INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Egalement, chaque plaque 7 des dispositifs d'ancrage s'étend avantageusement en regard d'au moins une apophyse transverse 8 de la vertèbre, et comporte des moyens d'ancrage sur une apophyse transverse 8. Ces moyens d'ancrage peuvent être formés par au moins un crochet 28 ( plaque de gauche sur la figure,6) articulé à l'extrémité transverse 29 de la plaque 7 autour d'un axe horizontal 30 et prenant appui sur la face supérieure et/ou sur la face inférieure de l'apophyse transverse 8. L'extrémité transverse 29 de la plaque 7 présente donc, pour chaque crochet 28, une chape 31 dans laquelle le crochet 28 est articulé autour de son axe 30.Chaque crochet 28 est muni, à son extrémité opposée à l'apophyse transverse 8, d'une vis verticale 32 engagée dans un taraudage du crochet 28 et prenant appui sur une surface horizontale du fond de la chape 31 de la plaque 7 pour serrer ce crochet 28 contre la surface correspondante de l'apophyse transverse 8.
Spectre de R.M.N. du proton (400 MHz, CDCl3, 6 en ppm): 0,42 (dd, J=16 et 5,5 Hz, 1H, 5 ss2) 0,92 (t, J=7,5 Hz, 3H: CH3 2 y), de 1,15 à 1,40 (mt, 2H: 3 ss2 et 3 Y2) 1,33 (d, J=7,5 Hz, 3H: CH3 1 y), de 1,55 à 1,80 (mt, 3H: 3 y1 et CH2 2 ss), de 2,00 à 2,15 (mt, 2H, 3 ss1 et 5 ), 2,30 (d large, J=16 Hz, 1H: 5 61), 2,33 (d, J=16 Hz, 1H: 5 ss1), 2,63 (s, 6H: N(CH3 )2 4), 2,76 (dt, J=13,5 et 4,5 Hz, 1H: 5 e2), 2,98 (dd, J=12 et 4,5 Hz, 1H: 4 ss2) de 3,20 à 3,40 (mt, 3H: 4 ss1 - 3 #1 et 1H du ArCH2 allyle), 3,25 (s, 3H: NCH3 4), 3,48 (dd, J=16 et 6,5 Hz, 1H: l' autre H du ArCS2 allyle), 3,56 (mt, 1H: 3 62) 4,57 (dd, J=6,5 et 7,5 Hz, 1H, 3 a), 4,68 (dd large, J=13,5 et 7,5 Hz, 1H: 5 #1), 4,84 (mt, 1H: 2a), 4,90 (d large, J=10 Hz, 1H: la), de 5,00 à 5,15 (mt, 2H: =CH2), 5,23 (d large, J=5,5 Hz, 1H: 5a), 5,28 (dd, J=12 et 4,5 Hz, 1H 4α), de 5,80 à 5,95 (mt, 3H: 6 a - 1ss et CH allyle), 6,53 (d, J=10 Hz, 1H: NH 2), 7,04 (mt, 3H: H Aromatiques en 4), de 7,15 à 7,40 (mt, 5H: H Aromatiques 6), 7,45 (dd, J=8,5 et 2 Hz, 1H: 1' H4), 7,48 (dd, J=8,5 et 4 Hz, 1H: 1' H5), 7,88 (dd, J =4 et 2 Hz, 1H: 1' H6), 8,45 (d, J=10 Hz, 1H: NH 1), 8,76 (d, J=9,5 Hz, 1H: NH 6), 11,64 (s, 1H: OH) Le bromure de 4-N-allylammonio pristinamycine IA peut être préparé de la manière suivante : On place dans un tricol maintenu sous atmosphère d'azote, 10 g de pristinamycine IA en solution dans 25 cm3 de dichloro-1,2 éthane puis 2,5 cm3 de bromure d'allyle. Le mélange est chauffé 7 heures à 400C puis agité à température ambiante pendant 14 heures. On ajoute alors sous agitation en 10 minutes, 200 cm3 de toluène et le mélange est agité 30 minutes. Le précipité formé est filtré, rinçé par 50 cm3 de toluène puis séché sous pression réduite (135 Pa) à 450C pour donner 10,5 g d'un solide qui est trituré dans 200 cm3 d'acétate d'éthyle à 400C, puis à température ambiante pendant 1 heure. Le solide est filtré puis séché à 450C sous pression réduite (135 Pa) pour donner 10 g de bromure de 4-N-allylammonio pristinamycine IA sous forme d'un solide blanc fondant vers 210 C.
