INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
renfoncements. Afin d'obtenir une courbe douce selon la ligne de réflexions multiples 9, comme montré par une ligne en pointillés sur la figure 5, une courbe spline est formée qui passe par les sommets V i (i = 1, 2,...) sur le côté de projection de la
ligne de réflexions multiples 9.
(a7) Une surface de référence est formée selon le
cadre extérieur 6 et la courbe spline 10.
La longueur de la parabole de référence 7 dans la direction verticale dans le point (a3) ci-dessus est définie par le cadre supérieur et par le cadre inférieur du cadre extérieur 6 et les courbes 11, 12 montrées sur la figure 6(a) sont obtenues par la courbe spline 10 du point (a6) et les cadres droit et gauche du cadre extérieur 6. C'est-à- dire que la courbe 11 est une courbe " spline " qui passe par le point supérieur gauche P1 et le point inférieur gauche P2 du cadre extérieur 6 et qui passe également par le point d'extrémité gauche de la courbe spline 10. La courbe 12 est une courbe spline qui passe par le point supérieur droit P3 et le point inférieur droit P4 du cadre extérieur 6 et qui passe également par le point d'extrémité droit de la courbe spline Lo. Ces courbes 11, 12, la parabole de référence 7 et la courbe spline Lo génèrent une surface en forme de courbe spline, par
laquelle la surface fondamentale est formée.
A ce propos, la figure 6(a) montre un cas dans lequel les points d'extrémité droit et gauche de la courbe spline Lo et les points des quatre coins du cadre extérieur 6 ne sont pas placés sur la même ligne droite. Dans le cas ci-dessus, des parties plates sont formées dans les bords périphériques droit et gauche de la surface courbe. Cependant, comme montré sur la
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figure 6(b), il est possible d'agencer les points d'extrémité de la courbe spline sur les lignes de cadre droite et gauche du cadre extérieur 6. C'est-à-dire qu'il est possible d'agencer les points d'extrémité de la courbe spline 10' sur le cadre extérieur 6 en sélectionnant de manière appropriée les paramètres de formation pour former la parabole de référence 8 et la
Dans l'explication ci-dessus, la parabole de référence 7 dans la direction verticale est maintenue comme elle est. Cependant, si nécessaire, la surface courbe peut être formée comme suit. Une ligne de réflexions multiples est formée pour la parabole de référence 7. Une courbe spline pour relier les sommets de la ligne de réflexions multiples est obtenue. La surface courbe est formée selon la courbe spline Lo ou ' dans la direction horizontale et le cadre extérieur 6. Ensuite, avec référence aux figures 7 à 9, une procédure pour former les étages de réflexion sur la
surface fondamentale ci-dessus va être expliquée.
La présente invention a aussi pour objet un procédé de fabrication d'un mat de fils de verre coupés qui permet le recyclage en continu du liant utilisé.
Ces buts sont atteints par un procédé de fabrication qui consiste à déposer en continu sur un matelas de fils de verre coupés, répartis sur un convoyeur en mouvement, un liant dont la viscosité lors du dépôt est inférieure à environ 40 millipascals/seconde, ledit liant étant formé d'une solution d'alcool(s) polyvinylique(s).
Pour obtenir un liant qui présente cette viscosité, le ou les alcools polyvinyliques employés dans le cadre de l'invention présentent un degré de polymérisation inférieur à environ 1000 et se trouvent, de préférence, sous forme de solutions aqueuses.
Toujours pour diminuer sa viscosité, le liant est, de préférence, porté à une température égale ou supérieure à 200C. Dans ce cas, la température du liant est comprise généralement entre 20 et 500 C.
Le liant est déposé sur le matelas de fils de verre coupés sous la forme d'une nappe liquide ou d'un rideau de filets liquides qui tombent transversalement sur toute la largeur dudit matelas.
Le liant ainsi déposé, et grâce à sa viscosité relativement faible, pénètre et traverse tout le matelas de fils coupés en se répartissant dans tout le volume dudit matelas. Le liant est retenu pour l'essentiel sur une grande partie des points de contact des fils coupés qui se croisent.
