INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Les deux solutions sont chauffées séparément à 60"C. La solution aqueuse chaude est soumise à une forte agitation à l'aide d'un agitateur à haut cisaillement Ultraturrax tournant à 8000 tr/min. En maintenant l'agitation, la solution organique chaude est versée dans la solution aqueuse et on poursuit l'agitation pendant 10 minutes ; on obtient une pré-émulsion.
Cette pré-émulsion est homogénéisée à l'aide d'un homogénéisateur à clapets du type Manton Gaulin Lab 60 (pression d'entrée: 50 bars - pression de sortie: 250 bars) et l'acétate d'isopropyle est ensuite retiré par évaporation sous vide à 40"C. On obtient ainsi une émulsion stable, de couleur blanche que l'on ajuste à 25 % d'extrait sec par addition d'eau. La taille moyenne des particules est égale à 250 nm et la polydispersité est inférieure à 0,1.
b) Application sur cuir de l'émulsion de l'oligomère de l'exemple 2 L'émulsion obtenue ci-dessus est diluée jusqu'à 2 % de matières actives dans l'eau, puis appliquée sur cuir agneau velours selon la procédure décrite à l'exemple 1-b. Après séchage à température ambiante pendant 24 heures, les tests de résistance hydrophobe et oléophobe ont donné les résultats suivants:
Cuir non traité Cuir traité TestAATCCII8 0 4 Test eau/lPA 1 3 EXEMPLE 48 a) Mise en émulsion de l'ollgomère de l'exemple 2 à l'aide d'une sonde à ultrasons On prépare: - une solution organique en mélangeant 60 g de solution S2, 40 g d'acétate d'isopropyle et 1,5 g d'acide dodécylbenzènesulfonique et - une solution aqueuse en mélangeant 86 g d'eau et 14 g d'éthylène glycol.
Les deux solutions sont chauffées séparément à 60"C. La solution aqueuse chaude est soumise à une forte agitation à l'aide d'un agitateur à haut cisaillement Ultraturrax tournant à 8000 tr/min. En maintenant l'agitation, la solution organique chaude est versée dans la solution aqueuse et l'agitation est encore maintenue pendant 10 minutes. On obtient une pré-émulsion que l'on homogénéise pendant 8 minutes à l'aide d'une sonde à ultrasons de diamètre 19 mm connectée à un générateur Vibra Cell 500 watts (Sonics & Materials Inc.) L'acétate d'isopropyle est ensuite retiré par évaporation sous vide à 40"C. On obtient une émulsion stable, de couleur blanche que l'on ajuste à 20 % d'extrait sec par addition d'eau.
b) Application sur cuir de l'émulsion de l'ollgomère de l'exemple 2 L'émulsion obtenue ci-dessus est diluée jusqu'à 2 % de matières actives dans l'eau, puis appliquée sur deux qualités de cuir: vachette végétal et agneau velours, selon la procédure décrite à l'exemple l-b. Après séchage à température ambiante pendant 24 heures, les tests de résistance hydrophobe et oléophobe ont donné les résultats résumés dans le tableau suivant.
Qualité de cuir AATCC 118 Testeau/lPA vachette végétal - non traité 0 0 -traité 4 4 agneau velours - non traité 0 1 -traité 5 3
EXEMPLE 49 a) Mise en émulsion de l'oligomère de l'exemple 9 à l'aide d'un homoz généisateur haute pression On prépare: - une solution organique en mélangeant 420 g de solution S9, 280 g d'acétate d'isopropyle et 21 g d'acide dodécylbenzènesulfonique, et - une solution aqueuse en mélangeant 602 g d'eau et 98 g d'éthylène glycol.
