INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Selon le brevet français FR-2 689 418, cette transformation peut être faite lors d'une étape de cisaillement homogène de la phase cristal liquide, ce qui conduit à des vésicules encore appelées microcapsules de taille contrôlée. Toutefois, en jouant sur la formulation de la phase lamellaire cristal-liquide, en particulier sur la nature des tensioactifs entrant dans sa composition, la transformation de cette phase cristal-liquide en vésicules peut être obtenue par simple sollicitation mécanique, en particulier lors du mélange des constituants. De telles vésicules présentent, entre autres, l'avantage pouvoir être preparées par un procédé de préparation particulièrement simple permettant d'utiliser une grande variété de tensioactifs.
Un autre avantage, lié lui aussi essentiellement au procedé utilisé pour preparer les vésicules à structure en oignon utilisées selon l'invention, réside dans le fait que l'on incorpore les actifs et les additifs préalablement à la formation des vésicules, ce qui permet un excellent rendement d'encapsulation, d'où une meilleure efficacité et une économie très importante pour des molécules extrêmement coûteuses.
De telles structures sont avantageusement obtenues par incorporation moins un antigène dans une phase lamellaire cristal-liquide comprenant au moins un agent tensioactif puis transformation de cette phase cristal-liquide lamellaire en une phase dense de vésicules multilamellaires de petite taille.
Ainsi, les vésicules utilisées selon l'invention peuvent être obtenues selon un procédé selon lequel on prépare une phase cristal-liquide lamellaire incorporant au moins un antigène et on provoque le réarrangement ladite phase cristal-liquide en vésicules multilamellaires par application d'un cisaillement.
Ce cisaillement pourra être un cisaillement homogène, qui présente l'avantage de conduire à des vésicules de taille parfaitement homogène. Toutefois, une simple agitation mécanique pourra s'avérer suffisante pour conduire à la formation des vésicules multilamellaires de l'invention.
L'antigène pourra être toute molécule pour laquelle on souhaite engendrer une réponse immunitaire, qu'il ait une origine exogène tel qu'un organisme pathogène infectieux, parasites ou micro-organismes (levures, champignons, bactéries ou virus) ou une origine naturelle intrinsèque (cas des maladies auto-immunes ou de la cancérisation). Il peut être de différentes natures biochimiques.
Il peut, en particulier, s'agir d'un antigène choisi dans le groupe constitué : - des protéines, en particulier des protéines extraites ou recombinantes, glycosylées ou non, - des peptides, - des lipopeptides, - des polysaccharides, ou représentant un mélange de plusieurs de ces composants. Les vésicules multilamellaires à structure en oignon sont préparées selon les méthodes décrites précédemment, en particulier dans la demande internationale WO 99/16468. Les molécules amphiphiles utilisées pour leur préparation seront choisies, sans que cela soit une obligation, par-mi molécules faisant l'objet d'une description dans la pharmacopée, ou déjà utilisées dans des médicaments appliqués aux muqueuses.
Selon une variante avantageuse, les membranes vésicules contenues dans les compositions de l'invention contiennent au moins un agent tensioactif choisi dans le groupe constitué - des phospholipides hydrogénés ou non hydrogénés, des acides gras en C6 à C30, saturés ou mono- ou polyinsaturés, linéaires ou rami iés, sous forme d'acide ou de sel d'un métal alcalin, alcalino-terreux ou d'une amine, des esters, éthoxylés ou non, de ces mêmes acides gras et de saccharose, de sorbitan, de mannitol, de glycérol ou de polyglycérol, de glycol, des mono-, di- ou triglycérides ou des mélanges de glycérides de ces mêmes acides gras, - des alcools gras en C6 à C30, saturés ou mono- ou polyinsaturés, linéaires ou rami iés, éthoxylés ou non, des éthers, éthoxylés ou non, de ces mêmes alcools gras et de saccharose, de sorbitan, de mannitol, de glycérol ou de polyglycérol, de glycol, des huiles végétales polyéthoxylées, hydrogénées ou non hydrogénées, - des polymères séquencés de polyoxyéthylène et de polyoxypropylène (poloxamères), - de Phydroxystéarate de polyéthylèneglycol, - des alcools à squelette stérol tel que le cholestérol, le sistostérol, - des sphyngolipides, - des polyalkyl glucosides, des copolymères de polyéthylèneglycol et d'alkylglycol (par exemple la famille ELFACOS de AKZO NOBEL), - des copolymères di- ou tribloc d'éthers de polyéthylèneglycol et polyalkylèneglycol (par exemple la famille des ARLACELL de ICI).
