INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Après réalisation de la partie coudée, on poursuit la croissance (figure 7C) en utilisant uniquement le mouvement vertical Vz comme sur la figure 7A.
On peut bien entendu combiner les procédés décrits en relation avec les figures 6A, 6B, 6C, 7A, 7B, 7C pour former une calotte hémisphérique et la terminer par un barreau coudé, en arrêtant le mouvement de rotation du germe.
L'invention présente donc de nombreux avantages car elle permet la réalisation de formes complexes avec des matériaux difficiles à usiner comme par exemple le saphir qui possède des propriétés optiques, thermiques, mécaniques et chimiques très intéressantes.
Les domaines d'applications de ce matériau s'étendent de la bijouterie (verres de montre), à la production de pièces technologiques ultra-résistantes (buses et fenêtres à haute pression, outils de découpe), et aux dispositifs militaires de transmission infrarouge (IRdômes) . Compte tenu de l'exceptionnelle dureté du saphir, le préformage en réduit sensiblement les coûts de production.
Le dispositif de croissance par inclinaison de l'interface de solidification étend le préformage à la réalisation de pièces jusque là impossibles à réaliser avec les filières classiques. La calotte hémisphériques, les gainages de formes particulières (par exemple des tubes creux et coudés), et les creusets spéciaux sont autant d'applications développables par ce procédé.
D'autres matériaux, même beaucoup plus facilement usinables que le saphir, sont aussi concernés par ce procédé, car certaines formes obtenues par préformage sont totalement irréalisables par usinage (typiquement les pièces creuses et coudées).
Références citées 1.La Belle Jr., J. of Crystal Growth, 50, 1980, p. 8-17, 2.Tatarchenko, Shaped Crystal Growth, Kluwer Academic Publishers, 1993, p. 1-18, 3.EP-A-653 504 4.US-A-4 430 305
Le présent brevet propose un système de contraception intrautérine [pl.1]comprenant un Dispositif Intra Utérin (ou stérilet) en T au Cuivre (1-PI. 1), un système d'insertion (2-PI. 1) et un conditionnement stérile.
Les améliorations portent sur la forme et la conception mécanique du stérilet, le système d'insertion et leur conditionnement commun. Elles assurent une meilleure sécurité, mécanique (prévention des risques de perforation, d'expulsion et de déplacement), biologique (diminution des risques de contamination, au moment de la mise en place et pendant toute la période d'implantation intrautérine du dispositif) et une meilleure efficacité.
Le concept prévoit 4 versions du meme dispositif: deux classes de tailles, standard et court pour répondre aux différentes anatomies utérines et deux surfaces d'émission de cuivre (2-PI. 3) par classe, 380mm pour obtenir un niveau d'efficacité équivalent aux dispositifs actuels et 400mm pour une efficacité renforcée en activité et longévité.
Le dispositif intra-utérin (ou stérilet) [PI. 2] présente une forme générale de T avec quelques modifications que lui sont propres. Pour répondre à la norme NF S 90031, le corps et les branches sont constitués de polyéthylène chargé de sulfate de baryum.
Le corps est composé de deux parties. L'axe vertical présente un diamètre de 2 millimètres pour toutes les version. II est limité à ses deux extrémités par des deux sphères de 3mm de diamètre (1-PI. 2). Pour les versions standards, la longueur de l'axe est de 29mm, et de 20mm pour les versions courtes.
La sphère inférieure est dotée de trous débouchant de 1 mm de diamètre permettant l'attache (2-PI. 2 / 3 PI. 3) du fil de retrait.
A 5mm de l'axe de la sphère supérieure, I'axe vertical possède un trou débouchant de 0,5mm de diamètre permettant l'introduction du fil de cuivre (3-PI. 2).
Les deux branches sont identiques et symétriques et présentent un point fixe à leur base (sphère supérieure de 3mm de diamètre) et deux points d'inflexion (4-PI. 2).
Le point fixe permet d'encaisser et de restituer un couple maximum de l'ordre de 50% supérieur par rapport aux autres stérilets. II favorise le maintien en place du dispositif en s'opposant à toute contrainte de rotation. II participe à l'effet de ressort à lame assuré par les deux points d'inflexion sur les branches qui évitent les mouvements dans les deux axes, en particulier la remonté ou l'expulsion du dispositif, tout en facilitant l'effacement de chaque branche dans le système d'insertion et pendant l'opération de retrait.
