INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
L'extrémité supérieure 56 de la colonne 8 de guidage est associée rigidement mais de façon démontable par rapport à la platine ou au cadre 51 supérieur de la structure 10 du chariot 4. Par exemple, une cheville ou une vis 57 peut être engagée dans un perçage ou un taraudage à axe vertical d'une couronne fixée à l'extrémité supérieure 56 de la colonne 8. Cette cheville ou vis 57 est dotée d'une poignée 58 permettant de la manipuler. La platine ou le cadre 51 est doté d'un perçage en regard de l'extrémité supérieure 56 de la colonne 8 à travers lequel la vis ou cheville 57 peut être engagée.
Ainsi, pour changer la bobine 2, on place tout d'abord la platine de manoeuvre 12 en une position extrême supérieure et on la bloque grâce à la poignée 24.
Ce faisant, le câble 14 est détendu et le crochet 27 peut être dissocié du support 7 de bobine. On ôte ensuite la cheville ou vis 57 d'extrémité supérieure de la colonne 8 que l'on peut faire pivoter autour de son axe inférieur 53 jusqu'à une position horizontale (figure 5). On fait ensuite coulisser l'ancienne bobine 2 pour la dégager de la colonne 8 et on engage une nouvelle bobine 2 autour de la colonne 8 et du support 7. On obtient alors la position de la figure 5. En saisissant l'extrémité supérieur 56 de la colonne 8, on la ramène en position verticale et on assemble à nouveau les différents éléments en procédant aux opérations inverses. Comme on le voit, le changement de bobine est extrêmement simple et rapide.En particulier, la colonne 8 sert de levier facilitant la mise à la verticale de la bobine 2 neuve et de la colonne 8 au vue de son assemblage à la structure 10.
Figure 7: Carte de restriction du fragment HindIII contenu dans le plasmide pCOI.
Techniques générales de biologie moléculaire Les méthodes classiquement utilisées en biologie moléculaire telles que les extractions préparatives d'ADN plasmidique, la centrifugation d'ADN plasmidique en gradient de chlorure de césium, l'électrophorèse sur gels d'agarose ou d'acrylamide, la purification de fragments d'ADN par électroélution, les extraction de protéines au phénol ou au phénol-chloroforme, la précipitation d'ADN en milieu salin par de l'éthanol ou de l'isopropanol, la transformation dans Escherichia coli, etc . . sont bien connues de l'homme de métier et sont abondament décrites dans la littérature [Maniatis T. et al., "Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982; Ausubel F.M. et al. (eds), "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons, New York, 1987].
Les plasmides de type pBR322, pUC et les phages de la série M13 sont d'origine commerciale (Bethesda Research Laboratories). Pour les ligatures, les fragments d'ADN peuvent être séparés selon leur taille par électrophorèse en gels d'agarose ou d'acrylamide, extraits au phénol ou par un mélange phénol/chloroforme, précipités à I'éthanol puis incubés en présence de l'ADN ligase du phage T4 (Biolabs) selon les recommandations du fournisseur. Le remplissage des extrémités 5' proéminentes peut être effectué par le fragment de Klenow de I'ADN Polymérase I d'E. coli (Biolabs) selon les spécifications du fournisseur. La destruction des extrémités 3' proéminentes est effectuée en présence de l'ADN Polymérase du phage T4 (Biolabs) utilisée selon les recommandations du fabricant.La destruction des extrémités 5' proéminentes est effectuée par un traitement ménagé par la nucléase S1.
La mutagénèse dirigée in vitro par oligodéoxynucléotides synthétiques peut être effectuée selon la méthode développée par Taylor et al. [Nucleic Acids Res. 13 (1985) 8749-8764] en utilisant le kit distribué par Amersham. L'amplification enzymatique de fragments d'ADN par la technique dite de PCR [Polymérase-catalyzed Chain Reaction, Saiki R.K. et al., Science 230 (1985) 1350-1354; Mullis K.B. et Faloona F.A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350] peut être effectuée en utilisant un "DNA thermal cycler" (Perkin Elmer Cetus) selon les spécifications du fabricant. La vérification des séquences nucléotidiques peut être effectuée par la méthode développée par Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 (1977) 5463-5467] en utilisant le kit distribué par Amersham.
Exemple 1- Construction du plasmide pCOl (figure 7) A - Construction du plasmide pCE Le fragment EcoRI-XbaI correspondant à l'extrémité gauche du génome de ladénovirus Ad5 a d'abord été cloné entre les sites EcoRI et XbaI du vecteur pIC19H.
