INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Avantageusement comme indiqué, le montage du vérin par rapport à la costière s'effectue selon les caractéristiques définies dans la demande de brevet FR 9414615. A cet égard on rappelle que le fut (3a) du vérin est monté dans un support (4) articulé sur une traverse médiane (5) fixée directement à l'intérieur de la costière (1) d'une manière parallèle à ses bords latéraux. L'axe d'articulation (4a) du support (4) est décalé vers le haut par rapport à l'axe de poussée du vérin (3).
La coupole (2) est fixée d'une manière étanche dans un cadre profilé (6). Notamment la coupole (2) est fixée périphériquement entre deux ailes (6a) (6b) du cadre (6) par tous moyens appropriés. Ce cadre (6), avantageusement exécuté en aluminium, délimite une rainure interne (6c) pour le montage, selon l'un de ses côtés et à chacune de ses extrémités, de la partie femelle d'une paumelle (7). Chacune des paumelles (7) est fixée dans la rainure (6c) avec capacité de règlage en translation au moyen d'un insert (8) engagé dans ladite rainure (6c). Des vis (9) assurent la fixation de la paumelle (7) en combinaison avec l'insert (8). Il apparait donc que la coupole (2) est équipée directement d'un cadre (6) lui-même équipé de paumelles d'articulation (7).
Les paumelles (7) reçoivent dans un deuxième temps, un axe d'articulation (10) destiné à être engagé dans une partie correspondante de la costière (1). Selon une caractéristique importante chacun des axes rapportés (10) présente coaxialement une portée circulaire (10a) de diamètre inférieur à celui de l'ensemble de l'axe (figure 10). Cette portée (10a) reçoit , au niveau de sa partie de raccordement avec le corps de l'axe (10), une rondelle (11) déformable élastiquement et présentant périphériquement une pluralité de languettes profilées (1 la). Des bossages (10b) assurent le blocage en translation de la rondelle (11) sur la portée (10a). Les languettes (lia) sont dirigées vers l'extérieur par rapport au corps de l'axe (10).Le diamètre de l'ensemble de la rondelle (11) est égal ou très légèrement supérieur à celui du corps de l'axe (10).
La portée (10a) constitue un moyen de préhension pour l'introduction manuelle de l'axe (10) dans l'alésage (7a) de la paumelle.
Chacun des axes est introduit manuellement à partir de son extrémité (10c) dans l'alésage (7a) de la paumelle (7). Au moment où la rondelle (11) arrive au niveau de cet alésage (7a), sous l'effort de poussée correspondant à l'introduction dudit axe, elle est déformée élastiquement lorsqu'elle pénètre dans ledit alésage. Cette rondelle assure le blocage en translation de l'axe (10) dans l'alésage de la paumelle.
En effet, si l'on exerce un effort de traction sur la portée (10a) les languettes recourbées (lia) assurent le blocage de l'ensemble de l'axe dans la paumelle. Cette disposition évite donc tout démontage involontaire de l'ensemble de la coupole équipée de son cadre par rapport à la costière. Si pour des raisons quelconques il est nécessaire de démonter le cadre (6) il convient de démonter les paumelles (7).
Avantageusement la rondelle (11) du type de celle connue sous la référence "self locking" NOM EL 872080.
Suivant une autre caractéristique de l'invention, I'extrémité de la tige (3b) du vérin de commande (3) coopère avec un système de verrouillage automatique entre la costière (1) et le cadre (6) recevant la coupole (2). Comme le montrent notamment les figures 4,5,6,7, ce système de verrouillage comprend un verrou (12) articulé dans une chape (13) fixée sur une traverse (14) que présente la partie médiane du cadre (6).
Cette traverse (14) est disposée en correspondance avec la traverse (5) sur laquelle est articulée le support (4) recevant le fut (3a) du vérin (3).
Le verrou (12) est articulé sur un axe transversal (15) monté entre les deux ailes (13a) et (13b) de la chape (13). Le verrou (12) présente un talon (12a) pour être sollicité en permanence par l'extrémité de la tige (3b) du vérin (3).
Dans ce but, I'extrémité de la tige (3b) reçoit un axe transversal (16) équipé dans sa partie médiane d'un galet (17) qui prend appui sur le talon (12a). L'axe transversal (16 ) est engagé, à chacune de ses extrémités, dans une lumière oblongue (13a1) et (13b1) que présente chacune des ailes (13a) et (13b) de la chape (13), A noter que l'extrémité supérieure du talon (12a) présente un bossage (12b) muni d'une échancrure médiane (12b1) pour le centrage en translation du galet (17).