Les deux solutions sont chauffées séparément à 60 C. La solution aqueuse chaude est soumise à une forte agitation à l'aide d'un agitateur à haut cisaillement Ultraturrax tournant à 8000 tr/min. En maintenant l'agitation, la solution organique chaude est versée dans la solution aqueuse et l'agitation est encore maintenue pendant 10 minutes. On obtient une pré-émulsion que l'on homogénéise à l'aide d'un homogénéisateur à clapets Manton Gaulin (pression d'entrée: 50 bars - pression de sortie: 250 bars). L'émulsion finale ainsi obtenue, qui a un pH égal à 5,5 est amenée à pH égal à 2,5 par addition d'acide formique; I'extrait sec final est de 15 %.
Dans le sens de sortie de la lumière 16 vers le réflecteur 10
et à une certaine distance de celui-ci on dispose une len-
tille 18 sur le trajet des rayons de la lumière réfléchie par le réflecteur. L'ouverture de sortie de la lumière du phare peut en plus être recouverte par une glace translucide 15, qui peut être constituée sous la forme d'une vitre lisse ou
peut présenter des éléments optiques.
La lumière émise par la source de lumière 12 est réfléchie par le réflecteur 10 sous la forme d'un faisceau de lumière convergente, qui croise l'axe optique 11. La lentille 18 est constituée sous la forme d'une lentille convergente de telle sorte que la lumière réfléchie par le réflecteur 10 est coupée par cette lentille lors de son passage en direction de l'axe optique 11. La lentille 18 présente, comme on l'a représenté à la figure 2, en direction du réflecteur 10 une face plane 20, qui est plane au moins approximativement, et en s'éloignant du réflecteur 10 une face qui est courbée de façon convexe 22. La face courbée 22 de la lentille 18 est de10 préférence courbée de façon non sphérique et peut par exemple être subdivisée en au moins deux segments 23, 24 présentant des courbures différentes. Les segments 23, 24 peuvent dans ce cas être disposés l'un au dessus de l'autre et il peut y avoir entre ceux-ci un gradin 26. La lentille 18 présente de préférence un bord 28, qui fait tout le tour, qui vient en saillie sur la face courbée 22 de la lentille 18. La lentille 18 peut être réalisée en une matière plastique translucide ou en verre. La lentille 18 présente une plus petite section transversale que le réflecteur 10 sur son bord antérieur orienté dans le sens de sortie de la lumière 16. La lentille
18 peut par exemple être constituée, comme on l'a représen-
tée, avec une forme ronde, toutefois elle peut aussi présen-
ter n'importe quelle autre forme, par exemple avoir une
section transversale rectangulaire.
La lentille 18 est maintenue dans un élément de
support 30, qui entoure la lentille 18 au moins sur une par-
tie de son pourtour. De préférence l'élément de support 30 entoure la lentille 18 comme on l'a représenté à la figure 3 sur tout son pourtour. L'élément de support 30 présente une section 31 qui a, au moins de façon approximative, la forme d'un cône tronqué, qui va en se rétrécissant dans le sens de la sortie de la lumière. La section 31 peut dans ce cas être
une partie d'un tronc de cône rectiligne, dont les génératri-
ces s'étendent en ligne droite, ou une partie d'un tronc de
cône recourbé, dont les génératrices s'étendent de façon re-
courbée vers l'intérieur ou vers l'extérieur. La section 31
PREPARATION 68 Méthyl [O-(2,3,6-tri-O-méthyl-α-D-glucopyranosyl)-(1-4)-O-(2,3,6-tri-O-méthyl-ss- D-glucopyranosyl)-(1 -4)]4-0w(6-benzyl-2,3-di-méthyl-a-D-glucopyranosyl)- (1-4)-O-(benzyl 2,3-di-O-méthyl-ss-D-glucopyranosyl-uronate)-(1-4)-O-(3,6-di-Oacétyl-2-O-benzyl-α-D-glucopyranosyl)-(1-4)-O-(benzyl 2,3-di-O-méthyl-α-L- idopyranosyluronate)-(1-4)-2,3,6-tri-O-benzyl-α-D-glucopyranoside (74).
