INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Abreviations : E, EcoRI - Sst, SstI - npt, néomycine phosphotransférase - cat, chloroamphénicol acétyltransferase - BR et BL, bordures droite et gauche du T-DNA - Tet, tetracycline résistance - Kb, kilobase.
Figure 6 : vecteur binaire pGA-p -3-1B.
Légende : 35S, promoteur 35S du Cauliflower Mosaic Virus - 5'Nos, promoteur du gène de la nopaline synthase - Nos, terminateur du gène de la nopaline synthase. NPT, gène de la néomycine phosphotransférase -UID A, gène de la -glucuronidase d'E. coli - BR et BL, bordures droite et gauche du T-DNA de pTiT 37 - amp, gène de résistance à l'ampicilline - tet., gène de résistance à la tetracycline - Kana., gène de resistance à la kanamycine - E, EcoRI - H, Hind III - S, Sst I - ,origine de replication du RK2.
Figure 7 : analyse par Western blot des suspensions cellulaires transformees par le vecteur binaire pGA -3-1B.
Légende : CP, protéine de capside - WT, suspension non transformée - 20 ng et 2 ng, reconstructions avec les quantités indiquées de BNYVV -p -Glu, -glucuronidase MW, marqueur de poids moléculaire.
En encadré, la structure du gène chimérique codant pour la protéine de capside est représenté. p35S, promoteur du Cauliflower Mosaic Virus - Nos, terminateur du gène de la nopaline synthase ; tag, codon de terminaison du BNYVV : readthrough - tag, codon de terminaison situé dans le terminateur - atg, codon d'initiation.
Figure 8 : infection de protoplastes de betterave par du BNYW F13 (Cl, O) et S2 (v) par la méthode au PEG.
( & représente les résultats obtenus avec du virus inactivé.
Figure 9 : infection de protoplastes de betterave par électroporation en présence (v) et en absence (v) de CaC12 5 mM. Les symboles ouverts correspondants représentent le pourcentage de protoplastes viables en présence (V) et en absence (t2) de CaC12 5 mM.
Figure 10 : profils densitometriques d'analyses de RNA extraits de protoplastes infectes isoles de lignees exprimant (----) ou n'exprimant pas (-) la proteine de capside du BNYVV.
Figure 11 : analyse par Western blot d'extraits protéiques de 3 betteraves transgéniques à l'aide de deux sérums : un sérum anti-BNY W et un serum anti-p glucuronidase.
Abréviations : L, limbe ; P, pétiole ; R, racine Te, témoin ; S, suspension cellulaire transformees ; 2ng, 2ng de BNYW purifie ; 14-3, 22-1 et 68-1 réfèrent à 3 betteraves transgéniques différentes.
Tableau 1 : les 16 gènes de resistance potentiels avec leurs produits théoriques.
N.B. : les chiffres entre parenthèses réfèrent la position des sites de restrictions selon la séquence du BNYW ; A représente le linker BglII additionné. La taille des transcripts correspond à la partie du messager complémentaire du BNYVV.
- Un orifice (67), de 30 mm de ~.
- Un orifice (68), de 50 mm de ~ pour la sortie d'eau propre.
UN FOND (69), identique au couvercle (32).
UN SOCLE (70).
UN TUYAU de LIAISON (71), avec raccords démontables reliant les orifices (40) et (59).
UN TUYAU DE LIAISON (72),de 30mmde ~ avec raccords et vannes reliant les orifices (41+52+40+67) des chambres (37+50+56+66).
UN TUYAU (74), de 40 mm de ~ avec raccords et vannes, reliant les orifices (42+53+42B+65) des chambres (37+50+56+57).
FONCTIONNEMENT PREFILTRATION et DEGROSSISSEMENT: (PL2). L'eau chargée en particules traverse le préfiltre (Fig 4), laissant ainsi dans les deux paniers (26 et 27), les plus grosses particules.
FILTRATION: (PL5). L'eau sale entre par l'orifice (39), traverse les différents compartiments (37+45+50+46+56+57), en débarassant l'eau de ses impuretés, et sort propre et limpide, prête à l'utilisation, ou au retour dans la piscine. Dans la position filtration, toutes les vannes se trouvant sur le passage des tuyaux (72) et (74), et la vanne (63) sont fermées.
