INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Comme indiqué ci-dessus. les composés de la présente invention présentent I 5 une activité antagoniste non compétitive importante des récepteurs AMPA. donc on peut les utiliser en thérapie en tant qu'antispasmodiques. myorelaxants. ainsi que pour la neuroprotection. et aussi dans le traitement d'autres désordres neurologiques et psychiatriques qui peuvent être attribués à un état d'excitation augmenté des
récepteurs AMPA.
2) On peut transformer les composés de formule I en compositions pharmaceu-
tiques pouvant être administrées par voie enterale ou parentérale. A cette fin. on peut utiliser les supports ou excipients classiques. organiques ou inorganiques de l'industrie pharmaceutique tels que l'eau, la gélatine. la gomme arabique. le lactose,
Le bloc en élastomère peut être éventuellement associé à une plaque rigide fixée sur une face plane du bloc par collage ou vulcanisation. L'adjonction d'une telle plaque a pour effet d'améliorer l'amortissement de certaines fréquences vibratoires.
Le dessin annexé représente, à titre d'exemple, quatre modes d'exécution de l'invention.
La figure 1 représente un patin à roulettes en ligne équipé d'éléments amortisseurs selon un premier mode d'exécution.
La figure 2 est une vue détail en coupe selon II-II de la figure 1.
La figure 3 est une coupe analogue à celle de la figure 2 illustrant un deuxième mode d'exécution de l'élément amortisseur.
La figure 4 est une vue de détail et en coupe, selon une coupe verticale perpendiculaire à la coupe II-II, illustrant un troisième mode d'exécution.
La figure 5 est une vue latérale partielle d'un patin à roulettes en ligne selon un quatrième mode d'exécution.
La figure 6 est une vue en coupe selon VI-VI de la figure 5.
La figure 1 représente une chaussure 1 montée sur un châssis rigide 2, par exemple en aluminium, formé à partir d'un profilé en U découpé et présentant une plate-forme arrière 4 pour le soutien du talon de la chaussure et une plate-forme avant 5 pour le soutien de la partie antérieure de la chaussure. Entre les ailes du profil, sont montées quatre roulettes en ligne 3.
Dans les faces latérales du châssis 2 sont formées au moins deux paires de fentes 6 débouchant sur le bord supérieur des côtés du châssis. Dans ces fentes 6, qui constituent des zones de moindre résistance, sont insérés des blocs en caoutchouc 7. Avant insertion, les blocs en caoutchouc 7 présentent soit une forme parallélépipédique rectangulaire, la forme en H visible à la figure 2 étant obtenue par compression entre les bords des fentes 6, soit une section initiale en forme de H dans le cas d'un caoutchouc dur.
Le mode d'exécution représenté à la figure 3 diffère du premier mode d'exécution par l'adjonction de plaquettes métalliques fixées sur les faces opposées du bloc 7.
Les plaquettes 8 sont fixées par collage ou par vulcanisation. Au travail en compression de l'élastomère, on ajoute ainsi un travail au cisaillement. Les plaquettes 8 pourraient être également en un matériau synthétique suffisamment rigide.
La figure 4 représente un troisième mode d'exécution dans lequel les faces latérales du profilé présentent un pli creux longitudinal 9, en particulier en forme d'Q. Un bloc en matériau élastomère 10 est inséré dans le pli 9, de manière à remplir celui-ci.
Les figures 5 et 6 représentent un quatrième mode d'exécution dans lequel un bloc en matériau élastomère 11, engagé dans une fente du châssis 2 comme les blocs 7 du premier mode d'exécution, supporte en outre l'axe 12 de la roulette 3, ceci, de préférence, pour chacune des roulettes. Dans ce cas, les blocs 11 assurent non seulement l'amortissement des vibrations du châssis, mais également la suppression élastique du châssis.
Le châssis pourrait être obtenu par moulage d'un matériau élastique ou à base de fibres.
I Cette invention se rapporte à un appareil d'enregistrement du type à jet
c) Préparation du 2ss-carbométhoxy-3ss(p- méthylphényl)-8-(3-tributylstannylprop-2E-ènyl)nortropane (5) Le composé 3 obtenu précédemment (1 eq.) et le 3-chloro-1E-(tri-n-butylstannyl)prop-1-ène (1 eq) sont dissous dans 2 ml/eq d'éthanol absolu contenant une quantité catalytique de KI. Le mélange est agité et chauffé à 70 C pendant 16 heures. Après retour à la température ambiante, le mélange est traité par NaHCO3 et extrait à l'éther. La phase organique est lavée à la saumure, séchée sur Na2SO4 et évaporée pour donner le composé 5. Chaque produit est purifié sur plaque préparative de silice en utilisant comme phase éluante éther de pétrole/AcOEt 9/1.
