INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Lorsque un tel tissu est amené sur la table d'alimentation 3, initialement, le signal de commande émis par le contrôleur 90 fait tourner lentement le ventilateur 63 selon son sens normal de rotation Simultanément, le moteur de commutation M prévu sur la boite filtrante 53 commande le fonctionnement de la valve en forme de L V 2 Celle-ci ferme alors l'orifice d'admission d'air 531 de la boîte filtrante 53 et elle ouvre l'orifice d'admission d'air 533, et, en outre, elle assure la commutation de la boîte d'évacuation 31 vers l'orifice
d'évacuation de l'air 312 sur le côté de la table.
L'air absorbé par l'intermédiaire du système de nettoyage 7 s'écoule dans la boîte filtrante 53 au travers de l'orifice d'admission d'air 533, o la boîte filtrante 53 capture les poussières fibreuses L'air filtré est ensuite amené à l'orifice d'évacuation d'air 532 avant d'être absorbé par le ventilateur 63 D'autre part, de l'air d'évacuation est délivré à la table d'alimentation 3 à partir de l'orifice d'évacuation 312, côté table, de la boîte d'évacuation 31, par l'intermédiaire de la conduite d'alimentation d'évacuation 32 avant d'être finalement évacué par soufflage par un trou d'évacuation. En conséquence, les poussières fibreuses sont éliminées du transporteur à bande sans fin 24 avant d'être captées par la boîte filtrante 53 Par ailleurs, la table d'alimentation 3 alimente, de façon interne un tissu devant être coupé, ce dernier flottant légèrement (en état d'apesanteur) sur la
surface de la table.
La figure 6 représente de façon schématique la circulation de l'air lors d'une opération de découpe d'un tissu dans la chambre d'aspiration 23 Dans ce cas, afin d'utiliser totalement la force d'absorption dans l'unité de coupe 2, le ventilateur 63 est entraîné selon un nombre spécifique de révolutions de manière à obtenir la pression prédéterminée par
le circuit de commande du ventilateur 9.
Simultanément, la valve en forme de L V 2 est actionnée par 11- le moteur de commutation M, prévu sur la boîte filtrante 53, de manière à ouvrir l'orifice d'admission d'air 531 de la boîte filtrante 53 et à fermer ensuite l'orifice d'admission d'air 533 de manière que la boîte d'évacuation 31 puisse être
commutée sur l'ajutage d'évacuation 311.
De l'air absorbé dans la chambre d'aspiration 23 est ensuite amené vers la boîte filtrante 53 de manière à lui
permettre de capter immédiatement les poussières fibreuses.
Ensuite, de l'air évacué est entraîné vers l'extérieur de la boîte d'évacuation 31, par l'intermédiaire de l'ajutage
d'évacuation 311.
L'invention a pour but de résoudre ces problèmes grâce à des moyens de structure simple.
Elle propose, à cet effet, un mortier à barillet du type précité, qui est caractérisé en ce que chaque chemise comprend à son extrémité arrière des moyens à déformation élastique, formant butée de support et de positionnement de la munit ion introduite dans la chemise par l'extrémité avant de celle-ci et assurant également une étanchéité aux gaz lors du tir, par rapport à la chemise et à la plaque de tir.
La déformation élastique des moyens précités, provoquée par la pression des gaz de propulsion lors d'un tir, permet une étanchéité parfaite entre la chemise et la plaque de tir. Par ailleurs, le poids de la munition, chargés dans la chemise permet un appui élastique en légère précontrainte de ces moyens sur la plaque de tir lorsque la chemise est amenée en position de tir.
Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, ces moyens sont constitués par un joint métallique de forme générale cylindrique à extrémité avant ouverte et à extrémité arrière comportant une paroi de fond annulaire à orifice central, ce joint étant monté dans un alésage de l'extrémité arrière de la chemise et retenu dans cet alésage par des moyens tels par exemple qu'un écrou vissé.
Ce joint cylindrique est monté glissant sans jeu radial dans l'alésage de la chemise et est à surface cylindrique extérieure rectifiée dont le diamètre est égal au diamètre de l'alésage de la chemise.
