INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
En plus du promoteur naturel pour le gène codant pour le polypeptide de la présente invention, il est possible d'utiliser d'autres promoteurs pour diriger l'expression du polypeptide de la présente invention. Le promoteur peut être choisi pour son efficacité à diriger l'expression du polypeptide de la présente invention dans l'hôte désiré pour l'expression.
Dans une autre forme de réalisation, un promoteur constitutif peut être choisi pour diriger l'expression du polypeptide désiré de la présente invention. Un tel
produit d'assemblage d'expression peut offrir des avantages supplémentaires puisqu'il supprime la nécessité de cultiver les hôtes d'expression sur un milieu contenant un substrat d'induction.
Des exemples de promoteurs constitutifs et/ou inductibles forts dont l'utilisation est préférée dans des hôtes fongiques pour l'expression comprennent ceux qui peuvent être obtenus à partir des gènes fongiques pour les promoteurs de xylanase (xlnA), de phytase, d'ATPsynthétase, de sous-unité 9 (oliC), de triose-phosphateisomérase (tpi), d'alcool-déshyhdrogénase (AdhA),- d'aamylase (amy), d'amyloglucosidase (AG - à partir du gène glaA) , d'acétamidase (amdS) et de glycéraldéhyde-3phosphate-déshydrogénase (gpd).
Des exemples de promoteurs de levure puissants sont ceux pouvant être obtenus à partir des gènes pour l'alcool-déshydrogénase, la lactase, la 3phosphoglycérate-kinase et la triose-phosphate-isomérase.
Des exemples de promoteurs bactériens puissants sont les promoteurs d'a-amylase et SP02 ainsi que les promoteurs provenant de gènes de protéase extracellulaires.
#13C RMN (62. 90 MHz, DMSO-d6): d : 32. 0, 38. 9, 55. 1, 55. 7, 56. 1, 90. 6, 93.0, 105.0, 113. 3 (2), 125. 6, 129. 3, 129. 5, 129. 8 (2), 140. 5, 157. 2, 158. 7, 160.6, 162.4, 172. 5.
#SM: m/z 384 (M+1)+ -Anal. calculé pour C21 H21 N06: C, 65.79 ; 5.52 ; 3. 65. Trouvé : 65.60 ; 5.51 ; 3.70. EXEMPLE 15 N,N-Diéthyl-3-[5,7-diméthoxy-3-(4-méthoxyphényl)-2-oxo-1,2- dihydro-1-quinolinyl]propanamide (Composé 17)
Sous atmosphère d'azote, 1,0 g (2,6 mmol) de composé 16 est solubilisé dans 25 ml de N,N-diméthylformamide (DMF) anhydre. A 0 C, 353 mg (2,6 mmol) d'hydroxybenzotriazole et 540 mg (2,6 mmol) de cyclohexylcarbodiimide sont additionnés à la solution réactionnelle. La réaction est agitée 10 minutes à 0 C, avant d'ajouter 0,26 ml (2,6 mmol) de diéthylamine. La solution finale est agitée 2 h à 0 C, puis 24 h à température ambiante. La dicyclohexylurée est éliminée par filtration. Le filtrat est extrait par de l'acétate d'éthyle (deux fois). La phase organique recueillie est lavée plusieurs fois à l'eau. La phase organique est séchée sur MgS04, puis évaporée sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié par chromatographie sur colonne de silice (CH2CI2/AcOEt 7 :3) pour donner 680 mg (60%) du composé 17.
#PF 109-110 C (lavage AcOEt) #IR (KBr) 1636,1617 cm-1 #1H RMN (250 MHz, CDCI3): d 1.07-1.21 (m, 6H, CH3), 2. 78 (t, 2H, J = 8. 0 Hz, COCH2), 3. 30 (q, 2H, J = 7. 0 Hz, NCH2), 3. 39 (q, 2H, J = 7.0 Hz, NCH2), 3,84 (s, 3H, OCH3), 3. 91 (s, 3H, OCH3), 3. 94 (s, 3H, OCH3), 4.65 (t, 2H, J = 8. 0 Hz, NCH2), 6. 29 (d, 1H, J = 2. 0 Hz, HAr), 6. 73 (d, 1H, J = 2. 0 Hz, HAr), 6. 94 (d, 2H, J = 7. 5 Hz, HAr), 7. 67 (d, 2H, J = 7. 5 Hz, HAr), 8.15 (s, 1 H, HAr).