La double courbure des branches ainsi obtenue respecte l'anatomie de la cavité utérine et participe à l'obtention un couple optimal à l'encastrement.
La section des branche est semi-cylindrique (SPI. 2), ce qui permet d'obtenir un diamètre global de deux millimètres, identique à celui du corps du stérilet, lorsque les branches se rassemblent à l'intérieur du système d'insertion.
A l'extrémité de chaque branche, un épaississement de O,75mm de la section (6-PI. 2) permet l'immobilisation du stérilet rétracté dans le système d'insertion en position d'introduction. Il assure par sa forme l'absence d'agressivité mécanique sur la muqueuse utérine, Un fil de cuivre pur (2-PI. 3) conforme à la norme NF S 90-031 et aux monographies de la pharmacopée française auxquelles renvoie la norme est spiralé autour de l'axe vertical. D'un diamètre de 0,35mm, la longueur du fil définit la surface active de cuivre (346mm pour une surface de 380mm2 et 364mm pour une surface de 400mm2).
A la sphère inférieure du stérilet est noué un fil de rétractation (3-PI. 3) dont les caractéristiques sont conformes à la norme NF S 90-0131. Son diamètre est de 0,25mm et sa longueur nominale de 400mm.
Le système d'insertion [PI. 4] est constitué de 4 éléments essentiels: Un tube long de 220mm, d'un diamètre extérieur de 3,8mm et intérieur de 3mm, dont le matériau est conforme à la norme NF S 90031.
Une bague [6-PI. 1, PI. 5] permettant de repérer la profondeur d'insertion du stérilet par rapport à la hauteur utérine mesurée par hystérométrie.
D'un poussoir [4-PI. 1, PI. 6] dont le matériau est conforme à la norme NF S 90-031. Cylindrique sur la majeure partie des 230mm de sa longueur utile, pour un diamètre de 2,80mm, il possède une section prismatique sur les 41mm situés à la base du poussoir.
On prend un mélangeur cylindrique horizontal, d'une contenance de 300 litres, dans lequel on verse 10 litres d'eau, puis 7 kg d'engrais N.P.K.18.18.18, avec oligoéléments, en poudre soluble dans l'eau de type d'ALGO SPEED fabriqué par le laboratoire ALGOCHIMIE (voir exemple 50).
On fait tourner le mélangeur pendant 15 minutes, puis on verse 15 g de colorant par exemple vert menthe E, fabriqué par les COLORANTS WACKHERR, et on fait tourner le mélangeur 5 minutes encore pour que la solution prenne la couleur verte homogène.
Puis on verse dans la solution à l'intérieur du mélangeur 5 kg de polymère de type connu tel que du BARBARY PLANTE (voir exemple 11) et 5 kg de substance hydrophile à base de sciure de bois issues de l'exemple 3. On fait tourner le mélangeur avec l'ensemble de l'engrais liquide coloré, le polymère et la substance hydrophile d'origine végétale pendant 20 minutes afin que la totalité de l'engrais liquide soit absorbée complètement et de manière homogène par le polymère et la substance hydrophile. Puis on envoie le mélange dans un séchoir à air chaud soufflé à 80"C jusqu'à ce que la quantité d'eau retenue soit abaissée à 5% en poids de polymère et substance hydrophile à l'état sec. On obtient ainsi 21 kg de granulés de la première partie de composants du produit de l'invention.
On prend un deuxième mélangeur cylindrique horizontal d'une capacité de 120 litres. On verse dans ce mélangeur 1,5 litres d'eau et 500 g de fongicide préventif et curatif, pour traiter légumes, fleurs et autres cultures, tel que TACHIGAREN (voir exemple 50 pour sa composition).
Puis on fait tourner le mélangeur pendant 15 minutes pour avoir une solution homogène; on verse 10 g de colorant par exemple rouge du type de rouge vif W 3002, fabriqué par WACKHERR. On laisse tourner le mélangeur pendant 5 minutes pour que la solution de fongicide prenne une coul.eur rouge homogène puis on verse dans la solution 5 kg de polymère BARBARY PLANTE et 5 kg de substance hydrophile issue de l'exemple 3 et on fait tourner le mélangeur pendant 20 minutes afin que la totalité de la solution soit complètement absorbée par le polymère et la substance hydrophile d'origine végétale d'une manière parfaite et homogène.
