INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Comme on le verra dans la suite, le terminal TE est transparent aux échanges de commandes et réponses entre les cartes C1 et C2 et ne peut communiquer directement avec la deuxième carte C2, mais seulement par l'intermédiaire d'échanges de commandes et réponses entre la première carte C1 et le terminal TE. Le terminal TE ne supporte ainsi le protocole SIM Toolkit que dans le moyen 32-35 s'interfaçant avec la première carte C1, et aucun protocole SIM Toolkit n'est prévu directement entre le microcontrôleur 32 et le processeur 20 de la carte C2.
Comme montré à la figure 2, la préparation d'exécution d'un programme applicatif PA contenu dans la deuxième carte C2 comprend six étapes principales E1 à E6. Initialement, le procédé de pré-contrôle est déclenché à une étape EO soit manuellement en sollicitant une touche de validation prédéterminée sur le clavier du terminal TE ou en validant une directive "VALIDER INSERTION CARTE ADDITIONNELLE" affichée sur l'écran du terminal après avoir insérée la carte C2 dans le lecteur, soit automatiquement par le terminal TE en réponse à un message de présence de carte transmis par le lecteur distinct du terminal TE ou intégré à l'interface entrée-sortie 35, comme celui de la carte C1. Le terminal TE invite alors la première carte C1, la carte SIM, à interroger la deuxième carte C2.
Selon la réalisation illustrée à la figure 2, tout se passe au cours des étapes suivantes El à E5, comme si le terminal TE, en fait le microcontrôleur 32 et l'interface entrée-sortie 35, est transparent aux données échangées entre les deux cartes.
24 h après la transfection, les cellules sont soumises à la trypsine puis repiquées au 1/10 dans du milieu RPMI 1640 complet contenant 400 g/ml-1 de généticine (G418 sulfate, Life Technologies). Ce milieu sélectif est renouvelé tous les 3 à 4 jours. Après environ une semaine, des clones résistants au G418 sulfate commencent à apparaître.
Quand ces clones forment des colonies composées d'environ 1.103 cellules (visibles à l'#il nu), les cellules sont lavées avec 2 x 5 ml de PBS dépourvu en ions calcium et magnésium . Une goutte de 5 l de trypsine-EDTA lOmM est déposée sur des colonies cellulaires, pipetée plusieurs fois afin de décoller les cellules de la boîte. Chaque clone est aussitôt transféré dans une plaque de 24 puits contenant 1 ml de milieu sélectif. A 100% de confluence, elles sont repiquées dans une plaque de 6 puits dans 4 ml de milieu sélectif. La présence du gène de la Green Fluorescen Protein (GFP) est détectée au microscope à fluorescence (Axiovert 10, Zeiss, filtre d'excitation BP450-490, filtre de suppression LP520).
Parmi les clones cellulaires positifs, le clone intitulé H460MGFP a été sélectionné (Figure 1). Ce clone exprime la GFP avec une très forte intensité. La mise en culture de ce clone en milieu RPMI complet et sans pression de sélection pendant 90 jours (15 passages), montre une grande stabilité de l'expression du gène de la GFP.
II. Etude in vitro Les expériences ci-dessous ont été effectuées afin de déterminer si les cellules transfectées provenant de la lignée cellulaire H460MGFP, ont subi des altérations de leurs propriétés biologiques, par rapport aux cellules non transfectées provenant de la lignée cellulaire H460M.
1. Croissance cellulaire La croissance cellulaire est déterminée en ensemençant 6.104cellules dans un flacon de 25 cm2. De façon quotidienne, un flacon de culture est soumis à l'action de la trypsine et les cellules sont récupérées dans 2 x 5 ml de milieu RPMI 1640 complet. Les cellules sont centrifugées 5 minutes à 1200 rpm (C3-12, Jouan), puis le surnageant est aspiré. Le culot cellulaire est repris dans 1 à 5 ml de milieu RPMI 1640 complet et les cellules sont comptées à l'aide d'un hémocytomètre appelé la cellule de Malassez.
Le temps de doublement est déterminé sur la courbe de croissance (Figure 2) tracée à l'aide de ces données. Chaque point de la courbe représente la moyenne de trois expériences différentes et indépendantes.