Spectre de R.M.N. du proton (400 MHz, CDCl3 avec ajout de quelques gouttes de CD3 OD d4, ô en ppm): 0,75 (t, J=7,5 Hz, 3H: CH3 2 y), de 1,00 à 1,35 (mt, 3H: 3 ss2 - 3 Y2 et 5 ss2) , 1,18 (d, J=7,5 Hz, 3H: CH3 1 y), , de 1,45 à 1,65 (mt, 3H: 3 y1 et CH2 2 ss), 1,95 (mt, 1H: 3 ss1), 2,15 (mt, 1H: 5 ô , 2,28 (d large, J=16 Hz, 1H: 5 61), 2,55 (d, J=16 Hz, 1H: 5 ss1), 2,72 (dt, J=13,5 et 4,5 Hz, 1H: 5 e2), 2,95 (s, 3H: NCH3 4), de 3,10 à 3,50 (mt, 4H: CH2 4 ss et CH2 3 6), 3,40 et 3,48 (2s, 6H en totalité: N(CH3 )2 4), 4,35 (t, J=7,5 Hz, 1H, 3 a), de 4,40 à 4,60 (mt, 3H: NCH2 allyle et 5 #1), 4,64 (mt, 1H: 2a), 4,93 (s large, 1H: la), de 5,30 à 5,75 (mt, 7H: CH2 allyle - 5 a - 4 a - 6 a - 1ss et CH allyle), 6,88 (d, J=10 Hz, 1H: NH 2), de 7,05 à 7,25 (mt, 8H: H Aromatiques 6 - 1' H4 et 4 b), 7,35 (dd, J=8 et 4 Hz, 1H: 1' H5), 7,60 (d, J=8,5 Hz, 2H: 4 e), 7,65 (mt, 1H: 1' H6), 8,58 (d, J=9,5 Hz, 1H: NH 6).
Exemple F Préparation de la 4r-tert-butyl-dés (4r-diméthylamino) pristinamycine 1A On réalise à l'échelle de 60 erlenmeyers une culture de la souche SP92::pVRC508 en milieu de production avec ajout à 16 heures de 1 ml d'une solution à 5 g/l dans la soude 0,1N de 4-tertbutylphénylalanine(R,S). Au terme de 40 heures de culture, les 1,8 litres de moût issus de 60 erlenmeyers sont extraits par 2 volumes d'un mélange de 66% de tampon phosphate 100 mM pH 2,9 et 34% d'acétonitrile, puis centrifugés. Le surnageant est extrait par 2 fois 0,5 volumes de dichlorométhane. Les phases chlorométhyléniques sont lavées à l'eau puis combinées, séchées sur sulfate de sodium et évaporées. L'extrait sec est repris par 20 ml de dichlorométhane et injecté sur une colonne de silice (30 g) montée dans le dichlorométhane et éluée successivement par palliers de O à 10 % de méthanol dans le dichlorométhane. Les fractions contenant le nouveau dérivé de pristinamycine IA sont regroupées et évaporées. Le résidu sec est repris par 7 ml d'un mélange 60% eau et 40% acétonitrile et injecté en 2 fois sur une colonne semi-préparative Nucléosil 7u C8 10x250 mm (Macherey Nagel) éluée dans un mélange de 55% de tampon phosphate 100 mM pH 2,9 et 45% d'acétonitrile. Les fractions contenant la nouvelle pristinamycine sont regroupées et extraites par un volume de dichlorométhane. La phase organique est lavée à l'eau, séchée sur sulfate de sodium puis évaporée. On obtient 30 mg de 46- tertbutyl-dés(4r-diméthylamino) pristinamycine IA.