Caractérisation RMN (200 MHz, CDCl3): Pour ce produit, on observe - Un doublet à 5,96 ppm; J3 = 19 Hz, i = 1H - un doublet de doublet dédoublé à 5,80ppm, i = 1H d) Préparation du 2-carbométhoxy-3ss-(p- méthylphényl) -8-(3-[125I] iodoprop-2E-ènyl) nortropane (7) A une solution contenant 50 ug du composé 5 obtenu en c), 50 p1 de HCl 0,1 N et 50 pi de H202 3 % p/v, on ajoute 5 p1 de Na125I (37 MBq/ml, lmCi/ml).
La réaction est laissée à la température ambiante pendant 15 minutes, puis arrêtée par l'addition de 100 pi d'une solution de bisulfite de sodium (300 mg/ml) . Le milieu réactionnel est ensuite rendu alcalin par une solution de NaHCO3 (500 mg/ml) et extrait avec AcOEt (3 x 1 ml). La phase organique est évaporée par un courant d'azote et le produit brut est purifié par chromatographie liquide à haute performance (HPLC) selon les conditions opératoires suivantes Colonne C18; débit lml/min; phase mobile MeOH/H20/Et3N(75/25/0,2) Temps d'élution = 13 min.
La fraction contenant le produit désiré est collectée, concentrée sur Sep Pak C18, puis extraite par 2x1ml de CHCl3. Le chloroforme est évaporé par un courant d'azote. Le résidu est repris par une solution aqueuse.
Exemple 2 : Préparation du 2ss-carbométhoxy-3ss-(p- methylphényl)-8(3 iodoprop-2E-ényl) nortropane (6) Dans cet exemple, on suit le meme mode opératoire que dans l'exemple 1, pour préparer le composé 5 de l'étape c) de l'exemple 1.
Ce composé 5 est traité par une solution de I2 (1M) dans du CHCl3 à 0 C, jusqu'à l'apparition d'une couleur jaune. Le mélange est ensuite lavé par NaHCO3 à 10 % dans l'eau, séché sur Na2S04 et évaporé. Le produit brut est purifié sur plaque préparative de silice en utilisant comme phase éluante éther de pétrole/AcOEt/9/1.
Caractérisation RMN (200 MHz, CDC13) Pour ce produit, on observe - Un doublet à 6,23 ppm ; J3 = 14,3, i = 1H; un massif à 6,50 ppm, i = 1H.
Exemples 3 et 4 Préparation de composés marqués à 125I.
Dans ces exemples, on prépare les composés répondant à la formule donnée dans le tableau 2 avec les X et Y figurant également dans ce tableau, en suivant le même mode opératoire que dans l'exemple 1.
Les caractéristiques RMN (200 MHz, CDC13)des composés intermédiaires et les rendements des réactions sont donnés dans le tableau 1.
Pour les produits intermédiaires obtenus dans l'étape c), on observe - un doublet à 5,96 ppm - J3 = 19Hz - i = 1H ; un doublet de doublet dédoublé à 5,80 ppm, i = 1 H.
Exemples 5 à 13 Dans ces exemples, on prépare les composés répondant aux formules données dans le tableau 2 avec les significations de X et Y données dans ce tableau, en suivant le même mode opératoire que dans l'exemple 1.
On obtient les composés voulus avec des rendements satisfaisants.
Exemple 14 Dans cet exemple, on teste in vivo chez le rat l'affinité et la spécificité du composé de l'exemple 1 pour le transporteur de la dopamine.
A cet effet, on utilise 3 lots de rats mâles de la souche Wistar en utilisant 6 rats par lot. Le lot numéro 1 reçoit tout d'abord une injection intraveineuse de GBR 12909 (inhibiteur spécifique du transporteur de la dopamine, fabriqué par RBI Bioblock) à une dose de 5 mg/kg, puis on lui injecte 30 minutes après par voie intraveineuse le composé de l'exemple 1, à une dose de 8.10-6 mg/kg.