On traite le composé 73 (130 mg, 38,2 mol) selon la METHODE 2, et purifie le brut sur une colonne de silice pour obtenir 74 (118 mg, 93 %). [a]D + 78 (c = 0,48, dichlorométhane) ; ESIMS, mode positif masse monoisotopique = 3301,49 ; masse chimique = 3303,65 ; masse expérimentale = 3302,40 u.m.a.. 1H RMN (CDCl3) 6 7,33-7,25 (m, 35H, 7Ph), 5,64 (d, 3H, J = 3,5Hz, H-1 unité A, unité C et unité E), 5,57 (d, 1H, J = 3,9Hz, H-1 unité G), 5,52 (d, 1H, J = 3,3Hz, H-1 unité l), 5,29 (d, 1H, J = 6,8Hz, H-1 unité L), 5,17 (d, 1H, J = 3,5Hz, H-1 unité K), 4,56 (d, 1H, J = 3,5Hz, H-1 unité M), 4,31 (d, 3H, J = 7,9Hz, H-1 unité B, unité D et unité F), 4,27 (d, 1H, J = 8,0Hz, H-1 unité H), 4,08 (d, 1H, J =8,0Hz, H-1 unité J), 1,97 (s, 3H, Ac), 1,81 (s, 3H, Ac).
PREPARATION 69 Méthyl O-(2,6-di-O-benzyl-4-O-lévullnyl-3-O-méthyl-α-D-glucopyranosyl)-(1-4)- O-(2-O-acétyl-6-O-benzyl-3-O-méthyl-ss-D-glucopyranosyl)-(1-4)-O-(2,6-di-O benzyl-3- Ométhyl-a-D-g I ucopyranosyl)-(1 -4)-0(2- Oacétyl-6-Obenzyl-3-0 méthyl-ss-D-glucopyranosyl)-(1 -4)-[ 0(2,3,6-tri-Ométhyl-a-D-glucopyranosyl)- (1-4)-O-(2,3,6-tri-O-méthyl-ss-D-glucopyranosyl)-(1-4)]4-O-(6-O-benzyl-2,3-di-Ométhyl-α-D-glucopyranosyl)-(1-4)-O-(benzyl 2,3-di-O-méthyl-ss-Dglucopyranosyluronate)-(1-4)-O-(3,6-di-O-acétyl-2-O-ben-zyl-α-D- glucopyranosyl)-(1-4)-O-(benzyl 2,3-di-O-méthyl-α-L-idopyrano-syluronate)-(1- 4)-2,3,6-tri-benzyl-a-D-glucopyranoside (75).
On dissout l'accepteur de glycosyle 74 (112 mg, 33,9 pmol) et l'imidate 17 (59,1 mg, 37,2 mol) (voir préparation 16) dans du toluène (2ml). On ajoute du tamis moléculaire 4 À (42 mg) et laisse sous agitation, à 25 C, pendant 1 heure. On refroidit le mélange à - 20 C et ajoute un solution 1 M de triflate de tert-butyldiméthylsilyl dans du toluène (0,20 mol/mol d'imidate). On laisse sous agitation pendant 15 minutes puis ajoute de l'hydrogénocarbonate de sodium solide, filtre et concentre. On dépose sur une colonne Toyopearl# HW-50 (dichlorométhane/éthanol 1 : 1), remet en réaction la fraction contenant l'accepteur et le 17-mer et la traite comme précédemment. On purifie successivement sur colonne ToyopearlGA HW-50 et sur colonne de silice pour obtenir 75 (71 mg, 44 %). [a]D + 80 (c = 0,26, dichlorométhane).
ESIMS, mode positif: masse monoisotopique = 4728,10; masse chimique = 4731,26; masse expérimentale = 4731,27 # 0,39 u.m.a.. 1H RMN (CDCl3) 6 des principaux protons anomériques : 5,64 ; 5,57 ; 5,52 ; 5,48 ; 5,47 ; 5,29 5,17 ; 4,56 ; 4,50 ; 4,29 ; 4,27 ; 4,08 ppm.