Ce montage coulissant sans jeu du joint dans la chemise permet, sans nuire à l'étanchéité, un rattrapage des dispersions des cotes de fabrication des chemises. La rectification des surfaces cylindriques en contact du joint et de la chemise permet en outre d'éviter les incrustations métal dans métal lors des tirs, qui auraient pour effet de coincer le joint dans la chemise et d'empêcher son fonctionnement normal.
Selon une autre caractéristique de l'invention, la surface intérieure du joint est cylindrique à section circulaire au voisinage de la paroi de fond, avec un diamètre assurant le centrage de la munition, et est tronconique à sa partie avant, l'épaisseur de paroi du joint diminuant en direction de son extrémité avant.
Cette surface interne tronconique a pour fonction de faciliter le chargement et le positionnement de la munition dans la chemise, et de faciliter également la déformation élastique de la partie correspondante du joint, qui s'appuie sur l'alésage de la chemise pour assurer l'étanchéité, sous l'effet de la pression des gaz lors d'un tir.
Selon une autre caractéristique de l'invention, la surface externe de la paroi de fond du joint est faiblement tronconique, sa petite base formant l'orifice central précité et se trouvant en saillie sur le fond du joint.
La surface interne de la paroi de fond du joint comporte quant à elle une partie annulaire située dans un plan perpendiculaire à l'axe du joint et raccordée à la surface cylindrique interne du joint, pour former une face d'appui de la base de la munition, et une partie tronconique s'étendant jusqu'à l'orifice central de la partie de fond, l'épaisseur de cette paroi diminuant en direction de l'axe.
Ainsi, le fond du joint est capable de résister au choc d'une munition chargée par l'extrémité avant de la chemise et tombant par gravité dans cette chemise, et est capable également de se déformer élastiquement pour s'appliquer à pression sur la plaque de tir et assurer l'étanchéité aux gaz lors d'un tir.
L'invention sera mieux comprise et d'autres caractéristiques, détails et avantages de celle-ci ressortiront plus clairement de la description qui suit, faite à titre d'exemple en référence aux dessins annexés dans lesquels la figure 1 est une vue schématique en coupe axiale d'une chemise comportant un joint métallique selon l'invention; la figure 1A est une vue à plus grande échelle du détail encerclé I de la figure 1; la figure 2 est une vue semblable à la figure 1, mais représente la chemise en position de tir.
Le joint selon l'invention est particulièrement destiné à être utilisé dans un mortier à tir rapide de 81 mm, tel que celui qui a été développé par la déposante pour équiper des véhicules blindés légers. Un tel mortier est bien connu et sa structure générale n'a donc pas été représentée.
Le barillet du mortier comprend cinq chemises, telles que celle représentée schématiquement en figure 1 et désignée par la référence 10, qui sont de forme générale cylindrique à section circulaire et dont les extrémités avant 12 et arrière 14 sont ouvertes.
L'extrémité arrière 14 de chaque chemise 10 comprend, dans le mode de réalisation représenté aux dessins, trois alésages successifs 16, 18 et 20, de diamètre progressivement décroissant, qui sont utilisés pour la réception et le maintien d'un joint métallique 22 selon l'invention.
L'alésage 16 de plus grand diamètre de la partie arrière de la chemise 10 est à surface interne filetée et reçoit un écrou 24 de retenue du joint 22 dans la chemise.
L'incubat est prélevé à différents temps et mis en présence, pendant 2 h à 37"C, de fibrine fixée de façon covalente sur une plaque de microtitration de façon à étudier l'affinité des levures à la fibrine.
Après lavage de la plaque, pour éliminer les levures non fixées, l'activité enzymatique leucinearylamidase des levures fixées à la fibrine est révélée sur un substrat synthétique (H-L-Leu-pNA) et appréciée par la mesure de la OD à 405 nm.
b) Réaction d'affinité Avec un milieu aqueux aérobie de filamentation constitué par le milieu synthétique "199" (commercialisé par l'Institut Pasteur et désigné ci-après "199 IP"), on a observé que Fn présente une affinité vis-à-vis des BL et des formes filamenteuses et que l'adhérence de Fn aux formes filamentaires (après incubation pendant 18 h à 37 C) est plus importante que celle de Fn aux BL (mesure à l'instant T = 0 h).
Les résultats consignés dans le tableau I ciaprès, pour une souche de Candida albicans, confirment ceux donnés dans les articles A. BOUALI et al. précités.