DETASSAGE et NETTOYAGE du FILTRE (PL6). Sous pression, l'eau propre (ville, puit etc.) entre par l'orifice (73), traverse les différents compartiments dans le sens inverse de la filtration par les orifices (67+40+52+41), en empruntant le tuyau (72).
Dans ce sens l'eau détasse les éléments filtrants en les soulevant, chassant la saleté et les particules retenues dans ces matières durant la filtration, vers les orifices d'évacuation (42+53+42B+65), en empruntant le tuyau (74), vers l'égout. Dans cette position de lavage, les vannes se trouvant sur les orifices (38+59+62+68), sont fermées.
APPLICATIONS - Filtration d'eau domestique (puits, forages, rivières etc...).
- Filtration d'eau de piscine en circuit fermé.
- Filtration de toute eau chargée en particules quelle qu'elle soit (rejet des usines et autres.).
- Filtration de tous autres liquides (Vin, jus de fruits, bière, médicaments et autres.), ainsi que les GAZ.
VARIANTES DEMINERALISATION des eaux (Fig 15),pourlaboratoires d'analyses médicales, Industries, Vitrerie, Batteries, Humidificateurs, etc..
L'objet de la présente invention est d'en proposer un et concerne donc un système d'aide à la navigation pour véhicule terrestre, comportant un compas magnétique pour déterminer le cap magnétique suivi par le véhicule, caractérisé par le fait qu'il comporte en outre des moyens pour sélectionner un cap programmable à poursuivre passant par un point à atteindre, des moyens pour déterminer l'angle de gisement du point à atteindre, formé entre les deux caps, et des moyens pour indiquer le gisement.
On remarquera que le système d'aide de l'invention procure un résultat analogue à celui d'un radiocompas d'aide à la navigation aérienne, qui n'indique toutefois pas le gisement d'un point à atteindre mais d'une balise d'émission à radiofréquence.
Dans une forme de réalisation préférée du système de l'invention, les moyens de sélection sont agencés pour sélectionner un parmi une quantité finie de caps et ils comprennent une pluralité d'organes de commande en quantité inférieure à celle des caps programmables et des moyens combinatoires de sélection commandés par les organes de commande. Avantageusement, les organes de commande de sélection sont eux-mêmes commandés par une touche de manoeuvre unique à actionnement multiple.
De préférence encore, les moyens indicateurs de gisement sont agencés pour indiquer la même quantité finie de gisements que de caps programmables.
De préférence toujours, le système de l'invention comporte un microprocesseur, comprenant des ports parallèles, reliés respectivement aux organes de commande de sélection , et une ligne série reliée à un indicateur de gisement.
Avantageusement, il est prévu des moyens pour indiquer le nord magnétique, des moyens pour indiquer le cap magnétique suivi par le véhicule et des moyens pour sélectionner l'indication des moyens indicateurs.
L'invention sera mieux comprise à l'aide de la description suivante de plusieurs formes de réalisation du système d'aide à la navigation terrestre, en référence aux dessins annexés, sur lesquels - la figure 1 représente un schéma synoptique d'une première forme de réalisation du système de l'invention; - la figure 2 représente la face avant du boîtier de bord du système de la figure 1; - la figure 3 représente une vue en coupe du boîtier de bord de la figure 2; - la figure 4 illustre le traitement du microprocesseur du système de la figure 1; - la figure 5 illustre un exemple d'utilisation du système de la figure 1;; - la figure 6 représente une vue en coupe du boîtier de bord d'une deuxième forme de réalisation du système de l'invention; - la figure 7 représente la face avant du boîtier de bord du système de la figure 6, en mode boussole; - la figure 8 représente la face avant du boîtier de bord du système de la figure 6, en mode compas et - la figure 9 représente la face avant du boîtier de bord d'une troisième forme de réalisation du système de l'invention, en mode boussole.
Structurellement, le système d'aide à la conduite d'un véhicule terrestre des figures 1-5 comporte un capteur 1 de compas magnétique, son électronique d'excitation 2 et son électronique de démodulation 3, un microprocesseur 4 et un boîtier sélecteur-afficheur de bord 5.
Fonctionnellement, le système comprend le compas magnétique 6, incluant le capteur 1, les électroniques 2, 3 et, en partie, le microprocesseur 4, un module de sélection 7, incluant la partie sélecteur 8 du boîtier 5 et, en partie, le microprocesseur 4, et un module d'affichage 9, incluant la partie afficheur 10 du boîtier 5 et, en partie, le microprocesseur 4. Le microprocesseur peut d'ailleurs être celui du compas magnétique 6.
