INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
ETAPE 3 Le silox acide F2 est alimenté dans un ensemble réacteur/décanteur à raison de 5,8 kg/12, avec de l'eau pure et selon un débit de 1,4 kg/lt et avec 32 kg/lt de phase aqueuse (S3) recyclée issue de l'étape de séparation (32) On injecte également 0,02 kg/h d'eau acide récupérée à l'étape 4.
LeRM3 =5,76.
La concentration en HCl dans la phase aqueuse est de 5 % en poids.
La pression régnant dans l'ensemble réacteur/décanteur est de 0,1 MPa et la température de 85C C.
Le fluide siloxane F3 obtenu à l'issue de l'étape (32) est fourni à raison de 5, 76 kg/h.
STRUCTURE MICROÉLECTRONIQUE COMPORTANT UNE PARTIE DE BASSE TENSION MUNIE D'UNE PROTECTION CONTRE UNE PARTIE DE HAUTE TENSION ET PROCÉDÉ D'OBTENTION DE CETTE PROTECTION DESCRIPTION DOMAINE TECHNIQUE La présente invention concerne une structure microélectronique comprenant - au moins un élément de basse tension et au moins un élément de haute tension et - des moyens de protection destinés à protéger l'élément de basse tension contre des effets parasites engendrés au niveau de l'élément de haute tension et notamment des effets des commutations de l'élément de haute tension.
La présente invention s'applique notamment au domaine de l'électronique de puissance et plus particulièrement aux circuits intégrés de puissance intelligents ( smart power integrated circuits ).
ÉTAT DE LA TECHNIQUE ANTÉRIEURE Avec de tels circuits se pose le problème de la protection du ou des éléments de basse tension (qui sont généralement des éléments de commande, par exemple des circuits logiques de commande) en particulier contre des phénomènes transitoires résultant des commutations de l'élément ou des éléments de haute tension (qui sont les éléments de puissance).
Lors d'une commutation d'un élément de haute tension, cet élément subit de très importantes variations de tension et de courant : la tension peut varier de plusieurs centaines de volts et le courant de plusieurs ampères.
Cela engendre des impulsions parasites de courant et de tension dans tout le circuit.
Ces impulsions sont susceptibles de perturber le ou les éléments de basse tension qui sont beaucoup plus sensibles à de telles impulsions qu'un élément de haute tension.
On connaît plusieurs solutions pour résoudre ce problème.
Une première solution consiste à éloigner le ou les éléments de basse tension du ou des éléments de haute tension.
Une telle solution présente un inconvénient : elle nécessite l'utilisation d'une grande surface de matériau semiconducteur.
Une deuxième solution consiste à limiter la tension et le courant de fonctionnement du ou des éléments de haute tension, ce qui est gênant pour les performances du circuit.
Une troisième solution consiste à isoler le ou les éléments de basse tension dans des caissons électriquement isolants ce qui présente un inconvénient car le procédé de fabrication du circuit est alors complexe.
Une quatrième solution consiste à former des zones peu résistives (zones semiconductrices très dopées) sous le ou les éléments de basse tension afin de drainer les courants parasites provenant du substrat.
Cette quatrième solution est illustrée par la figure 1.
Sur cette figure 1 on a représenté en coupe transversale schématique un circuit de puissance comprenant - une zone de basse tension 2 comprenant un ou une pluralité d'éléments de basse tension et - une zone de haute tension 4 comprenant un ou une pluralité d'éléments de haute tension.
Ces zones 2 et 4 sont formées sur la surface supérieure d'un substrat semiconducteur 6.
Une prise de contact 8 est prévue à la face inférieure de ce substrat 6 pour l'arrivée d'un fort courant et l'établissement d'une haute tension.
Afin de garantir la fiabilité des mesures, il a été demandé aux laboratoires de contrôle d'être accrédités. Initialement, cette accréditation définissait uniquement des obligations de moyens (personnel qualifié, locaux adaptés, maintenance des appareils de mesure, contrôle des matières premières et écriture des procédures analytiques). Actuellement, elle exige en plus des obligations de résultats. Cette nouvelle exigence impose la mise en place d'un système de qualité comprenant des contrôles internes et la participation à des essais interlaboratoires.