Il convient de remarquer cependant que le milieu 199 IP n'est pas un milieu de filamentation approprié, ainsi que cela est démontré ci-après.
TABLEAU I Affinité à la fibrine en milieu synthétique 199 IP d'une souche de Candida albicans Formes de la levure Durée OD d'incubation (à 37"C (à 405 nm) et à pH 7,0-7,5) BL T = 0 h 0,057 formes germinatives et filamenteuses T = 18 h 0,253 EXEMPLE 2 (comparatif) On a testé différents milieux de développement de levures pour apprécier ceux qui favorisent la filamentation. Dans cette optique, on a mis à incuber 12 souches isolées de Candida albicans (connues pour filamenter facilement) dans chacun des milieux de développement (i.e.
milieux de multiplication-filamentation) pendant 18 h à 370C et à pH 7,0-7,5, puis on a observé au microscope la présence éventuelle des formes BL, GT, PMy et My.
Les résultats consignés dans le tableau II ciaprès mettent en évidence que le milieu néopeptone ne favorise pas la filamentation, alors que les autres milieux, à savoir le milieu de Shadomy enrichi et éventuellement complémenté, le milieu 199 IP et le milieu plasma oxalaté favorisent ladite filamentation.
On verra plus loin que le supplément G (commercialisé par l'Institut Pasteur), le milieu 199 IP et le plasma oxalaté faussent la réaction d'affinité.
TABLEAU II Formes des levures selon les milieux de développement pour 12 souches de Candida albicans (incubation 18 h à 370C à pH 7,0-7,5) Milieux Formes des levures néopeptone rares formes BL bourgeonnantes rares GT milieu 199 IP très nombreuses formes BL bourgeonnantes et GT + PMy + My milieu de Shadomy nombreuses formes BL bourgeonnantes et GT + PMy + My milieu de Shadomy très nombreuses formes BL + extrait de levure (2 g/l) bourgeonnantes et GT + PMy + My milieu de Shadomy très nombreuses formes BL + extrait de levure (4 g/l) bourgeonnantes et + urée (2 g/l) + ampicilline GT + PMy + My milieu de Shadomy très nombreuses formes BL + supplément G (IP) bourgeonnantes et GT + PMy + My plasma oxalaté très nombreuses formes BL bourgeonnantes et GT + PMy + My EXEMPLE 3 (comparatif) On a apprécié l'affinité de différentes substances (F) vis-à-vis des formes filamentaires de plusieurs souches de levures. Dans cette optique, des souches isolées ont été mises à multiplier dans le milieu de Shadomy enrichi (extrait de levure à 2 g/l) pendant 18 h à 37"C et à pH 7,0-7,5, puis à filamenter dans le milieu de Shadomy normal (i.e. non-enrichi et non-complémenté) pendant 1-3 h à 370C et à pH 7,0-7,5.A l'issue de la filamentation, des prélèvements du milieu de filamentation résultant ont été déposés dans les cupules de plaques de microtitration revêtues par liaison covalente de fibrinogène (Fg), de fibrine (Fn) obtenue par action de la thrombine sur le fibrinogène, de fragment D purifié (D), de FgDP obtenus par action de la plasmine sur le fibrinogène, et de FnDP obtenus par action de la thrombine puis d'un activateur du plasminogène tel que l'urokinase. Les formes filamentaires obtenues, à partir de souches pathogènes de Candida albicans et de Candida tropicalis, et de souches non-pathogènes de Candida krusei et de Candida glabrata (toutes ces souches ayant été isolées en clinique humaine), ont été mises en contact avec Fg, Fn, D, FgDP ou respectivement FnDP pendant 2 h à 37"C et à pH 7,0-7,5.
La mesure de l'activité enzymatique leucinearylamidase a été déterminée sur un substrat synthétique (H-L-Leu-pNA) par la détermination de la variation de OD à 405 nm, comme indiqué à l'exemple 1 ci-dessus.
Les résultats obtenus sont consignés dans le tableau III ci-après où sont données lesdites variations de OD à 405 nm.