SCHEMA 22 Preparation d'un synthon utile pour la synthèse d'un pentasaccharide Pe possédant une liaison C-interglycosidique (composé (@. 1))
OR OtBDMS cL u) O MeO MeO Me 76: R = H 78:R:O 80 0 a 20 t ACO R3O SePh O O O O SePh AcO OAc R R20 PhO MeO MeO OR1 MeO OH 81: 1LO/V: 83: R1 ,R2,R3=Ac 82: R=a-Br 84: R1,R2,R3=H 85 " o T M Ph0 o Me O 03e /WoeOMe0 e P 0t Si N MeO 0\/0,OMe OMO mjyx Met ,0 MeO 86 87 0 e Me 2 = > & o C ' > Ph O M e- > Le vO UeO UeO 88: M = H t cl oxo o en t ' 8 /2 2 a t o X c / o t o s es X Z PREPARATION 70 Méthyl 2,3-di-Ométhyl-6-Otert-butyldiméthylsilyl-a-D-gîucopyranoside (77).
On ajoute sous argon du chlorure de tert-butyldiméthylsilyle (14,0 g, 92,9 mmol), de la triéthylamine (15 ml, 108 mmol), et du 4-diméthylaminopyridine (260 mg, 2,13 mmol) à une solution de 76 (D. Trimmell, W. M. Doane, C. R.
Russel, C. E. Rist, Carbohydr. Res., (1969) 11, 497) (15,84 g, 71,3 mmol) dans du dichlorométhane (300 ml). Après 15 heures d'agitation à température ambiante, on dilue la solution avec du dichlorométhane, lave avec une solution aqueuse saturée d'hydrogénocarbonate de sodium, sèche (sulfate de magnésium), filtre et concentre. On purifie le résidu par chromatographie flash (cyclohexane/acétate d'éthyle 1,3 1) pour obtenir 77 (22,79 g, 95%) sous forme de sirop incolore. [a]D + 87 (c = 1,2, chloroforme).
PREPARATION 71 Méthyl 2,3-di-O-méthyl-6-O-tert-butyldiméthylsilyl-α-D-xylo-4-hexulo- pyranoside (78).
On ajoute sous argon et à -70 C, une solution de diméthylsulfoxyde (8,7 ml, 123 mmol) dans du dichlorométhane (20 ml) à une solution de chlorure d'oxalyle (5,4 ml, 61,9 mmol) dans du dichlorométhane (120 ml). Après 15 minutes, ajouter goutte à goutte une solution de 77 (18,78 g, 55,8 mmol) dans du dichlorométhane. Après 15 minutes d'agitation magnétique, on ajoute de la triéthylamine (37 ml, 265 mmol), et après 15 minutes, on laisse revenir à température ambiante. On ajoute de l'eau (150 ml), et extrait la phase aqueuse avec du dichlorométhane (150 ml). On joint les phases organiques, lave par une solution aqueuse saturée de chlorure de sodium, sèche (sulfate de magnésium), et concentre. On purifie le résidu par chromatographie flash (cyclohexane/acétate d'éthyle 9 1 puis 4 1) pour obtenir 78 (17,3 g, 93%) sous forme d'une huile incolore. [a]D + 98 (c = 1,0, chloroforme).
PREPARATION 72 Méthyl 4-désoxy-2,3-di-O-méthyl-4-C-méthylène-6-O-tert-butyldiméthyl-silyl-α- D-xylo-hexopyranoside (79).
On ajoute goutte à goutte et sous argon une solution 1,6 M de n butyllithium dans du n-hexane (75 ml) à une suspension de bromure de méthyltriphénylphosphonium (43,3 g, 127 mmol) dans du tétrahydrofurane (250 ml). Après 30 minutes à température ambiante, le mélange est refroidi à -70 C On ajoute ensuite une solution de 78 (13,97g, 41,8 mmol) dans du tétrahydrofurane (60 ml). Après 30 minutes à -70 C laisser revenir à température ambiante. Après 1 heure, on ajoute une solution aqueuse saturée de chlorure d'ammonium (300 ml) et extrait la phase aqueuse à l'éther. On sèche la phase organique (sulfate de magnésium), filtre, et concentre. On purifie le résidu par chromatographie flash (cyclohexane/acétate d'éthyle 7 : 1 puis 4 1) pour obtenir 79 (8,30 g, 60%) sous forme d'une huile incolore. [a]D + 151 (c = 1,3, chloroforme).
