INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Comme il ressort de la figure 1, le carter 6 du convertisseur catalytique 7 ne touche pas le carter 1 de pot d'échappement. Bien plus, il existe un espace d'isolation 15 entre le carter 6 de convertisseur et la partie supérieure 3 de carter, dans lequel se trouvent des gaz d'échappement lors du fonctionnement. Ces gaz se trouvant dans l'espace d'isolation 15 servent simultanément d'isolateur, avec lequel un transfert thermique est réduit entre le convertisseur catalytique 7 et le carter 1 de pot d'échappement. il va de soi qu'en variante ou en plus des gaz se trouvant dans l'espace d'isolation 15, des matières isolantes peuvent être prévues dans l'espace d'isolation 15, telles que des corps en céramique réduisant une conduction thermique et une convection thermique, et/ou une couche de protection isolante, par exemple en métal, réduisant le rayonnement thermique. Au niveau de l'extrémité de gauche à la figure 1 du carter 6 du convertisseur, celui-ci est ouvert, de sorte que des gaz d'échappement peuvent sortir à cet endroit par les orifices frontaux 16 des canaux 11.
La figure 2 représente un mode de réalisation d'un convertisseur catalytique 7. Le convertisseur catalytique 7 comporte un carter 6 de forme sensiblement demicylindrique, lequel comporte une paroi de fond 17 (qui peut également être formée par la cloison de séparation 5) sensiblement rectangulaire réalisée en tant que surface de base, à laquelle se raccorde une partie 18 de carter ayant sensiblement la forme d'une demi-coque.
Plusieurs couches de tôles 19 revêtues d'un matériau catalytique sont disposées à l'intérieur du carter 6 de convertisseur. Dans l'exemple représenté ici, les couches de tôles 19 sont constituées de couches individuelles de tôles lisses et de couches de tôles ondulées disposées alternativement, qui forment en commun une pluralité de canaux 11 pouvant être traversés par les gaz d'échappement. Il convient de noter que le revêtement peut être appliqué sur les couches de tôles 19, soit dans un processus continu déjà avant toutes les autres phases de traitement, soit en commun après l'empilement des couches de tôles 19.
Le trajet des gaz d'échappement à travers le convertisseur catalytique 7, représenté à la figure 2 au moyen de la flèche 8, correspond à celui représenté à la figure 1.
Des gaz d'échappement à épurer entrent dans le carter 6 de convertisseur dans la zone de la paroi frontale 10, et arrivent à partir de là dans les canaux 11. Après l'épuration catalytique, les gaz d'échappement épurés ressortent par les orifices frontaux 16. Les gaz d'échappement peuvent également circuler en sens inverse, dans ce cas le convertisseur atteint plus rapidement sa température nécessaire à la conversion, ce qui est souhaitable, il devient cependant également plus chaud en fonctionnement continu, ce qui peut être indésirable.
Cela doit être pris en considération lors du choix du sens de circulation.
Le carter 6 de convertisseur comporte un rebord 20 qui s'étend de chaque côté de la paroi de fond 17. Celuici sert à la fixation sûre du convertisseur catalytique 7 sur la cloison de séparation 5. La fixation peut être prévue de façon amovible ou inamovible. Le rebord 20 peut être fixé par soudage, brasage, rivetage ou d'une autre manière sur la cloison de séparation 5.
Alors que la figure 2 représente un convertisseur catalytique 7 de section transversale sensiblement demicirculaire, la figure 3 illustre un convertisseur catalytique 7 de section transversale sensiblement rectangulaire. Aussi bien le corps alvéolaire 12 représenté à la figure 2 que le corps alvéolaire 12 représenté en coupe transversale à la figure 3 comportent des couches de tôles 19, qui à la figure 3 sont agencées en tant que couches de tôles 19 enserrées s'étendant dans la direction longitudinale du carter 1 de pot d'échappement au niveau des extrémités gauche et droite.
Le produit d'amplification obtenu correspond à la séquence codant pour la protéine de capside du LMV, dans laquelle : - la région codant pour la séquence peptidique N-terminale MVDAKLDAG, qui comprend le motif tripeptidique DAG, nécessaire à la transmission par les pucerons, a été remplacée par une séquence codant pour la séquence peptidique MVTG ; - la région 3' non codante a été délétée des 195 pb précédant le polyA, et ne comprend plus que les 13 pb après le codon stop de la séquence codante.