Le lot numéro 2 reçoit tout d'abord une injection de paroxétine (inhibiteur spécifique du transporteur de la sérotonine, fabriqué par les laboratoires Beecham) à une dose de 5 mg/kg, puis 30 minutes après, une injection du composé de l'exemple 1, dans les mêmes conditions que le lot numéro 1.
On traite une solution de 1.80g {5 mmoles) de 8-bromo-4-méthyl-l-(4nitrophényl)-
4.5-dih-dro-3H-'2.3-benzodiazépine dans 10ml d'acide acétique glacial par 0.53g (6.5 mmioles) de cvanate de potassium. Après I heure. on verse la solution dans l'eau. et on filtre les cristaux qui précipitent. On met le produit brut en suspension dans 15ml d'éthanol chaud. Après filtration et séchage. on obtient 1.56g (77%) de
3* composé en rubrique. P.f.: 193-20:39C.
On prépare le composé de départ de l'exemple 34 de la manière suivante: 8-bromo-4-méthv 1-1 -(4-nitrophlévl -)-4.5-dihlydro-3H-2.3- benzodiazépine
(le composé est identique à celui de l'exemple 22. étape D). On fait bouillir 5.20g (12 mmoles) de 8-bromo-3-thoxx carbonl1-4-miéti\
1-1 -
(4-nitrophenyl)-4.5-dihydro-3H-2.3-benzodiazépine (préparé dans l'exemple 32) dans 104m1 de méthanol avec 6ml de solution d'hldr-oxyde de sodium 10N pendant deux heures Après refroidissement. on dilue le mélange réactionnel a l'aide dc 104ml d'eaLu. puis on tiltre les cristaux qui précipitent. On obtient ainsi 3.99g (92')
du compose en rubrique. P.f.: 125-1)30O.
*EXEMPLE 35
I -(4-amiLophlényl - 8-bromo-3-carbamoy l-4-méthil 1-4.5-dill dro-3 H-'_. -benzo-
diazépine
On réduit 1.55, (3.84 mmoles) de 8-bromio-3-carbamovl-4-mnétlhvl-l-(4-
nitroplénxl)-4.5-dllhdro-3H-2.-benzodiazépine (préparé dans l'exemple 34) en utilisant la méthode de l'exemple 2. On recristallise le produit brut dans 5m!
d'éthanol. On obtient ainsi 1.1 9g (83%zo) du composé en rubrique. P.f._ 18-221 C.
EXEMIPLE 36
8-chloro-4-meéthvl- 1 -( 4-nitrophén-l)-3-tritluoroacétyl-4.5-dillhdro-3 H-2.'3-
Par contre, l'opération d'initialisation du serveur nest effectuée que partiellement par le distributeur avant de remettre les cartes aux utilisateurs.
Cette initialisation partielle du serveur consiste à mémoriser dans un fichier du serveur les numéros d'identification attribués au lot de cartes et la clé secrète Ks associée à ce lot pour permettre au serveur de pouvoir calculer ensuite la valeur de la donnée confidentielle Ga de chaque carte. Autrement dit, avant la première utilisation de la carte, le serveur ne mémorise aucune valeur d'un cryptogramme initial QO.
L'opération d'initialisation du serveur est complétée lorsque l'utilisateur va demander un premier accès au serveur par l'intermédiaire d'une borne de péage. Dans ce cas, au passage du véhicule automobile, la borne de péage fait émettre par la carte une première séquence d'informations contenant au moins le numéro d'identification Na de la carte et la valeur du cryptogramme C0 qui sont mémorisés dans la carte. Pour cette deuxième application, chaque carte est avantageusement équipée d'une interface de sortie radiofréquence.
Cette première séquence est transmise au serveur et celui-ci recherche si le numéro d'identification N a correspondant à celui que vient d'émettre la carte appartient bien au lot de cartes. Si cette recherche n'aboutit pas, le serveur détecte et enregistre un franchissement illégal du poste de péage par un véhicule automobile. Dans le cas contraire, le serveur enregistre dans un fichier le numéro d'identification Na de la carte et lui associe un cryptogramme Q0 dont la valeur est égale à celle du cryptogramme C0 transmis par la carte.
Ensuite, la borne fait émettre une seconde séquence d'informations contenant à nouveau le numéro d'identification Na de la carte et le cryptogramme C1 qui a été calculé automatiquement par la carte à la suite de l'émission de la première séquence d'informations. Après transmission de cette seconde séquence d'informations, le serveur cherche dans son fichier le numéro d'identification N a correspondant à celui qu'il vient de recevoir de la carte et calcule tout d'abord la valeur de la donnée confidentielle Ga de la carte en exécutant l'algorithme Al qui prend en compte le numéro d'identification Na de la carte et la valeur de la clé secrète Ks attribuée au lot de cartes.