.13C RMN (62. 90 MHz, CDCI3): d ; 13. 1, 14.4, 31 0, 40. 1, 40 5,42.2, 55. 3, 55. 8 (2), 89. 9, 93. 1, 106. 3, 113. 5 (2), 126. 6, 129. 7, 130. 0 (2), 130. 5, 140. 9, 157. 6, 159.1, 162. 1, 162. 6, 169. 9.
SM (ionspray) : m/z 439 (M+1)+ -Anal. calculé pour C25H30N205: C, 68.47 ; 6.90 ; 6. 39. Trouvé : 68.27 ; 6.80 ; 6.40. EXEMPLE 16 N,N-Diéthyl-2-[5,7-diméthoxy-3-(4-méthoxyphényl)-2-oxo-1,2- dihydro-1-quinolinyl]acétamide (Composé 18)
Sous atmosphère d'azote, 1,0 g (3,2 mmol) de composé 1 est solubilisé dans 30 ml de N,N-diméthylformamide (DMF) anhydre. A 0 C, 115 mg (4,8 mmol, 1,5 eq) de NaH, préalablement lavés dans de l'éther de pétrole, sont additionnés par petites portions à la solution réactionnelle (réaction exothermique). Une solution de 2-chloro-N,N- diéthylacétamide (0,88 ml, 6,4 mmol, 2 eq) diluée dans 5 ml de DMF est ajoutée au milieu. La réaction est chauffée pendant 3 h à 90 C. Après refroidissement, de l'eau est versée sur le mélange réactionnel. La solution réactionnelle est extraite par de l'acétate d'éthyle (deux fois). La phase organique obtenue est séchée sur MgS04, puis évaporée sous pression réduite. Le résidu obtenu est purifié par chromatographie sur colonne de silice (CH2Cl2/AcOEt 7 :3) pour donner 820 mg (61 %) de composé 18 et 408 mg (30%) de dérivé 18a.
Composé 18: #PF 178-179 C (AcOEt) #IR (KBr) 1642,1617, 1601 cm-1 #1H RMN (250 MHz, CDC13): d 1. 10-1.23 (m, 6H, CH3), 3. 38-3.49 (m, 4H, CH2), 3,83 (s, 3H, OCH3), 3. 86 (s, 3H, OCH3), 3. 91 (s, 3H, OCH3), 5. 17 (s, 2H, NCH2CO), 6. 28 (d, 1 H, J = 2. 0 Hz, HAr), 6. 34 (d, 1 H, J = 2. 0 Hz, HAr), 6. 93 (d, 2H, J = 7. 0 Hz, HAr), 7. 66 (d, 2H, J = 7.0 Hz, HAr), 8. 17 (s, 1 H, HAr).
.13C RMN (62. 90 MHz, CDC13): d 13. 0, 14. 2, 40. 9, 41. 6, 45. 3, 55. 3, 55. 5, 55.8, 90. 8, 92. 8, 106.3, 113. 4 (2), 126. 6, 129. 9, 130.1 (2), 131. 0, 141. 7, 157. 6, 159. 0, 161. 9, 162. 3, 166. 3.
. SM (ionspray) : m/z 425 (M+1)+ -Anal. calculé pour C24H28N205: C, 67.91 ; 6.65 ; 6. 60. Trouvé : 67.62 ; 6.44 ; 6.50.
Composé 18a: N,N-Diéthyl-2-([5,7-diméthoxy-3-(4-méthoxyphényl)-2-quinolinyl]oxy)acetamide (18a)
#PF 146-147 C (AcOEt/EP) #IR (KBr) n 1654,1624, 1517 cm-1 #1H RMN (250 MHz, CDCI3): d 1.14 (t, 3H, J = 7.5 Hz , CH3), 1. 28 (t, 3H, J = 7. 5 Hz, CH3), 3. 36-3.47 (m, 4H, NCHz), 3,85 (s, 3H, OCH3), 3. 91 (s, 3H, OCH3), 3. 93 (s, 3H, OCH3), 5. 17 (s, 2H, NCH2), 6. 38 (d, 1 H, J = 2. 0 Hz, HA,), 6. 73 (d, 1 H, J = 2. 0 Hz, HAr), 6. 97 (d, 2H, J = 9.0 Hz, HA,), 7 75 (d, 2H, J = 9.0 Hz, HAr), 8.28 (s, 1 H, HAr).