Le produit PCR a été cloné dans un vecteur intermédiaire de clonage pour constituer une cassette d'expression, dans laquelle la séquence codante de la protéine capside du LMV est sous contrôle du leader #' de traduction du TMV [GALLIE et al., Nucleic Acid Research
15 : 3257-3273 (1987) ], du promoteur constitutif 35S dupliqué de pCa2 [(KAY et al., Science 236 :1299-1302 (1987)] et du terminateur de la nopaline synthase (tNOS) de pBI101 (CLONTECH). Après vérification de la séquence du produit d'amplification et des éléments de contrôle (enhancer #', promoteur, et terminateur), la cassette d'expression a été transférée dans le vecteur binaire pBBNPTII. Ce plasmide dérive de pBBRlMCS-2 [KOVACH et al., Gene 166 :175-176 (1995) ]. Il possède les frontières de T-DNA de pDHB3 et la cassette pNOS-NPTII-TNOS de pKYLX71-35S2 [MAITI et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 : 6110-6114 (1993)].
Le vecteur obtenu, dénommé pBB-NPTII-CP*(7) est représenté sur la figure 1.
Légende de la figure 1 : - MOB : gène nécessaire pour la mobilisation du plasmide ; - Kan : gène (TnphoA) conférant la résistance bactérienne à la kanamycine ; - LB : frontière gauche du T-DNA ; - pNOS/NPTII/tNOS : gène de la néomycine phosphotransférase sous contrôle des séquence promoteur et terminateur de la nopaline synthase ; - PE-35S : promoteur 35S du CaMV (cauliflower mosaic virus) dupliqué ; - CP* : gène de capside du LMV modifié ; - tNOS : terminateur de la nopaline synthase ; - RB : frontière droite du T-DNA ; - REP : gène nécessaire pour la réplication du plasmide.
EXEMPLE 2 : OBTENTION DE PLANTES TRANSGÉNIQUES TRANSFORMÉES PAR LE GÈNE DE CAPSIDE DE LMV MODIFIÉ Introduction du gène dans Agrobacterium et transformation du tabac : Le plasmide binaire pBB-NPTII-CP*(7) a été introduit par électroporation dans la souche désarmée d'Agrobacterium tumefaciens C58pGV2260 [DEBLAERE et al.,
Nucleic Acid Research 13 : 4777-4788 (1985) ]. La transformation du tabac Xanthi XHFD8 [BOURGIN, Mol gen Genet 161 : 225-230 (1978) ] a été réalisée en utilisant des protocoles de transformation et de régénération standard [DINANT et al., European Journal of Plant Pathology 104 : 377-382 (1998)].
L'insertion du gène CP délété a été vérifiée par PCR, à partir d'ADN isolé des plantes transformées, en utilisant les amorces décrites à l'exemple 1 cidessus.
EXEMPLE 3 : PROTECTION HÉTÉROLOGUE CONFÉRÉE PAR LE GÈNE DE CAPSIDE DE LMV MODIFIÉ Des plants de tabac de la variété Xanthi XHFD8 ont été transformés selon le protocole décrit à l'exemple 2 ci-dessus : soit avec le vecteur pBB-NPTII-CP*(7) portant le gène de capside de LMV modifié décrit à l'exemple 1 ; - soit avec le vecteur pKYLMVCP portant le gène de capside de LMV complet.
Les transformants primaires ainsi obtenus ont été bouturés, et environ 15 boutures par transformant ont été acclimatées simultanément en serre afin d'être utilisées pour des tests de résistance au PVY.
Les plantes ont été inoculées, 6 semaines après acclimatation (stade 4 feuilles bien développées) avec la souche nécrotique : Nysa de PVY [TORDO et al., J. Gen Virol. 76 : 939-949 (1995) ] qui produit des symptômes systémiques, se manifestant par des nécroses annulaires typiques, au bout de 10 jours. Des plantes témoin (soit non transformées, soit transformées, mais ne portant pas de séquences d'origine virales (témoin de transformation) ) ont été inoculées de la même manière.
L'inoculation a été réalisée mécaniquement, en frottant une feuille préalablement saupoudrée de carborundum avec un jus de plante obtenu à partir d'un
broyat de plantes infectées, dilué au 1/250ème. Cette dilution produit 100% d'infection chez les plantes témoin.