Le capteur 1, ici du type à vanne de flux décrit dans l'article évoqué plus haut, fournit les composantes horizontales du champ magnétique terrestre dans un repère lié au véhicule terrestre. Après amplification et filtrage, dans l'électronique 3, et conversion analogique-numérique, dans le microprocesseur 4, le cap magnétique Cm suivi par le véhicule, c'est-à-dire l'angle formé entre la direction du nord magnétique N et la direction suivie S, ou encore l'axe longitudinal du véhicule, est déterminé dans le microprocesseur 4.
Sur la face avant du boîtier 5 se trouve, légèrement en saillie, une touche de manoeuvre 11 pour sélectionner, ou programmer, un cap à poursuivre Cp qui est saisi dans le microprocesseur 4. Le logiciel du microprocesseur 4, au demeurant à la portée de l'analyste-programmeur du métier, est élaboré pour déterminer l'angle de gisement Gt = 2 ( + Cp - Cm (modulo 2 c'est-à-dire l'angle formé entre l'axe du véhicule, considéré comme axe de référence, et le cap programmé Cp et pour afficher ce gisement dans une zone 12, en forme de rose de gisements, de l'afficheur 10 du boîtier 5.
On remarquera que les angles Cp Cm et Gt sont comptés positivement dans le sens des aiguilles d'une montre sur le cercle trigonométrique.
Si Cp > Cm, Gt = Cp-Cm.
Si c'n > Cp, Gt = 2 Si Gt < #, il faut tourner à droite, dans le sens des aiguilles d'une montre, pour rejoindre le cap Cp.
Si Gt > # , il faut tourner à gauche, dans le sens inverse des aiguilles d'une montre, pour reprendre le cap Cp.
L'afficheur 10 comporte une autre zone 13, en forme de fenêtre, pouvant afficher, d'un côté, des caractères 14 représentatifs du cap programmé et, de l'autre côté, une icône 15 représentant le véhicule et pouvant clignoter jusqu'à ce que le gisement du point à atteindre soit nul. Le logiciel est également élaboré à cet effet.
Les sequences de l'invention peuvent également être utilisées comme sonde nucléique, éventuellement en combinaison avec des moyens permettant une detection, pour détecter par exemple la présence des séquences dans des cellules transformées.
La presente invention concernant la création de betteraves sucrières génétiquement transformées et pouvant resister au BNYW et donc à la rhizomanie, met en jeu - la production de fragments de message génétique modifie ou non du virus, par la plante, - l'expression de ces fragments d'ADN d'origine virale sous des promoteurs constitutifs (35S ; Nos), - la vérification de cette expression par la mise en évidence des ARN messagers correspondants dans des suspensions cellulaires habituées et transformées, - la confirmation de la production dans la même cellule de deux protéines de tailles différentes codes par le même gène * la protéine de capside du BNYVV de 22 Kd (188, acides aminés) * la protéine chimérique dérivée de la protéine de capside, de 29 Kd (252 acides aminés), - l'utilisation des trois souches désarmées d'Agrobacterium tumefaciens pour la transformation de suspensions cellulaires et de cals friables de betterave, - l'obtention de suspensions cellulaires transformantes, induites à partir de cals sélectionnés sur kanamycine apres transformation de suspens ions cellulaires habitués, - l'utilisation de ces suspensions cellulaires transformées comme modèle pour tester l'expression de tout fragment d'ADN placé sous le contrôle de promoteurs appropries, - l'utilisation de ces suspensions cellulaires pour tester l'inhibition de la multiplication virale par un gene donné, - l'inhibition de la multiplication du BNYVV dans des protoplastes issus de suspens ions cellulaires transformées et produisant les deux proteines de 22 Kd et 29 Kd, des protoplastes servant comme modèle pour tester l'infectabilité de la cellule, les cellules ne pouvant pas être infectées directement par les virus, - la transformation de jeunes cals friables organogènes, - l'obtention de cals transformés organogènes sélectionnes sur kanamycine après transformation de jeunes cals friables organogènes, - la possibilite de supprimer très tôt à la fois l'agent selectif (kanamycine) et l'agent bacteriostatique (céfotaxime) du milieu de culture des cals, - le développement des bourgeons ou embryons initiés à partir des cals transformes, en plantes transformées enracinées, - l'expression dans la plante des gènes transférés, - la mise en evidence de la production des protéines 22 et 29 Kd spécifiquement dans les racines de betteraves transformees, - l'absence de la production de proteines 22 et 29 Kd dans la partie aerienne des plantes transformées, - la production de graines transgéniques à partir de transformants primaires, - la mise en évidence de la résistance à la rhizomanie des plantules issues des graines transgeniques.