.13C RMN (62. 90 MHz, CDCI3): d 12.9, 14.2, 40.2, 55. 2, 55. 4, 55. 6, 63. 0, 95.8, 98. 4, 113. 3, 113. 5 (2), 121. 9, 129. 2, 130. 6 (2), 132. 5, 147.3, 156 2, 158. 9, 161.1, 167. 3.
- SM (ionspray): m/z 425 (M+1)+ -Anal. calculé pour C24H28N205: C, 67.91 ; 6.65 ; 6.60. Trouvé- C, 67.85 ; 6.70; N, 6.51.
EXEMPLE 17 [5,7-Diméthoxy-3-(4-méthoxyphényl)-2-oxo-1,2-dihydro-1- quinolinyl]acetonitrile (Composé 19)
Sous atmosphère d'azote, 1,0 g (3,2 mmol) de composé 1 est solubilisé dans 30 ml de N,N-diméthylformamide (DMF) anhydre. A 0 C, 115 mg (4,8 mmol, 1,5 eq) de NaH,
Les polymères épaississants hydrosolubles utilisables selon la présente invention englobent tous les polymères hydrosolubles synthétiques ou d'origine naturelle utilisés classiquement dans le domaine cosmétique.
On peut citer comme exemples de polymères épaississants synthétiques la polyvinylpyrrolidone, l'acide polyacrylique, le polyacrylamide, l'acide polyacrylamidométhylpropanesulfonique ou des copolymères de ceux-ci, ces polymères étant réticulés ou non réticulés.
Les polymères épaississants d'origine naturelle utilisables selon la présente invention sont des polymères comportant au moins un motifde sucre, à savoir (a) les gommes de guar non-ioniques ; (b) les gommes de biopolysaccharides d'origine microbienne telles que les gommes de scléroglucane et de xanthane ; (c) les gommes issues d'exsudats végétaux telles que la gomme arabique, la gomme ghatti, la gomme karaya ou la gomme adragante ; (d) les gommes extraites d'algues telles que les carraghénanes ou l'agar, (e) les gommes issues d'extraits végétaux tels que la gomme de caroube ou les pectines extraites de pulpes de fruits ; (e) les alginates ; (f) les amidons ; et (g) les hydroxyalkylcelluloses et carboxyalkylcelluloses ; On entend par le terme "motif de sucre" dans la présente invention une portion monosaccharidique ou une portion oligo- ou polysaccharidique constituée d'un même type de motifs saccharidiques (oligo- ou polyholosides) ou de plusieurs types de motifs saccharidiques différents
(oligo- ou polyhétérosides).
Les unités saccharidiques de tous ces polymères peuvent porter un ou plusieurs substituants, par exemple des groupements alkyle, hydroxyalkyle, alcoxy, acyloxy ou carboxyle, les radicaux alkyle comportant de 1 à 4 atomes de carbone.
Les gommes de guar non ioniques peuvent être modifiées ou non modifiées. Les gommes de guar non modifiées sont par exemple des produits vendus sous la dénomination VIDOGUM GH 175 par la société UNIPECTINE et sous la dénomination JAGUAR C par la société MAYHALL.
Selon la présente invention, on peut aussi utiliser des gommes de guar non ioniques modifiées par des groupements hydroxyalkyle en CI - 4, par exemple hydroxyméthyle, hydroxyéthyle, hydroxypropyle et hydroxybutyle.
Ces gommes de guar modifiées sont bien connues dans la technique et peuvent être préparées par réaction de la gomme de guar avec les oxydes d'alkylène appropriés. Le taux d'hydroxyalkylation (rapport du nombre de molécules d'oxyde d'alkylène fixées au nombre initial de groupes hydroxyle libres) est de préférence compris entre 0,4 et 1,2.