L'apparition des symptômes a été surveillée quotidiennement pendant 30 jours après l'inoculation, et à intervalles plus espacés par la suite, pendant 2 mois après inoculation.
Deux tests ELISA ont été réalisés, 14 et 21 jours après inoculation, à l'aide d'un anticorps dirigé contre le PVY (sérum polyclonal anti-PVY). Ce sérum reconnaît toutes les souches de PVY pour vérifier l'absence d'accumulation virale chez les plantes ne présentant pas de symptômes.
Les résultats de ces expérimentations sont illustrés dans le tableau I ci-dessous .
- La figure 5 représente une comparaison de l'effet de l'administration de 500 ug de morphine par voie nasale seule ou en présence de BVSM Light anionique à une dose de 2 ug.
- La figure 6 représente une comparaison de l'effet antinociceptif de 500 ug de morphine seule par voie sous cutanée avec l'administration de morphine 500 ug en présence de BVSM Light cationique 2 ug par voie nasale.
- La figure 7 représente l'effet d'un agent perméabilisant de la muqueuse nasale sur l'activité biologique de la morphine. Comparaison de l'effet de l'administration de 500 ug de morphine avec 1 % de NaDoc avec l'administration de morphine 500 ug en présence de BVSM Light cationique 2 ug.
- Les figures 8 et 9 représentent une comparaison des aires sous courbes des figures précédentes.
- La figure 10 est une comparaison de l'administration intra nasale de 100 ug de DAGO, seul et en présence de BVSM Light cationique 2 ug.
- La figure 11 est une comparaison de l'administration de 100 ug de DAGO par voie sous cutanée et en présence de BVSM Light cationique 2 ug par voie intra nasale.
- La figure 12 représente l'effet d'un agent perméabilisant sur l'administration intra-nasale de 100 ug de DAGO.
- La figure 13 représente l'effet d'un agent perméabilisant et du BVSM Light cationique 2 pg sur l'administration intra-nasale de 100 ug de DAGO.
- La figure 14 représente une comparaison de l'administration de 100 ug de DAGO en présence de BVSM Light cationique 2 ug par voie nasale avec l'administration de 0,05 ug de DAGO par voie ICV.
- La figure 15 représente une comparaison des aires sous courbes des graphes précédents (14,13,12,11,10) - La figure 16 représente l'effet de l'administration de 500 zg de morphine par voie nasale et l'administration différée de 2 g de BVSM Light cationique.
- La figure 17 représente les aires sous courbe de l'administration différée de 500 g de morphine par voie nasale puis de 2 g de BVSM Light cationique comparée à l'administration simultanée des deux, l'administration de la morphine seule par voie nasale et sous-cutanée, l'administration de la morphine avec 1 % de NaDoc par voie nasale.
Exemple 1 : Etude du temps de résidence des BVSM dans la cavité nasale humaine.
1) Préparation d'une formulation radiomarpuée (indium 111) de BVSM liaht cationioues.
Une solution 111InCl3 (Cisbio, France) à 370 MBq/ml est mélangée à une solution InC13 (Fluka, France) (InC13 15 mM, citrate de sodium 2mM, pH6,0). Cette solution est ajoutée à une suspension de BVSM correspondant à l'exemple 3. Ainsi la suspension finale possède les caractéristiques suivantes BVSM 15mg/ml ; InCl3 0,3 mM ; Citrate de sodium lmM, pH 6,0.
La concentration d'Indium libre est déterminée sur un compteur gamma après dilution au 1/10 en tampon citrate lmM pH 6,0 et ultrafiltration sur microcon 100 Kd(Amicon).
La suspension ainsi préparée est stérilisée par filtration (0,2 Wm) conservé à 40C jusqu'à l'administration. Pour l'administration, 120 pl de suspension sont introduits dans des monosprays (Pfeiffer, UK) permettant l'administration de 100 pl/spray.
Les parties de plante utilisées dans les exemples ci-après sont données à titre purement indicatif, les extraits objets de la présente invention pouvant être réalisés à partir de toutes les parties accessibles des plantes indiquées précédemment.
Exemple 1 Des écorces du tronc d'Eperua falcata sont concassées puis finement broyées au broyeur à couteaux.