Aucune différence n'est observée dans la morphologie cellulaire (données non montrées) ou dans les taux de prolifération cellulaire entre la lignée cellulaire parentale H460M et la lignée cellulaire H460MGFP. Le temps de doublement est de 18 à 24 heures pour les deux lignées cellulaires.
2. Invasion L'invasivité des cellules est déterminée par utilisation d'un système de Boyden modifié [16, 17], commercialisé sous le nom de Transwell (Coming Costar, réf. 3428).
a- Tampon et solutions Le mélange alcool-acide acétique 2% est composé de 98% (v/v) d'éthanol 95 et de 2% d'acide acétique.
La solution de Crystal-violet est constituée d'eau contenant 0,1% (p/v) de colorant Crystal-violet (Sigma). b- Le gel matriciel (Matrigel) Le gel matriciel, commercialisé sous le nom de Matrigel Basemont Membrane Matrix (Collaborative Research Product) est une préparation de membrane basale d'un sarcome de souris riche en protéines de la matrice extracellulaire. L'enrobage de la membrane par le gel matriciel est effectué sur de la glace avec du matériel froid (cônes, pipettes, ...) afin d'éviter une gélification trop rapide de celui-ci.
Le système de Boyden modifié, permettant d'étudier l'invasion cellulaire (Transwell, Corning Costar) a une membrane en polycarbonate de 24 mm, à pore de 8 m de diamètre, et est recouvert avec 0,1 g.mm-2 de gel matriciel (Becton Dickinson).
La plaque est placée à 37 C pendant 30 minutes, puis séchée stérilement sous hotte toute la nuit. Le gel matriciel est réhydraté durant lh à température ambiante avec 1 ml de RPMI 1640, puis la membrane est lavée deux fois avec 1 ml de ce milieu afin d'éliminer tout trace de gel matriciel non lié qui pourrait interférer avec les cellules. c- Test d'invasion 400 l d'une suspension cellulaire à 1.106 cellules.ml-1 de milieu RPMI 1640 à 0,1% de BSA et 2 mM de L-glutamine sont répartis de façon homogène sur la membrane. Le puits est rempli par 1,8 ml de milieu activé. Après 24h d'incubation à 37 C, le milieu du compartiment supérieur de la membrane est prélevé et les cellules sont fixées en plaçant le système de Boyden modifié (Transwell) dans le bain alcool- acide acétique 2% pendant 15minutes. Les cellules non invasives du compartiment supérieur ainsi que le gel matriciel sont délicatement retirés à l'aide d'un coton fixé sur un cure dent. Le système de Boyden modifié (Transwell) est ensuite rincé à l'eau avant d'être séché à l'air libre. Les cellules invasives sur la surface inférieure de la membrane sont colorées. La coloration est réalisée en plaçant le système de Boyden modifié
(Transwell) dans une solution de colorant Crystal-violet pendant 30 minutes à lh. Celuici est lavé 2 à 3 fois à l'eau pendant 5 minutes. La surface supérieure de la membrane est à nouveau délicatement nettoyée à l'aide d'un coton tige jusqu'à ce que toute trace de colorant ait disparue.
Le nombre de cellules invasives est déterminé sous microscopie en lumière blanche.
La capacité d'invasion à travers le gel matriciel est la même pour les deux lignées cellulaires H460M et H460MGFP.
3. Migration La migration des cellules est effectuée de la même manière que le test d'invasion hormis la présence de Matrigel.
Nommer un objet d'une classe donnée, c'est choisir, conformément aux liens de nommage possibles, ce que l'homme du métier appelle le plus souvent son Full Distinguished Name FDN, c'est-à-dire choisir son supérieur dans l'arbre de nommage et choisir un nom que l'homme du métier appelle le plus souvent Distinguished Name DN vis-à-vis de ce supérieur. Le nommage des objets fait appel à un arbre de nommage. Chaque objet se situe dans l'arbre de nommage par rapport à un supérieur dont il est le subordonné. Cette relation entre subordonnée et supérieure est spécifiée au niveau des classes par un lien de nommage (name binding en anglais). Lors de la création d'un objet, il faut choisir un seul lien de nommage parmi les liens de nommage possibles pour les objets de cette classe. Plusieurs liens de nommage peuvent être définis pour une même classe, mais un objet ne peut avoir qu'un seul supérieur immédiat.