De telles gommes de guar non ioniques modifiées sont par exemple vendues sous les dénominations JAGUAR HP8, JAGUAR HP60, JAGUAR HP120, JAGUAR DC293 et JAGUAR HP105 par la société RHONE POULENC (MAYHALL) ou sous la dénomination GALACTASOL 4H4FD2 par la société AQUALON.
Les gommes de biopolysaccharides d'origine microbienne telles que les gommes de scléroglucane ou de xanthane, les gommes issues d'exsudats végétaux telles que la gomme arabique, la gomme ghatti, la gomme karaya, la gomme adragante, les extraits d'algues tels que les carraghénanes ou l'agar, les extraits végétaux tels que la gomme de caroube ou les pectines, les alginates, les amidons, les hydroxyalkylcelluloses et carboxyalkylcelluloses sont bien connus de l'homme de métier et sont décrits notamment dans "Handbook of Water Soluble Gums and Resins" de Robert L. Davidson, édité chez Mc Graw Hill Book Company
Parmi ces gommes, les scléroglucanes sont représentés par les produits vendus par la société SANOFI BIO INDUSTRIES sous la dénomination ACTIGUM CS, et en particulier sous la dénomination ACTIGUM CS 11, etpar la société ALBANMULLER INTERNATIONAL sous la dénomination AMIGEL.
On peut également utiliser d'autres scléroglucanes, par exemple un scléroglucane traité au glyoxal décrit dans la demande de brevet FR-A- 2 633 940.
Les gommes de xanthane utilisables en tant qu'épaississants dans les compositions de la présente invention sont par exemple représentées par les produits vendus sous les dénominations KELTROL, KELTROL T, KELTROL TF, KELTROL BT, KELTROL RD etKELTROL CG par la société NUTRASWEET KELCO, ou sous les dénominations RHODICARE S ou RHODICARE H par la société RHODIA CHIMIE.
Les hydroxyalkylcelluloses sont généralement des hydroxy(alkyl en CI-4)-celluloses et plus particulièrement des hydroxy- éthylcelluloses. Elles sont disponibles par exemple sous les dénominations CELLOSIZE QP3L, CELLOSIZE QP4400H, CELLOSIZE QP30000H, CELLOSIZE HEC30000A ou CELLOSIZE POLYMER PCG 10 par la société AMERCHOL, sous les dénominations NATROSOL 250HHR, NATROSOL 250MR, NATROSOL 250M, NATROSOL 250HHXR, NATROSOL 250HHX, NATROSOL 250HR, NATROSOL HX par la société HERCULES ou encore sous la dénomination TYLOSE H 1000 par la société HOECHST.
Les hydroxyalkylcelluloses peuvent également être des hydroxypropylcelluloses vendues sous les dénominations KLUCEL EF, KLUCEL H, KLUCEL LHF, KLUCEL MF, KLUCEL G par la société AQUALON.
Préparation de la formulation (volume total de 200 ul) : 10 mg de Morphine sont solubilisés dans 149,5 ul d'eau distillée, 30,5 ul de Biovecteur dilué à 1,31 g/l et 20 ul de PBS 150 mM. La solution est ensuite vortexée.
- BVSM Light cationique 0,2 g : . 500 g de morphine . 0,2 g de BVSM Light cationique Volume final: 10 ul en PBS 15mM Préparation des BVSM : Les BVSM Light cationiques sont dilués dans de l'eau de manière à obtenir une concentration de 0,131 g/l en PSC.
Préparation de la formulation ( Volume total de 200 ul ) : idem exemple précédent.
- BVSM Liaht cationicue 10 ua . 500 g morphine 10 ug BVSM Light cationique . Volume final 10 l en PBS 15mM.
Préparation des BVSM Les BVSM Light cationique sont dilués à 13,1 g/l PSC.
Préparation de la formulation (Volume total 200 ul) : 10 mg de morphine sont solubilisés dans 164,7 ul d'eau distillée 15,3 ul de biovecteur à 13,1 g/l et 20 l de PBS 150 mM. La solution est ensuite vortexée.