On envoie le mélange dans un séchoir à air chaud soufflé à 25"C jusqu'à ce que la quantité d'eau retenue soit abaissée à 5% en poids de polymère et gel de sciure de bois sec. On obtient ainsi 11,025 kg environ de granulés de la deuxième partie du composant du produit de l'invention. On envoie cette quantité dans le mélangeur final afin qu'elle soit mélangée avec les granulés de la première partie.
On prend un troisième mélangeur identique au deuxième dans lequel on verse 1,5 litre d'eau et 250 g d'hormone apte à développer les racines, tel que du TRANSPLANTONE (voir exemple 50).
On fait tourner le mélangeur pendant 15 minutes afin d'avoir une solution homogène; on verse 10 g de colorant par exemple jaune orange du type W 797, fabriqué par WACKHERR. On laisse tourner le mélangeur pendant 5 minutes pour que la solution du produit développeur de racines prenne une couleur jaune homogène. Puis on verse dans la solution à l'intérieur du mélangeur 5 kg de polymère BARBARY PLANTE et 5 kg de substance hydrophile selon l'exemple 2 et on fait toumer le mélangeur pendant 20 minutes afin que la totalité de la solution de l'agent développeur de racines soit absorbée d'une manière complète et homogène par le polymère et la substance hydrophile d'origine végétale. On envoie le mélange dans un séchoir à air chaud à 20"C jusqu'à ce que la quantité d'eau retenue dans le mélange soit abaissée à 5%. Ainsi on obtient 10,762 kg environ de granulés du troisième groupe du produit de l'invention.
On prend un quatrième mélangeur d'une capacité de 120 litres et on verse dans ce mélangeur 1,5 litres d'eau et 150 g d'agent correcteur de la salinité.
On fait toumer le mélangeur avec l'ensemble pendant 15 minutes afin d'avoir une solution homogène. On verse 10 g de colorant par exemple bleu du type FD'C Bleu N W092, fabriqué par WACKHERR et on laisse le mélangeur tourner pendant 5 minutes encore pour que la solution de l'agent correcteur de salinité prenne une couleur bleue homogène. Puis on verse dans la solution 10 kg de polymère BARBARY PLANTE. On fait tourner le mélangeur contenant la solution et le polymère pendant 20 minutes afin d'obtenir un mélange de l'agent correcteur de la salinité qui a été absorbé complètement par le polymère. On envoie le mélange dans un séchoir à air chaud à 40"C jusqu'à ce que la quantité d'eau retenue soit abaissée à 5% en poids sec du produit. On obtient ainsi 10,657 kg environ de granulés de quatrième groupe composant du produit de l'invention. On envoie cette quantité dans le mélangeur final afin qu'elle soit bien mélangée avec les granulés des groupes précédents.
On verse dans un cinquième mélangeur identique au précédent une quantité de 1,5 litres d'eau et 0,5 kg d'herbicide du type OURAGAN (voir exemple 50).
On fait toumer l'ensemble dans ce mélangeur pendant 15 minutes afin d'obtenir une solution homogène. Puis on verse 10 g du colorant par exemple marron, dans la solution d'herbicide et on laisse toumer encore le mélangeur pendant 5 minutes afin que la solution d'herbicide prenne une couleur marron très homogène. On verse ensuite une quantité de 10 kg de la substance hydrophile d'origine végétale issue de l'exemple 3. On fait tourner l'ensemble de la solution et de la substance hydrophile dans le mélangeur pendant 20 minutes afin que la solution désherbante soit complètement absorbée par la substance hydrophile. On envoie le mélange dans un séchoir à air chaud soufflé à 20"C jusqu'à ce que la quantité d'eau retenue dans le produit soit abaissée à 5% en poids de gel sec.
Dans un sixième mélangeur identique aux mélangeurs précédents, on verse 2,5 litres d'eau, et successivement: e 0,5 litre d'un insecticide du type comme PROTECTION TOTAL V (voir exemple 50); e 0,5 litre d'un insecticide du type KOTHRIN (voir exemple 50); 0,5 litre d'anti-fourmis.
Pour assurer la retenue du boîtier 16 de ce second mode de réalisation sur le premier mors 1, on prévoit un moyen pour le lier mécaniquement au ressort 14 ou à l'arbre de liaison 13, soit par des branches d'extrémités du corps de boîtier en U qui se rapprochent l'une de l'autre en appui latéral de part et d'autre du ressort 14, soit par des flasques d'extrémités ayant un trou traversé par l'arbre de liaison 13.