La figure 2 représente une autre forme d'exécution d'un caisson de ventilation, dans laquelle les mêmes éléments sont désignés par les mêmes références que précédemment. Dans ce cas, le moteur 6 entraîne directement le ventilateur 3, de telle sorte qu'il occupe une position à l'horizontale. De ce fait, pour optimiser le refroidissement du moteur, la tubulure 7 est, dans ce cas, ménagée dans une paroi latérale du caisson pour déboucher en regard du moteur, le plus près possible de celui-ci.
Dans la forme d'exécution représentée à la figure 2, l'obturateur 8a est constitué par un film en matière synthétique, par exemple en polyéthylène ou en polychlorure de vinyle, collé sur l'extrémité 11 de la tubulure 7. Lors d'un échauffement, ce film fond et laisse passer l'air de refroidissement.
Dans la forme d'exécution représentée à la figure 3, un film 8b, de même nature que le film 8a, est fixé à l'extrémité 11 de la tubulure par un collier élastique 9.
Dans la forme d'exécution représentée à la figure 4, l'obturateur 8c est constitué, par exemple, par un disque en forme de lame bimétallique, fixée par l'un de ses bords 10 sur la tubulure 7. Dans ce cas, lors d'une élévation de la température, la lame 8c passe de la position de fermeture représentée en trait plein à la position d'ouverture représentée en trait mixte, dans laquelle de l'air frais est admis à l'intérieur du caisson pour refroidir le moteur.
Comme il ressort de ce qui précède, l'invention apporte une grande amélioration à la technique existante en fournissant un dispositif de refroidissement d'un moteur de ventilateur contenu dans un caisson, de structure simple, et permettant au ventilateur de bénéficier de performances optimales.
Comme il va de soi, l'invention ne se limite pas aux seules formes d'exécution de ce dispositif, décrites ci-dessus à titre d'exemples, elle en embrasse au contraire toutes les variantes. C'est ainsi notamment que l'obturateur de l'ouverture d'amenée d'air frais pourrait, par exemple, être constitué par un bouchon fusible ou dont la seule périphérie pourrait être fusible ou par un bouchon fixé par une colle fusible, pour pouvoir se décrocher lors du dépassement d'une température prédéterminée, sans que l'on sorte pour autant du cadre de l'invention.
Procédé d'analyse d'un échantillon d'une molécule complexe par rapport à un lot de la même molécule complexe de référence La présente invention concerne un procédé d'analyse d'un échantillon d'une molécule complexe par rapport à un lot de la même molécule complexe de référence, en vue notamment de la détermination de leur degré de similitude et/ou de la caractérisation de leur procédé de fabrication.
La contrefaçon de produits complexes est devenue un véritable fléau, en particulier dans les industries de la chimie fine, de la cosmétique et de la pharmacie. La détection des contrefaçons de produits complexes par analyse physico-chimique est souvent fondée sur l'analyse des traces de produits secondaires de la synthèse, de catalyseurs ou d'impuretés. Par exemple, il a été constaté par analyse chromatographique en phase liquide (Asakawa, Shuichi ; Kato, Koichi ; Inoma, SusumuHakodate Customs Laboratory, Hakodate-shi, 040, Japan , Kanzei Chuo Bunsekishoho (1997), 36,37-43) que certains herbicides à base de glyphosate, fabriqués aux Etats-Unis et importés au Japon, transgressaient des brevets japonais. En utilisant aussi une technique de chromatographie en phase gazeuse
couplée à la spectrométrie de masse, E.Charton, M. Wierer, J.M. Spieser, A. Van Dorsselaer, et G.Rautmann (European Department for the Quality of Medicines, Council of Europe, Strasbourg, F-67029, Pharm. Pharmacol. Commun. (1999), 5(1), 61-66) ont pu mettre en évidence une contrefaçon d'un médicament, la somatropine, décrit dans la pharmacopée Européenne, qui était en fait un produit dérivé de la somatropine d'origine humaine. Des méthodes chimiques conventionnelles ont permis de prouver que des comprimés d'une substance narcotique, la fenethylline, avaient été préparés par détournement d'un brevet allemand (N. AlGharably et A.R. Al-Obaid, College of Pharmacy, King Saud University, Riyadh, 11451, Saudi Arabia J. Forensic Sci.
