jouant le rôle de la cavité externe. Le positionnement du porte échantillon est assuré grâce à un translateur piézoélectrique.
Un second microscope confocal à balayage utilise comme sonde une fibre optique monomode clivée (celle-ci joue à la fois le rôle de filtre spatial pour l'illumination et la détection du faisceau lumineux). Le phénomène mesuré est basé sur des interférences produites entre l'onde rétro-diffusée par la sonde et celle réfléchie par l'échantillon. Une vibration axiale de la sonde, entraînée par un bimorphe piézoélectrique, associée à l'analyse par un détecteur synchrone et un filtrage fréquentiel permettent d'extraire le signal confocal à partir du signal interféromètrique classique.
Si le contrôle de rétro-réflexions dans une cavité laser a été largement utilisé comme un moyen de mesure en détection champ lointain, les effets perturbateurs d'un échantillon placé à une distance sublongueur d'onde de la face de sortie de la cavité Fabry Pérot du laser sont relativement ignorés. Cette configuration particulière, exigeant un modèle de réinjection plus complexe, constitue la principale originalité de l'invention.
En microscopie champ proche par réflexion où la sonde optique fonctionne à la fois en émission et en détection, le signal de sortie rétro réfléchi dans la sonde est très faible. Pour pallier cette difficulté, deux microscopes optiques SNOM (Scanning Near Field Optical Microscope), basés sur la réinjection dans la cavité de laser du faisceau lumineux réfléchi par l'échantillon, ont été récemment proposés. Dans ces dispositifs expérimentaux la perturbation introduite par la réalimentation de la diode laser est utilisée comme signal utile de sortie.
Dans un premier système, la cavité laser est constituée par une fibre optique dopée au néodyme (Nd13) et pompée par un laser à krypton (Kr'). A une des extrémités de la fibre on réalise par attaque chimique la pointe champ proche de la sonde optique, jouant également le rôle de l'une des cavités Fabry-Pérot du laser.
Un second dispositif expérimental utilise une diode laser fibrée avec un photodétecteur intégré à l'arrière de la cavité. Le faisceau de sortie du laser fibre est couplé dans une section de fibre optique dont l'extrémité taillée en pointe constitue la sonde locale du microscope.
Les images d'un objet test issues de ces deux microscopes SNOM, présentant localement des fortes variations de l'indice de réfraction, ont été comparées avec celles obtenues par la microscopie à force de cisaillement fonctionnant en mode topographique. Dans les deux cas, les contours de l'objet test sont mieux visibles sur les images SNOM que sur les images topographiques. Ce résultat démontre que le microscope SNOM, basé sur la réinjection optique, s'avère un outil de mesure privilégié des propriétés optiques des matériaux.
Le microscope optique SNOM est un microscope en champ proche avec une sonde locale jouant le rôle de pointe collectrice et émettrice à la fois. L'élément essentiel est la sonde, généralement en fibre optique taillée en pointe fine dont le rôle est de convertir les ondes évanescentes non progressives en ondes homogènes pouvant se propager jusqu'au système de détection. La conversion des ondes évanescentes, due à la diffraction de la lumière par la sonde, ne dépend que de la taille de la pointe qui définit la résolution latérale du microscope. La solution généralement adoptée consiste à utiliser une fibre optique taillée en pointe par attaque chimique. Cette technologie n'est pas toujours reproductible et la fabrication collective de sondes se trouve limitée. Par ailleurs, la faiblesse du signal de retour revenant dans la sonde par rétroréflexion constitue une autre limitation du SNOM classique. Pour améliorer la sensibilité du microscope, tout en simplifiant son architecture, l'invention utilise la réinjection optique comme un moyen de détection. Grâce à l'intégration du dispositif, la réalisation d'un système de détection optique apte à une production de masse et s'appuyant sur la nanofabrication est possible. La fabrication collective en technologie III-V permet d'associer un faible coût de fabrication à la possibilité d'intégration monolithique de tous les éléments par des simples reprises d'épitaxie.
Les lasers à semi-conducteurs sont bien connus dans l'art antérieur. Les premiers lasers à semiconducteurs ont été obtenus par diffusion d'un élément dopant de type p dans un substrat d'arséniure de gallium de type n. Pour fabriquer les couches actives de ces lasers, on effectue une croissance cristalline (épitaxie) de différentes couches semi-conductrices dont la composition permet de contrôler et ajuster l'émission de photons aux longueurs d'onde désirées. La cavité résonnante de type Fabry-Pérot (ou miroirs permettant l'oscillation laser) est fabriquée par découpage des facettes sur deux tranches perpendiculaires au plan de la jonction p-n (clivage). Dans ce cas la lumière est émise parallèlement au substrat et on parle d'émission par la tranche.
La récente évolution de la technique d'épitaxie permet à la fois le contrôle de la croissance cristalline avec une précision de quelques nanomètres et l'obtention d'une excellente qualité cristalline. Il est donc possible de fabriquer des structures nécessitant l'obtention d'interfaces abruptes de matériaux semi-conducteurs (de l'ordre de la monocouche) qui trouvent des applications dans la réalisation de puits quantiques et de réflecteurs de Bragg à très fort pouvoir réfléchissant. Cette dernière structure est un réseau périodique déposé à proximité de la région active de la cavité laser qui est une alternative intéressante à la cavité Fabry-Pérot obtenue par clivage de facettes.
Ces progrès technologiques ont permis l'apparition, d'un laser émettant la lumière perpendiculairement au substrat, le VCSEL (Vertical-Cavity Surface-Emitting Laser). Ce composant récent commence à atteindre sa maturité. Les matériaux semi-conducteurs employés pour sa réalisation sont généralement des composants ternaires d'éléments issus des colonnes III-V du tableau périodique des éléments (GaAlAs).
L'emploi de la réinjection optique en détection champ proche constitue le premier élément de l'invention.
Si l'on considère que la faiblesse du signal de retour revenant dans la sonde par rétroréflexion constitue une des limitations du SNOM classique, l'utilisation du phénomène de réinjection optique constitue une amélioration de la sensibilité de la détection SNOM. Celle-ci est liée au fait que le régime optimal de réinjection exige des très faibles niveaux de rétroréflexion.