INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
EXEMPLE 6: Laque aérosol eau/éthanollDME à 55% de COV pour la fixation des cheveux contenant un mélange constitué de 50% en poids en matière sèche de latex rigide et non filmogène et 50%en poids en matière sèche d'oligomère COMPOSITION AVANT CONDITIONNEMENT: - Solution alcoolique à 50% en poids d'oligomère de l'exemple 2 50,00 g - Eau permutée 354,18 g - Ethanol 196,10 9 - Dispersion à 25% en poids de particules non filmogènes 100,00 g de l'exemple 1 LAQUE AEROSOL A 55% EN COV: - Composition ci-dessus 35 g - Diméthyléther 15 g Cette laque contient 5% en poids de matière sèche Après application sur les cheveux, on obtient un excellent pouvoir laquant, de bonnes propriétés cosmétiques et une élimination totale du dépôt au shampooing.
EXEMPLE 7: Laque aérosol eauléthanollDME à 55% de COV pour la fixation des cheveux contenant un mélange constitué de 50%en poids en matière sèche de latex rigide et non filmogène et 50%en poids en matière sèche d'oligomère COMPOSITION AVANT CONDITIONNEMENT: - Solution alcoolique à 50% en poids d'oligomère de l'exemple 3 50,00 g - Eau permutée 354,18 g - Ethanol 196,10 g - Dispersion à 25% en poids de particules non filmogènes 100,00 g de l'exemple 1 LAQUE AEROSOL A 55% EN COV: - Composition ci-dessus 35 g - Diméthyléther 15 9 Cette laque contient 5% en poids de matière sèche Après application sur les cheveux, on obtient un excellent pouvoir laquant, de bonnes propriétés cosmétiques et une élimination totale du dépôt au shampooing.
Le système ELOSA/MSRV-1 pour la capture et l'hybridation spécifique des produits PCR de la sousfamille A utilise un oligonucléotide de capture cpVlA avec une liaison amine en 5' et un oligonucléotide de détection biotinylé dpVlA ayant respectivement pour séquence: - cpVlA identifié par SEQ ID NO 31 5' GATCTAGGCCACTTCTCAGGTCCAGS 3', correspondant à 1'oligonucléotide de capture ELOSA des produits PCR-nichée MSRV-1 effectuée avec les amorces identifiées par SEQ ID NO 16 et SEQ ID NO 17, suivie éventuellement de l'amplification avec les amorces identifiées par SEQ ID NO 18 et SEQ ID NO 19 sur prélèvement de patients - dpVlA identifié par SEQ ID NO 32 5' CATCTITTTGGICAGGCAITAGC 3' correspondant à 1'oligonucléotide de capture ELOSA de la sous-famille A des produits PCR-"nichée" MSRV-1 effectuée avec les amorces identifiées par SEQ ID NO 16 et SEQ ID NO 17, suivie éventuellement de l'amplification avec les amorces identifiées par SEQ ID NO18 et SEQ ID NO 19 sur prélèvement de patients.
Le système ELOSA/MSRV-1 pour la capture et l'hybridation spécifique des produits PCR de la sous-famille B+C+D utilise le même oligonucléotide de détection biotinylé dpVlA et un oligonucléotide de capture cpVlB avec une liaison amine en S'ayant pour séquence - dpVlB identifié par SEQ ID N"33 5' CTTGAGCCAGTTCTCATACCTGGA 3', correspondant à l'oligonucléotide de capture ELOSA de la sous-famille B + C + D des produits PCR-"nichée" MSRV-1 effectuée avec les amorces identifiées par SEQ ID NO 16 et SEQ ID NO 17, suivie éventuellement de l'amplification avec les amorces identifiées par SEQ ID NO 18 et SEQ ID NO 19 sur prélèvement de patients.
Ce système de détection ELOSA a permis de vérifier qu'aucun des produits PCR ainsi amplifiés à partir de plasmas de patients SEP traités par la DNase ne contenait de séquence de la sous-famille A et que tous étaient positifs avec le consensus des sous-familles B, C et D.