TABLEAU III Variation de OD à 405 nm Souches Fg Fn D FgDP FnDP Candida albicans 0,10 0,23 0,01 0,22 0,19 latence Candida tropicalis 0,61 0,64 0,60 0,89 0,89 latence Candida krusei 0 0 0 0 O Candida glabrata 0 0 0 0 0 EXEMPLE 4 (comparatif) (a) Première série d'essais On a évalué l'affinité de Fg et de ses dérivés (Fn, D, E, FgDP et FnDP) vis-à-vis des formes filamentaires de diverses levures, selon les modalités opératoires décrites à l'exemple 3 ci-dessus, en fonction de l'inoculum.
On a constaté que l'affinité vis-à-vis desdites formes filamentaires se manifeste effectivement pour les souches de levures pathogènes quand l'inoculum soumis à la filamentation a une population supérieure ou égale à 10Q levures/ml et mieux une population supérieure ou égale à 105 levures/ml.
(b) Seconde série d'essais On a évalué l'influence du milieu de développement de levures sur ladite affinité. Dans ce but, on a procédé au développement (i.e. multiplication et filamen tation simultanées dans le même milieu) de souches de levures dans divers milieux de développement pendant 24 h à 37"C et à pH 7,0-7,5 ; ensuite on a déposé des prélèvements de chaque milieu de développement résultant dans des cupules de plaques de microtitration revêtues de Fg par liaison covalente, et laissé incuber pendant 2 h à 37"C et à pH 7,0-7,5 ; on a enfin mesuré l'activité enzymatique sur un substrat synthétique (H-L-Leu-pNA) par la détermination de la variation de OD (notamment à 405 nm) pour apprécier l'éventuelle affinité, comme indiqué à l'exemple 1 ci-dessus.
Les résultats obtenus avec des souches pathogènes de Candida albicans et de Candida tropicalis isolées en clinique humaine sont consignés dans le tableau IV ciaprès.
4) Fixer la bouche d'aspiration (7) sur le tableau de bord (6).
5) Fixer le tuyau flexible d'un côté sur le boîtier (3) et de l'autre côté sur la bouche d'aspiration (7).
6) Creuser un trou sur la tôle de séparation (16) pour passer la manette (9).
7) Fixer la manette (9) sur l'orifice (11) du volet (8).
FONCTIONNEMENT DU DISPOSITIF Lorsque le conducteur tire sur la manette (9) il ouvre le volet (8) et ferme par cette réaction la bouche d'aspiration (12), l'aspiration du filtre à air (1) se fera alors par la bouche d'aspiration (7) sur l'habitacle (17) de l'automobile.
Lorsqu'il pousse la manette (9) il ferme le volet (8) et l'aspiration se fera alors sur la bouche d'aspiration (12) à l'extérieur de l'habitacle (17).
Le débit de l'aspiration peut être réglé plus fort ou plus faible par la manette (9).
DESCRIPTION DE LA FIGURE I 1) Filtre à air de l'automobile.
2) Tuyau flexible.
3) Boîtier avec volet (8) et volet (4).
4) Volet anti-retour.
5) Tuyau flexible.
6) Tableau de bord.
7) Bouche d'aspiration.
8) Volet de réglage de l'aspiration.
9) Manette pour manouvrer le volet (8).
D'une manière particulièrement avantageuse, la base de l'étui antivol, c'est-à-dire la partie qui correspond au côté opposé à celui du fond ouvert, possède une épaisseur qui est sensiblement égale à l'épaisseur du boîtier qu'il reçoit, de sorte qu'il peut être emboîté dans un meuble présentoir conçu pour recevoir des boîtiers nus. Ceci donne au présentoir un caractère polyvalent, très intéressant pour le vendeur.
Comme déjà dit, bien que ce ne soit pas limitatif, l'étui antivol conforme à l'invention est plus spécialement destiné à recevoir un boîtier contenant une cassette audio ou un disque, par exemple un disque compact (à lecture laser) ou un vidéodisque.