PREPARATION 73 Méthyl 4-désoxy-2,3-di-O-méthyl-4-C-méthylène-α-D-xylo-hexopyrano-side (80).
On ajoute de l'acide camphosulfonique (pH 1) à une solution de 79 (8,50 g, 25,6 mmol) dans un mélange dichlorométhane-méthanol 5 1 (250 ml).
Après disparition complète du produit de départ (CCM cyclohexane/acétate d'éthyle 1 1), on neutralise la solution par addition de triéthylamine. Après concentration, le résidu est purifié par chromatographie flash (cyclohexane/acétate d'éthyle 1:1 puis 1: 2) pour donner 80 (5,32 g, 95%) sous forme d'un sirop incolore. [a]D + 239 (c = 1,0, chloroforme).
On peut voir, tout d'abord, que les clones de la région 1 correspondent tous aux gènes impliqués dans la biosynthèse de la capsule. Ces gènes ont été précédemment étudiés parmi les Nm de sérogroupe B (Frosch et al. 1989, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, 1669-1673 et Frosch et Muller 1993, Mol. Microbiol. 8 483-493).
A l'exception d'une faible homologie avec l'activateur de hémolysine de Serratia marcescens, les clones de la région 2 ne présentent aucune homologie significative avec les séquences publiées, que ce soit au niveau de l'ADN ou des protéines.
Deux des clones de la région 3 présentent d'intéressantes homologies avec des protéines qui se lient à l'ADM, en particulier les protéines de régulation et les protéines transposases de bacteriophages.
Le clone B208 présente une forte homologie avec une des régions conservées dans une classe de récepteurs (sidérophore ferrique TonB-dependant).
Les clones B134 et B339 s'hybrident avec de nombreuses régions du chromosome (au moins 5 et au moins 8, respectivement).
Les données concernant les séquences montrent que le clone B339 correspond à la séquence d'insertion Nmspécifique S1106.
La traduction du clone B143 présente une homologie limitée avec la transposase d'une séquence d'insertion <RTI ID=37.4 d'ailleurs avec aucune séquence publiée. Ces clones constituent donc, avec la majorité des autres clones isolés, une banque de loci Nm-spécifiques totalement nouveaux.
Exemple 3 : Mise en évidence de la présence d'une ou plusieurs souches de Neisseria meningitidis dans un échantillon biologique.
Un échantillon biologique de type liquide céphalorachidien, urine, sang, salive est prélevé.
Après filtration et extraction, les ADN présents dans cet échantillon sont soumis à électrophorèse sur gel et transférés sur membrane par Southern blotting.
Une sonde nucléotidigue constituée par le marquage au 32p de la SEQ ID n 5 est incubée avec cette membrane de transfert.
Après antoradiographie, la présence de bande(s) réactive(s) permet de diagnostiquer la présence de Neisseria meningitidis dans l'échantillon.
Exemple 4 : Composition vaccinale incluant dans son spectre une prophylaxie à visée anti-méningococcique et destinée à prévenir toute forme d'infection par Neisseria meningitidis.
Le polypeptide encodé par la SEQ ID n010 est conjugué à une toxine.
Ce polypeptide conjugué est alors ajouté à une composition comportant le vaccin anti-Haemophilus et anti-pneumocoque, ou tout autre vaccin de l'enfance.
La composition résultante peut, après avoir été rendue stérile, être injectée par voie parentérale, souscutanée ou intramusculaire.