Pour MSRV-2, une technique ELOSA similaire a été évaluée sur des isolats provenant de cultures cellulaires infectées en utilisant les amorces d'amplification PCR suivantes - amorce 5', identifiée par SEQ ID NO 34 5' AGTGYTRCCMCARGGCGCTGAA 3', correspondant à une amorce PCR MSRV-2 5', pour PCR sur prélèvement de cultures, - amorce 3', identifiée par SEQ ID NO 35 5' GMGGCCAGCAGSAKGTCATCCA 3', correspondant à une amorce PCR MSRV-2 3', pour PCR sur prélèvement de cultures, et les oligonucléotides de capture avec une liaison amine en 5' cpV2, et de détection biotinylé dpV2, ayant pour séquences respectives -cpV2 identifiée par SEQ ID NO 36 5 GGATGCCGCCTATAGCCTCTAC 3', correspondant à un oligonucléotide de capture ELOSA des produits de la PCR MSRV-2 effectuée avec les amorces SEQ ID NO 34 et SEQ ID NO 35, ou éventuellement avec les amorces dégénérées définies par Shih (12), -dpV2 identifié par SEQ ID NO 37 5' AAGCCTATCGCGTGCAGTTGCC 3', correspondant à un oligonucléotide de détection ELOSA des produits de la PCR MSRV-2 effectuée avec les amorces SEQ ID NO 34 et SEQ ID NO 35, ou éventuellement avec les amorces dégénérées définies par Shih (12).
Ce système d'amplification PCR avec un couple d'amorces différent de ceux qui ont été précédemment décrits pour l'amplification sur les échantillons de patients, a permis de confirmer l'infection par MSRV-2 de cultures in vitro et d'échantillons d'acides nucléiques utilisés pour les travaux de biologie moléculaire.
En fin de compte, les premiers résultats de détection PCR du génome d'agents pathogènes et/ou infectants, montrent qu'il est vraisemblable que du "virus" libre peut circuler dans le flux sanguin de patients en phase de poussée aigüe, en dehors du système nerveux. Ceci est compatible avec l'existence quasi-systématique de "brèches" dans la barrière hémato-encéphalique des patients en phase active de SEP.
EXEMPLE 7 : OBTENTION DE SEQUENCES DU GENE "env" DU GENOME RETROVIRAL MSRV-i.
Ainsi que cela a déjà été décrit dans l'exemple 5, une technique PCR dérivée de la technique publiée par Frohman (19) a été utilisée. La technique dérivée permet, à l'aide d'une amorce spécifique en 3' du génome à amplifier, d'élonguer la séquence vers la région 5' du génome à analyser. Cette variante technique est décrite dans la documentation de la firme "Clontech Laboratories Inc., (Palo-Alto California, USA) fournie avec son produit "5'-AmpliFINDERTM RACE Kit", qui a été utilisé sur une fraction de virion purifié comme décrit précédemment.
Afin de réaliser une amplification de la région 3' du génome rétroviral MSRV-1 en englobant la région du gène "env", une étude a été réalisée pour déterminer une séquence consensus dans les régions LTR de même type que celles du rétrovirus endogène défectif HSERV-9 (18,24), avec lequel le rétrovirus MSRV-1 présente des homologies partielles.
La même amorce 3' spécifique a été utilisée dans le protocole du kit pour la synthèse du ADNc et l'amplification PCR ; sa séquence est la suivante GTGCTGATTGGTGTATTTACAATCC (SEQ ID NO 45) La synthèse de l'ADN complémentaire (ADNc) et l'amplification PCR monodirectionelle avec l'amorce ci-dessus, ont été réalisées en une étape, selon le procédé décrit dans le brevet EP-A-0 569 272.