Le débit de liant ainsi déposé est notamment fonction de la vitesse du convoyeur et de la quantité de verre déposée par mètre carré sur ledit convoyeur. Ce débit de liant est déterminé de manière à obtenir entre environ 5 et 15% en poids de liant par rapport au poids de verre.
Dans une variante, le liant peut être déposé, en partie, à la surface du matelas de fils coupés, en amont de la zone où il est déposé sous la forme d'une nappe liquide. Le liant peut être, par exemple, pulvérisé en amont, ce qui a pour effet de tasser légèrement le matelas de fils et d'humecter sa couche superficielle, favorisant ainsi la pénétration du liant déposé en aval.
Une fraction du liant ainsi déposé traverse complètement le matelas de fils coupés et peut être récupérée sous le convoyeur. L'un des avantages du liant utilisé est qu'il est stable dans le temps, même après avoir été chauffé à une température supérieure à environ 300 C, contrairement aux liants dont la composition renferme au moins un constituant qui favorise sa réticulation.
Le liant utilisé dans le cadre de l'invention peut ainsi être directement recyclé, ce qui constitue un avantage économique.
Une fois le liant déposé, le matelas de fils coupés passe dans une étuve d'une manière connue en soi, puis éventuellement dans une calandre.
Le mat obtenu après étuvage et éventuellement calandrage du matelas de fils coupés est généralement formé de fils dont la longueur est comprise entre 20 mm et 100 mm, lesdits fils étant eux-mêmes constitués de filaments de verre dont le diamètre moyen est compris entre 9 et 16 micromètres. Le mat de fils de verre coupés obtenu selon l'invention présente une très bonne cohésion.
L'un des avantages de ce mat est que, mis en contact avec une résine en milieu aqueux, le liant disparaît presque entièrement, ce qui favorise le mouillage du verre par la résine.
Les avantages présentés par l'invention seront mieux perçus à travers la description, détaillée ci-après d'un exemple de réalisation nullement limitatif de ladite invention.
On dépose sur un convoyeur se déplaçant à la vitesse de 13 mètres par minute, un matelas de fils coupés de 50 millimètres de longueur selon un débit totai de verre de 250 kilogrammes par heure. Ce matelas est obtenu par la coupe simultanée d'une multiplicité de fils extraits d'une multiplicité d'enroulements. Ces fils de verre, d'un titre de 30 tex, sont constitués d'une multiplicité de filaments d'un diamètre moyen de 12 micromètres ; ils ont été revêtus, lors de leur fabrication, d'un ensimage classique à base d'acétate de polyvinyle et d'agents de couplage tels que des silanes.
Une solution aqueuse d'alcool polyvinylique à une concentration de 8%, maintenue à 300C et dont la viscosité à cette température est de 15 millipascals/seconde, est déposée sur le matelas de fils coupés sous la forme d'un rideau de filets liquides. Cette solution a été obtenue par dissolution dans de l'eau portée à 800C d'un alcool polyvinylique caractérisé par un degré de polymérisation de 530 et un taux d'hydrolyse de 88%. Cet alcool polyvinylique est commercialisé sous la référence F 105 par la Société LAMBERTI.
Le numero de référence 6 designe des électrodes de sortie de grille (G1 à Gm) sortant respectivement des grilles 3 en forme de bande, le numéro 6 désigne des électrodes de sortie de cathode (C1 à Cn) sortant respectivement des cathodes 2 en forme de bande, le numéro 7 désigne un premier substrat ou substrat d'anode agencé de manière à être opposé au premier substrat ou substrat de cathode 1, le numéro 8 désigne des premières électrodes en forme de bande formées sur le substrat d'anode 7, le numero 9 désigne des deuxièmes anodes en forme de bande agencées chacune entre chaque couple adjacent de prernièrzs anodes 8 en forme de bande, le numéro 10 designe une première elec-trode de sortie d'anode A 1 sortant des premières anodes 8 en forme de bande hors commun, et le numéro 11 designe une deuxième électrode de sortie d'anode A2 sortant des deuxièmes anodes 9 en forme de bande en commun.