Un ressort (18), monté en combinaison avec l'axe (15), assure le rappel permanent en position d'appui du talon (12a) avec le galet (17) de l'extrémité de la tige (3b) du vérin (3).
Le verrou (12) présente une partie (12c) qui fait office de crochet pour coopérer en position rentrée de la tige (3b) du vérin (3), avec un axe transversal (19) que présente un support (20) solidaire de l'un des côtés de la costière (1). L'axe (19) monté avec capacité de coulissement dans une lumière oblongue (20a).
Le fonctionnement du système de verrouillage, sous l'effet de la commande du vérin (3) est illustré aux figures 4,5 et 6.
A la figure 4, I'ensemble du lanterneau est représenté en position verrouillée. La tige de vérin (3b) est rentrée, le crochet (12c) du verrou (12) coopère avec l'axe (19) interdisant tout soulèvement du cadre (6). Lorsque le vérin (3) est actionné, le déploiement linéaire de la tige (3b) provoque d'une manière concommitante, le déplacement de l'axe (16) dans les lumières (13a1) et (13b1) et l'appui du galet (17) sur le talon (12a) provoquant le basculement angulaire du verrou (12) dont le crochet (12c) échappe l'axe (19) (figure 5). La tige du vérin (3) peut ainsi continuer son effort de poussée, le système étant déverrouillé de sorte que l'ouverture de l'ensemble de la coupole par rapport à la costière peut s'effectuer normalement (figure 6).
Le gène reporter pTAT-tk-Luc a été fourni par D. Gagne et a été construit comme Suit: on a d'abord engendré un plasmide intermédiaire pTAT, par insertion du segment EcoRI-BamHI de 9G6 pb, provenant de pKT531 [fourni gracieusement par T. Grande (50)] dans les sites correspondants du vecteur pUCI9 (Pharmacia). Le fragment contenant la séquence codant pour la luciférase de luciole et le promoteur minimal thymidine kinase (tk) provenant du virus Herpes simplex a été isolé sous forme d'un fragment BamHI à partir de pvit-tk-Luc (51) et inséré, en aval du promoteur TAT, dans le site correspondant de pTAT. Le plasmide reporter pGRE-tk-Luc a été construit par ligature du fragment de digestion HindIII-BgIII de pGRE-tk-CAT (52), qui contient un GRE synthétique (AGAACAcagTGTTCT) en amont du promoteur minimal tk, dans les sites Hindlll-Bglll de pLuc (53). le gène reporteur p(17M)5-ssGlob-Luc a été décrit précédemment (5 1) Le plasmide reporter p(17M)5-tata-Luc a été construit à partir du plasmide p(17M)5-tata-CAT (55) par digestion par Xhol-Bamlll et isolement du fragment contenant (17M5)-tata. Ce fragment a été ensuite inséré dans le vecteur pGL2 (Promega) digéré par les mêmes enzymes de restriction.
Le vecteur d'expression de la ss-galactosidase pCMV-ssGal contient la séquence codant pour la ss-galactosidase, sous contrôle du puissant promoteur constitutif de cytomégalovirus (CNlV).