Cependant, dans les deux cas, les franges d'interférence sont positionnées spatialement aux mêmes endroits (pour réaliser la même fonction) Il est à noter que le profil de phase du réseau de diffraction conforme à l'invention est gravé à la surface du substrat 11 et non pas enregistré dans le volume de ce substrat 11.
Les degrés de liberté disponibles pour le profil de la gravure sont la forme, la profondeur et aussi le taux de remplissage qui, comme on l'a vu, permettent d'optimiser l'efficacité de diffraction pour un seul ordre.
De plus, la résistance du réseau de diffraction focalisant conforme à l'invention à un flux lumineux incident est identique à celle du matériau constitutif du substrat 11 sur lequel ce réseau est formé.
Cette résistance au flux lumineux est nettement supérieure à celle des gélatines bichromatées utilisées pour l'enregistrement des hologrammes.
On explique en faisant référence aux figures 7 et 8 un procédé de fabrication d'un réseau de diffraction focalisant par transmission, du genre de celui qui est représenté sur les figures 5 et 6 et qui permet la focalisation du faisceau lumineux 10 de longueur d'onde B.
On utilise le substrat de silice 11 qui est transparent à cette longueur d'onde x et l'on forme un hologramme apte à focaliser le faisceau lumineux 10 puis on inscrit la figure d'interférence contenue dans cet hologramme sur une face du substrat 11.
Pour ce faire, on recouvre cette face d'une couche 22 de résine photosensible dont l'épaisseur est égale à la profondeur h souhaitée pour les reliefs du réseaux.
On forme ensuite l'hologramme dans cette couche de résine photosensible 22.
Pour ce faire, on utilise une source lumineuse 24 apte à fournir un faisceau lumineux à rayons parallèles 26 de longueur d'onde B.
On réalise donc de préférence l'enregistrement de la figure d'interférence de l'hologramme à cette longueur d'onde d'utilisation X car, dans le cas contraire, il faudrait utiliser des fronts d'onde complexes et difficiles à obtenir.
Pour former l'hologramme dans la couche de résine photosensible 22, on envoie le faisceau lumineux 26 sous l'angle d'incidence Oj, de préférence égal à 30 , à travers le substrat 4, en direction de la face portant la couche de résine photosensible 22.
Au moyen d'un miroir semi-transparent 28 placé sur la trajectoire du faisceau 26, on prélève une partie 30 de celui-ci.
On dévie la partie 30 ainsi prélevée au moyen d'un miroir 32 de façon que le faisceau lumineux réfléchi par ce miroir 32 ait également un angle d'incidence Oi par rapport à la couche 22.
On dispose un écran opaque 34 percé d'un trou 36 sur le trajet de ce faisceau réfléchi pour que ce trou 36 constitue une source lumineuse ponctuelle.
On précise que le faisceau réfléchi par le miroir 32 est focalisé sur le trou 36 au moyen d'une optique appropriée 38.
Le diamètre du trou 36 est égal à quelques fois la longueur d'onde k.
Si on désire détecter le mouvement d'un objet dans un environnement sensiblement immobile, on détermine la zone de la matrice dans laquelle simultanément le signal binaire a la valeur correspondant à un dépassement du seuil et le signal numérique d'amplitude varie d'une valeur significative entre pixels voisins d'une trame.
Au contraire, si on désire détecter l'immobilité d'un objet dans un environnement sensiblement en mouvement, on détermine la zone de la matrice dans laquelle simultanément le signal binaire a la valeur correspondant à un non-dépassement du seuil et le signal numérique d'amplitude ne varie pas entre pixels voisins d'une trame.