EXEMPLE 1 : EXTRACTION DE L'ARN VIRAL La multiplication du virus se fait sur Chenopodium quinoa après inoculation manuelle, et l'extraction se fait à partir de feuilles viroses de huit jours selon la technique de Putz (1977). La suspension virale ainsi obtenue est ajustée à 100 mM NaCl puis soumise à deux extractions au phénol suivies de deux lavages à l'éther de la phase aqueuse. Les RNA viraux sont precipités par addition de deux volumes d'éthanol distillé et conservés à -20 C. Le nombre et la taille des RNA a été rapporté par Richards et al (1985).
EXEMPLE 2 : FABRICATION DU cDNA DU RNA 2 Richards et al ont montre en 1985 que le RNA 2 était un messager efficace pour la synthèse de la protéine capsidaire. Un ADN complémentaire d'une partie du RNA 2 a été synthétisé par la méthode de Van der Werf et al (1981) et clone au site Pst 1 du plasmide pBR322 (Bolivar et al, 1977). Le plasmide résultant pBC2 contient un ADN copie correspondant aux 2938 bases de l'extrémité 5' du RNA 2 (Richards et al, 1985).
EXEMPLE 3 : DETERMINATION DE LA SEQUENCE DE L'EXTREMITE 5'DU RNA 2 Grâce à la technique de Maxam et Gilbert (1980), et à celle de Sanger (1977), la séquence du clone pBC2 a été déterminée. Sur la figure 1, la séquence detaillee est presentée avec, au-dessous, l'organisation genetique du RNA2 schématisée. L'examen de cette séquence a confirmé la présence de la protéine de capside au niveau du ler cistron situé en 5', le codon ATG de départ étant placé à 144 nucléotides de l'extrémité 5'. Cette protéine d'un poids moléculaire de 22 Kd comporte 188 codons et se termine par un codon ambre UAG. La composition en acides aminés déduite de la séquence est identique à celle de la protéine capsidaire du BNYW déterminée par C. Putz (1977).Le codon stop (UAG) est immédiatement suivi d'une phase ouverte ayant une capacité codante correspondant à un polypeptide de 54 Kd. Par la suppression du codon UAG, on peut donc obtenir une phase de lecture ouverte capable de coder pour une protéine de 75 Kd. Ces données sont en accord avec les résultats obtenus par Ziegler et al (1985) montrant que le RNA2 est un messager efficace pour la synthèse de deux protéines immunoprécipitées par du sérum anti BNYVV et dont la synthèse est augmentee en présence d'un t.RNA suppresseur. Tous ces resultats sont discutés dans la publication de Bouzoubaa et al (1986), il est aussi précisé qu'une 3ème phase de lecture capable de coder in vitro pour une proteine se fait à partir d'un ARN subgenomique du RNA2 qui a été mis en évidence et qui peut être encapsidé.
EXEMPLE 4 : CONSTRUCTION DES VECTEURS D'EXPRESSION Premièrement les signaux de transcription du gène de la nopaline synthase de la bacterie Aqrobacterium tumafaciens T 37 ont été utilises. A partir du plasmide pNopnéoa 18 construit par Bevan (1983) dont la structure est présentée dans la figure 2, celui-ci contient la séquence du vecteur de clonage pUC9 (Vierra et al, 1982) avec un fragment EcoRI-BamHI de 260 bp et un fragment HindIII-XhoII (BamHI-BglI) de 310 bp. Ces deux fragments qui proviennent du plasmide tumorigène pTiT37 d'Aqrobacterium tumafaciens T 37 contiennent respectivement le signal de polyadénylation et le promoteur du gène de la nopaline synthase.Ces deux signaux de transcription encadrent un fragment BglII-Bam HI de 1000 bp qui contient le gène codant pour l'aminoglycoside phosphotransferase II ; à partir de ce plasmide, le fragment de 1000 bp a été enleve par digestion ménagee avec l'enzyme de restriction XhoII, et les molécules de taille de 3300 bp environ sont récuperees après migration sur gel d'agarose. Après ligation et transformation dans E. coli HB101 (Bolivar et al, 1979) des transformants résistants à l'ampicilline ont été selectionnes. La majorité de ces techniques sont décrites dans "Molecular Cloning. A laboratory manual" (Maniatis et al, 1982).Grâce à la cartographie à l'aide d'enzyme de restriction, les inventeurs ont retenu le plasmide pNosENeo, qui possédait un fragment EcoRI-BamHI de 260 bp et un fragment BamHI-HindIII de 310 bp. Pour des commodités d'utilisation de ce plasmide, les inventeurs ont remplacé le site de restriction Hind III par un site EcoRI (détails non presentés) et ainsi ils ont obtenu le vecteur d'expression pBIOS1 (figure 2).