3.3. Essai de liaison à une hormone Des cellules Cos-7 transfectées avec pCMV-ssGal et hGR de type sauvage ou mutant 1747/T ont été récoltées 48 heures après la transfection, dans une solution salée tamponnée au phosphate (STP), par grattage à l'aide d'une spatule en caoutchouc. Les cellules ont été lavées deux fois dans de la STP glacée.Toutes les étapes de la préparation de cytosols ont été effectuées à 4 C. On a remis les cellules en suspension dans 3 volumes de tampon de liaison [Na-HEPES 20 mbí, pH 7,3, molybdate de sodium 20 mM et EDTA 5 mNl (22) et avec des inhibiteurs de protéase [leucopeptinc (5 g/ml), aprotinine (5 g/ml), PAíSF ( 10 stg/ml) et pepstatine A (5 Fg/ml)l, et on les a placées pendant 15 minutes sur de la glace.Les cellules ont ensuite été lysées par 30-40 coups de piston dans un homogénéisateur en verre Dounce, et l'homogénat résultant a été ensuite centrifugé à 110 000 g pendant 30 minutes. Le surnageant, dénommé cytosol, a été utilisé immédiatement pour l'essai de liaison à une hormone. Les concentrations de protéine ont été déterminées par le dosage de protéine Bio-Rad (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA). Pour l'essai de liaison à une hormone, on a mis à incuber pendant une nuit à 4 C un cytosol, contenant 1-3 mg de protéine/ml, avec de la [3H]-Dex (49 Cl/mmole; Radiochemical Center, Amersham, Angleterre) ou du cortisol (67 Ci/mmole; Radiochemical Center, Amersham, Angleterre) sans (liaison totale) ou avec (liaison non spécifique) un excès de 100 fois de composé radio-inerte (10-5 M, Sigma Chemical Co., St.Louis, Mo, USA). On a ensuite traité les échantillons par 1 volume de charbon-dextran (5% de charbon, 0,5% de dextran dans la solution de liaison) pendant 15 minutes dans de la glace, sous agitation constante, puis on les a soumis à une centrifugation pendant 10 minutes à 12 000 g. Le ligand [3H] fixé a été mesuré dans une partie aliquote du surnageant, par comptage de scintillation. La constante de dissociation à l'équilibre (Kd) du récepteur pour la dexaméthasone ou le cortisol a été déterminée par analyse de Scatchard.
Pour l'analyse de liaison compétitive, on a mis les cytosols à incuber avec 10 nM de [3H]-Dex et diverses concentrations dc stéroïdes compétitifs non radioactifs, dans les mêmes conditions que précédemment. Après traitement au charbon-dextran et comptage dc scintillatioll, la liaison spécifique a été exprimée en pourcentage du témoin non soumis à une compétition, et portée en fonction de la concentration du stéroïde en compétition. Des essais de liaison compétitive dans des cellules entières ont été effectués sur 106 cellules mises à incuber pendant 1 heure à 37"C avec 10 nNí de [311]-Dex et diverses concentrations de stéroides en compétition.
Après sonication dans 1 ml de tampon KCI (EDlA 1,5 mM, Tris.llCl 20 mM, pli 7,4, KCl 0,) M), on a éliminé le stéroïde non lié par addition de deux volumes de charbon enrobé de dextran, dans du tampon KCI à la gélatine (0,05 % de dextran, 0,5% de charbon, 0,1% de gélatine). On a mis le mélange à incuber pendant 30 minutes à 4 C et on l'a centrifugé à 3 000 g pendant 5 minutes. La radioactivité a été déterminée par comptage de scintillation en liquide et on a porté sur une courbe comme précédemment la liaison spécifique.
EXEMPLE 2 : Recombinase Cre chimérique dont l'activité est inductible par des glucocorticoïdes synthétiques, mais pas par des glucocorticoïdes naturels 1. Matériel et méthodes 1.1. Construction du vecteur pCre-LBD[GR(1747/T)] Un fragment d'ADN Clal-Xbal d'environ 1300 paires de base (pb), contenant la séquence codant pour le domaine de liaison du ligand du récepteur humain des glucocorticoïdes a été isolé du plasmide HGI (voir Exemple 1 (40)) et ses extrémités ont été remplies par la T4 polymérase. Ce fragment a été muté de sorte que les nucléotides ATT codant pour une isoleucine en position 747 du récepteur sauvage (oG) sont remplacés par les nucléotides ACC, codant pour une thréonine.Ce fragment muté a été cloné dans le vecteur pCre-ER (28) digéré par Xhol et Pstl, dont les extrémités ont également été remplies par la T4 polymérase [plasmide pCre+GR(1747/T)+F; séquence codante du LBD de hGR(1747/T) dans la même orientation que celle de Crel. pCre-LBD[GR(1747/T)] a été obtenu par mutagénèse dirigée réalisée sur l'ADN simple brin préparé à partir du plasmide pCre + GR(1747/T) + F, avec les oligonucléotides de synthèse - SG5 2 ( 5 '-CTGGAAGATGGCGATCTCGAGATTCAGCAGGCCACT-3') - SG5 3 (5' -CTGTTTCATCAAAAGGGTACCAGCCGTGGAGGGGCAT 3') permettant de fusionner d'une part la séquence d'ADN codant pour la Cre [amino acides (aa) 1-343 (orf2 (cre) ; (31)], et celle qui code pour la région contenant le LBD muté de 11G1 [aa 500-777], d'autre part la séquence d'ADN précédemment modifiée et celle codant pour la région F du récepteur humain des oestrogènes (ER) [aa 553-595 (57)] (Figure 5). Cette opération restaure le site de restriction Xhol si tué à la fin des séquences Cre dans pCre-ER et introduit un site de restriction KpnI entre les séquences codant pour GR et la région F du ER (Figures 6 et 7).