Dans la réalisation illustrée sur les figures, les ergots 9, 10, 11 et 12 ont chacun la forme d'une languette plate à bord extrême arrondi, par exemple en arc de cercle. Le boîtier 16 comprend une paroi périphérique ayant une partie externe cylindrique 26 épousant la courbure des bords arrondis d'ergots 9-12.
Pour l'adaptation du boîtier 16 sur le premier mors 1, on déplace le boîtier 16 par translation dans le sens de la flèche 29 illustrée sur la figure 11, en orientant le boîtier 16 avec sa face plane 27 ou son ouverture latérale 127 en avant et en maintenant les mors avec les trous des ergots perforés 9-12 en alignement. Dans cette orientation, le boîtier 16 coulisse entre les premiers ergots 9 et 10, et la seconde extrémité 15 du ressort 14 vient en appui sur la face postérieure 30 du second levier d'ouverture 5. Ainsi, la seconde extrémité 15 du ressort est repoussée et pivote comme illustrée sur la figure 11 par les pointillés référencés 31. En fin d'engagement du boîtier 16 sur les premiers ergots 9 et 10, la seconde extrémité 15 du ressort 14 vient s'engager dans un logement 32 ménagé sur la face postérieure 30 du second levier d'ouverture 5, le ressort 14 se trouvant précontraint.
De préférence, le boîtier 16 est en une matière opaque, pour occulter le ressort 14 qu'il contient. De la sorte, comme illustré sur la figure 1, les moyens d'articulation 7 présentent un aspect relativement continu, beaucoup plus esthétique qu'un ressort hélicoïdal nu.
Dans le mode de réalisation illustré sur la figure 13, les mors 1 et 4 forment une pince généralement plate et large, avec des lèvres antérieures respectives 33 et 34 venant en appui l'une contre l'autre en position rapprochée de la pince.
Dans les modes de réalisation illustrés sur les figures 1 à 4 et 14, les mors 1 et 4 forment deux séries de dents parallèles, respectivement 35 et 36, incurvées l'une vers l'autre et venant s'imbriquer en position rapprochée.
COMPLEXE PARTICULAIRE DE CHARGE GLOBALE NEUTRE OU NÉGATIVE FORMÉ D'UNE VESICULE CATIONIQUE OU NEUTRE ET D'UNE SUBSTANCE BIOLOGIQUEMENT ACTIVE ANIONIQUE, LEUR PRÉPARATION ET LEUR UTILISATION.
La présente invention a pour objet des complexes particulaires résultant de l'association de substances biologiquement actives avec des vésicules utiles comme vecteurs de substances actives. Elle concerne aussi l'utilisation des vésicules adaptées à la formation de ces complexes ainsi que les compositions comprenant lesdits complexes. L'invention concerne enfin la préparation desdites vésicules et complexes et des compositions les contenant.
On connaît dans l'art antérieur de nombreux systèmes de vectorisation de substances actives, comme les liposomes, les nanoparticules, les particules polymériques, les immuno- et ligand-complexes, les cyclodextrines (Drug Transport in antimicrobial and anticancer chemotherapy. G. Papadakou Ed. CRC Press, 1995) Toutefois, aucun de ces systèmes ne s'est avéré réellement satisfaisant pour vectoriser des acides nucléiques conne, par exemple, l'acide desoxyribonucléique (ADN) et cette lacune constitue un des problèmes pour l'application de la thérapie génique (R. G. Crystal, Science, 270, 404-410, 1995).
I1 existe aujourd'hui plusieurs méthodes de transfection cellulaire que l'on peut regrouper de la façon suivante - l'utilisation du phosphate du calcium ou de polycations, la microinjection, la fusion protoplasmique, - l'électroporation et l'injection d'ADN libre, - l'infection virale, et - les vecteurs synthétiques.
Les méthodes du premier groupe ne sont pas adaptables à la transfection in vivo. En conséquence, la plupart des premiers essais cliniques de thérapie génique ayant lieu aujourd'hui sont basés sur l'utilisation de vecteurs retroviraux et adénoviraux. En effet, ceux-ci ont démontré, notamment dans l'étude de clones cellulaires, leur efficacité de pénétration cellulaire et leur stabilité dans l'expression d'un transgène. Toutefois, l'utilisation clinique des vecteurs d'origine virale semblent très hypothétique en raison de leur toxicité potentielle.