Un autre vecteur d'expression a été construit dans le cadre de l'invention. I1 a la même structure que pBIOS1, le même fragment comportant le signal de polyadenylation, mais le fragment promoteur a été changé.
En effet, le fragment PstI-BamHI comportant le promoteur du gène de la nopaline synthase a été remplace par un fragment EcoRI-BamHI de 400 bp contenant le promoteur du grand transcrit 35S du virus de la mosaïque du choufleur (Ca.M.V.). Ce fragment a été obtenu à partir du plasmide pUC35S qui dérivait du clonage d'un fragment BamHI-HphI au site Sma I du vecteur de clonage pUC13 (Messing, 1983). La source du fragment BamHI-HphI etait le plasmide pJEA25 construit par T. Michael qui avait prélevé un fragment Dde I s'étendant de la position 7069 à la position 7569 du CaMV isolat BJ1 décrit par Franck et al (1980). Après avoir modifié les extrémités de ce fragment grâce à des linkers BamHI, T. Michael l'avait cloné au site BamHI du plasmide pAT153 (Twigg et al, 1980).Sur la figure 2, les differentes étapes de la construction du vecteur d'expression pBIOS3 sont schématisées.
Pour les deux vecteurs d'expression pBIOS1 et pBIOS3, le site de restriction BamHI est présent entre les deux fragments d'ADN contenant le promoteur pour l'un et pour l'autre le signal de polyadénylation ; cette situation est idéale pour l'insertion de tout DNA étranger qui sera un substrat pour la transcription.
EXEMPLE 5 : INSERTION DE FRAGMENTS cDNA DU BNYVV AU SITE BAMHI DES VECTEURS D'EXPRESSION Le plasmide pBC2 a été digere par les enzymes de restriction BglI et DraI et ensuite l'extrémité sortante du site BglI a été supprimee par l'utilisation de la DNA polymérase du bactériophage T4. Ce fragment a été purifié par élution à partir d'un gel d'agarose, après separation électrophoretique. Des linkers BamHI ont été additionnés aux extrémités de ce fragment, et après une digestion avec un grand excès de l'enzyme de restriction BamHI ; ce fragment de 780 bp a été incubé avec les vecteurs pBIOS1 et pBIOS3 ouvert au site BamHI. Après ligation, le melange a servi à transformer E. coli HB101. Après un tri effectué sur les clones resistants à l'ampicilline, 4 plasmides ont été retenus.Les plasmide appelés pBIO1-lB et pBIO3-lB qui ont le fragment cDNA contenant la séquence codante de la protéine de capside sous le contrôle du promoteur Nos pour le premier et pour l'autre sous le contrôle du 35S (figure 3).
Ces plasmides peuvent diriger la fabrication de RNA messagers qui une fois traduits produiront à la fois la protéine de capside du BNYVV et une protéine chimérique de 29 Kd provenant de la suppression du codon stop (phénomène de readthrough). Cette proteine de 252 acides aminés est composée comme suit - les 188 acides amines de la protéine de capside, - 53 acides aminés de la protéine de 75Kd allant de la position 189 à 241 inclus, - de 11 acides amines codés par la séquence du terminateur de la nopaline synthase qui sont respectivement : thréonine, glycine, serine, proline, isoleucine, leucine, glutamine, thréonine, phénylalanine, glycine, glutamine. Deux autres plasmides ont ete obtenus, ces plasmides appelés pBIO1-lA et pBIO3-lA ont le fragment cDNA du BNYVV en orientation inverse sous le contrôle des deux promoteurs.Ces plasmides pourront diriger la fabrication de RNA messagers dits antisens, qui seront des messagers complémentaires de la partie 5' du RNA2.