Pour la mise sous contrôle des chaînes analytiques en interne et l'organisation d'essais inter-laboratoires, il est impératif de disposer de matériaux de référence. Ces matériaux de référence doivent être stables dans le temps et doivent permettre de reconstituer aisément des échantillons de contrôle homogènes et renfermant une quantité précise du produit à doser.
En chimie, ces matériaux de référence existent depuis de nombreuses années. Par contre, dans le domaine de la microbiologie, il est particulièrement difficile de conserver des quantités précises de micro-organismes. En effet, le nombre de micro-organismes peut augmenter, si le milieu de conservation permet leur multiplication au cours de la fabrication , du transport ou du stockage, ou diminuer, s'ils meurent durant la fabrication, le transport, le stockage ou au moment de la reconstitution de l'échantillon contrôle avant l'emploi.
Des méthodes de conservation de micro-organismes comme la lyophilisation et le cryoconservation ont déjà été décrites dans l'état de la technique. Néanmoins, ces méthodes entraînent, au moment du conditionnement, des taux de mortalité importants parmi les micro-organismes conservés, et en conséquence ne permettent pas de maîtriser précisément la quantité finale de micro-organismes survivants.
Ainsi, deux brevets faisant appel à une méthode de congélation brutale en azote liquide ne décrivent pas la conservation de bactéries, ou de microorganismes et n'abordent pas le problème des dosages quantitatifs.
Le brevet US- 5 364 756 décrit une méthode de cryoconservation de cellules eucaryotes. Une suspension de ces cellules est préparée dans un tampon comprenant des agents cryoprotecteurs, puis la solution est nébulisée par ultrasons afin de former des microgouttelettes qui sont rapidement refroidies et séchées.
Le brevet US-5 405 616 concerne la conservation de molécules pharmacologiquement actives. Les particules comprenant ces molécules sont constituées principalement d'une macromolécule hydrophile soluble dans l'eau formant un squelette. Diverses protéines sont mentionnées, principalement des protéines d'origine végétale.
Des quantités précises de micro-organismes peuvent être obtenues à partir d'échantillons naturellement ou artificiellement contaminés. Cependant, la conservation de tels échantillons ne peut dépasser 24 heures et exige une température inférieure à 1 00C.
Des quantités précises en diverses bactéries ont également été obtenues après congélation dans un milieu contenant du sérum et de l'inositol (1993 Peterz et Steneryd, J. of Appl. Bacteriol., 74, 143-148) ou dans du lait écrémé ( 1994, Schijven, Havellaar et Bahar, Appl. and Environ. Microbiol., 60, 41604162). Il s'avère cependant que ces suspensions bactériennes congelées ne sont pas stables au-delà de trois mois pour le premier type de préparation et d'un an pour le second. De plus, elles exigent des conditions de transport très contraignantes (délais brefs et maintien de la température en dessous de -70 C). Enfin leur stabilité en cas de décongélation et de recongélation successives n'a pas été démontrée.
Actuellement, seule l'atomisation réussit à concilier les contraintes de conservation, de stabilité et de transport avec l'exigence de disposer d'une quantité précise de micro-organismes.
Des suspensions de Bacillus cereus dans du lait concentré, atomisées et encapsulées dans de la gélatine, ont été utilisées comme matériaux de référence après transport à température ambiante (Paul H. In't Veld, 1993, Int. J. of Food Microbiol.,20, 23-36).
Cependant, cette technique est d'une mise en oeuvre difficile car elle nécessite une dissolution de la gélatine dans un milieu de reconstitution maintenu à 37"C. De plus certaines espèces comme Aeromonas hydrophila, Pseudomonas aeruginosa et Campylobacterjejuni ne peuvent être conservées de manière stable par atomisation. Cette méthode n'est pas non plus recommandée pour la conservation de pathogènes du système respiratoire transmissibles par aérosols comme Legionella pneumophila. Enfin, les matériaux de référence préparés par atomisation ont un coût élevé.
II ressort donc de l'état de la technique que l'on ne connaissait pas de méthode facile à mettre en oeuvre et peu coûteuse permettant de conserver de manière stable des quantités précises de micro-organismes.
Le demandeur a résolu ce problème en trouvant une composition particulière permettant de conserver la viabilité des micro-organismes.