En d'autres termes, chaque instance de l'arbre est identifié par un FDN et un DN. Le nom DN est un couple qui permet l'identification unique d'une instance de l'arbre de contenance par rapport à une instance père. Le nom FDN d'une instance est une suite de noms DN montrant le chemin de la racine jusque cette instance.
Un arbre de contenance est un arbre constitué d'instances de classes. Actuellement, il est possible de construire une requête de consultation ou de mise à jour de l'arbre de contenance et de l'exécuter.
Conformément au modèle GDMO, une classe peut être subordonnée à plusieurs. classes différentes et à plusieurs niveaux de l'arbre de classes. Ce type de subordination des classes permet la définition d'opérateurs de manipulations sur des ensembles d'objets, à savoir l'opérateur d'union, l'opérateur de différence entre classes.
Le problème est qu'une requête ne donne pas la possibilité d'appliquer l'opérateur d'union, l'opérateur de différence ou l'opérateur d'intersection entre instances d'une même classe mais située à des niveaux différents de l'arbre de classe.
La solution a pour objet un procédé de manipulation, dans un système informatique, d'au moins un objet inclus dans au moins un arbre de contenance de type hiérarchique inclus dans au moins une machine se reposant sur le protocole de gestion de type CMIP, un objet d'un arbre se distinguant des autres objets par l'intermédiaire d'au moins un attribut distinctif DN de la classe respective, caractérisé en ce qu'il consiste - à interroger un ensemble d'objets par l'intermédiaire d'une requête, l'interrogation consistant à regrouper un ensemble de classes et instances associées réparties dans l'arbre de classes - à mémoriser l'attribut distinctif respectif de chaque instance du regroupement - et à appliquer ces attributs à un opérateur propre à unifier, à différencier ou à effectuer une intersection entre classes réparties dans l'arbre de classes.
La solution peut s'appliquer à un système informatique distribué de type hétérogène. Dans l'exemple illustré, ce système inclut au moins un système gestionnaire et au moins une machine distante associée à un protocole de gestion. Le système de gestion peut être compris dans une station de travail. Dans l'exemple, on a représenté une machine distante. Une machine comprend des objets manipulables. Une manipulation inclut des commandes connues de l'homme du métier. Le protocole de gestion de la machine peut- être indifféremment un protocole de type SNMP, CMIS/CMIP ou DSAC/AEP. Dans notre exemple, le système supporte un protocole de type CMIS conforme au modèle OSI (Common Managment Information service), connu de l'homme du métier. Cette application peut être lancée par l'intermédiaire d'un utilisateur de ce système de gestion. Un utilisateur peut être un administrateur.
La séquence SEQ ID N 16 a une longueur de 2764 nucléotides.
Cette séquence comprend un cadre ouvert de lecture (ORF) partiel allant du nucléotide en position 3 au nucléotide en position 1220 de la séquence SEQ ID N 16.
Les analyses d'expression du transcrit de séquence SEQ ID N 16 ont été réalisées par RT PCR, comme décrit dans l'Exemple 1. Ces analyses effectuées à partir d'ARN polyA+de différents tissus ont permis de montrer que le gène GS915231 était exprimé dans le cerveau foetal.
De plus, une analyse de l'expression du transcrit par Northern blot, selon le protocole décrit de l'Exemple 1, à l'aide de la sonde de séquence SEQ ID N 65, a révélé la présence de transcrits dans le blot commercialisé par la Société Clontech (Ref. N 7759-1).
La taille des transcrits détectés avec la sonde de séquence SEQ ID N 65 est respectivement de : - 1,3 kb, 2 kb, 4 kb, 4,4 kb et 7,5 kb dans le coeur,et le muscle squelettique : - 1,3 kb, 2 kb, 4 kb et 4,4 kb dans le foie et le rein ; - 1,3 kb, 2 kb, 4,4 kb et 7,5 kb dans le cerveau ; - 1,3 kb, 2 kb et 4,4 kb dans le pancréas.
Polypeptide codé par l'acide nucléique de séquence SEQ ID NO 16 Le cadre ouvert de lecture partiel de la séquence d'acides nucléiques SEQ ID N 16 code potentiellement pour un polypeptide de 406 aminoacides de longueur constituant la séquence SEQ ID N 81.