Sur ces dessins - la figure 1 est une vue générale, en perspective, d'un étui antivol destiné à recevoir un boîtier de disque compact - la figure 2 est une vue de face, avec arrachement partiel de la paroi correspondant à la face avant, de l'étui de la figure 1 - la figure 3 est une coupe transversale de l'étui selon le plan III-III de la figure 2 - la figure 4 représente, vu de face et coupé, l'étui antivol des figures 1 à 3, cet étui s'apprêtant à recevoir un boîtier renfermant un disque compact - la figure 4A est une vue partielle, similaire à la figure 4, illustrant la mise en place du boîtier à l'intérieur de l'étui - la figure 4B est une vue similaire à la figure 4 après mise en place du boîtier dans l'étui - la figure 5 est une vue partielle similaire à la figure 4B, destinée à illustrer un mode de positionnement différent de l'étiquette détectrice ; - la figure 6 est une vue schématique montrant le rangement de plusieurs boîtiers dans un meuble présentoir - la figure 6A est une vue similaire illustrant la possibilité de ranger, dans ce même meuble présentoir, des étuis antivols - la figure 7 est une vue similaire à la figure 2 d'un étui antivol destiné cette fois à recevoir une cassette audio.
L'étui antivol représenté aux figures 1 à 3 est un emballage monobloc, c'est-à-dire d'une seule pièce, obtenu par moulage d'une matière plastique transparente, par exemple une résine, de faible épaisseur, présentant de très bonnes caractéristiques mécaniques au choc, au cisaillement et à l'arrachement.
L'épaisseur de ses parois est par exemple de l'ordre de 1,2mm.
L'étui a la forme générale d'un parallélépipède rectangle relativement plat, dont les dimensions correspondent aux dimensions standard de l'étui recevant un disque compact, ces dimensions étant juste suffisantes pour que l'étui 1 puisse contenir le boîtier. On a désigné par la référence 3 les deux parois latérales représentant les chants de l'étui qui correspondent aux deux petits côtés du rectangle, par la référence 2 le fond plein de l'étui correspondant à l'un des grands côtés du rectangle; le fond opposé au fond 2, référencé 20 est ouvert, c'est-à-dire dépourvu de matière. Les grandes faces de l'étui sont référencées 4 et 5. L'une des face 4 est matérialisée seulement par deux lamelles (barrettes plates) de faible largeur 40, 41 s'étendant parallèlement au fond 2 et reliant les deux parois latérales 3. L'une de ces lamelles est située du côté opposé au fond 2, et forme l'un des bords de l'ouverture 20. L'autre lamelle 41 est située au voisinage du fond 2, la lamelle et le fond étant séparés par une ouverture 410. On constate donc que la face 4 est largement ouverte.
L'autre face 5 comprend une paroi 50 qui s'étend depuis le bord du fond ouvert 20 jusqu'au voisinage du fond fermé 2. On a désigné par la référence 500 l'ouverture séparant la paroi 50 du fond 2. Cette paroi 50 présente une large ouverture centrale 51, de forme rectangulaire à coins arrondis.
On constate par conséquent que la majeure partie de la paroi de l'étui est évidée, de sorte que la matière requise pour sa fabrication est réduite.
Sur les faces internes des parois latérales 3, juste au voisinage du fond ouvert 20, sont disposés des bossages triangulaires 6, en forme de dents antiretour. Ceux-ci forment avantageusement parties intégrantes des parois 3, venant de moulage avec ces parois.
Les bossages 6 sont en forme de triangles rectangles présentant des faces légèrement inclinées 61 d'entrée dans l'ouverture 2Q (faces qui correspondent à I'hypqténuse du triangle) et des faces 60 perpendiculaires aux parois 3 (faces correspondant au petit côté du triangle).
Nous allons maintenant expliquer de quelle manière se fait la mise en place d'un boîtier contenant un disque compact à l'intérieur de cet étui, en nous référant plus particulièrement aux figures 4, 4A et 4B.
On a désigné par la référence 7 le boîtier rectangulaire contenant le disque, ce dernier n'étant pas représenté. Les boîtiers de disques compacts sont plats, de forme générale rectangulaire, et ont des dimensions standard. Ils sont constitués de deux parties articulées l'une sur l'autre à la manière de demi-coquilles, l'ouverture du boîtier permettant d'en extraire le disque compact.
A la figure 4, on a désigné par la référence 8 une étiquette de détection du vol, qui est de type connu en soi, cette étiquette étant collée sur l'un des chants, correspondant à la base, de l'étui.