Spectre de R.M.N. 1 H (400 MHz, CDCl3, 6 en ppm, réf. TMS): 0,21 (dd, J = 16 et 5,5 Hz, 1H, 5 ss2) 0,91 (t, J = 7,5 Hz, 3H: CH3 2 y), 1,17 (mt, 1H: 3 ss2) de 1,20 à 1,40 (mt, 1H: 3 Y2) 1,33 (s, 9H: CH3 du tert-butyle), 1,35 (d, J = 7,5 Hz, 3H: CH3 1 ), de 1,50 à 1,85 (mt, 3H: 3 1 et CH2 2 ss), 2,04 (mt, 1H, 3 (31). 2,13 (mt, 7H, 5 62) 2,30 (mt, 2H: 5 61 et 5 ss1), 2,80 (dt, J = 13 et 4 Hz, 1H: 5 E2), 3,00 (dd, J = 12 et 4 Hz, 1H: 4 ss2) 3,29 (s, 3H: NCH3 4), 3,31 et 3,59 (2 mts, 1H chacun: CH2 3 b), 3,40 (t, J = 12 Hz, 1H: 4 ss1), 4,57 (t, J = 7,5 Hz, 1H, 3 a), 4,74 (dd large, J = 13 et 7 Hz, 1H: 5 #1), 4,85 (mt, 1H: 2a) , 4,90 (d large, J = 10 Hz, 1H: 1α), 5,21 (d large, J = 5,5 Hz, 1H: 5 a), 5,25 (dd, J = 12 et 4 Hz, 1H: 4 a), 5,87(d, J = 9 Hz, 1H: 6 a), 5,92 (q large, J = 7,5 Hz, 1H: 1ss), 6,56 (d, J = 9,5 Hz, 1H: NH 2), de 7,10 à 7,30 (mt, 5H: H Aromatiques 6), 7,28 (d, J = 7,5 Hz, 2H: 46), 7,38 (d, J = 7,5 Hz, 2H: 4E), 7,49 (d large, J = 8,5 Hz, 1H: 1' H4), 7,53 (dd, J = 8,5 et 4 Hz, 1H: 1' Hg), 7,86 (d, J = 4 Hz, 1H: 1' H6), 8,45 (d, J = 10 Hz, 1H: NH 1), 8,74 (d, J = 9 Hz, 1H: NH 6), 11,65 (s, 1H: OH).
Le chlorhydrate de 4-tert-butylphénylalanine (R,S) peut être préparé de la manière suivante : Dans un tricol surmonté d'un réfrigérant sont additionnés 25 g de 4 (tert butyl) benzyl acétamidomalonate de diéthyle et 250 ml d'acide chlorhydrique à 37%. Le mélange est agité et chauffé au reflux jusqu'à ce qu'il n'y ait plus de dégagement gazeux. Après refroidissement du mélange réactionnel le précipité obtenu est filtré puis recristallisé dans l'acétonitrile pour donner 25,6 g de chlorhydrate de 4-tert-butylphénylalanine (R,S) sous forme d'un solide blanc fondant à 234"C.
Le 4-(tert butyl) benzyl acétamidomalonate de diéthyle peut être préparé de la manière suivante Dans un tricol surmonté d'un réfrigérant sont additionnés sous atmosphère d'azote, 25 g de bromure de 4-tert-butyl benzyle, 50 ml de toluène anhydre et 3,1 g d'hydrure de sodium en suspension dans l'huile à 80% puis 21,8 g d'acétamido malonate de diéthyle. Le mélange est chauffé à 1100C pendant 17 heures. Après refroidissement on ajoute lentement à l'aide d'une ampoule de coulée, 15 ml d'éthanol absolu puis 15 ml d'éthanol à 50% puis 50 ml d'eau. La phase organique est décantée et la phase aqueuse lavée par 3 fois 50 ml d'éther diéthylique. Les phases organiques sont réunies, lavées à l'eau puis séchées sur sulfate de sodium. Après filtration et concentration sous pression réduite, le produit est cristallisé dans l'éther de pétrole pour donner 25 g de 4-(tert-butyl) benzyl acétamidomalonate de diéthyle sous forme d'un solide blanc fondant à 800C.