Soc. (1994), 34 (3), De même des contrefaçons d'antibiotiques de la série des ss- lactames ont été étudiées par électrophorèse capillaire, au "National Forensic Chemistry Center" de la "US Food and Drug Administration", 1141 Central Parkway, Cincinnati, OH, 45202, USA et décrites dans le Journal of Chromatography., A (1994), 674 (1-2), Ces méthodes compositionnelles ne sont pas toujours efficaces et elles peuvent révéler des faux-positifs. De plus, elles ne peuvent pas être mises en oeuvre dans tous les cas en raison de l'absence de traceurs caractéristiques.
Parallèlement, des techniques d'analyse plus puissantes ont été développées. Tel est le cas de la technique de spectrométrie de masse de rapports isotopiques (SMRI).
Ainsi, il est possible de caractériser le fractionnement isotopique naturel spécifique par Résonance Magnétique Nucléaire (méthode RMN-FINS) en mesurant les teneurs isotopiques sur plusieurs sites moléculaires (voire tous les sites) d'une molécule. Toutefois, cette technique n'est à ce jour utilisée que pour des molécules simples pouvant être directement analysées.
Un but de la présente invention est de proposer un procédé d'analyse de molécules complexes basé sur une méthodologie originale de mise en oeuvre des techniques isotopiques en abondance naturelle.
Un autre but de la présente invention est de proposer un procédé d'analyse de molécules complexes permettant de différencier un lot de molécules complexes par rapport à un autre lot et d'établir à posteriori l'historique du procédé de fabrication d'une telle molécule complexe.
A cet effet, l'invention a pour objet un procédé d'analyse d'un échantillon d'une molécule complexe par rapport à un lot de la même molécule complexe de référence en vue notamment de la détermination de leur degré de similitude et/ou de la caractérisation de leur procédé de fabrication, caractérisé en ce qu'on scinde la molécule complexe en au moins deux sous-entités moléculaires, en ce que, si nécessaire, on scinde au moins l'un des produits de scission en au moins deux nouvelles sous entités moléculaires et en ce qu'on répète cette opération de scission sur au moins une partie des produits de scission jusqu'à obtention de sous entités moléculaires analysables, en ce qu'on détermine, en fonction des sites atomiques des produits de scission concernés par les réactions de scission, le ou les isotopes à étudier, en ce qu'on établit, pour au moins une partie des produits de scission, leur profil isotopique et en ce qu'on compare le profil isotopique des produits de scission au profil isotopique de matière (s) première (s) déjà répertoriée(s) et intervenant dans le procédé de synthèse de la molécule complexe de référence et/ou au profil isotopique de produits de scission de la molécule complexe de référence soumise aux mêmes réactions de scission.
Selon un mode de mise en oeuvre particulier de l'invention, à partir du ou des isotopes sélectionnés, on établit le
Au niveau de la partie inférieure de la fenêtre 160, quatre boutons de commande 160p à 160s sont prévus. Le bouton DECHARGEMENT 160p au niveau de la partie la plus à gauche est utilisé pour décharger le document. Le bouton "ACCUSE DE RECEPTION" 160q est pressé lorsque l'utilisateur du côté de réception accuse réception d'une réception correcte du document. Le bouton SORTIE 160r appelle un processus pour imprimer en sortie les dessins reçus. Le bouton ANNULATION 160s permet à l'utilisateur de ne pas recevoir le document pour l'instant.
On suppose ici que l'utilisateur a pressé le bouton DECHARGEMENT 160p après observation de l'écran décrit ci-avant pour savoir quels types de fichiers de données sont en train d'arriver. Ceci a pour effet que la station de réception 50 envoie une requête de déchargement sur le serveur de distribution 30. Suite à la réception de la requête de déchargement, le serveur de distribution 30 retrouve des fichiers de données en masse pertinents à partir de la base de données 30c et les envoie à la station de réception 50. La station de réception 50 stocke les fichiers de données en masse reçus dans une partie appropriée de la base de données 50c. Après s'être assuré que tous les fichiers de données en masse sont arrivés correctement, l'utilisateur de réception presse la bouton "ACCUSE DE RECEPTION" 160q, ce qui a pour effet qu'un message d'accusé de réception est renvoyé au serveur de distribution 30. Le serveur de distribution 30 renvoie ce message d'accusé de réception à l'unité de base de PDM 20 de telle sorte que l'utilisateur du côté d'envoi en ait notification.