Les produits issus de la PCR ont été extraits après purification sur gel d'agarose selon les méthodes conventionnelles (17), puis resuspendus dans 10 ml d'eau distillée. Une des propriétés de la polymérase Taq consistant à ajouter une adénine à l'extémité 3' de chacun des deux brins d'ADN, l'ADN obtenu a été directement inséré dans un plamide à l'aide du kit TA CloningTM (British Biotechnology). Les 2 41 de solution d'ADN ont été mélangés avec 5 41 d'eau distillée stérile, 1 41 d'un tampon de ligation 10 fois concentré "10X LIGATION BUFFER", 2 41 de "pCRTM VECTOR" (25 ng/ml) et 1 41 de "TA DNA LIGASE". Ce mélange a été incubé une nuit à 120C.Les étapes suivantes ont été réalisées conformément au instructions du kit TA Clonings (British Biotechnology). A la fin de la procédure, les colonies blanches de bactéries recombinantes (white) ont été repiquées pour être cultivées et permettre l'extraction des plasmides incorporés selon la procédure dite de "miniprep" (17). La préparation de plasmide de chaque colonie recombinante a été coupée par une enzyme de restriction appropriée et analysée sur gel d'agarose. Les plasmides possédant un insert détecté sous lumière W après marquage du gel au bromure d'éthidium, ont été sélectionnés pour le séquençage de l'insert, après hybridation avec une amorce complémentaire du promoteur Sp6 présent sur le plasmide de clonage du TA Cloning Kit.
La réaction préalable au séquençage a ensuite été effectuée selon la méthode préconisée pour l'utilisation du kit de séquençage "Prism ready reaction kit dye deoxyterminator cycle sequencing kit" (Applied Biosystems, ref. 401384) et le séquençage automatique a été réalisé avec l'appareil "automatic sequencer, modèle 373 A Applied Biosystems selon les instructions du fabricant.
Cette approche technique a été appliquée à un échantillon de virion concentré comme décrit ci-après, à partir d'un mélange de surnageants de culture produits par des lignées lymphoblastoïdes B telles que décrites dans l'exemple 2, établies à partir des lymphocytes de patients atteints de SEP et présentant une activité transcriptase inverse détectable selon la technique décrite par Perron et coll. (3): les surnageants de cultures sont collectés deux fois par semaine, pré-centrifugés à 10 000 trs/min pendant 30 minutes pour éliminer les débris cellulaires, et ensuite, congelés à -80 C ou utilisés tels quels pour les étapes suivantes.Les surnageants frais ou décongelés sont centrifugés sur un coussin de PBS-glycérol 30% à 100 000g pendant 2 h à 4"C. Après élimination du surnageant, le culot sédimenté constitue l'échantillon de virions concentrés, mais non purifiés. Le culot ainsi obtenu est alors repris dans un petit volume d'un tampon adéquat pour l'extraction d'ARN. La réaction de synthèse de ADNc mentionnée plus haut est réalisée sur cet ARN extrait de virion extracellulaire concentré.
L'amplification RT-PCR selon la technique citée plus-haut a permis d'obtenir le clone FBd3 dont la séquence identifiée par SEQ ID NO 46, est présentée dans la figure 13.
Dans la figure 14, l'homologie de séquence entre le clone FBd3 et le rétrovirus HSERV-9 est représentée sur le tableau matriciel par un trait plein, pour toute homologie partielle supérieure ou égale à 65 %. On peut constater que des homologies existent dans les régions flanquantes du clone (avec le gène pol en 5' et avec le gène env puis le LTR en 3'), mais que la région interne est totalement divergente et ne présente aucune homologie, même faible, avec le gène "env" d'HSERV9. De plus, il apparait que le clone FBd3 contient une région "env" plus longue que celle qui est décrite pour l'endogène défectif HSERV-9 ; on peut ainsi constater que la région divergente interne constitue un "insert" entre les régions d'homologie partielle avec les gènes défectifs HSERV-9.
EXEMPLE 8 : AMPLIFICATION, CLONAGE ET SEQUENCAGE DE LA REGION DU GENOME RETROVIRAL MSRV-1 SITUEE ENTRE LES CLONES PSJi7 ET FBd3.
Ensuite, pour réaliser le traitement de fixage sur le tissu de filé composite, on choisit, comme agent de fixage de colorant acide sur nylon, un dérivé d'acide sulfonique aromatique (tanin synthétique, produit de Ipposha K.K., commercialisé avec la marque "Nylox 700"), on ajuste à pH 4, avec de l'acide acétique, une solution aqueuse contenant 8 % de cet agent de fixage, en poids par rapport aux fibres ou au tissu, et on utilise cette solution pour traiter le tissu de filé composite à une température de 600C et pendant 30 minutes, pour fixer le colorant.
Au contraire, dans l'Exemple Comparatif 4, on soumet le tissu aux opérations de teinture et de lavage réducteur en suivant le protocole de l'Exemple 4, mais on n'effectue pas le traitement de fixage du colorant.