Dans un réacteur muni d'un agitateur, on introduit 3 litres d'eau distillée et on réalise ensuite successivement les opérations suivantes consistant à : - ajouter 300 g d'écorce broyée dans le réacteur, - extraire sous agitation pendant 1 heure à ébullition, - refroidir à température ambiante, - éliminer l'insoluble par centrifugation ou filtration, - filtrer le surnageant jusqu'à une porosité d'environ 0,45 um, - recueillir le filtrat, - extraire le résidu dans les mêmes conditions opératoires par 2 litres d'eau distillée et opérer comme précédemment, - après détermination de la teneur en matière sèche, ajouter en fonction des extraits aqueux obtenus, un adjuvant de type maltodextrine de manière à obtenir 2/3 d'adjuvant pour 1/3 de matière sèche extraite, - à déshydrater la solution obtenue par atomisation ou par tout autre technique connue de l'homme du métier (lyophilisation, séchage en étuve etc...).
Le rendement total en extrait sec de ce procédé est de 15 % en poids par rapport aux écorces.
Exemple 2 Des écorces du tronc d'Inga bourgoni sont concassées puis finement broyées au broyeur à couteaux.
Dans un réacteur muni d'un agitateur, on introduit 3 litres d'alcool éthylique à 50 % et on réalise ensuite successivement les opérations suivantes consistant à : - ajouter 300 g d'écorce broyée dans le réacteur, - extraire sous agitation pendant @ heure à chaud (reflux), - refroidir à température ambiante, - éliminer l'insoluble par filtration, - filtrer le surnageant jusqu'à une porosité d'environ 0,45 m, - recueillir le filtrat, - extraire le résidu dans les mêmes conditions opératoires par 1,5 litre d'éthanol à 50% et opérer comme précédemment, - à évaporer sous vide la phase alcoolique des deux filtrats, - après centrifugation et détermination de la teneur en matière sèche, ajouter si besoin aux phases aqueuses résultantes l'adjuvant dans les mêmes proportions que celles mentionnées dans l'Exemple 1, - déshydrater si nécessaire la solution selon les techniques habituelles.
Le rendement total en extrait sec de ce procédé est de 13,8 % en poids par rapport aux écorces.
Exemple 3 Des écorces de racines de Byrsonima verbascifolia sont concassées puis finement broyées au broyeur à couteaux.
Dans un réacteur muni d'un agitateur, on introduit 3 litres d'alcool méthylique à 80 % et on réalise ensuite successivement les opérations suivantes consistant à : - ajouter 300 g d'écorce broyée dans le réacteur, - extraire sous agitation pendant 1 heure à chaud (reflux), - refroidir à température ambiante, - éliminer l'insoluble par filtration, - filtrer le surnageant jusqu'à une porosité d'environ 0,45 m, - recueillir le filtrat, - extraire le résidu dans les mêmes conditions opératoires par 1,5 litre d'alcool méthylique à 80 % et opérer comme précédemment, - à évaporer sous vide la phase méthanolique des deux filtrats, - après centrifugation et détermination de la teneur en matière sèche, ajouter aux phases aqueuses résultantes l'adjuvant dans les mêmes proportions que celles mentionnées dans l'Exemple 1,
- déshydrater si nécessaire la solution selon les techniques habituelles.
Le rendement total en extrait de ce procédé est de 17,4 % en poids par rapport aux écorces.
Exemple 4 Des racines d'Astrocaryum vulgare sont concassées puis finement broyées.
Dans un réacteur muni d'un agitateur, on introduit 3 litres d'éthanol absolu et on réalise ensuite successivement les opérations suivantes consistant à : - ajouter 300 g de racines broyées d'Astrocaryum vulgare dans le réacteur, - extraire sous agitation pendant 1 heure à chaud (reflux), - refroidir à température ambiante, - éliminer l'insoluble par filtration, - filtrer le surnageant jusqu'à une porosité d'environ 0,45 m, - recueillir le filtrat correspondant à l'extrait 1, - extraire le résidu dans les mêmes conditions opératoires par 3 litres d'éthanol et opérer comme précédemment pour obtenir l'extrait 2, - évaporer la phase éthanolique des deux filtrats sous vide à 40 C, - éliminer les traces de solvant par séchage des extraits dans une étuve ventilée à 40-50 C.