Les virus à ADN tels que les adenovirus ou virus herpès, sont des transporteurs potentiels mais présentent des problèmes d'immunogenicité, de toxicité et de coût de production.
L'électroporation et l'injection d'ADN libre, bien que peu efficace, présente une alternative intéressante mais est limitée à l'administration exclusivement locale.
L'utilisation de vecteurs synthétiques tels que les vecteurs lipidiques ou polypeptidiques suscitent un intérêt grandissant, car cette stratégie apparaît beaucoup moins toxique. Le matériel génétique à délivrer se constitue alors d'un ADN plasmidique (pDNA) dont la production est simple et peu coûteuse. Cet ADN recombinant, provenant d'une production bactérienne, contient non seulement la séquence codante du gène à transférer mais aussi des séquences contrôlant en cis la régulation de l'expression du gène comme les séquences du promoteur et du enhancer, les séquences opérateurs, un site d'attachement ribosomal, un codon d'initiation et les signaux de fin de transcription et de polyadenylation. D'autres séquences d'ADN peuvent y être insérées, telles que des séquences tampon, d'origine de réplication, de sites de recombinaison homologues, ou des introns.
D'une manière générale le transport d'acides nucléiques (AN) est limité par leur grande biodégradabilité et notamment le pDNA doit être délivré de façon complètement intacte dans le noyau de la cellule cible pour permettre l'expression du transgène.
John Wiley and Sons, Inc.
Bankier AT, Weston KM, Barrell BG (1987) Methods in Enzymology 155:51-93 Bevitt DJ, Cortes J, Haydock SF and Leadlay PF, (1992), Eur.
J. Biochem 204 : 39-49 Caffrey P, Bevitt DJ, Staunton J, Leadlay PF (1992) FEBS 304:225-228 Devereux J, Haeberli P, Smithies O (1984) Nucl Acids Res 12:387-395 Dhillon N, Hale RS, Cortes J, Leadlay PF (1989) Mol Microbiol 3:1405-1414 Dickens ML, Ye J, Strohl WR (1996) J Bacteriol 178:3384-3388 Donadio S, Stassi J, McAlpine JB, Staver MJ, Sheldon PJ, Jackson M, Swanson SJ, Wendt-Pienkowski E, Wang YG, Jarvis B, Hutchinson CR, Katz L (1993) In : Baltz RH, Hegeman GD, Skatrud PL (eds) Industrial Microorganisms : Basic and Applied Molecular Genetics : American Society for Microbiology, Washington, DC, 257-265.
Gandecha AR, Large SL, Cundliffe E (1997) Gene 184:197-203 Haydock SF, Dowson JA, Dhillon N, Roberts GA, Cortes J, Leadlay PF (1991) Mol Gen Genet 230:120-128 Hessler PE, Larsen PE, Constantinou AI, Schram KH, Weber JM, Appl Microbiol. Biotechnol (1997), 47 : 398-404 Hopwood DA, Kieser T, Wright HM an Bibb MJ, Journal of General Microbiology (1983), 129, 2257-2269 Hopwood DA, Bibb MJ, Chater KF, Kieser T, Bruton C, Kieser HM, Lydiate DJ, Smith CP, Ward JM, Schremp H (1985) Genetic manipulation of Streptomyces. A laboratory Manual. John Innes Foundation, Norwich Kaneda T, Butte JC, Taubman B, Corcoran JW (1962) J Biol Chem 237:322-327 Katz E, Thompson CJ, Hopwood DA (1983) J Gen Microbiol 129:2703-2714 Katz L, Donadio S (1995) Macrolides. In : Vining LC, Stuttard C (eds). Genetics and Biochemistry of Antibiotic Production.
Butterworth-Heinemann, Newton, MA, 385-420.
Liu H-W, Thorson JS (1994) Annu Rev Microbiol 48:223-56 Otten SL, Liu X, Ferguson J, Hutchinson CR (1995) J Bacteriol 177:6688-6692 Sakakibara H and Omura S (1984). In : Omura S. (ed) Macrolide Antibiotics : Chemistry, Biology, and Practice. Academic Press, Inc. London, 85-125.
Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T (1989) Molecular cloning: a laboratory manual, 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y.