La mise en place du boîtier à l'intérieur de l'étui antivol, qui peut être réalisée soit par le fabricant, soit par le distributeur grossiste, consiste tout d'abord à présenter la base du boîtier en vis-à-vis du fond ouvert 20. Ce mouvement est symbolisé par les flèches F aux figures 4 et 4A. Au début de l'introduction, les coins du boîtier 7 rencontrent les faces 61 biseautées, faiblement inclinées, des bossages triangulaires 6. En raison de l'élasticité inévitable aussi bien du boîtier que des parois de l'étui, les bossages 6 s'écartent légèrement, par effet de coin, vers l'extérieur, comme cela est symbolisé par la flèche G à la figure 4A. Une fois que le boîtier 7 a été complètement enfoncé, à la manière d'un tiroir, à l'intérieur de l'étui, les bossages 6 retrouvent leur position initiale et par leur face interne 60 à angle droit, jouent le rôle de dents antiretour, empêchant le retrait du boîtier en sens inverse, hors de l'étui.
Le boîtier se trouve donc emprisonné à l'intérieur de l'étui antivol, et il n'est possible ni d'extraire le boîtier ni de l'ouvrir, sauf bien entendu à détériorer préalablement l'étui, par exemple en découpant la lamelle 40.
Dans ce but, le prélèvement plasmatique (sang total) a été additionné d'héparine en tant que moyen anti-coagulant dans la minute qui suit la prise de sang, puis dilué ensuite à 50-1 au moyen du milieu de Shadomy enrichi (extrait de levure à 2 g/l) et complémenté en saponine (10 g/l), urée (2 g/l) et ampicilline.
La filamentation a été réalisée ensuite (avec ou sans multiplication dans le milieu de Shadomy normal pendant 4 h à 37"C et à pH 7,0-7,5, à partir d'une population initiale de souches de levures ayant une population de 102 à 106 levures/ml.
Pour apprécier l'affinité des formes filamentaires essentiellement constituées ici de GT, on a mis en contact des prélèvements du milieu de filamentation (tel qu'obtenu après culture pendant 4 h à 370C et à pH 7,07,5) avec le réactif FDP-latex de l'exemple 6 pendant 1 h à 370 C.
La lecture de l'éventuelle affinité a été effectuée par la détermination de l'agglutination et a été vérifiée par examen microscopique, comme indiqué à l'exemple 7 ci-dessus.
Les résultats qui ont été obtenus avec des souches de Candida sont consignés dans le tableau VIII ci-après. On constate, comme à l'exemple 7, que l'af fi- nité n'est pas mise en évidence pour les formes levures proprement dites, c'est-à-dire les blastospores. En revanche, l'affinité est spécifique pour les formes filamentaires des levures testées et plus principalement les GT desdites levures. L'intérêt de séparer l'étape de multiplication (si elle est nécessaire) de l'étape de filamentation est également confirmé.
TABLEAU VIII Influence de la concentration des levures Croissance Population (levures/ml) à 37 C 106 105 104 103 10a T = O h (BL) (1) - - - - - (2) NR NR NR NR NR T = 4 h (GT) (1) + +/- - - (2) R+NR R+NR NR NR NR T = 20 h (BL) et 4 h (GT) (1) +++ +++ ++ + (2) R R R R+NR R+NR Notes (1) : agglutination (évaluée après 1 h à 37 C) (2) : examen microscopique effectué parallèlement à l'évaluation de l'agglutination NR : les formes filamentaires (essentiellement GT) ne se pas recouvertes par le réactif FDP-latex (absence d'adhérence dudit réactif) R : les formes filamentaires (essentiellement GT) sont recouvertes par le réactif FDP-latex (adhérence dudit réactif) EXEMPLE 9 On a mesuré l'affinité de diverses souches de levures en système plasmatique (sang total hépariné) qui ont été soumises d'abord à une multiplication pendant 24 h à 37"C, après dilution à 50-1 dans le milieu de Shadomy enrichi (extrait de levure à 2 g/l) et complémenté en urée (2 g/l), saponine (0,2 g/l) et antibactérien (ampicilline), pour multiplier les BL jusqu'à une population de 105 à 106 ; puis à une filamentation ou pseudofilamentation dans le milieu de Shadomy normal pendant 1-3 h à 37"C et à pH 7,0-7,5.
L'évaluation de l'affinité a été effectuée en mettant en contact pendant 1 h à 370C des portions du milieu de filamentation résultant avec le réactif FDPlatex de l'exemple 6.
Les résultats qui ont été obtenus sont consignés dans le tableau IX ci-après.