Ceci génère le plasmide pCA. Le plasmide pCA a ensuite été coupé par Hinfl, ses extrémintés 5' proéminentes ont été remplies par le fragment de klenow de l'ADN polymérase I de E.coli, puis il a été coupé par EcoRI. Le fragment ainsi généré du plasmide pCA qui contient l'extrémité gauche du génome de I'adénovirus Ad5 a ensuite été cloné entre les sites EcoRI et SmaI du vecteur pIC20H (Marsh et al., Gene 32 (1984) 481). Ceci génère le plasmide pCB. Le plasmide pCB a ensuite été coupé par EcoRI, ses extrémintés 5' proéminentes ont été remplies par le fragment de klenow de l'ADN polymérase I de E.coli, puis il a été coupé par BamHI. Le fragment ainsi généré du plasmide pCB qui contient l'extrémité gauche du génome de I'adénovirus Ad5 a ensuite été cloné entre les sites NruI et BglII du vecteur pIC20H.Ceci génère le plasmide pCE dont une caractéristique intéressante est qu'il possède les 382 premières paires de bases de l'adénovirus Ad5 suivies d'un multisite de clonage.
B - Construction du plasmide pCD' Le fragment Sau3A (3346) - SstI (3645) et le fragment SstI (3645) - NarI (5519) du génome de ladénovirus Ad5 ont tout d'abord été ligaturés et clonés entre les sites ClaI et BamHIf du vecteur pIC20H, ce qui génère le plasmide pPY53. Le fragment Sali-Taqi du plasmide pPY53 préparé à partir d'un contexte dam-, contenant la partie du génome de I'adénovirus Ad5 comprise entre les sites Sau3A (3346) et TaqI (5207) a ensuite été cloné entre les sites SalI et ClaI du vecteur pIC20H, ce qui génère le plasmide pCA'. Le fragment TaqI (5207) - NarI (5519) du génome de ladénovirus Ad5 préparé à partir d'un contexte dam- et le fragment SalI-TaqI du plasmide pCA' ont ensuite été ligaturés et clonés entre les sites SalI et NarI du vecteur pIC20H.Ceci génère le plasmide pCC'. Le fragment NarI (5519) - NruI (6316) du génome de l'adénovirus Ad5 préparé à partir d'un contexte dam- et le fragment SalI-NarI du plasmide pCC' ont ensuite été ligaturés et clonés entre les sites SalI et NruI du vecteur pIC20R. Ceci génère le plasmide pCD'.
C - Construction du plasmide pCO1 Une digestion partielle par XhoI puis une digestion complète par SalI du plasmide pCD' génère un fragment de restriction qui contient la séquence de l'adénovirus Ad5, du site Sau3A (3446) au site NruI (6316). Ce fragment a été cloné dans le site SalI du plasmide pCE. Ceci génère le plasmide pCO1 (figure 7), qui contient la partie gauche de ladénovirus Ad5 jusqu'au site Hindi (382), un multisite de clonage et le fragment Sau3A (3446) - NruI (6316) de I'adénovirus Ad5.
Exemple 2 - Construction des plasmides de type pCO1-E4 (figure 7) Cet exemple décrit la construction de plasmides de type pCOl-E4, c'est-àdire de plasmides obtenus par incorporation de tout ou une partie fonctionnelle de la région E4 d'un adénovirus dans le plasmide pCOl (exemple 1).
2.1. Clonage de la région E4 dans son intégralité 2.1.1. Exprimée à partir du promoteur originel de la région E4 Le plasmide pFG144 [F.L. Graham et al. EMBO J. (1989) 8 2077-2085] contient notamment un fragment Sau3A de 1162 pb incluant l'extrémité droite du génome de l'Ad5. Ce fragment est alors cloné dans le site BamHJ du plasmide pIC20H ce qui génère le plasmide pGY9 dans lequel le fragment Sau3A est maintenant inclus dans un fragment BamHI-EcoRI de 1184 pb du fait de l'orientation du fragment relativement au vecteur. Ce fragment est alors purifié par electroélution, coupé par AvrII, puis soumis à une hydrolyse partielle par l'enzyme MaeII.Un des produits de restriction corresponds au fragment MaeII (35835)-AvrII (35463) qui inclus le promoteur de la région E4 de 1'Ad5 et jusqu'à la limite de I'ITR droite. Ce fragment de 372 pb est alors purifié par électroélution et ligaturé en présence du fragment AvrII Sali du plasmide pPY6* entre les sites ClaI et SalI du plasmide pCOI ce qui génère le plasmide pGYlO qui est du type pCOI-E4 (Figure 7). Le plasmide pPY6* est identique au plasmide pPY6 à l'exception du site XbaI qui a été détruit après coupure par remplissage à l'aide du fragment Klenow de la DNA polymérase I d'E. coli (Biolabs), puis religature.Le plasmide pPY6* contient le fragment TaqI (35573) BglII(32490) du génome de 1'Ad5 préalablement introduit en aval du promoteur MMTV du plasmide pMSG selon les techniques classiques de la biologie moléculaire.