Homologies observées au niveau de la séquence protéique : # 51% d'homologie avec des séquences de Genpept: (traduction de Genbank v110 et 111, dernière remise à jour le 7 mai 1999): gi :2731377 estla traduction protéique de la
séquence gb#AAB93456.1# (U28739) similaire à l'alcool déshydrogénase/ribitol déshydrogénase de C. elegans et des séquences de SP-TrEMBL (SP-TrEMBL, version 7, novembre 1998):Q09979 sur 401 aa (position 1-401 aa).
# 30% d'homologie sur 164 aa (position 47-205 aa) avec les séquences de Protein Data Bank:: gi#1827713# correspondant à la protéine 1AHI#A Chain A, 7 Alpha- Hydroxysteroid Dehydrogenase Complexed With Nadh And 7-Oxo Glycochenodeoxycholic Acid et avec gi#1827714# correspondant à la protéine 1AHIIB Chain B, 7 Alpha- Hydroxysteroid Dehydrogenase Complexed With Nadh And 7-Oxo Glycochenodeoxycholic Acid et avec gi#1827715# correspondant à la protéine 1AHH#A Chain A, 7 Alpha- Hydroxysteroid Dehydrogenase Complexed With Nad+ et avec gi#1827716# correspondant à la protéine 1AHHIB Chain B, 7 Alpha-Hydroxysteroid Dehydrogenase Complexed With Nad+ et avec gi#1943533# correspondant à la protéine 1FMC#A Chain A, 7-Alpha-Hydroxysteroid Dehydrogenase Complex With Nadh And 7-Oxo Glycochenodeoxycholic Acid et avec gi#1943534# correspondant à la protéine 1FMC#B Chain B, 7-Alpha- Hydroxysteroid Dehydrogenase Complex With Nadh And 7- Oxo Glycochenodeoxycholic Acid # 29% d'homologie sur 131 aa (position 53-183 aa) avec des séquences de Protein Data Bank: gil26244971 correspondant à la protéine Cis-Biphenyl-2,3-Dihydrodiol- 2,3-Dehydrogenase de Pseudomonas Sp. Lb400
# 27% d'homologie sur 194 aa (position 3-196 aa) avec des séquences de la base PIR: (SEQUENCES PIR NON REDONDANTES, VERSION 57)- PIR. (Séquences PIR non redondantes, version 57)#D69930# correspondant à la protéine 3-oxoacyl- acyl-carrier protein reductase homolog yoxD de - Bacillus subtilis et avec des séquences de Swissprot (version 36, dernière remise à jour du 3 mai 1999): sp#P14802# correspondant à la protéine YOXD~BACSU - oxidoreductase hypothétique présente dans la région RTP-PELB (ORF238) # 52% d'homologie sur 44 aa (position 353-396 aa) avec des séquences de PRODOM: (domaines homologues détectés dans Swissprot, version 34. 2, novembre 1997) (homologous domains detected in Swissprot (version 36, dernière remise à jour du 3 mai 1999)). 2675 p34.2 (11) NLTP(5) DHB4(3) PX18 (2) correspondant à la protéine LIPID-TRANSFER STEROL CARRIER SCP-2 NONSPECIFIC PRECURSOR ESTRADIOL BETA- DEHYDROGENASE17-BETA-HYDROXYSTEROID # 27% d'homologie sur 167 aa (position 233-399 aa) avec des séquences de Swissprot (version 36, dernière remise à jour du 3 mai 1999) : sp#P51659# correspondant à la protéine DHB4 HUMAN ESTRADIOL 17 BETA- DEHYDROGENASE 4 (EC 1.1.1.62) (17-BETA-HSD 4) (17-BETA-HYDROXYSTEROID DEHYDROGENASE 4) Fonction putative :
L'ORF de 406 AA possède des homologies avec différentes protéines enzymatiques putatives impliquées dans les mécanismes de deshydrogénation des sterols de plusieurs organismes : homme, souris, E. coli, S. cerevisiae, C. elegans. De plus nous avons pu mettre en évidence une homologie avec une séquence de la protéine SCP-2 impliquée dans le transport intracellulaire des lipides. De ce fait, le gène GS15231 code pour une protéine d'intérêt de par sa fonction possible dans le défaut de trafic intracellulaire du cholestérol chez les patients Tangier/FHD, ce qui renforce l'intérêt de l'étude du gène GS15231.