Le processus mentionné ci-avant permet au serveur de distribution 30 de transporter les fichiers de données stockés depuis sa base de données 30c jusqu'aux stations de réception prévues. Par report à l'organigramme de la figure 18, la section suivante expliquera le processus de façon davantage spécifique. Le processus représenté sur la figure 18 est exécuté par le serveur de distribution 30 conformément aux étapes qui suivent, (S70) Le contrôleur 30b détermine si oui ou non une quelconque station de réception est en train de demander en requête une session de connexion. S'il y a une telle requête de connexion, le processus avance jusqu'à une étape S71. Si ce n'est pas le cas, le processus est terminé.
(S71) Le contrôleur 30b initie un processus d'authentification d'utilisateur sur la base d'un mot de passe et d'un nom d'utilisateur envoyés depuis la station de réception en question. De façon davantage spécifique, l'utilisateur entre son nom de connexion (le nom d'utilisateur) et son mot de passe dans la fenêtre 140 de la figure 15 et le contrôleur 30b accuse réception de l'authenticitélauthentification de l'utilisateur si le nom d'utilisateur reçu et le mot de passe reçu sont trouvés dans la base de données locale 30c.
(S72) Le contrôleur 30b détermine si l'authenticité est établie. Si l'utilisateur formulant la requête s'avère être un utilisateur autorisé, le processus avance jusqu'à une étape S73. Si ce n'est pas le cas, le processus est terminé.
(S73) Le contrôleur 30b recherche dans la base de données 30c un fichier de métadonnées pertinent en utilisant le nom d'utilisateur en tant que mot clé de recherche.
(S74) Le contrôleur 30b obtient le nombre de documents reçus et envoie l'information à la station de réception qui a fait l'objet d'une connexion. Ceci conduit au fait qu'une fenêtre d'état de boîte de réception 150 (figure 16) apparaît sur l'unité de moniteur/surveillance de la station de réception.
(S75) Le contrôleur 30b détermine s'il y a une requête de réception en provenance de la station de réception. Si c'est le cas, le processus avance jusqu'à une étape S76. Si ce n'est pas le cas, il répète l'étape courante S75.
De façon davantage spécifique, le processus avance jusqu'à l'étape S76 lorsque l'utilisateur presse le bouton RECEPTION 150b dans la fenêtre 150 de la figure 16. Bien que ceci ne soit pas représenté de façon explicite au niveau de l'organigramme de la figure 18, le processus est interrompu chaque fois que le bouton ANNULATION 150c est pressé.
(S76) Le contrôleur 30b retrouve un fichier de métadonnées pertinent à partir de sa base de données 30c et envoie le fichier à la station de réception qui a fait l'objet d'une connexion. Ceci conduit au fait qu'une fenêtre de liste de documents 160 (figure 17) apparaît sur l'unité de moniteur/surveillance de la station de réception.
(S77) Le contrôleur 30b détermine si oui ou non une requête de déchargement est arrivée depuis la station de réception. S'il en est ainsi, le processus avance jusqu'à une étape S78. Si ce n'est pas le cas, il répète l'étape courante S77.
De façon davantage spécifique, le processus avance jusqu'à l'étape S78 lorsque l'utilisateur presse le bouton RECHARGEMENT 160p dans la fenêtre 160 de la figure 17. Bien que ceci ne soit pas représenté de façon explicite au niveau de cet organigramme, le processus est interrompu chaque fois que le bouton ANNULATION 160s est pressé.
(S78) Le contrôleur 30b retrouve des fichiers de données en masse pertinents à partir de sa base de données 30c et les envoie à la station qui a formulé la requête.
(S79) Le contrôleur 30b détermine si oui ou non un message d'accusé de réception est arrivé depuis la station de réception. S'il en est ainsi, le processus avance jusqu'à une étape S80. Si ce n'est pas le cas, il répète l'étape courante S79.
De façon davantage spécifique, le processus avance jusqu'à l'étape S80 lorsque l'utilisateur presse le bouton ACCUSE DE RECEPTION 160q dans la fenêtre 160 de la figure 17. Bien que ceci ne soit pas représenté de façon explicite au niveau de cet organigramme, le processus est interrompu chaque fois que le bouton ANNULATION 160s est pressé.