- PSC cationique 0,2 ua : . 500 mg morphine . 0,2 g PSC cationique Volume final 10 ul en PBS 15 mM Préparation des BVSM : les PSC cationiques sont dilués dans l'eau de manière à obtenir une concentration en PSC de 0,27 g/l Préparation de la formulation (Volume total 200 pl ) : 10 mg de morphine sont solubilisés 165,2 ul d'eau distillée, 14,8 ul de biovecteur à 0,27g/l en PSC et 20 pl de PBS 150mM.
- BVSM Light anioniaue (Phosphate) 2 uq . 500 pg morphine . 2 g BVSM Light anionique Volume final 10 ul en PBS 15mM Préparation des BVSM Les BVSM Light anioniques sont dilués au 10 ème dans l'eau de manière à obtenir une concentration en PSC de 0,61 g/l Préparation de la formulation (Volume total 200 pl): 10 mg de morphine sont solubilisés dans 114,4 ul d'eau, 65,6 ul de PSC à 0,61 g/l et 20 ul PBS 150ml.
Exemple 5 : Résultats.
Les activités antinociceptives des différentes préparations ont été quantifiées comme étant l'augmentation du temps de latence du retrait de la queue de la souris soumise à une stimulation nociceptive (faisceau lumineux dirigé sur l'extrémité de la queue).
Les temps de latence sont mesurés deux fois avant l'administration des formulations et à 15 mn, 30, 60, 90, 120, 240 minutes après administration. Chaque lot est composé de 10 souris Swiss de 29-31 grammes. Un seuil maximum de 6 ou 8 secondes de stimulation est fixé pour empêcher la brûlure des tissus. Lorsque l'animal n'a pas répondu à ce "cut-off", l'analgésie est considérée de 100 %.
Un effet antinociceptif de 15 % est considéré comme minimal pour être pris en considération.
1) Protocoles d'administration. a) Administration nasale (i.n.).
5 ul d'échantillon sont administrés à l'aide d'une pipette P20 dans chaque narine. Soit un volume total administré de 10 ul.
Pour l'essai Principe actif + NaDOC Administration de 2 * 5 ul de NaDOC 1% puis 2 à 3 minutes après, administration de 2 * 5 ul de principe actif. b) Administration sous cutanée (s.c.) 200 ul d'échantillon sont injectés par voie sous cutanée à chaque souris.
2) Résultats avec la Morphine.
i.e.chlorure, hydrate de 3-[3-(4,5-dichloro-2-nitro-phénylamino)-propyl]- 1-(3-triméthylsilanyl-propyl]-3-H-imidazol-1-ium.
Les nitroanilines cationiques monobenzéniques de formule (I) conformes à l'invention peuvent être facilement obtenues selon des méthodes généralement bien connues de l'état de la technique pour l'obtention des amines quaternisées, par exemple : - en un temps, par condensation d'une nitroaniline comportant un radical halogénoalkyle avec un composé porteur d'un radical amine tertiaire, ou par condensation d'une nitroaniline comportant un radical amine tertiaire avec un composé porteur d'un radical halogénoalkyle ; - ou en deux temps, par condensation d'une nitroaniline comportant un radical halogénoalkyle avec un composé porteur d'une amine secondaire, ou par condensation d'un ortho ou para halogéno-nitrobenzène avec une amino(disubstituée)alkyleamine, suivie d'une quaternisation avec un agent alkylant.
L'invention a aussi pour objet une composition de teinture des matières kératiniques, caractérisée par le fait qu'elle comprend, dans un milieu approprié pour la teinture, une quantité efficace d'au moins une nitroaniline cationique monobenzénique de formule (I) décrite ci-avant.
L'invention a également pour objet une composition pour la teinture directe des fibres kératiniques humaines, telles que les cheveux, caractérisée par le fait qu'elle comprend, dans un milieu approprié pour la teinture, une quantité efficace d'au moins une nitroaniline cationique monobenzénique telle que définie ci-avant par la formule (1).
L'invention a pour autre objet l'utilisation des nitroanilines cationiques monobenzéniques de formule (1), à titre de colorants directs, dans des, ou pour la préparation de, compositions tinctoriales pour matières kératiniques.
Le ou les nitroaniline(s) cationique (s) monobenzénique (s) de formule (I) conformes à l'invention et/ou le ou leurs sels d'addition avec un acide représentent de préférence de 0,005 à 12% en poids environ du poids total de la composition tinctoriale, et encore plus préférentiellement de 0,05 à 6% en poids environ de ce poids.