On obtient ainsi 7,15 grammes d'extrait Elet 1,47 grammes d'extrait E2 qui sont en final mélangés, ce qui correspond à un rendement total en extrait de 2,87 % en poids par rapport aux racines.
Le tableau suivant rassemble, à titre indicatif, l'ensemble des plantes et extraits réalisés par les inventeurs.
Plante Parties Type d'extrait Rendement % Aspect végétales (2 extractions extraites successives) Clidemia hirta Feuilles E. aqueux 20,9 Poudre brune E. aqueux 9,7 Poudre lie de vin Inga bourgoni Ecorces E. éthanol 50 % 13,8 Poudre lie de vin E. éthanol Il,7 Poudre lie de vin
Bien que les couches de tôles 19 de l'extrémité gauche 21 et de l'extrémité droite 22 soient plastiquement déformées, il subsiste un nombre élevé de canaux 11 non plastiquement déformés, notamment dans la zone intérieure du corps alvéolaire 12, qui assurent la conversion catalytique des gaz d'échappement les traversant. Les canaux 11 sont considérablement déformés élastiquement par les forces transversales exercées sur l'ensemble du corps alvéolaire 12, de sorte que l'ensemble du corps soit sous précontrainte. C'est la raison pour laquelle il est prévu un élément de fixation 23 sur l'extrémité gauche 21, par exemple un rivet, et une agrafe 24 sur l'extrémité droite 22, de sorte que le corps alvéolaire 12 soit fixé de façon sûre dans le carter 6 de convertisseur.
La figure 4 représente une variante d'un mode de réalisation d'un convertisseur catalytique 7. Le convertisseur catalytique représenté sur cette figure comporte un carter 6 de convertisseur sensiblement quadratique, dans lequel est disposé un corps alvéolaire 12 rectangulaire. Les couches de tôles 19 prévues sont fixées au carter 6 de convertisseur de la manière en soi connue, par exemple par soudage par points. Le trajet de circulation 8 à parcourir par les gaz d'échappement à épurer est identique à celui représenté à la figure 2.
Le convertisseur catalytique 7 représenté à la figure 4 est fixé à la cloison de séparation 5, par exemple au moyen de sept languettes de fixation 25. Les languettes de fixation 25 sont insérées par des orifices correspondants prévus dans la cloison de séparation 5, et repliées de l'ordre de 900 ou tournées. de sorte que le carter 6 de convertisseur soit fixé sur la cloison de séparation 5.
Dans le cas du carter de pot d'échappement représenté à la figure 1, l'entrée 4 de gaz d'échappement et la sortie 13 de gaz d'échappement étaient disposées l'une en face de l'autre vues dans la direction longitudinale du carter 1 de pot d'échappement. Cela n'est cependant pas impératif, comme représenté à la figure 5. Sur cette dernière, l'entrée 4 de gaz d'échappement et la sortie 13 de gaz d'échappement sont situées directement l'une à côté de l'autre dans la partie supérieure 3 du carter 1 de pot d'échappement.
L'entrée 4 de gaz d'échappement et la sortie 13 de gaz d'échappement sont séparés l'une de l'autre du point de vue fluidique par une cloison de séparation 26, de sorte qu'un mélange soit évité entre des gaz d'échappement entrant et sortant.
Les gaz d'échappement entrant pénètrent dans le carter 6 du convertisseur catalytique 7 par l'entrée 4 de gaz d'échappement et les orifices 9 de la cloison de séparation 5. Dans l'exemple représenté à la figure 5, le convertisseur catalytique 7 se trouve dans la partie inférieure 2 de carter. Le convertisseur catalytique 7 comporte une paroi intermédiaire 27 s'étendant dans la direction longitudinale du carter 1 de pot d'échappement qui, au niveau de l'extrémité gauche à la figure 5 du convertisseur catalytique 7, s'étend jusqu'à la cloison de séparation 26, de sorte que deux tronçons 28 et 29 soient formés dans le convertisseur catalytique 7, les tronçons 28 et 29 étant en liaison fluidique entre eux au niveau de l'extrémité droite représentée à la figure 5 du convertisseur catalytique 7, par le fait que la paroi intermédiaire 27 ne s'étend pas entièrement jusqu'au côté droit à la figure 5 du convertisseur catalytique 7. Les gaz d'échappement à épurer entrent dans un tronçon d'entrée 28 de gaz d'échappement et ressortent d'un tronçon de sortie 29 de gaz d'échappement.