La présente invention est donc relative à une composition pour la conservation en quantités déterminées et reproductibles de micro-organismes comprenant en combinaison des quantités efficaces d'au moins une substance susceptible de former le squelette de pastilles lenticulées et d'au moins une substance saturante ainsi que des micro-organismes.
Pour la présente invention, on entend par quantités reproductibles de micro-organismes des variations du ratio entre deux mesures comprises, dans 95% des cas, entre 0,25 et 4 et encore plus préférentiellement entre 0,5 et 2.
Pour obtenir des récepteurs fonctionnels on est dans ce cas obligé d'inclure une étape de purification basée sur l'activité biologique du récepteur, (par exemple, une étape de chromatographie d'affinité).
Il serait donc nécessaire de mettre au point un système permettant de séparer facilement la membrane plasmique comprenant les récepteurs matures, des autres fractions membranaires tel que le réticulum endoplasmique ou les membranes de l'appareil de Golgi, qui comprennent le récepteur immature, biologiquement inactif.
Il a été récemment montré que l'infection de cellules Sf9 par un baculovirus codant pour le gène Gag de HIV1 (Pr55 Gag) entraîne le bourgeonnement de particules portant la protéine Gag (particules Gag) qui sont relarguées dans le milieu extracellulaire. Il a été suggéré que ces particules Gag entraînaient lors de leur bourgeonnement, la membrane plasmique et les protéines qui lui sont associées.
Les Inventeurs ont formulé l'hypothèse que la co-expression dans un système baculovirus/cellules d'insectes, d'un récepteur couplé aux protéines G et de Pr55 Gag peut favoriser le relargage des particules Gag exprimant uniquement des récepteurs matures correctement insérés dans la membrane plasmique. Pour tester cette hypothèse, les Inventeurs ont infecté des cellules Sf9 avec des baculovirus codant le récepteur adrénergique humain ss2AR et la protéine Pr55 Gag. De façon surprenante, ils ont alors constaté que le récepteur B2AR est presque totalement absent des particules Gag, mais est en revanche présent à forte densité dans des particules de baculovirus extracellulaires. En outre, les récepteurs exprimés dans ces baculovirus extracellulaires sont correctement glycosylés et normalement actifs.
La présente invention a concerne l'utilisation de ces baculovirus extracellulaires pour l'obtention de préparations d'un récepteur membranaire.
La présente invention a pour objet un procédé de production d'un récepteur membranaire recombinant dans un système baculovirus/cellule d'insecte, à partir d'une culture de cellules d'insectes infectées par un baculovirus recombinant exprimant le gène codant pour ledit récepteur membranaire, lequel procédé est caractérisé en ce que l'on obtient ledit récepteur membranaire à partir des baculovirus extracellulaires produits par lesdites cellules infectées.
Selon un mode de mise en oeuvre préféré de la présente invention, ledit récepteur appartient à la super-famille des récepteurs à sept domaines transmembranaires ; il s'agit par exemple d'un récepteur de la famille des récepteurs couplés aux protéines G.
Des baculovirus recombinants exprimant le gène codant pour le récepteur membranaire que l'on souhaite produire sont obtenus par clonage dudit gène sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur approprié dudit baculovirus, selon des méthodes bien connues en ellesmêmes de l'homme de l'art.
N'importe quel promoteur fort de baculovirus utilisable pour l'expression de gènes hétérologues, tel par exemple que le promoteur de la polyédrine (polh) ou celui de la protéine P10, peut être employé pour l'obtention d'un baculovirus recombinant utilisable dans le cadre de la présente invention.
Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, il comprend une étape au cours de laquelle on procède à la récolte des baculovirus extracellulaires produits par lesdites cellules infectées et à leur séparation des fractions cellulaires. La récolte et la séparation des baculovirus extracellulaires peuvent être effectuées par centrifugations successives, par exemple de la manière suivante : on effectue une première centrifugation à environ 500xg, à l'issue de laquelle on récupère le surnageant contenant les baculovirus extracellulaires. Ce surnageant est soumis à une centrifugation à environ 45000xg ; le culot résultant qui contient les baculovirus extracellulaires est remis en suspension, et la suspension est soumise à une centrifugation à environ 500xg ; le surnageant résultant de cette centrifugation est centrifugé à environ 45000xg, et l'on récupère le culot, qui contient les baculovirus extracellulaires. Avantageusement, les baculovirus extracellulaires peuvent également être purifiés par centrifugation sur gradient de saccharose, ou tout autre procédé équivalent.