1.2. Mutation du gène RXRa Le vecteur (pRXRa(LNL)), utilisé pour muter le gène RXRa (58) par recombinaison homologue dans les cellules F9 a été construit de la façon suivante Un phage x contenant un fragment génomique de 11.8 kb, comprenant les exons 2,3 et 4 de RXRa, a été isolé à partir d'une banque génomique réalisée avec de l'ADN génomique de l'embryocarcinome murin P19, cloné dans le vecteur # ENIBL3. Un fragment Sall isolé de ce phage (dont les extrémités ont été remplies par la T4 polymérase) a été sous cloné dans le site BamlAl (après traitement à la T4 polymérase) d'un dérivé du vecteur pBluescriptllSK+ (Stratagène). Dans ce dérivé, le site Xhol a été supprimé.Un site Xhol a été introduit dans l'exon 4 de RXRa au niveau du site Accl correspondant au nucléotide 535 de l'ADNc de RXRa (la séquence de l'ADNc de IXRa est donnée dans Genbank référence : M 84817), en clonant dans le site Accl les oligonucléotides synthétiques suivants -5'-ATTATTATTACTCGAGTGATGATG-3' et, -5'-ATCATCATCATCCGAGTAATAATA~3'.
Enfin, le fragment XhoI, contenant la cassette d'expression du gène dc résistance à la néomycine, entourée de sites loxl', isolé du vecteur pHR56 (28) a été cloné dans le site Xhol du vecteur précédent.
La mutation d'un allèle du gène lRa dans des cellules F9 a été effectuée par recombinaison homologue à l'aide du vecteur pRXRα(LNL) (28). Cette lignée a été appelée RXRα+/-(LNL).
1.3. Expression de Cre-LBD[GR(1747/T)j dans des cellules comportant un fragment d'ADN modifié : RXRa(LNL) - Transfection transitoire: 5 10G cellules RXRα+/-(LNL) OU cellules HeLa resuspendues dans 500 cil de PBS ont été électroporées avec 5 g de plasmide pCre-LBD[GR(1747/T)] [éventuellement cotransfectées avec 5pg du vecteur pRXRa(LNL) pour les cellules Hela] à l'aide d'un électroporateur (Bio-Rad gene pulser), réglé à 200 V et 960 F. Les cellules ont ensuite été ensemensées à 106 cellules par boite de 100 mm et traitées, si nécessaire, avec des ligands.
- Transfection stable : 5. 106 cellules RXRα+/-(LNL), resuspendues dans 500 I de PBS ont été électroporées avec 5 g de pCre-LBD[GR(1747/T)] et 1 g de pPGK-Hyg (59), digérés respectivement par Sall et PvuII, à l'aide d'un électroporateur (Bio-Rad gene pulser), réglé à 200 V et 960 F. Les clones résistants ont été obtenus selon la procédure décrite par Metzger et al. (28).
1.4. Amplification par "PCR" d'une région d'ADN génomique localisée dans l'exon l de RXRα Les amplifications d'ADN ont été réalisées en utilisant la technique de "Polymérase Chain Reaction" (PCR), selon le protocole décrit par Chen and Evans (60). Les amorces utilisées sont : SB211 et PZ105, ayant respectivement comme séquence nucléotidique 5'-GGCAAACACTATGG-3' et 5'-TTGCGTACTGTCCTCTT-3'. Après dénaturation pendant 8 min à 94 C, 2,5 unités de Taq polymérase sont ajoutées. L'amplification est effectuée en réalisant 35 cycles (30 sec. à 94 C, 30 sec. à 50 C suivi d'un cycle (30 sec. à 94'C, 30 sec. à 50 C, 5 min à 72 C) dont le produit est conservé à 4 C.
Les produits des réactions ont été séparés sur gel de polyacrylamide (10 %) ou dagarose (2,5%). L'ADN a été visualisé par UV suite à une coloration au bromure d'éthidium, ou par Southern Blot (42).