Il convient de noter que, au moyen de la paroi intermédiaire 27, un seul corps alvéolaire 12 disposé dans le carter 6 de convertisseur est séparé en deux tronçons 28 et 29. Il est cependant également possible de disposer deux ou plusieurs corps alvéolaires séparés (non représentés) dans le carter de convertisseur, lesquels sont séparés par un nombre quelconque de parois intermédiaires. Dans ce cas également, on crée à chaque fois au moins un tronçon d'entrée et un tronçon de sortie de gaz d'échappement qui sont en communication fluidique entre eux.
A la figure 6, le convertisseur catalytique 7 représenté à la figure 5 est illustré de façon encore plus précise. Le carter 6 de convertisseur est un corps sensiblement quadratique dans lequel est disposé un corps alvéolaire 12. Des couches de tôles 19 formant des canaux 11 sont prévues dans le corps alvéolaire 12. Une paroi intermédiaire 27 disposée sensiblement au centre du carter 6 de convertisseur est prévue parallèlement à la cloison de séparation 5 qui, à partir de l'extrémité avant à la figure 6 du carter 6 de convertisseur, s'étend sensiblement sur trois quarts de la longueur du carter 6 de convertisseur, comme esquissé par des tirets. La paroi intermédiaire 27 est retenue au moyen de prolongements 30 qui dépassent de celle-ci, qui s'encliquettent dans des orifices correspondants du carter 6 de convertisseur.
Le carter 6 de convertisseur comporte dans la direction longitudinale deux rebords 31 qui - comme déjà décrit en liaison avec la figure 2 - peuvent être fixés de façon amovible ou inamovible sur la cloison de séparation 5 de la partie inférieure de carter. De ce fait, la partie de la paroi intermédiaire 27 visible à la figure 6 est mise en contact avec une paroi frontale de séparation 26 de telle sorte que les tronçons 28 et 29 représentés à la figure 5 soit séparés entre eux.
Un autre mode de réalisation d'un convertisseur catalytique 7 selon l'invention est représenté à la figure 7. Le convertisseur catalytique 7 comporte un carter 6 de convertisseur de forme sensiblement quadratique dans lequel est disposé un corps alvéolaire 12 constitué de couches de tôles 19. Une couche lisse 32 se trouve dans le corps alvéolaire 12 qui s'étend sensiblement parallèlement à la cloison de séparation 5.
Une partie de la couche lisse 32 s'applique en outre contre les parois latérales 33 du carter 6 de convertisseur et, par ses extrémités réalisées en tant que flancs 34 s'étendant dans la direction longitudinale du pot d'échappement, elle s'applique contre des rebords 35 dépassant perpendiculairement des parois latérales 33 du carter 6 de convertisseur.
Des perçages 36 sont prévus aussi bien dans les flancs 34 que dans les rebords 35, par l'intermédiaire desquels des éléments de fixation, tels que par exemple des rivets, peuvent être insérés dans des orifices correspondants de la cloison de séparation 5 afin de fixer de façon sûre le convertisseur catalytique 7 avec la couche lisse 32 de façon sur la cloison de séparation 5.
La fixation des différentes couches de tôles 19 peut être effectuée de la manière en soi connue. C'est ainsi qu'il est possible de les fixer par brasage, soudage ou d'une autre manière connue. I1 est en outre possible de les fixer au carter 6 de convertisseur au moyen d'éléments de fixation, par exemple de rivets, d'agrafes, ou par pointage. Les points de fixation par soudage ou brasage doivent de préférence être libres de revêtement catalytiquement actif.
Les corps alvéolaires 12 représentés précédemment peuvent être entourés d'une enveloppe. A la figure 8, le corps alvéolaire 12 représenté à la figure 4 est entouré d'une enveloppe 38 de telle sorte que les canaux 11 puissent être librement traversés par les gaz d'échappement, tel que cela est également le cas dans les autres exemples de réalisation. Au moyen de l'enveloppe 38, le corps alvéolaire 12 est agencé en tant que module pouvant être monté dans le carter 6 de convertisseur, et fixé de façon amovible ou inamovible dans ce dernier.