Ensuite, le serveur calcule à partir du cryptogramme QO qu'il a associé au numéro d'identification Na de la carte et de la donnée confidentielle Gc, le crypto gramme Q1 en exécutant l'algorithme A2 et vérifie que sa valeur est bien égale à celle du cryptogramme C1 contenu dans la seconde séquence d'informations. Si une telle égalité est satisfaite, le véhicule automobile franchit légalement le poste de péage, et le serveur donne au cryptogramme QO associé au numéro d'identification Na de la carte, une nouvelle valeur égale à celle du cryptogramme C1 transmis par la carte.
Dans cette application de télépéage, l'initialisation du serveur est achevée après réception de deux séquences d'informations consécutives émises par la carte lors du premier passage du véhicule automobile.
Avantageusement, lors des passages suivants, la carte ne transmettra qu'une seule séquence d'informations et le protocole d'identification se limitera à la première étape de synchronisation qui a été décrite précédemment dans le cas de l'application de banque à domicile et qui suffit à l'authentification de la carte.
Dans cette application de télépéage telle qu'envisagée précédemment, les cartes ne sont pas nominatives.
Dans une troisième application, le procédé est utilisé dans un dispositif d'alarme conçu pour un véhicule automobile. Comme dans les applications précédentes, chaque carte doit être initialisée ainsi que le serveur qui est ici constitué d'un dispositif d'alarme propre à chaque véhicule automobile.
L'opération d'initialisation des cartes est effectuée par le distributeur, sachant qu'une ou plusieurs cartes peuvent être attribuées à un même utilisa teur. Chaque carte est alors initialisée en mémorisant dans sa mémoire un numéro d'identification Nc, une donnée confidentielle Ga et la valeur d'un cryptogramme initial C0 qui, dans cette application particulière, est égale à la donnée confidentielle Ga.
De préférence, les cartes sont ensuite verrouillées par le distributeur pour éviter leur utilisation en cas de vol par exemple.
A ce stade, les dispositifs d'alarme des véhicules automobiles ne sont pas encore initialisés. Lors de la prise de possession du véhicule automobile par l'utilisateur, le distribut quence, le dispositif d'alarme vérifie que le numéro d'identification N a correspond bien à celui qu'il a mémorisé et exécute l'algorithme A2 pour calculer la valeur du cryptogramme Q1 à partir de celle du cryptogramme QO et de la donnée confidentielle G a sans avoir à calculer cette dernière comme dans le cas des deux applications précédentes. Si les valeurs des cryptogrammes Q1 et C1 sont égales, le cryptogramme Q0 prend une nouvelle valeur qui est égale à celle du cryptogramme C1, et l'opération d'initialisation du dispositif d'alarme est terminée pour cette carte.
La carte est ensuite remise à l'utilisateur avec les clés du véhicule, sachant que l'utilisateur peut recevoir plusieurs cartes mais en nombre limité, deux ou trois par exemple, qui sont initialisées pour le dispositif d'alarme d'un même véhicule.
Dans cette application, chaque carte qui se présente plus généralement sous la forme d'un petit boîtier qui est au moins équipé d'une interface de sortie radio fréquence.
Dans ces conditions, lorsque l'utilisateur approche de son véhicule, il appuie sur une touche prévue sur le boîtier pour faire émettre une séquence d'informations contenant au moins le numéro d'identification N a et la valeur du cryptogramme Ci qui sont mémorisés dans le boîtier. Après transmission, le dispositif d'alarme vérifie que le numéro d'identification N a est bien égal à celui qui est mémorisé dans sa mémoire, et exécute plusieurs fois l'algorithme A2 pour calculer les cryptogrammes successifs Qi, Q2, jusqu'à retrouver un cryptogramme Qn dont la valeur doit être égale à celle du cryptogramme Ci contenu dans la séquence d'informations émise par le boîtier, après un nombre d'itérations prédéfini.
Le bloc d'expression pH5R-E6* est isolé du vecteur M13TG9139 sous forme d'un fragment BgIll-BaiiiHI qui est introduit dans le site BamHI du vecteur pTG5056.