Le mutant SP92::pVRC508 a été cultivé en milieu de production liquide. La fermentation a été réalisée comme suit : 0,5 ml d'une suspension de spores de la souche précitée est ajouté en conditions stériles à 40 ml de milieu inoculum dans un erlen chicané de 300 ml.
Le milieu inoculum est constitué par 10 g/l de Corn Steep, 15 g/l de saccharose, 10 g/l de (NH4)2SO4, 1 g/l de K2HPO4, 3 g/l de NaCl, 0,2 g/l de MgSO4-7H2O et 1,25 g/l de CaCO3. Le pH est ajusté à 6,9 par de la soude avant l'introduction du carbonate de calcium. Les erlens sont agités pendant 44 h à 270C sur un agitateur rotatif à la vitesse de 325 rpm. 2,5 ml de la culture précédente âgée de 44 heures sont ajoutés stérilement à 30 ml de milieu de production dans un erlen de 300 ml. Le milieu de production est constitué par 25 g/l de farine de soja, 7,5 g/l d'amidon, 22,5 g/l de glucose, 3,5 g/l de levure fourragère, 0,5 g/l de sulfate de zinc et 6 g/l de carbonate de calcium. Le pH est ajusté à 6,0 par de l'acide chlorhydrique avant l'introduction du carbonate de calcium. Les erlens sont agités à 270C sur un agitateur rotatif à la vitesse de 325 rpm. Au bout de 16h, 1 ml d'une solution d'un des précurseurs listés dans le tableau 3 (généralement 5 ou 10 g/l) est ajouté à la culture. Celle-ci est arrêtée 8 ou 24 heures plus tard. Aussitôt le moût est volumé et on lui ajoute 2 volumes de phase mobile composée de 34 % d'acétonitrile et 66 % d'une solution de 0,1 M de KH2PO4 (ajusté à pH 2,9 par H3PO4 concentré) permettant l'extraction des pristinamycines. Après agitation, le tout est centrifugé et les pristinamycines contenues dans le surnageant sont extraites et purifiées. Elles sont également dosées par CLHP en injectant 150 pl du surnageant de centrifugation sur une colonne Nucléosil 5-C8 de 4,6 x 150 mm éluée par un mélange de 40 % d'acétonitrile et de 60 % de tampon phosphate 0,1 M pH 2,9.
Exemple G Préparation de la 44-isopropyl-dés(44-diméthylamino) pristinamycine IA- On réalise à l'échelle de 60 erlenmeyers une culture de la souche SP92::pVRC508 en milieu de production avec ajout à 16 heures de 1 ml d'une solution à 10 g/l dans la soude 0,1N de 4- centrifugés. Le surnageant est extrait par 2 fois 0,5 volumes de dichlorométhane. Les phases chlorométhyléniques sont lavées à l'eau puis combinées, séchées sur sulfate de sodium et évaporées. L'extrait sec est repris par 20 ml de dichlorométhane et injecté sur une colonne de silice (30 g) montée dans le dichlorométhane et éluée successivement par paliers de 0 à 10 % de méthanol dans le dichlorométhane. Les fractions contenant le nouveau dérivé de pristinamycine IA sont regroupées et évaporées. On obtient 61 mg de résidu sec. Celui-ci est repris par 9 ml d'un mélange 60% eau et 40% acétonitrile et injecté en 3 fois sur une colonne semi-préparative Nucléosil 7 C8 10x250 mm (Macherey Nagel) éluée dans un mélange de 55% de tampon phosphate 100 mM pH 2,9 et 45% d'acétonitrile. Les fractions contenant la nouvelle pristinamycine sont regroupées et extraites par un volume de dichlorométhane. La phase organique est lavée à l'eau, séchée sur sulfate de sodium puis évaporée. On obtient 51 mg de 4#-isopropyl-dés(4#-diméthylamino) pristinamycine IA.