Selon un autre mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, il comprend une étape au cours de laquelle on procède à la lyse des baculovirus extracellulaires produits par lesdites cellules infectées ; avantageusement, il comprend également une étape au cours de laquelle on procède au fractionnement du lysat obtenu à l'issue de l'étape précédente, et à la récupération de la fraction comprenant ledit récepteur membranaire.
Les préparations purifiées et les lysats de baculovirus extracellulaires, ainsi que leurs fractions comprenant le récepteur membranaire, susceptibles d'être obtenus par les procédés définis ci-dessus constituent des préparations de récepteur membranaire qui font également partie de l'objet de la présente invention. Ces préparations sont constituées par des récepteurs actifs et totalement matures, contrairement aux préparations de récepteurs membranaires obtenues dans l'art antérieur à partir des membranes plasmiques de cellules infectées, qui comprennent une forte proportion de récepteurs inactifs, et qui ne peuvent être utilisées qu'après une étape supplémentaire de purification sur la base de l'activité des récepteurs concernés, par exemple après chromatographie d'affinité.
Au contraire, les préparations de récepteurs membranaires conformes à l'invention sont caractérisées en ce que, préalablement à toute purification effectuée sur la base de l'activité du récepteur concerné, au moins 90%, et de préférence au moins 95% dudit récepteur est sous forme active.
Des préparations, conformes à l'invention, d'un récepteur membranaire peuvent être utilisées pour préparer ledit récepteur sous forme purifiée, avec un bien meilleur rendement que celui auquel on pouvait parvenir à partir des préparations de récepteurs membranaires obtenues dans l'art antérieur à partir des membranes plasmiques des cellules infectées.
Les préparations de récepteurs membranaires conformes à l'invention, ainsi que les baculovirus extracellulaires obtenus lors de la mise en oeuvre du procédé conforme à l'invention, peuvent également être utilisés directement, par exemple comme système d'étude des propriétés de récepteurs membranaires, comme système de criblage de molécules actives sur ces récepteurs membranaires, ou bien pour étudier leurs modifications post-traductionnelles telles que la phosphorylation ou la palmitoylation.
La présente invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé conforme à l'invention pour la préparation de récepteurs membranaires.
IR: v = 1670, 1595, 1541,1401,1369, 1369,1325,1261 cm1 RMN 'H (DMSO du) : 5 = 2,08 (3H,s) ; 2,52 (6H,s) ; 7,54 (2H,s) ; 10,13 (1H, s échangeable par CF3COOD).
Etape 3: A une solution maintenue sous atmosphère d'azote de 6,95 ml (128 mmoles) de nitrométhane dans 140 ml de N,N-diméthylformamide anhydre, sont ajoutés rapidement 9,4 9 (174 mmoles) de méthylate de sodium. La température s'élève spontanément jusqu'à 35"C puis le milieu réactionnel est porté à 40"C et maintenu ainsi pendant 1 h. Après retour à température ambiante, on ajoute goutte à goutte en 1 heure 20, une solution de 12,9 g (58,6 mmoles) de thiocyanate de 4acétamido-2,6-diméthylphényle dans 140 ml de N,Ndiméthylformamide anhydre. Le mélange est agité pendant 20 heures à température ambiante avant d'être versé dans 1 I d'eau. La solution obtenue, de pH 10 environ, est lavée par 2 fois 500 ml d'acétate d'éthyle puis neutralisée jusqu'à pH 7 avec de l'acide chlorhydrique dilué. Cette solution aqueuse neutre est extraite par 4 fois 500 ml d'acétate d'éthyle. Les extraits organiques sont séchés sur sulfate de sodium et concentrés à sec sous pression réduite. Le résidu solide obtenu est purifié par chromatographie sur colonne de silice (éluant: chlorure de méthylène / acétate d'éthyle: 2/1) pour donner 8,3 g (56 %) d'un solide fondant à 160 - 163"C, constitué essentiellement de N-[3,5-diméthyl4-[(nitromèthyl)thio]phényl] acétamide.
IR: v = 1666, 1599, 1554, 1544cm~' RMN 'H (DMSO d6) : ô = 2,10 (3H,s) ; 2,46 (6H,s) ; 5,69 (2H,s) ; 7,47 (2H,s) 10,03 (1H, s échangeable parCF3COOD).