1.5. Test d'excision des séquences situées entre les sites LoxP L'ADN de cellules RXRa+/-(LNL), transfectées avec pCre LBD[GR(1747/T)] ou le vecteur parental pSG5, non traitées ou traitées avec du cortisol (10-6M) ou de la dexaméthasone (10-6M) pendant 72 heures, a été soumis a une réaction PCR selon la stratégie décrite en Figure 8. Les produits de la réaction ont été séparés sur gel d'acrylamide et colorés au bromure d'ethidium. La piste M sur la Figure 9 correspond au dépôt du marqueur de taille pBR322 digéré par Hinfl. La position des allèles sauvage et recombiné est indiquée.
1.6. Analyse par PCR de l'activité recombinase de Cre LBD[GR(1747/T)] dans la lignée RXRα+/-(LNL) exprimant la protéine chimérique de façon constitutive.
Pour la Figure 10, I'ADN préparé à partir de cellules RXRα+/- (LNL):Cre-GR(1747/T) non traitées ou traitées au cortisol (10-6M) ou à la dexamethasone (10-6NI) a servi de matrice pour réaliser une amplification par PCR, selon la procédure décrite en Figure 8. L'ADN amplifié a été séparé sur gel d'acrylamide et coloré au bromure d'ethidium. Les pistes 1, 2, 3 et 4 contiennent respectivement les produits de PCR réalisés avec de l'ADN extrait de cellules F9 sauvages (WT), RXRα+/-(LNL), RXRα+/-(L) et de C2RXRα-(L)/-(L) (73). La piste 8 contient un marqueur de taille (échelle de tub ; GibcoBRL).
1.B.1.a" Mémoire Données Globale" La figure 5 représente un synoptique fonctionnel d'une carte électronique d' une Unité Centrale actuelle.
Pour son exécution du programme le t Processeur (70) s'appuie sur une "base de donnée" (65) que nous appellerons "mémoire globale" modifiable et inscrite sur mémoire de type RAM (à accès en écriture et lecture de manière aléatoire ).
Cette mémoire "globale" est entre autre, I'image de: - I' état du procédé commandé - I'état du système de contrôle commande que constituent l'unité centrale et ses interfaces.
Cet aspect est important pour la suite de l'exposé dans la mesure où c' est à cette mémoire donnée globale que l'opérateur de maintenance ou de mise en route se réfère en accord avec le programme pour déterminer la cause d'une panne ou effectuer ses opérations de surveillances, de tests, de mises au points ect..
Aussi, cette notion de mémoire globale doit être gardée à l'esprit tout au long de l'exposé car cette définition n'est pas mis en cause par l'invention.
Parmi les zones caractéristiques de la mémoire globale se trouvent notamment les zones mémoires RAM suivantes: 1.B.1.a1 La mémoire inteme (67) figure 5, servant au programme pour mémoriser des résultats intermédiaires ou des phases de fonctionnement du procédé. Elle est accessible en lecture etlou écriture par l'unité centrale sous forme de bit ou de groupe de 4, 8, 16, 32 et 64 bits que l'on appelle "mots" La figure 4 représente des opérations sur de telles variables repérées par les mnémoniques: - mO, mi, m2... pour les bits, - motO, mot1...pour les mots.
1.B.1.a.2 La mémoire "Image des entrées" (66) figure 5, où sont écrits, généralement par les interfaces d'entrées (71) figure 4, les états de tous capteurs de type binaire, ou analogique. Cette opération rend ainsi disponible en lecture les états des capteurs du procédé par l'unité centrale pour la réalisation du programme.
La figure 4 représente des opérations de lectures sur de telles variables repérées par les mnémoniques faisant référence à l'information qu'ils représentent: - "Auto": provenant du sélécteur de mode de fonctionnement, -"Niv.Haut" détection du niveau haut d'une cuve ect.
1.B.1.a.3 La mémoire "Image des sorties" (68) figure 5, où sont écrits les résultats caractérisant les états que doivent prendre les actionneurs du procédé. Elle peut être lue ou écrite par "programme" durant son exécution, mais elle peut être aussi lue par les interfaces de sorties (72) figure 5 qui sont chargées de transmettre ces états sur les sorties "physiques" du système de contrôle commande.
La figure 4 représente des opérations de lecture et d' écriture sur de telles variables repérées par les mnémoniques faisant référence â I' action qu'ils doivent déclencher sur le site "Ppel" marche pompe 1 "Ppe2" marche pompe 2 ect..
i.B.i.b Mémoire "Programme" Ce programme est écrit dans une mémoire de type R.O.M (69) figure 4 (à lecture seulement).