Spectre de R.M.N. 1 H (250 MHz, CDCl3, 6 en ppm, réf. TMS): 0,31 (dd, J = 16 et 5,5 Hz, 1H, 5 ss2) 0,91 (t, J = 7,5 Hz, 3H: CH3 2 y), de 1,00 à 1,45 (mt, 2H: 3 ss2 et 3 Y2), 1,25 (d, J = 7,5 Hz, 6H: CH3 de l'isopropyle), 1,35 (d, J = 7,5 Hz, 3H: CH3 1 y), de 1,50 à 1,85 (mt, 3H: 3 y1 et CH2 2 ss), de 1,95 à 2,20 (mt, 2H, 3 ss1 et 5 #2), 2,30 (mt, 2H: 5 61 et 5 ss1), 2,80 (dt, J = 13 et 4 Hz, 1H: 5 e2), 2,88 (mt, 1H: CH de 1' isopropyle), 2,98 (dd, J = 12 et 4 Hz, 1H: 4 ss2), 3,30 (s, 3H: NCH3 4), 3,32 et 3,55 (2 mts, 1H chacun: CH2 3 b), 3,38 (t, J = 12 Hz, 1H: 4 ss1), 4,55 (t, J = 7,5 Hz, 1H, 3 a), 4,72 (dd large, J = 13 et 7 Hz, 1H: 5 E1), 4,85 (mt, 1H: 2a) , 4,88 (d large, J = 10 Hz, (d 1α), 5,21 (d large, J = 5,5 Hz, 1H: 5 ), 5,25 (dd, J = 12 et 4 Hz, 1H: 4 a), 5,87(d, J = 9 Hz, 1H: 6 a), 5,90 (q large, J = 7,5 Hz, 1H: 1ss), 6,50 (d, J = 9,5 Hz, 1H: NH 2), de 7,05 à 7,35 (mt, 9H: H Aromatiques 6 - 4e et 46), 7,50 (mt, 2H: 1' Hg et 1' H4), 7,86 (dd, J = 4 et 1,5 Hz, 1H: 1' H6), 8,40 (d, J = 10 Hz, 1H: NH 1), 8,72 (d, J = 9 Hz, 1H: NH 6), 11,60 (s, 1H: OH).
La 4-isopropylphénylalanine (R,S) peut être préparée de la manière suivante On place dans un tricol 7 g de phosphore rouge et 8 g de 4-(isopropyl benzylidène) 2-méthyl 5-oxazolone dans 45 ml d'anhydride acétique puis on ajoute lentement sous agitation à l'aide d'une ampoule de coulée 35 ml d'acide iodhydrique à 57%. En fin d'addition le mélange est chauffé 3 heures 30 minutes au reflux puis laissé 3 jours à température ambiante. Le mélange réactionnel est filtré, le solide obtenu rincé par 2 fois 10 ml d'acide acétique puis le filtrat concentré à sec sous pression réduite. Le résidu obtenu est repris par 100 ml d'eau distillée, concentré à sec sous pression réduite pour donné un solide qui est repris dans 50 ml d'eau distillée puis extrait par 3 fois 50 ml d'éther diéthylique après addition de 0,5g de sulfite de sodium. L'éther est décanté et la phase aqueuse placée sous pression réduite pour éliminer les traces d'éther diéthylique.