*De plus le gène GS15231 est par sa localisation un gène candidat positionnel pour l'étude et la caractérisation du défaut génétique observé dans la maladie de Tangier ou le défaut familial en HDL.
Gène GS915528.
Acide(s) nucléique(s) Il a été isolé selon l'invention un ARN messager correspondant à un transcrit du gène désigné ici sous le n GS915528.
La première séquence nucléique de l'ADNc correspondant à ce transcrit constitue la séquence SEQ ID N 43.
La séquence SEQ ID N 43 a une longueur de 355 nucléotides.' Aucune identité de séquence n'a été retrouvée lors d'une recherche dans la base de données GenBank (Version 110).
La seconde séquence nucléique de l'ADNc correspondant à ce transcrit constitue la séquence SEQ ID N 44.
La séquence SEQ ID N 44 a une longueur de 447 nucléotides.
La troisième séquence nucléique de l'ADNc correspondant à ce transcrit constitue la séquence SEQ ID N 45.
La séquence SEQ ID N 45 a une longueur de 2324 nucléotides.
Cette séquence comprend un cadre ouvert de lecture (ORF) partiel allant du nucléotide en position 3 au nucléotide en position 611 de la séquence SEQ ID N 45.
Homologies observées au niveau de la séquence nucléotidique : (307) # 99% d'homologie sur 514 pb (position 1508-2021 pb) avec des séquences de GenBank: gil34835201 correspondant au clone ZB95F02 d'ADNc (Homo sapiens) dont la séquence est complète.
# 98% d'homologie sur 170 pb (position 862-1031 pb) avec des séquences de GenBank: gi#1184671#( région 3'UTR partielle de l'ARN m, codant pour la protéine inductible du virus de la maladie de newcastle) Les analyses d'expression du transcrit de séquence SEQ ID N 45 ont été réalisées par RT PCR, comme décrit dans l'Exemple 1. Ces analyses effectuées à partir d'ARN polyA+de différents tissus ont permis de montrer que le gène GS98601 était exprimé dans le cerveau, le placenta et l'utérus.
Polypeptide codé par l'acide nucléique de séquence SEQ ID NO 45 Le cadre ouvert de lecture de la troisième séquence d'acides nucléiques SEQ ID N 45 code potentiellement pour un polypeptide de 203 aminoacides de longueur constituant la séquence SEQ ID N 99.
Homologies observées au niveau de la séquence protéique (307): 34% d'homologie sur 180 aa (position 3-182 aa) avec des séquences de Genpept : (traduction de Genbank v110 et 111, dernière remise à jour le 7 mai 1999): gi#3878571#gnl#PID#e1348103 (Z46381)- faible similarité avec la protéine de levure Ysy6 - (PIR: (SEQUENCES PIR NON REDONDANTES, VERSION 57) numéro d'accès JQ0912);EST d'ADNc EMBL:D32318 provient de ce gène ; EST d'ADNc EMBL:D33688 provient de ce gène EST d'ADNc EMBL:D34664 provient de ce gène ; EST d'ADNc EMBLD36574 provient de ce gène et des séquences de SP-TrEMBL (SPTrEMBL, version 7, novembre 1998): sp#Q21453# correspondant à la protéine M01 F1.4 de C elegans
Fonction putative : Ce gène est un candidat par sa localisation chromosomique pour les pathologies Tangier/FHD.
Gène GS94852.
Acide(s) nucléique(s) Il a été isolé selon l'invention un ARN messager correspondant à un transcrit du gène désigné ici sous le n GS94852. Deux séquences nucléiques représentatives de ce transcrit ont été déterminées.
Un autre objet de l'invention concerne un procédé pour l'amplification d'un acide nucléique selon l'invention, et plus particulièrement un acide nucléique de séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 55 ou un fragment ou un variant de celui-ci contenu dans un chantillon, ledit procédé comprenant les étapes de : a) mettre en contact l'échantillon dans lequel la présence de l'acide nucléique cible est suspectée avec une paire d'amorces nucléotidiques dont la position d'hybridation est localisée respectivement du côté 5' et du côté 3' de la région de l'acide nucléique cible dont l'amplification est recherchée, en présence des réactifs nécessaires à la réaction d'amplification ; et b) détection des acides nucléiques amplifiés.