On génère le vecteur pTG5060. Le bloc d'expression pH5R-E7* est purifié de M13TG9138 et inséré au site BamHI du vecteur pTG5060, pour donner pTG5062.
On indique que l'insertion au locus K1L conduit à des virus recombinants ayant une capacité de replication réduite voire meme détruite dans certains types cellulaires.
Pour ces raisons, on introduit un marqueur de sélection positive pour faciliter l'identification des virus recombinants. Le vecteur pTG5065 résulte du clonage dans le site BamHI de pTG5062 d'une cassette d'expression "pKlL-gène LacZ" isolée du plasmide pIV75 (Chen et al., 1993, Virology 196, 682-693) par clivage BglII- Banifli. Comme visualisé à la Figure 2, il permet le transfert des blocs E6*, E7* et IL-2 au sein du locus K1L du virus de la vaccine Le virus de la vaccine recombinant, dénommé VVTG5065, est généré par recombinaison homologue après transfection du vecteur pTG5065 dans les cellules embryonnaires de poulet infectées par la vaccine Copenhague sauvage et repérées par coloration sous gélose au X-Gal. Les virus de la vaccine VVTG5021 et VVTG5065 sont utilisés dans des essais d'infections doubles. Les doubles recombinants sont sélectionnés selon les deux marqueurs : formation de plages bleues en présence de X-Gal et délétion du marqueur TK. Ceux-ci, dénommés VVTG5021 & 5065, expriment les blocs p7,5K-IL-2, pH5R-E6* et pH5R-E7* intégrés au locus K1L et les blocs p7,5K-Lt et p7,5K-L2 intégrés au locus TK.
L'expression des gènes de HPV peut être vérifiée par analyse en Western blot à l'aide d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux appropriés ou par PCR réverse. La production d'IL-2 peut être évaluée par test ELISA ou test CTL comme décrit dans la littérature.
EXEMPLE 2: Construction d'un virus vaccine Copenhague exprimant les gènes E6, E7. et le gène IL-2 humain L'ADNc codant pour l'interleukine-2 humaine est isolé du plasmide pTG36 par digestion PstI et inséré dans le site PstI du plasmide pTG186, donnant lieu à pTG188. Le virus obtenu par recombinaison homologue est dénommé VVTG188.
Le gène E6* est isolé de M13TG9125 sous forme d'un fragment PstI-BamHI et inséré en aval du promoteur 7,5K entre les sites PstI et XbaI de pTG2147 en présence d'un adaptateur BamHI-XbaI, donnant lieu à pTG5057. Le gène E7* est placé sous le contrôle du promoteur vaccine H5R produisant M13TG9138 et la cassette bordée par les sites BamHI-BgllI est sous-clonée dans le site BamHI de pTG5057. On obtient pTG5059, dans le site BamHI duquel on insère le marqueur de sélection LacZ sous la dépendance du promoteur du gène vaccine KiL isolé par digestion BgllI-BamHI du vecteur pIV75. La construction résultante est désignée pTG5061 et le virus généré par recombinaison homologue avec le génome vaccine VVTG5061.
Un virus de la vaccine recombinant exprimant les gènes E6* et E7* intégrés au locus K1L et le gène de l'IL-2 humaine intégré au locus TK est obtenu par coinfection de cellules embryonnaires de poulet par les virus VVTG5061 et VVTG188. Le virus doublement recombinant est désigné VVTG5061 & 188.
EXEMPLE 3: Construction d'un virus vaccine Copenhague exprimant les genes E6 E7. et le gène codant pour le cofacteur d'adhésion B7. 1 humain L'ADNc codant pour B7. 1 est isolé d'une préparation d'ARNm obtenue de la lignée cellulaire Daudi (ATCC CCL-213) par PCR réverse en utilisant les amorces oTG6353 et oTG6352 (SEQ ID NO: 3 et 4). On indique que la séquence du gène est divulguée dans Genebank sous le numéro d'accession M27533. Le fragment amplifié est cloné entre les sites BgllI et EcoRi du M13TG6131 conduisant au M13TG9149 puis entre les sitesBamHI et EcoRJ du pTG186. La construction est dénommée pTG5090 et le virus obtenu par recombinaison homologue VVTG5090.
Un virus de la vaccine exprimant les gènes E6* et E7* de HPV-16 intégrés au locus K1L et le gène B7. 1 humain intégré au locus TK est obtenu par co-infection de cellules embryonnaires de poulet par les virus VVTG5061 et VVTG5090. le virus recombinant est désigné VVTG5061 & 5090.