Lors de ce clonage, le site BglII(32490) a été détruit du fait d'une jonction avec le site BamHI du multisite de clonage du plasmide pIC20H. De plus un site XbaI et un site Sall se trouvent donc localisé immédiatement en aval de la jonction BglII(32490)/ BamHI (dans le plasmide pPY6* la séquence est donc 5' AGATCCTCTAGCTAGAGTCGAC-3', le site Sali est souligné). Le plasmide pPY6* est donc la source d'un fragment AvrII(35463)-SalI incluant la totalité de la région E4 à partir du site AvrII en position 35463 et jusqu'à la position 32490 localisée approximativement 300 pb après le site de polyadénylation de la région E4.
Exemple 3 - Construction des adénovirus recombinants dérivés des plasmides de tvpe pCO1-E4 Cet exemple décrit la construction d'adénovirus recombinants portant une délétion dans la région El allant du nucléotide 382 au nucléotide 3446, une région E4 inactivée, et tout ou une partie fonctionnelle de E4 insérée dans la délétion El.
Les techniques de l'homme de l'art permettent de construire et de propager des adénovirus recombinants El-E4+ dans la lignée 293. Les plasmides du type pCOI-E4 peuvent être par exemple cotransfectés dans les cellules 293 en présence d'un génome viral portant une modification/déletion dans la region E4 de sorte que cette region soit non fonctionnelle (mutation dans ORF3 et ORF6 au moins). De tels virus sont donc non viables dans une lignée qui ne transcomplémente pas fonctionnellement la région E4. Par contre ces virus peuvent être préalablement propagés dans la lignée W162 rWeinberg D.H. and Ketner G. Proc. Natl. Acad. Sci. (1983) 80: 5383-5386], ou dans une des lignées 293E4+ décrites dans le brevet FR. 94 04590 (18.04.1994). De tels virus incluent les virus Ad2dl808 [Challberg S.S. and Ketner G.Virology (1981) 114: 196-209], AdSdllO04, Ad5dl1OO7, ou Ad5d11014 [Bridge E. and Ketner G. J. Virol.
(1989) 63: 631-638], ou encore AdSdllOll [Bridge et al. Virology (1993) 193: 794801] etc... Ainsi la cotransfection des plasmides de type pCOI-E4 linéarisés par l'enzyme XmnI et l'ADN génomique viral des virus portant une région E4 non fonctionnelle et restreint par l'enzyme Clal génère les virus correspondants après recombinaison homologue entre les deux ADN dans la lignée 293.Ces virus se caractérisent donc par la présence de l'ITR gauche et d'une séquence d'encapsidation fonctionnelle (nucléotide 1-382 par exemple), suivie d'une région E4 fonctionnelle (entière ou uniquement E4 ORF3 et/ou E4 ORF6) exprimée à partir d'un promoteur fonctionnel et par exemple le promoteur originel de la région E4 [inclus dans le fragment TaqI(35573)-MaeII(35835)], suivie de la région située en aval du site Sau3A localisé à la position 3446 du génome de 1'Ad5, et se poursuivant jusqu'à l'ITR droite et donc incluant la délétion de la fonction E4 présente dans le virus E4- de départ (Figure 3). De tels virus E1-E4+ peuvent être propagés dans la lignée 293 à des titres pouvant atteindre 1013 PFU/ml.
A cet effet, les cellules sont récoltées, disruptées par trois cycles de congélation-décongélation dans leur surnageant, puis centrifugées à 4000 rpm pendant 10 minutes. Le surnageant ainsi obtenu est ensuite amplifié sur culture cellulaire fraiche. Les virus sont alors purifiés à partir de plages et leur ADN est analysé selon la méthode de Hirt (précité). Des stocks de virus sont ensuite préparés sur gradient de chlorure de césium. Les stocks viraux à haut titre ainsi obtenus ne sont pas contaminés par des particules viables dans un contexte cellulaire El-.