Les premières anodes 8 en forme de bande pressentent respec-tivement des luminophores R, G et B déposés sur elles. De manière analogue, les deuxiêmes anodes 8 en forme de bande présentent respectivement des luminophores R, G et B déposes sur elles. La manière de commander le dispositif d'affichage d'image classique de la figure 1, ainsi conçu, est decrite brièvement ci-après à titre d'exemple, bien qu'une description détaillée de la commande soit effectuée ci-après. Les anodes 8 et 9 sont commandées tout en entant sélectionnees respectivement par les preniière et deuxième électrodes de sorties Al et A2.
De même, les électrodes de sortie de cathode C1 à Cn des cathodes 2 en forme de bande sont balayees, faisant que les cathodes 2 sont selectionnees et commandées dans cet ordure.
Plus particulièrement, les électrodes de sortie de cathode C1 à Cn sont balayées dans cet ordre, tout en maintenant une tension d'anode positive appl iquée sur la première élec-trode de sortie d'anode A 1, pour commander sélectivement les anodes 8. Durant le balayage, des données d'image situées sur une cellule d'image, pour conduire un affichage d'après les cadencements de balayage des électrodes de sortie de cathode, sont fournies aux élect rodes de sortie de grille G1 à Gm.
Ainsi, les cellules d'image définies par les luminophores agencées sur les anodes 8 sont excitées par des électrons emis par des émetteurs prévus sur les cathodes 2 balayées et la luminescence des cellules d'image est contrôlée d'après les données d'image fournies aux électrodes de sortie de grille G1 à Gm.
Lorsqu'un balayage successif des électrodes de sortie de cathode C1 à Cn est acheve une tension d'anode positive est ensuite appliquee sur les deuxièmes électrodes de sortie d'anode A23 au lieu des premières électrodes Al.
Durant cette application, les électrodes de sortie de cathode cl à Cn sont balayées de manière analogue dans cet ordure. il est évident que, à ce moment, les données d' image situees sur les cellules d'image, pour un affichage d'après les cadencements de balayage des électrodes de sortie de cathode, sont fournies de manière analogue aux électrodes de sortie de grille G1 à Gm. Ceci perinet aux cellules d'image definies par les luminophores prévus sur les anodes 9 d'être excitées pour obtenir une luminescence, par des électrons émis par les émetteurs agences sur les cathodes 2 connectés aux électrodes de sortie de cathode C1 à Cn ainsi balayées. La luminescence des cellules d'image est contrôlee d'après les données d'image fournies aux grilles 3, faisant qu'une image est affichée pour un plan (trame) d'image.
Le dispositif d'affichage d'image est décrit ci-après plus en details en se référant à la figure 2.
Sur la figure 2, le numéro de référence 12 désigne une matrice d'émetteurs comprenant des émetteurs de forme conique, formes sur les cathodes 2 par des techniques de traitement fines pour un semi-conducteur, de manière à en assurer une emission de champ d'électrons et le numéro 13 designe des éléments d'espacement agencés entre le substrat de cathode 1 et le substrat d'anode 7, pour espacer les substrats l'un de l'autre tout en les supportant. Ainsi, le substrat de cathode 1, le substrat d'anode 7 et les éléments d'espacement 13 coopèrent entre eux pour fournir une enveloppe, qui est ensuite evacuee pour obtenir un vide eleve.
Le dispositif d'affichage d'image représenté sur la figure 2 est conçu de manière que les grilles 3 en forme de bande b agencées selon a g e n c é e s s e 1 o n u n e r e 1 a t i o n de 1:1 avec chacune des premire et et deuxième anodes 8 et 9. Des résultats de simulation d'un emplacement d'électrons émis par la matrice d'émetteurs 2 et leur distribution dans le dispositif d'affichage d'image de la figure 2 sont représentés à titre d'exemple sur la figure 3. il est globalement considéré que l'émission de champ d'électrons par une matrice d'eme-tteurs est effectuée tout en se répandant ou en se diffusant selon un angle d'à peu près 30 degres.Ainsi, dans le dispositif d'affichage d'image de la figure 2, des électrons fournis par émission de champ depuis la matrice d'émetteurs 2 sont forces à se déplacer vers les anodes 28, tout en se répandant considérablement depuis une extrémité des grilles 3. Dans ce cas, les anodes 8 et 9 sont maintenues au même potentiel et les grilles 3 sont maintenues au même potentiel, indépendamment de leur mise en service et hors service.