On examine ensuite les morceaux de tissu teints obtenus selon l'Exemple 4 et selon l'Exemple Comparatif 4, décrits ci-dessus, pour déterminer dans quelle mesure le colorant peut migrer. Pour cela, on pince ensemble les tissus teints entre un morceau de tissu de nylon et un morceau de tissu de polyester, puis on les met sous pression, sous une charge de 4,5 kg, entre deux feuilles de matière plastique de 12 cm x 5 cm, et on place le tout dans un dessiccateur rempli d'eau, on met le dessiccateur et son contenu dans une étuve et on les y laisse à 40"C pendant 48 heures. Ensuite, on examine les morceaux de tissu de polyester et de nylon entre lesquels avaient été enfermés les tissus teints pour voir si le colorant a migré ou non, à partir des tissus, en comparant avec l'échelle des gris.
Les résultats obtenus sont indiqués dans le tableau 4 cidessous.
Tissu de polyester Tissu de nylon Exemple 4 4-5 4-5 Exemple 3 2-3 Comparatif 4 D'après ces résultats, on voit que, dans le cas des tissus teints en filé composite contenant du polyamide obtenus selon l'Exemple 4, la migration du colorant sur le tissu de polyester et sur le tissu de nylon est assez peu importante, en comparaison du cas du tissu teint en filé composite contenant du polyamide obtenu selon l'Exemple Comparatif 4, ce qui indique que la couleur de la partie en polyamide est plus solide.
Exemple 5 et Exemples Comparatifs 5 et 6 Dans l'Exemple 5 et les Exemples Comparatifs 5 et 6, on prépare pour les teindre des fermetures à glissière, constituées d'éléments d'accouplement obtenus par moulage par extrusion en nylon 6, et de rubans et de fils de couture en poly(éthylène téréphtalate) contenant 4,8 % en poids de polyéthylèneglycol nO 600, incorporé par copolymérisation.
Dans l'Exemple 5, on teint une fermeture à glissière, avec un rapport de bain de 1/30, à llO"C pendant 60 minutes, à l'aide d'une dispersion aqueuse contenant, en tant que colorants dispersés, 2,1 % du colorant rouge Miketon Polyester Red 3B-SF (produit de Mitsui Toatsu Dye Co., Ltd.), 0,005 % du colorant bleu Foron Brilliant Blue SE-CTLY (produit de Sandoz Corp.) et 0,93 % du colorant orangé Dianix Orange G-SE (produit de Mitsubishi Chemical Industries, Ltd.), les proportions indiquées étant rapportées au poids de fibres ou de tissu.
Puis on soumet la fermeture à glissière ainsi teinte à un traitement simultané de réduction et de lavage, à 800C pendant 30 minutes, avec une solution aqueuse contenant de la soude caustique, un hydrosulfite et un détergent (produit de Dai-ichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd., commercialisé avec la marque "Amiradin D"), tous en une concentration égale à 2 g/l.
On effectue ensuite le traitement de fixage du colorant sur la fermeture à glissière, en utilisant d'abord une solution aqueuse contenant 6 %, par rapport au poids des fibres ou du tissu, d'acide tannique (extrait de tanin, produit de Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) et ajustée à pH 4 avec de l'acide acétique, à 600C et pendant 30 minutes, et en utilisant ensuite une solution aqueuse contenant 6 %, par rapport au poids des fibres ou du tissu, de tartre stibié (produit de Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd., commercialisé avec la marque "New Poweron"), à 600C pendant 30 minutes.
Au contraire, dans l'Exemple Comparatif 5, on teint la fermeture à glissière et on lui fait subir un lavage réducteur en suivant le protocole de l'Exemple 5, mais on n'effectue pas le traitement de fixage.
Dans l'Exemple Comparatif 6, on effectue le lavage réducteur et le traitement de fixage, mais dans l'ordre inverse de celui de l'Exemple 5. On teint la fermeture à glissière, avec les mêmes colorants dispersés que dans l'Exemple 5, puis on soumet d'abord la fermeture à glissière teinte au traitement de fixage mentionné cidessus, et ensuite à un lavage réducteur de la façon décrite plus haut.