Les nitroanilines cationiques monobenzéniques de formule (I) peuvent également servir, dans les procédés bien connus de teinture d'oxydation, utilisant des colorants d'oxydation (précurseurs de colorants d'oxydation et éventuellement des coupleurs), à nuancer ou enrichir de reflets les teintures obtenues avec les colorants d'oxydation.
La composition tinctoriale selon l'invention peut encore contenir, pour élargir la palette de nuances et obtenir des teintes variées, outre les nitroanilines cationiques monobenzéniques de formule (1), d'autre (s) colorant(s) direct (s) classiquement utilisés, et notamment, des colorants nitrés benzéniques autres que les nitroanilines cationiques monobenzéniques de formule (1) selon la
présente invention et tels que les nitrophénylènediamines, les nitrodiphénylamines, les éthers de phénol nitrés ou les nitrophénols, des nitropyridines, des colorants anthraquinoniques, des colorants mono- ou diazoïques, triarylméthaniques, aziniques, acridiniques et xanthéniques, ou encore des colorants métallifères.
Le circuit d'amortissement précité permet à la fois d'assurer la protection du dispositif shunt contre les surtensions, et le filtrage d'un régulateur de décharge d'une batterie, d'où l'adaptation possible évoquée ci-dessus.
Le circuit peut donc être adapté en tant que module assurant deux fonctions (régulateur shunt des cellules solaires et régulateur de décharge des batteries) Contrairement au shunt de l'art antérieur qui nécessite 2 diodes de liaison avec le bus (D1 et D2 Fig.2), le shunt selon l'invention n'en exige qu'une (Do - Fig.4) pour la raison suivante.
En cas de panne de la diode en court-circuit, la capacité du bus (C sur Fig.2 ou Fig.4) est reliée au bus à travers l'inductance Lo. En contrôlant le courant dans l'inductance selon le système à cycle limite, le courant moyen dans l'inductance s' établit naturellement autour de zéro si le commutateur shunt SS1 - Fig.4 est actionné par la régulation (signal MEA) . Il suffit donc que le capteur de courant dans Lo sache mesurer un courant autour de zéro pour obtenir cet effet naturellement, c'est le cas en particulier avec un capteur de courant à effet Hall.
Dans le cas de panne en court-circuit de la diode Do, la section de panneau solaire (Is,Cs) fournit tout son courant si le shunt SS1 n'est pas sollicité par l'effet de la régulation, soit un courant moyen autour de zéro dont la valeur crête à crête correspond à l'hystérésis du cycle limite. En cas de fonctionnement du module complet (Fig.6) en déchargeur de batterie, cette panne n'affecte pas non plus le fonctionnement.
La topologie de la figure 4 est associée à un circuit de commande, représenté à la figure 5, qui permet de tenir compte de la self de sortie L0.
En effet, dans la topologie de la figure 2, l'impédance de sortie d'une section de cellules solaires telle que vue par le bus BUS est proche de zéro, et la capacité C du bus BUS est de ce fait directement chargée par le courant produit par la section de cellules solaires, d'où résulte l'augmentation linéaire de la tension V sur le bus. Lorsque cette tension atteint le seuil supérieur d'un comparateur à hystérésis, le shunt SS, est fermé, ce qui produit un déficit de courant sur le bus et une décroissance de la tension V jusqu'au seuil inférieur du comparateur à hystérésis, ce qui provoque de nouveau l'ouverture du commutateur shunt SS.
Avec le module de la figure 4, la self de sortie Lo a pour effet que le courant produit par la section de cellules solaires n'est pas directement disponible sur le bus dès que le commutateur shunt SS, est ouvert. L'établissement du courant est déterminé par la différence entre la tension sur C2 et la tension V aux bornes de C.
Si on néglige le rôle de Ls qui ne fait que contrôler le courant de crête en mode shunt, le problème au niveau de C2 est le même que dans le cas de la figure 2. C2 peut être porté à la tension de la section de cellules solaires en circuit ouvert qui est supérieure à la tension opérationnelle de fonctionnement à puissance maximale.