De préférence le dispositif pour le repérage, la localisation et la détermination de la vitesse et de la direction orientée du déplacement d'une zone en mouvement relatif dans une scène, par mise en oeuvre du procédé sus-mentionné, est caractérisé en ce qu'il comporte en outre: - des moyens de lissage, dont une entrée reçoit ledit signal vidéo numérique et calcule, pour les pixels successifs d'une trame de ce signal vidéo, un signal lissé, dans lequel les variations temporelles du signal vidéo numérique d'entrée sont diminuées, par mise en ocuvre d'un signal de seuil reçu sur une autre entrée et d'une constante de temps relative à chaque position de pixel d'une trame, dont la valeur est successivement modifiée afin que le lissage conserve, tout en la réduisant, la tendance de variation du signal vidéo numérique entrant, ces moyens de lissage coopérant avec l'unité de mémoire qui reçoit, stocke et restitue les valeurs actualisées, pour chaque portion de pixel d'une trame, du signal lissé et de ladite constante de temps et débitent, sur leurs sorties, au moins la succession, pour chaque position de pixel, des valeurs de la constante de temps actualisée et des valeurs d'un signal binaire de dépassement ou non-dépassement dudit seuil par la valeur absolue de la différence entre la valeur du pixel et sa valeur lissee; ladite unité de traitement spatial réalisant la répartition matricielle, par lignes et colonnes en nombre réduit, des sorties desdits moyens de lissage, à savoir des valeurs successives de la constante de temps et dudit signal binaire; et - des moyens de repérage pour repérer, dans laditerépartition matricielle, une zone de pixels dans laquelle, à la fois, soit la valeur dudit signal binaire correspond à un dépassement de seuil et ladite constante de temps varie entre pixels voisins d'une valeur significative dans une direction, et pour produire des signaux de sortie indiquant la localisation de ladite zone et la vitesse et la direction orientée du déplacement dans ladite zone, soit la valeur dudit signal binaire correspond à un nondépassement du seuil et ladite constante de temps ne varie pas entre pixels voisins et pour produire des signaux de sortie indiquant la localisation de ladite zone.
De préférence dans le cas où le dispositif selon l'invention les comporte, les moyens formant les histogrammes comprennent chacun: - des entrées recevant le signal dont on forme l'histogramme et un signal de validation en provenance des moyens de repartition matricielle; et - des moyens pour établir deux histogrammes unidimensionnels linéaires pour les deux coordonnées du plan et pour combiner ces deux histogrammes linéaires en un histogramme de surface représentant la zone de variation significative du signal d'entrée; et - une sortie débitant un signal représentatif de cette zone.
En outre les moyens formant les histogrammes comprennent de préférence: - des moyens de calcul de changement de repère, dont les entrées reçoivent un signal de séquence de lignes, un signal de séquence de colonnes et un signal d'horloge de pixel et dont la sortie est représentative du changement de repère; - deux moyens de formation d'histogrammes pour deux axes, recevant les deux signaux de repère et formant les histogrammes de ces axes; et - des moyens de zone recevant les sorties des deux moyens de formation d'histogrammes pour les deux axes et débitant, en sortie, un signal d'information de pente globale des deux axes.
Dans une variante, on substitue à ladite constante de temps le numéro d'ordre des intervalles, en nombre limité, selon lesquels on découpe la valeur absolue de la différence entre la valeur de pixel actuel et la valeur juste antérieure du même pixel, éventuellement après lissage,pour chaque position de pixel.
Avantageusement pour déterminer le signal binaire de dépassement ou non-dépassement du seuil, on compare à un seuil, pour chaque position de pixel, la valeur absolue de la différence entre la valeur du pixel actuel qui entre et la valeur du même pixel juste antérieure en provenance de la mémoire.
En ce qui concerne le signalnumérique d'amplitude, on le génère, de préférence, sous la forme d'un nombre entier qui représente la tendance au rapprochement entre la valeur du pixel actuel et la valeur de ce même pixel juste antérieure, éventuellement lissée, pour chaque position de pixel.
De préférence pour déterminer tant le signal binaire que le signal numérique d'amplitude, on utilise, pour la valeur du pixel juste antérieure, une valeur lissée de celuici mise en mémoire, afin de réduire les variations temporelles excessives de ce signal de pixel qui peuvent exister dans le signal vidéo numérique d'entrée en provenance de la caméra vidéo ou autre dispositif d'observation à sortie numérique.