(S80) Le contrôleur 30b renvoie le message d'accusé de réception à l'unité de base de PDM 20, ce qui termine le processus.
Spectre de masse (matrice GT) : FAB+ : 410 (M+H)+ ; 819 (2M +H)+ ; 354 (M- [C (CH3)3 ]+2H)+ ; 228 (M-[C(CH3)3]- (B-)+H)+ ; 127 (B+2H)+ ; 57 (C(CH3)3)+.
FAB- : 408 (M-H)- ; 817 (2M- H)- ; 125 (B)-.
I.R. (dichlorométhane, cm-'), v : 3041 (NH) ; 2978 (C sp2 et sp3) ; 2104 (N3) ; 1749 (C = 0) ; 1699 (C = 0) ; 1466 ; 1269 ; 909 ; 736.
EXEMPLE H 3'-azido- 3'-désoxv-5'-O-[maIonvnthymidine 2 Dans un ballon, à une solution du composé 1 (37 mg ; 0,090 mmol ; leq) dans du CH2Cl2 (lml), sous agitation magnétique et azote, on ajoute de l'acide trifluoroacétique (TFA ; 175 l ; 2,26 mmol ; Après 6h à température ambiante, le mélange réactionnel est évaporé sous pression réduite. Le résidu obtenu est dilué dans 3 ml d'AcOEt et lavé avec 2x5 ml d'une solution aqueuse d'HCI N. Les phases aqueuses récupérées sont extraites avec 2x5 ml d'AcOEt. Les phases organiques réunies sont séchées sur Na2SO4, filtrées et évaporées
sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié sur plaque de silice de 1 mm d'épaisseur (éluant : méthanol 10% dans du dichlorométhane) pour conduire au composé 2 (29 mg ; 91%).
Rf (dichlorométhane 90 / méthanol 10) = 0,08.
RMN 1H (méthanol-d4), 8 : 7,42 (d, 1H, H-6) ; 6,05 (t, 1H, H-l', J= 6,6Hz) ; 4,4-4,1 (m, 3H, H-5', 5", H-3') ; (pq, 1H, H-4') ; 3,21 (m, 2H, 2H-7') ; 2,4-2,2(m, 2H, H-2', 2") ; 1,77 (s, 3H, CH3 en position 5).
RMN 13 C (méthanol-d4), 8: 177,10 (C-8') ; 172,77 (C-6') ; 164,90 (C-4) ; 150,33 (C- 2) ; 135, 84 (C-6) ; 110,14 (C-5) ; 84,25 (C-l') ; 81,36 (C-4') ; 62, 67 (C-5') ; 59,92 (C- 3') ; 47,90 (C-7') ; 35,81 (C-2') ; 10,56 (CH3 en position 5). Spectre de masse (matrice GT) : FAB+ : 324 (M+H)+ ; 707 (2M +H)+ ; 127 (B+2H)+. I.R. (KBr, cm-'), v : 3394 (C02H) ; 3052 (NH) ; 2948 (C sp2et sp3) ; 2108 (N3) ; 1649 (C=0) ; 1264 ; 1018 ; 908 ; 736.
Log P (n-octanol / H20) = - 0,90 +/- 0,49 [LogPAZT= - 0,88 +/- 0,42] EXEMPLE III 3'-azido- 3'-désoxy-5'-O-(succinvllthymidine 3 A une solution d'AZT (802 mg ; 3mmol ; leq) dans du DMF (15ml), sous agitation magnétique et azote, on ajoute la DMAP (367 mg ; 3mmol ; leq), puis l'anhydride succinique (315 mg ; 3,15mmol ; l,05eq). Après 14h à température ambiante, le mélange réactionnel est évaporé sous pression réduite. Le résidu obtenu est dilué dans 20 ml de CH2C12 et lavé avec 2x 15ml d'une solution aqueuse d'HCI N. Les phases aqueuses récupérées sont extraites avec 2x 15ml de CH2CI2. Les phases organiques réunies sont séchées sur Na2S04, filtrées et évaporées sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié par chromatographie flash sur
colonne de gel de silice (éluant : méthanol 8% dans du dichlorométhane) pour conduire au composé 3 (1,047 g ; Rf (dichlorométhane 90 1 méthanol 10) = 0,22.