L'invention concerne un système de contrôle d'accès par cartes à microcircuit, notamment pour la gestion de l'accès à des quartiers urbains à circulation automobile limitée.
b - Sur un jeu de quatre poutrelles (18) assemblées par boulons et écrous de diamètre 24.
Assemblage du type croix de Saint-André (18) reposant directement sur le sol et ancré au sol à l'aide de crayons d'acier d'un diamètre de 35 mm et d'une longueur de 1.500 mm (19). L'ensemble est renforcé par deux petits haubans fixés en partie haute sur le haut des poteaux et en partie basse sur les deux extrémités des poutrelles (20).
PISTE D'ENTRAINEMENT (Fiv. I) La piste d'entraînement est un cheminement de largeur variable délimitée par une double clôture, et de longueur variante et égale à celle du câble (9). Cette piste se trouve impérativement sous la verticale du câble.
Dans le sens de la longueur et afin de guider les chevaux en liberté dans un couloir, la piste est délimitée par une clôture (10) à l'intérieur de la piste et l'autre à l'extérieur (10). Ces clôtures pourront être de différents types : bois, grillage, béton, clôture à ruban électrique, électrifiées par électrificateur sur secteur ou à piles.
Dans le sens de la largeur, tous les 10 mètres, les portillons électrifiés (Fig. 5) servent de séparations amovibles à déplacement linéaire. Un portail d'accès à contact électrique d'arrêt, ou cellule photo-électrique ou détection infrarouge permet: - Après ouverture : l'arrêt de la machine, le chargement du cheval.
- Après fermeture : la remise en route de l'appareil d'entraînement à la vitesse programmée. Ainsi de suite, jusqu'à la mise en place de tous les chevaux à entraîner plans un même lot.
LES PORTILLONS (Fig. 5) Ce système fait partie intégrante de l'invention et est constitué a - D'un tube léger vertical (12) fixé à la mâchoire (3) du câble à sa partie supérieure et présentant une courbure à 90" à sa partie inférieure.
b - D'un tube léger horizontal (13) emboîté dans le tube vertical. Ce tube divise la piste dans le sens de sa longueur. Ce tube se trouvera à plus ou moins de 2,60 mètres du sol.
c - Une t;llc de bandes de clôtures électriques (14) sur tout( la largeur du tube (13) fwsl)acees régulièrement afin de ne pas offrir de passage ;iix chevaux. Ces bandes (14) sont lestées à leur partie inférieure par une barre souple (15), ceci le plus proche possible du sol, soit plus ou moins 60 cm.
d- Un contrepoids (21) équilibre le tube (13) de sa longueur et de sa charge. Une variante de ce système peut être réalisée à l'aide de grille rigide.
ELECTRIFICATION DES PORTILLONS (11) Un système standard de clôtures électriques fera passer une différence potentielle via un frotteur (11) sur le câble (9). Ce dernier par l'intermédiaire des mâchoires (3) et des tubes métalliques (12 et 13) laisseront passer le courant jusqu'aux bords des bandes de clôtures (14) électriques qui délimitent l'espace de travail des chevaux.
TENSION DU CABLE (9) La tension du câble (9) est obtenue par un jeu de poulies (16) à deux ou cinq rapports suivant les modèles. L'extrémité du câble tendeur (22) est fixée à un contrepoids (17), calculé suivant la tension désirée. Cette tension oscillera de 700 à 1200 DaN suivant la longueur du câble (9).
DESCRIPTION La présente invention concerne le domaine de la protection d'enceintes contre des effractions et a pour objet une paroi blindée pour coffres ou autres enceintes à protéger.
La protection de coffres ou d'autres enceintes, en particulier des automates bancaires, est généralement effectuée au moyen de parois blindées comportant des inserts ou des mortiers de remplissage de différentes natures, qui sont destinés à améliorer leurs caractéristiques de résistance à l'effraction, soit au moyen d'outils de coupe et/ou de perforation, soit par action thermique, soit encore par action mécanique, notamment par choc. I1 en résulte que ces parois doivent présenter une épaisseur, un poids et une résistance permettant de répondre aux normes et réglementations en vigueur.