EXEMPLE 4: Construction d'un virus vaccine souche MVA exprimant les gènes E6. E7. et le gène B7 1 intégrés au sein de la zone d'excision III Le virus MVA dérive de la souche du virus de la vaccine Ankara. Il n'est pas capable de générer des particules infectieuses sur les cellules de mammifères mais se développe correctement sur des fibroblastes embryonnaires de poulet. Son adaptation à ces cellules a provoqué l'excision de 6 régions non essentielles pour son développement et son cycle infectieux sur ce type de cellules (disparition d'environ 15 % du génome viral ; Meyer et al., 1991, J. Gen. Virol. 72, 1031 1038). L'intégration de matériel génétique exogène peut être réalisé au niveau de l'une quelconque de ces zones d'excision. Dans le cadre de la présente invention, on utilise les excisions II et III localisées au niveau des fragments de restriction HisrdIII N et A respectivement (Altenburger et al., 1989, Arch. Virol. 105, 15-27).
Dans un premier temps, on construit le vecteur pTG6019 permettant l'insertion dans la zone d'excision III du virus MVA. Les bras de recombinaison homologue de part et d'autre de la zone d'excision III sont isolés par PCR à partir du génome viral (voir brevet américain US 5,185,146) et des amorces oTG7637 etTG7638 (SEQ ID NO: 5 et 6) pour le bras gauche et oTG7635 et oTG7636 (SEQ ID NO: 7 et 8) pour le bras droit. Les fragments amplifiés sont clonés au site EcoRI du vecteur pTGlE, pour donner pTG6019. Le matériel génétique à transferer est inséré entre les deux bras de recombinaison. Le vecteur pTGlE est similaire au pTGIH (brevet français 2 583 429) mis à part la présence d'un adaptateur EcoRi à la place de sites multiples de clonage.
On insère en premier lieu une cassette d'expression du gène marqueur giis A. Le promoteur 7,5K est tout d'abord cloné dans le site BamHI de pTG6019. On obtient pTG6021 dans le site BamHI duquel on insère le gène giis A généré sous forme d'un fragment BglIl-BnntHI. Celui-ci peut être obtenu à partir de la séquence divulguée dans la littérature. La construction résultante est dénommée pTG6022.
La présence du marqueur va permettre de discriminer les virus sauvages des virus recombinants par détection de l'activité enzymatique GUS par le substrat XglcA.
Une coloration rouge révèle l'activité ss-glucuronidase. Cependant, dans l'optique d'une application clinique, il peut être utile d'être en mesure d'éliminer ce marqueur bactérien du produit final après la sélection des virus recombinants. Pour ce faire, on met à profit la capacité de la vaccine à déléter les séquences comprises entre deux sites homologues. C'est pourquoi on insère un second promoteur p7,5K en aval du gène giis A dans une orientation sens par rapport à celui qui dirige l'expression de ce dernier. Le vecteur pTG6022 est modifié par insertion entre les sites BanlHI et SacI d'un fragment p7,5K muni d'extrémités cohésives, pour donner pTG6025.
Celui-ci est complété par l'insertion des cassettes d'expression des gènes E6* et E7* mutées. On commence par introduire une nouvelle séquence promotrice p7,5K cette fois en orientation antisens par rapport aux précédentes. Cette consruction dénommée pTG6039 comprend donc la cassette GUS labile "p7,5Kgris Ap7,5Ke" suivie de p7,5K dans l'orientation opposée. En parallèle, les gènes E6* et E7* sont isolés respectivement des vecteurs M13TG9104 et M13TG9125 par digestion BamHI et PstI et assemblés en orientation opposée l'un à l'autre au site PstI de Ml 3TG6 131. L'ensemble est resorti sous forme d'un fragment Pstl qui est inséré dans pTG6039 linéarisé par cette même enzyme. On obtient le vecteur pTG6056 qui contient les séquences suivantes p7,5Keglls A-p7,5KeE7*- E6*vp7,5K".
La housse 6 selon l'invention est composée dans l'exemple illustré de deux pièces distinctes 7,8 que l'utilisateur placera successivement sur le fauteuil 1 pour recouvrir totalement celui-ci.
Sur la figure 2 on a représenté le fauteuil 1 partiellement recouvert de la première pièce 7. Plus précisément cette première pièce 7 est conformée pour recouvrir l'assise 2 et le dossier 4 du fauteuil 1.