Etape 4: Une solution chauffée à 50"C de 18,6 g (118 mmoles) de permanganate de potassium dans 500 mi d'eau est additionnée rapidement à une solution de 10,0 g (39,3 mmoles) de N-[3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)thio]phényl] acétamide dans Il d'acide acétique. Le milieu réactionnel est porté à 65 C pendant 30 min puis est ramené à température ambiante par un bain de glace. On ajoute alors une solution aqueuse saturée de métabisulfite de sodium jusqu'à décoloration (environ 25 ml). Le mélange est jeté dans 2,5 I d'eau et agité pendant 1 h. Le solide formé est séparé par filtration, rincé à l'eau et séché pour donner 6,1 g (54 %) d'un solide blanc fondant à 180-182 C, constitué essentiellement de N[3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)sulfonyl]phényl) acétamide que l'on utilise dans l'étape suivante sans autre purification.
R : v = 1677,1595,1559,1534, 1382, 1367,1330,1315,1260, 1152, 871, 746, 639, 615 cm' RMN 'H (DMSO d6): = 2,25 (3H,s) ; 2,71 (6H,s) ; 6,64 (2H,s échangeable par CF3COOD); 7,68 (2H,s); 10,48 (1H, s échangeable parCF3COOD).
Etape 5: Un mélange de 13,1 g (45,8 mmoles) de N-[3,5-diméthyl-4- [(nitrométhyl)sulfonyl]phényl] acétamide et de 10,6 g (265 mmoles) de soude en pastilles dans 150 ml d'eau est porté à 80 C pendant 1 h. Après refroidissement, le milieu réactionnel est jeté dans 850 ml d'eau. L'acidification jusqu'à pH 5 par de l'acide acétique (environ 20 ml) provoque la précipitation d'un solide qui est isolé par filtration. Ce solide est lavé par 2 fois 50 ml d'eau et séché pour donner 10,6 g (95 %) d'un solide de couleur beige, fondant à 1281300C, constitué essentiellement de 3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)sulfonyl] aniline que l'on utilise dans l'étape suivante sans autre purification.
Un échantillon analytique est obtenu par recristallisation dans un mélange d'hexane et d'acétate d'éthyle.
F = 130-132 C Analyse centésimale: CgH12N204S (M = 244,26) C% H% N% S% calculé 44,25 4,95 11,47 13,13 trouvé 44,24 4,95 11,55 13,15 IR: v = 3472, 3374, 1630, 1600, 1550, 1341, 1317, 1154, 726cm1 RMN 1H (DMSO d6): 8 = 2,40 (6H,s) ; 6,23 (4H, s échangeable par CF3COOD); 6,35 (2H,s).
Exemple 2 (méthode A2) N-[3,5-Diméthyl4-[(nitrométhyl)sulfonyl]phényl] benzènesulfonamide A un mélange maintenu sous atmosphère d'azote de 1,0 g (4,09 mmoles) de 3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)sulfonyl] aniline et de 0,65 g (8,22 mmoles) de pyridine séchée sur potasse, dans 19 ml de tétrahydrofurane anhydre, on ajoute rapidement 1,08 g (6,11 mmoles) de chlorure de benzènesulfonyle. Le milieu réactionnel est agité pendant 2 h à température ambiante. Le lendemain, il est jeté dans un mélange d'eau et de glace et acidifié par de l'acide chlorhydrique N. Le mélange est alors extrait au chlorure de méthylène. Les extraits organiques rassemblés sont lavés à l'eau, séchés sur sulfate de sodium et concentrés à sec sous pression réduite.
Le résidu huileux obtenu est purifié par chromatographie sur colonne de silice (éluant: chlorure de méthylène) et cristallisation dans un mélange d'hexane et de chlorure de méthylène pour donner 1,1 g (70 %) de N-[3,5-diméthyl-4 [(nitrométhyl)sulfonyl]phényl] benzènesulfonamide en tout point identique au composé obtenu dans l'exemple 1.