A cet effet, les parois existantes présentent, pour résister aux essais obligatoires correspondants, une épaisseur importante, due à la composition des matériaux de remplissage et incompatibles avec un poids et un encombrement réduits, nécessaires pour la réalisation de la protection de petits équipements, tels que les automates bancaires.
On purifie par recristallisation dans 60 ml d'acétate d'éthyle et obtient 1,3 g de produit attendu (cristaux blancs) F = 210"C.
ANALYSES IR NUJOL (cal) -O 1786-1712-1690 Aromatique Hétéroatome 1602-1538-1505 EXEMPLE 63 : 7-(((5-chloro-1,3-diméthyl-1H-pyrazol-4-yl) sulfonyl)oxy)-2,2-diphenyl-1,3-benzodioxole-5-carboxylat- de méthyle On procède comme au stade 2 de l'exemple 1 à partir de 2 g du produit obtenu au stade 1 de l'exemple 1 dans 100 nil de chlorure de méthylène avec 1,6 ml de triéthylamine et 1,5 g de chlorure de 5-chloro 1,3-diméthyl pyrazol-4-sulfonyle.
On obtient ainsi 2,2 g de produit attendu (cristaux) ANALYSES IR NUJOL (cal) -O 1720-1704 Aromatique hétéroatome 1620-1583-1503 -S02- possible EXEMPLE 64 : 5-(((5-chloro-1,3-diméthyl-1H-pyrasol-4-yl) sulfonyl)oxy)-3,4-dihydroxy-benzoate de méthyle On procède comme à l'exemple 2 à partir de 2,2 g de produit de l'exemple 63 dans 100 ml d'un mélange acide acétique 80/eau 20.
La solution est versée dans 300 ml d'eau, on extrait avec trois fois 150 ml d'éther isopropylique et la phase organique est lavée à l'eau et évaporée à sec.
On purifie par recristallisation dans 40 ml d'acétate d'éthyle et obtient 1,2 g de produit attendu (cristaux blancs) F = 207"C.
ANALYSES IR NUJOL (cal) -O 1703-1688 Aromatique Hétéroatome 1613-1538-1503 EXEMPLE 65 :2,2-diphenyl-7-(((2-methylphényl)sulfonyl)osy)- 1,3-benzodioxole-5-carboxylate de méthyle On procède comme au stade 2 de l'exemple 1 à partir de 2 g du produit obtenu au stade 1 de l'exemple 1 dans 100 ml de chlorure de méthylène avec 1,6 ml de triéthylamine et 1,08 g de chlorure d'orthotoluène sulfonyle.
On obtient ainsi 3,2 g de produit attendu (huile) ANALYSES IR CHCl3 (cm-1) -O 1720 Aromatique 1624-1601-1502 EXEMPLE 66 : 3,4-dihydroxy-5-(((2-méthylphényl)sulfonyl)oxy)- benzoate de méthyle On procède comme à l'exemple 2 à partir de 2,8 g de produit de l'exemple 65 dans 100 ml d'un mélange acide acétique 80/eau 20.
On chauffe au reflux pendant 1 nuit.
La solution est versée dans 300 ml d'eau, on extrait avec trois fois 100 ml d'éther isopropylique et la phase organique est lavée à l'eau et séchée.
Après chromatographie sur silice avec le mélange éluant cyclohexane 7/acétate d'éthyle 3, on obtient 1,8 g de produit attendu (cristaux blancs) F = 1750C.
ANALYSES IR NUJOL (cal) Absorption région OH/NH - 3405 -O 1726 Aromatique 1618-1604-1536 EXEMPLE 67 :7-(((2,6-dinitro-4-méthylphényl)sulfonyl)oxy)- 2,2-diphényl-1,3-benzodioxole-5-carboxylate de méthyle On procède comme au stade 2 de l'exemple 1 à partir de 1 g du produit obtenu au stade 1 de l'exemple 1 dans 70 ml de chlorure de méthylène avec 0,6 ml de triéthylamine et 0,7 g de chlorure de 3,5-dinitro p toluène sulfonyle.
On obtient ainsi 1,5 g de produit attendu (cristaux) ANALYSES IR CHCl3 (cal) \ =0 1722 Aromatique + NO2 1642-1620-1549-1502 EXEMPLE 68 : 3, 4-dihydroxy-5- (((2, 6-dinitro-4-méthylph'nyl) sulfonyl)oxy)-benzoate de méthyle On procède comme à l'exemple 2 à partir de 1,4 g de produit de l'exemple 67 dans 100 ml d'un mélange acide acétique 80/eau 20.