EXEMPLE 6 : CONSTRUCTION D'UNE FAMILLE DE GENES PERMETTANT LA FABRICATION DE PROTEINES DE CAPSIDE DU BNYVV MODIFIEES ET DE RNA ANTISENS DE TAILLE VARIABLE Deux plasmides dérives de pBIOl-lB, le plasmide pBIO1-2B et le plasmide pBIO1-5B ont été construits. Les différentes étapes de la construction de ces plasmides sont présentées dans la figure 4. Brièvement pour la construction de pBIO1-2B, le plasmide pBIO1-lB a été ouvert au site SphI (position 256 du RNA2) les bouts "collants" ont été enlevés par l'utilisation de la DNA polymérase du bactériophage T4 (délétion de 4 bp) et des linkers BglII de 10 bp ont été ligases aux extrémités franches ainsi produites. Après une digestion exhaustive avec BglII, le plasmide est religasé.Après transformation dans E. coli, le plasmide pBIO1-2B a été obtenu ; celui-ci ne contient plus de site SphI et à cette position on trouve maintenant un site BglII. Cette manipulation a permis deux choses : premièrement, l'obtention d'un site de restriction utile pour d'autres constructions (extrémités compatibles avec celles produites par BamHI) et deuxièmement, l'obtention d'une séquence codante modifiee qui code pour une proteine de capside possédant deux acides aminés supplémentaires et dont deux acides aminés sont changes. Le plasmide pBI01-5B a été obtenu par le même type de manipulation mais dans son cas c'est le site Smal de pBIO1-lB (position 637 du RNA2) qui a été modifié par des linkers BglII. Ce plasmide code pour une protéine de capside raccourcie de 19 acides amines et dont les 4 derniers sont modifiés.
En utilisant les sites BglII et Bam HI de ces deux ;plasmides, les inventeurs ont pu isoler et cloner dans les deux vecteurs d'expression pBIOS1 et pBIOS3 differents morceaux de cDNA recouvrant l'extrémité 3' ou l'extrémité 5' de la protéine de capside et ceci sur des longueurs variables. Une famille de gènes susceptibles de rendre résistante au BNYVV une cellule ou une plante fabriquant le produit d'un ou plusieurs de ces gènes a ainsi été obtenue. Tous ces différents fragments de cDNA sont présentés dans le tableau 1 avec les produits attendus (transcrit et protéine) ; la lettre B référant une orientation sens et A une orientation antisens.
:ODE FRAGMENT cDNA TRANSCRIPT PROTEINE 780 bp B II ARN bon sens protéine de (188 acides ami nes) et protéine chimérique déri vée 29 Kd (252 Aa) B ~~~~~~~~~~~~~ B } ARNARN bon sens Protéine de (256) 780 bp capside mutee (190 Aa) B B 4 ARN bon sens 36 Aa NH2 terminal 3' 165 bp de la proteine de capside 4 B X | ARN bon sens 5' 615 bp 5B ARN bon sens Proteine de (637) 780 bp capside tronquée (169 Aa) B B ≈ L~ ARN bon sens 164 Aa NH2 terminal 5' 546 bp de la proteine de capside B B k ARN bon sens 3' 234 bp 700 bp 8 B ARN bon sens 215 Aa NH2 terminal (2078) (2774)700 bp de la protéine de 42 Kd
CODE FRAGMENT cDNA TRANSCRIPT PROTEINE 1 A ~~~~~~~~~~~~~ * ARNARN anti-sens (8701) (91) 780 bp 2As' ARN anti-sens 780 bp 3A ARN anti-sens 5' 165 bp 4 A s ARN anti-sens 3' 3' 615 bp 5A ARN anti-sens 780 bp 6 A + ARN anti-sens 5' 546 bp 7 A ARN anti-sens 3' 234 bp 8 A ~~~~~~~~~~~~~ ~ ARNARN anti-sens (2774) (2078 700 bp N.B. : les chiffres entre parenthèses repèrent la position des sites de restrictions selon la séquence du BNYVV ; V représente le linker BglII additionné. La taille des transcripts correspond à la partie du messager complementaire du BNYVV.
tiquement en 46, est fixé au guide et introduit des si-
gnaux de réaction dans un système de commande automati-
que à boucle fermée, à partir duquel le contrôleur 8
ajuste l'orientation de la lame 24 en envoyant des or-
dres au moteur d'entraînement théta 42 pour maintenir la