Exemple 3 (méthode D) N-[3,5-Diméthyl4-[(nitrnméthyl)thio]phényl] benzènesulfonamide A une solution maintenue sous atmosphère d'azote de 0,80 g (3,77 mmoles) de 3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)thio] aniline dans 30 ml de tétrahydrofurane anhydre, sont ajoutés 0,75 g (7,49 mmoles) de carbonate de calcium puis 1,0 g (5,66 mmoles) de chlorure de benzènesulfonyle. Après 3 jours d'agitation à température ambiante, le milieu réactionnel est jeté dans l'eau et extrait au chlorure de méthylène. Les extraits organiques rassemblés sont lavés à l'eau, séchés sur sulfate de sodium et concentrés à sec sous pression réduite. Le résidu obtenu est puritié par chromatographie sur colonne de silice (éluant chlorure de méthylène) pour donner 0,9 g (68 %) de N-[3,5-diméthyl-4[(nitrométhyl)thio]phényl] benzènesulfonamide.
F = 146 - 148"C (hexane-acétate d'éthyle) Analyse centésimale: C15H1eN204S2 (M = 352,41) C% H% N% S% calculé 51,12 4,58 7,95 18,19 trouvé 50,95 4,54 8,03 18,05 IR: v = 3275,1596,1554,1474, 1467,1379,1323,1163, 1092, 872,688cm1 RMN 'H (DMSO de): 6 = 2,26 (6H,s) ; 5,53 (2H, s) ; 6,85 (2H,s) ; 7,487,60 (3H,m); 7,747,77 (2H,m); 10,46 (1H, s échangeable par CF3COOD).
Le produit de départ, 3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)thio] aniline, est obtenu selon le mode opératoire suivant: Un mélange de 1,6 g (6,29 mmoles) de N-[3,5-diméthyl-4(nitrnméthyl)thio]phényl] acétamide et de 1,44 g (36,0 mmoles) de soude en pastilles dans 20 ml d'eau est porté à 80 C pendant 1 h. Après refroidissement, le milieu réactionnel est jeté dans l'eau et extrait 2 fois à l'acétate d'éthyle. Les extraits organiques rassemblés sont séchés sur sulfate de sodium et concentrés à sec sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié par chromatographie sur colonne de silice (éluant: hexane / acétate d'éthyle : 2/1) pour donner 0,8 g (60 %) d'une huile constituée de 3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)thio] aniline.
RMN 1H (DMSO de): 8 = 2,31 (6H,s); 5,43
Exemple 4 (méthode E) N-[3,5-Diméthyl4-[(nitrométhyl)sulfinyUphényl] benzènesulfonamide A une solution de 2,2 g (6,24 mmoles) de N-[3,5-diméthyl-4 [(nitrométhyl)thio]phényl] benzènesulfonamide dans 79 ml de chloroforme anhydre, est ajouté rapidement 1,3 g (5,46 mmoles) d'acide mchloroperbenzoïque 70-75 %. Le milieu réactionnel est agité pendant 24 h à température ambiante avant d'être versé dans une solution de 0,33 g (3,93 mmoles) de bicarbonate de soude. Le mélange est extrait au chlorure de méthylène. Les extraits organiques rassemblés sont séchés sur sulfate de sodium et concentrés à sec sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié par chromatographies successives sur colonne de silice (éluant de la première chromatographie chlorure de méthylène, éluant de la deuxième chromatographie: hexane / acétate d'éthyle : 2/1) et cristallisation dans l'hexane pour donner 0,98 g (42 %) de N-[3,5-diméthyl-4-[(nitrométhyl)sulfinyl]phényl] benzènesulfonamide.
F > 50 C (décomposition à 1300C) Analyse centésimale: C15H1eN205S2 (M = 368,41) C% H% N% S% calculé 48,90 4,38 7,60 17,40 trouvé 48,96 4,66 7,47 17,58 IR: v = 1595,1557,1160,1091, 1074, 602 cm-' RMN 1H (DMSO de) : 8 = 2,43 (6H,s) ; 6,14 (2H, s échangeable par CF3COOD); 6,88 (2H,s) ; 7,57-7,66 (3H,m); 7,85 - 7,88 (2H,m) ; 10,79 (1H, s échangeable par CF3COOD).
A la fin du mouvement de fermeture, le doigt de blocage 16 glisse sur la piste 20 et ensuite vient en butée contre une surface d'extrémité arrière 18, qui est perpendiculaire à la direction longitudinale L de coulissement. Dans cette position, la porte 3 est verrouillée