La solution est versée dans 300 ml d'eau et les cristaux sont essorés, lavés avec de l'eau puis avec 40 ml d'éther isopropylique.
On purifie par recristallisation dans 25 ml d'acétate d'éthyle et 6 ml de cyclohexane et obtient 0,31 g de produit attendu (cristaux blancs) F = 1920C.
Les moyens de limitation de l'action des ultrasons peuvent comprendre en outre des moyens de concentration des ultrasons sur la face d'entrée du détecteur.
Ces moyens de concentration peuvent comprendre une paroi qui est apte à réfléchir les ultrasons, entoure la face émettrice du traducteur ultrasonore et a une forme sensiblement conique ou sensiblement parabolique.
La présente invention sera mieux comprise à la lecture de la description d'exemples de réalisation donnés ci-après, à titre purement indicatif et nullement limitatif, en faisant référence aux dessins annexés sur lesquels - la figure 1 est une vue schématique d'un mode de réalisation particulier du dispositif objet de 1 invention, appliqué au nettoyage d'une face d'un scintillateur couplé à un photomultiplicateur, - la figure 2 est une vue agrandie du dispositif représenté sur la figure 1, - la figure 3 est une vue schématique d'un autre mode de réalisation particulier du dispositif objet de l'invention, appliqué au nettoyage de la face d'entrée d'une diode détectrice de particules, - la figure 4 est une vue schématique d'un autre dispositif conforme à l'invention, dans lequel la face émettrice du traducteur ultrasonore que comprend cet autre dispositif est entourée par une paroi sensiblement parabolique, - la figure 5 est une vue schématique d'un autre dispositif conforme à l'invention, dans lequel la face émettrice du traducteur ultrasonore est entourée par une paroi sensiblement conique.
Le dispositif conforme à l'invention, qui est schématiquement représenté sur les figures 1 et 2, est destiné à nettoyer la face d'entrée 2 d'un détecteur 4 de particules émises par un liquide radioactif.
Ce détecteur 4 comprend - un scintillateur 6 dont la face qui reçoit -les particules constitue la face d'entrée du détecteur, - un photomultiplicateur 8 optiquement couplé au scintillateur 6, et - un circuit 10 d'alimentation électrique du photomultiplicateur.
Le liquide dont la radioactivité est à mesurer et qui peut être corrosif, circule dans une cellule de mesure 12 dont l'une des parois est constituée par la face d'entrée 2 du détecteur.
Le scintillateur 6 est fait d'un matériau, par exemple un verre scintillant, qui résiste au liquide.
Des particules émises par ce liquide (des particules a par exemple) pénètrent dans le scintillateur 6 par la face d'entrée de celui-ci et y perdent leur énergie qui est transformée en photons lumineux.
Ces photons lumineux sont transformés à leur tour en impulsions électriques par le photomultiplicateur 8.
Ces impulsions électriques sont ensuite envoyées, par l'intermédiaire d'un câble coaxial 14, à des moyens électroniques 16 de traitement de ces impulsions.
Le dispositif conforme à l'invention, destiné à nettoyer la face d'entrée 2 du détecteur, comprend - un traducteur ultrasonore 18 apte à émettre des ultrasons qui se propagent en direction de cette face d'entrée 2, par l'intermédiaire d'un liquide 20 de couplage des ultrasons (par exemple de l'eau), et - des moyens 22 d'excitation du traducteur ultrasonore 18, qui envoient à celui-ci, par l'intermédiaire d'un câble électrique 24, un courant électrique alternatif approprié.
Dans l'exemple représenté, ce traducteur est apte à émettre les ultrasons suivant un mode radial.
Le photomultiplicateur 8 ainsi que le circuit d'alimentation électrique de celui-ci sont logés dans un boîtier 26.
Le photomultiplicateur 8 est optiquement couplée au scintillateur 6 par l'intermédiaire d'un élément 28 en forme de disque, qui est transparent à la lumière émise par le scintillateur 6 sous l'impact des particules.
L'extrémité du photomultiplicateur 8, contre laquelle se trouve l'élément 28, est logée dans une pièce annulaire 29 et cet élément 28 repose contre cette pièce annulaire 29.
Le boîtier 26 est fixé à cette pièce annulaire 29.