Ensuite, dans le but d'examiner les fermetures à glissière teintes, obtenues de la façon décrites ci-dessus dans l'Exemple 5 et les Exemples Comparatifs 5 et 6, afin d'étudier la migration des colorants, on pince ensemble les fermetures à glissière teintes entre deux feuilles de poly(chlorure de vinyle), on presse le tout entre deux feuilles de matière plastique de 12 cm x 5 cm, sous une charge de 4,5 kg, et on place l'ensemble dans une enceinte thermostatée, réglée à 37,5"C et sous une humidité relative constante de 90 %, et on les laisse là pendant 48 heures.
On examine ensuite les feuilles de poly(chlorure de vinyle) dans lesquelles étaient enfermées les fermetures à glissière teintes de l'Exemple 5 et des Exemples Comparatifs 5 et 6, pour voir si le colorant a migré ou non à partir des éléments des fermetures à glissière, par comparaison avec l'échelle des gris. Les résultats obtenus sont indiqués plus bas dans le tableau 5.
On fait ensuite subir aux rubans des fermetures à glissière de l'Exemple 5 et des Exemples Comparatifs 5 et 6, teintes de la façon décrite plus haut, des tests de solidité de la couleur à la lumière, selon la norme industrielle japonaise JIS-L 0842, et on leur fait également subir des tests de décoloration et de barbouillage au lavage, selon la norme JIS-L 0844 A-2, de la façon indiquée ci-dessous.
Solidité de la couleur à la lumière Selon la norme JIS-L 0842, on expose l'article testé et une échelle de bleus à la lumière d'une lampe à arc à charbon, pendant 20 heures, puis on les laisse pendant au moins 2 heures dans l'obscurité. On estime la solidité de la couleur de l'article testé à la lumière en comparant le degré de décoloration de l'article testé avec celui de l'échelle de bleus.
Si la nuance d'un pixel donné du PDP est alternée entre les nuances 7 et 8 dans des images successives, I'oeil humain aura la sensation d'une alternance des nuances 0 et 15 à une fréquence de 30 Hz, comme représenté sur la figure 7. Ceci constitue le scintillement.
La figure 8 représente un scintillement lorsqu'aucune distribution d'erreur n'est mise en oeuvre. La figure 9 représente un scintillement lorsque la distribution d'erreur est mise en oeuvre.
Le scintillement se produit autour des nuances où des sous-images à activer varient le long d'un axe temporel. Par exemple, une nuance 128 dans une image originale à 256 nuances peut générer un scintillement comme indiqué à l'aide d'une zone hachurée T1 de la figure 8 du fait d'une erreur de quantification ou d'un bruit vidéo lorsque l'image est affichée sur un PDP à 16 nuances.
Sur la figure 9, avec la distribution d'erreur, un scintillement se produit dans une zone hachurée T2 du fait qu'une erreur entre les nuances originales et les nuances d'affichage d'un pixel donné est distribuée sur des pixels périphériques. Lorsque la distribution d'erreur n'est pas mise en oeuvre, L'image originale à 256 nuances peut générer un scintillement autour de la nuance 128, comme indiqué à l'aide de la zone T1 de la figure 8. Par ailleurs, lorsque la distribution d'erreur est mise en oeuvre, la même image originale peut générer un scintillement dans la plage des nuances 113 à 128, comme indiqué à l'aide de la zone T2 de la figure 9. Dans cette zone T2, les nuances 113 à 128 de l'image originale peuvent générer une alternance entre les nuances 7 et 8 sur le PDP.
C'est-à-dire que la distribution d'erreur augmente le nombre des pixels qui scintillent.
La distribution d'erreur réalise artificiellement un nombre important de nuances à l'aide du petit nombre de nuances que le PDP peut originellement afficher. Par conséquent, une fluctuation au niveau des nuances se produit n'importe où dans la plage des nuances. Cependant, le scintillement sensible à l'oeil humain se produit entre des nuances spécifiques, par exemple entre les nuances 7 et 8. Par conséquent, une modification d'une combinaison de sous-images peut affaiblir ou augmenter le scintillement.
Maintenant, des procédés d'affichage d'une image en demi-teintes et des appareils de traitement d'image selon les premier et second aspects de la présente invention sont expliqués en détail.