On ajoute à la phase aqueuse 2 g de noir animal, on chauffe à 40500C, on filtre sur Clarcel puis on rince avec un minimum d'eau. Le pH est ajusté à 5 par addition, à 40C, d'ammoniaque à 32%. Le précipité obtenu est filtré à froid, rinçé par 2 fois 10 ml d'eau, 10 ml d'éthanol puis par 2 fois 10 ml d'éther pour donner après sèchage sous pression réduite à 20"C, 3,97 g de 4-isopropylphénylalanine (R,S) sous forme d'un solide blanc fondant à une température supérieure à 260"C.
La 4-(isopropyl benzylidène) 2-méthyl 5-oxazolone peut être préparée de la manière suivante : On place dans un ballon muni d'un réfrigérant, 18,52 g de Nacétylglycine, 10,6 g d'acétate de sodium, 20 ml de 4isopropylbenzaldéhyde et 57 ml d'anhydride acétique. On agite 30 minutes puis le mélange est agité 1 heure à 1100C puis 15 heures à température ambiante. Le mélange réactionnel est versé sur 600 ml d'eau et 400 ml d'éther de pétrole préalablement chauffé à 500C. La phase organique est décantée et la phase aqueuse lavée par 2 fois 150 ml d'éther de pétrole.
Les phases organiques sont rassemblées, séchées sur sulfate de magnésium, filtrées et concentrées sous pression réduite jusqu'à 100 ml et obtention d'un précipité. Celui-ci est filtré, lavé par 2 fois 50 ml de pentane pour donner 8,2 g de 4-(isopropyl benzylidène) 2méthyl 5-oxazolone sous forme d'un solide jaune fondant à 770C.
Exemple H Préparation de la 4#-méthoxy-dés(4#-diméthylamino) pristinamycine IA.
On réalise à l'échelle de 12 erlenmeyers une culture de la souche SP92::pVRC508 en milieu de production avec ajout à 16 heures de 1 ml d'une solution à 5 g/l dans la soude 0,1N de 4-méthoxyphénylalanine (R,S). Au terme de 40 heures de culture, les 0,35 litres de moût issus de 12 erlenmeyers sont extraits par 2 volumes d'un mélange de 66% de tampon phosphate 100 mM pH 2,9 et 34 % d'acétonitrile, puis centrifugés. Le surnageant est extrait par 2 fois 0,5 volumes de dichlorométhane. Les phases chlorométhyléniques sont lavées à l'eau puis combinées, séchées sur sulfate de sodium et évaporées. L'extrait sec est repris par 20 ml de dichlorométhane et injecté sur une colonne de silice (30 g) montée dans le dichlorométhane et éluée successivement par paliers de 0 à 10 % de méthanol dans le dichlorométhane Les fractions contenant le nouveau dérivé de pristinamycine IA sont regroupées et évaporées. On obtient 14 mg de résidu sec. Celui-ci est repris par 3 ml d'un mélange 60% eau et 40% acétonitrile et injecté sur une colonne semi-préparative Nucléosil 7 > C8 10x250 mm (Macherey Nagel) éluée dans un mélange de 60% de tampon phosphate 100 mM pH 2,9 et 40% d'acétonitrile. Les fractions contenant la nouvelle pristinamycine sont regroupées et extraites par un volume de dichlorométhane. La phase organique est lavée à l'eau, séchée sur sulfate de sodium puis évaporée. On obtient 12 mg de 44- méthoxy-dés(44-diméthylamino) pristinamycine IA.
La vérification des disques 14 s'effectue sur le véhicule avec les éléments restant en place. Le contrôleur est monté sur le support 2. La fourche est positionnée à cheval sur le disque, le contact de la bille 13 sur la face interne du disque étant assuré par le décentrage de l'axe 17 et par le ressort 22. La touche mobile du comparateur 3 est amenée en contact avec l'autre face. La mesure s'effectue en faisant tourner le disque à la main. La lecture de la variation de l'épaisseur est directement visible sur le comparateur.
A ce jour, cette opération s'effectue à l'aide d'un micromètre par une multitude de points de mesure obligeant de nombreux déplacements du micromètre.