II est constitué d'une suite d'instructions représentées en langage "contacts" en figure 4, mais qui peuvent être du type: IF (CONDITIONS) THEN ACTIONS ELSE (INSTRUCTION SUIVANTE) ou encore en langage littéral: résultat (CONDITIONS) = ACTIONS Vis à vis de l'exposé, un programme se divisera donc en deux parties fondamentales: i.B.i.b.1 Partie "CONDITIONS" (75) figure 4 Le programme y effectue les opérations de lecture en mémoire données globales, des états de variables intervenantes dans les opérations logiques qui caractérisent le fonctionnement du procédé.
La partie "Conditions" est entièrement modélisable par la représentation des organigrammes.
Le résultat (76) figure 4, de chacune des opérations logiques est équivalent à une valeur binaire, qui est généralement le bit dit "drapeau de retenue" ou "CARRY Status flag" C'est une variable interne au micro processeur (70) fig 5 qui ne sert que temporairement à I' exécution de l'instruction en cours . L'état de ce bit est donc testé, (77) figure 4, en fin de calcul de la CONDITION pour provoquer un saut de programme sur ACTION s'il est à "UN" ou passer à l'instruction suivante s'il est à "ZERO" La caractéristique de la centralisation d'un système de contrôle se trouve principalement dans ce fait: Ce drapeau de retenue sert successivement pour toute les instructions du programme.
La figure 7 représente une opération logique complexe qui sera repris dans la suite de l'exposé. Elle est écrite en langage contact.
En langage dit littéral elle donne la ligne suivante: a ET [(b ET non c ET d) OU ( ( f OU e) ET g) OU ( non | ET non j )I = r 1.B.l.b.2 Partie "ACTIONS" (78) figure4 Le contenu du résultat de chaque opération logique permet selon son état à "UN" ou "ZERO" d' enchaîner des "actions" qui représentent des opérations d' écriture en mémoire globale donnée et notamment les états désirés des sorties physiques.
Les 30 autres souris ont été réparties en trois groupes de 10 et ont reçu quotidiennement, pendant 10 jours, une dose per os d'un extrait végétal obtenu conformément au protocole décrit à l'exemple 1, égale à - groupe 1 : 4 x 0,4 ml, - groupe 2 : 8 x 0,1 ml, et - groupe 3 : 8 x 0,2 ml, puis à compter du llème jour, une dose per os quatre fois plus faible que celle initialement administrée, c'est à dire respectivement égale à : - groupe 1 : 4 x 0,04 ml, - groupe 2 : 8 x 0,05 ml, et - groupe 3 8 x 0,1 ml.
Les résultats au 19ème jour suivant le début du traitement sont illustrés dans le Tableau 2 ci-après.
Groupes j Nombre de souris ayant développé une tumeur Contrôle 17/20 1 i 1/10 2 l 1/8 3 | 2/10 Ainsi, contrairement aux souris du groupe contrôle, la majorité des souris traitées n'ont pas développé de tumeurs en dépit d'une inoculation d'une dose élevée de cellules tumorales.
De plus, les tumeurs présentées par les souris du groupe contrôle étaient des tumeurs visibles tandis que celles développées par les souris traitées étaient des petites tumeurs bien circonscrites.
3. Etudes cliniques L'activité antitumorale d'un extrait végétal, obtenu selon le protocole décrit à l'exemple 1, a été testée chez 21 patients adultes, affectés de différentes pathologies tumorales essentiellement malignes.
Tous ont été traités par une administration orale dudit extrait, à raison de 40 ml par jour (4 x 10 ml) pendant une période comprise entre 1 et 12 mois en fonction de la réponse tumorale. Trois patients, atteints respectivement d'un carcinome rectal avec métastases, d'un carcinome ovarien envahissant et d'un carcinome colique, ont reçu conjointement une chimiothérapie classique tandis qu'un patient atteint d'un adénome prostatique, a reçu conjointement une hormonothérapie.
Les résultats sont illustrés dans le Tableau 3 ci-après.
Ce Tableau montre que l'administration quotidienne d'un extrait végétal conforme à l'Invention a permis d'obtenir une rémission totale de la pathologie tumorale chez 17 patients et une réduction tumorale suffisamment importante pour permettre une résection chirurgicale de la tumeur chez les 4 autres patients. TABLEAU 3