RMN 1H (méthanol-d4), 8 : 7,44 (s, 1H, H-6) ; 6,08 (t, 1H, H-l', J= 6,5Hz) ; 4,4-4,1 (m, 3H, H-5', 5", H-3') ; 3,99 (q, 1H, H-4') ; 2,6-2,5 (m, 4H, 2H-7', 2H-8') ; 2,4-2,3 (m, 2H, H-2', 2") ; 1,82 (s, 3H, CH3 en position 5).
RMN 13C (méthanol-d4), # : 175,41 (C-9') ; 172,27 (C-6') ; 164,46 (C-4) ; 150,34 (C-2) ; 135, 97 (C-6) ; 110,13 (C-5) ; 84,50 (C-l') ; 81,33 (C-4') ; 62,70 (C-5') ; 60,03 (C-3') ; 35,98 (C-2') ; 28,52 (C-8') ; 28,44 (C-7') ; 10,72 (CH3 en position 5).
Spectre de masse (matrice GT) : FAB+ : 368 (M+H)+ ; 390 (M + Na)+ ; 127 (B+2H)+.
I.R. (KBr, cm-1), v : 3480 (C02H) ; 3053 (NH) ; 2930 (C sp2et sp3) ; 2112 (N3) ; 1720 (C=0); 1703 (C=0) ; 1268.
Log P (n-octanol / H20 ) = - 0,74 +/- 0,44 [log PAZT = - 0,88 +/- 0,42] EXEMPLE IV 3'-azido- 3'-désoxY-5'-0-fstutarynthymidine 4 A une solution d'AZT (100 mg ; 0,374 mmol ; leq) dans du DMF (3ml), sous agitation magnétique et azote, on ajoute la DMAP (43 mg ; 0,374mmol ; leq), puis l'anhydride glutarique (47 mg ; 0,412mmol ; l,leq). Après 14h à température ambiante, le mélange réactionnel est évaporé sous pression réduite. Le résidu obtenu est dilué dans 4 ml de CH2Cl2 et lavé avec 2x4 ml d'une solution aqueuse d'HCI N. Les phases aqueuses récupérées sont extraites avec 2x4 ml de CH2C12. Les phases organiques réunies sont séchées sur Na2S04, filtrées et évaporées sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié par chromatographie
flash sur colonne de gel de silice (éluant : méthanol 5% dans du dichlorométhane) pour conduire au composé 4 (122 mg ; 86%).
A ces tensioactifs qui peuvent être utilisés seuls ou en mélange, peut éventuellement ajouter des co-tensioactifs afin d'améliorer la rigidité et l'étanchéité des membranes formant la vésicule. Parmi ces molécules, on peut citer : - le cholestérol et ses dérivés, en particulier les esters de cholestérol chargés ou neutres comme le sulfate de cholestérol - les autres dérivés à squelette stérol, en particulier ceux d'origine végétale (sitostérol, - les céramides. sigmastérol...
Ainsi, on choisira avantageusement parmi les tensioactifs ci-dessus, deux tensioactifs présentant des propriétés relativement différentes, en particulier une balance hydrophile-lipophile (HLB) différente. Le premier tensioactif présentera avantageusement une balance hydrophile-lipophile comprise entre 1 de préférence entre 1 et 4, alors que le deuxième tensioactif aura une balance hydrophile-lipophile comprise entre 3 et 15, de préférence comprise entre 5 et 15. La préparation obtenue après transformation de la phase lamellaire cnstal-liquide en vésicules multilamellaires peut ensuite être diluée, en particulier avec un solvant aqueux tel que, par exemple, une solution tampon, une solution saline ou une solution physiologique, pour obtenir ainsi une suspension aqueuse vésicules.
La technique d'encapsulation utilisée selon la présente invention permet d'atteindre aisément des rendements d'encapsulation très élevés, voire voisins de 100 %. Toutefois, de tels rendements ne sont pas toujours indispensables en fonction des applications visées.
Ainsi, le rendement d'encapsulation du (ou des) antigène(s) dans compositions de l'invention est avantageusement supérieur à 50 %, de préférence supérieur à 80 %. Il semble que la structure des vésicules soit responsable des résultats particulièrement avantageux obtenus, et que les vésicules multilamellaires de l'invention permettent à l'antigène d'arriver intact jusqu'aux cellules présentatrices de l'antigène (CPA) et de favoriser sa capture par ces cellules. Il semble donc bien que la fonction des vésicules de l'invention est de vectoriser, de protéger et d'améliorer la capture de l'antigène par le système immunitaire.