Le crochet 4 de dépose de ressort est constitué d'une tige d'acier 25 d'environ deux millimètres de diamètre, recourbée à son extrémité libre, l'autre extrémité étant solidaire d'une poignée 26 réalisée par exemple en matière plastique surmoulée.
L'outil de mise en place de ressort 5 est formé d'une barre d'acier cylindrique pourvue d'une partie effilée dont la pointe se termine par une sphère 27, la partie cylindrique 28 est striée de manière à faciliter sa manipulation. La partie effilée se glisse dans l'une des boucles du ressort 29, puis la sphère est positionnée dans le trou d'ancrage de la mâchoire 30 en assurant le maintien de l'outil pendant qu'on lui fait subir un mouvement de levier, ce qui fait glisser la boucle sur la partie effilée jusqu'à ce qu'elle aboutisse au trou d'ancrage.
Ces deux outils sont destinés à faciliter le démontage (figures 6 et 7) et le remontage (figures 9 et 10 ) des ressorts 29 de mâchoires 30 de frein à tambour lors du remplacement desdites mâchoires, ce qui s'effectue habituellement au moyen de pinces à becs recourbés au prix de beaucoup de temps et de difficultés en raison de l'accès malaisé de ces ressorts.
Il n'est pas rare d'apprendre qu'un accident a eu lieu à la suite de la défaillance d'un frein de parking. Cela se produit le plus souvent lorsque les possibilités de réglage ne permettent plus de donner une tension suffisante au câble de commande. Dans ce cas l'ensemble câble-gaine doit être changé. Or il s'agit d'une opération fastidieuse trop souvent remise à la prochaine intervention.
Les outils de pose de gaine 6 et de blocage de ressort 7 ont précisément pour but de faciliter ce travail. Le premier est destiné à monter à force la butée de gaine dans le plateau de frein. Il est constitué d'un tube métallique dont le diamètre intérieur correspond au diamètre extérieur d'une gaine courante, ce tube étant fraisé latéralement sur environ la moitié de sa longueur, de manière à créer une échancrure 31 permettant le passage de la gaine 32. L'opérateur glisse l'outil le long de la gaine jusqu'à le mettre en appui contre la butée 33 prépositionnée dans le plateau. Il suffit alors de frapper avec un marteau 34 sur l'extrémité de l'outil pour assurer un emmenchement correct de la butée (figure 13).
L'outil de blocage de ressort 7 permet de dégager aisément la tête 35 du câble de frein de parking (figure 19), soit pour changer l'ensemble gaine-câble, soit pour démonter le mécanisme du frein (remplacement des mâchoires 30, par exemple). Il est constitué d'un manche formé d'une poignée 36 et d'une tige 37 terminée par une partie à section hexagonale 38 ("six pans") s'engageant dans l'embout amovible 8. Cet embout est terminé par une griffe amincie 40 et comporte un élément coulissant 41 apte à être serré contre cette griffe grâce à une vis interne 42 manoeuvrée au moyen de la partie à section hexagonale 38 du manche (figure 16).
L'embout amovible 8 monté sur la tige 37 est positionné sur le câble. La minceur de la griffe 40 permet de l'engager entre le levier 43 actionné par le câble, et le ressort de rappel 44 enfilé sur ce câble.
Ledit ressort est repoussé par déplacement de l'outil et l'élément coulissant 41 est serré, par rotation de la poignée 36, jusqu'au blocage du câble dans la griffe (figure 18), puis le manche est retiré en laissant l'embout amovible 39 sur le câble, et le câble est dégagé.
Au cours des interventions de maintenance de freins de véhicules, il est fréquent d'avoir à démonter ou monter des raccords de circuits hydrauliques. Cela ne peut se faire qu'avec une clé à fourche, les clés à douille ne pouvant pas être utilisées en raison de la présence du conduit 45. Les emplacements où sont situés ces raccords ne permettent le plus souvent qu'un très faible débattement de la clé, parfois limité à un sixième de tour, ce qui impose de retirer puis de remettre en place la clé un très grand nombre de fois pour monter ou démonter un raccord.