La figure 5 représente le circuit de commande associé au module de la figure 4. Les éléments (R17,INV.1) ajoutés par rapport à un circuit de commande connu en soi pour le module shunt de la figure 2 sont représentés en traits renforcés.
Comme le montre la figure 5, la tension V du bus divisée par un pont R10/R11 est comparée à la tension d'une diode Zener Z1. Cette comparaison est effectuée aux entrées de l'amplificateur opérationnel MEA. La sortie de MEA attaque L'entrée inverseuse du comparateur COMP1 à travers une résistance R On y ajoute la tension V (ILo) au point P commun à la self Le et à la diode de sortie en direct Do, à travers une résistance R17. La tension de référence V du shunt est appliquée à l'entrée non inverseuse de COMP1 à travers une résistance R14. La résistance Rlo étant montée en réaction, l'amplificateur COMP fonctionne en tout ou rien pour commander l'interrupteur shunt SS,, et à travers un inverseur logique INV, l'interrupteur Sl1.
De la sorte, les interrupteurs SS1 et S1l sont commandés en opposition.
La mesure du courant ILo introduite à travers la résistance R17 modifie la comparaison du comparateur à hystérésis et crée autour d'un point donné un cycle limité d'amplitude de courant, qui procure un fonctionnement plus stable du shunt de la figure 4, et qui diminue l'ondulation de la tension sur le bus.
On comprend que si on ne met en oeuvre la compensation à l'aide du courant ILo, le fonctionnement est toujours possible mais l'effet retardateur de Lo rend les performances moins satisfaisantes.
La commande de Sll permet de connecter C2 au bus à l'ouverture du commutateur shunt SS1. Si le module est utilisé uniquement en tant que shunt, on peut se dispenser de R'2 et C'2, et le filtre se réduit au seul condensateur C2.
Le fonctionnement du module shunt de la figure 4 tel que commandé par le courant de la figure 5 sera maintenant décrit plus en détail.
Pour une charge donnée sur le bus et si le réseau de cellules solaires présente No sections, n sections sont directement couplées au bus, No-n-1 sont shuntées (commutateur SSI fermé) et une section assure la régulation de la tension du bus par commande séquentielle du shunt. C'est le fonctionnement en régulation de cette section qui est maintenant décrit.
Les pâtes suivantes ont été préparées (tableau 16) : TABLEAU 16 Pâte préparée pour la détermination du caractère collant
Xylar.ase Dose, farine TXU/kg 980603 (xylanase purifiée 15,000 de Rohm) Témoin 0 XM1 15,000 N 2199 (Veron Special de 15,000 Rohm)
La pâte figurant sur le tableau 16 a donné les résultats de caractère collant indiqués sur le tableau 17.
TABLEAU 17 Résultats des mesures du caractère collant sur une pâte préparée avec de la xylanase purifiée de Rohm, un témoin, XM1, et la xylanase Veron Special de Rôhm
Xylanase TXU/kg de Temps de Caractère Augmentation farine levée, collant, de cara-ctère min g x s Collant, ~~~~~~~~~~~~~~~~~~ g x s 980603 15,000 10 7,22 2,22 980603 15, 000 45 10,15 4, 08 Témoin 0 10 5,00 0 Témoin 0 45 6,09 0 XM1 15,000 10 6,61 1,61 XM1 15,000 45 9,64 3,55 N 2199 15,000 10 8,57 3,57 N 2199 15,000 45 12,14 6,05
Les résultats sont représentés sur les figures 28,29 et 30.
L'augmentation de caractère collant au moyen de la xylanase XMl est inférieure à l'augmentation de caractère collant avec la xylanase purifiée de Rohm. L'augmentation de caractère collant obtenue au moyen de la xylanase non purifiée de Röhm est bien supérieure.
Exemple 5 Caractère collant de la pâte en fonction de l'endo--1,4- glucanase bactérienne Les résultats ci-après proviennent d'une expérience conçue pour étudier l'aptitude de l'endo-ss-1,4-glucanase bactérienne à conférer un caractère collant.
Enzymes 981102-1 (Xyl) correspond à une préparation purifiée de xylanase bactérienne de Rohm obtenue à partir du produit Veron Special. La préparation consiste en xylanasse pure et ne contient aucune endo-ss-1,4-glucanase (350 TXU/ml).