Ensuite, des résultats de simulation d'un emplacement d'électrons émis par la matrice d'émetteurs 12 et leur distribution, lorsqu'un potentiel des grilles 3 mises hors service est etabli a u niveau de la in a s s e, tout en maintenant 1 e s deux anodes 8 et 9 au même potentiel, sont representes à titre d'exemple sur la figure 4. Dans ce cas, la dispersion des électrons est quelque peu réduite.
De même, des résultats de simulation d'un emplacemen-t d'électrons émis par la matrice d'émetteurs 12 et leur distribution, lorsqu'un potentiel des grilles 3 mises hors service est établi au niveau de la masse, tout en é t a b 1 i s s a n t u n potentiel des anodes 9 mises hors service à un niveau égal à peu pres a la moitié du niveau de potentiel des anodes 8 ni i s e s en service, sont représentés à titre d'exemple sur la figure 5. Dans ce cas, la dispersion des électrons est considérablement réduite.
En outre, des résultats de simulation d'un emplacement d'électrons emis par la matrice d'émetteurs 12 et leur distribution, lorsque le potentiel des grilles 3 mises hors service est établi au niveau de la masse, tout en maintenant le potentiel des anodes 9 qui sont mises hors service au niveau de la masse, sont représentés à titre d'exemple sur la figure 6. Dans ce cas, la dispersion des électrons est fortement réduite, faisant que les electrons sont orientes sensiblement seulement vers les anodes 8 destinés.
Les figures 3 à 6 indiquent clairement que la commande des anodes 8 e t 9 et des grilles 3, de manière à permettre 1' obtention des résultats representes s u r les figures 5 et 6, donne 1 ieu à la luminescence seul ement des 1 unl i nopho res déposés sur les anodes 9 destinées, pour empêcher de ce fait efficacement toute luminescence de fuite en raison de la dispersion des électrons. Le circuit de commande de la présente invention est adapté pour réduire significativement la dispersion d'électrons de la manière representee sur la figure 5 ou 6. Le circuit d e commande de la présente invention est décrit ci-après.
En se référant à présent à la figure 7, les electrodes respectives d'un dispositif d'affichage d'image commandé par le circuit de commande de la presente invention, en vue depuis un côte des anodes, sont représentées. Une première electrode de sortie d'anode A 1 sort des p r e in i è r e s anodes 8, d'un côte et une deuxième électrode de sortie d'anode A2 sort des deuxièmes anodes 9, O de l'autre côté. Les grilles 3 r i 1 1 e s en forme de ruban sont agencees parallèlement aux électrodes d'anode 8 et 9, de manière à être espacées de et opposées aux anodes 8 et 9.Les grilles 3 présentent respectivement des électrodes de sortie de grille GT1, GT2, ... GT , GTl sortant de ces dernières Les électrodes de cathode 2 en forme de bande sont disposés au-dessous des grilles 3, de manière à être perpendiculaires aux première et deuxième anodes 8 et 9 et des électrodes de sortie de cathode C1, C2, ... Cn sortent respectivement des électrodes de cathode 2 en forme de bande. Les cathodes 2 sont pourvues de matrices d'émetteurs pour émettre des électrons.
Les première et deuxième anodes 8 et 9 en forme de bande présentent des luminophores de couleurs lumineuses rouge, verte et bleue, déposés sur elles dans un ordre prédéterminé ou dans une direction allant de gauche à droite, respectivement, sur la figure 7.