Pour mettre en oeuvre le procédé d'amplification tel que défini cidessus, on aura avantageusement recours à l'une quelconque des amorces nucléotidiques décrites ci-avant.
L'invention a en outre pour objet un nécessaire ou kit pour l'amplification d'un acide nucléique selon l'invention, et plus particulièrement tout ou partie d'un acide nucléique de séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 55, ledit nécessaire ou kit comprenant : a) un couple d'amorces nucléotidiques conformes à l'invention, dont la position d'hybridation est localisée respectivement du côté 5' et du côté 3' de l'acide nucléique cible dont l'amplification est recherchée ; b) le cas échéant, les réactifs nécessaires à la réaction d'amplification.
Un tel nécessaire ou kit d'amplification comprendra avantageusement au moins une paire d'amorces nucléotidiques telles que décrites ci-dessus.
Vecteurs recombinants L'invention est également relative à un vecteur recombinant comprenant un acide nucléique selon l'invention.
Avantageusement, un tel vecteur recombinant comprendra un acide nucléique choisi parmi les acides nucléiques suivants : a) un acide nucléique codant pour une protéine ayant une séquence en acides aminés choisie dans le groupe des séquences SEQ ID N 39 à SEQ ID N 76 ou un fragment peptidique ou un variant de cette dernière ; b) un acide nucléique comprenant un polynucléotide choisi dans le groupe constitué des séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 55, ou un fragment ou un variant de ce dernier ; c) un acide nucléique ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec un acide nucléique choisi dans le groupe constitué des séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 55 ou un fragment ou un variant de ce dernier ;
d) un acide nucléique hybridant, dans des conditions d'hybridation de forte stringence, avec un acide nucléique de séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 55, ou un fragment ou un variant de ce dernier.
Par " vecteur " au sens de la présente invention on entendra une molécule d'ADN ou d'ARN circulaire ou linéaire qui est indifféremment sous forme de simple brin ou double brin.
Selon un premier mode de réalisation, un vecteur recombinant selon l'invention est utilisé afin d'amplifier l'acide nucléique qui y est inséré après transformation ou transfection de l'hôte cellulaire désiré.
Selon un second mode de réalisation, il s'agit de vecteurs d'expression comprenant, outre un acide nucléique conforme à l'invention, des séquences régulatrices permettant d'en diriger la transcription et/ou la traduction.
Selon un mode de réalisation avantageux, un vecteur recombinant selon l'invention comprendra notamment les éléments suivants : (1) des éléments de régulation de l'expression de l'acide nucléique à insérer, tels que des promoteurs et des enhanceurs ; (2) la séquence codante comprise dans l'acide nucléique conforme à l'invention à insérer dans un tel vecteur, ladite séquence codante étant placée en phase avec les signaux de régulation décrits aux (1); et (3) des séquences d'initiation et d'arrêt de la transcription appropriées.
En outre, les vecteurs recombinants selon l'invention pourront inclure une ou plusieurs origines de réplication chez les hôtes cellulaires dans lesquels leur amplification ou leur expression est recherchée, des marqueurs ou des marqueurs de sélection.
A titre d'exemples, les promoteurs bactériens pourront être les promoteurs Lacl, LacZ, les promoteurs de l'ARN polymérase du bactériophage T3 ou T7, les promoteurs PR, ou PL du phage lambda.
Les promoteurs pour cellules eucaryotes comprendront le promoteur de la thymidine kinase du virus HSV ou encore le promoteur de la métallothionéine-L de souris.
De manière générale, pour le choix d'un promoteur adapté, l'homme du métier pourra avantageusement se référer à l'ouvrage de SAMBROOK et al. (1989) précité ou encore aux techniques décrites par FULLER état. (1996).
Les vecteurs bactériens préférés selon l'invention sont par exemple les vecteurs pBR322(ATCC37017) ou encore des vecteurs tels que pAA223-3 (Pharmacia, Uppsala, Suède), et pGEM1 (Promega Biotech, Madison, Wl, ETATS-UNIS).
7) obtenir l'entier i associé à x" et calculer c=i+f modulo r.