Les clefs à main longue 9 et courte 10 sont des clés à douille présentant deux particularités: elles comportent une fente latérale 46 sur toute leur longueur permettant le passage du conduit 45, ainsi qu'une surface externe 47 cylindrique striée. Le blocage ou le déblocage du raccord s'effectue au moyen d'une clé classique, mais la plus grande partie du vissage ou du dévissage peut se faire très rapidement.
Les opérations de maintenance des organes de freinage d'un véhicule comportant à la fois des freins à disque et à tambour se dérouleront dans un ordre déterminé, à l'aide des outils ci-dessus, et seront effectuées selon une suite de séquences bien précises: - Démontage des roues.
- Vérification de l'épaisseur des disques au moyen du contrôleur d'épaisseur 1. Une épaisseur irrégulière, risquant de provoquer du "broutage" ou même des blocages intempestifs de la roue, entraînera normalement le remplacement du disque.
- Vérification des plaquettes et remplacement si nécessaire.
- Démontage des freins arrière à l'aide du crochet 4 et de l'outil de blocage de ressort 7.
Lors ae la marche le ceinturon de travail respecte le pas pelvien: mouvement de l'ilium, allant de l'ilium postérieur à l'ilium antérieur.
RESULTAT DE L'ELECTROMYOGRAPHIE L'électromyographie des abdominaux confirme que le rendement musculaire du couple diaphragme-abdominaux est amélioré avec un ceinturon de travail lors des manutentions manuelles pour une charge de 40 kg soulevé du sol.
TRAVAUX REALISES PAR LE PROFESSEUR TOULOUSE, service d'exploration fonctionnelle du C.H.R de RENNES PONCHAILLOU.
En effet, I'E.M.G des abdominaux est moins riche avec le ceinturon de travail lors du soulevé de terre d'une charge de 40 kg : le ceinturon vient renforcer les abdominaux et le roule du couple musculaire est trés amélioré, avec une économie d'énergie musculaire.
Ces résultats sont parfaitement en accord avec la physiologie musculaire (pnncipe de notre physiologie: équilibre, confort, économie), (voir les diagrammes des figures 6 et 7) RESULTAT DE L'ELECTROMYOGRAPHIE DOCTEUR POUYET NEUROLOGUE Pour un soulevé de charge au sol (10 kg, 20 kg, 30 kg, 40 kg) électromyographie d'un grand droit et d'une masse sacro-lombaire droite en méme temps.
CONCLUSION DU DOCTEUR POUYET Le tracé électromyographique est moins nche au niveau de la paroi abdominale avec le ceinturon de travail; il n'y a pas de changement significatif au niveau des muscles lombaires.
RESULTAT DU PORTEUR DE CHARGES La charge est plus facile à soulever car la stabilité de la région lombaire est nettement améliorée, grace à famelioration du rendement musculaire du couple abdominaux-diaphragme. (votr les diagrammes des figures 8 et 9) En référence à ces dessins: - la figure 1 représente la vue à plat du ceinturon de travail.
- la figure 2 représente la vue de profil du ceinturon de travail.
- la figure 3 représente le ceinturon dans un plan frontal, positionné sur la région lombaire.
- la figure 4 représente le ceinturon dans un plan sagittal, positionné sur la région lombaire.
- la figure 5 représente la ceinture intérieure contre-passants, avec ses fixations.
Le ceinturon de travail comporte: - une partie arrière (1) - deux branches (2) et (3) - un plastron-boucie (4) - une languette (5) Le ceinturon, selon l'invention: - une courbure A A qui correspond à la forme du cône (la partie arrière du bassin) au niveau de l'interligne L5-S1 ; le rayon du cercle, sur le ceinturon vu à plat, est compris entre 45 cm et 75 cm.