Les amorces 3' spécifiques utilisées dans le protocole du kit pour la synthèse du ADNc et l'amplification PCR sont respectivement complémentaires aux séquences MSRV-1 suivantes ADNc : (SEQ ID NO 54) CCTGAGTTCTTGCACTAACCC amplification : (SEQ ID NO 55) GTCCGTTGGGTTTCCTTACTCCT Les produits issus de la PCR ont été extraits après purification sur gel d'agarose selon les méthodes conventionnelles (17), puis resuspendus dans 10 ml d'eau distillée. Une des propriétés de la polymérase Taq consistant à ajouter une adénine à l'extémité 3' de chacun des deux brins d'ADN, l'ADN obtenu a été directement inséré dans un plamide à l'aide du kit TA CloningTM (British Biotechnology).Les 2 41 de solution d'ADN ont été mélangés avec 5 41 d'eau distillée stérile, 1 41 d'un tampon de ligation 10 fois concentré "10X LIGATION BUFFER", 2 41 de "pCRTM VECTOR" (25 ng/ml) et 1 41 de "TA DNA LIGASE". Ce mélange a été incubé une nuit à 120C. Les étapes suivantes ont été réalisées conformément au instructions du kit TA Cloninge (British Biotechnology). A la fin de la procédure, les colonies blanches de bactéries recombinantes (white) ont été repiquées pour être cultivées et permettre l'extraction des plasmides incorporés selon la procédure dite de "miniprep" (17).La préparation de plasmide de chaque colonie recombinante a été coupée par une enzyme de restriction appropriée et analysée sur gel d'agarose. Les plasmides possédant un insert détecté sous lumière W après marquage du gel au bromure d'éthidium, ont été sélectionnés pour le séquençage de l'insert, après hybridation avec une amorce complémentaire du promoteur Sp6 présent sur le plasmide de clonage du TA Cloning Kit.
Cette approche technique a été appliquée à un échantillon de virion concentré comme décrit ci-après, à partir d'un mélange de surnageants de culture produits par des lignées lymphoblastoïdes B telles que décrites dans l'exemple 2, établies à partir des lymphocytes de patients atteints de SEP et présentant une activité transcriptase inverse détectable selon la technique décrite par Perron et coll. (3) : les surnageants de cultures sont collectés deux fois par semaine, pré-centrifugés à 10 000 trs/min pendant 30 minutes pour éliminer les débris cellulaires, et ensuite, congelés à -800C ou utilisés tels quels pour les étapes suivantes. Les surnageants frais ou décongelés sont centrifugés sur un coussin de PBS-glycérol 30 % à 100 000g pendant 2 h à 40C. Après élimination du surnageant, le culot sédimenté constitue l'échantillon de virions concentrés, mais non purifiés.Le culot ainsi obtenu est alors repris dans un petit volume d'un tampon adéquat pour l'extraction d'ARN. La réaction de synthèse de ADNc mentionnée plus haut est réalisée sur cet ARN extrait de virion extracellulaire concentré.
L'amplification RT-PCR selon la technique citée plus-haut a permis d'obtenir le clone GM3 dont la séquence identifiée par SEQ ID NO 56, est présentée dans la figure 23.
Dans la figure 24, l'homologie de séquence entre le clone GMP3 et le rétrovirus HSERV-9 est représentée sur le tableau matriciel par un trait plein, pour toute homologie partielle supérieure ou égale à 65 %.
En synthèse, sur la figure 25 est représentée la localisation des différents clones précédemment étudiés, par rapport au génome ERV9 connu. Sur la figure 25, la région env MSRV-1 étant plus longue que le gène env de ERV9 de référence, la région supplémentaire est représentée au-dessus du point d'insertion selon un "V", étant entendu que le matériel inséré présente une variabilité de séquences et de taille entre les clones représentés (JLBcl, JLBc2, FBd3). Et sur la figure 26, est représentée la position de différents clones étudiés dans la région MSRV-1 pol *.
Grâce au clone GM3 précédemment décrit, on a pu définir un cadre de lecture possible, couvrant l'ensemble du gène pol, référencé selon SEQ ID NO 57, représenté aux figures successives 27a à 27c.
EXEMPLE 11 : DETECTION D'ANTICORPS SPECIFIQUES ANTI-MSRV-1 DANS LE SERUM HUMAIN.
L'identification de la séquence du gène pol du rétrovirus MSRV-1 et d'un cadre de lecture ouverte de ce gène a permis de déterminer la séquence SEQ ID NO 39 en acides aminés d'une région dudit gène, référencée SEQ ID NO 40 (cf figure 12).