La figure 10A est un schéma fonctionnel qui représente le principe d'un appareil de traitement d'image selon la présente invention et la figure lOB est un schéma fonctionnel qui représente un appareil de traitement d'image selon un art antérieur. L'appareil de la figure 10A comporte une unité de distribution d'erreur 11, un additionneur 12 et un générateur de motif de tremblement 13. L'appareil de la figure lOB comporte un générateur de motif de tremblement 14.
L'appareil de la figure 10A est appliqué à un affichage comportant une matrice bidimensionnelle de pixels. Un signal d'entrée Din représentant une image en demi-teintes est prévu pour chaque pixel de l'affichage. Conformément au signal d'entrée Din, le générateur de motif de tremblement 13 sélectionne l'un des motifs de tremblement préparés à l'avance.
Le motif de tremblement sélectionné est appliqué sur l'additionneur 12, lequel additionneur additionne le motif de tremblement au signal d'entrée Din. L'unité de distribution d'erreur 1 1 met en oeuvre la distribution d'erreur sur le signal d'entrée à motif de tremblement additionné Din et produit un signal de sortie Dout.
De cette façon, la présente invention sélectionne un motif de tremblement optimum pour la nuance que le signal d'entrée Din représente et met en oeuvre la distribution d'erreur conformément au signal d'entrée Din auquel le motif de tremblement sélectionné a été additionné. A la différence de l'art antérieur qui utilise toujours un motif de tremblement fixe, la présente invention permet d'atténuer le scintillement et des motifs particuliers et d'afficher une image en demi-teintes de bonne qualité.
L'art antérieur de la figure lOB n'applique pas un signal d'entrée Din sur le générateur de motif de tremblement 14, lequel produit seulement un motif de tremblement fixe.
Par ailleurs, la présente invention de la figure 10A sélectionne le motif de tremblement optimum conformément au signal d'entrée Din et additionne le motif sélectionné sur le signal d'entrée Din.
Des motifs de tremblement utilisés par la présente invention ne sont pas limités à des motifs spécifiques. Le seuil de chaque motif de tremblement peut être optionnel. Des motifs de tremblement à sélectionner conformément à des signaux d'entrée peuvent être temporairement modifiés à des intervalles appropriés. Selon une variante, différents motifs de tremblement peuvent être sélectionnés en fonction des positions des pixels d'un affichage.
A la différence de l'art antérieur qui utilise seulement un motif de tremblement fixe ou des motifs de tremblement différents pour des positions temporellement et spatialement différentes sans considération des signaux d'entrée, la présente invention sélectionne un motif de tremblement optimum conformément à la nuance d'un signal d'entrée et additionne le motif sélectionné au signal d'entrée. Par conséquent, la présente invention permet d'atténuer le scintillement et des motifs particuliers et permet de produire une image en demi-teintes de bonne qualité.
La figure 1 1 est un schéma fonctionnel qui représente un appareil de traitement d'image selon un mode de réalisation de la présente invention. L'appareil met en jeu un PDP 21, un générateur de cadencement 22, un générateur de motif de tremblement 23 et une unité de distribution d'erreur 24.
De préférence le boîtier présente une ouverture latérale à la partie supérieure de ladite zone d'encoffrement partiel, et en dessous dudit déflecteur, agencé de façon à favoriser une entrée d'air au voisinage de la jante de ladite roue inférieure.
Le mouvement d'air provoqué par la rotation du volant s'ajoute au flux d'air généré par les moyens de ventilation pour créer un flux d'air sensiblement parallèle à la jante et frappant la lame de scie de sorte que l'interface entre jante et bras descendant ainsi que les dents de scie se trouvent nettoyées.
De préférence le déflecteur intérieur s'étend en descendant de la face du boîtier jusqu'à proximité immédiate du brin descendant de la lame. De ce fait, la jante est mieux protégée de la sciure arrivant par les trous d'aspiration du bloc de table et, la lame entraînant elle-même un flux d'air, la proximité du déflecteur crée des turbulences susceptibles de décoller des sciures.
De préférence, le déflecteur délimite le bord supérieur de ladite ouverture latérale et délimite avec la jante de ladite roue inférieure et avec les parois du boîtier adjacentes à ladite roue inférieure un conduit amenant un flux d'air sur la face dudit brin descendant entrant en contact avec ladite roue inférieure.