Sanger F, Nicklen S, Coulson AR (1977) Proc Natl Acad Sci USA 74:5463-5467 Scotti C, Hutchinson CR (1996) J Bacteriol 178:7316-7321 Scrutton NS, Berry A, Perham RN (1990) Nature 343:38-43 Staden R (1984), Nucleic Acids Res 12:521-528 Stassi D, Donadio S, Staver MJ, Katz L (1993) J Bacteriol 175:182-189 Stemmer WPC (1994) Proc. Natl. Acad. Sci., Vol. 91, pp.
10747-10751 Ward JM, Janssen GR, Kieser T, Bibb MJ, Buttner MJ, Bibb MJ (1986) Mol. Gen. Genet. 203 : 468-475 Weber JM, Wierman CK, Hutchinson CR (1985) J Bacteriol 164:425-433 Weber JM, Losick R (1988) Gene 68:173-180 Weber JM, Schoner B, Losick R (1989) Gene 75 : 235-241 Weber JM, Leung JO, Maine GT, Potenz RHB, Paulus TJ, DeWitt JP (1990) J Bacteriol 172:2372-2383 Weber JM, Leung JO, Swanson SJ, Idler KB, McAlpine JB (1991) Science 252: 114-117 Wehmeier UF (1995) Gene 165: 149-150 Wierenga RK, Terpstra P, Hol WGJ (1986) J. Mol. Biol. 187 101-107.
Yamamoto H, Maurer KH, Hutchinson CR (1986) J Antibiot 34:1304-1313
FER COMPORTANT DEUX MOYENS DE CHAUFFE AVEC UN MODE D'ASSERVISSEMENT EN TEMPERATURE PARTICULIER La présente invention se rapporte au domaine technique général des appareils conçus pour assurer la mise en forme d'un article textile tel qu'un vêtement, en le soumettant à l'action combinée d'un traitement thermique, d'un traitement mécanique de repassage et d'un traitement à la vapeur.
La présente invention concerne un fer à repasser électrique comprenant une partie chaude constituée d'une semelle et d'une chambre de vaporisation 'pour lesquelles la mise en température est assurée par l'intermédiaire d'un circuit de chauffe en relation thermique avec un dispositif de régulation ou de contrôle de la température.
La présente invention concerne également un procédé de régulation d'un fer électrique à vapeur.
Les fers à vapeurs connus de l'art antérieur comportent généralement un élément chauffant en relation thermique avec une chambre de vaporisation, par exemple un élément chauffant tubulaire moulé dans la fonderie de ladite chambre, ledit élément chauffant étant associé à des moyens de régulation, lesquels sont fixés le plus souvent sur la fonderie. Cette construction traditionnelle présente plusieurs inconvénients. Lorsque la température de consigne des moyens de régulation est fixée à une valeur peu élevée, afin d'obtenir une température de semelle basse, dans le but par exemple de repasser des articles en tissu délicat, ne supportant pas les températures élevées, la température régnant dans la chambre de vaporisation est insuffisante pour vaporiser l'eau introduite dans ladite chambre. Cette situation est gênante puisqu'elle ne permet pas de bénéficier d'une production de vapeur lors du repassage d'articles délicats. Lorsque la température de consigne des moyens de régulation est fixée à une valeur élevée, afin d'obtenir une température de semelle élevée et de préférence un débit de vapeur important, dans le but par exemple de repasser des articles résistants, il est connu et mis en évidence par des thermographies que la partie de la semelle se situant sous la chambre de vaporisation est sensiblement plus froide que le reste de la surface de la semelle, en particulier pendant l'opération de vaporisation. Cette situation est gênante puisqu'on souhaite en général que la surface de la semelle du fer atteigne sa température optimale au moment où la vapeur est émise.
II est connu du document US 3 110 975 de réaliser un fer à repasser à vapeur comprenant une partie chaude comportant une semelle et une chambre de vaporisation, la semelle et la chambre de vaporisation formant chacune une zone thermique dotée d'un élément chauffant associé à des moyens de régulation, la semelle et la chambre de vaporisation étant isolées thermiquement l'une par rapport à l'autre. Lors du repassage de textiles délicats il est ainsi possible d'obtenir dans la chambre de vaporisation une température suffisante pour la vaporisation de l'eau, tout en conservant une température de semelle suffisamment basse pour ne pas détériorer l'article à repasser.