Différents peptides synthétiques correspondant à des fragments de la séquence protéique de la transcriptase inverse MSRV-1 codée par le gène pol, ont été testés pour leur spécificité antigénique vis à vis de sera de patients atteints de SEP et de témoins sains.
Les peptides ont été synthétisés chimiquement par synthèse en phase solide, selon la technique de Merrifield (Barany G, and Merrifielsd R.B, 1980, In the Peptides, 2, 1-284, Gross E and Meienhofer J, Eds Academic Press, New York). Les modalités pratiques sont celles décrites ci-après.
a) Svnthèse des Peptides: Les peptides ont été synthétisés sur une résine phénylacétamidométhyle (PAM) /polystyrène/divinylbenzène (Applied Biosystems, Inc. Foster City, CA), en utilisant un synthétiseur automatique "Applied Biosystems 430A". Les acides aminés sont couplés sous forme d'esters d'hydroxybenzotriazole (HOBT). Les acides aminés utilisés proviennent de Novabiochem (Laüflerlfingen, Suisse) ou de Bachem (Bubendorf, Suisse).
La synthèse chimique a été effectuée en utilisant un protocole de double couplage avec la N-méthylpyrrolidone (NMP) comme solvant. Les peptides ont été coupés de la résine ainsi que les protections latérales, de manière simultanée, à l'aide d'acide fluorhydrique (HF) dans un appareil approprié (appareil de coupure de type I, Peptide Instiute, Osaka, Japon).
Pour lg de peptidylrésine, 10ml de HF, lml d'anisole et lml de diméthylsulfure 5DMS sont utilisés. Le mélange est agité durant 45 minutes à -20C. Le HF est alors évaporé sous vide. Après lavages intensifs à l'éther, le peptide est élué de la résine par de l'acide acétique 10%, puis lyophilisé.
Les peptides sont purifiés par chromatographie liquide haute performance préparative sur une colonne VYDAC de type C18 (250 x 21 mm) (The Separation Group, Hesperia, CA, USA). L'élution est réalisée par un gradient d'acétonitrile à un débit de 22 ml/min. Les fractions collectées sont contrôlées par une élution en condition isocratique sur une colonne VYDAC. C18 analytique (250 x 4,6 mm), à un débit de lml/min. Les fractions qui présentent le même temps de rétention sont réunies et lyophilisées. La fraction majoritaire est ensuite analysée par chromatographie liquide haute performance analytique, avec le système décrit précédemment. Le peptide qui est considéré comme de pureté acceptable se traduit par un pic unique représentant 95 % minimum du chromatogramme.
Les peptides purifiés sont ensuite analysés dans le but de contrôler leur composition en acides aminés, à l'aide d'un analyseur d'acides aminés automatique Applied Biosystems 420H. La mesure de la masse moléculaire chimique (moyenne) des peptides est obtenue en utilisant la spectrométrie de masse L.S.I.M.S. en mode d'ion positif sur un instrument à double focalisation VG. ZAB.ZSEQ relié à un système d'acquisition DEC-VAX 2000 (VG analytical Ltd, Manchester, Angleterre).
La poche fermée de transfert renfermant les articles est elle-même de préférence contenue dans une autre poche également fermée. L'avantage en est une sécurité supplémentaire assurant que l'ouverture de ce sac stérile permette de délivrer dans l'enceinte stérile les produits parfaitement indemnes de toutes sortes de contaminations microbiennes, chimiques, particulaires ou autres.
Les articles à transférer peuvent eux-mêmes être renfermés dans unie poche fermée, dite "poche interne", ellemême contenue dans la poche fermée de transfert destinée à être collée sur l'enceinte.
Le collage de la poche de transfert sur l'enceinte peut être réalisé comme suit Dans une première variante, l'on traite avec un produit adhésif la fenêtre et son pourtour, puis l'on colle sur cette partie, une partie S de la paroi de la poche de transfert On peut alors procéder à une certaine protection de cette zone, que l'on maintient sous un flux laminaire par exemple.
On peut aussi réaliser la stérilité et protéger celle-ci à l'aide d'un film protecteur. Ce dernier sera notamment appliqué sur le sac enduit d'adhésif avant de réaliser la stérilité de l'ensemble film-surface adhésive.